Guia de Prácticas Botánica farmacéutica de labortorio y proyecto àulico_CII 22 23
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ASIGNATURA
CAMPO DE
FORMACIÓN
Universidad de Guayaquil
Facultad de Ciencias Químicas
Carrera: Química y Farmacia
Guía de Prácticas de Laboratorio
BOTANICA FARMACEUTICA
FUNDAMENTOS TEÓRICOS
CÓDIGO 003 SEMESTRE II PERÍODO 2022-2023 CICLO II
Prácticas de laboratorio a realizar en el semestre:
UNIDAD 1
TITULO DE LA UNIDAD: GENERALIDADES DE BOTÁNICA FARMACÉUTICA
Práctica 1: NORMAS DE SEGURIDAD EN EL LABORATORIO DE BOTANICA FARMACEUTICA Y USO DEL
MICROSCOPIO
Práctica 2: BOTANICA SISTEMATICA: NOMENCLATURA TAXONOMICA
Práctica 3:.ETNOBOTÁNICA
Práctica 4: IDENTIFICACIÓN DE INCLUSIONES CITOPLASMATICAS Y FOTOSINTESIS
UNIDAD 2
TITULO DE LA UNIDAD: MICROSCOPIA VEGETAL
Práctica 5: IDENTIFICACIÓN DE TEJIDO EPIDERMICO: ESTOMAS
Práctica 6: IDENTIFICACIÓN DE TEJIDO EPIDERMICO: TRICOMAS
Práctica 7: IDENTIFICACIÓN DE TEJIDO PARENQUIMA Y SECRETOR
Práctica 8: IDENTIFICACIÓN DE TEJIDO SOSTEN Y VASCULAR
UNIDAD 3
TITULO DE LA UNIDAD MACROSCOPIA VEGETAL
Práctica 9: MACROSCOPIA DE LA RAIZ
Práctica 10: MACROSCOPIA DEL TALLO
Práctica 11: MACROSCOPIA DE LA HOJA
Práctica 12: MACROSCOPIA DE FLORES Y FRUTOS
UNIDAD 4
TITULO DE LA UNIDAD: METODOS DE EXTRACCIÓN Y PARAMETROS DE CALIDAD
Práctica 13: METODOS DE EXTRACCIÓN: INFUSIÓN, DECOCCIÓN Y MACERACIÓN
Práctica 14: PARAMETRO DE CALIDAD: CARACTERISTICAS ORGANOLEPTICA, HUMEDAD.
Práctica 15: BIOACTIVIDAD
Práctica 16:: ESTABLECER LAS PROPIEDADES TERAPEUTICA
Docente Cargo Fecha
Firma
Elaborado por:
Revisado por:
Q.F. Ana Grijalva Endara Msc.
Q.F. Dra Alexandra Quesada, M.Sc
Contratado Tiempo
Completo
Gestor Pedagógico
Curricular
Aprobado por: Q.F. Amalia Suárez Camacho, M.Sc. Vicedecana
Secretaría de la
carrera
Sra. Diana Villao Valle
Asistente
Administrativo 2
1
Número de
la práctica
1
Universidad de Guayaquil
Facultad de Ciencias Químicas
Carrera: Química y Farmacia
Guía de Prácticas de Laboratorio
Tema de la práctica de laboratorio
GENERALIDADES DE BOTANICA FARMACEUTICA
Objetivos de la práctica de laboratorio
1.- CONOCER LAS NORMAS DE SEGURIDAD EN EL LABORATORIO DE BOTANICA
FARMACEUTICA.
2- APRENDER E IDENTIFICAR CADA UNA DE LAS PARTES DEL MICROSCOPIO.
Instrucciones o consideraciones previas
La Botánica es aquella rama de la Biología que se ocupa del estudio integral de las plantas, su descripción,
clasificación, distribución y relaciones con otros seres vivos
En tanto, la Botánica se subdivide en dos partes:
la Botánica pura, cuyo principal cometido es el de ampliar el conocimiento de la naturaleza
la Botánica aplicada, cuyas investigaciones se encuentran al servicio de la tecnología agraria
(Agronomía), farmacéutica (Bioquímica) y forestal.
LA FARMACOBOTANICA O BOTANICA FARMACEUTICA:
Constituye parte de la Ciencia Botánica en los aspectos de:
a) Morfología Vegetal. Se define como el estudio de las estructuras y formas de las plantas. incluye
– Citología: Estudio fino de la célula.
– Histología: Estudio de los tejidos. y estos se hace a través de observaciones.
b) Clasificación. Es el conocimiento con fines farmacológicos incluye la clasificación de las plantas en
categorías taxonómicas, ordenadas según un criterio jerárquico en especies, géneros, familias, órdenes,
clase, división, reino. En este aspecto, también se incluye la nomenclatura de las categorías taxonómicas.
c) Distribución Geográfica. De las especies sirve para reconocer especies nativas, endémicas, introducidas;
así como especies de distribución continental y cosmopolitas. Según este aspecto, logramos reconocer la
riqueza florística del territorio nacional y de los productos fitoquímicos que producen las especies de nuestra
flora.
d) Compuestos fitoquímicos que sintetizan las plantas. Fármacos, tintóreas, aromáticas.
NORMAS DE SEGURIDAD EN EL LABORATORIO
Normas generales
• No fumes, comas o bebas en el laboratorio.
• Utiliza una bata y tenla siempre bien abrochada, así protegerás tu ropa.
• Guarda tus prendas de abrigo y los objetos personales en un armario o taquilla y no los dejes nunca
sobre la mesa de trabajo.
• No lleves bufandas, pañuelos largos ni prendas u objetos que dificulten tu movilidad.
