13.06.2013 Views

Introduzione ai composti volatili degli oli vergini di ... - Archivio ARSIA

Introduzione ai composti volatili degli oli vergini di ... - Archivio ARSIA

Introduzione ai composti volatili degli oli vergini di ... - Archivio ARSIA

SHOW MORE
SHOW LESS

You also want an ePaper? Increase the reach of your titles

YUMPU automatically turns print PDFs into web optimized ePapers that Google loves.

<strong>Introduzione</strong> <strong>ai</strong> <strong>composti</strong> <strong>volatili</strong> <strong>degli</strong> <strong>oli</strong> <strong>vergini</strong> <strong>di</strong> <strong>oli</strong>va<br />

Marzia Migliorini, Giacomo Gianni<br />

Laboratorio Chimico Merceologico-Azienda Speciale della CCIAA <strong>di</strong> Firenze<br />

Med<strong>oli</strong>va, 17 maggio 2010-Centro affari e Convegni “sala Convegni”


Che cosa sono i <strong>composti</strong> <strong>volatili</strong>?<br />

Sono <strong>composti</strong> con basso peso molecolare (meno <strong>di</strong> 300 Da) che vaporizzano a<br />

temperatura ambiente.<br />

Questi <strong>composti</strong> raggiungono l’epitelio olfattivo, si <strong>di</strong>ssolvono nel muco e hanno la<br />

capacità <strong>di</strong> legarsi <strong>ai</strong> recettori olfattivi per fornire sensazioni odorose.<br />

L’aroma <strong>degli</strong> <strong>oli</strong> <strong>di</strong> <strong>oli</strong>va è attribuito a numerose molecole: aldei<strong>di</strong>, alc<strong>oli</strong>, esteri,<br />

idrocarburi, chetoni, furani ..<br />

I <strong>composti</strong> <strong>volatili</strong> vengono prodotti principalmente per ossidazione <strong>degli</strong> aci<strong>di</strong> grassi :<br />

enzimi endogeni delle piante sono responsabili dell’aroma positivo <strong>degli</strong> <strong>oli</strong> <strong>di</strong> <strong>oli</strong>va,<br />

mentre l’ossidazione chimica e l’attività microbica <strong>di</strong> enzimi esogeni portano entrambi<br />

alla formazione <strong>di</strong> <strong>composti</strong> <strong>volatili</strong> associati <strong>ai</strong> <strong>di</strong>fetti sensoriali.<br />

I <strong>composti</strong> <strong>volatili</strong> vengono rilasciati in frangitura (circa 70-80%) e continuano a<br />

formarsi anche in gramolatura (circa 20-30%).


Formazione dei <strong>composti</strong> <strong>volatili</strong><br />

da Angerosa et al., 2004


LOX pathways: produzione <strong>composti</strong> <strong>volatili</strong> C6 e C5<br />

LA LnA<br />

9-idroperox 13-idroperox 9-idroperox 13-idroperox<br />

13-alcossi ra<strong>di</strong>cali<br />

NAD - + H +<br />

NADH<br />

LOX<br />

HPL<br />

Esanale trans-2-esenale<br />

Esan-1-olo<br />

Acetil CoA ACT<br />

ADH<br />

Esil acetato<br />

Lipi<strong>di</strong> Olive<br />

Acyl<br />

Hydrolase<br />

ADH<br />

trans-2-esenolo cis-3-esen-1-olo<br />

ACT<br />

LOX<br />

Isomerasi<br />

HPL<br />

cis-3-esenale<br />

ADH<br />

ACT<br />

trans-2-esenil acetato cis-3-esenil acetato<br />

Dimeri<br />

pentenici<br />

Ra<strong>di</strong>cali pentene<br />

C6 C5<br />

2-penten-1-olo<br />

1-penten-3-olo<br />

2-pentenale<br />

1-penten-3-one<br />

Reg.CE 2568/91 e succ.mo<strong>di</strong>fiche:<br />

Fruttato: insieme delle sensazioni olfattive, <strong>di</strong>pendenti dalla varietà delle <strong>oli</strong>ve, caratteristiche dell'<strong>oli</strong>o ottenuto da frutti sani e<br />

freschi, ver<strong>di</strong> o maturi, percepite per via <strong>di</strong>retta e/o retronasale.


Rancido<br />

Reg.CE 2568/91 e succ. mo<strong>di</strong>fiche: flavor <strong>degli</strong> <strong>oli</strong> che hanno subito un processo<br />

ossidativo intenso (a carico <strong>degli</strong> aci<strong>di</strong> grassi insaturi).<br />

I <strong>composti</strong> <strong>volatili</strong> che si formano sono prodotti dalla frammentazione <strong>di</strong><br />

idroperossi<strong>di</strong>, che sono privi <strong>di</strong> odore e, quin<strong>di</strong>, non percettibili da un punto <strong>di</strong><br />

vista olfattivo.<br />

La formazione <strong>di</strong> idroperossi<strong>di</strong> avviene per via ra<strong>di</strong>calica in presenza <strong>di</strong><br />

ossigeno, la sua entità <strong>di</strong>pende dalla composizione <strong>di</strong> aci<strong>di</strong> grassi insaturi, dalla<br />

quantità e tipologia <strong>di</strong> antiossidanti naturali e ster<strong>oli</strong> ed è catalizzata da luce,<br />

temperatura, metalli e pigmenti.<br />

Questo <strong>di</strong>fetto è legato ad una non idonea<br />

conservazione dell’<strong>oli</strong>o.<br />

Si tratta principalmente <strong>di</strong> aldei<strong>di</strong> sature e<br />

insature (C7-C12) prodotte dall’ossidazione <strong>di</strong><br />

aci<strong>di</strong> grassi insaturi, ma anche <strong>di</strong> aci<strong>di</strong><br />

carbossilici dovuti all’ossidazione delle aldei<strong>di</strong>:<br />

quest’ultimi sono in<strong>di</strong>ce <strong>di</strong> un alto livello <strong>di</strong><br />

ranci<strong>di</strong>tà, apparendo alla fine del processo<br />

ossidativo.


