Stratégies de contrôle de maladies transmissibles - Direction ...

Juillet 2003 

Stratégies de contrôle de 

maladies transmissibles 

Ministère de la Communauté française 

Direction générale de la Santé

Juillet 2003 

Table des matières 

* ** 

ICD-9 CIM10 page 

Amibiase 006. A 06 A 01 

Botulisme 005.1 A 05.1 B 01 

Brucellose 023. A 23 B 02 

Campylobactériose 008.4 A 04.5 C 01 

Coqueluche 033.0 A 37.0 C 02 

Cryptosporidiose 136.8 A 07.2 C 03 

Diarrhée à E. coli, forme ENTERO-HEMORRAGIQUE (EHEC O157 :H7) 008.0 A 04.2 D 01 

Diarrhée à E. coli, forme ENTERO-INVASIVE (EIEC) 008.0 A 04.3 D 02 

Diarrhée à E. coli, forme ENTERO-PATHOGENE (EPEC) 008.0 A 04.0 D 03 

Diarrhée à E. coli, forme ENTEROTOXIQUE (ETEC) 008.0 A 04.1 D 04 

Diphtérie 032. A 36 D 05 

Erythème infectieux (cinquième maladie) 057.0 B 08.3 E 01 

Fièvre hémorragique à virus Hantaan 078.6 A 98.5 F 01 

Fièvre Q 083.0 A 78 F 02 

Fièvre typhoïde et paratyphoïde 002.0 A 01.0 F 03 

Gale 133.0 B 86 G 01 

Gastro-entérite virale à Rotavirus 008.6 A 08.0 G 02 

Giardiose 007.1 A 07.1 G 03 

Gonorrhée 098.0 A 54.0 G 04 

098.3 A 54.2 

Hépatite A 070.1 B 15 H 01 

Hépatite B 070.3 B 16 H 02 

Hépatite C 070.5 B 17.1 H 03 

Hépatite D 070.5 B 17.0 H 04 

Hépatite E 070.5 B 17.2 H 05 

Herpès génital 054.1 A 60 H 06 

Impétigo 684.0 L 01 I 01 

041.1 

Infections à Bartonella 088.0 A 44 I 02 

Infection à Chlamydia trachomatis 099.8 A 56 I 03 

Infection à Streptocoques A 034. A 49.1 I 04

Juillet 2003 

035.X A 38 

Infections à Haemophilus influenzae 320.0 G 00.0 I 05 

Infection néonatale précoce à Streptocoques B (GBS-Genital B Streptococcus) 038.0 P 36.0 I 06 

771.8 

Infection néonatale tardive à Streptocoques B (GBS-Genital B Streptococcus) 038.0 A 40.1 I 07 

Infection par le VIH 042. B 20 I 08 

043. B 21 

044. B 22 

079.4 B 23 

Influenza 487.X J 10 I 09 

Intoxination alimentaire à Bacillus cereus 005.8 A 05.4 I 10 

Intoxination alimentaire à Staphylococcus aureus 005.0 A 05.0 I 11 

Kawasaki 446.1 M 303 K 01 

Légionellose 482.8 A 48.1 L 01 

B 24 

J 11 

A 48.2 

Leptospirose 100. A 27 L 02 

Listériose 027.0 A 32 L 03 

Maladie de Lyme 104.8 A 69.2 M 01 

088.81 L 90.4 

Méningite à méningocoques 036.0 A 39.0 M 02 

Méningite aseptique (ou virale) 047.9 A 87 M 03 

Oreillons 072. B 26 O 01 

Pédiculose 132. B 85 P 01 

Pneumonie à pneumocoques 481.X J 13 P 02 

Poliomyélite 045. A 80 P 03 

Psittacose-ornithose 073.X A 70 P 04 

Rage 071.X A 82 R 01 

Rougeole 055. B 05 R 02 

Rubéole 056 B 06 R 03 

Salmonellose (non typhi, non paratyphi) 003 A 02.0 S 01 

Scarlatine 035 A 38 S 02 

Shigellose 004 A 03 S 03 

Staphylococcus aureus Methicilline-Résistants 038.1 A41.0 S 04 

Syndrome de choc toxique streptococcique 7855 S 05

Tétanos 037.X A 35 T 01 

Toxi-infection d’origine alimentaire à Clostridium perfringens 005.2 A 05.2 T 02 

Tuberculose 010.- A 15- T 03 

Juillet 2003 

018. A 19 

Varicelle 052.X B 01 V 01 

Yersiniose 027.8 A 04.6 Y 01 

* 

** 

9 ème Classification Internationale des Maladies (OMS) 

10 ème Classification Internationale des Maladies (OMS)

Juillet 2003 

Description du contenu 

Lignes de conduite 

Pour chaque maladie, un certain nombre de données ont été décrites selon le schéma suivant : 

Germe: Le nom du germe qui est responsable de la maladie, avec une dénomination aussi 

précise que possible. 

Incubation: Durée de l’incubation. 

Diagnostic 

Clinique: 

Description des prodromes et symptômes les plus courants, avec leurs fréquences. 

Le but n’est pas d’être complet mais d’établir une image clinique de la maladie. 

Labo.: Technique(s) de laboratoire nécessaire(s) au diagnostic de certitude, énumération 

des examens utiles à l’identification de la maladie. 

Cas probable: Eléments (cliniques, épidémiologiques, labo,...) qui permettent de suspecter la 

maladie. 

Cas confirmé: Eléments (cliniques, épidémiologiques, labo,...) qui permettent d’indiquer un 

diagnostic de certitude. 

Réservoir: Les principaux réservoirs (en Belgique), description du biotype ou des conditions 

nécessaires à la croissance du germe. 

Transmission: Description de toutes les voies par lesquelles une infection peut être transmise. 

Saison: Saisons au cours desquelles l’incidence de la maladie augmente. 

Age: Tranche d’âge à risque. 

Incidence: Une récente évaluation de l’incidence en Belgique. Eventuellement, une 

comparaison avec d’autres sources internationales. 

Facteurs de 

risque: 

Quelles sont les personnes les plus exposées, y a-t-il des affections ou des facteurs 

prédisposants? 

Contagiosité: Durée pendant laquelle la maladie peut être transmise. 

Immunité: Eléments en relation avec l’existence et la durée d’une immunité post-infectieuse, 

qu’elle soit spécifique ou non. 

Traitement: Enumération concise des traitements existants. 

Déclaration: Est-elle obligatoire? Est-elle recommandée? 

Autorité à alerter: Quelles autorités faut-il alerter en cas de découverte d’un ou plusieurs cas? 

Santé Publique: Aspects spécifiques pouvant prévenir une éventuelle expansion de la maladie. Est-il 

nécessaire de rechercher la source ou de poursuivre des investigations parmi 

certains groupes à risques?

Mesures vis-à-vis 

du patient: Mesures qui doivent être prises vis-à-vis du patient c.-à-d. décontamination, arrêt 

de travail... On peut également renvoyer vers des « procédures standard » : 

précautions gastro-entériques, contre les liquides corporels. 

des proches: Mesures ou recherches préventives spécifiques qui doivent être prises pour les 

personnes qui sont en contact direct avec un individu infecté (conjoint, partenaire 

sexuel,...). Cette personne est nommée si elle doit être identifiée. 

de l’entourage: Mesures ou recherches préventives spécifiques qui doivent être prises pour 

l’entourage autre que direct (école, travail,...). 

Eviction de 

l’école: 

Isolement à 

l’hôpital. Mesures 

Juillet 2003 

Durée de l’isolement. 

Durée et type de mesures d’isolement pour les patients dans un hôpital. 

Type de règle protectrice pour le personnel hospitalier. 

Description des règles d’hygiène pour le matériel utilisé par ou pour un patient 

infecté. 

Mesures prévent. Mesures destinées à éviter que la population ne contracte la maladie. 

générales: 

Vaccination: Mesures vaccinales envisageables. Description d’un schéma et mention d’adresses 

où l’on peut obtenir ces renseignements. 

Protection passive: Existence de traitements préventifs à base de globulines ou d’antibiotiques. 

Description d’un schéma et mention d’adresses où l’on peut obtenir ces 

renseignements. 

Remarques: Information non structurée. 

Matériel Labo.: Existence de « kit » standard. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 

Conditions-Milieu 

Type et quantité d’échantillon, mode de prélèvement. 

Pendant combien de temps et dans quelles conditions un échantillon peut-il être 

conservé. 

Comment doit-il être transporté? (frigo, poste, courrier spécial...). - Un moyen 

spécifique est-il nécessaire? 

Ressource scient.: Personne et/ou établissement où l’on peut obtenir les renseignements utiles au 

sujet de la maladie. 

Labo. de référence Laboratoire reconnu comme laboratoire de référence où les souches/sérums 

peuvent être envoyés pour analyse ou pour confirmation.

Juillet 2003 

Amibiase 

Entamoeba histolytica. Parasitose se présentant, soit sous forme aiguë dont le diagnostic différentiel 

doit être fait par rapport à d'autres coliques, soit sous forme plus sournoise dont 

le diagnostic sera le plus souvent sérologique et qui comprend des atteintes 

extra-intestinales (hépatiques, cérébrales, …). 

Incubation De 2 à 4 semaines en moyenne. 

Diagnostic 

clinique 

La plupart des infections sont asymptomatiques. Infection du gros intestin 

s’accompagnant d’une légère diarrhée (ténesme éventuel, émission de mucus 

sanguinolant) ou d’une franche dysenterie. La forme extra-intestinale survient 

le plus souvent sous forme d’abcès hépatique. 

Labo. Demander une recherche de parasites dans les selles. Démontrer la présence de 

trophozoïtes ou de kystes dans des selles fraîches (3 ECHANTILLONS A 

QUELQUES JOURS D’INTERVALLE). 

Test d’hémagglutination indirecte ou ELISA (Enzyme Linked Immuno Sorban 

Assay) pour les formes extra-intestinales. 

Cas probable Indéfinissable. 

Cas confirmé Amibiase intestinale: un cas clinique compatible avec un résultat de laboratoire. 

Amibiase extra-intestinale: présence du parasite dans un tissu extra-intestinal ou 

image radiologique suggestive confirmée par l’existence d’anticorps. 

Réservoir Humain, malade chronique ou porteur de kystes. 

Transmission Transmission féco-orale, par l’eau ou la nourriture contaminées par des selles 

contenant des kystes. 

Saison Aucune en particulier. 

Age Le plus souvent chez les jeunes adultes, rarement chez les enfants de moins de 5 

ans. 

Incidence En Belgique: 2,3/100.000 habitants (chiffres sous-estimés). Importante 

augmentation de la prévalence, 10% de la population mondiale serait touché. 

Facteurs de risque Voyage dans pays à faible niveau sanitaire. 

Contagiosité Aussi longtemps que des kystes sont excrétés, parfois pendant plusieurs années. 

Immunité 

Traitement Métronidazole ou Tinidazole (inactifs contre les kystes) + associer 

Paromomycine en cas de kystes. 

A 01 - 1

Déclaration Oui. 

Autorité à alerter Médecin responsable de l’inspection d’hygiène. 

Santé publique Anamnèse portant sur un voyage à l'étranger et une consommation de cresson. 

Alerter l'Agence fédérale pour la sécurité de la chaîne alimentaire (AFSCA). 


du patient Interdire toute préparation de nourriture pendant la phase symptomatique. 

Précautions entériques. Traitement spécifique. 

des proches Coproculture chez les proches et traitement de tout porteur. 

Recherche de parasites. 

de l’entourage 

Eviction de l’école Non. 

Isolement à 


Mesures prévent. 

générales 

Juillet 2003 

Isolement aussi longtemps qu’il persiste des kystes dans les selles. Il est 

recommandé d’attribuer une chambre privée. Le port de gants est requis pour 

manipuler le matériel contaminé. Le port de tablier ou de masque n’est pas 

nécessaire. Désinfecter le matériel contaminé par les selles. 

Précautions entériques. 

Vaccination Inexistante. 

Protection passive Inexistante. 

Remarques 

Matériel labo. Kit pour les selles. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Selles fraîches. 

4 heures dans le frigo. 

Température ambiante. - Dans flacon contenant une solution de formol à 10%. 

Ressource scient. Dr T. Vervoort, Institut de Médecine Tropicale Anvers. Tél.: 03/247 64 36. 

Labo. de 

référence 

Dr T. Vervoort, Institut de Médecine Tropicale Anvers. Tél.:03 / 247 64 36. 

email: Tvervoort@poliklin.itg.be. 

A 01 - 2

Juillet 2003 

Botulisme 

Clostridium botulinum. 1. Forme la plus fréquente: sévère intoxication alimentaire due à l’ingestion de 

NEUROTOXINES botuliniques qui sont produites par le germe dans les 

aliments contaminés. Chez l’adulte, l’ingestion de la bactérie ou de la spore 

est sans effet, seule l’ingestion de la toxine est pathogène. 

2. Botulisme infantile: rare, dû à la production de toxines dans le tube digestif 

chez les enfants de moins d’un an. Pourrait exister chez les adultes avec une 

flore intestinale déficiente. 

Incubation Les symptômes neurologiques apparaissent après 12 à 36 heures ou plusieurs 

jours. La période d’incubation est d’autant plus courte que la dose ingérée est 

élevée. 

Diagnostic 

clinique 

1. Troubles digestifs aspécifiques: vomissements-diarrhée 

2. Atteinte neurologique brutale, débutant fréquemment par une atteinte faciale, 

une diplopie, une dysphagie et une bouche sèche pour être suivie par une 

paralysie flasque et symétrique. 

Labo. Démontrer la PRESENCE DE TOXINES dans un échantillon de 5 ml de sérum, 

dans les selles, dans le suc gastrique ou dans la nourriture incriminée. 

Coproculture pour le diagnostic de botulisme infantile. 

Cas probable Cas compatible avec la description clinique et ayant un lien épidémiologique, 

Cas confirmé Cas compatible avec la description clinique et confirmé en laboratoire. 

Réservoir Surtout sur le sol ou dans les sédiments marins ou dans l’intestin des animaux : 

porcs (type A et B), poissons (type E). 

Transmission Par ingestion d’aliments insuffisamment stérilisés et qui contiennent la toxine. 

Souvent dans les conserves de fruits ou de légumes faites à la maison; dans la 

charcuterie, les fromages, le saumon fumé conditionné sous vide. 


Age Aucun en particulier. 

Incidence Sur les dix dernières années, il a été recensé de 0 à 3 cas par an en Belgique. 

Facteurs de risque Conserves faites à la maison. 

Contagiosité Non. 

Immunité Non. 

B 01 - 1

Traitement Administration de charbon de bois activé dans les heures qui suivent l’ingestion 

d’un repas. La sérothérapie doit être commencée dès l’apparition des 

symptômes. Soins de réanimation. 


Autorité à alerter Médecin responsable de l’inspection d’hygiène et l’Agence fédérale pour la 

sécurité de la chaîne alimentaire (AFSCA). 

Santé publique Problème de santé publique urgent. (Conserver tous les restes alimentaires, y 

compris les emballages pouvant être utiles pour investigation). 


du patient Pas de mesures particulières. 

des proches Rechercher d’autres personnes qui auraient consommé l’aliment incriminé. 

Retirer l’aliment de la consommation. 

de l’entourage Non. 


Isolement à 



générales 


Juillet 2003 

Une chambre privée n’est pas requise. Le port de gants, de tablier ou de masque 

n’est pas exigé. Veiller à l’hygiène des mains. Les hôpitaux qui servent des 

repas à leur personnel ou à leurs malades doivent préparer et conserver la 

nourriture selon les règles en vigueur. 

Ne pas utiliser des boîtes de conserves déformées. 

Protection passive Sérum antibotulinique (antitoxine polyvalente). 

Remarques Si une conserve industrielle est incriminée, le numéro du lot doit être transmis à 

l’Agence fédérale pour la sécurité de la chaîne alimentaire (AFSCA). 

Multiplication et production de toxines à partir de 3°C (types E et B non 

protéolytiques) ou à partir de 12°C (souches A et B protéolytiques); les toxines 

thermolabiles sont dégradées à partir de 50°C et totalement inactivées par 

chauffage à 80°C pendant 10 minutes. 

Le sérum peut être obtenu au dépôt central situé à l’hôpital Saint-Jean à 

Bruxelles mais est normalement également disponible auprès des officines 

pharmaceutiques universitaires du pays. 

Matériel labo. Pot pour les selles et tube pour le sérum. Pots stériles pour la nourriture et les 

vomissements. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Selles fraîches, sang pour le sérum, vomissements, nourriture incriminée. 

Ils ne peuvent être conservés. 

Pas de milieu particulier. - Refroidir l’échantillon et le transporter aussi vite que 

possible en milieu glacé. 

B 01 - 2

Ressource scient. Prof. M. Delmée, U.C.L. Tél.: 02 / 764 54 90. 

Prof. G. Daube, U.Lg. Tél.: 04/366 40 15 (aliments) 


référence 

Juillet 2003 

Madame M. Turneer, Institut Pasteur (ISP) Tél.: 02/373 33 10. 

email: mturneer@pasteur.be. 

B 01 - 3

Brucella abortus, B. 

melitensis, B. suis, 

B.canis. 

Juillet 2003 

Brucellose 

B. melitensis et suis provoquent des infections plus sévères que B. abortus 

quoique ce dernier puisse causer le décès de patients immunodéprimés ou 

souffrant de malnutrition. 

Incubation De 1 semaine à quelques mois. En moyenne, 2 à 3 semaines. 

Diagnostic 

clinique 

En milieu rural contaminé, il faut suspecter la brucellose devant tout symptôme 

fébrile inexpliqué. 

Les formes aiguës sont rares: fièvres ondulantes sudoro-algiques. 

Les formes subaiguës sont plus fréquentes et peuvent être décelées lors de 

complications ostéo-articulaires (20 à 60% des cas) ou neuro-méningées (2 à 

5% des cas). Les formes chroniques se traduisent par une asthénie importante. 

Labo. Examens à demander et résultats suivant le stade de la brucellose : 

Examens : Stade s: 

Aigü Subaigü Chronique 

Hémoculture : +++ + - 

Wright : + +++ +/- 

EAT (Epreuve Antigène Tamponné) 

ou rose bengale : +/- +++ +/- 

Fixation du complément : +/- +++ +/- 

Immunofluorescense : +/- +++ +/- 

Cas probable Cas compatible avec la description clinique et ayant un lien épidémiologique, 

ou cas présentant un titre élevé isolé. 


Réservoir Le réservoir est animal. Mais en Belgique, l’infection des ovins, des caprins, 

des porcs et des chiens est rare. La brucellose bovine est en voie d’éradication. 

Transmission Par ingestion de lait cru ou de produits laitiers provenant de régions 

contaminées (ex.: sud de l’Europe), lors de la préparation de viande ou abats de 

sanglier ou de lièvre provenant de régions contaminées (ex.: Europe de l’est), 

lors de contact avec un animal excrétant le germe ou avec du matériel souillé. 

De l’animal à l’homme par contact direct avec des tissus infectés (sang, 

avortons,...) ou indirect par ingestion. Contamination de laboratoire par 

inhalation lors d’un effet aérosol. 

Saison Dans nos pays tempérés, il existe un effet saisonnier lié à la période des mises 

bas des espèces domestiques (printemps et été). 


B 02 - 1

Incidence Devenue très rare en Belgique, probablement sous-déclarée (dernier cas en 

1997). Aux USA, 120 cas/an. 

Facteurs de risque Brucellose professionnelle : éleveurs, bouchers, vétérinaires, toute personne en 

contact avec des animaux ou des carcasses. Brucellose accidentelle: 

consommation de lait cru et de produits laitiers en provenance de régions 

contaminées. 

Contagiosité Exceptionnellement de personne à personne (contamination par voie sexuelle). 

Immunité La durée de l’immunité n’est pas connue avec précision. 

Traitement Rifampicine et doxycycline. 


Autorité à alerter Médecin responsable de l’inspection d’hygiène et l’Agence fédérale pour la 


Santé publique Services vétérinaires: traitement approprié des animaux. 

Pasteurisation du lait. Rechercher la source en fonction du germe identifié. 


du patient Traitement antibiotique. Anamnèse orientée. 

des proches Connaître la source afin d’identifier les personnes ayant été soumises au même 

risque. Anamnèse orientée. 



Isolement à 



générales 

Juillet 2003 

L’isolement prophylactique n’est pas requis. Le port de gants et tablier est 

obligatoire pour manipuler du matériel contaminé par des sécrétions. Pas 

d’obligation de porter un masque. Désinfecter le matériel utilisé pour drainage 

des lésions ou contaminé par des sécrétions. 

Informer les groupes à risque du mode de contamination. Pasteuriser le lait 

Vaccination Le recours à la vaccination chez l’homme dépend in fine du contrôle des 

brucelloses animales. Sans objet dans nos pays, elle est proposée aux personnes 

à risque en Chine et en ex-URSS. 


Remarques Il est à noter qu’au cours de ces dernières années, plus de 50 diagnostics 

sérologiques ont été posés chaque année. En fonction de la prévalence de la 

maladie et des caractéristiques intrinsèques des tests sérologiques utilisés, la 

valeur prédictive d’un résultat sérologique positif sera faible. 

B 02 - 2

Matériel labo. Culture selon la technique de Castaneda pour le sang ou sur milieux solides 

(type Trypcase soy) pour les tissus et la moelle. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Juillet 2003 

Sang (éventuellement moelle osseuse). Sérum pour test d’agglutination. Les 

isolements de B.abortus du sang sont plus rares que ceux faits à partir de 

moelle. 24 heures dans le frigo. 

La moelle osseuse sur milieu glacé. Pas de milieu particulier. 

Ressource scient. Dr. J. Godefroid (vétérinaire), CERVA (Centre d’Etude et de Recherche 

Vétérinaires et Agricochimiques - Groeselenberg 99 – 1180 Uccle) - Tél. : 

02/375 44 55. 


référence 

Dr. J. Godefroid (vétérinaire), CERVA (Centre d’Etude et de Recherche 

Vétérinaires et Agricochimiques) - Groeselenberg 99 – 1180 Uccle - Tél. : 

02/379 04 00. 

email: Jagod@var.fgov.be. 

B 02 - 3

Juillet 2003 

Campylobactériose 

Campylobacter Première cause d’entérite bactérienne dans les pays industrialisés. 

Incubation De 1 à 10 jours, en moyenne de 3 à 5 jours. 

Diagnostic 

clinique 

Entérite assez polymorphe. Les signes cliniques les plus constants sont la 

fièvre, le sang dans les selles et les douleurs intestinales. Parfois on observe 

une simple diarrhée aqueuse. Des complications peuvent apparaître : arthrites, 

érythème noueux, syndrome de Guillain-Baré. 

Labo. Isolement de Campylobacter à partir de tout échantillon clinique. 

Chaque germe isolé du sang, du LCR ou des selles lors d’un épisode 

épidémique doit être envoyé au laboratoire de référence pour typage plus précis. 

Cas probable Cas compatible avec la description clinique et ayant un lien épidémiologique. 

Cas confirmé Cas probable confirmé par le laboratoire. 

Réservoir Humain (porteurs sains). 

Animal: vaches, moutons, chats, chiens mais principalement la volaille. 

Transmission Le plus souvent par ingestion d’eau, de nourriture ou de lait contaminés. 

Rarement par voie féco-orale, par contact avec une personne ou un animal 

infecté. La dose infectante est faible (200-300 germes). 

Saison Toute l’année mais avec un pic en été. 

Age Surtout les enfants de 1 à 4 ans et les jeunes adultes. 

Incidence Moyenne annuelle de 6 608 cas enregistrés en Belgique par le réseau des 

laboratoires vigies. 

Facteurs de risque Incriminée dans la diarrhée des voyageurs. 

Contagiosité Pendant toute la durée de la maladie et de quelques jours à quelques semaines 

après la guérison. 

Immunité 

Traitement Symptomatique. 

Antibiothérapie pour éliminer les porteurs asymptomatiques. 


Autorité à alerter Médecin responsable de l’inspection d’hygiène. Avertir l’Agence fédérale pour 

la sécurité de la chaîne alimentaire (AFSCA). 

C 01 - 1

Santé publique Rechercher une éventuelle source commune. Pour les personnes travaillant dans 

le secteur Horeca, crèches ou hôpitaux, contrôler l’hygiène et informer le 

personnel. 


du patient Ne pas manipuler des aliments ou travailler dans une crèche ou donner des 

soins médicaux jusqu’à disparition de la diarrhée ou 24 heures après le début 

de l’antibiothérapie. Précautions entériques. 

des proches Ne rechercher les contacts qu’en cas d’épisode épidémique. 

de l’entourage Précautions entériques. 


Isolement à 



générales 



Remarques 

Matériel labo. Pot à coproculture. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 

Conditions -Milieu 

Juillet 2003 

Isolement pendant la durée de la diarrhée. Pour les patients à risque (maternité 

et pédiatrie), il faut attendre 2 coprocultures négatives après le début du 

traitement. Utiliser des gants lors de contacts avec le matériel infecté. Le port 

du tablier est seulement nécessaire s’il y a risque de contamination. Pas 

d’obligation de porter le masque. Désinfecter le matériel contaminé par les 

selles. 

Attention particulière à la préparation des aliments et cuisson complète, surtout 

pour la volaille. Précautions entériques. 

Echantillon de selles fraîches. Quantité équivalente à une cuillère à café. 


Tube avec milieu semi-solide de Cary-Blair. Refroidir et transporter 

l’échantillon dans un milieu glacé endéans quelques heures. 

Ressource scient. Dr. G. Zissis, Dr O.Vandenberg, Hôpital Saint-Pierre. Tél.: 02 / 535 45 30. 


référence 

Dr. G. Zissis ou Dr O. Vandenberg, Hôpital Saint-Pierre. Tél.: 02 / 535 45 30. 

email: gzissis@stpierre-bru.be. 

C 01 - 2

Bordetella pertussis et 

parapertussis. 

Juillet 2003 

Coqueluche 

Incubation De 7 à 10 jours, rarement 2 à 3 semaines. 

Diagnostic 

clinique 

Toux qui dure 2 semaines et qui s’accompagne d’un des symptômes suivants: 

quintes de toux paroxystique, sibilances inspiratoires, toux émétique sans autre 

cause de vomissements. Cette toux typique peut être absente chez les adultes, 

les immunodéprimés et les petits enfants. Chez les enfants, elle peut causer un 

dommage cérébral. La coqueluche peut se compliquer en pneumonie. 

Souvent atypique chez les enfants de moins de 6 mois et les adultes. 

Labo. Détection d’acide nucléique (PCR - Polymerase Chain Reaction). Isolement de 

Bordetella pertussis à partir d’un échantillon clinique (secrétions nasopharyngées). 

Mise en évidence de la formation d’anticorps spécifiques en 

l’absence d’une vaccination récente (apparition tardive des anticorps, réponse 

faible chez les très jeunes enfants). 

Cas probable Cas qui répond à la définition du cas clinique avec un lien épidémiologique. 

Cas confirmé Cas confirmé en laboratoire. 

Réservoir Humain. 

Transmission Par mise en aérosol de gouttelettes lorsque le patient infecté tousse. Egalement 

par contact direct. La maladie est transmise par des adultes infectés (qui 

peuvent être totalement asymptomatiques) ou par des enfants incomplètement 

immunisés. Les coquelucheux restent porteurs de B. pertussis pendant environ 

un mois. 

Saison Il existe une variation saisonnière selon les pays. En Grande-Bretagne, les cas 

les plus nombreux sont décelés à la fin de l’hiver et au printemps. 

Age Surtout les enfants non-vaccinés (

Immunité L’immunité est de longue durée (environ 12 ans), mais elle peut décroître 

lentement, surtout chez les adultes ou les adolescents incomplètement 

immunisés. 

Traitement Antibiotiques (clarithromycine) pendant 7 jours. 


Autorité à alerter Médecin responsable de l’inspection d'hygiène et le service de Promotion de la 

Santé à l’école. 

Santé publique Si plus d’un cas, rechercher activement les contacts et les cas suspects au sein 

de la communauté concernée. Surveillance de l’apparition de nouveaux malades 

pendant les 14 jours qui suivent le diagnostic du dernier cas. 


du patient Isolement respiratoire. Désinfecter tous les objets contaminés par des sécrétions 

respiratoires. Vérifier le statut immunitaire du patient et de ses proches. 

des proches Les proches (tous les contacts vivant sous le même toit ou ayant des contacts 

étroits avec le malade) doivent recevoir une antibiothérapie de 7 jours 

(efficacité douteuse). S’il y a des enfants de moins de 24 mois mais qui n’ont 

pas encore eu la 4 ème dose de DTPa (Vaccin Diphtérie Tétanos Pertussis 

acellulaire), faire une injection. 

de l’entourage Eviter les contacts avec les non vaccinés pendant le traitement aux 

antibiotiques. En présence de toux exclure la fratrie, non ou incomplètement 

vaccinée, de l’école ou autre ensemble scolaire et ce jusqu’à 10 jours après le 

début de l’antibiothérapie. DTPa (Vaccin Diphtérie Tétanos Pertussis 

acellulaire) aux enfants de moins de 24 mois s’ils sont incomplètement 

vaccinés. Il est prudent d’envisager une chimioprophylaxie pour les enfants de 

moins d’1 an. 

Eviction de l’école Eviction du cas 28 jours après le début de la toux et 21 jours pour 

enfants/personnel de l’école gardienne non immunisés. 

Isolement 

à l’hôpital. 

Mesures 


générales 

Juillet 2003 

Isolement respiratoire pendant les 7 premiers jours du traitement. Chambre 

privée et port du masque sont requis. L’utilisation de gants et de tablier est 

nécessaire pour manipuler des objets contaminés. Désinfecter le matériel 

contaminé par les sécrétions respiratoires pendant les 7 premiers jours du 

traitement. 

Vaccination systématique par DTPa (Vaccin Diphtérie Tétanos Pertussis 

acellulaire). Le vaccin ne peut être utilisé pour maîtriser un épisode 

épidémique. Si un enfant de moins de 2 mois est soumis à un risque : lui 

donner de la clarithromycine. Dans le cas d’un enfant entre 3 et 24 mois, lui 

donner un traitement à la clarithromycine et continuer la vaccination. Si une 

femme enceinte est proche de l’accouchement: traitement à l’érythromycine 

pour une durée de 14 jours (la clarithromycine est contre-indiquée pendant la 

grossesse). 

C 02 - 2

Vaccination La seule prévention efficace de la coqueluche réside dans la vaccination 

systématique et complète durant la petite enfance. Le vaccin contre la 

coqueluche s’administre simultanément aux vaccins contre le tétanos et la 

diphtérie (DTPa - Vaccin Diphtérie Tétanos Pertussis acellulaire), ce dernier 

peut être combiné avec l’IPV (Inactivate Polio Vaccine) et le vaccin contre 

l’haemophilus influenza b. 

Le schéma de vaccination recommandé est le suivant: 

- Soit la composante DTPa (Vaccin Diphtérie Tétanos Pertussis acellulaire). 

Dans ce cas, l’immunisation est acquise en 4 injections réalisées 

respectivement à 2 mois, 3 mois, 4 mois et entre 13 et 18 mois. L’usage du 

DTPa (Vaccin Diphtérie Tétanos Pertussis acellulaire) autorise l’injection 

du rappel à 5-6 ans. 

- Soit la composante DTP (Vaccin Diphtérie Tétanos Pertussis). Dans ce cas, 

l’immunisation requiert 4 injections réalisées respectivement à 3 mois, 4 

mois, 5 mois et à 13-14 mois. Le rappel « coqueluche » à 5-6 ans est exclu; 

en outre, ne pas commencer après 12 mois et ne plus vacciner après 24 

mois. 


Remarques Le syndrome pertussis like peut être causé par des adénovirus, RSV 

(Respiratory Syncitial Virus) parainfluenza. Des effets secondaires de la 

vaccination peuvent apparaître dans les 48 heures : réaction locale au point 

d’injection, fièvre > 39, 5°C, pleurs persistant plusieurs heures, 

bronchospasme, choc, aréactivité, convulsions prolongées et désordres 

neurologiques (surtout après l’âge de 7 ans). 

Les contre-indications : maladie infectieuse en cours, réaction locale ou 

générale après la première dose, maladie cérébrale évolutive. 

Matériel labo. Tube sec pour sérum. Récipient stérile pour les aspirations naso-pharyngées. 

(écouvillon naso-pharyngé pernasal (fin écouvillon de calcium alginate, pas de 

coton qui inhibe B. pertussis) en milieu de transport spécifique: moins bon 

rendement). 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Juillet 2003 

En cas de suspicion de coqueluche, il faut en informer le laboratoire car il faut 

faire appel à des techniques spécialisées: culture sur milieu spécifique et PCR 

(Polymerase Chain Reaction) sur aspiration naso-pharyngée (un frottis nasopharyngé 

est possible aussi mais il faudra se procurer un milieu de transport 

spécifique et le rendement est moins bon). Une sérologie peut être effectuée 

dans certains laboratoires mais les résultats sont difficiles à interpréter car on a 

rarement l’occasion d’observer une séroconversion. A 4°C, le moins 

longtemps possible. Toujours utiliser le milieu de transport pour les frottis. 

Milieu agar Reagan-Lowe (dont la moitié de la quantité d’agar) en tube. 

Température ambiante. 

Ressource scient. Prof. S. Lauwers, V.U.B. Tél.: 02 / 477 50 00. 

Labo. de référence Prof. S. Lauwers, V.U.B. Tél.: 02/477 50 00. email : labomicro@az.vub.ac.be. 

C 02 - 3

Juillet 2003 

Cryptosporidiose 

Cryptosporidium. Cryptosporidium parvum est l’espèce la plus souvent responsable d’infections 

chez l’homme et l’animal domestique. 

Incubation Probablement 1 à 12 jours. 

Diagnostic 

clinique 

Pour les formes symptomatiques: diarrhée aqueuse qui s’accompagne de 

crampes, de perte de poids, d’anorexie, de flatulence et de malaise mais qui 

peut se résoudre spontanément. Chez les immunodéprimés, l’évolution de la 

maladie peut mener à une aggravation de la symptomatologie et au décès. 

Labo. Indiquer sur la demande d’analyse: recherche de cryptosporidiose car nécessite 

une coloration spéciale. A partir de selles fraîches, microscopie après coloration 

acido-résistante ou marquage en immunofluorescence avec des anticorps 

monoclonaux. Biopsie intestinale. Des antigènes solubles peuvent être détectés 

dans les selles avec une technique immuno-enzymatique. 



Réservoir L’homme, le bétail et les animaux domestiques. 

Transmission Entre animaux et humains. Entre humains et animaux. Entre humains. Par la 

contamination fécale de l’eau ou de la nourriture. 

Saison Toute l’année mais avec un pic en été. 

Age Pas de prédisposition mais les enfants de moins de 2 ans semblent plus 

sensibles à l’infection. 

Incidence En Belgique: 700 cas enregistrés en 2001 par le réseau des laboratoires vigies. 

Facteurs de risque Les personnes à risque sont: les enfants dans les crèches et les garderies, les 

communautés fermées (clinique, prisons, ...), les voyageurs dans des pays à 

faible niveau sanitaire, les homosexuels, les immunodéprimés (surtout les 

patients HIV positif), les propriétaires d’animaux. 

Contagiosité Les oocystes peuvent persister dans les selles plusieurs semaines après la 

disparition des symptômes. Dans un milieu humide et à température ambiante 

(5 à 20°C). Ils peuvent rester infectieux pendant une période variable pouvant 

aller de 2 à 6 mois. 

Immunité 

C 03 - 1

Traitement Pas de traitement spécifique. Du ressort du spécialiste chez l’immunodéprimé. 



Santé publique Rechercher la source s’il y a plusieurs cas dans une communauté fermée. 


du patient Le lavage fréquent et le brossage prolongé des mains ainsi que l'usage de 

savon liquide sont les mesures les plus importantes. 

Précautions entériques (surtout en milieu hospitalier). Les Oocystes sont 

détruits par la chaleur (bouillir pendant une minute), par l’eau de javel (après 

18 heures), ou par un mélange d’amoniaque 5% + formol 10% + eau de javel 

5%. Interdire au patient de préparer la nourriture aussi longtemps qu’il est 

porteur d’oocystes. Rechercher l’existence de contacts avec les animaux. 

des proches Recherche parasitologique chez les proches uniquement s’ils sont 

symptomatiques ou immunodéprimés. 

de l’entourage Non, sauf en cas d’épisode épidémique, il est alors nécessaire de rechercher la 

source. 

Eviction de l’école Jusqu’à disparition de la diarrhée. 

Isolement à 



générales 

Juillet 2003 

Isolement pendant toute la durée de la diarrhée. Pour les patients à haut risque, 

(maternité, pédiatrie et immunodéprimés) isolement jusqu’après deux 

examens parasitologiques négatifs. Il est recommandé d’attribuer une chambre 

privée pour les enfants et pour les patients manquant d’hygiène. Gants et 

tablier sont nécessaires pour manipuler du matériel contaminé. Il est 

obligatoire de se laver les mains souvent. Le port du masque est inutile. 

Désinfecter le matériel contaminé par des selles. 




Remarques Si la source possible de contamination est l’eau, on filtre de grandes quantités 

d’eau et on y recherche la présence des oocytes par coloration de Ziehl- 

Neelsen ou par immunofluorescence indirecte après concentration du parasite. 

Matériel labo. Récipients pour les selles. 

