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2012 - Plan d'Action Salmonelles (PAS) - DGZ

2012 - Plan d'Action Salmonelles (PAS) - DGZ

l’organisme certains

l’organisme certains organes. Une caractéristique des Salmonella Java et Salmonella Typhimurium est qu’ils colonisent les tonsilles caecales, entraînant une excrétion permanente dans les fèces. 1.4 Salmonellose chez l’homme S. Typhi provoque spécifiquement chez l’homme la ‘salmonellose typhoïde’, également appelée ‘typhus abdominal’ (dans les pays tropicaux). D’autres types de salmonelles peuvent entraîner une ‘salmonellose non typhoïde’. 1.4.1 Salmonella en tant que zoonose La salmonellose est une maladie infectieuse transmissible de l’animal à l’homme (zoonose). Une contamination de l’homme par les volailles peut survenir tant par contact direct entre l’homme et l’animal que par contact indirect via la consommation de viande de volaille contaminée et non suffisamment cuite et à partir d’œufs contaminés consommés crus (mayonnaise, mousse au chocolat). Les trois principaux sérotypes concernés ici sont S. Enteritidis, S. Typhimurium et S. Paratyphi B var. Java. Ce qu’on appelle les porteurs, ou carriers, constituent le plus gros risque, ils provoquent une contamination croisée à l’abattoir. Il est évident que l’hygiène joue un rôle important tant au niveau de la production primaire dans les exploitations avicoles qu’au niveau de la transformation dans les abattoirs. De plus, les consommateurs doivent eux-mêmes également respecter des règles d’hygiène dans leur cuisine. Les principales causes d’infection dans la cuisine (et en particulier en cas de barbecue) sont les produits crus ou non suffisamment cuits contaminés par Salmonella. Si la viande est cuite trop rapidement, le risque est que l’extérieur de la viande soit carbonisé alors que le cœur de la viande n’atteint pas une température suffisante pour permettre la destruction des germes présents. Les contaminations croisées peuvent également générer des problèmes. Elles surviennent lorsque des aliments entrent en contact avec de la viande contaminée crue ou des objets contaminés, tels qu’une planche à découper. Les symptômes apparaissent la plupart du temps entre 12 et 36 heures après l’ingestion de l’aliment contaminé et consistent essentiellement en des douleurs abdominales, des diarrhées et vomissements. Il se peut également que ces symptômes soient accompagnés de fièvre et d’une sensation générale de maladie ; les cas mortels sont très rares. Les personnes les plus touchées sont les personnes appartenant au groupe des YOPI (Young-Old-Pregnant-Immunodepressed), et la majorité des cas sont recensés au cours des mois d’été. L’apparition d’une multirésistance de Salmonella à l’encontre de différents types d’antibiotiques constitue un problème particulier. C’est la raison pour laquelle il est conseillé, dans les cas humains, d’administrer un traitement aux antibiotiques uniquement dans les cas très graves. Les fluoroquinolones, céphalosporines de 3 6 e génération, triméthoprime et ampicillines peuvent être utilisés dans le traitement des salmonelloses cliniques chez

l’homme. Chez les volailles, l’utilisation d’agents antimicrobiens pour le traitement des salmonelles zoonotiques est interdite dans le cadre des programmes de lutte contre les salmonelles. 1.5 Sérotypes de salmonelles Le sérotype de Salmonella est défini par une combinaison d’antigènes somatiques O, d’antigènes flagellaires H et d’antigènes de surface Vi suivant le schéma de Kauffmann-White-LeMinor. Les différents sérotypes sont à leur tour divisés en sérogroupes : de A à E. Ceci a son importance du point de vue de la spécificité du test sérologique utilisé. Par exemple, Salmonella Enteritidis appartient au groupe D et Salmonella Typhimurium au groupe B. Il existe encore d’autres techniques pour poursuivre le classement des types de Salmonella, telles que la lysotypie, l’analyse plasmidique, le typage d’ADN, etc. Ces techniques ont leur utilité pour les analyses épidémiologiques, car on peut par exemple de cette manière déterminer quels sont les types présents/persistants dans une exploitation, ainsi que le lien entre les types présents dans les exploitations et ceux observés dans les abattoirs, etc. Ces techniques sont également utilisées sur les souches qui ne peuvent être caractérisées selon le schéma de Kaufmann-White-LeMinor. La figure ci-dessous présente la répartition des sérotypes observés lors des contrôles de sortie positifs (n = 306) de lots de poulets de chair en Belgique en 2010 : S. Blockley 1,0% S. Enteritidis S. Virchow 1,6% 1,0% S. Cerro 1,6% S. Anatum 2,3% S. Livingstone 2,9% S. Mbandaka 3,9% S. Infantis 3,9% S. Agona 3,9% S. Paratyphi B 6,5% S. Rissen 9,5% S. Jerusalem 1,0% S. Meleagridis 1,0% S. Paratyphi B var. Java 14,7% S. Typhimurium 13,7% S. Senftenberg 12,7% Overige (prevalentie < 1%) 5,2% S. Minnesota 13,4% 7

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