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Biocontrôle de Staphylococcus aureus dans les produits laitiers.

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Lynn El Haddad et Nour Ben Abdallah


o <strong>Staphylococcus</strong> <strong>aureus</strong> et ses phages <strong>dans</strong> le laito Hypothèses <strong>de</strong> travailo Objectif 1: Souches <strong>de</strong> S. <strong>aureus</strong>o Objectif 2: Phages <strong>de</strong> S. <strong>aureus</strong>o Objectif 3: Résistance <strong>de</strong>s phageso Objectif 4: Test du cocktail <strong>de</strong> phageso Conclusions2


<strong>Staphylococcus</strong> <strong>aureus</strong>o Gram-positifo Mésophileo Anaérobie facultativeo Tolère 20% <strong>de</strong> NaClSource: Wikipediao Bactérie commensaleo Bactérie pathogèneo Dotée <strong>de</strong> pouvoirs invasifs et toxiques3


o Intoxications alimentaireso Transmission par mauvaisemanipulationo Ingestion d’un aliment contenant> 100 ng d’entérotoxinesstaphylococciqueso Symptômes bénins jusqu’àdangereuxo Lots <strong>de</strong> lait cru rejetés4


o Solution envisagée pour contrôler la présence etla concentration <strong>de</strong> S. <strong>aureus</strong> <strong>dans</strong> l’alimento Utilisation <strong>de</strong> phages comme additifsalimentairesPhages <strong>de</strong> ferments lactiquesSpécifiques aux souches <strong>de</strong>fermentsPetit spectre lytiqueResponsable <strong>de</strong> rejets <strong>de</strong> lots<strong>de</strong> lait et <strong>de</strong> fromagePhages <strong>de</strong> S. <strong>aureus</strong>Spécifiques auxstaphylocoquesPolyvalentPeuvent réduire le nombre <strong>de</strong>rejets (?)5


o Utilisation <strong>de</strong> phages comme additifsalimentaires:oNe changent pas <strong>les</strong> propriétésorganoleptiques <strong>de</strong>s <strong>produits</strong>ooReconnus comme sécuritairespour le contrôle <strong>de</strong> Listeriamonocytogenes (FDA, 2007)AgriPhage-CMM anti-Clavibactermichiganensis (Santé Canada, 2012)http://www.listex-p100.com/6


o Conditions d’utilisation <strong>de</strong>s phages commeadditifs alimentaires:o Phage lytiqueo Absence <strong>de</strong> facteurs <strong>de</strong> virulenceo Spectre lytique largeo Efficacité <strong>dans</strong> la matricealimentaireo Cocktail <strong>de</strong> phages7


Trois famil<strong>les</strong> <strong>de</strong> Caudovira<strong>les</strong>, ADN dbMyoviridaeSiphoviridae3 morphotypesPodoviridae2 morphotypesPyophage, Team1,Team2, phi812, K3A, M SA , LH1, LH1-MUTP68, 44AHJD8


Les phages présents <strong>dans</strong> <strong>les</strong> laits du Québec sontplus adaptés à la réduction <strong>de</strong> S. <strong>aureus</strong> <strong>dans</strong> <strong>les</strong>fromages d’iciL’activité <strong>de</strong>s phages staphylocoques a lieu durantla fabrication et la maturation fromagère9


1. Sélection et i<strong>de</strong>ntification <strong>de</strong> souches <strong>de</strong> S.<strong>aureus</strong> isolées du milieu laitier2. Collection, isolement et caractérisation <strong>de</strong>sphages <strong>de</strong> S. <strong>aureus</strong>3. Test <strong>de</strong> la résistance <strong>de</strong>s phages à <strong>de</strong>uxétapes <strong>de</strong> la fabrication <strong>de</strong> fromage Cheddar4. Test <strong>de</strong> l’efficacité <strong>de</strong> cocktail contreS. <strong>aureus</strong> durant une fabrication <strong>de</strong> fromageCheddar10


ooQuarante souches <strong>de</strong> S. <strong>aureus</strong> isolées <strong>de</strong> lamammite envoyées par le RCRMBooToutes <strong>les</strong> provinces canadiennesDifférents types d’échantillonso Score <strong>de</strong> mammite entre 0 et 3Une souche <strong>de</strong> S. <strong>aureus</strong> isolée <strong>de</strong> fromage aulait cru québécois.12


Trois famil<strong>les</strong> <strong>de</strong> Caudovira<strong>les</strong>, ADN dbMyoviridaeSiphoviridae3 morphotypesPodoviridae2 morphotypesPyophage, Team1,Team2, phi812, K3A, M SA , LH1, LH1-MUTP68, 44AHJD15


Échantillons <strong>de</strong> lait cru:o Centrifugation5 ml d’échantillon <strong>de</strong> lait5 ml <strong>de</strong> TSB 2X contenantune culture bactérienne <strong>de</strong>S. <strong>aureus</strong>37 ºC16


