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Lactopress Diciembre 2017

CIENCIA Y TECNOLOGÍA 8

CIENCIA Y TECNOLOGÍA 8 8 centis + B. infantis (C + A + B) fue de 2.5 × 10 a 1.22 × 10 UFC con un porcentaje de disminución del 51.20% desde fresco a 60 días de período de almacenamiento. Estos datos estuvieron en acuerdo con los datos obtenidos por [30, 33] quienes informaron que no se observaron diferencias significativas ( p

la gran variabilidad de cinco mezclas de yogurt congelado basadas en diferentes especies de Bifidobacterium spp. durante 60 días de almacenamiento a -18 °C. Las cargas fueron los coeficientes de las variables originales de cada componente principal. El porcentaje de inercia y las variables correlacionadas para los ejes 1 y 2 se muestran en la Tabla 3. El eje 1 explicó el 55.08% de la inercia total. El eje 2 explicó el 21.27% de la inercia. Con respecto a las variables explicativas, la Figura 9 muestra cuatro grupos de mezclas. El primer grupo incluía C + A y C + B, mientras que el segundo, el tercero y el cuarto grupo eran C, A + B y C + A + B, respectivamente, individualizados. CONCLUSIÓN La Bifidobacterium spp. puede crecer bien y tener la capacidad de soportar diferentes condiciones de acidez y bilis. Además, el yogurt congelado puede servir como un excelente vehículo para la incorporación dietética de bacterias probióticas. Por el contrario, el almacenamiento congelado de los productos tiene pocos efectos sobre la supervivencia de Bifidobacterium spp., Que son suficientes para ofrecer los efectos terapéuticos sugeridos. Se ha encontrado que la suplementación con Bifidobacterium spp. ejerce un pequeño efecto sobre el sabor o las características de composición del yogurt helado. Nuestro estudio anterior indicó que no hubo cambios significativos en la diferencia (p> 0.05) durante la adición de diferentes Bifidobacterium spp. en la evaluación fisioquímica o sensorial del yogurt congelado. REFERENCIAS 1. C. Soukoulis, I. D. Fisk, and T. Bohn, “Ice cream as a vehicle for incorporating health-promoting ingredients: conceptualization and overview of quality and storage stability,” Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety, vol. 13, no. 4, pp. 627–655, 2014. 2. M. K. Tripathi and S. K. Giri, “Probiotic functional foods: survival of probiotics during processing and storage,” Journal of Functional Foods, vol. 9, no. 1, pp. 225–241, 2014. 3. N. Saad, C. Delattre, M. Urdaci, J. M. Schmitter, and P. Bressollier, “An overview of the last advances in probiotic and prebiotic field,” LWT - Food Science and Technology, vol. 50, no. 1, pp. 1–16, 2013. 4. M. E. Sanders, F. Guarner, R. Guerrant et al., “An update on the use and investigation of probiotics in health and disease,” Gut, vol. 62, no. 5, pp. 787–796, 2013. 5. V. Grimm, C. Westermann, and C. U. Riedel, “Bifidobacteria-host interactions—an update on colonisation factors,” BioMed Research International, vol. 2014, Article ID 960826, 10 pages, 2014. 6. R. Tojo, A. Suarez, and M. G. Clemente, “Intestinal microbiota in health and disease: role of bifidobacteria in gut homeostasis,” World Journal of Gastroenterology, vol. 20, no. 41, pp. 15163–15176, 2014. 7. P. H. P. Prasanna, A. S. Grandison, and D. Charalampopoulos, “Screening human intestinal Bifidobacterium 39

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