Esponjas Marinhas da Bahia - Guia de Campo e ... - Porifera Brasil

ESPONJAS MARINHAS DA BAHIA 

Guia de campo e laboratório

SÉRIE LIVROS 

ESPONJAS MARINHAS DA BAHIA 

Guia de campo e laboratório 

Eduardo Hajdu 

† Solange Peixinho 

Júlio C.C. Fernandez 

Com prefácio de 

Marlene C. Peso-Aguiar 

Museu Nacional 

Rio de Janeiro 

2011

Universidade Federal do Rio de Janeiro 

Reitor – Prof. Carlos Antônio Levi da Conceição 

Museu Nacional 

Diretora – Claudia Rodrigues Ferreira de Carvalho 

Comissão de publicações do Museu Nacional 

Editores – Miguel Angel Monné Barrios e Ulisses Caramaschi 

Editores de Área – Adriano B. Kury, Ciro A. Ávila, Claudia P. Bove, Débora O. Pires, Guilherme 

R.S. Muricy, Izabel C.A. Dias, João A. Oliveira, João W.A. Castro, Marcela L.M. Freire, Marcelo A. 

Carvalho, Marcos Raposo, Maria D.B.G. Oliveira, Marília L.C.F. Soares, Rita S. Ybert, Vânia G.L. 

Esteves 

Normalização – Edson Vargas da Silva e Leandra de Oliveira 

Diagramação e Arte Final – Lia Ribeiro 

Serviços de Secretaria - Thiago Macedo dos Santos 

Para esta obra: 

Revisores – Eduardo L. Esteves (Poecilosclerida), Gisele Lôbo Hajdu (Introdução, Glossário), 

Mariana S. Carvalho (Astrophorida, Halichondrida), Michelle Klautau (Calcarea), Sula Salani 

(Chondrosida, Hadromerida, Spirophorida, 2 a revisão completa), Suzi M. Ribeiro (Haplosclerida), 

Ulisses S. Pinheiro (Dictyoceratida, Dendroceratida, Verongida) 

Apoio Editorial – Sula Salani 

Projeto Gráfico – Beatriz Custódio, Eduardo Hajdu 

Diagramação e Arte Final – Beatriz Custódio, Eduardo Hajdu 

Capa – Beatriz Custódio, Eduardo Hajdu 

Desenhos – Júlio C.C. Fernandez, Eduardo Hajdu 

(Eletro)(micro)(foto)grafias – Eduardo Hajdu, Júlio C.C. Fernandez, Gisele Lôbo-Hajdu, Cláudio L.S. 

Sampaio, Carla M. Menegola da Silva, Michelle R.L. Klautau, Bruno Cosme, Márcio R. Custódio, 

Sula Salani, Philippe Willenz, Mariana S. Carvalho 

Coordenadora de DTP – Emma Smith 

MUSEU NACIONAL – Universidade Federal do Rio de Janeiro 

Quinta da Boa Vista, São Cristóvão, 20940-040 

Rio de Janeiro, RJ, Brasil 

Impressão – Sermograf 

Impresso no Brasil / Printed in Brazil 

H129 Hajdu, Eduardo, 1964- 

Esponjas marinhas da Bahia: guia de campo e laboratório / Eduardo 

Hajdu, Solange Peixinho, Júlio C. C. Fernandez ; com prefácio de Marlene 

C. Peso Aguiar. – Rio de Janeiro: Museu Nacional, 2011. 

276 p. : il. color., mapa ; 24 cm. – (Série Livros ; 45) 

Bibliografia: p. 272-276. 

ISBN: 978-85-7427-041-8 

1. Esponjas – Bahia – Identificação. I. Peixinho, Solange. II. Fernandez, 

Júlio C.C. III. Museu Nacional (Brasil). IV. Título. V. Série. 

CDD 593.4098142

Esponjas Marinhas da Bahia 

AUTORES 

Eduardo Hajdu 

Departamento de Invertebrados, Museu 

Nacional, Universidade Federal do Rio 

de Janeiro, Quinta da Boa Vista, s/n, São 

Cristóvão. 20940–040 Rio de Janeiro, RJ, 

Brasil. E–mail: eduardo.hajdu@gmail.com 

† Solange Peixinho 

Instituto de Biologia, Departamento de 

Zoologia, Universidade Federal da Bahia, 

Campus Universitário, Ondina. 40210–170, 

Salvador, BA, Brasil. 

Júlio C.C. Fernandez 

Instituto de Biologia, Departamento de 

Zoologia, Universidade Federal da Bahia, 

Campus Universitário, Ondina. 40210–170, 

Salvador, BA, Brasil. 

EDUARDO HAJDU, † SOLANGE PEIXINHO, JÚLIO C.C. FERNANDEZ 

5

APRESENTAÇÃO 

O presente trabalho resulta de uma longa convivência com a fauna de esponjas 

marinhas da Bahia, particularmente em zonas rasas de uma região conhecida como 

Recôncavo, a qual circunda a Baía de Todos os Santos. As esponjas aqui descritas 

representam apenas uma parcela, de uma rica e variada fauna de poríferos de regiões 

costeiras da Bahia. 

Estes resultados derivam da colaboração entre pesquisadores das Universidades 

Federais da Bahia (UFBA) e do Rio de Janeiro (UFRJ) no mapeamento da 

biodiversidade de esponjas da Bahia, e nos últimos anos visando também obtenção 

de novos fármacos, em colaboração com a Universidade de São Paulo (São Carlos). 

Vale ressaltar, que entre as aplicações conhecidas das esponjas, sua utilização como 

biomonitoras de qualidade ambiental tem sido bastante divulgada, o que lhes confere 

importante papel como nossas parceiras na preservação dos ambientes marinhos. 

Esperamos com este trabalho suprir uma lacuna no conhecimento deste recurso 

biológico no litoral baiano, facilitando o contato com estes fascinantes organismos, por 

pesquisadores, estudantes, mergulhadores, os mais diversos amantes da natureza, e 

de grande importância para todos, por formadores de opinião e legisladores. 

Na introdução do Guia incluímos uma caracterização do Filo Porifera, elementos 

básicos de sua classificação e filogenia, um apanhado de aspectos ecológicos, uma 

breve caracterização do litoral baiano e dos padrões de distribuição dos poríferos 

na Bahia, no Brasil e no mundo. Ilustrações e descrições curtas, que ressaltam suas 

principais características, são oferecidas para 70 espécies, dentre as mais de 150 já 

registradas para o estado. Este último número inclui algumas espécies de difícil 

acesso, uma vez que ocorrem em maiores profundidades, e não se considerou 

prioritário sua inclusão neste primeiro Guia para as esponjas da Bahia. 

Entretanto, as estimativas do número real de espécies ocorrendo no mar da 

Bahia situam-se na casa das 300, considerando essencialmente aquelas de águas 

relativamente rasas (até os 30-40m de profundidade). Parte significativa destas 

espécies já foi coletada e encontra-se tombada em coleções nacionais de diversidade 

biológica, tais como as do Museu Nacional (UFRJ) e do Museu de Zoologia (UFBA), 

porém permanece desconhecida, no aguardo de mão de obra especializada para sua 

descrição formal e divulgação. Várias das espécies apresentadas neste Guia, apesar 

de sabidamente ocorrendo na Bahia, há tempos, somente agora são pela primeira 

vez apresentadas ao público de forma minimamente detalhada. 

Identificações acuradas de organismos marinhos associam-se geralmente de 

modo íntimo à qualidade de suas descrições originais. Por isso, entre encontrar um 

organismo casualmente, e divulgar à sociedade tal descoberta, pode transcorrer um 

largo período. Descrever detalhadamente uma espécie leva tempo, e mesmo que não 

se constitua apenas em novo registro de ocorrência, tal constatação frequentemente 

depende da interpretação de antigos textos em alemão, francês, inglês e italiano, 


7

Apresentação 

quando não russo (!), o que por si só já explicaria a demora. Mas no fundo, o maior 

problema resulta de serem muitas as espécies de poríferos, e poucos os taxônomos. 

Como agravante, a Taxonomia é vista por muitos como uma ciência acessória, a tal 

ponto que costumeiramente não se permite que esta seja o cerne de uma tese de 

doutoramento. Como os poucos taxônomos que existem são cobrados pela formação 

e orientação de pós-graduandos que, por sua vez, não podem se concentrar 

exclusivamente em taxonomia (seja porque o curso não permite, seja porque as 

perspectivas de emprego são sombrias), tira-se daí que tampouco o taxônomo 

pode se concentrar naquilo que melhor sabe fazer. Inúmeras vezes, terá de orientar 

em áreas correlatas, como os estudos filogenéticos, ecológicos e biogeográficos, 

essenciais também, mas inevitavelmente reduzindo o ritmo de produção de novas 

descrições. 

Porém, a demanda por identificações acuradas de organismos marinhos vem 

crescendo substancialmente no Brasil, como consequencia da aplicação das leis de 

responsabilidade ambiental, de uma maior conscientização para o valor da natureza 

que nos cerca, e do crescente respeito com as gerações vindouras. Guias de campo 

como o que oferecemos aqui, temos certeza, vêm de encontro à enorme sede de 

informação de nossa sociedade, e esperamos que ressaltem o valor do taxônomo como 

profissional essencial à biodescoberta e ao eficiente (sustentável) aproveitamento 

dos recursos contidos no imenso reservatório da biodiversidade brasileira. 

Eduardo Hajdu 

Solange Peixinho 

Júlio César Cruz Fernandez 

8 ESPONJAS MARINHAS DA BAHIA

AGRADECIMENTOS 

Esta é uma das partes de uma obra onde imperfeições são mais notadas. Infelizmente, 

com um trabalho que se arrasta há mais de duas décadas, inevitavelmente algumas 

participações instrumentais para sua conclusão terão sido esquecidas. Para estas, 

nosso sincero pedido de desculpas. Dentre as que lembramos, Ana V. Madeira, 

Bruno C.S. Gomes, Carla M. Menegola da Silva, Claudio Sampaio, Cristiana Castelo- 

Branco, Cristina P. Santos, Eduardo L. Esteves, Fernanda Cavalcanti, George J.G. 

Santos, Gisele Lôbo Hajdu, Guilherme R.S. Muricy, Josiane G. Rocha, Laura P. Kremer, 

Louis Barrows, Maíra V. Oliveira, Mariana S. Carvalho, Mike Leblanc, Pablo R.D. 

Rodrigues, Renata G. Silvano, Roberto G.S. Berlinck, Rosana M. Rocha, Sula Salani, 

Ulisses S. Pinheiro e Viviane P. Santos auxiliaram com as coletas, ao nosso lado, ou 

conduzindo-as de forma independente. Pelo auxílio nas descrições e identificações, 

bem como na diagramação, de forma presencial ou trocando “figurinhas” pelo correio 

eletrônico, temos de agradecer à Carla Zilberberg, Claudio L.S. Sampaio, Eduardo L. 

Esteves, Fábio V. Araujo, Fernanda C. Azevedo, Henry M. Reiswig, José L. Carballo, 

Klaus Rützler, Maíra V. Oliveira, Márcio R. Custódio, Mariana S. Carvalho, Marc 

Laflamme, Michael Nickel, Michelle L.R. Klautau, Pedro M. Alcolado, Rob W.M. van 

Soest, Roberto G.S. Berlinck, Sula Salani, Sven Zea, Thiago S. de Paula, Ulisses S. 

Pinheiro e Vinicius Padula. Tal ajuda se deu com a preparação de lâminas para estudo 

ao microscópio, com a observação das mesmas, com a obtenção de micrometrias, 

comparação com descrições da literatura, discussão de preferências alimentares 

de predadores de esponjas, menção a novos locais onde se encontrou algumas das 

espécies incluídas no Guia, e de muitas outras formas, mais ou menos sutis. Molly 

Ryan é autora de boa parte dos desenhos utilizados para ilustrar o glossário, e como tal 

merece um agradecimento especial. Pelo apoio financeiro na forma de bolsas e auxílios 

temos de agradecer à CAPES, ao CENPES/Petrobras, ao CNPq, à FAPERJ, à FAPESB 

e à FAPESP, porém também a nós mesmos, importantes contribuidores financeiros 

para a viabilização desta obra, que foi diagramada e impressa com recursos do projeto 

Desenvolvimento da Taxonomia de Esponjas Marinhas (Porifera) do Brasil (Petrobras– 

Agência Nacional do Petróleo SAP 4600177470), coordenado pelo Prof. Dr. Guilherme 

Ramos da Silva Muricy, e integrante da Rede de Monitoramento Ambiental Marinho 

da Petrobras. Graças a nossos excelentes parceiros na área ambiental da Petrobras, 

Ana Paula Falcão, Guarani de Hollanda Cavalcanti e Márcia de França Rocha, temos 

conseguido elevar nossa ciência a patamares de disseminação com os quais sequer 

sonhávamos há pouco mais de uma década. De suma importância para a conclusão 

desta obra foi também nossa moeda afetiva. O tempo em que estivemos longe de casa 

colhendo informações para este Guia – ou mesmo quando estávamos em casa, porém 

100% absortos em sua preparação – foi subtraído daqueles que mais o mereciam, 

nossas famílias. Para com eles nossa dívida é impagável, e nosso agradecimento o 

maior e mais sincero. 

Eduardo Hajdu 




9



(27.01.1946 - 11.11.2010) 

Solange, natural de Monte Santo (BA), cursou História Natural entre 1967 e 1970 

na Universidade Federal da Bahia (UFBA). Seu Mestrado também seria cursado no 

Brasil, tendo defendido sua Dissertação em 1973, pelo curso de Ciências Biológicas 

da Universidade de São Paulo (USP), sobre o tema Esponjas Calcarias do Brasil. 

Em 1974 ingressou no quadro de docentes da UFBA, mas já em 1976 partiu em 

busca de conhecimentos aprofundados em esponjas marinhas, tomando o rumo 

de Paris. Ali obteve o Diploma de Estudos Aprofundados em 1977, e em sequência 

seu Doutorado, em 1980, ambos pela Université Pierre et Marie Curie. Com esta 

pós-graduação ela especializava-se em Histologia e Citologia. Após este período no 

exterior, Solange retornaria à Bahia, onde exerceu a carreira de professora universitária 

e pesquisadora até 2010. Em 1986, Solange se prontificaria a orientar, à distância, 

um grupo entusiasmado de estudantes cariocas que enfrentavam os percalços 

de iniciar estudos com esponjas na Universidade Federal do Rio de Janeiro (UFRJ), 

quase que por conta própria. Desta iniciativa surgiu uma longa amizade e profunda 

admiração em mão dupla. Passo a passo estes estudantes foram encontrando onde 

se apoiar, obtendo assim a confiança necessária para seguir especializando-se, e hoje 

compreendem quatro professores da UFRJ e um da USP. Solange foi co-autora de 13 

trabalhos em química e farmacologia 

de produtos naturais marinhos, 

12 em taxonomia, e um em biomonitoramento. 

Afora suas publicações, 

Solange participou de inúmeros 

projetos de biomonitoramento 

e consultorias ambientais, onde sua 

ampla experiência com as esponjas 

da Bahia conferiam uma qualidade 

difícil de igualar em outras partes 

do país. 

Mas Solange sempre foi muito 

mais que uma parceira de profissão. 

Seu amor pela natureza, em 

especial aquela da Bahia, contagiava 

a todos, e sem dúvida terá influenciado 

gerações de estudantes 

a respeitar o mundo que nos cerca, 

e em várias ocasiões, a seguir estudos 

aprofundados em ciências 

marinhas, ou mesmo esponjas em 


11

particular. A celebração deste amor alcançava seu ápice frente ao por do sol na Praia 

de Itapoã. Este livro era um sonho que vinha sendo perseguido “a passos de cágado”, 

como ela gostava de dizer. Nos últimos anos, sua liderança neste projeto foi 

decisiva para que “o cágado alçasse um vôo mais pretensioso” e finalmente o sonho 

aterrissasse entre nós. Solange nos deixou em 11 de Novembro de 2010. Sua mãe e 

seu filho, moradores de Salvador, seu ex-marido, que vive na França, e todos nós que 

a conhecemos mais de perto, sentiremos enorme falta de sua companhia. 

Eduardo Hajdu 



PREFÁCIO 

A partir do ano 2000 têm surgido publicações importantes que tratam da divulgação 

científica de invertebrados marinhos da Costa Brasileira, dentre as quais guias de 

identificação para ascídias, para esponjas do sudeste do país. 

Neste contexto, a publicação do livro Esponjas Marinhas da Bahia – guia de campo 

e laboratório, premia o esforço do trabalho empreendido pela saudosa Dra. Solange 

Peixinho (†2010), desde o inicio de sua dedicação ao filo, quando se incorporou ao 

Departamento de Zoologia da Universidade Federal da Bahia (UFBA). Ao longo de 

sua vida acadêmica, Solange agregou uma crescente participação de colaboradores 

e orientandos, destacando-se a presença constante do Dr. Eduardo Hajdu, de sua 

colega Dra. Carla M. Menegola da Silva e mais recentemente do Biólogo Júlio C. C. 

Fernandez. 

Esta obra representa um marco para o registro e divulgação da espongiofauna 

da Bahia e de uma forma especial para a Baía de Todos os Santos. Esta última é 

relatada através de sua biodiversidade, ainda muito pouco conhecida, registrada na 

multiplicidade de ecossistemas disponíveis no seu entorno. Esta riqueza encontra 

nesta obra um oportuno destaque para a Zoologia de Invertebrados marinhos 

brasileiros. 

O envolvimento da UFBA em trabalhos de gestão ambiental realizados na costa 

baiana, com a participação de seu corpo acadêmico (pesquisadores, estudantes de 

graduação e pós-graduação) tem contribuído, sobremaneira, para a oportunidade 

de acesso aos ecossistemas oceânicos costeiros e de baías, permitindo a ampliação 

do conhecimento da biodiversidade zoobentônica e o registro de novas ocorrências 

de Porifera, algumas das quais estão integradas neste Guia. Este é o caso de espécies 

por um lado abundantes, mas por outro ainda não registradas em publicações até 

o presente para o Brasil como Clathria schoenus, Clathria venosa, Haliclona caerulea e 

outras. 

A descrição cuidadosa e detalhada da morfologia, a ampla e primorosa 

documentação fotográfica associada à sucinta descrição da ecologia acompanhada 

do registro da distribuição geográfica das ocorrências das espécies, torna este Guia 

um estímulo para pesquisadores e pós-graduandos quanto à apreciação e desafio 

dos estudos com esponjas, contribuindo para a ampliação do conhecimento científico 

destes componentes da biodiversidade marinha, bem como para sua preservação. 

Março de 2011 

Marlene Campos Peso-Aguiar 

Prof. Titular 

Departamento de Zoologia - UFBA 


13

ÍNDICE 

Introdução ........................................................................................................................................ 19 

Caracterização do Filo Porifera ............................................................................... 19 

Classificação e caracterização das Classes e Ordens ........................................... 26 

Filogenia ..................................................................................................................... 33 

Aspectos ecológicos .................................................................................................. 33 

Litoral baiano ............................................................................................................. 39 

Padrões de distribuição de Porifera........................................................................ 43 

Identificação de esponjas ............................................................................................................ 49 

Coleta .......................................................................................................................... 49 

Fixação e conservação .............................................................................................. 51 

Preparação de lâminas para microscopia óptica .................................................. 52 

Preparação de lâminas para microscopia de varredura ...................................... 57 

DESCRIÇÃO DAS ESPÉCIES 

Filo Porifera Grant, 1836 ................................................................................................................ 59 

Classe Demospongiae Sollas, 1885 ....................................................................................... 59 

Ordem Spirophorida Bergquist & Hogg, 1969 .................................................................. 59 

Família Tetillidae Sollas, 1886 .......................................................................................... 60 

1 – Cinachyrella alloclada (Uliczka, 1929) ........................................................... 60 

2 – Cinachyrella apion (Uliczka, 1929) ................................................................. 63 

3 – Cinachyrella kuekenthali (Uliczka, 1929) ....................................................... 65 

4 – Craniella quirimure Peixinho, Cosme & Hajdu, 2005 ................................... 67 

Ordem Astrophorida Sollas, 1888 ....................................................................................... 70 

Família Ancorinidae Schmidt, 1870................................................................................. 71 

5 – Ecionemia sp.................................................................................................... 71 

6 – Stelletta anancora (Sollas, 1886) .................................................................... 74 

7 – Tribrachium schmidti Weltner, 1882 ............................................................... 78 

Família Geodidae Gray, 1867 ................................................................................. 81 

8 – Erylus formosus Sollas, 1886 .......................................................................... 81 

9 – Geodia corticostylifera Hajdu, Muricy, Custódio, 

Russo & Peixinho, 1992 ................................................................................. 84 

10 – Geodia gibberosa Lamarck, 1815.................................................................... 86 

Ordem Hadromerida Topsent, 1894 ................................................................................... 88 

Família Clionaidae D’Orbigny, 1851 ...................................................................... 89 

11 – Complexo Cliona celata Grant, 1826 ........................................................... 89 

12 – Cliona delitrix Pang, 1973 ............................................................................. 92 

13 – Cliona varians (Duchassaing & Michelotti, 1864) ....................................... 94 

Família Placospongiidae Gray, 1867 .............................................................................. 96 

14 – Placospongia sp. ............................................................................................ 96 

Família Spirastrellidae Ridley & Dendy, 1886 ............................................................... 98 


Índice 

15 – Spirastrella hartmani Boury–Esnault, Klautau, Bézac, 

Wulff & Solé–Cava, 1999 ............................................................................... 98 

Família Suberitidae Schmidt, 1870 ................................................................................. 100 

16 – Aaptos spp. ................................................................................................... 100 

17 – Suberites aurantiacus (Duchassaing & Michelotti,1864) ............................ 102 

18 – Terpios fugax Duchassaing & Michelotti, 1864 ........................................... 104 

Família Tethyidae Gray, 1867 ........................................................................................... 106 

19 – Tethya maza Selenka, 1879 ............................................................................ 106 

20 – Tethya sp. ....................................................................................................... 110 

Ordem Chondrosida Boury–Esnault & Lopès, 1985 ........................................................ 112 

Família Chondrillidae Gray, 1872 .................................................................................... 113 

21 – Chondrilla aff. nucula Schmidt, 1862 ........................................................... 113 

22 – Chondrosia sp. Nardo, 1847 ......................................................................... 116 

Ordem Halichondrida Gray, 1867 ....................................................................................... 118 

Família Axinellidae Carter, 1875 ..................................................................................... 119 

23 – Dragmacidon reticulatum (Ridley & Dendy, 1886) ..................................... 119 

24 – Ptilocaulis walpersi (Duchassaing & Michelotti, 1864) ............................... 122 

Família Dictyonellidae van Soest, Diaz & Pomponi, 1990 .......................................... 124 

25 – Scopalina ruetzleri (Widenmayer, 1977) ....................................................... 124 

Família Halichondriidae Vosmaer, 1887 ........................................................................ 126 

26 – Petromica ciocalyptoides (van Soest & Zea, 1986)......................................... 126 

27 – Petromica citrina Muricy, Hajdu, Minervino, Madeira & Peixinho, 2001 ....... 128 

28 – Topsentia ophiraphidites de Laubenfels, 1934 .............................................. 130 

Ordem Poecilosclerida Topsent, 1928 .............................................................................. 132 

Subordem Microcionina Hajdu, van Soest & Hooper, 1994 ....................................... 133 

Família Microcionidae Carter, 1875 ............................................................................... 133 

29 – Clathria schoenus (de Laubenfels, 1936) ...................................................... 133 

30 – Clathria venosa Alcolado, 1984 .................................................................... 136 

Família Raspaillidae Hentschel, 1923 ............................................................................ 138 

31 – Echinodictyum dendroides Hechtel, 1983 ..................................................... 138 

32 – Ectyoplasia ferox (Duchassaing & Michelotti, 1864) .................................... 140 

33 – Thrinacophora funiformis Ridley & Dendy, 1886 ........................................ 142 

Subordem Myxillina Hajdu, van Soest & Hooper, 1994 ............................................... 144 

Família Coelosphaeridae Lévi, 1963 ............................................................................... 144 

34 – Lissodendoryx isodictyalis (Carter, 1882) ..................................................... 144 

Família Crambeidae Lévi, 1963 ........................................................................................ 146 

35 – Monanchora arbuscula (Duchassaing & Michelotti, 1864) ......................... 146 

Família Desmacididae Schmidt, 1870 ............................................................................ 151 

36 – Desmapsamma anchorata (Carter, 1882) ....................................................... 151 


15

Índice 

Família Iotrochotidae Dendy, 1922 ................................................................................. 155 

37 – Iotrochota birotulata (Higgin, 1877) ............................................................. 155 

Família Tedaniidae Ridley & Dendy, 1886 ...................................................................... 157 

38 – Tedania ignis (Duchassaing & Michelotti, 1864) ......................................... 157 

Subordem Mycalina Hajdu, van Soest & Hooper, 1994 ............................................... 161 

Família Mycalidae Lundbeck, 1905 ................................................................................ 161 

39 – Mycale angulosa (Duchassaing & Michelotti, 1864) ................................... 161 

40 – Mycale laxissima (Duchassaing & Michelotti, 1864) ................................... 165 

41 – Mycale microsigmatosa Arndt, 1927 ............................................................. 168 

Ordem Haplosclerida Topsent, 1928 ................................................................................. 170 

Subordem Haplosclerina Topsent, 1928 ........................................................................ 171 

Família Callyspongiidae De Laubenfels, 1936............................................................... 171 

42 – Callyspongia sp. 1.......................................................................................... 171 

43 – Callyspongia sp. 2 ......................................................................................... 174 

44 – Callyspongia pergamentacea (Ridley, 1881) .................................................. 176 

45 – Callyspongia vaginalis (Lamarck, 1814) ....................................................... 178 

Família Chalinidae Gray, 1867 ......................................................................................... 180 

46 – Haliclona caerulea (Hechtel, 1965) ............................................................... 180 

47 – Haliclona implexiformis (Hechtel,1965) ....................................................... 182 

48 – Haliclona manglaris Alcolado, 1984 ............................................................. 184 

49 – Haliclona melana Muricy & Ribeiro, 1999 ................................................... 186 

50 – Haliclona sp.................................................................................................... 188 

Família Niphatidae van Soest, 1980 ............................................................................... 191 

51 –Amphimedon viridis Duchassaing & Michelotti, 1864 ................................. 191 

52 –Niphates erecta Duchassaing & Michelotti, 1864 ......................................... 193 

Subordem Petrosina Boury–Esnault & van Beveren, 1982 ......................................... 196 

Família Petrosiidae van Soest, 1980 .............................................................................. 196 

53 – Petrosia weinbergi van Soest, 1980 ............................................................... 196 

54 – Xestospongia muta (Schmidt, 1870) .............................................................. 198 

Ordem Dictyoceratida Minchin, 1900 ................................................................................ 200 

Família Dysideidae Gray, 1867 ......................................................................................... 201 

55 – Dysidea etheria de Laubenfels, 1936 ........................................................... 201 

56 – Dysidea janiae (Duchassaing & Michelotti, 1864) ....................................... 204 

57 – Dysidea robusta Villanova & Muricy, 2001 .................................................. 206 

Família Irciniidae Gray, 1867 ........................................................................................... 208 

58 – Ircinia felix (Duchassaing & Michelotti, 1864) ............................................ 208 

59 – Ircinia strobilina (Lamarck, 1816) ................................................................ 210 

Ordem Dendroceratida Minchin, 1900 .............................................................................. 212 

Família Darwinellidae Merejkowsky, 1879 ................................................................... 213 


Índice 

60 – Aplysilla aff. rosea (Barrois, 1876) ................................................................ 213 

61 – Chelonaplysilla aff. erecta (Row, 1911) .......................................................... 218 

Ordem Verongida Bergquist, 1978 ........................................................................... 220 

Família Aplysinidae Carter, 1875 ........................................................................... 221 

62 – Aiolochroia crassa (Hyatt, 1875) ................................................................... 221 

63 – Aplysina cauliformis (Carter,1882) ............................................................... 224 

64 – Aplysina fistularis (Lamarck,1814) .............................................................. 227 

65 – Aplysina fulva (Pallas,1766) ......................................................................... 230 

66 – Aplysina insularis (Duchassaing & Michelotti, 1864) ................................. 233 

67 – Aplysina solangeae Pinheiro, Hajdu & Custódio, 2007 ............................... 236 

Classe Calcarea Bowerbank, 1864 ........................................................................................ 240 

Ordem Leucosolenida Minchin, 1900................................................................................. 241 

Família Amphoriscidae Dendy, 1892 .............................................................................. 242 

68 – Leucilla spp.................................................................................................... 242 

Família Heteropiidae Dendy, 1893 .................................................................................. 244 

69 – Grantessa sp. ................................................................................................. 244 

Ordem Clathrinida Hartman, 1958 ...................................................................................... 248 

Família Clathrinidae Dendy, 1892 ................................................................................... 249 

70 – Clathrina spp. ............................................................................................... 249 

Glossário .............................................................................................................................. 252 

Literatura recomendada ................................................................................................... 270 

Referências bibliográficas ............................................................................................... 272 


17


Poças de maré em ambiente misto na Praia de Ondina (Salvador), 

Jul/2006. Diversas espécies de esponjas podem ser encontradas no local, 

principalmente em fendas e pequenas cavidades abrigadas do embate direto 

das ondas e do pisoteio dos visitantes. Este ambiente inclui rochas graníticas 

e areníticas, além de corais e algas coralináceas como principais frações do 

substrato consolidado. 


INTRODUÇÃO 

O interesse pelos organismos marinhos, particularmente algas, esponjas, cnidários, 

briozoários e ascídias, cresceu significativamente nas últimas décadas, principalmente 

pelo fato de terem servido como fonte de numerosos metabólitos com atividades 

farmacológicas. Apenas as esponjas e seus microorganismos associados geraram 

mais de 5000 compostos até 2008. Alguns destes metabólitos deram origem a 

substâncias comercializadas na atualidade para o tratamento de enfermidades que 

afligem grande número de pessoas em todo o mundo. Dentre estes, o Aciclovir (Ara 

A), utilizado no tratamento da Herpes do tipo 2, a Citarabina (Ara C), um potente 

tratamento para algumas leucemias e linfomas, e o AZT, que compõe um dos 

primeiros coquetéis anti-AIDS. 

Além do rico espectro de substâncias bioativas que produzem, esponjas são 

potenciais bioindicadoras de poluição, o que decorre de serem sésseis e filtradoras, e 

em sua maioria, sensíveis a alterações da qualidade ambiental. As esponjas são também 

excelentes modelos para a pesquisa básica, em função de sua organização relativamente 

simples e preponderantemente de grau celular, o que contribui para tornar este 

grupo uma das prioridades no estudo da biodiversidade do bentos marinho. 

Caracterização do Filo Porifera 

As esponjas formam um grupo bem sucedido nos mares atuais e sua história 

geológica é muito antiga, com registro fóssil no Vendiano superior, cerca de 600 

milhões de anos atrás. Ao longo de dezenas de milhões de anos, estes organismos 

foram os principais construtores de recifes, desempenhando, portanto papel 

estrutural essencial, marcadamente associado ao incremento da biodiversidade. 

Semelhante contraste se observa no presente, quando comparamos um recife de 

coral ao fundo de areia ou lama que o cerca. 

Nos ambientes marinhos costeiros, as esponjas chamam a atenção 

principalmente por suas cores e formas variadas. Porém, menos alardeadas no 

dia a dia das salas de aula e noticiários, o mais comum é que sejam confundidas 

com algas, corais ou mesmo rochas, como consequência de seu hábito séssil, 

aparentemente estático. Seu tamanho também varia muito, pois há esponjas que 

se mede em milímetros, enquanto outras ultrapassam um ou mais metros, seja 

em comprimento, altura ou diâmetro. São notoriamente assimétricas, porém 

há exceções. Organizações anatômicas em disposição radial são relativamente 

comuns, e em casos mais raros, geralmente no mar profundo, pode-se observar 

padrões que assemelham-se superficialmente ao bilateral e até mesmo ao 

metamérico. 

O nome do Filo – Porifera (do latim porus = poro; e ferre = portador) significa 

poroso, esponjoso, e deve-se à presença de numerosos poros na superfície destes 

animais. Apesar de o termo esponjoso dar idéia de macio, não há apenas espécies 


19



Introdução 

moles ou muito moles (p.ex. Aplysilla aff. rosea), existem também espécies tão duras 

que podem ser confundidas com rochas (p.ex. Ecionemia sp., Placospongia sp.). No BOX 

1 (p 22) estão incluídos diversos aspectos que caracterizam o Filo de forma sucinta. 

O corpo de uma esponja está organizado em três camadas: a pinacoderme, o 

mesoílo e a coanoderme. As células superficiais, os pinacócitos, revestem tanto a 

superfície externa como a basal de uma esponja, assim como a superfície dos canais 

internos, presentes na maioria das esponjas, e próximo dos quais se encontram os 

coanócitos. Estes estão organizados em uma monocamada contínua, em grandes 

sacos, ou em pequenas câmaras. Entre as camadas de pinacócitos e de coanócitos 

há o mesoílo com sua matriz fundamental de fibrilas de colágeno, frequentemente 

associada a outros elementos esqueléticos, sejam de natureza orgânica ou inorgânica, 

bem como alguns tipos celulares coletivamente denominados “amebócitos”. Entre 

esses se destacam os arqueócitos com funções de digestão, reprodução e regeneração, 

cujo grau de totipotência é muito alto, ou seja, estas células indiferenciadas são 

capazes de se transformar em todos os outros tipos celulares – são “as células tronco 

das esponjas”! 

O sistema aquífero das esponjas pode apresentar três tipos básicos de organização, 

do mais simples para o mais complexo – asconóide, siconóide e leuconóide, 

mas com alguns padrões intermediários, por exemplo, sileibide, transição de 

siconóide para leuconóide. O padrão mais complexo é o presente na ampla maioria 

das esponjas, ampliando suas superfícies de contato com o meio, o que facilita o 

desempenho de diversas funções fisiológicas, ao mesmo tempo em que permite 

a algumas destas esponjas alcançar grandes dimensões. O percurso da água em 

uma esponja leuconóide é o seguinte: entrada por pequenos orifícios inalantes 

(poros, óstios, ostíolos), passagem por uma rede de canais inalantes até atingir os 

motores do sistema, as câmaras coanocitárias, onde o batimento dos flagelos dos 

coanócitos geram uma corrente de água que sai por uma rede de canais exalantes 

que convergem aos ósculos da esponja, para retorno ao meio circundante. A página 

eletrônica Porifera Brasil apresenta uma animação deste processo em http://www. 

poriferabrasil.mn.ufrj.br/8-ferramentas/animacoes/aquifero.htm. 

As esponjas mais simples, do tipo asconóide, têm canais ou uma câmara única 

Formas de crescimento e típicos relevos da superfície frequentemente observados entre 

as esponjas: 1, arborecente; 2, areolada; 3, caliciforme; 4, rendada; 5, clavada; 6, colunar; 

7, conulosa; 8, corrugada; 9, digitiforme; 10, incrustante; 11, endopsâmica; 12, excavadora; 

13, ficiforme (em forma de figo); 14, fistulosa; 15, flabelada; 16, flageliforme; 17, foliácea; 18, 

globular; 19, híspida; 20, em forma de colméia; 21, infundibuliforme (afunilada); 22, oval; 23, 

palmada; 24, papilada; 25, pedunculada; 26, peniforme; 27, reptante (paralela ao substrato, 

tocando-o em diversos pontos, como uma serpente em movimento); 28, estriado; 29, rugosa; 

30, espinada; 31, cauliforme (sustentada por pedúnculo longo); 32, sulcada; 33, tubular; 34, 

turbinada (em forma de cone invertido); 35, verrucosa; 36, hirsuta. Retirado de Boury-Esnault & 

Rützler (1997, Thesaurus of Sponge Morphology. Smithsonian Contributions to Zoology 596). 


21


Características gerais das esponjas 

1 - Metazoários sésseis no estádio adulto; 

2 - Dimensões variando da ordem de milímetros a metros; 

3 - Preponderantemente assimétricos; 

4 - Plasticidade acentuada: uma mesma espécie pode ter diferentes formas 

em resposta às condições ambientais (p.ex. hidrodinamismo, taxas de 

sedimentação); 

5 - Coloração variada, inclusive em uma mesma espécie; 

6 - Nível celular de organização prevalece, à exceção dos epitélios, que 

funcionam como tecidos verdadeiros, inclusive com lâmina basal em 

alguns táxons; 

7 - Coanócitos, pinacócitos e “amebócitos”, formam respectivamente 

a coanoderme, a pinacoderme (exo-, endo-, e basopinacoderme; = 

epitélios) e o mesoílo (este último ainda com elementos adicionais 

diversificados); 

8 - Sistema aquífero bastante variado: múltiplos poros inalantes (óstios) 

e uma ou muitas aberturas exalantes (ósculos), câmaras coanocitárias 

reduzidas ou numerosas, com presença ou ausência de canais; 

9 - Esqueleto formado por elementos minerais, e/ou orgânicos, como 

fibras, fibrilas e/ ou espiculóides; 

10 - Filtradores ativos do tipo micrófago, excetuando–se algumas esponjas 

carnívoras; os coanócitos capturam diminutas partículas (p.ex. 

bactérias) nas microvilosidades do colarinho da célula; 

11 - Digestão intracelular nos amebócitos do tipo arqueócito, que receberam 

o alimento dos coanócitos; 

12 - Os produtos de excreção são geralmente nitrogenados, 

13 - Respiração por simples difusão entre células e a água circundante; 

14 - Respostas coordenadas a estímulos na forma de contração oscular, 

interrupção e mesmo reversão do fluxo de água; 

15 - Grande capacidade de regeneração – em alguns casos a esponja pode 

ter suas células dissociadas mecanicamente e reassumir a forma de 

uma esponja funcional em seguida (passados alguns dias); 

16 - Reprodução assexuada por brotamento, gemulação ou fissão; 

17 - Reprodução sexuada em padrão monóico ou dióico; do tipo ovíparo ou 

vivíparo, com larvas no estádio blástula (anfiblástulas, calciblástulas, 

cinctoblástulas, clavablástulas, disférulas, hoplitomelas, parenquimelas 

e triquimelas). 


Introdução 

(átrio), revestidos por uma monocamada de coanócitos. Neste caso, o fluxo de água 

gerado para fora da esponja força a entrada de água nos canais, o que em alguns casos 

se dá através de células especializadas, denominadas porócitos, que funcionam como 

um “microcano” (canalículo) de contato entre o interior dos tubos e o meio externo. 

A distribuição das células e do esqueleto são testemunhos da integração de todo o 

sistema corporal. As diferentes categorias celulares não se distribuem ao acaso, mas 

obedecem a um esquema relacionado ao funcionamento do animal, estruturado em 

função do sistema aquífero. 

Há três famílias que incluem espécies carnívoras – Cladorhizidae, Guitarridae 

e Esperiopsidae, as duas últimas com apenas uma espécie supostamente carnívora 

registrada para cada. Estas esponjas usam espículas especiais, distribuídas de forma a 

atuar como um velcro, com as quais elas capturam suas presas, geralmente pequenos 

crustáceos. A digestão inicia-se extracelularmente e se completa no interior das células. 

Portanto, é nessas esponjas que surge pela primeira vez a digestão extracelular, e não 

nos cnidários como se pensava até então. 

Plano básico de organização de uma esponja (as setas indicam o caminho percorrido 

pela corrente de água no interior da esponja): 1, exopinacócito (revestimento externo); 2, 

actinócito (célula contrátil); 3, esclerócito (secreção de espiculas); 4, coanócitos (corrente 

de água); 5, espongina; 6, basopinacócito (revestimento basal); 7, célula esferulosa; 

8, espongócito (secreção de fibras de espongina); 9, lofócito (tipo de colêncito com 

um tufo de fibrilas de colágeno presas em seu pólo posterior); 10, arqueócito (célula 

totipotente); 11, endopinacócito (revestimento interno); 12, colêncito (secreção de 

colágeno). Retirado de Boury-Esnault & Rützler (1997, Thesaurus of Sponge Morphology. 

Smithsonian Contributions to Zoology 596). 


23


Eletromicrografia de um 

arranjo siconóide do sistema 

aquífero de Sycon sycandra 

(Lendenfeld, 1895). CC, câmara 

coanocitária. A, cavidade atrial. 

Retirado de De Vos et al. (1991), 

Atlas of Sponge Morphology. 

Smithsonian Institution Press, 

Washington D.C. 

Microscleras do tipo anisoquela palmada, dispostas 

sobre feixes de megascleras, formando um arranjo 

similar ao do velcro, utilizado aqui para captura 

de presas. Eletromicrografia de uma esponja de 

profundidade da Bacia de Campos (RJ). 

A maioria das esponjas possui um esqueleto interno, secretado por células do 

mesoílo ou “roubado” ao meio. Os esqueletos secretados compreendem elementos 

silicosos ou calcários, e elementos orgânicos. Elementos silicosos podem ser 

espículas isoladas ou em distintos graus de fusionamento, até tornar a esponja dura 

feito uma rocha, como no caso de muitas espécies litistídeas e algumas “esponjas 

de vidro” (Classe Hexactinellida, ver a seguir). Já se conhece no Brasil exemplos 

dos dois casos. Elementos calcários também podem ocorrer como espículas isoladas, 

ou formar arcabouços sólidos em algumas espécies conhecidas como esponjas 

coralinas. Este tipo de organização ainda não foi observado em nenhuma esponja 

brasileira. Os elementos orgânicos são principalmente na forma de fibras de 

espongina, mas há também alguns poucos casos com notáveis reforços estruturais 

de colágeno fibrilar, e em outros, espiculóides de espongina isolados. A espongina é 

uma escleroproteína, um composto orgânico semelhante à quitina, ao colágeno e à 

queratina, presente notadamente nas esponjas de banho, principalmente dos gêneros 

Spongia e Hippospongia, comuns no mar Mediterrâneo. Conhece-se algumas espécies 

de esponjas de banho do mar brasileiro, mas ainda não se detectou alguma em 

quantidade minimamente satisfatória para viabilizar sua exploração comercial. Este 


Introdução 

Guia apresenta diversas espécies com abundante ocorrência de espongina em seus 

esqueletos, com destaque para aquelas dos gêneros Aplysina, Callyspongia e Ircinia. 

Por fim, nem sempre a esponja secreta a integralidade de seu esqueleto, sendo 

comum apoderar-se especialmente de componentes minerais do meio circundante. 

Estes podem ser sedimentos, frequentemente selecionados, e em alguns casos com 

uma curiosa preferência por espículas ou fragmentos de espículas, ou hastes de 

sustentação construídas por outros organismos, como no caso dos esqueletos da 

alga Jania adherens. São nestes componentes do esqueleto das esponjas que se baseia 

preponderantemente a classificação do Filo, uma consequência natural da observada 

plasticidade dos aspectos externos, associada ao mau estado de preservação de boa 

parte das amostras estudadas antes do advento do mergulho autônomo em meados 

do século XX. 

A respiração é feita por difusão, sendo o processo facilitado pela enorme superfície 

de contato com o meio líquido, decorrente do amplo sistema de canais e 

lacunas. Este sistema permite que cada célula supra suas necessidades de oxigênio e 

de eliminação de gases e excretas nitrogenados, seja por estar em contato direto com 

o meio, ou à curta distância do mesmo. Esponjas não têm nem células sensoriais, 

nem células nervosas. No entanto, são capazes de respostas coordenadas, como no 

fechamento de óstios e ósculos, interrupção e reversão de fluxo de água, na liberação 

sincronizada de gametas, e em outras distintas situações. Nestes casos, tal feito 

é atingido através da transmissão célula à célula por actinócitos, ou por transmissão 

de substâncias mensageiras, chamadas alomônios. Apenas as esponjas de ambientes 

dulciaquícolas necessitam de um sistema de osmorregulação, e este é constituído 

por vacúolos contráteis, à semelhança de protozoários que vivem nestes mesmos 

ambientes. 

As esponjas marinhas podem se reproduzir assexuada ou sexuadamente. No 

primeiro caso as formas mais comuns são o brotamento, que pode ocorrer o ano 

todo, e a fissão. Esta última pode estar mais atrelada a fenômenos naturais de grande 

escala como as tempestades tropicais e os furacões. Especialmente nas esponjas dulciaquícolas, 

períodos de seca ou maior frio podem induzir a produção de gêmulas, 

que são corpos de resistência. 

São conhecidas numerosas espécies monóicas ou dióicas, embora a primeira 

estratégia seja a mais frequente, normalmente com produção de células masculinas 

e femininas em períodos alternados. A formação de gametas é geralmente sazonal e 

implica na desdiferenciação e rediferenciação de arqueócitos e coanócitos, tanto na 

ovogênese como na espermatogênese. Em muitas esponjas a fecundação é externa, 

contudo, nas esponjas vivíparas o espermatozóide é eliminado para o ambiente, 

de onde será capturado acidentalmente por outra esponja. Ao penetrar no sistema 

aquífero desta outra esponja de sua espécie, será capturado por um coanócito, 

que sob a forma amebóide o transferirá para o óvulo. Esta fecundação é indireta e 

absolutamente original. 


25

Classificação e caracterização das classes e ordens 

As diagnoses apresentadas para Classes, Subclasses e Ordens são traduções e em 

alguns casos adaptações daquelas oferecidas por diversos autores na obra Systema 

Porifera (ver Hooper e Van Soest nas referências, uma compilação de dados de 

distintos autores). 

CLASSE CALCAREA Bowerbank, 1864. Esponjas com esqueleto mineral composto 

inteiramente de carbonato de cálcio, consistindo de espículas di-, tri-, e/ou tetractinais 

livres, raramente conectadas ou cimentadas, às vezes com um esqueleto calcítico 

basal sólido, e com larvas do tipo blástula e reprodução vivípara. Duas subclasses 

recentes são reconhecidas, contendo cinco ordens, 22 famílias e 75 gêneros válidos, 

com espécies exclusivamente marinhas e distribuição global. Apresenta a maior diversidade 

de planos de organização básica do sistema aquífero – ascon, sicon e leucon, 

e estádios intermediários. 

SUBCLASSE CALCINEA Bidder, 1898. Calcarea com triactinas regulares (equiangulares 

e equirradiadas) ou excepcionalmente parassagitais ou sagitais, e/ou um 

sistema basal de tetractinas. Em adição às espículas livres pode haver um esqueleto 

calcário basal não espicular. Em termos de ontogenia, as triactinas são as primeiras 

espículas secretadas. Os coanócitos possuem núcleos basais esféricos. O corpo basal 

do flagelo não é adjacente ao núcleo. Espécies desta subclasse incubam larvas do 

tipo coeloblástula. 

Ordem Clathrinida Hartman, 1958. Calcinea com o esqueleto composto exclusivamente 

de espículas livres, sem reforços hipercalcificados não espiculares, feixes 

espiculares, escamas ou placas calcárias. Inclui seis famílias e 16 gêneros. 