• Procura no andar de un lado para otro sin motivo y, sobre todo, no corras dentro del laboratorio.
• Si tienes el cabello largo, recógetelo.
• Dispón sobre la mesa sólo los libros y cuadernos que sean necesarios.
• Ten siempre tus manos limpias y secas. Si tienes alguna herida, tápala.
• No pruebes ni ingieras los productos.
2
• En caso de producirse un accidente, quemadura o lesión, comunícalo inmediatamente al profesor.
• Recuerda dónde está situado el botiquín.
• Mantén el área de trabajo limpia y ordenada.
Normas para manipular instrumentos y productos
• Antes de manipular un aparato o montaje eléctrico, desconéctalo de la red eléctrica.
• No pongas en funcionamiento un circuito eléctrico sin que el profesor haya revisado la instalación.
• No utilices ninguna herramienta o máquina sin conocer su uso, funcionamiento y normas de seguridad
específicas.
• Maneja con especial cuidado el material frágil, por ejemplo, el vidrio.
• Informa al profesor del material roto o averiado.
• Fíjate en los signos de peligrosidad que aparecen en los frascos de los productos químicos.
• Lávate las manos con jabón después de tocar cualquier producto químico.
• Al acabar la práctica, limpia y ordena el material utilizado.
• Si te salpicas accidentalmente, lava la zona afectada con agua abundante. Si salpicas la mesa,
límpiala con agua y sécala después con un paño.
• Evita el contacto con fuentes de calor. No manipules cerca de ellas sustancias inflamables. Para
sujetar el instrumental de vidrio y retirarlo del fuego, utiliza pinzas de madera. Cuando calientes los
tubos de ensayo con la ayuda de dichas pinzas, procura darles cierta inclinación. Nunca mires
directamente al interior del tubo por su abertura ni dirijas esta hacia algún compañero.
• Todos los productos inflamables deben almacenarse en un lugar adecuado y separados de los ácidos,
las bases y los reactivos oxidantes.
• Los ácidos y las bases fuertes han de manejarse con mucha precaución, ya que la mayoría son
corrosivos y, si caen sobre la piel o la ropa, pueden producir heridas y quemaduras importantes.
• Si tienes que mezclar algún ácido (por ejemplo, ácido sulfúrico) con agua, añade el ácido sobre el
agua, nunca, al contrario, pues el ácido «saltaría» y podría provocarte quemaduras en la cara y los
ojos.
• No dejes destapados los frascos ni aspires su contenido. Muchas sustancias líquidas (alcohol, éter,
cloroformo, amoníaco...) emiten vapores tóxicos.
3
USO DEL MICROSCOPIO
El microscopio es un instrumento que se va a usar durante la realización de las prácticas de botánica
durante el 95% del semestre.
Reactivos de laboratorio. -
1.-Como las prácticas se hacen en fresco se utiliza el reactivo: AGUA DESTILADA
Materiales de laboratorio
1-Placa porta objeto.
2-Placa Cubre objeto.
3-Gotero.
4.-Gillette
5.-Agua Destilada.
Equipos de laboratorio
1-Microscopio
4
Actividades por desarrollar/ técnica operatoria o procedimiento.
Responda:
1. ¿Cuáles son los sistemas del microscopio?
2. ¿Cuáles son los elementos de los sistemas del microscopio?
3. ¿Cuáles son los códigos de color de los objetivos?
Resultados obtenidos
Conclusiones
Recomendaciones
Para llevar a cabo la práctica es necesario que el estudiante haga uso del material proporcionado
dentro de la guía práctica e investigue nuevos casos de estudio
Bibliografía (se debe colocar la bibliografía que se puede utilizar para el estudio de la
práctica de laboratorio, en normas APA 6ta Edición. Se le puede entregar al estudiante para
que se guíe o entregar en blanco para que los estudiantes coloquen la consultada por ellos)
1. Sociedad Americana de Química. 2002. Seguridad en los Laboratorios Químicos Académicos.
7ma. Edición. Dirección web
2. file:///C:/Users/administrador%201/Downloads/seguridad-en-los-laboratorios-quu00edmicosacadu00e9mico%20(1).pdf
3. Comisión Seguridad Laboratorios. Universidad de Valencia. Facultad de Química. 2007.
Dirección web
4. https://www.uv.es/qflab/2019_20/descargas/normas_seguridad/normSeFac0809Cast.pdf
5. N. Arraiza, P.M., et al. . Manual de microscopía. Historia, descripción y uso del microscopio
óptico. Dirección web
file:///C:/Users/administrador%201/Documents/BOTANICA%20FARMACEUTICA%20CII%202
018-2019/BIBLIOGRAFÍA%202020-2021/manual%20de%20microscopia.pdf
6. Herrero, Joaquín De Juan. 1990. Fundamentos y manejo del microscopio óptico compuesto
común. Dirección web:
7. https://rua.ua.es/dspace/bitstream/10045/13097/1/Microscopio.pdf
8. Mundo microscopio. El microscopio. Recuperado el 01 de mayo 2020. Dirección web
https://www.mundomicroscopio.com/microscopio-electronico/
5
Número de
la práctica
2
Universidad de Guayaquil
Facultad de Ciencias Químicas
Carrera: Bioquímica y Farmacia
Guía de Prácticas de Laboratorio
Tema de la práctica de laboratorio
BOTANICA SISTEMATICA:
Objetivos de la práctica de laboratorio
CONOCER E INTERPRETAR LOS CONCEPTOS BÁSICOS RELACIONADOS CON LA TAXONOMÍA A TRAVÉS DE
EJEMPLOS Y DE LA BÚSQUEDA DE LITERATURA ESPECIALIZADA.
