Pathologische Histologie für den 2. Teil - Vetstudy
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<strong>Pathologische</strong> <strong>Histologie</strong><br />
<strong>für</strong> <strong>den</strong> <strong>2.</strong> <strong>Teil</strong><br />
Eva Schenk
Präparate aus Kurskasten<br />
Histopatho<br />
Kreislauforgane<br />
1) Perikarditis fibroplastica, Pferd (HE) S. 7 – 8<br />
2) Endocarditis valvularis thromboticans, Schwein (HE) S. 8 – 9<br />
4) Myokarditis MKS, Schwein (HE) S. 10<br />
6) Endarteritis thromboticans verminosa, Pferd (HE) S. 11<br />
9) Lympha<strong>den</strong>itis purulenta, Schwein (HE) S. 12<br />
10) Tbc der Mesenteriallymphknoten, Schwein (HE) S. 13 - 14<br />
Atmungsorgane<br />
13) Emphysem bei Peribronchitis, Pferd (HE) S. 14 – 15<br />
15) Fibrinöse Pneumonie, Rind (HE) S. 16 – 18<br />
16) Katarrhalisch-eitrige Bronchopneumonie, Schwein (HE) S. 18 – 19<br />
17) Interstitielle Pneumonie bei Staupe, Hund (HE) S. 19 – 21<br />
18) Miliar-Tuberkulose der Lunge, Rind (HE) S. 21 – 23<br />
20) Lungenaspergillose, Kalb (Grocott-HE) S. 24 – 25<br />
22) Lungenwurm-Brutknoten, Schaf (HE) S. 25 – 27<br />
23) Wurmknötchen Lunge, Pferd (HE) S. 27 – 28<br />
Verdauungsorgane<br />
25) Parvovirusenteritis und normales Jejunum Hund (HE) S. 29 – 30<br />
27) Paratuberculose Darm, Schaf (Ziel-Neelsen) S. 31 – 32<br />
Leber<br />
29) Ikterus Leber, Fohlen (Hämatoxilin) S. 32 – 36<br />
30) Stauungsleber, Schwein (HE) S. 36 – 37<br />
31) Amyloidose Leber, Pferd (Kongorot) S. 38 – 39<br />
32) Fettleber, Pferd (Scharlachrot) S. 39 – 41<br />
33) RHD, Leber und Niere, Kaninchen (HE) S. 42 – 43<br />
34) Nekrobazillose, Leber, Rind (HE) S. 43 – 44<br />
35) Virushepatitis HCC, Hund (HE) S. 44 – 45<br />
37) Salmonellose Leber, Kalb (HE) S. 46 – 47<br />
39) Zystizerkose Leber, Schwein (HE) S. 47 - 48<br />
40) Hepatitis parasitaria chronica multiplex, Schwein (HE) S. 48 – 49<br />
41) Leberzirrhose, Hund (HE) S. 50 – 52<br />
42) Leberzirrhose, Hund (Trichom-Masson) S. 50 – 52<br />
44) Lymphatische Leukose Leber, Rind (HE) S. 52 – 54<br />
Harnorgane<br />
46) Ischämischer Niereninfarkt (HE) S. 55 – 60<br />
49) Hämoglobinurische Nephrose, Hund (HE) S. 63 – 64<br />
50) Amyloidnephrose, Rind (Kongorot) S. 61 – 63<br />
51) Subakute serofibrinöse Glomerulonephritis, Schwein (HE) S. 65 – 67<br />
52) Schrumpfnieren, Hund (HE) S. 68 – 69<br />
53) Chronische Glomerulonephritis, Hund (PAS) S. 69 – 70<br />
54) Embolisch-eitrige Herdnephritis, Fohlen (HE) S. 71 – 72<br />
55) Nicht-eitrige interstitielle Herdnephritis, Kalb (HE) S. 72 – 73<br />
56) FIP Niere, Katze (HE) S. 74 – 75<br />
- 1 -
Geschlechtsorgane<br />
57) Pyometra, Katze (HE) S. 76 – 78<br />
59) Colimastitis /Mastitis acuta gravis, Rind (HE) S. 79 – 81<br />
Stütz-/ Bewegungsapparat<br />
61) Osteodystrophia fibrosa, Unterkiefer Hund (Trichom-Masson) S. 81 – 84<br />
62) hyalinschollige Muskeldegeneration, Pferd (HE) S. 85 – 86<br />
Nervensystem<br />
64) Staupeencephalitis, Hund (HE) S. 87 – 94<br />
65) Fibrinös-eitrige Meningomyelitis (Coli), Kalb (HE) S. 94 – 96<br />
66) Borna-Encephalitis, Schaf (HE) S. 96 – 98<br />
67) Meningoencephalitis bei Listeriose, Schaf (HE) S. 98 – 99<br />
68) Tollwut, Pferd (HE) S. 100 – 101<br />
68a) Immunhistologie Tollwut, Hund (PAP) S. 101 – 105<br />
Haut<br />
70) Habronematose, Pferd (HE) S. 106 – 108<br />
71) Aktinomykose, Rind (HE) S. 109 – 110<br />
72) Botryomykose, Pferd (HE) S. 110 – 111<br />
73) Pocken, Huhn (HE) S. 112 – 113<br />
74) Demodikose Haut, Hund (HE) S. 114 – 115<br />
Tumoren<br />
75) Fibrom, Hund (Elastica-Giesson) S. 116 -<br />
76) Leiomyom, Rind (Elastica-Giesson) S.<br />
77) Fibrosarkom, Katze (HE) S.<br />
78) Osteoblastisches Sarkom, Hund (HE) S.<br />
79a) Mastzelltumor Haut, Hund (Toluidinblau) S.<br />
79b) Mastzelltumor Haut, Hund (HE) S.<br />
80) Malignes Melanom in der Maulhöhle, Hund (HE) S.<br />
81) Papillom der Haut, Rind (HE) S.<br />
82) Benigner Mischtumor der Mamma, Hund (HE) S.<br />
83) Plattenepithelkarzinom, Pferd (HE) S.<br />
84) Kavernöses Hämangiom, Hund (HE) S.<br />
85) Gliom, Hund (HE) S.<br />
86) Histiozytom der Haut, Hund (HE) S.<br />
Allgemeines<br />
- 2 -
Prüfungsablauf<br />
Drei Präparate, dabei jeweils: Organdiagnose<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Ätiologie, Pathogenese<br />
Differentialdiagnosen<br />
Tumorhistologie: Fehlerquellen<br />
Quetschung/ Verkohlung/ Austrocknung der Probe<br />
Autolyse/ Fäulnis der Probe<br />
zu wenig Fixans (mind. 10:1)<br />
Ungeeignete Verpackung/ Vorbericht fehlt<br />
Probenversand zur Untersuchung<br />
1. Einlegen in 10%ige Formalinlsg. (Verhältnis mind. 10:1)<br />
<strong>2.</strong> Niemals Probe einfrieren � Zellzerstörung<br />
3. KEINE Fixation, falls gleichzeitig BU erfolgen soll<br />
4. Anschnei<strong>den</strong> von großen Proben (schnellere Fixierung)<br />
Das Erkennen der Entzündungszellen<br />
1) Lymphozyt 4) Thrombozyten 1) Eosinophiler Granulozyt<br />
2) Neutrophiler Granulozyt 2) Basophiler Granulozyt<br />
3) Jugendform von 2 3) Monozyt 6) Neutrophiler G.<br />
1. Neutrophiler Granulozyt<br />
- 3 -
Zytoplasma � blass eosinophil & ggr. granuliert<br />
Kern � basophil, segmentiert & unklare Außengrenzen<br />
bei Pfd & Flfr größter Anteil des weißen Blutbildes<br />
10 – 14 µm<br />
Granula = prim. Lysosomen<br />
<strong>2.</strong> Eosinophiler Granulozyt<br />
Zytoplasma � Granula ist stark lichtbrechend<br />
Kern � segmentiert<br />
10-14 µm; 1-4% der zirkulieren<strong>den</strong> Leukos<br />
ggr. amöboid beweglich (Anlockung durch Histamin)<br />
3. Basophiler Granulozyt<br />
4. Lymphozyt<br />
5. Lymphoblast<br />
6. Mastzelle<br />
Zytoplasma � stark granuliert & stark eosinophil<br />
Kern � segmentiert<br />
10-12 µm; 0,5% der Leukos<br />
Lysosomen = azurophile Granula<br />
basophile Granula (enthält Histamin, Heparin & Leukotriene)<br />
kleiner als Granulozyten<br />
Zytoplasma � sehr hell, fast keines vorhan<strong>den</strong><br />
Kern � groß & dicht<br />
Ausgangsreservoir <strong>für</strong> B-/ T-Lymphozyten (humorale Abwehr)<br />
deutlich mehr Zytoplasma als Lymphozyten; Kern weniger stark verdichtet<br />
Ähneln Basop. Granulozyten im Blut<br />
Zytoplasma � violett (basophile Zusatzanfärbung)<br />
fein granuliert<br />
Kern � ovoider basophiler Zellkern<br />
7. Plasmazelle<br />
1) Fibroblasten<br />
2) phagozytierende Makrophage<br />
3) Mastzellen<br />
Zytoplasma � violett (Ribosomen blau, Proteine rot)<br />
- 4 -
8. Makrophage<br />
9. Fibroblasten<br />
10. Angioblasten<br />
Golgi-Apparat = blass eosinophiler Bereich am Kern<br />
Kern � kreisrund<br />
exzentrisch<br />
dunkel gefärbt (selten „Radspeichenstruktur“)<br />
Entstehung aus B-Lymphozyten über Plasmablasten im Gewebe<br />
Zytoplasma � Vakuolen (wasserklarer Inhalt)<br />
Kern � schwach gefärbt<br />
Zellform vielgestaltig<br />
größte Entzündungszellen<br />
Kern � sehr blass<br />
[Blasten besitzen immer viel Euchromatin, dass sich nicht anfärben lässt]<br />
Zellen im Verbund, stark in die Länge gezogen<br />
prod. Kollagen � je älter Gewebe, desto mehr Kollagen & weniger Zellen<br />
Gefäßbildung<br />
[Granulationsgewebe = Fibroblasten-Angioblasten-Gewebe]<br />
Altersbestimmung bei Entzündungen<br />
Granulozyten Einwandern nach 1-2 h in Gewebe<br />
Makrophagen Einwandern nach 1-2 d in Gewebe<br />
Hämosiderinbild. in M. nach Blutung nach 4-8 d<br />
Hämatoidinablagerung extrazell. nach einer Woche<br />
Lymphozyten nach 3 bis 7 d vorhan<strong>den</strong><br />
Plasmazellen nach 1-2 Wochen<br />
Granulationsgewebsbildung nach einer Woche<br />
Neugebildete elast. Fasern 4 Wochen<br />
Doppeltbrechende Kollagenfasern ¼ Jahr<br />
Standardfärbung<br />
- 5 -
Färbemethode<br />
"H.-E." "Azan" "Goldner" "van Gieson" Eisenhämatoxylin<br />
Hämatoxylin,<br />
Eosin<br />
Struktur Färbeverhalten<br />
Azokarmin,<br />
Orange-G,<br />
Anilinblau<br />
Eisenhämatoxylin,<br />
Säurefuchsin-<br />
Poceau, Orange-G,<br />
Lichtgrün<br />
Eisenhämatoxylin,<br />
Pikrinsäure,<br />
Säurefuchsin<br />
Beisetzung mit<br />
Eisenalaun,<br />
Bildung eines<br />
Hämatoxylin-<br />
lackes<br />
Kerne blau rot bräunlich-schwarz schwarz-braun Chromatin und<br />
Nukleolen schwarz<br />
Cyto-<br />
plasma<br />
Retikulin-<br />
fasern und<br />
Basalmembran<br />
Kollagene<br />
Fasern<br />
Elastische<br />
Fasernetze<br />
und elastische<br />
Membranen<br />
Interzellular-<br />
substanz im<br />
hyalinen<br />
Knorpel<br />
Muskel-<br />
zytoplasma<br />
Erythro-<br />
zyten<br />
blaßrot rot ziegelrot gelbbraun<br />
blaßrot oder<br />
blaßrot oder<br />
blau blaßgrün<br />
ungefärbt ungefärbt<br />
verschie<strong>den</strong>e<br />
Granula, Mito-<br />
chondrien,<br />
Zentrosomen und<br />
Filamente schwarz<br />
graugrün oder<br />
gelblich<br />
rot blau grün rot graugrün oder<br />
gelblich<br />
blaßrosa blaßrot blaßgrün bis blaßrot blaßgelb schwach gelblichgrau<br />
blaßblau bis<br />
violett<br />
Standardfärbung ist H/E<br />
Elastikafärbung<br />
Orcein oder<br />
Resorcinfuchsin<br />
Ø<br />
Ø<br />
Ø<br />
Ø<br />
Orcein:<br />
braunrot<br />
Resorcin-<br />
fuchsin: violett<br />
bis schwarz<br />
blaßblau,<br />
auch rötlich hellgrün rot und gelb versch. Grautöne Ø<br />
rot rot bis orange orangerot bis braun gelb<br />
Myofibrillen sehr<br />
deutlich A-Bande<br />
schwarz<br />
ziegelrot karminrot orangegelb gelb schwarz Ø<br />
Hämatoxillin (blau) färbt kon<strong>den</strong>sierte Nukleinsäuren<br />
� DNA im Kern in Form von Heterochromatin<br />
[Euchromatin = entspiralisiertes Chromatin, das gerade<br />
abgelesen wird. Wird nicht angefärbt]<br />
Färbeeindruck blau = Basophilie<br />
Eosin (rot) proteinanfärbender Farbstoff<br />
Färbeeindruck rot = Eosinophilie<br />
Kreislauforgane<br />
Nr. 1) Perikarditis fibroplastica, Pferd, HE<br />
Ø<br />
- 6 -
� chronische Herzbeutelentzündung mit Granulationsgewebeproliferation<br />
(CAVE: fibrinosa = Fibrinausschwitzung; fibroplastica = Granulationsgewebeprolif.)<br />
akute Entzündung Übergang von Myokard<br />
Fibrinfä<strong>den</strong> & Gran.gew. zu<br />
Entzündungszellen Myokard<br />
Organdiagnose<br />
Herzmuskulatur � - 100-159 µm lange, mononucleäre Herzmuskelzellen<br />
- Myofibrillengebun<strong>den</strong>e Querstreifung<br />
- ovaler Zellkern im Zentrum (Gegensatz Skelettmuskulatur)<br />
- an Zellkernpolen sind Myofibrillen auseinander gedrängt, hier<br />
Anreicherung von Mitochondrien, Golgi-Komplexen,<br />
Glykogengranula, Lipidtröpfchen<br />
- Verbindung der Zellen über Glanzstreifen (bei HE nicht zu erkennen)<br />
- Modifizierte Herzmuskelzellen sind Myoendokrinozyten<br />
(Herzhormonbildung) & Purkinje-Zellen (Reizweiterleitung)<br />
- Purkinje-Zellen: zweikernig, Zytoplasma hell, viel Glykogen<br />
Histopathologische Diagnose<br />
- Präparat besteht aus drei „Schichten“<br />
- Außen � Bereich der akuten Entzündung; viele Fibrinfä<strong>den</strong> & Entzündungszellen<br />
dunkle, zellreiche Epikardbedeckung (physiologisch)<br />
- heller Bereich mit dunklen Strängen � neu gebildete Gefäße im<br />
Granulationsgewebe<br />
(Gefäßproliferation = Fibroblasten)<br />
Ausrichtung der Gefäße senkrecht zur<br />
Noxe<br />
- altes Granulationsgewebe � zellärmer (Blasten verschwin<strong>den</strong>)<br />
Kollagenfasern & Fibrozyten<br />
- Myokard � hiermit ist Organdiagnose möglich<br />
evtl. Purkinjefasern<br />
- blaue wolkige Stellen sind Bakterienkolonien<br />
Ätiologie (Ursachen)<br />
nicht-erregerbedingte Perikarditi<strong>den</strong><br />
- Ergussresorptionen<br />
- Gicht der Vögel & Reptilien (Perikarditis urica)<br />
- 7 -
- durch Tumorimplantation<br />
erregerbedingte Perikarditi<strong>den</strong><br />
- Direkte Entstehung aus Perforationen des Herzbeutels (Pericarditis traumatica)<br />
- Direkte Entstehung durch fortgeleitete Infektionsprozesse (Pleuritis, Ösophagus, Pneumonie)<br />
- Hämatogene Entstehung im Rahmen virämischer/ bakteriämischer Infektionsabläufe<br />
- retrograd-lymphogene Entstehung bei Pleuropneumonie, insbes. bei tuberkulöser Form<br />
- Infektion mit Clostridien, Mykoplasmen, Chlamydien, Streptokokken, Staphylokokken<br />
- Nischenperikarditis des Rindes � Panzerherz (klinisch ohne Bedeutung)<br />
Pathogenese<br />
1) nicht- erregerbedingte P. durch Kompression<br />
2) Retikuloperitonitis traumatica (FK perforiert Haube, Zwerchfell & Herzbeutel)<br />
� Entzündung (Pericarditis traumatica)<br />
3) Generalisation nach Infektion (bakteriell oder virämisch) in anderem Organ<br />
4) Nischenperikarditis = Residuen von Mykoplasmen- und Virusinfektionen (graurote, zottige<br />
Angio-Fibroblastensprossungen)<br />
Differentialdiagnosen<br />
Perikarditi<strong>den</strong> anderer Genese (siehe oben)<br />
Nr. 2) Endokarditis valvularis thromboticans, Schwein, HE<br />
� Entzündung der Herzinnenhaut mit Sitz an <strong>den</strong> Klappen (chronisch, rezidivierende Erkrankung)<br />
� Schwein ist am häufigsten betroffen; v.a. Linksherztyp<br />
Erreger: Erysipelothrix rhusiopathiae, Actinomyces pyogenes, Streptok., Staph., Pasteurellen<br />
Organdiagnose<br />
Herzmuskulatur � siehe Präparat Nr. 1<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Herzklappe<br />
links im Bild Fibrinfä<strong>den</strong>;<br />
dunklere (basophile) Punkte sind Bakterienwolken<br />
Thrombus (nicht im Bild) = dichte eosinophile<br />
Ansammlung<br />
Das Präparat besteht makroskopisch aus zwei <strong>Teil</strong>en (hängen evtl. zusammen)<br />
Der „eckige <strong>Teil</strong>“ ist das Myokard, bestehend aus dem Perikard mit Endokardüberzug<br />
Der „spitze <strong>Teil</strong>“ ist die Herzklappe, die Veränderung (makr. dunkel) befindet sich auf der<br />
dem Endokard abgewandten Seite (lumenwärts)<br />
- 8 -
Ätiologie<br />
Man findet einen Thrombus mit Entzündungszellen, prolif. Granulationsgewebe & Fibrin<br />
(blaue Wolken im Fibrin sind Bakterienkolonien [E. rhusiopathiae])<br />
Granulationsgewebe sprosst in Thrombus ein � gerichtete Gefäße<br />
Entstehung auf bakterieller Grundlage<br />
Einteilung: nach Sitz: E. valvularis, parietalis, chordalis, trabecularis, papillaris<br />
Pathogenese<br />
nach Qualität: E. valv. simplex (Klappenödem),<br />
thromboticans (verrucosa [warzenartig], polyposa<br />
[Schleimhautvorwölbung ins Lumen]),<br />
ulcerosa (Fraßlöcher), fibrosa (Klappenrand kragenartig verdickt)<br />
� Primärinfektion eines Organs (Tonsillitis, Pyometra etc.) � Generalisation<br />
� Abschwemmen eines infektiösen Embolus<br />
� Stenosen der betroffenen Herzklappen, Herzinsuffizienzen (selten)<br />
� Linksherzendokarditis �evtl. inf. Embolus von Herzklappe zur Niere (Endarterien)<br />
� Rechtsherzinsuffizienz � inf. Emboli in Lunge (eitrig-einschmelzende Lungeninfarkte)<br />
Differentialdiagnose<br />
E. valvularis simplex<br />
E. valvularis ulcerosa<br />
E. valvularis fibrosa<br />
Nr. 4) Myokarditis (aphthosa) bei Maul- und Klauenseuche, Schwein, HE<br />
nichteitrige Myokarditis diffusa mit hyalinscholliger Muskeldegeneration<br />
Erreger der MKS ist das MKSV, Fam. Picornaviridae, Genus Aphthovirus<br />
Myokarditis ist bei MKS selten (graugelbe & grauweiße Streifen und Flecken)<br />
- 9 -
Hauptsymptome sind Fieber, Aphthen (Flotzmaul, Euter, Klauen), Speicheln & Lahmheit<br />
Organdiagnose<br />
Myokard � siehe Präparat Nr. 1)<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Zenker’sche Degeneration<br />
Unter der Lupe sieht man viele rosa Pakete, die von weißen Linien durchzogen sind<br />
Schollen der Zenker’schen Degeneration � hyalinschollige Muskeldegeneration<br />
Muskelzellen zeigen keine Quer-/ Längsstreifen<br />
= homogen rosa (Milchglas)<br />
� zerfallen später in Schollen<br />
Sek. entsteht nichteitrige mononukleäre Entzündung � Lymphozyten, Makrophagen, Plasmazellen<br />
Zellkerne sind rund/ oval und nicht gelappt<br />
Ätiologie<br />
Infektion mit MKSV<br />
Pathogenese<br />
prim. Virusreplikation im Rachenraum � Primäraphthe � Virämie � Sekundäraphthen<br />
Differentialdiagnose<br />
1. BKF des Rindes � Arterienwände sind betroffen, die ist bei MKS nicht der Fall<br />
<strong>2.</strong> Parvo-Myokarditis des Hundes � extrem selten<br />
große intranucleäre Einschlusskörperchen<br />
Ausheilung über Narbenbildung möglich („Tigerherz“)<br />
3. Encephalitis-Myokarditis-Virus-Infektion des Schweines � sehr selten<br />
Nr. 6) Endarteritis thromboticans verminosa, Pferd, HE<br />
Endarteritis (Entzündung der Intima) thromboticans (Thrombus aus Fibrin, Thrombozyten, Leukos & Blut)<br />
verminosa (Ätiologie � Parasiten)<br />
Anschnitt des Strongyli<strong>den</strong><br />
- 10 -
Organdiagnose<br />
Gefäßaufbau aus Adventitia, Media (glatte Muskulatur + elast. Fasern), Elastica (elast. Fasern) &<br />
Intima (Endothel)<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: rote homogene Fläche mit Fett außen herum<br />
Endarteritis = Veränderung der Intima<br />
� Intima wird durch Thrombus verdrängt & durch Granulationsgewebe ersetzt<br />
im Thrombusmaterial fin<strong>den</strong> sich Larvenanschnitte (ohne Geschlechtsapparat) von Strongylus vulgaris<br />
in Adventitia Anschnitte des Ganglion coeliacum mit Nervengewebe & akute Wanderwege (rote<br />
Streifen)<br />
Einwanderung vieler neutrophiler Granulozyten � Eiterbildung<br />
Ätiologie<br />
Ausgelöst durch Wanderlarven von Strongylus vulgaris<br />
Pathogenese<br />
Wanderung in Arterien gegen Blutstrom zur Gekrösewurzel (subintimal o. im Lumen)<br />
↓<br />
Schädigung des Gefäßendothels<br />
↓<br />
Blut gerinnt an geschädigten Zellen<br />
↓<br />
Blättchenthrombus entsteht<br />
↓<br />
daraus entsteht Abscheidungsthrombus<br />
↓<br />
daraus entstehen große Thromben<br />
↓<br />
evtl. Aneurysmabildung � Ruptur = Verbluten<br />
� Embolien in Darmarterien (thrombotisch-embolische Kolik), Nierenarterien & Beinarterien<br />
Absterben des Darmes bei Etagenthromben zwischen zwei Thromben<br />
Differentialdiagnose<br />
Bakterienthromben, nicht infektiöse Thromben, Fettembolie etc.<br />
Nr. 9) Lympha<strong>den</strong>itis purulenta, Schwein, HE<br />
eitrige Lymphknotenentzündung und –schwellung<br />
Organdiagnose<br />
Im Lymphknoten befin<strong>den</strong> sich keine Trabekel (vs. Milz)<br />
- 11 -
In unverändertem Ln. praktisch keine Granulozyten<br />
CAVE: Tierartdiagnose möglich, wegen inversem Aufbau<br />
(Follikel in Hilusnähe und nicht entlang der Kapsel; Ein Zufluss & zahlreiche Abflüsse)<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Makroskopisch gut als Lymphknoten zu erkennen.<br />
Lupe: Größtenteils feinkörnig rosa, mit lila Punkten und hellen Gängen<br />
Viele Neutrophile Granulozyten (dichte, dunkle, segmentierte, unregelmäßige Kerne)<br />
� gehen häufig durch Apoptose zu Grunde (<strong>für</strong> Diagnose besser gut erhaltene Zellen)<br />
Im Randbereich (im Sinus) � Ansammlungen von Makrophagen<br />
Ätiologie<br />
Eitrige Entzündungen im Einzugsbereich des Lymphknotens<br />
Formen: eitrig, abszedierend, hämorrhagisch, fibrinös, nekrotisierend oder granulomatös<br />
meist mit hyperplastischer Veränderung<br />
Beim Schwein � Streptokokkenlympha<strong>den</strong>itis des Schweines (hohe wirtschaftl. Verluste)<br />
β- hämolysierende Streptokokken der Gruppe E (Lancefield)<br />
Pathogenese<br />
eitrige Pharyngitis � in Rachen-/ Hals-/ Kopflymphknoten � eitrige Lympha<strong>den</strong>itis � Abszesse<br />
akuter Prozess � Lymphozyten & Neutrophile Granulozyten<br />
chron. Prozess � Lymphozyten & Plasmazellen<br />
Differentialdiagnose<br />
Mischformen mir anderen Formen der Lympha<strong>den</strong>itis<br />
Nr. 10) Tuberkulose der Mesenteriallymphknoten, Schwein, HE<br />
Lymphknoten mit Verkalkungsher<strong>den</strong><br />
Organdiagnose<br />
Lymphknoten � siehe Präparat Nr. 9)<br />
- 12 -
Geschichtetes Granulom (Nekrose rechts unten im Bild) Epitheloidzellen<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: In dem insgesamt dunkellila Gewebe befin<strong>den</strong> sich helle Kreise<br />
Typisch <strong>für</strong> Tuberkulose ist:<br />
1) Geschichtetes Granulom<br />
Zentrum (Mykobakterium) � Nekrose führt zur sek. Verkalkung<br />
Zweite Schicht � Granulozyten (meist nur noch Kerntrümmer)<br />
Dritte Schicht � Epitheloidzellen (Synzytium aus modifizierten Makrophagen)<br />
Kerne der Epitheloidzellen sind bohnenförmig<br />
Zwischen E. liegen Lymphozyten & Plasmazellen<br />
Vierte Schicht � Bgw. Kapsel<br />
2) Langhans’sche Riesenzellen<br />
Kerne der L. liegen perlschnurartig entlang des Randes der Zelle<br />
Ätiologie<br />
exsudative Form: Mycobacterium bovis, M. tuberculosis � Rind, kl. Wdk, Schwein<br />
proliferative Form: M. avium, M. intracellulare (Sägemehl-Einstreu) � Pferd, Schwein, Flfr.<br />
Pathogenese<br />
exsudative Lymphknotentuberkulose:<br />
Schwellung & Ausbildung eines perifokalen entzündlichen Ödems<br />
Später trockene Verkäsung � durch Bgwsepten strahlige Zeichnung (strahlige Verk.)<br />