Ordem Murrayonida Vacelet, 1981. Calcinea com esqueleto reforçado consistindo 

de uma rede de calcita, placas calcárias, ou de feixes espiculares geralmente 

compostos de triactinas do tipo diapasão. Sistema leuconóide de canais. Inclui 

três famílias, três gêneros recentes válidos, e apenas três espécies recentes de 

cavidades em recifes de corais. Não há registros para o Brasil. 

SUBCLASSE CALCARONEA Bidder, 1898. Calcarea com diactinas e/ou triactinas 

e tetractinas sagitais, raramente também com espículas regulares. Em adição às espículas 

livres, pode haver um esqueleto calcário basal não espicular, no qual espículas 

basais estão cimentadas umas às outras, ou completamente imersas no cimento 

calcário circundante. Em sua ontogenia as primeiras espículas produzidas em larvas 

assentadas são diactinas. Os coanócitos possuem núcleos apicais, e o sistema basal 

do flagelo é adjacente à região apical do núcleo. Espécies desta subclasse incubam 

larvas do tipo anfiblástula. 


Introdução 

Classificação das esponjas recentes 

Filo Porifera 

Classe Calcarea 

Subclasse Calcinea 

Ordem Clathrinida 

Ordem Murrayonida 

Subclasse Calcaronea 

Ordem Leucosolenida 

Ordem Lithonida 

Classe Demospongiae 

Ordem Agelasida 

Ordem Astrophorida 

Ordem Chondrosida 

Ordem Dendroceratida 

Ordem Dictyoceratida 

Ordem Hadromerida 

Ordem Halichondrida 

Ordem Halisarcida 

Ordem Haplosclerida 

Ordem Homosclerophorida 

Ordem Poecilosclerida 

Ordem Spirophorida 

Ordem Verongida 

“Lithistida” 

Classe Hexactinellida 

Subclasse Amphidiscophora 

Ordem Amphidiscosida 

Subclasse Hexasterophora 

Ordem Aulocalycoida 

Ordem Hexactinosida 

Ordem Lychniscosida 

Ordem Lyssacinosida 


27

Introdução 

Ordem Leucosolenida Hartman, 1958. Calcaronea com um esqueleto composto 

exclusivamente de espículas livres, sem reforços hipercalcificados não espiculares. 

O sistema aquífero é asconóide, siconóide, sileibide ou leuconóide. No último 

caso, a organização radial em torno de um átrio central pode ser geralmente 

detectada por um esqueleto atrial bem formado tangencial à parede do átrio, e/ 

ou um esqueleto subatrial consistindo de tri- ou tetractinas subatriais com as 

actinas pares tangenciais à parede do átrio e a actina ímpar perdendicular à esta. 

O desenvolvimento pós-larval passa (presumivelmente sempre) por um estádio 

olintus. Inclui nove famílias e 52 gêneros. 

Ordem Lithonida Vacelet, 1981. Calcaronea com esqueleto reforçado consistindo 

ou de tetractinas com suas actinas basais unidas ou cimentadas, ou de uma massa 

rígida de calcita. Espículas do tipo diapasão geralmente presentes. Sistema 

leuconóide de canais. Inclui duas famílias e seis gêneros recentes válidos. Não há 

registros para o Brasil. 

Ordem Baerida Borojevic, Boury-Esnault & Vacelet, 2000. Calcaronea leuconóides, 

com o esqueleto composto ou exclusivamente de microdiactinas, ou no qual 

as microdiactinas constituem exclusiva ou predominantemente um setor específico 

do esqueleto, assim como o coanossomal ou atrial. Espículas grandes ou 

gigantes estão frequentemente presentes no esqueleto cortical, a partir do qual 

elas podem invadir parcial ou completamente o coanossoma. Em esponjas com 

córtex reforçado, os poros inalantes podem estar restritos a regiões portadoras 

de óstios, semelhantes a uma peneira. Pequenas tetractinas em forma de adaga 

(pugioles) são frequentemente o único esqueleto do sistema aquífero exalante. 

Inclui três famílias e oito gêneros recentes válidos. 

CLASSE DEMOSPONGIAE Sollas, 1885. Porifera com espículas silicosas e/ou um 

esqueleto fibroso, ou ocasionalmente sem esqueleto. Hipercalcificações basais são raras, 

assim como hipersilicificações. Espículas são monaxonais (monactinas ou diactinas) 

ou tetraxônicas (tetractinas), nunca triaxônicas. O filamento axial está inserido em 

uma cavidade triangular ou hexagonal. Compreende cerca de 85% de todas as espécies 

recentes descritas, incluindo 13 ordens, 88 famílias e aproximadamente 500 gêneros. 

Ordem Agelasida Hartman, 1980. Demospongiae com megascleras monactinais 

com espinhos verticilados. 

Ordem Astrophorida Sollas, 1888. Demospongiae com microscleras asterosas, as 

vezes com micróxeas e microrráfides, e com megascleras tetractinais e óxeas dispostas 

radialmente ao menos na periferia. Megascleras tetractinais ou microscleras 

asterosas podem estar ausentes. 


Introdução 

Ordem Chondrosida Boury-Esnault & Lopès, 1985. Demospongiae, incrustantes 

ou maciças, com um córtex distinto, enriquecido com colágeno fibrilar, com aberturas 

inalantes localizadas em redes-porais ou cones cribriporais e um esqueleto 

frequentemente ausente, composto quando presente por fibras nodulares de espongina 

ou microscleras asterosas apenas (nunca megascleras). Colágeno sempre 

muito abundante. Ovíparas. Inclui uma família. 

Ordem Dendroceratida Minchin, 1900. Demospongiae nas quais um esqueleto 

de fibras de espongina está sempre presente, mas se comparado ao de Dictyoceratida, 

é reduzido em relação ao volume total da esponja. O esqueleto pode 

ser dendrítico ou anastomosante, mas nunca se observa clara distinção entre 

componentes primários e secundários. As fibras sempre contêm medula e são 

fortemente laminadas. Espículas fibrosas livres (espiculóides) podem suplementar 

o esqueleto. Câmaras coanocitárias são euripilosas. Esponjas frequentemente 

macias e frágeis. As larvas são grandes parenquimelas incubadas, de estrutura 

complexa, histologia diferenciada e um tufo terminal de cílios longos. Inclui duas 

famílias. 

Ordem Dictyoceratida Minchin, 1900. Demospongiae nas quais um esqueleto de 

fibras de espongina, que representa uma porção significativa do volume corporal, 

está universalmente presente e é construído em um plano anastomosante. O 

esqueleto se desenvolve de múltiplos pontos de fixação e, exceto em dois gêneros 

onde as fibras primárias estão ausentes, é organizado em uma hierarquia de elementos 

primários, secundários, e às vezes terciários. Em uma família, o esqueleto 

reticulado é suplementado por filamentos colagenosos dispersos pelo mesoílo. A 

construção das fibras ou é homogênia, sem medula, com lâminas de crescimento 

firmemente aderidas e apenas detectáveis, ou com medula e fortemente laminadas, 

com medula se transformando em córtex. Neste, lâminas consecutivas estão 

marcadas mas permanecem aderidas umas às outras. Inclui quatro famílias. 

Ordem Hadromerida Topsent, 1894. Demospongiae com megascleras monaxônicas 

(tilóstilos, subtilóstilos, óxeas ou derivados) formando um arranjo esquelético 

radial ou subradial, às vezes visível apenas na região periférica; espículas do 

ectossoma frequentemente menores que as do coanossoma, e quando presentes 

podem produzir um esqueleto cortical; espongina muitas vezes esparsa, produzindo 

consistência não elástica; microscleras podem incluir várias formas de euásteres, 

espirásteres, microrrabdos, micróxeas e/ou ráfides em tricodragmas, ou 

estar ausentes em vários táxons. Inclui 13 famílias. 

Ordem Halichondrida Gray, 1867. Demospongiae com estilos, óxeas, estrôngilos 

ou espículas intermediárias, de tamanhos amplamante divergentes, e não 


29

Introdução 

localizadas funcionalmente; esqueleto plumorreticulado, dendrítico ou confuso; 

microscleras se presentes micróxeas e/ou tricodragmas. Inclui cinco famílias. 

Ordem Halisarcida Bergquist, 1996. Demospongiae nas quais as câmaras coanocitárias 

são tubulares, ramificadas ou de boca-larga. Larvas são parenquimelas 

incubadas (disférulas) com histologia simples, não diferenciada e cílios de comprimento 

uniforme. O esqueleto se constitui de colágeno fibrilar apenas, não há 

elementos fibrosos ou minerais; o colágeno ectossomal e subectossomal é altamente 

organizado. Inclui uma família, e um único gênero. 

Ordem Haplosclerida Topsent, 1928. Demospongiae nas quais o esqueleto principal 

é parcialmente ou inteiramente composto por uma reticulação isodictial anisotrópica 

ou isotrópica, ocasionalmente alveolada, de fibras de espongina e/ou 

espículas, com feixes uni- a multiespiculares de espículas diactinais formando 

malhas triangulares, retangulares ou poligonais. Megascleras são exclusivamente 

óxeas ou estrôngilos, unidas com espongina ou incluídas em fibras de espongina; 

microscleras, se presentes, podem incluir sigmas e/ou toxas (ambas frequentemente 

centroanguladas), micróxeas ou microestrôngilos, e em um grupo anfidiscos. 

Inclui seis famílias marinhas e sete dulciaquícolas. No esquema classificatório 

vigente, todas as esponjas dulciaquícolas classificam-se nesta ordem. 

Ordem Homosclerophorida Dendy, 1905. Demospongiae com exo- e endopinacócitos 

flagelados, uma membrana basal revestindo tanto a coanoderme quanto a 

pinacoderme, câmaras coanocitárias ovais a esféricas, com organização leuconóide 

ou semelhante à sileibide, e um tipo larval único, a cinctoblástula. Espículas, quando 

presentes, são tetractinas peculiares (caltrops) e derivativos através de redução 

(diodos e triodos) ou através de ramificação de uma a todas as quatro actinas 

(caltrops lofosos). Atualmente debate-se a elevação deste táxon ao nível de Classe. 

Ordem Poecilosclerida Topsent, 1928. Demospongiae com esqueleto composto 

de espículas silicosas discretas; esqueleto principal composto de megascleras 

(monactinais, diactinais ou ambas) e fibras de espongina em vários estádios de 

desenvolvimento. Tanto as fibras quanto o esqueleto mineral sempre exibem diferenciação 

regional de tal forma que as megascleras são frequentemente diferenciadas 

em componentes ectossomais e coanossomais. Microscleras incluem 

formas meniscóides como quelas (restritas à ordem), sigmas e derivativos de 

sigmancistras, e outras formas diversas como toxas, ráfides, micróxeas e microrrabdos 

com discos. A ordem é predominantemente vivípara com larvas parenquimelas 

incompletamente ciliadas (uma família ovípara – Raspailiidae, e outra 

possivelmente ovípara – Rhabderemiidae, são incluídas também). É a maior ordem 

em Demospongiae, incluindo 25 famílias. 


Introdução 

Ordem Spirophorida Bergquist & Hogg, 1969. Demospongiae com megascleras 

do tipo triênio e microscleras sigmaspiras. Inclui três famílias recentes. 

Ordem Verongida Bergquist, 1978. Demospongiae nas quais o esqueleto anastomosante 

é composto por malhas poligonais, e não se observa distinção entre 

fibras primárias e secundárias. As fibras podem se organizar em um plano por 

toda a esponja, ou em lamelas próximas à superfície; e por vezes fascículos fibrosos 

emaranhados enfatizam esta especialização da superfície. A típica organização 

das fibras inclui uma medula de fibrilas finas envolta por um córtex marcadamente 

laminar e concêntrico. Ambos podem estar praticamente perdidos em 

alguns gêneros. Fibras secas parecem ocas. As câmaras coanocitárias são diploidais 

ou euripilosas, e a matriz do mesoílo é densamente infiltrada por colágeno 

fibrilar. Uma pigmentação muito comum é amarelo sulfúreo com nuances verdes, 

que se oxida rapidamente para marrom-escuro/preto. A reprodução é ovípara e 

a estrutura da larva é desconhecida. Compostos brominados ocorrem em todos 

os gêneros que já foram estudados. Inclui quatro famílias. 

Ordem incerta (ex-Lithistida). Demospongiae caracterizadas por espículas coanossomais 

articuladas denominadas desmas, formando um esqueleto rígido na 

maioria dos gêneros. Inclui 13 famílias. 

CLASSE HEXACTINELLIDA Schmidt, 1870. Porifera com espículas silicosas de simetria 

triaxônica (cúbica) ou derivações desta forma básica. Espículas típicas são hexactinais 

em forma, os três eixos se interceptando em ângulos retos; perda de um ou 

mais raios resulta em espículas de forma pentactinal, tetractinal, triactinal, diactinal 

ou monactinal. O filamento axial é quadrado em seção transversal. 

SUBCLASSE AMPHIDISCOPHORA Schulze, 1886. Hexactinellida lofofitosas que 

sempre contêm microscleras do tipo anfidisco ou alguma variação destes, e microscleras 

triaxônicas que nunca possuem ramificações terminais em seus raios (nunca microscleras 

asterosas). O esqueleto coanossomal consiste de megascleras livres, nunca 

fusionadas, na forma de hexactinas, pentactinas, estauractinas, tauactinas, diactinas 

ou uma combinação destas. Hipodermalia usualmente como pentactinas, raramente 

hexactinas e estauractinas. Inclui apenas uma ordem recente e três famílias. 

Ordem Amphidiscosida Schrammen, 1924. Idêntica à Subclasse. 

SUBCLASSE HEXASTEROPHORA Schulze, 1886. Hexactinellida basifitosas, rizofitosas 

ou lofofitosas, nas quais as microscleras são principalmente asterosas, tipicamente 

hexásteres. Anfidiscos ocorrem apenas raramente como variações de discohexactinas. 

Esqueletos coanossomais podem se constituir inteiramente de espículas 


31

Introdução 

livres, às vezes irregularmente agrupadas por sinaptículos ou sílica cimentante nos 

pontos de contato, ou de hexactinas fusionadas de maneira regular, formando um 

arcabouço dictional. Nós dictionais, onde presentes, podem ser inteiramente simples 

ou como licniscos (nós tipo lampião). 

Ordem Aulocalycoida Tabachnick & Reiswig, 2000. Hexasterophora basifitosas 

nas quais um arcabouço dictional rígido é construído ao redor de uma série de 

linhas primárias longitudinais formadas a partir de longas extensões dos raios 

dictionais. Estas linhas são uniaxiais, cada qual composta de um único raio dictional 

de comprimento ilimitado (padrão aulocalicóide), ou multiaxiais, cada 

qual composta de raios sobrepostos de uma série dictional longitudinal (padrão 

para-aulocalicóide). 

Ordem Hexactinosida Schrammen, 1903. Hexasterophora basifitosas nas quais 

um arcabouço dictional rígido é formado pela fusão de hexactinas simples. Dictionalias 

fusionadas ao longo dos raios dispostos lado a lado, nas junções das 

pontas dos raios e dos nós de outras dictionalias, ou nas pontas dos raios com as 

pontas dos raios de outros raios dictionais. O comprimento dos raios dictionais é 

limitado ao comprimento das laterais das malhas. 

Ordem Lyssacinosida Zittel, 1877. Hexasterophora nas quais as megascleras coanossomais 

permanecem como componentes esqueléticos separados, ou, onde 

fusão ocorre, esta é por deposição de sílica em pontos de contato, ou como sinaptículos 

entre megascleras diactinas, tauactinas ou estauractinas levemente separadas. 

Não se forma um arcabouço dictional de hexactinas fusionadas. 

Ordem Lychniscosida Schrammen, 1903. Hexasterophora nas quais o arcabouço 

dictional rígido deriva da fusão de hexactinas dictionais formando licniscos. 

Callyspongia sp. 

1 – Praia do Porto da 

Barra (Salvador), 5 m 

de profundidade, 16/ 

Dez/2007. Notar quatro 

tonalidades distintas: azul 

(canto superior esquerdo), 

esverdeado (esquerda, 

centro, topo), laranja 

(centro) e avermelhado 

(canto inferior direito). 


Introdução 

Filogenia 

Esponjas já “passearam” bastante em termos de hipóteses evolutivas, mas seu 

posicionamento atual em Metazoa está firmemente estabelecido. Os primeiros 

registros fósseis de poríferos datam de 750 milhões de anos atrás, o que lhes confere o 

status de anciãs dentre os animais, e, curiosamente, seu plano básico de organização 

pouco mudou desde o Cambriano Superior (509 MAA). Tanto dados moleculares 

como morfológicos sustentam a inclusão de Porifera em Metazoa. Dentre estes 

últimos podemos listar cinco aspectos compartilhados pelas esponjas e os demais 

animais metazoários: (1) multicelularidade diplóide, (2) meiose, (3) padrão da 

oogênese, (4) padrão da espermatogênese, e (5) plano básico da célula do esperma. 

Apesar de bem definidas quanto ao seu conteúdo, as relações filogenéticas 

das três classes de Porifera mantêm-se em intenso debate, com diversas hipóteses 

conflitantes. A secreção mineral sugere maior proximidade de Demospongiae e 

Hexactinellida (“Silicea”). A organização celular aponta para afinidade de Calcarea 

e Demospongiae (“Cellularia”). Dados ultraestruturais derivados dos coanócitos, 

corroborados por uma base cada vez mais ampla de dados moleculares apontam 

para a parafilia de Porifera, com Calcarea mais próxima dos eumetazoários 

diploblásticos. Em mais de um trabalho, Calcarea aproximou-se de Cnidaria ou 

de Ctenophora. Estudos recentes vêm encontrando novas evidências da parafilia 

do filo, agora apontando para maior proximidade de Homosclerophorida aos 

demais Eumetazoa, o que já se suspeitava desde a descoberta da membrana basal 

nestas esponjas, conferindo às suas pinacodermes o status de epitélio verdadeiro. 

Entretanto, também com relação ao posicionamento de Homosclerophorida não há 

consenso, com maior proximidade à Calcarea tendo sido proposta mais de uma vez, 

inclusive recentemente. Esta hipótese decorre de aspectos da morfologia larval, bem 

como de alguns dados moleculares. 

Estas questões evolutivas acerca dos metazoários basais continuam sendo amplas 

avenidas para pesquisa, e as três classes de Porifera, bem como as Homosclerophorida, 

estão no cerne do problema. A velocidade com que novas abordagens moleculares 

surgem, bem como os cada vez maiores volumes de dados analisados em tempos 

cada vez menores, permitem antever grandes novidades nesta arena ao longo dos 

próximos anos. 

Aspectos ecológicos 

Como dito acima, o plano organizacional básico de uma esponja pouco se alterou 

ao longo do último ½ bilhão de anos. Entretanto, o papel ecológico preponderante 

exercido teve alteração mais drástica, uma vez que no Paleozóico e Mesozóico os 

principais construtores de recifes eram esponjas, e não corais e algas como em nosso 

tempo. Os poríferos que ocorrem em recifes hoje desempenham diversos papéis entre 

filtragem da água, ampliação de complexidade tridimensional (> tridimensionalidade 

= + nichos = + biodiversidade), bioerosão e cimentação do arcabouço recifal, 


33

Introdução 

dentre outros. Porém, não são mais os principais construtores deste arcabouço. 

Poríferos ocorrem em todos os principais mares e oceanos, entre os polos e o 

Equador, e do entremarés às grandes profundezas oceânicas (> 8800 m de profundidade!). 

Sua relativa simplicidade estrutural é comumente associada a uma suposta 

alta adaptabilidade, o que lhes confere papel de destaque na competição por 

substrato, especialmente consolidados (substrato duro) e de iluminação moderada 

à ausente. Nesses ambientes, os poríferos são frequentemente dominantes. Em 

ambientes profundos, a situação se repete, estando as maiores riquezas conhecidas 

de poríferos associadas a locais de maior complexidade estrutural, usualmente 

encontrados em setores de declividade mais acentuada (talude, cânions, montes 

submarinos), onde os substratos são mais consolidados. Nesses “oásis” profundos, 

poríferos podem desempenhar papel estruturador, conferindo maior complexidade 

tridimensional como fazem em ambientes rasos também. O sistema aquífero 

de inúmeras esponjas funciona como uma casa labiríntica para muitos inquilinos, 

alguns dos quais aí encontrados pela primeira vez, quando não exclusivos deste 

habitat. 

Equinodermo (crinóide, lírio do mar) habitando o interior de uma esponja em forma de 

vaso em Carrie Bow Cay (barreira de recifes de coral de Belize). A esponja é uma Callyspongia 

plicifera (Lamarck, 1814), com cerca de 10 cm de diâmetro na porção apical de sua cavidade 

atrial, e o crinóide Davidaster rubiginosa (Pourtalès, 1869). A ampla maioria dos inquilinos 

das esponjas se constitui de organismos de menores dimensões, como, por exemplo, 

outros equinodermos (ofiúros) que aparecem em mais de uma ilustração neste Guia (p.ex. 

Callyspongia sp. 1, Haliclona melana, Monanchora arbuscula). 


Introdução 

Poríferos estão representados por cerca de 150 espécies em habitats dulciaquícolas, 

aproximadamente 1/3 das quais ocorre no Brasil, literalmente do Oiapoque ao 

Chuí. Estão distribuídas em lagos, brejos e rios, em distintas altitudes, por vezes com 

poucos milímetros de diâmetro, às vezes do tamanho de bolas de basquetebol. Nestes 

ambientes frequentemente apresentam ciclos anuais de crescimento, regressão, 

encistamento e renascimento. Na época das vazantes em bacias como a Amazônica e 

a do São Francisco, não raro, observam-se esponjas fixadas em galhos e troncos localizados 

a alguns metros acima do nível da água. Uma das espécies que ocorre nestes 

habitats é Drulia browni (Bowerbank, 1863), que se assemelha a um ninho de vespa 

às margens de diversos rios. Na época das secas estas esponjas regridem ao estádio 

de gêmula, que são pequenos corpos (geralmente < 0,5 mm de diâmetro) resistentes 

ao ressecamento, providos de células totipotentes e adaptados para dispersão. Esta 

pode se dar simplesmente por queda e transporte pela correnteza, ou através de 

aderência às penas de aves e pelos de mamíferos. Esta última opção é a explicação 

encontrada para as amplas distribuições de algumas espécies, por vezes registradas 

em mais de um continente. A quantidade de gêmulas flutuantes em alguns rios pode 

ser tal que constituem um problema de saúde pública, tendo sido relatados casos de 

infecções oculares de variados níveis de gravidade. 

Algumas famílias de poríferos compreendem espécies adaptadas ao modo de 

vida escavador, o que desempenham com surpreendente eficiência. Espécies dos 

gêneros Aka de Laubenfels, 1936 (Phloeodictyidae), Cliona Grant, 1826 e Pione Gray, 

1867 (ambos Clionaidae), dentre outros, ocorrem em todos os oceanos, perfurando 

maiores ou menores galerias em substratos calcários, tais como conchas, corais, e 

mesmo rochas calcárias. Seu ritmo de perfuração inicia-se acelerado, porém esponjas 

adultas o apresentam estabilizado em valores relativamente baixos. Cálculos efetuados 

em ambientes recifais na região do Caribe estabeleceram o valor de 256 g / 

m 2 / ano como a produção de sedimento calcário por estas esponjas, gerando cerca 

de 40% de todo o sedimento em alguns setores destes recifes. Estimou-se que a taxa 

de bioerosão poderia alcançar 3 kg / m 2 / ano em locais com maior infestação por 

esponjas escavadoras. Valores semelhantes foram obtidos para o potencial escavador 

de Cliona aff. celata Grant, 1826 no litoral norte da Bahia. 

O uso de poríferos como biomonitores de poluição foi proposto em mais de uma 

ocasião, decorrendo de algumas características compartilhadas com outros grupos 

taxonômicos sésseis. Um dos pontos ressaltados é a necessária íntima relação entre 

um organismo filtrador e a qualidade da água filtrada pelo mesmo, sendo comum 

observar-se que ambientes prístinos apresentam maior diversidade, e por vezes menor 

abundância de espécies, ao passo que ambientes com algum nível de alteração, 

costumeiramente possuirão menor diversidade, apesar de em alguns casos poder 

abrigar maior abundância destas espécies mais resistentes. Assim, as propostas de 

biomonitoramento incluem tanto o uso de espécies indicadoras, como o de índices 

ecológicos que avaliam a diversidade e representatividade de espécies que integram 


35

Introdução 

Igarapé dos Macacos, Rio Tarumã (afluente do rio Negro – Manaus, AM) na época da seca em 

12/Dez/2006. Espécime da esponja dulciaquícola Drulia browni, de aspecto semelhante a um 

vespeiro preso em um galho (1,5 m acima do solo). Notar abundância de gêmulas (pequenas 

esferas esbranquiçadas). FOTO POR M.R. CUSTÓDIO. 

uma determinada comunidade. Neste caso, alterações nos índices espelhariam alterações 

ao meio ambiente. 

Dentre os ambientes mais extremos habitados por esponjas está a região entremarés, 

sujeita à ampla variação em diversos fatores abióticos. A ocorrência de poríferos 

nestes ambientes é mais notável nas partes abrigadas da iluminação direta, 

pois nas marés mais baixas é comum a exposição desta zona à irradiação solar direta. 

Mesmo ao abrigo da luz, estas esponjas ainda precisam estar adaptadas a variações 

significativas na salinidade e no hidrodinamismo. A primeira pode cair drasticamente 

quando coincidirem chuva e maré baixa, e o segundo, acentua-se a cada maré 

vazante e enchente, potencializado por ventos. Regiões entremarés que se expõe 

regularmente a hidrodinamismo acentuado abrigam esponjas preponderantemente 

sob rochas e blocos calcários, em frestas e túneis nos recifes, ou simplesmente sob 

tufos de algas calcárias de maior rigidez. Neste Guia são apresentadas diversas espécies 

que ocorrem na faixa entremarés, como por exemplo Cliona varians, Haliclona 

implexiformis e Tedania ignis. 

Mesmo dentre as comunidades de poríferos de ocorrência restrita ao infralitoral, 

ainda se observa espécies com notada preferência por habitats abrigados da ilumi- 


Introdução 

Ilha do Pati (Madre de Deus, BA) na baixamar de 20/Mai/2008, com diversos espécimes de 

Tedania ignis expostos ao sol. No mesmo ambiente foram observadas ainda outras espécies 

apresentadas neste Guia – Haliclona caerulea, H. implexiformis, H. melana e Tethya maza. 

nação direta, o que pode decorrer de alguma maior sensibilidade à luz, ou como se 

acredita verdadeiro para a maioria dos casos, por exclusão competitiva. Esponjas 

que crescem expostas à iluminação direta competem com outros grupos faunísticos 

e florísticos, dentre os quais muitos se beneficiam diretamente da própria iluminação 

para acelerar seu crescimento através da fotossíntese. Algas e macrófitas 

realizam fotossíntese, mas organismos associados a estas também podem se valer 

da técnica para acelerar seu próprio crescimento. Tal feito é uma estratégia bem conhecida 

entre os corais hermatípicos (construtores de recifes), mas também entre 

diversas esponjas. A associação com organismos fotossintetizantes observada mais 

comumente entre os poríferos é com as cianobactérias, que costumam atribuir coloração 

amarronzada ás esponjas. Este é o caso da espécie do complexo Chondrilla 

nucula apresentada neste Guia. Associação com algas eucariotas do tipo zooxantelas, 

como nos corais, se observa na esponja Cliona varians. Em ambos casos, trata-se de 

espécies de ocorrência preponderante em habitats bem iluminados. 

Para uma importante fração das esponjas crescendo nestes ambientes, a defesa 

contra predação é possivelmente a conquista mais importante de suas linhagens 


37

Introdução 

evolutivas. Como esponjas não correm, não se retraem rapidamente, e não mordem, 

a defesa precisa ser alcançada por outros meios. E é dentre as plantas, bem como 

entre outros organismos bentônicos sésseis que se encontram adaptações semelhantes, 

seja na concha de um molusco ou no veneno de uma planta. As “conchas” dos 

poríferos tratam-se na verdade de crostas espiculares de alta densidade, que visam 

desestimular a predação em consequência de sua dureza. Já os “venenos” são frequentes 

entre os metabólitos secundários dos poríferos. A diversidade química é tamanha, 

que apesar dos 60 anos de estudos mais detalhados sobre o tema, não param 

de surgir novidades. Importantes pesquisas nesta área também são desenvolvidas 

no Brasil, por um lado com uma curiosidade intrínseca pelo ineditismo estrutural de 

diversas moléculas, e por outro, em uma busca incessante por possíveis aplicações 

farmacológicas destas moléculas. Afinal, se o objetivo desta conquista evolutiva foi o 

de proteger as esponjas de seus predadores, porque não verificar se este arsenal não 

poderia proteger a nós também de nossos “predadores” (bactérias, protozoários, vírus, 

e até como repelente de tubarões!!) 

Algumas esponjas encontraram uma solução pitoresca para sua imobilidade 

– a epibiose sobre organismos vágeis. As ditas “esponjas móveis” 

ocorrem sobre conchas de moluscos bivalves ou gastrópodes, neste último 

caso frequentemente em conchas habitadas por caranguejos-ermitões, sobre 

caranguejos propriamente ditos, aderidas às carapaças ou carregadas como um chapéu, 

e sobre espinhos de ouriços. No Brasil, um dos bivalves móveis mais costumeiramente 

portador de esponjas epibiontes é o pectinídeo (vieira) Lyropecten nodosus 

(Linnaeus, 1758), mas além de raras, as esponjas não ultrapassam 1-2 mm de espessura. 

A associação entre esponjas e caranguejos-ermitões é bem conhecida para 

algumas espécies de Suberites Nardo, 1833, principalmente no hemisfério norte. Entretanto, 

a associação ocorre também no Brasil, já tendo sido registrada do Rio de 

Janeiro até o Rio Grande do Sul. Os caranguejos sobre os quais as esponjas crescem 

aderidas integram principalmente a família Majidae. Não raro, aparentam se tratar 

de verdadeiras alegorias, dada a abundância de organismos epibiontes. Já com 

os Dromiidae a relação é diferente, e dotada de sutilezas ainda não perfeitamente 

Plakortídeo-P, isolado 

da esponja Plakortis 

angulospiculatus (Carter, 

1882) coletada em Salvador 

(BA). A molécula tem 

propriedades antiparasíticas 

(contra Leishmaniose e Mal de 

Chagas), citotóxica moderada e 

antineuroinflamatória. Imagem 

gerada por R.G.S. Berlinck. 


Introdução 

esclarecidas. Estes caranguejos conseguem recortar esponjas em um formato que 

lhes convenha, segurando-as sobre sua carapaça com auxílio de suas patas posteriores. 

O interessante é que mesmo esponjas que se danificam marcadamente após sua 

coleta com faca, podem manter-se em aparentem bom estado de saúde sobre estes 

caranguejos. Por exemplo, a espécie Mycale laxissima, apresentada neste Guia, dissolve-se 

quase que por completo em muco após cortada e manuseada durante uma 

coleta. Entretanto, já foi vista sobre caranguejos dromiideos em bom estado, apesar 

de supostamente terem sido seccionadas pelos mesmos. Outra espécie vista mais de 

uma vez sobre estes caranguejos é Dysidea etheria, também apresentada neste Guia. 

Em resumo, esponjas integram uma intricada teia de relações interdependentes, 

da qual fazem parte desde as bactérias que lhes servem de alimento, passando por 

uma ampla gama de competidores por espaço, com destaque para algas em habitats 

bem iluminados, ou outras esponjas em ambientes semiobscuros, até seus predadores 

diretos mais notáveis, como alguns equinodermos, peixes-anjo ou mesmo as 

tartarugas de pente. Estimou-se que os poríferos ocorrendo em um típico recife de 

coral têm a capacidade de filtrar em 24 h, toda a coluna d’água sobre o recife, o 

que dá uma dimensão da importância destes organismos para a comunidade recifal 

como um todo. Como recorrente em diversos outros organismos, esponjas também 

se dividem entre oportunistas e especialistas. As primeiras, frequentemente mais 

abundantes, mais amplamente e homogeneamente distribuídas, e as outras, mais 

raras, com manchas de distribuição intercaladas a grandes lacunas. 

Litoral baiano 

Litoral Norte 

Estendendo-se da divisa com o Estado de Sergipe até a cidade de Salvador, na 

entrada da Baía de Todos os Santos, esta costa praticamente retilínea intercala 

amplas restingas e pequenas barras de rios, e é alvo de intensa pressão imobiliária. 

Importantes trechos de recifes de franja observam-se nas proximidades de Praia do 

Forte, Itacimirim, Guarajuba, Arembepe, Jauá, entre outras localidades. Nas marés 

baixas há boas oportunidades de observação e coleta de poríferos na zona entremarés, 

bem como em piscinas de dimensões variadas, que se observa em diversos recifes. 

Baía de Todos os Santos – BTS (Recôncavo) 

Trata-se de uma das maiores baías brasileiras, com aproximadamente 300 km de 

perímetro, 80 km de penetração continente a dentro, e 1223 km 2 de superfície. Sua 

barra tem 14 km de extensão, com profundidades que oscilam entre os 25 e 35 m. 

Em sua borda leste destaca-se a escarpa de Salvador, onde se observa também 

uma preponderância de costões rochosos, característica mais frequente na região 

sudeste. Entretanto, dentre os substratos rochosos mais importantes estão os 

quebramares artificiais de proteção do porto da cidade, um com aproximadamente 


39

A 


B 

C 

D 

E 

F 

G 

H 


Introdução 

900 m de extensão (Quebramar Sul, ou da Capitania dos Portos), o outro com 1300 m 

(Quebramar Norte), onde a abundância de poríferos é uma das maiores observadas 

em todo o Brasil. Todavia, a maior parte do perímetro da BTS está revestida por 

manguesais, sendo possível encontrar esponjas em planícies de marés, tais como nas 

proximidades da Ilha do Pati (ver Aspectos Ecológicos), da Ilha das Fontes e da Ilha 

do Medo. As duas principais ilhas no interior desta baía são a Ilha de Itaparica e a 

Ilha dos Frades. A primeira abriga os únicos e importantes recifes de coral da Baía de 

Todos os Santos – Recife das Pinaúnas e Recife das Caramuanas, respectivamente em 

suas faces leste/sudeste e sul. O Canal de Itaparica, situado entre a ilha e o continente 

a oeste, afunila em rumo sudoeste, apresentando amplos manguesais especialmente 

em suas porções mais estreitas. Algumas espécies de poríferos só foram encontradas 

nesta área. 

É importante assinalar que até a década de 70 o interesse pelas questões 

ambientais no Brasil ainda era muito incipiente, assim, numerosas indústrias se 

A – Piscina do Papagente na Praia do Forte (Mata de São João) em 07/Jun/2009, ilustrando a 

vulnerabilidade das piscinas de maré. Apenas neste dia foram dezenas de visitantes. 

B – Maré baixa e recife arenítico na Praia de Arembepe (Camaçari) em 25/Jul/2006. Sobre o 

recife encontram-se poças e pequenas piscinas de maré, e entre aquele e a praia forma-se 

um ambiente lagunar. Comumente se observa fauna de poríferos distinta nas faces oceânica, 

superior e continental destes recifes, o que se explica em parte pelo menor hidrodinamismo 

enfrentado pela face continental, porém associado a maiores flutuações de temperatura, 

salinidade e turbidêz. 

C – Vista aérea do Porto de Salvador e cercanias, onde estão visíveis alguns dos principais 

pontos de coleta dos materiais apresentados neste Guia: Quebramar Sul (perpendicular à 

costa), Quebramar Norte (paralelo à costa) e Ponta de Humaitá (no canto superior direito). 

D – Quebramar Sul e Ilha de Itaparica (ao fundo), vistos do alto do Elevador Lacerda, na cidade 

alta de Salvador. O acesso a este quebramar necessita de permissão da Capitania dos Portos. 

E – Vista aérea do trecho de costões localizado entre o Farol da Barra (canto inferior 

esquerdo) e a praia do Porto da Barra (canto superior direito) em Salvador, ideal para 

amostragens em apnéia. A maior parte das esponjas apresentadas neste Guia ocorre 

neste setor. Notar recifes paralelos à Praia da Barra (indicados pelo quebrar das ondas – 

extremo inferior da imagem). 

F – Praia do Porto da Barra (Salvador) em 02/Dez/2010, onde se tem o mais fácil acesso ao maior 

número de espécies de poríferos em Salvador, seja para coletas em apnéia seja com SCUBA. 

G – Vista aérea da porção norte da Ilha de Itaparica (Itaparica) em 13/Jun/2009, com Canal de 

Itaparica ao fundo, e Recife das Pinaúnas, uma APA, visível como uma linha clara paralela à 

costa. Esta área foi amostrada muito superficialmente para a realização deste Guia. Supomos 

que a riqueza de poríferos aí seja comparável àquela de Salvador. 

H – Praia do Forte (Itaparica) em 05/Dez/2010. Águas claras e quentes, nutridas por manguesais 

relativamente próximos, localizados ao fundo da BTS e na face continental do Canal de 

Itaparica, fazem da face insular deste canal um ambiente propício ao desenvolvimento de 

poríferos em abundância. 


41

A 


B 

C 

D 

A – Ilha do Sapinho na Baía de Camamu (Maraú), em 30/Jul/2009. Localizada próxima à barra da baía, 

a influência do mar aberto atenua as oscilações de salinidade e a alta turbidêz, típicas dos manguesais, 

tornando o local propício ao desenvolvimento de poríferos. 

B – Ilha da Pedra Furada na Baía de Camamu (Maraú), em 30/Jul/2009, ilustrando a mescla de mangue, 

substrato rochoso e águas claras, característico deste setor da Baía de Camamu. Foto por G. Lôbo Hajdu. 

C – Ilha Grande ou Ilha Pequena na Baía de Camamu (Maraú), em 30/Jul/2009, com promontórios 

rochosos conspícuos e mangue pouco desenvolvido. Área de ocorrência de diversas espécies 

apresentadas neste Guia. 

D – Piscinas de Taipú de Fora (Maraú), em 26/Jul/2009, com túneis, canais e amplo habitat lagunar. 

Uma fauna rica, porém pouco abundante, pode ser encontrada no local, que inclui diversas espécies 

apresentadas neste Guia, e diversas outras sequer identificadas. 

estabeleceram em torno da BTS, dentre as quais grandes empresas do setor petroquímico, 

onde vêm lançando dejetos de natureza muito variada. Às atividades industriais somam-se 

outras de origem portuária, turística, e despejos de esgotos domésticos, que vêm causando 

impactos importantes nas comunidades marinhas. Um estudo que avaliou a estrutura de 

comunidades bentônicas de substrato inconsolidado da zona entremarés no fundo da BTS, 

observou um gradiente de estresse, particularmente nas proximidades de uma refinaria 

localizada no município de Madre de Deus. 


Introdução 

Litoral Sul 

Este é o segmento mais longo da costa da Bahia, com mais de 500 km de extensão e importantes 

feições geomorfológicas. O Litoral Sul abriga os recifes coralinos mais desenvolvidos do 

país, mas também a foz de importantes rios, e os manguesais associados aos estuários que 

aí se formam. Assim como no Litoral Norte, a pressão imobiliária é grande, e o turismo 

crescente. Aí estão alguns dos destinos mais cobiçados do litoral brasileiro – Morro de São 

Paulo, Maraú, Itacaré, Comandatuba, Porto Seguro, Corumbau, Caravelas, dentre outros. Os 

principais rios que deságuam neste setor são o Rio das Contas, o Rio Pardo, o Jequitinhonha 

e o Buranhém. A presença destes rios perenes implica em alterações significativas dos 

parâmetros ambientais, especialmente carga de sedimentos em suspensão, as quais, por sua 

vez, se traduzem em alterações no encaixe dos ecossistemas costeiros. Próximo à foz dos rios, 

quando há recifes, estes são costumeiramente areníticos, e não raro, de baixa biodiversidade. 

À relativa distância, a existência dos rios pode ser benéfica por um incremento no aporte de 

nutrientes minerais e orgânicos, e seu efeito em cascata ascendente sobre os diversos elos 

da cadeia alimentar. Estes recifes mais afastados têm maior presença de um componente 

biológico construtor, como corais e algas coralinas. As principais formações recifais neste 

trecho do litoral baiano são as da Costa do Descobrimento (Coroa Alta, de Fora, Itacolomis) 

e as da região de Abrolhos (das Timbebas, Paredes, Abrolhos, Sebastião Gomes, Coroa 

Vermelha, Viçosa). A riqueza de poríferos neste setor está absolutamente subavaliada, com 

apenas alguns poucos registros apresentados neste Guia. 

Padrões de Distribuição de Poríferos 

O entendimento dos padrões atuais de distribuição de poríferos passa pelo estudo de seu 

potencial de dispersão, que aparenta ser bastante limitado na maioria das espécies. Isto 

porque observou-se diversas vezes que as larvas de esponjas, além de ter vida curta, com 

fase livre natante muito rápida, logo em seguida tornam-se demersais, ou seja, rastejantes 

sobre o fundo. Isto explicaria, em parte, a existência de agrupamentos (cenoses) distintos 

de esponjas, mesmo em escala bastante reduzida, também conhecido como padrão de distribuição 

do tipo “colcha de retalhos”, ou em manchas. 

Distribuição Geográfica Global de esponjas marinhas 

Assim como observado em diversos outros grupos de organismos marinhos (táxons), os 

centros de maior riqueza e diversidade de esponjas também estão nos trópicos, e em especial, 

no triângulo formado pelas Filipinas, Papua Nova Guiné e Indonésia, área que 

abarca milhares de ilhas, entre minúsculas e enormes (p.ex. Sumatra, Bornéu), e também 

conhecida como Triângulo dos Corais. Em meados dos anos de 1990, já haviam sido registradas 

cerca de 1000 espécies de poríferos marinhos nesta área, mas a estimativa é que 

o número de espécies que efetivamente ocorrem aí seja no mínimo o dobro ou o triplo. 

Outras grandes áreas notáveis por sua alta riqueza de espécies de poríferos são todo o perímetro 

australiano, o Oceano Índico Ocidental (costa leste da África, Madagascar e uma 


43

Introdução 

série de pequenos arquipélagos), o Mar do Caribe e o Mar Mediterrâneo, em ordem 

decrescente de número de espécies. Esta alta diversidade observada neste cinturão 

circumtropical é sugestiva de uma história evolutiva relacionada ao Oceano Tethys, 

que se estendia entre o sul do supercontinente de Laurásia e o norte do supercontinente 

de Gondwana na Era Mesozóica. De fato, cerca de metade dos gêneros marinhos 

da Classe Demospongiae conhecidos atualmente, têm distribuição circumtropical 

ou quase (com algumas lacunas). Outros padrões de distribuição observados 

dentre os gêneros desta Classe são o austral, o boreal, o bipolar, o australiano e o descontínuo. 

Padrões de distribuição gritantemente descontínuos são explicáveis por 

três alternativas principais – (1) insuficiência amostral (o padrão não é descontínuo, 

apenas incompletamente conhecido), (2) considerável extinção ao longo da história 

evolutiva do táxon em questão (o padrão não era descontínuo, e a tendência é que 

estas populações isoladas venham a ser reconhecidas como espécies distintas em 

algum momento nos próximos milhares ou milhões de anos), ou (3) falha na identificação 

(a distribuição não é descontínua, na verdade trata-se de um complexo 

de espécies crípticas). Infelizmente, o registro fóssil de poríferos com esqueletos desarticulados 

(não fusionados) é ínfimo, de tal forma que as investigações acerca de 

sua história evolutiva devem, necessariamente, basear-se em grande parte nas relações 

inferidas a partir do estudo de espécies recentes. A ampla maioria das esponjas 

viventes apresenta esqueletos não fusionados, e portanto apenas precariamente 

fossilizáveis. 

No mar profundo ainda não há uma regionalização detalhada, pois o conhecimento 

nesta área caminha a passos mais lentos, por razões óbvias. Entretanto, em 

termos gerais, repetem-se algumas regras observadas em águas mais rasas. Esponjas 

preferem regiões de substratos consolidados (ou semi-consolidados), como junto aos 

bancos de corais e esponjas, com ocorrência preponderante em áreas de declive mais 

acentuado, como em montes submarinos, cânions e alguns setores dos taludes continentais. 

Um dos grupos taxonômicos presentes nestes locais, cujo conhecimento tem 

avançado possivelmente mais rápido que o dos demais é o das esponjas carnívoras 

(Cladorhizidae), com mais de 20 espécies novas registradas na última década, entre 

descritas e por descrever. 

Distribuição de esponjas marinhas no Brasil 

Historicamente, a espongiofauna marinha brasileira foi considerada uma versão empobrecida 

da caribenha, apesar de seu notório endemismo, situado na casa dos 30% 

do total de espécies registradas. Esta fauna de afinidade marcantemente caribenha, 

que integra uma fauna maior denominada de Atlântica Tropical Ocidental, estendese 

até algum ponto da costa brasileira, a depender do táxon em consideração. Assim, 

dentre as espécies de poríferos registradas para nosso litoral, e também conhecidas 

da região do Caribe, algumas têm o limite sul de sua distribuição conhecida na Bahia 

(p.ex. Callyspongia vaginalis); outras no Espírito Santo (p.ex. Cliona varians); na Baía 


Introdução 

de Ilha Grande, no Estado do Rio de Janeiro (p.ex. Desmapsamma anchorata); no Estado 

de São Paulo, área do Canal de São Sebastião (p.ex. Aplysina fulva, Haliclona melana); 

e por fim, algumas se estendem até o litoral do Estado de Santa Catarina (p.ex. 

Dragmacidon reticulatum, Hymeniacidon heliophila, Tedania ignis). Esses múltiplos limites 

de distribuição austral de espécies tropicais fizeram com que toda a área ao sul 

da Bahia (ou do ES, do RJ, ...) fosse considerada como uma área de transição entre 

a Província Brasileira (tropical) e uma fauna patagônica (subtropical). Entretanto, 

esta sugestão ignora o fato de que os costões rochosos encontrados em boa parte do 

SE e S do país abrigam uma espongiofauna de características particulares, ainda em 

boa parte desconhecida, haja vista que o grosso dos materiais disponíveis em coleções 

ainda não foi formalmente descrito. Apesar da precariedade deste inventário, 

o número de espécies de poríferos provisoriamente endêmicas desta faixa do litoral 

que se estende da Região do Cabo Frio até a cidade de Florianópolis, já é considerável 

(> 10). E como tal, justificativa para o reconhecimento de uma área de endemismo, 

para a qual se propôs no passado o termo de Província Paulista, e hoje integra 

o mapa global de ecorregiões marinhas como a Ecorregião Marinha do Sudeste 

do Brasil. 

