Praktikum Wasseranalytik 2 - und Biotechnologie (KMUB)

Prof. Dr. Harald Platen 

Labor für Umweltanalytik und Ökotoxikologie 

Fachbereich Krankenhaus- und Medizintechnik, 

Umwelt und Biotechnologie (KMUB) 

Fachhochschule Gießen-Friedberg 

Wiesenstraße 14 

35390 Gießen 

Tel. und Fax: 0641-309 2533 

E-Mail: harald.platen@tg.fh-giessen.de 

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Praktikum 

Wasseranalytik 2 

(Trinkwasser) 

Thema 5 

Entnahme von 

Trinkwasser- 

proben 

6. korrigierte und ergänzte Auflage 

Gießen WS 2007/08 

Seite 1 von 26 

D:\01_Arbeitsbereich_HP\2000_Lehrveranstaltungen_aktuell\2040_WAn2P\2007-WS\HP2040-WAn2P-05-01-TrinkwPN-Aufl-06.doc 

© by Prof. Dr. Harald Platen – FH Gießen-Friedberg – D-35390 Gießen Version/Ausdruck vom 06.11.07 10:08


Praktikum Wasseranalytik 2 

Thema 5: Trinkwasserprobenahme 

Chronologie der Auflagen: 

WS 2002/03 1. Auflage 

WS 2003/04 2. Auflage (überarbeitet) 

3. Auflage (ergänzt) 

WS 2004/05 4. Auflage (überarbeitet) 

SS 2004 5. Auflage (korrigiert und ergänzt) 

WS 2007/08 6. Auflage (korrigiert und ergänzt) 

© by Prof. Dr. Harald Platen 

Fachhochschule Gießen-Friedberg, Fachbereich 04 KMUB, Wiesenstraße 14, D-35390 Gießen. 


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durch den Autor dieses Dokuments erlaubt! 

Inhaltsverzeichnis 

Inhaltsverzeichnis ...............................................................................................................................................2 

Abkürzungsverzeichnis und Begriffserläuterungen............................................................................................3 

1 Einleitung.......................................................................................................................................................4 

1.1 Rohwasser, Trinkwasser und andere Arten von Wasser....................................................................4 

1.2 Qualitätsanforderungen an Trinkwasser und deren Überwachung mit analytischen Methoden ........4 

1.2.1 Übersicht über die zu untersuchenden Parameter...................................................................4 

1.2.2 Häufigkeit der durchzuführenden Analysen .............................................................................9 

1.3 Anforderungen an eine qualifizierte Probenahme ..............................................................................9 

1.4 Probenahmestrategie........................................................................................................................10 

1.5 Aufgabenstellung ..............................................................................................................................12 

2 Material und Methoden................................................................................................................................13 

2.1 Methoden zur Wahrung von Arbeitssicherheit und Umweltschutz ...................................................13 

2.2 Allgemeine Aspekte zur Kennzeichnung und Probenahme von Trinkwasser ..................................13 

2.2.1 Beschreibung von Probenahmeorten, Entnahmeeinrichtungen und Arten von Wasser........13 

2.2.2 Beschreibung von Probearten ................................................................................................13 

2.2.3 Verwendung geeigneter Probengefäße .................................................................................14 

2.2.4 Probenkonservierung .............................................................................................................17 

2.2.5 Probentransport......................................................................................................................18 

2.2.6 Probenlagerung ......................................................................................................................18 

2.3 Protokollführung ................................................................................................................................18 

2.4 Arbeitsplatzausstattung und Versuchsabläufe..................................................................................19 

2.4.1 Arbeitsplatz zur Aufnahme des Abkühlverhaltens in einer Kühltasche..................................19 

2.4.2 Arbeitsplatz zur Sterilisation mit gespanntem Dampf.............................................................19 

2.4.3 Arbeitsplatz zur Durchführung sterilen Arbeiten.....................................................................20 

2.4.4 Arbeitsplatz zur Entnahme einer Trinkwasserprobe...............................................................20 

3 Vorbereitung auf den Versuch, Durchführung und Beurteilung der Ergebnisse.........................................22 

3.1 Aufgaben/Fragen zur Vorbereitung auf das Thema .........................................................................22 

3.2 Durchführung der praktischen Arbeiten ............................................................................................22 

3.3 Aufgaben/Fragen zur Nachbearbeitung und als Interpretationshilfe zu den Ergebnissen ...............22 

4 Literatur .......................................................................................................................................................25 


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Abkürzungsverzeichnis und Begriffserläuterungen 

Abkürzung/Begriff Erläuterung 

AAS Atomabsorptionsspektroskopie 

BGBl. Bundesgesetzblatt 

DIN Deutsche Industrienorm 

deion. Deionisiert 

EN Europäische Norm 

GC-ECD Gaschromatographie mit Elektroneneinfangdetektor 

GC-FID Gaschromatographie mit Flammenionisationsdetektor 

GC-MSD Gaschromatographie mit massenselektivem Detektor 


HPLC High Performance Liquid Chromatography (Hochleistungsflüssigchromatographie) 

IC Ionenchromatographie 

ICP-MS Induced coupled Plasma Mass Spektroscopy 

ICP-OES Induced coupled Plasma Optical Emission Spektroscopy 

IfSG Infektionsschutzgesetz 

ISO International Standardization Organisation 

NB-Agar Nutrient Broth Agar (Nähragar bestimmter Zusammensetzung) 

PAK Polykondensierte aromatische Kohlenwasserstoffe 

PSM Pflanzenschutzmittel 

PVC Polyvinylchlorid (chlorhaltiger Kunststoff) 

SOP Standard Operating Procedure (Standardarbeitsanweisung) 

TrinkwV Trinkwasserverordnung 

ubiquitär überall vorkommend 

TOC Total organic carbon (gesamter organischer Kohlenstoff; gemeint 

sind damit gelöst und partikulär vorliegende organische Stoffe) 






1 Einleitung 

1.1 Rohwasser, Trinkwasser und andere Arten von Wasser 


Rohwasser: Wasser vor der Aufbereitung. Es kann sich hierbei um Brunnenwasser, Uferfiltratwasser, 

Wasser aus Oberflächengewässern u.a. handeln. In Ländern, in denen z.B. Trinkwasser aus 

Meerwasser gewonnen wird, hat sogar Meerwasser den Charakter von Rohwasser. Für 

Hessen gibt es eine eigene Rechtsvorschrift, nach der Rohwasser auf bestimmte Parameter 

regelmäßig untersucht werden muss [8]. 

Trinkwasser: Wasser, das in seinen Güteeigenschaften den gesetzlichen Bestimmungen [1, 9] entspricht 

und u.a. zum Zwecke des Trinkens, der Nahrungszubereitung etc. verwendet werden soll. In 

der Regel wird es durch Aufbereitung von Rohwässern gewonnen, die den Eigenschaften 

von Trinkwasser schon recht nahe sind. Häufigste Aufbereitungsverfahren sind die Enteisenung 

und die Entmanganung. Je größer die Abweichungen des Rohwassers von den Eigenschaften 

des Trinkwassers sind, umso aufwändiger wird eine entsprechende Aufbereitung. 

In seltenen Fällen kann Rohwasser bereits ohne Aufbereitung Trinkwasserqualität haben; 

zur Vermeidung einer Verkeimung wird des dann i.d.R. nur noch gechlort. 

Wasser für Lebensmittelbetriebe: Wasser, das zur Herstellung von Lebensmitteln oder auch zur Reinigung 

entsprechender Produktionsanlagen verwendet wird. 

Brauchwasser: Wasser, das für verschiedene technische Prozesse Verwendung findet. Je nach Prozess 

können die Qualitätsanforderungen an Wasser vollkommen unterschiedlich sein. 

Entionisisertes Wasser (Deionisiertes Wasser): Wasser, das durch Ionenaustauscher von einem Großteil der 

darin befindlichlichen Ionen befreit wurde. Es hat eine Leitfähigkeit von < 1 µS/cm und kann 

durch Spuren von organischem Material, die aus dem Ionenaustauscherharz kommen, verunreinigt 

sein und einen erhöhten Gehalt an Mikroorganismen aufweisen (infolge oberflächlicher 

Besiedelung des Austauscherharzes). 

Destilliertes Wasser: Wasser, das durch Destillation gewonnen wurde. Hierbei bleiben sämtliche geslöten 

Feststoff (organisch und anorganisch) zurück und gewonnen wir reines Wasser, das im ungünstigsten 

Fall nur noch durch Spuren an Inhaltsstoffen, die aus der Destillationsapparatur 

ausgewaschen wurden, verunreinigt ist. Doppelt destilliertes Wasser aus Quarzarmaturen 

ist hochreines Wasser. 

1.2 Qualitätsanforderungen an Trinkwasser und deren Überwachung mit analytischen Methoden 

1.2.1 Übersicht über die zu untersuchenden Parameter 

In den nachfolgenden Tabellen 1 bis 4 wird eine Übersicht gegeben über die Parameter, die nach TrinkwV 

[1] zu bestimmen sind. Die Unterteilung entspricht den "Anlagen" der TrinkwV, die Spalten "Gängiges Prüfvervefahren" 

und "Erläuterungen" wurden ergänzt. 

Tabelle 1: Anforderungen aus Anlage 1 der TrinkwV [1]. Die mit a gekennzeichneten Grenzwerte gelten für 

jedes Trinkwasser, die mit b gekennzeichneten Grenzwerte für Trinkwasser, das in Flaschen etc. 

abgefüllt werden soll. 

Lfd. 

Nr. 

Parameter Grenzwert Gängiges Prüfverfahren Erläuterungen 

1 Escherichia coli 0 in 100 mL a 

0 in 250 mL b 

Anzucht nach Membranfiltration 

oder Voranreicherung 

mit Differentialdiagnostik 

Indikatorbakterium für fäkale Verunreinigung 

2 Enterokokken 0 in 100 mL a 

b 

0 in 250 mL 

wie 1 Indikatorbakterien für fäkale Verunreinigung 

3 Coliforme Bakterien 0 in 100 mL a 

0 in 250 mL b 

wie 1 Indikatorbakterien für fäkale Verunreinigung; 

in einige diagnostischen 

Merkmalen ähnlich wie E. coli. 






