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Funktionelle Analyse des Hypusin enthaltenden Proteins in ...

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4.4.1 Isolierung von Hefe-Zellkernen für die RNA-Extraktion . . . . . . . . 58<br />

4.4.2 Isolierung von Mitochondrien . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 58<br />

4.5 Überprüfung der Existenz e<strong>in</strong>es mitochondrialen Membranpotentials . . . . . . 58<br />

4.6 Zell-Proliferationsassay . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 59<br />

4.7 Zelluläre Fluoreszenzfärbungen, Mikroskopie . . . . . . . . . . . . . . . . . . 59<br />

4.7.1 Anfärbung der Zellkerne <strong>in</strong> Hefezellen durch DAPI-Färbung . . . . . . 59<br />

4.7.2 End-Label<strong>in</strong>g von DNA-3’-Term<strong>in</strong>i entstanden durch DNA-Strangbrüche:<br />

TUNEL . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 60<br />

4.7.3 Mikroskopische Untersuchungen . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 60<br />

4.7.4 Elektronenmikroskopie . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 60<br />

5 Ergebnisse 61<br />

5.1 Funktionsstudie am <strong>Hypus<strong>in</strong></strong> <strong>enthaltenden</strong> Prote<strong>in</strong><br />

durch Punktmutanten-Charakterisierung . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 61<br />

5.1.1 Genetische Überprüfung der Doppeldisruption beider HYP-Gene . . . . 61<br />

5.1.2 Überprüfung von Art und Eigenschaften der Plasmidausstattung . . . . 64<br />

5.1.3 E<strong>in</strong>e Punktmutagenese-Studie führt zur temperatursensitiven Mutante<br />

G81V . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 67<br />

5.1.3.1 Regenerierung der Punktmutante G81V durch FOA-Screen<strong>in</strong>g 69<br />

5.1.4 Wachstumsverhalten <strong>des</strong> Hefestammes WDHG81Gal im Vergleich zum<br />

Wildtyp . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 73<br />

5.1.5 Genetische Stabilität <strong>des</strong> Mutantenstammes WDHG81Gal . . . . . . . 75<br />

5.1.6 Prote<strong>in</strong>chemische phänotypische Charakterisierung durch 2D-Gel-<strong>Analyse</strong> 75<br />

5.1.6.1 <strong>Analyse</strong> von Gesamtextrakten . . . . . . . . . . . . . . . . . 75<br />

5.1.7 Proteomanalytischer Vergleich mitochondrialer Prote<strong>in</strong>e . . . . . . . . 91<br />

5.1.7.1 Mitochondrien-<strong>Analyse</strong>n durch 2D-Gel-Elektrophorese<br />

aus Kulturen bei permissiver Temperatur . . . . . . . . . . . 92<br />

5.1.7.2 2D-Gel-<strong>Analyse</strong> von isolierten Mitochondrien nach Inkubation<br />

bei 37°C . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 100<br />

5.1.8 Überprüfung der mitochondrialen Aktivität und Funktionalität<br />

<strong>des</strong> mitochondrialen Genoms . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 105<br />

5.1.8.1 Messung <strong>des</strong> Atmungsketten-Membranpotentials an isolierten<br />

Mitochondrien . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 105<br />

5.1.8.2 Wachstumsverhalten auf nicht vergärbaren Kohlenstoffquellen 107<br />

5.1.9 Differentielle Gen-Transkriptionsprofil-<strong>Analyse</strong> der<br />

HYP(hum)- Punktmutante G81V . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 110<br />

5.1.9.1 Experimenteller Ansatz und Probenvorbereitung . . . . . . . 111<br />

5.1.9.2 Allgeme<strong>in</strong>e Eigenschaften der Auswertungsergebnisse . . . . 112<br />

5.1.9.3 Ist Hypp e<strong>in</strong> RNA-Kernexportfaktor <strong>in</strong> Hefe? . . . . . . . . 118<br />

5.1.9.4 Beteiligung Hypps an e<strong>in</strong>em speziellen mRNA-Abbauweg . 125<br />

5.1.9.5 Anreicherung von Pseudogenen – e<strong>in</strong> direkter H<strong>in</strong>weis auf<br />

NMD-Defizienz . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 128<br />

5.1.9.6 Bee<strong>in</strong>trächtigung <strong>des</strong> telomeren Positions-Effektes <strong>in</strong> G81 . . 128<br />

5.1.9.7 Anreicherung retrotransposabler Elemente, ihrer LTR-Sequenzen<br />

und ihnen benachbarter ORFs . . . . . . . . . . . . . . . . . 132<br />

iv

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