Um aspecto importante a ressaltar é que esta marcada afinidade da espongiofauna 

marinha brasileira com a caribenha, que ultrapassa 50% de espécies compartilhadas 

mesmo no litoral do Estado de São Paulo (75% – 52/70 – das espécies apresentadas 

neste Guia), é indicativa da existência de um fluxo relativamente grande entre as 

duas áreas. Isto, a despeito da suposta barreira exercida pelo imenso aporte de água 

doce e sedimentos em suspensão na foz do Amazonas. Sabe-se que, possivelmente 

em decorrência de sua menor dependência de boa luminosidade (ao contrário das 

algas e dos corais zooxantelados), poríferos não encontraram maiores dificuldades 

em se estabelecer mais fundo, ao largo do Amazonas, abaixo da influência desta 

pluma amazônica de água-doce, criando assim um corredor para intercâmbio de espécies 

entre a Província do Caribe e a Brasileira. É notória, por exemplo, a ocorrência 

de peixes recifais nesta área, valendo-se deste corredor de esponjas como se fora um 

recife de água rasas. Dentre as espécies aqui descritas do Estado da Bahia, algumas 

também foram registradas deste “corredor sub-amazônico”, p.ex. Monanchora arbuscula 

e Xestospongia muta. 

Em 2007 foram listadas 110 espécies de poríferos conhecidos de águas brasileiras 

com mais de 100 m de profundidade, registrados ao largo de dez estados costeiros. 

Os estados onde este conhecimento está mais avançado são São Paulo (40 spp), Rio 

de Janeiro (19 spp), Rio Grande do Sul (17 spp) e Espírito Santo (16 spp). Este panorama 

já sofreu algumas alterações em decorrência da recente publicação de novos 

registros para a cadeia de montes submarinos Vitória-Trindade (ES), o monte submarino 

Almirante Saldanha (ES/RJ) e a Bacia de Campos (setor RJ), com base em 

materiais coletados pelo Programa REVIZEE (Avaliação do Potencial Sustentável 

dos Recursos Vivos da Zona de Exclusão Econômica) e pela Petrobrás. 


45

Introdução 

Distribuição de esponjas marinhas na Bahia 

O Estado da Bahia é privilegiado no contexto nacional quando o assunto é litoral: 

trata-se do maior litoral dentre os estados brasileiros, com 932 km de extensão em 

linha reta. Porém, não é só a extensão deste litoral que chama a atenção, mas também 

algumas de suas feições, como a presença de duas das maiores baías brasileiras, Baía 

de Todos os Santos e Baía de Camamu, do Banco e Arquipélago dos Abrolhos, e do 

trecho, ao largo de Salvador, onde a plataforma continental brasileira é mais estreita, 

com apenas 8 km de largura, facilitando sobremaneira o acesso e estudo do talude 

continental. 

Ambas grandes baías baianas são “paraísos” espongiológicos. Os dados de Camamu 

apenas começam a surgir, e deverão ser motivo de estudos futuros mais detalhados. 

Entretanto, o acúmulo de dados acerca da Baía de Todos os Santos já vai 

completando 40 anos, e podemos afirmar com convicção que há no Atlântico poucos 

locais que rivalizem em termos de abundância de poríferos. Conhecem-se cerca de 

100 espécies de esponjas desta baía, mas estima-se que o número real situe-se na 

casa das 200, o que poderia vir a ser confirmado caso se obtivesse os meios para 

estudo das coleções já disponíveis em instituições brasileiras que abrigam coleções 

biológicas. As maiores coleções de poríferos da Bahia estão na Universidade Federal 

do Rio de Janeiro e na Federal da Bahia, totalizando alguns milhares de espécimes 

coligidos, principalmente dos anos 1960 até o momento atual. A última grande coleta 

ocorreu em dezembro de 2007, no âmbito de projeto voltado para o estudo da 

química de produtos naturais marinhos, encabeçado por pesquisadores do Estado 

de São Paulo, da qual alguns de nós tiveram o prazer de participar. 

Com o conhecimento acumulado ao longo destes anos no que tange à distribuição 

de poríferos na Baía de Todos os Santos, pode-se afirmar que há ao menos três 

principais comunidades marinhas com significativa ocorrência de poríferos na área: o 

litoral rochoso raso de Salvador até a região da Ribeira, as áreas com preponderância 

de mangues marinhos no fundo da baía e no Canal de Itaparica, e os fundos arenosos 

inconsolidados, presentes em boa parte da baía. No caso dos dois primeiros, as esponjas 

são frequentemente o elemento dominante da comunidade. Porém nos fundos arenosos 

têm distribuição mais esparsa, e restrita a algumas poucas espécies adaptadas 

a estas condições (p.ex. Oceanapia sp., Tribrachium schmidti). Dentre as espécies mais 

abundantes do litoral próximo à Salvador estão Callyspongia sp. 1, Desmapsamma anchorata, 

Ircinia felix e I. strobilina; e nas regiões de mangue, Haliclona caerulea e Tedania ignis. 

Os ambientes recifais não foram ainda estudados, mas supomos que a diversidade e 

abundância de poríferos aí, equipare-se àquela dos costões rochosos. 

Observados ainda nas proximidades de Salvador, porém presentes ao longo de 

todo o litoral do estado estão os fundos de rodolitos, um ambiente parcialmente 

acessível ao mergulho livre e autônomo, pois pode ser observado mesmo em locais 

bastante rasos. Nestes casos, observa-se frequentemente uma marcante cobertura de 

algas, cabendo às esponjas colonizar os interstícios destas “pedras vivas”. Porém, 


Introdução 

38º30’ O 

Bahia 

Litoral Norte 

Bahia de Todos os Santos 

13º S 

Litoral Sul 

200 km 

Mapa do estado da Bahia, ressaltando seu litoral. O mesmo encontra-se dividido em setores 

– Litoral Norte, Baía de Todos os Santos e Litoral Sul. 

em locais mais fundos, especialmente abaixo dos 30 m, já em uma área de acesso 

mais restrito aos mergulhadores, poríferos passam mais uma vez a ser o elemento 

dominante da comunidade, como bem exemplificado pelas quantificações efetuadas 

no âmbito do Programa REVIZEE. Algumas das estações de maior riqueza e abundância 

de espécies de poríferos deste grande projeto nacional foram encontradas 

na Bahia, especialmente na faixa dos 50-60 m de profundidade. Dentre estas, destaque 

para duas estações, uma situada em frente à Salvador (do navio avistavam-se 

os prédios da Barra e de Ondina) e outra no Banco Royal Charlotte, ao largo de 

Canavieiras (16º19’S). Algumas das esponjas mais frequentemente encontradas nas 

dragagens efetuadas neste ambiente foram Aiolochroia crassa, diversas espécies de 

Aplysina, Cinachyrella kuekenthali e Topsentia ophiraphidites. 


47

Introdução 

Passando ao talude continental, mais uma vez o Estado da Bahia esteve à frente, 

uma vez que a vinda do Navio Oceanográfico francês, N/O Thalassa, em 2000, 

possibilitou a realização de arrastos a profundidades praticamente jamais visitadas 

no Brasil. Obteve-se destes cruzeiros esponjas de até 2137 m de profundidade. Nesta 

expedição foram coletados alguns espécimes de poríferos da Classe Hexactinellida, 

dentre os quais uma Euplectella suberea Thomson, 1876, espécie que, coincidentemente, 

já havia sido registrada para o Brasil, há mais de um século atrás, após estudo 

publicado em 1887 dos materiais coligidos pela expedição britânica do H.M.S. 

Challenger, transcorrida entre 1873 e 1876. 

Por fim, merece destaque também a região dos Abrolhos, onde melhor se desenvolvem 

recifes de corais no litoral brasileiro. Esponjas são abundantes tanto nas 

ilhas que compõem o arquipélago, quanto nos bancos de corais próximos, notórios 

pela formação de chapeirões - formações colunares, grandes, em forma de cogumelo 

com o topo aplanado. Algumas espécies particularmente comuns são compartilhadas 

com Salvador, tais como Aplysina fulva, Ircinia felix e I. strobilina. 

Esponjas diversas coletadas arribadas na Ilha da Pedra Furada (Marau, Baía de Camamu), 

entremarés, 30/Jul/2009. Esponja vermelha à esquerda – Desmapsamma anchorata (Carter, 

1882). Esponja verde no centro – Amphimedon viridis Duchassaing & Michelotti, 1864. Esponja 

roxa ramificada à direita – Mycale angulosa (Duchassaing & Michelotti, 1864). 


IDENTIFICAÇÃO DE ESPONJAS 

Coleta 

As esponjas podem ser coletadas em todos os ambientes das zonas costeiras, 

predominantemente fixas a substratos duros, como rochas, pilares, cordas e garrafas 

de vidro, assim como o fazem a maioria das espécies apresentadas neste Guia. 

Porém, em regiões lodosas algumas se fixam nas raízes de mangues (p.ex. Tedania 

ignis), e umas poucas espécies estabelecem–se no sedimento inconsolidado, seja pelo 

desenvolvimento de espículas especiais de ancoragem (p.ex. Craniella quirimure), 

seja pelo recurso de enterramento de parte de seu corpo (p.ex. Tribrachium schmidti). 

Estas últimas são denominadas psamófilas. 

As espécies pequenas (da ordem de poucos milímetros) devem ser procuradas 

com cuidado sob ou sobre pedras e manuseadas com pinça, de preferência 

plástica. Formas maiores, incrustantes, arborescentes ou globosas são melhor 

coletadas com o auxílio de uma faca, que auxilia em destacá-las do substrato, ou 

em seccionar um fragmento para trazer, deixando o resto da esponja a cicatrizarse 

(elas são surpreendentemente boas nisso!). As incrustantes devem ser coletadas 

juntamente com o substrato, o que por vezes obriga o uso de marreta e talhadeira. 

Do contrário, convertem-se em pequenos flocos ou pó após a coleta, tornando seu 

estudo taxonômico subsequente deveras mais difícil, dentre outros motivos, pela 

enorme dificuldade de separar eventuais espécies distintas que se tenham mesclado 

inadvertidamente durante a coleta. Algumas esponjas produzem substâncias tóxicas 

ou possuem espículas em forma de farpas projetando-se de seus corpos, que podem 

causar dermatites, sendo portanto recomendado o uso de luvas no manuseio destes 

animais, no campo, e posteriormente no laboratório. 

Como algumas espécies podem ser identificadas pelos caracteres – cor, forma 

consistência, presença de muco e ornamentação da superfície, é muito importante 

que estes sejam anotados antes da fixação, sendo altamente recomendável a tomada 

de fotos in situ, ou o mais imediatamente possível após a coleta. É bom ressaltar 

que tanto a coloração como a morfologia podem mudar bastante após o manuseio e 

especialmente após imersão em etanol. 

Uma sequência típica de imagens tomada de um espécime que se pretende 

coletar inclui: (1) duas, três, ou mais imagens do espécime in situ, em diferentes 

ângulos e aproximações, se possível ilustrando também seu habitat; (2) uma ou mais 

imagens do espécime ao lado de uma escala de tamanho (temos utilizado braçadeiras 

plásticas para tal fim, com resultados satisfatórios); (3) uma ou mais imagens do 

computador de mergulho, de forma a registrar profundidade e temperatura no local 

da coleta; (4) uma ou mais imagens do código de campo ou número de registro na 

coleção que caberá ao espécime coletado. 

IMPORTANTE! - É essencial que a partir deste momento, espécime e seu número de 

registro não se separem mais. Colocar vários espécimes e seus respectivos números 


49

A 

Esponjas 

Guia da Bahia 

Marinhas da Bahia 

B 

C 

D 

E 

F 

A – coleta no entremarés lamoso da Ilha do Pati (Madre de Deus, BA) em 04/Jun/2004. FOTO POR 

C.P. SANTOS. 

B – coleta com tomada de fotografias in situ através de mergulho em apnéia, em Taipú de Fora 

(Maraú, BA) em 27/Jul/2009. FOTO POR G. LÔBO HAJDU. 

C-F – sequência mínima necessária de imagens que antecedem a coleta de um espécime, aqui 

no caso, Ptilocaulis walpersi, apresentada no Guia. 

C – espécime em seu habitat. D – espécime em seu habitat, junto à escala com dimensão de 5 

cm (parte branca). E – computador de mergulho indicando a profundidade da coleta (4,9 m) e a 

temperatura da água (26°C). F – código de registro na coleção do Museu Nacional. 


Identificação de esponjas 

soltos no interior de uma bolsa de coleta, não serve, pois os espécimes se fragmentam, 

contraem e mudam de cor, de forma que ao final é impossível saber ao certo a qual 

número corresponde cada um dos fragmentos que se têm. Nós utilizamos sacos 

plásticos previamente numerados, quando possível com etiquetas plastificadas. Em 

situações emergenciais, números podem ser escritos com caneta de retroprojetor no 

saco plástico, o que resiste bastante bem à água do mar. Entretanto, a primeira gota 

de etanol é suficiente para borrar estes números por completo. Assim, no laboratório, 

antes de qualquer ação com as amostras coletadas desta forma, preparam-se etiquetas 

a lápis ou nanquim, para que se possa então começar a abrir os sacos e trabalhar com 

etanol. O uso de potes plásticos previamente numerados também funciona, porém 

ocupam muito espaço, independentemente de quantos espécimes efetivamente 

sejam coletados. O excesso de volume acaba atrapalhando a tomada de imagens. 

Por fim, não custa lembrar que os dados de coleta devem ser sempre anotados o 

mais detalhadamente possível, o que nos dias de hoje inclui o georeferenciamento 

da localidade de coleta. 

Fixação e conservação 

Animais que se destinam ao estudo taxonômico com base em arquitetura esquelética 

e componente espicular, ou para coleções científicas ou didáticas, devem ser 

colocados imediatamente após a coleta em etanol a 80–90%, onde devem permanecer 

por 24 horas ao menos. A conservação a largo prazo é feita com etanol a 70–80% que 

deve sempre cobrir a amostra por completo. Para tal, a revisão do nível do fixador 

é uma tarefa constante em curadoria de coleções fixadas em etanol, devendo-se 

adotar as melhores práticas para minimizar a evaporação do etanol. Um aspecto que 

salientamos é que com o passar do tempo, mesmo uma coleção bem gerida quanto à 

reposição do fixador, necessitará da verificação da concentração do mesmo, uma vez 

que a água misturada ao etanol evapora mais lentamente que este. 

A fixação em formol deve se restringir a fins específicos, como quando se almeja 

obtenção de preparações histológicas, e por curto período de tempo (24 horas), pois 

a formalina macera as esponjas. Para fins de microscopia mais detalhada, existem 

ainda outros fixadores que podem ser utilizados, como o Bouin, e o glutaraldeido 

pós-fixado com tetróxido de ósmio. Recomendamos consulta a manuais de histologia 

ou artigos científicos que detalhem estes métodos, que apenas muito raramente se 

utilizam em estudos taxonômicos. Algumas esponjas que requerem tais preparações 

mais complexas são as Homosclerophorida e Chondrosida desprovidas de espículas, 

bem como as Halisarcida. 

Para estudos ao nível molecular, cada dia mais difundidos entre os taxônomos e 

filogeneticistas, inúmeras alternativas de preservação de espécimes existem, sempre 

com a preocupação de manter ADN e ARN o mais intactos possível. Dentre as que 

já utilizamos constam (1) inserção imediata de microfragmentos (diâmetro 1–2 

mm, altura 5–10 mm) da esponja alvo em etanol 96%; (2) inserção de fragmentos 


51


comparáveis, porém picotados adicionalmente, em tampão de lise (contendo 

hidrocloreto de guanidina); (3) inserção de microfragmentos picotados em silica-gel 

em pó; e (4) congelamento imediato de microfragmentos em gelo-seco ou nitrogênio 

líquido. Recentemente sugeriu-se que o uso de uma salmoura (300 g/L de NaCl em 

água) é um bom fixador temporário para a morfologia e moléculas das esponjas. Em 

todas estas opções, faz-se normalmente uso de tubos do tipo Eppendorf para o 

acondicionamento dos microfragmentos. 

Preparação de lâminas para microscopia óptica 

Espículas calcárias isoladas 

Coloque um microfragmento da esponja sobre lâmina e cubra com uma lamínula. 

 

de uma pipeta Pasteur ou conta-gotas, e deixe dissolver totalmente a peça. 

 

líquidos com tiras de papel de filtro dispostas na borda oposta da lamínula 

 

passar roupa em temperatura mínima, etc, ...) e retire cuidadosamente a lamínula. 

 

Araldite) e cubra com uma lamínula limpa. Obs. o Bálsamo do Canadá pode se 

acidificar com o tempo e dissolver as espículas calcárias. 

Espículas silicosas isoladas (lâmina rápida) 

Coloque um microfragmento da esponja sobre lâmina. 

 

 

pinça de madeira, e preferencialmente fazendo uso de óculos de proteção e guardapó. 

O material deve ser fervido até desintegrar-se por completo, ou até pouco antes 

que o ácido forme uma crosta esturricada, de difícil remoção subsequente. 

 

orgânica aparente estar totalmente dissolvida. A fumaça exalada ao ferver-se o 

ácido se tornará mais clara. 

 

com etanol, sempre levando à chama para secar a água ou queimar o etanol – 

até que a preparação pareça satisfatoriamente limpa e seca. CUIDADO! 

A aplicação de etanol sobre a lâmina quente pode gerar uma explosão se isso se 

der demasiadamente próximo da lamparina acesa. Afaste a lâmina da lamparina, 

40–50 cm, goteje o etanol, e então retorne a preparação à chama. A preparação deve 

ser mantida em movimento constante sobre a chama, na horizontal, para evitar a 

ruptura da lâmina. 

 



calcárias, tendo em mente que com as silicosas a acidificação do Bálsamo do 

Canadá no longo prazo não oferece desvantagem, e este é um meio de montagem 

de baixo custo e baixa toxicidade. 

Espículas silicosas isoladas (lâmina lenta) 

Coloque um microfragmento da esponja (2–5 vezes maior que nas preparações 

sobre lâmina) em um tubo de ensaio refratário. 

 

 

e goteje ácido adicional (5–10 gotas). 

 

com uma pinça de madeira, com os cuidados sugeridos acima. O material deve ser 

fervido até desintegrar-se totalmente, o que ocorrerá muito antes que o ácido seque 

por completo, ou do contrário seu material não será dissolvido sob hipótese alguma. 

DICA! Fixe duas pinças de madeira para tubos de ensaio, uma de costas para a outra. 

Desta forma você poderá levar dois tubos de ensaio por vez à chama da lamparina. 

 

o jato d’água para suspender e misturar bem as espículas. 

 

centrífuga clínica), ou deixe-o decantar por 1–2 h. 

 

para não perder parte do precipitado de espículas. 

 

com etanol 92–96%. O etanol descartado é guardado para uso na alimentação da 

lamparina. 

 

suspenda as espículas, e aplique com uma pipeta Pasteur limpa 1–2 gotas da 

suspensão espicular sobre uma lâmina para microscopia. A abertura da pipeta 

deve ser condizente com o tamanho das espículas que se pretende pipetar. Desta 

forma, não raro é necessário quebrar ou cortar a ponta da pipeta para conseguir 

um maior calibre na sucção. Em alguns casos, faz-se uso de um pincel para retirar 

espículas do precipitado, especialmente quando estas estão demasiadamente 

enoveladas. Obs. Este método pode parecer muito demorado, mas a possibilidade 

de se trabalhar com uma linha de montagem, com 20, 30, 50 tubos ao mesmo tempo, 

pode ser vantajosa, especialmente em função da alta qualidade obtida ao final. 

 

por completo sobre uma placa aquecedora. 

 

Fibras de espongina isoladas 

Maceração em água morna: coloque um fragmento da esponja (aproximadamente 1 

cm 3 ) em água a 30–37°C e observe sua decomposição dia após dia até que se alcance 


53


o efeito desejado. Só troque a água se o cheiro estiver demasiadamente forte, o que 

também pode ser minimizado ampliando-se o volume de água relativo ao tamanho 

do fragmento da esponja. Uma vez concluído o processo, lava-se as fibras com água 

limpa, desidrata-se com etanol 80–96% e passa-se à montagem sobre lâmina. 

Maceração em água-sanitária (hipoclorito de sódio) a 10–20%: coloque um 

fragmento da esponja (aproximadamente 1 cm 3 ) em solução diluída de água-sanitária 

a frio (1 parte de água-sanitária + 4–9 partes de água, a depender da delicadeza do 

material). Trabalhe em ambiente bem ventilado ou em capela de exaustão. A amostra 

poderá ser pressionada repetidas vezes, porém com suavidade (pinça de ponta 

larga) para facilitar o acesso do cloro às partes internas da amostra. Também se pode 

utilizar uma siringa, não para perfurar a amostra, mas para gerar jatos de solução 

que auxiliarão no desmantelamento do mesoílo da esponja, desprendendo-o das 

fibras de espongina. O procedimento deve ser observado de perto, com intervalos 

não superiores a alguns poucos minutos, especialmente no caso de amostras mais 

delicadas, ou do contrário pode-se perder toda a amostra. Alcançado o efeito 

desejado lava-se a amostra com água limpa, desidrata-a com etanol 80–96% e passase 

a cortá-la, se for o caso, para aplicação sobre lâmina e montagem. 

Maceração enzimática (papaína): incube um fragmento da esponja com 1–2 cm 3 

em 3 mL de tampão de digestão (100 mM de acetato de sódio; pH 5,0; cisteína 5 mM; 

EDTA 5 mM) por 24 horas a 4º C. Adicione 1 mL de solução de papaína a 3% (feita 

com tampão de digestão fresco) ao tubo contendo o fragmento, e incube por novas 

24h, agora a 60°C. Lave o fragmento digerido com jatos de água para desprender 

sobras de mesoílo das fibras. Alcançado o efeito desejado lava-se a amostra com 

água limpa, desidrata-a com etanol 80–96% e passa-se a cortá-la, se for o caso, para 

aplicação sobre lâmina e montagem. 

Maceração sob lupa (microscópio estereoscópico): procedimento que pode ser 

utilizado só, ou combinado aos demais, que consiste em auxiliar o desprendimento 

das fibras com uma pinça de ponta fina. Se estiver trabalhando com água-sanitária 

faça-o em ambiente bem ventilado ou em capela de exaustão. Conclua a limpeza, 

desidratação e montagem como descrito acima. 

Cortes espessos rápidos (Demospongiae e Hexactinellida) 

Com lâmina de barbear ou bisturi, corte a esponja em seções perpendiculares e 

tangenciais, não misturando os dois tipos de cortes. Por vezes pode ser mais cômodo 

separar da amostra um fragmento com ângulos retos, a partir do qual se ensaia 

a obtenção das seções perpendiculares e tangenciais. Algumas esponjas são mais 

fáceis de cortar. Para outras, pode ser preferível secá-las primeiro por completo, ou 

até mesmo congelá-las, de modo a obter-se estrutura mais firme para o corte. Os 

cortes devem ter preferencialmente menos de 0,5 mm de espessura. 

 

perpendiculares, e indicando na etiqueta quais são uns e quais são os outros. 



 

60°C) ou sob lâmpada incandescente. DICA! Caso os cortes estejam nitidamente se 

enrolando ao secar, reidrate-os com etanol e reaplique-os sobre a lâmina, desta vez 

cobertos por uma ou mais lamínulas, sobre a qual se apoiará um pequeno peso 

(por exemplo – chumbo de pesca, parafuso com porcas – 20–40 gr por lamínula de 

18x18 mm). 

 

acima. 

Cortes espessos lentos (Demospongiae e Hexactinellida) 

Corte com auxílio de lâmina de barbear ou bisturi um pequeno bloco da esponja 

fixada, prestando atenção para não confundir a superfície externa da esponja 

(ectossoma) com as superfícies internas (coanossomais) obtidas através do corte. 

DICA! Em algumas esponjas você pode conseguir fazer uma marca a lápis no 

ectossoma. Em outras, pode marcá-lo com uma pincelada de fucsina ácida 1% em 

solução alcoólica a 80%. 

 

banhos em xilol, de mesma duração, sob exaustão constante. IMPORTANTE! O xilol 

usado deve ser mantido em um recipiente de vidro, fechado hermeticamente com 

uma tampa resistente aos vapores deste solvente, para descarte futuro através de 

empresa especializada no manejo de resíduos químicos. 

 

de papel toalha. 

 

e repita o procedimento com parafina nova. A parafina usada pode ser utilizada 

para o primeiro banho de outras amostras. Costumamos usar pequenos frascos de 

vidro para os banhos 

 

preferencialmente desmontável (mas forma de empada também serve), 

preencha metade de seu volume com parafina líquida nova (pode ser a parafina 

utilizada no segundo banho); e imediatamente a seguir, coloque na forma o 

bloco de esponja (sem perder a noção de qual é sua superfície ectossomal), 

e cubra-o com parafina líquida adicional até completar o volume da forma. 

DICA! O volume do emblocador deve ser bem maior que o da amostra a emblocar, 

ou do contrário, com a retração da parafina durante seu esfriamento, surgirão 

superfícies expostas do material biológico onde será mais difícil obter-se uma seção 

de qualidade. Os emblocadores que utilizamos são constituídos de uma placa de 

metal com 7x7 cm e dois “L” de metal, que deslizam sobre a placa, permitindo a 

montagem de blocos maiores ou menores, de acordo com o encaixe eleito para os 

“L”. Alternativamente, se pode montar um cubinho de papel de alumínio com 

uma face aberta, utilizando papel de alumínio dobrado em 3 ou 4 camadas para 


55


maior firmeza. É recomendável que seu bloco esteja etiquetado, e um jeito eficiente 

de fazê-lo é com uma etiqueta autoadesiva dobrada sobre um fio dental com 5–10 

cm de comprimento (ou barbante fino), aderida em si própria, inserindo-se a 

extremidade do fio na forma com a parafina ainda líquida, de maneira que fique 

preso após o endurecimento do bloco. 

 

geladeira, e solte-o da forma. 

 

para não cortar o material emblocado, nem tampouco quebrar o bloco. Este desbaste 

deve ser feito de modo a aproximar as superfícies que se deseja seccionar na 

esponja, da superfície do bloco de parafina – lembrando que mantém-se aqui o 

objetivo de obter-se seções transversais e tangenciais. 

me 

descrito acima na técnica rápida. 

 

ciais para desparafinização, com dois banhos de xilol de 30 min, o primeiro com solvente 

usado, o último com solvente novo. Nesta fase costumamos utilizar pequenas 

placas de petri cobertas, com 4 cm de diâmetro. O resultado final deve ser monitorado 

visualmente, sendo importante que a os cortes permaneçam no solvente por ao 

menos 10 min ainda, após não ser mais possível detectar-se visualmente a presença 

de parafina. Lembramos que todo o trabalho com solventes deve ser feito sob exaustão, 

ou na pior das hipóteses, em ambiente extremamente bem ventilado. 

Cortes espessos: Calcarea 

Corte longitudinalmente um exemplar conservado em etanol. 

Core ½ ou ¼ do espécime com fucsina ácida 1% em solução alcoólica a 80%, por 20 

min., removendo o excesso em etanol 80%. 

Desidrate em etanol a 92–96% (20 min) e xilol normal (2x, 30 min). 

Coloque o bloco em um banho de parafina histológica líquida (60°C) por 90–120 

min, e repita o procedimento com parafina nova. 

Siga os passos listados acima em Cortes espessos lentos 

(Demospongiae e Hexactinellida) 

para emblocamento, desbaste, corte, 

desparafinização e montagem dos 

cortes. 

Placa metálica e dois “L” de metal 

utilizados para emblocamento em parafina 

de fragmentos de esponjas,conforme 

detalhamento no texto acima. 



Preparação de lâminas para Microscopia Eletrônica de Varredura (MEV) 

Espículas silicosas isoladas para MEV 

Siga todos os passos listados acima para 

, até o estádio da fervura em ácido nítrico do fragmento do qual se pretende 

isolar as espículas. 

Com o volume do ácido bem reduzido pela fervura, acrescente nova dose de ácido 

e siga fervendo por ao menos mais 30 seg. 

Na fase da lavagem e desidratação com etanol, repita os passos, porém aumentando 

o número de lavagens com água e posteriormente com etanol. O último banho 

de etanol deve ser com etanol absoluto (99%), preferencialmente de grau P.A. de 

qualidade. 

A suspensão espicular final é aplicada sobre um suporte metálico apropriado para 

o equipamento que se pretende utilizar, seguindo-se os seguintes passos: cole uma 

lamínula de vidro sobre o suporte metálico, assegurando-se que suas bordas não 

ultrapassem as do suporte; a colagem é feita idealmente com fita carbônica de dupla 

face, mas fita dupla face comum também costuma ser utilizada, da mesma forma 

que resinas acrílicas de montagem e secagem rápida; aplique uma ou mais gotas 

da suspensão espicular sobre a lamínula, deixando secar sob luz incandescente, 

com o suporte e a amostra cobertos por uma placa de petri para proteção; uma vez 

alcançada a quantidade almejada de espículas sobre a lamínula (o que pode ser 

verificado em microscópio estereoscópico) e estando esta bem seca, aplique uma 

pequena camada de cola de prata ou de carbono no entorno da lamínula, com 

o objetivo de fechar a condutividade entre a superfície superior da lamínula e o 

suporte metálico (se optou por uso da resina, espere até que esteja 100% seca antes 

de aplicar a cola de prata); após alguns minutos o suporte e amostra estão prontos 

para a metalização a vácuo. CUIDADO! Tanto as resinas acrílicas (meios de 

montagem), quanto a cola de prata devem idealmente ser utilizados sob exaustão. 

A aplicação da cola de prata deve ter a cautela de não lambuzar a superfície da 

lamínula, pois aí não se conseguirá analisar as espículas. O transporte dos suportes 

até o metalizador deve ser feito com cuidado para evitar perda de muitas espículas 

em decorrência de vento ou queda, mas também para evitar a mistura de espículas 

entre distintos suportes, o que é tão mais grave quão mais próximas forem as 

espécies estudadas, quando tais deslizes podem acarretar descrições espúrias. 

Espículas calcárias isoladas para MEV 

Utilize o mesmo procedimento descrito para espículas silicosas, substituindo o 

ácido nítrico por hipoclorito de sódio, e centrifugando as espículas a não mais que 

1000 rpm em centrífuga clínica. 


57

ESPONJAS MARINHAS DA BAHIA

FILO PORIFERA Grant, 1836 

Classe Demospongiae Sollas 1885 

Ordem Spirophorida Bergquist & Hogg, 1969 

Cinachyrella apion (Uliczka, 1929). Ilha das Fontes (São Francisco do Conde), 

entremarés, 21/Mai/2008. 

NOTA Em sua ampla maioria, os valores micrométricos apresentados neste 

Guia para as megascleras compreendem comprimento / espessura, e para 

as microscleras apenas comprimento. 

EDUARDO HAJDU, † SOLANGE PEIXINHO, JÚLIO C.C. FERNANDEZ


Família Tetillidae Sollas, 1886 

Gênero Cinachyrella Wilson, 1925 

O gênero compreende 39 espécies no mundo, das quais três ocorrem 

no Brasil. Não há distinção na morfologia externa de C. alloclada, 

C. apion e C. kuekenthali em vários locais. Os tipos espiculares 

confirmam os status específicos e em geral as dimensões das 

espículas são maiores dentro das baías. Em habitats mais profundos 

da Baía de Todos os Santos, 15–20 m, C. kuekenthali predomina, e 

alcança dimensões maiores que as demais espécies, com espécimes 

frequentemente maiores que 10 cm de diâmetro. 

1. Cinachyrella alloclada (Uliczka, 1929) 

Morfologia 

Subesférica com cerca de 40 mm de 

diâmetro e 25 mm de altura, a coloração 

da esponja viva é amarelo ouro ou bege, 

e creme ou ocre quando preservada em 

álcool. Superfície áspera, com aberturas 

rasas (porocálices) circulares a ovais de 

1 a 2 mm de diâmetro. A consistência 

é muito firme ou levemente compressível 

em vida. Esqueleto ectossomal 

com 180–840 μm de espessura, onde lacunas 

subdermais estão presentes, composto 

pelas terminações dos feixes coanossomais 

que se projetam através da 

Quebramar Norte (Salvador), 6 m de profundidade, 11/Dez/2007. 


Cinachyrella alloclada (Uliczka, 1929) 

Arquitetura radial, notando-se grandes 

óxeas e protriênios projetando-se além da 

superfície da esponja. 

superfície da esponja. Esqueleto coanossomal 

formado por feixes de triênios e 

óxeas em disposição radial, confuso em 

sua porção central. Espículas: protriênios 

ou prodiênios, rabdomas com 1296–3197 

/ 5–14 μm e cládios com 30–190 / 2–5 μm; 

anatriênios, rabdomas com 1051–2900 / 

3–5 μm e cládios com 36–72 / 2–14 μm; 

óxeas I (lisas), 1900–4500 / 14–38 μm; 

óxeas II (lisas), 1144–1440 / 11–14 μm; 

óxeas III (lisas), 63–172 / 7–11 μm; sigmaspiras, 

7–11 μm. 

Ecologia 

Cinachyrella alloclada se estabelece em 

rochas cobertas de areia, frequentemente 

sob uma fina camada de sedimento, com 

apenas algumas aberturas visíveis. A espécie 

ocorre exposta à luz no entremarés 

de praias com afloramentos rochosos na 

Baía de Todos os Santos, inclusive em 

áreas urbanas de Salvador, bem como 

em todo litoral da Bahia até seu extremo 

sul. Foi também coletada em 28–30 m de 

profundidade no litoral norte, em substrato 

composto de areias e cascalhos 

biodetríticos. 

A, óxea I; B, óxea II; C, óxea III; D, protriênio 

e detalhe de seu cladoma; E, anatriênio e 

detalhe de seu cladoma; F, sigmaspira. 

Distribuição geográfica 

Noroeste do Atlântico. Golfo do México. 

Caribe (Flórida, Dry Tortugas, Bahamas, 

Cuba, Jamaica, México, Panamá, Venezuela). 

Brasil [CE, Atol das Rocas, PE, 

AL, BA (Mata de São João, Salvador, 

Vera Cruz, Itaparica, Baía de Camamu, 

Porto Seguro), RJ, SP]. 


61

Cinachyrella alloclada (Uliczka, 1929) 

Eletromicrografias das 

sigmaspiras de Cinachyrella spp. 

da Bahia. Acima, à esquerda – 

C. alloclada; acima, C. apion; ao 

lado, C. kuekenthali. 


2. Cinachyrella apion (Uliczka, 1929) 

Morfologia 

Subesférica à esférica (raramente), com 

diâmetro de 40–100 mm. Cor em vida 

amarelo–ouro ou bege externamente, 

bege ao marrom no álcool. Superfície 

é híspida, contendo porocálices com 

diâmetros de 1–7 mm. A consistência é 

compressível. Córtex fino, fibroso, indistinguível 

do ectossoma. Esqueleto ectossomal 

indiferenciado. Esqueleto coanossomal 

formado por feixes de triênios e 

óxeas em disposição radial que se projetam 

através da superfície da esponja, 

confuso em sua porção central. Espículas: 

protriênios a prodiênios I, rabdomas 

com 961–5760 / 7–14 μm e cládios com 

78–155 μm; protriênios a prodiênios II, 

rabdomas com 83–1256 / 2–3,5 μm e cládios 

com 18–39 μm; anatriênios, rabdomas 

com 1891–2064 / 3,5–7 μm e cládios 

com 47–78 μm; óxeas (lisas), 2200–5480 

/ 10–110 μm; sigmaspiras, 11–35 μm; 

ráfides (às vezes em tricodragmas), 212– 

259 μm. 

Ecologia 

Idêntica à Cinachyrella alloclada, espécie 

que frequentemente ocorre em simpatria. 

Na região de Madre de Deus, ao 

norte da Baía de Todos os Santos, só C. 

apion foi assinalada. 

Distribuição geográfica 


Caribe (Bermudas, Flórida, Bahamas, 

Ilhas Virgens, Belize, Panamá). Brasil 

[CE, Fernando de Noronha, PE, AL, 

BA (São Francisco do Conde, Madre de 

Deus, Salvador), SP]. 

Ilha das Fontes (São Francisco do Conde), entremarés, 21/Mai/2008. 


63

Cinachyrella apion (Uliczka, 1929) 

Ilha das Fontes (São Francisco do Conde), entremarés, 21/Mai/2008, cohabitando o mangue 

com o molusco mitilídeo Mytella falcata (D’Orbigny, 1846) (sururu). 


óxeas, protriênios e anatriênios projetando-se 

além da superfície da esponja. 

A, óxea; B, protriênio I; C, protriênio 

II e detalhe de seu cladoma; D, anatriênio 

e detalhe de seu cladoma; E, 

sigmaspira; F, ráfide. 


3. Cinachyrella kuekenthali (Uliczka,1929) 

Morfologia 

Subesférica, às vezes em forma de pêra, 

podendo atingir 20 cm de diâmetro. Cor 

em vida amarela alaranjada e creme no 

álcool. Superfície levemente híspida, 

com porocálices. Esqueleto ectossomal 

composto pelas terminações dos feixes 

coanossomais que se projetam através da 

superfície da esponja, e por abundantes 

micróxeas dispersas. Esqueleto coanossomal 

formado por feixes de triênios 

e óxeas em disposição radial, confuso 

em sua porção central. Espículas: protriênios, 

rabdomas com 2268–3852 / 11– 

18 μm e cládios com 32–65 / 8–15 μm; 

anatriênios, rabdomas com 2340–3960 / 

5–7 μm e cládios com 29–50 / 6–8 μm; 

óxeas I (lisas), 2916–5040 / 29–47 μm; óxeas 

II (lisas), 1944–2808 / 11–29 μm; óxeas 

III (microespinadas), 119–194 / 3,5–5 

μm; sigmaspiras, 7–18 μm. 

Ecologia 

Esta esponja só foi encontrada no infralitoral. 

Na Baía de Todos os Santos, inclusive 

nas proximidades de áreas urbanas 

de Salvador, ocorrem em profundidades 

maiores que 10 metros e neste caso as dimensões 

dos exemplares podem variar 

de 10 a 20 cm de diâmetro, sendo bem 

maiores que os indivíduos coletados no 

litoral norte (Camaçari). 

Distribuição 


Caribe (Flórida, Dry Tortugas, Bahamas, 

Cuba, Jamaica, Porto Rico, Ilhas Virgens, 

Belize, Barbados, Colômbia, Venezuela). 

Brasil [PA, RN, PB, PE, BA (Camaçari, 

Salvador), ES, RJ]. 

Farol da Barra (Salvador), 6,2 m de 

profundidade, 10/Dez/2007. Notar abundância 

de epibiontes. 


65

Cinachyrella kuekenthali (Uliczka,1929) 

Quebramar Norte (Salvador), 

11 m de profundidade, 11/Dez/2007. 

Epibiose pela esponja Niphates 

erecta (acima, à esquerda). 

Superfície com abundantes 

porocálices (acima). Tonalidade 

levemente mais pálida do 

coanossoma (à esquerda). 


óxeas e protriênios projetando-se além 

da superfície da esponja. Notar grande 

quantidade de óxeas III dispersas. 

A, óxea I; B, óxea II; C, óxea III e detalhe 

de sua microespinação; D, protriênio e 

detalhe de seu cladoma; E, anatriênio e 

detalhe de seu cladoma; F, sigmaspira. 


Gênero Craniella Schmidt, 1870 

O gênero compreende 45 espécies no mundo, das quais quatro 

ocorrem no Brasil. Tratam-se de esponjas adaptadas à vida 

em substratos areno-lamosos, ao qual se fixam por projeções 

radiculares constituídas de feixes de espículas longas e com 

garras na ponta. 

4. Craniella quirimure Peixinho, Cosme & Hajdu, 2005 

Morfologia 

Irregularmente ovóide, elíptica a quase 

esférica, com altura máxima de 25 mm 

e diâmetro máximo de 23 mm. Cor em 

vida verde externamente, particularmente 

quando submersos, e amarelados 

internamente. Cor marrom no álcool. 

Em geral a superfície é lisa, porém pode 

apresentar algumas partes rugosas. 

Geralmente há um único ósculo apical e 

na porção basal apresenta longas extensões 

espiculares destinadas a mantê–la 

ancorada ao substrato. A consistência 

varia de facilmente compressível a quase 

incompressível. Esqueleto radial quase 

perfeito, com feixes espirais. Espículas: 

protriênios I (prodiênios e promonênios), 

rabdomas com 1434–3156 / 4–8 μm e 

Espécimes da Barra do Jacuruna (Nazaré), 

fotografados em aquário na UFBA. O maior 

espécime tem 3 cm de altura. 


67

Craniella quirimure Peixinho et al., 2005 

cladomas com 21–54 / 13–33 μm; protriênios 

II, rabdomas com 210-908 / 1-2 

μm e cladomas com 15–65 / 5–44 μm;. 

anatriênios, rabdomas com até 9600 / 

4–9 μm e cladomas com 18–41 μm; óxeas 

I, 1363–2705 / 7–26 μm; óxeas II, 493– 

1221 / 12–32 μm; óxeas III, 381–1221 / 

12–32 μm; óxeas IV, 269–881 / 6–25 μm; 

sigmaspiras, 6–12 μm. 

Ecologia 

Essas esponjas são abundantes em 

uma região de manguezal da Baía de 

Todos os Santos, a Barra do Jacuruna, 

onde sua densidade foi calculada 

em aproximadamente 12 indivíduos 

por metro quadrado. A espécie também 

foi assinalada no infralitoral, em 

frente à marina de Itaparica e na Baía de 

Camamu. 


Brasil (provisoriamente endêmica da 

Bahia – Itaparica, Vera Cruz, Camamu, 

Maraú). 

Espécime recém coletado na Barra do Jacuruna. Observar o tufo radicular de espículas, 

enovelado após a coleta, porém ainda com abundante lama do manguesal. 


Craniella quirimure Peixinho et al., 2005 

Organização radial do esqueleto com 

feixes ascendentes de óxeas maiores. 

Tufos corticais de óxeas menores. 

A, óxea I; B, óxea II; C, óxea III; D, óxea IV; E, protriênio I e 

modificações em prodiênios; F, protriênio II; G, anatriênio; H, 

sigmaspira. 


69

Ordem Astrophorida Sollas, 1888 

Microsclera esterraster do tipo de Geodia neptuni (Sollas, 1886) – 

adaptado de eletromicrografia obtida por S. Salani."


Família Ancorinidae Schmidt, 1870 

Gênero Ecionemia Bowerbank, 1864 

O gênero compreende 39 espécies no mundo, das quais apenas uma 

ocorre no Brasil. 

5. Ecionemia sp 

Morfologia 

Maciça, ereta, irregularmente cilíndrica 

(lobada), com 3–4 cm de diâmetro e até 15 

cm de comprimento. Cor em vida, externa 

cinza escura e interna bege. No álcool 

as tonalidades tonam-se mais esmaecidas. 

Superfície geralmente coberta por 

sedimentos e/ou epibiontes variados. 

Ósculos circulares, apicais, raros, com 

cerca de 4 mm de diâmetro. Consistência 

rígida, incompressível. O esqueleto 

ectossomal é formado externamente por 

uma camada de oxiásteres, e internamente 

pelos cladomas dos dicotriênios 

dispostos lado a lado e entremeados às 

terminações dos feixes radiais coanossomais 

formados por óxeas grandes e 

algumas óxeas menores. Grande quantidade 

de óxeas dispersas mascara o 

padrão de organização. Microrrábdos e 

oxiásteres distribuídos aleatoriamente 

por todo o coanossoma. Espículas: dicotriênios 

(ocasionalmente ortotriênios), 


cládios com 70–168 / 42–56 μm; óxeas I, 

1190–1372 / 56–70 μm; óxeas II, 187–237 / 

3,6 μm; microrrábdos, 68–79 / 7,2–10,8 

μm; oxiásteres com 4–8 raios, 5,4–7,2 μm. 

Comentário 

Este é o primeiro registro deste gênero 

para a costa brasileira. A relativa raridade 

dos triênios torna esta espécie facilmente 

confundível com um Melophlus Thiele, 

1899, gênero que se distingue de Ecionemia 

principalmente pela ausência destas 

espículas. Como ambos gêneros ocorrem 

no litoral brasileiro, deve-se prestar redobrada 

atenção em sua identificação. 

Ecologia 

A espécie é rara, e apresenta esponjas e 

cnidários frequentemente aderidos em 

sua superfície. Espécimes do interior 

da Baía de Todos os Santos ocorrem em 

áreas com considerável sedimentação. 

Foi encontrada entre os 5 e 11 m de profundidade, 

inclusive próximo às áreas 

urbanas de Salvador. 


Brasil (BA – Salvador). 


71

Ecionemia sp. 

Boião de sinalização naval entre Salvador e Ilha dos Frades, Bahia de Todos os Santos, 5 m de 

profundidade, 21/Jun/2004, em habitat sujeito à forte sedimentação. 

Arquitetura esquelética em seção 

transversal. 

A, óxea I; B, óxea II; C, dicotriênio e 

detalhe de seu cladoma; D, microrrabdo; E, 

oxiáster. 


Ecionemia sp. 

Espécime recém coletado em frente ao bairro de Ondina (Salvador), fotografado sobre a 

bancada do laboratório (UFBA). 

Microrrabdos eletromicrografados em Microscópio Eletrônico de Varredura (espécime do 

boião de sinalização naval entre Salvador e Ilha dos Frades, Bahia de Todos os Santos). A maior 

espícula tem 84 μm de comprimento. 


73

Gênero Stelletta Schmidt, 1862 

O gênero compreende 146 espécies no mundo, das quais dez 

ocorrem no Brasil. Do Estado da Bahia conhecem-se ainda S. 

anasteria (Esteves & Muricy, 2005), S. crassispicula (Sollas, 1886), 

S. kallitetilla (de Laubenfels, 1936) e S. soteropolitana Cosme & 

Peixinho, 2007. 

6. Stelletta anancora (Sollas, 1886) 

Morfologia 

Maciça, irregular à arredondada, podendo 

atingir cerca de 7 cm no maior 

diâmetro. Cor em vivo, externa é branca, 

marrom, verde ou violeta, no álcool é 

bege clara a escura. Superfície híspida 

e frequentemente recoberta por algas. 

Ósculos localizados no topo e na lateral 

da esponja, 1–3 por exemplar, e com 

diâmetros de 1–8 mm. Consistência 

dura, pouco compressível. A arquitetura 

esquelética inclui um córtex rico em colágeno 

e com espículas isoladas ou em 

feixes oriundos da região coanossomal, 

além de uma fina camada de oxiásteres 

na sua porção mais interna. O coanossoma 

tem feixes radiais de plagiotriênios 

e óxeas. Espículas: plagiotriênios I, rabdomas 

com 910–1920 / 28–42 μm e cladomas 

com 140–294 / 18–25 μm; plagiotriênios 

II, rabdomas com 476–1092 

/ 14–28 μm e cladomas com 56–140 / 

15–18 μm; plagiotriênios III, rabdomas 

com 126–406 / 4–14 μm e cladomas com 

20–50 / 5–10 μm; óxeas I, 630–1806 / 

6–21 μm; óxeas II, 910–1414 / 14–31 μm; 

oxiásteres, 7–18 μm. 

Comentário 

Esta espécie foi registrada pela primeira 

vez para o Brasil em 1886 a partir de material 

coletado na Bahia pela expedição 

de circumnavegação global do navio inglês 

H.M.S. Challenger, ocorrida entre os 

anos de 1873 e 1876. 