Instrucciones o consideraciones previas
Botánica Sistemática
Es la ciencia que clasifica, nombra y codifica una especie vegetal a través de la taxonomía
La taxonomía es al mismo tiempo una de las partes más elementales y fundamentales de la biología
comparada. Elemental porque los seres vivos no pueden discutirse o estudiarse de una manera
científica hasta que un taxónomo las haya determinado; fundamental porque en su concepción más
amplia, la taxonomía utiliza y sintetiza todo cuanto se conoce sobre los seres vivos, ya sea
morfológico, fisiológico, ecológico, etcétera (Simpson, 1945).
Normas de recolección del material Botánico:
1. Número que distingue a la muestra y la identifica con su colector, cada coleccionista debe llevar un
cuaderno de anotaciones con una numeración progresiva de sus colecciones.
2. Características del espécimen; se debe tomar en cuenta todas las observaciones que se juzguen
convenientes.
3. Fecha y lugar donde se efectúa la colección, tratando de ser lo más preciso posible.
4. Hábitat donde se colecciona el espécimen, tipo de vegetación, altitud, suelo, etc.
5. Información sobre posibles usos en ornamentación, medicina, etc.
6. Es muy útil también anotar los nombres comunes con que se conoce la planta en la región.
Proceso que sigue una muestra botánica para ser intercalada en el Herbario
6
Reactivos de laboratorio. - N/A
Materiales
1. Libros especializados de taxonomía.
2. Revistas científicas.
3. Cámara digital.
Equipos de laboratorio: N/A
Actividades por desarrollar/ técnica operatoria o procedimiento.
1. En el siguiente cuadro, completa la información que se solicita. Para cada uno de los conceptos se
recomienda consultar al menos dos trabajos.
Concepto Definición Referencia
Taxonomía
Sistemática
Categoría taxonómica
Taxón
Clasificación
Jerarquía
Determinación
Identificación
Especie
Espécimen
Ciencia auxiliar
Rama de la taxonomía
Nomenclatura
7
2. Elige tres especies de plantas existentes en el Huerto farmacéutico de la facultad de Ciencias
Químicas, y describe su clasificación iniciando desde reino hasta especie.
Cuestionario
1. Menciona la importancia de un estudio taxonómico en la elaboración de fitofármcos
2. Menciona dos ejemplos prácticos que muestren su importancia.
Conclusiones
Recomendaciones
Bibliografía
1. Fuster Esteban, Libro de Botánica. Buenos Aires 1979
2. FONTQUER. Diccionario de Botánica. Editorial Labor, Barcelona – España 1966
3. Edward Strasburger.TRATADO DE BOTÁNICA , Alemania 1953 – 1976
4. Ricker, Martín. 2019. Manual para realizar las colectas botánicas del Inventario nacional forestal y de suelos de México.
Universidad Nacional Autónoma de México. DOI: 10.13140/RG.2.2.29841.58720. Recuperado mayo 2020. Dirección web.
https://www.researchgate.net/publication/336371043_Manual_para_realizar_las_colectas_botanicas_del_Inventario_Nacional_Fore
stal_y_de_Suelos_de_Mexico/stats
5. Giberti, Gustavo. 1998. Herborización y herbarios como referencia en estudios técnico-científicos. Herbarios de la
Argentina. Recuperado mayo 2020. Dirección web. http://www.dominguezia.org/volumen/articulos/1413.pdf
6. Benítez, Carmen. 2006. Botánica Sistemática. Universidad Central de Venezuela. Maracay. Recuperado mayo 2020.
Dirección web.
http://www.ucv.ve/fileadmin/user_upload/facultad_agronomia/Botanica/Botanica_Sistematica/GUIA_DE_BOTANICA_SISTEMATICA_I
7. Jardín botánico de Guayaquil. Vídeo en línea: https://www.youtube.com/watch?v=W4n8obX4xNc
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Número de
la práctica
3
Universidad de Guayaquil
Facultad de Ciencias Químicas
Carrera: Química y Farmacia
Guía de Prácticas de Laboratorio
Tema de la práctica de laboratorio
CITOLOGIA VEGETAL
Objetivos de la práctica de laboratorio
1- Identificar la estructura celular en las especies vegetales.
Instrucciones o consideraciones previas
La célula vegetal se caracteriza por poseer pared celular; membranas; citoplasma rico en inclusiones
citoplasmática, que permite diferenciarse entre ellas; y núcleo que tiene la particularidad de ubicarse en
diferente posición, de acuerdo con la madurez de la especie vegetal.
Se realizan varias muestras para observar las partes fundamentales mencionadas. Recalcando que,
la diferenciación de la célula vegetal con la célula animal es poseer características propias en su
citoplasma como inclusiones citoplasmáticas, es decir: diferentes plastidios, vacuola de mayor
tamaño y los cloroplastos que cumplen con la función de la fotosíntesis.
Reactivos de laboratorio. -
1.- Agua Destilada (H20)
2.- Lugol I + IK + H2O
Materiales de laboratorio
1-Placa porta objeto.
2-Placa Cubre objeto.
3-Gotero.
4.- Gillette.
5.-Agua Destilada.
6.-Lugol I + IK + H2O
Equipos de laboratorio
1-Microscopio.
Actividades por desarrollar/ técnica operatoria o procedimiento.
9
Observación de las partes esenciales de la célula vegetal:
Muestra: cebolla colorada
Observación de cloroplastos:
Muestra: elodea
Observación de plastidios:
Muestra: patata, yuca, tomate.
1. Realizar un corte de la membrana del catafilo de la cebolla colorada. (Allium cepa), colocar
dicha muestra en la placa porta objeto, adicionar una gota de agua y cubrirla con la laminilla
cubre objeto.