Echantillon & 

Conservation 



C 03 - 2

Transport : 


Juillet 2003 

Température ambiante. Suivre attentivement les directives pour un transport 

des échantillons biologiques. Pas de milieu particulier. 

Ressource scient. Dr T. Vervoort, Institut de Médecine Tropicale Anvers. Tél.: 03/247 64 36. 

Labo. de référence Dr T. Vervoort, Institut de Médecine Tropicale Anvers. Tél.: 03/247 64 36. 


C 03 - 3

Juillet 2003 

Diarrhée à E. coli, forme ENTERO- 

HEMORRAGIQUE 

(EHEC O 157:H7/VTEC en anglais) 

EHEC; serotype 0 157 : H7 et autres, E. coli producteur de VEROTOXINES VTEC, parfois aussi appelé producteur de 

toxines Shiga (STEC). 

Incubation Généralement de 2 à 7 jours (extrêmes : 1 à 10 jours). 

Diagnostic 

clinique 

Diarrhée aqueuse et crampes abdominales qui sont suivies de selles 

sanguinolentes. Petite fièvre. Les enfants peuvent développer un syndrome 

hémolyse-urémie ou un purpura thrombotique thrombocytopénique (2 à 7% des 

cas). 

Labo. Il faut spécifier sur la demande la recherche d’E. coli car celle-ci n’est pas 

réalisée systématiquement. La majorité des laboratoires ne recherche pas ce 

germe et ne dispose pas des milieux et réactifs nécessaires. Il faudra prendre 

contact au préalable avec le biologiste. 

• Isolement d’E. coli appartenant à un sérogroupe dont il est établi qu’il 

provoque une maladie entérohémorragique. 

• Confirmation sérologique chez des patients atteints d’un syndrome 

hémolytique-urémique ou d’un purpura thrombotique thrombocytopénique. 

• Pour les cas probables, détection de gènes codant pour la production de 

stx1/stx2. 

Le sérotypage O157 :H7 après culture sur milieu sélectif spécifique donne des 

résultats valables uniquement pour O157 :H7 sorbitol négatif. Il est préférable 

de faire une recherche de gènes codant pour la vérotoxine qui détectera aussi les 

souches sorbitol positives (fréquentes dans le sud de l’Allemagne) et les autres 

sérotypes. 

Cas probable Isolat confirmé en laboratoire en l’absence de données cliniques ou cas 

présentant des symptômes cliniques et ayant un lien épidémiologique. 


Réservoir Bovins et autres animaux. 

Transmission Féco-orale. Par la nourriture surtout la viande bovine insuffisamment cuite et le 

lait non traité. Autres aliments contaminés indirectement. Eaux de baignade. 


Age Aucun âge particulier mais les formes les plus graves (syndrome hémolyseurémie 

ou purpura thrombotique thrombocytopénique) sont surtout fréquentes 

chez l’enfant de moins de 5 ans et, dans une moindre mesure, chez le vieillard. 

D 01 – 1

Incidence Le laboratoire de référence de l’AZ -VUB a confirmé 46 cas en 2001 : 30 cas 

VTEC O 157 et 16 cas non O 157. Sous-estimation du nombre de cas. 

Facteurs de risque Manger de la viande crue ou mal cuite (hamburger). 

Contagiosité Importante (dose infectante très basse pour 0157:H7, inconnue pour les autres 

sérotypes). Par les selles, qui peuvent rester parfois positives pendant plusieurs 

semaines dans certains cas; bien que souvent, le germe soit éliminé en quelques 

jours. 

Immunité Peu connue. 

Traitement Service de soins intensifs. Réhydratation. Hospitalisation en cas de syndrome 

hémolyse-urémie. L’usage des antibiotiques est controversé et risquerait de 

précipiter le syndrome hémolyse-urémie. 


Autorité à alerter Médecin responsable de l'inspection d'hygiène et le service de la Promotion de 

la Santé à l'école, ainsi que l'Agence fédérale pour la sécurité de la chaîne 

alimentaire (AFSCA). 

Santé publique S’il y a plus de 2 cas dans une même institution, il faut rechercher une source 

commune d’infection alimentaire. 


du patient Précautions entériques. 

des proches Non. 


Eviction de l’école Sérotype 0157:H7 : tant que deux coprocultures effectuées sur des échantillons 

collectés à un ou deux jours d’intervalle ne sont pas négatives. Précautions 

entériques. Autres sérotypes : pas de directives dans la littérature, à considérer 

en fonction de l’ampleur de l’épidémie et des possibilités techniques. 

Isolement à 



générales 



Remarques 

Juillet 2003 

Précautions entériques pendant l’hospitalisation. Isoler les bébés malades. 

Gants et tablier sont nécessaires en cas de manipulation du matériel infecté. Pas 

d’obligation du port du masque. Il est recommandé d’attribuer une chambre 

privée aux patients manquant d’hygiène. Désinfecter le matériel contaminé par 

les selles. 

Contrôle régulier de la viande (veau, boeuf, ...) par l'Agence fédérale pour la 


D 01 - 2

Matériel labo. Pot pour coproculture. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Juillet 2003 

Echantillon de selles, quantité d’une cuillère à café. 


BGS, buffered, glycerol, saline en pot. Température ambiante. 

Ressource scient. Prof. Denis Pierard AZ VUB 02/477 50 00, email : Labomicro@az.vub.ac.be. 


référence 

Prof Denis Pierard AZ VUB 02/477 50 00, email : Labomicro@az.vub.ac.be. 

D 01 - 3

EIEC 

Juillet 2003 

Diarrhée à E. coli, forme ENTERO-INVASIVE 

(EIEC) 

Incubation Après 10 à 18 heures. 

Diagnostic 

clinique 

Douloureuses crampes abdominales, malaise, diarrhée dysentérique du type 

shigellose, ténèsme, et pour finir selles sanguinolentes, fièvre. 

Labo. Test au DNA. ELISA (Enzyme Linked Immuno Sorban Assay) (pour la 

détection de membranes protéiques spécifiques.) 

Cas probable Gastro-entérite confirmée par la présence de nombreux leucocytes fécaux. 

Cas confirmé Gastro-entérite confirmée par le test au DNA et ELISA (Enzyme Linked 

Immuno Sorban Assay). 


Transmission Féco-orale. Via de la nourriture manipulée par une personne infectée ou par de 

l’eau ou de la nourriture contaminée. 

Saison Eté et saison chaude. 

Age Surtout les enfants de moins de 6 mois nourris au biberon.. 

Incidence Non diagnostiqué en Belgique. 

Facteurs de risque Manque d’hygiène. 

Contagiosité Aussi longtemps que la bactérie est présente dans les selles, ceci pouvant durer 

plusieurs semaines. 

Immunité Peu connue. 

Traitement En cas de forme invasive, ampicillines ou fluoroquinolones. 


Autorité à alerter Le médecin responsable de l'inspection d'hygiène et l'Agence fédérale pour la 

sécurité de la chaîne alimentaire AFSCA). 

Santé publique Il faut rechercher une source commune d’infection s’il y a plus de 2 cas dans 

une même institution. 

D 02 - 1





Eviction de l’école Oui, pour le malade. En outre, pas de nouvelles inscriptions avant désinfection. 

Isolement des cas symptomatiques jusqu’à négativation de 3 coprocultures. 

Isolement à 



générales 



Remarques 

Matériel labo. Pot à coproculture. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Juillet 2003 

Précautions gastro-entériques pendant la durée de l’hospitalisation. Isoler les 

bébés malades. Gants et tablier sont nécessaires en cas de manipulation de 

matériel infecté. Pas d’obligation de port du masque. Attribuer une chambre 

privée pour les patients manquant d’hygiène. Désinfecter le matériel infecté par 

les selles. 

Précautions entériques dans les communautés. 



Température ambiante. BGS, buffered, glycerol, saline en pot. 

Ressource scient. Prof. P.Demol, CHU. Tél. : 04/366 24 39. 


référence 

Prof. S. Lauwers, V.U.B. Tél. : 02/477 50 00. 

D 02 - 2

Diarrhée à E. coli, forme ENTERO-PATHOGENE 

(EPEC) 

EPEC 


Diagnostic 

clinique 

Juillet 2003 

Diarrhée aqueuse s’accompagnant de vomissements et de fièvre chez les 

nourrissons de moins d’un an. Elle mène rapidement à une franche 

déshydratation. Ce coli était responsable d’épidémies de gastro-entérites dans 

les années 40-60 dans les communautés de nourrissons. Bien que ces infections 

soient devenues rares grâce à l’augmentation des standards d’hygiène, ce 

germe est toujours recherché lors d’épidémies de gastro-entérites chez les 

nourrissons. 

Labo. Il faut spécifier sur la demande la recherche d’E. coli car celle-ci n’est pas 

réalisée systématiquement. La majorité des laboratoires ne recherche pas cet 

organisme et ne dispose pas des milieux et réactifs nécessaires. Il faudra 

prendre contact au préalable avec le biologiste. 

Examens de laboratoire : coproculture, détermination par hémagglutination 

mais ces résultats sont peu fiables. La recherche du gène intimine est à préférer. 

Il n’y a pas de laboratoire de référence en Belgique pour les EPEC. Il n’y a pas 

de possibilité de stéréotyper complètement les souches ni de déterminer la 

présence des bfp (bundle-forming pili) portés par le « facteur EAF », qui est un 

autre facteur de virulence qui fait la différence entre les EPEC « typiques » et 

les EPEC « atypiques », dont le caractère pathogène est moins certain. 

Cas probable Gastro-entérite confirmée par une coproculture positive chez un enfant de 

moins d’un an. 

Cas confirmé Gastro-entérite confirmée par la présence du gène intimine. 


Transmission Féco-orale. Via de la nourriture manipulée par une personne infectée ou via de 

l’eau ou de la nourriture contaminée. 


Age Surtout les enfants de < 1 an. 

Incidence Rare dans nos pays. 

Facteurs de risque Manque d’hygiène. 

Contagiosité Dose infectante élevée. Le portage peut durer plusieurs semaines. 

Immunité Probablement liée au sérogroupe. 

D 03 - 1

Traitement Réhydratation. Antibiothérapie dans les formes graves. 





d’infection commune. 





Eviction de l’école Oui, pour le malade. En outre, pas de nouvelles inscriptions avant la 

désinfection. Précautions gastro-entériques. 

Isolement à 



générales 



Remarques 

Juillet 2003 

Précautions gastro-entériques pendant toute l’hospitalisation. Isoler les bébés 

malades. Le port de gants et tablier est nécessaire pour manipuler du matériel 

contaminé par les selles. Pas d’obligation d’utiliser un masque. Chambre 

particulière conseillée pour les patients manquant d’hygiène. Désinfecter le 

matériel contaminé par les selles. 



Echantillon & 

Conservation 

Transport : 





Ressource scient. Prof. Denis Pierard AZ VUB - Tél : 02/477 50 00. 

email : Labomicro@az.vub.ac.be. 


référence 

Prof. Denis Pierard AZ VUB - Tél : 02/477 50 00. 

D 03 - 2

ETEC 

Juillet 2003 

Diarrhée à E. coli, forme ENTEROTOXIQUE 

(ETEC) 


Diagnostic 

clinique 

Diarrhée aqueuse qui s’accompagne de crampes abdominales et d’une petite 

température. 

Labo. Coproculture et tests ELISA (Enzyme Linked Immuno Sorban Assay) ou DNA 

pour détecter les gènes LT et HT (pour les toxines thermolabiles et 

thermostables). 

Cas probable Gastro-entérite du voyageur. 

Cas confirmé Gastro-entérite confirmée par une coproculture positive et par la détection des 

gènes LT et ST. 


Transmission Féco-orale. Via de la nourriture manipulée par une personne infectée ou par de 

l’eau ou des aliments contaminés. 


Age Enfants dans les pays en voie de développement. 

Incidence Non diagnostiqué en Belgique. 

Facteurs de risque Manque d’hygiène et voyage dans pays en voie de développement. 

Contagiosité Aussi longtemps qu’il y a des germes dans les selles, ceci peut durer plusieurs 

semaines. 

Immunité Immunité spécifique au sérotype. 

Traitement Réhydratation si nécessaire. En cas de diarrhée sévère du voyageur: traitement 

par fluoroquinolones. 

Déclaration Non. 

Autorité à alerter En cas d’épisode épidémique, il faut avertir le médecin responsable de 

l'inspection d'hygiène et l'Agence fédérale pour la sécurité de la chaîne 

alimentaire (AFSCA). 

D 04 - 1


d’infection commune. 





Eviction de l’école Oui, pour le malade. En outre, pas de nouvelles inscriptions avant la 

désinfection. Précautions gastro-entériques 

Isolement à 



générales 



Remarques 

Juillet 2003 

Précautions gastro-entériques pendant l’hospitalisation. Isoler les bébés 

malades. Le port de gants et de tablier est nécessaire pour manipuler du matériel 

infecté. Pas d’obligation d’utiliser un masque. Une chambre particulière est 

conseillée pour les patients manquant d’hygiène. Désinfecter le matériel 

contaminé par les selles. 



Echantillon & 

Conservation 

Transport : 





Ressource scient. Prof. P. Demol, CHU. Tél. : 04/366 24 39. 


référence 

Prof. P. Demol, CHU. Tél. : 04/366 24 39. 

D 04 - 2

Corynebacterium 

diphteriae 

Juillet 2003 

Diphtérie 

Incubation De 1 à 10 jours, en moyenne de 2 à 5 jours. 

Diagnostic 

clinique 

Angine pseudo-membraneuse et adénopathies cervicales. Affection marquée par 

une toxicité systémique pouvant atteindre le cœur et les nerfs. 

Labo. Culture sélective sur milieu agar Tellurite. En cas de suspicion, avertir le labo 

de faire ce type de recherche. 

Cas probable Une image clinique évocatrice, qui n’est pas confirmée par le labo et qui n’est 

pas reliée par l’épidémiologie à un cas déjà analysé. 

Cas confirmé Image clinique qui est confirmée par le labo ou qui est reliée par 

l’épidémiologie à un cas déjà analysé. 


Transmission Par contact direct avec un malade ou un porteur sain. Plus rarement par 

l’intermédiaire d’objets infectés. 

Saison Les mois froids. 

Age Dans une population non immunisée, les enfants de moins de 15 ans. A l’heure 

actuelle, surtout les adultes non ou incomplètement immunisés. 

Incidence Aux USA, l’incidence est inférieure à 0,002/100.000 habitants après 

introduction de la vaccination. Chiffres similaires en Europe. Importante 

augmentation du nombre de cas dans les pays de l’Europe de l'Est dont 

quelques cas importés en Europe de l’Ouest. Aucun cas diagnostiqué en 

Belgique en 2001 par les laboratoires vigies. 

Facteurs de risque Les personnes incomplètement ou non immunisées. 

Contagiosité Variable. Habituellement, moins de 2 semaines et rarement plus de 4. Les 

porteurs chroniques restent rarement contagieux plus de 6 mois. 

Immunité Rarement définitive qu’elle soit acquise après la maladie ou après la 

vaccination. 

Traitement Antibiothérapie adaptée: pénicilline ou macrolides (érythromycine)/14 jours. 

Les antitoxines sont abandonnées en raison de l’importance des réactions 

d’hypersensibilité. 


D 05 - 1

Autorité à alerter Médecin responsable de l'inspection d'hygiène et le service de Promotion de la 


Santé publique Préciser l’étendue probable des contacts infectants. Prélever écouvillon de nezgorge 

chez toutes les personnes proches. 


du patient Isolement jusqu’à l’obtention de 2 cultures négatives successives. 

Lors de la convalescence, vacciner avec Td ou DTP Désinfecter tous les objets 

qui ont été en contact avec le patient. 

des proches Traitement AB préventif: érythromycine 50 mg/kg/jour à diviser en 4 doses 

(max. 2 gr /jour) chez les enfants, 500mg x 4/jour chez les adultes (7 j) 

(alternative si surveillance impossible: 600 000 unités de pénicilline IM si < 30 

kg, 1.2 millions IM si > 30 kg) de toute personne positive non ou 

incomplètement immunisée. Toute personne immunisée et positive recevra un 


Juillet 2003 

rappel vaccin par Td si la dernière dose reçue date de plus de 5 ans. 

Vacciner les personnes non immunisées, qui ne sont pas malades, par une dose 

de Td (chez les personnes de plus de 24 mois) ou mise en ordre des enfants de 

moins de 24 mois par DTP. 

Eviction de l’école Eviction de 21 jours et jusqu’à 2 cultures négatives à 7 jours d’intervalle. Pour 

les élèves et le personnel non immunisés, fin de l’éviction après obtention de 2 

cultures négatives à 7 jours d’intervalle. 

Isolement à 



générales 

Règles d’isolement jusqu’à ce que 3 cultures faites à plus de 24 heures 

d’intervalle et ce plus de 24 heures après l’arrêt des antibiotiques, soient 

négatives. S’il n’est pas possible d’obtenir une culture, l’isolement doit durer 14 

jours après l’arrêt des AB. Une chambre privée, le port du masque et du tablier 

sont recommandés. Le port de gants est nécessaire en cas de manipulation de 

matériel infecté. Désinfecter le matériel contaminé par des sécrétions 

respiratoires. 

Vaccination systématique par DTP jusqu’à l’âge de 24 mois. Au-delà, il faut 

utiliser Td. 

Pour les personnes qui voyagent, penser à associer rappel vaccin diphtérie et 

tétanos - Utiliser Td. 

Vaccination Vaccination DTP à 2, 3, 4, 13-18 mois, rappel à l’âge de 6 ans par Td : 1/10 

dose pédiatrique. Vaccination chez l’adulte : Td à 1/10 de la dose pédiatrique à 

0, 1 et 12 mois, ensuite un rappel tous les 10 ans. A partir de l’âge de 7 ans, 

n’utiliser que la forme pro adulto du vaccin. 


Remarques L’efficacité de l’antibiothérapie prophylactique n’est pas démontrée. Les 

personnes porteuses doivent être isolées jusqu’à l’obtention d’une culture 

négative minimum 2 semaines après l’arrêt de l’antibiothérapie prophylactique. 

D 05 - 2

Matériel labo. Ecouvillon. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Juillet 2003 

Sécrétions pharyngées en pernasal. 


Milieu semi-gélosé de type Amies. - Température ambiante. 

Ressource scient. Prof. S. Lauwers, V.U.B. Tél.: 02/477 50 00. 


référence 

Prof. S. Lauwers, V.U.B. Tél.: 02/477 50 00 - email : labomicro@az.vub.ac.be 

D 05 - 3

Juillet 2003 

Erythème infectieux (cinquième maladie) 

Parvovirus, B19. 

Incubation 4 à 20 jours. 

Diagnostic 

clinique 

Symptômes systémiques tels que fièvre chez 15 à 30% des patients et souvent 

une éruption qui évolue en 3 phases. Elle débute au niveau du visage par un 

aspect en joues battues, rougeur marquée et pâleur environnante. Après 1 à 4 

jours, apparaît un rash maculo-papulaire symétrique qui s’étend 

progressivement vers le tronc, les fesses et les cuisses. Au cours du troisième 

stade, qui peut durer de 1 à 3 semaines, l’éruption fluctue selon la température 

et les conditions d’ensoleillement. L’éruption est rare chez les adultes qui ont 

plus souvent des arthralgies ou des arthrites. Néanmoins, 25% des affections 

restent asymptomatiques. 

Labo. ELISA (Enzyme Linked Immuno Sorban Assay) pour la détection des IgM 

contre les Parvovirus B 19. 

Cas probable Image clinique qui n’est pas confirmée par le laboratoire. 

Cas confirmé Image clinique confirmée par la présence d’anticorps spécifiques IgM ou par 

une augmentation du titre d’IgG. 


Transmission Directe de personne à personne par les sécrétions respiratoires. Transmission 

verticale mère-foetus. Sans doute, transmission parentérale via transfusion de 

sang ou dérivés sanguins. 

Saison Printemps et début d’été. 

Age Le plus souvent les enfants entre 5 et 14 ans. 

Incidence 

Facteurs de risque Les personnes qui ont une maladie hémolytique peuvent faire des crises 

aplasiques. Une infection foetale ne donne pas de malformation mais peut 

causer une anémie sévère avec hydrops et mort foetale. Un immunodéprimé 

peut développer de sévères anémies. 

Contagiosité Très contagieux pendant les 7 jours qui suivent l’éruption. 

Immunité Oui, si le patient a développé des anticorps B19. 

Traitement En principe, pas de traitement. 

Gammaglobulines pour les formes sévères, ou anormalement prolongées, chez 

les immunodéprimés. 

E 01 - 1


Autorité à alerter En cas d'épisode épidémique, avertir le médecin responsable de l'inspection 

d'hygiène et le service de Promotion de la Santé à l'école. 

Santé publique Non. 


du patient Isoler le patient des personnes sensibles. 

des proches Eviter tout contact avec les femmes enceintes. 


Eviction de l’école Eviction de l’école jusqu’à 7 jours après le début de l’éruption. 

Isolement à 



générales 

Juillet 2003 

Isolement respiratoire pendant les 7 jours qui suivent l’éruption. Une chambre 

privée est conseillée. Le port du masque est requis pour les personnes à risque 

en contact avec le patient. Le port du tablier ou de gants n’est pas requis. Le 

matériel ne doit subir aucun traitement particulier. 

Non. 



Remarques 

Matériel labo. Tube sec pour sérum. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Echantillon de sérum. 


Pas de milieu particulier. - Température ambiante. 

Ressource scient. Prof. F. Zech, U.C.L. Tél. : 02/764 41 06. 


référence 

E 01 - 2

Fièvre hémorragique à 

hantavirus appartenant 

à la famille des 

Bunyaviridae 

Juillet 2003 

Fièvre hémorragique à hantavirus 

Zoonose fébrile à début brutal. En Europe, la forme la plus fréquente est la 

néphropathie épidémique. Début 1999, le genre hantavirus comptait déjà plus 

de 30 virus différents, dont au moins 13 sont pathogéniques pour l’homme. Les 

sérotypes les plus importants pour l’Europe sont : Puumala (PUU), transmis par 

le campagnol roussâtre, Dobrava (DOB), transmis par le mulot à collier, et 

Seoul, transmis par le rat sauvage. Penser à la leptospirose dans un diagnostic 

différentiel. 

Incubation De 5 à 42 jours avec une moyenne de 12 à 16 jours. 

Diagnostic 

clinique 

Fièvre pouvant atteindre 40°C ou frissons (syndrome grippal), Maux de 

tête, lombalgies, Troubles de la vision et/ou douleurs oculaires dans 25% 

des cas, La triade céphalées, lombalgies et douleurs oculaires (oculodynie) est 

évocatrice, Après 3 à 6 jours, apparaissent les symptômes rénaux: protéinurie, 

hématurie, oligurie, parfois anurie. 

Labo. Une thrombocytopénie est le signe le plus fréquent et le plus précoce. Un 

pourcentage élevé de lymphocytes atypiques, et surtout d’immunoblastes dans 

le frottis aigu est très souvent évocateur, surtout s’il est accompagné d’une 

leucocytose. Protéinurie, augmentation des transaminases, de l’urée ou de la 

créatinine peuvent appuyer le diagnostic. 

Démontrer l’existence d’anticorps spécifiques IgG et IgM par ELISA (Enzyme 

Linked Immuno Sorban Assay), ou Western blot (WB). 

Cas probable Une histoire clinique suggestive avec immunoblastes, une leucocytose, 

protéinurie, créatinémie et surtout une thrombocytopénie. 

Cas confirmé Sérodiagnostic par la présence d’anticorps, surtout les IgM pos. en ELISA 

(Enzyme Linked Immuno Sorban Assay) ou WB, qui démontrent une infection 

récente (moins de 6 mois). PCR (Polymerase Chain Reaction) est utile, mais 

souvent décevante dans les infections à PUU, les plus fréquentes en Europe. 

L’isolement du virus est difficile à réaliser mais peut se faire à partir du sang 

(lymphocytes), d’urine ou de liquide péritonéal. La technique de la PCR 

(Polymerase Chain Reaction) et/ou coloration immunohistochimique sur les 

tissus (biopsies) peut être très utile. 

Réservoir Les rongeurs transmettent les hantavirus dans la nature. Chaque sérotype de 

virus à un rongeur-hôte de prédilection. 

Transmission Principalement par la voie respiratoire, par inhalation de particules virales 

contenues dans les excrétions (urines, selles, salive) du rongeur ou par contact 

lors d’une morsure par un rongeur infecté. Pas de transmission inter-humaine. 

F 01 - 1

Saison Les pics saisonniers correspondent aux variations de population des hôtes. Dans 

nos régions, un pic entre mai et juin et un plus petit au mois de novembredécembre. 

Age Pour des raisons inconnues (d’ordre immunologique ?), les enfants de moins de 

10 ans sont rarement atteints. Le groupe d’âge caractéristique se situe entre 30 

et 40 ans. 

Incidence En Belgique, 50 cas au moins sont diagnostiqués chaque année mais ces 

chiffres sont certainement sous-évalués. C’est surtout dans la région de l’Entre- 

Sambre et Meuse que la plupart des cas ont été diagnostiqués. En 2001, il y a 

eu 110 cas dénombrés (Réseau des Laboratoires Vigies + Laboratoire de 

Référence). 

Facteurs de risque Les principaux facteurs de risque de l’hantavirose sont : 

1. les contacts directs ou indirects avec les rongeurs : 

contacts avec les rongeurs vivants ou morts, contacts avec les matières 

fécales ou les déchets de rongeurs, manipulation de terreau ou de terre 

contaminé(e); 

2. le travail du bois : 

travail intensif du bois en forêt (coupe de bois, déplacement de troncs, 

etc), manipulation de bois stocké (bois de chauffage); 

3. les travaux dans l’habitation : 

travaux de bâtiment (rénovation de vieilles maisons), nettoyage 

(exposition à la poussière) de caves, greniers, celliers ou poulaillers, 

réouverture d’un local resté fermé durant l’hiver. 

Contagiosité Les rongeurs restent probablement contagieux tout au long de leur vie. Aucune 

transmission de personne à personne n’a été décrite à ce jour en Occident. 

Immunité La présence d’anticorps IgG neutralisants est probablement définitive. 

Traitement Traitement symptomatique de l’insuffisance rénale ou respiratoire et du choc. 

Pour la douleur, préférer le paracetamol à l’aspirine (diathèse hémorragique). 

Les anti-inflammatoires non-stéroïdiens sont à éviter (aggravation de 

l’insuffisance rénale). Pour les cas les plus sérieux, Ribavirine IV à initier dès 

le début de la maladie. 



Santé publique Si plus d’un cas est signalé dans la même région et au même moment, il faut 

essayer d’en identifier la source (le rongeur). 

Juillet 2003 

F 01 - 2


du patient Pas de mesure particulière vis-à-vis du patient. Théoriquement, le sang du 

patient en phase aiguë peut être contagieux. 

des proches Surveillance des personnes qui , dans la même région, ont eu des contacts 

proches avec des rongeurs ou ont été exposés à leurs excrétas . 



Isolement à 



générales 

Juillet 2003 

La chambre privée n’est pas obligatoire. Le personnel ne doit pas prendre de 

mesures particulières. 

Rien de particulier pour le matériel. Précautions habituelles pour les 

échantillons de sang. 

Mesures d’élimination des conditions favorisant la prolifération des rongeurs 

(ne pas laisser traîner de la nourriture, ne pas accumuler les déchets, ne pas 

camper à proximité d’immondices, d’endroits humides,...) Informer les 

personnes à risque. 

Elimination des rongeurs des maisons et autres bâtiments. 

Vaccination En préparation mais n’est pas encore disponible. 


Remarques 

Matériel labo. Tube sec pour sérum, pots stériles pour tissus. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Sérum ou plasma de début de phase aiguë et de convalescence (2 à 3 semaines). 

A prévoir prochainement, échantillons de tissus: biopsie rénale, liquide de 

dialyse péritonéale pour PCR (Polymerase Chain Reaction) ou coloration 

immunohistochimique. 

Sérum et plasma 24 heures dans le frigo. Les échantillons de tissus doivent être 

profondément congelés. 

Pas de milieu particulier. - En milieu glacé pour le sérum et le plasma. Les 

tissus en état de congélation. 

Ressource scient. Dr C. Vandenvelde, Belgian Zoonosis Workgroup. Hôpital Militaire Reine 

Astrid. Tél. : 02/264 40 44. 


référence 

Dr C. Vandenvelde, Belgian Zoonosis Workgroup. Hôpital Militaire Reine 

Astrid. Tél. : 02/264 40 44. email: Christian.vandevelde@smd.be. 

F 01 - 3

Coxiella burnetii 

Juillet 2003 

Fièvre Q 

Incubation De 2 à 3 semaines en moyenne jusqu’à 6 semaines, incubation liée à la dose 

infectante. 

Diagnostic 

clinique 

Forme subclinique: syndrome grippal (2 à 14 jours). 

Forme clinique: pneumopathie fébrile avec atteinte hépatique. 

Forme chronique: endocardite à hémocultures négatives survenant sur 

valvulopathie préexistante. Dans le sud de la France, 5 à 

8% des cas d’endocardite. 

Labo. Diagnostic sérologique: augmentation spécifique des anticorps par IF, microagglutination, 

FC ou ELISA (Enzyme Linked Immuno Sorban Assay). 

Cas probable Une image clinique compatible qui peut être reliée par l’épidémiologie à un cas 

confirmé et qui a été soumis au même risque. 

Cas confirmé Une image clinique confirmée par une augmentation du titre d’anticorps (x4) 

entre la phase aiguë et de convalescence. 

Réservoir Bétail, moutons, chèvres, chats et autres animaux sauvages, oiseaux, tiques. 

Transmission Inhalation de poussières dans les étables ou autres établissements contaminés 

par les tissus placentaires, les excréments, ... 

Par contact direct avec les animaux infectés ou les produits qui en dérivent 

(laine, peaux...). 

Peut être par ingestion de lait cru contaminé. 



Incidence Belgique : rare (11 cas en 2002 et 6 cas en 2001) diagnostiqués par le réseau 

des laboratoires vigies. 

Facteurs de risque Professions à risque: personnel des abattoirs, vétérinaires, bouchers, fermiers, 

..., le personnel de laboratoire. 

Contagiosité Les animaux aussi longtemps qu’ils sont porteurs du germe. 

Les produits peuvent rester contagieux pour de longues périodes. 

Immunité On la dit définitive mais des réinfections sont possibles. 

Traitement Doxycycline, fluoroquinolone 

F 02 - 1


Autorité à alerter Médecin responsable de l'inspection d'hygiène et l'Agence fédérale pour la 

sécurité de la chaîne alimentaire (AFSCA), ainsi que le médecin du travail. 

Santé publique Services vétérinaires: traitement approprié des animaux. 

Pasteurisation du lait. Rechercher la source parmi les animaux. 


du patient Traitement antibiotique. 

des proches Connaître la source afin d’identifier les personnes ayant été soumises au même 

risque. 



Isolement à 



générales 



Juillet 2003 

Pas d’obligation de chambre privée. Le personnel ne doit pas prendre de 

mesures particulières. 

Pas de précaution particulière pour le matériel. 

Informer les groupes à risque du mode de contamination. 

Pasteuriser le lait . Mesures d’hygiène de base au poste de travail. 

Remarques Un taux d’anticorps élevé peut être le signe d’une infection chronique aussi 

bien que d’une endocardite subaiguë. 


Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Remarques labo. 

Echantillon de sang pour sérum. 



Ressource scient. Dr K. De Schrijver, médecin inspecteur de la province d’Anvers. 

Tél. : 03/224 62 04 

ou Dr Y. Pirenne, médecin inspecteur pour la province de Liège 

Tél : 04/364 14 01 


référence 

F 02 - 2

Salmonella Typhi et 

Paratyphii A, B, C 

Juillet 2003 

Fièvre typhoïde et paratyphoïde 

Il est classique de distinguer les Salmonella responsables des fièvres typhoïdes 

et paratyphoïdes des autres sérotypes dites Salmonella mineures ou ubiquistes, 

responsables des toxi-infections alimentaires. Les deux appartiennent à l’espèce 

Salmonella enterica 

Incubation De 3 jours à 3 mois, dépendant de la dose infectante. Le plus souvent 1 à 3 

semaines. 

Diagnostic 

clinique 

Fièvre (100%), anorexie (91%), céphalées (90%), constipation (79%) ou 

diarrhée (43%), malaise (87%), toux sèche (86%), bradycardie relative, tuphos. 

Aggravation progressive de la situation. Beaucoup de formes atypiques ou 

même asymptomatiques. 

Labo. Isolement de S. typhi ou paratyphi à partir de sang, de selles ou d’un autre 

échantillon clinique. 

La sérologie: réaction de Widal et Felix n’a que peu de valeur (une 

augmentation du titre de l’antigène O de 4x ne s’observe que dans 24 à 50% des 

cas). 

Cas probable Isolat confirmé en laboratoire en l’absence de données cliniques ou cas 

présentant des symptômes cliniques et qui a un lien épidémiologique. 


Réservoir Homme (malade ou porteur sain). 

Transmission Par ingestion de denrées ou de boissons contaminées par les selles ou les urines 

d’un porteur. Via les égouts, par les fruits de mer. Par des fruits ou des légumes 

contaminés. Les mouches peuvent être vecteurs. 

Saison Eté et automne. Surtout au cours des mois chauds. 

Age Principalement les grands enfants et les jeunes adultes (75%). 

Incidence Cas diagnostiqués en Belgique par le laboratoire de référence: 16 cas en 2000 

et 13 cas en 2001. Plus de la moitié des cas sont importés (61%). 

Facteurs de risque Les patients achloridriques (nouveau-nés, personnes âgées...), les enfants, les 

malades, les voyageurs. 

Risque de transmission par les porteurs chroniques qui sont plus fréquemment 

des femmes d’âge moyen porteuses d'une pathologie biliaire préexistante. 

F 03 - 1

Contagiosité Tant que le germe est présent dans les selles, jusqu’à la guérison ou jusqu’à 24 

heures après le début de l’antibiothérapie. Des patients non traités, 10% restent 

contagieux pendant 3 mois, 2 à 5% restant porteurs chroniques. 

Immunité 

Traitement Antibiothérapie adaptée. 


Autorité à alerter Médecin responsable de l'inspection d'hygiène. 

Santé publique Recherche active des porteurs afin de les suivre et de les traiter. Pour chaque 

cas une cause doit être identifiée: voyage, contact avec un porteur, ingestion de 

fruits de mer contaminés. Interroger le patient est nécessaire. 


du patient Précautions entériques. Interdire toute préparation de nourriture et tout travail 

au sein d’une crèche, d’un hôpital ou d’une industrie alimentaire jusqu’à la 

négativation de 2 coprocultures faites au plus tôt 21 jours après le début des 

symptômes, à 48 heures d’intervalle et après l’arrêt de l’antibiothérapie. 

des proches Obtenir des selles. Les proches qui travaillent dans l’agro-alimentaire ou les 

secteurs de soins (crèches - hôpitaux) doivent être écartés de ces milieux 

jusqu’à la normalisation de 2 coprocultures à 24 heures d’intervalle. 

de l’entourage Vaccination à envisager pour les personnes en contact avec un porteur 

chronique. Interdire tout travail en relation avec l’agro-alimentaire ou le secteur 

des soins (crèches - hôpitaux) jusqu’à normalisation de 2 coprocultures, faites à 

24 heures d’intervalle. Précautions entériques. 

Eviction de l’école Oui pour les enfants de moins de 6 ans. 

Isolement à 



générales 

Juillet 2003 

Isolement pendant toute la durée de la diarrhée. Pour les patients à risque 

(maternité et pédiatrie), il est nécessaire d’attendre 2 coprocultures négatives 

après instauration du traitement. Le port de tablier et gants est requis lors de 

contacts avec du matériel contaminé. Isolement de la personne si celle-ci est 

d’une hygiène défectueuse. Pas d’obligation du port du masque. Désinfecter le 

matériel contaminé par les selles. 

Vaccin pour les personnes exposées à un porteur chronique ou devant voyager 

dans des pays à risque. Précautions entériques. 

Vaccination Deux types de vaccins sont actuellement disponibles: 

- un vaccin vivant oral préparé à partir de la souche atténuée de S. typhi 

Ty21a 

- un vaccin parentéral constitué par l’antigène capsulaire polysaccharidique 

Vi purifié 


F 03 - 2

Remarques Suivre les porteurs: traitement aux quinolones. Exclure une pathologie biliaire. 

Si la profession s’exerce dans l’agro-alimentaire ou le secteur soins de santé : 

obtenir 6 examens de selles successivement négatifs (dont un avec des selles 

recueillies après prise de purgatifs) avant d’arrêter la surveillance. 

Matériel labo. Selles fraîches (à préférer à un frottis rectal), sérum et échantillon d’urine. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Juillet 2003 

Echantillon de selles dans un pot à coproculture. Quantité équivalente à une 

cuillère à café. - 24 heures dans le frigo. 

Pour envoi au labo de référence : tube avec gélose nutritive. - Température 

ambiante. 

Ressource scient. J. M. Collard Laboratoire de référence I.S.P.- Tél.: 02/642 50 82. 


référence 

J. M. Collard Laboratoire de référence I.S.P.- Tél.: 02/642 50 82. 

email : j.collard@iph.fgov.be 

F 03 - 2

Sarcoptes scabiei, var 

hominis. 