Lfd. 

Nr. 

Parameter Grenzwert Gängiges Prüfverfahren Erläuterungen 

4 Pseudomonas 

aeruginosa 

0 in 250 mL a Anzucht nach Membranfiltration 

5 Koloniezahl bei 22°C 100 in 1 mL a Ausplattieren von 0,1 - 

1,0 mL Probe auf NB- 

Agar 

6 Koloniezahl bei 36°C 20 in 1 mL a 

Ausplattieren von 0,1 - 

1,0 mL Probe auf NB- 

Agar 


Ubiquitär vorkommendes Bakterium 

mit geringem pathogenen Potential, 

das aber für (immun-)geschwächte 

Menschen erhöht sein kann. 

Je geringer die allgemeine Belastung 

mit Mikroorganismen ist, umso geringer 

ist die Wahrscheinlichkeit des 

Vorkommens von Krankheitserregern 

Je geringer die Zahl an Mikroorganismen, 

die sich bei Körpertemperatur 

vermehren können (um 37°C), 

umso geringer ist die Wahrscheinlichkeit 

des Vorkommens entsprechender 

Krankheitserreger. 

Tabelle 2: Anforderungen aus Anlage 2/I der TrinkwV [1]. Die Stoffe, die in dieser Tabelle stehen, sind solche, 

die über das Rohwasser oder das Wasseraufbereitungsverfahren in das Trinkwasser kommen 

können und deren Konzentration sich im Verteilungsnetz i.d.R. nicht mehr erhöhen kann. 

Lfd. 

Nr. 

Parameter Grenzwert 

[mg/L] 

Gängige Prüfverfahren Erläuterungen 

1 Acrylamid 0,0001 GC-MSD Monomer, das aus Fällungshilfsmitteln 

aus der Wasseraufbereitung 

stammt 

2 Benzol 0,001 GC-FID Aromatischer Kohlenwasserstoff mit 

krebserzeugendem Potential 

3 Bor 1,0 Photometrie Liegt meisten in der Form von Boraten 

(abgeleitet von der Borsäure 

H3BO3) vor. 

4 Bromat 0,01 Photometrie Starkes Oxidationsmittel, abgeleitet 

von der Bromsäure HBrO3 

5 Chrom 0,05 AAS, ICP, Photometrie Schwermetall, das in seiner oxidierten 

Form (Chromat) krebserzeugendes 

Potential hat 

6 Cyanid 0,05 Phomotmetrie, IC Toxisches Ion; Hemmstoff der Atmungskette 

7 1,2-Dichlorethan 0,003 GC-ECD Chlorierter Kohlenwasserstoff, der 

infolge industrieller Verwendung 

chlorierter Stoffe häufig in Grundwasser 

nachzuweisen ist 

8 Fluorid 1,5 IC, Potentiometrie Spurenelement (Zahnaufbau), das in 

höheren Konzentrationen toxisch 

wirkt (Hemmstoff des Citratcyclus) 

9 Nitrat 50,0 IC, Potentiometrie Ion, das in vielen Fällen durch landwirtschaftliche 

Prozesse in das 

Grundwasser gelangt; Bildung des 

akut und chronisch toxischen Nitrits 

im menschlichen Körper möglich 

(Blausucht, krebserzeugendes Potential) 






Lfd. 

Nr. 


[mg/L] 

10 PSM und Biozide 

(Einzelstoffe) 

11 PSM und Biozide 

(Summe) 



0,0001 HPLC, GC-MSD Stoffe, die durch landwirtschaftliche 

Prozesse in das Grundwasser gelangen 

und deren humantoxisches Potential 

unklar ist. 

0,0005 HPLC, GC-MSD Siehe 10. 

12 Quecksilber 0,001 AAS Toxisches Schwermetall 

13 Selen 0,01 AAS Spurenelement ("Selenoenzyme"), 

das in höheren Konzentrationen toxisch 

wirkt. 

14 Tetrachloethen und 

Trichlorethen 

0,01 GC-ECD Siehe 7. 

Tabelle 3: Anforderungen aus Anlage 2/II der TrinkwV [1]. Die Stoffe, die in dieser Tabelle stehen, sind solche, 

die über das Rohwasser oder das Wasseraufbereitungsverfahren in das Trinkwasser kommen 

können, aber auch durch das Verteilungsnetzes und die Hausinstallation in das Wasser gelangen 

können; Damit kann sich die Konzentration von der Aufbereitungsanlage bis zur Entnahmestelle 

erhöhen. 

Lfd. 

Nr. 


[mg/L] 


1 Antimon 0,004 AAS Bestandteil als Verunreinigung in 

Legierungen und Werkstoffen 

2 Arsen 0,01 AAS Bestandteil als Verunreinigung in 

Legierungen und Werkstoffen; in 

manchen Grundwässern geogen 

bedingt höhere Werte. 

3 Benzo-(a)-pyren 

(PAK-Einzelsubstanz) 

0,00001 HPLC Bestandteil als Verunreinigung in 

Werkstoffen (in alten Wasserversorgungsanlagen 

Verwendung von 

Teerpech als Dichtungsmasse oder 

Kleber) 

4 Blei 0,01 AAS; ICP Bestandteil von Legierungen und 

Werkstoffen; in alten Gebäuden gelegentlich 

noch Bleileitungen! Dann 

deutliche Überschreitung des 

Grenzwertes 

5 Cadmium 0,005 AAS; ICP Bestandteil als Verunreinigung in 

Legierungen und Werkstoffen 

6 Epichlorhydrin 0,0001 GC-ECD Vorstufe von Epoxidharzen (Kunststoffe; 

z.B. zur Auskleidung von Behältern 

und Rohrleitungen) 

7 Kupfer 2,0 AAS; ICP Bestandteil von Legierungen und 

Werkstoffen 

8 Nickel 0,02 AAS; ICP Bestandteil von Legierungen und 

Werkstoffen 

9 Nitrit 0,5 Photometrie entsteht durch Reduktion von Nitrat, 

das normalerweise in Trinkwasser 

enthalten ist (siehe Tab. 2) 

10 PAK (Summe von 6 

Einzelsubstanzen) 

0,0001 HPLC Bestandteil als Verunreinigung in 

Werkstoffen; siehe 3. 






Lfd. 

Nr. 


[mg/L] 



11 Trihalogenmethane 0,05 GC-ECD Entstehung durch die Reaktion von 

"normalen" organischen Inhaltsstoffen 

mit Desinfektionsmitteln (Cl2) 

12 Vinylchlorid 0,0005 GC-FID Chlorierter Kohlenwasserstoff, der 

infolge industrieller Verwendung 

chlorierter Stoffe häufig in Grundwasser 

nachzuweisen ist und durch 

Abbau höher chlorierter Stoffe entstehen 

kann; auch aus PVC- 

Leitungen 

Tabelle 4: Anforderungen aus Anlage 3 der TrinkwV [1]. Die Stoffe, die in dieser Tabelle stehen, sind solche, 

die bis zu den ausgewiesenen Obergrenzen normale Bestandteile von Trinkwasser sind. 

Lfd. 

Nr. 

Parameter Grenzwert/ 

Anforderung 


1 Aluminium 0,2 mg/L AAS, ICP, Photometrie kommt in nennenswerten Mengen ins 

Wasser, wenn in der Wasseraufbereitung 

Aluminiumsalze zur Fällung 

eingesetzt werden; muss auch nur 

dann untersucht werden. 

2 Ammonium 0,5 mg/L Photometrie kommt durch natürliche Zersetzungsprozesse 

von organischem 

Material und durch landwirtschaftliche 

Prozesse ins Rohwasser 

3 Chlorid 250 mg/L IC; Titration nach Mohr Chlorid ist normaler Bestandteil in 

Roh- und Trinkwasser; zu hohe Cl- 

Gehalte führen zu salzigem Geschmack 

und fördern die Korrosion 

von Metallleitungen 

4 Clostridium perfringens 

(einschließlich Sporen) 

0 in 100 mL Membranfiltration, Kultivierung,Differentialdiagnostik 

Das Bakterium ist der Erreger des 

Gasbrandes, einer schwerwiegenden 

Infektion tiefer Wunden. Hierauf 

muss nur untersucht werden, wenn 

das Rohwasser durch Oberflächengewässer 

beeinflusst wurde. 

5 Eisen 0,2 mg/L AAS, ICP kommt in nennenswerten Mengen ins 

Wasser, wenn in der Wasseraufbereitung 

Eisensalze zur Fällung eingesetzt 

werden; muss auch nur dann 

untersucht werden. Kann auch geogen 

bedingt im Rohwasser vorkommen, 

fällt dann aber zu großem Teil 

bei der Wasseraufbereitung als 

Hydroxid aus. 

6 Färbung (E436 nm) 0,5 m -1 

Photometrie Der Grenzwert entspricht einem Extinktionswert 

in einer 1 cm-Küvette 

von 0,005 

7 Geruchsschwellenwert 

2 bei 12°C 

3 bei 25°C 

Organoleptik nach Verdünnung 

Der Zahlenwert entspricht der Verdünnungsstufe 

mit geruchsneutralem 

Wasser 






Lfd. 

Nr. 


Anforderung 

8 Geschmack ohne 

abnormale 

Veränderg. 

9 Koloniezahl bei 22°C ohne 

abnormale 

Veränderg. 

10 Koloniezahl bei 36°C ohne 

abnormale 

Veränderg. 

11 Elektrische Leitfähigkeit 2500 µS/cm 

bei 20°C 


Sensorik --- keine Erläuterung --- 

Siehe Tab. 1 Siehe Tab. 1 

Siehe Tab. 1 Siehe Tab. 1 


Elektrode Die Elektrische Leitfähigkeit korreliert 

mit dem Salzgehalt. 

12 Mangan 0,05 mg/L AAS, ICP Mangan ist ein normaler Bestandteil 

in Rohwasser und führt, bei erhöhter 

Konzentration, zu Braunsteinablagerungen 

in Leitungen (ähnlich wie bei 

Eisen); aus diesem Grund wir der 

Gehalt begrenzt. Mangan ist Spurenelement 

mit wenig toxischen Eigenschaften 

im höheren Konzentrationsbereich. 