Blutungsartige Herde am Rande der Nekrosen<br />
Demarkierung der verkäsen<strong>den</strong> Herde durch epitheloid-/ riesenzelliges<br />
Granulationsgewebe<br />
proliferative Lymphknotentuberkulose:<br />
Ausbildung von Tuberkeln<br />
diffuse Gewebszubildung<br />
diffuses, nicht demarkiertes epitheloid- und riesenzelliges Granulationsgewebe<br />
Differentialdiagnose<br />
- 13 -
Veränderungen in Hals-/ Darmlymphknoten durch: atypische Mykobakterien<br />
Rhodococcus equi<br />
wandernde Parasiten (Askari<strong>den</strong>/ Nemato<strong>den</strong>)<br />
Atmungsorgane<br />
Nr. 13) Emphysem bei Peribronchitis, Pferd, HE (COPD)<br />
Emphysem (= reversible oder irreversible Erweiterung der Luftführen<strong>den</strong> Räume distal der<br />
terminalen Bronchien)<br />
Peribronchitis (= Periphere Ausbreitung einer Bronchitis/ Bronchiolitis)<br />
Organdiagnose Lunge<br />
Die Lunge besteht aus: luftleitendem System<br />
Parenchym<br />
interstitiellem Bgw<br />
(Interstitium)<br />
Interstitium: Versorgungsbahnen<br />
koll. & elast. Fasern (Exspiration)<br />
4) Bronchuli mit hoch-/ bis isoprismatischem Epithel<br />
5) glatte Muskelzellen und wenig Bgw<br />
6) Terminalbronchus (Bronchulus terminalis)<br />
aus Geißelzellen & Clara-Zellen<br />
(=bronchioläre exokrine Zellen; Sekretion von<br />
proteolytischen & muzinlösen<strong>den</strong> Stoffen)<br />
7) Bronchulus respiratorius<br />
9) Alveole<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Die Alveolarsepten sind dünn, atrophiert und eingerissen<br />
(aufgerissene Wände = alveol. Emphysem)<br />
Die Alveolen sind deutlich vergrößert<br />
Die Bronchien sind mononucleär infiltriert mit deutlicher<br />
Bgwzubildung<br />
Bgwproliferation + Plasmazellen sprechen <strong>für</strong> chronischen Prozess<br />
Emphysematöse und atelektatische Bereiche (Schachbrettmuster)<br />
Ätiologie<br />
Peribronchitis entsteht aus einer Bronchitis (meist zusammen mit Entzündung der oberen Luftwege<br />
und der Lunge [Bronchopneumonie])<br />
Hauptursachen: aerogene Infektion<br />
deszendierende, aszendierende, hämatogene Infektion<br />
Parasiten<br />
- 14 -
Allergene<br />
Reizgase, Luftverschmutzung<br />
Fremdkörper<br />
Das Emphysem entsteht durch: eine Ventilstenose auf Grund der Peribronchitis<br />
einen chronischen Bronchospasmus (Asthma bronchiale)<br />
allerg. Prozesse (Farmers lung)<br />
toxische Einflüsse (Weideemphysem)<br />
Pathogenese<br />
Peribronchitis: helle Knötchen aus lymphohistiozytären Infiltraten, die manschettenartig um<br />
Bronchien liegen<br />
COPD: (Chronic Obstructive Pulmonary Disease)<br />
häufige Erkrankung erwachsener Pferde (v.a bei Stallhaltung)<br />
chron. Peribronchitis mit chron. alveolärem Lungenemphysem<br />
peribronchioläre mononucleäre Infiltrate & Fibrosen<br />
Hyperplasie von Bronchialepithel und –muskulatur<br />
Abnahme der Clara-Zellen Histo laut Dahme/ Weiss<br />
Metaplasie der Becherzellen<br />
Ansammlung von Schleim in Bronchien, Alveolen<br />
Emphysem: 1) Alveoläres Emphysem<br />
akutes alv. E. � durch vorübergehende Stenose; reversibel<br />
chron. alv. E. �Obstruktionsemphysem mit Parenchymschwund (irreversibel)<br />
akutes universelles alv. E. � beim Erstickungstod/ Anaphylaktischen Schock<br />
infolge eines Bronchusverschlusses kollabiert<br />
Lunge nicht<br />
2) Interstitielles Emphysem (der Vollständigkeit halber)<br />
durch Lufteintritt in Lungenzwischengewebe<br />
durch Überdehnung/ Zerreißung der Alveolen beim Schlachten<br />
Ventilstenose = Durch angestrengte Inspiration wird Verlegung überwun<strong>den</strong>. Da<br />
exspiratorischer Druck schwächer ist kann Luft nicht vollständig ausgeatmet<br />
wer<strong>den</strong><br />
Differentialdiagnose<br />
HIER: chronische Peribronchitis mit chronischem alveolärem Emphysem<br />
DD: akutes alveoläres Emphysem; Interstitielles Emphysem<br />
Nr. 15) Fibrinöse Pneumonie, Rind, HE<br />
Pneumonie = Lungenentzündung � Gewebsverdichtung durch Exsudate/ zellige Infiltration, die<br />
zur Verminderung des Luftgehalts des Organs führt.<br />
lobuläre Pneumonie � Herdpneumonie; entzündliche Prozesse multizentrisch, die sich weiter<br />
ausbreiten<br />
lobäre Pneumonie � Ein oder mehr Lungenlappen erkranken schlagartig<br />
- 15 -
Einteilung der Pneumonien<br />
1) Alveoläre Herdpneumonien<br />
- Fibrinöse Bronchopneumonie (meist mit Beteiligung der Pleura = Pleuropneumonie)<br />
- Katarrhalisch- eitrige Bronchopneumonie<br />
2) Interstitielle Pneumonien<br />
3) Sonderformen<br />
- Embolisch- metastatische Pneumonie<br />
- Aspirationspneumonien<br />
4) Granulomatöse Pneumonien<br />
Organdiagnose<br />
Lunge � siehe Präparat Nr. 13)<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: Marmoriert; dunkel lila Flecken (wie Blumen) & hellrosa Flecken<br />
Zeitlicher Ablauf:<br />
1) Anschoppung � pralle Füllung der Kapillaren<br />
(Stadium incrementi) leicht eosinophile, homogene o. feinkörnige Eiweißmasse in Alveolen<br />
mit einzelnen Erys, Granulozyten & desquamierten<br />
Alveolardeckzellen<br />
Ätiologie<br />
2) rote Hepatisation � Kapillaren prall gefüllt (Kapillarhyperämie)<br />
(Hepatisatio rubra) dichtes Fibrinnetz in Alveolen, in dessen Maschen ggr. Erys,<br />
Granulozyten & Alveolardeckzellen<br />
Lymphgefäße des Interstitiums sind erweitert und thrombosiert<br />
Thrombosen kleiner Venen & Arterien<br />
3) graue Hepatisation� Zahlreiche Granulozyten in <strong>den</strong> Kapillaren<br />
(Hepatisatio grisea) G. wandern in Alveolarexsudat ein & lösen Fibrinnetz enzym. auf<br />
Wiedereröffnung thrombosierter Gefäße = gelbe Farbe durch hohen<br />
Fettgehalt der Granulozyten (durch Phagozytose kaputter Zellen)<br />
4.1) Lysis � Verflüssigung des pneumonischen Exsudates<br />
(beim Menschen)<br />
4.2) Organisation � Einsprossen gefäßreichen Granulationsgewebes<br />
(beim Haustier) Resorption des Exsudates<br />
Karnifikation und später Lungensklerose = faserreiche Narbe<br />
Ursachen von Pneumonien: Bakterien (Mykoplasmen, Chlamydien), Pilze, Viren, Parasiten,<br />
Reizgase, aspiriertes Fremdmaterial<br />
- 16 -
Ursachen fibrinöser Pneumonien:<br />
Rind: Lungenseuche (Pleuropneumonia infectiosa) Mycoplasma mycoides subsp.<br />
mycoides<br />
Primäre Pasteurellose (Transportpneumonie = Shipping fever)<br />
Sekundäre Pasteurellose (nach Virusinfektion)<br />
P. multocida Typ A & P. haemolytica<br />
Pathogenese<br />
Schwein: kontagiöse Pleuropneumonie � Actinobacillus pleuropneumoniae<br />
Prim. Pasteurellose (Schweineseuche)<br />
Sek. Pasteurellose � P. multocida Typ A & Typ D (bei KSP)<br />
Ziege/ Schaf: Ansteckende Lungen-/ Brustfellentzündung (Pleuropneumonia<br />
contagiosa caprae) � Mycoplasma mycoides<br />
Prim. Pasteurellose � P. haemolytica (Lämmer)<br />
Sek. Pasteurellose � P. multocida<br />
Hund: Urämische Pneumonie � Einwirkung urämischer Toxine &<br />
Ausscheidung harnpflichtiger Substanzen über die Lunge (nicht infektiös !)<br />
� metastatische Verkalkungen (Bimssteinlunge)<br />
Katze: Pleuropneumonie � Bordetella bronchiseptica, P. multocida<br />
Multizentrische Entzündung der Bronchiolen eines Lobus<br />
↓<br />
Peri- und Endobronchiale Ausbreitung<br />
↓ ↓<br />
Peribr. Ausbreitung erfasst Endobr. Ausbreitung erfasst<br />
Lymphgefäße zugehörige Acini (durch Aspiration)<br />
↓ ↓<br />
lymphogene Ausbreitung Acini füllen sich mit Exsudat & konfluieren<br />
↓ ↓<br />
Lymphangiektasen & acinöse Pneumonie, konfluierende = lobuläre Pneumonie<br />
Thrombosen entstehen<br />
Differentialdiagnose<br />
Zeitlich unterschiedlichem Ablauf im selben Lungenlappen<br />
↓<br />
Nebeneinander von normalem & entzündlich verändertem Gewebe<br />
↓<br />
bunte Marmorierung (Rind & Schwein)<br />
Mastitis gravis � Differenzierung durch: Bronchialknorpel (Lunge)<br />
Pleura (Lunge)<br />
Flimmerepithel (Lunge)<br />
Fettzellen (Milchdrüse)<br />
Milchsteinchen (Milchdrüse)<br />
- 17 -
Blutaspiration � Bei Anschoppung/ roter Hepatisation<br />
Nr. 16) Katarrhalisch-eitrige Bronchopneumonie, Schwein, HE<br />
Organdiagnose<br />
Lunge � siehe Präparat Nr. 13)<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: viele Zellen, in Bronchien befindet sich Exsudat<br />
zu Beginn � seröses Exsudat mit wenig Zellen in Alveolen<br />
↓<br />
Exsudat wird eitrig (zahlreiche Granulozyten)<br />
Bei starker Desquamation (Schuppung) von Alveolarepithelien spricht man auch von<br />
� Desquamativ- oder Alveolarzellpneumonie<br />
Ätiologie<br />
Meist bakterielle Sekundärinfektion nach prim. Virusinfektion<br />
Ursache: Streptokokken & Staphylokokken<br />
Bordetella bronchiseptica<br />
Actinomyces pyogenes<br />
E. coli & Salmonellen<br />
Pasteurellen<br />
Schwein: Bordetella bronchiseptica (Muttersau auf Saugferkel)<br />
Rind: Streptococcus pneumoniae (Anthropozoonose = Mensch auf Kalb)<br />
Pferd: Rhodococcus equi (ein bis drei Monate alte Fohlen)<br />
Pathogenese<br />
Multiple, rötliche Herde (zentral eitrig oder nekrotisch)<br />
� Zwischen <strong>den</strong> Her<strong>den</strong> liegt normales, atelektatisches oder emphysematöses Lungengewebe<br />
� Konfluieren der Herde<br />
- 18 -
Gegensatz zur fibrinösen P. � keine Beteiligung der Pleura; ggr. Volumenzunahme (Interstitium<br />
quillt nicht auf); keine Marmorierung; keine thrombosierten<br />
Lymphgefäße<br />
katarrhalisch-eitrige Bronchopneumonien können vollst. ausheilen<br />
Komplikationen: Abszessbildung, Atelektasen, Fibrosen & evtl. Gangräne durch<br />
Fäulnisbakterien<br />
Differentialdiagnose<br />
katarrhalisch - eitrige Mastitis<br />
Nr. 17) Interstitielle Pneumonie, Staupe, Hund, HE<br />
Entzündung des Interstitiums<br />
Meist handelt es sich um eine atypische Pneumonie (nicht bakteriell ausgelöst)<br />
Das Exsudat befindet sich ausschließlich im Interstitium (v.a. im interalveolärem Interstitium)<br />
Vorgang nicht eitrig (keine Granulozyten)<br />
Organdiagnose<br />
Lunge � siehe Präparat Nr. 13)<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lungenstruktur ist gut zu erkennen<br />
um Bronchien befin<strong>den</strong> sich dichte Areale<br />
Alveolarsepten verdickt, in jedem Septum verläuft<br />
Kapillarlage<br />
Kerne der Entz.zellen sind rund & deutlich begrenzt<br />
(=keine Granulozyten)<br />
Kennzeichen der interstitiellen Pneumonie: Ödem<br />
interstitielles Emphysem<br />
hyaline Membranen<br />
lymphohistiozytäre & eosinophile Infiltrate<br />
Fibrose der Alveolarsepten<br />
obliterierende Bronchiolitis<br />
Außerdem: Staupe = Paramyxovirusinfektion (Suche nach EK im Bronchialepithel)<br />
Meist kommt es zu bakteriellen (eitrigen) Sek.infektionen<br />
d.h. man muß in nicht eitrigen Bezirken nach Anzeichen einer interstitiellen<br />
Pneumonie suchen<br />
Ätiologie<br />
Meist aerogene Virusinfektionen; (Chlamydien, Mykoplasmen & Parasiten kommen auch in Betracht)<br />
- 19 -
Häufig überlagern bakterielle Sekundärinfektionen das Bild der interstitiellen Pneumonie � Histo<br />
Rind: - Enzootische Bronchopneumonie (Rindergrippe); Bovine Respiratory Syncytial Virus<br />
(Subfamilie Pneumovirinae, Familie Paramyxoviridae), Parainfluenza-3-V., A<strong>den</strong>o-/<br />
Reoviren<br />
- atypische Interstitielle Pneumonie (Stallrinder im Spätherbst); DD=Weideemphysem<br />
Hauptursache: Allergie gegen Sporen thermophiler Aktinomyzeten (Microplyspora<br />
faeni) � verdorbenes Heu = Überempfindlichkeit Typ III<br />
Mensch: Farmerlunge, Taubenzüchterlunge, Pilzzüchterlunge = Überempfindlichkeit Typ III<br />
Pferd: - equine Influenza (Hoppegartener Husten); Orthomyxovirus Influenza A Equi 1<br />
Zusammen mit Streptokokken wird daraus die bösartige Form (Brüsseler Krankheit)<br />
- equine Rhinopneumonitis; equines Herpesvirus 1 oder 4 (milder Katarrh, Abort)<br />
Schwein: - enzootische Pneumonie; Mycoplasma hyopneumoniae (suipneumoniae)<br />
- Schweineinfluenza; Typ A-Influenzaviren (in Kombi mit Haemophilus sui<br />
Her<strong>den</strong>erkrankungen)<br />
Schaf: Maedi; Lentivirus, Familie Retroviridae<br />
Hund: Staupe (Canine Distemper); Staupevirus (Genus Morbillivirus, Fam. Paramyxoviridae)<br />
Zwingerhusten; Parainfluenza 2-Virus, can. Reoviren Typ 1, 2 und 3, can. Herpesvirus<br />
Typ 3; Bordetella bronchiseptica<br />
Katze: Katzenpneumonitis; Chlamydia psittaci (Sek.infektion mit Pasteurella multocida,<br />
Bordetella bronchiseptica führt zu häufigen Todesfällen)<br />
Pathogenese<br />
Unterscheidung zwischen peribronchialer, intralobulärer & interlobulärer interstitieller Pneumonie<br />
interlobuläre i. P. � selten<br />
Entwickelt sich durch Übergreifen pleuritischer Prozesse auf die<br />
Lungensepten<br />
entz. Infiltrate = Lymphozyten, Histiozyten & Plasmazellen<br />
peribronchiale i. P. � es entstehen dicke Mäntel um die Bronchien (Peribronchitis nodosa; Cuffing<br />
pneumonia)<br />
interlobuläre i. P. � Verdickung der Alveolarsepten<br />
Proliferation & Desquamation von Alveolarepithelien<br />
(Desquamativpneumonie)<br />
Interstitielle Pneumonien heilen vollständig aus, oder wer<strong>den</strong> organisiert.<br />
Differentialdiagnose<br />
Weideemphysem des Rindes � Tritt auf bei erwachsenen Rindern kurze Zeit nach Verbringen<br />
von kargen auf saftige Wei<strong>den</strong> (Herbst)<br />
Symptome: akute Stauungslunge, Lungenödem<br />
diffuses interstitielles Emphysem<br />
hyaline Membranen<br />
mononukleäre interstitielle Infiltrate<br />
Hyperplasie der Typ II-Pneumozyten<br />
Auslöser: Brassica-Arten<br />
- 20 -
Nr. 18) Miliar-Tuberkulose, Lunge, Rind, HE<br />
„Milium“ heißt Hirsekorn und beschreibt die Größe der Herde<br />
Rapsvergiftung<br />
verschimmelte Süßkartoffeln<br />
L-Tryptophan<br />
Die Tuberkulose zählt zusammen mit Rotz, Aktinomykose, Pneumokoniose und <strong>den</strong> mykotischen<br />
Pneumonien zu <strong>den</strong> Granulomatösen Pneumonien.<br />
Die Granulome entstehen durch konfluierende Herde<br />
Je nach Tierart, Art des Erregers und Reaktionslage des Organismus entstehen<br />
vorwiegend exsudative granulomatöse Entzündungen<br />
vorwiegend proliferative granulomatöse Entzündungen<br />
Organdiagnose<br />
Lunge � siehe Präparat Nr. 13<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Ätiologie<br />
Die veränderten Bereiche sind homogen rosa<br />
Über die Lunge verteilt befin<strong>den</strong> sich kleine<br />
Herde<br />
Im Zentrum Nekrose & eingelagertes Bgw<br />
dystrophile Verkalkungen = blaue Herde<br />
kleine Herde mit Zellen durchsetzt<br />
große Herde mit zentr. N. & Verkalkung<br />
perlschnurartiger Kernreigen =<br />
Langhans’sche Riesenzelle<br />
Schuhsohlenförmiger Kern =<br />
Epitheloidzellen (=aktivierte<br />
Makrophagen)<br />
Um diese Zellen ein Saum aus Fibroblasten<br />
- 21 -
Mensch: Mycobacterium Tuberculosis<br />
Säugetier: Mycobacterium bovis<br />
Vögel: Mycobacterium avium<br />
Erreger ist nicht streng wirtsspezifisch!<br />
Pathogenese<br />
an Eintrittstelle (Lunge, Darm) entstehen Veränderungen<br />
Primärinfekt (Primärherd)<br />
↓<br />
Von dort gelangen Bakterien in Makrophagen phagozytiert zu Lymphknoten<br />
Ersinfektions- ↓<br />
periode es entsteht der Primärkomplex<br />
(unvollständiger Prim.komplex, wenn Primärherd schnell wieder abheilt)<br />
↓<br />
Aus prim. Her<strong>den</strong> können Bakterien in Blutbahn gelangen<br />
= Frühgeneralisation<br />
↓<br />
Periode der postprimären Ausbreitung des tuberkulösen Prozesses<br />
Prozesse entlang vorgebildeter Kanalwege (nur beim Rind)<br />
↓<br />
Spätgeneralisation<br />
vorwiegend exsudative Entzündung: starke Ausschwitzung eines eiweißreichen Exsudats<br />
Koagulationsnekrose des betroffenen Gebietes<br />
↓<br />
Nimmt strukturlose, käsige Beschaffenheit an<br />
(= prim. Verkäsung)<br />
↓<br />
um Nekroseherd sammeln sich Epitheloidzellen &<br />
mehrkernige Riesenzellen vom Langhans-Typ<br />
(Nekrosen auf Grund Toxinwirkung des Bakterien)<br />
� durch geeignete Färbung (Ziehl-Neelsen) kann man<br />
Tuberkelbakterien nachweisen<br />
Anschließend PCR zur genauen Typisierung<br />
vorwiegend proliferative Entzündung: Am Ort der Erregereinwirkung treten Epitheloidzellen &<br />
Riesenzellen auf und bil<strong>den</strong> herdförmiges Infiltrat<br />
Infilt. von Makrophagen & Proliferation von Fibroblasten<br />
↓<br />
Entzündungsgewebe kann herdförmig begrenzt bleiben,<br />
sek. oder infiltrativ das Gewebe durchsetzen<br />
Verkäsung ↓<br />
Schadwirkung der Erreger & Gefäßlosigkeit des Gewebes führt zu Nekrose<br />
↓<br />
bei günstigem Krankheitsverlauf bildet sich in Peripherie ein<br />
faserreiches Granulationsgewebe (Abgrenzung des tuberkulösen Herdes)<br />
Häufig auch dystrophische Verkalkung der zentralen nekrotischen Gebiete<br />
- 22 -
� Aber auch Tod durch Verbluten, bei Zerstörung von Arterien durch Quetschung/<br />
Bakterientoxine<br />
Speziell Rind: prim Herde sind vorwiegend an bestbeatmeten Lungenbezirken zu fin<strong>den</strong><br />
(subpleural am dorsalen Rand der Hauptlappen)<br />
Differentialdiagnose<br />
Lungentuberkel sind zentral verkäst und verkalkt; in Peripherie liegen miliare<br />
Resorptionsknötchen<br />
Im Verlauf der Frühgeneralisation können 4 Formen entstehen:<br />
1) akute Miliartuberkulose<br />
2) protrahierte Generalisation<br />
3) lobulär-infiltrierende Tuberkulose<br />
4) galoppierende azinöse und lobulär verkäsende Pneumonie<br />
1) Tuberkel in besonders schlecht ventilierten Bezirken<br />
zahlreiche miliare Knötchen, anfangs glasig, später trüb<br />
exsudative und proliferative Prozesse<br />
2) weniger und unterschiedlich alte Tuberkel<br />
3) keine Verkäsung; weiße derbe speckige Herde zwischen normalen &<br />
emphysematösen Lungenläppchen<br />
4) zahlreiche, speckige, teilweise verkäsende Tuberkel<br />
Tumor/ Leukose<br />
Abszesse<br />
Echinococcose Knotenbildung<br />
Lungenmykose<br />
Maedi<br />
Aber makroskopisch sind die Schnittflächen sehr verschie<strong>den</strong><br />
Beweis der Tuberkulose mit Ziehl-Neelsen-Färbung und damit Nachweis der säurefesten Stäbchen<br />
Nr. 20) Lungenaspergillose, Kalb oder Gans, Grocott-HE<br />
Grocott-HE –Färbung: Versilberungsfärbung <strong>für</strong> Pilze; Zellwände der Pilze wer<strong>den</strong> braun-grau<br />
Einteilung der Mykosen: Dermatomykosen<br />
Dermatomykosen mit subkutaner Manifestation<br />
Systemmykosen<br />
Einteilung der Systemmykosen: nach Pathogenität<br />
obligat path. Pilze (Tropen und Subtropen)<br />
- 23 -
Blastomykose(Lungenerkrankung)<br />
Organdiagnose<br />
Lunge: siehe Präparat Nr. 13<br />
- nordamerikanische<br />
- Histoplasmose (Lungenknoten; DD Tuberkulose)<br />
- Kokzidiomykose (Lungenknoten; DD Tuberkulose)<br />
fakultativ path. Pilze<br />
- Aspergillose<br />
- Pneumocytis carinii (derzeit als Pilz eingeordnet)<br />
- Penizilliose, Candidamykose, Mukormykose<br />
Gans, wenn sich kernhaltige Erys fin<strong>den</strong> (TIP: die Gänsepräparate sind älter, also meist auch blasser)<br />
Makroskopisch: miliare, grautrübe Herde<br />
Herde konfluieren, wer<strong>den</strong> zu tumorartigen Knoten<br />
Mykotische Herde sind im Anschnitt deutlich trocken<br />
Histopathologische Diagnose<br />
wenige Entzündungszellen<br />
Nekrosen, Ödeme und Fibrinansammlungen<br />
Der Pilz springt dich an und beißt dich ;-)<br />
evtl. Bronchiektasen: irreversible zylindrische o. sackförmige Erweiterung der Bronchien<br />
Ätiologie<br />
Erreger ist Aspergillus<br />
- septiert; an <strong>den</strong> En<strong>den</strong> Hirschgeweihartig verzweigt<br />
- Y-artige Verzweigung<br />
- Wachstum bevorzugt in Arterienwän<strong>den</strong> (hier genügend Sauerstoff)<br />
- Zentrifugale Ausbreitung beim Wachstum<br />
Pathogenese<br />
Infektion: aerogen (feuchte, überbelegte, unhygienische Ställe)<br />
↓<br />
Besiedelung der Bronchien/ Bronchiolen<br />
↓<br />
Ausscheidung von Toxinen<br />
↓<br />
Nekrosen<br />
↓<br />
Kapillaren wer<strong>den</strong> durchlässig<br />
↓<br />
- 24 -
Differentialdiagnose<br />
Serum/ Plasma tritt aus (Ödem), Fibrinbildung,<br />
neutrophile Granulozyten & Makrophagen (wenige Entz.zellen)<br />
↓<br />
granulomatöse Entzündung<br />
Tuberkulose<br />
Histoplasmose<br />
Kokzidiomykose (� Unterscheidung der Pilze nur über kulturelle Anzüchtung)<br />
Tumore und granulomatöse Entzündungen sind IMMER DD<br />
Nr. 22) Lungenwurm-Brutknoten, Lunge, Schaf, HE<br />
I. Lungenparasiten im engeren Sinn<br />
1. Parasiten im Bronchialbaum<br />
Rind � Dictyocaulus viviparus (gr. Lungenwurm)<br />
Schaf � Dictyocaulus filaria (gr. Lungenwurm)<br />
kl. Lungenwürmer<br />
<strong>2.</strong> Parasiten in Lungenstrombahn<br />
Angiostrongylus vasorum (Flfr.: A.pulmonalis, re. Herzkammer)<br />
Dirofilaria immitis (Flfr.: Thrombosen der A. pulmonalis)<br />
II. Passanten<br />
1. Obligate<br />
Wdk.: Strongyloides papillosus<br />
Pferd: Strongyloides westeri<br />
Hund: Toxocara canis<br />
<strong>2.</strong> Fakultative (sind schlechter an Wirt angepasst und verursachen stärkere Entzündungen)<br />
III. andere Parasiten<br />