Juillet 2003 

Gale 

Acarien parasite qui creuse des sillons à travers l’épiderme et y pond des oeufs. 

Incubation De 2 à 6 semaines pour la première infection et de 1 à 4 jours lors des 

expositions suivantes. 

Diagnostic 

clinique 

Infection systémique se manifestant surtout au niveau de la peau (espaces 

interdigitaux, poignet, plis du coude, de la hanche, des genoux, l’ombilic et les 

organes génitaux). Apparaît tout d’abord un rash papuleux symétrique et 

bilatéral. Le prurit débute 4 à 8 semaines après le début de l’infection et signe 

l’apparition de la phase symptomatique franche. On distingue plusieurs formes 

dont l’aspect et la gravité dépendent de l’état immunitaire du patient, la gale 

classique, norvégienne ( forme généralisée hautement contagieuse en cas de 

déficience immunitaire grave), atypique (en cas de déficience immunitaire 

légère chez les enfants et les personnes âgées), la gale du nouveau-né touchant 

la région péribuccale et la gale des gens propres caractérisée par un prurit sans 

lésion. La gale peut se surinfecter par lésions de grattage. 

Labo. Recherche microscopique à partir d’instillation des sillons scabieux au niveau 

des mains (Sensibilité 60%). 

Cas probable Personne présentant un prurit et ayant une anamnèse de contact avec un cas 

probable ou confirmé. 

Cas confirmé Image clinique confirmée par l’examen microscopique. 


Transmission Par contact direct avec une personne infectée mais également par contact 

indirect immédiat avec les vêtements ou les draps de lit de cette même 

personne. 

Saison Plus souvent en hiver et au printemps. 

Age Surtout les enfants et les personnes âgées en institution. 

Incidence En augmentation (gale norvégienne). 

Facteurs de risque Dans les communautés fermées où il y a manque d’hygiène et promiscuité mais 

aussi chez les personnes (personnel soignant …) en contact avec des personnes 

infectées. La forme norvégienne se rencontre principalement chez des 

immunodéprimés. 

Contagiosité Jusqu’à destruction de l’acarien et de ses oeufs. 

G 01 - 1


Traitement Il y a lieu de prendre un bain tiède, de s’enduire d’une solution scabicide de la 

tête au pied, de répéter ces mesures afin d’éliminer tous les oeufs. Changer la 

lingerie. 


Autorité à alerter Avertir le médecin responsable de l'inspection d'hygiène et le service de la 

Promotion de la Santé à l’école. 

Santé publique Surveiller les écoles et les communautés fermées lors des épidémies. 


du patient Tout le linge en contact avec le patient doit être lavé à > 60°C. Arrêt de travail 

pendant les 24 heures qui suivent le début du traitement. 

des proches En raison de la longue période entre le début de l’infection et l’apparition d’une 

symptomatologie franche, tous les proches doivent être traités même s’ils ne 

présentent pas de symptômes. Eviter tout contact avec la personne infectée et 

son linge. 

de l’entourage Avertir les écoles et autres communautés fermées pour recherche d’autres 

porteurs de lésions, traitement symptomatique, nettoyage de la lingerie et 

second traitement après 7 à 10 jours. 

Eviction de l’école Tous les enfants atteints doivent être exclus de l’école, de la crèche,..., durant le 

traitement (2 x 24 heures). 

Isolement à 



générales 



Juillet 2003 

Pour la forme normale, isolement strict du patient et du matériel. Pour les 

personnes qui vivent en institution: mesures d’isolement pour la durée du 

traitement (2 X 24 heures). 

Dans le cas de gale norvégienne, l’isolement doit durer 8 jours et un second 

traitement est administré aux jours 6 et 7. 

La chambre privée est requise s’agissant de patients qui manquent d’hygiène. 

Le port de gants et tablier est nécessaire pour tout contact avec les patients. Pas 

d’obligation d’utiliser un masque. Les vêtements et les draps de lit doivent être 

renouvelés après chaque utilisation. 

Respect des règles d’hygiène élémentaires. 

Remarques Prévenir le patient, qu’après guérison, le prurit peut persister quelques semaines 

en raison d’une hypersensibilité résiduelle. 

Matériel labo. Pots stériles pour les squames.et porte-objets pour l’examen de l’extrait du 

sillon scabieux. 

G 01 - 2

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 

Milieu-Conditions 

Juillet 2003 

Squames des lésions. Les prélever sans causer de saignement et là où il n’y a 

pas de lésions de grattage. Frictionner avec un peu d’huile pour faciliter le 

recueil de squames. - Envoi immédiat autant que possible. 


Ressource scient. Dr Luc Sourdeau ISP-Epidémiologie 02/642 57 45. 

email: luc.sourdeau@iph.fgov.be 


référence 

G 01 - 3

Rotavirus, surtout du 

groupe A 

Juillet 2003 

Gastro-entérite virale à Rotavirus 

Incubation De 24 à 72 heures. 

Diagnostic 

clinique 

Gastro-entérite sévère caractérisée par de la fièvre et des vomissements qui sont 

suivis d’une diarrhée aqueuse abondante. Celle-ci peut rapidement mener à la 

déshydratation et à la mort. 

Labo. Cette recherche n’est pas remboursée quand le patient a plus de 2 ans. 

Analyse des selles et sécrétions rectales par EM, ELISA (Enzyme Linked 

Immuno Sorban Assay), LA. 


Cas confirmé Cas clinique confirmé en laboratoire. 


Transmission Transmission féco-orale. Une transmission respiratoire serait possible. 

Saison Surtout saisons froides. 

Age Surtout les bébés et les petits enfants. 

Incidence Tous les enfants rencontrent cette affection avant l’âge de 4 ans. 

Facteurs de risque Les prématurés ou les enfants de petit poids de naissance. Les enfants 


Contagiosité Lors de l’excrétion du virus c. à d. pendant la phase aiguë et 8 jours après celleci 

(30 jours chez les enfants immunodéprimés). 

Immunité Immunité acquise après une infection. 

Traitement Symptomatique, réhydratation si nécessaire. 


Autorité à alerter En cas d'épisode épidémique, il faut avertir le médecin responsable de 

l'inspection d'hygiène. 

Santé publique Si deux personnes ou plus présentent la même maladie, on parle d’épisode 

épidémique et il est alors nécessaire de mener une enquête. 

G 02 - 1


du patient Précautions entériques. Poubelle spécifique et close pour les langes. 

des proches Rechercher les contacts pour localiser une source. 

de l’entourage Eviter d’exposer les enfants à des personnes infectées. 

Eviction de l’école Jusqu’à la fin de la période de contagiosité. 

Isolement à 



générales 


Juillet 2003 

Mesures d’isolement pendant la diarrhée. La chambre privée est requise pour 

les enfants et pour les patients manquant d’hygiène. Gants, tablier et masque 

peuvent être utiles. Désinfecter le matériel contaminé par les selles. 

Précautions entériques (pas toujours très efficaces). 

Protection passive Immunoglobulines, seule protection pour les nouveau-nés de petit poids. 

Remarques 

Matériel labo. Kit spécial pour les échantillons de selles. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Ressource scient. 


référence 

Selles. 


Kit. - Conservation par le froid, transport immédiat en milieu glacé. 

G 02 - 2

Giardia lamblia 

Juillet 2003 

Giardiose 

Incubation De 1 à 4 semaines, en moyenne 2 semaines. 

Diagnostic 

clinique 

Diarrhée, ballonnement abdominal, stéatorrhée, selles malodorantes, perte de 

poids, mais le plus souvent asymptomatique. 

Labo. Recherche microscopique sur selles fraîches. 3 ECHANTILLONS A 

QUELQUES JOURS D’INTERVALLE. Recherche d’antigènes dans les selles. 

Mise en évidence de trophozoïtes de G. lamblia dans les selles, le liquide 

duodénal ou dans les prélèvements biopsiques de l’intestin grêle. 



Réservoir Les hommes et les animaux domestiques, éventuellement animaux sauvages. Le 

germe provenant de l’homme est plus infectant que celui de l’animal. 

Transmission Transmission féco-orale, par contact avec des animaux infectés, par ingestion 

d’eau ou de nourriture contaminées. 



Incidence En Belgique, 16/100.000 habitants (chiffres sous-évalués). Aux USA, la 

prévalence est de 30%. 

Facteurs de risque Les séjours en pays en voie de développement. Si aucun séjour à l'étranger, 

enquête alimentaire. 

Contagiosité Variable. Non traitée, une personne peut excréter des kystes pendant des 

années. 


Traitement Métronidazole/Tinidazole en une seule prise 


Autorité à alerter Médecin responsable de l’inspection d’hygiène et le service de Promotion de la 


G 03 - 1

Santé publique S’il y a plusieurs cas, contrôler l’hygiène de l’établissement concerné. Informer 

le personnel. 


du patient Interdire la préparation de nourriture ou de boissons, l’arrêt de travail est 

parfois nécessaire. Retirer de la crèche ou de la maternelle les enfants malades 

jusqu’à guérison. 

des proches Coproculture des proches ou des contacts surtout ceux qui sont 

symptomatiques. 


Eviction de l’école Jusqu’à la fin du traitement ou de la diarrhée. 

Isolement à 



générales 

Juillet 2003 

Isolement pendant toute la durée de la diarrhée. La chambre privée est 

conseillée pour les patients manquant d’hygiène. Le port de gants est requis 

pour la manipulation du matériel infecté. Le port du tablier est également requis 

en cas de contamination possible. Pas d’obligation d’utiliser un masque. 

Désinfecter le matériel contaminé par les selles. 




Remarques 


Echantillon & 

Conservation 

Transport 




Dans une solution de formol à 10%. - Température ambiante. 

Ressource scient. Dr B. Gordts, AZ St Jan Brugge. Tél. : 050/45 26 03 


référence 

Pas de laboratoire de référence. 

G 03 - 2

Neisseria gonorrhoeae 

Incubation De 1 à 10 jours et plus. 

Diagnostic 

clinique 

Juillet 2003 

Gonorrhée 

Chez les hommes : 2 à 7 jours après l’exposition, urétrite aiguë purulente et 

dysurie majeure. Résolution spontanée, mais le portage chronique est possible. 

Parfois infection asymptomatique. Infection rectale le plus souvent 

asymptomatique sinon elle se manifeste par du prurit, du ténesme, des 

sécrétions purulentes. 

Chez les femmes : après quelques jours, apparition d’une discrète urétrite ou 

cervicite qui peut passer inaperçue. La cervicite devient souvent chronique. Les 

salpingites, endométrites et autres péritonites pelviennes (20%) peuvent mener 

à la stérilité. 60-70% des infections chez les femmes sont asymptomatiques. Les 

formes pharyngées et anorectales sont fréquentes. 

Conjonctivite chez les nouveau-nés, rare chez l’adulte. La septicémie: 0,5 à 1%. 

Arthrite. 

Labo. Mise en évidence de diplocoques intracellulaires Gram négatifs dans un frottis 

uréthral réalisé chez l’homme. Isolement par mise en culture des sécrétions 

chez les deux sexes. PCR (Polymerase Chain Reaction) (remboursement 

INAMI depuis 2000). 

Cas probable S’il y a présence de diplocoques intracellulaires gram négatifs dans un 

échantillon purulent. 

Cas confirmé Un cas confirmé par un examen de laboratoire. 


Transmission Maladie sexuellement transmissible, transmission mère-enfant lors de 

l’accouchement (conjonctivite du nouveau-né). 


Age A tout âge mais surtout chez les jeunes. 

Incidence 279 cas diagnostiqués en Belgique en 2002 par les laboratoires vigies, en 

augmentation depuis 2001. Augmente également dans plusieurs autres pays 

européens. 

Facteurs de risque Comportements sexuels à risque (pénétration anale ou vaginale sans 

préservatif). 

Contagiosité Pendant des mois en l’absence de traitement. Deux à trois jours après le début 

d’un traitement. 

G 04 - 1


Traitement a) Soit Ceftriaxone (1 er choix) ou éventuellement soit Ciprofloxacine, soit 

Ofloxacine, soit Cefixime; si ceux-ci sont contre-indiqués: Spectinomycine. 

b) Si en plus il y a surinfection par Chlamydia Trachomatis: associer (à la 

Ceftriaxone) soit Azythromycine, soit Erythromycine, soit Doxycycline. 

N.B.: 1) Du fait de la présence fréquemment concomitante du Chlamydia, 

certains conseillent cette association, systématiquement: cela 

dépend donc de l’épidémiologie locale. 

2) Ofloxacine est active contre les 2 germes (Neisseria gonorrhoeae 

et Chlamydia Trachomatis) mais ne constitue pas la médication de 

1 er choix. 

c) Femmes enceintes: Ceftriaxone + Erythromycine. 



Santé publique Rechercher les contacts pour initier un traitement. 

Instiller des gouttes de nitrate d’argent ou de néobacitracine dans les yeux de 

tous les nouveau-nés. 


du patient Informer le patient sur les mesures de protection à suivre. 

Rechercher l’existence d’autres pathologies comme SIDA, infection à 

Chlamydia, syphilis et hépatite B. 

des proches Traiter les personnes qui ont été partenaires pendant les 30 jours qui précèdent 

et proposer des tests complémentaires pour HIV, infection à Chlamydia, 

syphilis et hépatite B. 

de l’entourage La dissémination dans l’entourage est un processus difficilement cernable. 


Isolement à 



générales 



Juillet 2003 

Une chambre privée n’est pas nécessaire. Le port de gants, de tablier ou de 

masque n’est pas requis. Pas de précaution particulière prévue en ce qui 

concerne le matériel utilisé. 

Utilisation des préservatifs et mesures d’hygiène élémentaires. 

Remarques On remarque une recrudescence de plusieurs maladies sexuellement 

transmissibles (gonorrhée, chlamydia, syphilis) depuis 2000-2001 en Belgique, 

ainsi que dans d’autres pays européens. 

Matériel labo. Ecouvillon dans un tube stérile. 

G 04 - 2

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Juillet 2003 

Echantillons de sécrétions urétrales, vaginales, cervicales, pharyngées ou 

anales. 


Milieu d’Ames. - Température ambiante. 

Ressource scient. Dr E. Van Dyck, Institut de Médecine Tropicale d’Anvers. 

Tél. : 03/247 63 29. 


référence 

Dr M. Van Esbroeck - Tél : 03/247 60 47 

email : Mvesbroeck@itg.be. 

G 04 - 3

Virus de l’hépatite A 

Juillet 2003 

Hépatite A 

Incubation De 15 à 50 jours, en moyenne 28 à 30 jours. 

Diagnostic 

clinique 

Le plus souvent asymptomatique mais si symptômes, ils sont abruptes, se 

manifestant par de la fièvre, de l’asthénie, de l’anorexie, des nausées. Ensuite, 

survient l’ictère. Pas de forme chronique et les formes fulminantes sont rares 

(0,5 % des formes cliniques) mais augmentent avec l’âge (plus de 1,5 % chez 

les personnes > 40 ans). 

Labo. Sérologie positive pour les anticorps (IgM) anti-hépatite A, associée à des tests 

de lyse hépatique. 

Cas probable Image clinique compatible qui peut être reliée par l’épidémiologie à un cas déjà 

analysé. 

Cas confirmé Image clinique qui est confirmée par la présence d’anticorps spécifiques (IgM). 


Transmission Transmission féco-orale, soit par contact direct entre personnes, soit via de la 

nourriture ou des boissons contaminées. Rare par transfusion sanguine. 

Saison Toute l’année. 

Age Aucun en particulier. 50% des gens de plus de 35 ans et 80% des gens de plus 

de 50 ans sont déjà immunisés. 

Incidence 437 cas ont été diagnostiqués en Belgique en 2000 par le réseau des laboratoires 

vigies soit une incidence de 4,3/100.000 habitants (Forte sous-déclaration). 

Facteurs de risque Les communautés comme les écoles, les internats, les casernes, les crèches... 

Les voyages en zone endémique (Afrique, Moyen-Orient, Asie, Amérique du 

sud et centrale). Les professions à risque (éducateurs, personnel d'école pour 

enfants handicapés mentaux, laborantins, éboueurs,...). 

Contagiosité A partir de la moitié du temps d’incubation et encore quelques jours (+/- 1 

semaine) après le début de l’ictère. 

Immunité Formation d’anticorps spécifiques, (IgG). 



H 01 - 1

Autorité à alerter Médecin responsable de l’inspection d’hygiène et le service de Promotion de la 


Santé publique Si plus d’un cas dans le secteur Horeca, industrie alimentaire, communautés 

fermées ou semi-fermées, envisager de : 

1. Rechercher la source. 

2. Appliquer les mesures suivantes : 

- contrôle des mesures d’hygiène, 

- désinfection et application des précautions entériques, 

- information du personnel, 

- évaluer la pertinence d'Ig ou de vaccins. 


du patient Eviction jusqu’à une semaine après le début des symptômes ou disparition de 

l’ictère. 

Arrêt de travail indispensable pour toute personne travaillant en milieu 

d’accueil ou dans l’agro-alimentaire (minimum 15 jours). Précautions 

entériques. 

des proches Proposer la vaccination. Précautions entériques. 

de l’entourage Précautions entériques. Proposer vaccination des personnes à risque. 

Eviction de l’école Eviction de 14 jours après le début clinique de la maladie. 

Isolement à 

l’hôpital 


générales 

Juillet 2003 

Isolement pendant les 7 jours qui suivent le début de l’ictère. La chambre privée 

est recommandée pour les patients manquant d’hygiène. Le port de gants est 

requis pour manipuler le matériel contaminé, le port de tablier en cas de 

contamination possible. Pas d’obligation d’utiliser un masque. Au cours des 7 

jours qui suivent le début de l’ictère, désinfecter le matériel contaminé par des 

selles. 

Précautions entériques 

Vaccination Vaccin à toute personne exposée à un risque. Une dose suivie d’un rappel après 

un an. Il existe un vaccin combiné HAV+HBV. (1-15 ans = dose pédiatrique). 

Protection passive Immunoglobulines non spécifiques (efficacité ???) ou spécifiques en cas de 

contact probablement infectant et s’il date de < 2 semaines. Vaccination 

concomitante possible. 

Remarques Pour les voyageurs pressés soumis à un risque élevé, on peut administrer la 

première dose de vaccin jusqu’au jour même du départ. Aux sujets de plus de 

35 à 40 ans ou ayant séjourné plus d’un an dans un pays tropical, il est conseillé 

de déterminer l’immunité avant de vacciner (doser lgG). 

Matériel labo. Tube sec pour le sérum. 

H 01 - 2

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Juillet 2003 

Echantillon de sang coagulé pour sérum. 

Maximum 24 heures dans le frigo. 


Ressource scient. Prof. D. Sondag, ULg. Tél. : 041/66 75 45. 

Dr P. Van Damme, Universitaire Instelling Antwerpen Tél.: 03/820 25 38. 


référence 

Dr R. Vranckx, I.S.P., Tél.: 02/642 51 63. 

email : R.vranckx@iph.fgov.be. 

H 01 - 3

Virus de l’hépatite B 

Juillet 2003 

Hépatite B 

Incubation De 50 à 100 jours ( en moyenne). 

Diagnostic 

clinique 

La symptomatologie débutante est discrète et s’accompagne de fatigue, de 

fièvre, d’anorexie et d’ictère chez l’adulte. Si 65% des infections sont 

subcliniques, 10% deviennent chroniques et 1% connaissent une évolution 

fulminante. 

Labo. Recherche d’antigènes, d’anticorps et du génome viral, le tout à associer à des 

tests de lyse hépatique. 

Cas probable 

jamais eu 

d’hépatite 

HBsAg 

(Antigène de 

surface) ** 

Anti-HBs 

(Anticorps 

anti-surface) 

** 

Anti-HBc 

(Anticorps 

anti-noyau) 

IgM-IgG ** 

HBeAg 

(Antigène de 

réplication 

virale) 

Anti-HBe 

(Anticorps 

anti-e) 

HBV ADN 

(ADN viral) 

- - - - - - 

hépatite aigüe + _ + + - + 

guérison - + + - + - 

hépatite 

chronique 

("porteurs") 

hépatite 

chronique 

active 

+ - + - + - 

+ + + + - + 

vacciné - + - - - - 

Image clinique compatible qui peut être reliée par l’épidémiologie à un cas déjà 

analysé. 

Cas confirmé Image clinique compatible confirmée par l’analyse sérologique. 

Réservoir Humain (porteurs chroniques). 

Transmission Dans l’ordre : par voie parentérale typiquement via du sang (transfusion, 

échange seringues chez drogués, hémodialyse, personnel hospitalier, …), par 

voie sexuelle, par voie verticale (mère-enfant surtout dans régions à forte 

prévalence) et horizontale (via plaie, exsudat, …). 


Age Surtout les jeunes adultes. 

H 02 - 1

Incidence En 1998, le laboratoire de référence a identifié 398 échantillons positifs sur 

1641 échantillons. Prévalence de la séropositivité dans la population générale : 

9,9%. 

Facteurs de risque - Contacts quotidiens avec un porteur chronique. 

- Certaines catégories professionnelles (contact avec fluides corporels). 

- Séjour en zone à forte endémicité (si contact avec le sang, rapports sexuels 

non-protégés,…). 

- Autres : injection de drogues, dialyse,…, 

Contagiosité Plusieurs semaines avant le début de l’ictère et pendant la phase aiguë 

(AgHbs+). Les malades chroniques peuvent rester contagieux pendant des 

années surtout s’ils sont porteurs d’antigènes HBe positifs. 

Immunité Définitive (Anticorps HBs, HBc et e). 

Traitement Il n’existe pas de traitement ni de régime spécifiques, éviter la prise d’alcool. 

Repos relatif et traitement symptomatique pendant la phase aiguë. 

Transplantation en cas d’hépatite fulminante. 



Santé publique Si 2 cas ou plus surviennent dans une même institution, il faut rechercher la 

cause et d’autres cas. Dépistage systématique chez les femmes enceintes et 

vaccination du nouveau-né immédiatement après la naissance (plus 

administration simultanée d’immunoglobulines). Dépistage systématique de 

personnes vivant sous le même toit qu’un porteur chronique. Vaccination des 

groupes à risque. La vaccination universelle des jeunes enfants (3 mois) et des 

pré-adolescents est réalisée pour l’instant. 


du patient Précautions vis-à-vis du sang et des liquides corporels; prévention de la 

transmission sexuelle. Arrêt de travail au moins pendant 2 semaines après le 

début de l’ictère. 

des proches Dépister la mère positive pour le traitement efficace des nouveau-nés (IgHB et 

vaccination). En cas de contact percutané, injecter IgHB dans les 24 heures et 

vaccination. En cas de contact sexuel, injecter IgHB dans les 14 jours qui 

suivent et vacciner. 

de l’entourage Si il y a contact avec un membre d’un groupe à risque: vacciner. Précaution visà-vis 

du sang et autres liquides corporels, prévention de la transmission 

sexuelle. 

Eviction de l’école Jusqu’à 2 semaines après l’ictère. 

Juillet 2003 

H 02 - 2

Isolement à 



générales 

Juillet 2003 

Isolement jusqu’à l’obtention d’une analyse négative pour l’antigène HBe. 

Parmi le personnel, les femmes enceintes doivent prendre des précautions. Des 

précautions sont à prendre lors de la manipulation de sang ou autres liquides 

d’un porteur connu. Le port de gants et de tablier est requis pour manipuler le 

matériel contaminé (y compris les selles en cas d’hémorragie digestive). Pas 

d’obligation de porter un masque. 

Des précautions sont à prendre vis-à-vis du sang et des autres liquides 

corporels, des mêmes précautions sont également à prendre contre la 

transmission des MST. Vaccination des groupes à risque par 4 doses, 0-1-2-12 

mois (immunisation rapide) ou bien 0-1-6. Evaluer la nécessité d’un dépistage 

d’autres MST (Sida, gonococcie, syphilis, infection à chlamydia) et de 

l’hépatite C. 

Vaccination Vaccin contre l’hépatite B. La vaccination des nourrissons et des préadolescents 

comporte trois doses de vaccin. Le vaccin pédiatrique peut être 

utilisé jusqu’à l’âge de 15 ans inclus. La vaccination des nourrissons est 

préconisée à 3, 4 et 13 mois. Pour les nouveau-nés de mères porteuses de 

l’antigène HBs, le schéma vaccinal comporte 4 doses et doit débuter endéans 

les 12 heures de la naissance (0, 1,2 et 12 mois). Une dose de gammaglobulines 

spécifiques sera également administrée à la naissance. La vaccination des préadolescents 

se fait suivant le schéma 0, 1 et 6 mois. 

En pratique : 

Vaccins HBV: ENGERIX-B (il existe un dosage pédiatrique) 

1. Nouveau-né = 3 doses = 3 mois- 4 mois- 13 à 18 mois. 

2. Enfants < 15 ans = 3 doses = 0 - 1 - 6 mois. 

3. Nouveau-né de mère porteuse = 4 doses = 0 - 1 - 2 - 12 mois. 

4. Adultes = 3 doses = 0 - 1 - 6 mois (protection plus tardive mais plus élevée) 

ou 4 doses = 0 - 1 - 2 mois + 12 mois 

ou 4 doses = 0 - 7 jours- 21 jours+ 12 mois. 

5. Si contamination récente ou sévère = 4 doses + Ig = 0 - 1 - 2 - 12 mois. 

6. Hémodialyse = 4 doses = 0 - 1 - 2 - 6 mois. 

Vaccin combiné HAV-HBV: TWINRIX 

1. Enfants = 3 doses = 0 - 1 - 6 mois + rappel après 5 ans 

2. Adultes ( > 16 ans) = 3 doses = 0 - 1 - 6 mois + rappel après 5 ans. 

Protection passive Immunoglobulines spécifiques après un contact percutané accidentel, chez un 

enfant né de mère contaminée ou après un contact sexuel (40 UI/kg en IM), en 

association avec la vaccination. 

En pratique, les conditions des Ig sont : 

1. Mère-enfant : 0,5 à 1 ml (150 à 300 UI), en IM immédiatement après la 

naissance (maximum 12 heures) + première vaccination + un mois + 6 mois. 

2. Transmission sexuelle : 0,06 ml/kg + une dose de vaccin endéans les 15 

jours qui suivent le contact. 

3. Transmission sanguine : 0,06 ml/kg le plus rapidement possible (maximum 

24 heures) + vaccination endéans les 7 jours. 

H 02 - 3

Remarques Les virus de l’hépatite transmissible par voie parentérale sont HBV, HCV 

(Hepatite C Virus), HDV et HGV. 

Matériel labo. Tube sec pour sérum (sérologie). EDTA (EthylèneDiamineTertraAcétate) 

(biologie moléculaire). 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Juillet 2003 

Echantillon de sang coagulé pour sérum. 

Maximum 24 heures dans le frigo pour la sérologie. 


Ressource scient. Dr P. Van Damme, Universitaire Instelling Antwerpen Tél.: 03/820 25 38. 

Prof. D. Sondag, ULg. Tél.: 04/366 75 45. 


référence 

Dr R. Vranckx, I.S.P. Tél.: 02/642 51 63. 


H 02 - 4

Juillet 2003 

Hépatite C 

Virus de l’hépatite C Différents génotypes ( Rôle dans la virulence de la maladie.) Le génotype 1 

est le plus fréquent. 

Incubation De 4 semaines à 6 mois, en moyenne 6 à 9 semaines. 

Diagnostic clinique L’hépatite C est asymptomatique dans plus de 90% des cas. Forme fulminante 

rare mais 75% deviennent chroniques. Dans les formes chroniques, les ALT 

(Alanine transférases) sont toujours élevées. 

Labo. Sérologie positive pour anticorps anti-hépatite C associée à des tests de lyse 

hépatique. Eventuellement, PCR (Polymerase Chain Reaction) (ARN viral). 

Cas probable Image clinique compatible, qui peut être reliée par l’épidémiologie à un cas 

déjà analysé. 

Cas confirmé Image clinique caractéristique de l’hépatite avec une sérologie positive pour 

l’hépatite C. 


Transmission Surtout par voie sanguine : lors de la prise de drogue par injection 

intraveineuse (risque le plus important, plus de la moitié des nouvelles 

infections), par matériel contaminé (chirurgical, endoscopique, …), et 

anciennement par transfusion. La voie sexuelle est également possible, mais 

avec un risque plus faible ainsi que la transmission verticale mère-enfant 

(risque 5%). 



Incidence En 91-92, 3/100.000 en Belgique. 

Facteurs de risque Prise de drogue par injection intraveineuse. Piqûre accidentelle avec une 

aiguille contaminée. Contamination foeto-maternelle. Examen invasif 

(endoscopie, transfusion). 

Contagiosité Lorsque le virus est présent. Plus de 75% de porteurs chroniques. 

Immunité Formation d’Ac spécifiques. 

Traitement Symptomatique en phase aiguë. Monothérapie (Interféron) ou bithérapie 

(Interferon + Ribavirine) selon le stade de la maladie, l’évolution et la réponse 

du patient au traitement. Transplantation si cirrhose. 


H 03 - 1

Autorité à alerter Médecin responsable de l’inspection d'hygiène. 

Santé publique 


du patient Un arrêt de travail est requis minimum pendant les 2 semaines qui suivent le 

début de l’ictère et ensuite en fonction du portage chronique. 

des proches Précaution vis-à-vis du sang. Eviter les rapports sexuels traumatiques et en 

période de menstruations. 

de l’entourage Précaution vis-à-vis du sang et autres liquides corporels. 

Eviction de l’école Jusqu’à 2 semaines après l’ictère. 

Isolement à 



générales 



Remarques 

Juillet 2003 

Isolement. Parmi le personnel, les femmes enceintes doivent prendre des 

précautions. Des précautions sont à prendre lors de la manipulation de sang ou 

d’autres liquides d’un porteur asymptomatique connu. La chambre privée est 

requise, si une contamination est possible. Le port de gants et de tablier est 

requis pour manipuler le matériel contaminé (y compris les selles en cas 

d’hémorragie digestive). Pas d’obligation d’utiliser un masque. Précaution 

vis-à-vis du sang et du matériel contaminé. 

Prévention générale en cas de manipulation de sang et autres liquides. 

Matériel labo. Tube sec pour le sérum. EDTA (EthylèneDiamineTertraAcétate) pour ARN 

viral. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Echantillon de sang pour le sérum. 



Ressource scient. Prof. D. Sondag, ULg Tél.: 04/366 75 45. 

Labo. de référence Dr R. Vranckx, I.S.P. - Tél : 02/642 51 63. 


H 03 - 2

Virus de l’hépatite D 

Incubation 

Diagnostic clinique 

comme 

Juillet 2003 

Hépatite D 

Symptomatologie de l’hépatite avec une sérologie positive pour l’hépatite D 

survenant en co- ou surinfection d’une hépatite B. Il existe une évolution 

vers une forme chronique et forme fulminante. 

Labo. Déterminer AgHD, Ac anti-HD (IgM et IgG), Ag HBs. ↑ transaminases. 

Cas probable Image clinique compatible qui peut être reliée par l’épidémiologie à un cas 


Cas confirmé Image clinique confirmée par le laboratoire. 


Transmission Identique à l’hépatite B, et surtout parentérale et sexuelle. 



Incidence Rare en Belgique. Zones à risque = pourtour méditerranéen, Europe de l’Est, 

certains pays d'Amérique latine et d'Afrique. Il existe des épidémies. 

Facteurs de risque Zones à risques, homosexuels, toxicomanes intraveineux et leurs partenaires 

sexuels. Donc, souvent associée à HIV et HCV (Hepatite C Virus) 

Contagiosité Pendant toute la phase aiguë avec un pic maximal juste avant le début de 

celle-ci. 

Immunité Formation d’anticorps spécifiques. 




Santé publique Sensibilisation et prévention dans les groupes à risque. 

H 04 - 1


du patient Arrêt de travail pendant les 2 semaines qui suivent le début de l’ictère. 

des proches Envisager la vaccination des proches contre l’hépatite B ainsi que la nécessité 

de tests complémentaires (SIDA, gonorrhée, syphilis, infection à chlamydia). 

Des précautions sont à prendre vis-à-vis du sang et d’autres liquides corporels. 

de l’entourage En cas de contact étroit avec un malade en phase aiguë ou en portage 

chronique, penser à vacciner contre l’hépatite. Précaution à prendre contre le 

sang et les autres liquides corporels. 

Eviction de l’école Jusqu’à 2 semaines après le début de l’ictère. 

Isolement à 



générales 

Juillet 2003 

Isolement jusqu’à l’obtention d’une analyse négative pour l’antigène HBe. 

Parmi le personnel, les femmes enceintes doivent prendre des précautions. Il 

est recommandé de prendre des précautions lors de la manipulation de sang ou 

d’autres liquides d’un porteur asymptomatique connu. La chambre privée est 

requise si une contamination est possible. Le port de gants et du tablier est 

nécessaire pour manipuler le matériel contaminé (y compris les selles en cas 

d’hémorragie digestive). Pas d’obligation du port du masque. 

Précautions vis-à-vis du sang et des autres liquides corporels, précautions 

également contre la transmission des MST. Vaccination contre l'hépatite B des 

groupes à risque par 4 doses, 0-1-2-12 mois (immunisation rapide) ou bien 0- 

1-6. Evaluer la nécessité d’un dépistage d’autres MST (hépatite C, Sida, 

gonococcie, syphilis, infection à chlamydia). 

Vaccination Vaccin contre l’hépatite B. Trois doses (0-1-6) ou quatre doses (0-1-2-12). 


Remarques Pour les porteurs chroniques d’hépatite B, une extrême prudence est conseillée 

s’ils voyagent dans un pays où l’hépatite D est prévalente (pays de l’Est et 

Moyen-Orient), vu le danger de développer une hépatite B fulminante. 


Echantillon & 

Conservation 

Transport : 





Ressource scient. Prof. D. Sondag, ULg. Tél.: 04/366 75 45. 

Labo. de référence Dr R. Vranckx, I.S.P. - Tél : 02/642 51 63. - email : R.vrankx@iph.fgov.be. 

H 04 - 2

Virus de l’hépatite E. 

Juillet 2003 

Hépatite E 

Incubation De 2 à 9 semaines, moyenne 35 jours. 

Diagnostic clinique Souvent asymptomatique sinon symptomatologie de l’hépatite, à savoir une 

phase prodromale de 1 semaine suivie d’un ictère. 

Labo. Déterminer Ac anti HEV(+). 

Cas probable Image clinique compatible qui peut être reliée par l’épidémiologie à un cas 


Cas confirmé Image clinique compatible confirmée par une sérologie positive. 


Transmission Transmission féco-orale. Principalement par l’eau. La transmission verticale 

est décrite. La contamination parentérale est exceptionnelle. 


Age Les jeunes adultes. 

Incidence Présent partout dans le monde mais aucune épidémie signalée en Europe. 

Sous forme d’épisodes épidémiques. Aux Pays-Bas: 3% des hépatites virales 

aiguës sporadiques. 

Facteurs de risque Chez les femmes enceintes. Au cours du troisième trimestre, le taux de 

mortalité des femmes peut s’élever à 20%. Voyage en zones endémiques 

(Inde, Birmanie, ex URSS, Côte d’Ivoire, Algérie, Mexique,…) 

Contagiosité Période non définie (peut-être 1 sem. avant les symptômes et jusqu’ à 2 mois 

après). 

Immunité Persistance d’Ac mais on ne sait pas si la protection est définitive. 




Santé publique Mener un contrôle d’hygiène dans le secteur Horeca ou dans les institutions si 

plus d’un cas est signalé. Réunir et informer le personnel. Précautions 

entériques. 


H 05 - 1

du patient Arrêt de travail si le patient est en contact avec des produits comestibles ou 

avec des enfants et ce, pour une période de 2 semaines après le début de 

l’ictère. Précautions entériques. 

des proches Précautions entériques. 


Eviction de l’école Jusqu’à deux semaines après le début de l’ictère. 

Isolement à 


Juillet 2003 

Isolement pendant les 14 jours qui suivent le début de l’ictère. La chambre 

privée est requise pour les patients manquant d’hygiène. Le port de gants est 

requis pour manipuler le matériel contaminé. Le port du tablier est obligatoire 

si la contamination est possible. Pas d’obligation du port du masque. Au cours 

des 7 jours qui suivent le début de l’ictère, désinfecter le matériel contaminé 

par des selles. 

Prévention Précautions entériques. 


Protection passive Ig inefficace. 

Remarques 


Echantillon & 

Conservation 

Transport : 





Ressource scient. Prof. D. Sondag, ULg. Tél.: 04/366 75 45. 

Labo. de référence Dr R. Vranckx, I.S.P. - Tél: 02/642 51 63. 


H 05 - 2

Virus herpes simplex 

(HSV) - type 2 et type 1 

HSV 2 (80-90%) 

HSV 1 (10-20%) 

Incubation De 2 à 12 jours. 

Diagnostic 

clinique 

Juillet 2003 

Herpès génital 

Infection: primo-infection, latence, récurrence. 

La primo-infection et les récurrences peuvent survenir avec ou sans symptômes. 

En cas de forme symptomatique, apparition de petites vésicules douloureuses 

dans la région génitale/anogénitale. Les complications sont la méningite et la 

radiculite. 

Lors de la grossesse, la transmission transplacentaire est rare mais le risque est 

élevé lors de l’accouchement quand le col est infecté. Au cours du mois qui 

suit sa naissance, l’enfant peut développer une choriorétinite, une infection 

viscérale, une encéphalite avec ou sans lésions cutanées et un risque de décès et 

de séquelles élevé. 