13 Natrium 200 mg/L AAS, ICP Natrium ist normaler Bestandteil in 

Roh- und Trinkwasser; zu hohe Na- 




14 TOC ohne 

abnormale 

Veränderg. 

15 Oxidierbarkeit 5,0 mg O2/L Oxidation mit KMnO4 

und Titration 

Verbrennungsanalyse Rohwasser und damit auch Trinkwasser 

enthält geringe Gehalte an 

organischen gelösten Stoffen. Die 

Bewertung "ohne abnormale Veränderung" 

ist im Zusammenhang mit 

der Oxidierbarkeit interpretierbar. 

Organische Stoffe sind über den 

Redoxzustand der Kohlenstoffatome 

mit dem Sauerstoffverbrauch bei 

vollständiger Oxidation verbunden. 

Das Verhältnis von O2-Verbrauch zu 

TOC liegt für viele Verbindungen bei 

etwa 2:1 bis 3:1; entsprechend sollte 

ein "normaler" TOC im Bereich zwischen 

1 und 3 mg/L liegen. 

Der Parameter ist ein Maß für den 

Gehalt an organischen Stoffen; vgl. 

Pos. 14 (TOC) 

16 Sulfat 240 mg/L IC Sulfat ist normaler Bestandteil in 

Roh- und Trinkwasser; zu hohe SO4- 




17 Trübung 1,0 NTU Nephelometrie --- keine Erläuterungen --- 

18 Wasserstoffionenkonzentration 

(pH-Wert) 

6,5 bis 9,5 Elektrode --- keine Erläuterungen --- 






Lfd. 

Nr. 


Anforderung 



19 Tritium 100 Bq/L Szintillationsmessung Radioaktives Wasserstoffisotop; 

Halbwertszeit ca. Jahre; entsteht 

durch Freisetzung aus Kerntechnischen 

Anlagen und Atombombenversuchen. 

20 Gesamtrichtdosis 0,1 mSv/a Berechnung Die Aktivitäten von Tritium, Kalium- 

40, Radon und seine Zerfallsprodukte 

werden nicht eingerichtet; begrenzt 

werden im wesentlichen die 

durch anthropogene Einflüsse eingebrachten 

Radionuklide (allerdings ist 

auch Tritium auf anthropogene Einflüsse 

zurückzuführen). 

1.2.2 Häufigkeit der durchzuführenden Analysen 

In Anlage 4 der TrinkwV [1] unterscheidet man hinsichtlich der Untersuchungshäufigkeit zwei Kategorien an 

Analysen: 

• 

die routinemäßigen Untersuchungen 

• die periodischen Untersuchungen 

Folgende 15 Parameter gehören zu denen, die routinemäßig untersucht werden müssen: Aluminium*, Ammonium, 

Clostridium perfringens*, Eisen*, Elektrische Leitfähigkeit, Escherichia coli, Färbung, Geschmack, 

Koloniezahl bei 22°C und 36°C, Nitrit*, Pseudomonas aeruginosa*, Trübung und pH-Wert. Die mit Stern (*) 

gekennzeichneten Parameter müssen dabei nur unter bestimmten Bedingungen untersucht werden, die als 

Anmerkungen in Anlage 4 TrinkwV [1] spezifiziert sind. Alle anderen Parameter sind periodisch zu untersuchend; 

hierzu gehört dann auch die Untersuchung auf Legionellen in zentralen Erwärmungsanlagen, die in 

den Anlagen 1 bis 3 der TrinkwV keine Erwähnung gefunden haben. 

Die Häufigkeit der Untersuchungen richtet sich dabei nach der produzierten bzw. abgegebenen Wasser 

mange pro Tag, wobei 9 Cluster unterschieden werden mit Unterteilungen zwischen 100.000 m³/Tag. Routinemäßige Untersuchungen sind dabei häufiger durchzuführen als periodische Untersuchungen 

(entsprechend der Angaben in Anlage 4 TrinkwV [1]). 

1.3 Anforderungen an eine qualifizierte Probenahme 

Die Analytik soll Ergebnisse liefern, die die Situation beschreiben, wie sie zur Zeit der Probenentnahme in 

der jeweiligen Wasserversorgungsanlage vorlagen. Hierzu müssen folgende Bedingungen eingehalten werden: 

(a) Die Wasserprobe muss repräsentativ sein. Da eine Probe ja immer nur eine kleiner Teil einer großen 

Wassermenge ist, muss bei der Probenahme sicher gestellt sein, das die Probe in der Zusammensetzung 

der Gesamtmenge entspricht. 

(b) Die Wasserprobe darf während der Entnahme und des Transports zum Labor keine Veränderungen 

erfahren; wenn sie sich verändern würde, wäre kein Rückschluss auf die Eigenschaften des in der Wasserversorgungsanlage 

befindlichen Wassers möglich. 

(c) Die Wasserprobe darf sich bei der Lagerung im Laboratorium bis zur Analyse nicht verändern; vgl. Punkt 

(b) 

Probenahmen werden häufig von Personen durchgeführt, die im Auftrag eines Labors oder einer Überwachungsbehörde 

stehen und die selbst an der nachfolgenden Analytik nicht beteiligt sind. Auch wenn dieser 

Personenkreis nicht über Kenntnisse der chemischen Analytik verfügt, muss er über Sachkompetenz zur 

richtigen Probenentnahme, zur Wahl des Probengefäßes, und ggf. der Probenkonservierung verfügen. Nur 

so wird sichergestellt, dass die o.g. Punkte (a) und (b) eingehalten werden. 







Die Trinkwasserverordnung [1] trägt diesem Rechnung, indem sie in §15 (4) verlangt, dass "... erforderliche(n) 

Untersuchungen einschließlich der Probenahmen dürfen nur von solchen Untersuchungsstellen 

durchgeführt werden, die nach den allgemein anerkannten Regeln der Technik arbeiten, über ein System 

der internen Qualitätssicherung verfügen, sich mindestens einmal jährlich an externen Qualitätssicherungsprogrammen 

erfolgreich beteiligen, über für die entsprechenden Tätigkeiten hinreichend qualifiziertes Personal 

verfügen und eine Akkreditierung durch eine hierfür allgemein anerkannte Stelle erhalten haben." Eine 

nicht richtig oder vollständig durchgeführte Untersuchung, zu der auch die Probenentnahme gehört, gilt als 

Ordnungswidrigkeit ([1] §25 4.) und kann damit mit Bußgeld belegt werden (vgl. auch [1] §18 (2) 2.). Für die 

Schulung von Personal, die für die Trinkwasserprobenahme zugelassen werden sollen, gibt es eigene Schulungsprogramme; 

die aktuellen Entwicklungen sind verfolgbar über Veröffentlichungen diverser Fachgesellschaften 

im Internet [22 bis 25]. 

1.4 Probenahmestrategie 

Zur effizienten Gestaltung der Probenahme muss bewusst sein, dass sich die Gehalte verschiedener Inhaltsstoffe 

bei Verwendung falscher Probenflaschen und unzureichender Konservierung verändern können. 

Aus diesem Grund muss man vor der Probenahme einen Plan über 

• die durchzuführenden Analysen und die dafür jeweils benötigte Probenmenge 

• die Anzahl und Art der Probenflaschen 

• die notwendigen Konservierungsmaßnahmen 

erstellen, der bestimmt, welche Anzahl und Art an Flaschen und Konservierungsmitteln zur Probenahme 

vorzusehen sind. 

Tabelle 5: Übersicht über die für bestimmte Analysen benötigten Probemengen in den zu bevorzugenden 

Flaschenmaterialien und Konservierungsmethoden +: zu empfehlendes Gefäßmaterial; [+] bedingt 

zu empfehlendes Gefäßmaterial. Bei der Konservierung ist darauf achten, dass bei Zusatz 

eines Konservierungsmittels dennoch auch gekühlt werden sollte. Die Empfehlungen weichen 

aufgrund praktischer Erfahrungen teilweise von denen in [4] und [6] ab. In der Praxis empfiehlt 

sich immer eine Abstimmung mit dem Untersuchungslabor, über die zu verwendenden Flaschenmaterialien 

und Konservierungsverfahren, da nicht selten auch die nachfolgende Analytik 

beachtet werden muss. 

*) chlor- oder bromhaltigen Wasserproben wird Na2S2O3 (0,1 mL einer 10%-igen Lösung auf 

125 mL zugesetzt, um Cl2 bzw Br2 zu zerstören (gemäß [6], Tab. 3) 

**) gesilberten Proben wird Na2S (0,1 mL einer 0,1%-igen Lösung auf 100 mL) zugesetzt, 

um Ag2S auszufällen (gemäß [3], Abschnitt 5.3). 

***) Proben, mit einem Schwermetallgehalt >0,01 mg/L (z.B. aus Kupferrohren!) wird sterile 

EDTA-Lösung (0,3 mL einer 15%-igen Lösung auf 500 mL; gemäß [6], Tab. 3) 

****) wenn die Probe länger gelagert werden soll, Zusatz von 1 mL Kaliumdichromatlösung 

(5%) je 100 mL Probe 

Parameter Gängiges Prüfverfahren nötige 

Probenmenge 

[mL] 

Escherichia coli Membranfiltration oder 

Voranreicherung 

Enterokokken Membranfiltration oder 


Coliforme Bakterien Membranfiltration oder 


Glas PE / 

PP 

PTFE Edelstahl 

Konservierung 

200 + + Kühlung 

Na2S2O3*) 

Na2S**) 

EDTA***) 


Na2S2O3*) 

Na2S**) 

EDTA***) 


Na2S2O3*) 

Na2S**) 

EDTA***) 







Probenmenge 

[mL] 

Pseudomonas 

aeruginosa 

Anzucht nach Membranfiltration 

Glas PE / 

PP 

PTFE Edelstahl 


Konservierung 


Na2S2O3*) 

Na2S**) 

EDTA***) 

Koloniezahl bei 22°C Anzucht auf NB-Agar 2 + + Kühlung 

Na2S2O3*) 

Na2S**) 

EDTA***) 

Koloniezahl bei 36°C Anzucht auf NB-Agar 2 + + Kühlung 

Na2S2O3*) 

Na2S**) 

EDTA***) 

