Neurospora crassa - BioScripts
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Tema 13<br />
Genética de hongos filamentosos:<br />
<strong>Neurospora</strong> <strong>crassa</strong>
Genética Molecular de <strong>Neurospora</strong> <strong>crassa</strong><br />
•Ciclo de vida<br />
•<strong>Neurospora</strong> en el laboratorio<br />
•Genética de <strong>Neurospora</strong><br />
•Genética molecular de <strong>Neurospora</strong><br />
•Transformación<br />
•Herramientas disponibles<br />
•Inactivación génica<br />
•El genoma de <strong>Neurospora</strong>
Genética Molecular de <strong>Neurospora</strong> <strong>crassa</strong><br />
•Ciclo de vida<br />
•<strong>Neurospora</strong> en el laboratorio<br />
•Genética de <strong>Neurospora</strong><br />
•Genética molecular de <strong>Neurospora</strong><br />
•Transformación<br />
•Herramientas disponibles<br />
•Inactivación génica<br />
•El genoma de <strong>Neurospora</strong>
<strong>Neurospora</strong> en la naturaleza
<strong>Neurospora</strong> crece<br />
sobre troncos que<br />
han sido quemados
Primera descripción de <strong>Neurospora</strong> como el hongo que causó<br />
la contaminación de panaderías francesas en 1843
Shear CL y Dodge BO (1927)<br />
Life stories and heterotallism<br />
of the red bread mold fungi of<br />
the Monilia sitophila group.<br />
J. Agric. Res. 34: 1019-1042.<br />
Describió las estructuras sexuales y la<br />
segregación del tipo sexual en varias<br />
especies de <strong>Neurospora</strong>.<br />
Bernard O. Dodge<br />
(1872-1960)
Ciclos de vida de <strong>Neurospora</strong> <strong>crassa</strong>
Especies de <strong>Neurospora</strong><br />
Heterotálicas<br />
N. <strong>crassa</strong><br />
N. discreta<br />
N. intermedia<br />
N. sitophila<br />
Pseudohomotálica<br />
N. tetrasperma<br />
Homotálicas<br />
N. africana<br />
N. dodgei<br />
N. galapagosensis<br />
N. lineolata<br />
N. terricola<br />
N. pannonica
Ciclo sexual de una especie heterotálica
Ciclo sexual de una especie homotálica
Ciclo sexual de una especie pseudohomotálica
Ciclo vegetativo de <strong>Neurospora</strong> <strong>crassa</strong><br />
germinación<br />
conidios<br />
micelio<br />
conidióforos
Hifas de<br />
<strong>Neurospora</strong>
Conidiación de <strong>Neurospora</strong> <strong>crassa</strong>
Conidios de <strong>Neurospora</strong> <strong>crassa</strong>
Macroconidios y microconidios de <strong>Neurospora</strong>
Un reloj<br />
circadiano<br />
regula la<br />
conidiación
Genética Molecular de <strong>Neurospora</strong> <strong>crassa</strong><br />
•Ciclo de vida<br />
•<strong>Neurospora</strong> en el laboratorio<br />
•Genética de <strong>Neurospora</strong><br />
•Genética molecular de <strong>Neurospora</strong><br />
•Transformación<br />
•Herramientas disponibles<br />
•Inactivación génica<br />
•El genoma de <strong>Neurospora</strong>
Cultivos de <strong>Neurospora</strong> <strong>crassa</strong>
Cultivos de <strong>Neurospora</strong> <strong>crassa</strong>
Medio con sorbosa
Genética Molecular de <strong>Neurospora</strong> <strong>crassa</strong><br />
•Ciclo de vida<br />
•<strong>Neurospora</strong> en el laboratorio<br />
•Genética de <strong>Neurospora</strong><br />
•Genética molecular de <strong>Neurospora</strong><br />
•Transformación<br />
•Herramientas disponibles<br />
•Inactivación génica<br />
•El genoma de <strong>Neurospora</strong>
Mutagénesis<br />
Agentes mutagénicos usados en <strong>Neurospora</strong><br />
Radiaciones<br />
• Ultravioleta<br />
• Rayos X<br />
Agentes químicos<br />
• Ácido nitroso<br />
• Metanosulfonato de etilo (EMS)<br />
• Metilhidroxiamina<br />
• ICR170<br />
• Nitrosoguanidina
medio completo<br />
Búsqueda de<br />
mutantes<br />
auxótrofos<br />
medio mínimo<br />
medio con grupos de nutrientes<br />
medio con distintos<br />
aminoácidos<br />
el medio con arginina permite el crecimiento
Premio Nobel de Fisiología o Medicina 1958<br />
George W. Beadle<br />
(1903-1989)<br />
Edward L. Tatum<br />
(1909-1975)<br />
El aislamiento y la caracterización mutantes auxótrofos de <strong>Neurospora</strong> les<br />
permitió formular la hipótesis de que un gen era responsable de una<br />
enzima.