Labo. Cytologie: recherche des antigènes HSV-1 et HSV-2 par des anticorps 

monoclonaux. 

Isolement du virus par culture 1 à 4 jours: typage par les anticorps monoclonaux 

HSV-1et HSV-2. 

PCR (Polymerase Chain Reaction) pour infection néonatale herpétique (Centres 

de Diagnostic Moléculaire). 

Cas probable Une image clinique compatible (où les stades syphilitiques primaires ou 

secondaires sont exclus par la sérologie) avec un diagnostic basé sur la 

présentation clinique ou sur une histoire antérieure d’une ou plusieurs lésions 

du même type. 

Cas confirmé Une image clinique compatible qui a été confirmée par le laboratoire. 


Transmission MST se transmettant par contact direct (contact via lésions ou via contact orogénital 

avec un partenaire ayant un herpès labial). 

Transmission foeto-maternelle périnatale. 


Age Primo-infection chez les adolescents et les jeunes adultes. 

Incidence Elle varie en fonction du groupe de population. Globalement elle est de 

1,6/100.000 habitants par an. Herpès néonatal: 1/3000 à 1/12000 naissances 

vivantes. 

H 06 - 1

Facteurs de risque Herpès néonatal: petit poids de naissance ou prématurité ; primoinfection de la 

mère juste avant la naissance. Autres MST. Comportement sexuel à risque. 

Contagiosité Pendant les périodes d’excrétion virale asymptomatiques et symptomatiques 

ainsi que les quelques jours suivants. 

Immunité Pas d’immunité acquise. 

Traitement Acyclovir, yalaciclovir, famciclovir. 


Autorité à alerter Non. 



du patient Traitement antiviral en cas d’herpès génital (diminue le risque de complications 

et le temps d’excrétion du virus, mais n’empêche pas les récurrences - 

Prophylaxie médicamenteuse si > ou = 6 récurrences/an). 

Rechercher d'autres MST et prendre des précautions contre MST. 

Eviter tout contact avec les nouveau-nés, les enfants présentant de l’eczéma ou 

des brûlures, les immunodéprimés. 

Si une infection se produit pendant la grossesse, le risque de malformation 

congénitale n’est pas démontré. Il n’y a pas d’indication d’I.V.G. Le risque de 

transmettre la maladie à l’enfant est un problème de contamination lors de 

l’accouchement. Pour éviter la contamination lors de l’accouchement, il est 

important d’effectuer le dépistage systématique d’infection herpétique au 

niveau du col chez les femmes à risque au cours de l’accouchement. Envisager 

une césarienne. 

des proches Recherche de HSV chez les partenaires sexuels, surtout s’il y a une femme 

enceinte parmi eux. 

Recherche éventuelle d’autres MST et précaution contre transmission des MST. 

(mesures de protection lors de contacts sexuels). 



Isolement à 



générales 


Juillet 2003 

Isolement jusqu’à assèchement des lésions. En cas d’herpès néonatal, isolement 

requis pendant toute la durée de l’hospitalisation. Chambre privée 

recommandée pour la mère et l’enfant.. Utilisation de gants pour toute 

manipulation en rapport avec ces enfants. Dans les autres cas d’herpès chambre 

privée, tablier et masque sont inutiles. 

Précaution contre transmission des MST. Utilisation de préservatifs. 

H 06 - 2


Remarques 

Matériel labo. Ecouvillon sur lames pour la cytologie. Ecouvillon dans tube ou flacon stérile 

contenant du milieu de transport pour virus pour culture. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Juillet 2003 

Sécrétions urétrales. Prélèvement de lésions ano-génitales. 

Au grand maximum 24 heures dans le frigo. 

Pour la culture, le tube ou le flacon doit contenir un milieu de conservation 

c’est-à-dire soit milieu d’Ames modifié, soit milieu de Gly. - Le prélèvement 

doit être acheminé rapidement - froid mais non congelé - au laboratoire dans de 

la glace. 

Ressource scient. Prof. P. Goubau, U.C.L., Tél.: 02/764 17 37 et 02/764 31 92. 


référence 

Prof. P. Goubau, U.C.L., Tél.: 02/764 17 37 et 02/764 31 92. 

email : goubau@mblg.ucl.ac.be. 

H 06 - 3

Streptococcus 

pyogenes (groupe A) 

Staphylococcus aureus 

(10%). 


Diagnostic 

clinique 

Juillet 2003 

Impétigo 

Lésions cutanées purulentes, prurigineuses, indolores et superficielles. 

Initialement, sous forme de petites vésicules ou de grandes bulles qui par la 

suite sont souvent recouvertes de croûtes. Adénopathies. Colonisation 

pharyngée chez 30% des enfants dans le décours de l’infection cutanée. 

Labo. Culture des suppurations de plaies. 

Cas probable Image clinique qui peut être reliée à un cas déjà confirmé. 

Cas confirmé Image clinique confirmée par une culture positive. 


Transmission Par contact direct ou par des objets contaminés par les suppurations des 

vésicules ouvertes. 

Saison Pas de périodicité. 

Age Enfants. 


Facteurs de risque Groupe à risque: les enfants soumis à une certaine promiscuité (crèche, 

école...). 

Contagiosité Très contagieux. Auto-inoculation par grattage. Aussi longtemps qu’une lésion 

ouverte persistera. 

Immunité Incertaine. 

Traitement Traitement local (Mupirocine) et antibiothérapie adaptée en cas de récidive. 


Autorité à alerter Avertir le service de la Promotion de la Santé à l'école. 

Santé publique Rechercher une source commune s’il y a 2 cas ou plus au sein d’un groupe à 

risque. 

I 01 - 1


du patient Désinfecter et couvrir les lésions. Antibiothérapie en cas de récidive. 

des proches En cas d’épisode épidémique, rechercher et traiter tous les porteurs. 

de l’entourage Les mesures d’isolement ne sont pas indispensables mais il faut traiter et 

assécher toutes les lésions. Désinfecter le matériel utilisé avec de l’alcool. 

Eviction de l’école Ecartement jusqu'à obtention d'un certificat médical attestant le traitement. 

Isolement à 



générales 

Juillet 2003 

Maintenir l’isolement jusqu’à assèchement des lésions. Chambre privée pour 

les patients manquant d’hygiène ou si les plaies ne sont pas sèches ou si plus de 

3 à 4 soins en 8 heures sont nécessaires. Utilisation de gants et de tablier pour 

manipuler du matériel infecté. Pas d’obligation de port de masque. Désinfecter 

le matériel jusqu’à assèchement de toutes les lésions. 

Règles d’hygiène. 



Remarques 


Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Suppurations de lésions. 


Milieu de Ames. - Température ambiante. 

Ressource scient. Dr H.Goossens, U.Z.A. Tél. : 03/821 37 89 (S. pyogenes) 

email : herman.goossens@uza.be 


référence 

Dr H.Goossens, U.Z.A. Tél. : 03/821 37 89 (S. pyogenes) 


I 01 - 2

Juillet 2003 

Infections à Bartonella 

Classées au départ dans la famille des Rickettsiaceae, il fut proposé en 1993 de créer les Bartonellaceae et d’y inclure 

Bartonella henselae, B. quintana, B. elizabethae, Bacilliformis et B. visoni, celle-ci ne fut jamais isolée chez l’homme. La 

B. henselae est le germe le plus rencontré dans notre pays. 


Les infections à Bartonella sont diverses zoonoses provoquées par une 

bactérie gram négatif. 

Diagnostic clinique B. henselae: responsable chez les immuno-déficients, surtout les sidéens, de 

l’angiomatose bacillaire, lésion cutanée qui évoque le sarcome de Kaposi mais 

qui est sensible à l’antibiothérapie. Elle provoque aussi la maladie des griffes 

du chat (fièvre, malaise et lymphadénite granulomateuse). 

B. quintana: responsable de la fièvre des tranchées ou fièvre récurrente ou 

fièvre des 5 jours, responsable d’endocardite chez les alcooliques SDF, 

d’angiomatose bacillaire chez les sidéens. 

B. bacilliformis: agent de la fièvre de Oroya, septicémie hémolytique 

endémique au Pérou et de la Verruga peruana qui se manifeste par des 

tumeurs cutanées. 

B. elizabethae: isolée une fois dans une endocardite. 

Labo. Diagnostic sérologique par immunofluorescence indirecte ou ELISA (Enzyme 

Linked Immuno Sorban Assay). 

Culture à partir du sang ou des biopsies mais c’est lent: temps supérieur à 15 

jours. 

Cas probable Griffe de chat: image clinique qui correspond à la description ci-dessus 

lorsque la personne a eu des contacts réguliers avec un chat. 

Cas confirmé Image clinique confirmée par le résultat histopathologique ou un autre examen 

de laboratoire. 

Réservoir Le chat domestique et ses puces pour B. henselae, les poux du corps pour B. 

quintana. On ne connaît pas le réservoir des autres Bartonella. 

Transmission Par les chats surtout s’ils sont jeunes, si contacts fréquents, si morsures ou 

griffes. Par morsure des poux du corps pour B. quintana. 

Saison L’incidence de la maladie de la griffe de chat varie selon les saisons, 60 % des 

cas surviennent entre septembre et janvier. 

Age 

Incidence Maladie de la griffe de chat: en Belgique, incidence de 1.98 cas pour 100 000 

habitants, aux USA: 0.77 cas/100.000 habitants. 

I 02 - 1

Facteurs de risque Les immunodéprimés et les patients âgés sont plus sensibles. 

Contagiosité Pas de transmission de personne à personne. 

Immunité L’immunité acquise est en général définitive. 

Traitement Le traitement est antibiotique chez l’adulte : doxycycline. Chez la femme 

enceinte et les enfants: érythromycine. Des guérisons spontanées, sans 

antibiotique, ont été observées. 



Santé publique Bien que le mode de transmission et le réservoir de ces germes ne soient pas 

encore connus avec précision, si plus d’un cas se déclare au sein d’une même 

communauté, mener une enquête et ce, afin de retrouver des facteurs 

communs et identifier une source éventuelle. 


du patient Traitement antibiotique. Si présence de chat, traiter par antiparasite et 

antibiotique si l’analyse de sang confirme la présence d’une bactériémie chez 

l’animal. 

des proches Exclure l’existence de personnes immunologiquement fragiles parmi les 

proches. 



Isolement à 



générales 



Remarques 

Juillet 2003 

Aucune mesure particulière vis-à-vis du personnel ou du matériel, pas de 

chambre privée requise. 

Traitement antiparasitaire des chats infestés par des puces. Le traitement 

précoce des chats infectés est quasi impossible car s’ils sont atteints d’une 

bactériémie persistante, elle est asymptomatique. Les immunodéprimés ne 

devraient donc pas posséder de chat (appréciation du rapport entre le risque de 

développer la maladie et le bénéfice psychologique de la présence d’un animal 

familier). 

Matériel labo. Récipients adaptés aux biopsies. 

Echantillon & 

Conservation 

Biopsies de ganglions, de peau, selon la symptomatologie. Flacons 

d’hémoculture. - Envoi médical. 

I 02 - 2

Transport : 


Juillet 2003 

Milieu spécial pour biopsie. - Température ambiante. 

Remarques Labo. Lors d’une mise au point d’adénopathies persistantes, afin d’éviter des 

hospitalisations prolongées, un test d’immunofluorescence indirecte pour 

détection précoce d’anticorps peut être demandé et ainsi permettre un 

diagnostic rapide. 


Labo. de référence Prof. M. Delmée UCL Microbiologie Tél : 02/764 54 90. 

email: delmee@mblg.ucl.ac.be 

I 02 - 3

Chlamydia trachomatis 

Juillet 2003 

Infection à Chlamydia trachomatis 

Incubation De 5 à 10 jours et plus. 

Diagnostic 

clinique 

Infection génitale: les manifestations les plus fréquentes sont l’urétrite chez 

l’homme et la cervicite chez la femme. Infection fréquemment 

asymptomatique, surtout chez la femme (70%). Autres manifestations: 

lymphogranulome vénérien, épididymite, proctite, syndrome de Reiter, 

prostatite, salpingite, périkératite et stérilité. Une femme enceinte infectée 

risque de transmettre le germe à son enfant lors de la naissance dans 60 à 70% 

des cas. Une kératoconjonctivite peut apparaître dans les 2 semaines qui suivent 

la naissance et cela peut aller jusqu’à 19 semaines pour le développement d’une 

pneumonie interstitielle. 

En cas d’infection répétée au niveau de la cornée, il peut en résulter un 

trachome qui dans un second temps mènera de 1 à 15% de ces patients à la 

cécité. 

Labo. Infection génitale: culture (difficile), test par IF directe ou EIA (Enzyme 

Immuno Assay) (sécrétions cervicales, urétrales) ou PCR (Polymerase Chain 

Reaction) sur urine. 

Pneumonie: culture ou test en IF directe ou EIA (Enzyme Immuno Assay) 

(sécrétions par aspiration endotrachéale). 

Conjonctivite: culture ou test en IF directe ou EIA (Enzyme Immuno Assay) 

(sécrétions conjonctivales). 

Cas probable Urétrite et/ou cervicite sans confirmation de la présence de Neisseria 

gonorrhoeae tant par coloration que par culture. 

Cas confirmé Un cas confirmé par le laboratoire. 


Transmission Trachome: via doigts, objets infectés et mouches. 

Infection génitale: sexuellement transmissible. 

Nouveau-né: lors de l’accouchement. 


Age Surtout chez les jeunes. 

Incidence Aux USA, 3 à 4 millions de nouveaux cas par an et de 1 à 6% des femmes 

enceintes sont atteintes. 1036 cas diagnostiqués en Belgique en 2002 par les 

laboratoires vigies. Nette augmentation depuis 2001 (en partie due à une 

meilleure détection). 

I 03 - 1

Facteurs de risque Les jeunes, comportement sexuel à risque (antécédent de MST). 

Contagiosité Aussi longtemps que le germe est présent. 


Traitement Doxyxycline ou azithromycine pour les adultes et érythromycine pour les 

enfants et les femmes enceintes. Prendre en compte la possibilité d’une 

gonorrhée associée. 



Santé publique Dépistage systématique et traitement des femmes enceintes. 


du patient Informer le patient sur les mesures de protection à suivre. 

Rechercher l’existence d’autres pathologies comme SIDA, infection à Neisseria 

gonorrhoeae, syphilis et hépatite B. 

des proches Proposer aux partenaires de se faire contrôler et traiter si nécessaire. 

de l’entourage Processus difficilement cernable. 


Isolement à 



générales 



Juillet 2003 

Elimination des sécrétions et liquides de drainage (lymphogranulome). 

Maintenir ces règles d’hygiène pendant toute la durée de la maladie. Les soins 

particuliers des mains sont essentiels. Une chambre privée n’est pas nécessaire. 

Utilisation de gants et de tablier en cas de contact possiblement infectant. 

Désinfecter le matériel contaminé pendant toute la durée de la maladie. 

Utilisation des préservatifs et des spermicides. 

Test de dépistage chez les femmes enceintes. 

Test de dépistage de chlamydia dès que l’on trouve un test positif pour le 

gonocoque. Application topique de tétracyclines ou d’érythromycine chez les 

nouveau-nés afin de prévenir la kératoconjonctivite et le trachome dans des 

zones endémiques. 

Remarques Lorsqu’une MST est diagnostiquée, il convient de rechercher automatiquement 

les autres. Les infections à chlamydia et à gonocoques sont souvent difficiles à 

distinguer ainsi lorsque l’une est suspectée, il convient de traiter les deux. 

Matériel labo. Ecouvillon dans un tube stérile. 

Echantillon & 

Conservation 

Echantillons de sécrétions urétrale, cervicale, pharyngée, anale ou urinaire 

(PCR - Polymerase Chain Reaction). - 24 heures dans le frigo. 

I 03 - 2

Transport : 


Juillet 2003 

Un tube contenant une solution de sucrose-phosphate. - Refroidir 

immédiatement et transport sur milieu glacé. 

Ressource scient. Dr. E. Van Dyck, Institut de Médecine Tropicale d’Anvers. Tél. : 03/247 63 29. 


référence 

I 03 - 3

streptocoque β 

hémolytique de groupe 

A (S.G.A.) ou 

Streptococcus 

pyogenes 

Juillet 2003 

Infection à Streptocoques A 

Incubation Courte, 1 à 4 jours. 

Diagnostic 

clinique 

Le Streptocoque A produit de très nombreuses toxines dont certaines entraînent 

la formation d’anticorps: 

1. Streptolysine O : très active sur les globules rouges. Elle provoque la 

formation d’antistreptolysines O (ASLO), anticorps les plus facilement 

dosables. 

2. Streptolysine S : elle ne suscite pas la formation d’anticorps. 

3. Streptodornases : 4 types: A, B, C, D. Seuls les anticorps correspondant au 

type B sont élevés au cours du rhumatisme articulaire aigu, ce sont les 

antistreptodornases B. 

4. Streptokinase : suscite la production d’antistreptokinases. 

5. Hyaluronidase : fait apparaître des antistreptohyaluronidases (ASH). 

6. Toxine érythrogène : très immunogène et entraîne une bonne immunité. 

Diverses formes d’infection dues à 80 sérotypes différents. 

Les maladies les plus fréquentes sont l’angine érythémateuse ou érythématopultacée, 

les streptococcies cutanées (impétigo, pyodermite, érysipèle), les 

otites. 

Les autres streptococcies, plus rares, comprennent la scarlatine, la fièvre 

puerpérale et les bactériémies. 

Les complications post-streptococciques survenant généralement à la suite 

d’une angine sont le rhumatisme articulaire aigu, la glomérulonéphrite aiguë, la 

chorée de Sydenham et l’érythème noueux. 

Labo. Diagnostic direct: culture des prélèvements réalisés en fonction du site de 

l’infection (gorge, pus, sérosités, sang). 

Diagnostic indirect : la montée des anticorps spécifiques ( ASLO) est un test 

très sensible mais seulement 4 à 8 semaines après l’infection. Si les ASLO ne 

montent pas, il est utile de doser les antistreptodornases B et les 

antistreptokinases. 

Tout germe isolé doit être envoyé au laboratoire de référence pour typage plus 

précis. 

Cas probable Image clinique caractéristique ayant un lien épidémiologique. 

Cas confirmé Image clinique confirmée par le laboratoire. Pour le RAA, deux symptômes 

majeurs (cardite, polyarthrite, chorée, érythème marginé, érythème noueux) ou 

un majeur et deux mineurs (antécédent RAA, arthralgie, fièvre, inflammation). 


I 04 - 1

Transmission Par contact direct avec un malade ou un porteur, via des sécrétions nasales ou 

pharyngées. Par de la nourriture ou de l’eau contaminée. La transmission 

indirecte par des objets infectés est possible. 

Saison Tout au long de l’année avec un nombre particulièrement élevé en hiver et plus 

faible en été. 

Age Tout âge, surtout avant 15 ans. 

Incidence Taux d’incidence relevé par le réseau des laboratoires vigies en Belgique : 

3,5/100 000 habitants en 2001. 

Facteurs de risque Risque de contagion après un contact est de 20%. Vivre en communauté (école, 

crèche, milieu militaire, clinique, industrie alimentaire...). 

Contagiosité Sans traitement de 10 à 21 jours à quelques mois. Avec traitement, 24 à 48 

heures. 

Immunité Immunisation post-infectieuse spécifique. Pas de protection contre les autres 

sérotypes. 

Traitement Sensible à la pénicilline. En cas d’allergie, macrolide ou clindamycine. 

Corticoïde et AINS pour RAA. 


Autorité à alerter Médecin responsable de l'inspection d'hygiène et le service de Promotion de la 

Santé à l'école. 

Santé publique Rechercher l’existence d’autres cas. S’il y a plus d’un cas, au sein d’une 

communauté en moins de 10 jours, on parle d’épisode épidémique. Il faut que la 

direction de cet établissement soit informée et que l’on entame une enquête à la 

recherche d’une source commune. 


du patient Antibiotiques et éloignement des enfants 24 à 48 heures après le début du 

traitement ; pour les adultes du groupe à risque jusqu’à la 1 ère culture négative. 

Interdire la manipulation des aliments. Désinfecter le matériel utilisé par une 

personne infectée. 

des proches S’inquiéter de l’existence d’antécédent de R.A.A. ou de personnes appartenant 

au groupe à risque. Si c’est le cas, prélever un écouvillon de gorge. 

de l’entourage En cas d’antécédent de R.A.A., chimioprophylaxie de ces individus. En 

présence d’un groupe à risque, prélèvement de sécrétions pharyngées de chaque 

membre. Traiter par des antibiotiques et éloignement des enfants (24 à 48 

heures après thérapie) et des adultes porteurs asymptomatiques (jusqu’à la 

première culture négative). 

Eviction de l’école Oui, les 24 à 48 heures qui suivent le début du traitement. 

Juillet 2003 

I 04 - 2

Isolement à 



générales 


Juillet 2003 

Isolement pendant les 24 à 48 premières heures après le début du traitement. 

Une chambre privée est nécessaire. Utiliser gants et tablier pour manipuler le 

matériel contaminé. Désinfecter le matériel utilisé par le patient infecté. 

Traiter par antibiotiques s’il y a un antécédent de R.A.A. Une fois par mois 

pendant minimum 5 ans ou jusqu’à l’âge de 20 ans. Pas de prévention 

particulière pour la glomérulonéphrite. 

Protection passive Oui, immunoglobulines pour les formes sévères comme le Strep-TSS. 

Remarques Si on constate une faible augmentation de l’incidence, l’augmentation de la 

gravité des symptômes est quant à elle très importante. Le traitement préventif 

contre le R.A.A. peut encore être initié 9 jours après le début de l’infection. 

SGA est responsable de 16% des pharyngites. 

Matériel labo. Matériel pour frottis de gorge, tube pour sang. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Sécrétions pharyngées. Envoi de l’échantillon vers le laboratoire de référence 

pour typage. - 24 heures dans le frigo. 

Trypticase Say Agar. - Température ambiante. 

Ressource scient. Dr H. Goossens, U.Z.A. Tél. : 03/821 37 89 

email: herman.goossens@uza.be 


référence 

Dr H. Goossens, U.Z.A. Tél. : 03/821.37.89 


I 04 - 3

Haemophilus 

influenzae type b. 

Juillet 2003 

Infections à Haemophilus influenzae 

Incubation Inconnue, probablement 2 à 4 jours. 

Diagnostic 

clinique 

Forme invasive : méningite aiguë ou subaiguë qui se manifeste par de la fièvre, 

des vomissements, de la léthargie et des signes d’irritation méningée. 

Autres manifestations : cellulite faciale, arthrite, ostéomyélite et épiglottite. 

Toutes ces infections focales s’accompagnent de bactériémie et évoluent 

rarement en forme fulminante. 

Labo. Culture de LCR, hémoculture ou ponction du site infecté. Détection d’antigènes 

spécifiques dans le sérum, le LCR, les urines. Chaque germe isolé dans les cas 

d’infections invasives doit être envoyé au laboratoire de référence pour typage. 

Cas probable Image clinique évocatrice confirmée par la détection d’antigènes spécifiques. 

Cas confirmé Image clinique évocatrice, confirmée par une culture positive. 


Transmission Par mise en aérosol ou par contact direct de sécrétions nasales ou pharyngées au 

cours de la période de contagiosité. 

Saison Toutes les saisons mais avec une prédominance en automne et en hiver. 

Age Plus fréquent de 2 mois à 3 ans. Depuis l’introduction de la vaccination, 

changement dans les groupes d’age et augmentation relative des cas parmi les 

adultes (35% des cas enregistrés par le Laboratoire de Référence en 2000). 

Incidence Méningite bactérienne la plus commune chez les enfants de 2 mois à 5 ans. 

Après l'introduction des vaccins conjugués, son incidence a été réduite de 95%. 

Facteurs de risque Les grandes familles, les crèches. 

Contagiosité Aussi longtemps que l’organisme est présent. Une éradication du portage chez 

le malade par la rifampicine est recommandée. 

Immunité Acquise. 

Traitement Si une méningite est suspectée: Ceftriaxone ou cefotaxime jusqu’au résultat de 

l’antibiogramme. Sinon, amoxycilline + clavulanate 


Autorité à alerter Médecin responsable de l'inspection d’hygiène et le service de Promotion de la 


Santé publique En cas d’épisode épidémique c.-à-d. s’il y a plus d’un enfant atteint au sein de 

la même communauté, initier un traitement prophylactique. 


I 05 - 1

du patient Traitement antibiotique et isolement respiratoire au cours des 24 à 48 heures qui 

suivent le début du traitement. Traitement chimioprophylactique par 

rifampicine pour éliminer le portage naso-pharyngé. 

des proches Surveillance (apparition de fièvre) des proches (famille, crèche...), s’il y a un 

enfant de moins de 5 ans. 

Traitement prophylactique des contacts familiaux s’il y a un enfant de moins de 

5 ans dans la famille. 

de l’entourage Prophylaxie par rifampicine (10 mg/kg deux fois par jour, 4 jours, max. 600 

mg) est recommandée pour les contacts familiaux s’il y a un enfant de moins de 

5 ans et dans les crèches, pour tous les enfants et membres du personnel. En cas 

de refus de chimioprophylaxie, l’enfant est évincé pendant un mois à dater de 

l’apparition de la maladie dans la collectivité, son retour est conditionné par la 

remise d’un certificat médical assurant l’absence de portage (ONE). Mesures 

dont l'application stricte doit être particulièrement contrôlée si enfants < 1 an ou 

si > 1 cas. 

Eviction de l’école Pour l’ONE : éviction jusqu’à guérison clinique et élimination du portage nasopharyngé. 

Isolement à 



générales 

Juillet 2003 

Isolement respiratoire pendant minimum 24 heures après le début du traitement 

adapté. Une chambre privée est nécessaire. Utilisation de gants et tablier pour 

manipuler du matériel infecté. Le port du masque s’impose pour les personnes 

en contact direct avec le patient. Désinfecter le matériel pendant les 24 heures 

post-traitement. 

Vaccination. 

Vaccination Vaccin conjugué à 2, 3, 4, et 13 - 15 mois (administré dans le même temps que 

le DTP et polio). 

Protection passive Traitement prophylactique à base de rifampicine. 

Remarques La létalité moyenne est estimée à 5,4% dans les pays européens (1998), les 

séquelles de 13 à 16 % (atteinte de l’audition). 

Matériel labo. Tubes stériles pour échantillons de LCR ou autres sites ponctionnés et tube pour 

hémoculture. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Echantillon de LCR ou autres sites ponctionnés et de sang. Sérum pour une 

sérologie éventuelle. - 24 heures dans le frigo. 


Ressource scient. Dr J. Levy, Hôpital Saint-Pierre. Tél. : 02/535 45 30 


référence 

Dr F. Crokaert, Institut J. Bordet. Tél : 02/541 37 06 

email : Francoise.crockaert@bordet.be. 

I 05 - 2

Infection néonatale précoce à Streptocoques B 

(GBS - Genital B Streptococcus) 

Streptococcus agalactiae. 

Incubation De 0 à 7 jours avec une moyenne de 1 à 10 heures après la naissance. 

Diagnostic 

clinique 

Juillet 2003 

Atteinte de l’état général, dyspnée, apnée, développement rapide d’une détresse 

respiratoire sévère, fièvre, septicémie avec état de choc et éventuellement 

atteinte méningée. Taux de mortalité : 50 %. 

Labo. Hémoculture, culture de LCR et d’aspirations bronchiques (chez l’enfant 

intubé). 

Formule hémoleucocytaire et bilan inflammatoire (CRP - C Reactive Protein, 

…); si normal, à répéter au moins à 12 et 24 heures avant d’exclure une 

infection. 

Cas probable Présentation clinique (sepsis, pneumonie et/ou méningite) associée à une 

leucocytose (ou neutropénie) et augmentation de la CRP (C Reactive Protein) 

sur au moins deux prélèvements, non confirmée par une culture positive d’un 

site profond chez un bébé colonisé par des GBS (Genital B Streptococcus) 

(oreille, ombilic, gorge,…) ou encore chez un bébé né d’une mère colonisée à 

l’accouchement (tractus génital) par des GBS (Genital B Streptococcus). 

Cas confirmé Image clinique (sepsis, pneumonie et/ou méningite) chez un bébé de moins de 7 

jours et confirmée par la présence de GBS (Genital B Streptococcus) dans une 

hémoculture ou une culture de sécrétions bronchiques. 

Réservoir Ce germe est un commensal des tractus digestif et génito-urinaire avec une 

prévalence de colonisation de 10 à 30%. 

Transmission Verticale, in utero par voie ascendante au travers des membranes rompues (ou 

intactes), à l’accouchement par contact et inhalation lors du passage dans la 

filière pelvienne, ou plus rarement par voie sanguine. De 40 à 60% des bébés 

nés de mères colonisées sont contaminés à la naissance ; seulement 1 à 4 % de 

ces enfants présentent une infection précoce. 


Age De 0 à 7 jours. 

Incidence En 2001, le réseau des laboratoires vigies de l’ISP a enregistré 9 cas de 

méningite dus au Streptococcus agalactiae. 

I 06 - 1

Facteurs de risque Colonisation vaginale maternelle à l’accouchement ; rupture prolongée de la 

poche des eaux (plus de 18 h) ; fièvre maternelle pendant le travail (> à 38° C) ; 

bactériurie à GBS (Genital B Streptococcus) pendant la grossesse ; infection 

néonatale précoce à GBS (Genital B Streptococcus) lors d’une grossesse 

précédente et prématurité (moins de 37 semaines). 

Contagiosité Risque de transmission mère-enfant (réduit par une antibioprophylaxie 

intrapartum) ou de transmission nosocomiale via les mains. Tout individu 

colonisé constitue un réservoir. 

Immunité 

Traitement Antibiothérapie adaptée et soins intensifs. 

Sepsis présumé : Ampicilline (100-150 mg/kg/jour) plus gentamicine jusqu’à 

identification du microorganisme. 

Bactériémie : Pénicilline G (200.000 U/kg/jour) pendant 10 jours. 

Méningite présumée : Ampicilline (300 mg/kg/jour) plus gentamicine jusqu’à 

stérilisation du LCR et documentation de la sensibilité à la pénicilline G (CMI 

< ou = 0,6 mg/L). 

Méningite : Pénicilline G (450.000 - 500.000 U/kg/jour) pendant 14 jours 

minimum. 



Santé publique Cfr. mesures préventives générales. 


du patient 

des proches 


Eviction de l’école 

Isolement à 



générales 

Juillet 2003 

Isolement de l’enfant. Renforcer le lavage des mains. Désinfecter le matériel en 

contact avec des sécrétions. 

- Identifier les femmes colonisées à la fin de la grossesse entre les 35 et 37 ème 

semaines, par culture de frottis « vagin + anus » ou identifier les parturientes 

colonisées, dès leur admission par un test de dépistage rapide sur un 

prélèvement vaginal. 

- L’administration d’une antibioprophylaxie, au début du travail, aux femmes 

identifiées colonisées par GBS (Genital B Streptococcus) lors d’un dépistage 

prénatal entre 35-37 semaines de gestation (ou encore en intrapartum par un 

test rapide) est actuellement la méthode la plus efficace pour prévenir 

l’infection néonatale précoce. Si le statut de colonisation est inconnu, 

administrer une antibioprophylaxie aux femmes présentant au moins un 

facteur de risque (voir précédemment). 

I 06 - 2


générales 

Juillet 2003 

- Plusieurs schémas d’antibioprophylaxie sont proposés par le CDC (Centers 

for Diseases Control and Prevention, Atlanta, USA) et par le Conseil 

Supérieur d’Hygiène (Belgique) : 

Recommandé : Pénicilline G, 5mU IV initialement, suivies par 2,5 mU IV 

toutes les 4 heures jusqu’à l’accouchement. 

Si allergie à la pénicilline : 

. et faible risque d’anaphylaxie : Cefazoline, 2 gr IV initialement, suivis 

par 1 gr IV toutes les 8 heures jusqu’à l’accouchement; 

. et risque d’anaphylaxie : Clindamycine 900 mg IV toutes les 8 heures 

jusqu’à l’accouchement. 

- En général, la prise en charge des enfants asymptomatiques nés de mères 

ayant reçu une antibioprophylaxie plus de 4 heures avant la naissance 

devrait être basée sur leur observation étroite, à la recherche de signes ou de 

symptômes d’infection pendant 48 heures. Pour les enfants nés d’une mère 

avec une idnication d’antibioprophylaxie mais non reçue ou depuis moins de 

4 heures, une évaluation biologique limitée (au moins deux fois une formule 

hémoleucocytaire et CRP - C Reactive Protein) et leur observation étroite, à 

la recherche de signes ou de symptômes d’infection pendant 48 heures est 

recommandée. 

- En présence de signes d’infection : une antibiothérapie empirique 

(ampicilline + gentamicine) est entreprise après un bilan infectieux. Ce 

traitement devrait être interrompu après 48 à 72 heures si les évaluations 

biologiques et cliniques ne confirment pas l’infection à GBS (Genital B 

Streptococcus). 

Vaccination Inexistante actuellement, mais en développement (à administrer aux futures 

mères). 


Remarques 

Matériel labo. Flacon pour hémoculture, écouvillon avec milieu de conservation type AMIES 

ou STUART et autres tubes stériles appropriés au transport des différents 

prélèvements à mettre en culture. 

Echantillon & 

Conservation 

Sang, LCR, aspiration broncho-alvéolaire et urine (ponction sus-pubienne). 

Recherche immédiate recommandée. (Le germe reste cependant viable pendant 

plusieurs heures dans les conditions habituelles de conservation des 

prélèvements). 

Transport : 


Conditions habituelles de transport des prélèvements. 

Ressource scient. Dr P. Melin, U.Lg. Tél.: 04/366 24 52 ou 366 24 38. 


référence 

Dr P. Melin, Service de Microbiologie Médicale - B 23 - CHU de Liège, Sart 

Tilman - 4000 Liège - Tél.: 04/366 24 52 ou 366 24 38. 

email : Pierrette.melin@chu.ulg.ac.be 

I 06 - 3

Infection néonatale tardive à Streptocoques B 

(GBS-Genital B Streptococcus) 

Streptococcus 

agalactiae 

Incubation Après 7 jours de vie du nouveau-né. 

Diagnostic 

clinique 

Juillet 2003 

Fièvre, bactériémie, le plus souvent associée à une méningite et plus rarement 

une ostéomyélite. Taux de mortalité : 10%. 

Labo. Hémoculture, culture de LCR ou d’autre site infecté. 

Antigène soluble du groupe B des streptocoques sur LCR, urine ou sang. 

Formule hémoleucocytaire et bilan inflammatoire (CRP - C Reactive 

Protein,…). 

Cas probable Tableau clinique et contexte épidémiologique. 

Cas confirmé Tableau clinique chez un bébé de plus de 7 jours et confirmé par une culture 

positive d’un site profond et/ou par la présence d’un antigène soluble. 

Réservoir Ce germe est un commensal des tractus digestif et génito-urinaire avec une 

prévalence de colonisation de 10 à 30% chez l’adulte. 

Transmission Principalement horizontale, par l’intermédiaire d’une personne colonisée ou 

transitoirement contaminée. 


Age De 7 jours à 3 mois (max. 12 mois) avec une moyenne de 1 mois. 

Incidence 0,5 à 1/1 000 nouveau-nés. 

Facteurs de risque Hygiène insuffisante des mains en particulier. 

Contagiosité Risque de transmission mère-enfant ou de transmission nosoconiale via les 

mains. Risque d’acquisition dans la communauté : tout individu colonisé 

constitue un réservoir. 

Immunité 

Traitement Antibiothérapie adaptée et soins intensifs. 

Sepsis présumé ; Ampicilline (100-150 mg/kg/jour) plus gentamicine jusqu’à 

identification du microorganisme. 

Bactériémie : Pénicilline G (200.000 U/kg/jour) pendant 10 jours. 

Méningite présumée : Ampicilline (300 mg/kg/jour) plus gentamicine jusqu’à 

stérilisation du LCR et documentation de la sensibilité à la pénicilline G (CMI 

< ou = 0,6 mg/L). 

I 07 - 1

Traitement Méningite : Pénicilline G (450.000 - 500.000 U/kg/jour) pendant 14 jours 

minimum. 

Ostéomyélite : Pénicilline G (200.000 - 300.000 U/kg/jour) pendant 3 à 4 

semaines. 

Endocardite : Pénicilline G (200.000 - 300.00 U/kg/jour) pendant 4 semaines, 

l’addition de gentamicine est conseillée pendant les premiers 14 jours. 



Santé publique 


du patient 

des proches 



Isolement à 



générales 



Remarques 

Juillet 2003 

Isolement strict de l’enfant. Renforcer le lavage des mains. Désinfecter le 

matériel en contact avec des sécrétions. 

Matériel labo. Flacon pour hémoculture et autres tubes stériles appropriés au transport de 

différents prélèvements à mettre en culture. 

Echantillon Sang, LCR, collection purulente ou autre site normalement stérile. 

Conservation de 

l’échantillon 

Transport : 


Recherche immédiate recommandée. (Le germe reste cependant viable pendant 

plusieurs heures dans les conditions habituelles de conservation des 

prélèvements). 

Conditions habituelles de transport des prélèvements. 