Acrylamid GC-MSD 500 + + + Kühlung 

Benzol GC-FID 500 + + + Kühlung 

Bor Photometrie 100 + + NaOH 

Bromat 20 + + NaOH 

Chrom (ges.) AAS, ICP 50 [+] + + HNO3 

Chrom-VI Photometrie 200 [+] + + Kühlung 

Cyanid Phomotmetrie, IC 1000 [+] + + NaOH 

1,2-Dichlorethan GC-ECD 500 + + Kühlung 

Fluorid IC, Potentiometrie 50 [+] + + NaOH 

Nitrat IC, Potentiometrie 50 [+] + + NaOH 

PSM und Biozide HPLC, GC-MSD 2000 + + Kühlung 

Quecksilber AAS 100 [+] + + HNO3 

+Chromat****) 

Selen AAS 100 [+] + + NaOH 

Tetrachloethen und 

Trichlorethen 

GC-ECD 500 + + Kühlung 

Antimon AAS 50 [+] + + NaOH 

Arsen AAS 100 [+] + + NaOH 

Blei AAS; ICP 50 [+] + + HNO3 

Cadmium AAS; ICP 50 [+] + + HNO3 

Epichlorhydrin GC-ECD 1000 + + Kühlung 

Kupfer AAS; ICP 50 [+] + + HNO3 

Nickel AAS; ICP 50 [+] + + HNO3 

Nitrit Photometrie 100 [+] + + NaOH 

PAK 

(6 Einzelsubstanzen) 

HPLC 1000 + + Kühlung 

Trihalogenmethane GC-ECD 500 + + Kühlung 

Vinylchlorid GC-FID 500 + + Kühlung 

Aluminium AAS, ICP, Photometrie 50 [+] + + HNO3 

Ammonium Photometrie 100 [+] + + H2SO4 

Chlorid IC; Titration nach Mohr 50 + + + + Kühlung 







Probenmenge 

[mL] 

Clostridium perfringens 

(einschließlich Sporen) 

Membranfiltration, Kultivierung,Differentialdiagnostik 

Glas PE / 

PP 

PTFE Edelstahl 


Konservierung 


Na2S2O3*) 

Na2S**) 

EDTA***) 

Eisen AAS, ICP 50 [+] + + HNO3 

Färbung (E436 nm) Photometrie 20 + + + + Kühlung 

Geruchsschwellenwert 

Sensorik nach Verdünnung 

2000 + + + + vor Ort- 

Bestimmung 

Geschmack Sensorik 100 + + + + Kühlung 

Elektrische Leitfähigkeit Elektrode 50 + + + + Kühlung 

Mangan AAS, ICP 50 [+] + + HNO3 

Natrium AAS, ICP 50 [+] + + HNO3 

TOC Verbrennungsanalyse 200 [+] + + H2SO4 

Oxidierbarkeit Oxidation mit KMnO4 

und Titration 

200 [+] + + H2SO4 

Sulfat IC 50 [+] + + NaOH 

Trübung Nephelometrie 20 + + + + Kühlung 

Wasserstoffionenkonzentration 

(pH-Wert) 

Elektrode 50 + + + + Kühlung 

Tritium Szintillationsmessung 50 + + Kühlung 

Gesamtrichtdosis Berechnung nach Radioaktivitätsmessung 


1.5 Aufgabenstellung 

Im Rahmen dieses Praktikumsversuchs sind folgende praktische Aufgaben zu bearbeiten: 

(1) Aufnahme des Abkühlungsverhaltens einer Probe in der Kühltasche 

(2) Herstellung steriler Probengefäße, Materialien und Lösungen durch Autoklavieren unter Aufnahme 

von Druck und Temperatur im Autoklaven 

(3) Steriles Arbeiten zur Vorbereitung aseptischer Probenahmen bzw. aseptischer Teilprobenentnahme 

im Labor 

(4) Entnahme von Wasserproben zur Bestimmung mikrobiologischer und chemischer Parameter 

(5) Vor-Ort-Bestimmung der auf dem Probenahmeprotokoll einzutragenen Parameter: 

- Sensorik 

- Temperatur 

- pH-Wert 

- elektrische Leitfähigkeit 

- Redoxpotential 

- Sauerstoffgehalt 

- Gehalt an freiem Chlor 

- Säure-/Base-Kapazität 

(6) Berechnung des Salzgehaltes aus dem Messwert der elektrischen Leitfähigkeit und des Hydrogencarbonatgehalts 

aus den Messwerten der Säure-/Base-Titration. 

Daneben ist der Praktikumsversuch durch Bearbeitung von Fragen vorzubereiten und die erhaltenen Ergebnisse 

sind zu bewerten bzw. zu erläutern. 






2 Material und Methoden 


2.1 Methoden zur Wahrung von Arbeitssicherheit und Umweltschutz 

Die Arbeiten werden unter Beachtung der Betriebsanweisungen des Labors für Umweltanalytik und Ökotoxikologie 

der Fachhochschule Gießen-Friedberg durchgeführt, auf die in den jeweiligen SOP's hingewiesen 

wird. Besonders hingewiesen sei auf folgende Verhaltensregeln: 

• Bei der Arbeit nicht essen, trinken oder rauchen! 

• Probenmaterial und Lösungen chemischer Stoffe nicht verspritzen. Darauf achten, daß Kleidung nicht 

verunreinigt wird! 

• Unverzüglich nach Beendigung der Arbeiten die Hände mit Seife reinigen (und ggf. desinfizieren, z.B. 

nach Umgang mit biologischen Arbeitsstoffen wie z.B. kommunalem Abwasser). 

2.2 Allgemeine Aspekte zur Kennzeichnung und Probenahme von Trinkwasser 

2.2.1 Beschreibung von Probenahmeorten, Entnahmeeinrichtungen und Arten von Wasser 

Nach DIN 38402-14 [2] unterscheidet man folgende Probenahmeorte (vgl. auch [1], §3): 

• 

• 

• 

• 

• 

• 

• 

• 

• 

• 

• 

Wassergewinnungsanlagen 

Wasseraufbereitungsanlagen 

Wasserverteilungsanlagen 

Wasserspeicheranlagen 

An den jeweiligen Probenahmeorten kann man unterschiedliche Entnahmeeinrichtungen vorfinden. Bei unter 

Druck stehenden Leitungen (i.d.R. Wasserverteilungsanlagen) sind dies 

• Entnahmearmaturen 

• Hydranten 

Je nach Bauart können bei Wassergewinnungs-, -aufbereitungs- und -speicheranlagen Proben durch eine 

Entnahme an der Oberfläche gewonnen werden. Hier stehen folgende Entnahmeeinrichtungen zur Verfügung: 

• Schöpfbecher 

• Schöpfapparate 

• Pumpen 

Die Werkstoffe, aus denen die Entnahmeeinrichtungen bestehen, können die Zusammensetzung der Wasserprobe 

verändern, je nachdem, wie lange diese mit der Wasserprobe in Kontakt ist. Details hierzu sind 

unter Abschnitt 2.3 nachzulesen. 

Je nach Probenahmeort und beabsichtigtem Verwendungszweck der jeweiligen Wassers unterscheidet man 

Rohwasser 

Wasser für den menschlichen Gebrauch 

Trinkwasser 

Wasser für Lebensmittelbetriebe 

Mineral- und Tafelwasser 

Badewasser 

Brauchwasser 

Details findet man in [1], [2], [7], [8]. 

Der Begriff "Trinkwasser" ist kein allgemeingültiger Begriff für "trinkbares Wasser". Auch verschiedene Mineralwässer 

sind ohne Gefährdung der Gesundheit trinkbar, sind jedoch im Sinne des juristischen Sprachgebrauchs 

kein Trinkwasser! Für "Trinkwasser" gelten die speziellen Anforderungen der TrinkwV, die für 

andere "trinkbare Wässer" durchaus deutlich abweichen können. 

2.2.2 Beschreibung von Probearten 

In DIN 38402-14 [2] werden folgende Probearten genannt: 

• Einzelprobe: eine durch einmalige Entnahme aus der Massenguteinheit gewonnene Probe. Unter der 

"Massenguteinheit" ist die zur Zeit der Probenahme vorliegende Wassermenge zu verstehen. Eine Ein- 






• 


zelprobe kann sowohl durch manuelles Schöpfen als auch durch Probenahmeapparate gewonnen werden. 

Stichprobe: eine oder mehrere Einheiten, die aus einer Massenguteinheit entnommen wurden und - bei 

Entnahme mehrerer Einheiten - unvermischt oder vermischt weiter verwendet werden. Eine Stichprobe 

kann somit aus mehreren Einzelproben bestehen. 

• Durchschnittsprobe: eine Probe, die über einen bestimmten Zeitraum hinweg gesammelt wird. Das 

Sammeln und Mischen kann manuell oder durch Apparate erfolgen sowie kontinuierlich oder diskontinuierlich 

geschehen. Entsprechend ist von großer Bedeutung, dass das Zustandekommen der Durchschnittsprobe 

sauber dokumentiert wird. 

2.2.3 Verwendung geeigneter Probengefäße 

Als Probengefäße dienen verschließbare Gefäße, i.d.R. Flaschen, gelegentlich auch Eimer u.a., die nach 

der Probennahme die Probe für einen mehr oder weniger langen Zeitraum beherbergen. Die stofflichen Eigenschaften 

des Probengefäßes können die Eigenschaften der Wasserprobe verändern. Je kürzer der Zeitraum 

des Kontakts mit dem Probengefäß, umso geringer ist die Gefahr der Veränderung der Probe. In der 

Praxis muss man jedoch einen Kompromiss eingehen, da der Zeitraum zwischen Probenahme und Analyse 

im Labor nicht beliebig verkürzbar ist. Um die Veränderung der Wasserprobe möglichst gering zu halten, 

muss man bestimmte Regeln im Umfeld der Probenahme einhalten und besonders des richtigen Werkstoff 

für das Probengefäß wählen. Je umfangreicher die Analyse ist, umso umfangreicher ist die Zahl der Einzelproben, 

die in verschiedenartigen Gefäßen zum Labor gebracht werden muss. 