Ecologia 

Na Baía de Todos os Santos a espécie foi 

observada principalmente em substrato 

consolidado, especialmente costões rochosos, 

com apenas um espécime encontrado 

em manguezais. Sua profundidade de 

ocorrência foi do entremarés aos 10 m. Os 

demais exemplares foram coletados no 

litoral norte em substrato inconsolidado, 

com sedimento de areia e cascalho biodetrítico, 

em profundidades de 23–25 m. 

Esta espécie pode ser encontrada próxima 

das áreas urbanas de Salvador. 


Caribe (registros duvidosos). Brasil [PE, 

SE, Bahia (Arembepe, Camaçari, Salvador), 

ES]. 


Stelletta anancora (Sollas, 1886) 

Iate Clube (Salvador), 2–3 m de profundidade, 04/Dez/2006. Notar 

abundância de epibiontes, incluindo ao menos três espécies de esponjas. 


75


Porto da Barra (Salvador), 3,8 m de 

profundidade, 09/Dez/2007. Notar a 

camuflagem do espécime, traída apenas por 

seu ósculo apical com 1 cm de diâmetro. 

A, óxea I; B, óxea II; C, plagiotriênio I; D, 

plagiotriênio II; E, plagiotriênio III; F, oxiáster. 



Mesmo espécime, recém coletado. Coanossoma com canais aquiferos de distintos calibres, 

com destaque para os maiores, que rumam para os ósculos. 

Arquitetura esquelética com feixes radiais de plagiotriênios e óxeas, formando um 

escudo protetor na região ectossomal. MICROFOTOGRAFIA POR B. COSME. 


77

Gênero Tribrachium Bowerbank, 1864 

O gênero compreende duas espécies no mundo, das quais 

uma ocorre no Brasil. Trata-se de esponjas adaptadas à 

vida em substratos arenosos, ao qual se fixam pela inserção 

da porção esférica de seu corpo. 

7. Tribrachium schmidti Weltner, 1882 

Morfologia 

Esponja em formato de pirulito invertido, 

onde a base esférica está enterrada no 

substrato, da qual parte um tubo oscular 

cilíndrico (fístula) que projeta-se alguns 

centímetros acima do substrato. O comprimento 

total (bulbo e tubo) dos espécimes 

observados é de 6–82 mm. Diâmetro 

Hábito de espécime do Litoral Norte da 

Bahia, após preservação em álcool. 

do bulbo 1,4–13,5 mm, e do tubo oscular 

0,12–5,64 mm. Cor em vida, branca a 

marrom escura na base, e branca a marrom 

amarelado no tubo. No álcool a cor 

é branca a amarelada. Superfície da base 

microhíspida e do tubo lisa. O único ósculo 

visível é o do ápice do tubo. Consistência 

pouco compressível, notadamente na 

base, tubo frágil. O esqueleto do bulbo é 

radial com uma camada pigmentada e 

abundantemente preenchida por sanidásteres. 

O esqueleto do tubo é uma malha de 

ortodiênios justapostos com sanidásteres 

entremeadas. Espículas: ortodiênios (tubo 

oscular), rabdomas com 2808–3456 / 29– 

54 μm e cládios com 288–648 / 25–32 μm; 

dicotriênios (bulbo), rabdomas com 1260– 

3132 / 29–72 μm e cládios com 108–468 / 

11–36 μm; anatriênios (bulbo), rabdomas 

com 826–1680 / 7–14 e cládios com 27–49 

/ 7–14 μm; óxeas, 2844–3528 / 14–36 μm; 

sanidásteres I (ectossoma do bulbo e tubo 

oscular), 13 / 2 μm; sanidásteres II (coanossoma 

do bulbo), 7 / 1 μm. 

Comentário 

Esta espécie também foi registrada pela 

primeira vez para o Brasil em 1886 a 

partir de material coletado na Bahia pela 

expedição de circumnavegação global 

do navio inglês H.M.S. Challenger, ocorrida 

entre os anos de 1873 e 1876. 


Tribrachium schmidti Weltner, 1882 

Ecologia 

Esponja psamófila. Todos os espécimes 

observados foram provenientes de 

areia, lama ou cascalho biodetrítico em 

profundidades de 26–91 m. O primeiro 

registro da espécie para a Bahia apontou 

sua ocorrência já a partir dos 7 m de profundidade. 


Tropical Atlântica Ocidental. Golfo do 

México (Cuba). Brasil [AP, PA, BA (Camaçari, 

Salvador, Cairu, Belmonte), RJ]. 

A, óxea; B, ortodiênio; C, dicotriênio e detalhe 

de seu cladoma; D, anatriênio; E, sanidáster. 

Arquitetura esquelética da base, com feixes 

radiais de dicotriênios e óxeas. 

Arquitetura esquelética do tubo com 

ortodiênios justapostos. 


79

Tribrachium schmidti Weltner, 1882 

Prancha XVII de Sollas (1888) – apenas algumas figuras estão legendadas aqui. 1, hábito; 2, 

óxea; 3, ortotriênio pequeno; 4, anatriênio; 5, cladoma do anatriênio; 6, cladoma de um anatriênio 

reduzido a anamonênio; 7, ortodiênio do tubo; 8, sanidásteres; 9, seção vertical mediana da porção 

basal da esponja; 10, detalhe da região de fusão do tubo com a base da esponja em seção vertical 

mediana; 11, esqueleto da parte basal do tubo. 



Família Geodiidae Gray, 1867 

Gênero Erylus Lamarck, 1815 

O gênero compreende 67 espécies no mundo, das quais dez ocorrem 

no Brasil, e apenas uma é conhecida do litoral do Estado da Bahia. 

8. Erylus formosus Sollas, 1886 

Morfologia 

Maciça com lóbulos, às vezes com predomínio 

de crescimento vertical. Espécimes 

usualmente recobrindo áreas 

inferiores a 5 x 5 cm, esporadicamente 

até 10 x 15 cm. Lóbulos com até 5 cm de 

altura. Cor em vida, roxo ou roxo amarronzado 

externamente, às vezes com 

manchas avermelhadas, branca internamente 

e, quando em álcool, bege escu- 

ro acinzentado, interna e externamente. 

Superfície irregular, lisa a discretamente 

híspida, com processos lobulares pequenos. 

Ósculos preponderantemente apicais, 

circulares, com 0,5–4 mm de diâmetro. 

Consistência firme e compressível, 


profundidade, 10/Mai/2008. O espécime tem 

14 cm de comprimento. 


81

Erylus formosus Sollas, 1886 

Arquitetura esquelética em 

seção transversal. 

facilmente deformável e rasgável quando 

pressionada. Esqueleto ectossomal com 

crosta de microestrôngilos centrotilotos 

e aspidásteres. A região subectossomal 

possui triênios justapostos, com os cladomas 

sustentando a crosta ectossomal. 

Esqueleto coanossomal radial com feixes 

ascendentes de óxeas, estrongilásteres 

em uma camada de densidade variável 

logo abaixo dos cladomas dos triênios, 

microestrôngilos centrotilotos dispersos, 

e mais abaixo oxiásteres também em 

densidade variável. Espículas: ortotriênios, 

rabdomas com 308–616/ 14–28 μm 

e cládios com 120–180 / 11–28 μm; óxeas, 

742–1064 / 14–28 μm; aspidásteres, 140– 

224 / 14–42 μm; microestrôngilos centrotilotos, 

32–68 / 2–4 μm; oxiásteres, 36–68 

μm; estrongilásteres, 11–18 μm. 


Tropical Atlântica Ocidental. Caribe 

(Flórida, Bahamas, Jamaica, Panamá, 

Barbados, Antilhas Holandesas). Brasil 

[MA, CE, RN, Atol das Rocas, PB, PE, 

Fernando de Noronha, BA (Camaçari, 

Salvador), ES]. 

Ecologia 

Observada em substrato rochoso na Baía 

de Todos os Santos em profundidades 

inferiores a 10 m, também foi encontrada 

no litoral norte da Bahia, a mais de 20 

m de profundidade, em fundos de areia 

e detritos. A espécie pode ser encontrada 

próxima das áreas urbanas de Salvador. 

A, óxea; B, ortotriênio; C, microestrôngilo 

centrotiloto; D, aspidáster; E, estrongiláster; 

F, oxiáster. 


Erylus formosus Sollas, 1886 

Quebramar Norte (Salvador), 3,5 m de profundidade, 11/Dez/2007. 

Notar sedimentação mais acentuada e aparente epibiose por algas 

filamentosas. 


83

Gênero Geodia Lamarck, 1815 

O gênero compreende mais de 120 espécies no mundo, das quais 

nove ocorrem no Brasil. Afora as espécies descritas a seguir, estão 

registradas para a Bahia G. glariosa (Sollas, 1886) e G. papyracea 

Hechtel, 1965. 

9. Geodia corticostylifera Hajdu, Muricy, Custódio, Russo & Peixinho, 1992 

Morfologia 

Maciças–globosas a lamelares e eretas, 

variavelmente cerebriformes, com até 

7 cm de altura. Cor em vida alaranjada 

brilhante ou mais pálida, quando no 

álcool laranja clara ou bege. Superfície 

levemente híspida, ósculos simples com 

1–2 mm de diâmetro ou em crivos. Consistência 

geralmente firme. Córtex com 

estilos e óxeas em sua camada mais externa, 

esterrásteres e oxiásteres II logo 

abaixo, em seguida uma camada rica em 

colágeno e pobre em espículas, e por fim 

os cladomas dos ortotriênios sustentando 

o ectossoma. Esqueleto coanossomal 

radial com feixes de óxeas e ortotriênios, 

com oxiásteres I nos espaços intermediários. 

Espículas: ortotriênios, rabdomas 

com 392–1190 / 3–28 μm e cládios 

com 132–163 / 8–11 μm; óxeas, 100–1414 

/ 1,5–28 μm; estilos, 238–1134 / 4–20 μm; 

esterrásteres, 22–68 μm; oxiásteres I, 11– 

43 μm; oxiásteres II, 4–10 μm. 

Comentários 

Geodia corticostylifera vem sendo estudada 

intensamente com um foco químico-farmacológico. 

Já foi revelada em seus extratos, 

atividade antitumoral seletiva (câncer 

de mama), e fungos isolados desta esponja 

mostraram-se com potencial para uso 

na degradação do pesticida DDT. 

Ecologia 

A espécie pode ser encontrada próxima 

das áreas urbanas de Salvador, tendo sido 

observada na Baía de Todos os Santos 

em profundidades de 2–16 m. Também 

foram obtidos espécimes dos fundos areno-detríticos 

do litoral norte (Camaçari), 

em profundidades de até 63 m. 



(Venezuela, Trinidad & Tobago). Brasil 

[CE, RN, PE, AL, BA (Camaçari, Salvador), 

ES, RJ, SP]. 

Espécime recém coletado em frente ao 

bairro de Ondina (Salvador), fotografado 

sobre a bancada do laboratório (UFBA). 

Diâmetro máximo = 5,5 cm. 


Geodia corticostylifera Hajdu, Muricy, Custódio, Russo & Peixinho, 1992 


transversal 

A-B, óxeas; C, estilos corticais; D-E, ortotriênios; 

F, esterráster; G, oxiesferáster; H, 

oxiáster I; I, oxiáster II. 

Farol da Barra (Salvador), 7,7 m de profundidade, 03/Jun/2009. Altura do espécime = 2,5 cm. 


85

10. Geodia gibberosa Lamarck, 1815 

Morfologia 

Maciça irregular à maciça globosa, podendo 

ultrapassar 50 cm 2 de área. Cor 

em vida, geralmente branca externamente, 

eventualmente com manchas 

roxas, esverdeadas ou marrons, e internamente 

sempre creme. Superfície com 

regiões mais ou menos híspidas ao tato 

e com ósculos geralmente agrupados em 

crivos, com diâmetro de 0,5–1 mm. Externamente 

a esponja é dura, com uma 

capa coriácea, internamente é macia e 

quebradiça. Córtex, que pode ultrapassar 

1 mm de espessura, com camada mais 

externa fina e descontínua com estrongilásteres 

e óxeas pequenas, e espessa camada 

de esterrásteres logo abaixo. Nesta 

última há poros inalantes circundados 

por estrongilásteres e oxiásteres. Amplas 

cavidades subcorticais estão circundadas 

preponderantemente por oxiásteres. 

Esqueleto coanossomal com feixes radiais 

de óxeas e triênios que atravessam 

todo o córtex. Espículas: ortotriênios, 

rabdomas com 370–1480 / 6–43 μm e cládios 

com 71–163 / 8–15 μm; anatriênios, 


cládios com 2,5–6; óxeas I, 73–200/ 1,5–9 

μm; óxeas II, 1040–1680 / 25–40 μm; esterrásteres, 

43–71 μm; oxiásteres 12–36 

μm; estrongilásteres, 5–11 μm. 

Ecologia 


das áreas urbanas de Salvador. Em certas 

regiões de manguezais são abundantes 

sob, sobre e entre blocos de folhelhos 

(p.ex. Ilha do Medo), participando do 

concrecionamento destes blocos; também 

ocorrem nas faces internas de blocos 

rochosos (graníticos, areníticos) no 

entremarés e zonas infralitorâneas rasas, 

particularmente na Baía de Todos os 

Santos. 



Caribe (Flórida, Bahamas, Cuba, México, 

Jamaica, Belize, Costa Rica, Panamá, 

Colômbia, Venezuela, Barbados, Guianas). 

Brasil [CE, RN, PE, BA (Mata de 

São João, Salvador, Vera Cruz, Maraú), 

ES, RJ, SP]. Registros que necessitam de 

validação - Pacífico Tropical Ocidental 

(Panamá), África Ocidental, Patagônia. 

Arquitetura esquelética em seção transversal. 



Esponja branca – Praia do Forte (Mata de 

São João), entremarés, 07/Jun/2009. Habitat 

críptico, recifal, onde caracteristicamente 

observam-se poríferos em intensa competição 

por espaço. 

A, óxea I; B, óxea II; C, ortotriênio; D, 

esterráster; E, oxiásrter; F, estrongiláster. 


87

Ordem Hadromerida Topsent, 1894 

Timea sp., espécie não apresentada neste Guia, reconhecível por suas 

fendas porais e hábito incrustante. Outra espécie com hábito semelhante é 

Placospongia sp., porém esta é muito mais dura. Praia do Forte (Mata de São 

João), 1-2 m de profundidade, 07/Jun/2009.


Família Clionaidae D’Orbigny, 1851 

Gênero Cliona Grant, 1825 

O gênero compreende 76 espécies no mundo, das quais sete 

ocorrem no Brasil. Além das três espécies descritas a seguir, está 

também registrada para a Bahia C. dyorissa (de Laubenfels, 1950). 

Esta família inclui espécies adaptadas à perfuração de substratos 

calcários (conchas, corais, rodolitos), o que é alcançado através 

de mecanismos celulares que liberam pequenos chips de formato 

característico. Mais de 90% do substrato perfurado é convertido 

em chips. Cálculos efetuados em ambientes recifais na região 

do Caribe estabeleceram o valor de 256 g / m 2 / ano como a 

produção de sedimento calcário por estas esponjas, gerando cerca 

de 40% de todo o sedimento em alguns setores destes recifes. 

Estimou-se que a taxa de bioerosão poderia alcançar 3 kg / m 2 

/ ano em locais com maior infestação por esponjas escavadoras. 

Valores semelhantes foram obtidos para o potencial escavador de 

Cliona aff. celata Grant, 1826 no litoral norte da Bahia. 

11. Complexo Cliona celata Grant, 1826 

Morfologia 

Forma incrustante (perfurante de substratos 

calcários) com papilas. Por vezes 

apenas as papilas (2–5 mm de diâmetro, 

1-4 mm de altura) estão visíveis, estádio 

de crescimento conhecido como alfa, por 

vezes os espécimes recobrem também o 

substrato entre as papilas, estádio beta. 

Foram observados espécimes com área 

superior a 30 x 30 cm. Em estádios mais 

avançados, espécimes aparentemente 

incrustantes, revelam–se com até 1 cm 

de espessura, já tendo dissolvido porção 

considerável do substrato calcário. Cor 

em vida amarelo–vivo ou mais pálido. 

No fixador a cor torna–se marrom. Superfície 

híspida, áspera ao toque. Ósculos 

distribuídos aleatoriamente ao nível 

da superfície, com até 5 mm de diâmetro. 

Aberturas inalantes agrupadas em 

papilas. Consistência firme, pouco compressível, 

em parte em decorrência de 

fragmentos de substrato em seu interior. 

Esqueleto ectossomal com uma contínua 

paliçada de espículas perpendiculares à 

superfície. Esqueleto coanossomal desordenado 

com espículas em feixes densos. 

Espículas: tilóstilos, 252–378 / 7–11μm. 

Comentários 

Cliona celata é um caso clássico de espécie 

de porífero até a pouco considerada 

notoriamente cosmopolita. Resultados 

recentes revelaram a existência de um 

complexo de espécies crípticas, inclusive 

nas ilhas britânicas, localidade tipo 

da espécie. No Brasil, aparentemente 

as populações do NE e do SE não pertenceriam 

à mesma espécie (T. de Paula, 

com. pess.). 


89

Complexo Cliona celata Grant, 1826 

Ecologia 

O complexo pode ser encontrado próximo 

das áreas urbanas de Salvador, onde 

é relativamente comum no mesolitoral e 

raro no infralitoral consolidado. Costuma 

ocorrer em densas manchas populacionais, 

frequentemente distribuídas por 

vários metros quadrados de sedimento 

calcáreo (p.ex. ao largo de Jiribatuba, Canal 

de Itaparica, região de manguezal). 


Provisoriamente cosmopolita. Brasil 

[CE, RN, PE, AL, BA (Camaçari, Salvador, 

Maraú), ES, RJ, SP]. 

Ilha da Pedra Furada, Baía de Camamu (Maraú), 1 m de profundidade, 30/Jul/2009. 



Farol da Barra (Salvador), 6,3 m de profundidade, 10/Dez/2007. Notam-se apenas as 

papilas exalantes (com ósculos) e inalantes (fechadas). O resto da esponja habita o 

interior do substrato. 

Arquitetura esquelética em seção transversal. No detalhe, ponto 

de ruptura do corte, ilustrando as bases dos tilóstilos dispostos 

aleatoriamente (não se trata da superfície da esponja). 

A, tilóstilo; B, 

tilóstilo jovem 


91

12. Cliona delitrix Pang, 1973 

Morfologia 

Forma incrustante (perfurante) com papilas 

grandes (até 20 mm de diâmetro). 

Por vezes apenas as papilas (2–5 mm de 

diâmetro, 1-4 mm de altura) estão visíveis, 

estádio de crescimento alfa, por 

vezes os espécimes recobrem também o 

substrato entre as papilas, estádio beta. 

Foram observados espécimes com área 

superior a 50 x 50 cm. Normalmente perfura 

cavidades com alguns centímetros 

de profundidade, permitindo a retirada 

de grandes pedaços de esponja durante 

a coleta. Cor em vida laranja–avermelhado. 

No fixador a cor torna-se marrom-escura. 

Superfície híspida, áspera ao toque. 

Aberturas exalantes dispersas e pouco 

abundantes, com 5–20 mm de diâmetro, 

permitem ampla visualização da cavidade 

atrial. Aberturas inalantes agrupadas 

em papilas semi–translúcidas, muito 

mais abundantes, com discreta reticulação 

superficial. Um espécime da Ilha do 

Frade tinha cerca de 100 papilas inalantes, 

e apenas duas exalantes (ósculos), 

enquanto outro exibia uma proporção de 

cerca de 50 / 5. Papilas, tanto inalantes 

quanto exalantes, contraem–se bastante 

após a coleta. Consistência mais macia 

que C. celata, possivelmente em decorrência 

das amplas cavidades interiores 

(forma mais cavernosa). Esqueleto ectossomal 

radial com feixes se formando na 

região mais externa do coanosssoma e 

atravessando o ectossoma. As espículas 

estão organizadas com o tilo orientado 

para o coanossoma e a extremidade fina 

para o ectossoma. Esqueleto coanossomal 

completamente preenchido por tilóstilos, 

sem uma organização evidente. 

Espículas: tilóstilos, 364–420 / 8–14 μm. 

Arquitetura 

esquelética em seção 

transversal. 



Ponta de Humaitá (Salvador), 2 m de profundidade, 02/Dez/2006. 

Comentários 

A espécie é bastante conspícua em toda a 

Bahia, em decorrência de sua abundância, 

tamanho e cor chamativa, à exceção 

de áreas de manguesal. 

Ecologia 

Cliona delitrix pode ser encontrada perfurando 

corais, especialmente os mortos, 

e outros substratos calcários diversos. A 

espécie ocorre também próxima das áreas 




(Flórida, Bahamas, Cuba, México, Ilhas 

Cayman, Jamaica, Belize, Honduras, Panamá, 

Colômbia, Antilhas Holandesas). 

Brasil (RN, PE, BA – Madre de Deus, Salvador, 

Maraú, Abrolhos). 

A, tilóstilo. 


93

13. Cliona varians (Duchassaing & Michelotti, 1864) 

Morfologia 

Forma maciça, com até 5 cm de espessura, 

podendo recobrir metros e metros de 

substrato, porém frequentemente os espécimes 

não ultrapassam 50 x 50 cm. Cor 

em vida marrom, externamente, e bege 

internamente. No fixador a cor é bege. 

Superfície híspida, aveludada. Aberturas 

exalantes pequenas (1–4 mm de diâmetro), 

distribuidas aleatoriamente; aberturas 

inalantes não visíveis a olho nu, e 

não agrupadas em papilas. Consistência 

firme, pouco compressível. Esqueleto 

ectossomal com feixes densos de megascleras 

e coanossomal com espículas em 

desordem, frequentemente entrecruza- 

das. Espículas: tilóstilos, 392–476 / 9–18 

μm; espirásteres, 11–18 μm. 

Comentários 

Os maiores espécimes observados ocorriam 

nas proximidades do Farol da Barra 

(Salvador) e na Coroa Vermelha (Santa 

Cruz de Cabrália). 

Ecologia 

Cliona varians pode ser encontrada próxima 

das áreas urbanas de Salvador. A espécie 

é relativamente comum no mesoli- 

Taipú de Fora (Maraú), entremarés, 

26/Jul/2009. 


Cliona varians (Duchassaing & Michelotti, 1864) 

toral e no infralitoral da Bahia recobrindo 

substratos areno–calcários consolidados. 

Exemplares desta espécie costumam 

abrigar cracas (Membranobalanus declivis) 

como hóspedes, as quais se alojam nas 

aberturas osculares. Na praia de Pituba 

foi determinada uma densidade de 0,6 

cracas/ cm 2 de superfície da esponja. 



México. Caribe (Flórida, Bahamas, México, 

Honduras, Jamaica, República Dominicana, 

Porto Rico, Panamá, Colômbia). 

Brasil [CE, RN, Atol das Rocas, PE, Fernando 

de Noronha, AL, BA (Salvador, 

Maraú, Porto Seguro, Santa Cruz de Cabrália, 

Abrolhos), ES]. 

A, tilóstilo; B, espirásteres. 

Quebramar Norte 

(Salvador), 8 m de 

profundidade, 05/ 

Mar/2009; FOTO POR C.M. 

MENEGOLA DA SILVA. 

Recife da 

Pituba (Salvador), 

entremarés, 26/ 

Set/2004. 


95


Família Placospongiidae Gray, 1867b 

Gênero Placospongia Gray, 1867b 

O gênero compreende sete espécies no mundo, das quais quatro 

estão citadas para o Brasil. Apenas P. cristata Boury-Esnault, 1973 

está citada para a Bahia. Estudos recentes revelaram a ampla 

ocorrência de especiação críptica neste gênero, sugerindo que o 

número de espécies viventes é bem maior que o que se conhece. 

O casamento de descrições morfológicas detalhadas e revisões 

ao nível molecular de populações em diversas partes do mundo 

estão em curso, e deverão ampliar consideravelmente o número 

de espécies conhecidas. 

14. Placospongia sp. 

Morfologia 

Forma normalmente incrustante espessa 

(2–5 mm de espessura), com placas rígidas 

justapostas, delineadas por fendas 

que suprem a água ao sistema aquífero 

da esponja, mas que podem fechar-se 

completamente quando os espécimes 

são coletados ou sujeitos a maior hidrodinamismo. 

Fendas recobertas por uma 

rede delicada, somente observada em 

espécimes não contraídos. Cor em vida 

marrom escuro externamente, e begeesbranquiçado 

por dentro. Superfície 

áspera. Aberturas inalantes e ósculos 

(raros, diâmetro 1 mm) concentradas 

nas fendas. Consistência rígida. Esqueleto 

ectossomal formado por uma grossa 

camada de selenasteres, atravessada 

por feixes de tilóstilos. Esqueleto coanossomal 

radial com densos feixes de 

tilóstilos. Espículas: tilóstilos I, 568–1097 

/ 10–13 (largura da haste) / 13–20 μm 

(largura da cabeça); tilóstilos II, 53–233 / 

2,5–5 (largura da haste) / 5 (largura da 

cabeça) μm; selenásteres, 56–84 μm; esferásteres, 

11–18 μm; espirásteres, 13–23 

μm; microestrôngilos, 5–12 μm. 

Praia do Forte (Mata de São João), 1 m de 

profundidade, 06/Jun/2009. 


Placospongia sp. 


transversal. 

A, tilóstilos; B, selenáster; C, esferáster; 

D, espiráster (desenho por Erik Hajdu); E, 

microestrôngilos. 

Comentário 

A descrição apresentada aqui é uma 

composição de mais de um espécime, 

possivelmente englobando mais de uma 

espécie 

Ecologia 

Placospongia sp. é pouco comum no infralitoral 

consolidado da Baía de Todos 

os Santos e proximidades desta. A espécie 

é mais facilmente encontrada sob 

blocos de substrato calcário e arenítico, 

em águas rasas ou piscinas de marés. Alguns 

indivíduos foram vistos ao largo de 

Jiribatuba (Canal de Itaparica) formando 

ramas rasteiras com mais de 20 cm de 

comprimento. 


Brasil (CE, PB, PE, Fernando de Noronha, 

AL, BA – Mata de São João, Salvador, 

Vera Cruz, Maraú, Mucuri). 

Taipú de Fora (Maraú), entremarés, 26/ 

Jul/2007. As aberturas inalantes e um ósculo 

(seta) estão visíveis no interior das fendas. 


97


Família Spirastrellidae Ridley & Dendy,1886 

Gênero Spirastrella Schmidt, 1868 

O gênero compreende 14 espécies no mundo, das quais 

duas ocorrem no Brasil. Apenas uma espécie foi encontrada 

na Bahia. 

15. Spirastrella hartmani Boury-Esnault, Klautau, Bézac, Wulff & Solé-Cava, 1999 

Morfologia 

Forma incrustante (2–3 mm de espessura), 

de contorno irregular. Alguns espécimes 

foram observados recobrindo áreas 

de até 50 cm 2 . Coloração salmão claro a 

cor de tijolo, tornando–se bege no fixador. 

Superfície lisa, podendo apresentar canais 

subdermais confluindo para os ósculos, 

visíveis apenas em exemplares vivos. Ósculos 

dispersos, pouco abundantes, com 

2–3 mm de diâmetro. Consistência geralmente 

firme. Esqueleto ectossomal constituído 

por uma camada de espirásteres e 

alguns tilóstilos que atravessam a superfície, 

enquanto o coanossomal é constituído 

pelos tilóstilos, às vezes subtilóstilos, e 

espirásteres em menor densidade que no 

ectossoma. Espículas: tilóstilos, 213–514 / 

2,5–16 μm; espirásteres I, 12–46 / 18–30 

μm; espirásteres II, 4-9 μm. 



(Bermudas, Flórida, Bahamas, Cuba, 

Ilhas Cayman, Jamaica, Belize, Panamá, 

Colômbia, Venezuela). Brasil (Arquipélago 

São Pedro e São Paulo, RN, Atol das 

Rocas, PE, Fernando de Noronha, AL, 

BA – Mata de São João, São Francisco do 

Conde, Salvador, Maraú). 

Ecologia 


das áreas urbanas de Salvador, sendo relativamente 

rara no infralitoral consolidado 

da Baía de Todos os Santos, porém 

comum em águas rasas e piscinas costeiras 

da Bahia (Mata de São João, Maraú), 

onde costuma ficar ao abrigo da luz, sob 

blocos de rochas e corais. 

Praia do Forte (Mata de São João), 1–2 m de 

profundidade, 06/Jun/2009. A tonalidade mais 

clara é típica dos ambientes mas abrigados 

da luz. 


Spirastrella hartmani Boury-Esnault, Klautau, Bézac, Wulff & Solé-Cava, 1999 

Praia do Forte (Mata de São João), 1–2 m de profundidade, 06/Jun/2009. Notar que há dois 

ósculos em 1º plano e outro um pouco à esquerda (setas), mas os orifícios restantes, apesar 

do diâmetro similar, indicam a presença de cirripédios associados. A área compreendida na 

imagem tem 10 cm de largura. 


A, tilóstilos; 

B, espirásteres. 


99


Família Suberitidae Schmidt, 1870 

Gênero Aaptos Gray, 1867 

O gênero compreende 20 espécies no mundo, das quais duas 

ocorrem no Brasil. Está citada para a Bahia também A. bergmanni de 

Laubenfels, 1950. 

16. Aaptos spp. 

Morfologia 

Forma variando entre esférica, semi-esférica 

e maciça, e espécimes frequentemente 

atingindo 15–20 cm de diâmetro 

e 10 cm de espessura. Cor em vida amarela-viva 

por fora, com frequentes man- 

chas amarronzadas, e pálida por dentro. 

No fixador a cor torna–se marrom-escura. 

Superfície com montículos baixos 

dispersos. Ósculos conspícuos (3–5 

mm de diâmetro) que podem ocorrer 

dispersos ou agrupados (até 15 mm de 

Ilha Maria Guarda (Madre de Deus), 2-3 m de profundidade, 20/Mai/2008. O espécime tem 

10 cm de diâmetro máximo. Notar a alta sedimentação no local." 


Aaptos spp. 

diâmetro máximo), contraindo-se bastante 

após a coleta. Consistência dura, pouco 

compressível. Esqueleto ectossomal composto 

de megascleras menores dispostas 

perpendicularmente à superfície, praticamente 

formando uma paliçada. O arranjo 

se confunde com as terminações dos densos 

feixes de megascleras coanossomais 

que alcançam a superfície. Esqueleto coanossomal 

denso, confuso nas porções 

mais distantes da superfície, e adquirindo 

padrão radial à medida que se aproxima 

do ectossoma. Espículas: estrongilóxeas I, 

1046–1320 / 23–30 μm; estrongilóxeas II, 

208–950 / 5–25 μm; estilos (raros), 549– 

569 / 15 μm. 

Ecologia 

Aaptos spp. são comuns no infralitoral 

consolidado da Baía de Todos os Santos 

e proximidades desta, tendo sido observados 

até os 15 m de profundidade. 


Brasil [RN, Atol das Rocas, PE, AL, BA 

(Madre de Deus, Salvador, Cairu, Porto 

Seguro), ES, RJ, SP]. 


transversal. 

A, estrongilóxea I; B, estrongilóxea II; C, 

modificação da estrongilóxea I 


101

Gênero Suberites Nardo, 1833 

O gênero compreende 72 espécies no mundo, das quais três 

ocorrem no Brasil. Apenas uma espécie foi encontrada na Bahia. 

17. Suberites aurantiacus (Duchassaing & Michelotti, 1864) 

Morfologia 

Maciça à ramosa com ramificações simples, 

ramos cilíndricos, irregulares com 

poucas bifurcações, eventualmente com 

lobos achatados. Os espécimes podem 

ultrapassar 10 cm de altura e 20 cm de 

largura. Coloração externa em vida azul, 

laranja, vermelho alaranjado, vermelha 

ou uma mistura destas; e interna amarela 

à laranja. Consistência firme, mas flexível. 

O ectossoma não possui especialização, 

sendo atravessado por buquês de 

tilóstilos formados nas terminações dos 

feixes ascendentes coanossomais, que 

podem ainda formar malhas grosseiras 

no coanossoma. Superfície levemente 

híspida, com ósculos dispersos, medindo 

2–5 mm de diâmetro. Espículas: tilóstilos, 

121–833 / 5–15 (largura da haste) / 

5–15 μm (largura da cabeça). 

Ecologia 

Estabelecem–se em substratos rochosos, 

fragmentos de folhelho e conchas, particularmente 

em manguezais na porção 

norte da Baía de Todos os Santos. Nesta 

área costumam ser abundantes na zona 

entremarés de locais mais poluídos, principalmente 

nas proximidades da refinaria 

Landulfo Alves. Um estudo recente 

feito nesta região por pesquisadores da 

Universidade Federal da Bahia, sugeriu 

esta espécie como bioindicadora de 

Comentários 

Esta espécie já foi referida com diversos 

nomes na bibliografia especializada: Laxosuberites 

aurantiaca, Laxosuberites sp., 

Suberites aurantiaca, Terpios sp., Terpios 

aurantiacus. Por vezes se reconhecem 

duas categorias de tilóstilos na espécie. 



Suberites aurantiacus (Duchassaing & Michelotti, 1864) 

Salvador, infralitoral, Ago/1999. 

Ponta de Humaitá (Salvador), Jan/1997. 

ambientes fortemente impactados por 

petróleo. A espécie também pode ser encontrada 

próxima das áreas urbanas de 

Salvador, porém em abundância bastante 

reduzida. 



México. Caribe (Bermudas, Flórida, 

Cuba, México, Belize, Jamaica, Ilhas 

Virgens, Panamá, Venezuela, Antilhas 

Holandesas, Guianas). Brasil [CE, PE, 

BA (Mataripe, Salvador), RJ, SP, SC]. A 

espécie também foi citada para o Pacífico 

Central (Havaí), onde é considerada 

uma espécie invasora, e Pacífico Tropical 

Oriental (Panamá). 

A-C, tilóstilos compondo uma única 

categoria de dimensões muito variadas. 


103

Gênero Terpios Duchassaing & Michelotti, 1864 

O gênero compreende 14 espécies no mundo, das quais três 


18. Terpios fugax Duchassaing & Michelotti, 1864 

Morfologia 

Forma finamente incrustante, com dimensões 

frequentemente inferiores a 5 x 

5 cm, mas podendo por vezes ultrapassar 

os 20 x 20 cm em área. Cor em vida 

azul (cobalto a marinho), e azul–cobalto 

no etanol. Superfície híspida, áspera ao 

toque. Aberturas não visíveis. Consistência 

macia. Esqueleto ectossomal não 

especializado, constituido das terminações 

dos vagos feixes espiculares coanossomais. 

Esqueleto coanossomal com 

feixes pauciespiculares ascendentes e 

esparsos, além de megascleras eretas no 

substrato ou dispersas. Espículas: tilóstilos, 

108–365 / 3,6–8 μm. 

Porto da Barra (Salvador), 2 m de 

profundidade, 01/Dez/2010. 

Ecologia 

Terpios fugax é relativamente comum no 

entremarés e infralitoral consolidado da 

Baía de Todos os Santos e adjacências, 

onde apresenta uma preferência por ambientes 

abrigados da iluminação intensa. 






Cuba, Porto Rico, Ilhas Virgens, Belize, 

Venezuela, Antilhas Holandesas). Brasil 

[PE, BA (Salvador), RJ, SP]. Registros 

efetuados para outras partes do mundo 

são considerados duvidosos, tais 

como para a Irlanda, Mônaco e as Ilhas 

Seychelles. 


Terpios fugax Duchassaing & Michelotti, 1864 

Farol da Barra (Salvador), 2 m de profundidade, 02/Dez/2006. O espécime é uma crosta com 

fração de milímetro de espessura. 


A, tilóstilos e detalhes 

de suas bases. 


105


Família Tethyidae Gray, 1848 

Gênero Tethya Lamarck, 1814 

O gênero compreende 90 espécies no mundo, das quais dez 

ocorrem no Brasil. Da Bahia conhecem-se ainda T. brasiliana 

Ribeiro & Muricy, 2004, T. cyanae R. & M., 2004, T. ignis R. & M., 

2004 e T. rubra R. & M., 2004, todas oriundas de Abrolhos. A 

identificação de Tethya requer estudo detalhado da morfologia 

de suas microscleras. No estádio atual do inventário destas 

espécies na Bahia, faz-se necessário uso intensivo de microscopia 

eletrônica de varredura. Espera-se que uma vez avançado este 

estudo, passe a ser possível reconhecer as espécies valendo-se 

apenas do microscópio óptico. 

19. Tethya maza Selenka, 1879 

Morfologia 

Forma esférica ou subesférica, com 10 a 

30 mm de diâmetro. Cor em vida é alaranjada, 

avermelhada ou rosada. No etanol 

a cor é bege clara ou um pouco mais 

escura. Superfície verrucosa, eventualmente 

com filamentos basais, podendo 

apresentar brotos pedunculados. Um ou 

mais ósculos que se contraem bastante 

após a coleta, localizados na região superior 

ou próxima à base. Quando viva 

a consistência é mole e elástica, mas conservada 

é apenas levemente elástica ou 

pouco compressível à dura. O esqueleto 

ectossomal é composto por um córtex 

(0,5–3 mm de espessura) com duas camadas, 

a mais superficial com numerosos 

tilásteres e a mais interna contendo 

esferásteres e tilásteres. Este córtex é 

atravessado por feixes radiais densos 

de estrongilóxeas que se originam no 

coanossoma. Cavidades sub dermais 

estão presentes nos espécimes pouco 

contraídos. Coanossoma com feixes de 

estrongilóxeas, e entre estes densos tufos 

confusos de estrongilóxeas. No entorno 

dos canais mais internos, são visíveis 

inúmeras tilásteres. Espículas: anisoestrongilóxeas 

I, 1476–1548 / 20–25 μm; 

anisoestrongilóxeas II, 756–910 / 7–14 

μm; esferásteres, 35–42 μm; oxiásteres I, 

28–43 μm; oxiásteres II, 8–10 μm; estrongilásteres, 

10–14 μm; tilásteres, 10–13 

μm. As esferásteres são megásteres e as 

demais ásteres, micrásteres. 

Ecologia 

Tethya maza é relativamente comum, porém 

pouco numerosa, no entremarés e 

infralitoral consolidado, inclusive próxima 

das áreas urbanas de Salvador, bem 

como em áreas de manguezal da Baía de 

Todos os Santos e suas cercanias. Observações 

efetuadas em aquário evidenciaram 

como funciona o brotamento nesta 

espécie, que consiste no alongamento e 

adelgaçamento dos pedúnculos até seu 

ponto de ruptura, o que não raro ocorre 

apenas após que uma superfície favorável 

a sua fixação tenha sido alcança- 


Tethya maza Selenka, 1879 

Espécime recém coletado, ainda dentro da água do mar, em seção longitudinal (Ponta 

de Humaitá, Salvador, Jan/1997). Notar disposição radial do esqueleto evidenciada pelo 

contraste entre a cor branca das espículas silicosas e o amarelo e vermelho do restante 

da esponja. A crosta de esferásteres que circunda a totalidade da esponja sob as lacunas 

subdermais e apóia-se nos feixes radias de megascleras, confere uma maior resistência a 

estas esponjas. 

da. Entretanto, locais mais afastados da 

esponja-mãe podem ser alcançados pelo 

“lançamento” de brotos ao sabor das 

correntes, ou pela migração dos brotos 

que haviam se fixado próximos à esponja-mãe. 

O movimento em Tethya é claramente 

visível em escala de dias, já tendo 

sido mensurado em algumas espécies – 

pode alcançar 3 mm ao dia em vidro, e 

um pouco menos em substratos naturais 

(M. Nickel, com. pess.). 


Tropical Atlântica Ocidental. Caribe (Jamaica, 

Ilhas Virgens, Colômbia). Brasil 

[AL, BA (São Francisco do Conde, Salvador), 

ES, RJ, SP, SC]. 


107


Arquitetura 


transversal. Notar 

arranjo radial, lacunas 

subdermais e crosta 

de esferásteres na 

base do córtex. 

Quebramar Norte (Salvador), 10,6 m de profundidade, 11/Dez/2007 



Ilha do Pati (São Francisco do Conde), 

entremarés, 04/Jun/2004. 

A, anisoestrongilóxea I; 

B, anisoestrongilóxea II; C, esferáster; 

D, oxiáster I; E, estrongiliáster; F, 

tiláster; G, oxiáster II. 


109

20. Tethya sp. 

Morfologia 

Forma subesférica com a porção basal 

achatada, diâmetro máximo 20-25 mm. 

Cor em vida alaranjada, tornando-se 

bege em etanol. Superfície com cônulos 

baixos e brotos ovais pedunculados, dispersos, 

e de tonalidade um pouco mais 

clara. Ósculos não foram observados. 

Consistência em vida macia, no etanol 

mais firme. Arquitetura esquelética 

composta de córtex e coanossoma, em 

disposição radial. Córtex com cerca de 

1 mm de espessura, composto de camada 

mais externa de micrásteres pequenas, 

camada subdermal com marcada 

presença de canais aquíferos (200–300 

μm de diâmetro), localizada sobre uma 

densa capa basal de megásteres (400–500 

μm de espessura). O córtex é perfurado a 

cada 500 μm por feixes multiespiculares 

coanossomais (diâmetro 200 μm), que se 

abrem em buquês (diâmetro 700 μm), e 

sustentam os cônulos da superfície. Os 

buquês estão entremeados a abundantes 

micrásteres e megásteres, e observa-se 

algumas megascleras dispersas de forma 

confusa. O coanossoma também apresenta 

arquitetura complexa. Além dos 

feixes multiespiculares radiais já mencionados, 

há tufos densos de megascleras 

na região subcortical, aparentemente 

desvinculados dos feixes radiais. Atravessadas 

nos tufos e nos feixes, se vêem 

megascleras transversais, fechando a estratégia 

destas esponjas por uma maior 

resistência à ruptura. Espículas: anisoestrongilóxeas 

I, 680–1200 μm / 17–30 μm; 

anisoestrongilóxeas II, 300–500 μm / 3–4 

μm; esferásteres, 25–50 μm; oxiásteres I, 

16–32 μm; oxiásteres II, 7–8 μm; estrongilásteres, 

8–10 μm; tilásteres, 8–9 μm. As 

esferásteres são megásteres e as demais 

ásteres, micrásteres. 

Ecologia 

Tethya sp. foi coletada em uma pequena 

poça de maré no recife da Praia da Pituba 

(Salvador), um ecossistema sujeito a 

ampla variação no que tange à eutrofização. 


Desconhecida. 


transversal – detalhe da região cortical. 


Tethya sp. 

Recife da Pituba (Salvador), entremarés, 08/Mai/2008. 


transversal. Notar arranjo radial, lacunas 

subdermais e crosta de esferásteres na base 

do córtex. 

A, anisoestrongilóxea I; B, 

anisoestrongilóxea II; C, esferáster; 

D, oxiáster I; E, oxiáster II; F, 

estrongiláster; G, tiláster. 


111

Ordem Chondrosida Boury-Esnault 

& Lopès, 1985 

Chondrosia sp. sensu Lazoski et al. (2001), Farol da Barra (Salvador), 

1,5 m de profundidade, 04/Dez/2010.


Família Chondrillidae Gray, 1872 

Gênero Chondrilla Schmidt, 1862 

O gênero compreende 17 espécies no mundo, das quais apenas 

uma está registrada para o Brasil. Entretanto, estudos genéticos 

já apontaram para a existência de ao menos quatro espécies no 

litoral brasileiro e ilhas oceânicas, às quais, infelizmente, ainda 

não foi possível associar caracteres morfológicos diagnósticos. 

Os resultados mais recentes apontam para a ocorrência de ao 

menos duas espécies geneticamente isoladas em Salvador (C. 

Zilberberg, com. pess.). 

21. Complexo Chondrilla nucula Schmidt, 1862 

Morfologia 

Incrustante com cerca de 2–5 mm de espessura, 

cor externa cinza, bege ou negra, 

às vezes bege com manchas escuras, 

e interna bege; geralmente os exemplares 

encontrados ao abrigo da luz são 

mais claros; a coloração em etanol é 

bege. Superfície lisa, brilhante. Ósculos 

com 1–2 mm de diâmetro em vida, e bastante 

contraídos quando o exemplar é 

coletado. Consistência elástica, às vezes 

cartilaginosa. O esqueleto ectossomal 

forma um córtex muito pigmentado, 

com grande concentração de espículas. 

No coanossoma a densidade de espículas 

é costumeiramente menor. Espículas: 

oxiesferásteres, 7–34 μm de diâmetro. 

Ecologia 

Frequente no entremarés e zonas infralitorâneas 

rasas, onde podem ser encontradas 

tanto na condição fotófila como 

ciáfila. A espécie é abundante mesmo na 

proximidade de áreas urbanas de Salvador, 

tais como o Farol da Barra e o Porto 

da Barra. 


O complexo tem distribuição cosmopolita 

(Mediterrâneo, Caribe, África do Sul, 

Austrália). Brasil [AP, RN, Rocas, Fernando 

de Noronha, PE, AL, SE, BA (Salvador, 

Itaparica), ES, Ilha da Trindade, 

RJ, SP, SC]. 

Espécime em vida (Farol da Barra, 

Salvador, 1 m de profundidade, 

04/Dez/2010).



Complexo Chondrilla nucula Schmidt, 1862 

Porto da Barra (Salvador), 2 m de profundidade, 07/Mai/2008. O espécime em 1º plano tem 

6 cm de diâmetro máximo. 


A, esferásteres em 

distintos graus de 

desenvolvimento. 

Espécime em vida (Farol da Barra, Salvador, 1 m de 

profundidade, 04/Dez/2010). 


115

Gênero Chondrosia Nardo, 1847 


ocorrem no Brasil. Apenas uma espécie está registrada para a Bahia, 

porém ainda desprovida de um nome. Esta situação decorre de ter 

sido revelado por um estudo genético que populações do Atlântico 

Tropical Ocidental, outrora atribuídas à C. reniformis Nardo, 1847, 

eram geneticamente isoladas das populações do Mediterrâneo, de 

onde a espécie foi descrita originalmente. 

22. Chondrosia sp. sensu Lazoski et al. (2001) 

Morfologia 

Incrustante à maciça com cerca de 2–10 

mm de espessura, por vezes com grandes 

projeções lobulares pendentes. Alguns 

dos espécimes observados ultrapassavam 

20 cm de diâmetro. Cor externa em 

vida branca a bege, frequentemente com 

manchas marrons ou cinzas. Cor interna 

branca. Superfície lisa, com ósculos (2–8 

mm de diâmetro) dispostos preponderantemente 

no topo de chaminés curtas, 

distribuídas aleatoriamente. Os ósculos 

contraem-se completamente após a coleta. 

Consistência elástica, às vezes cartilaginosa. 

A anatomia caracteriza-se pela 

presença de um córtex bem evidente, 

atravessado por alguns canais do sistema 

aquífero, e podendo apresentar também 

um sistema de pequenas lacunas 

subectossomais. No coanossoma, afora 

os canais, pode-se notar a presença de 

abundantes câmeras coanocitárias caso 

a preparação tenha sido fixada e corada 

adequadamente. 