Lebensraum ist weder ausschließlich noch regelmäßig die Lunge<br />
Toxoplasma gondii (miliare Lungennekrosen beim Hund)<br />
Fasciola hepatica (Zystenartige braune Herde beim Wdk)<br />
Echinococcus granulosus (Schaf/ Wdk � Veränderungen wie in Leber)<br />
Organdiagnose<br />
Lunge: siehe Präparat Nr. 13)<br />
Makroskopisch: Die Brutknoten sind erhaben und hell, mit hellem Rand (=Emphysem)<br />
� durch Verlegung der Bronchien kommt es zu alveolärem<br />
Lungenemphysem wegen des erhöhten<br />
Restluftgehalts<br />
Histopathologische Diagnose<br />
- 25 -
Lupe: man sieht normales Lungengewebe, daran Emphysem und daran die Brutknoten<br />
- große, zellreiche und luftarme Bereiche<br />
- Hypertrophie der glatten Muskulatur der Bronchien & A. pulmonalis<br />
- Wurmlarven besitzen Cuticula, sind oft spiralig eingewickelt<br />
- sporulierte Eier in allen Entwicklungsstadien vorhan<strong>den</strong><br />
- chronische Entzündung: Lymphozyten<br />
Plasmazellen<br />
Makrophagen<br />
eos./ neutr. Granulozyten<br />
- Randemphysem ist deutlich ausgebildet<br />
Ätiologie<br />
kleine Lungenwürmer: Protostrongylus rufescens/ brevispiculum<br />
Brutknoten sind gelblich-weiß bis braun-grau<br />
über Lunge verteilt<br />
keine Wurmknötchen (= Bohrgänge der Larve)<br />
Muellerius capillaris<br />
bei älteren Schafen<br />
Brutknoten sind rötlich-grau<br />
v.a. in Zwerchfellappen; unscharf begrenzt<br />
Cystocaulus ocreatus<br />
gelb-braun bis braun-rote Brutknoten<br />
v.a. in Zwerchfelllappen; erreichen Walnussgröße<br />
Wurmknötchen (zystische Struktur) enthalten lebende reife Würmer<br />
Neostrongylus linearis (selten)<br />
� große Lungenwürmer befin<strong>den</strong> sich nur in <strong>den</strong> Bronchien und verursachen keine Brutknoten!<br />
Pathogenese<br />
Infektion durch Aufnahme des Zwischenwirtes (Schnecke)<br />
o. durch Aufnahme ausgewanderter Larven III<br />
↓<br />
Auswandern der Larven aus dem Dickdarm in die Lymphbahn<br />
↓<br />
Wanderung zu Mesenteriallymphknoten<br />
↓<br />
Häutung zur Larve IV in <strong>den</strong> Lnn<br />
↓<br />
als L4 über Ductus thoracicus/ A. pulmonalis in die Lunge<br />
↓<br />
- 26 -
Differentialdiagnose<br />
erreichen der Geschlechtsreife in <strong>den</strong> Brutknoten/ <strong>den</strong> Bronchien<br />
↓<br />
Weibchen legen Eier ab,<br />
aus <strong>den</strong>en die L1 schlüpft<br />
↓<br />
L1 wird hoch gehustet, abgeschluckt und gelangt mit dem Kot ins Freie<br />
Herdförmige, eitrige Bronchopneumonie<br />
Nr. 23) Wurmknötchen, Lunge, Pferd, HE<br />
Wurmknoten � Bohrgänge der Larven (Passanten) mit nachfolgender entzündlicher Reaktion<br />
≠ Brutknoten! (keine Vermehrung, d.h. KEINE EIER!)<br />
Organdiagnose<br />
Lunge: siehe Präparat Nr. 13)<br />
Histopathologische Diagnose<br />
von links nach rechts: unverändertes Gewebe<br />
Epitheloidzellen<br />
eosinophile Granulozyten<br />
Wurmlarve/ Bohrgang<br />
Wurmknoten = weitaus kleiner als Brutknoten (miliar)<br />
teilweise roter Randsaum<br />
„parasitäres Granulom“ � nicht bakteriell bedingt & keine Nekrosen<br />
frische Herde = Blutungen & Detritus im Inneren<br />
viele eosinophile Granulozyten<br />
viele Larvenanschnitte<br />
Makrophagen sind radiär angeordnet<br />
danach folgen Plasmazellen, Granulationsgewebe und eine Bindegewebskapsel<br />
Makrophagen verschmelzen häufig zu mehrkernigen Riesenzellen<br />
� wenn etwas phagozytiert wer<strong>den</strong> soll, das nicht aufgenommen<br />
wer<strong>den</strong> kann<br />
� wenn etwas Aufgenommenes nicht abgebaut wer<strong>den</strong> kann<br />
- 27 -
graue Herde = chronisch; nur noch die entzündliche Reaktion, ohne lebende Larve<br />
Parascaris equorum: Blutungen und miliare, anfänglich grau-glasige später verkalkte Wurmknoten<br />
(= Chalikosis)<br />
Ätiologie<br />
Erreger: Parascaris equorum<br />
Strongyloides westeri<br />
Dictyocaulus (sehr selten)<br />
Überall wo Nemato<strong>den</strong>larven wandern können Wurmknoten entstehen, nicht nur in der Lunge.<br />
Pathogenese<br />
Parascaris equorum: orale Aufnahme von Eiern mit L2<br />
↓<br />
lymphohämatogene Larvenwanderung in Lunge<br />
↓<br />
Entwicklung zur L3; über Trachea, Oesophagus in <strong>den</strong> Darm<br />
� gelangen die Larven über Vv. pulmonales in gr. Kreislauf verursachen sie<br />
Wurmknoten in anderen Organen<br />
Strongyloides westeri: v.a. bei Jungtieren<br />
L3 bohrt sich durch die Haut<br />
↓<br />
lymphohämatogene Wanderung in Lunge<br />
↓ ↓<br />
junge Tiere: durchbohren ältere Tiere: kein Durchbohren<br />
der Alveolen der Alveolen<br />
↓ ↓<br />
Trachea, Oesophagus, Darm Durchbohren der Gefäße<br />
↓ ↓<br />
Erlangen der Geschlechtsreife über gr. Kreislauf ins Euter<br />
im Dünndarm � galaktogene Infektionen<br />
Differentialdiagnose<br />
Befall mit Cystocaulus ocreatus oder fakultativen Passanten<br />
Verdauungsorgane<br />
Nr. 25) Parvovirusenteritis und normales Jejunum, Hund, HE<br />
Organdiagnose<br />
Darm: Bauprinzip<br />
Schleimhaut (Tunica mucosa)<br />
Schleimhautepithel (Epithelium mucosae) =einschicht., hochprism., Mikrovilli<br />
Schleimhautbindegewebe (Lamina propria mucosae)<br />
Schleimhautmuskulatur (Lamina muscularis mucosae)<br />
Unterschleimhaut (Tela submucosa)<br />
- 28 -
Muskulatur (Tunica muscularis)<br />
Kreismuskelschicht (Stratum circulare)<br />
Längsmuskelschicht (Stratum longitudinale)<br />
Bindegewebe (Tunica adventitia)<br />
Serosa (Tunica serosa)<br />
Serosabindegewebe (Lamina propria serosae)<br />
Serosaepithel (Epithelium serosae, Mesothelium)<br />
Der Dünndarm ist mit Schleimhautzotten (Villi intestinales) ausgestattet (1mm lang, 0,1 mm dick)<br />
Histopathologische Diagnose<br />
makr.: Zwei längliche Stränge auf dem Objektträger<br />
(„Das erkennt sogar der Dödel!“ Zitat Köhler)<br />
unveränderter Darm: Zotten fein und lang ausgezogen<br />
veränderter Darm: - Schwund des Kryptenepithels, Kryptendilatation, Kryptenschwund<br />
- Zottenepithel abgelöst, Zotten sind verkürzt<br />
- dilatierte, mit nekrotischem Epithel ausgekleidete & mit Detritus gefüllte<br />
Drüsenschläuche<br />
- Intranukleäre Einschlüsse in Darmepithel, Makrophagen, myelo. Zellen<br />
- Entzündl. Infiltrate (mononukleäre Zellen) in Propria<br />
- Bakterien in der Schleimhaut (Sek.infektion)<br />
- evtl. Regenerationsvorgänge im Kryptenbereich<br />
- Sinushyperämie (= rotes KM) und gleichzeitig<br />
- myeloische Zellen verschwun<strong>den</strong> (= leeres KM)<br />
- Fibrinausfällung und Nekrosen der Megakaryozyten<br />
- Lymphozytendepletion und Follikelnekrosen in Peyerschen Plaques<br />
Ätiologie<br />
Canines Parvovirus 2 (neue antigene Typen sind CPV2a & CP2b; replizieren auch in der Katze)<br />
Pathogenese<br />
oropharyngeale Infektion<br />
↓<br />
CPV2 vermehrt sich in Lymphoblasten der<br />
Mesenterial- und Retropharyngeallymphknoten sowie der Tonsillen<br />
↓<br />
Virämie<br />
↓<br />
weitere Vermehrung in anderen lymphatischen Organen<br />
- 29 -
(Thymus, Milz, Lymphknoten, Peyersche Platten)<br />
↓<br />
weitere Vermehrung in intermitotischen Zellen, da sie kein Gen <strong>für</strong><br />
eigene DNA-Polymerase besitzen<br />
(hämopoetisches Gewebe, KM, Darm)<br />
↓<br />
Zerstörung der Kryptenzellen durch Virusvermehrung<br />
↓<br />
Nachschub fehlt, Epithelersatz bleibt aus<br />
↓<br />
Zotten wer<strong>den</strong> nackt<br />
↓<br />
Toxine aus dem Darminhalt wirken auf ungeschützte Zotten<br />
↓<br />
Atrophie/ Toxinresorption<br />
↓<br />
evtl. Sekundärinfektion (Campylobacter-Arten, E. coli)<br />
= Septikämie<br />
kardiale Form: bei Welpen; plötzlicher Tod<br />
enterale Form: alle Altersstufen<br />
Mattigkeit, Fieber, Erbrechen<br />
akute katarrhalische bis fibrinös-hämorrhagische Gastroenteritis<br />
Rötung & Verdickung der Darmschleimhaut (narbenlederartiges Relief)<br />
Peyersche Platten sind auf Grund Lymphozytendepletion eingesunken<br />
Darmränder stehen wegen Fibrinausschwitzung Dachrinnenartig hoch<br />
Subserosa ist hyperämisch<br />
Vermehrung im KM: Leukopenie & Lymphopenie<br />
felines PV: cerebelläre Hypoplasie<br />
cerebelläre Ataxie<br />
Differentialdiagnose<br />
Darmveränderung durch radioaktive Bestrahlung (Immunhistologie)<br />
Nr. 27) Paratuberkulose, Darm, Schaf, Ziehl-Neelsen<br />
� Johnesche Krankheit (Granulomatöse Darmentzündung)<br />
Ziehl-Neelsen: Darstellung säurefester Stäbchenbakterien<br />
Mykobakterien als kurze, leuchtend rote, intrazelluläre Stäbchen (in Makrophagen)<br />
Grundfarbe des Präparates ist blau<br />
Alle Mykobakterien wer<strong>den</strong> so angefärbt, deshalb ist Artdiagnose nicht möglich.<br />
Beim Rind muss es sich aber um Paratuberkulose handeln<br />
Organdiagnose<br />
Darm: siehe Präparat Nr. 25)<br />
- 30 -
Histopathologische Diagnose<br />
hellrosa Punkte = Mycobacterien<br />
- Zotten sind plump und zur Spitze hin kolbenartig aufgetrieben<br />
- zahlreiche Makrophagen (Epitheloidzellen), teils nestartig<br />
� zuerst in Zottenspitzen und Propria<br />
� später in Submukosa, Muskularis und Subserosa<br />
- Darmeigendrüsen druckatrophisch zugrunde gegangen<br />
- Außerdem Plasmazellen, Lymphozyten, Langhans’sche Riesenzellen<br />
Ätiologie<br />
Mycobacterium avium subspecies paratuberculosis<br />
Übertragung: diaplazentar<br />
Milch, Sperma, Urin<br />
Pathogenese<br />
Darmmukosa ist voll mit Makrophagen, dadurch<br />
kommt es zu verdickten Falten, die nicht<br />
verstreichbar sind<br />
orale Aufnahme<br />
↓<br />
Durchdringen der Mukosa<br />
↓<br />
Vermehrung in Makrophagen<br />
v.a. darmassoziiertes lymphatisches Gewebe von Jejunum & Ileum<br />
↓ ↓ ↓<br />
Überwin<strong>den</strong> der Infektion latente Infektion Erkrankung<br />
↓ ↓<br />
lymphogene & hämatogene Verschleppung der Bakterien in<br />
Mesenteriallymphknoten & verschie<strong>den</strong>e Organe<br />
Ileum, Jejunum & Dickdarm nehmen hirnwindungsartiges Aussehen an (Verdickungen der SH)<br />
evtl. metastatische Verkalkungen in Aorta, V. cava und Endokard<br />
Die Erkrankung tritt meist unter Belastung auf (erste Trächtigkeit, erste Geburt)<br />
Differentialdiagnose<br />
Andere durch Mykobakterium hervorgerufene Krankheiten<br />
M. bovis<br />
M. intracellularis<br />
- 31 -
Leber<br />
Verteilungsmuster von Leberschä<strong>den</strong><br />
Leberveränderungen mit Zubildung von Kollagenfasern<br />
Fokale Nekrosen (Herdnekrosen)<br />
nehmen keine Rücksicht auf Läppchenstruktur<br />
Richten sich an der Läppchenstruktur aus<br />
Betreffen große <strong>Teil</strong>e oder die gesamte Leber (diffuse Veränderung)<br />
� Hypoxämie/ Toxine führen zur Koagulationsnekrose<br />
Einteilung der zonalen Nekrose nach der räumlichen Anordnung:<br />
peripherlobuläre N.<br />
intermediäre N.<br />
panlobuläre N. � Kollaps der Läppchen<br />
(=Piecemeal Necrosis)<br />
Apoptotischer Zelltod in Läppchenperipherie beginnend<br />
- 32 -
Funktion der Hepatozyten: Synthese & Sekretion (Proteine aus AS)<br />
Synthese, Speicherung und Sekretion (Glykogen aus Glucose)<br />
Metabolisierung und Entgiftung (Steroide, Pharmaka)<br />
Leber: Kapsel (Tunica fibrosa, Glisson-Kapsel)<br />
Bau der<br />
- 33 -
Kollagenfaserbündel (TypI) ziehen als interstitielles Gewebe ins Parenchym<br />
Gefäße, Gallengänge & Nerven in interstitiellem Gewebe<br />
Lobuli hepatici: - periportale Läppchen (Lebertrias ist Mitte & Zentralvene Außen)<br />
- polygonale Läppchen (Zentralvene ist Mitte & Trias Außen)<br />
Nr. 29) Ikterus, Leber, Fohlen, Hämatoxilin<br />
Organdiagnose<br />
Bau der Leber: - Kapsel (Tunica fibrosa, Glisson-<br />
Kapsel)<br />
- Kollagenfaserbündel (TypI) ziehen<br />
als interstitielles Gewebe ins<br />
Parenchym<br />
- Gefäße, Gallengänge & Nerven in<br />
interstitiellem Gewebe<br />
- Lobuli hepatici:<br />
- periportale Läppchen<br />
(Lebertrias ist Mitte &<br />
Zentralvene Außen)<br />
- polygonale Läppchen<br />
(Zentralvene ist Mitte &<br />
Trias Außen)<br />
Einteilung in Zonen (s. S. 33): Zona peripheralis (Zone 1)<br />
sauerstoffreich (A. hepatica) & nährstoffreich (V. portae)<br />
im Bereich der Trias<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Zona intermedia (Zone 2)<br />
Zwischen 1 und 3<br />
makroskopisch ist das Präparat sehr hell und grau<br />
Zona centralis (Zone 3)<br />
perivenöse Zone um die Zentralvene<br />
Lupe: Lebergewebe, Trias fällt auf 40x: längliche braungrüne Flecken = Galle<br />
Gewebe unauffällig runde braungelbe Flecken = Hämosiderin<br />
Dichte Kerne sind Leukozyten, die im Sinus liegen<br />
Rötliche, trübe, schlecht konturierte Niederschläge zwischen <strong>den</strong> Hepatocyten = Gallezylinder in<br />
Gallekapillaren � gestaute Galle besteht zum Großteil aus Bilirubin<br />
- 34 -
Hämosiderin: dem Ferritin verwandtes Protein mit Eisenspeicherfunktion<br />
Abklärung durch Färbung mit Berliner Blau (Eisen blau)<br />
Hämosiderin findet sich bei Blutabbau besonders in Kupfferzellen<br />
stark granuläres Material in Zellen, das beim Fokussieren aufleuchtet<br />
Lipofuszin: lysosomales Abbauprodukt von Lipoproteinen zelleigener Organellen (Alterspigment)<br />
Anhäufung von Abbauprodukten der Zellmembran<br />
feines Granulat in Zellen<br />
Hämosiderin & Lipofuszin liegen intrazellulär, Hämoglobin liegt extrazellulär<br />
Ätiologie<br />
Hyperbilirubinämie � Vermehrtes Auftreten von Bilirubin im Blut<br />
Ikterus � Ablagerung von Bilirubin im Gewebe wegen hgr./ länger andauernder<br />
Hyperbilirubinämie<br />
Erkennung des Ikterus an Kollagenfaserreichen Geweben (Sklera, Gefäßmedia, Sehnen)<br />
Cholestase � Stau/ Ansammlung von Galle in Gallengängen, Canaliculi & Hepatozyten<br />
Cholämie � Übertritt von Galle ins Blut<br />
Pathogenese<br />
Einteilung anhand Lokalisation in prä-, intra- und posthepatischen Ikterus<br />
prähepatischer Ikterus<br />
(Superfunktionsikterus, hämolytischer Ikterus)<br />
vermehrter Anfall von Bilirubin I im Rahmen eines hämolytischen<br />
Erythrocytenzerfalls, der die Aufnahme-, Konjugations, und Exkretionskapazität der<br />
Hepatozyten überschreitet<br />
Ursache der Hämolyse: Bakterientoxine, Viren, pflanzl./ chem. Toxine,<br />
immunpathologische Reaktionen<br />
� Ikterus haemolyticus neonatorum<br />
Leber zeigt keine Farbveränderung; Galle ist dunkel wegen hohem Bilirubin II- Gehalt<br />
Intrahepatischer Ikterus<br />
(hepatotoxischer I.)<br />
hgr. Funktionseinschränkung der Leberzellen durch:<br />
- 35 -
Stoffwechselstörungen<br />
Entzündungen / Nekrosen der Leber<br />
Beeinträchtigt ist Konjugation, Aufnahme & Exkretion von Bilirubin<br />
Außerdem evtl. Cholämie, wegen Rückfluss von Galle aus Canaliculi in <strong>den</strong><br />
Intrazellularraum<br />
Verfärbung der Leber (grün-gelblich)<br />
Ablagerung von Gallenfarbstoff in <strong>den</strong> Kupffer-Zellen<br />
posthepatischer Ikterus<br />
(Stauungsikterus)<br />
Behinderung des Galleflusses (Konkremente, Entzündung, Parasiten, Tumore)<br />
Differentialdiagnose<br />
Cholestase führt zu Hepatozytenschädigung und Cholämie<br />
Bilirubin II vermehrt im Blut; Harn ist deutlich Eingefärbt<br />
Tumore der Hautduftdrüsen des Hundes enthalten Zellen, die wie Hepatozyten aussehen<br />
Intra-/ posthepatischer Ikterus ist unwahrscheinlich, wenn die Leber mikroskopisch unverändert<br />
erscheint.<br />
Nr. 30) Stauungsleber, Schwein, HE<br />
= Kreislaufstörung (Abflussbehinderung des Blutes aus <strong>den</strong> Sinusoi<strong>den</strong>, über Zentralvenen,<br />
Sublobularvenen, V. hepatica, V. cava caudalis in rechte<br />
Herzkammer)<br />
Organdiagnose<br />
Leber: siehe Präparat Nr. 29)<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Erys in der Zentralvene viele Erys + gedrückte Leberzellen<br />
akute Stauungsleber: hgr. Blutfülle der Sinusoide im Läppchenzentrum<br />
� führt zu Druckatrophie/ Verfettung/ Nekrose der zentrolobulären<br />
Leberzellen<br />
- 36 -
Hepatozytenschwund führt zur Bildung zentraler Blutseen<br />
chronische Stauungsleber: Läppchenbezogene Zeichnung (s. unten) entspricht zentrolobulärer<br />
Blutfülle & verfetteten Hepatozyten in Läppchenperipherie<br />
Zunehmende Fibrosierung der Leber mit Fortdauer der Stauung<br />
� Fasern um Zentralvene<br />
Fasern im Disseschen Raum<br />
Ausbildung einer Basalmembran = Kapillarisierung<br />
(= Änderung des sinusoidalen Wandaufbaus)<br />
Dadurch weitere Verschlechterung der Versorgung<br />
= hgr. Leberfibrose<br />
Hier: akute/ subakute Stauungsleber � keine Fibrinauflagerungen<br />
keine Apoptosen/ Nekrosen<br />
Blutstau in Zentralvenen<br />
Lebersinusoide sind voll mit Erys (= rote Zentren)<br />
Ätiologie<br />
Stauung von Blut in der Leber wegen Rechtsherzinsuffizienz, Thrombose der V. cava, Tumoren oder<br />
Abszessen im Bereich der abführen<strong>den</strong> Venen<br />
Pathogenese<br />
akute Stauungsleber: Leber ist geschwollen, Ränder sind abgerundet<br />
Farbe ist dunkel rötlich-blau<br />
Konsistenz ist brüchig<br />
beim Anschnei<strong>den</strong> fließt Blut ab<br />
Vermehrte Bildung von Lymphe führt zu Fibrinablagerung auf<br />
Leberoberfläche und zwischen <strong>den</strong> Lappen, sowie zu blutigem<br />
Bauchhöhlenerguß<br />
chronische Stauungsleber: Leberoberfläche fein granuliert, Ränder scharfrandig o. rund<br />
Konsistenz ist verfestigt<br />
deutliche Läppchenbezogene Zeichnung (Zentrum dunkelbraun,<br />
netzförmig darum hellbraunes Lebergewebe = Muskatnußleber)<br />
Differentialdiagnose<br />
hgr. Leberfibrose kann mit Leberzirrhose verwechselt wer<strong>den</strong><br />
Verlangsamter Blutfluss führt zu Hepatozytenschädigung, besonders<br />
im Läppchenzentrum, das ohnehin schlechter mit Sauerstoff versorgt<br />
ist<br />
Die Leberzellen wer<strong>den</strong> aufgrund einer Druckatrophie schmaler<br />
Leberzelluntergang im großen Umfang kann auch Hepatitis contagiosa canis sein<br />
� Apoptosen/ Nekrosen weisen auf schwerwiegen<strong>den</strong> Prozess hin<br />
(Hier keine/ nur vereinzelte Apoptosen/ Nekrosen)<br />
Nr. 31) Amyloidose, Leber, Pferd, Kongorot<br />
- 37 -
Kongorot-Färbung: Kerne blauviolett, Amyloid im Hellfeld rosa bis rot<br />
Kongorotgefärbtes Amyloid zeigt in polarisiertem Licht apfelgrüne<br />
Doppelbrechung<br />
Gegenfärbung der Kerne mit Hämatoxilin = blau<br />
nativer Amyloidnachweis mittels Lugolscher Lösung � Blaufärbung (wie Stärker, daher Name)<br />
Organdiagnose<br />
Leber: siehe Präparat Nr. 29)<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Das Präparat sieht auf dem Objektträger blass-lila aus.<br />
In der Lupenvergrößerung ist es stark durchscheinend, mit vielen nahe beieinander liegen<strong>den</strong><br />
dunkleren Inseln.<br />
Amyloid ist als blasse, homogene Struktur im Extrazellularraum erkennbar<br />
(Dissescher Raum ist physiol. nicht erkennbar)<br />
Amyloid bewirkt Druckatrophie der Hepatozyten.<br />
Zytosol der Zellen ist ungefärbt<br />
Kerne sind blau (Heterochromatin dunkel,Euchromatin hell)<br />
Evtl. grünliche Bereiche sind Artefakte (Formalinpigment � unsorgfältige Färbung von blutreichen<br />
Organen)<br />
Ätiologie<br />
Proteinstoffwechselstörung � Ablagerung von Amyloid im Disse’schen Raum (kapillarer Spalt<br />
zwischen Leberzellen und Sinuswand)<br />
Generalisierte AA-Amyloidose =<br />
chron. entzündliche Stimulation führt zu IL-1/ -6 Produktion durch Makrophagen<br />
IL1/ -6 bewirkt Bildung von Serum-Amyloid-A durch Hepatozyten<br />
Pferd: Wiederholte Antigengabe um AK zu gewinnen (Leber produziert dauernd Amyloid A)<br />
chronische Parasitose<br />
übrige Tierarten: chronisch-infektiöse Prozesse<br />
Pathogenese<br />
Leber ist vergrößert, grau-gelblich und von derb-brüchiger Konsistenz (wie Fettleber)<br />
- 38 -
� Spontanrupturen (v.a. bei Serumpfer<strong>den</strong>) möglich<br />
Ablagerung erfolgt IMMER extrazellulär!<br />
Amyloidarten (Ausführlich im Skript allg. Patho S.54 ff)<br />
prim. Amyloid = Immunamyloid = AI-Amyloid<br />
sek. Amyloid = Klassisches Amyloid = AA-Amyloid<br />
endokrines Amyloid = APUD-Amyloid = AE-Amyloid<br />
Altersamyloid = AS-Amyloid<br />
Familiäres Amyloid = AF-Amyloid<br />
Lokales Amyloid = AL-Amyloid<br />
Differentialdiagnose<br />
Fettleber � Fettvakuolen, Siegelringzellen<br />
! Das Fettleberpräparat ist mit Scharlachrot gefärbt, folglich total rot !<br />
Nr. 32) Fettleber, Pferd, Scharlachrot<br />
Physiologisch ist Fett weder makroskopisch noch histologisch in <strong>den</strong> Hepatozyten nachweisbar.<br />
Lipide = Neutralfette & Lipoide (fettähnliche Substanzen)<br />
Neutralfette = Gemisch aus Triglyceri<strong>den</strong> (FSester des dreiwertigen Alkohols Glycerin)<br />
Lipoide = Phospholipide, Glycolipide, Cholesterin<br />
Einschleusung der Lipide in die Leberzelle über Endozytosevesikel<br />
Verwertung über Einschleusung der Spaltprodukte in <strong>den</strong> Energiestoffwechsel (β-Oxidation,<br />
Citratcyklus)<br />
Organdiagnose<br />
Leber: siehe Präparat Nr. 29)<br />
Makroskopisch ist das Organ geschwollen, sehr brüchig und gelblich verfärbt<br />