Der richtige Einsatz der Probengefäße beginnt mit der sachgerechten Reinigung, damit keine Verunreinigungen 

in die Probe gelangen. Moderne Reinigungsautomaten arbeiten mit Injektordüsen und spülen die 

Flaschen auch intensiv von innen. Reste von Reinigungsmitteln und Ionen werden durch das Nachspülen 

mit entionisiertem Wasser i.d.R. ausreichend gut gereinigt. Wo dies nicht ausreichen sollte, können folgende 

weitergehende Reinigungsschritte helfen: 

• 

• 

Zur Entfernung von Metallionen, aber auch Anionen: füllen mit verdünnter Salpetersäure und stehen 

lassen über Nacht; anschließend mehrfaches Ausspülen mit deion. Wasser. 

Zur Entfernung organischer Verunreinigungen: mehrfaches, mehrere Minuten andauerndes Ausschütteln 

mit Aceton; ggf. über Nacht einwirken lassen; anschließend mehrfaches Ausspülen mit deion. Wasser. 







Tabelle 6: Übersicht über die Materialien von Probengefäßen und deren Eigenschaften und die daraus resultierenden 

Empfehlungen für den Einsatz. Die Empfehlungen weichen aufgrund praktischer Erfahrungen 

teilweise von denen in [4] und [6] ab. In der Praxis empfiehlt sich immer eine Abstimmung 

mit dem Untersuchungslabor, über die zu verwendenden Flaschenmaterialien und Konservierungsverfahren, 

da nicht selten auch die nachfolgende Analytik beachtet werden muss. 

*) Eine Konservierung empfiehlt sich, wenn Proben nicht innerhalb kurzer Zeit auf 2 - 5°C 

herunter gekühlt werden können und wenn die Lagerzeit im Labor eine Veränderung der 

Probe besorgen lässt. Von den Beschreibungen der Konservierungsverfahren in [6] 

wurde in nachfolgender Tabelle teilweise abgewichen; siehe auch Abschnitt 2.4) 

Material des 

Probengefäßes 

Flaschenglas 

als farbloses Glas 

und als Braunglas. 

Borosilikatglas 

(Laborglas) 

Eigenschaften des 

Materials 

Flaschenglas enthält SiO2, 

CaO, Na2O und geringere 

Mengen Al2O3, MgO und 

K2O [11]; Das Material 

kann Spuren an SiO4 4- , 

Ca 2+ , Na + , Al 3+ , Mg 2+ und 

K + abgeben. Braunglas 

enthält auch Fe2O3. Glasoberflächen 

haben Kationenaustauschkapazität. 

Laborglas enthält u.a. Si- 

O2, CaO, Na2O und B2O3 

[11]; Das Material kann 

4- 2+ 

Spuren an SiO4 , Ca , 

Na + und BO 3- abgeben. 

Glasoberflächen haben 

Kationenaustauschkapazität. 

uneingeschränkt zu 

empfehlen für ... 

[analytische Parameter] 

Ohne Zusatz von Konservierungsmitteln: 

Bakteriologie 

Acrylamid 

Benzol 

Bromat 

1,2-Dichlorethan 

PSM 

Tetrachlorethen 

Trichlorethen 

PAK 

Epichlorhydrin 

Trihalogenmethane 

Vinylchlorid 

Chlorid 

Färbung 

Geruch 

Geschmack 

Leitfähigkeit 

Trübung 

pH-Wert 

ggf. Konservierung*): 

Zusatz von H2SO4 

(5 mol/L): 1,0 mL auf 

100 mL Probe: 

TOC 

Oxidierbarkeit 

Eingeschränkt oder nicht 

zu empfehlen für.. 


Eingeschränkt verwendbar 

für kationische Stoffe, 

wenn die Flasche im Säurebad 

gereinigt wurde und 

die Proben mit HNO3 angesäuert 

sind; im Spurenbereich 

kritisch (Adsorptionsverluste 

oder Verunreinigung 

durch Desorption 

möglich)! 

Chrom 

Quecksilber 

Blei 

Cadmium 

Kupfer 

Nickel 

Ammonium 

Eisen 

Mangan 

Natrium 

Tritium 

Sollte aus arbeitstechnischen 

Gründen nicht verwendet 

werden für Stoffe, 

die alkalisch stabilisiert 

werden (Alkalien greifen 

Glas an): 

Bor(at) 

Fluorid 

Nitrat 

Selen(it) 

Antimon(at) 

Arsen(at) 

Nitrit 

Sulfat 

Wie bei Flaschenglas Wie bei Flaschenglas; für 

Bor(at) unter keinen Umständen 

zu empfehlen! 






Material des 


Polyethylen (PE) 

Polypropylen (PP) 


Materials 

Die Kunststoffe bestehen 

aus lipophilen organischen 

Stoffen. Organische Stoffe 

können durch Adsorption 

aus dem zu untersuschenden 

Wasser verschwinden, 

Verunreinigte Flaschen 

können entsprechend 

Wasserproben verunreinigen. 

Teflon (PTFE) Teflon ist ein hochinnerter 

Kunststoff. Er ist dicht 

gegenüber Diffusionsverlusten 

und weist keine 

Kationenaustauschkapazität 

auf. Teflongefäße sind 

sehr teuer. 




ggf. Konservierung*): Ansäuern 

mit HNO3 

(10 mol/L) 1 mL auf 

100 mL) 

Chrom 

Quecksilber 

Blei 

Cadmium 

Kupfer 

Nickel 

Aluminium 

Eisen 

Mangan 

Natrium 

Calcium 

Magnesium 

Zink 


Zusatz von H2SO4 

(5 mol/L): 1,0 mL auf 

100 mL Probe: 

Ammonium 

TOC 

Oxidierbarkeit 


Zusatz von NaOH 

(0,1 mol/L): 1,0 mL auf 

100 mL Probe: 

Bor(at) 

Cyanid 

Fluorid 

Nitrat 

Selen(it) 

Antimon(at) 

Arsen(at) 

Nitrit 

Chlorid 

Sulfat 

.. für alle Parameter entfällt. 





Nicht zu empfehlen für: 

Bakteriologie 

Acrylamid 

Benzol 

1,2-Dichlorethan 

PSM 

Tetrachlorethen 

Trichlorethen 

PAK 

Epichlorhydrin 

Trihalogenmethane 

Vinylchlorid 






Material des 



Materials 

Edelstahl Edelstahl besteht i.d.R. 

aus Eisen in Legierung mit 

Kupfer, Nickel und Chrom; 

es ist innert und zeigt nur 

geringe Neigung zur Adsorption 

von Stoffen. Der 

Kontakt mit starken Säuren 

und Laugen sollte 

vermieden werden. 




Alle Parameter außer den 

nebenstehenden; Konservierung 

mit Säuren und 

Laugen vermeiden. 





Nicht zu empfehlen für: 

Eisen 

Kupfer 

Nickel 

Chrom 

Bakteriologie (bei kupferhaltigem 

Edelstahl; bakterizide 

Wirkung) 

2.2.4 Probenkonservierung 

Können die Proben nach der Probenahme auf 2 - 5°C herunter gekühlt werden und können sie innerhalb 

von 6 Stunden der Analyse zugeführt werden, braucht man für die meisten Parameter keine weitere Konservierung 

durchzuführen. Sollen die Proben länger aufbewahrt werden oder ist eine ausreichende Kühlung 

nicht möglich, muss man die Proben konservieren, d.h. vor Veränderungen schützen. Hierzu gibt es detaillierte 

Vorschriften, die abhängig sind von: 

• 

• 

• 

• 

• 

• 

• 

• 

• 

dem zu untersuchenden Parameter 

dem zur Verfügung stehenden Probengefäß 

der Lagerung bis zur Analyse 

dem sich anschließenden Analyseverfahren 

In [6] sind für eine große Zahl an Parametern die entsprechend anzuwendenden Konservierungsverfahren 

beschrieben. Die Erfahrung aus der Praxis zeigt jedoch, dass man häufig mit weniger Aufwand zurecht 

kommen kann. Die meisten nach der Probenahme auftretenden Veränderungen der Probe beruhen auf folgenden 

Prozessen: 

Ausfallen schwerlöslicher Verbindungen 

Verflüchtigung von gasförmigen Stoffen 

Adsorption von Stoffen an Gefäßwandungen 

Desorption von Verunreinigungen der Gefäßwand in die Wasserprobe 

Wachstum von Mikroorganismen 

Unter der Voraussetzung, dass gut gereinigte Probengefäße verwendet werden, die unter Berücksichtigung 

der in Tab. 6 gegebenen Hinweise verwendet werden, kommt man mit den in Tab. 7 genannten Konservierungsmaßnahmen 

i.d.R. aus. 

Tabelle 7: Übersicht über Konservierungsmaßnahmen, die i.d.R. ausreichend sind, um die Stabilität 

bestimmter Parameter zu gewährleisten. 

Konservierungsmaßnahme Effekt 

Kühlung auf 2 - 5°C • Verzögerung aller chemischen Reaktionen (RGT-Regel!) 

• Verzögerung des Wachstum von Mikroorganismen 

Ansäuern mit Salpetersäure • Der pH-Wert wird auf




Konservierungsmaßnahme Effekt 

Ansäuern mit Schwefelsäure 

1 mL H2SO4 (5 mol/L) 

auf 100 mL Probe 

Alkalisieren mit NaOH 

1 mL NaOH (0,1 mol/L) 

auf 100 mL Probe 


Nitrit, bakteriologische Parameter, Geruch, Geschmack, Färbung, Oxidierbarkeit, 

TOC (je nach Verfahren) 

• Der pH-Wert wird auf 11 angehoben 

• Verhinderung des Wachstums von Mikroorganismen 

• Umsetzung von instabilen Säuren in stabile ionische Formen (Cyanid, Nitrit); 

auch andere Säuren werden dadurch vollständig dissoziiert und bleiben 

in Lösung. 

• Verhinderung des Ionenaustauschs mit der Gefäßwandung: durch den im 

Vergleich zu den anderen Wasserinhaltsstoffen hohen Überschuss an Na + - 

Ionen und OH - -Ionen besetzen diese die Ionenbindungsplätze an Gefäßoberflächen 

und verringern so die Adsorption von Ionen aus der Probe. 