2. Observar con los objetivos de 4X , 10X y 40X la forma de las células vivas de Allium cepa.
3. Procedemos agregar una gota de lugol, para mejorar la observación de los núcleos.
4. Observar con los objetivos de 4x , 10x y 40x realiza los gráficos correspondientes
5. Realizar un corte transversal de la superficie de la hoja de la Elodea (Elodea canadensis /
Elodea nuttallii), colóquela en la placa porta objeto, agregue una gota de agua destilada y
cúbrala con la laminilla. Observe en 4X, 10X, 40X.
6. Realice un corte en cada una de las muestras: patata (Solanum tuberosum), yuca (Manihot
esculenta / Manihot utillissima) y tomate(Solanum licopersicum ); colóquelas en una placa
porta objeto y agregue una gota de agua destilada, cúbrala y finalmente observe y anote.
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Resultados obtenidos
Responda, citando sus argumentos.
¿Qué forma tienen las células vegetales?
Cromoplastos
¿Por qué las células vegetales tienen estructura de mosaico?
Defina qué es ciclosis y cuál es su función en las plantas
Describa la función de los orgánulos que se ven en la Elodea y su importancia en la fotosíntesis.
Amiloplastos
Qué son los plastidios
Describa la diferencia de la estructura de los plastidios entre Solanum tuberosum y Manihot esculenta / Manihot
utillissima
Conclusiones
El estudiante debe elaborar sus conclusiones en relación con lo aprendido. No olvidar aplicar normas de redacción científica
Recomendaciones
El estudiante debe elaborar sus conclusiones en relación con lo aprendido. No olvidar aplicar normas de redacción científica
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Número de
la práctica
4
Universidad de Guayaquil
Facultad de Ciencias Químicas
Carrera: Química y Farmacia
Guía de Prácticas de Laboratorio
Tema de la práctica de laboratorio
Fotosíntesis
Objetivos de la práctica de laboratorio
1.- ESTUDIAR EL PROCESO DE LA FOTOSINTESIS
Instrucciones o consideraciones previas
La fotosíntesis es un proceso que se desarrolla en dos procesos:
• Reacciones lumínicas: es un proceso dependiente de la luz (etapa clara), requiere de energía
de la luz para fabricar ATP y moléculas portadoras de energía NADPH reducido, a usarse
en la segunda etapa.
• Ciclo de Calvin- Benson: es la etapa independiente de la luz (etapa oscura), los productos
de la primera etapa mas CO2 son utilizados para formar los enlaces C-C de los
carbohidratos. Las reacciones de la etapa oscura usualmente ocurren en la oscuridad si los
transportadores de energía provenientes de la etapa clara están presentes. Evidencias
recientes sugieren que la enzima más importante de la etapa oscura esta estimulada
indirectamente por la luz, de ser así el termino no sería correcto denominarla "etapa oscura".
La etapa clara ocurre en la grana y la oscura en el estroma de los cloroplastos.
6 CO2 + 12 H2O -->> C6H12O6 + 6 O2
Reactivos de laboratorio. -
1.- Bicarbonato de sodio
12
Materiales de laboratorio
Equipos de laboratorio
Actividades por desarrollar/ técnica operatoria o procedimiento.
Resultados obtenidos
Se realizará preguntas sobre la práctica realizada a los alumnos para conocer el grado de
aprendizaje, destreza y pericia. Cite sus argumentos
¿Qué es la fotosíntesis?
¿Qué relación tiene la luz solar con las reacciones enzimáticas de las plantas de las plantas?
¿Qué diferencia existe entre la fase lumínica y la fase oscura de la fotosíntesis?
¿Explique cómo el NaCO3H cumple el ciclo del Carbono en la reacción de fotosíntesis?
¿Qué relación tiene la formación de CO2 con la fotosíntesis?
¿Cómo se altera la formación de CO2 en ausencia de luz solar?
¿Qué es anabolismo?
¿Qué es catabolismo?
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Conclusiones
Con la observación se logra que el alumno despierte su interés por la investigación.
El estudiante debe elaborar sus conclusiones en relación con lo aprendido. No olvidar aplicar normas de redacción científica
Recomendaciones
Para llevar a cabo la práctica es necesario que el estudiante haga uso del material proporcionado
dentro de la guía práctica e investigue nuevos casos de estudio
Inicie las actividades para la práctica siguiente
Bibliografía
Fuster Esteban, Libro de Botanica. . Buenos Aires 1979
FONTQUER. Diccionario de Botánica. Editorial Labor, Barcelona – España 1966
Edward Strasburger.TRATADO DE BOTANICA , Alemania 1953 – 1976
Video Fotosíntesis https://www.youtube.com/watch?v=2E3Vvehlddo
https://www.youtube.com/watch?v=oGzl5_ON5AY
Video Fotosíntesis y Respiración celular. https://www.youtube.com/watch?v=alG0qYuXXXA
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Número de
la práctica
5.
Universidad de Guayaquil
Facultad de Ciencias Químicas
Carrera: Química y Farmacia
Guía de Prácticas de Laboratorio
Tema de la práctica de laboratorio
HISTOLOGIA VEGETAL
Objetivos de la práctica de laboratorio
1- OBSERVAR CÉLULAS MERISTEMATICA
Instrucciones o consideraciones previas
Un tejido vegetal está constituido por un grupo de células que tienen una función determinada, así tenemos
la siguiente clasificación.
Reactivos de laboratorio.-
1.- Agua Destilada (H20)
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Materiales de laboratorio
1-Placa porta objeto.
2-Placa Cubre objeto.
3-Gotero.
4.-Agua Destilada.
Equipos de laboratorio
1-Microscopio.
Actividades por desarrollar/ técnica operatoria o procedimiento.