Riscaldo<br />

Reg.CE 2568/91 e succ. mo<strong>di</strong>fiche: flavor caratteristico dell'<strong>oli</strong>o ottenuto da <strong>oli</strong>ve<br />

ammassate o conservate in con<strong>di</strong>zioni tali da aver sofferto un avanzato grado <strong>di</strong><br />

fermentazione anaerobica.<br />

La formazione dei <strong>composti</strong> <strong>volatili</strong> responsabili del <strong>di</strong>fetto riscaldo avviene per via<br />

enzimatica in con<strong>di</strong>zioni <strong>di</strong> anaerobiosi. I microrganismi esogeni coinvolti sono<br />

aerobacter e escherichia all’inizio dello stoccaggio, clostri<strong>di</strong>a, pseudomonas e<br />

serratia a tempi lunghi <strong>di</strong> stoccaggio. L’azione <strong>di</strong> questi microrganismi è legata al<br />

degrado <strong>degli</strong> aminoaci<strong>di</strong>. L’entità (e la tipologia) del <strong>di</strong>fetto <strong>di</strong>pende dal tipo <strong>di</strong><br />

microrganismi presenti nell’ambiente circostante, dalla temperatura e dall’umi<strong>di</strong>tà,<br />

nonché d<strong>ai</strong> tempi <strong>di</strong> stoccaggio.<br />

Questo <strong>di</strong>fetto è legato ad una non idonea conservazione delle <strong>oli</strong>ve prima della<br />

lavorazione (elevate temperature, eccessiva umi<strong>di</strong>tà, con<strong>di</strong>zioni <strong>di</strong> anaerobiosi..) ed<br />

anche a gramolazioni effettuate ad elevate temperature.<br />

Si tratta principalmente <strong>di</strong> esteri come etil butanoato, etil propanoato e butil acetato,<br />

ma anche <strong>di</strong> ottano e 3-metil-1-butanolo. La presenza <strong>di</strong> pseudomonas per degrado<br />

<strong>di</strong> alc<strong>oli</strong> terpenici produce 6-metil-5-epten-2-one, mentre Clostri<strong>di</strong>um e<br />

Propionibacterium danno luogo a acido butanoico e propanoico.


Morchia<br />

Reg.CE 2568/91 e succ. mo<strong>di</strong>fiche: flavor caratteristico dell'<strong>oli</strong>o rimasto in<br />

contatto con i fanghi <strong>di</strong> decantazione, che hanno anch'essi subito un processo<br />

<strong>di</strong> fermentazione anaerobica, in depositi sotterranei e aerei.<br />

La formazione dei <strong>composti</strong> <strong>volatili</strong> responsabili del <strong>di</strong>fetto morchia avviene per<br />

via enzimatica. Si tratta <strong>di</strong> fermentazioni anaerobiche.<br />

Questo <strong>di</strong>fetto è legato alla fase <strong>di</strong> stabilizzazione dell’<strong>oli</strong>o <strong>di</strong> <strong>oli</strong>va dopo la<br />

produzione ed, in particolare, ad assenza oppure mal condotta filtrazione e al<br />

conseguente prolungato contatto dell’<strong>oli</strong>o con il se<strong>di</strong>mento.<br />

Le molecole responsabili <strong>di</strong> questo <strong>di</strong>fetto sono principalmente derivati dell’acido<br />

butirrico, come butirrati ed 2-etil butirrati.<br />

In letteratura sono presenti poche informazioni relative alla morchia.


Muffa<br />

Reg.CE 2568/91 e succ. mo<strong>di</strong>fiche: flavor caratteristico dell'<strong>oli</strong>o ottenuto da frutti<br />

nei quali si sono sviluppati abbondanti funghi e lieviti per essere rimasti<br />

ammassati per molti giorni e in ambienti umi<strong>di</strong>.<br />

La formazione dei <strong>composti</strong> <strong>volatili</strong> responsabili del <strong>di</strong>fetto <strong>di</strong> muffa avviene per<br />

via enzimatica anche in con<strong>di</strong>zioni <strong>di</strong> anaerobiosi. I microrganismi esogeni<br />

coinvolti sono penicillium e aspergillus. Questi microrganismi agiscono sugli aci<strong>di</strong><br />

grassi liberi, ossidand<strong>oli</strong> (Lox Pathway delle muffe) e producendo metil chetoni<br />

(2-eptanone e 2-nonanone). Altri funghi (alternaria, fusarium, rhizopus) meno<br />

abbondanti sono capaci <strong>di</strong> ridurre i <strong>composti</strong> carbonilici e esterificare<br />

parzialmente alchil derivati.<br />

L’entità (e la tipologia) del <strong>di</strong>fetto <strong>di</strong>pende dalla temperatura e dall’umi<strong>di</strong>tà,<br />

nonché d<strong>ai</strong> tempi <strong>di</strong> stoccaggio.<br />

Questo <strong>di</strong>fetto è legato ad una non idonea conservazione delle <strong>oli</strong>ve prima della<br />

lavorazione (elevate temperature, eccessiva umi<strong>di</strong>tà, con<strong>di</strong>zioni <strong>di</strong> anaerobiosi..).<br />

Tale <strong>di</strong>fetto si riscontra anche in <strong>oli</strong>ve raccolte a terra.<br />

In presenza <strong>di</strong> muffe si ha una riduzione notevole dei <strong>composti</strong> C6 e la<br />

formazione <strong>di</strong> <strong>composti</strong> C8. Si riscontrano come caratteristici <strong>composti</strong> 1-octen-<br />

3-olo, 3-metil-butan-1-olo e 6-metil-5-epten-2-one.


Avvinato<br />

Reg.CE 2568/91 e succ. mo<strong>di</strong>fiche: flavor caratteristico <strong>di</strong> alcuni <strong>oli</strong> che ricorda<br />

quello del vino o dell'aceto. Esso è dovuto essenzialmente a un processo <strong>di</strong><br />

fermentazione aerobica delle <strong>oli</strong>ve o dei resti <strong>di</strong> pasta <strong>di</strong> <strong>oli</strong>ve in fisc<strong>oli</strong> non lavati<br />

correttamente, che porta alla formazione <strong>di</strong> acido acetico, acetato <strong>di</strong> etile ed<br />

etanolo.<br />

La formazione dei <strong>composti</strong> <strong>volatili</strong> responsabili del <strong>di</strong>fetto avvinato avviene per<br />

via enzimatica. I microrganismi esogeni coinvolti sono batteri lattici ed acetici. I<br />

processi fermentativi portano a formazione <strong>di</strong> acido acetico, etil acetato e etanolo.<br />

L’entità (e la tipologia) del <strong>di</strong>fetto <strong>di</strong>pende dal tipo <strong>di</strong> microrganismi presenti<br />

nell’ambiente circostante, dalla temperatura e dall’umi<strong>di</strong>tà, nonché d<strong>ai</strong> tempi <strong>di</strong><br />

stoccaggio.<br />

Questo <strong>di</strong>fetto è legato ad una non idonea conservazione delle <strong>oli</strong>ve prima della<br />

lavorazione (elevate temperature, eccessiva umi<strong>di</strong>tà, <strong>di</strong>sponibilità <strong>di</strong> ossigeno..)<br />

ma anche a una non corretta gramolatura e separazione .<br />

Le molecole caratteristiche <strong>di</strong> questo <strong>di</strong>fetto sono: acido acetico, etil acetato e<br />

etanolo, ma si riscontrano anche ottano, 1,2-butane<strong>di</strong>olo, 1-pentanolo, 2butanolo,<br />

2-metilbutanolo, 2-ottanone, 2-metil-1-butanolo e aci<strong>di</strong> carbossilici C2-<br />

C7.