Comentário 

Os maiores espécimes estão em locas, 

onde frequentemente observam-se projeções 

lobulares pendentes. A ruptura 

de tais projeções após certo tamanho 

viabiliza uma reprodução assexuada por 

fissão gravitacional. A ausência de ilustração 

da anatomia da espécie decorre 

da falta de estruturas conspícuas tanto 

no ectossoma quanto no coanossoma. É 

relativamente comum confundir-se alguns 

tunicados coloniais com espécies 




Chondrosia sp. sensu Lazoski et al. (2001) 



Taipu de Fora (Marau), entremarés, 

28/Jul/2009. 

de Chondrosia, porém a presença de zoóides 

nos primeiros é facilmente detectada 

em um microscópio estereoscópico, caso 

a amostra esteja bem preservada. 

Ecologia 


das áreas urbanas de Salvador, onde 

ocorre exclusivamente em ambientes 

abrigados da iluminação direta. 

Anatomia em seção transversal. Notar o 

córtex fibrilar e a ausência de espículas. 


Tropical Atlântica Ocidental. Caribe (Bermudas). 

Brasil [Arquipélago São Pedro e 

São Paulo, Atol das Rocas, Fernando de 

Noronha, PE, BA (Salvador, Maraú), Ilha 

da Trindade, RJ, SP]. 


117

Ordem Halichondrida Gray 1867 

Halichondria cf. melanadocia (de Laubenfels, 1936), espécie não apresentada 

neste guia, reconhecível por sua cor verde-escura à preta, superfície reticulada 

e consistência firme. Quebramar Norte (Salvador), aproximadamente 7,5 m de 

profundidade, 14/Dez/2007.


Família Axinellidae Carter, 1875 

Gênero Dragmacidon Hallman, 1917 



23. Dragmacidon reticulatum (Ridley & Dendy, 1886) 

Morfologia 

Esponja maciça, usualmente com menos 

de 10 cm em seu maior diâmetro. Apresenta 

um morfotipo globoso em alguns 

setores da Baía de Todos os Santos, com 

3-5 cm de diâmetro. Cor em vida vermelha 

escarlate ou laranja-avermelhado. 

Superfície rugosa, áspera, levemente 

híspida. Ósculos circundados por uma 

membrana com 2 mm de diâmetro médio. 

Consistência pouco compressível. O 

esqueleto ectossomal é composto pelas 

terminações em buquê dos feixes coanossomais 

ascendentes e multiespiculares. 

O esqueleto coanossomal possui adicionalmente 

uma rede secundária confusa e 

sobreposta. Espículas: estilos, 188–342 / 

6–13 μm; óxeas, 230–367 / 6–13 μm. 

Comentários 

Registros desta espécie para o Brasil já 

foram efetuados na bibliografia especializada 

com os nomes Pseudaxinella lunaecharta 

e P. reticulata. O morfotipo subesférico 

(“esponja-bola”) de D. reticulatum 

é comercializado para fins ornamentais. 

Informações obtidas de um atacadista 

do setor de aquariofilia de Salvador dizem 

que 757 exemplares coletados entre 

a Praia de Cantagalo e a Ribeira (Salvador) 

foram comercializados entre julho 

de 2001 e junho de 2002 (C. Sampaio, 

com. pess.). A mesma é relativamente 

fácil de confundir com Acarnus innominatus 

Gray, 1867 em vida, porém facilmente 

distinguível pelo exame de suas 

espículas, muito mais diversas nesta última. 

Outras peculiaridades decorrem da 

produção de algum muco pela Dragmacidon, 

bem como consistência um pouco 

mais firme, enquanto o Acarnus esfarelase 

com maior facilidade, e agarra-se às 

luvas de algodão como um velcro. 

Ecologia 

A espécie é comum em todo o litoral 

baiano, estando frequentemente situada 

em locais com alta sedimentação, especialmente 

por areia. Pode também ser 

encontrada próxima das áreas urbanas 

de Salvador. 



Caribe (Cuba, México, Jamaica, República 

Dominicana, Belize, Costa Rica, Panamá, 

Colômbia, Venezuela, Antilhas Holandesas). 

Brasil [AP, PA, MA, CE, RN, 

Atol das Rocas, Fernando de Noronha, 

PE, AL, BA (Salvador, Maraú), ES, RJ, SP, 

SC, RS]. 


119



Dragmacidon reticulatum (Ridley & Dendy, 1886) 

Porto da Barra (Salvador), 2 m de profundidade, 07/Mai/2008. O espécime tem 4 cm de 

largura na horizontal. 


Praia do Forte (Mata de São João), 1 m de profundidade, 06/Jun/2009. 

A, óxea; B, estilo. 


121

Gênero Ptilocaulis Carter, 1883 

O gênero compreende 13 espécies no mundo, das quais cinco 

ocorrem no Brasil. Esta é sua primeira citação para a Bahia. Três 

espécies foram registradas por Hechtel (1983) exclusivamente 

para Pernambuco: P. bystila, P. braziliensis e P. fosteri. Ptilocaulis 

marquezi (Duchassaing & Michelotti, 1864) foi registrada para São 

Paulo em uma Dissertação de Mestrado. 

24. Ptilocaulis walpersi (Duchassaing & Michelotti, 1864) 

Morfologia 

Arbustiva com pedúnculo curto, com 

ramos curtos fusionados longitudinalmente, 

provistos de inúmeras projeções 

espatuliformes (bico de pato). Os espécimes 

observados na Baía de Todos 

os Santos não ultrapassavam os 5 cm de 

altura. Cor em vida laranja, e bege no 

etanol. Superfície híspida, áspera, com 

ósculos dispersos em pequeno número 

(1 mm de diâmetro). Consistência firme, 

um pouco flexível. O esqueleto ectossomal 

é composto pelas terminações em 

buquê dos feixes coanossomais primários. 

Esqueleto coanossomal com feixes 

primários ascendentes, pauci- ou multiespiculares, 

e secundários interligando 

os feixes primários. O padrão geral de 

organização é plumorreticulado, e notase 

expressiva quantidade de espongina. 

Espículas: estilos I (raros), 610–798 / 10– 

11 μm; estilos II, 265–350 / 5–15 μm. 

Comentário 

Confundível com Axinella corrugata (George 

& Wilson, 1919) no campo, diferenciando-se 

facilmente no laboratório. 

Ptilocaulis walpersi possui apenas estilos 

e torna-se bege no álcool, enquanto 

A. corrugata possui óxeas e estrôngilos, 

além dos estilos, e escurece marcadamente 

no álcool. 

Ecologia 

Ocorrem mais frequentemente em substrato 

consolidado recoberto por fina capa 

de areia, inclusive próxima das áreas urbanas 


A, estilos I; B, estilos II. 




profundidade, 10/Mai/2008. 

Quebramar Norte (Salvador), 4,9 m de 





México, Cuba, Ilhas Cayman, Jamaica, 

República Dominicana, Porto Rico, Ilhas 

Virgens, Belize, Honduras, Costa Rica, 

Panamá, Colômbia, Venezuela, Antilhas 

Holandesas). Brasil [RN, BA (Salvador)]. 

Arquitetura 


transversal. 


123


Familia Dictyonellidae van Soest, Diaz & Pomponi, 1990 

Gênero Scopalina Schmidt, 1862 


está registrada para o Brasil. 

25. Scopalina ruetzleri (Wiedenmayer, 1977) 

Morfologia 

Esponja incrustante à maciça, por vezes 

com projeções arbustivas, usualmente 

com diâmetro inferior a 10 cm, porém 

espécimes com mais de 1 m 2 já foram 

observados no infralitoral. Quando viva 

sua cor é laranja brilhante ou mais pálido, 

tornando-se bege no álcool. Superfície 

lisa, conulosa com uma reticulação 

característica visível nos espécimes vivos. 

Espécimes mais espessos ou arbustivos 

apresentam dobras e projeções 

irregulares. Ósculos pequenos (2–4 mm 

de diâmetro) e circulares dispersos aleatoriamente. 

Consistência muito macia, 

frágil e com muito muco. Esqueleto ectossomal 

não especializado, composto 

das terminações dos feixes espiculares 

coanossomais, projetando-se no interior 

dos cônulos da superfície. Esqueleto coanossomal 

com feixes ascendentes pauciespiculares, 

esparsos e sinuosos, com 

espongina conspícua. Espículas: estilos 

(por vezes modificados em estrôngilos 

ou óxeas), 574–840 / 7–11 μm. 

Ecologia 

Comum em costões rochosos da Baía de 

Todos os Santos e adjacências, onde costuma 

fixar-se em locais semiprotegidos 

da luz. A espécie pode ser encontrada 

próxima das áreas urbanas de Salvador, 

mas também em áreas recifais de todo os 

estado da Bahia. 



Caribe (Bahamas, Cuba, México, Belize, 

Costa Rica, Colômbia, Ilhas Cayman, Jamaica, 

República Dominicana, Panamá, 


[Arquipélago de São Pedro e São Paulo, 

Atol das Rocas, PE, Fernando de Noronha, 

AL, BA (Mata de São João, Madre 

de Deus, Salvador, Itaparica, Maraú, 

Abrolhos), RJ, SP, SC]. 


Microfotografia por M. de S. Carvalho, a partir de 

material coletado no litoral de São Paulo, após 

tratamento enzimático com papaína. 


Scopalina ruetzleri (Wiedenmayer, 1977) 

Ponta de Humaitá (Salvador) – 2 m de profundidade, 

02/Dez/2006. 

A, estilos a estrôngilos, e 

detalhes de seu ápice. 



Praia do Forte (Mata de São João), 

2 m de profundidade, 06/Jun/2009; 


125


Familia Halichondriidae Vosmaer, 1887 

Gênero Petromica Topsent, 1898 

O gênero compreende nove espécies no mundo, das quais duas 

ocorrem no Brasil. Na hipótese mais recente acerca das relações 

evolutivas entre espécies de Petromica, ambas as espécies brasileiras 

agruparam-se com uma espécie australiana. Há dois cenários 

evolutivos principais para explicar tais relações: 1) decorrente da 

fragmentação do supercontinente Gondwana, ou 2) decorrente de 

dispersão por longa distância. No primeiro, uma alta improbabilidade 

deriva do longo tempo transcorrido, e a relativamente baixa 

diversidade do táxon refletida em sua distribuição descontínua. 

O segundo também é altamente improvável, em consequência da 

imensidão a percorrer nesta rota de dispersão, e a associada suposta 

necessidade de que o trânsito tenha se dado várias vezes. Do contrário, 

se estaria postulando o surgimento de uma nova espécie a partir de 

um único evento fortuito de dispersão por apenas um, ou alguns 

poucos indivíduos. Por mais improvável que aparente ser, é possível 

que esse capítulo da evolução da biota marinha brasileira não seja 

totalmente fictício (p.ex. artefato da análise filogenética), uma vez que 

outros gêneros ilustram afinidades semelhantes. 

26. Petromica ciocalyptoides (van Soest & Zea, 1986) 

Morfologia 

Base espessa (até 1–2 cm), maciça, da 

qual se projetam fístulas cegas de contorno 

irregular, isoladas ou variavelmente 

fusionadas, com até 12x2 cm (altura vs. 

maior diâmetro), porém geralmente 

não ultrapassando 6x0,7 cm. Cor em 

vida branco-amarelado, amarelo-claro, 

um pouco translúcida nas fístulas. No 

etanol mantém praticamente a mesma 

coloração. Textura da fístula levemente 

áspera ao toque, e a da base variando de 

acordo com a quantidade de sedimento 

aderido. A superfície é lisa, levemente 

híspida. Ósculos não visíveis nem no 

campo nem após a coleta. Consistência 

das fístulas macia e elástica, e da base 

quebradiça, com algumas porções mais 

rígidas, devido à incorporação de sedimento. 

Esqueleto ectossomal uma confusa 

reticulação tangencial, sustentada 

por espículas desordenadas na base da 

esponja. Esqueleto coanossomal denso, 

confuso, com desmas na região subectossomal 

da porção basal das esponjas. 

Nas fístulas observam-se tufos de óxeas 

vagos, porém densos, perpendiculares à 

superfície. Uma camada descontínua de 

óxeas tangenciais reveste a luz das fístulas. 

Espículas: óxeas, 392–614 / 8–21 μm; 

desmas, 384–726 (comprimento total) / 

80–213 (comprimento da epirrábde) / 

26–51 (diâmetro da epirrábde) / 130–375 

μm (comprimento dos cládios); ráfides, 

221–307 μm. 


Petromica ciocalyptoides (van Soest & Zea, 1986) 



Ecologia 

Fixada em substrato duro sob camada de 

areia de espessura variável (2–10 mm). 

Comum no infralitoral raso de Salvador 

próximo à abertura da Baía de Todos os 

Santos (2–17 m de profundidade) e no 

Litoral Norte (Mata de São João, 21 m). 



(Saba, Colômbia, Venezuela). Brasil [PE, 

Fernando de Noronha, BA (Mata de São 

João, Salvador), RJ]. 

Farol da Barra (Salvador), 6 m de 



No detalhe, uma desma. 

A, óxeas; B, desmas; C, ráfides. 


127

27. Petromica citrina Muricy, Hajdu, Minervino, Madeira & Peixinho, 2001 

Morfologia 

Forma maciça, irregular, com base espessa 

(0,5–2 cm) e projeções baixas, irregulares. 

Por vezes apresentam pequenas projeções 

fistulares (8 / 1 mm). Cor em vida 

amarelo, esmaecendo consideravelmente 

no álcool. Superfície híspida, com projeções 

conulosas e verrucosas. Ósculos 

apicais, raros, com 3–4 mm de diâmetro. 

Consistência mais firme na base que nas 

projeções. Esqueleto ectossomal uma reticulação 

tangencial de óxeas, irregular, 

com alguns feixes sinuosos pauciespiculares 

destas mesmas espículas. Esqueleto 

coanossomal com feixes ascendentes 

sinuosos, que atravessam o ectossoma 

projetando-se no interior dos cônulos e 

frequentemente perfurando a superfície. 

Desmas isoladas estão presentes nas 

porções mais internas da esponja. Espículas: 

óxeas (por vezes estilos e estrôngilos), 

199–1020 / 5–25 μm; desmas, 278–557 μm 

(comprimento total). Micróxeas, possivelmente 

rugosas, ocorrem mas não está claro 

se são próprias, 73–75 / < 1 μm. 

Ecologia 

Espécie aparentemente rara na Baía de 

Todos os Santos, ocorrendo em substrato 

duro recoberto por fina camada de 

areia. Os espécimes observados, todos 

próximos à abertura da Baía de Todos os 

Santos, ocorriam em 6–17 m de profundidade. 


Endêmica do Brasil [BA (Salvador), RJ, 

SP, SC]. 


Petromica citrina Muricy, Hajdu, Minervino, Madeira & Peixinho, 2001 

Porto da Barra (Salvador), 6 m de profundidade, 07/Mai/2008. O espécime tem 5,5 cm de 

largura na horizontal. 


No detalhe, uma desma. 

A, óxeas e suas modificações a 

estilos e estrôngilos; B, desma. 

Farol da Barra (Salvador), 13 m de profundidade, 03/ 

Jun/2004. 


129

Gênero Topsentia Berg, 1899 

O gênero compreende 34 espécies no mundo, apenas uma encontrada 

no Brasil. 

28. Topsentia ophiraphidites (de Laubenfels, 1934) 

Morfologia 

Esponja maciça, de forma variada. Foram 

observados espécimes em camada 

espessa (até 20 cm de diâmetro máximo), 

com projeções cilíndricas robustas, curtas 

(até 3 cm de comprimento) e sinuosas, 

com ramas rasteiras irregulares, ou 

sem quaisquer projeções; e outros, eretos 

(até 20 / 10 cm), lobulares de seção irregular, 

com projeções apicais longas, delgadas 

e de ápice afilado (até 10 / 1 cm). 

Cor externa em vida, branca a vermelho 

escuro (vinho tinto), ambas podendo ser 

a tonalidade majoritária. Espécimes acinzentados 

também foram vistos. Internamente 

a coloração é esbraquiçada. No 

álcool torna-se bege, com a maioria das 

manchas desaparecendo por completo. 

Superfície microhíspida com relevo oscilando 

do quase liso ao monticulado. Ósculos 

pequenos (2–5 mm de diâmetro), 

dispersos, rasteiros ou situados no topo 

de pequenas projeções vulcaniformes. 

Consistência firme, quebradiça, apenas 

levemente compressível nas porções maciças. 

Mais frágil nas fístulas. Esqueleto 

ectossomal formado por tufos de óxeas 

frouxos e justapostos. Esqueleto coanossomal 

denso e confuso. Espículas: óxeas, 

239–1126 / 7–30 μm. 

Ecologia 

Topsentia ophiraphidites foi encontrada 

em substratos duros da Baía de Todos 

os Santos, nas profundidades de 5–16 m. 

Alguns espécimes foram observados em 

locais com alta sedimentação, tendo em 

alguns casos pouco mais que suas fístulas 

livres de uma capa de sedimento fino. 

Epibiontes diversos puderam ser observados 

por vezes, especialmente tunicados 

e outras esponjas. A espécie pode ser 

encontrada próxima das áreas urbanas 




Topsentia ophiraphidites (de Laubenfels, 1934) 

A, óxeas. 



(Bahamas, Cuba, Belize, Ilhas Cayman, 

Jamaica, República Dominicana, Porto 

Rico, Barbados, Colômbia, Venezuela, 

Antilhas Holandesas). Brasil [MA, CE, 

RN, Atol das Rocas, PE, Fernando de Noronha, 

BA (Salvador), Ilha da Trindade]. 

Quebramar Norte, Salvador, 8 m de 

profundidade, 14/Dez/2007. Esponja ereta, 

branca, com sua metade inferior recoberta 

por epibiontes e sedimento. 


131

Ordem Poecilosclerida Topsent 1928 

Mycale angulosa (Duchassaing & Michelotti, 1864) – naufrágio 

Blackadder, Praia de Boa Viagem (Salvador), aprox. 8,0 m de 

profundidade, 14/Dez/2007.

Subordem Microcionina Hajdu, van Soest & Hooper, 1994 

Família Microcionidae Carter, 1875 


Gênero Clathria Schmidt, 1862 

O gênero compreende aproximadamente 350 espécies no mundo, das 

quais dez ocorrem no Brasil. As duas espécies apresentadas a seguir 

são novos registros para a Bahia e para o Brasil. Outras duas espécies 

foram registradas para o Estado da Bahia, C. calypso Boury-Esnault, 

1973 e C. procera (Ridley, 1884). Esta última espécie, originalmente 

encontrada na Austrália, é muito provavelmente um registro equivocado 

para o Brasil. A opção de se tratar de uma espécie invasora, lá ou cá, 

só deve ser aventada uma vez que se proceda à revisão detalhada de 

populações oriundas destas e de outras localidades de onde a espécie já 

foi registrada (p.ex. África do Sul, Seychelles, Mar Vermelho, Índia, Sri 

Lanka, Indonésia, Havaí). 

29. Clathria schoenus (de Laubenfels, 1936) 

Morfologia 

Incrustante à maciça, podendo ultrapassar 

1 cm de espessura e recobrir áreas 

superiores a 30x15 cm. Cor em vida 

vermelha escarlate, passando a bege 

acinzentada no álcool. Superfície lisa 

à monticulada, com ósculos (1–3 mm 

de diâmetro) dispersos, rasteiros ou 

situados no topo de pequenas projeções 

vulcaniformes. Consistência macia. Es- 

queleto ectossomal composto por uma 

densa paliçada de buquês justapostos de 

subtilóstilos auxiliares. Esqueleto coanossomal 

com feixes ascendentes plumorreticulados 

de subtilóstilos principais, 

equinados por acantóstilos acessórios. 

Espículas: subtilóstilos principais, 




133


Porto da Barra (Salvador), 4,6 m de profundidade, 13/Dez/2007. 

430–500 / 5 μm; subtilóstilos auxiliares, 

190–230 / 3,5 μm; acantóstilos acessórios, 

60–80 / 10–12 μm; isoquelas palmadas 

I, 15–27 μm; isoquelas palmadas II, 

9–12 μm; toxas, 10–34 μm. 

Ecologia 

Observada na Baía de Todos os Santos, 

pode ser encontrada próxima das áreas 

urbanas de Salvador, sobre substrato 

duro, em locais com boa circulação de 

água (correntes de maré), em profundidades 

de 3–13 m, onde é relativamente 

comum. 



Caribe (Flórida, Cuba, Jamaica, Belize, 

Panamá, Antilhas Holandesas). Brasil 

(BA – Salvador). 

Arquitetura 


transversal. 


Clathria schoenus (de Laubenfels, 1936) 

Eletromicrografias do componente 

espicular: A, subtilóstilo principal; 

B, base de um subtilóstilo auxiliar; 

C, acantóstilos acessórios; D, 

isoquelas I; E, isoquelas II; F, toxas. 


135

30. Clathria venosa (Alcolado, 1984) 

Morfologia 

Incrustante à maciça, podendo ultrapassar 

1 cm de espessura e recobrir áreas superiores 

à 40x40 cm. Cor em vida branca 

acinzentada, passando a bege no álcool. 

Superfície lisa, de textura aveludada, 

com finos canais radiais convergindo 

para os ósculos (1–5 mm de diâmetro), 

que estão dispersos, situados no topo 

de pequenas chaminés membranosas. 

Aberturas inalantes abundantes, formando 

uma microrreticulação na superfície 

da esponja. Consistência macia, 

frágil. Esqueleto ectossomal composto 

por buquês justapostos e entrecruzados 

de subtilóstilos auxiliares. Esqueleto 

coanossomal com feixes sinuosos ascendentes 

de subtilóstilos principais, 

com acantóstilos acessórios localizados 

preponderantemente junto à placa basal 

de espongina. Espículas: estilos (a subtilóstilos) 

principais, 150–256 / 5–7 μm; 

subtilóstilos auxiliares I, 198–302 / 4–5 

μm; subtilóstilos auxiliares II, 90–153 / 

2 μm; acantóstilos acessórios, 40–72 / 3–5 

μm; isoquelas palmadas, 4–10 μm; toxas 

I, 106–294 μm; toxas II, 6–10 μm. 

Comentários 

No Caribe C. venosa é aparentemente 

oportunista, com maiores abundâncias 

registradas em ambientes alterados e 

expostos a enriquecimento orgânico. 

Nestes locais, sua cor prevalescente inclui 

diversos tons de laranja. 

Ecologia 

Na Baía de Todos os Santos é comum em 

substratos duros, naturais e artificiais 

próximos à abertura da baía, da região 

entre marés à 3-4 m de profundidade. A 

espécie ocorre em abundância, próxima 




(Cuba, Belize, Martinica, Panamá, Antilhas 

Holandesas). Brasil (BA – Salvador). 




Porto da Barra (Salvador), 2 m de profundidade, 05/Dez/2010. Outras esponjas ao fundo são 

Desmapsamma anchorata (rosada) e Tedania ignis (avermelhada). 


transversal. 

A, subtilóstilo principal; B, subtilóstilo 

auxiliar I; C, subtilóstilo auxiliar II, e detalhe 

de sua base; D, acantóstilo acessório; E, 

isoquela palmada; F, toxas I; G, toxa II. 


137


Família Raspailiidae Hentschel, 1923 

Gênero Echinodictyum Ridley, 1881 

O gênero compreende 29 espécies no mundo, das quais duas ocorrem 

no Brasil. Apenas uma espécie foi encontrada na Bahia. 

31. Echinodictyum dendroides Hechtel, 1983 

Morfologia 

Forma arbustiva, mais comumente alongada, 

cavernosa, com até 15 cm de altura, 

mas frequentemente não ultrapassando 

os 10 cm. Consistência firme porém compressível 

e elástica. Cor em vida marrom– 

escuro a preto externamente e marrom– 

amarelado internamente. No fixador, a 

cor permanece marrom–escura por fora e 

mais clara por dentro. Superfície irregular, 

devido às projeções das terminações 

das fibras coanossomais. Ósculos circu- 

lares com cerca de 3 mm de diâmetro, e 

localizadas no topo de chaminés membranosas. 

Arquitetura ectossomal composta 

por camada delgada de óxeas tangenciais 

dispostas confusamente em uma fina 

membrana, separada do sistema esquelético 

coanossomal por um delgado lençol 

aquífero. Coanossoma com reticulação 

de feixes multiespiculares de óxeas, com 

diâmetro de até 300 μm na região periférica 

da esponja. Estes feixes estão equinados 

por acantóstilos, mais frequentes 

Quebramar Norte (Salvador), 5 m de profundidade, 31/Mai/2009. A esponja 

azulada ao fundo é uma Mycale angulosa. 


Echinodictyum dendroides Hechtel, 1983 

na região periférica, com seus ápices perfurando 

levemente a superfície ou situados 

logo abaixo desta. Espículas: estilos, 

650–1138 / 5–10 μm; óxeas, 183–691 / 3–8 

μm; acantóstilos, 80–121 / 5–7 μm. 


Endêmica do Brasil [CE, RN, PE, AL, BA 

(Salvador), RJ]. 

Ecologia 

Echinodictyum dendroides é relativamente 

rara no infralitoral de costões rochosos da 

Baía de Todos os Santos, e pode ser encontrada 


Salvador. Os maiores espécimes observados 

ocorriam no Canal de Itaparica. A 

espécie assemelha-se quanto ao hábito a 

Pandaros sp., registrada para o Rio Grande 

do Norte. Porém, ao microscópio é facilmente 

distinguível pela posse de estilos 

que ultrapassam os 1000 μm de comprimento, 

ao passo que a espécie potiguar 

apresenta como suas maiores megascleras, 

óxeas pouco maiores que 500 μm. 

A, estilo; B, óxeas; C, acantóstilo. 

Arquitetura 


transversal. 


139

Gênero Ectyoplasia Topsent, 1930 

O gênero compreende quatro espécies no mundo, uma das quais 


32. Ectyoplasia ferox (Duchassaing & Michelotti, 1864) 

Morfologia 

Forma maciça com projeções vulcaniformes, 

no topo das quais se situam os ósculos, 

caracteristicamente circundados por 

um anel de pigmentação mais clara. Os 

espécimes podem alcançar mais de 40 cm 

de comprimento e 15 a 20 cm de largura, 

e a espessura, frequentemente supera os 

4 cm. A consistência é macia, compressível, 

e a superfície é lisa, com textura 

aveludada, estando perfurada por miríades 

de aberturas inalantes. Os ósculos 

possuem 2 à 5 mm de diâmetro. A coloração 

em vida é um laranja–avermelhado 

ou amarronzado que lembra cor de 

telhas de barro. No fixador os espécimes 

tornam–se beges. Esqueleto ectossomal 

indistinto do coanossomal, perfurando 

levemente a superfície. Coanossoma formado 

por feixes paucispiculares ascendentes 

de subtilóstilos/rabdóstilos, com 

pouca ramificação e anastomoses. Em alguns 

trechos a espongina envolve completamente 

as espículas. Megascleras 

são estilos com algumas modificações a 

óxeas, 250–410 / 5–20μm. 

Porto da Barra (Salvador), 6 m de profundidade, 

13/Dez/2007. 

Quebramar Norte (Salvador), 5 m de 



Ectyoplasia ferox (Duchassaing & Michelotti, 1864) 


transversal. 

Ecologia 

Ectyoplasia ferox é relativamente rara 

na Bahia. Na Baía de Todos os Santos 

foi observada mais frequentemente em 

paredes verticais de grandes rochas, em 

locais de grande riqueza de espécies. A 

espécie pode ser encontrada próxima 


A, estilos. 



México. Caribe (Flórida, Bahamas, México, 

Cuba, Ilhas Cayman, Jamaica, República 

Dominicana, Ilhas Virgens, Barbados, 

Belize, Panamá, Colômbia, Venezuela, 

Antilhas Holandesas). Brasil [CE, Atol 

das Rocas, Fernando de Noronha, PE, BA 

(Salvador), Ilha da Trindade]. 

Quebramar N (Salvador), 5, 0 m de profundidade, 31/Mai/2009. 


141

Gênero Thrinacophora Ridley, 1885 

O gênero compreende sete espécies no mundo, uma das 

quais ocorre no Brasil. 

33. Thrinacophora funiformis (Ridley & Dendy, 1886) 

Morfologia 

Forma alongada, cilíndrica (como uma 

corda), mas levemente fusiforme, afilando 

rumo ao ápice. A esponja se deita sobre 

o substrato ao sabor das correntes de 

maré. Os indivíduos podem alcançar 40 

cm de comprimento e ser compostos de 

várias projeções alongadas (“cordas”), 

ramificadas a partir de uma base comum, 

Prancha XXIV de Ridley & Dendy (1887) – 

as três esponjas alongadas e de superfície 

erissada representam o material tipo da 

espécie apresentada aqui. 

com até 3 cm de diâmetro cada projeção. 

Sua consistência é flexível e bastante 

compressível em vida, adquirindo maior 

firmeza quando contraídos após a coleta. 

Sua superfície é irregular, salpicada de 

inúmeras projeções acantosas. Ósculos 

não são visíveis nos espécimes fixados. A 

cor em vida é um laranja–avermelhado, 

tornando–se bege ou marrom–escuro 

no fixador. Seu esqueleto coanossomal 

é composto de um eixo central longitudinal 

com uma densa reticulação de 

óxeas curtas sem espongina aparente, e 

um arranjo extra–axial plumoso/radial 

de feixes paucispiculares de estilos e 

anisóxeas longos, que se projeta através 

da superfície, conferindo–lhe o aspecto 

acantoso mencionado. Circundando os 

feixes, próximo à superfície, buquês eretos, 

ou quase, de estilos ectossomais. Espículas: 

estilos I, 840–1260 / 10–20 μm; 

anisóxeas, 960–1400 / 15–25 μm (possivelmente 

pertencentes à mesma classe 

espicular dos estilos); estilos II, 410–480 

/ 5–10 μm; óxeas, 260–490 / 10–20 μm; 

tricodragmas, 51–81 / 8 – 16 μm. 

Ecologia 

Thrinacophora funiformis só foi observada 

no Canal de Itaparica, ao largo de 

Jiribatuba, em uma localidade submetida 

a intenso fluxo de maré, alta turbidez 

e associada farta alimentação, onde 


Thrinacophora funiformis (Ridley & Dendy, 1886) 

ocorreu apenas nos primeiros metros 

do infralitoral. Neste local a espécie é 

bastante abundante. 



México. Caribe (Colômbia). Brasil (BA – 

Nazaré). 

A, estilo I e detalhes de suas extremidades; 

B, estilo II e detalhes de suas extremidades; 

C, óxeas; D, ráfides em tricodragmas. 


transversal. 

Barra do Jacuruna (Nazaré), 3 m de 

profundidade, 05/Jun/2004. Grande quantidade 

de material em suspensão decorrente da maré 

vazante e proximidade a manguesais. 


143


Subordem Myxillina Hajdu, van Soest & Hooper, 1994 

Família Coelosphaeridae Dendy, 1922 

Gênero Lissodendoryx Topsent, 1892 

O gênero compreende mais de 100 espécies no mundo, das quais três 

ocorrem no Brasil. Foram encontradas duas espécies na Bahia, uma das 

quais é apresentada aqui. A espécie adicional, de coloração rosada em 

vida, é uma Lissodendoryx sp. coletada em Salvador. 

34. Lissodendoryx isodictyalis (Carter, 1882) 

Morfologia 

Esponja incrustante, o único exemplar 

observado não ultrapassando 6 cm de 

diâmetro, de cor azul cobalto em vida 

e branco acinzentado no fixador. Superfície 

com características áreas porais em 

depressões (crivos, cribriporos) e abundantes 

ósculos (1–3 mm de diâmetro). 

Consistência macia, frágil. Arquitetura 

ectossomal constituída de tufos de tilotos. 

Coanossoma com uma reticulação de 

estilos. Microscleras dispersas por toda a 

esponja. Espículas: tilotos, 182–228 / 5 

μm; estilos, 157–190 / 2,5–5 μm; sigmas, 

16–21 μm; isoquelas, 21–26 μm. 

Ecologia 

O espécime observado incrustava a superfície 

superior, irregular, exposta à luz, 

de uma placa rígida, aparentemente de 

recife algálico. O mesmo encontrava-se 

entremeado a pólipos de zoantídeos, em 

uma profundidade de 3 m. 



México. Caribe (Bermudas, Flórida, Bahamas, 

Cuba, Belize, Panamá, Colômbia, 

Venezuela). Brasil (PE, AL, BA - Salvador). 

Registros da espécie para outros mares e 

oceanos precisam ser confirmados. 


transversal (acima) e tangencial (abaixo). 



Ponta de Humaitá (Salvador), 3 m de 


A, tiloto; B, estilo; C, sigma; D, isoquela 

arcuada. 


145


Família Crambeidae Lévi,1963 

Gênero Monanchora Carter, 1883 

O gênero compreende 14 espécies no mundo, das quais duas foram 

registradas para o Brasil. Entretanto, o gênero foi revisto em escala 

mundial no âmbito de uma Tese de Doutorado, onde foi constatada a 

existência de diversas espécies novas no Brasil, inclusive na Bahia, e 

no mundo. 

35. Monanchora arbuscula (Duchassaing & Michelotti, 1864) 

Morfologia 

Forma variando de finamente incrustante, 

com pequenas elevações cônicas digitiformes 

ou vulcaniformes dispersas, a 

capas mais espessas com cristas e sulcos, 

ou mesmo formas ramificadas ou eretas, 

com variados graus de fusão dos ramos. 

Alguns espécimes recobrem mais de 1 

m 2 , porém a maioria não ultrapassa os 20 

cm de diâmetro. A cor em vida é tipicamente 

vermelha–carmim ou vermelha– 

alaranjada, mas espécimes amarelados, 

quase brancos também existem. A superfície 

é lisa e costuma apresentar uma 

marca registrada da espécie, seus canais 

vermelhos, ou mais frequentemente, esbranquiçados. 

Estes canais, mais nítidos 

em espécimes carmim, convergem em 

padrão estrelado aos ósculos da esponja 

(diâmetro, 1–3 mm), dispersos na superfície. 

A consistência é macia e facilmente 

rasgável. A arquitetura coanossomal compreende 

megascleras mais robustas com 

suas bases inseridas em lâmina basal de 

espongina, a partir de onde, a depender 

da espessura do espécime, podem partir 

feixes espiculares ascendentes, com espongina 

bem visível, especialmente em 

suas porções mais basais. Por cima destes, 

as mesmas megasleras podem estar dispostas 

aleatoriamente. Em espécimes mais 

espessos, estes feixes se ramificam e anastomosam, 

formando uma plumorreticulação 

coanossomal. O esqueleto ectossomal 

situa-se sobre as terminações dos feixes 

coanossomais ascendentes, e constitui-se 

de tufos ou pequenos feixes ascendentes 

de megascleras mais delgadas. Isoquelas 

unguiferadas são muito raras, e sigmóides 

relativamente comuns. Espículas: subtilóstilos 

coanossomais, 181–412 / 5–10 μm; 

subtilóstilos ectossomais, 191–342 / 2–5 

μm; isoquelas unguiferadas, 18–25 μm; 

isoquelas sigmóides, 9–13 μm. 

Comentários 

Estudos químico–farmacológicos revelaram 

que esta espécie é possuidora de 

toxinas poderosas, com atividades antibacteriana, 

antimicobacteriana (contra 

o bacilo da tuberculose) e citotóxica. A 

espécie pode, às vezes, ser confundida 

com Desmapsamma anchorata (ver abaixo) 

por seu hábito. Ao microscópio, pode 

ser confundida com espécies do gênero 

Desmacella Schmidt, 1870, em virtude da 

raridade ou até mesmo ausência de suas 

isoquelas ancoradas, bem como ocasional 

dificuldade no reconhecimento de uma 

Praia da Paciência (Salvador), 2 m de profundidade, 

01/Dez/2006." 


Monanchora arbuscula (Duchassaing & Michelotti, 1864) 


147


das categorias de megascleras. Um observador 

incauto pode ter a falsa impressão 

de estar frente a uma esponja com 

uma única categoria de (sub)tilóstilos 

como megascleras e uma de sigmas, na 

verdade isoquelas sigmóides, como microscleras. 

Ecologia 

Monanchora arbuscula é muito comum 

em Salvador e Abrolhos. Ocorre nos substratos 

mais diversificados, tais como 

rochas areníticas, graníticas, cascos sossobrados 

de embarcações e ampla gama 

de substratos calcários. É conhecida da 

faixa infralitoral dos 2 aos 15 m de profundidade. 

Formas incrustantes são 

preponderantes em águas mais rasas, 

e as ramosas em águas mais fundas. A 

espécie pode ser encontrada em grande 

abundância nas proximidades de áreas 




México. Caribe (Flórida, Cuba, Jamaica, 

República Dominicana, Porto Rico, Ilhas 

Virgens, México, Belize, Costa Rica, 

Panamá, Barbados, Colômbia, Antilhas 

Holandesas). Brasil [PA, CE, PE, Fernando 

de Noronha, BA (Salvador, Belmonte, 

Abrolhos), RJ, SP]. 

Quebramar Norte (Salvador), 5 m de profundidade, 31/Mai/2009. 




Quebramar Norte (Salvador), 9 m de profundidade, 

11/Dez/2007. 

A, subtilóstilo coanossomal; B, 

subtilóstilo ectossomal; C, isoquela 

unguiferada; D, isoquela sigmóide. 


149


Porto da Barra (Salvador), 07/ 

Mai/2008. FOTOGRAFIA POR G. LOBO- 

HAJDU. 





Família Desmacididae Schmidt, 1870 

Gênero Desmapsamma Burton, 1934 

O gênero compreende três espécies no mundo, uma das quais 


36. Desmapsamma anchorata (Carter, 1882) 

Morfologia 

Forma ramosa com ramos cilíndricos irregulares 

(até 60x3 cm), ou maciça em cristas, 

recobrindo até 40x40 cm. As primeiras 

são características de locais abrigados, 

enquanto as últimas se observam em ambientes 

sujeitos a maior hidrodinamismo. 

A cor em vida é vermelha–rosada externamente, 

por vezes quase branca, e avermelhada 

por dentro. No fixador torna–se 

bege. Alguns espécimes apresentam canais 

esbranquiçados na superfície, que é 

lisa e aveludada. Ósculos se dispõem nos 

ápices das ramificações ou sobre pequenas 

elevações nas formas maciças. Consistência 

macia, facilmente rasgável. Arquitetura 

ectossomal composta por uma 

densa reticulação de óxeas avulsas 

ou em feixes, acrescida de variável 

quantidade de grãos de areia e 

espículas exógenas. Esqueleto 

coanossomal reticulado a plumorreticulado 

formado por feixes multiespiculares 

irregulares e óxeas avulsas, com malhas 

de formas e dimensões variadas. Alguns 

feixes primários ascendentes são reconhecíveis, 

e areia está presente em pequena 

quantidade. Espículas: óxeas, 127–198 / 

2,5–5 μm; isoquelas ancoradas I, 15–21 

μm; isoquelas ancoradas II, 7–12 μm; sigmas 

I, 35–40 μm; sigmas II, 8–20 μm. 

Comentários 

Alguns espécimes podem apresentar um 

sistema de canais na superfície que lembra 

o aspecto de Monanchora arbuscula (ver 

acima). Porém o contraste entre um ectossoma 

claro e coanossoma vermelho normalmente 

denota tratar-se de D. anchorata. 

Em alguns casos, a certeza na identificação 

só se consegue no laboratório, com estudo 

do componente espicular. 

Ecologia 

Desmapsamma anchorata é uma das esponjas 

mais abundantes na Baía de Todos os 

Santos, onde pode ser encontrada com 

facilidade próxima das áreas urbanas de 

Salvador. Pode estar firmemente aderida 

ao substrato, formar projeções flamulantes 

ao sabor das correntes, ou, por vezes 

Quebramar Norte (Salvador), 3-5 m 

de profundidade, 11/Dez/2007. 


151

Desmapsamma anchorata (Carter, 1882) 

ainda, recobrir seus vizinhos através de 

um crescimento reptante, sendo uma das 

principais esponjas epibiontes sobre outros 

organismos (inclusive outras esponjas). 

A espécie foi observada do entremarés 

até 13 m de profundidade, mas em 

outros estados já foi coletada abaixo dos 

20 m. Estudos recentes identificaram D. 

anchorata como sendo uma das esponjas 

preferidas na dieta do peixe-anjo Holacanthus 

tricolor em Salvador. 



Caribe (Flórida, Cuba, Jamaica, República 

Dominicana, Antigua, Barbados, 

Belize, Costa Rica, Panamá, Colômbia, 


[RN, PE, Bahia (Salvador, Itaparica, 

Vera Cruz), RJ]. Há também uma série de 

registros para os Oceanos Índico e Pacífico 

que carecem de confirmação de sua 

coespecificidade. 

Porto da Barra (Salvador), 5 m de profundidade, 07/Mai/2008. 




Arquitetura esquelética em seção tangencial. 

A, óxea; B, sigma I; C, sigma II; D, 

isoquela ancorada I; E, isoquela ancorada II. 


153






Farol da Barra (Salvador), 1,5 m de profundidade, 04/Dez/2010. 



Família Iotrochotidae Dendy, 1922 

Gênero Iotrochota Ridley, 1884 

O gênero compreende 14 espécies no mundo, apenas uma das 

quais ocorre no Brasil. A espécie I. bistylata Boury-Esnault, 1973, 

originalmente registrada de Sergipe e da Bahia, é atualmente 

considerada sinônima de I. birotulata (descrita a seguir). 

37. Iotrochota birotulata (Higgin, 1877) 

Morfologia 

Forma incrustante à maciça ou ereta com 

projeções alongadas irregulares. Consistência 

firme nos espécimes maciços e 

eretos. Superfície irregular devido à projeção 

de feixes espiculares subjacentes, 

com padrão de cristas e sulcos. Cor 

em vida preto, por vezes com nuances 

verde–escuras ou amarelas. No fixador, 

torna–se roxo mais ou menos escuro. Esqueleto 

ectossomal composto de espículas 

dispersas e alguns feixes irregulares. 

Coanossoma com reticulação de feixes 

multiespiculares, com maior ou menor 

quantidade de espongina. Espículas 

dispersas também abundam no coanossoma, 

e uma densa pigmentação escura 

dificulta a visualização dos padrões com 

clareza. A abundância de birrótulas é 

variável, porém frequentemente muito 

baixa. Espículas: estrôngilos, 93–216 / 

3-7 μm; estilos, 133–226 / 4–5 μm; birrótulas, 

11–22 μm. 

Ecologia 

Iotrochota birotulata é relativamente rara 

em águas rasas da Bahia. A espécie integra 

a dieta do ouriço-satélite, Eucidaris 

tribuloides (Lamarck, 1816), em Salvador. 

Iate Clube (Salvador), 3 m de profundidade, 

04/Dez/2006. 


155

Iotrochota birotulata (Higgin, 1877) 



México. Caribe (Flórida, Bahamas, Cuba, 

Ilhas Cayman, Jamaica, República Dominicana, 

Porto Rico, Barbados, México, 

Belize, Costa Rica, Colômbia, Antilhas 

Holandesas, Venezuela). Brasil [PE, Fernando 

de Noronha, AL, SE, BA (Salvador, 

Belmonte)]. 

A, estrôngilo; B, estilo; C, birrótula. 


transversal. 

Praia de Cantagalo (Salvador), 7,9 m 




Família Tedaniidae Ridley & Dendy, 1886 

Gênero Tedania Gray, 1867 

O gênero compreende mais de 70 espécies no mundo, das quais cinco 

ocorrem no Brasil, e uma está citada para a Bahia. Há um morfotipo 

em Salvador que poderia se tratar de uma segunda espécie. Sua 

espiculação, à primeira vista, é idêntica àquela de T. ignis (descrita 

abaixo), porém sua cor em vida é singular – vermelho mais escuro e 

com pontos esbranquiçados. 

38. Tedania ignis (Duchassaing & Michelotti, 1864) 

Morfologia 

Forma frequentemente maciça com ou 

sem projeções cônicas ou vulcaniformes. 

Os espécimes podem alcançar 10 cm de 

espessura e cobrir áreas superiores a 

0,5 m 2 . A cor em vida é tipicamente 

vermelho–alaranjada. No fixador tornam–se 

bege ou branco–amarelado. 

Sua superfície é lisa, levemente áspera. 

Ósculos estão localizados dispersamente 

ou no topo das projeções, e possuem 

até 1 cm de diâmetro, e membrana perioscular 

em forma de chaminé. Consistência 

facilmente rasgável e compressível, 

ou mais resistente, podendo 

tornar–se esfarelenta no material fixado. 

Espécime contraído, exposto ao sol na maré 

baixa. Ilha do Pati (São Francisco do Conde), 



157

Tedania ignis (Duchassaing & Michelotti, 1864) 

A arquitetura ectossomal se constitui de 

tilotos dispostos lado a lado como em 

uma palissada, perpendicularmente à 

superfície, que é perfurada por essas espículas. 

O arranjo coanossomal consiste 

de feixes primários de estilos, frequentemente 

inconspícuos, e de uma reticulação 

secundária destas mesmas espículas, que 

também pode estar mascarada por grande 

quantidade de espículas dispostas aleatoriamente, 

megascleras e microscleras. 

A forma e espesura das megascleras, em 

especial dos estilos, pode variar consideravelmente. 

Espículas: estilos (raramente 

estrôngilos), 218–273 / 2,5–14 μm; tilotos, 

217–245 / 2–6 μm; oniquetas I, 125–239 

μm; oniquetas II, 40–74 μm. 

Porto da Barra (Salvador), infralitoral, 

02-05/Dez/2010. 



Porto da Barra (Salvador), 

infralitoral, 02-05/Dez/2010. 

Ecologia 

Tedania ignis é comum em todo o litoral 

da Bahia, podendo atingir grande 

abundância em áreas mais quentes e de 

menor circulação, tais como o fundo da 

Baía de Todos os Santos. Nestes locais, 

grandes espécimes maciços se desenvolvem 

sobre os menores fragmentos 

de substrato consolidado, literalmente 

inseridos em um “mar de lama” circundante. 

A espécie também pode ser 

encontrada em abundância nas proximidades 


A, estilo; B, tiloto; C, oniqueta 

I; D, oniqueta II; E, extremidade 

da oniqueta I; F, extremidade da 

oniqueta II. 


transversal. 


159


Tedania ignis costuma causar dermatite 

em contato direto com a pele humana, 

podendo gerar inchaço e vermelhidão 

da palma das mãos que a tenham manuseado. 

Em um estudo de monitoramento 

ambiental mostrou-se uma possível 

biomonitora de ambientes poluídos. 

Estudos recentes identificaram também 

que T. ignis é uma das esponjas preferidas 

na dieta dos peixes-anjo Holacanthus 

tricolor e Pomacanthus paru, em Salvador. 