• In der so konservierten Probe sind folgende Bestimmungen sicher nicht 

mehr sinnvoll möglich: pH-Wert, Leitfähigkeit, Chrom, Quecksilber, Blei, 

Cadmium, Kupfer, Nickel, Ammonium, Eisen, Aluminium, Mangan, Natrium, 

bakteriologische Parameter, Geruch, Geschmack, Färbung, 

2.2.5 Probentransport 

Während des Transports der Probe darf sich diese möglichst wenig verändern. Die wird gewährleistet durch 

• Kühlung auf 2 - 5°C 

• dunkle Aufbewahrung (Lichteinfall ist Energieeintrag!) 

• schnellen Transport zum Laboratorium 

• möglichst wenig Bewegung (Eintrag mechanischer Energie; führt zum Gasaustausch) 

2.2.6 Probenlagerung 

Die sachgerechte Lagerung der Proben ist Angelegenheit des Laboratoriums, dass die Proben untersuchen 

soll. Auch hier ist eine kühle, dunkle Lagerung notwendig. Ein Teil der Parameter kann auch untersucht werden, 

wenn die Proben eingefroren (-18°C) waren. 

2.3 Protokollführung 

Das Protokoll wird entsprechen der Anforderungen in [14] geführt. Zweckmäßigerweise ist das Protokoll wie 

folgt zu gliedern. 

Protokollabschnitt 1: Bearbeitung der Aufgaben in Abschnitt 3.1 zur Vorbereitung auf den Versuch. 

Protokollabschnitt 2: Planung einer Probenahme gemäß Abschnitt 3.1, Aufgabe 7. 

Protokollabschnitt 3: Bestimmung des Abkühlverhaltens in einer Kühltasche 

Protokollabschnitt 4: Vorbereitung und Durchführung einer Sterilisation von Lösungen und Gefäßen 

mittels Autoklaven 

Protokollabschnitt 5: Vorbereitung und Durchführung (a) einer Sterilfiltration, (b) sterilen Pipettierens 

und (c) sterilen Ausplattierens. 

Protokollabschnitt 6: Entnahme einer Trinkwasserprobe gemäß SOP 46 [15] 







Protokollabschnitt 7: Berechnung des Salzgehalts der Trinkwasserprobe und des Hydrogencarbonatgehalts 

2.4 Arbeitsplatzausstattung und Versuchsabläufe 

2.4.1 Arbeitsplatz zur Aufnahme des Abkühlverhaltens in einer Kühltasche 

Materialausstattung 

• Kühltaschen 

• Mehrere Kühlakkus, eingefroren bei -18°C 

• Messfühler für Temperaturmessung mit Anzeigeeinheit 

• PE-Flasche, Nennvolumen 1000 mL, Deckel mit Bohrung mit Messfühler 

• Glasflasche mit Schraubverschluss (Schott), Nennvolumen 250 mL, Deckel mit Bohrung mit Messfühler 

Chemikalien- und Reagenzienausstattung 

• Wasser, deion., in Spritzflasche(n) 

Beschreibung des Verfahrens 

Das Verfahren wird während des Versuchs erläutert und ist zu protokollieren. 

2.4.2 Arbeitsplatz zur Sterilisation mit gespanntem Dampf 


• Aluminiumfolie 

• Autoklavierkontrollband 

• Bechergläser, Nennvolumen, 100 mL (2 Stück) 

• Dampftopf mit eingebautem Druckmessgerät und Temperaturmessfühler 

• Glasflasche mit Schraubverschluss (Schott), Nennvolumen 250 mL, mit Deckel 

• Glasflaschen mit PP-Schraubverschluss, Nennvolumen 50 mL (2 Stück) 

• Heizplatte 

• Pipettenspitzen für Kolbenhubpipetten (blau und gelb) 

• Schraubtülle für Wasserhahn mit Siliconschlauch 

• Serumflasche mit Butylgummiseptum und Überfallkappe 

• Steilbrustflasche, Nennvolumen 250 mL, mit Glasstopfen 

• Temperaturanzeige 


• Ethylendiamintetraacetat-Dinatriumsalz-Lösung (EDTA·Na2·2 H2O), β = 150 mg/mL (Bedarf: 0,2 mL je 

Probenflasche mit 250 mL Nennvolumen 

• Natriumsulfid-Lösung (Na2S·9 H2O), β = 1,0 g/L, frisch hergestellt, zur Sterilisation in Serumflasche unter 

N2-Atmosphäre (Bedarf: 0,25 mL je Probenflasche mit 250 mL Nennvolumen 









2.4.3 Arbeitsplatz zur Durchführung sterilen Arbeiten 


• Becherglas, 300 mL, breite Form, aus Glas 

• Bunsenbrenner, angeschlossen an Erdgasversorgung 

• Feuerzeug 

• Fließpapier 

• Glasflasche, Nennvolumen 250 mL, mit PP-Schraubverschluss, steril 

• Kolbenhubpipette, Arbeitsbereich: 200 – 1000 µL 

• Pipettenspitzen für Kolbenhubpipette, blau, steril in Becherglas mit Alufolienabdeckung 

• Pipettenspitzen für Kolbenhubpipette, gelb, steril in Becherglas mit Alufolienabdeckung 


• Ethanol, 70 Vol.-% in Sprühflasche (500 mL) 

• Natriumsulfidlösung, β = 1 g/L; steril, in 50 mL Glasflasche mit Schraubverschluss 

• Silbernitratlösung, ß = 10 mg/L Ag (15,7 mg/L AgNO3) 




2.4.4 Arbeitsplatz zur Entnahme einer Trinkwasserprobe 


• Kühltasche(n), darin 

(1) gefrorenen Kühlakkus 

(2) Flaschen aus Glas (steril) zur Probenahme, Nennvolumen 250 mL, mehrere 

(3) Flaschen aus Glas (steril, mit Natriumthiosulfatlösung), wie (2) 

(4) Flaschen aus PE zur Probenahme, Nennvolumen 250 mL bis 1000 mL, mehrere 

• Eimer, bevorzugt aus Edelstahl, Volumen 5 L/10 L, mit Volumeneinteilung (ggf. Kunststoffeimer) 

darin: Messbecher mit Henkel, 500 mL 

• Probenahmekoffer 1: 

Grundausrüstung für Dokumentation sowie Probenkonservierung und steriles Arbeiten 

(1) Feuerzeug 

(2) Gasbrenner (Lötlampe) mit Gaskartusche 

(3) Gaskartusche (Ersatz, falls ausreichend Platz im Koffer ist) 

(4) Sprühflasche mit Ethanol, 70 Vol.-% 

(5) Papiertücher, saugfähig 

(6) HNO3, c = 10 mol/L, in 30 mL PE-Flasche 

(7) H2SO4, c = 5 mol/L, in 30 mL PE-Flasche eingepackt in PE-Tüte 

(8) NaOH, c = 0,1 mol/L, in 30 mL PE-Flasche 

(9) Wasser, deion., in Spritzflasche 

(10) Kolbenhubpipette, variabel, 200 bis 1000 µL 

(11) Pipettenspitzen, blau (eingepackt in PE-Tüte) 

(12) Stoppuhr 

(13) Thermometer 

(14) Schraubtüllen mit Siliconschlauch, steril 

(15) Schutzhandschuhe aus Latex o.ä. 

(16) Schutzbrille (in PE-Tüte) 

(17) Standardarbeitsanweisung(en) 

(18) Protokollblätter 

(19) Probenetiketten 








Ausrüstung zur Bestimmung physikalisch-chemischer Parameter 

(1) pH- und Redoxmessgerät mit pH- und Redoxelektroden 

(2) Leitfähigkeitsmessgerät mit Leitfähigkeitselektrode 

(3) Sauerstoffmessgerät mit Sauerstoffelektrode und Manometer 

(4) Kontrolllösungen für pH-Elektrode (Puffer, pH 7,0 und pH 4,0) 

(5) Leitfähigkeitkontrolllösung 1413 µS/cm (25°C) 

(6) Standardredoxpuffer, 228 mV (gemessen gegen 3 mol/L KCl bei 20°C) 

(7) Referenzelektrolyt KCl (3 mol/L) 

(8) Oxi-Regenerationslösung, Schleifstift und Ersatzmembran 

(9) Ersatzbatterien 

(10) Standardarbeitsanweisungen 


Bestimmung chemischer Parameter vor Ort 

(1) Testkit zur visuellen Chlorbestimmung, halbquantitativ, Merck 14801 

(2) Titrationseinrichtung mit 0,0250 mol/L HCl 

(3) Titrationseinrichtung mit 0,0025 mol/L NaOH 

(4) Erlenmeyerkolben mit breitem Hals, Nennvolumen 300 mL 

(5) pH-Indikator, Umschlagspunkt pH 4,3, in Pipettenflasche 

(6) pH-Indikator, Umschlagspunkt pH 8,2, in Pipettenflasche 

(7) Messzylinder, 100 mL, Kunststoff 

(8) Standardarbeitsanweisung(en) 


Ausrüstung für sensorische Prüfungen 

(1) Einmaltrinkbecher aus Polystyrol oder Papier 

(2) Imhofftrichter mit Ständer 

(3) Messzylinder, 1000 mL, Glas 

(4) Karton mit weißer und schwarzer Fläche (für Sichtprüfung) 

• Optional: transportabler Tisch und Stuhl 

• Probenahmestelle zum Training der Wasserprobenentnahme 

• Temperaturmesseinrichtung an Zapfhahn (Messfühler mit Temperaturmessgerät) 


• Wasser, deion. 


• Natriumdichloroisocyanurat-Lösung (C3N3O3Cl2Na·2 H2O; Dichlorisocyanursäure Natriumsalz-Dihydrat); 

β (Cl2) = 10 mg/L; Einwaage: β = 36,05 mg/L 

• Reagenzien zur Chlorbestimmung zum Testkit, Merck KGaA, Darmstadt, FRG 

• pH-Indikator, Umschlagspunkt bei pH 4,3 (gemischte Lösung aus Methylorange und Anilinblau, jeweils 

zu einer Endkonzentration von 1000 mg/L in Wasser) 

• pH-Indikator, Umschlagspunkt bei pH 8,2 (Phenolphthalein, 1000 mg/L in Ethanol) 

• pH-Pufferlösung pH 7,0 (gebrauchsfertige handelsübliche Lösung) 

• pH-Pufferlösung pH 4,0 (gebrauchsfertige handelsübliche Lösung) 

• Kaliumchloridlösung, c = 0,01 mol/L (β = 745,6 mg/L) zur Kontrolle der Leitfähigkeit 

(Referenzwert: 1413 µS/cm bei 25°C) 

• Redoxpuffer zur Kontrolle der Redoxelektrode: 528 mg K4Fe(CN)6•3 H2O; 411 mg K3Fe(CN)6; 

180 mg KH2PO4 und 390 mg Na2HPO4•2 H2O in deion. Wasser lösen und auf 100 mL auffüllen. 