Ressource scient. Dr P. Melin, U.Lg. Tél.: 04/366 24 52 ou 02/366 24 38. 


référence 

Dr P. Melin, Service de Microbiologie Médicale - B 23 - CHU de Liège, Sart 

Tilman - 4000 Liège - Tél.: 04/366 24 52 ou 04/366 24 38. 

email : Pierrette.melin@chu.ulg.ac.be. 

I 07 - 2

Virus de l’immunodéficience 

humaine, 

VIH-1 et VIH-2 

Juillet 2003 

Infection par le VIH 

Incubation De 1 à 3 mois (période maximale observée 6 mois) pour observer une 

augmentation du nombre d’anticorps. Le développement du stade 

symptomatique varie entre quelques mois et plus de 10 ans. 

Diagnostic 

clinique 

Le diagnostic repose sur les critères de laboratoire relatifs à l’infection par le 

VIH ou sur un diagnostic de sida. (Sida = infection par le VIH + une ou 

plusieurs des 28 affections cliniques reprises dans la définition européenne pour 

la surveillance des cas de sida). 

Labo. Test de dépistage par méthode indirecte, EIA (Enzyme Immuno Assay) ou 

ELISA (Enzyme Linked Immuno Sorban Assay), réalisé dans tous les 

laboratoires. En cas de résultat positif, l’échantillon sanguin sera envoyé à un 

laboratoire de référence pour test de confirmation par Western Blot. La 

méthode directe par PCR (Polymerase Chain Reaction) est utilisée notamment 

dans des cas particuliers tels que mise au point chez un enfant né séronégatif 

« paradoxal » de mère séropositive. 

Cas probable Deux affections au moins parmi les suivantes : lymphadénopathies (> 0,5 cm à 

deux sites différents), hépatomégalie, splénomégalie, dermatite, parotidite, 

épisodes récurrents d’infections respiratoires supérieures, de sinusite ou d’otite 

moyenne. 

Cas confirmé Anticorps anti - HIV +. 


Transmission Par contact sexuel, par voie sanguine, par tissu infecté (ex. lors de 

transplantations d’organes), verticalement, par allaitement maternel. 

Saison Pas de saison particulière. 

Age Dans la population belge, l’âge médian des adultes au moment du diagnostic 

VIH s’est accru au cours du temps; il était de 34 ans en 1989; il dépasse 37 ans 

en 2001. Les groupes d’âge les plus touchés par ordre décroissant sont 30-34, 

25-29, 35-39 chez les hommes et 25-29, 20-24, 30-34 chez les femmes. 

Incidence En Belgique au 31/12/2001, et depuis le début de l’épidémie, 14.872 personnes 

ont été diagnostiquées séropositives, parmi lesquelles 2.940 ont développé un 

sida maladie. Parmi les personnes malades du sida, 1.649 étaient décédées à 

cette date. Au cours des trois dernières années (99,00,01), on a diagnostiqué en 

moyenne 2,5 nouvelles infections VIH par jour. 

I 08 - 1

Facteurs de risque Les rapports sexuels non protégés. L’utilisation de drogues IV par l’échange de 

matériel. Les relations avec les pays à haute endémie. Le risque professionnel 

est faible. 

Contagiosité La période de contagiosité n’est pas déterminée avec précision. Elle 

commencerait dès l’acquisition du virus et augmenterait avec l’aggravation de 

l’immunodéficience et l’apparition des symptômes cliniques, notamment 

d’ulcères génitaux. 

Immunité Tout le monde est sensible à cette maladie, aucun cas de guérison connu. 

Traitement Thérapie antirétrovirale de manière à retarder ou stopper l’évolution. 


Autorité à alerter Non. 

Santé publique La population belge ne se détache pas de la moyenne européenne, on peut la 

considérer comme touchée par ce phénomène dit pandémique à l’échelle 

mondiale. 


du patient Lorsque la séropositivité est confirmée, faire un bilan médical; proposer une 

prise en charge médicale et psychologique. Donner des informations sur 

l’évolution, les mesures protectrices à prendre pour le patient lui-même et le(s) 

partenaire(s). 

des proches Promouvoir le conseil aux partenaires sexuels ou en cas d’injection de drogues 

dans le respect de l’éthique (approche fondée sur le consentement éclairé du 

patient.) 

de l’entourage Eventuellement, profiter de la survenue d’un cas pour sensibiliser l’entourage 

(par exemple si le patient appartient à un groupe à risque) à la nécessité de la 

prévention et du dépistage. 

Eviction de l’école Non. Aucun argument de santé publique ne justifie d’entraver l’accès à l’école 

d’un enfant séropositif car il n’existe pas de risque de transmission fortuite du 

VIH dans le milieu éducatif. 

Mesures à 

l’hôpital 


générales 

Juillet 2003 

Les précautions universelles sont d’application. La prévention est fondée sur le 

principe que tout sang peut être potentiellement contaminant (infecté par le VIH 

ou d’autres agents pathogènes transmissibles par le sang) et qu’il est 

recommandé d’appliquer à tous les patients les précautions universelles lors de 

tout contact ou tout risque de contact avec des produits biologiques. En cas 

d’exposition au VIH, se référer aux recommandations relatives à la prise en 

charge. 

Sensibilisation aux moyens de se protéger, sensibilisation à l’utilité du 

dépistage. 

Vaccination Il n’existe, sur le marché, aucun vaccin ayant démontré son efficacité. 

I 08 - 2

Protection passive 

Remarques Pour les professions médicales et assimilées, le sida est une maladie 

professionnelle ou un accident du travail indemnisable si un contact 

probablement infectant avec un malade connu comme porteur du virus est 

confirmé par un test positif. Dans ce cas, il faut instaurer de manière urgente 

une chimioprophylaxie et faire des tests de contrôle. 


Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Juillet 2003 




Ressource scient. Dr. A. SASSE - I.S.P. Tél.: 02/642 50 39 


référence 

Dr. C. LIESNARD - ULB. Tél.: 02/555 34 53 

Dr. D. SONDAG-THULL - ULg. Tél.: 04/366 75 45 

Dr. P. GOUBAU - UCL. Tél.: 02/764 54 92 

Dr. K. FRANSEN - ITG. Tél.: 03/247 63 20 

Dr. J. PLUM - RUG. Tél.: 09/240 36 58 

Prof. M. Van Ranst - KUL. Tél.: 016/34 79 08 

Dr. G. Zissis - VUB. Tel.: 02/5354530 

I 08 - 3

Juillet 2003 

Influenza 

Virus Influenza Les 3 virus de la grippe A, B, C peuvent circuler concomitamment. 

Le virus A présente la plus grande instabilité antigénique. 

Incubation Courte, 1 à 5 jours. En moyenne, 2 jours. 

Diagnostic 

clinique 

Quatre symptômes obligatoires: début soudain, fièvre, myalgies et toux. 

Symptômes habituels : prostration et céphalées. 

Par contre, les enfants (25%) présentent une symptomatologie plus large telle 

que gastro-intestinale (nausées, vomissements, diarrhées). Survient souvent 

sous forme épidémique. Les complications sont d’ordre respiratoire et 

cardiaque. 

La mortalité est faible mais elle augmente chez les personnes à risque. 

Labo. Demande d’examens de laboratoire seulement si le cas est isolé ou dans un 

contexte pré-épidémique car le résultat est tardif. 

Sérologie (formation d’anticorps sériques spécifiques) en phase aiguë et 

convalescence. En période fébrile, isolement du virus à partir de sécrétions 

naso-pharyngées par culture ou détection de l’antigène viral. 

Chaque virus isolé doit être envoyé au laboratoire de référence pour typage. 

Cas probable Une image clinique compatible (brusque apparition de la maladie, toux, fièvre 

>38° C ) avec un lien épidémique. 

Cas confirmé Image clinique compatible et confirmée par le laboratoire. 

Réservoir Humain et animal pour le virus A et uniquement humain pour le virus B. 

Transmission Par aérosol de gouttelettes, par contact direct (résiste quelques heures à la 

sécheresse). 

Saison Dans les pays occidentaux, surtout en hiver. 

Age Lors de l’apparition d’un nouveau virus, tout le monde présente un risque. En 

phase épidémique, incidence plus élevée chez les enfants en âge scolaire. 

Incidence Variable d’une année à l’autre. Taux d’attaque de 10 à 15% en cas d’épidémie. 

Facteurs de risque Personnes à risque : >60 ans ou adultes/enfants ayant une pathologie 

préexistante, atteinte pulmonaire (asthme), rénale, métabolique (diabète), 

cardiaque ou immunosuppressive (chimiothérapie, HIV...). Vivre dans une 

communauté fermée. 

Contagiosité Trois à cinq jours après le début de la phase clinique chez les adultes, les 

enfants restent contagieux jusque 7 jours. 

I 09 - 1

Immunité Immunité spécifique transitoire et si certaines personnes peuvent conserver une 

mémoire immunitaire pendant de nombreuses années, elle ne les protège pas 

contre une infection par un nouveau virus. 

Traitement Symptomatique en phase aiguë, spécifique lors de la survenue de 

complications. Pas de salicylates chez les enfants. 

L’Amantadine possède un rôle thérapeutique sur le virus de type A si elle est 

administrée dans les 48 heures après les premiers symptômes. D’autres 

antiviraux plus récents, dirigés contre les virus de type A et B, sont disponibles 

en Belgique. Ils raccourcissent la durée des symptômes mais leurs effets sur les 

complications de la grippe ne sont pas encore prouvés. 

Déclaration Si les cas individuels ne doivent pas être déclarés, une situation épidémique doit 

être rapportée (en particulier si elle porte à conséquence dans une collectivité). 


Santé publique Vaccination systématique des personnes à risque et de toutes les personnes en 

contact avec ce groupe (y compris le personnel médical). En période 

épidémique, plus ou moins 90% des décès surviennent par pneumonie, par arrêt 

cardiaque ou par AVC. En période pré-épidémique, il est nécessaire de faire un 

prélèvement naso-pharyngé et de l’envoyer au laboratoire de référence, dans le 

but de détecter le virus circulant. 


du patient Si cela est faisable, isolement du patient, surtout s’il s’agit d’un enfant. 

Règles hygiéniques élémentaires (se laver les mains après contact avec 

muqueuses, prévenir dissémination par la toux...). 

des proches Si une épidémie est en majorité de type A ou s’il y a confirmation d’infection 

par virus A chez un individu, il faut vacciner toute personne à risque de 

l’entourage et un traitement à l’Amantadine-Rimantadine peut être initié afin de 

couvrir la période d’acquisition de l’immunité (15 jours). 

Si il y a infection par autre virus, proposer la vaccination à toute personne, 

excepté si celle-ci est fébrile ou allergique aux blancs d’oeufs. 

de l’entourage Voir mesures vis-à-vis des proches. 


Isolement à 



générales 

Juillet 2003 

Chambre privée et isolement respiratoire pour les petits enfants, les personnes 

âgées, les personnes manquant d’hygiène ou en cas d’épidémie. Mesures 

d’hygiène classiques pour le personnel. Gants et tablier sont recommandés pour 

le personnel en contact avec de jeunes enfants. Pas de précaution particulière 

pour le matériel. 

Vaccination. Le taux de protection est de 70% chez les jeunes adultes. Moins 

élevé chez les personnes âgées mais la vaccination diminue notablement la 

sévérité des symptômes et le risque de complications diminuent (diminution de 

70% du risque d’hospitalisation et de 80% du risque de mortalité). 

I 09 - 2

Vaccination L’actualisation du vaccin se fait chaque année en fonction des souches en 

circulation. Elle est recommandée en septembre - novembre, pour les personnes 

de plus de 65 ans, les personnes vivant en communauté (home), en cas 

d’atteintes pulmonaire, rénale chronique ou cardiaque, diabète ou pour les 

immuno-déprimés, le personnel soignant et toutes personnes confrontées à une 

épidémie. Un remboursement partiel est accordé par l’INAMI à diverses 

personnes à risque (+ de 65 ans, personnes atteintes d’affections bronchiques 

chroniques, etc). Une dose chaque année. Deux doses espacées d’un mois pour 

les enfants à risque. 


Remarques Il faut penser à vacciner le personnel (hôpital, maison de repos, ...) susceptible 

de transmettre la maladie aux personnes à risque. La vaccination est 

recommandée en cas de grossesse à risque et lors de voyages dans l’hémisphère 

sud. On peut vacciner toute personne qui le désire à partir de l’âge de 6 mois. 

Les personnes à risque représentent +/- 20% de la population. 

Matériel labo. Ecouvillon de gorge ou de nez après avoir obtenu les renseignements et le 

matériel auprès du laboratoire de référence, tube sec pour sérum. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Juillet 2003 

Sécrétions nasales ou pharyngées, sérum. 

Le sérum peut être conservé 24 heures dans le frigo, l’écouvillon doit être 

transporté immédiatement. 

Pour les écouvillons, il existe un milieu de transport particulier qui peut être 

demandé au laboratoire de référence. - Eviter toute exposition à la chaleur. 

Ressource scient. Dr F. Yane, I.S.P. Tél.: 02/642 51 34, email: f.yane@iph.fgov.be 

Dr R. Snacken, email: rene.snacken@minsoc.fgov.be 


référence 

Dr F. Yane, I.S.P. Tél.: 02/642 51 34, email: f.yane@iph.fgov.be 

I 09 - 3

Juillet 2003 

Intoxination alimentaire à Bacillus cereus 

Bacillus cereus. Bactérie sporulée ubiquitaire produisant une toxine émétique et une toxine 

diarrhéique. 

Diagnostic différentiel: 

• forme émétisante: intoxication alimentaire à Staphylococcus aureus 

• forme diarrhéique: toxi-infection alimentaire à Clostridium perfringens. 

Incubation De 1 à 6 heures pour la forme émétisante. 

De 6 à 16 heures pour la forme diarrhéique. 

Diagnostic 

clinique 

Forme émétisante: nausées, vomissements. 

Forme diarrhéique: crampes abdominales, abondante diarrhée aqueuse. 

Rarement de la fièvre, habituellement guérison sans séquelle en 24 heures. 

Labo. Pour déterminer les aliments incriminés : recherche des toxines ou mise en 

culture produisant plus de 100 000 organismes par gramme de nourriture. 

Coproculture. 

Cas probable Image clinique qui peut, par l’épidémiologie, être reliée à un cas confirmé. 

Cas confirmé Symptômes cliniques validés par un examen de laboratoire. 

Réservoir Le sol, les céréales et les aliments séchés. Pas de source humaine connue mais 

isolement possible chez 15% des individus sains (origine alimentaire). 

Transmission Rupture de la chaîne de froid: le maintien des aliments à une température 

favorable à la germination des spores permet la multiplication des germes et la 

production d’une entérotoxine. 

Les aliments les plus souvent incriminés : 

• dans la forme émétisante sont les pâtes alimentaires ou le riz; 

• dans la forme diarrhéique ce sont les plats à base de viande, de sauce, les 

potages ou les épices. 

La toxine diarrhéique est inactivée par chauffage à 56°C pendant 5 minutes 

tandis que l’émétisante résiste à 126°C pendant 90 minutes. La croissance dans 

l’aliment se fait entre 7 et 55°C. 




Facteurs de risque Grandes cuisines : conservation longue entre 15 et 43°C. 


I 10 - 1




Autorité à alerter Médecin responsable de l’inspection d’hygiène, service de la Promotion de la 

Santé à l'école et l’Agence fédérale pour la Sécurité de la Chaîne alimentaire 

(AFSCA). 

Santé publique Si plusieurs personnes ont été contaminées, il faut mener une enquête 

alimentaire. 



des proches Coproculture pour les personnes ayant été exposées au même risque. 



Isolement à 



générales 



Juillet 2003 

La chambre privée n’est pas nécessaire. 

Traitement correct de la nourriture, surtout en ce qui concerne le contrôle de la 

température dans les cuisines (refroidissement rapide et conservation des plats 

chauds au dessus de 65°C). 

Remarques Enquête alimentaire : 1) Enquête épidémiologique et prélèvements de selles 

auprès de toutes les personnes touchées. 2) Recueillir des échantillons des 

denrées incriminées. 3) Recherche du germe et dénombrement. Recherche des 

toxines. 

Matériel labo. Récipient pour les selles. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Remarques Labo 

Un prélèvement de selles et si possible d’aliments suspects. 


Pas de milieu particulier. - Conservation par le froid, transport immédiat entre 

0° et 4°C. 

Ressource scient. Prof. G. Daube, ULg. Tél.: 04/366 40 15 

Prof. L. De Zutter, R.U.G. Tél.: 09/264 74 51 


référence 

Dierick Katelijne ISP Section Denrées Alimentaires 02/642 51 53 

email: katelijne.dierick@iph.fgov.be 

I 10 - 2

Intoxination alimentaire à Staphylococcus aureus 

Staphylococcus aureus. S. aureus est un germe ubiquitaire. C’est un commensal de la peau et des 

muqueuses de l’homme. 

Diagnostic différentiel: intoxication alimentaire à bacillus cereus (forme 

émétisante). 

Incubation De 30 minutes à 7 heures, le plus souvent 2 à 4 heures. 

Diagnostic 

clinique 

Juillet 2003 

Début brutal: nausées, vomissements incoercibles chez un malade sans fièvre. 

Durée de 24 heures maximum. 

Labo. Culture des vomissements, des selles, de la nourriture. Recherche des 

entérotoxines. 

Cas probable Image clinique qui peut être reliée par l’épidémiologie à un cas confirmé. 

Cas confirmé Image clinique confirmée par un résultat de laboratoire positif, présence 

d’entérotoxines. 

Réservoir Humain (nez, peau, gorge,...), animaux domestiques, bovins. 

Transmission Intoxination par des entérotoxines préformées dans un aliment contaminé qui 

n’a pas été cuisiné immédiatement ou qui a été mal conservé (non respect de la 

chaîne du froid); transmission via des aérosols provenant du nez, de la bouche 

ou via les mains. Les aliments peuvent être à base de viande ou de lait (les 

crèmes glacées, les pâtisseries, les fromages, ...) La croissance du germe dans 

l’aliment se fait entre 7 et 48°C, la production d’entérotoxines se fait entre 10 et 

46° C. Les entérotoxines résistent à la cuisson. 




Facteurs de risque Les grandes cuisines. Les boulangeries, les boucheries, les marchés, ... 

Contagiosité Pas de personne à personne. 


Traitement Traitement symptomatique, l’antibiothérapie est inutile car la maladie est due à 

l’ingestion d’une toxine préformée par le germe dans les aliments. 


I 11 - 1

Autorité à alerter Médecin responsable de l’inspection d’hygiène, service de Promotion de la 

Santé à l'école et l’Agence fédérale pour la Sécurité de la Chaîne alimentaire 

(AFSCA). 

Santé publique En cas d’épisode épidémique (2 personnes ou plus présentant la même 

maladie), il faut mener une enquête alimentaire afin de trouver une source 

commune. Contrôler notamment l’absence de lésions cutanées infectées du 

personnel manipulant les aliments. 


du patient La réhydratation est parfois nécessaire. 

des proches Prélever les selles des personnes qui auraient été exposées au même risque. 



Isolement à 


Juillet 2003 

Pas de nécessité d’une chambre privée. Le port de gants, tablier et masque n’est 

pas requis. Se laver soigneusement les mains. Les hôpitaux qui servent des 

repas aux patients et au personnel doivent préparer et conserver la nourriture 

selon les règles en vigueur. 

Mesures prévent. Rigueur dans la préparation des aliments, hygiène corporelle. 

générales 



Remarques Enquête alimentaire: 1) Enquête épidémiologique et prélèvements de selles 

auprès de toutes les personnes touchées. 2) Après celle-ci, recueillir des 

échantillons des denrées incriminées. 3) Recherche de la toxine et 

dénombrement du germe par le laboratoire. 

Matériel labo. Récipients adaptés aux échantillons. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Vomissements, diarrhée, nourriture douteuse. 

24 heures au frigo. 

Pas de milieu particulier. - Conservation par le froid, transport immédiat entre 0 

et 4°C. 

Ressource scient. Prof. G. Daube, ULg. Tél.: 04/366 40 15. 

Prof. L. De Zutter, R.U.G. Tél.: 09/264 74 51. 


référence 

Dr M. Struelens Hôpital Erasme, microbiologie Tél. : 02/555 45 19. 

Lysotypie: Dr C. Godard Institut Pasteur de Bruxelles Tél. : 02/373 32 70. 

email : cgodard@pasteur.be. 

I 11 - 2

Juillet 2003 

Kawasaki 

Inconnu. La réponse immunologique reconnue dans cette affection laisse penser que son 

étiologie est infectieuse, mais à ce jour, aucun germe n’a pu être identifié. 

Incubation Inconnue. 

Diagnostic 

clinique 

Cinq jours de fièvre et 4 des 5 symptômes suivants: 

1) Injection conjonctivale bilatérale. 2) Lèvres oedémateuses et sèches, langue 

fraise, érythème de la cavité buccale. 3) Oedème et érythème périphériques, 

desquamation du contour des ongles (90%). 4) Eruption polymorphe sur le 

torse. 5) Adénopathie cervicale, au moins une >1,5 cm de diamètre (82%). 

Histoire clinique en 3 phases: 

1) Phase fébrile aiguë avec rash, adénopathie, érythème... 2) Phase subaiguë de 

2 semaines, avec thrombocytose, desquamation et chute de la fièvre. 3) Une 

longue convalescence et disparition des symptômes. 

Complication : anévrysme coronarien qui survient chez 15 à 20 % des patients. 

Labo. Il n’existe pas de diagnostic de certitude sur base d’examens de laboratoire. 

Cas probable Un cas qui répond à la définition clinique. 

Cas confirmé Un cas qui répond à la définition clinique après exclusion des autres diagnostics 

possibles. 

Réservoir Inconnu. 

Transmission Inconnue. 

Saison Surtout en hiver et au printemps. 

Age Les enfants jusqu’à l’âge de 8 ans. 

Incidence C’est une maladie de l’enfant surtout de moins de 5 ans qui touche plus souvent 

les garçons que les filles. Elle est fréquente au Japon et en Corée (40 à 150 cas / 

100.000 enfants de moins de 5 ans) tandis que chez les Caucasiens, hors du 

Japon, l’incidence est de 6 à 10 / 100.000 enfants de moins de 5 ans. 

Facteurs de risque Inconnus. 

Contagiosité Inconnue. 

Immunité Inconnue. 

K 01 - 1

Traitement De hautes doses d’immunoglobulines IV pendant les 10 premiers jours peuvent 

diminuer les oedèmes et le risque d’anévrysme coronaire. Hautes doses 

d’aspirine. 



Santé publique Rechercher une étiologie possible. 


du patient Traitement symptomatique. L’administration précoce d’immunoglobulines 

diminuant le risque de complications cardiaques, il y a lieu d’en faire 

rapidement le diagnostic. 

des proches Pas nécessaire. 



Isolement à 



générales 

Juillet 2003 

Une chambre privée n’est pas nécessaire. L’utilisation de gants, de tablier ou de 

masque ne s’impose pas. Pas de mesure particulière pour le matériel. 

Inconnues. 


Protection passive Immunoglobulines. 

Remarques Anévrysme et artérite coronaire surviennent dans 10 à 20 % des cas. Tous les 

organes peuvent être touchés. 

Matériel labo. Pas d’application. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Pas d’application. 


Ressource scient. Prof. F. Zech, U.C.L. Tél.: 02/764 41 06. 


référence 

K 01 - 2

Juillet 2003 

Légionellose 

Legionella pneumophila (Lp). Il existe 15 sérogroupes de Legionella pneumophila et le sérogroupe 1 est 

le plus fréquent en pathologie. 

Incubation De 2 à 10 jours, le plus souvent 5 à 6 jours. 

Diagnostic 

clinique 

• Infection aiguë qui débute par des céphalées, des myalgies, de l’anorexie. 

Après 24 heures, la température monte et s’accompagne de frissons et de 

toux sèche. L’image radiologique est celle d’une pneumonie à évolution 

souvent bilatérale et parfois de pleurésie. Diarrhée et encéphalopathie sont 

parfois des symptômes associés. 

• Fièvre de Pontiac (fièvre, anorexie mais pas de pneumonie) pourrait être la 

conséquence d’une inhalation d’antigènes bactériens sans invasion 

bactérienne. Elle survient plus fréquemment chez les jeunes. 

Labo. 1- Recherche d'antigène urinaire. 

2- Isolement de la bactérie par culture (3 à 5 jours) à partir de sécrétions 

respiratoires, d’une biopsie pulmonaire, d'un lavage broncho-alvéolaire, de 

liquide pleural ou autres échantillons stériles. 

3- Sérologie (seulement pour Legionella pneumophila sérogroupe 1) : taux 

d’anticorps par IF X 4 entre deux mesures à 10-15 jours d'intervalle ou titre 

supérieur à 1/256. Chaque germe isolé doit être envoyé au laboratoire de 

référence afin d’y être typé avec précision. 

Cas probable Une image clinique compatible avec un titre > 1/256, dans la phase de 

convalescence. 

Cas confirmé Présence d’antigènes dans les sécrétions respiratoires ou dans les urines, avec 

image pulmonaire. 

Réservoir Lp est présent partout dans la nature et dans les systèmes de distribution d’eau 

et se développe en milieu chaud et humide : source thermale polluée, air 

conditionné, …On ne connaît pas de réservoir humain ou animal. 

Transmission L’infection se fait par voie aérienne; la porte d’entrée est pulmonaire. Elle est 

consécutive à l’inhalation des légionelles contenues dans de l’eau en aérosol. 

L’aérosolisation de l’eau est produite par les climatiseurs, les tours aéroréfrigérantes, 

les douches, les bains agités, les humidificateurs d’air, les 

nébulisateurs, etc, en particulier dans les installations collectives, surtout à 

faible renouvellement. 


Age Le plus souvent chez des individus d’âge moyen ou mûr. 

L 01 - 1

Incidence Belgique : 85 cas en 2001 et 117 cas en 2002 diagnostiqués par le réseau des 

laboratoires vigies. 15 cas confirmés par les laboratoires de référence en 2001. 

Lp est responsable de 1 à 15% des pneumonies non nosocomiales. 

Facteurs de risque Fumeurs, insuffisance rénale chronique, immunodéprimés, utilisation de 

corticostéroïdes, cancer, insuffisance pulmonaire chronique, diabète mellitus, 

alcoolisme. 

Contagiosité Pas de personne à personne. 

Immunité Mal connue. 

Traitement Erythromycine, clarithromycine.. 



Santé publique Bien qu’il s’agisse d’un germe ubiquitaire, la maladie n’est pas fréquente. La 

détection d’un cas doit mener à la plus extrême vigilance. La détection de 

plusieurs cas doit mener à la recherche immédiate de la source de cette 

infection. 


du patient Rien de particulier. 

des proches Pas d’isolement ou de traitement des sujets en contact. 



Isolement à 


Vaccination Non. 


Juillet 2003 

La chambre privée n’est pas nécessaire. Le port de gants, de tablier ou de 

masque n’est pas requis. Désinfection du matériel contaminé par les sécrétions 

respiratoires. 

Remarques L’isolement du Lp de l’environnement a peu d’intérêt. Sauf en cas d’épidémie, 

les techniques d’épidémiologie moléculaire peuvent comparer l’identité 

génétique entre les souches des malades et celles de la source de contamination. 


générales 

Matériel labo. Voir échantillon. 

Contrôle strict des eaux. Traitement des installations contaminées : thermique 

>80°C, maintien des réservoirs d'eau chaude > 65°C ou chimique >10 mg 

chlore/ml. Traitement d'entretien : ionisation Ag/Cu de l’eau du système de 

distribution. Nettoyage chimique et mécanique du système d’air conditionné 

(entretien régulier des tours de refroidissement). La recherche préventive du 

germe dans l’environnement est inutile sauf en cas de surveillance postépidémie. 

L 01 - 2

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 

Miliue-Conditions 

Juillet 2003 

Air : appareil spécial (Anderson sampler et culture). - Eau : en bouteille stérile 

d’un litre. - Echantillons cliniques : expectorations, lavage broncho-alvéolaire 

ou biopsie pour culture, urine, sérum. - 24 heures dans le frigo. 


Ressource scient. Prof. S. Lauwers, V.U.B. Tél. : 02/477 50 00. 

Prof. M. Struelens, U.L.B. Tél. : 02/555 34 86. 


référence 

Prof. S. Lauwers, V.U.B. Tél. : 02/477 50 00 

email : Labomicro@az.vub.ac.be 

Prof. M. Struelens, Hôpital universitaire Erasme, Tél. : 02/555 34 86 

email : Marc.struelens@ulb.ac.be 

L 01 - 3

Leptospira interrogans 

Incubation Entre 6 à 12 jours. 

Diagnostic 

clinique 

Juillet 2003 

Leptospirose 

Maladie biphasique qui peut durer quelques jours à 3 semaines. 

Première phase (60%) : fièvre, céphalées, vomissements, frissons, myalgies, 

douleurs abdominales. 

Deuxième phase : inflammation conjonctivale (2 à 18%), méningite (40%), 

rash, ictère (60% des 25% de formes graves), décompensation rénale (67%), 

anémie hémolytique avec hémorragie cutanée et muqueuse (16%), pathologie 

pulmonaire (20%), hémorragie myocardique (5%), ... 

Labo. Sérodiagnostic: recherche séparée des IgM par technique ELISA (Enzyme 

Linked Immuno Sorban Assay). Cette montée des anticorps DOIT être 

confirmée par un test de micro-agglutination réalisé dans un laboratoire de 

référence. 

PCR (Polymerase Chain Reaction) qui se positive dès le début de la maladie 

alors que la sérologie est négative. 

Mise en évidence de leptospira dans un échantillon clinique par 

immunofluorescence. 

Isolement du germe possible mais difficile dans le sang, le LCR et les urines. 

La culture nécessite un laboratoire entraîné. 

Cas probable Image clinique compatible qui peut être reliée par l’épidémiologie à un cas déjà 

analysé ou confirmé par un examen de laboratoire. 


Réservoir Rongeurs, rats, souris. Animaux domestiques et bétail. Ils sont atteints 

d’infection asymptomatique mais qui s’accompagne de leptospirurie. Dans le 

milieu extérieur, les leptospires peuvent survivre longtemps et se multiplier si 

les conditions sont favorables: eau stagnante, PH alcalin, présence de composés 

organiques comme dans les étangs, les égouts, les mines. 

Transmission Zoonose. Contamination par contact direct (morsure) avec les animaux (rats, 

chiens, porcs). Contamination indirecte par de l’eau infectée. 

Saison Surtout de juillet à novembre. 

Age La moyenne d’âge est de 45 ans. Neuf patients sur 10 sont de sexe masculin 

(facteur professionnel). 

Incidence Maladie trop peu souvent diagnostiquée en Belgique, 4 à 5 cas par an. 

L 02 - 1

Facteurs de risque Sports nautiques en eaux contaminées, camping,... Quelques professions 

(égoutiers, agriculteurs, pêcheurs, vétérinaires,...). 

Contagiosité La transmission de personne à personne est excessivement rare. La leptospirurie 

peut durer de 1 à 11 mois. 

Immunité Immunisation spécifique, pas de protection contre les autres sérotypes. 

Traitement Antibiotiques (pénicilline G ou ampicilline ou doxycycline), si cela est possible 

avant le 4 ième jour afin de diminuer le risque de complications. 


Autorité à alerter Médecin responsable de l’inspection d’hygiène et le service de Médecine du 

travail. 

Santé publique Rechercher des contacts infectants avec des animaux ou de l’eau (piscine, 

risque professionnel..). Si le lieu est public ou si la cause est professionnelle, il 

faut trouver et fermer la source jusqu’à décontamination. 


du patient Désinfecter les objets contaminés par les urines du patient. 

des proches Non, excepté pour les femmes enceintes qui doivent éviter les contacts avec la 

personne contaminée. 

de l’entourage Après un contact probablement infectant, il existe un traitement prophylactique 

par antibiotiques. 


Isolement à 



générales 

Juillet 2003 

Une chambre privée n’est pas nécessaire. L’utilisation de gants s’impose 

uniquement en cas de contact avec du matériel infecté. Désinfecter le matériel 

contaminé par l’urine et le sang. 

Utiliser les vêtements de protection dans les professions à risque. Identifier les 

sources de contamination possibles. Dératisation et autres mesures contre les 

rongeurs, surtout en milieu rural. Isolement des animaux domestiques infectés. 

Vaccination Possibilité limitée en Belgique. 


Remarques 

Matériel labo. Tubes secs pour la sérologie. Tubes héparinés, si possible stériles, pour 

isolement du germe dans le sang. Pots stériles pour urines en cas de 

leptospirurie. 

Echantillon & 

Conservation 

Prélèvements de sang pour la sérologie. - 24 heures dans le frigo. 

L 02 - 2

Transport : 




référence 

Juillet 2003 


Dr T. Vervoort, Institut de Médecine Tropicale Anvers. Tél. : 03/247 64 40. 


L 02 -03

Listeria 

monocytogenes. 

Juillet 2003 

Listériose 

Incubation De 3 à 70 jours après l’exposition au produit infecté. 

Diagnostic 

clinique 

Listériose de l’adulte : chez un adulte sain, provoque une maladie aiguë et 

fébrile; chez un adulte âgé ou immunodéprimé, provoque une méningoencéphalite 

et/ou septicémie. La mortalité est d’environ 30%. 

Listériose de la femme enceinte : devant une symptomatologie pseudo-grippale 

inexpliquée, il faut pratiquer des hémocultures et rechercher listeria dans les 

secrétions vaginales. La listériose peut provoquer un avortement ou un 

accouchement prématuré. 

Listériose du nouveau-né : l’enfant naît infecté ou est infecté pendant 

l’accouchement : septicémie à la naissance ou quelques jours après ou 

inapparente. Létalité : de 30 à 50%. 

Labo. Isolement du germe dans le LCR, le sang, le méconium, les lochies, le liquide 

gastrique, les foyers d’infection locale et dans les secrétions vaginales. 

Les tests sérologiques détectant la présence d’anticorps contre les bactéries 

tuées (séroagglutination) ou contre la listériolysine O ont peu d’intérêt si les 

germes ont été isolés en culture. Ils peuvent être un appoint au diagnostic en cas 

de suspicion de listériose au cours d’une grossesse fébrile. Les titres 

d’anticorps agglutinants peuvent atteindre de 1/320 à 1/640 au bout de 10 jours 

d’infection. Les anticorps anti-listériolysine O peuvent atteindre de 1/100 à 1/5 

000 au cours de l’infection aiguë. Il est important de réaliser au moins deux 

tests à 15 jours d’intervalle pour mettre en évidence une séroconversion, 

appoint majeur au diagnostic ou une élévation du titre des anticorps en faveur 

d’une infection grave. 



Réservoir La nourriture, l’environnement, l’eau. Différents mammifères, oiseaux et 

l’homme. Il existe des porteurs asymptomatiques chez les animaux comme chez 

l’homme. La bactérie peut se développer dans des conditions hostiles, 

notamment dans les chambres froides à +4°. 

Transmission Par le lait cru contaminé, par les fromages à base de lait non pasteurisé, par de 

la charcuterie, par du poisson fumé ou des fromages contaminés. Transmission 

périnatale et transplacentaire. 

Saison Toute l’année. 

L 03 - 1

Age Les nouveau-nés (< 3 semaines), les femmes enceintes et les personnes de plus 

de 40 ans. 

Incidence 4 à 6 cas/an/1.000.000 habitants. Une moyenne de 50 cas par an est 

diagnostiquée en Belgique par le laboratoire de référence. 

Facteurs de risque Immunodépression (immunodéprimés, corticoïdes, Sida…). Les femmes 

enceintes, le grand âge. 

Contagiosité Les sécrétions vaginales et les urines d’une mère contaminée peuvent être 

porteuses du germe pendant une période allant de quelques jours à 3 semaines. 


Traitement Cotrimoxazole ou ampicilline, éventuellement associé à un aminoglycoside. 



Santé publique Si plusieurs cas, rechercher une souche commune avec l’aide de l’Agence 

fédérale pour la sécurité de la chaîne alimentaire (AFSCA). 



des proches Rechercher une source commune pour éviter de nouveaux cas. 

de l’entourage Néant 


Isolement à 



générales 

Juillet 2003 

Une chambre privée n’est pas nécessaire. Le port de gants, de tablier ou de 

masque n’est pas requis. Pas de précautions particulières en ce qui concerne le 

matériel mais se méfier des sécrétions vaginales et des urines d’une femme 

infectée en post-partum. 

Eviter la consommation de fromages à pâte molle au lait cru; enlever la croûte 

des fromages avant consommation, éviter la consommation de fromages vendus 

râpés Eviter la consommation de poissons fumés. Eviter la consommation 

de graines germées crues (soja, luzerne, (alfafa) ...). Eviter la consommation 

de produits de charcuterie cuite consommés en l’état; ex : pâté, rillettes, 

produits en gelée, jambon cuit ; si achetés, préférer les produits préemballés et 

les consommer rapidement après leur achat. Eviter la consommation de 

produits de charcuterie crue consommés en l’état. Les faire cuire avant 

consommation, ex : lardons, bacon, jambon cru. Eviter la consommation de 

produits achetés au rayon traiteur . Eviter la consommation de coquillages 

crus, surimi, tarama. 