México. Caribe (Bermudas, Bahamas, 

Flórida, Cuba, Jamaica, República Dominicana, 

Porto Rico, Ilhas Virgens, México, 

Panamá, Belize, Antigua, Colômbia, 

Antilhas Holandesas, Venezuela). Brasil 

[AP, MA, PI, CE, RN, Fernando de Noronha, 

PE, AL, Bahia (Salvador, Madre 

de Deus, Maraú, Porto Seguro), ES, RJ, 

SP, SC]. 

Espécime contraído, exposto ao sol na maré. Ilha do Pati (São Francisco do 

Conde), entremarés, 20/Mai/2008. 


Subordem Mycalina Hajdu, van Soest & Hooper, 1994 

Família Mycalidae Lundbeck, 1905 


Gênero Mycale Gray, 1867 


14 ocorrem no Brasil. Estão registradas para a Bahia seis espécies, 

o que inclui, afora as espécies descritas a seguir, M. escarlatei 

Hajdu, Zea, Kielman & Peixinho, 1995, M. laevis (Carter, 1882) e 

M. quadripartita Boury-Esnault, 1973. Adicionalmente, a coleção do 

Museu Nacional possui alguns novos registros, os quais carecem de 

identificação completa e/ou descrição detalhada: M. arenaria Hajdu 

& Desqueyroux-Faúndez, 1994, de Salvador; M. cf. arcuiris Lerner & 

Hajdu, 2002, de Mata de São João (Praia do Forte); e Mycale spp., de 

Caravelas (Abrolhos). 

39. Mycale angulosa (Duchassaing & Michelotti, 1864) 

Morfologia 

Forma maciça ou ereta com projeções cilíndricas 

irregulares, ramificantes, sinuosas, 

de até 75x3 cm (altura x diâmetro). 

Os espécimes maciços podem alcançar 

mais de 5 cm de espessura. A cor em vida 

é mais costumeiramente roxo, por vezes 

amarronzado, mas espécimes azuis, 

vermelhos, amarelos e brancos também 

já foram vistos ao longo do litoral brasileiro. 

A superfície é lisa, aveludada, com 

um conspícuo padrão reticulado visível 

a olho nu, e facilmente destacável do resto 

do organismo. Ósculos dispersos pela 

superfície (diâmetro 2–5 mm), portando 

pequenas chaminés membranosas periosculares, 

situados ao final de curtos, 

porém amplos canais subsuperficiais. A 

consistência é macia e os espécimes são 

relativamente fáceis de rasgar. A arquitetura 

ectossomal constitui-se de uma 

nítida reticulação de feixes espiculares 

tangenciais formando malhas tri- ou 

quadrangulares (diâmetro 200–500 μm), 

apoiadas sobre as terminações dos feixes 

coanossomais ascendentes. Rosetas de 

anisoquelas I estão sempre presentes. 

O esqueleto coanossomal é plumorreticulado, 

composto de densos feixes de 

subtilóstilos com abundante espongina, 

dentre os quais se percebe feixes primários 

ascendentes, que divergem em 

buquês na região subectossomal. Espículas: 

subtilóstilos, 224–305 / 6–10 μm; 

anisoquelas I, 40–51 μm; anisoquelas II, 

15–20 μm; isoquelas, 10–13 μm; sigmas 

I, frequentemente contorcidas, 78–94 

μm; sigmas II, 13–40 μm; toxas com curvatura 

central suave, 53–83 μm; ráfides, 

75–232 μm. 

Ecologia 

Esta espécie é bastante comum em substratos 

consolidados da Baía de Todos os 

Santos, podendo ser encontrada próxima 

das áreas urbanas de Salvador. Em locais 

sujeitos a maiores taxas de sedimentação, 

como nas proximidades do porto de 

Salvador, ou nos canais entre as ilhas do 

fundo da Baía de Todos os Santos, pode 


161

Mycale angulosa (Duchassaing & Michelotti, 1864) 

desenvolver–se notavelmente mesmo se 

ancorada apenas por pequenos seixos ou 

conchas. 



México. Caribe (Cuba, Jamaica, Ilhas Virgens, 

Antilhas Holandesas, Venezuela). 

Brasil [RN, PE, BA (Salvador, São Francisco 

do Conde, Madre de Deus, Itaparica, 

Maraú), RJ, SP]. Registros desta espécie 

para a costa Tropical Atlântica da África 

são duvidosos e carecem de revisão. 

A, subtilóstilo; B, sigma I; C, sigma II; D, 

anisoquela palmada I; E, anisoquela palmada 

II; F, isoquela palmada; G, toxa; H, ráfides 

organizadas em tricodragma; I, roseta de 

anisoquelas I. 

Arquitetura esquelética em seções 

transversal (a esquerda) e tangencial (a 

direita). 


profundidade, 31/Mai/2009. A escala branca 

(bastão plástico) tem 5 cm de comprimento. 

A esponja azul tem mais de 60 cm de altura. 

No detalhe, aspecto reticulado da superfície 

de outro espécime na mesma localidade. 




163

Mycale angulosa (Duchassaing & Michelotti, 1864) 

Praia de Cantagalo (Salvador), 5 m de profundidade, 31/Mai/2009. 


40. Mycale laxissima (Duchassaing & Michelotti, 1864) 

Morfologia 

Forma maciça com projeções cônicas 

ou lobadas, podendo recobrir áreas de 

20x20 cm e possuir altura de até 10 cm. 

A cor em vida mais comum é o vermelho 

a vermelho-carmim com características 

pintas claras (brancas, verdes, amarelas, 

turquesas). A superfície é geralmente 

dotada de inúmeros cônulos macios, terminações 

dos feixes espiculares coanossomais 

que se projetam além da superfície. 

Os ósculos, frequentemente situados 

no topo das projeções cônicas, podem 

alcançar 3 cm de diâmetro, e estão envoltos 

por delicada e transparente membrana 

perioscular. A consistência é extremamente 

macia. Não há especialização 

ectossomal do esqueleto. A arquitetura 

coanossomal se constitui de uma reticulação 

quadrangular de feixes robustos, 

formando malhas com 640–1690 μm de 

diâmetro. Raras rosetas de anisoquelas 

podem ser vistas em placa de espongina 

rente ao substrato. Espículas: subtilóstilos, 

241–283 / 3–8 μm; anisoquelas, 

19–36 μm; sigmas, 70–90 μm. 

Comentários 

Na última década surgiram espécimes 

quase incrustantes, azuis claros, que se 

assemelham muito a espécimes de Mycale 

mirabilis observados na Grande Barreira 

de Corais (Austrália). Um estudo de 

revisão é necessário para compreender o 

real limite da variabilidade morfológica 

nesta espécie, que ademais, não forma 

no Brasil os tubos tão característicos 

Quebramar Sul (Salvador), anos 1980 ou 

1990. 


165

Mycale laxissima (Duchassaing & Michelotti, 1864) 

Boião de 

sinalização naval 

entre Salvador e Ilha 

dos Frades (Bahia de 

Todos os Santos), 5 

m de profundidade, 

21/Jun/2004. 

Praia de Cantagalo 

(Salvador), 8 m de 


Dez/2007. 

que ocorrem em espécimes da região do 

Caribe. Esta espécie foi registrada pela 

primeira vez para o Brasil em 1886 a 

partir de material coletado na Bahia pela 

expedição de circumnavegação global 

do navio inglês H.M.S. Challenger, ocorrida 

entre os anos de 1873 e 1876. Este 

material original foi identificado como 

Esperella nuda Ridley & Dendy, 1886, espécie 

que atualmente integra a lista de 

sinônimas de M. laxissima. 

Ecologia 

Esta espécie é relativamente comum 

em áreas abrigadas da Baía de Todos os 

Santos, podendo ser encontrada próxima 

das áreas urbanas de Salvador. Ao 

ser manuseada, e especialmente após a 

coleta, desmancha-se rapidamente em 

muco. Ao final resta apenas o esqueleto 

reticulado de feixes espiculares envoltos 

em espongina. 


Mycale laxissima (Duchassaing & Michelotti, 1864) 


Tropical Anfi–atlântica. Golfo do México. 

Caribe (Flórida, Bahamas, Cuba, Jamaica, 

Porto Rico, Ilhas Virgens, México, 

Honduras, Belize, Antilhas Holandesas, 

Colômbia). Brasil [BA (Salvador), RJ, 

SP]. África Tropical Ocidental. 




transversal, com fibras isoladas após 

tratamento com hipoclorito de sódio diluído. 

A, subtilóstilo e detalhes de suas bases; B, 

sigma; C, anisoquelas palmadas desenhadas 

a partir de eletromicrografias (p.ex. espícula 

à direita) obtidas do holótipo de M. nuda 

(Ridley & Dendy, 1886) (= M. laxissima). 


167

41. Mycale microsigmatosa Arndt, 1927 

Morfologia 

Forma geralmente incrustante, salvo se 

associada a endobiontes quando pode 

alcançar maior espessura (até 2–3 cm). 

Sua cor em vida é vermelho-carmim, ou 

mais raramente alaranjado ou amarelo, 

adquirindo cor bege no fixador. Sua superfície 

é geralmente lisa e desprovida 

de reticulação visível ao olho nu, mas 

pode apresentar-se irregular em decorrência 

da presença de endobiontes. Ósculos 

(diâmetro até 1 cm) estão dispostos 

aleatoriamente, por vezes no topo de 

discretas elevações, e usualmente estão 

circundados por membrana peri–oscular. 

A consistência é normalmente compressível 

e rasgável, mas pode ser firme 

em decorrência de endobiontes. Não há 

especialização ectossomal do esqueleto, 

observando-se apenas umas poucas 

espículas dispersas tangencialmente 

na membrana superficial. O esqueleto 

coanossomal é composto por feixes ascendentes 

de espessura e sinuosidade 

variável, ramificantes, ou por vezes se 

anastomosando em um padrão plumorreticulado. 

Estes feixes se constituem de 

subtilóstilos e variável quantidade de 

espongina, e divergem acentuadamente 

próximo à superfície, formando tufos 

que sustentam o ectossoma e perfuram 

levemente a superfície. Megascleras e 

microscleras isoladas estão dispersas por 

toda a esponja, porém as sigmas possuem 

abundância muito variável, enquanto as 

anisoquelas são frequentemente muito 

raras. Espículas: subtilóstilos, 183–264 / 

2,5–5 μm; anisoquelas, 8–13 μm; sigmas, 

18–43 μm. 

Comentários 

A espécie pode ser confundida no campo 

com Monanchora arbuscula (p. 146) 

quando esta não apresenta seus característicos 

canais dispostos em padrão 

estrelado. O exame ao microscópio da 

amostra em mãos, contrastado às descrições 

aqui apresentadas para ambas as 

espécies, não deixará dúvidas quanto a 

sua identidade. 

Ecologia 

Mycale microsigmatosa é relativamente 

comum nas águas mais rasas da Baía de 

Todos os Santos, podendo ser encontrada 

próxima das áreas urbanas de Salvador, 

onde ocorre preponderantemente 

em ambientes expostos à iluminação, de 

boa circulação de água e baixa sedimentação. 

Está frequentemente associada a 

endobiontes tais como os poliquetos da 

família Spionidae e crustáceos anfípodos. 



México. Caribe (Flórida, Cuba, Jamaica, 

Belize, Colômbia, Antilhas Holandesas, 

Venezuela). Brasil [BA (Salvador, Maraú), 

RJ, SP, SC]. 



Porto da Barra (Salvador), 2 m de profundidade, 07/Dez/2010. 

Arquitetura esquelética em seção transversal, com 

fibras isoladas após tratamento com hipoclorito de 

sódio diluído. 

A, subtilóstilo; B, sigma; C, 

anisoquela palmada. 


169

Ordem Haplosclerida Topsent 1928 

Haliclona manglaris Alcolado, 1984. Porto da Barra (Salvador), 2-3 m 

de profundidade, 03/Dez/2010.


Subordem Haplosclerina Topsent, 1928 

Família Callyspongiidae de Laubenfels, 1936 

Gênero Callyspongia Duchassaing & Michelotti, 1864 

O gênero compreende mais de 180 espécies no mundo, das 

quais 13 ocorrem no Brasil. Além das espécies descritas a seguir, 

também ocorrem na Bahia C. fibrosa (Ridley & Dendy, 1886), 

C. laboreli Hechtel, 1983, C. pallida Hechtel, 1965 e C. pseudotoxa 

Muricy & Ribeiro, 1999. 

42. Callyspongia sp. 1 

Morfologia 

Forma ereta-ramosa-tubular ou mais 

raramente cilíndrica–reptante com até 

15–20 cm de altura e 3–4 cm de diâmetro 

dos tubos. Os tubos se ramificam ou 

anastomosam, e podem estar totalmente 

coalescidos longitudinalmente. A cor 

em vida é muito variável, mas a predominância 

é de espécimes roxos ou rosados. 

Outras tonalidades observadas são 

o azul, o vermelho e o laranja. Em etanol 

assume cor bege escura. A superfície é 

cravejada de grandes espinhos fibrosos, 

em forma de cônulos, sustentados 

por fibras esqueletais, e uma reticulação 

subjacente é nitidamente visível a olho 

nu. Os ósculos, normalmente no ápice 

dos tubos, podem ter até 4 cm de diâmetro, 

e permitem observar o interior 

de ampla cavidade atrial em cada tubo. 

Alguns ósculos menores (diâmetro até 

5 mm) situam–se no topo de pequenas 

projeções em forma de lobos, possivelmente 

tubos em formação. A consistência 

é firme, porém compressível, e os espécimes 

são bastante flexíveis e elásticos. A 

arquitetura ectossomal compreende uma 

Porto da Barra (Salvador), 2-3 m de 



171


Porto da Barra (Salvador), 4-5 m de profundidade, 07/Mai/2008. FOTOGRAFIA DE G. LÔBO-HAJDU. 

reticulação tangencial dupla, com um retículo 

primário mais grosseiro, formando 

amplas malhas poligonais irregulares, e 

um secundário mais delgado, entremeado 

com o primeiro. O esqueleto coanossomal 

se compõe de feixes longitudinais 

principais robustos e uma reticulação 

que diverge destes feixes rumo à superfície, 

interconectada irregularmente por 

fibras terciárias. Espículas: óxeas, 93–106 

/ 1–3 μm; toxas, 12–43 μm. 

Comentários 

A comparação desta espécie com todas 

as demais Callyspongia com toxas do 

Atlântico Tropical Ocidental não en- 

controu nenhuma que se assemelhe, de 

modo que o material examinado deve se 

tratar de uma espécie nova. 

Ecologia 

Callyspongia sp. 1 é relativamente comum 

no infralitoral com substrato consolidado 

da Baía de Todos os Santos, podendo 

ser um dos elementos mais conspícuos 

do bentos em alguns setores, tais como 

a área do Porto da Barra, Forte de São 

Marcelo e quebra-mares portuários. 


Brasil (provisoriamente endêmica da Bahia 

– Salvador, Madre de Deus, Itaparica). 


Callyspongia sp. 1 


04/Dez/2006. 


profundidade, 07/Mai/2008. FOTOGRAFIA DE G. 

LÔBO-HAJDU. 

A, óxeas; B, terminações das óxeas; 

C, toxas. 


tangencial, em visão panorâmica (A) e em 

detalhe (B). 


173

43. Callyspongia sp. 2 

Morfologia 

Os espécimes são ramosos e reptantes, 

frequentemente se ramificando em 

padrão radial. Os ramos são cilíndricos, 

delgados (até 1,5 cm de espessura) e irregulares, 

terminando em extremidades 

afiladas. Os maiores espécimes observados 

tinham 20–30 cm de diâmetro, mas 

no geral não passam de 10–15 cm. A cor 

em vida é geralmente verde acinzentado, 

mas espécimes com manchas laranja são 

comuns. No fixador, assumem coloração 

bege. A superfície é levemente áspera. Ósculos 

(diâmetro 2–5 mm) foram observados 

no topo de pequenas projeções vulcaniformes, 

na parte superior dos ramos. A 

consistência é esponjosa, facilmente compressível, 

porém um pouco resistente ao 

dano. A arquitetura ectossomal é reticulada, 

com fibras primárias (diâmetro 45–90 

μm), secundárias (20–30 μm e terciárias 

(8–10 μm). O esqueleto coanossomal também 

possui fibras primárias (diâmetro 

45–80 μm), secundárias (30–40 μm) e terciárias 

(15 μm). As fibras primárias apresentam 

fasciculação ao aproximar-se da 

superfície. Espículas: óxeas, 88–104 μm / 

1,5–4 μm. 


profundidade, 02/Dez/2010. A esponja 

azul-cobalto é uma Dysidea etheria. 


Callyspongia sp. 2 

Comentários 

Ao comparar esta espécie com todas as 

demais Callyspongia do Atlântico Tropical 

Ocidental não foi encontrada nenhuma 

que se assemelhe, de modo que 

o material examinado deve se tratar de 

uma espécie nova. 

Ecologia 


das áreas urbanas de Salvador, e é mais 

comum em superfícies planas, bem iluminadas 

e cobertas por areia ou algas filamentosas. 

Seus limites batimétricos conhecidos 

são 3–15 m de profundidade. 



Bahia – Salvador). 


profundidade, 10/Dez/2007. Escala vermelha 

do espécime com 5 cm de largura. 

Arquitetura esquelética em seções tangencial (A) e transversal (B). A, óxeas; B, 

terminações das óxeas. 


175

44. Callyspongia pergamentacea (Ridley, 1881) 

Morfologia 

Esponja reptante, lamelar, com até 10 

cm de comprimento. As duas únicas 

lamelas observadas apresentavam 2–3 

cm de largura e 0,5 cm de espessura, 

e formavam um arco. A cor em vida 

era bege rosado, tornando-se bege no 

fixador. A superfície é um pouco áspera, 

nitidamente reticulada e relativamente 

fácil de destacar, sendo absolutamente 

plana à exceção da margem oscular, 

que apresenta agumas curtas projeções 

conferindo-lhe contorno irregular. 

Ósculos (diâmetro 1 mm) estão dispostos 

de forma alinhada nas margens 

interna e externa dos arcos lamelares. 

Consistência elástica, compressível. A 

arquitetura ectossomal é reticulada, com 

fibras secundárias (diâmetro 20–81) e 

terciárias (8–20), que se sustentam em 

um arcabouço subectossomal robusto de 

fibras primárias (41–102). No coanossoma 

observam-se fibras primárias ascententes 

(41–112) e secundárias transversais 

(31–102). As últimas, frequentemente 

desprovidas de espículas. Espongina é 

abundante em todos os segmentos do 

esqueleto e cada fibra possui um feixe 

uniespicular de óxeas em seu interior. 

Espículas: óxeas, 57–83 / 3–5 μm. 

Comentários 

A descrição original da espécie baseou-se 

em espécime praticamente idêntico ao 

encontrado em Salvador, porém proveniente 

do Banco Hotspur. 

Espécime logo após à coleta, ainda debaixo 

d’água. 


Callyspongia pergamentacea (Ridley, 1881) 

Ecologia 

A espécie foi coletada entre 15 e 64 m 

de profundidade. Em Salvador ocorre 

próxima das áreas urbanas da cidade, 

em substrato vertical, junto à rica 

comunidade bentônica séssil. 


Endêmica do Brasil [Fernando de 

Noronha, BA (Salvador, Banco Hotspur, 

Abrolhos)]. 

Bóia de sinalização naval do Farol da 

Barra (Salvador), 13,3 m de profundidade, 

12/Dez/2007. A esponja vermelha epibionte 

é uma Monanchora arbuscula. 

Arquitetura esquelética em seções transversal (A) e 

tangencial (B), esta última também em detalhe (C). 

A, óxeas e detalhes de suas 

terminações. 


177

45. Callyspongia vaginalis (Lamarck, 1814) 

Morfologia 

Espécimes com tubos curtos (altura até 

5 cm), anastomosados, com pseudo-ósculos 

apicais grandes (2–5 cm de diâmetro) 

e irregulares. Estes frequentemente se 

fundem formando longas estruturas exalantes 

(com até 10 x 2 cm), marca registrada 

desta espécie, que alcança até 30 cm 

de diâmetro máximo. A parede dos tubos 

não ultrapassa 1 cm de espessura, afinando-se 

na direção do pseudo-ósculo, que é 

bordeado por uma margem bastante delicada 

(espessura 1–2 mm). A cor em vida 

é sempre verde claro, levemente acinzentado, 

que se altera para marrom em etanol. 

Sua superfície é majoritariamente lisa 

tanto na face externa dos tubos quanto na 

interna, mas cônulos grandes (altura 1–3 

mm) costumam ocorrer na parte externa. 

Consistência um pouco firme, elástica. 

Arquitetura ectossomal reticulada, com 

fibras primárias (diâmetro 25–90 μm); 

secundárias (11–20 μm); e terciárias (4–12 

μm). No esqueleto coanossomal, observam-se 

fibras primárias (diâmetro 30–110 

μm), secundárias (10–40 μm), e terciárias 

(10–15 μm). Espículas: óxeas, 68–109 / 

1.3–7 μm. 

Ecologia 

A espécie é relativamente rara no litoral 

raso da Bahia, tendo sido encontrada 

em profundidades de 5–17 m. A espécie 

pode ser encontrada próxima das áreas 

urbanas de Salvador. Na região do Caribe 

pode formar tubos com mais de 1 m 

de altura. 




Cuba, Jamaica, República Dominicana, 

Porto Rico, Ilhas Virgens, St. Martin, Guadalupe, 

México, Belize, Panamá, Colômbia, 

Venezuela, Antilhas Holandesas, 

Trinidad & Tobago). Brasil [CE, RN, Atol 

das Rocas, BA (Salvador, Abrolhos)]. 

Comentários 

Espécimes manchados de laranja foram 

vistos entre as incrustações sobre um 

naufrágio, o que poderia ser decorrente 

dos processos de corrosão ocorrendo em 

seu substrato. 


profundidade, 16/Dez/2007. O pseudo-ósculo 

alongado tem cerca de 15 cm de comprimento. 


Callyspongia vaginalis (Lamarck, 1814) 

Bóia de sinalização naval do Farol da Barra (Salvador), 13 m de profundidade, 12/Dez/2007. 

A esponja cinza-escura é possivelmente uma Dysidea robusta. 

Arquitetura esquelética em seções tangencial (A) e transversal (B). A, óxeas; B, 

terminações das óxeas. 


179


Família Chalinidae Gray, 1867 

Gênero Haliclona Grant, 1835 


dez ocorrem no Brasil. Dentre as cinco espécies apresentadas a 

seguir, H. caerulea e H. implexiformis são novos registros para o 

Brasil; H. manglaris é um novo registro para a Bahia; e Haliclona sp. 

é possivelmente uma espécie nova. 

46. Haliclona caerulea (Hechtel, 1965) 

Morfologia 

Esponja maciça com projeções lobulares 

ou vulcaniformes irregulares curtas, 

alcançando 15 x 9 x 5 cm (maior x 

menor diâmetro x espessura/altura). 

As projeções são em sua maioria coalescentes, 

mas ramos delgados irregulares 

também foram observados e poderiam 

representar estruturas adaptadas para 

reprodução assexuada por fissura. A cor 

em vida é um azul-turqueza fosco, que 

se torna bege no fixador. A superfície é 

áspera, podendo ser bastante irregular 

Ilha do Pati (São Francisco do 

Conde), entremarés, 20/Mai/2008. 


Haliclona caerulea (Hechtel, 1965) 

em algumas partes. Ósculos (diâmetro 

2–5 mm) estão dispersos, porém sempre 

localizados no ápice das projeções. Consistência 

firme. Arquitetura ectossomal 

composta de uma reticulação regular, 

uniespicular e tangencial, com espículas 

unidas por suas extremidades. Esqueleto 

coanossomal com reticulação similar, um 

pouco mais densa, sem feixes espiculares 

nítidos. A arquitetura é cavernosa com 

grande número de canais de diâmetros 

variados. Espículas: óxeas, 112–213 / 

3–10 μm; sigmas 18–23 μm. 

Ecologia 

Haliclona caerulea é relativamente rara no 

infralitoral de costões rochosos da Baía 

de Todos os Santos. 



México. Caribe (Cuba, Jamaica, Porto 

Rico, Panamá, Colômbia, Antilhas Holandesas). 

Novo registro para o Brasil 

(BA – São Francisco do Conde). Registros 

duvidosos: Pacífico Tropical Oriental 

(México, Panamá). 

Arquitetura esquelética em seções tangencial 

(no topo) e transversal (acima), esta última em 

vista panorâmica (A) e em detalhe (B). 


terminações; B, sigma. 


181

47. Haliclona implexiformis (Hechtel, 1965) 

Morfologia 

Esponja maciça com cristas e tubos cilíndricos 

curtos, alcançando 6 x 5 x 3 cm 

(maior x menor diâmetro x espessura/ 

altura). Quando viva sua cor é rosa intenso 

brilhante. No fixador, assume uma 

cor bege pálida. Sua superfície é lisa, 

ocasionalmente tuberculada, e possui 

ósculos simples (diâmetro até 3 mm), 

regularmente distribuídos no topo das 

cristas. Sua consistência é muito macia. 

Arquitetura ectossomal composta 

de uma reticulação regular, uniespicular 

e tangencial, com espículas unidas 

por seus ápices. Esqueleto coanossomal 

com reticulação similar, um pouco mais 

densa, sem feixes espiculares nítidos. Espículas: 

óxeas, 133–173 / 3–8 μm. 

A, óxeas e detalhes de 

suas extremidades. 


seções tangencial (acima) 

e transversal (à direita), esta 

última em detalhe (A) e em vista 

panorâmica (B). 


Haliclona implexiformis (Hechtel, 1965) 

Ecologia 

Encontrada principalmente em poças rasas 

de maré, em afloramentos rochosos 

em áreas de manguezais ao norte da Baía 

de Todos os Santos. 


Tropical Atlântica Ocidental. Golfo 

do México. Caribe (Bermudas, Flórida, 

Bahamas, Cuba, Jamaica, República 

Dominicana, Porto Rico, Ilhas Virgens, 

Barbuda, Guadalupe, Martinica, Belize, 


Brasil (BA – São Francisco do Conde, 

Madre de Deus, Itaparica, Salvador, 

Cairú). 

Ilha do Pati (São Francisco do Conde), 


A esponja vermelha é uma Tedania ignis. 


183

48. Haliclona manglaris Alcolado, 1984 

Morfologia 

Forma incrustante-reptante, ramificada, 

com prolongamentos cilíndricos delgados, 

que podem apresentar um padrão 

reticulado em função do frequente fusionamento 

de ramos sobrepostos ou 

adjacentes. A área de cobertura total 

pode superar os 15 x 15 cm, porém com 

grandes lacunas entremeadas. A altura 

dos espécimes geralmente não ultrapassa 

2 cm. Cor em vida verde–clara; no 

fixador, bege-amarelada. Superfície levemente 

híspida, por vezes com pequenas 

projeções em forma de vulcão. Ósculos 

circulares relativamente alinhados no 

dorso dos ramos rasteiros, pequenos 

(diâmetro 1–3 mm), delineados por cur- 

tas membranas periosculares. Consistência 

extremamente macia e facilmente rasgável, 

um pouco esfarelável. Arquitetura 

ectossomal composta de uma reticulação 

regular, uniespicular e tangencial, com 

espículas unidas por suas extremidades. 

Esqueleto coanossomal mais denso, 

porém também formado preponderantemente 

por uma reticulação uniespicular. 

Apenas alguns feixes frouxos são discerníveis. 

Além de amplas lacunas coanossomais 

(diâmetro geralmente de 500 

μm), há também um sistema de pequenas 

lacunas subectossomais formando 




Haliclona manglaris Alcolado, 1984 

um vasto lençol aquífero imediatamente 

sob a superfície da esponja (cerca de 50 

μm de altura). Espículas: óxeas, 50–72 / 

3,5 μm. 

Ecologia 

Haliclona manglaris é bastante comum no 

entremarés e infralitoral da Baía de Todos 

os Santos, podendo ser encontrada 


Foi observada com frequência em 

manguezais, recifes e enseadas rasas. 

Esta espécie foi apontada como potencial 

biomonitora de poluição. 




Martinica, Granada, Granadinas, Belize, 


Holandesas). Brasil [AL, BA (Madre de 

Deus, Salvador, Nazaré, Maraú)]. 


terminações. 


tangencial. 

Arquitetura esquelética em seção transversal, 

com vista em detalhe (A) e panorâmica (B). 


185

49. Haliclona melana Muricy & Ribeiro, 1999 

Morfologia 

Esponja geralmente incrustante, com 

ou sem projeções em forma de dedos 

curtos (altura 2–3 cm), as quais se fusionam 

umas às outras em distintos graus. 

Também se encontram espécimes em camada 

espessa, de aspecto monticulado. 

Sua cor, quando viva é preta, passando 

a preta amarronzada no fixador. Apresenta 

superfície lisa, porém frequentemente 

de contorno irregular. Os ósculos 

são abundantes (diâmetro 1–3 mm) e 

estão geralmente localizados no ápice 

das projeções ou dos montículos. Consistência 

macia, sendo muito fácil rasgar 

estas esponjas. A arquitetura ectossomal 

consiste de uma reticulação uniespicular 

e alguns feixes pauciespiculares esparsos, 

entremeados a ampla rede de canais 

circulares que conferem aspecto alveolado 

à construção. Espongina é visível 

nos nós da reticulação. Células pigmentadas 

são abundantes, e por vezes alinham- 

se em maior número junto aos feixes 

espiculares. O esqueleto coanossomal 

consiste de uma reticulação uniespicular 

atravessada por alguns poucos feixes 

pauciespiculares ascendentes. O sistema 

aquífero se faz presente, não como um 

sistema alveolar regular, mas como canais 

isolados e pequenas lacunas subdermais. 

Células pigmentadas formam traços frouxos 

paralelos à superfície. Espículas: óxeas, 

105–159 / 4–6 μm; toxas 31–76 μm. 

Ecologia 

Haliclona melana é frequente no mesolitoral 

e infralitoral da Baía de Todos os Santos, 

particularmente em costões rochosos, 

mas também pode ocorrer em áreas 

de manguezais da baía. A espécie pode 

ser encontrada próxima das áreas urbanas 


Iate Clube (Salvador), 2-3 m de 



Haliclona melana Muricy & Ribeiro, 1999 

Porto da Barra (Salvador), 2,5 m de profundidade, 07/Mai/2008. 



(Santa Lúcia). Brasil [AL, BA (São Francisco 

do Conde, Salvador, Maraú), SP]. 


(topo) e transversal (acima), com vista em 

detalhe (A) e panorâmica (B). 

A, óxeas e detalhes de suas terminações; 

B, toxas. 


187

50. Haliclona sp. 

Morfologia 

Forma reptante, tubular. Espécimes alcançam 

25 x 15 x 5 cm (maior x menor diâmetro 

x espessura/altura). Tubos eretos 

projetam-se a partir de um tubo horizontal, 

basal, e podem estar densamente justapostos 

em arranjo que remete às flautas 

andinas. Os tubos costumam apresentar 

projeções delgadas na forma de grandes 

espinhos (altura até 1 cm). A cor em vida 

é o bege, do rosado ao amarelado, pouco 

se alterando no fixador, onde se mantêm 

em tom bege-claro. Sua superfície é lisa, 

todo relevo sendo decorrente de tubos 

em início de formação ou dos espinhos 

já mencionados. Nota-se um intrincado 

sistema de veios subsuperficiais, disposto 

em padrão reticulado e visível a olho 

nu, que desaparece no decorrer da preparação 

de seções anatômicas para exame 

do esqueleto. Ósculos abundantes, 

grandes (diâmetro 1–15 mm), geralmente 

circulares e localizados no ápice dos 

tubos eretos, mas também nos tubos horizontais. 

Consistência macia, facilmente 

rasgável. Arquitetura ectossomal composta 

por uma reticulação uniespicular, 

observando-se feixes pauci- a multiespiculares 

irregulares, curtos e dispersos. 

Um sistema alveolar de malhas está delimitado 

pela reticulação. Esqueleto coanossomal 

idêntico ao ectossomal, porém 

os feixes espiculares agora são ascendentes, 

oscilando entre uni- e pauciespiculares. 

Espículas: óxeas, 47–99 / 1–5 μm; 

toxas, 14–27 μm. 

Comentários 

Ao se comparar esta espécie com todas 

as demais Haliclona com toxas do Atlântico 

Tropical Ocidental não foi encontrada 

nenhuma que se assemelhe, de modo 

que o material examinado deve se tratar 

de uma espécie nova. 

Ponta de Humaitá (Salvador), 3-5 m de 

profundidade, Jan/1997. 

Taipú de Fora (Maraú), 1 m de 

profundidade, 27/Jul/2009. O maior ósculo 

tem 1 cm de diâmetro. 




189

Haliclona sp. 

Ecologia 

Espécie rara, do infralitoral superior, em 

locais de boa iluminação e circulação 

de água, porém hidrodinamismo relativamente 

baixo. Os maiores espécimes 

foram encontrados em Taipú de Fora 

(Maraú). Foi observada nas profundidades 

de 1–5 m. 



Bahia – Salvador, Maraú). 

Ponta de Humaitá (Salvador), 3-5 m 

de profundidade, Jan/1997. 

A-B, óxeas e detalhe de sua extremidade; 

C, eletromicrografia de uma toxa. 


(topo) e transversal (acima), esta última em 

detalhe (A) e em vista panorâmica (B). 



Família Niphatidae van Soest, 1980 

Gênero Amphimedon Duchassaing & Michelotti, 1864 

O gênero compreende cerca de 50 espécies no mundo, das quais cinco 


Na Região do Caribe há outra espécie verde, Amphimedon erina (de 

Laubenfels, 1936), que também já foi citada para a costa brasileira. 

Entretanto, em ambas as vezes, acreditamos tratar-se de A. viridis, uma 

vez que a localidade de origem dos registros, litoral norte do Estado de 

São Paulo, foi intensamente amostrada por E. Hajdu, sendo A. viridis a 

única espécie do gênero encontrada. Por sinal, trata-se de uma espécie 

comum naquela região. 

51. Amphimedon viridis Duchassaing & Michelotti, 1864 

Morfologia 

Forma incrustante espessa, maciça de 

contorno irregular ou até mesmo com 

projeções como dedos ou pequenos vulcões. 

Pode alcançar 20 x 30 x 4 cm (maior 

x menor diâmetro x espessura/altura). A 

cor em vida é mais frequentemente verde, 

mas espécimes verde–azulados também 

já foram observados na Bahia. De Alagoas 

conhecem-se espécimes amarronzados 

também. No fixador adquire coloração 

bege. Sua superfície é finamente rugosa, 

com ósculos circulares (diâmetro 1–3 

mm) mais frequentemente situados no 

topo das projeções. Poros abundantes em 

toda a superfície formam uma conspícua 

malha visível a olho nú. Sua consistência 

é macia, compressível e um pouco elástica, 

porém rompe–se facilmente. Produz 

muco em abundância quando manipulada. 

A arquitetura ectossomal consiste de 

uma reticulação multiespicular formando 

malhas arredondadas, com moderada 

quantidade de espongina. O esqueleto 

coanossomal inclui feixes primários ascendentes 

com variável quantidade de 

espículas, além das mesmas espículas 

isoladas ou em feixes secundários interconectando 

os primários. Canais do 

sistema aquífero (diâmetro 280–420 μm) 

ocorrem de forma dispersa. Espículas: 

óxeas, 108–140 / 1,5–10 μm. 

Comentários 

Esta espécie possui um complexo de 

moléculas tóxicas conhecido como Halitoxina, 

para o qual já foram apontadas 

diversas atividades biológicas, tais como 

inibidora da mitose, antibacteriana, hemolítica, 

ictiotóxica, neurotóxica e citotóxica 

(antitumoral). 

Ecologia 

Amphimedon viridis era uma esponja comum 

no infralitoral com substrato consolidado 

da Baía de Todos os Santos, onde 

ocorria preferencialmente exposta à luz. 

Porém, em uma série de mergulhos realizados 

em Dezembro de 2010, essa espécie 

não foi encontrada nas proximidades do 

Porto da Barra (Salvador), donde se supõe 

que ao menos sua frequência tenha 

diminuído drasticamente. 


191

Amphimedon viridis Duchassaing & Michelotti, 1864 




Cuba, Porto Rico, Ilhas Virgens, Martinica, 

Guadalupe, México, Belize, Costa 

Rica, Panamá, Colômbia, Antilhas Holandesas, 

Venezuela). Brasil (Atol das 

Rocas, Fernando de Noronha, PE, AL, 

BA – Mata de São João, São Francisco do 

Conde, Madre de Deus, Salvador, Itaparica, 

Maraú – RJ, SP). Registros efetuados 

para outros oceanos, em sua maioria, já 

foram assinalados a outras espécies. 


transversal. 

A, óxeas. 

Ilha Maria Guarda (Madre de Deus), 2-3 m 

de profundidade, 20/Mai/2008. 


Gênero Niphates Duchassaing & Michelotti, 1864 

O gênero compreende 19 espécies no mundo, das quais quatro 


52. Niphates erecta Duchassaing & Michelotti, 1864 

Morfologia 

Forma frequentemente reptante. Espécimes 

constituídos preponderantemente de 

ramos delgados e/ou placas irregulares, 

rentes ao substrato. Os maiores espécimes 

com esta forma alcançavam 15 x 10 x 5 cm 

e 20 x 5 x 3 cm (maior x menor diâmetro 

x espessura/altura). Espécimes eretos 

também ocorrem, com ramos alcançando 

20 x 2 cm (altura x diâmetro), por vezes 

alargando-se um pouco apicalmente. Em 

ambos casos pode haver elevações em 

forma de vulcões ou chaminés na superfície. 

A cor em vida é variável, havendo 

indivíduos roxos, rosados, verde–azulados 

e quase brancos. No fixador tornamse 

marrom-claro-alaranjado. A superfície 

pode ser quase absolutamente lisa, ou 

apresentar cônulos espinhosos, semelhantes 

aos de Callyspongia sp. 1 (descrita 

acima). Ósculos circulares (diâmetro 1–5 

mm) situados nas elevações ou rentes à 

superfície. A consistência é firme, flexível 

e elástica. A arquitetura ectossomal consiste 

de uma reticulação paratangencial 

irregular de fibras multiespiculares formando 

malhas poligonais. O esqueleto 

coanossomal é composto de uma reticulação 

de feixes multiespiculares formadora 

de malhas circulares ou poligonais. Os 

feixes primários (diâmetro 100–200 μm), 

ascendentes, frequentemente fusionamse, 

dando origem a fascículos (diâmetro 

300 μm ou mais). Os secundários (diâmetro 

20–60 μm), interconectantes, podem 

por vezes formar malhas secundárias. 

Espículas: óxeas, 195–258 / 5–15 μm; sigmas 

não foram observadas nos espécimes 

analisados. 

Ecologia 

Niphates erecta é uma esponja relativamente 

comum no infralitoral com substrato 

consolidado da Baía de Todos os 

Santos, tendo sido observada em diversos 

pontos próximos a Salvador. 



Caribe (Bermuda, Flórida, Bahamas, 



Barbados, México, Belize, Costa Rica, 


Holandesas). Brasil (Atol das Rocas, Fernando 

de Noronha, PE, BA – Salvador, 

Itaparica, Abrolhos). 


193



Niphates erecta Duchassaing & Michelotti, 1864 

A, óxeas. 


(topo) e transversal (acima). 



Ilha do Frade (Salvador), aproximadamente 


Porto da Barra (Salvador), 2-3 m de profundidade, 02/Dez/2010. 


195


Subordem Petrosina BouryEsnault & van Beveren, 1982 

Família Petrosiidae van Soest, 1980 

Gênero Petrosia Vosmaer, 1885 

O gênero compreende 55 espécies no mundo, das quais apenas uma foi 

encontrada no Brasil. 

53. Petrosia weinbergi van Soest, 1980 

Morfologia 

Espécimes em forma de camada espessa, 

podendo superar dimensões de 20 x 15 x 

1 cm (maior x menor diâmetro x espessura/altura), 

frequentemente beges (café 

com leite) em vida e branco-acinzentados 

no etanol. Espécimes cinza-escuros com 

manchas mais claras também foram vistos. 

Sua superfície é essencialmente lisa, 

porém a textura é bastante áspera. Ósculos 

(diâmetro 1–3 mm) estão distribuídos 

regularmente, situando-se no topo de 

pequenas elevações em forma de vulcão, 

e caracteristicamente de bordas esbranquiçadas. 

A consistência é dura, apenas 

levemente compressível. Os espécimes 

são quebradiços, porém não esfarelam 

com facilidade. A arquitetura ectossomal 

consiste de uma rede confusa de espículas 

dispostas tangencialmente, apoiada 

sobre uma reticulação subectossomal 

de feixes multiespiculares formando 

malhas arredondadas. O esqueleto coanossomal 

também apresenta tais malhas 

circulares delineadas pelos feixes robustos, 

porém o arranjo geral é obscurecido 

consideravelmente pela ocorrência de 

grande quantidade de espículas avulsas 

dispostas confusamente. Espículas: óxeas 

I, 213–325 / 8–13 μm; óxeas II, 71–178 

/ 8–13 μm; oxea III: 31–71 / 2,5–8 μm. 

Ecologia 

Espécie relativamente rara, tendo sido 

observada apenas em ambientes crípticos 

da Baía de Todos os Santos (superfícies 

verticais no interior de locas), inclusive 

nas proximidades de áreas urbanas 



profundidade, 21/Jun/2004. 


Petrosia weinbergi van Soest, 1980 

Praia de Cantagalo (Salvador), 7,9 m de profundidade, 31/Mai/2009. 



(Bahamas, Cuba, Jamaica, México, Belize, 

Panamá, Colômbia, Antilhas Holandesas). 

Brazil [MA, Atol das Rocas, 

Fernando de Noronha, BA (Salvador), 

Ilha da Trindade]. 

Óxeas I, II e III. 


197

Gênero Xestospongia de Laubenfels, 1932 


ocorrem no Brasil. Além da espécie apresentada a seguir, outra 

Xestospongia da Bahia, uma esponja branca de arquitetura 

cavernosa, coletada próximo ao Porto de Salvador, aguarda 

identificação completa e descrição detalhada. 

54. Xestospongia muta (Schmidt, 1870) 

Morfologia 

Espécimes relativamente pequenos, o 

maior dos quais não ultrapassando 20 x 

10 cm (diâmetro x altura). Em forma de 

vulcão, com uma grande cratera apical. 

A cor em vida compreende uma série 

de tonalidades entre rosa e vermelho-vinho, 

que formam manchas em degradê 

por toda a superfície externa da esponja. 

A superfície interna (cratera) apresenta 

coloração mais homogênea e próxima 

do vermelho-vinho. No fixador adquire 

coloração bege. Superfície externa 

reticulada ao olho nu, bastante áspera, 

com alguma rugosidade e com cônulos 

grandes, bastante conspícuos (altura até 

1 cm). A superfície no interior da cratera 

também é reticulada e áspera, porém 

com padrão lobular, não conuloso. Ósculos, 

supostamente no interior da cratera, 

porém não observados. Consistência firme, 

porém compressível e esfarelante. A 

arquitetura ectossomal consiste de uma 

reticulação multiespicular formando 

malhas arredondadas. O esqueleto coanossomal 

compreende feixes primários 

ascendentes com quantidade variável de 

espículas, e as mesmas espículas isoladas 

ou em feixes menores interconectando 

os feixes primários. Canais do sistema 

aquífero com 280–420 μm de diâmetro 

podem ser vistos esparsamente. Espículas: 

óxeas, 320–427 / 8–15 μm. 

Comentários 

Novo registro para a Bahia. Esta espécie 

possui compostos inibitórios da reprodução 

do HIV. Espécimes com mais de 

1m de altura podem ter mais de 100 anos 

de idade, e estimativas de até 2.300 anos 

foram obtidas para os maiores espécimes 

conhecidos na Região do Caribe. 

Ecologia 

Xestospongiae muta é uma esponja aparentemente 

rara no infralitoral consolidado 

da Baía de Todos os Santos. Os 

poucos indivíduos observados ocorriam 

abaixo de 15 m de profundidade na entrada 

da baía. 




Ilhas Cayman, República Dominicana, 

Porto Rico, México, Belize, Costa Rica, 


Holandesas). Brasil (Fernando de Noronha, 

BA – Salvador). 



Bóia de sinalização naval próxima ao Farol 

da Barra (Salvador), 17 m de profundidade, 

03/Jun/2004. 

A, óxeas. 


tangencial (ao lado, no topo: A, detalhe; B, 

panorâmica) e transversal (ao lado). 


199

Ordem Dictyoceratida Minchin, 1900 

Dysidea janiae (Duchassaing & Michelotti, 1864) - Porto da 

Barra (Salvador), 3,5 m de profundidade, 09/Dez/2007.


Família Dysideidae Gray, 1867 

Gênero Dysidea Johnston, 1842 

O gênero compreende cerca de 60 espécies no mundo, das quais 

seis ocorrem no Brasil. Afora as espécies apresentadas a seguir, 

Dysidea fragilis (Montagu, 1818) também foi registrada para a 

Bahia. Trata-se de um registro duvidoso, uma vez que a espécie 

foi originalmente descrita do nordeste do Atlântico, área de ínfima 

afinidade faunística com o setor tropical da costa brasileira. 

55. Dysidea etheria de Laubenfels, 1936 

Morfologia 

Forma irregular, maciça ou ereta, com 

lobos mais ou menos proeminentes, frequentemente 

alcançando 15 cm de diâmetro 

e 10 cm de altura. Sua cor em vida 

é tipicamente azul, variando de tons 

cobalto a azul-claro pálido ou lilás, com 

alguns espécimes quase brancos. Tons 

acinzentados ou rosados também podem 

aparecer, e são os prevalecentes no 

material fixado em etanol. Superfície conulosa 

e quase sempre visivelmente reticulada. 

Os cônulos são esbranquiçados, 

mais claros que a película dermal que os 

cerca, o que é tão mais visível, quão mais 

escuro o espécime. Ósculos variam de 1 

a mais de 5 mm, e podem estar circundados 

por uma chaminé membranosa 

transparente. Consistência extremamente 

macia e relativamente fácil de rasgar. 

Arquitetura ectossomal sem especialização, 

composta apenas das terminações 

dos feixes primários ascendentes, 

formadores dos cônulos da superfície. 

Coanossoma com uma reticulação irregular 

de malhas preponderantemente 

quadrangulares, composta de fibras primárias 

ascendentes e secundárias transversais. 

Sedimento pode estar incluído 

em ambas as fibras. A espécie apresenta 

uma aparente preferência por incorporar 

espículas e fragmentos de espículas em 

suas fibras. Espículas próprias ausentes. 

Ecologia 

Geralmente exposta á luz, em substratos 

duros sujeitos à maior ou menor sedimentação. 

Ocorre associada a diversos 

organismos, tendo sido observada do 

entremarés aos 18 m de profundidade, 

inclusive próxima das áreas urbanas de 

Salvador. 

Porto da Barra (Salvador), 

2-3 m de profundidade, 02/Dez/2010. 