1. Con un mínimo de 8 días de anticipación se colocan dentro de un frasco de cristal 3 semillas de frijol
o haba con el propósito de facilitar el proceso de germinación. (video 1)
2. Se procede a identificar la radícula en el embrión de la semilla. Realizar un corte con la ayuda del
bisturí, se coloca en el portaobjetos y se observa en el microscopio, con loss objetivos de 10x y 40x,
las características del tejido meristemático. Realizar el gráfico de la observación
3. Con la ayuda de las pinzas de disección se desprende un fragmento de la cutícula de la hoja, se
coloca en el portaobjetos y se observa en el microscopio con el objetivo 10x y 40x, las características
del tejido foliar.
4. Se efectúan cortes longitudinales con la ayuda del bisturí, se coloca en el portaobjetos y se observa
en el microscopio con el objetivo 10x y 40x, las características de los tejidos del tallo.
Resultados obtenidos
Se realizará preguntas sobre la práctica realizada a los alumnos para conocer el grado de
aprendizaje, destreza y pericia.
16
RAÍZ
17
1. Los puntos señalan la zona de proliferación del meristemo
radical.
2. Los puntos engloban all meristemo vascular interfascicular
3. La foto muestra un meristemo apical caulinar protegido
por los primordios foliares.
.
18
4. Los puntos delimitan al cámbium suberoso o felógeno
Conclusiones
Con la observación se logra que el alumno despierte su interés por la investigación.
El estudiante debe elaborar sus conclusiones en relación con lo aprendido. No olvidar aplicar normas de redacción científica
Recomendaciones
Para llevar a cabo la práctica es necesario que el estudiante haga uso del material proporcionado
dentro de la guía práctica e investigue nuevos casos de estudio
Bibliografía
´1. Fuster Esteban, Libro de Botanica. . Buenos Aires 1979
2. FONTQUER. Diccionario de Botánica. Editorial Labor, Barcelona – España 1966
3. Edward Strasburger.TRATADO DE BOTANICA, Alemania 1953 – 1976
4. Garcia, O, et al. 2012. Histología vegetal. https://es.slideshare.net/victormarchilap/tejidos-vegetales-
24871833
5. Atlas de histología vegetal. Recuperado mayo 2020. Dirección web:
mmegias.webs.uvigo.es/cuestionarios/vegetal/meristemo-cuestionario.php
6. Video 1. Comparando la germinación del frijol en algodón con lentejas y habas. URL
https://www.youtube.com/watch?v=pOb03XQU09o
7. Cuestionario Tejidos vegetales. Preguntas https://mmegias.webs.uvigo.es/cuestionarios/vegetal/meristemocuestionario.php
8.- Estudio de los principales Tejidos vegetales URL: https://www.cienciasnaturales.es/tejidosvegetales.html#13
Comparando la germinación del frijol en algodón con
lentejas y habas
19
Número de
la práctica
6
Universidad de Guayaquil
Facultad de Ciencias Químicas
Carrera: Química y Farmacia
Guía de Prácticas de Laboratorio
Tema de la práctica de laboratorio
TEJIDO EPIDERMICO.
Objetivos de la práctica de laboratorio
1- OBSERVAR CÉLULAS EPIDERMICAS, TRICOMAS, NERVADURA CENTRAL EN HOJA DE OREGANO, NARANJILLA,
MENTA.
Instrucciones o consideraciones previas:
TEJIDO EPIDERMICO
El tejido epidérmico es el grupo celular que posee la función de proteger a las especies vegetales, para ello
este tejido está constituido por las siguientes partes:
• Células epidérmicas
• Estomas
• Tricomas
Las células epidérmicas de las monocotiledóneas están de forma paralela, y las dicotiledóneas en forma
dispersa.
CLASIFICACIÓN DE ESTOMAS
CLASIFICACIÓN DE TRICOMAS
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Reactivos de laboratorio. -
1.- Agua Destilada (H20)
Materiales de laboratorio
1-Placa porta objeto.
2-Placa Cubre objeto.
3-Gotero.
4.-Agua Destilada.
Equipos de laboratorio
1-Microscopio.
Actividades por desarrollar/ técnica operatoria o procedimiento.
1. Realizar un corte transversal muy fino en la hoja del orégano, menta.
2. Colocar la muestra en la placa porta objeto, agregar una gota de agua y cubrirlo con laminilla.
3. Observar al microscopio con los objetivos de 4X, 10X y 40X. Observamos células
epidérmicas, tejido epidérmico y estromas. Graficar y explicar
4. Realizar un pequeño raspado del exocarpio de la naranjilla, colocarlo en placa porta objeto,
agregar una gota de agua destilada y cubrirlo, Observar en 4X,10X, 40X. Graficar y explicar
Monocotiledónea:
Rasgar la hoja del plátano, y colocarlo un fragmento en la placa porta objeto, adicionar una gota
de agua, y cubrir con laminilla cubre objeto. Observar al microscopio con los objetivos de 4X, 10X y
40X. Observar células epidérmicas, tejido epidérmico y estromas.
Resultados obtenidos
Se realizará preguntas sobre la práctica realizada a los alumnos para conocer el grado de
aprendizaje, destreza y pericia.
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22
ESTOMAS
TRICOMAS
TEJIDO EPIDÉRMICO
23
Marca una de las casillas para verdadero o falso. Cada respuesta acertada vale 1 punto, las
repuestas falladas y las dejadas en blanco valen 0
Verdadero Falso
1) Las paredes externas de las células epidérmicas suelen presentar
impregnaciones de cutina que es sintetizada por las propias células
epidérmicas y que disminuye la pérdida de agua en la planta.
2) La apertura de los estomas se debe al cambio de turgencia de las células
oclusivas.