Riferimenti bibliografici<br />

•Angerosa, F., Servili, M., Selvaggini, R., Taticchi, A., Esposto, S., Montedoro, G.F., Volatile compounds in<br />

virgin <strong>oli</strong>ve oil: occurrence and their relationship with the quality. J. Chromatogr., A, 2004,1054, 17-31.<br />

•Kalua, C.M., Allen, M.S., Bedgood Jr, D.R., Bishop, A.G., Prenzler, P.D., Robards, K., Olive oil volatile<br />

compounds, flavour development and quality: A critical rewiew. Food Chem., 2007,100, 273-286.<br />

•Morales, M.T., Luna, G., Apparicio, R., Comparative study of virgin <strong>oli</strong>ve oil sensory defects. Food Chem.,<br />

2005, 91, 293-301.<br />

•Frankel, E.N., Chemestry of extra Virgin Olive Oil: Adulteration, Oxidative stability, and Antioxidants. J.<br />

Agric. Food Chem. In press.


Sostanze <strong>volatili</strong>: HS-SPME-GC-MS<br />

Marzia Migliorini, Giacomo Gianni,<br />

Laboratorio Chimico Merceologico Azienda Speciale della CCIAA <strong>di</strong> Firenze<br />

Med<strong>oli</strong>va, 17 maggio 2010-Centro affari e Convegni “sala Convegni”


1<br />

Progetto AROMOLIO<br />

La finalità del progetto AROMOLIO è stata quella <strong>di</strong> poter, attraverso l’impiego <strong>di</strong><br />

un metodo analitico semplice, riproducibile, affidabile e veloce, escludere dalla<br />

categoria <strong>di</strong> extravergine <strong>oli</strong> che presentino nella frazione volatile i markers legati<br />

<strong>ai</strong> <strong>di</strong>fetti <strong>di</strong> rancido, avvinato, morchia, riscaldo e muffa.<br />

Identificazione, a seguito <strong>di</strong> opportuna estrazione e<br />

separazione, <strong>di</strong> <strong>composti</strong> della frazione volatile caratteristici<br />

dei <strong>di</strong>fferenti <strong>di</strong>fetti organolettici (markers), la cui presenza e<br />

concentrazione <strong>di</strong> soglia possa consentire la in<strong>di</strong>viduazione <strong>di</strong><br />

<strong>oli</strong> <strong>di</strong>fettosi;<br />

2<br />

Sviluppo <strong>di</strong> un naso elettronico con sensori<br />

ottimizzati.<br />

DHS<br />

HS-SPME


Contaminazione<br />

fibra<br />

La tecnica HS-SPME-GC-MS<br />

L’SPME è un processo <strong>di</strong> equilibrazione<br />

multifase introdotto nei primi anni ‘90.<br />

Analisi dello spazio <strong>di</strong> testa<br />

(HS-SPME)<br />

X X<br />

Estrazione <strong>degli</strong> analiti<br />

rapida (minimizza gli<br />

interferenti)<br />

Solventi


Segmenti <strong>di</strong> fibre <strong>di</strong> silice fusa ricoperti <strong>di</strong> un<br />

opportuno materiale (es. p<strong>oli</strong><strong>di</strong>metilsilossano)<br />

sigillati in un sistema “a siringa”.<br />

Estrazione analita e Preconcentrazione<br />

in un unico step<br />

Fibre Absorbenti Fibre Adsorbenti<br />

• Estraggono con un effetto “spugna”: gli analiti<br />

migrano dentro e fuori dal rivestimento “liquid-like”<br />

• Efficienza funzione dello spessore del rivestimento<br />

e della grandezza delle molecole<br />

• Non c’è competizione per i siti<br />

• Alta capacità<br />

• Intrappolano fisicamente le molecole o ci<br />

stabiliscono interazioni (VdW o H)<br />

• C’è competizione per i siti<br />

• Limitata capacità<br />

• Limite <strong>di</strong> rilevabilità più basso


QUANTITA’<br />

ESTRATTA<br />

Funzione dello spessore<br />

del rivestimento della<br />

fibra e della costante <strong>di</strong><br />

<strong>di</strong>stribuzione dell’analita<br />

TEMPO DI<br />

ESTRAZIONE<br />

Funzione del PM e del<br />

punto <strong>di</strong> ebollizione<br />

Nelle fasi miste, le microsfere<br />

porose <strong>di</strong> DVB sono<br />

immobilizzate sulla fibra<br />

utilizzando Carbowax o PDMS<br />

come collanti<br />

EFFICIENZA<br />

SELETTIVITA’<br />

Funzione del tipo <strong>di</strong><br />

rivestimento della fibra e<br />

del suo spessore


Poiché il rivestimento è a strati, le molecole<br />

più gran<strong>di</strong> sono bloccate d<strong>ai</strong> macro e meso<br />

pori dello strato esterno (DVB), mentre<br />

quelle più piccole migrano attraverso<br />

questo strato per finire trattenute d<strong>ai</strong><br />

micropori dello strato interno in Carboxen<br />

Fibre in commercio<br />

Strato <strong>di</strong> DVB (sospeso in PDMS)<br />

sopra uno strato <strong>di</strong> Carboxen<br />

(sospeso in PDMS)


SPME<br />

Processo <strong>di</strong> equilibrazione multifase<br />

L’estrazione è quantitativa quando si<br />

raggiunge l’equilibrio tra le fasi, ovvero<br />

quando la quantità <strong>di</strong> analita estratto è<br />

costante ed in<strong>di</strong>pendente dal tempo <strong>di</strong><br />

esposizione<br />

Principali Vantaggi<br />

SPME<br />

Semplicità<br />

Rapi<strong>di</strong>tà<br />

Sensibilità<br />

Economicità<br />

Versatilità<br />

Efficace alternativa <strong>ai</strong> meto<strong>di</strong> tra<strong>di</strong>zionali<br />