Evtl. ist Schädigung so gravierend, dass Galleproduktion sistiert<br />
� Retention der grünlichen Farbstoffe & Ikterus („Safranleber“)<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Fett muss bei der Fixation erhalten bleiben, daher verwendet man Gefriertechnik anstelle einer<br />
Paraffineinbettung. Scharlachrot färbt das Fett rot an.<br />
- 39 -
Einteilung der Leberverfettung nach verschie<strong>den</strong>en Kriterien:<br />
Ätiologie<br />
Morphologische K. : Verteilung in der Leber<br />
- diffuse Verfettung<br />
- herdförmige Verfettung<br />
Verteilung im Leberläppchen<br />
- peripherlobuläre V.<br />
- zentrolobuläre V.<br />
- intermediäre V.<br />
- panlobuläre V.<br />
Größe der Fettropfen: Kleintropfige Verfettung<br />
sehr kurzfristige Einwirkung der Noxe<br />
Großtropfige Verfettung<br />
Zusammenfließen der kleinen Tropfen über längeren<br />
Zeitraum<br />
Gemischttropfige Verfettung<br />
� Zentrum = großtropfige V.<br />
Mitte = gemischttropfige V.<br />
Peripherie = kleintropfige V.<br />
Kernmorphologie: normale Kerne<br />
einfache/ reversible Verfettung<br />
Pyknose/ Lysis<br />
degenerative/ irreversible Verfettung<br />
Akkumulation von Triglyzeri<strong>den</strong>, wenn: Angebot von Triglyzeri<strong>den</strong> Verbrauch übersteigt<br />
Angebot von T. Abgabe über VLDL übersteigt<br />
Pathogenese<br />
Ursache des Missverhältnisses:<br />
1) Nutritive/ Alimentäre Verfettung<br />
- 40 -
Vermehrter Anfall von FS/ Triglyzeri<strong>den</strong> infolge Fett-/ Kohlenhydratreicher<br />
Ernährung<br />
Hund/ Katze<br />
2) Lipomobilisationsverfettung/ Metabolische Verfettung<br />
Vermehrter Anfall von FS durch Mobilisation aus <strong>den</strong> Fettdepots; ungenügende<br />
Kohlenhydrataufnahme (Hungern/ endokrine Störung) führt zu gesteigerter Lipolyse<br />
adipöse Tiere geraten durch plötzlichen Hunger-/ Stresszustand in<br />
negative Energiebilanz<br />
↓<br />
Anstieg des Glukagon-/ Adrenalin-/ und Kortisol-Spiegels im Blut<br />
↓<br />
Lipomobilisation aus dem Depotfett<br />
↓<br />
Veresterung der FS in Leber zu Triglyzeri<strong>den</strong> � VLDL<br />
oder<br />
Akkumulation der FS in Leberzelle<br />
Bsp.: Hyperlipämie-Syndrom der Ponies<br />
Fettleber-Syndrom der Katze<br />
Ketose des Rindes<br />
Gestationshepatose des Schafes<br />
Hypoglykämie-Fettlebersyndrom von Zwerghun<strong>den</strong> (Yorkies)<br />
Diabetes mellitus<br />
3) Hypoxische Verfettung<br />
gestörte Fettsäure-Oxidation in der Leberzelle<br />
LIEGT BEI DIESEM PRÄPARAT VOR!<br />
Bei subakut bis chronischer Stauungsleber aufgrund reduziertem sinusoidalem<br />
Blutfluss & bei hgr. Anämie<br />
Verfettung beginnt im Läppchenzentrum �� Amyloidose in Peripherie<br />
(= sternförmige, diffuse Verfettung)<br />
4) Toxische Verfettung<br />
Gestörte Synthese von Apoproteinen und Phospholipi<strong>den</strong>, sowie Zerstörung von<br />
zellulären Membransytemen<br />
Schädigung durch chem. Gifte, Medikamente, bakt. Toxine, Alkohol<br />
Akkumulation der Triglyceride durch Störung der β-Oxidation/ Atmungskette oder<br />
durch Hemmung der Synthese von Apolipoproteinen bzw. der Ausschleusung von<br />
VLDL aus der Leberzelle<br />
5) Substratmangel-Verfettung/ Retentionsverfettung<br />
Mangel an essentiellen Faktoren des Fettstoffwechsels = lipotrope Substanzen<br />
(Cholin, V. B12, Kobalt)<br />
„Ovine White Liver Disease“ � Kobaltmangel mit anschließendem V. B12-Mangel<br />
Differentialdiagnose<br />
Amyloidose<br />
Nr. 33) RHD, Leber und Niere, Kaninchen, HE<br />
= Rabbit Haemorrhagic Disease (Kaninchen)<br />
- 41 -
Ursache ist das Calicivirus, das ebenfalls das „European Brown Hare Syndrome“ (Hasen) auslöst<br />
Erstes Auftreten 1984 in China<br />
Früher stan<strong>den</strong> Blutungen im Vordergrund, aber das Virus ist virulenter gewor<strong>den</strong>, sodass die Tiere<br />
veren<strong>den</strong> bevor es zu <strong>den</strong> Blutungen kommt.<br />
Organdiagnose<br />
Leber: siehe Präparat Nr. 29)<br />
Makroskopisch ist Leber vergrößert, hellbraun, brüchig mit deutlicher Läppchenzeichnung<br />
Petechiale Blutungen in SH, Serosen und zahlreichen Organen (Folge einer Verbrauchskoagulopathie)<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Gruppennekrosen/ Massennekrosen im fortgeschrittenen Stadium<br />
intakte Leberzellen sind blassrosa, Kerne zeigen hell-<br />
und dunkelblau angefärbte Eu- und<br />
Heterochromatinstruktur<br />
durch Virusbefall nekrotisch gewor<strong>den</strong>en Zellen sind rot;<br />
ihre Kerne sind klein und dunkelblau (Karyorhexis) oder<br />
ganz aufgelöst<br />
Links im Bild physiologische Zellen<br />
Rechts im Bild nekrotisch veränderte Zelle<br />
Glomerula deutlich mit Erys gefüllt<br />
Glomerulumschlingen enthalten<br />
teilweise normale Erys, teilweise sind sie<br />
mit rosa homogener Masse gefüllt<br />
= frisches Fibrin („hyaliner Thrombus“)<br />
hyaline Thromben entstehen auch in<br />
Darm & Lunge<br />
� Gesamtbild ist DIC<br />
In Folge der DIC kommt es zur<br />
Verbrauchskoagulopathie, die früher die<br />
Blutungen ausgelöst hat<br />
Leberzellnekrose; Beginnt in<br />
Leberperipherie<br />
Erhaltene Hepatozyten sind verfettet<br />
Portale lymphoplasmazelluläre &<br />
monozytäre Infiltrate<br />
Mikrothromben in zahlreichen Organen (Lunge, Nierenglomerula)<br />
Ätiologie<br />
Caliciviridae Genus: Lagovirus<br />
- 42 -
Pathogenese<br />
Weitgehend unbekannt<br />
Jungtiere unter 8 Wochen erkranken nicht, können das Virus aber vermehren<br />
Anzeigepflicht seit 2003 aufgehoben<br />
Klinisches Bild: Blutstauungen in großen Parenchymen<br />
Lungenödem<br />
Petechiale Blutungen in Lunge & Trachea<br />
Differentialdiagnose<br />
DIC anderer Ursache<br />
H.c.c.<br />
Nr. 34) Nekrobazillose, Leber, Rind, HE<br />
Herdnekrosen in der Leber, aber auch in Mundhöhle oder an Klauen (Moderhinke Schaf)<br />
Organdiagnose<br />
Leber: siehe Präparat Nr. 29)<br />
Histopathologische Diagnose<br />
von links nach rechts:<br />
physiologische<br />
Hepatozyten<br />
Randsaum<br />
Nekrose<br />
Außenzone der Nekrose wird durch Massen zerfallender neutrophiler Granulozyten demarkiert<br />
(Bei GIEMSA-Färbung sind zwischen <strong>den</strong> Granulozyten zahlreiche Bakterien zu sehen)<br />
Leberstruktur ist im Bereich der Koagulationsnekrose nur schemenhaft zu erkennen<br />
Verdichtete blaue Punkte im Randsaum sind Trümmer der Zellkerne von <strong>den</strong> Entzündungszellen, v.a.<br />
der neutrophilen Granulozyten (Nicht der Leberzellen)<br />
Ätiologie<br />
Fusobacterium necrophorum<br />
fa<strong>den</strong>förmiges, GRAM-negatives, obligat anaerobes Bakterium<br />
Pathogenese<br />
Die Bakterien produzieren Endotoxin, Leukotoxin & Hämolysin<br />
� Gefäßthromben � Lebernekrosen<br />
Bei eitriger Einschmelzung (gleichzeitige Besiedelung mit Actinomyces pyogenes) � Abszessbildung<br />
- 43 -
2 Formen: 1) Rumenitis-Hepatitis-Komplex<br />
(Schädigung der Vormagenschleimhaut bei Pansenazidose infolge<br />
Kohlenhydratreicher Ernährung)<br />
� aus Vormageninhalt über Pfortader in Leber<br />
Differentialdiagnose<br />
Herdnekrosen anderer Ursache<br />
� Multiple, über das Organ verteilte, Nekrosen (3cm groß, gelblich, trocken)<br />
Nekrosen sind scharf begrenzt mit leicht hämorrhagischem Saum<br />
2) Omphalogene Infektionen<br />
Beschränkter Befall des linken Leberlappens<br />
Nr. 35) Virushepatitis (H.c.c.), Hund, HE<br />
= Hepatitis contagiosa canis<br />
Betrifft junge Hunde & Füchse (fox encephalitis)<br />
Durch Impfung selten gewor<strong>den</strong><br />
Organdiagnose<br />
Leber: siehe Präparat Nr. 29)<br />
Makroskopisch: Leber vergrößert, scharfrandig, dunkelrot verfärbt mit diffusen weißlichen<br />
Her<strong>den</strong><br />
Aszites<br />
Ödem der Gallenblasenwand<br />
Fibrinablagerungen auf der Leberkapsel (fibrinöse Perihepatitis)<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: Fleckung, durch Areale mit hohem Blutgehalt neben intakten Bereichen<br />
Chromatinkonzentration der Leberzellkerne<br />
� Zeichen <strong>für</strong> Kernpyknosen/ Nekrosen<br />
Am Rand der Hepatozytennekrosen fin<strong>den</strong><br />
sich intranucleäre Einschusskörperchen<br />
(= homogene blauviolette große Gebilde in<br />
<strong>den</strong> Zellkernen)<br />
- 44 -
Halo = heller Hof um Ek + Kernwandhyperchromasie (Chromatin ist an die Wand gedrängt)<br />
- Zentro- bis Panlobuläre Leberzellnekrose bei Erhalt des bindegewebigen Gerüstes<br />
- nach Ausschwemmen der nekrotischen Hepatozyten dehnen sich Sinusoide zu Blutseen<br />
- Ek in Hepatozyten, Sinusoi<strong>den</strong>dothelzellen & Kupffer-Zellen<br />
- Entzündungszellen nur bei Beseitigung nekrotischer Zellen<br />
Ätiologie<br />
Canines A<strong>den</strong>ovirus Typ 1<br />
Pathogenese<br />
Fieberhafte Allgemeininfektion mit Virämie<br />
� befällt vorwiegend Leber- und Endothelzellen, aber auch Makrophagen,<br />
Nierentubuluszellen & Korneaepithel-Zellen (Vermehrung)<br />
� Zytopathischer Effekt führt zum Untergang der Hepatozyten, zu Kreislaufstörungen mit<br />
Ödemen und Blutungen<br />
Differentialdiagnose<br />
RHD: Leberzellnekrosen bei RHD stärker<br />
keine Ek bei RHD<br />
andere Erkrankungen mit intranukleären Ek: Herpesviren beim Fohlen (EHV 1/4 in abortierten F.)<br />
Herpes canis bei Hundewelpen<br />
(= Infektiöses Welpensterben)<br />
Nr. 37) Salmonellose, Leber, Kalb, HE<br />
Salmonellose äußert sich gewöhnlich als akute, katarrhalisch (oft auch fibrinöse) Enteritis.<br />
Fibrinöse Ergüsse im gesamten Darmlumen als Fibrinstränge.<br />
Meist chronischer Verlauf mit diffuser, diphteroid-nekrotisierender Enteritis (v.a. Colitis beim Pferd)<br />
Organdiagnose<br />
- 45 -
Leber: siehe Präparat Nr. 29)<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: Die Läppchen sind deutlich zu erkennen mit dunkelroten, homogenen Flecken<br />
Zwei Formen<br />
unterschiedlicher Herde:<br />
größere Herde:<br />
- blass-eosinophile Farbe<br />
- Karyorhexis (keine Kerne<br />
mehr)<br />
- Chromatin ist kon<strong>den</strong>siert<br />
- Koagulationsnekrose<br />
- nur noch Bruchstücke von<br />
<strong>den</strong> Hepatozyten übrig<br />
= Leberzellnekrosen mit<br />
keiner/ geringer<br />
entzündlicher Reaktion<br />
(Entzündungszellsaum)<br />
kleinere Herde: = kleine Granulome � Makrophagen, Neutrophile (große, blassblaue, locker<br />
gepackte Kerne)<br />
Einwanderung von Entzündungszellen (Makrophagen/ Lymphozyten)<br />
Ätiologie<br />
Wirtsadaptierte Erreger durchbrechen die Darmbarriere<br />
Pathogenese<br />
Septikämie � Besiedelung der Leber<br />
� Abtötung durch Kupffer-Zellen oder<br />
� Vermehrung in Hepatozyten<br />
↓<br />
Freisetzung der Bakterien aus <strong>den</strong> Hepatozyten<br />
↓<br />
Abtöten der B. durch Neutrophile<br />
↓<br />
Entstehung eines Mikroabszesses<br />
(Außerdem entstehen Nekrosen & granulomatöse Entzündungen)<br />
� weißliche, submiliare Herde der Leber<br />
Differentialdiagnose<br />
Septikämische Form der Listeriose (L. monocytogenes)<br />
Nr. 39) Zystizerkose, Leber, Schwein, HE<br />
- 46 -
Organdiagnose<br />
Leber: siehe Präparat Nr. 29)<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Akutes Wanderungsstadium einer Cysticercus-Infektion<br />
Cuticula der Larven erscheint stark eosinophil & leicht gezackt.<br />
Sie sind umgeben von einem Randsaum von Entzündungszellen (eos. Granulozyten & Makrophagen)<br />
Um <strong>den</strong> Randsaum liegt eine weitere Schicht, die Zerstörungszone (Hepatozyten)<br />
Weiße Punkte im Gewebe sind Granulome (Verkalkung) und deuten auf chronischen Prozess hin.<br />
Ätiologie<br />
Erreger: Cysticercus taenuicollis (Finne) des Flfr.-Bdwurms Taenia hydatigena (Schwein/Wdk)<br />
Cysticercus pisiformis des Hunde-Bandwurms Taenia pisiformis ruft gleiche<br />
Veränderungen in der Leber von Hase/ Kaninchen hervor<br />
Pathogenese<br />
Onkosphären wer<strong>den</strong> im Darm freigesetzt<br />
↓<br />
Durchbohren die Darmwand<br />
↓<br />
Wandern über Pfortader in Leber<br />
↓<br />
Wanderung in der Leber durch das Parenchym unter die Serosa (akute Cysticerkose)<br />
- 47 -
= „serophile Cysticercen“<br />
↓<br />
Reife Cysticercen liegen als dünnwandige, leicht gestielte,<br />
flüssigkeitsgefüllte Blasen unter der Serosa<br />
der Leber, sowie von Netz & Mesenterium<br />
↓<br />
↓<br />
eosinophile Granulozyten dominieren die anschließende Entzündungsreaktion<br />
Im akuten Stadium kommt es zu massiven Gewebszerstörungen durch die Larvenwanderung<br />
(Bohrgänge, Zelldetritus, Blutungen)<br />
Meist findet man akute & chronische Stadien nebeneinander<br />
Gegensatz dazu � „hepatophile Cysticercen“<br />
Echinococcus granulosus = zystische Echinococcose<br />
Echinococcus multilocularis = alveoläre Echinococcose<br />
Differentialdiagnose<br />
beim Kaninchen: Cysticerkose �� Gallengangskokkzidiose<br />
Leberegel& gr. Strongyli<strong>den</strong>: Wandern frei durch Bauchhöhle & im Anschluss durch die<br />
Leberkapsel, d.h. keine Bohrgänge im Parenchym<br />
Nr. 40) Hepatitis parasitaria chronica multiplex, Schwein, HE<br />
Makroskopisch eine „Milkspots“- Leber<br />
Organdiagnose<br />
Leber: siehe Präparat Nr. 29)<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: sehr dicke, hellrosa Bdgw.balken zwischen <strong>den</strong> Läppchen<br />
- 48 -
Bgw.balken = Proliferation von Fibroblasten Leberzelle<br />
& Kollagenfasern<br />
Im Bgw. sieht man Entzündungszellen (blaue Kerne)<br />
Eos. Granulozyten sind gut zu sehen (rote Granula wird beim Fokussieren deutlich)<br />
Keine Blutungen/ Gewebszerstörungen zu sehen<br />
Ätiologie<br />
Erreger sind unterschiedliche Parasiten<br />
Schwein = Ascaris suum, Toxocara canis & Cysticercose<br />
Rind = Fasciola hepatica<br />
Multiplex = viele Entzündungsherde<br />
Chronica = Bgw im Bereich der wandern<strong>den</strong> Parasiten stark vermehrt<br />
Pathogenese<br />
Wanderung der Larven durch das Leberparenchym<br />
↓<br />
Zerstörung des Gewebes<br />
↓<br />
Ersetzen durch narbige Reparation (Bgw.)<br />
Herde auf Oberfläche sind weiß, kreisrund & zur Peripherie netzartig ausgezogen<br />
Auslösende Parasiten sind verschwun<strong>den</strong>. evtl. abgestorbene Parasiten lösen dystrophische<br />
Verkalkung aus.<br />
Differentialdiagnose (Extrem typisch; vielleicht Inf. mit nur einem Parasiten)<br />
Nr. 41 und 42) Leberzirrhose, Hund, HE und Trichom-Masson<br />
- 49 -
Trichom-Masson-Färbung: Färbt Bgw. blau-grau an (Darstellung der Bgw.vermehrung)<br />
Auftreten von: 1) Degenerativen Veränderungen<br />
Verfettung, Sauerstoffmangel, Toxine, Nekrosen<br />
Einleitender Prozess <strong>für</strong> Leberzirrhose ist immer untergehendes Lebergewebe<br />
2) Regenerative Veränderung<br />
Verlust der Leberzellen wird auszugleichen versucht<br />
Bei Leberzirrhose entsteht funktionell minderwertiges Lebergewebe aus<br />
großen, unreifen Zellen � liegen wild durcheinander (Knötchen)<br />
Knotenbildung aus unreifen Zellen = Regeneratknoten<br />
3) Reparative Veränderungen<br />
Bindegewebsproliferation<br />
Leberläppchen wer<strong>den</strong> von Bgw durchdrungen (im Gegensatz zu Nr. 40)<br />
Ab einem gewissen Grad entsteht die Zirrhose auch dann weiter, wenn auslösende Ursache abgestellt<br />
ist � Endet immer tödlich<br />
Entschei<strong>den</strong>de Kriterien: Zerstörung der Läppchenarchitektur<br />
Bgw & Leberparenchym sind wild vermischt<br />
Organdiagnose<br />
Leber: siehe Präparat Nr. 29)<br />
Makroskopisch: Mikronoduläre Zirrhose Verkleinert, derb, hellbraun – grünbraun, glatt<br />
Makronoduläre Zirrhose wie Mikronoduläre aber Oberfläche ist knotig<br />
Biliäre Zirrhose vergrößert, hell, derb<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: HE � sehr helles Präparat, Bgwzubildungen, sieht total konfus aus<br />
Trichom-Masson � blau-lila Balken durchziehen Präparat mit rosa Inseln<br />
- sehr große, unreife Leberzellen (überstürzte, andauernde Regeneration)<br />
- Verfettung der Regeneratknoten = gelb (wegen Sauerstoffmangel)<br />
- 50 -
- Fett wird bei Fixation herausgelöst = Hohlräume !!!<br />
- Trias, Zentralvenen, Struktur nicht zu erkennen = Durcheinander mit evtl. Blutstau<br />
Ätiologie<br />
Endstadium chron. Lebererkrankungen unterschiedlicher Genese<br />
Folge: Entzündung<br />
Regeneration von Leberzellen<br />
Ausbildung bindegewebiger Septen<br />
Ursachen: autoimmunopathische Reaktionen<br />
Störung des Galleabflusses (Cholestase)<br />
Störung des Gefäßsystems<br />
Ausbildung portovenöser Anastomosen<br />
aktive Zirrhose: Nekrosen von Hepatozyten & Entzündungszellen vorhan<strong>den</strong><br />
inaktive Zirrhose: Überwiegen der Fibrose<br />
Pathogenese<br />
Einteilung anhand morphologischer Kriterien:<br />
Mikronoduläre Zirrhose<br />
- Gesamte Leber ist in kleine (bis 3 mm) Knötchen umgewandelt (gelb = Verfettung)<br />
- Knötchen wer<strong>den</strong> von schmalen Bgwsepten umgeben<br />
- reguläre Läppchenarchitektur ist nicht zu erkennen<br />
- Häufig Ikterus durch Gallenabflussstörung „Schuhzweckenleber“<br />
- in Septen: Fasern, Fibroblasten, Lymphozyten, Plasmazellen, Makrophagen,<br />
proliferierte Gallengänge<br />
- Beruht auf Schädigung, die gleichmäßig an alle Läppchen angreift<br />
- Bsp.: Kupferspeicherkrankheit der Bedlington Terrier<br />
Cu-assoziierte chronische aktive Hepatitis<br />
Lobulär-dissezierende Hepatitis<br />
durch Pyrrolizidin-Alkaloide verursachte Leberzirrhose der Pferde<br />
Makronoduläre Zirrhose<br />
- ungleichmäßig große (5mm bis 5 cm) Knoten<br />
- unterschiedlich breite Bgwsepten<br />
- in Knoten lassen sich Portalfelder/ Zentralvenen erkennen<br />
- Folge eines umfangreichen Leberzelluntergangs (postnekrotische Zirrhose)<br />
- bei dem es zum Kollaps des bgw Gerüsts gekommen ist (Kollapsfibrose)<br />
v.a. beim Rind; Ursache bleibt meist unbekannt<br />
Biliäre Zirrhose<br />
- Endzustand einer chron. Cholangiohepatitis (Katze)<br />
oder<br />
- 51 -
- Entwickelt sich auf Basis eines Verschlusses der extrahepatischen Gallenwege<br />
- Entzündung, portale Fibrose, hgr. Gallengangsproliferation<br />
Übergangsform zwischen Mikro-/ Makronodulär<br />
- meist bei Pferd und Schwein<br />
Folgen des Umbaus: - gestörte Leberfunktion führt zu Ikterus<br />
- Umbau des Gefäßsystems zu portalem Hochdruck mit Aszites<br />
- Vermind Albuminsynthese führt zu vermin. des intravasalen<br />
kolloidosmotischen Druckes � onkotische Ödeme<br />
- Vermind. Synthese von Gerinnungsfaktoren � Koagulopathie (Blutungen<br />
im MDT)<br />
- Vermind. Entgiftungsfkt. � Anreicherung ausscheidungspflichtiger Stoffe<br />
(Ammoniak nicht zu Harnstoff; führt zu „hepatoencephalem Syndrom“)<br />
- Leberkoma durch Synthese falscher Neurotransmitter<br />
- Zentralvenen wer<strong>den</strong> wegen Umbau an Läppchenrand gedrängt �<br />
Kurzschluss der Blutversorgung führt zu Unterversorgung/ Zelluntergängen<br />
Endstadium = Leberversagen<br />
Differentialdiagnose<br />
Leberfibrose: Folge einer chron. Stauungsleber<br />
perilobuläre Fibrose ohne Zerstörung der Läppchenstruktur<br />
Narbenleber: Folge einmaliger Lebernekrosen<br />
Progredienz (Fortschreiten) nicht vorhan<strong>den</strong><br />
Nr. 44) Lymphatische Leukose, Leber, Rind, HE<br />
Leukose = systemische neoplastische Proliferationen von Blutzellen, bzw. deren Vorstufen<br />
Je nachdem ob Tumorzellen im Blut vorhan<strong>den</strong> sind unterscheidet man leukämische & aleukämische<br />
Form<br />
Einteilung von Geschwülsten der Leber & Gallengänge<br />
1) Epitheliale Geschwülste<br />
- Hepatozelluläre A<strong>den</strong>ome<br />
- Hepatozelluläre Karzinome<br />
- Gallengangsa<strong>den</strong>ome<br />
- Gallengangskarzinome<br />
2) Mesenchymale Geschwülste<br />
- Hämangiome<br />
- Hämangiosarkome (malignes Hämangioendotheliom)<br />
- Fibrome, Sarkome & Lipome<br />
3) Sekundäre Geschwülste (Tumormetastasen)<br />
- Karzinome des Pankreas<br />
- Lymphohämatopoetische Neoplasien (Lymphatische Leukose)<br />
- 52 -
Malignitätskriterien: Heterogenität bezüglich Reifungsgrad<br />
Anisonucleose (ungleiche Kerne)<br />
paranucleäre Aufhellungszonen<br />
Organdiagnose<br />
Leber: siehe Präparat Nr. 29)<br />
Makroskopisch: diffuse Vergrößerung oder knotige Form<br />
Tumoröse Veränderungen<br />
speckig-weiße Herde im Parenchym (Schnittfläche)<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: rote Balken = unveränderte Zellen<br />
lila bereiche = Tumorzellen (Blastoide)<br />
normale Bereiche gehen abrupt in Tumorgewebe über<br />
Tumorgewebe ist mit kleinen Zellen infiltriert, die: kaum Zytoplasma enthalten .<br />
� Lymphozyten einen dunklen Kern haben<br />
vermehrt Mitosefiguren aufweisen<br />
Leberzellen sind wesentlich größer als die Lymphozyten<br />
2 Zelltypen bei <strong>den</strong> Tumorzellen:<br />
1) Lymphozyten<br />
2) größere Zellen mit hellerem Kern& mehr Zytoplasma<br />
� ebenfalls Lymphozyten (nicht Makrophagen, die hätten einen ovalen Kern)<br />
Ätiologie<br />