Phage LH1o Siphoviridae <strong>de</strong> groupe B2o Phage infectieuxo Souche hôte: S. <strong>aureus</strong> 01o Solution turbi<strong>de</strong> après amplification17


Mutant naturel <strong>de</strong> LH1, LH1-MUTLysat clairEl Haddad, L., and S. Moineau. 2013. Appl. Environ. Microbiol. 79(8):2828-283218


Traitementthermique73 ºC pour 20 secAffinage1 mois à 4 ºC21


oTempérature/durée du traitement thermique:o73 ºC pendant 20 secon<strong>de</strong>soMilieu:oLait pasteurisé ultrafiltré à 2% <strong>de</strong> M.G.oPhages:Myoviridae Podoviridae Siphoviridae CocktailsTeam1 P68 LH1-MUT phi812/K/LH1-MUTphi812 44AHJD phi2 phi812/P68/LH1-MUTK3AM SA 22


Réduction <strong>de</strong> la concentration phagique (unités <strong>de</strong> log)après 73ºC pour 20 secon<strong>de</strong>sSiphoviridaeLH1-MUT1,4 ±0,5phi20,6 ±0,1M SA2,9 ±0,43A4,2 ±0,2MyoviridaeTeam14,0 ±1,0phi8122,6 ±0,5K3,5 ±0,2PodoviridaeP682,7 ±0,144AHJD3,6 ±0,7Cocktailsphi812/K/LH1-MUT2,2 ±0,7phi812/P68/LH1-MUT2,8 ±0,323


Réduction <strong>de</strong> la concentration phagique (unités <strong>de</strong> log)après 73ºC pour 20 secon<strong>de</strong>sSiphoviridaeLH1-MUT1,4 ±0,5phi20,6 ±0,1M SA2,9 ±0,43A4,2 ±0,2MyoviridaeTeam14,0 ±1,0phi8122,6 ±0,5K3,5 ±0,2PodoviridaeP682,7 ±0,144AHJD3,6 ±0,7Cocktailsphi812/K/LH1-MUT2,2 ±0,7phi812/P68/LH1-MUT2,8 ±0,324


Traitementthermique73 ºC pour 20 seco Résistance <strong>de</strong>s phagesLH1-MUT et phi2, isolésdu lait cruAffinage1 mois à 4 ºC25


o Conditions du caillé modèle :o 1,77% <strong>de</strong> selo 39% d’humiditéo Cheddar lyophiliséo Réduction du pH à 5,5 avec <strong>de</strong> l’eau acidifiée(Adapté <strong>de</strong> Lessard et al. 2012. Appl. Environ. Microbiol.)o Phage à une concentration <strong>de</strong> 10 7 ufp/mlMyoviridae Podoviridae Siphoviridae Cocktails <strong>de</strong> phagesTeam1KP6844AHJDLH1-MUT3Aphi2T1/P68/LH1-MUTK/44AHJD/phi2o Temps d’échantillonnage: 0, 4, 7, 14 et 28 jours26


+10 grammesCaillé modèleEauacidifiéeEaupeptonée95% <strong>de</strong> vi<strong>de</strong>TSA 90 ml <strong>de</strong>citrate <strong>de</strong>sodium à45ºC4ºC27


Log 10 concentration phagique (ufp/ml)Résistance <strong>de</strong>s phages <strong>dans</strong> du caillé modèle, pH 5,5 à 4ºC98765430 JOUR4 JOURS7 JOURS14 JOURS28 JOURS210LH1-MUT 3A P68 44AHJD K TEAM1 PHI2 COCKT1 COCKT2(T1-P68-MUT) (K-44AHJD-2)28


Traitementthermique73 ºC pour 20 seco Résistance <strong>de</strong>s phagesLH1-MUT et phi2, isolésdu lait cruAffinage1 mois à 4 ºCo Résistance <strong>de</strong> tous <strong>les</strong>phages29


o En présence <strong>de</strong> S. <strong>aureus</strong> :o Production d’entérotoxines staphylococciquesen présence/absence <strong>de</strong> phageso Efficacité <strong>de</strong> cocktails <strong>de</strong> phagesstaphylococciques durant la fabrication et lamaturation <strong>de</strong> fromage Cheddar30