Funzione dell’analita, ma comunque inferiore ad 1h<br />

Fino a concentrazioni nell’or<strong>di</strong>ne dei ppb<br />

Fibre riutilizzabili, niente costi per solventi<br />

Uso in GC, GC-MS con inj. S/SL o on-column


1 2 3<br />

Adsorbimento da<br />

parte della fibra<br />

SPME <strong>degli</strong> analiti<br />

dello spazio <strong>di</strong> testa<br />

(HS-SPME)<br />

<strong>Introduzione</strong> fibra<br />

SPME nell’iniettore<br />

del GC-MS<br />

(desorbimento)<br />

Determinazione<br />

quali/quantitativa dei<br />

<strong>composti</strong> presenti in<br />

calibrazione


Aumento quantità <strong>di</strong> <strong>oli</strong>o<br />

Con<strong>di</strong>zioni Sperimentali<br />

4,3 g <strong>di</strong> <strong>oli</strong>o + 0,1 g <strong>di</strong> standard interno<br />

(2-metil-4-pentanolo)<br />

Messa a punto del metodo<br />

Fibra nuova<br />

Adsorbimento competitivo<br />

e/o fenomeni <strong>di</strong> saturazione<br />

Con<strong>di</strong>zionamento della fibra:<br />

260°C per 60’ in corrente <strong>di</strong> N 2<br />

Diminuzione quantità <strong>di</strong> <strong>oli</strong>o Limiti <strong>di</strong> rilevabilità


Con<strong>di</strong>zioni<br />

Operative<br />

FIBRA<br />

Con<strong>di</strong>zioni<br />

Gascromatografiche<br />

- 5’ <strong>di</strong> preincubazione a 40°C;<br />

- 40’ <strong>di</strong> estrazione in continua agitazione;<br />

- Desorbimento nell’iniettore a 260°C per 2’;<br />

- Purge fibra a 260°C per 90”.<br />

- 36°C per 10’;<br />

- 4°C/min fino a 156°C;<br />

- 10°C/min fino a 220°C;<br />

- 220°C per 1’.<br />

Flusso costante <strong>di</strong> He a 0.8 ml/min.<br />

Colonna gas-cromatografica capillare Zebron FFAP,<br />

30m, 0.25mm i.d., 0.25µm spessore film.


Calibrazione<br />

Pentanale<br />

Set <strong>di</strong> 6 standard a<br />

concentrazione crescente<br />

(in <strong>oli</strong>o <strong>di</strong> <strong>oli</strong>va raffinato)<br />

Per ogni molecola viene<br />

determinata una curva <strong>di</strong><br />

calibrazione per interpolazione<br />

(equazione <strong>di</strong> secondo grado<br />

con origine forzata)<br />

83 <strong>composti</strong> in calibrazione


Molecole<br />

RT<br />

(min) Molecole<br />

RT<br />

(min)<br />

n-eptano 1.92 trans-2-eptanolo 20.60<br />

n-ottano 2.30 cis-2-penten-1-olo 20.68<br />

metile acetato 2.54 cis-2-esenil acetato 21.05<br />

etile acetato 3.05 6-metil-5-epten-2-one 21.10<br />

2 butanone 3.19 1-esanolo 21.90<br />

metile propionato 3.28 trans-3-esen-1-olo 22.28<br />

2-metilbutanale 3.33 cis-3-esen-1-olo 23.00<br />

3-metilbutanale 3.40 nonanale 23.12<br />

etile propionato 4.10 2-nonanone 23.46<br />

2-pentanone 4.50 2,4-esa<strong>di</strong>enale 23.55<br />

pentanale 4.54 trans-2-esen-1-olo 23.81<br />

1-penten-3-one 5.72 cis-2-esen-1-olo 24.16<br />

2-butanolo 5.84 2-ottanolo 24.24<br />

etile butirrato 6.24 trans-2-ottenale 24.32<br />

1-propanolo 6.42 cis-1-octen-3-olo 25.29<br />

butile acetato 7.81 1-eptanolo 25.52<br />

esanale 8.21 α-copaene 26.10<br />

Isobutanolo (2-meti-1prpanolo)<br />

8.90 2,4-epta<strong>di</strong>enale 26.60<br />

2-pentanolo 10.76 decanale 26.70<br />

trans-2-pentenale 11.00 benzaldeide 27.53<br />

1-penten-3-olo 13.20 trans-2-nonenale 27.82<br />

2-metil-4-pentanolo 13.50 ac. propionico 28.04<br />

2-eptanone 14.00 1-ottanolo 28.78<br />

3-penten-2-olo 14.12 ac. butirrico 30.75<br />

Molecole<br />

RT<br />

(min) Molecole<br />

RT<br />

(min)<br />

eptanale 14.15 trans-2-decenale 31.10<br />

limonene 14.40 1-nonanolo 31.83<br />

isopentanolo +2-metil-1butanolo<br />

15.59 2,4-nona<strong>di</strong>enale 32.82<br />

trans-2-esenale 15.85 ac. valerianico 33.90<br />

ocimene 16.74 2,4-deca<strong>di</strong>enale 35.80<br />

1-pentanolo 17.70 ac. esanoico 36.80<br />

esile acetato 18.50 gu<strong>ai</strong>acolo 37.20<br />

2-ottanone 18.90 benzene etanolo 38.63<br />

ottanale 19.07 ac. eptanoico 39.50<br />

1-octen-3-one 19.62 fenolo 40.84<br />

trans-2-penten-1-olo 20.30 etile gu<strong>ai</strong>acolo 41.27<br />

cis-3-esenile acetato 20.35 ac. ottanoico 41.74<br />

trans-2-eptenale 20.40 4-etile fenolo 43.60<br />

Composti in calibrazione<br />

Sviluppo progetto


1-penten-3-one<br />

Esanale<br />

trans-2-esenale<br />

ISTD<br />

1-esanolo<br />

Es. Cromatogramma STD in TIC<br />

Gu<strong>ai</strong>acolo


etil butirrato<br />

ISTD<br />

esanale<br />

ISTD<br />

Trans-2-esenale<br />

Trans-2-esenale<br />

1<br />

Cromatogramma caratteristico (in TIC) <strong>di</strong> un <strong>oli</strong>o vergine<br />

<strong>di</strong> <strong>oli</strong>va che non presenta <strong>di</strong>fetti.<br />

2<br />

ac. butirrico<br />

Cromatogramma caratteristico (in TIC) <strong>di</strong> un <strong>oli</strong>o vergine<br />

<strong>di</strong> <strong>oli</strong>va con <strong>di</strong>fetto <strong>di</strong> riscaldo.<br />

Per ogni composto in<br />

calibrazione viene stabilito un<br />

<strong>di</strong>stinto filtro <strong>di</strong> massa per la<br />

migliore integrazione<br />

Area Ratio<br />

mg/kg<br />

Pentanale


Risultati<br />

CORRELAZIONE<br />

LINEARE<br />

Panel Test HS-SPME-GC-MS<br />

CORRELAZIONE<br />

LINEARE<br />

L’analisi della correlazione fra due variabili misura la<br />

forza, o l’intensità, del legame fra le due variabili. Si<br />

misura me<strong>di</strong>ante l’in<strong>di</strong>ce <strong>di</strong> Brav<strong>ai</strong>s-Pearson detto<br />