Erreger sind onkogene Viren der Familie Retroviridae, C-Partikel<br />
Übertragung horizontal (Speichel, Nasensekret, Kot, Urin, Milch, Blut) & vertikal<br />
Pathogenese<br />
Einteilung nach dem Zelltyp:<br />
1) lymphatische Leukose<br />
- 53 -
- lymphoproliferative Krankheiten<br />
- es erkranken Lymphknoten, Milz, Thymus, KM, Leber<br />
- Einteilung: chron. lymphatische Leukämien (ältere Menschen)<br />
� Kiel-Klassifikation & National Cancer Institute Working<br />
Formulation<br />
akute lymphatische Leukämien (Kinder)<br />
� French-American-British-Group (FAB-Klassifikation)<br />
in B-, T-, 0-Typen<br />
2) myeloische Leukose<br />
- myeloproliferative Erkrankungen<br />
- Megakaryozyten-/ Mastzellleukose, maligne Histiozytose<br />
- es erkranken KM, Leber, Milz<br />
Differentialdiagnose<br />
sehr typisches Präparat<br />
Harnorgane<br />
- FAB-Klassifikation: M1 = akute Myeloblasten-L ohne Reifezeichen<br />
M2 = mit Reifezeichen<br />
M3 = akute Promyelozyten-L<br />
M4 = akute myelomonozytäre L (Granulozyten-Vorstufen,<br />
Monoblasten & Promonozyten)<br />
M5 = akute Monozyten-L (Monoblasten, Promonozyten,<br />
Monozyten)<br />
M6 = Erythroleukämie (Erythro-/ & Granulozyten-Vorstufen)<br />
- 54 -
Funktion der Niere: Ausscheidung endogen gebildeter, organischer Stoffwechselendprodukte<br />
(Bilirubin, Harnstoff); Abgabe anorgan. Stoffe (Spurenelemente); Exkretion<br />
exogen aufgenommener, nicht abbaubarer Fremdstoffe (Pharmaka)<br />
Aufrechterhaltung des osmotischen Drucks & der wasserstoff-<br />
Ionenkonzentration durch selektive Reabsorption bzw. Abgabe von Ionen ins<br />
Wasser<br />
Regulation des Säure-Basen-Gleichgewichts<br />
Synthese von Hormonen zur Regulation<br />
des Blutdrucks (Renin-Angiotensin-Aldosteron-Komplex)<br />
der Erythropoese (Erythropoetin)<br />
des Blutcalciumspiegels (Prostaglandine, Kallikrein,<br />
1,25-Dihydroxycholekalziferol)<br />
Regulation der Nierenfunktion: ADH (antidiuretisches Hormon)<br />
Aldosteron der NNR (tubuläre Na-Resorption ↑)<br />
Parathormon & Calcitonin (Hemmung tubulärer Phosphatabsorbtion =<br />
vermehrte Ausscheidung)<br />
Regulation des Blutdrucks: bei Hyponatriämie, Hypovolämie<br />
Freisetzung von Renin aus Juxtaglomerulärem Apparat (s.u.)<br />
↓<br />
im Blut zirkulierendes Angiotensinogen wird zu<br />
inaktivem Angiotensin I umgewandelt<br />
↓<br />
Converting-Enzym wandelt während Lungenpassage<br />
Angiotensin I in aktives Angiotensin II um<br />
↓<br />
Steigerung der Aldosteron-Sekretion (sek. Aldosteronismus)<br />
↓<br />
vermehrte Na-Resorption<br />
↓<br />
evtl. Na-Retention (Hypernatriämie) mit Erhöhung der<br />
Osmolalität des Blutes<br />
↓<br />
Vermehrte Sekretion von ADH / Vasopressin<br />
↓<br />
erhöhte renale Rückresorption<br />
↓<br />
Hypervolämie & Ödeme<br />
Bau der Niere: Außen Fettkapsel (Capsula adiposa)<br />
(Makroskopisch) Bindgewebskapsel (Capsula fibrosa)<br />
dünne Lage lockeres Bgw mit glatten Muskelzellen, von der aus schmale<br />
Faserbündel ins Parenchym ziehen<br />
Nierenparenchym lockeres kollagenes Fasergeflecht um Nierenkörperchen &<br />
Nierentubuli, das außerdem die Adventitia der Gefäße bildet<br />
Einteilung in Zonen durch:<br />
- 55 -
- Größe/ Häufigkeit der Nierenkörperchen<br />
- Anordnung von Haupt-/ Mittelstücken<br />
- Längen der Henle-Schleifen<br />
- Verlauf der Gefäße<br />
Zonen: - Nierenrinde (Cortex renalis)<br />
- Zona externa (größere Nierenkörperchen)<br />
- Zona interna (kleinere N.)<br />
- Nierenmark<br />
- Zona externa (Kortikale Nephrone)<br />
- Außen-/ Innenstreifen<br />
- Zona interna (Juxtamedulläre Nephrone)<br />
glatte, einwarzige Niere: Pfd, Ziege, Schaf, Hund, Katze<br />
glatte, mehrwarzige Niere: Schwein<br />
gefurchte, mehrwarzige Niere: Rind<br />
Hauptstück � Tubulus contortus proximalis<br />
Überleitungsstück (Tubulus attenuatus)<br />
Tubulus rectus proximalis<br />
Bau der Niere: Kanälchensystem<br />
(Mikroskopisch) � Kanäle (Nephrone) & Sammelrohre<br />
� Nierenkörperchen (Malpighi-Körperchen) = Bowmann-Kapsel + Glomerulum<br />
- 56 -
lindes Ende eines Nephrons dehnt sich embryonal & differenziert sich zur<br />
zweiblättrigen Bowmann-Kapsel<br />
- inneres (viszerales) Blatt<br />
- Spaltraum (Lumen capsulae) Sammelraum Ultrafiltrat (Primärharn)<br />
- äußeres (parietales) Blatt<br />
In das Nephron zieht ein Kapillarknäuel (Glomerulum)<br />
Nephron verlängert & windet sich<br />
- absteigende & aufsteigende Schleife (Henle-Schleife)<br />
- Sammelrohr<br />
- Nierenbecken<br />
2 Typen von Nephronen<br />
- kortikale Nephrone mit kurzen Henle-Schleifen<br />
- juxtamedulläre Nephrone mit langen Henle-Schleifen<br />
Aufbau des Glomerulum: Endothelzellen der Kapillarwände<br />
Basalmembran<br />
Podozyten (= viszerales Blatt der B. K.)<br />
Mesangium<br />
Fkt. der Podozyten: - <strong>Teil</strong> des glomerulären Filterapparates<br />
- Aufnahme höhermolekularer Stoffe<br />
- Regulierung der Druckverhältnisse durch<br />
kontraktile Zellausläufer<br />
- Neubldg. fibrillärer Anteile der Basalmembr.<br />
Gefäßversorgung: Blutzufuhr am Nierenhilus über A.renalis<br />
Verzweigung zwischen Nierenlappen Aa. interlobares<br />
<strong>Teil</strong>ung an Rin<strong>den</strong>-/Markzonen Grenze Aa. arcuatae<br />
zwischen die Markstrahlen Aa. interlobulares<br />
� verlaufen senkrecht bis zur Nierenkapsel<br />
- 57 -
Abzweigung zahlreicher Arteriolae glomerulares afferentes<br />
die am Gefäßpol in das Nierenkörperchen eintreten<br />
& im Inneren das Rete capillare glomerulares bil<strong>den</strong><br />
Arteriolae glomerulares efferentes<br />
Vv. interlobulares<br />
Vv. arcuatae<br />
Vv. interlobares<br />
V. renalis<br />
Nerven: Zahlreiche nichtmyelinisierte sympathische Nervenfasern des Plexus coeliacus<br />
� Versorgen v.a. Gefäße der Niere<br />
Nr. 46) Ischämischer Niereninfarkt, HE (+ nichteitrige interstitielle Nephritis)<br />
= ischämische Nekrose infolge Arterienverschlusses<br />
(bei Haustieren immer embolisch-thrombotischer Natur)<br />
Organdiagnose<br />
Niere: Ausführliche Erläuterungen s.S. 55 ff<br />
1) Capsula fibrosa 7) Pelvis renalis 1) Capsula glomeruli 7) Mesangiumzellen<br />
2) Hilus renalis 2) Glomerulum 8) Macula <strong>den</strong>sa<br />
3) Ureter 3) Hauptstück<br />
4) Cortex renalis 4) Mittelstück<br />
5) Medulla renalis 5) Arteriola glomerularis afferens (Vas afferens)<br />
6) Papilla renalis 6) Vas efferens<br />
Makroskopisch: - weißlich-gelbe Farbe (Koagulationsnekrose)<br />
- hämorrhagischer Randsaum (venöser Reflux)<br />
- über Oberfläche hervorspringend (Wasseraufnahme)<br />
- infizierte Infarkte sind rötlich (hämorrhagischer Infarkt)<br />
- 58 -
Histopathologische Diagnose<br />
- ältere Infarkte ebenfalls rötlich ( Reflux aus kapillaren9<br />
Lupe: Ziemlich eindeutig Niere<br />
Glomeruli mit Halbmon<strong>den</strong><br />
Tubuli sind Epithelringe mit Loch (Makkaroni; ich hab Hunger)<br />
unverändertes Gewebe ischämischer Infarkt<br />
- bei frischem Infarkt ist Übergang zu gesundem Gewebe scharf<br />
- nekrotischer Bereich ist blass-rosarot gefärbt (Tubulusepithelnekrose + Entzündungszellen)<br />
- ursprüngliche Gewebestruktur nur schemenhaft<br />
- Zellkerne fast komplett verloren gegangen<br />
- viele Erys, Leukos (blaue Kerne) im hämorrhagischen Randsaum<br />
- Thromben sind bereits organisiert & es kommt zur Rekanalisation = „Löcher“ im Präparat<br />
Ätiologie<br />
Emboli, die infolge von Endokarditi<strong>den</strong>, oder auch Bakteriämien, Lungenentzündungen entstehen.<br />
Pathogenese<br />
Emboli gelangen in Aorta oder<br />
wer<strong>den</strong> in dieser gebildet (Endarteritis verminosa thromboticans oder<br />
Endocarditis valvularis)<br />
- 59 -
↓<br />
Einschwemmen in Nieren (oft Infarkte unterschiedlichen<br />
Alters, wegen protrahierter Abgabe von Emboli in die Blutbahn)<br />
↓<br />
Arretierung in Arterien<br />
↓<br />
Ausbildung anämischer Infarkte (Niere besitzt Endarterien!)<br />
↓<br />
Einsprießen von Granulationsgewebe<br />
↓<br />
nekrotisches Gewebe wird resorbiert und durch Narbengewebe ersetzt<br />
(Abbau durch Makrophagen)<br />
↓<br />
Rückbildung der Kapillaren & Umbau der Fibroblasten zu Fibrozyten (=Narbengewebe)<br />
↓<br />
Infarktschrumpfniere<br />
Verstopfung von Folge<br />
A. subcorticalis keilförmige Infarkte<br />
Spitze zieht bis in Papille<br />
A. corticalis radiata keilförmige Infarkte<br />
auf Nierenrinde beschränkt<br />
Arteriolae afferentes, Glomerulum,<br />
herdförmige Nekrosen mit<br />
Arteriolae efferentes<br />
resorptiver Entzündung (embolische Herdnephritis)<br />
Aa. interlobares ischämische Nekrose großer Parenchymbezirke<br />
A. renalis (totaler Verschluss) fast gesamte Niere wird nekrotisch<br />
einzelne, durch Kapselgefäße ernährte Bezirke<br />
A. renalis<br />
(einseitige Stenose mit langsamer Drosselung)<br />
Differentialdiagnose<br />
bleiben erhalten<br />
Nierenschrumpfung (inkompletter Infarkt)<br />
renale Hypertonie<br />
Rind: herdförmige nichteitrige interstitielle Nephritis (ohne Infarkt)<br />
postmortal entstan<strong>den</strong>e herdförmige druckanämische Veränderungen<br />
Nr. 50) Amyloid-Nephrose, Rind, Kongorot<br />
Nephrose: Doppelseitige, nicht vaskuläre & nicht eindeutig entzündliche Nierenveränderung, die sich<br />
in lokalen Stoffwechselstörungen äußert. (= degenerative Veränderungen, Speicherung von<br />
verschie<strong>den</strong>en Stoffen) (nach Zollinger)<br />
- 60 -
Mit Kongorot gefärbtes Amyloid wirkt durch Lichtbrechung (polarisiertes Licht) gelb-grünlich<br />
evtl. besteht auch noch eine interstitielle Nephritis<br />
Einteilung der Nephrosen: (nach Lokalisation der Veränderung)<br />
1) Glomerulonephrosen (= Rinde betroffen, Mark unverändert)<br />
- Amyloidnephrose<br />
- Glomeruläre Lipidose<br />
- Glomerulosklerose<br />
2) Tubulonephrosen<br />
- Ischämische Tubulonephrosen<br />
- Schockniere<br />
- Ischämische chromoproteinämische Nephrose<br />
- Toxische Tubulonephrosen<br />
- Speicherungsnephrosen<br />
- Tubulonephrosen mit Konkrementablagerung<br />
� glomeruläre & tubuläre Veränderungen können gemeinsam auftreten<br />
� Diagnose von akuten Nephrosen meist nur histologisch möglich<br />
Amyloidarten siehe Präparat 31) sowie Skript allg. Patho S. 54ff<br />
Organdiagnose<br />
siehe Präparat Nr. 46)<br />
Makroskopisch: Rind: - Vergrößerung um das Zwei- bis Dreifache<br />
- oberflächliche feine Granulierung<br />
- hellgelb-braun<br />
- derbe Konsistenz<br />
- Vergrößerte Glomerula als kleine, glasige, grau-weiße Pünktchen zu<br />
erkennen<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: das Präparat ist blau<br />
man erkennt Tubuli & Glomeruli<br />
Hund: - ggr. Vergrößert, oft auch Verkleinert<br />
- oberflächliche feine Granulierung<br />
- Rassedisposition: grauer Collie, Shar Pei<br />
Diagnose: Behandlung von Nierenstückchen mit Lugolscher Lösung &<br />
Schwefelsäure � blau-schwarze Stippchen (= amyloidhaltige<br />
Granula) in der Rinde & Streifen oder Flecken (=<br />
intertubuläres Amyloid) im Markbereich zeigen positives<br />
Ergebnis an.<br />
- 61 -
Glomerulum mit blass-rosa Massen Tubuli (Lumina blass-grau) Leider schlecht auf Foto<br />
- Kongorot färbt Amyloid blass-rosa<br />
- Gegenfärbung mit Hämatoxilin<br />
- Amyloid liegt IMMER extrazellulär!!<br />
- blass-graue Massen in Tubuli sind Proteinzylinder (=Hyalin)<br />
- Amyloid liegt zwischen Glomerulumschlingen längs der Basalmembran<br />
- Glomerula sind verquollen<br />
- extrazelluläres Hyalin in <strong>den</strong> Tubuli & im Lumen capsulae (Bowmannscher Spalt)<br />
Ätiologie<br />
generalisierte Amyloidose führt zu Amyloid A-Ablagerung in der Niere<br />
Pathogenese<br />
Amyloidfasern stecken fest in <strong>den</strong> Glomerulumschlingen<br />
↓<br />
Permeabilitätserhöhung<br />
↓<br />
Proteinzylinder im Tubuluslumen = Hyalin<br />
reaktive (sek.) Amyloidose: Amyloid in Nieren, Leber, Milz, Darm & Nebennieren<br />
idiopathische (prim.) Amyloidose: Amyloid nur in Nieren & im Bereich von Blutgefäßen<br />
Folge: Proteinurie<br />
Ausbildung des nephrotischen Syndroms<br />
� Proteinurie, Hypalbuminämie, Hypercholesterinämie, Ödeme der Unterhaut<br />
Besonderheit: familiäre Amyloidose der Abessiner- und Somalikatzen<br />
- massive Ablagerung von AA im Nierenmark<br />
- Kompression von Blutgefäßen, Papillen-/ Marknekrosen<br />
- 62 -
Folgen der Störung: - Proteinverlust über die Niere (v.a. Albumin) sinkt kolloidosmotischer Druck<br />
� onkotische Ödeme entstehen = „nephrotisches Syndrom“<br />
- Zurückhalten harnpflichtiger Stoffe � Urämie<br />
Differentialdiagnose<br />
andere Nephrosen und auch Nierenentzündungen Aber einziges Nieren-Präparat mit Amyloid &<br />
Kongorot-Färbung.<br />
Nr.49) Haemoglobinurische Nephrose, Hund, HE<br />
= Ischämische chromoproteinämische Nephrose (Chromoproteinniere, ischämische<br />
Pigmentnephrose, Lower Nephron Nephrosis, Crush-Niere)<br />
Chromoproteine = Hämoglobin & Myoglobin<br />
Organdiagnose<br />
siehe Präparat Nr. 46)<br />
Makroskopisch: Vergrößert<br />
Kapsel ist gespannt & leicht abziehbar<br />
dunkelbraun mit helleren Streifen<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: sehr streifig, mit hellen Flecken & homogen rosa Flecken<br />
um Glomerula kein weißer, sondern rosa Halbmond<br />
gelb-rötliche Flecken sind Chromoprotein-Ablagerungen<br />
- keine Hinweise auf primäre Schädigung der Glomerula<br />
- rot bis orange gefärbte, nadelartige, kristalloide Elemente in <strong>den</strong> Tubuluslumina<br />
↓<br />
- viele Hämoglobin-/ Myoglobinzylinder in Henleschen Schleifen & Mittelstücken<br />
- 63 -
� Löslichkeitsprodukt wurde überschritten und es kommt nun zur Kristallbildung<br />
- degenerative Veränderungen<br />
- Farbstoffrückresorption (tropfige Speicherung) in prox. Tubuli<br />
- Eiweißmassen in Kapsel- und Tubulusräumen<br />
Bowmannscher Spalt ist erweitert � darin befindliche rosa Masse ist extrazelluläres Hyalin<br />
↓<br />
Glomerula haben infolge Schock eine erhöhte Permeabilität<br />
↓<br />
Protein tritt aus & koaguliert mit Formalin<br />
↓<br />
homogene rosa Masse<br />
Ätiologie<br />
chron. Kupfervergiftung (Schaf & Kalb)<br />
Chlorat-/ Nitratvergiftung (Methämoglobinämie)<br />
bazilläre Hämoglobinurie (Rind & Schaf; Clostridium novyi Typ D)<br />
isoimmune hämolytische Anämie (neugeborene Fohlen)<br />
paralytische Myoglobinurie (Pferd; Crush-Niere)<br />
RHD<br />
Pathogenese<br />
Hämoglobin & Myoglobin wer<strong>den</strong> glomerulär filtriert<br />
↓<br />
fluten ins Tubuluslumen<br />
↓<br />
Rückresorption<br />
↓<br />
Chromoproteine in Epithelzellen & Ansammlung dort<br />
↓<br />
bis hierhin nicht gefährlich, kommt aber Schock hinzu:<br />
↓<br />
Zentralisierung<br />
↓<br />
Blutdruckabfall & Ischämie der Nieren<br />
↓<br />
tubuläre Schädigungen<br />
Folgen: - Mechan. Verstopfung des Tubuluslumens<br />
� Oligurie/ Anurie wegen akuter Niereninsuffizienz<br />
- Nekrose des Tubulusepithels (irreversibel)<br />
� wegen Sauerstoffmangel durch Minderperfusion zusammen mit massiver<br />
Rückresorption<br />
Therapie: Infusion + Diuretika (nur wenn noch keine Tubulusnekrose eingetreten ist)<br />
� Auflösen/ Ausschwemmen der Kristalle<br />
Differentialdiagnose (andere Nephrosen/ Nephriti<strong>den</strong>; Aber einziges Nierenpräparat mit Chromoprotein-Ablagerungen)<br />
Nr. 51) Subakute serofibrinöse Glomerulonephritis, Schwein, HE<br />
sero = Hyalin fibrinös = Fibrinfä<strong>den</strong><br />
Einteilung der Nephriti<strong>den</strong>:<br />
- 64 -
1) Glomerulonephritis<br />
- diffuse Glomerulonephritis (alle Glomerula betroffen)<br />
- herdförmige Glomerulonephritis (<strong>Teil</strong>e betroffen)<br />
2) Interstitielle Nephritis<br />
- diffuse nichteitrige interstitielle Nephritis<br />
- herdförmige nichteitrige interstitielle Nephritis<br />
- herdförmige embolisch-eitrige interstitielle Nephritis<br />
- Pyelonephritis (Nierenbeckenentzündung)<br />
- granulomatöse Nephritis<br />
Zugehörigkeit ist hier unklar. Der Dahme/Weiss ordnet die serofibrinöse Glomerulonephritis <strong>den</strong><br />
herdförmigen Glomerulonephriti<strong>den</strong> zu, verweist aber gleichzeitig auf das PIGD-Syndrom, das zu <strong>den</strong><br />
diffusen G. gehört. In der Vorlesung wurde ebenfalls ein Verweis auf PIGD gemacht.<br />
Ich habe mich dazu entschie<strong>den</strong> mich an der Vorlesung zu orientieren und die diffusen G. näher zu<br />
behandeln.<br />
Einteilung der diffusen Glomerulonephriti<strong>den</strong>:<br />
Organdiagnose<br />
1) Exsudative Glomerulonephritis akut<br />
2) Proliferative Glomerulonephritis chronisch<br />
- Mesangial (am häufigsten, Mesangiumzellen vermehrt)<br />
- Endothelial = Endokapillär (Vermehrung Endothelzellen)<br />
- Epithelial = Extrakapillär (Vermehrung Epithelzellen)<br />
3) Membranöse Glomerulonephritis (nur Basalmembran betroffen; verdickt) chronisch<br />
- mit Spikes (Immunkomplexablagerungen, Basalmembran tritt hervor)<br />
- ohne Spikes (Basalmembran nur verdickt, aber glatt)<br />
4) Membranoproliferative Glomerulonephritis (häufigste Form) chronisch<br />
- Kombination aus 2 und 3<br />
5) Sklerosierende Glomerulonephritis chronisch<br />
siehe Präparat Nr. 46)<br />
Makroskopisch: akut: geschwollen, feucht, blass mit Petechien auf Oberfläche<br />
subakut: Vergrößert, hellrosa, fleckig, derb, P. auf Oberfläche<br />
chronisch: fein- bis grob granulierte Schrumpfniere<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: Tubuli mit vielen hellen Zwischenräumen; Tubuli lila, dazwischen pink (Erys)<br />
viele Erys im Interstitium = hämor. Nephritis<br />
- 65 -
links unten und<br />
rechts im Bild:<br />
Glomerulum mit<br />
Plasma<br />
links oben:<br />
Tubulus mit Plasma<br />
- im Kapselraum vieler Nierenkörperchen Exsudat aus Fibrin, Granulozyten & Erys<br />
� (homogen bis fädig) = Plasma, das zum <strong>Teil</strong> schon geronnen ist<br />
- Interstitium ist nicht beteiligt<br />
- teilweise sind Erys aus Glomerulum-Kapillaren ausgetreten<br />
- Exsudat verdrängt/ komprimiert Glomerulumschlingen<br />
↓<br />
- Erhöhung der Permeabilität führt zu Ablagerung von Immunkomplexen � Proteinzylinder<br />
- im Tubuluslumen � Hyalin, Fibrin, Erys, Entzündungszellen<br />
Ätiologie<br />
Immunpathologische Vorgänge � AK-Vermittelte Immunreaktionen<br />
Pathogenese<br />
- Immunkomplex-Glomerulonephritis<br />
- Anti-Basalmembran-Glomerulonephritis<br />
Immunkomplex-Glomerulonephritis<br />
bei Antigenüberschuss entstehen gelöste Immunkomplexe im Blut<br />
(nicht gelöste I. wer<strong>den</strong> vom MPS aus der Zirkulation genommen)<br />
↓<br />
gelöste I. entgehen der Phagozytose & wer<strong>den</strong> in Glomerula abgelagert<br />
↓<br />
Aktivierung des Komplementsystems<br />
↓<br />
C3a & C5a setzen Histamin & Serotonin aus Mastzellen frei<br />
↓<br />
C5a wirkt chemotaktisch (neutro. G. & Makrophagen wer<strong>den</strong> angelockt) ;<br />
C7, C8, C9 wirken direkt zytotoxisch<br />
Bildung von Mediatoren (Eicosanoi<strong>den</strong> [Prostaglandine, Leukotriene], Zytokinen)<br />
↓<br />
Auslösen von entzündlichen Veränderungen<br />
Immunhistologie: Nachweis von IgG, C3, Properdin als herdförmige Ablagerung<br />
große Immunkomplexe � wer<strong>den</strong> subendothelial abgefangen &<br />
von Mesangiumzellen phagozytiert<br />
- 66 -
mittlere Immunkomplexe � lagern sich zwischen Endothel &<br />
Basalmembran an, können<br />
Basalmembran nicht überwin<strong>den</strong><br />
= liegen subendothelial<br />
kleine Immunkomplexe � durch glomeruläre Basalmembran in<br />
<strong>den</strong> subepithelialen Bereich (zwischen<br />
Basalmembran & Podozyten), oder<br />
intrabasale Ablagerung<br />
Bsp.: Hund � Pyometra, Hcc, Dirofilariose, Leishmaniose<br />
Katze � FeLV, FIP<br />
Rind � BVD, Bleivergiftung<br />
Pferd � Infektiöse Anämie<br />
Schwein � PIGD-Syndrom (Porzine Immunkomplex-Glomerulonephritis-<br />
Dermatitis bzw. Porzines Dermatitis Nephropathie Syndrom)<br />
PIGD: - exsudative (fibrinöse) intra- und extrakapilläre Glomerulonephritis<br />
- mit Ablagerung von Immunkomplexen (IgM, IgA, C3, seltener IgG)<br />
- Ursache wahrscheinlich Immunkomplex-vermittelte Allergie nach bakterieller Inf.<br />
Anti-Basalmembran-Glomerulonephritis<br />
- Bildung von AK aus unbekannten Grün<strong>den</strong>, die gegen glomeruläre Basalmembranen<br />
gerichtet sind (Entstehung an Basalmembranen = keine Anflutung mit dem Blut)<br />
- Ablagerung der Immunkomplexe linear entlang der Basalmembran<br />
- nur bei Pferd & Hund beschrieben<br />
- beim Mensch „goodpasture syndrome“ � AK gegen Basalmembranen wer<strong>den</strong> in der Lunge<br />
gebildet = AK gegen glomeruläre & alveoläre Basalmembranen<br />
Differentialdiagnose<br />
alle diffusen Glomerulonephriti<strong>den</strong> (genaue Diagnose Schwein möglich und damit begrün<strong>den</strong>)<br />
Nr. 52) Schrumpfniere, Hund oder Pferd, HE<br />