L 03 - 2


générales 



Juillet 2003 

Règles d’hygiène à respecter : 

Cuire soigneusement les aliments crus d’origine animale (viandes, poissons); 

en particulier le steak haché doit être cuit à cœur . Laver soigneusement les 

légumes crus et les herbes aromatiques . Conserver les aliments crus (viande, 

légumes, ...) séparément des aliments cuits ou prêts à être consommés. Après 

la manipulation d’aliments non cuits, se laver les mains et nettoyer les 

ustensiles de cuisine qui ont été en contact avec ces aliments. Nettoyer 

fréquemment et désinfecter ensuite avec de l’eau javellisée votre réfrigérateur. 

Les restes alimentaires et les plats cuisinés doivent être réchauffés 

soigneusement avant consommation immédiate. 

Remarques Les foetus et les nouveau-nés sont très sensibles à cette affection. 

Matériel labo. Pots et tubes stériles. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Sang, LCR, méconium, lochies. - 24 heures dans le frigo. 

Conservation par le froid (0 à 4°C). - Température ambiante. 

Ressource scient. Prof. G. Daube, U.Lg. Tél. : 04/366 40 15 (aliments). 


référence 

Dr M. Yde, I.S.P. Tél.: 02/642 52 40 

email: m.yde@iph.fgov.be 

L 03 - 3

Juillet 2003 

Maladie de Lyme 

Borrelia burgdorferi. Maladie transmise par la tique. 

Incubation Variable, symptômes parfois après plusieurs années. 

Diagnostic 

clinique 

La maladie de Lyme se manifeste généralement en 3 étapes, qui ne sont pas 

toutes nécessairement observées : 

1. 3 jours à 3 mois après la morsure : 

apparition d’une tache rouge circulaire à l’endroit (ou à proximité) de la 

morsure, qui grandit petit à petit (érythème migrant) apparition de 

symptômes grippaux tels maux de tête, maux de gorge, fatigue, fièvre, ...; 

2. quelques semaines ou mois après la morsure : 

douleurs dans les bras ou les jambes déformation du visage causée par 

une paralysie des muscles de la face vision double troubles du rythme 

cardiaque (arythmie); 

3. des mois jusqu’à même parfois des années après la morsure : 

douleurs et gonflement d’une (ou de plusieurs) articulation(s) (arthrite) 

(souvent au niveau du genou) troubles neurologiques chroniques 

(rarement) maladie chronique de la peau au niveau des bras et/ou des 

jambes. 

Une personne infectée peut développer un ou plusieurs de ces symptômes, 

combinés de façon variable. 

Labo. ELISA (Enzyme Linked Immuno Sorban Assay), IFA: ces tests sont peu 

sensibles pendant les premières semaines de la maladie. 

Il faut 2 à 4 semaines pour observer l’augmentation d’anticorps (faire un dosage 

séparé des IgM et IgG). La confirmation peut ne survenir que par comparaison 

entre sérum de la phase aiguë et de convalescence. 

A partir de sang ou d’une biopsie de peau, on peut obtenir une culture positive 

sur un milieu particulier. C’est une culture longue et difficile. Chaque germe 

isolé doit être envoyé au laboratoire de référence pour typage. 

La PCR (Polymerase Chain Reaction) peut être utilisée. 

Cas probable Une image clinique avec une histoire de morsure par une tique. 

Cas confirmé Manifestation clinique confirmée par un examen de laboratoire. 

Réservoir Les rongeurs sont les hôtes primaires où se reproduit Ixodes ricinus, la tique la 

plus courante en Europe de l’ouest. Les oiseaux, les mammifères comme les 

cerfs, les animaux domestiques,... sont des hôtes secondaires. L’homme est un 

hôte accidentel. 

M 01 - 1

Transmission Toutes les personnes infectées ne développeront pas la maladie. Le risque de 

maladie après morsure de tique est estimé à moins de 1% en Europe de l’Ouest. 

(10% des tiques sont infectées en Europe). Il faut que la tique soit restée 

accrochée pendant au moins 12 heures, pour qu’il y ait un risque d’attraper la 

maladie de lyme. 

Saison D’avril à octobre. 


Incidence Sur base des cas diagnostiqués de 1994 à 2002 par les laboratoires de référence, 

on constate que des cas ont été diagnostiqués dans tous les arrondissements du 

pays; citons en particulier les arrondissements de Leuven, Turnhout, 

Antwerpen, Hasselt, Namur ainsi que Bruxelles. En 2001, 997 cas ont été 

diagnostiqués par les laboratoires vigies. 

Facteurs de risque Toute personne en contact direct avec la nature de par sa profession (garde 

forestier, agriculteur,...) ou ses loisirs (campeurs, chasseurs,...). 

Contagiosité Pas de transmission de personne à personne. La transmission congénitale a été 

décrite. 

Immunité Des réinfections sont possibles surtout si le traitement a été précoce. 

Traitement Adultes: tétracyclines ou doxycycline. Enfants < 8 ans: amoxycilline ou 

phénoxyméthyl pénicilline. L’exacerbation des symptômes au début du 

traitement est possible. 



Santé publique Via les Services des Eaux et Forêts régionaux, il faudrait déterminer la zone 

infectée et en informer le public. 


du patient Eliminer toutes les tiques avec précaution (après avoir mis un peu d’huile, 

d’alcool ou d’éther sur la tique, exercer de petites tractions sans l’écraser afin 

de ne pas laisser une partie de celle-ci sous la peau). Désinfecter. Utiliser des 

gants. Pas de traitement prophylactique après une morsure, la surveillance 

clinique est suffisante et le traitement sera initié en cas d’apparition d’un 

érythème migrant ou d’un syndrome de type grippal. 

des proches Surveillance des proches ayant été soumis au même risque. 



Isolement à 


Juillet 2003 

Une chambre privée n’est pas nécessaire. L’utilisation de gants, de tablier ou de 

masque n’est pas requise. Pas de soins particuliers pour le matériel. 

M 01 - 2


générales 

Juillet 2003 

Porter des vêtements couvrant la plus grande partie de la peau : manches 

longues, pantalons, chaussettes, bottes. Enduire les parties de la peau non 

couvertes par un produit répulsif contre les insectes ne procure pas une 

protection absolue : ce produit s’évapore de la peau rapidement et les tiques 

peuvent rechercher des parties de la peau non enduites. En forêt, rester sur les 

sentiers et éviter de se frotter contre les herbes et les plantes sur lesquelles les 

tiques sont en attente du passage d’un hôte. Contrôler la peau après toute 

exposition possible pour détecter rapidement les tiques attachées. Informer les 

personnes à risque (chefs scouts). L’élimination systématique des tiques n’est 

pas envisageable à grande échelle. 

Vaccination Inexistante pour l’instant en Belgique. 

Protection passive Protection vestimentaire pour les personnes à risque. 

Remarques Trois raisons pour rester serein : toutes les tiques ne sont pas infestées (10% 

seulement le sont); toute morsure ne provoque pas la maladie; toutes les 

personnes exposées ne sont pas mordues. 

Matériel labo. Tubes secs et pots stériles pour biopsie. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Sérum. Sang et biopsie de peau pour mise en culture en milieu BSK II 

(Barbour, Stoenner, Kelly). - 24 heures dans le frigo. 

Milieu de BSK II. Tube sec. - Température ambiante. 

Ressource scient. Prof. M. Van Ranst, K.U.L. Tél. : 016/34 79 08 

email: marc.vanranst@uz.kuleuven.ac.be 

Dr V. Luyasu Clinique Saint Pierre 010/43 74 63 

email: victor.luyasu@skynet.be 

Prof. Delmée UCL 02/764 54 90 

email: delmee@mblg.ucl.ac.be 


référence 

Prof. M. Van Ranst, K.U.L. Tél. : 016/34 79 08 

email : marc.vanranst@uz.kuleuven.ac.be 

Dr V. Luyasu Clinique Saint Pierre 010/43 74 63 

email : victor.luyasu@skynet.be 

Prof. Delmée UCL 02/764 54 90 

email : delmee@mblg.ucl.ac.be 

M 01 - 3

Juillet 2003 

Méningite à méningocoques 

Neisseria meningitidis Les méningocoques ou N. meningitidis sont subdivisés en 12 sérogroupes. La 

plupart des infections invasives sont causées par des méningocoques 

appartenant aux sérogroupes A, B, C, Y et W135. Les épidémies sont 

principalement provoquées par les sérogroupes A, B et C. En Belgique, les 

méningocoques se répartissent essentiellement en 2 sérogroupes, le sérogroupe 

B et le sérogroupe C. Ensemble, ces sérogroupes totalisent plus de 90% des cas. 


Diagnostic 

clinique 

La forme invasive se manifeste le plus souvent par une méningite ou par une 

septicémie (y penser en cas de fièvre accompagnée d’un rash pétéchial et d’une 

leucocytose) ou encore par l’association des deux. L’association d’un état de 

choc, de purpura et d’éléments nécrotiques (purpura fulminans) évoque la 

forme fulminante, à évolution rapidement fatale (taux de létalité autour de 

50%). D’autres manifestations possibles mais rares sont les arthrites, 

myocardites, péricardites, pneumonies, etc. 

Labo. Les échantillons doivent être prélevés avant le début du traitement. Les 

examens offrant le maximum de chance d’isoler et d’identifier la bactérie 

doivent être effectués : examen direct du LCR (recherche de diplocoques Gram 

négatif), cytologie et culture du LCR, hémoculture, recherche d’antigènes 

solubles dans le LCR, le sang et les urines, mise en évidence de l’ADN 

bactérien par la PCR (Polymerase Chain Reaction) etc. Chaque germe isolé doit 

être envoyé au laboratoire de référence pour typage. 

Cas probable Tableau clinique compatible avec une maladie invasive à méningocoques sans 

confirmation en laboratoire ou avec mise en évidence de N. meningitidis à partir 

d’un site non stérile ou avec des niveaux élevés d’anticorps antiméningococciques 

dans le sérum de convalescent. 

Cas confirmé Cas compatible avec la description clinique et confirmé en laboratoire: 

isolement de N. meningitidis (par culture) ou détection d’acide nucléique (PCR 

- Polymerase Chain Reaction) de N. meningitidis à partir d’un site normalement 

stérile (sang ou LCR principalement). La définition européenne de cas inclut 

aussi la détection de l’antigène et la mise en évidence par microscopie de 

diplocoques Gram négatifs à partir d’un site normalement stérile. 

Réservoir Strictement humain : le méningocoque colonise la paroi postérieure du 

rhinopharynx. Les porteurs asymptomatiques représentent 5 à 10% de la 

population générale et 20 à 30% des enfants scolarisés. 

M 02 - 1

Transmission La transmission du méningocoque a lieu de personne à personne, par contact 

direct ou par aérosolisation des sécrétions nasales ou oro-pharyngées émises par 

une personne contaminée (malade mais aussi les porteurs sains). La 

transmission peut donc se faire en parlant, en toussant, en éternuant, en 

échangeant des baisers ou des objets récemment portés à la bouche. 

La propagation de la méningite est surtout observée entre le malade et les 

proches partageant le domicile du malade (famille, cohabitants, compagnons de 

chambrée) ou toute personne avec laquelle il a eu des contacts fréquents et 

étroits dans les 10 jours précédant son hospitalisation (camarades habituels de 

jeux, de classe, d’étude, flirts, collègues les plus proches). 

Saison Haute incidence en hiver et au printemps. 

Age La méningite affecte surtout les jeunes enfants, (40 % des cas dans la tranche 

d’âge de 0 à 4 ans) et les jeunes gens (18% des cas dans la tranche d’âge de 15 

à 19 ans). 

Incidence Ces dernières années, en Belgique, l’incidence a progressivement augmenté : 

elle est passée de 1 cas par 100.000 habitants en 1991 à 3,7 cas par 100.000 

habitants en 2001. En 2002, l’incidence est de 2,5 cas par 100.000 habitants, 

tous sérogroupes confondus. 

Facteurs de risque Age et promiscuité : enfants/jeunes adultes en communautés fermées (crèche, 

école gardienne, institutions spécialisées, casernes, pensionnats) 

Infections respiratoires concomitantes, pathologies débilitantes chroniques. 

Contagiosité Aussi longtemps que le méningocoque est présent dans les sécrétions. 

Immunité Immunité spécifique à un sérogroupe, pour une durée inconnue. Se développe 

avec l’âge (90% des individus sont immunisés à partir de 25 ans). 

Traitement Pénicilline et céphalosporines de la 3 ème génération (ex.: Ceftriaxone) selon le 

résultat de l’antibiogramme. Ne pas attendre celui-ci pour initier le traitement. 


Autorité à alerter Médecin responsable de l’inspection d’hygiène et service de Promotion de la 


Santé publique On parle d’épidémie en cas de doublement ou triplement du nombre des cas par 

rapport à une période similaire des années précédentes ou un doublement des 

cas d’une semaine à l’autre pendant 3 semaines consécutives (OMS). 

Mais si un deuxième cas apparaît endéans un mois dans une communauté, il 

faut considérer toute la collectivité comme étant à haut risque et certaines 

mesures de contrôle s’imposent : informer l’entourage, rechercher d’autres cas, 

instaurer un traitement préventif. 

Juillet 2003 

M 02 - 2


du patient Isolement et désinfection des objets contaminés par les sécrétions nasales et 

pharyngées du patient. La sortie de l’hôpital ne devrait être autorisée qu’après 

élimination du portage par un traitement antibiotique prophylactique. La 

pénicilline, utilisée dans un but curatif, ne supprime pas le portage rhinopharyngé. 

Arrêt de travail jusqu’à guérison complète. 

des proches Chimioprophylaxie et surveillance de la famille proche vivant sous le même 

toit, surtout la première semaine suivant le début de la maladie. 

de l’entourage Information, chimioprophylaxie aux collectivités à haut risque parmi lesquelles 

un cas est survenu (crèches, écoles maternelles, internats..) et aux personnes 

ayant eu un contact fréquent et rapproché avec le malade pendant les 10 jours 

précédant son hospitalisation. 

Eviction de l’école Eviction du malade jusqu’à la guérison. 

Isolement à 



générales 

Juillet 2003 

Arrêt de l’isolement respiratoire 24 heures après le début du traitement. 

Chambre privée conseillée. Port de gants pour manipuler les objets infectés, de 

tablier en cas de risque de contamination, de masque pour les personnes en 

contact direct avec le malade. Désinfecter le matériel contaminé par les 

sécrétions respiratoires pendant les 24 heures qui suivent le début du traitement. 

Il n’existe pas de vaccin contre le sérogroupe B qui représente généralement 

plus de 60% des cas. Par contre, il existe des vaccins conjugués contre le 

sérogroupe C. Eviter le surpeuplement dans les institutions. 

Vaccination La vaccination par le vaccin anti-méningocoque C conjugué est recommandée 

aux enfants âgés de plus d’un an et aux adolescents jusqu’à 19 ans pour lesquels 

une seule dose de vaccin suffit ; en dessous de 1 an, trois doses sont nécessaires 

(recommandations du Conseil Supérieur d’Hygiène, mars 2001. Ce programme 

est en cours au sein de la Communauté française). Le Mencevax, un vaccin 

polysaccharidique tétravalent (A, C, Y, W135) est surtout recommandé en cas 

de voyage en zone épidémique (ex : obligatoire pour le pélérinage à la 

Mecque). 

Protection passive Chimioprophylaxie : l’antibiotique de choix est la rifampicine. Le dosage est 

respectivement de 

- pour l’adulte : 600 mg, 2 fois par jour pendant 2 jours 

- pour l’enfant de 1 mois à 12 ans : 10 mg/kg, 2 fois par jour pendant 2 jours 

- pour l’enfant de moins de 1 mois : 5 mg/kg, 2 fois par jour pendant 2 jours. 

Pour l’adulte, on peut aussi donner une dose unique de 400 mg d’ofloxacine ou 

de 500 mg de ciprofloxacine. En cas de contre-indication (p. ex. grossesse) à la 

rifampicine ou aux fluoroquinolones, le choix se portera sur la spiramycine 

(pendant 5 jours) ou une dose unique de Ceftriaxone I.M.. L’antibiothérapie de 

prévention doit être instaurée rapidement et ne doit pas être étendue au-delà des 

contacts privilégiés (voir transmission). En ce qui concerne le personnel 

hospitalier, elle ne s’adressera qu’aux personnes ayant pratiqué des manœuvres 

de réanimation impliquant un contact étroit avec les sécrétions oropharyngées 

du malade (bouche-à-bouche, intubation trachéale). 

M 02 - 3

Remarques Aux facteurs de risque déjà évoqués, il faut ajouter la haute densité de 

population. 

Matériel labo. Tubes stériles pour LCR et tubes pour hémoculture. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Juillet 2003 

LCR et sang. Les sécrétions ne sont pas utiles. 

Au mieux, envoi immédiat vers le laboratoire où il devra être examiné et mis en 

culture le plus rapidement possible. 

Un milieu particulier est requis (milieu de Vandekerkove qui est une adaptation 

du milieu à l’oeuf de Dorset) et peut être obtenu auprès du laboratoire de 

référence. - Température ambiante. 

Remarques Labo. Les milieux de transport se conservent facilement 6 mois au réfrigérateur (2 à 

8°C). Pour l’envoi d’une souche, ensemencer largement la surface du milieu de 

transport et incuber une nuit à 37°C ; la souche ainsi transportée restera vivante 

au moins une semaine. 

Ressource scient. Mme F. Carion, ISP Tél. : 02/642 50 89 

email : f.carion@iph.fgov.be 

Dr J. Levy, Hôpital Universitaire Saint-Pierre 

email : jack_levy@stpierre-bru.be 


référence 

Mme F. Carion, I.S.P. Tél. : 02/642 50 89 

email : f.carion@iph.fgov.be 

M 02 - 4

Juillet 2003 

Méningite aseptique (ou virale) 

Large variété de virus. Paramixovirus (20%), Entérovirus (le plus fréquent). 

Incubation De 2 à 21 jours, selon l’organisme étiologique. 

Diagnostic 

clinique 

Survenue brutale de céphalées, de fièvre élevée, de signes d’irritation 

méningée, de photophobie. Les altérations de la conscience sont rares. Selon le 

type de virus, il peut y avoir une symptomatologie respiratoire, gastrointestinale 

ou cutanée (rash rubéliforme ou pétéchial) ou des parésies 

transitoires. Des séquelles (insomnie, spasmes musculaires,...) peuvent persister 

pendant plusieurs mois mais elles se résolvent habituellement. 

Labo. Ponction lombaire: 50 à 500 leucocytes (lymphocytes), 40 mg/dl glucose, max. 

200 mg/dl protéines. La culture est négative pour les bactéries, les 

mycobactéries et les champignons. La culture virale ou le PCR (Polymerase 

Chain Reaction) (enterovirus par ex.) peuvent être positifs. 


Cas confirmé Une image clinique compatible, confirmée par la composition du LCR et par 

une culture négative pour des agents bactériens ou fongiques. 


Transmission Elle dépend du germe incriminé. 

Saison Fin de l’été, début de l’automne (enterovirus, arbovirus). - Fin de l’hiver, début 

du printemps pour les paramyxovirus. 

Age Enfants et jeunes adultes. 

Incidence +/- 2,3/100.000 habitants. 

Facteurs de risque Communautés fermées. 

Contagiosité Elle dépend de l’agent étiologique. Transmission féco-orale pour les 

entérovirus. 

Immunité Elle dépend de l’agent étiologique. 




M 03 - 1

Santé publique Il ne s’agit d’un problème de santé publique qu’en cas d’épisode épidémique 

(plus d’un cas dans une communauté fermée). 


du patient Isolement pendant la période fébrile. Précautions entériques pendant les 7 jours 

qui suivent le début de la maladie sauf s’il est démontré qu’il s’agit d’une 

infection autre qu’à entérovirus. 


de l’entourage Selon le germe incriminé. 

Eviction de l’école Pendant les 7 jours qui suivent le début de la méningite. 

Isolement à 



générales 


Juillet 2003 

Maintenir l’isolement pendant les 7 jours qui suivent le début de la méningite, 

mais les mesures entériques peuvent être suspendues dès exclusion d’une 

infection par entérovirus. Chambre privée pour les patients manquant 

d’hygiène. Gants et tablier sont recommandés pour manipuler du matériel 

infecté. 

Précautions entériques, surtout dans les communautés fermées. 

Protection passive Immunoglobulines pour les patients immunodéprimés qui souffrent d’une 

infection à entérovirus. 

Remarques D’autres catégories d’agent peuvent imiter la méningite aseptique (méningite 

bactérienne insuffisamment traitée, réaction postvaccinale, leptospirose, 

listériose, hépatite virale, grippe, mononucléose...). 

Matériel labo. Tubes stériles pour échantillons de LCR et tube pour hémoculture. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


LCR, sang. 



Ressource scient. Dr J. Levy (Jack_Levy@stpierre-bru.be) et D. Van Beers, Hôpital Saint-Pierre. 

Tél.: 02/535 43 42 et 02/535 45 35 


référence 

Dr C. Liesnard, Hôpital Erasme. Tél : 02/555 42 62 

email : Cliesnar@ulb.ac.be 

Dr D. Pierard, A.Z.-V.U.B. Tél : 02/477 50 00 

email : Labomicro@az.vub.ac.be 

Prof. M. Van Ranst, U.Z. Tél : 016/34.79.31 

email : Marc.vanranst@uz.kuleuven.ac.be. 

M 03 - 2

Paramyxovirus 

Juillet 2003 

Oreillons 

Incubation De 2 à 3 semaines, en moyenne 18 jours. 

Diagnostic 

clinique 

Douleurs unilatérales dans la région auriculaire et sensibilité de la parotide qui 

gonfle pendant 2 à 3 jours. Atteinte de l’autre côté après quelques jours. 

Hypersalivation 1 à 10%. La méningite aseptique est fréquente (0,4 à 1%), 

l’encéphalite 5/1000. 

Epidydimo-orchite dans 20 à 30% des oreillons postpubertaires, oophorite dans 

5% des oreillons chez la fille pubère. Autres: pancréatite, surdité unilatérale, 

péricardite, thyroïdite... Peut être une cause d’avortement spontané si une 

infection survient au cours du premier trimestre de grossesse, mais pas de risque 

de malformation congénitale. 

Labo. Isolement du virus par culture, à partir de salive, sang, urine ou LCR. Présence 

d’IgM ou augmentation significative des anticorps IgG par ELISA (Enzyme 

Linked Immuno Sorban Assay). 

Cas probable L’image clinique compatible est suffisante. Elle ne doit pas être reliée à un 

autre cas probable ou confirmé. 

Cas confirmé Un cas qui a été confirmé par un examen de laboratoire ou image clinique 

suggestive qui doit être reliée à un cas probable ou confirmé. 


Transmission Par des gouttelettes de salive et par contact direct avec la salive d’une personne 

infectée. 

Saison Surtout entre janvier et mai. 

Age Enfants en âge scolaire (surtout entre 1 et 9 ans) et à la puberté. 

Incidence Diminution depuis l’introduction du vaccin. 

Dernières données disponibles pour la Belgique : 44 cas / 100 000 habitants en 

1998. (Source : réseau de médecins généralistes vigies). 

Facteurs de risque Toute personne incomplètement immunisée. 

Contagiosité La salive peut contenir le virus durant 6 à 7 jours avant la parotidite et encore 9 

jours après. La période de contagiosité maximale est de 48 heures avant le 

début de la maladie jusqu’à 4 jours après. 

Immunité Définitive. 


O 01 - 1


Autorité à alerter Médecin responsable de l'inspection d'hygiène, service de la Promotion de la 


Santé publique Si plus d’un cas, rechercher activement les contacts et les cas suspects au sein 

de la communauté concernée. Surveillance de l’apparition d’autres cas. 

Mesures visà-vis 

du patient Isolement du patient pendant la période de gonflement de la glande. 

Surveillance de l’apparition de complications. 

des proches Vacciner les personnes (de plus de 12 mois) non immunisées. 

de l’entourage Vacciner tout garçon de plus de 12 ans et le personnel médical masculin non 

immunisés. Les personnes à risque doivent éviter tout contact. 

Eviction de l’école Eviction de l’école durant les 9 jours qui suivent le début du gonflement. 

Isolement à 



générales 

Juillet 2003 

Isolement respiratoire pour 9 jours après le début du gonflement. 

Une chambre privée est requise. Gants et tablier ne sont pas nécessaires. Pas de 

soins particuliers à consacrer pour le matériel. 

Proposer la vaccination systématique à 12 mois (RRO), rappel à 10 ans. 

Protection passive Non, les immunoglobulines ne sont pas curatives mais elles peuvent diminuer le 

risque de complications. 

Remarques La méningite aseptique est fréquente mais elle laisse rarement des séquelles. 

Encéphalite: 5/1000. Mortalité spécifique:1,4%. La stérilité post-infectieuse est 

très rare. 

Matériel labo. Pot stérile pour la salive. Tube sec pour sérum. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Salive, sérum. 





référence 

O 01 - 2

Pediculus capitis, 

Pediculus corporis, 

Phtirus pubis. 

Incubation Une semaine. 

Diagnostic 

clinique 

Juillet 2003 

Pédiculose 

Les cheveux et/ou les poils pubiens sont infestés par les poux et les lentes. Ceci 

provoque d’importantes démangeaisons et les lésions de grattage qui en 

résultent peuvent se surinfecter. 

Labo. Il n’existe pas d’examens diagnostiques. 

Cas probable Une personne qui présente des démangeaisons et qui peut être reliée par 

l’épidémiologie à un cas confirmé. 

Cas confirmé Présence de poux et de lentes, à observer notamment à la loupe. 


Transmission Par contact direct avec une personne infestée ou par contact indirect avec de la 

lingerie, les vêtements en contact avec les cheveux (bonnet, écharpe,) ou les 

objets fraîchement souillés (peigne, brosse,). 


Age Age scolaire. 

Incidence Elevée, particulièrement dans les écoles et dans les collectivités. 

Endémique en Afrique, Asie et Moyen-Orient. 

Facteurs de risque Le manque d’hygiène et la promiscuité. 

Contagiosité Jusqu’à disparition des poux et des lentes. 

Immunité Pas d’immunité. 

Traitement Shampooing antiparasitaire, peigner les cheveux plusieurs fois par jour, refaire 

le shampooing après une semaine et peigner les cheveux jusqu’à disparition des 

lentes. Manier avec prudence les shampooings antiparasitaires qui sont irritants 

et toxiques surtout chez les jeunes enfants. Le peigne doit posséder des dents 

très rapprochées et idéalement les dents doivent être introduites dans une gaze 

pharmaceutique imbibée de vinaigre, ce qui ramollit la lente et facilite son 

élimination. Ce peignage est fondamental car le shampooing ne détruit pas les 

lentes. 

P 01 - 1


Autorité à alerter Le service de Promotion de la Santé à l'école. 

Santé publique Informer les écoles et le service de Promotion de la santé à l'école qui devra 

organiser un dépistage systématique. 


du patient Eviction du travail ou de l’école pour les 24 heures qui suivent le traitement. En 

initiant le traitement, désinfecter la literie et les vêtements avec de l’eau chaude 

et du savon de lessive ordinaire. Vérifier l’absence de lentes avant le retour au 

travail ou à l’école. 

des proches Traiter systématiquement tous les membres de la famille et la lingerie. 

de l’entourage Conseiller les intéressés. 

Eviction de l’école Les enfants infestés réintègrent l’école après disparition des poux et des lentes. 

Isolement à 



générales 



Remarques 

Matériel labo. Rien de particulier. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 




référence 

Juillet 2003 

Mesures d’isolement pendant les 24 heures qui suivent le traitement. Une 

chambre privée est recommandée pour les patients manquant d’hygiène. Le port 

de gants, de tablier ou de masque n’est pas nécessaire. La lingerie doit être 

lavée dans une eau savonneuse très chaude, surtout les vêtements et les draps de 

lit. 

Respect des règles d’hygiène élémentaires. 



P 01 - 2

Streptococcus 

pneumoniae 

Juillet 2003 

Pneumonie à pneumocoques 

Plus de 80 sérotypes. 

Incubation Pas connue avec précision, sans doute 1 à 3 jours. 

Diagnostic 

clinique 

Infection aiguë à début brutal dont les symptômes sont fièvre, frissons, douleur 

pleurale, dyspnée, toux et expectorations rougeâtres. 

Chez les personnes âgées, la symptomatologie peut être extrêmement discrète et 

la pneumonie ne sera diagnostiquée que par l’intermédiaire de RX. 

Chez les enfants, les premières manifestations peuvent être des vomissements et 

convulsions. 

Le taux de mortalité est de 5 à 10% chez les patients hospitalisés mais s’élève 

jusqu’à 20 à 40% s’il existe une pathologie sous-jacente. 

Labo. Diagnostic suspecté par la mise en évidence de nombreux diplocoques gram 

positifs et de polymorphonucléaires par coloration de Gram. 

Isolement du pneumocoque par mise en culture des crachats ou des sécrétions 

obtenues par aspiration endotrachéale ou par hémoculture. Chaque germe isolé 

de sites normalement stériles doit être envoyé au Laboratoire de Référence pour 

typage. 

Cas probable Une image clinique suggestive sans confirmation en laboratoire ou avec 

identification du pneumocoque à partir d’un site non stérile. 

Cas confirmé Une image clinique compatible avec la description clinique précitée et qui est 

confirmée par une culture positive. 

Réservoir Humain, voies respiratoires principales des porteurs sains. 

Transmission Par aérosol de gouttelettes de salive, par contact direct avec des sécrétions 

respiratoires infectées ou par l’intermédiaire d’objets contaminés. 

Saison Incidence plus haute en hiver et au printemps. Augmentation de l’incidence lors 

des épidémies de grippe. 

Age Les enfants et les personnes âgées. Le groupe d’âge le plus touché est 

représenté par les personnes de plus de 60 ans. 

Incidence 1202 cas d’infection invasives à pneumocoques (bactériémie, pleurite, 

méningites) ont été diagnostiqués par le Laboratoire de Référence en 2001 en 

Belgique. 

P 02 - 1

Facteurs de risque Les personnes à risque sont: les personnes âgées, les enfants, les personnes 

souffrant d’une pathologie chronique (diabète, insuffisance respiratoire, rénale 

ou cardiaque, cirrhose, HIV, asplénie...). 

Contagiosité Aussi longtemps que les pneumocoques sont présents dans les sécrétions. 

Obtention d’un résultat négatif après 24 à 48 heures de traitement. 

Immunité Immunité définitive, spécifique à chaque sérotype. 

Traitement Les pénicillines, les cephalosporines, les macrolides, les glycopeptides. 

Déclaration Non, sauf en cas de méningite ou septicémie. 

Autorité à alerter Le médecin responsable de l'inspection d'hygiène et le service de Promotion de 

la Santé à l'école. 

Santé publique Si plus d’un cas se présentent dans une communauté fermée, on parle d’épisode 

épidémique. 

Proposer la vaccination à toute personne appartenant au groupe à risque. 


du patient Il est impossible d’isoler les personnes atteintes par un germe résistant car 15% 

des pneumocoques présentaient une résistance à la pénicilline et 36% aux 

macrolides en 2001. 

des proches Identifier les personnes à risque parmi les proches et leur proposer la 

vaccination. 

de l’entourage Conseiller la vaccination à toute personne à risque. 


Isolement à 



générales 

Juillet 2003 

La chambre privée n’est pas nécessaire. Les gants et tablier sont requis pour 

manipuler le matériel infecté. 

Port du masque en cas de contact étroit avec une personne infectée surtout pour 

les personnes à risque. Désinfecter le matériel contaminé pendant les 24 

premières heures qui suivent le traitement. 

Vaccination des personnes à risque. 

P 02 - 2

Vaccination Des vaccins polysaccharidiques contenant 23 valences sont disponibles depuis 

plusieurs années mais ils ne sont pas immunogènes chez les enfants de moins de 

2 ans. Le Conseil Supérieur d’Hygiène recommande la vaccination des groupes 

à risque suivants: les adultes de plus de 60 ans, en tout cas ceux qui séjournent 

dans un home ou en institution pour malades chroniques, les adultes à partir de 

45 ans présentant un risque accru d’infection pneumococcique grave (par 

exemple maladies cardio-vasculaires et bronchopulmonaires chroniques, 

alcoolisme, cirrhose, diabète), les patients splénectomisés et les patients 

immunodéprimés, à partir de 2 ans. La revaccination peut être effectuée au plus 

tôt après 3 ans (en raison du risque de réactions locales importantes et 

prolongées) et il est préférable de ne pas attendre plus de 5 ans. 

Aujourd’hui, le développement et l’enregistrement de vaccins conjugués permet 

d’envisager, dans un avenir proche, une protection à partir de l’âge de 2 mois. 


Remarques Normalement on ne vaccine qu’une fois mais pour les personnes à haut risque 

(asplénie, insuffisance rénale, greffe...), rappel vaccin tous les 5 ans. 

Matériel labo. Pots stériles pour expectorations et flacons pour hémoculture. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Juillet 2003 

Expectorations et/ou sang. 


Tellurite en tube. - Température ambiante. 

Ressource scient. Prof. J. Verhaegen, K.U.L. Tél. : 016/34 70 73. 

email: Jan.verhaegen@uz.kuleuven.ac.be. 

Prof. M. Struelens, U.L.B. Tél. : 02/555 45 19. 

email : Marc.struelens@ulb.ac.be. 


référence 

Prof. J. Verhaegen, K.U.L. Tél. : 016/34 70 73. 

E-mail: Jan.verhaegen@uz.kuleuven.ac.be. 

P 02 - 3

Poliovirus type 1, 2 en 

3. 

Juillet 2003 

Poliomyélite 

95% sont des formes asymptomatiques. 

Incubation De 3 à 35 jours, habituellement 7 à 14 jours. 

Diagnostic 

clinique 

Une infection virale banale qui peut dégénérer en une paralysie flasque 

d’évolution rapide, sans déficit sensoriel. La maladie touche plus fréquemment 

et de manière asymétrique les membres inférieurs et les muscles proximaux. La 

station verticale et la marche sont impossibles. Les myalgies sont 

insupportables. Les réflexes tendineux sont diminués ou absents. 

Labo. Le virus peut être isolé des selles pendant 72 heures à 6 mois après le début de 

l’infection. Les anticorps augmentent significativement assez précocement (3 

examens: le 1 er au début, le 2 ième après 3 semaines et le 3 ième après 6 semaines). 

Le virus se trouve encore dans la gorge 2 semaines après le début de l’infection. 

Isolement à partir de LCR. Chaque germe isolé doit être envoyé au laboratoire 

de référence pour typage. 

Cas probable Une image clinique compatible (paralysie flasque en 48 heures) et aucune autre 

cause diagnostiquée. 

Cas confirmé Une image clinique compatible - avec un déficit neurologique qui dure plus de 

60 jours après le début des symptômes, -ou si le patient est décédé, -ou si le 

statut est inconnu, -ou en cas de recherche positive d’anticorps. 

Réservoir L’homme est l’unique réservoir mais les eaux de surface peuvent être 

contaminées par des selles humaines. 

Transmission Voie féco-orale. Le premier lieu de multiplication du virus se situant dans les 

ganglions lymphatiques de la gorge, la transmission pharyngée est possible en 

situation épidémique. Le lait ou toute autre denrée contaminée peut rarement 

servir de vecteur. 

Saison Automne et surtout été. 

Age A n’importe quel âge si pas d’immunisation mais surtout chez les enfants. 

Incidence L’initiative mondiale d’éradication de la polio a permis d’accomplir des progrès 

spectaculaires. Le nombre de cas a baissé d’environ 350 000 cas en 1988 à 480 

cas confirmés dans le monde en 2001. L’Europe a été déclarée indemne de 

poliomyélite en juin 2002. 

Facteurs de risque Les personnes non vaccinées c’est-à-dire nées avant 1960 (le vaccin oral existe 

depuis 1958 et est obligatoire depuis 1967) ou également les voyages en zone 

endémique. 

P 03 - 1

Contagiosité Le virus survit deux semaines dans la gorge et > 3 à 6 semaines dans les selles. 

La contagiosité est la plus importante une semaine avant le début des 

symptômes et encore quelques jours après. 

Immunité Définitive et liée au sérotype. 



Autorité à alerter Médecin responsable de l'inspection d 'hygiène. Déclaration internationale 

immédiate. 

Santé publique Le médecin inspecteur doit rechercher activement l’existence d’autres cas après 

avoir confirmé comme probable ou certain le premier cas analysé. 


du patient Le cas doit être référé aux autorités médicales compétentes et une voie de 

transmission doit être recherchée. 

des proches Tous les contacts doivent être analysés. 

de l’entourage Voir le point relatif à la vaccination. 

Eviction de l’école Excepté pour les tout-petits, l’isolement n’a pas de sens. Précautions entériques. 

Isolement à 


Juillet 2003 

Isolement minimum 7 jours après le début de la maladie. Une chambre privée 

est souhaitable pour les patients manquant d’hygiène. Le port de gants et tablier 

est requis pour manipuler le matériel infecté. Pas d’obligation de porter le 

masque. Désinfecter le matériel contaminé par les selles ou les sécrétions 

pharyngées pendant minimum une semaine après le début de la 

symptomatologie. 

Vaccination La vaccination des nourrissons est une obligation sur tout le territoire belge. 

Depuis le 1 er janvier 2001, l’obligation porte également sur l’usage du vaccin 

tué injectable (I.P.V.). 

La vaccination doit être effectuée avant l’âge de 18 mois, sauf contre-indication 

médicale; le médecin vaccinateur doit compléter une attestation reprenant les 

dates de vaccination contre la poliomyélite. Cette attestation, remise par les 

parents au médecin, doit être retournée par les parents à l’administration 

communale de leur domicile. 