“In<strong>di</strong>ce <strong>di</strong> correlazione lineare”. Tale in<strong>di</strong>ce<br />

assume valori che variano da -1 a +1: quando più<br />

due parametri sono correlati tra loro tanto più<br />

assumerà valori positivi vicini ad 1, viceversa per<br />

parametri non correlati tra loro.<br />

Sono scelte come<br />

rilevanti solo quelle con<br />

In<strong>di</strong>ce <strong>di</strong> Correlazione<br />

Lineare > 0.30


Valori dei coefficienti <strong>di</strong> correlazione lineare<br />

Molecole<br />

identificate: RI MU AV MO RA F<br />

1 1,3-penta<strong>di</strong>ene<br />

2 n-eptano 0.07 0.16 -0.05 0.16 0.54 -0.33<br />

3 n-ottano 0.04 0.58 -0.07 0.12 0.47 -0.50<br />

4 metile acetato 0.37 0.00 0.55 0.38 0.02 -0.16<br />

5 etile acetato 0.39 0.05 0.58 0.36 0.02 -0.20<br />

6 2 butanone 0.18 0.16 -0.02 0.08 0.26 -0.25<br />

7 metile propionato 0.53 0.07 0.42 0.68 0.19 -0.32<br />

8 2-metilbutanale 0.15 0.15 -0.05 0.08 -0.01 -0.09<br />

9 3-metilbutanale 0.12 0.32 -0.09 0.07 0.17 -0.25<br />

10 etanolo<br />

11 etile propionato 0.61 0.00 0.27 0.70 0.14 -0.31<br />

12 2-pentanone -0.02 -0.03 -0.09 -0.01 0.28 -0.14<br />

13 pentanale 0.04 0.55 -0.08 0.04 0.34 -0.41<br />

14 1-penten-3-one -0.32 -0.40 -0.17 -0.24 -0.27 0.73<br />

15 etile butirrato 0.64 -0.08 0.36 0.62 0.00 -0.18<br />

16 1-propanolo 0.02 0.38 -0.06 0.00 0.01 -0.26<br />

17 esanale -0.05 0.36 -0.15 0.04 0.55 -0.40<br />

18 Metile pentanoato<br />

19 isobutanolo 0.38 0.46 0.18 0.32 0.00 -0.49<br />

20 2-pentanolo 0.07 -0.01 -0.01 0.09 0.32 -0.20<br />

21 trans-2-pentenale -0.05 0.05 -0.11 -0.02 0.61 -0.21<br />

22 etile pentanoato<br />

23 1-penten-3-olo -0.37 -0.37 -0.08 -0.37 -0.19 0.64<br />

24 2-metil-4-pentanolo<br />

25 2-eptanone 0.18 0.12 0.00 0.23 0.57 -0.27<br />

26 eptanale 0.12 0.20 -0.06 0.20 0.67 -0.35<br />

Valori dei coefficienti <strong>di</strong> correlazione lineare<br />

Molecole identificate: RI MU AV MO RA F<br />

27 limonene 0.01 0.29 -0.02 0.09 0.04 -0.17<br />

28<br />

isopentanolo+2-metil-<br />

1-butanolo 0.35 0.48 0.15 0.30 -0.04 -0.42<br />

29 trans-2-esenale -0.16 -0.44 -0.05 -0.23 -0.15 0.44<br />

30 1-pentanolo 0.21 -0.01 0.06 0.28 0.53 -0.25<br />

31 esile acetato 0.10 -0.14 0.00 0.07 0.07 0.21<br />

32 2-ottanone 0.18 0.17 0.00 0.24 0.53 -0.29<br />

33 ottanale 0.08 0.25 -0.08 0.18 0.64 -0.36<br />

34 trans-2-penten-1-olo -0.02 0.07 0.24 0.14 0.28 -0.16<br />

35 cis-3-esenile acetato 0.02 -0.24 0.00 -0.03 -0.14 0.44<br />

36 cis-2-penten-1-olo -0.10 -0.49 0.10 -0.14 -0.08 0.56<br />

37 trans-2-eptenale 0.04 0.33 -0.11 0.10 0.68 -0.43<br />

38 cis-2-esenile acetato 0.24 -0.15 0.68 0.26 -0.02 0.01<br />

39 6-metil-5-epten-2-one -0.03 0.42 -0.12 0.10 0.51 -0.43<br />

40 1-esanolo 0.28 -0.11 0.08 0.28 0.38 -0.18<br />

41 trans-3-esen-1-olo 0.23 -0.31 0.44 0.14 0.10 0.09<br />

42 cis-3-esen-1-olo 0.05 -0.29 0.14 -0.02 -0.01 0.29<br />

43 2-nonanone -0.07 0.02 -0.04 -0.13 0.01 0.23<br />

44 nonanale 0.00 0.47 -0.10 0.09 0.45 -0.40<br />

45 2,4-esa<strong>di</strong>enale -0.21 -0.46 -0.06 -0.27 -0.29 0.65<br />

46 trans-2-esen-1-olo 0.30 -0.05 0.39 0.28 0.16 -0.15<br />

47 cis-2-esen-1-olo 0.27 -0.14 0.47 0.22 0.15 -0.12<br />

48 cis-1-octen-3-olo 0.05 0.65 -0.04 0.26 0.58 -0.51<br />

49 eptanolo 0.17 -0.09 0.00 0.17 0.58 -0.33<br />

50 α-copaene 0.13 -0.23 0.14 0.22 0.31 0.02


Valori dei coefficienti <strong>di</strong> correlazione lineare<br />

Molecole<br />

identificate: RI MU AV MO RA F<br />

51 metile nonanoato<br />

52 decanale -0.01 0.28 -0.09 0.05 0.46 -0.28<br />

53 benzaldeide 0.11 0.18 -0.02 0.21 0.68 -0.38<br />

54 trans-2-nonenale 0.09 0.40 -0.08 0.18 0.63 -0.43<br />

55 ac. acetico<br />

56 1-ottanolo 0.21 0.13 0.02 0.26 0.56 -0.31<br />

57 ac. propionico 0.22 0.29 0.09 0.34 0.35 -0.42<br />

58 metile decanoato<br />

59 1-nonanolo 0.15 0.43 -0.03 0.23 0.52 -0.50<br />

60 ac. pentanoico 0.33 0.11 0.11 0.42 0.55 -0.36<br />

61 gu<strong>ai</strong>acolo 0.07 0.67 -0.04 0.05 0.12 -0.42<br />

62 ac. esanoico 0.37 0.21 0.06 0.34 0.50 -0.36<br />

63 benzene etanolo 0.27 0.67 -0.02 0.21 0.15 -0.48<br />

64 ac. eptanoico 0.22 -0.02 0.05 0.24 0.46 -0.17<br />

65 fenolo 0.10 0.55 -0.03 0.13 0.35 -0.39<br />

66 etile gu<strong>ai</strong>acolo -0.02 0.71 -0.03 -0.01 0.05 -0.40<br />

67 ac. butirrico 0.56 0.01 0.17 0.59 0.05 -0.23<br />

68 3-penten-2-olo<br />

69 3-metil-butan-1-olo<br />

70 2-eptanolo 0.18 0.13 0.03 0.29 0.70 -0.35<br />

71 2-ottanolo 0.07 0.32 -0.04 0.15 0.36 -0.28<br />