201

Dysidea etheria de Laubenfels, 1936 



México. Caribe (Bermudas, Bahamas, 

Flórida, Cuba, Ilhas Cayman, Jamaica, 

República Dominicana, Ilhas Virgens, 

México, Belize, Costa Rica, Panamá, 


Brasil [Arquipélago de São Pedro e 

São Paulo, CE, Fernando de Noronha, PE, 

AL, BA (Salvador, São Francisco do Conde, 

Itaparica, Prado, Abrolhos), ES, RJ, SP]. 


transversal com fibras isoladas após 

tratamento com hipoclorito de sódio diluido. 

A, panorâmica da arquitetura; B, detalhe das 

fibrasmostrando inclusão de detritos. 


profundidade, 14/Dez/2007. Espécime com 

10 cm de altura. 

Ilha Maria Guarda (Madre de Deus), 

3 m de profundidade, 20/Mai/2008. 






203

56. Dysidea janiae (Duchassaing & Michelotti, 1864) 

Morfologia: 

Forma tubular com agregados irregulares 

de tubos curtos, a fusão longitudinal 

dos quais pode ser tal que o hábito 

adquire aspecto maciço ou de crista. Os 

espécimes frequentemente superam os 

10 cm de diâmetro, porém raramente 

ultrapassam 5 cm de altura. Cada tubo 

tem costumeiramente menos de 1 cm 

de diâmetro. A cor em vida e no álcool é 

praticamente branca em decorrência da 

densidade de esqueletos da alga calcária 

Jania sobre os quais a esponja se desenvolve. 

Tonalidades rosadas, azuladas 

ou esverdeadas também podem ocorrer 

em vida. Mais frequentemente, a superfície 

da esponja está completamente 

mascarada pelas algas que a perfuram. 

Em pequenos trechos aparenta ser lisa. 

Ósculos situam-se principalmente nas 

porções apicais dos tubos, mas onde a 

fusão destes é completa, estão alinhados 




Dysidea janiae (Duchassaing & Michelotti, 1864) 

sobre cristas ou dispersos. Seu diâmetro 

varia de 2 a 5 mm, sendo regulado por 

uma membrana transparente contrátil. 

Consistência frágil, facilmente rasgável, 

porém um pouco enrigecida pela presença 

das algas calcárias. Não se observou 

qualquer especialização ectossomal 

do esqueleto, e no coanossoma a estrutura 

é amplamente dependente das algas 

para sustentação, que desempenham o 

papel de uma densa paliçada de fibras 

primárias, com um pouco de anastomose 

e ramificação. Fibras de espongina 

com inclusão de sedimentos são visíveis 

apenas com dificuldade, o que decorre 

de sua raridade e dimensões reduzidas. 

Espículas próprias ausentes. 

Ecologia 

Associação obrigatória com a alga vermelha 

Jania adherens Lamouroux, 1816, 

que por sua vez pode ocorrer isolada da 

esponja. Ocorre em águas rasas expostas 

à luz, e suporta hidrodinamismo moderado. 






Bahamas, Jamaica, República Dominicana, 

Porto Rico, Ilhas Virgens, Martinica, 

México, Belize, Costa Rica, Colômbia, 


[BA (Salvador, Abrolhos), RJ, SP]. 

Arquitetura esquelética 

em seção transversal, com 

preponderância da alga Jania 

adherens como elemento de 

sustentação. No detalhe, fibras 

de espongina com fragmentos 

de espículas inseridos, 

envolvendo talos da alga. A, 

panorâmica da arquitetura. B, 

detalhe das fibras mostrando 

inclusão de detritos. 


205

57. Dysidea robusta Vilanova & Muricy, 2001 

Morfologia 

Forma maciça, lobada, bastante irregular. 

Lobos eretos, de contorno irregular, cilíndricos 

ou levemente lamelares, com 2–3 

cm de diâmetro máximo, e normalmente 

fusionados em agregados de dois ou mais 

lobos. Espécimes com até 25–30 x 10 cm 

(diâmetro x altura). Sua cor em vida é 

cinza-amarronzado, mantendo-se praticamente 

inalterada no álcool, o qual adquire 

tonalidade verde-escura. Espécimes 

com superfície rugosa/conulosa e quase 

sempre visivelmente reticulada. Cônulos 

frequentemente não ultrapassando 

1 mm de altura, e com seus ápices visivelmente 

mais claros, esbranquiçados. 

Ósculos circulares dispersos com 1–4 mm 

de diâmetro, circundados por pequenas 

chaminés membranosas transparentes. 

Consistência firme, pouco compressível, 

algo elástica. Arquitetura ectossomal não 

especializada, constituída apenas das 

terminações das fibras coanossomais ascendentes. 

Coanossoma com reticulação 

irregular de fibras difíceis de classificar 

em primárias e secundárias. Fibras com 

abundante detrito incluído, frequentemente 

alcançando 500 μm de diâmetro. 

Malhas de geometria irregular, circulares, 

quadrangulares e poligonais. Espículas 

próprias ausentes. 

Ecologia 

Geralmente associada a algas 

e exposta à luz. Suporta 

hidrodinamismo moderado 

e mesmo a fricção 

com areia, característica do 

infralitoral raso em que habita, 

por exemplo, nas proximidades 

do Cristo e do 

Farol da Barra (Salvador). 

Já foi observada também 

no entremarés. 


Endêmica do Brasil [BA 

(Salvador, Abrolhos), RJ]. 


seção transversal, em vista 

panorâmica (A) e em detalhe (B). 

Fibras isoladas após tratamento 

com hipoclorito de sódio diluído. 

Farol da Barra (Salvador), 1 m 





207

Família Irciniidae Gray, 1867 

Gênero Ircinia Nardo, 1833 


cinco ocorrem no Brasil. Além das duas apresentadas abaixo, 

também foi registrada para a Bahia I. ramosa (Keller, 1889). Trata-se 

de um registro duvidoso, uma vez que a espécie foi originalmente 

descrita do sul do Mar Vermelho (Eritreia), área de ínfima afinidade 

faunística com a costa brasileira. Observaram-se alguns espécimes 

mais esféricos, com ósculos situados em pequenos lobos com 1 cm 

de altura e 0,5 cm de diâmetro. Os lobos costumam estar alinhados, 

como em uma crista. Esses espécimes são quase brancos (beje claro, 

acinzentado), e acima de tudo, a região perioscular é ainda mais clara 

que seu entorno. Faz-se necessária uma revisão taxonômica de Ircinia 

do Brasil, pois o muito que se vem observando em termos de hábito 

de populações em vida acompanha-se de muito pouco em termos de 

estudos anatômicos aprofundados. 

58. Ircinia felix (Duchassaing & Michelotti, 1864) 

Morfologia 

Forma maciça globular, lobada ou ramosa. 

O diâmetro dos espécimes raramente 

ultrapassa os 20 cm, mas indivíduos com 

mais de 50 cm já foram vistos várias vezes. 

Idem com a altura, normalmente inferior 

a 5 cm, mas até 15–20 cm sendo encontrado 

com frequencia. Lobos grandes 

e irregulares, com 2–3 x 2–4 cm. A cor em 

vida é tipicamente o marrom, porém em 

diversas tonalidades, do beje ao marromescuro, 

e por vezes puxando para o acinzentado. 

Sua superfície é reticulada, conulosa, 

com cônulos baixos, normalmente 

de até 1 mm de altura, e frequentemente 

mais claros que seu entorno. Ósculos com 

1–5 mm de diâmetro, frequentemente 

agrupados em pequenas projeções em 

forma de vulcão, de topo mais escuro que 

seu entorno. Consistência firme, compressível, 

elástica e muito resistente ao 

corte. Arquitetura ectossomal reticulada 

no entorno das aberturas inalantes, algo 

radiada a partir dos cônulos, e com presença 

de sedimento incluido. Coanossoma 

com abundância de filamentos sinuosos 

de espongina (diâmetro 4–6 μm), 

consideravelmente entrelaçados, e com 


profundidade, 07/Mai/2008. FOTOGRAFIA POR G. 

LÔBO HAJDU. 


Ircinia felix (Duchassaing & Michelotti, 1864) 

uma das extremidades terminando em 

uma esfera quase perfeita (diâmetro 10 

μm). Estes filamentos conferem a grande 

resistência ao corte desta espécie. Em menor 

proporção observam-se fibras de espongina 

formando uma reticulação, onde 

as primárias, ascendentes, fusionam-se 

em agregados denominados fascículos. 

Estes podem ultrapassar 500 μm de espessura, 

carregam sedimento incluído e 

sustentam os cônulos da superfície. Espículas 

próprias ausentes. 

Ecologia 

Espécie comum no infralitoral raso de 

Salvador, especialmente junto à abertura 

da Baía de Todos os Santos. Sua superfície 

está mais frequentemente livre de epibiontes, 

porém pequenos ofiuros cor de 

laranja podem ser vistos com facilidade. 






Farol da Barra (Salvador), 2-3 m de 

profundidade, 1987. 



Holandesas). Brasil [CE, RN, Atol das 

Rocas, Fernando de Noronha, BA (Salvador, 

Maraú), Ilha da Trindade]. 

Arquitetura esquelética em seções transversais – vista panorâmica (A), 

fascículo formado pela fusão de fibras (B) e filamentos de espongina (C). 


209

59. Ircinia strobilina (Lamarck, 1816) 

Morfologia 

Hábito maciço, em forma de vulcão, 

frequentemente alcançando grandes dimensões 

(até 40x65x30 cm, altura x largura 

x espessura). Projeções colunares 

podem estar presentes, frequentemente 

representando 20–50% da altura total 

de um espécime. Sua cor em vida é tipicamente 

negra, porém espécimes cinza, 

de tonalidade diversa, também foram 

observados. A cor externa frequentemente 

está mascarada por epibiontes, 

tais como algas filamentosas. Em álcool 

mantêm-se acinzentados. Sua superfície 

é conulosa, com cônulos de até 2–3 mm 

de altura, mais afastados entre si, e mais 

obtusos que os de Ircinia felix (descrita 

acima). Ósculos com 1–5 mm de diâmetro, 

frequentemente agrupados em 

áreas de contorno irregular, no topo das 

projeções, ou alinhados em cristas. Consistência 

firme, compressível, elástica e 

muito resistente ao corte. Arquitetura ectossomal 

com significativa presença de 

sedimento. Coanossoma cavernoso, com 

amplos canais aquíferos. Filamentos sinuosos 

de espongina (diâmetro 4–6 μm) 

também são abundantes nesta espécie, 

dispõem-se consideravelmente entrelaçados 

e apresentam uma das extremidades 

com uma cabeça de contorno irregular 

(diâmetro 10 μm). Aqui também 

são os filamentos que conferem grande 

resistência ao corte. Fibras de espongina 

são abundantes, formando uma reticulação, 

onde as primárias, ascendentes, fusionam-se 

em agregados denominados 

fascículos. Estes podem ultrapassar 500 

μm de espessura, carregam sedimento 

incluído e sustentam os cônulos da superfície. 

Espículas próprias ausentes. 

Ecologia 

Espécie comum no infralitoral raso de 

Salvador (até os 15–20 m de profundidade), 

especialmente junto à abertura da 

Baía de Todos os Santos. Sua superfície 

está mais frequentemente livre de epibiontes, 

porém ocorre entremeada a diversos 

outros organismos bentônicos. 

Bióloga, mergulhadora, 

ao lado de espécime 

de Ircinia strobilina em 

vida (bóia de sinalização 

naval próxima ao 

Farol da Barra, 16 m 

de profundidade, 03/ 

Jun/2009). 


Ircinia strobilina (Lamarck, 1816) 




Bahamas, Cuba, Ilhas Cayman, Jamaica, 

República Dominicana, Porto Rico, 

Ilhas Virgens, Guadalupe, México, Belize, 

Costa Rica, Panamá, Colômbia, Venezuela, 

Antilhas Holandesas, Guianas). 

Brasil [AP, CE, RN, Atol das Rocas, PB, 

Fernando de Noronha, PE, AL, BA (Salvador, 

Abrolhos), ES, Ilha da Trindade]. 


profundidade, 02/Dez/2010. Esponja com 35 cm 

de largura, quase integralmente recoberta por 

algas. 


transversais. A, vista panorâmica; B, 

fascículos e filamentos; C, fibras primárias e 

secundárias; D, fascículos e fibras primárias. 


profundidade, 07/Mai/2008. FOTOGRAFIA POR G. 

LÔBO HAJDU. 


211


Ordem Dendroceratida Minchin, 1900 

Chelonaplysilla cf. erecta (Row, 1911) - Quebramar Norte (Salvador), 

aproximadamente 6 m de profundidade, 11/Dez/2007. 



Família Darwinellidae Merejkowsky, 1879 

Gênero Aplysilla Schulze, 1878 

O gênero compreende nove espécies no mundo, das quais 

apenas uma está registrada para o Brasil. Porém, a coleção do 

Museu Nacional possui alguns novos registros, os quais ainda 

carecem de identificação completa e/ou descrição detalhada. 

Dentre estes, os mais comuns são espécimes que eram amarelos 

em vida, portanto aproximando-se de A. sulfurea Schulze, 1878, 

um provável complexo de espécies já registrado em diversas 

partes do mundo. 

60. Aplysilla aff. rosea (Barrois, 1876) 

Morfologia 

Forma incrustante à maciça delgada, 

com ou sem projeções lobadas irregulares, 

com até 10–15 cm de diâmetro máximo 

e altura de 0,5–2 cm. Cor em vida 

rosa vivo, tornando-se beje no álcool. 

Superfície com reticulação visível a olho 

nu, frequentemente também com cônulos 

conspícuos. Estes são agudos, por 

vezes perfurados pelas fibras de espongina 

que os sustentam, e possuem 0,5–5 

mm de altura. Alguns cônulos podem 

ser bífidos ou trífidos. Ósculos circulares, 

dispersos, frequentemente providos de 

uma chaminé membranosa, com 1–5 mm 

Naufrágio Cavo Artemidi (Salvador), 18,7 m 



213

Aplysilla aff. rosea (Barrois, 1876) 

de diâmetro. Consistência extremamente 

macia e fácil de rasgar. Arquitetura 

ectossomal consistindo de uma reticulação 

delicada, com fibras primárias 

radiais a partir dos cônulos, interconectadas 

por secundárias transversais, que 

também se conectam entre si. As malhas 

assim formadas têm dimensões bastante 

homogênias, porém forma irregular. Co- 

anossoma com feixes dendríticos de espongina 

(de tom ocre translúcido), pouco 

ramificados, esparsos, ascendentes, 

com cerca 280 μm na base, 100–220 μm 

em sua porção central, e afilando ainda 

mais rumo a seus ápices. 

Porto da Barra (Salvador), aproximadamente 


Quebramar Sul (Salvador), 7,2 m de profundidade, 14/Dez/2007. 




215




Comentários 

Espécie impossível de diferenciar da 

espécie caribenha Darwinella rosacea Hechtel, 

1965 sem exame ao microscópio 

para verificar a presença de espiculóides 

de espongina. Como a última espécie já 

foi reconhecida do litoral do Estado de 

São Paulo, é provável que também ocorra 

no litoral da Bahia. O material examinado 

em detalhe aqui não possui espiculóides 

e, portanto, pertence ao gênero 

Aplysilla. Porém, é muito pouco provável 

que o material do Brasil seja coespecífico 

à A. rosea, que apesar de tida como cosmopolita, 

foi originalmente descrita do 

Mar do Norte. 

Ecologia 

Esponja comum dentro e fora da Baía de 

Todos os Santos, até os 20 m de profundidade, 

exposta à iluminação moderada, 

podendo ser encontrada próxima das 

áreas urbanas de Salvador. 


Brasil [BA (Salvador), RJ, SP]. A coespecíficidade 

de populações isoladas em 

diferentes mares e oceanos precisa ser 

comprovada. 

Arquitetura esquelética com fibras isoladas após tratamento com hipoclorito de sódio 

diluído. No detalhe a laminação de uma fibra. 

Ponta do Humaitá (Salvador), 2–3 m de profundidade, 03/Dez/2006. 


217

Gênero Chelonaplysilla de Laubenfels, 1948 

O gênero possui 12 espécies no mundo, e até o presente apenas 

uma, de identificação incerta, está citada para o Brasil. A espécie 

C. violacea é um item predileto na dieta de diversos nudibrânquios 

no Indo-Pacífico. 

61. Chelonaplysilla cf. erecta (Row, 1911) 

Morfologia 

Forma incrustante à maciça, com cristas 

abauladas e/ou pequenas projeções lobadas, 

ou até tendendo a arbustiva. São 

frequentes também cavidades caliciformes 

na superfície. Espécimes normalmente 

com 5–10 cm de diâmetro e altura 

inferior a 1 cm, alcançando 3 cm apenas 

quando o hábito é arbustivo. Cor em 

vida roxo-escura, que se mantém praticamente 

inalterado no álcool. Superfície 

com microrreticulação visível a olho nu e 

abundantes cônulos (1–3 mm de altura), 

sobre os quais se pendura uma membrana 

dermal. Ósculos circulares dispersos, 

especialmente nas regiões apicais, com 

Quebramar Sul (Salvador), 7,8 m de 

profundidade, 14/Dez/2007. A esponja rosada 

é uma Desmapsamma anchorata e a verdeazulada, 

uma Haliclona manglaris. 


Chelonaplysilla cf. erecta (Row, 1911) 

1–4 mm de diâmetro e circundados por 

chaminés membranosas translúcidas de 

tom violeta. Consistência extremamente 

macia e fácil de rasgar. Arquitetura ectossomal 

composta de uma reticulação de 

feixes de espongina com sedimento incluído, 

cuja tonalidade mais clara facilita 

sua visualização a olho nu. As malhas 

formadas têm 200–500 μm de diâmetro. 

Coanossoma com feixes dendríticos de 

espongina (de tom violeta), pouco ramificados, 

esparsos, ascendentes, com cerca 

80–100 μm em sua porção central. 

Comentários 

É muito pouco provável que as populações 

do Atlântico Tropical Ocidental sejam 

coespecíficas com as dos Mares Mediterrâneo 

e Vermelho, como sugerido 

por diversos autores. Por isso, o uso do 

“cf.” aqui. Esta espécie necessita de revisão, 

possivelmente incluindo também 

C. violacea (Lendenfeld, 1883) (da Austrália), 

que in situ se assemelha marcantemente 

ao material do Atlântico. Um dos 

aspectos a resolver é se C. erecta (Row, 

1911), do Mar Vermelho, é coespecífica 

com sua homônima do Mediterrâneo 

Oriental (C. erecta Tsurnamal, 1967). 

Ecologia 

Esta espécie já foi mais comum em Salvador 

(Baía de Todos os Santos), mas 

atualmente é relativamente rara. Ocorre 

em substrato duro, exposta à luz direta 

(mais frequentemente) ou indireta. Um 

dos espécimes fotografados em vida possuía 

número considerável de poliquetos 

tubícolas associados, com seus tubos 

perfurando a superfície da esponja. Já 

se observou predação do nudibrânquio 

Chromodoris binza Marcus & Marcus, 

1963 sobre Chelonaplysilla aff. erecta (V. 

Padula, com. pess.). 


Brasil [CE, BA (Salvador), RJ, SP]. A espécie 

C. erecta foi originalmente descrita 

do Mar Vermelho, e já foi registrada também 

do Mediterrâneo e Caribe. 


tangencial. 

Arquitetura esquelética com 

fibras isoladas após tratamento com 

hipoclorito de sódio diluído. 


219


Ordem Verongida Bergquist, 1978 

Aplysina sp. Naufrágios próximos ao Farol da Barra (Salvador), 

aproximadamente 6 m de profundidade, 10/Dez/2007. 

NOTA Espécies pertencentes a esta Ordem frequentemente tingem seu 

fixador com uma tonalidade escura, quase negra, muito intensa. A 

consequência mais direta disto é o semelhante tingimento de outras 

esponjas que se encontrem no mesmo recipiente, e mesmo da etiqueta, 

que por vezes pode se tornar ilegível com o passar do tempo. Já tivemos 

sucesso em recuperar a legibilidade de etiquetas colocando-as em um 

recipiente com hipoclorito de sódio diluído à 5-10%. É necessário portanto 

cuidado na interpretação da coloração após a fixação de espécimes 

provenientes de grandes expedições, que podem ter sido fixados a bordo 

em conjunto com espécimes desta Ordem. 



Família Aplysinidae Carter, 1875 

Gênero Aiolochroia Wiedenmayer, 1977 

O gênero compreende apenas três espécies no mundo, uma das 

quais ocorre no Brasil. 

62. Aiolochroia crassa (Hyatt, 1875) 

Morfologia 

Forma maciça lobada, globular ou com 

projeções tubulares um pouco cônicas, alcançando 

15–20 cm de diâmetro máximo 

e até 8–10 cm de altura. Sua cor em vida 

é mais comumente amarelo vivo, mas 

tons esverdeados e amarronzados (ocre) 

também ocorrem. No fixador, torna-se 

roxo-escura, idem para o álcool. Superfície 

conulosa ou monticulada/verrucosa. 

Nem cônulos, nem montículos costumam 

ter mais que 1 mm de altura. Alguns segmentos 

da superfície são totalmente lisos, 

em especial nas áreas que concentram 

ósculos. Estes são majoritariamente circulares, 

com 1–5 mm de diâmetro, providos 

de membrana perioscular plana, e 

costumam estar situados nas porções apicais 

da esponja. Em segmentos diversos, 

sejam entremeados aos ósculos, ou não, 

notam-se áreas porais, cujo padrão reticulado 

é visível a olho nu. A consistência 

é firme, compressível, pouco elástica. A 

arquitetura ectossomal é desprovida de 

qualquer especialização. O coanossoma 

apresenta fibras robustas e nodosas de 

espongina, de córtex fino, amarelado; 

medula espessa, geralmente negra, sem 

inclusões. Estas fibras apresentam padrão 

dendrítico de organização, e não formam 

um arcabouço muito denso. Seu diâmetro 

frequentemente ultrapassa os 500 μm, 

50–90% dos quais se referem à medula. 

Porto da Barra (Salvador), 6–8 m de 



221

Aiolochroia crassa (Hyatt, 1875) 

Comentários 

Esta espécie produz uma série de compostos 

brominados, dentre os quais a fistularina-3 

isolada de espécimes de Belize 

mostrou-se seletivamente tóxica contra o 

bacilo da tuberculose. 

Ecologia 

Espécie relativamente comum em águas 

rasas da Baía de Todos os Santos, assim 

como na plataforma continental do estado, 

de onde é conhecida até os 100 m de 

profundidade, através de coletas efetuadas 

pelo Programa REVIZEE. É comum 

observar epibiontes, principalmente algas, 

outras esponjas e tunicados. A espécie 

pode ser encontrada próxima das 

áreas urbanas de Salvador. 

Quebramar Norte (Salvador), 9,2 m 







Antigua, México, Belize, Honduras, 

Costa Rica, Panamá, Colômbia, Venezuela, 

Antilhas Holandesas). Brasil [Foz do 

Amazonas, Arquipélago de São Pedro 

e São Paulo, CE, RN, Atol das Rocas, 

Fernando de Noronha, PB, PE, BA (Salvador, 

ao largo de Cairu, Itacaré, Prado, 

ao largo de Caravelas, Banco Hotspur, 

Banco Minerva, Banco Rodgers), ES, Ilha 

da Trindade, RJ]. 

Porto da Barra (Salvador), 2–3 m de 

profundidade, 05/Dez/2010. A esponja 

vermelha, acima da Aiolochroia (marrom), é 

uma Tedania ignis (Duchassaing & Michelotti, 

1864). 

Arquitetura esquelética com fibra isolada 

após tratamento com hipoclorito de sódio 

diluído. 


223

Gênero Aplysina Nardo, 1834 

O gênero compreende 37 espécies no mundo, das quais 15 ocorrem 

no Brasil. São apresentadas cinco espécies a seguir, mas outras sete 

espécies já foram encontradas na Bahia: A. alcicornis Pinheiro, Hajdu 

& Custódio, 2007, A. cristagallus P., H. & C., 2007, A. lactuca P., H. & 

C., 2007, A. lacunosa (Lamarck, 1814), A. lingua P., H. & C., 2007, A. 

orthoreticulata P., H. & C., 2007 e A. pseudolacunosa P., H. & C., 2007. 

Coletas recentes efetuadas na Baía de Todos os Santos já revelaram ao 

menos uma nova espécie, ainda por descrever. Aplysina é o primeiro 

gênero de Porifera a contradizer a noção corrente de que a fauna 

marinha brasileira é uma versão empobrecida daquela da região 

do Caribe. Até recentemente, as espécies A. fistularis, A. fulva e A. 

insularis eram consideradas meras formas de uma única espécie, A. 

fistularis. O uso de marcadores moleculares ainda não conseguiu 

clarificar essa questão, mas é a esperança quando se associam poucos 

caracteres morfológicos disponíveis e grande variabilidade dos 

mesmos, como ocorre neste gênero. 

63. Aplysina cauliformis (Carter, 1882) 

Morfologia 

Forma ramosa, com ramos cilíndricos, 

delgados e de diâmetro regular. Os ramos 

ocorrem solitários ou em pequenos 

grupos, ramificando-se ou não. O 

comprimento máximo observado foi de 

50–60 cm, com diâmetro de 1,5–2,5 cm. 

A cor em vida desta esponja é mais frequentemente 

marrom, mas também se 

observaram espécimes ocre e amarelo– 

pálidos. Estes últimos, em locais abrigados 

de iluminação direta. Em álcool assume 

coloração marrom–arroxeada. Sua 

superfície é mais frequentemente lisa, 

com ósculos (diâmetro 1–3 mm) preponderantemente 

alinhados e quase equidistantes 

(a cada 2–3 cm). Consistência 

firme, pouco compressível, algo elástica. 

Arquitetura ectossomal não especiali- 

zada. Coanossoma com reticulação de 

fibras de espongina, formando malhas 

tridimensionais irregulares. Fibras com 

córtex e medula facilmente reconhecíveis, 

o primeiro de coloração âmbar e a 

última mais frequentemente negra. Diâmetro 

das fibras de cerca 20–200 μm, das 

medulas de cerca 10–120 μm, sendo as 

maiores seções observadas nas porções 

mais internas das esponjas. 

Comentários 

Esta espécie produz a fistularina-3 e a 

11-deoxi-fistularina-3, substâncias com 

potencial para guiar o desenvolvimento 

de novos agentes para o combate ao bacilo 

da tuberculose. O material utilizado 

nestas pesquisas foi coletado na Baía de 

Todos os Santos. 


Aplysina cauliformis (Carter, 1882) 

Espécimen em vida (Quebramar Norte, Salvador, 5,3 m de 

profundidade, 11/Dez/2007). 


225

Aplysina cauliformis (Carter, 1882) 

Espécimen em vida (Quebramar Norte, Salvador, 5,3 m de profundidade, 11/Dez/2007). 

Ecologia 

Exemplares ou fragmentos de A. cauliformis 

são comuns ao longo das praias da 

zona costeira de Salvador, notadamente 

em Itapuã, Stella Maris e adjacências. Na 

Baía de Todos os Santos é relativamente 

rara. A espécie já foi registrada em 3–15 

m de profundidade na Bahia. Em outros 

estados é conhecida de até 100 m de profundidade, 

tendo estes registros mais 

profundos sido obtidos pelo Programa 

REVIZEE em bancos submarinos da região 

sudeste. 

Arquitetura esquelética com fibras isoladas 


diluído. 




Jamaica, Porto Rico, Ilhas Virgens, Antigua, 

Barbuda, Belize, Panamá, Colômbia, 

Antilhas Holandesas). Brasil [Foz do 

Amazonas, CE, RN, PE, BA (Salvador, ao 

largo de Belmonte, Porto Seguro, Prado, 

Caravelas, Abrolhos), ES, RJ]. 


64. Aplysina fistularis (Pallas, 1766) 

Morfologia 

Forma tubular, cilíndrica, com tubos 

solitários ou em grupos pequenos (2–4 

tubos), eretos, por vezes com considerável 

anastomose. Seu comprimento 

pode ultrapassar 1 m, porém o mais frequente 

em águas rasas é que não passe 

de 30 cm. O diâmetro dos tubos é proporcional 

ao seu comprimento, podendo 

alcançar 9 cm ou mais nos maiores espécimes, 

porém frequentemente não ultrapassando 

5 cm. A cor em vida é usualmente 

amarelo-viva, às vezes marrom, e 

no álcool, quase sempre roxo–escura ou 

preta. A superfície da esponja pode ser 

notadamente lisa ou conulosa, e também 

se observou tubos com projeções laterais 

diversas, as mais comuns consistindo de 

pequenos cilindros, cristas ou lobos de 

contorno irregular. As aberturas exalantes 

consistem de pseudo-ósculos apicais 

com 1–8 cm de diâmetro, circundados 

por membranas periosculares planas, do 

tipo diafragma, e por vezes também por 

uma palissada contínua ou descontínua 

de pequenas projeções fistulares. Raramente 

se observaram pequenos ósculos 

laterais. A consistência é firme, porém 

facilmente compressível e elástica. Arquitetura 

ectossomal não especializada. 

Quebramar Sul (Salvador), 7,6 m de 

profundidade, 14/Dez/2007 


227

Aplysina fistularis (Pallas, 1766) 


Aplysina fistularis (Pallas, 1766) 

Coanossoma com reticulação de fibras 

de espongina, formando malhas tridimensionais 

irregulares. Fibras com córtex 

e medula facilmente reconhecíveis, o 

primeiro de coloração âmbar e a última 

mais frequentemente negra. Diâmetro 

das fibras 30–280 μm, das medulas 10–60 

μm, sendo as maiores seções observadas 

nas porções mais internas das esponjas. 

Comentários 

Esta espécie produz a fistularina-3 e a 

11-cetofistularina-3, substâncias com potencial 

para guiar o desenvolvimento de 

novos agentes para o combate ao bacilo 

da tuberculose. O material utilizado nestas 

pesquisas foi coletado na Baía de Todos 

os Santos. 

Ecologia 

Esta espécie é relativamente rara em boa 

parte da Baía de Todos os Santos, preferindo 

locais de baixo hidrodinamismo e 

águas relativamente claras. Também foi 

encontrada em 3–15 m de profundidade 

na Bahia e em 20 m no Ceará. Alguns dos 

epibiontes observados mais frequentemente 

foram outras esponjas, especialmente 

Desmapsamma anchorata (descrita 

acima). Aplysina fistularis pode ser encontrada 


Salvador. 




Cuba, Ilhas Cayman, Jamaica, 

República Dominicana, Porto Rico, 

Ilhas Virgens, Guadalupe, México, 

Belize, Costa Rica, Panamá, Venezuela, 

Antilhas Holandesas). Brasil [Foz 

do Amazonas, CE, RN, Fernando de 

Noronha, PE, BA (Salvador, Prado, 

Abrolhos)]. 



diluído. 

Boião de sinalização naval entre Salvador e Ilha dos Frades (Bahia 

de Todos os Santos), 21/Jun/2004. 


229

65. Aplysina fulva (Pallas, 1766) 

Morfologia 

Forma extremamente variada. A maior 

frequência é de indivíduos compostos 

por grupos de ramos cilíndricos de contorno 

irregular, onde ramificações são relativamente 

raras, e anastomoses relativamente 

comuns. Os ramos cilíndricos são 

preponderantemente eretos, mas formas 

reptantes também são vistas, especialmente 

em ambientes de maior hidrodinamismo. 

A seção dos ramos pode ser quase 

circular ou marcadamente lamelar. O 

comprimento destes ramos pode chegar 

a 2 m, mas o mais comum é que não passem 

dos 20–30 cm. O diâmetro dos ramos 

situa-se geralmente entre 2 e 3 cm. A cor 

em vida inclui diversas tonalidades de 

amarelo, ocre e marrom. No álcool mais 

frequentemente torna-se negra, roxa ou 

marrom-escura, mas algumas exceções ficaram 

rosadas. Superfície lisa ou conulosa, 

por vezes discretamente monticulada ou 

rugosa. Ósculos com 0,5–2 mm de diâmetro, 

distribuídos aleatoriamente, e apenas 

rararamente localizados na porção apical 

dos ramos. Ósculos apicais ocorrem principalmente 

em formas reptantes, quando 

podem ainda estar alinhados como em 

A. cauliformis. Consistência variando de 

macia à dura. Arquitetura ectossomal não 

especializada. Coanossoma com reticulação 

de fibras de espongina, formando 

malhas tridimensionais irregulares. Fibras 

com córtex e medula facilmente reco- 

nhecíveis, o primeiro de coloração âmbar 

e a última mais frequentemente negra. 

Diâmetro das fibras de cerca 30–210 μm, 

das medulas de cerca 10–60 μm, sendo as 



Comentários 

Essa espécie é a de morfologia mais variável 

dentre as Aplysina brasileiras. Em 

parte, isso decorre por ser também possivelmente 

a mais abundante, ou pelo 

menos a mais acessível, o que se traduz 

em maior número de observações. Entretanto, 

uma suposta grande variabilidade 

morfológica sugere a necessidade de confirmação 

destas identificações por outros 

meios. Um estudo químico recente verificou 

a distribuição de 19 compostos em espécimes 

de A. fulva da Georgia (E.U.A.), 

além de Salvador e Nazaré, na Bahia, e 

Arraial do Cabo, Angra dos Reis e São 



diluído. 


Aplysina fulva (Pallas, 1766) 

Porto da Barra 

(Salvador), 6,5 m de 


Dez/2007. 

Sebastião, na Região Sudeste. A variabilidade 

química observada foi notável, com 

um composto presente em três amostras, 

três compostos presentes em duas amostras, 

e os demais 15 compostos presentes 

cada qual em uma única amostra. Por 

outro lado, um estudo citológico não observou 

diferenças ao nível celular em distintas 

populações do sudeste. 

Ecologia 

Na Bahia a espécie foi observada em profundidades 

de 1–40 m, e no restante do 

país até os 78 m. A espécie é conhecida de 

ampla gama de ambientes no que tange 

ao hidrodinamismo e às taxas de sedimentação, 

está associada à grande número 

de endo-, bem como ectosimbiontes, e 

ainda integra a dieta alimentar de vários 

organismos entre equinodermos, peixes e 

tartarugas. Aplysina fulva pode ser encontrada 


Um estudo recente observou que 

as comunidades bacterianas associadas à 

A. fulva em Búzios (RJ) são ricas, além de 

distintas daquelas presentes na água do 

mar próxima das esponjas, bem como daquelas 

registradas para outras espécies de 

esponjas, conforme estudos publicados 

para outras partes do mundo. 



Caribe (Flórida, Bahamas, Cuba, Ilhas 

Cayman, Jamaica, República Dominicana, 

Porto Rico, Ilhas Virgens, St. Martin, 



Holandesas). Brasil [AP, Arquipélago de 

São Pedro e São Paulo, CE, RN, Fernando 

de Noronha, PE, AL, BA (Salvador, 

Itaparica, Cairu, Maraú, Itacaré, Prado, 

Caravelas, Abrolhos, Nova Viçosa), ES, 

RJ, SP]. 


231

Aplysina fulva (Pallas, 1766) 

Farol da Barra (Salvador), 2 m de profundidade, 02/Dez/2006. 


66. Aplysina insularis (Duchassaing & Michelotti, 1864) 

Morfologia 

Forma tubular, com tubos baixos, frequentemente 

anastomosados em amplas 

áreas de contato, até o ponto de não se 

reconhecer mais cada unidade em separado. 

Tubos geralmente com altura 

inferior a 10 cm, e diâmetro de até 5 cm 

de diâmetro, ou mais, no caso de tubos 

integralmente fusionados. Os tubos têm 

geralmente contorno irregular, frequentemente 

expandindo-se apicalmente, e por 

vezes possuem pequenos lobos periféricos. 

A cor em vida é amarela ou ocre, 

tornando-se negra no álcool. A superfície 

da esponja é lisa ou rugosa. Ósculos 

são apicais, geralmente com 2–10 mm de 

diâmetro. Consistência bastante macia. 

Arquitetura ectossomal não especializada. 

Coanossoma com reticulação de 

fibras de espongina, formando malhas 



o primeiro de coloração âmbar e a 

última mais frequentemente negra. Diâmetro 

das fibras de cerca 30–120 μm, das 

medulas de cerca 10–40 μm, sendo as 



Comentários 

Alguns espécimes mais esféricos apresentavam 

ósculos com até 2–3 cm de 

diâmetro, mas sua coespecificidade com 

o presente material é incerta. Frequente- 

Iate Clube (Salvador), 3–4 m de profundidade, 

04/Dez/2006 – a esponja amarelo-clara, ao fundo, 

é uma Aplysina fulva. 


233



Aplysina insularis (Duchassaing & Michelotti, 1864) 

Farol da Barra (Salvador), 6 m de profundidade, 10/Dez/2007; 

mente a cavidade interna destas esponjas 

estava repleta de areia. 

Ecologia 

Espécimes provenientes de 3–12 m de 

profundidade. Pode ser encontrada próxima 





Cuba, Jamaica, Porto Rico, Ilhas 

Virgens, México, Belize, Costa Rica, Panamá, 

Colômbia, Venezuela). Brasil (BA – 

Salvador, Abrolhos). 



diluído. 



235

67. Aplysina solangeae Pinheiro, Hajdu & Custódio, 2007 

Morfologia 

Forma maciça de contorno variável, decorrente 

da anastomose de lamelas e projeções 

digitiformes em distintos graus. É 

comum o afilamento rumo às porções apicais, 

bem como a presença de uma franja 

de pequenas projeções fistulares (altura 2 

mm) no bordo apical de cada lamela ou 

dígito. Estas pequenas fístulas tendem a 

se desprender do espécime após o manuseio 

e fixação. Suas dimensões raramente 

ultrapassam os 10 cm de altura, e esta, 

normalmente não ultrapassa muito a 

maior largura da esponja. Em vida estas 

esponjas têm coloração entre o amarelo e 

o ocre, por vezes com nuances roxas, tornando-se 

marrom-escuras após a fixação 

com álcool. Superfície lisa a levemente 

rugosa, passando a conulosa no fixador. 

Ósculos com 1–2mm de diâmetro, espalhados 

por toda a esponja. Sua consistência 

é macia e compressível, e um pouco 

elástica. Arquitetura ectossomal não especializada. 

Coanossoma com reticulação 

de fibras de espongina, formando malhas 



o primeiro de coloração âmbar, e a última 

mais frequentemente negra. Diâmetro 

das fibras de cerca 30–140 μm, das medulas 

de cerca 5–75 μm, sendo as maiores 

seções observadas nas porções mais internas 

das esponjas. 

Comentários 

Alguns espécimes com forma lamelar 

mais delgada situavam-se em posição 

intermediária ao conceito corrente de 

Aplysina solangeae e o de A. lactuca. Em 

se tratando de esponjas desprovidas de 

esqueleto mineral, e portando arquitetura 

esquelética muito variável, resta a 

morfologia externa para ensaiar o reconhecimento 

de espécies. Porém, parâmetros 

ambientais, especialmente no que 

concerne ao hidrodinamismo e às taxas 

de sedimentação, oscilam de forma drástica 

próximo à costa, podendo acarretar 

Arquitetura esquelética com 

fibras isoladas após tratamento com 

hipoclorito de sódio diluído. 






237

Aplysina solangeae Pinheiro, Hajdu & Custódio, 2007 

Ponta de Humaitá (Salvador), 3 m de 





Aplysina solangeae Pinheiro, Hajdu & Custódio, 2007 

adaptações morfológicas que venham a 

dificultar o reconhecimento de espécies 

próximas. Portanto, por um lado o conhecimento 

morfológico destas espécies 

precisa avançar através da observação de 

populações em distintas profundidades, 

e por outro, novos caracteres, tais como 

os moleculares, devem ser utilizados na 

busca por congruência e maior confiabilidade 

nas diagnoses propostas. 

Ecologia 

A espécie só foi observada em águas rasas, 

até 5 m de profundidade, ocorrendo 


Epibiontes são relativamente comuns, 

sendo que algas filamentosas podem 

recobri-la quase que por completo. As 

fístulas presentes em seu ápice devem 

estar associadas à reprodução assexuada 

por brotamento, uma vez que tendem a 

formar pequenas bolinhas, semelhantes 

às observadas em Tethya spp. (descritas 

acima). 


Endêmica do Brasil [CE, BA (Salvador)]. 




04/Dez/2006. 


239


Classe Calcarea Bowerbank, 1864 

Ordem Leucosolenida Minchin, 1900 

Grantessa sp. (esponja branca) e Leucascus roseus Lanna, Rossi, 

Cavalcanti, Hajdu & Klautau, 2007. Parque Nacional Marinho dos Abrolhos 

(Caravelas), 4-5 m de profundidade, Fev/1987. O Leucascus não foi 

apresentado neste guia. Trata-se de uma Clathrinida não reencontrada 

desde a tomada desta imagem. 


241


Família Amphoriscidae Dendy, 1892 

Gênero Leucilla Haeckel, 1872 

O gênero compreende 10 espécies no mundo, das quais duas estão 

registradas para o Brasil. O primeiro registro de Leucilla para a 

Bahia foi da espécie L. australiensis (Carter, 1886), originária da 

Austrália e subsequentemente considerada uma espécie cosmopolita. 

Há dúvidas, entretanto, quanto à identificação dos espécimes da 

Bahia, em decorrência de dois aspectos principais: 1) distribuições 

cosmopolitas de espécies de poríferos, inclusive em Calcarea, são 

altamente improváveis; e 2) mencionou-se importante variabilidade 

no material brasileiro estudado (das latitudes 1–24°S), mas essa não 

foi caracterizada em detalhe. A descrição a seguir ilustra um espécime 

com paliçada bem desenvolvida, porém a anatomia é derivada de 

outro espécime, possuidor de uma paliçada mais rudimentar. Estudos 

em andamento encontraram significativa diversidade de espécies 

de Leucilla na Bahia, a maioria provavelmente espécies novas (M. 

Klautau, com. pess.), sugerindo também que a descrição a seguir 

derive na verdade de duas espécies distintas. 

68. Leucilla spp. 

Morfologia 

Forma ovóide ou de barril, com até 5 x 

3 mm. A cor no álcool é branca ou bege 

e supõe-se que não difira muito da cor 

em vida. Superfície áspera, com um único 

ósculo apical de contorno irregular e 

inteira ou parcialmente circundado por 

uma coroa oscular de diactinas grandes 

(tricóxeas). Consistência relativamente 

firme. Sistema aquífero de padrão leuconoide. 

Córtex formado por grandes 

tetractinas com actinas basais dispostas 

tangencialmente à superfície, e actina 

apical apontando para o centro da esponja. 

Estas actinas corticais internalizadas 

integram também o esqueleto coanossomal 

inarticulado junto às actinas 

ímpares das tetractinas subatriais, e de 

algumas triactinas. O esqueleto atrial é 

composto somente de tetractinas. Espículas: 

tricóxeas, ultrapassam 1000 μm; 

tetractinas corticais, actinas basais 400 / 

30 μm, actina apical, 550 / 50 μm; tetractinas 

subatriais, actinas basais 370 / 35 

μm, actina apical, 490 / 30 μm; triactinas 

subatriais, actinas pares 250 / 20, actinas 

ímpares 350 / 15 μm. 

Ecologia 

Encontrada no sedimento de áreas adjacentes 

à Baía de Todos os Santos, sobre 

pequenas rochas soltas ou em cascalhos 

biogênicos. No litoral norte da Bahia 

(município de Camaçari) a espécie foi 

coletada a cerca de 20 m de profundidade, 

em placas de alumínio e em substrato 

biogênico, apresentando hábito 

tanto fotófilo quanto ciáfilo. 



Espécime fixado, fotografado 

sobre a bancada do laboratório 

(UFBA). Altura: 25 mm. 


Material estudado aqui: Brasil (BA – Camaçari). 

O gênero distribui-se amplamente 

nos três principais oceanos. 


transversal. A coloração vermelho-escura 

deve-se ao uso de fucsina ácida com o 

objetivo de realçar o componente celular. 

FOTOMICROGRAFIA POR M. KLAUTAU. 

A, tetractina subatrial; B, tetractina 

cortical; C, triactina subatrial. 


243

Família Heteropiidae Dendy, 1893 

Gênero Grantessa Lendenfeld,1885 

O gênero compreende cerca de 25 espécies no mundo, das quais 

apenas uma foi registrada para o Brasil até o presente, G. anisactina 

Borojevic & Peixinho, 1976, obtida na Paraíba. Esta espécie difere 

do material apresentado aqui por uma série de caracteres, dentre os 

quais os mais notáveis são a presença de triactinas que superam os 

1000 μm de comprimento, enquanto aquelas observadas no material 

da Bahia sequer alcançam os 500 μm, assim como a completa 

ausência de tetractinas em G. anisactina. Praticamente todas as 

demais espécies de Grantessa são originais do Indo-Pacífico, o que 

sugere que a espécie baiana seja nova. 

69. Grantessa sp. 

Morfologia 

Forma tubular agregada, com tubos de 

dimensões variadas, conectados em seu 

terço inferior, e portando uma base irregular. 

Os agregados podem compreender 

mais de 40 tubos, com altura de 

3–20 mm, diâmetro de 1,5–4,5 mm e espessura 

da parede de aproximadamente 

0,5 mm. Alguns tubos foram vistos 

ramificando-se. Cor in vivo branca ou 

levemente amarelada, mantendo-se inalterada 

em álcool. O perímetro oscular 

costuma ser ainda mais branco. Superfície 

externa levemente áspera devido 

às microdiactinas implantadas verticalmente 

e distribuídas de forma esparça 

ou agrupada. Ósculos apicais, um 

para cada tubo, circundados por uma 

coroa baixa (altura 0,5 mm) composta 

de microdiactinas. Sistema aquífero 

em padrão siconóide sem que os cones 

distais sejam visíveis na superfície externa. 

Consistência macia, quebradiça. 

Arquitetura esquelética complexa, com 

padrão radial de organização em seção 

transversal. Coroa oscular composta por 

microdiactinas mais espessas e triactinas 

sagitais. Porção mediana de um tubo 

em seção transversal – cinco regiões de 

fora para dentro. (1) O esqueleto cortical 

apresenta diactinas mais delgadas e 

dispostas perpendicularmente, entremeadas 

a triactinas em sagitais organizadas 

em 3–4 camadas. O esqueleto cortical se 

sustenta sobre (2) triactinas sudermais 

sagitais dos cones distais, com uma actina 

par disposta centripetamente. Esta 

actina se emparelha às actinas ímpares 

(centrífugas) (3) das triactinas e tetractinas 

tubares. Estas últimas estão dispostas 

em diversas camadas articuladas, em 

um padrão que remete àquele ilustrado 

neste Guia para o tubo de Tribrachium 

schmidti. As triactinas pseudossagitais 

também ocorrem entre as camadas 

de triactinas tubares. (4) Na região subatrial, 

logo abaixo das triactinas tubares, 

está o esqueleto subatrial, formado por 

triactinas sagitais e situado sobre (5) as 

triactinas e tetractinas (iguais proporções) 

atrais. Superfície atrial levemente 

híspida com apópilos amplos. Espículas: 



diactinas da coroa oscular e da superfície 

60–165 / 4–6 μm; triactinas da região 

oscular, actina ímpar 120–140 / 8 μm, 

actina par 100 / 8 μm; triactinas corticais, 

actina ímpar 25–55 / 9 μm, actina 

par 60–65 / 8 μm; triactinas pseudosagitais 

do cone distal, actina ímpar retilínea 

60–175 / 8–9 μm, actina par radial 70–75 

/ 8 μm, actina par cortical 25–35 / 3–8 

μm; triactinas tubares, actina ímpar 180 

/ 12 μm, actina par 80 / 8 μm; tetractinas 

tubares, actina ímpar 120–230 / 7–8 

μm, actina par 60–90 / 7–8 μm; triactinas 

subatriais, actina ímpar 180 / 8 μm, 

actina par 100–110 / 8 μm; triactinas 

atriais sagitais, actina ímpar 130 / 7 μm, 

actina par 80 / 6–7 μm; tetractinas atriais 

sagitais, actina ímpar 135 / 7 μm, actina 

par 80 / 5–7 μm. 