= Sammelbegriff <strong>für</strong> alle Nierenveränderungen, bei <strong>den</strong>en es durch Parenchymuntergang &<br />
Ersatz durch Narbengewebe zu einer Verkleinerung gekommen ist.<br />
d.h. Endzustände prim. verschie<strong>den</strong>er Nephropathien, die wegen sek. Veränderungen<br />
(Atrophie, Fibrose, Entzündung, Gefäßsklerose) nicht mehr ermittelt wer<strong>den</strong> können.<br />
- 67 -
Organdiagnose<br />
siehe Präparat Nr. 46)<br />
Makroskopisch: - unterschiedlich starke Verkleinerung<br />
- derbe Konsistenz<br />
- Oberfläche grob bis fein granuliert<br />
- glatt oder trichterförmig eingezogen<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: - normale Nierenstruktur ist aufgehoben<br />
- Glomerula sind noch zu erkennen; massive Bgwzunahme im Interstitium<br />
- Tubuluslumina sehr unterschiedlich groß<br />
- rosa Bezirke = dilatierte Tubuli gefüllt mit Hyalin (Strumafelder)<br />
- blaue Bezirke = Entzündungszellen (Lymphozyten, Makrophagen, Plasmazellen)<br />
- Verwachsung der Glomerulumschlingen mit der B. K. im Zentrum des Bildes<br />
- Fibrose & Sklerose im Interstitium<br />
- Bowmannsche Kapsel verdickt<br />
- sklerotische Glomerula ist homogen rosa (zugequollen, verödet, ohne Lumen)<br />
- die Bgwzubildungen sind das Narbengewebe<br />
- Sklerose im Nierenmark � Bgwmassen<br />
- 68 -
- Bgwzunahme � Kompression der Tubuli � proximal davon staut sich der Harn �<br />
� hydrostat. Druck↑ � Dilatation der Tubuli<br />
Ätiologie<br />
Ursache können alle Veränderungen der Niernphysiologie sein:<br />
- Niereninfarkte (Infarktschrumpfniere)<br />
- Nephrosen mit massiven Parenchymuntergang<br />
- Nephriti<strong>den</strong> (häufiger Endzustand einer chron. Glomerulonephritis � Membranoprolif. G.)<br />
- Pyelonephritis<br />
- Harnabflussstörungen<br />
Pathogenese<br />
Pathogenese der jeweiligen Vorerkrankung<br />
Differentialdiagnose<br />
Schilddrüsenhyperplasie/ -tumor �<br />
Nr. 53) Chronische Glomerulonephritis, Hund, PAS<br />
PAS = Perjodsäure-Schiff-Reaktion (Nachweis kohlenhydrathaltiger Komponenten =<br />
Glykoproteine, Muzin,, Glykogen)<br />
PAS-positive Zellen � diffuse Rosafärbung bis grob granuläre rot-braune Schollenbildung<br />
Organdiagnose<br />
siehe Präparat Nr. 46)<br />
Makroskopisch: - leicht granuliert<br />
- hell<br />
- im Anschnitt ist nur die Nierenrinde krankhaft verändert<br />
- CAVE! bei langer Krankheitsdauer kann Interstitium mit betroffen sein<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: - normale Nierenstruktur mit deutlichen Glomerula<br />
- lila Gewebe<br />
- 69 -
- Kon<strong>den</strong>sation (Verdickung) der Basalmembran von Glomerulumkapillaren & Bowmannscher Kapsel<br />
- Bgwzubildung im Mesangium<br />
- Synechien (Verwachsungen) der Glomerulumschlingen mit der Basalmembran (Mitte oben im Bild)<br />
- Synechien sind ein sicherer Hinweis auf eine Entzündung der Glomerula<br />
- hoher Glykoprotein- und Mykopolysaccharidgehalt in B. K.<br />
Diagnose:<br />
- alle Glomerula sind betroffen = diffuse chronische Glomerulonephritis<br />
- Mesangiumzellen vermehrt + Basalmembranen verdickt = Membranoproliferative G.<br />
Ätiologie<br />
Ausgangspunkt = Bildung löslicher Immunkomplexe, die mit dem Blutstrom die Niere erreichen<br />
Pathogenese<br />
vgl. mit Präparat Nr. 51)<br />
� hier liegt eine diffuse Glomerulonephritis vom Typ 4 (s.S. 65) vor<br />
� Außerdem auch bei diesem Präparat auf Anti-Basalmembran-Glomerulonephritis eingehen<br />
Differenzierung zwischen verschie<strong>den</strong>en chron. Glomerulonephriti<strong>den</strong><br />
� Spezialfixierung mit Kunststoff & Spezialfärbung (Plastikschnitt mit Versilberung nach<br />
Movart; dient der Anfärbung von Basalmembranen)<br />
Differentialdiagnose<br />
andere Glomerulonephriti<strong>den</strong> (einziges Nierenpräparat, das mit PAS gefärbt ist)<br />
Nr. 54) Embolisch-eitrige Herdnephritis, Fohlen, HE<br />
herdförmige embolisch-eitrige interstitielle Nephritis<br />
- 70 -
Organdiagnose<br />
siehe Präparat Nr. 46)<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: viele grisselige, lila Herde<br />
- granuläre, violette Kreise = Mikroabszesse (Neutrophile Granulozyten & Makrophagen)<br />
- unregelmäßiger Kern + Zytoplasma = Granulozyten<br />
- unregelmäßiger Kern ohne Zytoplasma = Apoptose<br />
- bläuliche granuläre Strukturen im Zentrum der Mikroabszesse = Bakterienrasen<br />
Ätiologie<br />
hämatogene Einschwemmung von Bakterien aus primären Eiterher<strong>den</strong><br />
- Streptokokken - Endokarditis<br />
- Staphylokokken - Tonsillitis<br />
- Actinomyces pyogenes - Pyometra<br />
- E. coli - Panariziumphlegmone<br />
Häufigste Ursache beim Fohlen � Actinobacillus equuli (Fohlenlähme)<br />
Pathogenese<br />
Arretierung der Emboli in glomerulären & intertubulären Kapillaren � eitrige Einschmelzungen<br />
� durch Einschmelzung von Glomerula & Tubuli können Bakterien & Exsudat mit dem Harn<br />
ausgeschie<strong>den</strong> wer<strong>den</strong> � Pyelonephritis<br />
- 71 -
- sind nur Bakterien in <strong>den</strong> Kapillaren � embolisch-eitrige Herdnephritis<br />
- Thrombus mit Bakterien in <strong>den</strong> Kapillaren � ischämischer Infarkt + sek. Einschmelzungen<br />
Actinobacillus equuli-Infektion<br />
- Infektion intrauterin oder omphalogen<br />
- Septikämie & Tod<br />
- wenn Tiere einige Tage überleben<br />
- hyperämische Nieren<br />
- multiple stecknadelkopfgroße bis miliare grau-gelbe Herde (Mikroabszesse)<br />
- Herde in Rinde und auf Oberfläche, nicht im Mark<br />
Außerdem:<br />
Pferd Druse Actinomyces pyogenes & Streptokokken<br />
Rind Actinomyces pyogenes & Streptokokken<br />
Schwein Erysipelothrix rhusiopathiae, Streptokokken<br />
Differentialdiagnose<br />
andere Glomerulonephriti<strong>den</strong> (Mikroabszesse sehr charakteristisch)<br />
Nr. 55) Herdförmige, nichteitrige Glomerulonephritis, Kalb, HE<br />
� weiße Fleckniere (Kälber)<br />
Organdiagnose<br />
siehe Präparat Nr. 46)<br />
Makroskopisch: - einzelne o. zahlreiche speckig-weiße Knoten (0,2 – 1 cm)<br />
- Größere ragen halbkugelig aus Nierenoberfläche hervor & können mit<br />
Kapsel verwachsen sein<br />
- Knoten auf Rinde beschränkt<br />
- nehmen zum <strong>Teil</strong> Form eines stumpfen Keiles an<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: stark dunkelrosa; sieht ansonsten unverändert aus<br />
- 72 -
- Nierenstruktur unverändert<br />
- zwischen Glomeruli/ Tubuli liegen Entzündungszellen (Lymphozyten, Plasmazellen, Makrophagen)<br />
� Makrophagenzahl nimmt mit Dauer der Entzündung zu<br />
� d.h. Makrophagenreiches Gewebe<br />
- Sekundär kommt es zur Atrophie einzelner Glomerula & Zerstörung von Tubuli<br />
� Zelltrümmer nicht mit Granulozyten verwechseln !<br />
- in erweiterten distalen Tubuli liegen Zellzylinder<br />
- evtl. mgr. Pyelonephritis<br />
Ätiologie<br />
Unbekannt; evtl. Virusinfektionen o. immunpathologische Vorgänge<br />
Pathogenese<br />
Doppelseitiges Auftreten spricht <strong>für</strong> hämatogene Ausbreitung<br />
Differentialdiagnose<br />
- anämischer Niereninfarkt (hämor. Randsaum fehlt)<br />
- lymphatische Leukose<br />
- Pyelonephritis<br />
Nr. 56) FIP, Niere, Katze, HE<br />
= feline infektiöse Peritonitis<br />
- 73 -
= Granulomatöse Nephritis<br />
Organdiagnose<br />
siehe Präparat Nr. 46)<br />
Makroskopisch: - multiple weißliche Nekrosen<br />
- bis zu erbsengroße Knötchen in unmittelbarer Gefäßnähe<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: Tip � große Gefäße suchen (äußere Rinde = V. stellata)), da Granulome häufig längs der<br />
Gefäße liegen<br />
unverändert Granulom<br />
- herdförmige Veränderungen mit eingewanderten Entzündungszellen<br />
(v.a. Makrophagen & Plasmazellen)<br />
- innerhalb der Granulome treten häufig auch Nekrosen auf<br />
� granulomatös-nekrotisierende Entzündung<br />
- in Peripherie der Nekrosen liegen mononukleäre Infiltrate<br />
- in älteren Fällen auch Granulationsgewebe<br />
Ätiologie<br />
Erreger: felines Coronavirus<br />
Pathogenese<br />
oronasale Infektion<br />
↓<br />
Zielzellen sind Makrophagen, mit deren Hilfe sie die<br />
Schleimhäute durchdringen & schneller ans Ziel gelangen<br />
- 74 -
Vermehrung in Epithelzellen des Verdauungs- und Respirationstraktes<br />
↓<br />
regionale Lymphknoten<br />
↓<br />
zellassoziierte Virämie<br />
↓<br />
Zerstörung der befallenen Makrophagen vom Immunsystem<br />
↓<br />
Virusfreisetzung & Befall neuer Makrophagen, in <strong>den</strong>en das Virus vor AK geschützt ist<br />
↓<br />
Ablagerung (da nicht Verbrauch) der Immunkomplexe<br />
↓<br />
Entzündungsreaktionen<br />
zwei Formen: Effusive (feuchte oder seröse) Form<br />
- Entsteht, wenn Abwehr der Katze völlig außer Kraft gesetzt ist<br />
- Entzündung der viszeralen Häute und Exsudation in die Körperhöhlen<br />
� Ansammlung fibrinreicher Flüssigkeiten (viskös, gelblich-braun);<br />
� diffuse fibrinöse Peritonitis und Aszites<br />
� Dyspnoe<br />
� Fokale Nekrosen in parenchymatösen Organen und Lymphknoten<br />
Differentialdiagnose<br />
nicht effusive (trockene oder granulomatöse) Form<br />
- Entsteht, wenn Aktivität des Immunsystems noch vorhan<strong>den</strong> ist<br />
� granulomatöse Entzündung in Parenchym. Organen und Lnn.<br />
� Granulome in der Niere auch längs der Gefäße<br />
- Leukose<br />
- Tuberkulose (ebenfalls granulomatöse N., aber beim Rind � Katzen speichern Fett in Tubuli)<br />
- Yersiniose<br />
Geschlechtsorgane<br />
Nr. 57) Pyometra, Katze, HE<br />
Organdiagnose<br />
- 75 -
Uterus<br />
Wandbau: Tunica mucosa (Endometrium)<br />
Epithelium simplex columnare/ pseudostratificatum columnare<br />
Lamina propria mucosae (Stroma endometrialis)<br />
Tunica muscularis (Myometrium)<br />
Tela subserosa<br />
Tunica serosa (Perimetrium)<br />
Tunica adventitia<br />
Endometrium: Epithelium simplex columnare � einschichtig, hochprismatisch (Pferd, Flfr.)<br />
E. pseudostratificatum c. � mehrreihig, hochprismatisch (Wdk., Schwein)<br />
Lamina propria � spinozelluläres Bgw mit tubulär verzweigten Uterindrüsen<br />
Myometrium: zirkuläre Züge glatter Muskulatur (spiraliger, sich kreuzender Verlauf)<br />
außen liegt Gefäßschicht (Stratum vasculosum) an<br />
Perimetrium: zusammengesetzter Organabschnitt (von Außen nach Innen)<br />
Tunica serosa = einschichtiges Peritonealepithel (Mesothel)<br />
Tela subserosa<br />
Stratum musculare longitudinale<br />
Aufgaben des Uterus: Transport der Spermien<br />
Kapazitation (Endreifung) der Spermien (Sekrete der Uterusschleimhaut)<br />
Entwicklung des Keimlings<br />
Austreiben der Frucht<br />
Um diesen Aufgaben gerecht zu wer<strong>den</strong> unterliegt der Uterus periodischen Umbauvorgängen<br />
� uteriner Zyklus<br />
- Synthese von PGF2α in Uterusschleimhaut<br />
- wirkt luteolytisch auf Gelbkörper<br />
Makroskopisch: mäßige Eiterfüllung = dickwandig, ampullenförmig eingeschnürt<br />
starke Füllung = armdick, Wand papierdünn<br />
Uterusschleimhaut ist aufgerissen, nekrotisch, von kl. Geschwüren durchsetzt<br />
Histopathologische Diagnose<br />
- 76 -
Lupe: Hohlorgan ohne Zotten; innen lila gefurcht außen rosa mit Muskelzellen & Gefäßen<br />
von Außen nach Innen � Muskelzellen, lila Punkte (neutrophile G.), Uterindrüsen<br />
- Lumen der Uterindrüsen ist deutlich vergrößert (glandulär zystische Hyperplasie)<br />
- massive leukozytäre Infiltration (nimmt lumenwärts zu)<br />
- neutrophile Granulozyten in <strong>den</strong> Uterindrüsen<br />
- kubisches Epithel der uterinen Drüsen ist durch hydrostatischen Druck des Drüseninhalts abgeflacht<br />
- Plasmazellen & Lymphozyten im endometrialen Stroma � Ausdruck der Eiterbildung<br />
Ätiologie<br />
Bakterielle Infektionen & hormonelle Einflüsse<br />
Rind: puerperale Form � Streptokokken, Staphylokokken, Actinomyces pyogenes. E.coli<br />
nach Schwergeburten, Geburtsverletzungen, Nachgeburtsverhaltungen<br />
- 77 -
postkonzeptionelle Form � Trichomonas fetus<br />
Hund/ Katze: E.coli, Proteus spp. (Eiter schmutzigbraun)<br />
Streptokokken, Staphylokokken (gelb-grün)<br />
nullipare Hunde mittleren Alters im Met-/ Diöstrus (ansteigende Progesteronbildung)<br />
keine Progesterondominanz bei Katzen<br />
Pferd: Pasteurella spp., Streptococcus zooepidemicus<br />
Pathogenese<br />
Ansammlung von Eiter im Uterus bei vollständig oder weitgehend geschlossener Zervix<br />
(Ausnahme Pferd: Zervix meist nicht verschlossen, gelegentlich erweitert)<br />
Progesteron � initiiert Sekretion von immunsuppressiven Substanzen, die Lymphozyten Proliferation<br />
behindern<br />
- Erhöht Infektionsbereitschaft des Endometriums<br />
- Bedingt endometriale Hyperplasie<br />
- Führt zum Verschluss der Zervix<br />
� Voraussetzungen <strong>für</strong> Eiteransammlung<br />
Rind: bei bei<strong>den</strong> Formen wird wegen entzündlicher Veränderungen kein PGF2α gebildet<br />
� Gelbkörper wird nicht zurück gebildet � Zervix schließt sich/ bleibt geschlossen<br />
� Erhöhte Infektionsbereitschaft des Endometriums<br />
Hund/ Katze: Reihe von Geschlechtszyklen ohne folgende Schwangerschaft reicht zur Entwicklung<br />
einer endometrialen Hyperplasie (geht Infektion voraus)<br />
Depotgestagene zur Läufigkeitsunterdrückung begünstigen Pyometra<br />
oder<br />
endokrine Dysfunktion � verlängerte Östrogenphase � Zervix steht lange offen<br />
Folgen: - Durchbrüche<br />
- Degenerative Veränderungen von Nierentubuli, Leber, Herz, KM (bakt. Toxine)<br />
- Bakteriämie/ Septikämie<br />
- Glomerulonephritis<br />
- histiozytäre & plasmazelluläre Proliferationen der Leber<br />
Differentialdiagnose<br />
einziges Uteruspräparat<br />
Nr. 59) Colimastitis, Rind, HE<br />
= akute bösartige Mastitis = Mastitis acuta (mit Störung des Allg.befin<strong>den</strong>s) gravis (Schweregrad)<br />
= Mastitis paralytica (Festliegen der Tiere)<br />
Organdiagnose<br />
Milchdrüse: Zusammengesetzte, modifizierte, apokrine Hautdrüse<br />
- 78 -
tubulo-alveolärer Grundaufbau in zentralen Drüsenkomplexen (Drüsenparenchym)<br />
- Alveolen (Milchbildung &/-abgabe)<br />
- Ductus lactiferi (Transport der Milch)<br />
- Sinus lactifer (Milchzisterne, Milchsammelraum)<br />
Alveolen: einschichtiges Drüsenepithel<br />
Sekretgefüllte Alveolen = niedriges Epithel<br />
Sekretbildung = isoprismat. E.<br />
Sekretabgabe = hochprismatisches E.<br />
Ductus lactiferi: Ausführungsgänge im intralobulären Bgw<br />
Vereinigen sich zu größeren, interlobulären Schläuchen<br />
prox. Abschnitte � einschichtiges iso-/ bis hochprismat. E.<br />
dist. Abschnitte � zweischichtiges Epithel<br />
Milchgänge wer<strong>den</strong> außen von lockerem Netz aus Myoepithelien<br />
umgeben (Milchausschüttung)<br />
Sinus lactifer: erweiterte Sammelräume<br />
zweischichtiges, iso- bis hochprismatisches Epithel (viele Buchten/ Nischen)<br />
beim Rind 1 Zisterne entwickelt (Pferd 2, Schwein 2-3, Flfr. 0)<br />
besteht aus Drüsen- und Zitzenteil<br />
Interstitium: kollagene Faserbündel mit glatten Muskelzellen<br />
um Endalveolen korbartig feine elastische Fasern<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Makroskopisch:<br />
Hyperämie/ Zyanose<br />
der Haut<br />
hgr. Schwellung der<br />
Subkutis<br />
Euterparenchym<br />
braun-rot<br />
Schnittfläche ist<br />
trocken wegen<br />
Gewebsnekrosen<br />
Interstitium erweitert<br />
Lupe: gleichmäßige rosa Fläche, durchzogen von „Streifen“ aus lila Zellen + runde, zelllose Areale<br />
- 79 -
- hgr. Hyperämie in <strong>den</strong> Kapillaren<br />
- Blutungen, serofibrinöse Ergüsse in das Interstitium mit Thrombosierung von Blut-/ Lymphgefäßen<br />
- Lymphgefäßthromben zeigen typisches Fibrinnetzwerk<br />
- Nekrosen (Granulozyten & Eiweißmassen) in Alveolen & Milchganglumina<br />
- Leukozytenansammlung, n.Granuloz. + Kerntrümmer in Alveolen<br />
- Fett im Alveolarepithel<br />
- interstitielles Ödem (Plasmaaustritt aus, durch Bakterientoxin geschädigten, Gefäßen)<br />
Ätiologie<br />
Infektionsweg: galaktogen<br />
Wundinfektion, lymphogene Infektion<br />
hämatogen<br />
Resistenzmechanismen Rind: Schließmuskel + Strichkanalkeratin<br />
� bakterizide Wirkung wegen Lipid-/ Proteingehalt<br />
Erreger: E. coli; aber auch: Klebsiella pneumoniae<br />
Fusobacterium necrophorum<br />
Staph. aureus<br />
Pasteurella haemolytica<br />
Pseudomonas aeruginosa u.a.<br />
Pathogenese<br />
Einteilung der Mastiti<strong>den</strong> nach Renk:<br />
1) Akute katarrhalisch-eitrige Galaktophoritis (Milchsammelgänge) & Mastitis<br />
2) Chronische katarrhalische Galaktophoritis & Mastitis (Drüsenparenchym)<br />
3) Akute bösartige Mastitis<br />
4) Chronische eitrig-abszedierende Mastitis<br />
5) Interstitielle nichteitrige Mastitis<br />
6) Granulomatöse Mastitis<br />
bei 1 & 2 bleiben Veränderungen auf Alveolarbereich beschränkt<br />
bei 4 sind Abszesse deutlich zu erkennen<br />
bei 5 sieht man herdförmige Ansammlung von Lymphozyten, Plasmazellen, Histiozyten &<br />
Mastzellen<br />
- 80 -
ei 6 bil<strong>den</strong> sich Granulome entlang des Kanalsystems der Mamma<br />
Lymphgefäße haben flaches Endothel � Füllung mit Fibrin � Drainage blockiert �<br />
� Sequesterbildung im Gewebe<br />
Differentialdiagnose<br />
Fibrinöse Pneumonie � Differenzierung durch: Bronchialknorpel (Lunge)<br />
Pleura (Lunge)<br />
Flimmerepithel (Lunge)<br />
Fettzellen (Milchdrüse)<br />
Milchsteinchen (Milchdrüse)<br />
Stütz- und Bewegungsapparat<br />
Nr. 61) Osteodystrophia fibrosa, Unterkiefer, Hund, Trichom-Masson<br />
= erhöhte Resorption mineralisierten Knochens infolge gesteigerter Osteoklastentätigkeit &<br />
Ersatz des normalen Knochengewebes durch nicht ausreichend mineralisiertes Osteoid &<br />
koll. Bgw.<br />
Organdiagnose<br />
Knochen:<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: längs angeschnittener Zahn, Unterkiefernerv, Arterie, Vene<br />
Schaltlamelle<br />
Volkmann-Kanal (verb. Havers-<br />
Kanäle)<br />
Havers-Gefäß mit Speziallamelle<br />
Querschnitt durch Substantia<br />
compacta eines Röhrenknochens mit<br />
Havers-System, Hund , Schmorl<br />
- 81 -
- Osteoklasten = mehrkernige Riesenzellen (bauen Knochen vom Rand her ab)<br />
- Osteoklasten sind rötlich-braun angefärbt & auch mit Lupe schon gut zu sehen<br />
- Ersatz = Bgwbildung durch Fibroblasten (spindelförmig, rot-braun)<br />
- Kollagenfasern blaugrau<br />
- kleine Löcher = Osteozytenkerne<br />
- mittelgroße Löcher = Havers Kanäle (Versorgung)<br />
- Anteil des Knochens um Zahn herum ist massiv verändert<br />
- um Unterkiefernerv & Arterie ist Knochen unverändert<br />
- oben im Präparat kutane Mundschleimhaut<br />
- unterschiedliche Anfärbung des intakten Knochens ist Färbeartefakt & weist nicht auf<br />
unterschiedliche Knochenmineralisation hin<br />
Ätiologie<br />
zentraler pathogenetischer Mechanismus � Hyperparathyreoidismus (Epithelkörperchenüberfunktion)<br />
� Hyperplasie oder Tumor der Parathyreoidea<br />
primärer Hyperparathyreoidismus idiopathische Hyperplasie oder endokrin aktiver<br />
Nebenschilddrüsentumor (= vermehrte Bildung von<br />
Parathormon) beim Haustier selten<br />
sekundärer Hyperparathyreoidismus entsteht als Gegenregulation auf eine länger<br />
anhaltende Hypokalzämie und/ oder einen Mangel an<br />
1,25 (OH)2D3 (= 1,25-Dihydroxycholealciferol)<br />
= gestörtes Ca:P-Verhältnis mit P-Überschuss<br />
� renaler H. durch chron. Niereninsuffizienz v.a. beim Hund wichtiges<br />
Krankheitsbild<br />
� alimentärer H. P-Überschuss & Ca-Mangel in der Nahrung<br />
Pferd: starke Kleiefütterung (Müllereipferde)<br />
Wei<strong>den</strong> mit oxalatreichen (Ca-Ausfällung) tropischen<br />
Gräsern<br />
Rind: selten<br />
- 82 -
Pathogenese<br />
Flfr.: reine Herzmuskel-/ Innereienfütterung<br />
Schwein: kein Problem mehr wegen Mastfutter<br />
tertiärer Hyperparathyreoidismus sek. H. wird im Laufe des Krankheitsgeschehens<br />
autonom, d.h. unabhängig von Blutspiegel wird<br />
vermehrt Parathormon produziert<br />
Pseudohyperparathyreoidismus Induktion von Hyperkalzämie durch Synthese von<br />
Parathormon, Parathormonanalogen o.<br />
Prostaglandinen in nicht parathyreoidalen Tumoren<br />
(z.B. Leukose, Analbeutelkarzinome)<br />
� system. Auswirkung auf Knochen gering<br />
Osteodystrophie unbekannter Ursache Hypertrophische Osteodystrophie des Hundes<br />
bei schnell wachsen<strong>den</strong> Junghun<strong>den</strong> großwüchsiger<br />
Rassen<br />
Verdickung der Metaphysen (lange Röhrenknochen)<br />
renaler Hyperparathyreoidismus<br />
1. Pathomechanismus:<br />
chronische Niereninsuffizienz mit<br />
Verminderung des Glomerulumfiltrates<br />
↓<br />
P-Retention = Hyperphosphatämie<br />
↓<br />
nach MWG kommt es zur Erhöhung der<br />
Kalziumphosphatkonzentration (= extrem schlecht löslich) im Blut<br />
↓<br />
Ausfällung dieser Verbindung („Verkalkung“), sobald<br />
Produkt der Konzentration (in mg/ dl) von Ca & P im Serum > 60 wird<br />
↓<br />
Hypokalzämie<br />
↓<br />
Nebenschilddrüse reagiert mit regulativer Hyperplasie<br />
↓<br />
Ausschüttung von Parathormon<br />
↓<br />