72 2,4-epta<strong>di</strong>enale 0.11 0.09 -0.06 0.16 0.76 -0.37<br />

73 butile acetato 0.70 -0.05 0.29 0.64 -0.02 -0.16<br />

74 2-butanolo 0.69 0.16 0.18 0.67 0.04 -0.32<br />

75 trans-2-decenale 0.13 0.38 -0.05 0.19 0.66 -0.47<br />

76 2,4-nona<strong>di</strong>enale 0.13 0.19 -0.07 0.26 0.75 -0.42<br />

Valori dei coefficienti <strong>di</strong> correlazione lineare<br />

Molecole<br />

identificate: RI MU AV MO RA F<br />

77 2,4-deca<strong>di</strong>enale 0.06 0.19 -0.07 0.16 0.69 -0.41<br />

78 ac. ottanoico 0.21 -0.05 0.02 0.23 0.53 -0.17<br />

79 trans-2-ottenale 0.05 0.20 -0.10 0.17 0.71 -0.39<br />

80 ocimene 0.02 -0.01 -0.09 -0.06 -0.14 0.04<br />

81 1-otten-3-one 0.09 0.29 -0.08 0.17 0.69 -0.40<br />

82 4-etile fenolo 0.07 0.66 0.12 0.16 0.11 -0.50<br />

83 farnesene


Discussione<br />

AVVINATO Inquinamento ambientale<br />

Difetto originato dalla<br />

degradazione <strong>degli</strong><br />

zuccheri (acetobacter)<br />

RISCALDO<br />

Difetto originato nello<br />

stoccaggio delle <strong>oli</strong>ve<br />

(clostri<strong>di</strong>um e<br />

pseudomonas)<br />

Riscaldo Coeff.corr. OTV (ppm)<br />

Butil acetato 0.70 0.3000<br />

2-butanolo 0.69 0.1000<br />

Etil butirrato 0.64 0.0300<br />

Etil propionato 0.61 0.1000<br />

Acido butirrico 0.56 0.6500<br />

Metil propionato 0.53 0.0980<br />

Etil acetato 0.39 0.9400<br />

Isobutanolo 0.38 0.0110<br />

Metil acetato 0.37 1.7000<br />

Acido esanoico 0.37 0.7000<br />

2-metil-1-butanolo + 3-metil-1butanolo<br />

0.35 0.4800<br />

Acido pentanoico 0.33 0.6000<br />

E-2-esenolo 0.30 8.0000


MUFFA<br />

Difetto originato nello<br />

stoccaggio delle <strong>oli</strong>ve<br />

(aspergillus e penicillium)<br />

Etile gu<strong>ai</strong>acolo, gu<strong>ai</strong>acolo, benzene<br />

etanolo, fenolo ed il 4-etil fenolo<br />

risultano essere esclusivamente<br />

correlate al <strong>di</strong>fetto <strong>di</strong> muffa.<br />

Muffa Coeff.corr. OTV (ppm)<br />

Etil gu<strong>ai</strong>acolo 0.71<br />

Gu<strong>ai</strong>acolo 0.67 0.0200<br />

Benzene etanolo 0.67<br />

4-Etil fenolo 0.66 1.0000<br />

1-octen-3-olo 0.65 0.0100<br />

Ottano 0.58 0.9400<br />

Fenolo 0.55<br />

Pentanale 0.55 0.0120<br />

2-metil-1-butanolo + 3-metil-1butanolo<br />

0.48 0.4800<br />

Nonanale 0.47 0.1500<br />

Isobutanolo 0.46 0.0110<br />

Nonanolo 0.43 0.2800<br />

6-metil-5-epten-2-one 0.42 1.0000<br />

E-2-nonenale 0.40<br />

E-2-decenale 0.38 0.0100<br />

Propanolo 0.38 9.0000<br />

Esanale 0.36 0.0800<br />

E-2-eptenale 0.33 0.0010<br />

Isopentanale 0.32 0.0001<br />

2-ottanolo 0.32 0.1000


MORCHIA<br />

Olio rimasto in contatto con<br />

i fanghi <strong>di</strong> decantazione<br />

(poche informazioni)<br />

Morchia Coeff.corr. OTV (ppm)<br />

Etil propionato 0.70 0.1000<br />

Metil propionato 0.68 0.0980<br />

2-butanolo 0.67 0.1000<br />

Butil acetato 0.64 0.3000<br />

Etil butirrato 0.62 0.0300<br />

Acido butirrico 0.59 0.6500<br />

Acido pentanoico 0.42 0.6000<br />

Metil acetato 0.38 1.7000<br />

Etil acetato 0.36 0.9400<br />

Acido esanoico 0.34 0.7000<br />

Acido propionico 0.34 0.7200<br />

Isobutanolo 0.32 0.0110<br />

2-metil-1-butanolo + 3-metil-1-butanolo 0.30 0.4800


RANCIDO<br />

Difetto originato nello<br />

stoccaggio dell’<strong>oli</strong>o<br />

(ossidazione ac. grassi)<br />

Rancido Coeff.corr. OTV (ppm)<br />

2,4-epta<strong>di</strong>enale 0.76 0.3600<br />

2,4-nona<strong>di</strong>enale 0.75 2.5000<br />

E-2-ottenale 0.71 0.0040<br />

2-eptanolo 0.70 0.0100<br />

1-octen-3-one 0.69 0.0100<br />

2,4-deca<strong>di</strong>enale 0.69 2.1500<br />

Benzaldeide 0.68<br />

E-2-eptenale 0.68 0.0010<br />

Eptanale 0.67 0.5000<br />

E-2-decenale 0.66 0.0100<br />

Ottanale 0.64 0.3200<br />

E-2-nonenale 0.63<br />

E-2-pentenale 0.61 0.3000<br />

Eptanolo 0.58<br />

1-octen-3-olo 0.58 0.0100<br />

2-eptanone 0.57 0.3000<br />

Ottanolo 0.56<br />

Acido pentanoico 0.55 0.6000<br />

Esanale 0.55 0.0800<br />

Eptano 0.54 0.6700<br />

Pentanolo 0.53 3.0000<br />

2-ottanone 0.53 0.5100<br />

Acido ottanoico 0.53 3.0000<br />

Nonanolo 0.52 0.2800<br />

6-metil-5-epten-2-one 0.51 1.0000<br />

Acido esanoico 0.50 0.7000<br />

Rancido Coeff.corr. OTV (ppm)<br />

Ottano 0.47 0.9400<br />

Acido eptanoico 0.46 0.1000<br />

Decanale 0.46 0.6500<br />

Nonanale 0.45 0.1500<br />

Esanolo 0.38 0.4000<br />

2-ottanolo 0.36 0.1000<br />

Acido propionico 0.35 0.7200<br />