Referenzwert: 228 mV bei 20°C gegen Ag/AgCl-Referenzelektrode mit 3 mol/L KCl 


Das Verfahren ist in SOP 46 beschreiben; es wird während des Versuchs erläutert und ist zu protokollieren. 







3 Vorbereitung auf den Versuch, Durchführung und Beurteilung der 

Ergebnisse 

3.1 Aufgaben/Fragen zur Vorbereitung auf das Thema 

Neben dem Studium der in diesem Dokument zusammen gefassten Lehrinhalte sind vor Versuchsbeginn 

auch die nachfolgenden Fragen mit Hilfe von Sekundärliteratur zu bearbeiten. Die Ergebnisse sind als 

handschriftliche Notizen auf Protokollblättern (Formblatt zu Abschnitt D in [18]) mitzubringen und sind Bestandteil 

des Praktikumsprotokolls (mit Textverarbeitungsprogrammen angefertigte Ausdrucke werden 

nicht akzeptiert!). Damit alle Gruppenmitglieder über die erarbeiteten Inhalte ausreichend informiert sind, 

empfiehlt es sich, die Fragen gemeinsam in Gruppenarbeit, möglicherweise in arbeitsteiliger Form, zu bearbeiten 

und die Ergebnisse untereinander zu diskutieren. 

(1) Suchen Sie die Strukturformeln für folgende chemische Verbindungen heraus: 1,2-Dichlorethan, Trichlorethen, 

Tetrachlorethen, Epichlorhydrin, Trihalogenmethan(e), Vinylchlorid und Acrylamid. Wie ist Ihrer 

Meinung nach die Wasserlöslichkeit der Stoffe einzuschätzen? (Begründung). 

(2) Machen Sie einen Vorschlag zu molekularen Struktur des Glases und erläutern Sie daran die Eigenschaft, 

kationische Stoffe zu adsorbieren bzw. Quelle für Schwermetallverunreinigungen zu sein. 

(3) Zeigen Sie die molekulare Struktur von PE und PP auf (Materialien für Probenflaschen). Erklären sie 

daran die Eigenschaften, warum lipophile Stoffe aus der Probe verloren gehen können und warum ionisch 

vorliegende Stoffe in der Probe kaum beeinflusst werden. 

(4) Woraus bestehen Edelstahl / Edelstähle und was bedeutet dies für den Einsatz von Probenflaschen 

aus entsprechendem Material für die Trinkwasserprobenahme? 

(5) Tragen Sie allgemeine Eigenschaften der Bakterien Escherichia coli, Clostridium perfringens und 

Pseudomonas aeruginosa zusammen und vergleichen Sie sie untereinander in den Eigenschaften 

Gram-Färbung, Verhältnis zu Sauerstoff, Bildung von Dauerstadien und daraus abgeleitet den bevorzugten 

Lebensraum und die Verteilung der Bakterien. 

(6) Aufgrund welchen physikalischen und chemischen Verhaltens haben Chlor, Chlordioxid und Hypochlorige 

Säure sowie Silberionen (und auch andere Schwermetallionen) eine desinfizierende Wirkung? 

(7) Planen Sie eine Probenahme (vor Beginn des Praktikums; unter Verwendung des Formulars aus 

SOP 47 [15]) für die Entnahme von Wasserproben für folgende Bestimmungen; Gesamtkeimzahl, 

E. coli und coliforme Keime, Blei, Kupfer, Nitrit, Oxidierbarbeit, spezifisch elektrische Leitfähigkeit). 

3.2 Durchführung der praktischen Arbeiten 

Die Arbeiten zu diesem Versuch müssen zeitlich verschachtelt nebeneinander durchgeführt werden. Folgende 

Reihenfolge der praktischen Arbeiten ist vorzusehen: 

(1) Vorbesprechung mit der Praktikumsleitung (Protokollabschnitte 1 und 2) 

(2) Vorbereitung und Starten des Versuchs zum Abkühlverhalten in der Kühltasche (Protokollabschnitt 3); 

der Versuch läuft dann parallel zu den anderen Tätigkeiten; in zeitlichen Abständen muss die Temperatur 

protokolliert werden. 

(3) Vorbereitung und Starten des Versuchs zum Autoklavieren (Protokollabschnitt 4); der Versuch läuft 

dann parallel zu den anderen Tätigkeiten; in zeitlichen Abständen müssen Temperatur und Druck protokolliert 

werden. 

(4) Durchführung der Übungen zum sterilen Arbeiten (Protokollabschnitt 5) 

(5) Durchführung einer Probennahme mit begleitenden Messungen gemäß SOP 46 [15] (Protokollabschnitt 

6). 

(6) Aufräumen der Arbeitsplätze. 

(7) Ergebnisdiskussion mit der Praktikumsbetreuung (spätestens 2 Tage nach dem Praktikumstermin) mit 

Abgabe des Entwurfs eines Prüfberichts. 

(8) Weitere 2 Tage später: Abgabe des fertig gestellten Prüfberichts. 

3.3 Aufgaben/Fragen zur Nachbearbeitung und als Interpretationshilfe zu den Ergebnissen 

Bei der Diskussion bzw. Interpretation der Ergebnisse Ihrer praktischen Arbeiten beachten Sie folgende Fragestellungen 

im Zusammenhang mit den Protokollabschnitten. 






Zu Protokollabschnitt 3: Bestimmung des Abkühlverhaltens in einer Kühltasche 


(1) Graphische Darstellung des Abkühlverhaltens der verschiedenen Ansätze 

(2) Bewertung des jeweiligen Abkühlverhaltens hinsichtlich einer möglichen Veränderung der Probe während 

des Transports; Anwendung der RGT-Regel. 

(3) Erläutern Sie, warum sofortige "Kühlung nach der Probennahme" und "schnellstmöglich anschließende 

Analytik" in den meisten Fällen die beste Art der Konservierung ist. 

Zu Protokollabschnitt 4: Vorbereitung und Durchführung einer Sterilisation mittels Autoklaven 

(1) Erläutern Sie die Bedingungen und Prozesse, bei denen Mikroorganismen durch a) feuchte Hitze und 

b) trockne Hitze abgetötet werden. 

(2) Stellen Sie einen Bezug zwischen Dauer der Hitzebehandlung und Sterilisationserfolg dar. Wodurch 

ist der begründet? So gilt für die Sterilisation bei trockener Hitze: 150°C für 180 Minuten oder 160°C 

für 120 Minuten oder 180°C für 30 Minuten (zusammengestellt aus [19, 20]). Für feuchte Hitze im Autoklaven 

gelten beispielsweise 121°C für mindestens 15 Minuten oder 134°C für mindestens 3 Minuten 

(zusammengestellt aus [19, 20, 21]). 

Zu Protokollabschnitt 5: Steriles Arbeiten 

(1) Erläutern Sie die Prozesse, durch die es auf einem Laborarbeitsplatz zu mikrobiologischen Kontaminationen 

der Arbeitsfläche und ggf. offener (Kultur-)Gefäße kommt bzw. kommen kann. 

(2) Stellen Sie einen quantitativen Zusammenhang her hinsichtlich des Kontaminationsrisikos eines geöffneten 

sterilen Gefäßes mit Mikroorganismen im Hinblick auf a) Keimgehalt in der Umgebungsluft, b) 

Luftbewegung, c) Expositionsdauer, d) ggf. anderen Faktoren, die hier nicht genannt wurden. Diskutieren 

Sie den Bezug zur Probenahme von Trinkwasserproben. 

(3) Transferfrage: Wo liegt der Unterschied zum Kontaminationsrisiko bei der Exposition einer offenen 

Wunde z.B. im medizinisch-therapeutischen Bereich? 

(4) Erläutern Sie die Bedingungen und Prozesse, bei denen Mikroorganismen durch a) Abflammen und b) 

Behandlung mit Ethanol (70%) bzw. Isopropanol (60%) abgetötet werden. Warum verwendet man 

nicht handelsüblichen Spiritus (96% Ethanol) oder wasserfreien Isopropanol? 

(5) Erläutern Sie die Randbedingungen, die zum sterilen Arbeiten in einem Labor eingehalten werden 

müssen und besonders die Rolle des brennenden Bunsenbrenners am Arbeitsplatz. 

Zu Protokollabschnitt 6: Entnahme einer Trinkwasserprobe 

(1) Erläutern Sie, warum Salpetersäure für die Stabilisierung von Proben zur Analyse auf Schwermetalle 

verwendet wird. Warum nicht Salzsäure oder Schwefelsäure? Machen Sie in diesem Zusammenhang 

auch die Bedeutung des Begriffs "Löslichkeitsprodukt" deutlich. 

(2) Geben Sie die für Mikroorganismen toxischen Stoffe an, die durch Zusatz von Na2S, Na2S2O3 und 

EDTA "entgiftet" werden können, damit während des Probentransports die Zahl an Mikroorganismen 

nicht abnimmt. Stellen Sie die Reaktionsgleichungen der "Entgiftungsreaktionen" auf. 

(3) Erläutern Sie, warum – im Bedarfsfall – Schwefelsäure für die Stabilisierung von Proben zur Analyse 

auf Oxidierbarkeit und Ammoniumgehalt verwendet werden kann. Warum nicht Salzsäure oder Salpetersäure? 

(4) Erläutern Sie, warum Lauge für die Stabilisierung von Proben zur Analyse auf Nitrit, Cyanid u.a. verwendet 

werden kann 

(5) Erläutern Sie den Vor- und Nachteile der Anwendung eines sg. Schnellverfahrens zur Bestimmung 

von Chlor bei der Probenahme. 