Enriquecimiento por filtración<br />
Los protótrofos se<br />
quedan en el filtro<br />
Medio mínimo<br />
Silvestres<br />
protótrofos<br />
Mutantes<br />
nutricionales<br />
(auxótrofos)<br />
Sembrar<br />
Los auxótrofos pasan<br />
a través del filtro<br />
Los auxótrofos crecen<br />
Medio con leucina
Ruta de la carotenogénesis de <strong>Neurospora</strong>
Medio con sorbosa<br />
Mutante albino
Mutantes de la carotenogénesis de <strong>Neurospora</strong><br />
Naranja<br />
(silvestre)<br />
Albino<br />
Amarillento<br />
Rojizo
Mutantes morfológicos<br />
de <strong>Neurospora</strong>
0.5<br />
Frecuencia de los conidios<br />
0.4<br />
0.3<br />
0.2<br />
0.1<br />
0.15<br />
0.46<br />
0.25<br />
0.09<br />
0<br />
1<br />
0.03<br />
0.01 0.01<br />
2 3 4 5 6 7<br />
Núcleos por conidio
Heterocariosis<br />
Los heterocariontes nos dan información sobre los<br />
mutantes:<br />
• Permite saber si las mutaciones son dominantes<br />
of recesivas<br />
• Permite identificar grupos de complementación
El micelio de <strong>Neurospora</strong> es un cenocito
Complementación en <strong>Neurospora</strong><br />
Células arg-1 alteradas en una<br />
enzima de la ruta de síntesis<br />
de arginina<br />
Células arg-2 alteradas en una<br />
enzima distinta de la ruta de<br />
síntesis de arginina<br />
Fusión<br />
El heterocarionte<br />
crece sin arginina
Grupos de<br />
complementación:<br />
grupo<br />
I<br />
II<br />
III<br />
IV<br />
V<br />
mutantes<br />
1, 5<br />
2, 4, 6, 7<br />
3<br />
8, 10<br />
9<br />
1<br />
2<br />
3<br />
4<br />
5<br />
6<br />
7<br />
8<br />
9<br />
10<br />
o<br />
+<br />
+<br />
+<br />
o<br />
o<br />
+<br />
o<br />
+<br />
o<br />
+<br />
+<br />
o<br />
+ o<br />
+ o + o + o<br />
+ o + o + o o<br />
+ + + + + + + o<br />
+ + + + + + + + o<br />
+ + + + + + + o +<br />
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10<br />
o
Ciclo sexual de<br />
<strong>Neurospora</strong>
Ciclo sexual de <strong>Neurospora</strong><br />
Niveles bajos<br />
de C y N<br />
Peritecio<br />
Formación de<br />
protoperitecios
Ciclo sexual de <strong>Neurospora</strong><br />
Meiosis
Ascosporas
Las octadas ordenadas permiten<br />
detectar el ligamiento al centrómero
El reparto de los cromosomas en la octada permite<br />
observar varios patrones de segregación
Productos de la meiosis en <strong>Neurospora</strong><br />
Desarrollo de ascas con el resultado de la meiosis de un diploide producto de<br />
un cruzamiento entre dos mutantes de la coloración de la ascospora. Se<br />
observa la segregación en la primera y segunda división meiótica.
Durante la<br />
recombinación se<br />
producen<br />
moléculas de ADN<br />
heterodúplices
Detección de la conversión<br />
génica
Estimación de la distancia genética por<br />
recombinación
cyhR: resistente a cicloheximida<br />
hom: auxórofo de homoserina<br />
nic: auxórofo de nicotóico<br />
al: albino<br />
cyhR al hom nic<br />
cyhR al hom nic<br />
silvestre<br />
+ + + +<br />
1 2 3<br />
cyhR al hom nic + + + + parentales 99 106<br />
cyhR + + + + al hom nic<br />
cyhR al + + + + hom nic<br />
rec en 1<br />
rec en 2<br />
22 22<br />
4 8<br />
cyhR al hom<br />
+ + + +<br />
nic<br />
rec en 3<br />
22 17<br />
cyhR<br />
+<br />
hom nic + al + +<br />
rec en 1 y 2<br />
1 1<br />
cyhR<br />
+<br />
+ nic + al hom +<br />
rec en 1 y 3<br />
0 0<br />
cyhR al<br />
+ nic + + hom +<br />
rec en 2 y 3<br />
3 5
Estimación de la distancia genética por<br />
recombinación<br />
cyhR al hom nic<br />
+ + + +<br />
1 2 3<br />
17.4 % 4.5 % 15.2 %<br />
cyhR al hom nic<br />
17.4 4.5 15.2
Grupo de ligamiento I<br />
Existen unos 1000 marcadores genéticos<br />
localizados en siete grupos de ligamiento
Detección de mutaciones en el ADN<br />
mitocondrial
Genética Molecular de <strong>Neurospora</strong> <strong>crassa</strong><br />
•Ciclo de vida<br />
•<strong>Neurospora</strong> en el laboratorio<br />
•Genética de <strong>Neurospora</strong><br />
•Genética molecular de <strong>Neurospora</strong><br />
•Transformación<br />
•Herramientas disponibles<br />
•Inactivación génica<br />
•El genoma de <strong>Neurospora</strong>
Ingeniería genética en <strong>Neurospora</strong><br />
Introducción de ADN:<br />
• Transformación de esferoplastos<br />
• Electroporación de conidios<br />
Plásmidos integrativos<br />
• Resistencia a benomilo e higromicina<br />
Otras herramientas:<br />
• Promotores regulables: qa-2<br />
• Fusiones con lacZ, GFP y luciferasa para medir<br />
transcripción y detectar proteínas.<br />
• Inactivación génica.