gesunde Niere � Hemmung tubulärer Phosphatrückresorption (= gesteigerte Phosphatausscheidung)<br />
& Vermind. der renalen Ca-Ausscheidung<br />
insuffiziente Niere � reagiert nur schlecht auf das Hormon<br />
<strong>2.</strong> Pathomechanismus:<br />
Bildung von 25-Hydroxyccholecalciferol aus<br />
Cholecalciferol (Vitamin-D-Vorstufe) in der Leber<br />
↓<br />
Hydroxylierung von 25-Hydroxycholeaciferol in<br />
- 83 -
Epithelzellen der proximalen Tubuli der Niere zu<br />
1,25 Dihydroxycholeaciferol = 1,25 (OH)2D3<br />
niedriger 1,25 (OH)2D3-Spiegel: verstärkte Parathormonausschüttung<br />
Mangel an Ca-Transportprotein im Darm<br />
= Mangelnde Ca-Aufnahme aus Nahrung<br />
Einfluß des Parathormons:<br />
� Verstärkung der Hypokalzämie<br />
gesteigerte Osteoklastenaktivität<br />
↓<br />
vermehrte Resorption mineralisierten Knochens (Ca-Mobilisierung)<br />
↓<br />
Ersatz durch Osteoid o. koll. Bgw<br />
der Knochen kann dabei: seine Form behalten (isototische Form der Osteodystrophie)<br />
seinen Umfang vermehren (hyperostotische Form)<br />
an Substanz verlieren (hypostotische Form)<br />
Veränderungen: - betreffen am stärksten die mechanisch stark beanspruchten Knochen<br />
Unter-/ Oberkiefer (Rubber-Jaw der Hunde, Nilpferdkopf der Pferde)<br />
Rippen & lange Röhrenknochen<br />
- der Knochen wird so weich, dass man ihn schnei<strong>den</strong> kann & Zähne<br />
ausfallen; Spontanfrakturen möglich<br />
- Veränderung immer beidseitig (DD zu Tumor)<br />
- bei Überschreitung des Löslichkeitsproduktes von Ca & P im Serum<br />
kommt es zu Verkalkungen im gesamten Organismus<br />
Differentialdiagnose<br />
Osteosarkom<br />
Nr. 62) Hyalinschollige Muskeldegeneration, Pferd, HE<br />
= Zenkersche Muskeldegeneration (wichtigste Degenerationsform des Muskels)<br />
regressive Muskelveränderungen:<br />
- 84 -
Organdiagnose<br />
Muskulatur:<br />
trübe Schwellung (einfachste Form; Schwellung der Mitochondrien)<br />
hydropisch-vakuoläre Degeneration Äquivalent versch. Stoffwechselstörungen<br />
(Schwellung Mitochondrien, eR, T-System)<br />
hyalinschollige Degeneration Auflösung der Querstreifung & fein fibrillärer<br />
Ordnung<br />
Kontinuitätsverlust des Sarkolemm<br />
1) Skelettmuskelzelle (-faser)<br />
� entsteht durch Verschmelzung von<br />
Myoblasten<br />
2) Zellkern (mehrere pro Muskelzelle),<br />
peripher<br />
3) Endomysium (Scheide um Muskelfaser)<br />
- Myofibrillen durchziehen ges. Zelle<br />
(Bausteine = Aktin-/ Myosinfilamente)<br />
- mehrere Zellen wer<strong>den</strong> vom Perimysium<br />
internum zum Primärbündel zusammen gefasst<br />
- mehrere Primärbündel vom Perimysium<br />
externum zum Sekundärbündel<br />
- Außen = Epimysium<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: längs & quer angeschnittene Muskelzellen<br />
- 85 -
Hyalos = Glas; glasartiges Aussehen, Verlust Querstreifung, homogener Charakter<br />
schollig = Sarkoplasma zerfällt in einzelne Schollen<br />
- Infiltration des nekrotischen Bereiches mit Leukozyten (v.a. Makrophagen & n. G.)<br />
- übrig bleiben nur leere Schläuche (wie im Leben…)<br />
Ätiologie<br />
bei Belastungsmyopathie: Lumbago (Feiertagskrankheit, Kreuzverschlag)<br />
Rückenmuskelnekrose (Schwein)<br />
tritt sie beim Schwein einseitig auf � „Bananenkrankheit“<br />
Muskulatur hat ein gekochtes Aussehen & zeigt Blutungen<br />
bei Weißmuskelkrankheit: Lämmer, Kälber, Fohlen<br />
durch Mangel an Vit. E, Selen<br />
Pathogenese<br />
Belastungsmyopathien:<br />
Porzines Stress Syndrom (PSS) = maligne Hyperthermie = Hyperpyrexie-Syndrom<br />
� Ursache ist Punktmutation in Strukturgen des Ca-Kanals im sarkoplasmatischen<br />
Retikulum (Ryanodin-Rezeptor)<br />
� PSE-Fleisch (pale, soft, exudative)<br />
� dazu gehört auch akute Rückenmuskelnekrose<br />
paralytische Myoglobinämie & -urie = Lumbago = schwarze Harnwinde<br />
� Ursache unklar<br />
� evtl. Vermehrung von Muskelglykogen während Ruhepause nach starker<br />
Beanspruchung<br />
Diätetische Myopathien:<br />
Weißmuskelkrankheit = White muscle disease<br />
� junge Tiere<br />
� Mangel an Selen & α-Tocopherol (Vit. E)<br />
� schützen Zellmembran vor Peroxidation ihrer mehrfach ungesättigten FS<br />
Differentialdiagnose<br />
toxische Myopathien<br />
Nervensystem<br />
Zellen des Nervengewebes:<br />
2 Strukturelemente � Nervenzellen & Gliazellen<br />
Nervenzellen: - bil<strong>den</strong> lang gestreckte Fortsätze (Dendriten & 1 Axon) aus<br />
- Verknüpfung untereinander über Synapsen<br />
- zentrales Kerngebiet (Perikaryon)<br />
- Reizaufnahme über baumartig verzweigte Dendriten<br />
- Reizverarbeitung im Perikaryon<br />
- Reizweiterleitung über das Axon<br />
- 86 -
unipolare =<br />
Stäbchen &<br />
Zapfen<br />
bipolare =<br />
Sinnesorgane<br />
pseudounip. =<br />
sensible<br />
Spinal-/<br />
Kopfganglien<br />
multipolare =<br />
häufigste<br />
Zellen<br />
Purkinje-Z. =<br />
Kleinhirn<br />
Pyrami<strong>den</strong>z. =<br />
Großhirn<br />
Nervenfasern: - zentraler Achsenzylinder + äußere Hülle<br />
- Hülle aus Gliazellen (Oligo<strong>den</strong>drozyten bzw.<br />
Schwann-Zellen)<br />
Gliazelle (Neuroglia, Gliozyt)<br />
- somato-afferente, sensible Nervenfasern (Sinneswahrnehmung)<br />
- somato-efferente, motorische Nervenfasern (quergestreifte Muskulatur)<br />
- vegetativ-afferente, autonome Nervenfasern (innere Organe,<br />
- vegetativ-efferente, autonome Nervenfasern para-/ sympathisch)<br />
- Ernährung, Stoffaustausch der Nervenzellen<br />
- fördern Erregungsleitung durch Ausbildung von Nervenfaserhüllen<br />
- als Sonderbildg. des Makrophagensystems unspez. Abwehraufgaben<br />
- Neuroglioblast = Stammzelle<br />
- Gliazelle des ZNS:<br />
- Ependymzelle<br />
- Makroglia (Astrozyt)<br />
- 87 -
- Oligo<strong>den</strong>drozyt<br />
- Mikroglia (Hortega-Glia)<br />
- Gliazelle des PNS:<br />
- Schwann-Zelle (Lemnozyt)<br />
- Amphizyt (Mantel-/ Satellitenzelle)<br />
Einteilung: zerebrospinales (oikotropes, somatisches) Nervensystem<br />
Großhirn<br />
Kleinhirn<br />
Stammhirn<br />
Rückenmark<br />
Rückenmark :<br />
vegetatives (idiotropes, autonomes) Nervensystem<br />
zerebrospinale Ganglien<br />
vegetative, autonome Ganglien<br />
Meningen<br />
Innenräume des ZNS (Ventrikel, Plexus chorioideus, Ependym)<br />
- 88 -
graue Substanz : multipolare Nervenzellen (Ganglienzellen, Neurocyti)<br />
Gliazellen (Astrozyten)<br />
Columna dorsalis (Dorsalhorn), C. lateralis, C. ventralis laufen als<br />
Stränge durch das Rückenmark<br />
die multipolaren Nervenzellen entlassen Fortsätze (Wurzel-/<br />
Binnenzellen)<br />
- Wurzelzellen = Axone verlassen RM über Ventralhorn �<br />
Radix ventralis<br />
- Binnenzellen = funktionelle Koordination innerhalb grauer<br />
Substanz<br />
Schaltzellen = vermitteln in einem Segment einer<br />
Seite<br />
Kommissurenzellen = kreuzen ins gegenüberliegende<br />
Segment der anderen Seite<br />
Assoziationszellen = auf-/ absteigende Äste; wirken<br />
homo-/ kontralateral auf Wurzelzellen<br />
Strangzellen = treten mit Axonen in weiße Substanz<br />
Entzündung der grauen Substanz = Polioencephalitis<br />
weiße Substanz: längs verlaufende markhaltige Nervenfasern (Neurofibrae myelinata)<br />
Gliazellen (Oligo<strong>den</strong>drozyten = bil<strong>den</strong> Myelinhüllen im ZNS)<br />
[Oligo<strong>den</strong>drozyten sehen histologisch wie Lymphozyten aus]<br />
vereinzelt Astrozyten<br />
Entzündung der weißen Substanz = Leukoencephalitis<br />
Entzündung beider Anteile = Panencephalitis<br />
Kleinhirn: - Markkörper folgt der äußeren Faltenbildung<br />
- Mark zweigt sich zu Marklamellen aus weißer Substanz auf, die von gr. S. überzogen<br />
wer<strong>den</strong> (Cortex cerebelli)<br />
- Kleinhirnrinde (von außen nach innen)<br />
- Molekularschicht (Stratum moleculare)<br />
- marklose Nervenfasern<br />
- Dendriten<br />
- Nervenzellen (Korbzellen & Sternzellen)<br />
- Ganglienzellschicht (Stratum neuronorum piriformium, Stratum ganglionare)<br />
- Purkinje-Zellen<br />
- Körnerschicht (Stratum granulosum)<br />
- kleine Nervenzellen � kleinere Gruppen, dazwischen<br />
kernfreie Inseln<br />
- 89 -
- große Körnerzellen � verbin<strong>den</strong> sich mit Dendriten kleiner<br />
Körnerzellen & ziehen dann ins Stratum<br />
moleculare<br />
Großhirn: graue Substanz � Außen, im zentralen Höhlengrau & als Kerngebiete<br />
weiße Substanz � zentrales Mark, verbindet Hauptmasse des Gehirns<br />
Großhirnrinde von außen nach innen:<br />
- Stratum moleculare<br />
- kleine Nervenzellen (Schalt-/ Assoziationszellen)<br />
- Stratum granulare externum<br />
- pyrami<strong>den</strong>förmige Nervenzellen, die Fortsätze in oberfl. & tiefe<br />
Schicht sen<strong>den</strong><br />
- Stratum neuronorum pyramidalium externum (äußere Pyrami<strong>den</strong>schicht)<br />
- große Pyrami<strong>den</strong>zellen<br />
- Stratum granulare internum<br />
- kleine Nervenzellen (Schaltneurone; Fasern bil<strong>den</strong> makr.<br />
erkennbare Streifen)<br />
- Stratum neuronorum pyramidalium internum<br />
- Riesenpyrami<strong>den</strong>zellen, deren Axone <strong>Teil</strong> der Pyrami<strong>den</strong>bahnen<br />
formen<br />
- Stratum neuronorum multiformium<br />
- unterschiedliche Nervenzellen, die in weiße Substanz übergehen<br />
- von Neuriten durchzogen<br />
Großhirnmark:<br />
- je höher entwickelt ein Gehirn, desto größer ist der Markanteil<br />
- Nervenfasern & Gliazellen<br />
- Oligo<strong>den</strong>drozyten bil<strong>den</strong> Myelinschei<strong>den</strong><br />
- Astrozyten dienen der mechan. Stabilität & Stoffwechselversorgung<br />
- Hohlraum zwischen Blutgefäßen des ZNS & Füßen der Astrozyten<br />
= Virchow-Robinscher Raum (perivaskulärer Raum, der große Rolle<br />
als „Aufmarschgebiet“ <strong>für</strong> Entzünd.<br />
spielt � hier Entzündungs-<br />
Zellinfiltrate suchen !!)<br />
- 90 -
Peripheres Nervensystem:<br />
1) Pia mater<br />
2) Stratum moleculare (zellarm)<br />
3) Stratum granulare externum (viele kleine Zellen,<br />
10µm)<br />
4) Stratum neuronorum pyramidalium externum<br />
(mittelgroße bis große [25µm] Pyrami<strong>den</strong>zellen)<br />
5) Stratum granulare internum<br />
6) Stratum neuronorum pyramidalium internum<br />
(30-40µm)<br />
7) Stratum multiforme<br />
- zerebrospinale Nerven = sensible & motorische Fasern<br />
- vegetative Nerven = sympathische & parasympathische Fasern<br />
- Ganglien = Ansammlungen von Perikarya<br />
- Perikarya = Kernbereiche von Nervenzellen<br />
- zerebrospinale Ganglien = paarig an Dorsalwurzeln der Spinalnerven (Spinalganglien)<br />
- pseudounipolare Nervenzellen = funktionelle Schaltstellen afferenter,<br />
sensibler Neurone<br />
- Mantelzellen (Um Perikaryon) = Fkt. peripherer Gliazellen<br />
- Vegetative Ganglien = Ansammlung von Nervenzellen<br />
- multipolare Nervenzellen<br />
- Mantelzellen<br />
- Schwannsche Zellen = Myelinbildner im PNS<br />
Meningen: Pachymenix (Dura mater, harte Hirnhaut)<br />
- straffes, gefäßarmes Bgw<br />
Leptomenix (weiche Hirnhaut)<br />
- äußere, dünne Spinnwebenhaut (Arachnoidea)<br />
Subarachnoidalraum<br />
- innere, zarte Hirnhaut (Pia mater)<br />
Ventrikel: - Flüssigkeitsgefüllte Kammern & Zentralkanal<br />
- epitheliale Wandauskleidung (Ependym)<br />
- Plexus chorioideus (Adergeflecht) � Bildung des Liquor cerebrospinalis<br />
- 91 -
Nr. 64) Staupeencephalitis, Hund, HE<br />
nichteitrige Entzündung � spricht <strong>für</strong> Virusinfektion<br />
Klinik: - Muskelzuckungen der Gliedmaßen „Staupe-Tick“<br />
- & im Kopfbereich „Fliegenfangen“<br />
- Koordinationsstörungen<br />
- Drehbewegungen<br />
- häufig mit eitriger Pneumonie + pustulöser Dermatitis + Schmelzdefekte an <strong>den</strong> Zähnen<br />
- Außerdem kann hypertrophische Osteodystrophie entstehen<br />
- Haarverlust um Augen wegen vermehrter Tränenprod. „Brillenphänomen“<br />
Organdiagnose<br />
Rhombencephalon � Kleinhirn, Stammhirn, 4. Ventrikel<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: 2 <strong>Teil</strong>e: rosa, einheitlich<br />
lila Würste mit rosa Umhüllung<br />
Stratum moleculare<br />
1) Korbzellen (+ Sternzellen bil<strong>den</strong> S. moleculare)<br />
3) Purkinje-Z. entlassen apikalen Stamm<strong>den</strong>driten<br />
2) Bergmann-Stützzellen (Gliazellen)<br />
� bil<strong>den</strong> Membrana limitans gliae superficialis<br />
4) Körnerschicht<br />
4 Zelltypen: - Körnerzellen<br />
- große Golgi-Zellen<br />
- kleine Golgi-Zellen<br />
- Horizontalzellen<br />
- 92 -
- große Zellen mit vakuoligem Zytoplasma = Makrophagen (Mikroglia)<br />
- intranukleäre EK: Coudry-Typ-B-Ek � so groß wie Nucleolus<br />
Coudry-Typ-A-Ek � deutlich größer<br />
- nichteitrige Entzündung mit perivaskulären Infiltraten<br />
- Myelinschei<strong>den</strong> färben sich rot an; weiße Löcher im Präparat sind demyelinisiert<br />
- Zellansammlung um Gefäßanschnitte (Lymphozyten & Makrophagen im Virchow-Rubinschen<br />
Raum<br />
- Demyelinisierungsherde in weißer Substanz & in <strong>den</strong> Her<strong>den</strong> perivaskuläre Infiltrationen & Ek<br />
� demyelinisierende nichteitrige Leukoencephalitis<br />
Ätiologie<br />
Erreger: Morbillivirus der Familie Paramyxoviridae<br />
Pathogenese<br />
Staupeencephalitis der Hundewelpen<br />
- hämatogene Infektion<br />
- Virusantigen in allen Hirnregionen, v.a. Großhirnrinde<br />
- perivaskuläre & meningeale, lymphoplasmazelluläre Infiltrationen, Nervenzellnekrosen<br />
� panenzephalitisches Bild<br />
nervöse Staupe des jugendlichen & jungen erwachsenen Hundes<br />
- hämato-liquorgene Infektion<br />
- Virusantigen in Albi der Umgebung des 4. Ventrikels, Kleinhirnmark, Medulla oblongata)<br />
- Entmarkungsprozesse, Astrozytenschwellung, Gliosen, zytoplasm. & intranukl. EK in<br />
Astrozyten & Ependymzellen<br />
� Entmarkungsenzephalitis<br />
- 93 -
chronisch-progressive, multifokale Staupeenzephalitis<br />
- Tiere zwischen 4 – 8 Jahren<br />
- Kleinhirnalbi, Capsula interna, Tractus optici betroffen<br />
- multifokale, nekrotisierende Prozesse, eosinophile Kerneinschlüsse in Astrozyten<br />
Old Dog Encephalitis<br />
- Tiere älter 6 Jahre<br />
- Großhirnrinde, Basalganglien, Thalamus, Hypothalamus<br />
- perivaskuläre Rundzellinfiltrate, eos. EK im Zytoplasma<br />
Differentialdiagnose<br />
andere Virusbedingte Enzephaliti<strong>den</strong>: - Swine vesicular disease (Enterovirus, Picornaviridae)<br />
- Tollwut (Lyssavirus, Rhabdoviridae)<br />
Nr. 65) Fibrinös-eitrige Meningomyelitis, Kalb, HE<br />
= Entzündung der Häute des Rückenmarks;<br />
meist als Meningoenzephalomyelitis, mit Beteiligung des Gehirns<br />
Organdiagnose<br />
Präparat kann Rückenmark, aber auch Stammhirn sein:<br />
Rückenmark siehe S. 89<br />
Stammhirn vgl. S. 90 f.<br />
Makroskopisch: Hirnhäute<br />
erscheinen milchig getrübt<br />
Veränderung ist<br />
v.a. an Hirnbasis zu sehen<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: rosa Gewebe, einheitlich<br />
schmale längliche & große ovale<br />
lila Bereiche eingelagert<br />
� graue Substanz<br />
- 94 -
� Subarachnoidalraum<br />
(hier liegen Hauptveränderungen)<br />
� Infiltration mit neutrophilen Gr.<br />
� Fibrinansammlungen<br />
vereinzelt auch Bakterienkolonien (evtl. lila Wolke links oben)<br />
Ätiologie<br />
Hauptursache: hämatogene Einschwemmung septischer Emboli<br />
(mit Etablierung eines erregerspezifischen Folgeprozesses � herdförmiges Muster)<br />
Außerdem mögliche: direkte Infektion = offene Hirn-/ Rückenmarksverletzungen<br />
eitrige oder abszedierende Basilarmeningitis<br />
Erreger = Pasteurellen, Actinomyces pyogenes<br />
Pathogenese<br />
otogene Infektion = Mittelohrentzündung<br />
rhinogene Infektion = tief greifende Nekrosen im Nasenraum<br />
aszendierende Inf. = Listeriose (Listeria monocytogenes)<br />
Sonderformen = Tuberkulose (hämatogen über Pl. chorioideus mit<br />
Liquorstrom in das basale Zisternensystem)<br />
Grundlei<strong>den</strong>: allg. Sepsis<br />
einschmelzende Lungenprozesse<br />
bakterielle Endokarditis<br />
Aktinomykose (Actinomyces bovis)<br />
Aktinobacillose (Actinobacillus lignieresii)<br />
Botryomykose (Staphylococcus aureus)<br />
� Alle mit granulomatös-eitriger Entzündung<br />
& typischer Drusenbildung<br />
Infektion von Meninx & Ventrikelsystem<br />
�direkt embolisch oder durch Übergreifen einschmelzender Prozesse<br />
- 95 -
↓<br />
Demarkierung (Ausbildung einer Abszesskapsel)<br />
↓<br />
motorische Ausfallserscheinungen & epileptische Anfälle<br />
Erreger: Rind: Fusobacterium necrophorum<br />
Actinomyces pyogenes<br />
Streptococcus spp.<br />
Haemophilus somnus � führt in Mastbetrieben zur<br />
Infektiösen, septikämisch-thrombosieren<strong>den</strong> Meningoenzephalomyelitis = ISTME<br />
Differentialdiagnose<br />
Schaf: Fusobacterium necrophorum<br />
Actinomyces pyogenes<br />
Haemophilus ovis � bei Schaflämmern ISTME-ähnlich<br />
Schwein: Actinomyces pyogenes<br />
Erysipelothrix rhusiopathiae<br />
Salmonella spp.<br />
Pferd: Actinobacillus equuli<br />
Flfr.: Streptococcus spp. (Folgebild einer Endokarditis)<br />
Virusbedingte Enzephaliti<strong>den</strong> = nichteitrig<br />
Prionenbedingte Enzephaliti<strong>den</strong> = Status spongiosus (großvakuolige Veränderungen)<br />
Nr. 66) Borna-Encephalitis, Schaf, HE<br />
= nichteitrige Polioencephalitis<br />
(nichteitrig = Lymphozyten & Makrophagen)<br />
Organdiagnose<br />
Großhirn siehe S. 90 f.<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: homogen rosa, mit lila Punkten mit durchsichtigem Hof<br />
blaue dicke Linie = Gyrus <strong>den</strong>tatus (halbkreisförmige Ansammlung von Neuronen)<br />
� Gyrus <strong>den</strong>tatus = <strong>Teil</strong> des Hippocampus (Tollwut = Negri-EK; Borna = J.-D.-EK)<br />
- Stratum moleculare<br />
- Stratum granulare<br />
- Stratum subgranulare<br />
- 96 -
Ätiologie<br />
Erreger: Bornavirus der Familie Bornaviridae, Ordnung Mononegavirales<br />
behülltes Einzelstrang-RNA-Virus mit negativer Polarität<br />
Pathogenese<br />
elektronenmikroskopisch nicht nachweisbar<br />
führt gelegentlich zur Bildung Joest-Degenscher EK in Nervenzellen<br />
natürliche Replikation in Nervenzellen<br />
codiert <strong>für</strong> zwei spezif. Proteine & ein Glykoprotein<br />
Virus hat KEINEN primär zytopathogenen Effekt<br />
Entzündungszellen fin<strong>den</strong><br />
sich perivaskulär (um die<br />
Gefäße) aber auch frei<br />
= lymphoplasmozytäre<br />
Gefäßummantelung<br />
Infiltrate sind bei Borna in 7-<br />
8 Lagen zu sehen (sehr dick)<br />
weißer Saum um das Gefäß<br />
ist ein Artefakt (Gehirn<br />
schrumpft bei der Fixation)<br />
Astrozytenproliferationen =<br />
Astrogliose = vermehrte<br />
Zellzahl, ovaler Kern<br />
� virusinduzierte, T-Zell-vermittelte Immunopathie im Sinne einer Hypersensitivitätsreaktion vom<br />
„verzögerten Typ“<br />
� Hauptsächlich betroffen ist das Pferd,<br />
aber auch andere Equi<strong>den</strong> & das Schaf, seltener das Rind & die Katze („Staggering disease“)<br />
Kausalzusammenhang zwischen Psychosen & dem Erreger beim Mensch wahrscheinlich<br />
� Antikörpernachweis (AK richten sich auch gegen befallene Hirnzellen)<br />
� Entzündung v.a. der Großhirnrinde, nächst häufig subkortikale Grisea & seltener Rautenhirn & RM<br />
� Virusantigen v.a. im Limbischen System = Hippocampus (Steuerung der Emotionen)<br />
respiratorische Nasenschleimhaut Riechschleimhaut<br />
↓ ↓<br />
N. trigeminus Fila olfactoria<br />
↓<br />
- 97 -
Ganglion Gasseri<br />
ZNS<br />
� häufig Verhaltensstörungen mit ungezügelter Fresslust (Obesity syndrome)<br />
chronisch-degenerative Hirnveränderungen mit terminalem Hydrocephalus<br />
Differentialdiagnose<br />
andere Virusbedingte Enzephaliti<strong>den</strong><br />
Nr. 67) Meningoencephalitis bei Listeriose, Schaf, HE<br />
= gemischtzellige, aszendierend-neurogene Meningoenzephalomyelitis<br />
multifokale granulomatöse Hirnstammenzephalitis<br />
Verlaufsformen: Jungtier � septikämischer Verlauf mit Nekrosen in zahlreichen Organen<br />
Organdiagnose<br />
Hirnstamm vgl. S. 90 f.<br />
Kleinhirn s.S. 90/ 92<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: homogen rosa mit lila Zellen<br />
Stute � Listerienendometritis<br />
Schaf/ Rind � Listerienencephalitis (Hirnstammencephalitis)<br />
Präparat 1) 4. Ventrikel mit Medulla oblongata & <strong>Teil</strong>en des Kleinhirns oder<br />
2) Mesencephalon<br />
(Mittelhirn) mit Aquaeductus sylvii<br />
Frei im Neuropil (Parenchym)<br />
� Mikroabszesse aus<br />
neutrop. G. = eitrige E.<br />
� um Mikroabszesse liegen<br />
Vakuolen als Anzeichen<br />
eines Ödems<br />
perivaskuläre Infiltrate<br />
- 98 -
� Makrophagen/ Lymphoz.<br />
= nichteitrige Entzündung<br />
� gemischtzellige Entzündung<br />
Ätiologie<br />
Erreger: Listeria monocytogenes<br />
Gram-positiv<br />
liegt extrazellulär (in Nervenzellperikaryen) & intrazellulär (in Makrophagen)<br />
Vorkommen: Winter/ Frühjahr bei Maissilagefütterung<br />