Il est conseillé d’utiliser un vaccin combiné DTP-IPV (Inactivate Polio 

Vaccine) (diphtérie-tétanos-coqueluche-poliomyélite). Ce vaccin combiné peut 

être administré à tous les nourrissons aux âges de 2 mois, 3 mois, 4 mois et 13- 

14 mois (4 doses). Il est mis gratuitement à la disposition des vaccinateurs via 

les Communautés. 

Le vaccin monovalent IPV (Inactivate Polio Vaccine) sera également disponible 

(pour les cas éventuels où un vaccin combiné ne serait pas souhaité). Il pourra 

être administré aux âges de 2, 4 et 13-14 mois, en veillant à respecter un 

intervalle de 8 semaines entre la 1 ère et la 2 ème dose. 

P 03 - 2


Prévention La vaccination est la meilleure des préventions. 

Remarques 

Matériel labo. Pot stérile pour coproculture et sécrétions pharyngées, tube sec pour sérum, 

tube stérile pour LCR. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Juillet 2003 

Echantillon de 4 à 8 g de selles, de sérum, de sécrétions pharyngées et LCR. 

Les échantillons de selIes doivent être refroidis immédiatement et s’ils peuvent 

être conservés quelques jours, il est préférable de les envoyer au plus vite. Les 

autres échantillons ne peuvent être conservés. 

Pas de milieu particulier. - Envoi immédiat en milieu glacé. 

Ressource scient. Dr P. Goubau, UCL. Tél : 02/764 34 20. 

email : goubau@mblg.ucl.ac.be. 


référence 

Prof. M. Van Ranst, KUL. Tél : 016/34 79 08. 

email : Marc.VanRanst@uz.kuleuven.ac.be. 

P 03 - 3

Chlamydia psittaci. 

Juillet 2003 

Psittacose-ornithose 

Incubation De 4 à 15 jours, habituellement 10 jours. 

Diagnostic 

clinique 

Infection caractérisée par de la fièvre, des céphalées, des myalgies, des frissons 

et des symptômes respiratoires. Les symptômes respiratoires ne sont pas 

proportionnels à la gravité de l’image radiologique. Au début, la toux est 

absente ou sèche. 

Labo. Augmentation significative des anticorps spécifiques ou isolement du germe à 

partir des expectorations ou du sang (difficile surtout si une antibiothérapie a 

déjà commencé). 

Cas probable Une image clinique compatible qui peut être reliée par l’épidémiologie à un cas 

analysé. 

Cas confirmé Une image clinique compatible confirmée par le laboratoire. 

Réservoir Les oiseaux (pigeons, perroquets,...). 

Transmission Par inhalation de poussières provenant de fientes d’oiseaux contaminés. La 

transmission de personne à personne est rare. 



Incidence Inconnue. 

Facteurs de risque Contacts réguliers avec des oiseaux contaminés. 

Contagiosité Les oiseaux peuvent être contagieux pendant des mois. Les rares cas de 

transmission humaine se font pendant la phase aiguë de la maladie. 

Immunité Elle est incomplète et transitoire. 

Traitement Doxycycline ou érythromycine. 


Autorité à alerter Le médecin responsable de l'inspection d'hygiène. 

Santé publique Surveillance des commerces d’oiseaux et des élevages de volailles où se 

présentent la majorité des cas. Traiter ou tuer les oiseaux contaminés. 

Désinfecter les locaux. La source d’infection doit être mise en évidence. 


P 04 - 1

du patient Elimination des mouchoirs contaminés par les sécrétions nasales. 

des proches Rechercher d’éventuels contacts contaminants avec les oiseaux. 

de l’entourage Isolement de l’élevage jusqu’à désinfection des locaux et traitement des 

animaux. 


Isolement à 



générales 



Juillet 2003 

Une chambre privée n’est pas nécessaire sauf éventuellement pendant la phase 

aiguë. L’utilisation de gants, de tablier ou de masque ne s’impose pas. 

Désinfecter le matériel contaminé par les sécrétions respiratoires. 

Surveillance des commerces et élevages. 

Remarques Maladie sévère chez les personnes âgées. 

Matériel labo. Tube sec pour le sérum, tube pour hémoculture, récipients pour expectorations. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 

Miliue-Conditions 

Sérum, sang, expectorations. 



Ressource scient. Dr K. De Schrijver. Tél. : 03/224 62 04. 


référence 

P 04 - 2

Juillet 2003 

Rage 

Rhabdovirus Le rhabdovirus de type 1 est le plus souvent mis en cause. 

Incubation De 2 à 8 semaines avec des variantes pouvant aller de quelques jours à un an. 

Diagnostic 

clinique 

Myélo-encéphalopathie aiguë qui se manifeste par des troubles psychiques ou 

neuro-musculaires et qui progresse dans les 10 jours qui suivent le début de la 

symptomatologie vers le coma et la mort. 

Labo. Mise en évidence d’antigènes par immunofluorescence directe sur un 

prélèvement cérébral ou nerveux de l'animal ou sur un frottis de cornée du 

patient. 

Détection d’acide nucléique rabique dans un spécimen. 

Présence d’anticorps antirabique dans le sérum ou le LCR d’un patient non 

vacciné (>0,5 UI). 

Isolement du virus après mise en culture d’un échantillon de salive, de LCR ou 

de tissu cérébral. 

Cas possible Un cas compatible avec la description clinique sans confirmation par 

laboratoire. 



Réservoir Les animaux sauvages (renard, chauve-souris, chevreuil...) et domestiques 

(chien, chat, bétail...). 

Transmission Par la salive, d’un animal à un autre animal ou à l’homme, lors de morsure, de 

léchage. Quelques cas décrits après transplantation cornéenne. Transmission par 

voie aérienne excessivement rare. 



Incidence Maladie sporadique chez l’homme. 

Facteurs de risque Les personnes à risque sont les vétérinaires, le personnel d’un zoo, les gardes 

forestiers, le personnel de surveillance des animaux probablement contaminés, 

le personnel de laboratoire, voyages en régions endémiques, ... 

Contagiosité De 3 à 10 jours avant le début de la symptomatologie, et pendant la phase aiguë. 

Cette période peut être plus longue chez les animaux sauvages. 

Immunité La rage déclarée est souvent mortelle. Pendant la maladie, les anticorps 

apparaissent dans le sérum et le LCR. 

R 01 - 1

Traitement Traitement symptomatique de la rage déclarée 

Traitement spécifique par immunoglobulines et vaccination avant apparition 

des symptômes après contamination. 


Autorité à alerter Avertir l’inspecteur vétérinaire pour la rage animale et le médecin responsable 

de l'inspection d'hygiène pour la rage humaine. Une déclaration internationale à 

l'OMS est requise, tant au niveau humain qu'animal. 

Santé publique Déclarer immédiatement le cas et prévenir l’inspection d’hygiène. Pour la rage 

animale, prévenir les services vétérinaires. En collaboration avec le médecin 

inspecteur chargé de l’hygiène, il faut mener une enquête afin de localiser la 

source et identifier les contacts humains. 


du patient Traitement spécifique, isolement pendant la durée de la maladie et précautions 

vis-à-vis des sécrétions salivaires. 

des proches Vaccination. Eviter tout contact avec la salive infectée. 

de l’entourage Pas de mesure particulière. 

Eviction de l’école Pour la durée de la maladie. 

Isolement à 



générales 

Juillet 2003 

Le port des gants, tablier et masque s’impose. Désinfection du matériel 

contaminé par les sécrétions respiratoires et par la salive. 

Les animaux - Lors d'endémie : 

Vacciner systématiquement les animaux domestiques. Eliminer les animaux 

errants. Ne pas conserver les animaux sauvages comme animaux 

domestiques. Programme de surveillance de certaines populations animales, 

maîtrise de la source par ingestion d’appâts contenant le vaccin. 

Mise sous surveillance pendant 10 jours des animaux qui ont mordu un 

individu. S’il s’agit d’un animal errant ou si l’animal présente déjà des signes 

suspects, il doit être abattu afin de pouvoir rechercher l’existence de virus. 

Mise sous surveillance des animaux qui ont été mordus par un autre : 

- Si la probabilité que l’animal soit contaminé est importante, aucun risque ne 

sera pris et l’animal sera sacrifié. La décision sera prise par l’inspecteur 

vétérinaire. 

- Si l’animal est vacciné, le revacciner immédiatement et le placer sous 

surveillance pendant 3 mois. 

R 01 - 2


générales 

Juillet 2003 

Les hommes 

Immunisation prophylactique des personnes à haut risque par la vaccination: 

Le vaccin : HDCV (Human Diploid Cell rabies Vaccine). 

Le vaccin s’administre selon le schéma suivant: 3 doses d’1 ml en IM ou souscutané 

profond au niveau du deltoïde, aux jours 0, 7 et 28. Faire un rappel après 

un an et ensuite après 5 ans uniquement chez les personnes à risque et après 

vérification de leur immunité. 

Lors d’une IM, ne pas injecter le vaccin HDCV dans les muscles fessiers car il 

peut causer une nécrose du nerf sciatique et de plus, il y donne une réponse 

immunitaire insuffisante. 

Immunisation post-exposition à un risque : 

Traitement de la blessure 

Nettoyer immédiatement la plaie avec du savon et rincer abondamment à 

l’eau vive. Ne suturer la plaie qu’après disparition des corps étrangers et 

infiltration locale d’anti-sérum. Les points doivent être lâches et ne 

peuvent interférer avec la circulation sanguine et le drainage. 

Protection immunologique spécifique 

- Administration d’immunoglobulines antirabiques dans les cas graves. 

Elles sont d’origine humaine. La dose est de 20 Ul/kg, la plus grande partie 

s’administre au niveau de la blessure et le restant en IM. 

- Initier une vaccination - Il existe deux schémas possibles : 

4 à 5 doses. Il faut administrer aussi vite que possible la première dose de 

HDCV 1 ml en IM. Les doses suivantes se donnent au 3 ième , 7 ième , 14 ième et 

28 ième jour. 

4 doses. Il faut administrer les deux premières doses simultanément au 

jour 0. Les doses suivantes se donnent aux jours 7 et 21 (1 ml en IM). 

Si le patient a déjà été vacciné ou s'il est déjà porteur d'anticorps, deux 

doses suffisent et s'administrent au 1 er et 3 ème jours. 

Remarque : pour toute vaccination antirabique, il faut contacter l'Institut 

Pasteur (le vaccin n'est pas disponible en pharmacie). 

Le nombre de réactions post-vaccinales se monte à plus ou moins 6%. 

Celles-ci apparaissent, le plus souvent, dans les 48 heures qui suivent 

l’injection et peuvent être de type systémique (céphalées, vertiges, 

myalgies, nausées, douleurs abdominales...) ou local (érythème, 

démangeaisons, douleurs locales...). Ces réactions allergiques répondent 

bien aux antihistaminiques. 

- Entreprendre un traitement antirabique sur base des données suivantes : 

Si la peau ou les muqueuses ont été lésées et ont été en contact avec la 

salive d’un animal. Si il y a une modification de l’attitude de l’animal 

mis en observation. S’il existe des cas de rage dans la région. Selon 

les circonstances qui ont mené au contact. 

Après une morsure animale, penser à faire un rappel du tétanos et à 

prescrire une antibiothérapie. 

R 01 - 3

Juillet 2003 

Mesures spécifiques - En cas de contact entre un animal et un individu : 

S’il n’y a pas de plaie et en l’absence de contact entre la salive de l’animal 

et les muqueuses, il n’y a aucune mesure spécifique à prendre. Si une 

personne a déjà été vaccinée, il y a lieu de vérifier son taux d’anticorps en 

cours de traitement. Ne pas tuer l'animal qui a mordu et le mettre sous 

surveillance pendant 10 jours, même s’il s’agit d’un chien vacciné. 

Vaccination Il existe deux vaccinations, l’une s’administrant en prévention avant la 

contamination, l’autre en traitement après la contamination. 

Protection passive Immunoglobulines humaines. 

Remarques De manière générale est à risque toute personne en contact avec des animaux 

dans des zones endémiques. 

Matériel labo. Tube pour le sang et autres récipients stériles pour divers échantillons. 

Envelopper l’animal et le mettre dans un sac en plastique bien hermétique. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Pour l’homme, échantillon de sang, LCR, frottis de cornée, biopsie de peau, 

salive. Le corps des petits animaux ou la tête des animaux de taille plus 

importante. Echantillon de sang d’un animal vacciné pour contrôle du taux 

d’anticorps. 

Envoi immédiat. 

Pas de milieu particulier mais ne pas fixer le matériel. - Envoi immédiat à la 

température du frigo que ce soit pour les échantillons d’origine animale ou 

humaine, à l’exception du sang et du LCR. 

Ressource scient. Dr F. Costy, Institut Pasteur de Bruxelles. Tél. : 02/373 31 56. 


référence 

Service de garde (nuit et week-end) Institut Pasteur de Bruxelles, 

Tél. : 02/373 31 11 - Fax : 02 / 373 32 86. 

Adresse : rue Engeland, 642 - 1180 Bruxelles. 

email : Fcosty@pasteur.be. 

R 01 - 4

Virus de la rougeole. 

Juillet 2003 

Rougeole 

Incubation De 8 à 18 jours, le plus souvent 10 jours. 

Diagnostic 

clinique 

Infection courante qui apparaît sous forme d’exanthème et d’énanthème. 

Catarrhe oculonasal et taches de Koplik. Exanthème centrifuge qui débute au 

niveau du visage. Complications: encéphalite 0,2% (25% conservent des 

séquelles neurologiques et/ou mentales sévères, le taux de mortalité est de 

15%), convulsions 0,3%, otite moyenne et atteinte pulmonaire 20%. 

Labo. Détermination du taux d’anticorps spécifiques (IgG et IgM) de la maladie. PCR 

sur la salive ou sur le LCR. 

Cas probable Un cas est suspect lorsqu’une éruption s’accompagne de fièvre. Un cas est 

probable lorsqu’une image clinique est compatible mais non confirmée par un 

test sérologique, virologique ou par un lien épidémiologique. 

Cas confirmé Un cas est confirmé par un examen de laboratoire positif ou par une image 

clinique compatible qui peut être reliée à un cas probable. 


Transmission Par aérosolisation de sécrétions nasales et pharyngées au cours de la période 

contagieuse. 

Saison Fin de l’hiver et début du printemps. 

Age Les enfants de moins de 15 mois et ceux qui sont en âge scolaire lorsqu’ils 

n’ont pas été vaccinés. 

Incidence Aux USA où la vaccination est obligatoire : 0,6/100.000 habitants (dont 5% 

d’importation). En France où la vaccination est libre : 5 à 7/100.000 habitants. 

Facteurs de risque Groupe à risque: les immunodéprimés, les enfants de moins d’un an. 

Contagiosité Quatre jours avant et quatre jours après l’éruption. 

Immunité Définitive après la maladie, dans 95% des cas après vaccination. 



Autorité à alerter Le service de la Promotion de la Santé à l'école. 

R 02 - 1

Santé publique Vaccination systématique à 15 mois et 10 ans. S’il y a survenue d’un épisode 

épidémique ou en cas de départ pour zone endémique, la vaccination peut être 

faite dès l’âge de 6 mois. 


du patient Retirer de l’école jusqu’à 5 jours après le début de l’éruption. 

des proches Vérifier le statut vaccinal des enfants en contact avec le malade, surtout dans sa 

classe et vacciner les personnes non immunisées (le vaccin assure encore une 

protection même s’il est administré dans les 72 heures qui suivent l’exposition). 

de l’entourage Vacciner les enfants de plus de 6 à 9 mois (si pas encore immunisés) s’ils sont 

en contact avec une personne infectée. 

Eventuellement, prise d’immunoglobulines pour les jeunes enfants, les 

immunodéprimés. Après prise d’immunoglobulines, il faut attendre 3 mois 

avant d’administrer le vaccin. 

Eviction de l’école Jusqu’à guérison clinique. 

Isolement à 



générales 

Juillet 2003 

Règles d’isolement : de 4 jours après le début du prurit à la durée totale de la 

maladie chez les immunodéprimés. Le port de gants, tablier et masque s’impose 

pour les individus en contact direct avec le malade au cours des 4 jours qui 

suivent le début du rash. Il ne faut pas prévoir de soins particuliers pour le 

matériel. 

Proposer une vaccination systématique. 

Vaccination RRO : vaccination à 15 mois et rappel à 10 ans. Une encéphalopathie postvaccinale 

pour 330.000 doses distribuées. 

Protection passive Il est utile de donner des immunoglobulines à une personne du groupe sensible 

(0,5 ml/kg) ou à une personne non vaccinée (0,25 ml/kg) et ce dans les 6 jours 

qui suivent une exposition. 

Remarques 


Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Echantillon de sang pour la sérologie. 





référence 

Dr R. Vranckx, I.S.P. Tél : 02/642 51 63. 

email: R.vranckx@iph.fgov.be. 

R 02 - 2

Virus de la rubéole. 

Juillet 2003 

Rubéole 


Diagnostic 

clinique 

Adénopathies post-auriculaires, occipitales et cervicales postérieures sont 

caractéristiques et précèdent de 4 à 5 jours l’apparition brutale d’un rash 

maculo-papulaire. Celui-ci s’accompagne de fièvre >37,2°, d’arthralgies, de 

céphalées, de conjonctivite. Les femmes enceintes développent souvent une 

forme symptomatique. Le syndrome de rubéole congénitale conjugue cataracte 

bilatérale, surdité, atteinte cardiaque ou retard mental. Mais aussi, petit poids de 

naissance, glaucome, parésie spastique, splénomégalie, lésions du squelette et 

microcéphalie. Un avortement spontané ou la mort de l’enfant peut également 

survenir. Le risque d’atteinte diminue avec le temps, de 40 à 80% au cours des 

premiers mois, il passe à moins de 10% après le 4 ième mois de grossesse. Le 

risque est pratiquement nul après 20 semaines. 

Labo. Le diagnostic se confirme en cas d'exanthème par la présence d'anticorps IgM. 

Si une femme enceinte a eu un contact possible avec un cas, la présence 

d'anticorps (IgG) dans les 10 jours après contact signe une immunité ancienne. 

On testera les anticorps IgM chez les nouveaux-nés suspects : leur présence 

signe l'infection. 

Cas probable Suspect : toute éruption brutale. Probable: une image clinique compatible sans 

confirmation sérologique ou virologique et même si elle ne peut être reliée à un 

cas déjà investigué. 

Cas confirmé Une image clinique qui est confirmée par le laboratoire ou qui peut être reliée 

épidémiologiquement à un cas déjà investigué. 


Transmission Transmission de personne à personne par aérosolisation de sécrétions 

respiratoires pendant la période de contagiosité. Egalement par les objects 

contaminés si rubéole congénitale. Transmission transplacentaire. 

Saison Surtout en hiver et au printemps. 

Age Avant la vaccination, c’était surtout une maladie d’enfant (5-9 ans). A l’heure 

actuelle, elle est plus fréquente chez les adolescents et les jeunes adultes. 

Incidence Aux USA, depuis l’introduction de la vaccination, 8 cas par an de rubéole 

congénitale. 

R 03 - 1

Facteurs de risque Les personnes à risque sont les femmes enceintes. La promiscuité (école, 

crèche, casernes…) favorise la dissémination de la maladie. 

Contagiosité Quelques jours avant et 5 à 7 jours après l’éruption. Les enfants atteints de 

rubéole congénitale peuvent rester contagieux pendant des mois. 

Immunité Probablement définitive. 



Autorité à alerter Le service de la Promotion de la Santé à l'école. 

Santé publique Conseiller la vaccination systématique RRO à partir de 15 mois, avec rappel 

ultérieur. Contrôler l'immunité d’une femme AVANT la grossesse ou, en tout 

cas, le plus tôt possible. 


du patient Isolement pendant les 5 à 7 jours qui suivent l’éruption. Considérer un enfant 

touché par la rubéole congénitale, comme contagieux pendant UN an. Eviter les 

contacts avec les femmes enceintes. 

des proches Eviter les contacts avec une femme enceinte. S’il y a eu contact, demander une 

première sérologie. Si elle est négative, la refaire après 2 et 6 semaines. 

de l’entourage Eviter les contacts entre femme enceinte et malade. 

Eviction de l’école Pendant les 5 à 7 jours qui suivent l’éruption, surtout en cas de contact possible 

avec une femme enceinte. 

Isolement à 



générales 

Juillet 2003 

Une chambre privée est requise. Isolement 5 à 7 jours après l’éruption. Les 

personnes sensibles ne doivent pas être exposées. En cas de rubéole 

congénitale, il est conseillé de porter un tablier, d’utiliser des gants pour 

manipuler des objets contaminés. 

Dans les autres cas, un masque doit être porté par les personnes sensibles. En 

cas de rubéole congénitale, il faut désinfecter le matériel contaminé par les 

sécrétions respiratoires mais également par les urines. 

Vaccination systématique de tous les enfants par le vaccin combiné RRO. 

Vaccination hors grossesse. Envisager la contraception afin d’éviter une 

grossesse au cours des 3 mois qui suivent une vaccination. 

N.B. : les vaccinations accidentelles pendant la grossesse n'ont jamais entraîné 

d'atteinte du fœtus. 

Vaccination Administrer le vaccin RRO à 15 mois (en fait à n’importe quel âge après 12 

mois) et effectuer un rappel à 10 ans. Il peut être administré en même temps que 

DTP et polio. 

Protection passive Les immunoglobulines sont de peu d’utilité et ne sont pas conseillées chez une 

femme enceinte. 

R 03 - 2

Remarques Le risque d’atteinte congénitale, 40 à 80% au cours des 2 premiers mois passe à 

20 à 40% au 3 ième mois, et à 10% au 4 ième . Ensuite, le risque devient infime. Les 

immunoglobulines sont d’une utilité douteuse et peuvent éventuellement être 

administrées si une IVG ne veut être envisagée. 


Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Juillet 2003 


24 heures dans le frigo, 5 jours si le sérum est séparé du sang. 


Ressource scient. Dr P. Goubau, U.C.L. Tél. : 02/764 34 20. 

Prof. F. Zech, U.C.L. Tél. : 02/764 41 06. 


référence 

R 03 - 3

Juillet 2003 

Salmonellose (Non-Typhi, non-paratyphi) 

Salmonella spp. Il est classique de distinguer les Salmonella responsables des fièvres typhoïdes 

et paratyphoïdes des autres sérotypes dites Salmonella mineures ou ubiquistes 

responsables des toxi-infections alimentaires. Les deux appartiennent à 

l’espèce Salmonella enterica. Première cause d’entérite bactérienne en 

Belgique. 

Incubation De 6 à 72 heures, en moyenne 12 à 36 heures. 

Diagnostic 

clinique 

Les toxi-infections alimentaires à Salmonella se manifestent par des diarrhées, 

des vomissements et de la fièvre. Les premiers signes surviennent 8 à 10 heures 

après l’ingestion de l’aliment contaminé. 

Forme extra-digestive: plus rare et plus volontiers chez les immunodéprimés: 

cholécystite, méningite, ostéomyélite, glomérulonéphrite. 

Labo. Coproculture. Les tests sérologiques ne sont pas nécessaires. 

Cas probable Un cas clinique compatible ayant un lien épidémiologique. 

Cas confirmé Un cas clinique où l’isolement a été confirmé par le laboratoire. 

Réservoir Les animaux sauvages et domestiques surtout les volailles, les porcs, le bétail, 

les rongeurs mais aussi les chiens, les chats, les tortues...L’être humain comme 

porteur chronique ou pendant la période de convalescence. 

Transmission Transmission féco-orale via l’eau ou la nourriture contaminée. Transmission 

entre les animaux et entre l’animal (y compris les animaux domestiques) et 

l’homme. Voie féco-orale entre les hommes. Via des objets contaminés (ex.: 

dans les crèches). 

Saison Eté et automne, surtout au cours des mois chauds. Importation du germe, 

(1,5%). 

Age Le plus souvent des enfants de moins de 5 ans (>50%) et des jeunes adultes. 

Incidence Cas sérotypés en Belgique par le laboratoire national de référence, en 2000 : 

14 088 cas et en 2001: 10 783 cas. 

Facteurs de risque Les patients achlorhydriques (nouveau-nés, personnes âgées...), les personnes 

sensibilisées (maladie chronique, immunodépression, malnutrition...). 

Contagiosité Aussi longtemps que Salmonella est présente dans les selles c’est-à-dire 

pendant la durée de la diarrhée. NB: 3% des patients sont des porteurs 

chroniques. L’antibiothérapie allonge le portage de Salmonella. 

Immunité 

S 01 - 1

Traitement Réhydratation. Pas d’antibiothérapie sauf chez les immunodéprimés (AB en 

fonction de l’antibiogramme). 



sécurité de la chaîne alimentaire (AFSCA) qui va requérir, suivant les 

circonstances, le service de Promotion de la Santé à l'école et/ou le service de 

la Médecine du travail. 

Santé publique Rechercher une éventuelle source commune. Dans le cas d’une crèche ou au 

sein d’une entité HORECA ..., contrôle de l’hygiène et information du 

personnel. 


du patient Pas d’antibiothérapie. Les patients qui manipulent des aliments et boissons 

doivent être éloignés jusqu’à disparition de la diarrhée. Le personnel des 

crèches et autres maternelles ne peuvent préparer les repas aussi longtemps que 

dure la diarrhée. Précautions entériques. 

des proches Coproculture de tout proche qui travaille dans le domaine agro-alimentaire, 

dans une infrastructure dispensant des soins (crèche, hôpital, home...). 

Précautions entériques pour les positifs. 


Eviction de l’école Jusqu’à disparition des symptômes, surtout pour les petits. 

Isolement à 



générales 



Juillet 2003 

Isolement pendant toute la durée de la diarrhée. Pour les patients à risque 

(maternité et pédiatrie), il est nécessaire d’attendre deux coprocultures 

négatives. Le port de gants est requis en cas de contact avec du matériel 

contaminé. En cas de possibilité de contamination, le port du tablier s’impose. 

Pas d’obligation de port du masque. Désinfecter le matériel contaminé par les 

selles. 

Sensibiliser le public et le personnel médical aux précautions entériques. 

Remarques Les aliments fréquemment incriminés sont: oeufs, volailles, viandes. La dose 

nécessaire à l’infection, est élevée: 100 000 à 10 000 000 de germes (dépendant 

de l’acidité de l’estomac). 

Matériel labo. Echantillon de selles fraîches. 

Echantillon & 

Conservation 

Echantillon de selles dans un pot à coproculture. Quantité équivalente à une 

cuillère à café. - 24 heures dans le frigo. 

S 01 - 2

Transport : 


Juillet 2003 

Pour l’envoi au labo de référence : tube avec gélose nutritive. - Température 

ambiante. 

Ressource scient. J. M Collard Laboratoire de référence I. S.P.- Tél.: 02/642 50 82. 


référence 

J. M Collard Laboratoire de référence I.S.P.- Tél.: 02/642 50 82. 

email : j.collard@iph.fgov.be 

S 01 - 3

Streptococcus pyogenes ou 

streptococcus du groupe 

A.(S.G.A.) 


Diagnostic 

clinique 

Juillet 2003 

Scarlatine 

Le Streptocoque A produit de très nombreuses toxines dont certaines 

entraînent la formation d’anticorps: 

1. Streptolysine O, très active sur les globules rouges. Elle provoque la 

formation d’antistreptolysines O (ASLO), anticorps les plus 

facilement dosables. 

2. Streptolysine S : elle ne suscite pas la formation d’anticorps. 

3. Streptodornases : 4 types : A, B, C, D. Seuls les anticorps 

correspondant au type B sont élevés au cours du rhumatisme 

articulaire aigu, ce sont les antistreptodornases B. 

4. Streptokinase: suscite la production d’antistreptokinases. 

5. Hyaluronidase: fait apparaître des antistreptohyaluronidases (ASH). 

6. Toxine érythrogène, typique de la scarlatine: très immunogène et 

entraîne une bonne immunité. 

Angine rouge, aspect framboise de la langue, énanthème et exanthème, 

nombreuses petites taches punctiformes, surtout au niveau des plis. La peau a 

un aspect de papier de verre et paraît blanche avec de petits points rouges à la 

pression. 

Labo. Diagnostic direct : culture des prélèvements réalisés en fonction du site de 

l’infection (gorge, pus, sérosités, sang). 

Diagnostic indirect : montée des anticorps spécifiques ( ASLO) est un test très 

sensible mais seulement 4 à 8 semaines après l’infection. Si les ASLO ne 

montent pas, il est utile de doser les antistreptodornases B et les 

antistreptokinases. 

Tout germe isolé doit être envoyé au laboratoire de référence pour typage plus 

précis. 

Cas probable Image clinique compatible, qui peut être épidémiologiquement reliée à un cas 

déjà investigué. 

Cas confirmé Image clinique qui a été confirmée par le laboratoire. 


Transmission Par contact direct avec un malade ou un porteur ou via des sécrétions nasales et 

pharyngées. La transmission indirecte par des objets infectés est possible. 

Saison Fin de l’été et l’hiver. 

Age Enfants et plus rarement jeunes adultes. 

S 02 - 1


Facteurs de risque Personnes travaillant ou vivant en communauté... 

Contagiosité Sans traitement, la contagiosité dure pendant 10 à 21 jours. En cas de 

traitement adapté, celle-ci est de 24 à 48 heures. 

Immunité Immunité acquise après l’âge de 6 ans. 

Traitement Antibiothérapie adaptée. 


Autorité à alerter Le médecin responsable de l'inspection d'hygiène et le service de Promotion de 

la Santé à l'école. 

Santé publique En cas d’épisode épidémique (plus d’un cas en moins de 10 jours dans la même 

école), rechercher les contacts possiblement infectants et une source commune. 


du patient Retirer les enfants de la crèche, de l’école. 

des proches Frottis de gorge aux membres d’une même classe et autres personnes proches, y 

compris les adultes. Traiter prophylactiquement (par pénicilline ou, si allergie, 

erythro) les porteurs et prendre des mesures d’isolement. 

de l’entourage S’il y a plusieurs cas de scarlatine, aviser les parents et leurs médecins traitants 

afin qu’ils soient attentifs à l’apparition de fièvre et de maux de gorge. Si le 

frottis de gorge est positif, traiter et isoler préventivement les personnes faisant 

partie d’un groupe à risque (jusqu’à la première culture négative). 

Eviction de l’école Jusqu’à la guérison. 

Isolement à 



générales 

Juillet 2003 

Arrêt de l’isolement du début du traitement après 24 à 48 heures. Une chambre 

privée est recommandée pour les patients manquant d’hygiène. Utiliser des 

gants et un tablier en cas de manipulation de matériel contaminé. Le port de 

masque n’est pas nécessaire. Désinfecter le matériel contaminé par les 

sécrétions respiratoires pendant les 24 à 48 heures qui suivent le début du 

traitement. 

Impossible. 



Remarques Le traitement préventif contre le RAA est encore effectif 9 jours après le début 

de l’infection. 


S 02 - 2

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Juillet 2003 

Sécrétions pharyngées. 


Milieu d’Ames. - Température ambiante. 

Ressource scient. Dr H. Goossens, Universitaire Ziekenhuis Antwerpen Tél. : 03/821 37 89. 


référence 

Dr H. Goossens, Universitaire Ziekenhuis Antwerpen Tél. : 03/821 37 89. 

email : Herman.goossens@uza.be 

S 02 - 3

Juillet 2003 

Shigellose 

Shigella 4 sérogroupes: 

Groupe A: S. dysenteriae associé aux maladies sévères 

Groupe B: S. flexneri qui peut donner une arthropathie réactive chez les 

personnes génétiquement prédisposées 

Groupe C: S. boydii 

Groupe D: S. sonnei responsable d’infections souvent bénignes (le plus 

fréquent). 

Incubation De 1 à 7 jours, en moyenne 1 à 3 jours. Plus d’une semaine pour shigella 

dysenteriae 1 (bacille de Shiga). 

Diagnostic 

clinique 

La sévérité de la maladie est fonction du sérotype, de l’hôte et de la dose 

ingérée. Il existe des formes asymptomatiques. 

S. dysenteriae est l’agent des grandes épidémies de dysenterie bacillaire 

survenues dans les armées en campagne et les camps de prisonniers. Le 

syndrome dysentérique sanglant est accompagné d’un syndrome infectieux 

sévère. 

Les autres types sont soit asymtomatiques soit provoquent: diarrhée abondante, 

s’accompagnant de crampes (86%), de mucus et de sang (16%), de fièvre 

(72%), de nausées (66%) et de vomissements (18%). 

Labo. Prélèvement de selles et d’un écouvillon rectal pour culture. 

Cas probable Un cas compatible avec la description clinique et ayant un lien 

épidémiologique. 

Cas confirmé Une image clinique confirmée par le laboratoire. 


Transmission Transmission féco-orale. Le plus souvent par contact direct entre individus, ou 

via de l’eau ou de la nourriture contaminée. Très rarement par des vecteurs 

comme les mouches. La dose infectieuse est basse: 10 à 100 bactéries. 

Saison Surtout en été et au début de l’automne. 

Age Principalement les jeunes enfants (

Contagiosité Aussi longtemps que le bacille est présent dans les selles, en général moins de 4 

semaines après la maladie. Les portages de longue durée sont rares. 

Immunité Immunité homologue. 

Traitement Réhydratation. L’antibiothérapie doit être guidée par les résultats de 

l’antibiogramme (présence dans les Shigella de plasmides de résistance multiple 

transférables). 


Autorité à alerter Médecin responsable de l'inspection d'hygiène et l'Agence fédérale pour la 


Santé publique S’il y a plus de 2 cas: contrôle de l’hygiène dans le secteur HORECA et 

informer le personnel, rechercher le germe par coproculture chez les individus 

en contact avec les enfants, dans les institutions pour handicapés et le secteur 

HORECA. 


du patient Lui interdire toute préparation de nourriture et tout travail au sein d’une crèche 

ou autre industrie alimentaire jusqu’à la négativation de 2 cultures à 24 heures 

d’intervalle et ce 48 heures après l’arrêt du traitement. Les antibiotiques 

diminuent la durée de la maladie et de l’excrétion du germe. Précautions 

entériques. 

des proches Coproculture chez les proches si leur profession se situe dans les secteurs agroalimentaire 

ou crèches - hôpitaux : interdire tout travail jusqu’à négativation de 

2 cultures, faites à 24 heures d’intervalle après l’arrêt du traitement pour les 

contacts où les symptômes de la maladie se sont manifestés. Précautions 

entériques strictes. 


Eviction de l’école Une coproculture doit être faite chez tous les membres de la crèche, tous les cas 

positifs doivent être traités par antibiotiques et isolés jusqu’à négativation de 2 

coprocultures. Pour l’école primaire : éviction jusqu’à guérison clinique. 

Isolement à 



générales 

Juillet 2003 

Isolement pendant toute la durée de la diarrhée. Pour les patients à haut risque 

(maternité et pédiatrie), il est nécessaire d’attendre la négativation de 2 

coprocultures après l’arrêt du traitement. Le port de gants et de tablier est requis 

pour manipuler du matériel infecté. Désinfecter le matériel infecté par les selles. 

Sensibiliser le public, le personnel en contact avec les denrées alimentaires et le 

personnel médical aux règles élémentaires de l’hygiène et des précautions 

sanitaires. 

Vaccination Vaccin oral vivant expérimental. 


S 03 - 2

Remarques Interroger le patient, discerner les facteurs de risque et aviser. Pour les 

infections à S. dysenteriae, la source doit être trouvée. 

Matériel labo. Récipient pour coproculture. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Juillet 2003 



Pour l’envoi au labo de référence : tube avec gélose nutritive. - Température 

ambiante. 

Ressource scient. J.M. Collard Laboratoire de référence ISP Bactériologie. 

Tél. : 02/642 50 82. 

S 03 - 3

Staphylococcus aureus Méthicilline-Résistants 

Staphylococcus aureus. SAMR = Staphylococcus aureus Méthicilline-Résistant. 

Agent d’importance croissante dans les infections nosocomiales. 

Incubation Variable, parfois plusieurs années. 

Diagnostic 

clinique 

Juillet 2003 

Les patients colonisés sont asymptomatiques et en général, il s’agit de 

diagnostics fortuits. Les patients infectés, les moins nombreux, présentent de la 

fièvre, des destructions tissulaires et des sécrétions purulentes selon la 

localisation de l’infection (respiratoire, cutanée, urinaire, septicémie, ostéoarticulaire, 

…). 

Labo. Le caractère méthicilline résistant de Staphylococcus aureus se détecte par la 

mise en évidence de sa résistance à l’Oxacilline. Ceci se fait par un 

antibiogramme (diffusion ou MIC) et par croissance sur le Oxacillin-screen 

agar. Le caractère méthicilline résistant de Staphylococcus aureus se fait aussi 

par mise en évidence du gène MecA. En cas d’épidémie, chaque souche doit 

être envoyée vers un laboratoire de référence pour typage épidémiologique. 

Cas probable 

Cas confirmé Toute personne qui, au sein du milieu hospitalier, a fait l’objet d’un test de 

laboratoire positif, qu’elle présente ou non des symptômes. 

Réservoir Les patients infectés ou colonisés. Les porteurs chroniques parmi les membres 

du personnel. 