Integración del ADN en hongos<br />
Vector<br />
Receptor de la<br />
transformación<br />
Cromosoma I<br />
Cromosoma II<br />
Reemplazamiento<br />
génico<br />
Duplicación<br />
Integración<br />
ectópica<br />
Vector
Receptor<br />
vector<br />
Integración ectópica<br />
Integración ectópica múltiple<br />
Integración homóloga<br />
Reemplazamiento
Transformación en <strong>Neurospora</strong><br />
• La competencia es una propiedad del núcleo (co-transformación).<br />
• Cuando ocurre integración homóloga no suele ocurrir integración<br />
ectópica en el mismo núcleo.<br />
• El 1% de los transformantes estables han sufrido recombinación<br />
homóloga (si es posible).<br />
• 10% de transformantes ectópicos han sufrido alteraciones<br />
cromosómicas con frecuencia.<br />
• 100% de transformantes por recombinación homóloga en estirpes<br />
con una mutación en el gen mus-51 o mus-52 responsables de la<br />
recombinación no homóloga.
Genética Molecular de <strong>Neurospora</strong> <strong>crassa</strong><br />
•Ciclo de vida<br />
•<strong>Neurospora</strong> en el laboratorio<br />
•Genética de <strong>Neurospora</strong><br />
•Genética molecular de <strong>Neurospora</strong><br />
•Transformación<br />
•Herramientas disponibles<br />
•Inactivación génica<br />
•El genoma de <strong>Neurospora</strong>
Cósmidos para construir genotecas en <strong>Neurospora</strong>
Clonación en<br />
<strong>Neurospora</strong> por<br />
selección de<br />
grupos (sib<br />
selection)
Núcleos de <strong>Neurospora</strong> marcados con H1-GFP
Microtúbulos de<br />
<strong>Neurospora</strong><br />
marcados con<br />
tubulina-GFP
Genética Molecular de <strong>Neurospora</strong> <strong>crassa</strong><br />
•Ciclo de vida<br />
•<strong>Neurospora</strong> en el laboratorio<br />
•Genética de <strong>Neurospora</strong><br />
•Genética molecular de <strong>Neurospora</strong><br />
•Transformación<br />
•Herramientas disponibles<br />
•Inactivación génica<br />
•El genoma de <strong>Neurospora</strong>
Genética Molecular de <strong>Neurospora</strong> <strong>crassa</strong><br />
•Ciclo de vida<br />
•<strong>Neurospora</strong> en el laboratorio<br />
•Genética de <strong>Neurospora</strong><br />
•Genética molecular de <strong>Neurospora</strong><br />
•Transformación<br />
•Herramientas disponibles<br />
•Inactivación génica<br />
•El genoma de <strong>Neurospora</strong>
El genoma de <strong>Neurospora</strong><br />
Tamaño: 42 Mb<br />
Genoma secuenciado: 39.225.835 bp (rel. 7)<br />
Cromosoma<br />
I<br />
II<br />
III<br />
IV<br />
V<br />
VI<br />
VII<br />
Tamaño (Mb)<br />
10.3<br />
9.2<br />
5.7<br />
5.1<br />
4.6<br />
4.0<br />
4.0
Contenido G+C<br />
Total: 50%<br />
ADN codificante: 44%<br />
ADN no codificante: 56%<br />
Intrones<br />
Presentes en el 80% de los genes<br />
Longitud promedio: 134 pb<br />
Promedio de 1,7 intrones por gen<br />
Un transposón activo, Tad, muchas copias de<br />
transposones inactivos (RIP),
Tamaño (Mb)<br />
Genes<br />
Haemophilus<br />
Saccharomyces<br />
C. elegans<br />
Drosophila<br />
Homo<br />
1,8<br />
12<br />
100<br />
165<br />
3000<br />
1.709<br />
6.144<br />
18.266<br />
13.338<br />
20.000<br />
<strong>Neurospora</strong> 42 ? 10.620
Fin