3) La epidermis de la raíz se denomina rizodermis y está formada por células
que carecen por lo general de cutina, pero todas presentan suberina.
4) Durante el crecimiento primario el felógeno origina súber hacia el exterior.
5) El ritidoma está constituido por los tejidos muertos que quedan por fuera del
súber.
6) Las lenticelas aparecen únicamente durante el desarrollo del cuerpo
secundario de la planta, sustituyendo a los estomas en el papel de
intercambiadores de gases.
7) Las células oclusivas de los estomas presentan un engrosamiento no
uniforme de la pared celular.
8) Los tricomas son derivados de las células parenquimáticas localizadas justo
debajo de la epidermis.
9) La epidermis deriva del meristemo primario protodermis. Sin embargo, la
peridermis deriva de un meristemo secundario llamado cámbium suberoso.
10) El poro que forman las células oclusivas en los estomas se denomina
ostiolo.
F-1) El segmento indica una epidermis pluriestratificada.
F-2) Las flechas señalan a las células oclusivas de los estomas.
24
F-3) La flecha señala una cavidad denominada complejo estomático.
F-4) Los puntos de la izquierda engloban a un tricoma unicelular y los
de la derecha a uno pluricelular. La flecha señala a la epidermis.
F-5) Los segmentos indican los tipos de tejidos que forman la
peridermis. Ver imagen ampliada para ver las diferentes capas.
Conclusiones
Con la observación se logra que el alumno despierte su interés por la investigación.
El estudiante debe elaborar sus conclusiones en relación con lo aprendido. No olvidar aplicar normas de redacción científica
Recomendaciones
Para llevar a cabo la práctica es necesario que el estudiante haga uso del material proporcionado
dentro de la guía práctica e investigue nuevos casos de estudio
Bibliografía
Fuster Esteban, Libro de Botánica. Buenos Aires 1979
FONTQUER. Diccionario de Botánica. Editorial Labor, Barcelona – España 1966
Edward Strasburger.TRATADO DE BOTANICA , Alemania 1953 – 1976
3. Edward Strasburger.TRATADO DE BOTANICA, Alemania 1953 – 1976
4. Garcia, O, et al. 2012. Histología vegetal. https://es.slideshare.net/victormarchilap/tejidos-vegetales-24871833
5. García, Olga, et al. 2012. Atlas de histología vegetal. Recuperado mayo 2020. Dirección web:
https://es.slideshare.net/victormarchilap/tejidos-vegetales-24871833
6. Mejía, Manuel, et al . Atlás de histología vegetal y animal. Universidad de Vigo, España. Recuperado mayo 2020. Dirección web:
https://mmegias.webs.uvigo.es/1-vegetal/v-imagenes-grandes/proteccion_epidermis.php
7. Cuestionario Tejidos vegetales. Preguntas https://mmegias.webs.uvigo.es/1-vegetal/guiada_v_proteccion.php#epidermis
25
Número
de la
práctica
7
Universidad de Guayaquil
Facultad de Ciencias Químicas
Carrera: Química y Farmacia
Guía de Prácticas de Laboratorio
Tema de la práctica de laboratorio
TEJIDO PARENQUIMA Y SECRETOR
Objetivos de la práctica de laboratorio
OBSERVAR EL TEJIDO PARENQUIMA Y EL TEJIDO SECRETOR EN DIFERENTES MUESTRAS VEGETALES
Instrucciones o consideraciones previas
Tejido parénquima
El parénquima está constituido por células vivas, generalmente bien vacuoladas,
fisiológicamente complejas, en general con paredes primarias, poco diferenciadas,
capaces de reanudar la actividad meristemática. A esta capacidad deben las plantas la
posibilidad de cicatrizar las heridas, regenerar tejidos, y formar nuevos vástagos y
raíces adventicias
Clasificación de parénquima
.
El almidón que es el principal polisacárido de reserva de la mayoría de los vegetales y la
fuente de calorías más importante consumida por el ser humano. constituido químicamente
por dos polisacáridos: la amilosa y la amilopectina.
Los gránulos de almidón no son dulces como los azúcares y son insolubles en agua fría,
pero pueden contener agua al aumentar la temperatura, es decir los gránulos de almidón
sufren el proceso denominado gelatinización o gelificación.
Para poder identificar la presencia de almidón en un alimento determinado, se usa la
prueba de yodo o lugol, que es una reacción química, cuya evidencia es el cambio de color
26
del alimento a color azul oscuro. Esta reacción química del almidón con el yodo, da como
es el resultado la formación de cadenas de poliyoduro.
Esta prueba también se utiliza como indicador del grado de madurez de los frutos. El fruto
cuando le falta madurar contiene grandes cantidades de almidón, que pueden ser
detectadas con la prueba del yodo o prueba de lugol, en la que aparecen grandes porciones
del fruto teñidas de azul. En cambio cuando el fruto está maduro, ese almidón se ha
transformado en azúcares, por lo tanto no se tiñe de azul cuando aplicamos la prueba.
Tejido secretor
Formado por células vivas especializadas en producir secreciones que se originan del
metabolismo celular y que pueden ser eliminadas al exterior o retenidas en cavidades de
canales
La Sábila (Aloe vera), es una especie vegetal de biotipo herbáceo y perenne, ampliamente
utilizada por su efectos homeopáticos y alopáticos, además por sus extraordinarias
propiedades farmacológicas y cosmetológicas, motivo por el cual se le considera como el
recurso fitonatural más importante entre los vegetales, esto debido a la presencia de más
de 200 metabolitos secundarios considerados beneficiosos para la salud
Los múltiples compuestos fitoquímicos de Aloe vera, posicionan a este importante recurso
vegetal, con el mayor número de propiedades farmacológicas utilizadas desde el punto de
vista terapéutico, entre estos
:
27
Reactivos de laboratorio. -
1.- Agua Destilada (H20)
Materiales de laboratorio
1-Placa porta objeto.