Fenolo 0.35<br />

Pentanale 0.34 0.0120<br />

2-pentanolo 0.32 0.2900<br />

Copaene 0.31<br />

Le molecole correlate con il<br />

descrittore <strong>di</strong> rancido<br />

derivano principalmente da<br />

fenomeni <strong>di</strong> autossidazione<br />

e <strong>di</strong> ossidazione enzimatica<br />

<strong>degli</strong> aci<strong>di</strong> grassi.


FRUTTATO<br />

Fruttato Coeff.corr. OTV( (ppm)<br />

1-penten-3-one 0.73 0.00073<br />

2,4-esa<strong>di</strong>enale 0.65<br />

1-penten-3-olo 0.64 0.4000<br />

Z-2-pentenolo 0.56 0.2500<br />

Z-3-esenil acetato 0.44 0.7500<br />

E-2-esenale 0.44 1.1250<br />

Le molecole aventi coefficiente <strong>di</strong> correlazione positivo con il fruttato sono<br />

caratterizzate da coefficienti <strong>di</strong> correlazione negativi per i descrittori<br />

associati alle note <strong>di</strong> <strong>di</strong>fetto, e ciò permette un’associazione univoca tra la<br />

presenza <strong>di</strong> queste specie e le note positive da esse conferite all’<strong>oli</strong>o.<br />

Per i descrittori negativi non sempre esistono correlazioni univoche tra<br />

la loro presenza e quella <strong>di</strong> determinate molecole. Ciò è dovuto al fatto<br />

che gli <strong>oli</strong> <strong>vergini</strong> e lampanti non presentano m<strong>ai</strong> un solo <strong>di</strong>fetto.


Correlazioni<br />

significative<br />

Concentrazione relativa?<br />

Percezione olfattiva?<br />

Tengono conto della <strong>di</strong>stribuzione dei dati<br />

relativi alla concentrazione <strong>di</strong> una data<br />

molecola sui campioni con profilo sensoriale<br />

stabilito da un panel<br />

Necessità <strong>di</strong> capire QUANTO una<br />

molecola ben correlata con un descrittore<br />

influisce sul profilo olfattivo <strong>di</strong> un <strong>oli</strong>o<br />

Quanto “pesa” in<br />

quantità sulla<br />

<strong>di</strong>stribuzione delle<br />

specie nell’HS?<br />

Quanto “pesa” sul<br />

profilo aromatico?


L’intensità <strong>di</strong> uno stimolo olfattivo è legato<br />

alla quantità in cui è presente una molecola,<br />

ma soprattutto alla sua SOGLIA DI<br />

PERCEZIONE<br />

Odour Threshold Value<br />

(OTV)<br />

La minima concentrazione <strong>di</strong> un<br />

composto capace <strong>di</strong> generare una<br />

sensazione olfattiva.<br />

Vari fattori influenzano l’intensità della sensazione olfattiva: la <strong>volatili</strong>tà, il carattere<br />

idrofobico, la forma, la struttura conformazionale delle molecole, la lunghezza della<br />

catena, l’isomeria cis-trans, la posizione dei doppi legami, il tipo e la posizione dei<br />

gruppi funzionali.<br />

A parità <strong>di</strong> concentrazione, all’olfatto sarà<br />

percepito <strong>di</strong> più il composto con OTV più basso.


L’OTV si determina <strong>di</strong>ssolvendo la sostanza in una matrice selezionata (<strong>oli</strong>o<br />

d’<strong>oli</strong>va raffinato e completamente deodorato) e identificando in seguito la<br />

concentrazione minima che è realmente avvertibile da una valutazione a panel<br />

test.<br />

Odour Activity Value (OAV) = Concentrazione molecola<br />

Odour Threshold Value (OTV)<br />

Molecole con un OTV più basso<br />

avranno un’ “attività all’odore” più<br />

marcata, ovvero saranno più facilmente<br />

percepibili all’olfatto.


Molecole<br />

identificate:<br />

Soglia <strong>di</strong><br />

percezione (ppm)<br />

1-penten-3-one 0.00073<br />

trans-2-esenale 1.1250<br />

Analoghe concentrazioni <strong>di</strong> questi due <strong>composti</strong><br />

<strong>composti</strong> comporteranno effetti <strong>di</strong>versi sulla<br />

sensazione olfattiva: l’1-penten-3-one ha un<br />

OAV <strong>di</strong> 3 or<strong>di</strong>ni <strong>di</strong> grandezza più elevato, quin<strong>di</strong><br />

più facilmente percepibile all’olfatto


HS-SPME-GC-MS Identificazione e quantificazione <strong>di</strong> 83 <strong>composti</strong><br />

Panel Test<br />

Correlazioni<br />

Valutazione profilo sensoriale<br />

MARKERS<br />

Odour Threshold OAV<br />

QUALI markers hanno maggior<br />

impatto olfattivo


Obiettivo del progetto: fornire informazioni per la messa a punto<br />

del Naso Elettronico attraverso la tecnica HS-SPME-GC-MS.<br />

Ulteriore obiettivo: valutare se la tecnica HS-SPME-GC-MS possa<br />

essere <strong>di</strong> supporto, anche da sola, alla attività dei panel.<br />