Anreicherung auf Grund ihrer Psychrophilie & enormer Säuretoleranz<br />
Pathogenese<br />
Erregereintritt in Mundhöhle<br />
↓<br />
Über Axone der Nn. trigeminus & glossopharyngeus<br />
↓<br />
in entsprechendes Ganglion<br />
↓<br />
über Nervenwurzeln, Meninx in zugehörige Rautenhirnkerngebiete<br />
↓<br />
Radikuloganglioneuritis<br />
↓<br />
umschriebene Hirnstammenzephalitis mit Begleitmeningitis<br />
� nach Toxizität bestimmen nekrotisch-eitrige, abszedierende oder granulomatöse Prozesse das Bild<br />
Klinik: Manegebewegung, Tortikollis, Trismus, Zähneknirschen, Nystagmus, Festliegen<br />
Differentialdiagnose<br />
andere bakterielle Meningoenzephalomyeliti<strong>den</strong><br />
Nr. 68) Tollwut, Pferd, HE<br />
Organdiagnose<br />
siehe S. 90 f.<br />
Histopathologische Diagnose<br />
- 99 -
Lupe: homogen rosa mit lila Punkten<br />
2 Verlaufsformen:<br />
- Nekrose der Zellen<br />
polioenzephalitisches Bild<br />
= Gliaknötchen mit perivaskulär-immunozytärer Reaktion<br />
Ek kaum nachweisbar<br />
Ätiologie<br />
- Virusreplikation ohne Zelltod<br />
intrazytoplasmatische, 3-9 µm große EK (Negri-Körperchen) in großer Zahl<br />
EK liegen im Zytoplasma von Neuronen (Hippocampus)<br />
sie ähneln Erys<br />
Erreger: Lyssavirus der Familie Rhabdoviridae<br />
Verlauf der Erkrankung in 3 Stadien<br />
- Prodromalstadium (2-5 Tage): verändertes Verhalten (Scheu, Nervosität, Gereiztheit, etc.),<br />
Schluckbeschwer<strong>den</strong>, Speichelfluss<br />
- Exzitationsstadium (2-7 Tage): Unruhe, Aufregung, Aggressivität, Beißsucht<br />
(Infektionsgefahr),<br />
„rasende Wut“ besonders ausgeprägtes Exzitationsstadium;<br />
„stille Wut“- Exzitationsstadium fehlt<br />
- Paralysestadium (dauert 3-4 Tage): Paralyse von Rumpf- und Skelettmuskulatur<br />
Pathogenese<br />
Inokulation durch Biß<br />
↓<br />
Virusvermehrung beginnt in der Tiefe der Inokulation<br />
(periphere Nerven / Muskelgewebe)<br />
↓<br />
Virus penetrierte Membranen von Nervenzellen<br />
↓<br />
Ausbreitung im ZNS entlang der axonalen Fortsätze<br />
- 100 -
oikotrop-sensibles System (Hirnstrangsystem)<br />
- 1. axonaler Fortsatz führt zur Körperperipherie<br />
- <strong>2.</strong> axonaler Fortsatz führt zum Rautenhirn<br />
oikotrop-sensible Nerven am Kopf (N.trigeminus mit Gasserschem<br />
Ganglion semilunare)<br />
Hauptmanifestation: Rauten-/ Mittel-/ Zwischenhirn<br />
Kerngebiete der Vagusgruppe (= Hydrophobie/ Schluckbeschwer<strong>den</strong>)<br />
Formatio reticularis/ Atem-/ Kreislaufzentren<br />
Hippocampus (= Erregungssteigerung bzw. Apathie)<br />
Kleinhirn<br />
Differentialdiagnose<br />
Borna-Enzephalitis (EK)<br />
Nr. 68a) Immunhistologie Tollwut, Hund, PAP<br />
Immunhistologie = Hochspezifischer Nachweis von Strukturen, gegen die AK gebildet wer<strong>den</strong><br />
� AK wer<strong>den</strong> als „molekulare Pinzetten“ zum Nachweis der von Ihnen spezifisch<br />
erkannten Antigene eingesetzt<br />
Nachweis antigener Komponenten im mikroskopischen Bild mittels spezif. AK, die mit:<br />
- Fluoreszenzfarbstoffen<br />
- Enzymen<br />
- partikulärem Material (z.B. Goldpartikel)<br />
- radioaktiven Isotopen markiert sind.<br />
Fluoreszenzfarbstoffe (Fluorchrome) = Fluoreszeinisothiocyanat (FITC)<br />
Tetramethylrhodamin Isothiocyanat (TRITC)<br />
� als Marker an AK � UV-Licht � FITC = gelbgrüne Fluoreszenz<br />
TRITC = rote Fluoreszenz<br />
� Nachteil: relativ instabil & meist nur an Gefrierschnitten durchführbar<br />
Enzyme: v.a. Meerrettich-Peroxidase & alkalische Phosphatase<br />
� Umwandlung eines farblosen Chromogens in ein farbiges Enzymprodukt<br />
Die enzymatische Aktivität ist abhängig von:<br />
- der Konz. von Enzym & Substrat, dem pH-Wert<br />
- der Ionenkonz. des Puffermilieus<br />
- der Temp. & dem Lichteinfall<br />
- 101 -
Vorteile der Peroxidase:<br />
Metho<strong>den</strong>:<br />
- klein & behindert nicht Bindung von AK an Antigen<br />
- leicht erhältlich<br />
- stabil, bleibt während Lagerung, Kopplung an AK aktiv<br />
- viele Chromogene bil<strong>den</strong> mit Peroxidase Farbprodukte<br />
- direkte Methode: enzymmarkierter AK reagiert mit Gewebsantigen<br />
danach erfolgt Substrat- Chromogenreaktion<br />
relativ unempfindlich, wird nur noch selten eingesetzt<br />
- indirekte Methode<br />
unkonjugierter Primär-AK bindet an Antigen<br />
↓<br />
1. enzymgekoppelter AK wird aufgetragen<br />
(gegen Fc-Fragment des Primär-AK gerichtet)<br />
↓<br />
Substrat-Chromogen-Reaktion<br />
� erster AK wird durch zweiten, markierten AK dargestellt<br />
- 3-Schritt-indirekte Methode<br />
unkonjugierter Primär-AK bindet an Antigen<br />
↓<br />
1. enzymgekoppelter AK wird aufgetragen<br />
(gegen Fc-Fragment des Primär-AK gerichtet)<br />
↓<br />
<strong>2.</strong> enzymgekoppelter AK (Tertiär-AK)<br />
↓<br />
Substrat-Chromogen-Reaktion<br />
- 102 -
- Verfahren der löslichen Enzym-Immunkomplexe<br />
= unmarkierte Antikörper-Technik (unlabelled antibody method)<br />
- um löslichen Enzym-anti-Enzym-Immunkomplex zu erhalten wird Enzym im<br />
Überschuss zugesetzt & entsprechende Präzipitate entfernt<br />
- Zugabe von: - unkonjugierten Primärantikörpern<br />
- unkonjugierten Sekundärantikörpern (Brücken-AK)<br />
- löslichen Enzym-anti-Enzymkomplexen<br />
- Substratlösung<br />
- Primär-AK & AK des Enzym-Immunkomplexes stammen aus derselben Spezies<br />
- d.h. Brücken-AK kann die bei<strong>den</strong> verbin<strong>den</strong><br />
- Die Metho<strong>den</strong> wer<strong>den</strong> nach dem jeweils verwendeten Enzym-Immunkomplex<br />
benannt: - PAP-Methode<br />
Immunkomplexe aus Peroxidase & anti-Peroxidase bestehen<br />
aus 3 Peroxidasemolekülen & 2 AK gegen das Enzym<br />
- 103 -
- APAAP-Methode<br />
Immunkomplexe bestehen aus alkal. Phosphatase &<br />
anti-alkalischer Phosphatase AK<br />
- Avidin-Biotin-Methode (bzw. Streptavidin-Biotin-Methode)<br />
starke Affinität von Avidin/ Streptavidin <strong>für</strong> Biotin<br />
Avidin bindet an biotinylierten Sekundär-AK<br />
Reihenfolge: Primär-AK<br />
biotinylierter Sekundär-AK<br />
Avidin; Avidin-Biotin-Enzymkomplexe;<br />
enzymmarkiertes Avidin<br />
Enzym meist Meerrettich-Peroxidase o. alkal.Phosphatase<br />
- 104 -
Organdiagnose<br />
siehe Präparat Nr. 68)<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: hellbraunes Präparat mit mittelbraunen Punkten<br />
Negativkontrolle auf gleichem Objektträger, bei der der primäre AK weggelassen wurde<br />
(Ausschluss unspezifischer Farbreaktionen)<br />
Färbung = PAP-Methode mit DAB (3,3-Diaminobenzidin-Tetrahydrochlorid = Chromogen)<br />
� brauner Farbniederschlag kennzeichnet Tollwut-Virus<br />
- 105 -
Haut<br />
Aufgaben der Haut: Schutzorgan (mechanische, thermische, chemische, biologische Einflüsse)<br />
Regulation des Wärme-/ Wasserhaushalts<br />
Energiespeicher (Unterhautfettgewebe)<br />
Sinnesorgan<br />
immunologische Grenzschicht<br />
Bau der Haut: Epidermis (Oberhaut)<br />
- Stratum corneum<br />
- Stratum lucidum Stratum superficiale<br />
- Stratum granulosum<br />
- Stratum spinosum Stratum Stratum profundum<br />
- Stratum basale germinativum<br />
Corium (Lederhaut)<br />
- Stratum papillare<br />
- Stratum reticulare<br />
Subkutis (Unterhaut)<br />
Histologischer Bau: Epidermis : mehrschichtiges Plattenepithel<br />
Str. basale = Keimschicht (zyklische Erneuerung der<br />
Keratinozyten)<br />
Str. spinosum = Keratinisieren der Keratinozyten<br />
Str. lucidum = Verhornung<br />
- 106 -
Nr. 70) Habronematose, Pferd, HE<br />
Organdiagnose<br />
Haut: siehe S. 106<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: Gewebe mit mehrschichtigem Plattenepithel<br />
im hauptsächlich rosa Gewebe sieht man makroskopisch lila Punkte (=Granulome)<br />
Granulom, im Zentrum fin<strong>den</strong> sich:<br />
eosinophile Granulozyten + Parasit<br />
darum Schicht aus neutrophilen G.<br />
nächste Schicht bil<strong>den</strong> Epitheloidzellen<br />
Außen sieht man Fibroblasten<br />
eos. G. um Parasit sind großteils<br />
nekrotisch<br />
Entzündung in Corium und Unterhaut<br />
granulomatöse Entzündungen sind gekennzeichnet durch: Makrophagen<br />
Langhans’sche Riesenzellen<br />
Fremdkörper-Riesenzellen<br />
Epitheloidzellen<br />
Nemato<strong>den</strong>larven � kreisrund<br />
außen Cuticula, innen Darm<br />
sieht man auch Gona<strong>den</strong> � Imago<br />
neutrophile Granulozyten von Rindern/ Kaninchen haben stark eosinophiles Zytoplasma<br />
CAVE: Nicht verwechseln mit eosinophilen Granulozyten = eosinophile Granula<br />
Ätiologie<br />
Infektion mit Helminthen (Habronema Arten)<br />
kutane Habronematidose des Pferdes (= Sommerwun<strong>den</strong>, Dermatitis verminosa)<br />
Erreger: Larven II von Habronema: H. muscae<br />
H. majus<br />
Draschia megastoma<br />
- 107 -
Pathogenese<br />
Habronema-Arten leben im Schleim der Magenmukosa<br />
↓<br />
setzen Eier ab, aus <strong>den</strong>en im Darm L1 schlüpft<br />
↓<br />
Ausscheidung mit dem Kot<br />
↓<br />
Aufnahme durch ZW (Musca domestica, Stomoxys u.a.)<br />
↓<br />
Entwicklung in ZW zur L3<br />
↓<br />
Fliegen lan<strong>den</strong> an Lippen/ Nüstern eines Pferdes<br />
↓<br />
L3 wandert über Mundwerkzeuge aus ZW aus<br />
↓<br />
L3 wird vom Pferd abgeschluckt<br />
� wird L3 auf Hautwunde abgesetzt kommt es zur Hauthabronematose<br />
bevorzugter Sitz: Geschirrlage<br />
Augenlider<br />
Penis<br />
Präputium<br />
untere Gliedmaßen<br />
� Larven dringen tief in das Gewebe ein & verursachen granulomatöse Entzündung mit<br />
Schwellung, Schmerzhaftigkeit & Juckreiz<br />
� Granulome mit einem Durchmesser bis zu 30 cm<br />
� in kühlerer Jahreszeit kommt Prozeß zum Stillstand, heilt aber nicht aus<br />
Granulomatöse Entzündung siehe Skript allg. Pathologie S.125 f.<br />
Differentialdiagnose<br />
- eosinophiles Granulom<br />
- Sarkoid Histologischer Nachweis der Larven !!<br />
- Keloid<br />
- 108 -
Nr. 71) Aktinomykose, Rind, HE<br />
= geschichtete granulomatöse Entzündung mit Druse<br />
Organdiagnose<br />
Haut: siehe S. 106<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: lila Punkte mit unregelmäßigem rosa, homogenem Inhalt<br />
restliches Gewebe rosa Zellen<br />
weitere Befunde: - Fibrose<br />
Ätiologie<br />
Granulom, im Zentrum findet sich:<br />
- Bakterienkolonien („Druse“)<br />
- umgeben von radiär-keulenförmig<br />
strukturierter, homogen<br />
eosinophiler PAS-positiver Matrix<br />
� „Splendorf-Hoeppli-Material“<br />
- glykoproteinhaltige Antigen-AK-<br />
Komplexe, die Phagozytose der<br />
Bakterien erschweren<br />
- Neutrophile G. (= akute Schicht)<br />
deutliche Grenze zu sehen (vgl. 72)<br />
- Makrophagen<br />
- Epitheloidzellen<br />
- Lymphozyten, Plasmazellen<br />
- Fibroblasten, Fibrozyten<br />
� Aktinomykotisches Granulom<br />
Erreger der Aktinomykose � Actinomyces bovis, GRAM-positiv (meist in Knochen)<br />
Erreger der Aktinobacillose � Actinobacillus lignieresi, GRAM-negativ (meist in Weichteilen,<br />
„Holzzunge“)<br />
Häufig Mischinfektionen mit Staphylokokken<br />
Betroffene Tierarten v.a. Schwein, Rind<br />
- 109 -
Pathogenese<br />
Entstehung durch: Wund-, Schmutz-, Schmierinfektion (primär)<br />
Fortleitung einer fisteln<strong>den</strong> Knochenaktinomykose resp. –bacillose<br />
hämatogen-metastatisch<br />
Formen: knotige/ fungöse form<br />
� faustgroße, derbe, bindegewebige, tumoröse Wucherungen, die<br />
oberflächlich ulzeriert sein können<br />
auf Schnittfläche kleine, rötlich-braune Abszesse & Granulome<br />
Differentialdiagnose<br />
diffuse Form<br />
� Verdickung der Haut mit Geschwüren/ Abszessen durchsetzt<br />
Sonderform<br />
� Pachyderma actinomycotica der Ohren & Lippen<br />
- Botryomykose!! � Unterscheidung über Druse<br />
Hier: radiär-strahlig; Speichen wer<strong>den</strong> nach Außen dicker (Keulen)<br />
Tip: Finger auf Lampe legen um Brechung zu erhöhen<br />
- eosinophiles Granulom<br />
- Sarkoid<br />
- Keloid<br />
Nr. 72) Botryomykose, Pferd, HE<br />
� Traubenpilzkrankheit (chronische, abszedierend-granulomatöse Entzündung, mit starker Bgwzubildung)<br />
� geschichtete granulomatöse Entzündung mit Druse<br />
Organdiagnose<br />
Haut: siehe S. 106<br />
kutane Schleimhaut � nicht verhorntes! mehrschichtiges Plattenepithel<br />
Hier: Man erkennt Talgdrüsen im Präparat, womit kutane SH ausgeschlossen ist<br />
mehrschichtiges Plattenepithel<br />
a) unverhornt<br />
b) verhornt<br />
1) Stratum basale<br />
2) Stratum spinosum<br />
3) Strat. granulosum<br />
4) Stratum corneum<br />
5) Strat. superficiale<br />
6) Lamina limitans<br />
anterior &<br />
Substantia propria<br />
7) Papillarkörper<br />
- 110 -
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: sieht aus wie Aktinomykose<br />
Ätiologie<br />
Granulom, im Zentrum findet sich:<br />
- traubenartig angeordnete<br />
Bakterienkolonien + Eiter<br />
- neutrophile Granulozyten<br />
- Epitheloidzellen<br />
� pyogranulomatöse Dermatitis<br />
Erreger: Wundinfektion mit Staphylococcus aureus (v.a. beim Pferd [Samenstrangfisteln])<br />
Haut in Geschirrlage & Fesselgegend<br />
Makroskopisch: Ausbildung multipler, derber bis erbsengroßer Knoten<br />
die später erweichen und zu Abszessen wer<strong>den</strong><br />
und nach Außen unter Bildung von Fistelkanälen durchbrechen<br />
Pathogenese<br />
Differentialdiagnose<br />
Wundinfektion<br />
↓<br />
Manifestation in regionären Lnn.<br />
↓<br />
evtl. Generalisation<br />
↓<br />
Befall innerer Organe<br />
- Aktinomykose � Druse hier sieht aus wie Traubendolde<br />
Inhalt wolkig, homogen<br />
lila Punkte sind Bakterienkolonien<br />
keine Keulung<br />
- eosinophiles Granulom<br />
- Sarkoid<br />
- Keloid<br />
- 111 -
Nr. 73) Pocken, Huhn, HE<br />
= Kernhaltige Erythrocyten (Vögel, Reptilien, Fische)<br />
= Vögel haben heterophile Granulozyten statt eosinophilen<br />
� Granula ist nadelartig ausgezogen<br />
Zytoplasma eosinophil<br />
Granula nicht eosinophil<br />
Pocke � mehrkammerige, oberflächlich eingedellte Pustel<br />
Organdiagnose<br />
Haut: siehe S. 106<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: im Randbereich normale Haut, in der Mitte des Präparates Pocke<br />
große runde Vakuolen im Gewebe � Federfollikel<br />
kleine Vakuolen am Rand � ballonierende Degeneration<br />
� Epidermis mit deutlicher Hyperplasie (fokale Verdickung, ähnlich einer Warze)<br />
- Stratum spinosum verdickt = Akanthose<br />
- Entzündungszellen (v.a. Heterophile, Makrophagen & Lymphozyten) im Corium<br />
- da sich Entzündungszellen auch im Stratum corneum befin<strong>den</strong>, spricht man auch von<br />
„intracornealen Pusteln“<br />
- Epidermiszellen aufgedunsen, Zytoplasma sehr hell & vakuolig � ballonierende Degeneration<br />
� Zellen wer<strong>den</strong> platzen & Vesikel wer<strong>den</strong> entstehen<br />
- in Epidermiszellen findet man Bollinger-EK (zytoplasmatische EK)<br />
� EK sind eosinophiler als Zellkerne<br />
� lymphohistiozytäre Dermatitis mit Epidermishyperplasie und zytoplasmatischen EK<br />
- 112 -
Ätiologie<br />
Poxviridae<br />
Genus Krankheit bzw. Virusspezies<br />
Orthopoxvirus Menschenpocken (Variola)<br />
Affenpocken<br />
Vacciniavirus<br />
Kuhpocken u.ä. Viren<br />
Kamelpocken<br />
Büffelpocken<br />
Mäusepocken (Ektromelie)<br />
Capripoxvirus Pockenseuche der Schafe und Ziegen<br />
Lumpy Skin Disease (LSD des Rindes)<br />
Leporipoxvirus Myxomatose (Kaninchen)<br />
Fibromatose (Kaninchen)<br />
Suipoxvirus Schweinepocken<br />
Parapoxvirus Orf (Ecthyma contagiosum der kleinen Wiederkäuer)<br />
Stomatitis papulosa (Rind)<br />
Euterpocken (Rind)<br />
Avipoxvirus Geflügelpocken<br />
Pathogenese<br />
- Replikation im Zytoplasma<br />
- Viruseintritt: Haut (defekte Hautstellen, Arthropo<strong>den</strong>)<br />
Schleimhäute des Respirations- und oberen Digestionstraktes (Aerosole)<br />
Läsionen der Haut (bei allen Infektionen mit Pockenviren) � Erythem � Papel � Bläschen �<br />
� Pockenpustel mit Pockennabel � Schorf<br />
Verlauf: Rind, Pferd, Schwein, Mensch � entzündlich-exsudative Prozesse in der<br />
Epidermis<br />
Differentialdiagnose<br />
Schaf, Ziege � entzündlich-exsudative Prozesse im Corium<br />
Vogel � produktive Vorgänge in der Epidermis mit starker Proliferation von<br />
Epithelzellen<br />
Pockenerkrankungen von Säugern � kernhaltige Erys & Federfollikel<br />
- 113 -
Nr. 74) Demodikose, Haut, Hund, HE<br />
= eitrige Dermatitis und Follikulitis mit intrafollikulären Parasitenanschnitten<br />
Organdiagnose<br />
Haut: siehe S. 106<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Lupe: sehr viele Haarfollikel, teils mit rosa (Demodex), teils mit braunem (Haar) Inhalt<br />
viele lila Zellen zwischen <strong>den</strong> Follikeln<br />
Ätiologie<br />
Erreger: Haarbalgmilben (Demodicidae)<br />
stark vergrößerte Haarfollikel<br />
keine Haare (bzw. Reste)<br />
Im Follikel sieht man Larven<br />
(Adulte leben auf<br />
Hautoberfläche, Larven &<br />
Nymphen in Follikeln)<br />
Entzündungszellinfiltrate<br />
(n.G.) zwischen <strong>den</strong> Follikeln<br />
Entzündungszellinfiltration<br />
des Coriums erst wenn Milben<br />
aus dem Follikel ausbrechen!<br />
streng wirtsspezifisch: Hund � Demodex canis (klinische Bedeutung)<br />
Katze � Demodex cati (in Zusammenhang mit FeLV/ FIV)<br />
Rind � Demodex bovis (Subklinisch, aber Lederschä<strong>den</strong>)<br />
Schaf � Demodex ovis (Subklinisch, aber Wollschä<strong>den</strong>)<br />
Ziege � D. caprae<br />
Schwein � D. suis<br />
Pferd � D. equi & D. caballi<br />
- 114 -
Pathogenese<br />
Übertragung durch Kontakt mit latent infizierten Muttertieren beim saugen<br />
� primär betroffen sind Oberlippe, Augenlider, Nasenrücken, Stirn, Ohren, Pfoten<br />
Prädispositionsfaktoren: junge, geschwächte Tiere (Wurmbefall, Mangelernährung,<br />
Zahnwechsel, Staupe)<br />
bakt. Sek.infektionen (Staph. aureus)<br />
Formen: Alopezieform: - leichteste Form<br />
- kleine, zirkumskripte haarlose Stellen an Kopf & Extremitäten<br />
squamöse Form: - schuppendes Ekzem<br />
- zunächst umschriebener, später großflächiger Haarausfall<br />
- Schuppen habe grau-bläuliche Farbe<br />
- Weiterentwicklung zu squamopapulöser & pustulöser Form<br />
möglich<br />
squamopapulöse Form: - Bildung von Papeln an schuppen<strong>den</strong> Hautstellen<br />
- verläuft meist chronisch mit Ausbildung einer Sklerodermie<br />
pustulöse Form: - Tiere über zwei Jahre<br />
- kleine derbe Knötchen blau-roter Farbe<br />
- Umbildung zu gelb bis braun-roten Pusteln<br />
- bei leichtem Druck entleert sich talgartiger, teils blutiger<br />
Eiter<br />
� da es sich um chronischen Prozess handelt kommt es zur Hyperplasie der Epidermis<br />
Differentialdiagnose<br />
Psoroptes (Saugmilben)<br />
Chorioptes (Nagemilben) größer als Demodex und nicht in <strong>den</strong> Haarfollikeln<br />
Sarcoptes (Grabmilben)<br />
Pocken � keine ballonierende Degeneration<br />
- 115 -
Tumoren<br />
Nr. 75) Fibrom, Hund, Elastika-v. Gieson<br />
Nr. 76) Leiomyom, Rind, Elastika-v. Gieson<br />
Organdiagnose<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Ätiologie<br />
Pathogenese<br />
Differentialdiagnose<br />
Nr. 77) Fibrosarkom, Hund, Elastika-v. Gieson 10<br />
Organdiagnose<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Ätiologie<br />
Pathogenese<br />
Differentialdiagnose<br />
Nr. 78) Osteoblastisches Sarkom, Hund, HE 9<br />
Organdiagnose<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Ätiologie<br />
Pathogenese<br />
Differentialdiagnose<br />
Nr.79a) Mastzelltumor, Haut, Hund, HE<br />
Nr. 79b) Mastzelltumor, Haut, Hund, Toluidinblau 8<br />
Organdiagnose<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Ätiologie<br />
Pathogenese<br />
Differentialdiagnose<br />
- 116 -
Nr. 80) Malignes Melanom, Mundhöhle, Hund, HE 7<br />
Organdiagnose<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Ätiologie<br />
Pathogenese<br />
Differentialdiagnose<br />
Nr. 81) Papillom, Haut, Rind, HE 6<br />
Organdiagnose<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Ätiologie<br />
Pathogenese<br />
Differentialdiagnose<br />
Nr. 82) Benigner Mischtumor der Mamma, Hund, HE 5<br />
Organdiagnose<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Ätiologie<br />
Pathogenese<br />
Differentialdiagnose<br />
Nr. 83) Plattenepithelkarzinom, Pferd, HE 4<br />
Organdiagnose<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Ätiologie<br />
Pathogenese<br />
Differentialdiagnose<br />
Nr. 84) Kavernöses Hämangiom, Hund, HE 3<br />
Organdiagnose<br />
Histopathologische Diagnose<br />
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Ätiologie<br />
Pathogenese<br />
Differentialdiagnose<br />
Nr. 85) Gliom, Hund, HE 2<br />
Organdiagnose<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Ätiologie<br />
Pathogenese<br />
Differentialdiagnose<br />
Nr. 86) Histiozytom, Haut, Hund, HE 1<br />
Organdiagnose<br />
Histopathologische Diagnose<br />
Ätiologie<br />
Pathogenese<br />
Differentialdiagnose<br />
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