Transmission Entre patients hospitalisés via une contamination transitoire des mains du 

personnel, par des objets (peu important en-dehors des unités de soins intensifs 

et des grands brûlés). 

Le portage nasal transitoire de souches épidémiques est fréquent. 

En cas de pneumonie à SAMR, une contamination par voie aérienne existe et 

nécessite l’isolement du patient 


Age Tout âge 

Incidence Le taux de prévalence varie selon les pays et à l’intérieur de ceux-ci selon les 

hôpitaux. En Belgique, en moyenne 25% des Staphylococcus aureus 

hospitaliers sont des SAMR. 

S 04 - 1

Facteurs de risque Les porteurs de germe. Les patients hospitalisés sous antibiothérapie multiple et 

prolongée. Les patients affaiblis (immunodéprimés, hémodialysés, brûlés, postopérés) 

ou soumis à des manœuvres invasives. Les lésions dermatologiques. 

Contagiosité Aussi longtemps que le germe est présent, en particulier au niveau des 

muqueuses respiratoires ou de lésions cutanées étendues. 


Traitement Traitement du portage nasal du personnel de santé et des malades hospitalisés: 

onguent nasal à la mupirocine (3/j) 

Pour tout autre portage : toilette corporelle à l’aide de savon antiseptique 

pendant 5 jours. Vu l’émergence de résistance possible à cette molécule, l’usage 

chronique de la mupirocine en traitement local doit être proscrit 

Les infections à SAMR se traitent en fonction de l’antibiogramme en sachant 

qu’aucune béta-lactamine n’est active sur ce germe. 


Autorité à alerter Avertir l'équipe d’hygiène hospitalière. 

Santé publique Puisqu’elle varie fortement, dans chaque hôpital, il y a lieu d’évaluer et de 

réévaluer régulièrement l’épidémiologie de ces infections afin d’en connaître 

l’incidence et les conséquences cliniques. 

Rechercher la source et le mode de transmission lorsque l’incidence montre 

une augmentation significative ou s’il y a colonisations groupées dans une ou 

plusieurs unités de soins. 


du patient Dans les pathologies les plus disséminantes comme les pneumonies les malades 

seront isolés. Les mesures d’hygiène hospitalière de base doivent être 

appliquées rigoureusement pour tous les patients porteurs de SAMR qu’ils 

soient malades ou porteurs sains. 

des proches Rechercher une éventuelle colonisation chez les proches. Appliquer un 

traitement et respecter des mesures de prévention si nécessaire. 

de l’entourage Si le patient est en contact avec des personnes à risque, rechercher le portage 

parmi ce groupe et appliquer un traitement si nécessaire. Respecter les mesures 

de prévention. 


Isolement à 


Juillet 2003 

Cas de pneumonie à SAMR : isolement OBLIGATOIRE dans une chambre 

individuelle contenant une installation sanitaire (on peut éventuellement 

regrouper les cas) jusqu’à l’obtention de 3 cultures négatives faites à quelques 

jours d’intervalle. Le port d’un tablier, de gants et du masque est obligatoire 

que ce soit lors de contacts avec le patient ou avec du matériel infecté. Le linge 

sale est emballé dans la chambre dans des sacs prévus à cet effet; l’élimination 

de ceux-ci et des déchets se fera selon les recommandations d’usage en vigueur 

dans l’hôpital en ce qui concerne le matériel contaminé. 

S 04 - 2


générales 


Protection passive Inexistante 

Remarques 

Juillet 2003 

Hygiène des mains, désinfection du matériel hospitalier (lit, table de nuit,...). 

Matériel labo. Frottis nasal réalisé au niveau des 2 narines à l’aide d’un écouvillon humidifié. 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Les prélèvements se font au niveau des fosses nasales antérieures, les plaies 

chirurgicales ou de décubitus, les sécrétions bronchiques chez les patients 

ventilés et l’ombilic chez les nouveau-nés.- 24 heures dans le frigo. 


Ressource scient. Prof. M. Struelens, Hôpital Universitaire Erasme. Tél. : 02/555 45 19. 


référence 

Prof. M. Struelens, Hôpital Universitaire Erasme. Tél. : 02/555 45 19. 

email : Marc.struelens@ulb.ac.be. 

S 04 - 3

Juillet 2003 

Syndrome de choc toxique streptococcique 

Streptococcus 

pyogenes ou 

streptococcus du 

groupe A (SGA). 

Incubation Courte, 1 à 4 jours 

Diagnostic 

clinique 

Une infection sévère caractérisée par 6 atteintes principales : 

1/TA

Traitement Antibiothérapie adaptée, traitement du choc, immunoglobulines. 


Autorité à alerter Médecin responsable de l'inspection d’hygiène. 

Santé publique Rechercher l’existence éventuelle d’autres cas. Si plus d’un cas survient en 

moins de 10 jours dans une communauté fermée, on parle d’épisode épidémique 

et il faut que les autorités compétentes soient informées, et ce, afin d’identifier 

une source commune. 


du patient Soins intensifs. Interdire la manipulation de denrées alimentaires. Désinfecter le 

matériel utilisé par le patient. 

des proches Faire un frottis de gorge chez toute personne appartenant à un groupe à risque 

ou ayant souffert de RAA. 

de l’entourage Une chimioprophylaxie est nécessaire chez toute personne ayant souffert de 

RAA. Dans un groupe à risque : 1/Faire un frottis de gorge chez tous les 

membres. 2/Si l’analyse est positive, ces porteurs asymptomatiques doivent être 

traités par antibiotiques. 3/Les enfants doivent être isolés pour une durée de 24 

à 48 heures après le début du traitement et les adultes jusqu’à la première 

culture négative. 

Eviction de l’école Jusqu’à la guérison. 

Isolement à 



générales 


Juillet 2003 

Chambre privée, isolement du malade jusqu’à la guérison. Utiliser gants et 

tablier lors de contacts avec matériel contaminé. Désinfecter le matériel utilisé 

par une personne contaminée. 

Traitement antibiotique lors d’infection à SGA. 

Protection passive Il existe des immunoglobulines qui peuvent être utiles en cas de forme sévère 

telle que le S-TSS. 

Remarques Si on constate une faible augmentation de l’incidence, l’augmentation de la 

gravité des symptômes est quant à elle très importante. Le traitement préventif 

du RAA peut être commencé jusqu’à 9 jours après le début de l’infection. 

Matériel labo. Ecouvillons et autres tubes pour prélèvements stériles ou non. 

Echantillon & 

Conservation 

Sécrétions stériles et non stériles. Envoyer les cultures positives à SGA au 

laboratoire de référence. - 24 heures dans le frigo. 

S 05 - 2

Transport : 


Juillet 2003 

Trypticase Soy Agar - Température ambiante. 

Ressource scient. Dr H. Goossens, Universitaire Ziekenhuis Antwerpen Tél.: 03/821 37 89. 


référence 

Dr H. Goossens, Universitaire Ziekenhuis Antwerpen Tél.: 03/821 37 89. 

email : Herman.goossens@uza.be. 

S 05 - 3

Clostridium tetani. 

Juillet 2003 

Tétanos 

Incubation De 2 jours à quelques mois, habituellement 3 à 21 jours. Aussi loin se trouve la 

plaie du SNC, aussi longue sera l’incubation. Aussi courte est l’incubation, 

aussi mauvais est le pronostic. 

Diagnostic 

clinique 

Trismus, spasmes musculaires qui s’étendent progressivement et précèdent les 

contractions toniques douloureuses, opisthotonos, contractions abdominales 

(souvent le premier signe), risus sardonicus. Laryngospasme et spasmes des 

muscles respiratoires. Spasmes généralisés lors de stimuli sensoriels, auditifs, 

oculaires... Fractures vertébrales et des os longs sont possibles. Les spasmes 

respiratoires peuvent mener à l’hypoxie et donc à la mort. Taux de mortalité de 

30 à 90%. 

Labo. Isolement du bacille à partir de suppurations de plaies : rare et en pratique de 

peu d’utilité. 


Cas confirmé S’il correspond à la définition clinique suivante: début brutal d’hypertonie et/ou 

de contractions musculaires douloureuses (souvent au niveau du cou et de la 

mâchoire) ainsi que des spasmes musculaires, sans autres causes apparentes. 

Réservoir Intestins des chevaux et autres animaux (l’homme également). Spores très 

résistantes sur le sol. Les objets contaminés par des excréments. 

Transmission Maladie sans transmission inter-humaine. Blessures larges et profondes ; 

brûlures et blessures encourues en contact avec des objets salis par des détritus, 

de la terre, des selles animales ou humaines, de la poussière. Le tout favorisé 

par des conditions anaérobies qui permettent le développement du germe. 



Incidence Faible en Belgique (entre 0 et 10 cas par an depuis 10 ans). 

Facteurs de risque Les personnes à risque sont les jeunes enfants et les personnes de plus de 60 

ans, celles qui vivent à la campagne, qui sont en contact avec les animaux, qui 

vivent dans des conditions d’hygiène précaires. Personnes non vaccinées ou 

faisant l’objet d’un suivi défectueux en ce qui concerne les rappels. 

Contagiosité Ne peut se transmettre entre individus. 

T 01 - 1

Immunité Le fait de faire la maladie ne donne pas une réelle immunité. Seuls les anticorps 

administrés contre la toxine protègent contre une récidive. Ainsi après guérison, 

un patient doit encore être vacciné. 

Traitement IGHAT : ImmunoGlobulines Humaines Anti Tétanique à haute dose IM, 

éventuellement en intrathécal. Débridement chirurgical, intubation, 

trachéotomie, respiration assistée, substances myorelaxantes, ... 





du patient Voir traitement. Si le patient n’a jamais été vacciné: schéma vaccinal complet et 

traitement par immunoglobulines. S’il a été vacciné il y a moins d’un an, ne pas 

revacciner. S’il a été vacciné il y a moins de 10 ans, faire un rappel. S’il a été 

vacciné il y a plus de 10 ans, reprendre le schéma vaccinal complet et traiter par 

immunoglobulines. 

des proches Il n’est pas nécessaire de rechercher la source. 



Isolement à 



générales 

Juillet 2003 

Pas de nécessité de chambre privée, de gants, de tablier ou de masque. Pas de 

soins particuliers pour le matériel. 

Seule maladie non transmissible qui peut être prévenue par la vaccination. 

Vaccination systématique et rappel tous les 10 ans. 

Vaccination D.T.P. selon le schéma 3, 4 et 5 mois, un rappel à 13, 14 mois ensuite une dose 

tous les 10 ans. Au-delà de 6 ans, la primo-vaccination comporte 3 injections à 

0, 6 semaines et 1 an. 

Protection passive Oui, traiter par immunoglobulines après un contact qui peut se révéler infectant 

chez un individu n’ayant pas de couverture vaccinale. 

Remarques On note quelques cas par utilisation de seringue chez les drogués. Les plaies 

profondes et souillées doivent être considérées comme hautement suspectes. 

Pour les personnes qui voyagent, penser à associer diphtérie et tétanos avec Td 

1/10 de la dose pédiatrique. Y penser lors des rappels tous les 10 ans. 

Matériel labo. Pas d’application 

Echantillon & 

Conservation 


T 01 - 2

Transport : 


Juillet 2003 


Ressource scient. Prof. M. Delmée, U.C.L. Tél.: 02/764 54 90. 


référence 

email : Delmee@mblg.ucl.ac.be 

T 01 - 3

Toxi-infection d'origine alimentaire à Clostridium 

perfringens 

Clostridium 

perfringens. 

Juillet 2003 

Diagnostic différentiel: intoxination à Bacillus cereus. 

Incubation De 6 à 24 heures, le plus souvent de 10 à 12 heures. 

Diagnostic 

clinique 

Crampes intestinales aiguës suivies de diarrhée aqueuse également des nausées 

mais rarement de la fièvre ou des vomissements. Entérocolite nécrosante 

(Clostridium perfringens type C) rarissime. Durée des troubles ne dépassant pas 

24 heures. 

Labo. Coproculture, identification de souches entérotoxinogènes et dénombrement des 

Clostridium perfringens (> 100.000cfu/gr). Recherche d'entérotoxine. Chaque 

germe isolé doit être envoyé au laboratoire de référence. 

Cas probable Image clinique qui peut être reliée par l'épidémiologie à un cas déjà analysé. 

Cas confirmé Image clinique confirmée par la présence d'entérotoxines dans les selles ou par 

la présence d’un grand nombre de souches entérotoxinogènes dans les aliments 

ou les selles. 

Réservoir Sol, mais aussi les intestins d'individus porteurs sains (15%) et d'animaux tels 

que bétail, volaille, poisson,.... 

Transmission Aliments contaminés par la terre ou par des selles et conservés dans des 

conditions qui permettent le développement du germe. Viande incomplètement 

cuite, mal refroidie ou réchauffée (volaille, langue de bœuf précuite). Il faut 

ingérer un aliment fortement contaminé (plus de 1.000.000 cfu/gr.) pour 

observer les symptômes. Ceux-ci sont dus à une entérotoxine dont la production 

est liée à la sporulation des bactéries dans l’intestin. Multiplication très rapide 

(temps de génération de 10 à 12 minutes à 45°C). La croissance est possible 

dans l'aliment entre 10 et 50°C. Les spores résistent à la température habituelle 

de cuisson. 




Facteurs de risque Les cuisines industrielles. Les repas maintenus longtemps au chaud ou refroidis 

trop lentement. 



T 02 - 1





Santé publique Enquête alimentaire. 




de l'entourage Non. 

Eviction de l'école Non. 

Isolement à 

l'hôpital. Mesures 


générales 



Juillet 2003 

Une chambre privée n'est pas nécessaire. Le port de gants, de tablier ou de 

masque n'est pas requis. Veiller à l'hygiène des mains. Les hôpitaux qui servent 

des repas au personnel et aux patients doivent préparer et conserver la 

nourriture selon les règles en vigueur. 

Surtout dans les grandes cuisines, suivre les règles de traitement de la 

nourriture. Après préparation, les aliments doivent être immédiatement servis 

ou adéquatement refroidis (sous 10°C ). La cuisson doit être rapide, complète et 

être maintenue au-dessus de 65°C . 

Remarques Enquête alimentaire: 1) Enquête épidémiologique et prélèvements de selles 

auprès des personnes touchées. 2) Prélèvement des échantillons d'aliments 

incriminables. 3) Recherche du germe ou de l’entérotoxine par le laboratoire. 


Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Selles fraîches. Eventuellement, nourriture douteuse. 

Il ne peut être conservé au-delà de 24 heures. 

Pas de milieu particulier. - Refroidir le prélèvement et le transporter en milieu 

glacé aussi vite que possible. 

Remarques labo. Identification de souches entérotoxigènes au laboratoire ULg. Prof. Daube. 

Ressource scient. Prof. M. Delmée, U.C.L. Tél.: 02/764 54 90. 

Prof. G. Daube, ULg Tél.: 04/366 40 15 (aliments) 


référence 

Prof. G. Daube, ULg - Tél.: 04/366 40 15. 

T 02 - 2

complexe de Mycobactéries : 

tuberculosis (hominis), 

africanum, bovis 

Juillet 2003 

Tuberculose 

Incubation Après contact avec un cas contagieux, l’infection tuberculeuse ne se 

développera que dans 50 % des cas, après environ 3 à 8 semaines. L’infection 

tuberculeuse ne se transforme en tuberculose-maladie que dans 10 % des cas 

(5% dans les 2 ans et 5% plus tardivement). Chez les VIH+, ce risque est 

augmenté (10% par an). 

Diagnostic 

clinique 

L'infection tuberculeuse latente est asymptomatique. A ce stade, la RX du 

thorax est normale et le seul moyen de mettre l'infection en évidence est de faire 

un test tuberculinique. On utilise de préférence l'intradermo-réaction (qui est un 

test à la fois qualitatif et quantitatif) plutôt que le Monovacc uniquement 

qualitatif. A l'heure actuelle, le dépistage doit être ciblé vers des personnes ou 

groupes de personnes qui ont un risque plus élevé d'être infecté par le BK et/ou 

de développer la tuberculose. 

La majorité des tuberculoses actives sont pulmonaires. Comme il s'agit de la 

forme potentiellement contagieuse de la maladie, il est important de la 

diagnostiquer rapidement. Il faut y penser devant un tableau de toux chronique 

(> 3 semaines) avec éventuellement hémoptisies, fièvre, sudations nocturnes, 

fatigue, amaigrissement. Ces symptômes étant peu spécifiques, la radiographie 

du thorax s'impose en cas de suspicion. 

Les tuberculoses extra-pulmonaires (ganglionnaires, osseuses, rénales, 

méningées, …) sont plus rares. Elles peuvent être associées ou non à une forme 

pulmonaire. La symptomatologie et la mise au point dépendront de la 

localisation. 

Labo. Isolement de baciles de Koch (BK) dans les sécrétions respiratoires (ou tout 

autre échantillon tel que LCR, pus, urine, etc en cas de tuberculose extrapulmonaire). 

La présence de BK est détectée par examen microscopique direct, 

après coloration de Ziehl Neelsen, ainsi que par mise en culture sur milieux 

spécifiques : milieux solides de Lowenstein - Jensen ou de Coletsos (durée 

minimale : 3 semaines), milieu liquide de Middelbrook avec détection 

radiométrique ou colorimétrique de la croissance bactérienne (durée de 10 

jours). Il faut associer à la culture, l'identification de la mycobactérie en 

croissance, ainsi qu'un antibiogramme afin de détecter les résistances aux 

médicaments antituberculeux. 

Cas probable Patient dont le tableau clinique est compatible avec une tuberculose et chez qui 

l'examen radiologique (voire anatomo-pathologique) est suspect. Il n'y a pas de 

confirmation bactériologique. 

Cas confirmé Présence d’une culture positive pour le complexe Mycobactérium tuberculosis. 

T 03 - 1

Réservoir Humain (dans certaines zones, le bétail peut être touché, plus rarement, d'autres 

mammifères). 

Transmission Par voie aérogène: exposition aux gouttelettes d’aérosols contaminées 

expectorées par des personnes atteintes de tuberculose pulmonaire active ou 

laryngée (contagieuse), lors d’un effort expiratoire (tousser, chanter, 

éternuer,…). L’inoculation cutanée est rare (se voit encore chez le 

microbiologiste ou le personnel de laboratoire). De manière générale, les 

tuberculoses extra-pulmonaires ne sont pas contagieuses. 

Saison Pas de saison particulière. 

Age En Belgique, il s’agit d’une maladie qui touche surtout les personnes âgées (> 

ou = 65 ans) et les enfants (< ou = 5 ans). Parmi la population étrangère de 

notre pays, on observe aussi un pic de fréquence entre 20 et 40 ans. 

Incidence En 2002, l’incidence est de 12,9/100.000 ce qui correspond à 1321 cas déclarés. 

L’incidence dans la population non-belge résidant en Belgique est de 

70,1/100.000 ; elle est de 7,6/100.000 dans la population d’origine belge. 

Facteurs de risque A. Sujets à risque élevé d'infection tuberculeuse 

Sujets-contact d'un cas connu de tuberculose contagieuse. 

Pensionnaires et sujets travaillant régulièrement dans des établissements 

associant confinement et présence possible de sources de contamination 

(hôpitaux, maisons de repos et de soins, homes pour sans-abris, prisons, 

centres d'accueil pour demandeurs d'asile, etc….). 

Sujets régulièrement en contact avec des produits contaminés par le bacille 

tuberculeux (personnel des laboratoires d'analyse bactériologiques). 

Sujets provenant de pays à haute prévalence de tuberculose (demandeurs 

d'asile, illégaux, …). 

Sujets séjournant pour une longue période dans un pays à haute prévalence 

de tuberculose dans des conditions impliquant un contact étroit avec la 

population locale et/ou un travail dans le secteur de la santé. 

Sujets vivant dans des conditions précaires: sans-abri, marginaux, … 

Juillet 2003 

B. Sujets ayant un risque accru de développer une tuberculose active 

Le risque de développer une tuberculose active est le plus élevé en cas de : 

Infection par le VIH : le risque de développer une tuberculose est 113 fois 

plus élevé chez les sujets séropositifs pour le VIH que chez les séronégatifs. 

Chez les patients atteints du SIDA, le risque relatif (RR) est de 170. 

Corticothérapie à hautes doses et pendant une longue période ou autre 

traitement immunosuppresseur; par exemple, après transplantation, le RR est 

compris entre 20 et 74. 

T 03 - 2

Facteurs de risque Pneumoconiose : le RR est de 30 en cas de silicose. 

Affections malignes spécifiques telles que leucémie, lymphome de 

Hodgikin, carcinome du cou et de la tête : le RR est de 16. 

Infection récente (< ou = 2 ans) : le RR est de 15. 

Insuffisance rénale : le RR est compris entre 10 et 25. 

Porteurs de lésions pulmonaires "fibrotiques" identifiées à la radiographie du 

thorax: le RR se situe entre 6 et 19. 

Le risque de développer une tuberculose active est élevé en présence de 

certaines affections médicales comme : 

Diabète : le RR chez ces patients est compris entre 2 et 3,6. 

Dénutrition (> ou = 10% sous le poids idéal), notamment après gastrectomie, 

bypass jéjuno-iléol : RR entre 2 et 3. 

Usage de drogues par voie IV. 

Alcoolisme chronique. 

Contagiosité On considère qu'un patient est contagieux lorsqu'il est atteint d'une tuberculose 

pulmonaire bronchique, laryngée dont les expectorations sont positives à 

l'examen direct et/ou à la culture. La contagiosité est plus importante lorsque les 

BK sont présents à l'examen direct, c'est pourquoi, en règle générale, l'isolement 

est suspendu lorsque 3 examens directs sont négatifs à un jour d'intervalle. 

Immunité Une personne infectée développe une immunité partielle. Cette immunité 

acquise n’empêche pas toujours les éventuelles réinfections exogènes ou les 

réactivations endogènes. 

Traitement En général, polychimiothérapie quotidienne pendant 6 mois avec dans la phase 

initiale (2 mois): isoniazide, rifampicine et pyrazinamide, puis dans la phase de 

continuation (4 mois) : isoniazide et rifampicine. Un 4 ème antibiotique 

(éthambutol) est ajouté d’emblée en cas de suspicion de résistance aux 

médicaments tuberculeux et de récidive. Chez les femmes enceintes, remplacer 

le pyrazinamide par l’éthambutol (traitement de 9 mois). Traitement à adapter 

en fonction de la sensibilité de la souche tuberculeuse et dans certains cas 

particuliers (VIH, méningite, miliaire, pleurésie...). 


Autorité à alerter Médecin responsable de l'inspection d'hygiène. Possibilité de faire appel à la 

FARES dans certaines situations notamment pour organiser le dépistage dans 

l’entourage et l'administration supervisée des médicaments. 

Santé publique Dès qu'un cas de tuberculose active est mis en évidence, il y a lieu de prendre 

les mesures suivantes : confirmer le cas, assurer une prise en charge correcte du 

patient (traitement adapté, isolement si le cas est contagieux), organiser le 

dépistage dans l’entourage si nécessaire. 

Juillet 2003 

T 03 - 3


du patient Le patient doit recevoir un traitement antituberculeux adéquat et être 

correctement informé de l’importance de l’adhésion thérapeutique (traitement 

directement supervisé - TDS - à prévoir si nécessaire). S’il est contagieux, il 

doit être isolé jusqu’à négativation des expectorations à l'examen direct, soit à 

l’hôpital, soit au domicile dans une chambre bien ventilée et éclairée et prendre 

des précautions d’hygiène de la toux. En cas de multirésistance, les mesures 

citées ci-dessus doivent être strictement respectées. 

des proches En présence d'une tuberculose potentiellement contagieuse (palmo-bronchopulmaire, 

laryngée), rechercher les personnes contaminées par intradermoréaction 

(RX si antécédents de test tuberculinique positif ou de tuberculose). 

En présence d'une tuberculose non contagieuse chez l'enfant (extra-pulmonaire 

ou primoinfection dépistée radiologiquement), rechercher la source de 

contamination (> ou = 15 ans : RX, < 15 ans : intradermoréaction). 

de l’entourage En présence d'un cas-index atteint de tuberculose potentiellement contagieuse, 

il faut rechercher les personnes qui auraient pu être contaminées. En dehors de 

la famille, les autres milieux de vie doivent être investigués : école, travail, 

loisirs,… Les sujets à soumettre au dépistage sont choisis en fonction de la 

fréquence (quotidienne, régulière, occasionnelle) et de l'étroitesse des contacts 

avec le cas-index, ainsi que du degré de contagiosité de celui-ci (principe des 

cercles concentriques). L'examen de dépistage recommandé est l'intradermoréaction 

(RX si antécédents de test tuberculinique positif ou de tuberculose). En 

présence d'une tuberculose non contagieuse, la source de contamination pourra 

être recherché parmi les contacts quotidiens autres que la famille, si l'on juge 

que l'infection a de grandes chances d'être récente et si aucun contaminateur n'a 

été mis en évidence parmi les proches. L'examen de dépistage recommandé 

varie en fonction de l'âge : RX > ou = 15 ans et intradermo-réaction < 15 ans. 

Eviction de l’école L’enfant doit être isolé tant qu’il est contagieux. Le risque de contamination est 

faible car les enfants développent plus souvent des formes disséminées ou 

gangliopulmonaires non contagieuses. 

Isolement à 


Juillet 2003 

Le patient est placé en chambre d’isolement au cours de la période de 

contagiosité ; il doit porter un masque lors de tout déplacement au sein de 

l’hôpital (ceux-ci doivent être limités au maximum). Les visites sont courtes et 

limitées (elles sont interdites pour les enfants de moins de 5 ans). Le port du 

masque est recommandé chez les visiteurs de même que chez le personnel. Le 

port d’un tablier et de gants n’est en général pas nécessaire. Si les locaux ont 

été bien aérés, il ne faut pas les désinfecter quand le patient quitte l’hôpital. 

Tous les instruments et matériels seront soigneusement nettoyés, de préférence 

en machine et désinfectés. Toutes les mesures doivent être renforcées en 

présence d’une tuberculose multirésistante. L’isolement prend fin quand 

l’examen direct des expectorations matinales est négatif pendant 3 jours 

successifs; pour les tuberculoses multirésistantes, il faut que 6 examens 

microscopiques directs espacés d'au moins 3 jours soient consécutivement 

négatifs. 

T 03 - 4


générales 

Juillet 2003 

En Belgique, le contrôle de la tuberculose est orienté suivant 2 axes principaux: 

- le diagnostic et le traitement précoces des cas de tuberculose-maladie ; la 

priorité doit être donnée aux patients atteints de la forme pulmonaire afin de 

limiter au maximum la contamination de l’entourage; 

- le dépistage des personnes infectées par le bacille de Koch et leur traitement 

préventif pour éviter le développement d’une maladie tuberculeuse. 

Un dépistage est organisé activement dans les groupes à risque de tuberculose 

(voir plus haut). 

Vaccination Après BCG, une immunité (relative) est acquise en 6 à 10 semaines. 

D'efficacité controversée, le BCG n'empêche pas les infections mais protège 

contre les formes graves et disséminées de la maladie, surtout chez l'enfant… 

En Belgique, ses indications sont rares et à décider au cas par cas. 

Protection passive Afin d’éviter qu’un sujet infecté par le bacille de Koch ne développe la 

tuberculose (risque de 10 % au cours de la vie), il peut être soumis à une 

chimiothérapie préventive. En général, l’isoniazide (INH) est prescrit pendant 

6 à 9 mois aux patients tuberculino-positifs surtout si l’infection est récente 

(virage, contact avéré avec un tuberculeux contagieux, ...) et/ou si des facteurs 

favorisant le développement d'une tuberculose sont présents. En cas de test 

tuberculinique négatif chez des enfants de moins de 5 ans en contact avec une 

tuberculose contagieuse, une chimiothérapie préventive est prescrite en 

attendant le résultat de l’intradermoréaction de contrôle 2 mois plus tard; elle 

est poursuivie au total pendant 9 mois en cas de test positif, interrompue en cas 

de test négatif. Chez les sujets séropositifs pour le VIH, en contact avec une 

tuberculose contagieuse, une chimiothérapie à l'isoniazide est instaurée 

d'emblée pour une durée de 3 mois, quel que soit le résultat du premier test 

tuberculinique. 

Remarques En cas d’infection connue pour la première fois chez l’enfant (< ou = 5 ans) ou 

de virage, un dépistage de l’entourage peut être envisagé afin de rechercher la 

source de contamination. La manière de procéder est identique à celle décrite 

en cas de tuberculose non contagieuse. 

Selon les recommandations de l'OMS, la surveillance épidémiologique de la 

tuberculose doit comprendre : 

- la surveillance des tuberculoses actives (cadastre de la tuberculose élaboré à 

partir des déclarations obligatoires) 

- la surveillance de la (multi)résistance aux médicaments anti-tuberculeux (via 

un réseau de laboratoires testant la sensibilité des souches tuberculeuses) 

- Le monitoring des résultats du traitement parmi une cohorte de patients. 

Matériel labo. Récipient stérile pour sécrétions respiratoires et tubage gastrique (ou adapté 

pour les autres échantillons : urines, sang, LCR, liquide de ponction ou biopsie). 

T 03 - 5

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Juillet 2003 

Récolter les expectorations, le matin pendant 3 jours successifs. En l'absence de 

crachats, plutôt que de prélever de la salive, on peut induire une expectoration 

par des aérosols de solution saline hypertonique à 5% ou faire une aspiration 

bronchique ou encore un tubage gastrique à jeun au lever. 

L'échantillon doit parvenir au laboratoire le plus rapidement possible. Si ce n'est 

pas réalisable, il doit être conservé à + 9 °C. 

Pas de milieu particulier . Les biopsies peuvent être transportées dans une petite 

quantité d’eau distillée. - Pas de conditions particulières. Emballage évitant le 

bris du récipient. 

Ressource scient. Dr M. Wanlin, FARES Tél. : 02/512 29 36 

Dr A. Aerts, VRGT Tél. : 02/512 54 55 


référence 

Dr M. Dufaux-Fauville - Pasteur de Bruxelles - Tél : 02/373 32 08. 

email : mfauville@pasteur.be. 

Prof. F. Portaels - I.M.T. Antwerpen, Tél : 03/247 63 17. 

email : portaels@itg.be. 

T 03 - 6

Herpès zoster. 


Diagnostic 

clinique 

Juillet 2003 

Varicelle 

Fièvre et éruption cutanée très prurigineuse, sous forme de macules, papules, 

vésicules et croûtes. Tous les stades existent simultanément. 

Labo. Superflu (culture ou sérologie si confirmation nécessaire). 

Cas probable Une image clinique qui n’est pas confirmée par un examen de laboratoire et qui 

n’est pas épidémiologiquement reliée à un autre cas probable ou confirmé. 

Cas confirmé Un cas qui est confirmé par le laboratoire ou une image clinique caractéristique 

qui peut être épidémiologiquement reliée à un cas probable ou confirmé. 


Transmission Par contact direct et via aérosol en éternuant ou en toussant. Egalement par des 

objets infectés. 

Saison Hiver et début du printemps. 

Age Les enfants, rarement les adultes. 


Facteurs de risque Dangereux pour les nouveau-nés, les prématurés, les immunodéprimés. 

Contagiosité Très contagieux, avec un pic maximal 5 jours avant l’éruption et 6 jours après le 

début des papules. Le stade croûte n’est plus contagieux. Le zona l’est 

également. 

Immunité Oui (une réinfection est extrêmement rare). Cependant, une réactivation existe, 

sous forme de zona, en particulier si baisse d’immunité. 

Traitement Symptomatique (Aciclovir si complications). 


Autorité à alerter Le service de Promotion de la Santé à l’école. 


V 01 - 1


du patient Exclure de l’école et éviter les contacts avec des personnes à risque jusqu’à ce 

que toutes les vésicules soient sèches. 


de l’entourage La plus grande prudence est requise pour les adultes non immunisés et pour les 


Eviction de l’école Jusqu’à ce que toutes les vésicules soient sèches. 

Isolement à 



générales 

Juillet 2003 

Isolement jusqu’à assèchement des vésicules. Isoler sans délai les patients qui 

développent la varicelle à l’hôpital. Ne pas exposer les immunodéprimés ou les 

personnes souffrant d’eczéma. Séparer les nouveau-nés de leurs mères si elles 

ont la varicelle. La chambre privée est de rigueur. Les gants sont indispensables 

pour manipuler le matériel infecté. Le masque est recommandé pour les 

personnes sensibles. Désinfecter le matériel contaminé par le liquide des 

vésicules et par les sécrétions respiratoires. 

Non. 

Vaccination Le vaccin à base de virus varicilleux vivants atténués permet une immunisation 

active par voie sous-cutanée. Ce vaccin est principalement recommandé aux 

patients à risque, ainsi qu’aux enfants à partir de 12 mois et aux adolescents 

vivant en contact étroit avec eux. Cependant, la plus grande précaution est de 

rigueur lorsqu’il s’agit de vacciner des malades présentant une déficience 

importante du système immunitaire cellulaire, ou des patients soumis à un 

traitement immunodépressif important. La durée d’immunisation est estimée 

entre 5 et 10 ans. Il n’est pas prouvé que la vaccination empêcherait de façon 

significative, l’apparition d’une forme réactivée tardive de l’herpès zoster. La 

mise au point d’un vaccin combiné rougeole-rubéole-oreillons-varicelle est 

activement recherchée. 

Protection passive Immunoglobulines endéans les 96 heures suivant l’exposition s’il s’agit d’une 

personne d’un groupe à risque. 

Remarques 


Echantillon & 

Conservation 

Transport : 





Ressource scient. Prof. F. Zech, U.C.L. 02 / 764 41 06. 


référence 

V 01 – 2

Yersinia enterocolitica, 

pseudotuberculosis. 

Juillet 2003 

Yersiniose 

Bactérie ubiquitaire. 

En Europe, ce sont surtout les sérotypes 0 : 3 et 0 : 9 qui sont responsables de la 

pathologie. Il existe beaucoup d’autres sérotypes qui ne sont pas associés à une 

maladie humaine. 

Incubation De 3 à 7 jours, habituellement < 10 jours. 

Diagnostic 

clinique 

Diarrhée aqueuse ou muco-purulente parfois accompagnée de fièvre, de 

céphalées, de vomissements. Le plus souvent, sous forme de gastro-entérite 

chez les petits enfants tandis que les adultes présentent un syndrome pseudoappendiculaire. 

Complications possibles: arthrite réactionnelle et érythème 

noueux (10% des adultes, surtout les femmes). 

Labo. Lors des entérocolites, la recherche de bactéries se fait par coproculture sur 

milieu sélectif. Hémoculture : découverte fortuite. Diagnostic sérologique par 

test d’agglutination ou ELISA (Enzyme Linked Immuno Sorban Assay) en cas 

d’arthrite réactionnelle. 

Chaque germe isolé doit être envoyé au laboratoire de référence pour typage. 



Réservoir Les porcs, dans le tube digestif et principalement dans l’oropharynx. Aussi les 

rongeurs et les oiseaux. 

Transmission En mangeant de la viande de porc contaminée et crue. Mais également par 

ingestion d’eau ou de lait contaminé. La transmission féco-orale est possible. 

Saison Toute l’année, un peu plus de l’automne au printemps. 

Age Prépondérant chez les enfants de < 5 ans. 

Incidence 375 cas diagnostiqués en Belgique en 2001 par les laboratoires vigies. 

Facteurs de risque Risque de septicémie pour les patients immunodéprimés ou souffrant 

d’hémochromatose. 

Contagiosité Aussi longtemps que les symptômes sont présents, normalement 2 à 3 semaines. 

Immunité Pas connu. 

Traitement Fluoroquinolones de deuxième génération pour les formes invasives. 

Y 01 - 1



Santé publique Contrôle des cas et au besoin rechercher une source. Contrôle du bétail. 


du patient Précautions entériques. Interdire toute préparation de nourriture aussi 

longtemps que la diarrhée est présente. 

des proches Ne rechercher une source commune que si plusieurs cas se déclarent. 



Isolement à 




Juillet 2003 

Isolement pendant toute la durée de la diarrhée. Pour les patients à haut risque 

(maternité et pédiatrie), il faut attendre l’obtention de 2 coprocultures négatives 

après le début du traitement. La chambre privée est recommandée pour les 

enfants et pour les patients manquant d’hygiène. Port de gants pour manipuler 

le matériel infecté. Tablier en cas de risque de contamination. Pas d’obligation 

d’utiliser un masque. Désinfecter le matériel contaminé par les selles. 

Prévention Eviter de manger de la viande de porc crue. Précautions entériques. 

Remarques Haute incidence en Belgique 

Matériel labo. Pot pour coproculture 

Echantillon & 

Conservation 

Transport : 


Prélèvement de selles. - 24 heures dans le frigo. 

BGS (buffered, glycerol, saline) en pot. - Température ambiante. 

Ressource scient. Dr J. Verhaegen, K.U.L. - Tél.: 016/34 70 73. 

Prof. M. DELMEE, U.C.L. - Tél.: 02/764 54 90. 


référence 

Dr J. Verhaegen, K.U.L. - Tél.: 016/34 70 73. 

email : Jan.verhaegen@uz.kuleuven.ac.be. 

Prof. M. DELMEE, U.C.L. - Tél.: 02/764 54 90. 

email : Delmee@mblg.ucl.ac.be. 

Y 01 - 2

Stratégies de contrôle de maladies transmissibles - Direction ...

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