Applicando un metodo <strong>di</strong> regressione lineare (PLS) <strong>ai</strong> risultati<br />

ottenuti è possibile descrivere come i due set <strong>di</strong> dati (chimici e<br />

organolettici) sono legati tra loro.<br />

Modello<br />

pre<strong>di</strong>ttivo


1<br />

Fruttato<br />

Avvinato<br />

Morchia<br />

Riscaldo<br />

Rancido<br />

Muffa<br />

PCA risultati del panel<br />

L’avvinato caratterizza <strong>di</strong><br />

meno i campioni, ovvero<br />

in presenza <strong>di</strong> altri <strong>di</strong>fetti<br />

è meno <strong>di</strong>scriminante


2<br />

PCA risultati del panel<br />

Si scelgono i campioni<br />

etremi che meglio<br />

caratterizzano il modello e<br />

si valuta la PCA tra questi e<br />

i dati chimici<br />

Valutazione delle variabili<br />

(molecole) che meglio<br />

spiegano le <strong>di</strong>fferenze tra I<br />

campioni


3<br />

PCA risultati<br />

chimici HS-SPME<br />

Si eliminano le variabili<br />

(molecole) che meno<br />

riescono a caratterizzare il<br />

modello e si valuta la nuova<br />

PCA


4<br />

PCA risultati<br />

chimici HS-SPME<br />

Queste sono le variabili<br />

(molecole) che meglio<br />

spiegano le <strong>di</strong>fferenze tra i<br />

campioni selazionati nella<br />

PCA 2


5<br />

PLS<br />

Me<strong>di</strong>ante la regressione<br />

PLS si valutano le relazioni<br />

tra i due set <strong>di</strong> variabili<br />

(molecole scelte e<br />

descrittori)<br />

MODELLO<br />

PREDITTIVO


6 Mu10<br />

Predetto<br />

Mu14<br />

PREDIZIONE<br />

Muffa<br />

Valutazioni Panel Test<br />

Riscaldo Muffa Avvinato Morchia Rancido Fruttato<br />

B1 0.00 0.00 0.00 0.00 0.00 2.70<br />

B2 0.00 0.00 0.00 0.00 0.00 2.45<br />

B3 0.00 0.00 0.00 0.00 0.00 3.01<br />

B4 0.00 0.00 0.00 0.00 0.00 4.68<br />

Mu10 1.46 4.15 0.35 0.48 2.26 0.65<br />

Mu14 1.42 4.62 0.00 1.42 2.50 0.98


7<br />

Predetto<br />

Mu10<br />

Mu14<br />

PREDIZIONE<br />

Fruttato<br />

Valutazioni Panel Test<br />

Riscaldo Muffa Avvinato Morchia Rancido Fruttato<br />

B1 0.00 0.00 0.00 0.00 0.00 2.70<br />

B2 0.00 0.00 0.00 0.00 0.00 2.45<br />

B3 0.00 0.00 0.00 0.00 0.00 3.01<br />

B4 0.00 0.00 0.00 0.00 0.00 4.68<br />

Mu10 1.46 4.15 0.35 0.48 2.26 0.65<br />

Mu14 1.42 4.62 0.00 1.42 2.50 0.98


Sviluppo futuro<br />

acquisire una grande quantità <strong>di</strong> dati, sia chimici che organolettici,<br />

per ottimizzare il modello pre<strong>di</strong>ttivo


Bibliografia<br />

• Morales M.T., Rios J. J., and Aparicio R., Changes in the Volatile Composition of Virgin Olive Oil during Oxidation: Flavors and Off-Flavors, J.<br />

Agric. Food Chem., 1997, 45 (7), pp 2666–2673<br />

• Luna G., Morales M.T. and Aparicio R. Characterization of 39 varietal virgin <strong>oli</strong>ve oils by their volatile composition. Food Chemistry, 98, (2006)<br />

243-252<br />

•Jiménez A., Beltrán G., Aguilera M.P. Application of s<strong>oli</strong>d-phase microextraction to the analysis of volatile compounds in virgin <strong>oli</strong>ve oils. J. of<br />

Chromatography A, 1028 (2004) 321-324<br />

• Morales M.T., Luna G. and Aparicio R. Comparative study of virgin <strong>oli</strong>ve oil sensory defects. Food Chemistry, 91 (2005) 293-301<br />

• Kanavouras A., Kiritsakis A.., Hernandez R.J. Comparative study on volatile analysis of extra virgin <strong>oli</strong>ve oil by dynamic headspace and s<strong>oli</strong>d<br />

phase micro-extraction. Food Chemistry 2005, 90, 69–79<br />

• Contini M., Esti M. Effect of the matrix volatile composition in the headspace s<strong>oli</strong>d-phase microextraction analysis of extra virgin <strong>oli</strong>ve oil. Food<br />

Chemistry 2006, 94, 143–150<br />

• Cavalli J., Fernandez X., Lizzani-Cuvelier L. Loiseau A. Characterization of volatile compounds of French and Spanish virgin <strong>oli</strong>ve oils by HS-<br />

SPME: Identification of quality-freshness markers. Food Chemistry 2004, 88, 151–157<br />

• Benincasa C., De Nino A., Lombardo N., Perri E., Sindona G., Tagarelli A. Assay of Aroma Active Components of Virgin Olive Oils from Southern<br />

Italian Regions by SPME-GC/Ion Trap Mass Spectrometry J. Agric. Food Chem. 2003, 51, 733-741<br />

• Vichi S., Pizzale L., Conte L.S., Buxaderas S., L´opez-Tamames E. Simultaneous determination of volatile and semi-volatile aromatic hydrocarbons<br />

in virgin <strong>oli</strong>ve oil by headspace s<strong>oli</strong>d-phase microextraction coupled to gas chromatography/mass spectrometry. J. Chromatog. A, 2005, 1090, 146–<br />

154<br />

• Vichi S., Pizzale L., Conte L.S., Buxaderas S., López-Tamames E. S<strong>oli</strong>d-Phase Microextraction in the Analysis of Virgin Olive Oil Volatile<br />

Fraction: Mo<strong>di</strong>fications Induced by Oxidation and Suitable Markers of Oxidative Status - J. Agric. Food Chem. 2003, 51, 6564-6571<br />

• Aparicio R., Rocha S.M., Delga<strong>di</strong>llo I., Morales M.T. Detection of Rancid Defect in Virgin Olive Oil by the Electronic Nose - J. Agric. Food Chem.<br />

2000, 48, 853-860<br />

• Kalua C.M., Allen M.S., Bedgood Jr D.R., Bishop A.G., Prenzler P.D., Robards K. Olive oil volatile compounds, flavour development and quality: A<br />

critical review - Food Chemistry, Volume 100, Issue 1, 2007, Pages 273-286<br />

• Sue Ann Wercinski S<strong>oli</strong>d Phase Microextraction, A pratical guide<br />

• Janusz Pawliszyn S<strong>oli</strong>d Phase Microextraction, Theory and Practice


Vi ringraziamo per la cortese attenzione

Hooray! Your file is uploaded and ready to be published.

Saved successfully!

Ooh no, something went wrong!