LIMNOLOGIA BASICA 2007

LIMNOLOGIA BASICA 2012
PRÁCTICA III: CASCADA TRÓFICA
Docentes: Sylvia Bonilla y Amelia Fabre
OBJETIVO DIDÁCTICO DE LA PRÁCTICA
Conocer los aspectos básicos del diseño experimental.
Elaborar supuestos que puedan ser observados por el diseño seleccionado.
Analizar e interpretar los resultados incorporando los conocimientos adquiridos en las clases teóricas.
INTRODUCCIÓN
Los estudios sobre las interacciones entre organismos de diferentes niveles tróficos cobraron atención
en Limnología cuando se observó que la distribución, abundancia y producción de los mismos no podía
explicarse solamente por los factores abióticos (particularmente nutrientes). De este modo se
incorpora el concepto de factores bióticos como estructuradores de las comunidades. Las relaciones
recíprocas depredador-presa son las que afectan la abundancia, biomasa y/o productividad de una
población, comunidad o nivel trófico. Estas relaciones recíprocas se conocen como cascadas tróficas
(Pace et al 1999 Trends in Ecology and Evolution 14:483–488) e impactan de forma positiva o negativa
en los niveles tróficos sucesivos. Más tarde este concepto sería aplicado en ecología terrestre.
OBJETIVO ESPECÍFICO DE LA PRÁCTICA
1- Demostrar experimentalmente el efecto de cascada trófica entre distintas comunidades de los
ecosistemas acuáticos.
2- Analizar el efecto producido en la interacción de dichas comunidades por un aumento de la
concentración de nutrientes (nitrógeno y fósforo disueltos).
ACTIVIDADES A DESARROLLAR
Día de preparación del experimento
Se discutirá el procedimiento y variables a estimar. Se preparará:
El agua filtrada que se utilizará en las botellas
El fitoplancton (mezcla de muestras y cultivos)
Zooplancton (Daphnia sp.) y peces
Los experimentos tendrán una duración total de 4 días
Día inicio: inicio de los experimentos.
Armado y llenado de los recipientes con los organismos y nutrientes. Medición de variables:
temperatura, oxígeno, pH, clorofila a in vivo. Observación al microscopio de: fitoplancton y
zooplancton, descripción de los grupos presentes en ambas comunidades.
Día final: finalización, medición de las variables (idem al día inicio). Conteo de zooplancton.
METODOLOGIA
Se realizarán dos experimentos con un control y dos (exp. A) y tres tratamientos (exp. B) cada uno.
Todos los tratamientos y controles se realizarán por triplicado y en bollones de vidrio (con 800 ml,
aproximadamente).
Experimento A (sin nutrientes, con peces)
1) Fitoplancton (3 réplicas)
2) Fitoplancton + Zooplancton (Daphnia sp) (3 réplicas)
3) Fitoplancton+Zooplancton+Peces (Cnesterdom decemaculatus, “madrecita de agua”) (3 réplicas)
Experimento A
(con PECES)
Tres réplicas
c/u
Fito
Fito+
zoo
Fito+
zoo
+peces
1

Experimento B (con nutrientes, sin peces)
1) Fitoplancton (3 réplicas)
2) Fitoplancton+Zooplancton (3 réplicas)
3) Fitoplancton+Nutrientes (n) (3 réplicas)
4) Fitoplancton +Nutrientes+ Zooplancton (3 réplicas)
Experimento B
(CON
nutrientes, n)
TRES réplicas
c/u
Fito
Fito+
zoo
Mediciones a realizar a lo largo de los experimentos:
T=0
Temperatura * *
Ph * *
Oxígeno * *
Clorofila a in vivo fluorescencia * *
Composición relativa de fitoplancton *
Abundancia de zooplancton *
Sobrevivencia de peces * *
Fito+n
utu
T= final
Fito+n+
zoo
PROCEDIMIENTO
1- Rotular los bollones (experimento A y B) indicando tratamientos y controles. Hacer las planillas.
2- Agregar a cada bollón 800 ml agua del estanque, previamente filtrada.
3- Agregar a cada bollón X ml del concentrado de fitoplancton previamente preparado. El llenado se debe de
hacer cuidadosamente para evitar romper las células. Mezclar suavemente y sacar 1 muestra (~ 20 ml) para
medir clorofila a in vivo.
4- Observar una muestra del concentrado de fitoplancton en el microscopio para determinar qué grupos y tallas
están presentes. Análisis cualitativo.
5- Agregar X ml de la solución de nutrientes (N+P) a cada bollón (experimento B).
6- Agregar 10 daphnias en los tratamientos correspondientes (experimento A y B).
7- Agregar 1 pez por bollón en el tratamiento correspondiente (experimento A).
8- Anotar la hora de inicio.
9- Medir en cada bollón: temperatura, pH, O2, clorofila a in vivo. La clorofila a in vivo se medirá por
fluorescencia utilizando un fluorómetro (Aquafluor Turner) y los datos se expresarán en unidades de
fluorescencia relativa (UFR).
10- Ubicar los bollones de forma de minimizar diferencias en la luz que reciban, fuente de calor,etc.
11- A las 96 horas (tiempo final) medir: temperatura, pH, O2, controlar estado general. Luego de finalizar los
experimentos:
- Homogeneizar suavemente el agua y tomar una muestra (~ 30 ml) para fitoplancton (clorofila a in vivo y
conteo relativo). NOTA: evitar remover el zooplancton en esta maniobra. Parte de la muestra anterior se fija
con formol neutralizado (dos gotas) para conteo en microscopio.
- Se filtra el agua restante de cada tratamiento por copo de 50 µm y se colecta el zooplancton retenido que se
coloca en frascos plásticos y se fija con formol neutralizado. Estas muestras se cuentan en microscopio.
Cálculos:
1- Variaciones de la clorofila a de fitoplancton con respecto al control EN TIEMPO FINAL. Calcular Delta y %
de variación. Comparar los tratamientos con respecto al control y entre sí.
2- Abundancia (número de individuos/litro) de Daphnia. Calcular Delta y % de variación. Comparar los
tratamientos con respecto al control (t=final) y entre sí.
3- Comparar ambos experimentos.
4- Presentación de los resultados: promedio y desvío de réplicas de c/tratamiento en tablas y/o figuras.
5- Discutir efectos de cascada trófica y control ascendente
BIBLIOGRAFIA:
Lampert & Sommer 2007. Limnoecology.Oxford University Press, Oxford
Pace, M. L., J. J. Cole, S. R. Carpenter, and J. F. Kitchell. 1999. Trophic cascades revealed in diverse ecosystems. Trends in Ecology and Evolution
14:483–488.
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