Phages <strong>de</strong> ferments lactiquesSpécifiques aux souches <strong>de</strong>fermentsPetit spectre lytiqueResponsable <strong>de</strong> rejets <strong>de</strong> lots<strong>de</strong> lait et <strong>de</strong> fromagePhages <strong>de</strong> S. <strong>aureus</strong>Spécifiques auxstaphylocoquesPolyvalentsPeuvent réduire le nombre <strong>de</strong>rejets (?)o Phages polyvalentso Au-<strong>de</strong>là <strong>de</strong> l’espèceo Ferment alimentaire GRAS, S. xylosuso Reproduction du phage sur une souche nonpathogène31


o Phage Team1 amplifié avec S. <strong>aureus</strong>/ S. xylosus:o Pas <strong>de</strong> différences sur 140Kb séquencés etanalysés32


o Isolement d’agents <strong>de</strong> biocontrôle plus stab<strong>les</strong> etrésistants à l’étape <strong>de</strong> chauffageo Utilisation <strong>de</strong> souches isolées du milieu laitiero Stratégie <strong>de</strong> sélection <strong>de</strong> phages polyvalentso Les phages amplifiés sur S. <strong>aureus</strong> et S. xylosus sontgénétiquement i<strong>de</strong>ntiques33


o Hypothèseo Objectifso Sélectiono Paramètreso Types <strong>de</strong> laito Inoculation initialeo Agitationo Moment d’ajout du phageo Fromage Cheddaro Conclusiono Perspectives


L’activité <strong>de</strong>s phages anti-staphylocoquesdépend <strong>de</strong> différents paramètres liés au type<strong>de</strong> lait et au processus <strong>de</strong> la fabricationfromagère


1. Sélection d’un phage stable <strong>dans</strong> le laitcru à partir d’une collection <strong>de</strong> phages2. Détermination <strong>de</strong>s paramètres favorisantl’action lytique du phage <strong>dans</strong> le lait3. Suivie <strong>de</strong> l’action phagique durant unemini-fabrication fromagère <strong>de</strong> typeCheddar


%Lait moyennementcontaminéStaphylocoques totaux= 10 2 UFC/mL350300250200150100KTeam 2Φ812PyophageLait plus contaminéStaphylocoques totaux =10 4 UFC/mL50Team 100 5 10 15 20 25temps (h)Suivi <strong>de</strong>s titres phagiques <strong>dans</strong> un lait cru


%10090807060504030201000 1 2 3 4 5temps (h)KTeam 2Φ812PyophageTeam 1Suivi <strong>de</strong>s titres phagiques <strong>dans</strong> le temps


Étapes du test <strong>de</strong> Pearce(Pearce L.E., 1969. J. Dairy Technol.)


o Staphylocoque à coagulase négative (SCN)o Ferment pour la fabrication <strong>de</strong>s saucissonso Microflore <strong>de</strong> surface pour <strong>les</strong> vian<strong>de</strong>s séchées et<strong>les</strong> fromages (Munster)


Suivi du titre phagique du Phage K <strong>dans</strong> différentstypes <strong>de</strong> lait


Croissance <strong>de</strong> S. xylosus <strong>dans</strong> du TSB avec <strong>de</strong>s contaminationsinitia<strong>les</strong> différentes en présence du phage K• CI3 = 10 3 UFC/mL• CI5 = 10 5 UFC/mL• CI6 = 10 6 UFC/mL• Phage K à une MOI = 100


Croissance <strong>de</strong> S. xylosus <strong>dans</strong> du TSB en présence duphage K• Contamination initiale = 10 5 UFC/mL• Phage K à une MOI = 100


Croissance <strong>de</strong> S. xylosus <strong>dans</strong> du TSB en présence duphage K• Contamination initiale =10 6 UFC/mL• Phage K à une MOI = 10


o Lait pasteuriséo Contamination initiale = 10 5 , 10 6 UFC/mLo L’ajout du phage : au début <strong>de</strong> la fabricationo Gar<strong>de</strong>r une légère agitation en continue


Bilan <strong>de</strong> S. xylosus et du phage K en % durant la fabrication<strong>de</strong> CheddarS. xylosusPhage KLait Caillé Lactosérum


o L’activité lytique <strong>de</strong>s phages anti-staphylocoques estoptimale <strong>dans</strong> le lait pasteuriséo L’activité dépend <strong>de</strong> la contamination initiale enstaphylocoques (contamination minimale <strong>de</strong>10 5 UFC/mL)o Une faible agitation en continue est nécessaire pourfavoriser le contact entre le phage et sa cellule hôteo Durant la fabrication, <strong>les</strong> phages semblent être retenus<strong>dans</strong> le cailléo Dans une matrice soli<strong>de</strong> leur action semble être inhibé


o Utilisation d’un cocktail <strong>de</strong> phageso Production <strong>de</strong> fromages Cheddar à partir <strong>de</strong> laitcontaminé avec une souche <strong>de</strong> S. <strong>aureus</strong> en présenced’un cocktail <strong>de</strong> phageso Efficacité <strong>de</strong>s phages <strong>dans</strong> d’autres types <strong>de</strong>production fromagère


o Diminution <strong>de</strong>s risques <strong>de</strong> contaminationalimentaires par S. <strong>aureus</strong>o Amélioration <strong>de</strong> l’innocuité <strong>de</strong>s aliments50


Laboratoire du Prof. Sylvain MoineauLaboratoire du Dr Daniel St-GelaisoooProf. Steve LabrieDr Clau<strong>de</strong> ChampagneOrganismes subventionnaires:AAC, MAPAQ, Novalait etFRQNT

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