2-Placa Cubre objeto.
3-Gotero.
4.-Agua Destilada.
5.-Gillette.
Equipos de laboratorio
1-Microscopio.
Actividades por desarrollar/ técnica operatoria o procedimiento.
1. Se realiza un raspado con el bisturí, del maíz o Previamente se retira el
exocarpio de la yuca, realizar un raspado con el bisturí. Tomar un grano de maíz
tierno exprimirlo
2. Colocar las muestras descritas en placas porta objeto agregando una gota de
agua y cubrir con laminilla cure objeto.
3. Llevar al microscopio y observar con los objetivos de 4x, 10x y 40x.
4. Luego se agrega una gota de lugol para observar el cambio de coloración
inmediato que se produce en la muestra, que es color negro, azul, lila o morado.
Este cambio de coloración me indica la presencia del almidón al reaccionar con
el lugol.
5. Una vez que el alumno logró observar con estos objetivos realiza los gráficos
correspondientes y se formula preguntas referentes a las observaciones
realizadas.
6. Se realiza un corte transversal en el Aloe vera, y se coloca en placa porta
objeto, agregar una gota de agua destilada, cubrirlo con la laminilla y proceder
a observar 4X,10X, 40X.
Resultados obtenidos
Se realizará preguntas sobre la práctica realizada a los alumnos para conocer el grado de
aprendizaje, destreza y pericia
.
28
Tejido parénquima: Almidón
Tejido Secretor: Aloe vera
La epidermis adaxial y abaxial de Aloe vera, presenta cutícula gruesa y lisa en la cara
externa con ausencia de tricomas, las células presentan morfología asimétrica, mientras
que los estomas observados son tetracíticos (cuatros células anexas por aparato
estomático) y de tipo Anfistomáticos claramente apreciables tanto en el haz y el envés,
debajo del tejido epidérmico se observaron agrupaciones de células clorenquimáticas de
morfológica circular.
Figura 1. Del lado derecho, se detalla sección transversal de Hoja (penca) de Aloe vera ,
en el lado izquierdo se indica, la ubicación de la epidermis cutinizadas y lisa, seguida de
tejido clorénquima y hidroparénquima. Autor: @lupafilotaxia.
29
Caracterización parenquimática
El mesófilo de las hojas de Aloe vera, presentó parénquima reservante
ó hidroparénquima de aspecto homogéneo y morfología lobulada a rectangular, con
grandes vacuolas y en cuyo interior celular se logró apreciar sustancias opalescentes y
viscosas.
Figura 2. Del lado derecho, se observan túbulos pericíclicos en hojas de Aloe vera, en el lado izquierdo
se indica, la ubicación de las células xilemáticas y floemáticas. Autor: @lupafilotaxia.
Caracterización xilemática y floemática
La sección transversal de la hoja de Aloe vera, mostró entre el tejido clorenquimático y las
células parenquimáticas de reserva, compactos haces vasculares constituidos por células
xilemáticas y floemáticas, con apreciables interconexiones en forma de túbulos
pericíclicos llenos de sustancias gelatinosas de color amarillo. En relación a la sección
transversal de la raíz adventicia de Aloe vera, se pudieron observar haces vasculares en
disposición ordenada y circunferencial alrededor de la medula.
Figura 3. Del lado derecho, se detalla sección transversal de raíz adventicia de Aloe vera , en el lado
izquierdo se indica, la ubicación de la rizodermis, seguida del hidroparénquima, haces vasculares y
medula. Autor: @lupafilotaxia.
30
Conclusiones
Con la observación se logra que el alumno despierte su interés por la investigación.
El estudiante debe elaborar sus conclusiones en relación con lo aprendido. No olvidar aplicar normas de redacción científica
Recomendaciones
Para llevar a cabo la práctica es necesario que el estudiante haga uso del material proporcionado dentro de la guía práctica e
investigue nuevos casos de estudio
Bibliografía
1.- Fuster Esteban, Libro de Botánica. . Buenos Aires 1979
2.- FONTQUER. Diccionario de Botánica. Editorial Labor, Barcelona – España 1966
3.- Edward Strasburger. TRATADO DE BOTANICA , Alemania 1953 – 1976
4.- MANUAL DE PRÁCTICAS DE LABORATORIO POR e Durand, M Miranda, A Cuéllar (1986)
5.- Experimento para identificar almidón en los alimentos. URL del artículo:
https://www.experimentosfaciles.com/experimento-para-identificar-almidon-en-los-alimentos/
6.- Lugol. Prueba del yodo. Detección de almidón. URL: https://www.youtube.com/watch?v=x4pV4DswjBA
31
Número
de la
práctica
8
Universidad de Guayaquil
Facultad de Ciencias Químicas
Carrera: Química y Farmacia
Guía de Prácticas de Laboratorio
Tema de la práctica de laboratorio
TEJIDO VASCULAR Y SOSTEN
Objetivos de la práctica de laboratorio
IDENTIFICAR LOS ELEMENTOS QUE PERTENECEN AL TEJIDO VASCULAR Y DE
SOSTEN.
Instrucciones o consideraciones previas
TEJIDO DE SOSTEN
La colénquima y el esclerénquima son los tejidos especializados de sostén de las
plantas. Están constituidos por células con paredes celulares gruesas que aportan una
gran resistencia mecánica. A pesar de compartir la misma función, estos tejidos se
diferencian por la estructura y la textura de sus paredes celulares, y por su localización
en el cuerpo de la planta.