Zu Protokollabschnitt 7: Berechnung des Salzgehalts des Hydrogencarbonatgehalts 


(1) Berechnen Sie aus dem Leitfähigkeitwert der von Ihnen genommenen Wasserprobe den Salzgehalt 

im Wasser bezogen auf KCl. 

(2) Berechnen Sie mit dem von Ihnen ermittelten Leitfähigkeitwert der Wasserprobe den Salzgehalt, ausgedrückt 

als Massenkonzentration β in [mg/L], wenn man annehmen würde, die Wasserprobe enthielte 

ausschließlich ausschließlich reines (a) NaCl, oder (b) Na2SO4 oder (c) Ca(NO3)2. Verwenden Sie 

zur Berechnung die nachfolgend aufgeführten Grenzleitfähigkeitswerte λ [Einheit: S⋅cm 2 ⋅mol -1 ] (aus 

Tabelle 27-1 in [16]): 

Na + : 50,20 

Ca 2+ : 119,00 

NO3 - : 71,46 

Cl - : 76,35 

2- 

SO4 : 160,00 

Rechenwege mit Einheiten sind anzugeben! 

(3) Berechnen Sie aus dem Titrationsergebnis der Säure- und Basekapazitätsbestimmungen den Hydrogencarbonatgehalt 

des Wassers. 

Abbildung 5: 

Ablauforganigramm zur Beurteilung 

von Prüfergebnissen unter Berücksichtigung 

der Ergebnisse von Kontrollmessungen 

Für die Prüfergebnisse der drei Parameter ist ein Prüfbericht [17] in Original und Kopie zu erstellen und mit 

dem Protokoll abzugeben. Von den Protokollblättern der SOP’s der 3 Verfahren ist jeweils auch eine Kopie 

abzugeben, die im Labor verbleibt! 






4 Literatur 


[1] Bundesministerium für Verbraucherschutz, Ernährung und Landwirtschaft (2001). Verordnung über 

die Qualität von Wasser für den menschlichen Gebrauch (TrinkwV 2001 - Trinkwasserverordnung) 

vom 21. Mai 2001, BGBl. I Nr. 24 vom 28.5. 2001 S. 959 

[2] DIN 38402 Teil 14 (1986). Probenahme von Rohwasser und Trinkwasser. In: Deutsche Einheitsverfahren 

zur Wasser-, Abwasser- und Schlammuntersuchung. 16. Lieferung, A14. Beuth-Verlag, Berlin 

FRG und VCH, Weinheim, FRG. 

[3] DIN 38411 Teil 1 (1983). Mikrobiologische Verfahren. Vorbereitung zur mikrobiologischen Untersuchung 

von Wasserproben. In: Deutsche Einheitsverfahren zur Wasser-, Abwasser- und Schlammuntersuchung. 

12. Lieferung, K1. Beuth-Verlag, Berlin FRG und VCH, Weinheim, FRG. 

[4] DIN EN 25667 Teil 2 (1993). Wasserbeschaffenheit - Probenahme; Anleitung zur Probenahmetechnik. 

In: Deutsche Einheitsverfahren zur Wasser-, Abwasser- und Schlammuntersuchung. 30. Lieferung, 

A3. Beuth- Verlag, Berlin FRG und VCH, Weinheim, FRG. 

[5] DIN EN ISO 5667-16 (1999). Wasserbeschaffenheit - Probenahme; Anleitung zur Probenahme und 

Durchführung biologischer Testverfahren. In: Deutsche Einheitsverfahren zur Wasser-, Abwasser- 

und Schlammuntersuchung. 45. Lieferung, L1. Beuth- Verlag, Berlin FRG und VCH, Weinheim, FRG. 

[6] DIN EN ISO 5667-3 (1996). Wasserbeschaffenheit - Probenahme; Anleitung zur Konservierung und 

Handhabung von Proben. In: Deutsche Einheitsverfahren zur Wasser-, Abwasser- und Schlammuntersuchung. 

36. Lieferung, A21. Beuth- Verlag, Berlin FRG und VCH, Weinheim, FRG. 

[7] ISO 5667-5 (1991). Water quality - Sampling - Guidance on sampling of drinking water and water for 

food and beverage processing. Beuth- Verlag, Berlin FRG und VCH, Weinheim, FRG. 

[8] Bundesminister für Jugend, Familie und Gesundheit (1984-2002). Verordnung über natürliches Mineralwasser, 

Quellwasser und Tafelwasser (Mineral- und Tafelwasser-Verordnung) vom 1. August 1984 

(BGBl. I S. 1036) mit letzter Änderung vom 6.8.2002 

[9] Hessisches Ministerium für Umwelt, Landwirtschaft und Forsten (1991). Verordnung über die Untersuchung 

des Rohwassers von Wasserversorgungsanlagen (Rohwasseruntersuchungsverordnung - 

RUV) vom 19. Mai 1991 (GVBl. I 1991 S. 200; 1997 S. 243) 

[10] Deutscher Bundestag (2000). Gesetz zur Verhütung und Bekämpfung von Infektionskrankheiten beim 

Menschen (IfSG - Infektionsschutzgesetz) vom 20. Juli 2000; BGBl. I 2000 S. 1045; 2001 S. 2960; 

6.8.2002 S. 3092 

[11] Falbe, J., Regitz, M. (1995). CD Römpp Chemie Lexikon, Version 1.0, 9. korrigierte und verbesserte 

Auflage, Thieme-Verlag, Stuttgart, FRG, New York (USA) 

[12] Rat der Europäischen Union (1975). Richtlinie 75/440/EWG vom 16. Juni 1975 über die Qualitätsanforderungen 

an Oberflächenwasser für die Trinkwassergewinnung in den Mitgliedstaaten (ABl. Nr. L 

194 vom 25.07. 1975 S. 26; Änderungen: 79/869/EWG - ABl. Nr. L 271 vom 29.10. 1979 S. 44; 

91/692/EWG - ABl. Nr. L 377 vom 31.12. 1991 S. 48 gültig bis 22.12. 2007 gemäß Art. 22 RL 

2000/60/EG 

[13] Rat der Europäischen Union (1979). Richtlinie 79/869/EWG vom 9. Oktober 1979 über die Meßmethoden 

sowie über die Häufigkeit der Probenahmen und der Analysen des Oberflächenwassers für 

die Trinkwassergewinnung in den Mitgliedstaaten (ABl. Nr. L 319 vom 7.11. 1979 S. 44); Änderungen/Ergänzungen 

81/855/EWG - (ABl. Nr. L 319 vom 7.11. 1981 S. 16); 91/692/EWG - (ABl. Nr. L 377 

vom 31.12. 1991 S. 48) gültig bis 22.12. 2007 gemäß Art. 22 RL 2000/60/EG 

[14] Platen, H. (2003). Die Führung von Protokollen im Rahmen von Laborpraktika und Projektarbeiten 

- Eine kurze Einführung. Fachhochschule Gießen-Friedberg, Gießen, FRG. 

[15] Platen, H. (2002). Probenahme von Trinkwasser aus Wasserhähnen. SOP-Nr. 46 (Stand: 15.11.2002) 

des Labors für Wasseranalytik und Ökotoxikologie, Fachhochschule Gießen-Friedberg, Gießen, FRG. 

[16] Atkins, P.W. (1990). Physikalische Chemie. VCh-Verlag, Weinheim, FRG, S. 873. 

[17] Platen, H. (2007). Praktikums-Prüfbericht. Dokument HP1003-Form-2001-02-003 Fachhochschule 

Gießen-Friedberg, Gießen, FRG 

[18] Platen, H. (2007). Prüfprotokoll Praktikum Wasseranalytik 1/2. Dokument HP1003-Form-2001-02-002, 

Fachhochschule Gießen-Friedberg, Gießen, FRG 







[19] Süßmuth, R., Eberspächer, J., Haag, R., Springer, W. (1987). Biochemisch-mikrobiologisches Praktikum. 

Thieme-Verlag, Stuttgart, FRG. 

[20] Näveke, R., Tepper, K.-P. (1979). Einführung in die mikrobiologischen Arbeitsmethoden. Gustav Fischer 

Verlag, Stuttgart, FRG. 

[21] Gesellschaft für Zentralsterilisation von Medizinprodukten GmbH – GZM (2005). Dampfsterilisation - 

Verfahren und Qualitätssicherungen. GZM, Bunsenstr. 7, 71642 Ludwigsburg, FRG. Verfügbar unter 

dem URL (Stand: 08.11.2007): http://www.gzm.de/index.php?aktuell&4 in der Version vom 01.07.2005 

[22] Deutsche Akkreditierungsstelle Chemie GmbH – DACh (ohne Jahresangabe). Einbindung von externen 

Probenehmern in die Akkreditierung nach TrinkwV 2001. DACh GmbH, Gartenstraße 6, D-60594 

Frankfurt. Verfügbar unter dem URL (Stand: 08.11.2007): http://www.dach-gmbh.de/Probenahme.html 

[23] Deutscher Verband unabhängiger Prüflaboratorien e.V. –VUP (2001 – heute, regelmäßig aktualisisert). 

Aktuelle Informationen zum Thema „Trinkwasserschulung“. VUP e.V., Kerkrader Straße , D- 

35390 Gießen. Verfügbar unter dem URL (Stand: 08.11.2007): 

http://www.vup.de/site/InfoSuchMa.asp?Job=suchen&selTxt=Trinkwasser 

[24] Staatliche Akreditierungsstelle Hannover – AKS (2004). Erläuterungen zur Probenahme von Wasser 

für den menschlichen Gebrauch. Verfügbar unter dem URL der DACh (Stand: 08.11.2007): 

http://www.dach-gmbh.de/DACHDok/TW_RV/Probn.pdf 

[25] Deutsche Vereinigung des Gas- und Wasserfaches e.V. Technisch-wissenschaftlicher Verein (2007, 

regelmäßig aktualisiert). Novellierung der Trinkwasserverordnung vom 21. Mai 2001. DVGW, Josef- 

Wirmer Straße 1-3, D-53123 Bonn. Verfügbar unter dem URL (Stand: 08.11.2007): 

http://www.dvgw.de/wasser/recht-trinkwasserverordnung/trinkwasserverordnung/

Praktikum Wasseranalytik 2 - und Biotechnologie (KMUB)

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