CORTE TRANSVERSAL CLAVEL
Se realizaron cortes transversales al tallo de un clavel seguido a esto se hizo la tinción
de tionina y savia se observó al microscopio en el objetivo 10x, Se observa claramente el
cortex en donde se puede encontrar tejido parenquimatico y el de sostén como el
colénquima y el esclerénquima; los vasos del xilema están ubicados después del
parénquima medular; los vasos del floema están seguidos a los del xilema.
32
Imagen 1: Corte transversal de un clave con colorante de savia y tionina, donde se puede observar las
siguientes estructuras: 1.Epidermis, 2. Colenquima, 3. Parenquima, 4. Esclerenquima, 5.Cambium, 6.
Xilema, 7. Parenquima Medular
CORTE TRANSVERSAL GERANIO
Se realizaron cortes transversales al tallo de un geranio, seguido a esto se hizo la tinción
de tionina y savia se observaron al microscopio en el objetivo 10x la imagen que se
aprecia es clara, se observa el parénquima medular y los vasos del xilema que están
ubicados consecutivamente alrededor del parénquima; junto a los vasos del xilema están
los del floema, el tejido de sostén esclerénquima y colénquima presentan la forma típica
de estas estructuras
Imagen 2. Corte transversal del tallo de un geranio. Se observan las siguientes estructuras: 1. Parenquima
Medular, 2. Vasos del Xilema, 3.Vasos del Floema, 4. Esclerenquima, 5. Parenquima Cortical,6.
Colenquima, 7. Epidermis, 8.Haces Conductores
TEJIDO VASCULAR
La característica más llamativa que distingue a las plantas vasculares de las no
vasculares es la presencia de tejidos especializados en la conducción de agua,
sustancias inorgánicas y orgánicas. Estos tejidos son la xilema y el floema. La xilema
conduce grandes cantidades de agua y algunos compuestos inorgánicos y orgánicos
desde la raíz a las hojas, mientras que el floema conduce sustancias orgánicas
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producidas en los lugares de síntesis, fundamentalmente en las hojas y en las estructuras
de almacenamiento, al resto de la planta.
CORTE LONGITUDINAL CURUBA
Imagen 2.
Corte Longitudinal curuba con colorantes savia y tionina. Donde se pueden observar las
siguientes estructuras: 1.Traqueidas de tipo espiraladas, 2. Epidermis, 3. Colenquima
Se realizaron cortes longitudinales al tallo de la curuba, se hizo la tinción de tionina y savi
seguido a esto se observa al microscopio en el objetivo 10x la imagen que se observa es
clara y se puede identificar los vasos conductores en este caso las traqueidas las cuales
son de tipo espiraladas en la fotografía se observa la forma espiralada que está en el
interior de las traqueidas.
CORTE LONGITUDINAL (Cucurbita)
Imagen.3 Corte Longitudinal del tallo de curcubita, la imagen de arriba representa la tincion con
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tionina y la de abajo representa la tincion con colorante savia, la imagen de derecha nos
representa la distintas partes observadas en los tejidos como lo son:1. epidermis, 2. Colenquima,
3. Fibras de esclerenquima, 4.Parenquima medular,5. Floema, 6.Xilema
Al realizarse un corte longitudinal del tallo de Cucurbita como se observa en la ilustración
anterior con el objetivo de 10x y teñida con tionina y colorante savia se puede
observar la epidermis luego el colenquima subepidérmico tiene generalmente posición
periférica, está ubicado directamente debajo de la epidermis o está separado de ella por
una o dos capas de células en los tallos puede formar una capa continua alrededor de la
circunferencia, o aparecer en cordones, a menudo en costillas exteriormente visibles. En
pecíolos la distribución es similar a la encontrada en tallos. también a lo largo del borde
se puede observar, fibras musculares, parenquima medular, floema y xilema
Reactivos de laboratorio. -
1.- AGUA DESTILADA
Materiales de laboratorio
1.-Porta y cubre objeto
2.-Biscurí
3.- Goteros
Equipos de laboratorio
1.-Microscopio
Actividades por desarrollar/ técnica operatoria o procedimiento.
1. Realizar un corte transversal muy fino en el tallo Monocotiledoneas Clavel
(Dianthus caryophyllus) o helechos (Pteridium aquilinum) y Dicotiledonea:
Oregano (Origanum vulgare), cilantro (Coriandrum sativum), o menta
(Mentha piperita).
2. Colocar la muestra en la placa porta objeto, agregar una gota de agua y cubrirlo
con laminilla.
3. Observar al microscopio con los objetivos de 4X, 10X y 40X.
MONOCOTILEDONEA
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DICOTILEDONEA
Resultados obtenidos
Se realizará preguntas sobre la práctica realizada a los alumnos para conocer el grado
de aprendizaje, pericia y destreza.
Conclusiones
Con la observación se logra que el alumno despierte su interés por la investigación
El estudiante debe elaborar sus conclusiones en relación con lo aprendido. No olvidar aplicar normas de redacción científica
Recomendaciones
Para llevar a cabo la práctica es necesario que el estudiante haga uso del material
proporcionado dentro de la guía práctica e investigue nuevos casos de estudio
Bibliografía
1.- Fuster Esteban, Libro de Botánica. . Buenos Aires 1979
2.- FONTQUER. Diccionario de Botánica. Editorial Labor, Barcelona – España 1966
3.- Edward Strasburger. TRATADO DE BOTANICA , Alemania 1953 – 1976
4.- MANUAL DE PRÁCTICAS DE LABORATORIO POR e Durand, M Miranda, A Cuéllar (1986)
5. Tejido vascular. Video https://www.youtube.com/watch?v=-yCHor-wkV8
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