Ecologia 

Exposta à luz, preponderantemente 

em substratos verticais, na faixa de 

6–19 m de profundidade (C. Sampaio, 

com. pess.). 



Bahia – Salvador, Vera Cruz, Maraú, 

Abrolhos). 

Parque Nacional Marinho dos Abrolhos 

(Caravelas), 4–5 m de profundidade, Fev/1987. 

As esponjas vermelha e rosada pertencem ao 

gênero Monanchora. 


245


A, diactinas da superfície; B, 

triactinas da região oscular; C, 

triactinas corticais; D, triactinas 

pseudossagitais; E, triactinas tubares; 

F, tetractinas tubares; G, triactinas 

subatriais; H, triactinas atriais sagitais; 

I, tetractinas atriais sagitais. 

Arquitetura esquelética em seção transversal. A, seção de um tubo (a cavidade interna se 

denomina atrial); B, detalhe do esqueleto cortical e do cone distal; C, detalhe do esqueleto 

subatrial e atrial. 



Barra Grande de Camamu (Maraú), 14–19 m de profundidade, 05/Out/2009. 

FOTO DE C.L.S. SAMPAIO. 


247


Ordem Clathrinida Hartman, 1958 

Clathrina sp. Farol da Barra (Salvador), 6,5 m de profundidade, 03/Jun/2009. 



Família Clathrinidae Minchin, 1900 

Gênero Clathrina Gray, 1867 

O gênero compreende mais de 60 espécies no mundo, das quais 12 já 

foram registradas para o Brasil. Destas, apenas C. atlantica (Thacker, 

1908); C. aurea Solé-Cava, Klautau, Boury-Esnault, Borojevic & 

Thorpe, 1991; e C. reticulum (Schmidt, 1862) haviam até o presente 

sido citadas para a Região Nordeste. A real diversidade de Clathrina 

só veio à tona com o início do uso de abordagens moleculares no 

estudo de populações, ocorrido no final da década de 1980. Desde 

então, toda distribuição postuladamente muito ampla de espécies 

de Clathrina passou a ser suspeita, em especial quando transpondo 

grandes barreiras biogeográficas, tornando-se candidata natural 

à verificação por métodos moleculares associados a revisões 

minuciosas da morfologia. Este é o caso de C. atlantica e C. reticulum, 

originalmente registradas para Cabo Verde e a costa mediterrânea 

da França, respectivamente, agora na fila da revisão. Sem sombra de 

dúvidas, o gênero compreende mais de uma espécie na Bahia, haja 

vista as marcantes diferenças morfológicas observadas mesmo a olho 

nu em diferentes espécimes, com destaque para a cor em vida, que 

pode ser branca ou amarela. 

70. Clathrina spp. 

Morfologia 

Forma de novelo de contorno irregular, 

composto por tubos delgados (até 1 mm 

de diâmetro), longos, frequentemente 

anastomosando-se. Paredes dos tubos 

com menos de 0,1 mm de espessura. Os 

maiores espécimes observados alcançavam 

2,5 cm de diâmetro máximo e 1 cm 

de altura. Os menores, praticamente incrustantes, 

assemelhavam-se a uma rede 

ou teia de aranha. Cor em vida branca 

ou amarela, e branca em álcool. Superfície 

lisa a olho nu, ou miroespinada ao 

microscópio. Ósculos circulares pequenos 

e dispersos, com 1 mm de diâmetro 

ou menos, por vezes situados no topo 

de pequenas chaminés coletoras para 

as quais convergem diversos tubos. 

Consistência extremamente macia e 

frágil. Arquitetura esquelética confusa, 

com espículas dispersas nas finas 

paredes dos tubos. Espículas: triactinas 

robustas equiangulares, actina ímpar 

A, triactinas robustas; B, triactinas delgadas. 


249


190 / 25 μm, actinas pares 150 / 25 μm; 

triactinas delgadas equiangulares e 

equirradiadas, actinas 120 / 15 μm. 

Comentários 

Espécies de Clathrina podem apresentar 

como espículas uma combinação de trie 

tetractinas, às quais podem estar agregadas 

diactinas e tripódios. No material 

da Bahia, somente diactinas não foram 

ainda encontradas. Porém, no espécime 

cujas espículas são apresentadas aqui, 

proveniente do Litoral Norte do Estado, 

ocorrem apenas triactinas. 

Ecologia 

A espécie é fotófila em placas de alumínio, 

porém de hábito ciáfilo em ambiente 

natural. No litoral norte da Bahia (município 

de Camaçari) a espécie foi coletada 

a 25m de profundidade, em placas de 

alumínio. 


Material apresentado aqui: Brasil (BA – 

Camaçari, Salvador, Maraú, Abrolhos). 

O gênero está amplamente distribuido 

nos três oceanos. 

Parque Nacional Marinho dos Abrolhos 

(Caravelas), 2–3 m de profundidade, Fev/1987. 

A esponja vermelha é uma Monanchora 

arbuscula. 

Taipú de Fora (Maraú), 0,5 m de profundidade, 

28/Jul/2009 




251

GLOSSÁRIO 

O foco deste glossário foi nos termos técnicos constantes das descrições apresentadas 

neste Guia. Outros termos, como por exemplo, aqueles que constam da 

seção Classificação e caracterização das classes e ordens, não estão todos representados 

aqui. A maior parte das ilustrações utilizadas neste glossário veio da 

obra Thesaurus of Sponge Morphology, editada por Boury-Esnault et al. (1997). 

Acanto (prefixo) 

Possuidor de espinhos 

Acantóstilo 

Actina 

Estilo espinado (p.ex Clathria 

schoenus). 

Um raio partindo do centro de uma megasclera, contendo um eixo ou 

canal axial. 

Actina apical 

(Calcarea) 

A quarta actina de uma tetractina, 

que se une ao sistema trirradial 

basal. 

Actina ímpar 

(Calcarea) 

Em espículas tri e tetractinas sagitais 

e parassagitais (A), é a actina (ai) do 

sistema basal que se diferencia por 

ser mais longa ou mais curta, ou por 

ser oposta a um ângulo diferente 

dos demais, o qual se forma entre 

as actinas pares. Em espículas 

pseudossagitais (B), é a actina (ai) 

que se projeta para a superfície da 

esponja, juntamente com uma das 

actinas pares, formando com esta 

um ângulo sempre menor que o 

formado entre a actina par voltada 

para a superfície e a projetada para 

o interior. 

Actinas pares 

(Calcarea) 

Um ou dois raios equivalentes de uma espícula sagital. 

Algálica(o) 

Relativo às algas. 


Glossário 

Anastomosado, 

esqueleto 

Tratos, linhas ou fibras são 

interconectadas (= reticulado). 

Anatriênio 

Triênio no qual os cládios são 

fortemente curvados para trás. (p.ex. 

Cinachyrella spp.). 

Ancorada, quela 

Quela com três ou mais alas livres 

em cada extremidade, em forma de 

garras (unguiferadas) ou lâminas 

(espatulíferas), e duas alas laterais 

incipientes ao longo do eixo. 

Anfiblástula 

(Calcarea) 

Larva ovóide, oca, com a porção 

anterior flagelada e a posterior não 

flagelada. Típica de Calcaronea. 

Anfidisco 

(Amphidiscophora) 

Diactina com ambas as extremidades 

umbeladas, frequentemente de 

tamanhos iguais. 

Aniso (prefixo) 

Desigual, diferente. 

Anisoquela 

Quela com duas extremidades 

desiguais (p.ex. Mycale spp.). 

Apical 

Superior. 

Apópilo 

Abertura na qual a câmara 

coanocitária se abre para o átrio 

ou em um canal exalante. As setas 

indicam o fluxo de água. 

Arcabouço 

primário 

Parte de um esqueleto dictional formado na margem de crescimento; 

um esqueleto secundário pode ser adicionado nas superfícies interna e 

externa. 


253

Glossário 

Asconóide 

(Calcarea) 

Sistema aquífero no qual a cavidade 

interna principal da esponja é 

totalmente recoberta por coanócitos. 

Não há canais inalantes nem exalantes 

(p.ex. Clathrina spp.). As setas indicam 

o fluxo de água. 

Aspidáster 

Microsclera alongada e achatada, com 

numerosos raios fusionados e com 

minúsculas projeções estreladas (p.ex. 

Erylus formosus). 

Áster 

Termo coletivo para microscleras 

portadoras de centro (euásteres) 

ou eixo central (p.ex. espirásteres, 

sanidásteres), de onde se projetam 

espinhos/raios. 

Átrio 

Cavidade localizada antes do ósculo. Este termo é usado para designar 

especificamente a cavidade central exalante. 

Aulocalicoide, 

esqueleto 

Aveludado 

Arquitetura com raios uniaxiais das 

hexactinas dictionais, ou sinaptículos 

anaxiais, como elementos de conexão 

do arcabouço; elementos estruturais 

primários usualmente extensões 

longitudinais conspícuas de raios 

dictionais avulsos. Redesenhado a 

partir de Reiswig (2002). 

Superfície: com projeções espiculares curtas e densas, macia e suave 

ao toque (p.ex. Cliona varians, Ectyoplasia ferox). 

Axial, esqueleto 

Organização típica de esqueleto 

no qual alguns elementos estão 

condensados formando uma região 

central ou um eixo (p.ex. Thrinacophora 

funiformis). 

Basalia 

Espículas que se projetam da superfície 

inferior (basal) da esponja, para fixação 

no substrato. 

Basifitosa 

(Hexactinellida) 

Bentônico 

Esponjas que se fixam em substrato duro através da placa basal. 

Organismos aquáticos que vivem na superfície do substrato. 


Glossário 

Birrótula 

Buquê 

Caliciforme 

Tipo de microsclera que possui 

um eixo fino e as terminações com 

múltiplos dentes dispostos lado a 

lado, em forma de guarda-chuva (p.ex. 

Iotrochota birotulata). 

Escova ectossomal de espículas 

perpendiculares à superfície da 

esponja, com final pontiagudo saindo 

do ectossoma. (p.ex. Suberites 

aurantiacus). 

Depressão em forma de cálice (p.ex. Chelonaplysilla cf. erecta). 

Caltrops 

Megasclera tetraxônica equiangular e 

equirradial. 

Câmara 

coanocitária 

Câmaras discretas, dispersas 

no mesoílo, com coanócitos. 

Eletromicrografia retirada do Atlas of 

Sponge Morphology, de De Vos et al. 

(1991). 

Cavernoso 

Centrotiloto 

Cerebriforme 

Ciáfilos 

Tipo de coanossoma amplamente perfurado por grandes canais 

aquíferos (p.ex. Ircinia strobilina). 

Quando o tilo encontra-se no centro 

da espícula (p.ex. Erylus formosus). 

Forma arredondada com sulcos e cristas, que se assemelha a um 

cérebro (p.ex. Geodia corticostylifera). 

Organismos que crescem na sombra. 

Cinctoblástula 

Larva oca, inteiramente flagelada, com 

um anel central de células pigmentadas 

(Homoscleromorpha). 

Cládio 

Cladoma 

Coanossoma 

Qualquer raio ou ramo axial, com eixo ou canal axial confluente com o 

do protocládio ou protorabdo em qualquer tipo espicular; termo usado 

principalmente em triênios e seus derivados, para denominar um dos 

raios menores. 

O conjunto de cládios (raios mais curtos 

e simétricos) em um triênio, em oposição 

ao rabdoma (raio mais longo). 

Região interna da esponja aonde se concentram as câmaras de 

coanócitos. 


255

Glossário 

Coanossomal, 

esqueleto 

Esqueleto do corpo principal, que dá suporte ao sistema de canais e é 

responsável pela forma da esponja. 

Coeloblástula 

Larva oca composta por células 

equipotentes; com células maiores não 

flageladas em seu pólo posterior. 

Colágeno 

Proteína estrutural mais importante nos animais. Principal componente 

da matriz extracelular e das fibras de espongina das esponjas. 

Confuso, 

esqueleto 

Megascleras desordenadas no 

esqueleto (p.ex. Aaptos sp., Petromica 

ciocalyptoides). 

Cônulo, 

conuloso 

Cormus 

Superfície com numerosas projeções em forma de cone. 

Corpo formado por uma massa de tubos anastomosados (p.ex. 

Clathrina) 

Córtex 

Uma região superficial da esponja 

reforçada por um esqueleto orgânico 

ou inorgânico diferente daquele do 

coanossoma (p.ex. Geodia spp.,Tethya 

spp.). 

Cosmopolita 

Diz-se da espécie que se encontra dispersa por todo o mundo. 

Costão rochoso 

Ambiente costeiro formado por rochas. 

Cribriporal 

Área especializada do ectossoma com 

vários poros formando uma rede de 

contorno circular. 

Dendrítico, 

esqueleto 

Tipo de esqueleto em que as fibras se 

ramificam como em uma árvore, mas 

nunca formam malhas. 

Desma 

Espícula com formas ramificadas e 

irregulares, por vezes rugosas ou 

espinadas. Podem estar fusionadas ou 

dispersas na base da esponja (p.ex. 

Petromica spp.). 


Glossário 

Diactina 


Espícula birradiada com raios alinhados 

em um único eixo; ambos os raios 

frequentemente possuem terminações 

similares. 

Diodo 

(Homosclerophorida) 

Espícula diactinal, geralmente de 

contorno irregular, com uma dupla 

dobra central. 

Diplodal 

Câmara coanocitária que se conecta 

com os canais inalantes através de um 

canalículo chamado prósodo, e com o 

canal exalante através de uma apópila 

prolongada com outro canalículo, o 

áfodo. As setas indicam o fluxo de 

água. 

Discohexactina 

(Hexasterophora) 

Espícula hexarradiada com 

terminações discoidais; equivalente ao 

hexadisco em Amphidiscophora. 

Ectossoma 

Região superficial da esponja que não possui câmaras coanocitárias. 

Ectossomal, 

esqueleto 

Esqueleto da região superficial 

da esponja, distinto do esqueleto 

coanossomal. 

Elástica, 

consistência 

Capacidade de voltar à forma original após uma deformação. (p.ex. 

Callyspongia pergamentacea, Echinodictyum dendroides). 

Endobionte 

Epibionte 

Qualquer organismo que vive no interior do corpo ou das células de 

outro organismo. 

Qualquer organismo que vive na superfície de outros seres vivos. 

Equinante, 

espícula 

Megasclera que se projeta 

perpendicularmente da superfície 

da esponja, de uma fibra ou de um 

trato espicular. (p.ex. Echinodictyum 

dendroides). 


257

Glossário 

Ereto, hábito 

Termo generalizado para crescimento vertical (p.ex. Aplysina fistularis). 

Esferáster 

Euáster com raios curtos e centro 

espesso, cujo diâmetro (> 50% do 

diâmetro total) excede o comprimento 

dos raios (p.ex. Chondrilla nucula). 

Esferoxiáster 

Euáster com um centro discreto que 

é maior que um terço do diâmetro 

total da espícula (p.ex. Tethya spp.). 

Eletromicrografia por P. Willenz. 

Especiação 

Espícula 

Espícula regular 

(Calcarea) 

Espícula 

tangencial 

Espiculóide 

(Dendroceratida) 

Espiráster 

Processo evolutivo pelo qual as espécies vivas se formam. 

Componente mineral do esqueleto. Tipicamente composta de sílica 

(Demospongiae e Hexactinellida) ou carbonato de cálcio (Calcarea). 

Espícula disposta paralelamente á superfície. 

Espícula triactina ou tetractina com 

raios basais de tamanhos e ângulos 

iguais entre eles (120 o ), quando 

projetados em um plano perpendicular 

ao eixo óptico. 

Espícula de espongina, diactinal ou triactinal, geralmente de contorno 

irregular. 

Microsclera em forma de vareta com 

curvaturas helicoidais ou em ziguezague, 

com espinhos periféricos (p.ex. 

Spirastrella hartmani). 

Espongina 

Substância esquelética em Demospongiae composta por microfibrilas 

de colágeno com cerca de 10 μm de diâmetro, observada mais 

frequentemente como fibras ou placa basal. 

Estauractina 

Hexactina reduzida, com quatro raios, 

todos dispostos em um plano. 

Esterráster 

Microsclera esférica, oval ou elipsóide 

com numerosos raios fusionados e 

com terminações estreladas. (p.ex. 

Geodia spp.). Eletromicrografia por S. 

Salani. 


Glossário 

Estilo 

Megasclera monaxônica com uma 

extremidade pontiaguda e a outra 

arredondada (p.ex. Dragmacidon 

reticulatum, Iotrochota birotulata). 

Estrongiláster 

Áster com raios isodiamétricos, 

livres e de pontas arredondadas 

(p.ex. Erylus formosus, Tethya maza). 


Estrôngilo 

Euáster 

Euripilosa 

Megasclera monaxônica com ambas 

pontas arredondadas (p.ex. Iotrochota 

birotulata). 

Termo coletivo para microscleras asterosas onde os raios irradiam de 

um ponto central (p.ex. esterráster, estrongiláster, oxiáster). 

Câmara coanocitária que se conecta 

diretamente com canais inalantes 

através de prosópilos e com canais 

exalantes através de apópilas; muitas 

câmaras conectam-se no mesmo canal 

exalante. As setas indicam o fluxo de 

água. 

Feixe 

Coluna de megascleras alinhadas. 

Fibra 

Coluna de espongina que forma um 

esqueleto dendrítico ou reticulado, 

com ou sem inclusão de espículas ou 

material externo. (p.ex. Aplysina spp., 

Callyspongia spp.). 

Fístula 

Protuberância digitiforme delicada, 

projetando-se da superfície da esponja 

(p.ex. Petromica ciocalyptoides, 

Tribrachium schmidti). 

Fotófilo 

Organismo com preferência por ambientes iluminados. 

Fusiforme 

Espícula monaxônica cuja forma afina gradualmente rumo as pontas. 


259

Glossário 

Hexactina 

Espícula triaxônica, hexarradiada, 

com raios de comprimentos iguais e 

perpendiculares uns aos outros. 

Hexadisco 


Hidrodinamismo 

Hipodermalia 

Hexadictina cujos raios possuem 

terminações discoidais; em 

Hexasterophora, denomina-se a 

mesma espícula de discohexactina. 

Neste Guia refere-se ao embate das ondas e velocidade das correntes 

marinhas. 

Pentactinas grandes cujos 

raios tangenciais se situam 

paratangencialmente logo abaixo da 

superfície dermal, cada qual com o 

raio proximal dirigido para o interior 

da esponja; sustentam a camada de 

espículas dermais; raios centrais e 

tangenciais podem estar projetados 

além da superfície dermal, mas ainda 

se denominam hipodermalia como 

reflexo de sua origem. 

Inarticulado, 

esqueleto 

(Calcarea) 

Esqueleto coanossomal composto 

somente pelos raios ímpares das 

espículas subatriais e um dos raios 

das espículas subcorticais ou corticais. 

Sem espículas específicas do esqueleto 

coanossomal (p.ex. Leucilla). 

Incrustante, 

hábito 

Infralitoral 

Iso (prefixo) 

Forma de crescimento como fina camada aderida ao substrato (p.ex. 

Clathria schoenus, C. venosa, Terpios fugax). 

Zona litorânea sempre submersa, inclusive nas marés baixas de sizígia. 

Igual. 

Isodictial, 

reticulação 

Reticulação isotrópica com malhas 

triangulares; laterais com apenas 

uma espícula de comprimento (p.ex. 

Haliclona spp.). 

Isoquela 

Quela com extremidades iguais. 


Glossário 

Isotrópica, 

reticulação 

Reticulação onde não se diferenciam 

feixes primários ou secundários. 

Lamelar 

Leuconóide 

Em forma de lamela(s) – placas eretas (p.ex. Aplysina solangeae). 

Sistema aquífero onde os coanócitos 

estão restritos a câmaras discretas, 

dispersas no mesoílo, interligadas com 

os poros e ósculos através de canais 

inalantes e exalantes (p.ex. Demospongiae). 

A seta indica o fluxo de água. 

Licnisco 

Espículas hexactinais com um octaedro 

de 12 suportes silicosos fusionados, 

formado ao redor do centro ou nó 

dictional. 

Lóbulo 

Lofofitosa 


Medula (fibra) 

Megasclera 

Megásteres 

Mesolitoral 

(entre marés) 

Micráster 

Diminutivo de lobo, semelhante à porção basal das orelhas (p.ex. 

Chondrosia sp., Erylus formosus). 

Esponjas que se fixam em substrato duro ou mole através de espículas 

da basália, com o corpo suspenso acima ou parcialmente embebido no 

substrato. 

Parte central de uma fibra de espongina, 

feita de colágeno granular ou em forma 

de fibras difusas. Fotomicrografias por 

U. dos S. Pinheiro. 

Espícula relativamente grande, principal componente do esqueleto da 

esponja, frequentemente com função estrutural. 

Ásteres grandes, formando uma crosta com função estrutural – termo 

de uso exclusivo em Tethyidae (p.ex. Tethya spp.). 

Região sujeita às flutuações da maré, submersa nas marés altas e 

exposta durante a maré baixa. 

Ásteres pequenas, geralmente não formando uma crosta – termo de 

uso exclusivo em Tethyidae (p.ex. Tethya spp.). 

Microdiactina 

(Calcarea) 

Espícula diactinal pequena. 

Microsclera 

Micróxea 

Espícula relativamente pequena, mais frequentemente desprovida de 

função estrutural óbvia. 

Microsclera com forma de óxea pequena, frequentemente 

microacantosa. 


261

Glossário 

Nó dictional 

Pontos de fusão de um esqueleto 

dictional. 

Nodosa, fibra 

Fibra que forma caroços (p.ex. Aiolochroia crassa). 

Olintus 

(Calcarea) 

Estádio jovem de desenvolvimento 

com um sistema aquífero funcional que 

possui uma câmara coanocitária aberta 

diretamente no ósculo. 

Oniqueta 

Ortotriênio 

Microsclera semelhante a uma ráfide 

ou uma óxea finíssima, com farpas 

(p.ex. Tedania ignis). Eletromicrografias 

por P. Willenz. 

Triênio onde os cládios são 

perpendiculares (ou quase) ao rabdoma 

(p.ex. Geodia corticostylifera). 

Ósculo 

Abertura através da qual a água sai 

da esponja; porta de saída do sistema 

aquífero. 

Óstio / Poro 

Abertura através da qual a água 

entra na esponja; porta de entrada do 

sistema aquífero. A imagem ilustra 

papilas inalantes providas de inúmeros 

óstios ou poros. 

Espícula monaxônica diactinal com ambas extremidades pontiagudas. 

Diferentes tipos são distinguíveis pela forma e tipo morfológico. 

angulada 

Óxea 

centrotilota 

curvada 

flexuosa ou sinuosa 

fusiforme 


Glossário 

acerada assimétrica arredondada cônica 

Óxea 

hastada mucronada telescópica simétrica 

Papila 

Protuberância mamiliforme que se 

projeta da superfície da esponja, 

contendo ósculos, poros, ou ambos. 

Paratangencial, 

esqueleto 

Arranjo das espículas ectossomais 

intermediário entre os tipos paliçádico 

e tangencial; ou das fibras ectossomais 

entre o tangencial e o perpendicular 

(p.ex. Niphates erecta). 

Parenquimela 

Larva composta por uma massa de 

células internas envolvidas por células 

flageladas. 

Paucispicular, 

feixe 

Feixe espicular com poucas fileiras 

de espículas (p.ex. Haliclona melana, 

Petromica citrina, Scopalina ruetzleri). 

Pentactina 


Espícula triaxônica com raio ímpar 

perpendicular aos pares e os 

raios pares formando dois eixos 

perpendiculares entre si. 

Perioscular 

Em volta do ósculo. 


263

Glossário 

Placa basal 

(placa 

basidictional) 

Arcabouço silicoso formado pela 

primeira camada (basal) de espículas 

hexactinais, elementos espiculares 

irregulares e sinaptículos, os quais 

servem para a fixação em substrato 

duro; disco basal. 

Plagiotriênio 

Triênio com cládios formando um 

ângulo de 135 o (ou quase) com o 

rabdoma (p.ex. Stelletta anancora). 

Plumorreticulado, 

esqueleto 

Tipo de esqueleto plumoso no qual 

ocorrem feixes conectantes cruzados 

(p.ex. Clathria schoenus, Mycale 

angulosa). 

Plumoso, 

esqueleto 

Organização semelhante à dendrítica, 

com feixes ascendentes primários cujas 

espículas se irradiam obliquamente, e 

anastomoses ocorrem com frequência. 

Poça de maré 

Locais, maiores ou menores, com água 

represada durante as marés baixas. 

Porocálice 

Depressão na superfície em forma 

de cálice na qual se concentram os 

poros inalantes (p.ex. Cinachyrella 

kuekenthali). 

Primário(a), feixe 

ou fibra 

Prodiênio 

Feixes ou fibras ascendentes que 

formam um ângulo reto com o 

ectossoma; normalmente são mais 

espessos que os demais, e este é o 

único critério para seu reconhecimento 

no esqueleto ectossomal (p.ex. 

Callyspongia spp.). 

Diênio com cládios formando um 

ângulo > 135º com o rabdoma 

(p.ex. Cinachyrella apion, Craniella 

quirimure). 


Glossário 

Prosópilo 

Abertura de um canal inalante em uma 

câmara coanocitária. As setas indicam 

o fluxo de água. 

Protriênio 

Triênio com cládios formando um 

ângulo > 135º com o rabdoma (p.ex. 

Cinachyrella spp., Craniella quirimure). 

Psamófila 

Adaptada à vida em substratos não consolidados como areia e areialodosa 

(p.ex. Craniella quirimure, Tribrachium schmidti). 

Pseudossagital, 

espícula 

(Calcarea) 

Triactina subcortical essencialmente 

sagital, porém com raios de 

comprimento e curvatura distintos 

em cada lado dos ângulos ímpares; a 

actina mais longa, pareada, se dirige ao 

interior (p.ex. Grantessa spp.). 

Pugiole 

(Baerida) 

Pequenas tetractinas em forma de 

adaga. 

Quela 

Microsclera com eixo curvado e uma 

ala recurvada em cada final. Veja: 

Isoquela e anisoquela. 

Rabdoma 

Eixo principal (raio mais longo) de um 

triênio, diênio ou monênio. 

Rabdóstilo 

Estilo com curvatura acentuada na 

metade basal (p.ex. Ectyoplasia ferox). 

Radial, 

esqueleto 

Arquitetura cujos componentes 

estruturais divergem de uma região 

central rumo à superfície da esponja 

(p.ex. Craniella quirimure, Tethya spp.). 


265

Glossário 

Ráfide 

Microsclera muito fina, similar a um fio 

de cabelo, frequentemente agrupada 

em tricodragmas (p.ex. Cinachyrella 

apion, Mycale angulosa). 

Reticulado, 

esqueleto 

Risofitosa 

Arquitetura tridimensional formada 

por fibras, feixes ou espículas isoladas 

(p.ex. Aplysina spp., Callyspongia 

spp., Haliclona spp., Desmapsamma 

anchorata) 

Esponjas com processos (prolongamentos) corporais basais ao invés de 

tufos espiculares projetados. 

Roseta 

Grupo de quelas unidas por uma 

extremidade, formando um círculo ou 

esfera (p.ex. Mycale angulosa). 

Sagital, espícula 

(Calcarea) 

Triactina ou tetractina com dois 

ângulos iguais (pares) e um diferente 

(ímpar), visíveis quando a espícula é 

projetada em um plano perpendicular 

ao eixo óptico (p.ex. Grantessa sp.). 

Sanidáster 

Microsclera monaxônica reta, com 

espinhos transversais dispostos 

em intervalos regulares ao longo 

do eixo, e espinhos oblíquos nas 

extremidades (p.ex. Tribrachium 

schmidti). Eletromicrografia por M. de 

S. Carvalho. 

Secundário(a), 

feixe ou fibra 

Feixes ou fibras que conectam os feixes 

ou fibras primários (p.ex. Callyspongia 

spp.). 

Selenáster 

Espiráster que se aproxima da forma 

de uma esterráster (p.ex. Placospongia 

sp.). Eletromicrografia retirada do Atlas 

of Sponge Morphology, de De Vos et 

al. (1991). 


Glossário 

Siconóide 

Sistema aquífero com câmaras de 

coanócitos (cc) alongadas dispostas 

radialmente, com cones distais livres 

ou estendendo-se do átrio ao córtex 

(p.ex. Sycon sp.). Eletromicrografia 

retirada do Atlas of Sponge 

Morphology, de De Vos et al. (1991). 

Sigma 

Microsclera em forma de “C” ou “S” 

(p.ex. Lissodendoryx isodictyalis, 

Monanchora arbuscula, Mycale 

angulosa). Eletromicrografia retirada 

do Atlas of Sponge Morphology, de De 

Vos et al. (1991). 

Sigmancistra 

(Poecilosclerida) 

Sigma com seção transversal em 

forma de gota; por vezes com sulcos 

subterminais discretos em sua face 

interna. Eletromicrografia por D.A. 

Lopes. 

Sigmaspira 

Microsclera sigmóide contorcida e 

espinada (p.ex. Craniella quirimure, 

Cinachyrella spp.) 

Sileibide 

Sistema aquífero com câmaras 

coanocitárias alongadas organizadas 

radialmente em torno da cavidade atrial 

Simpatria 

Coexistência. Espécies que habitam uma mesma área são ditas 

simpátridas. 

Sinaptículo 

São as ligações (pontes) que unem as 

espículas, compostas por um cimento 

silicoso. 

Sistema 

aquífero 

Subcortical 

Substrato 

inconslidado 

Sistema de canais (inalantes e exalantes) e câmaras de coanócitos por 

onde a água circula no interior da esponja. 

Adjacente à base do córtex. 

Relativamente fluido – cascalho, areia, lama. 


267

Glossário 

Subtilóstilo 

Tilóstilo com uma extremidade 

pontiaguda e a outra levemente 

expandida, formando uma "cabeça" 

mal-definida (p.ex. Clathria venosa, 

Monanchora arbuscula, Mycale 

angulosa). Eletromicrografias por E.L. 

Esteves. 

Tauactina 


Espícula diaxônica com tres raios 

situados em um único plano; em forma 

de T. 

Telescópica 

Termo usado para designar o final da espícula que possui constrições 

escalonadas (p.ex. Scopalina ruetzleri). Veja Óxea. 

Terciária, fibra 

Fibra que interconecta as fibras 

secundárias (ou estas com as 

primárias) em um esqueleto reticulado 

(p.ex. Callyspongia pergamentacea). 

Tetractina 

(Calcarea) 

Espícula calcária com quatro raios 

(p.ex. Grantessa sp., Leucilla sp.). 

Tiláster 

Euáster com raios livres, com a 

ponta expandida (p.ex. Tethya maza). 


Tilo 

Espessamento semi-esférico no eixo 

de uma espícula; em uma ou ambas 

extremidades; ou ao longo do eixo, 

uma ou múltiplas vezes. 

Tilóstilo 

Tiloto 

Megasclera monactinal com tilo basal 

bem delineado (p.ex. Cliona celata, 

Spirastrella hartmani, Suberites 

aurantiacus). 

Megasclera diactinal com tilos 

em ambas extremidades (p.ex. 

Lissodendoryx isodictyalis, Tedania 

ignis). 


Glossário 

Toxa 

Microsclera em forma de arco 

(p.ex. Clathria schoenus, C. venosa 

Haliclona melana, H. rodriguesi). 

Eletromicrografias por B. Cosme. 

Triactina 

(Calcarea) 

Tricodragma 

Tricóxea 

Triênio 

Uma espícula de três raios. Veja 

parasagital, pseudosagital, regular, and 

espícula sagital, parasagital, pseudo 

sagital e regular (p.ex. Clathrina sp., 

Grantessa sp., Leucilla sp.). 

Feixe de ráfides (p.ex. Mycale angulosa, Thrinacophora funiformis). 

Óxea muito fina e comprida (p.ex. Leucilla). 

Termo coletivo para megascleras tetraxônicas com um raio desigual 

(rabdoma), muito mais longo que os outros três (os cládios, que 

coletivamente formam o cladoma). 

Triodo 

(Homosclerophorida) 

Triactina em que os raios são iguais, 

retos, em um plano, e divergentes em 

um ângulo de 120º. 

Tripódio 

(Calcarea) 

Triactina regular, cujo centro está 

em um plano distinto daquele das 

extremidades dos raios. 

Unguiferada, 

isoquela 

Uma isoquela ancorada com alas 

livres delgadas e pontiagudas 

(p.ex. Monanchora arbuscula). 

Eletromicrografias por Eduardo L. 

Esteves. 

Uniespicular, 

feixe 

Feixe com uma única fileira de 

espículas (p.ex. Haliclona spp.). 

Verticilado 

Diz-se dos acantóstilos com espinhos 

organizados em anéis. 

Vulcaniforme 

Projeções cônicas ou abauladas baixas; em forma de vulcão (p.ex. 

Haliclona caerulea, Xestospongia muta). 


269

LITERATURA RECOMENDADA PARA APROFUNDAMENTO DO TEMA 

Bergquist, P.R. 1978. Sponges. Hutchinson & Co, 

London. 268 p. 

Berlinck, R.G.S.; Hajdu, E.; da Rocha, R.M.; 

de Oliveira, J.H.H.L.; Hernandez, I.L.C.; 

Seleghim, M.H.R.; Granato, A.C.; de Almeida, 

E.V.R.; Nunez, C.V.; Muricy, G.; Peixinho, S.; 

Pessoa, C.; Moraes, M.O.; Cavalcanti, B.C.; 

Nascimento, G.G.F.; Thiemann, O.; Silva, M.; 

Souza, A.O.; Silva, C.L. & Minarini, P.R.R. 2004. 

Challenges and rewards of research in marine 

natural products chemistry in Brazil. Journal 

of Natural Products 67: 510-522. 

Borojevic, R. & Peixinho, S. 1976. Éponges 

calcaires du nord-nord-est du Brésil. Bulletin 

du Muséum national d’Histoire naturelle (3, 

A) 402: 987-1036. 

Boury-Esnault, N. & Rützler, K. (Eds.) 

1997. Thesaurus of sponge morphology. 

Smithsonian Contributions to Zoology 

596: i-iv, 1-55. [disponível em hdl.handle. 

net/10088/5449] 

Brusca, R.C. & Brusca, G.J. 2007. Invertebrados. 

2a.ed., Ed. Guanabara Koogan, Rio de Janeiro. 

968 p. 

Custódio, M.; Hajdu, E. & Muricy, G. 2000. 

Porifera Brasil. Disponível em http://www. 

poriferabrasil.mn.ufrj.br/. 

Custódio, M.R., Lôbo-Hajdu, G., Hajdu, E. & 

Muricy, G. (Orgs) 2007. Porifera Research. 

Biodiversity, Innovation, Sustainability. 

Museu Nacional, Série Livros 28, Rio de 

Janeiro. 684 p. [disponível em http://www. 

poriferabrasil.mn.ufrj.br/iss/] 

De Vos, L.; Boury-Esnault, N.; Rützler, K.; 

Donadey, C. & Vacelet, J. 1991. Atlas 

of Sponge Morphology. Smithsonian 

Institution Press, Washington D.C. i-xi, 117 p. 

[disponível em http://si-pddr.si.edu/jspui/ 

handle/10088/7829] 

Hajdu, E.; Muricy, G.; Berlinck, R.G.S. & Freitas, 

J.C. 1996. Marine porifera diversity in Brazil: 

through knowledge to management. In: 

Bicudo, C.E.M. & Menezes, N.A. (Eds). 

Biodiversity in Brazil: a first approach. 

Conselho Nacional de Desenvolvimento 

Científico e Tecnológico, São Paulo. p. 157-172. 

Hajdu, E.; Berlinck, R.G.S. & Freitas, J.C.1999. 

Porifera. In: Migotto, A.E., Tiago, C.G. (Eds), 

Biodiversidade no estado de São Paulo, 

Brasil: Síntese do conhecimento ao final 

do século XX. 3: Invertebrados marinhos. 

FAPESP. cap. 4, p. 21-31. [disponível em 

http://www.biota.org.br/pdf/v3cap04.pdf] 

Hajdu, E.; Santos, C.P.; Lopes, D.A.; Oliveira, 

M.V.; Moreira, M.C.F.; Carvalho, M.S. & 

Klautau, M. 2004. Filo Porifera. In: Amaral, 

A.C.Z.; Carmen Lúcia Del Bianco Rossi- 

Wongtschowski. (Org.). Biodiversidade 

Bentônica da Região Sudeste-Sul do Brasil – 

Plataforma Externa e Talude Superior. Série 

Documentos REVIZEE – Score Sul. São 

Paulo: Instituto Oceanográfico. p. 49-56. 

Hechtel, G.J. 1976. Zoogeography of Brazilian 

marine Demospongiae. In: Harrison, F.W. 

& Cowden, R.R., eds. Aspects of sponge 

biology. Nova Iorque: Academic Press. p. 

237-260. 

Hooper, J.N.A. & van Soest, R.W.M. 2002. 

Systema Porifera: A Guide to the 

Classification of Sponges, vol. 1-2. 

Nova Iorque: Kluwer Academic/Plenum 

Publishers. xlviii + 1810 p. 

Moraes, F.; Ventura, M.; Klautau, M.; Hajdu, 

E. & Muricy, G. 2006. Biodiversidade de 

esponjas das Ilhas Oceânicas Brasileiras. 

In: Alves, R.J.V. & Castro, J.W. de A., orgs. 

Ilhas Oceânicas Brasileiras – da pesquisa 

ao manejo. Brasília: Ministério do Meio 

Ambiente. cap. 6, 147-177 p. 

Mothes, B.; Lerner, C. & Silva, C.M.M. 2006. 

Esponjas Marinhas: Costa Sul-Brasileira. 

Guia Ilustrado. 2ª edição Coleção Manuais 

de Campo USEB 1. Pelotas: USEB. 124 p. 

Muricy, G.; Esteves, E.L., Moraes, F., Santos, 

J.S.,da Silva, S.M.S., Klautau, M. & Lanna, 

E. 2008. Biodiversidade marinha da bacia 

Potiguar: Porifera. Museu Nacional, Série 

Livros 29. 156 pags. 

Muricy, G. & Hajdu, E. 2006. Porifera Brasilis: 

guia de identificação das esponjas marinhas 

mais comuns do sudeste do Brasil. Rio de 

Janeiro: Museu Nacional, Série Livros 17, 

1-104 p. 


Literatura Recomendada 

Muricy, G.; Moraes, F.; Klautau, M.; Menegola, 

C.; Lopes, D.A.; Pinheiro, U.S.; Hajdu, E. 

& Carvalho, M.S. Catalogue of Brazilian 

Porifera. A ser submetido à Zootaxa. 

Muricy, G.; Santos, C.P.; Batista, D.; Lopes, D.A.; 

Pagnoncelli, D.; Monteiro, L.C.; Oliveira, 

M.V.; Moreira, M.C.F.; Carvalho, M. de S.; 

Melão, M.; Klautau, M.; Rodriguez, P.R.D.; 

Costa, R.N.; Silvano, R.G.; Schwientek, S.; 

Ribeiro, S.M.; Pinheiro, U.S. & Hajdu, E. 2006. 

Filo Porifera. In: Lavrado, H.P. & Ignácio, 

B.L., orgs. Biodiversidade bentônica da 

região central da Zona Econômica Exclusiva 

brasileira. Museu Nacional, Série Livros 18, 

Rio de Janeiro, pp. 109-145. 

Seleghim, M.H.R.; Lira, S.P.; Kossuga, M.H.; 

Batista, T.; Berlinck, R.G.S.; Hajdu, E.; Muricy, 

G.; Rocha, R.M.; Nascimento, G.G.F.; Silva, 

M.; Pimenta, E.F.; Thiemann, O.H.; Oliva, G.; 

Cavalcanti, B.C.; Pessoa, C.; Moraes, M.O.; 

Galetti, F.C.S.; Silva, C.L.; Souza, A.O. & 

Peixinho, S. 2007. Antibiotic, cytotoxic and 

enzyme inhibitory activity of crude extracts 

from Brazilian marine invertebrates. Revista 

Brasileira de Farmacognosia 17: 287-318. 

Zea, A. 1987. Esponjas del Caribe Colombiano. 

Bogotá: Catálogo Científico. 286 p. 

Zilberberg, C.; Klautau, M.; Menegola, C.; 

Berlink, R.G.S. & Hajdu, E. 2009. Porifera. 

In: Zoologia no Brasil. Estado da arte 

e perspectivas. Congresso Brasileiro de 

Zoologia, Curitiba. Curitiba: UFPR. 17-28 p. 


271

REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS ORIGINAIS PARA AS ESPÉCIES INCLUIDAS 

NESTE GUIA, OU CONSULTADAS PARA ELABORAÇÃO DOS COMENTÁRIOS 

Ab’Sáber, A.N. 2001. Litoral do Brasil. 

Metalivros, São Paulo. 287 p. 

Alander, H. 1935. Additions to the Swedish 

sponge fauna. Arkiv för Zoologi 28B (5): 1-6. 

Alcolado, P.M. 1984. Nuevas especies de 

esponjas encontradas en Cuba. Poeyana 271: 

1-22. 

Alcolado, P. 2007. Reading the code of coral 

reef sponge community composition and 

structure for environmental biomonitoring: 

some experiences from Cuba. In: Custódio, 

M.R.; Lôbo-Hajdu, G.; Hajdu, E. & Muricy, 

G. (Eds). Porifera Research: Biodiversity, 

Innovation and Sustainability. Museu 

Nacional, Rio de Janeiro. p.3-10. 

Andrea, B.; Batista, D.; Sampaio, C.L.S & 

Muricy, G. 2007. Spongivory by juvenile 

angelfish (Pomacanthidae) in Salvador, 

Bahia State, Brazil. In: Custódio, M.R.; Lôbo- 

Hajdu, G.; Hajdu, E. & Muricy, G. (Eds). 

Porifera Research: Biodiversity, Innovation 

and Sustainability. Museu Nacional, Rio de 

Janeiro. p.131-137. 

Arndt, W. 1927. Kalk- und Kieselschwämme 

von Curaçao. Bijdragen tot de Dierkunde 

25: 133-158. 

Barrois, C. 1876. Mémoire sur l’embryologie de 

quelques Éponges de la Manche. Annales 

des Sciences Naturelles (6) 3 (11): 57-59. 

Berlinck, R.G.S.; Ogawa, C.A.; Almeida, 

A.M.P.; Sanchez, M.A.A.; Malpezzi, E.L.A.; 

Costa, L.V.; Hajdu, E. & Freitas, J.C. de 

1996. Chemical and pharmacological 

characterization of Halitoxin from 

Amphimedon viridis (Porifera) from the 

southeastern brazilian coast. Comparative 

Biochemistry and Physiology 115C: 155-163. 

Borojevic, R. & Peixinho, S. 1976. Eponges 

calcaires du Nord-Nord-Est du Brésil. 

Bulletin du Muséum national d’Histoire 

naturelle 3A, 402: 987-1036. 

Boury-Esnault, N.; Klautau, M.; Bezac, 

C.; Wulff, J. & Solé-Cava, A.M. 1999. 

Comparative study of putative conspecific 

sponge populations from both sides of 

the Isthmus of Panama. Journal Marine 

Biological Associations United Kingdom 

79: 39-50. 

Carter, H.J. 1882. Some Sponges from the 

West Indies and Acapulco in the Liverpool 

Free Museum described, with general 

and classificatory Remarks. Annals and 

Magazine of Natural History (5) 9 (52): 266- 

301,346-368, pls XI-XII. 

Carter, H.J. 1886. Descriptions of Sponges from 

the Neighbourhood of Port Phillip Heads, 

South Australia, continued. Annals and 

Magazine of Natural History (5) 18: 34-55, 

126-149. 

Ciminiello, P.; Dell’Aversano, C.; Fattorusso, E.; 

Magno, S. & Pansini, M. 1999. Chemistry of 

Verongida Sponges. 9. Secondary Metabolite 

Composition of the Caribbean Sponge 

Aplysina cauliformis. Journal of Natural 

Products 62: 590–593. 

Collette, B. & Rützler, K. 1977. Reef fishes 

over sponge bottoms off the mouth of 

the Amazon river. Proceedings Third 

International Coral Reef Symposium: 305- 

310. 

Da Silva, E.M.; Peso-Aguiar, M.C.; Navarro, 

M.F.T. & Chastinet, C.B.A. 1997. Impact 

of petroleum pollution on aquatic coastal 

ecosystems in Brazil. Environmental 

Toxicology and Chemistry 16: 112-118. 

de Laubenfels, M.W. 1934. New sponges 

from the Puerto Rican deep. Smithsonian 

Miscellaneous Collections 91(17): 1-28. 

de Laubenfels, M.W. 1936. A Discussion of 

the Sponge Fauna of the Dry Tortugas 

in Particular and the West Indies in 

General, with Material for a Revision of 

the Families and Orders of the Porifera. 

Carnegie Institute of Washington (Tortugas 

Laboratory Paper N° 467) 30: 1-225, pls 1-22. 

Duchassaing de Fonbressin, P. & Michelotti, 

G. 1864. Spongiaires de la mer Caraïbe. 

Natuurkundige verhandelingen van 

de Hollandsche maatschappij der 

wetenschappen te Haarlem 21 (2): 1-124, pls 

I-XXV. 

Erwin, P.M. & Thacker, R.W. 2007. Phylogenetic 


Referências Bibliográficas 

analyses of marine sponges within the order 

Verongida: a comparison of morphological 

and molecular data. Invertebrate Biology 

126: 220–234. 

Esteves, E.L. 2009. Revisão taxonômica 

e filogenia de Crambe Vosmaer, 1880 e 

Monanchora Carter, 1883 (Crambeidae, 

Poecilosclerida, Demospongiae). Tese de 

doutorado. Museu Nacional, Rio de Janeiro. 

313p. 

Gandolfi, R.; Medina, M.B.; Berlinck, R.G.S.; 

Lira, S. P. de; Galetti, F.C.S.; Silva, C.L.; 

Veloso, K.; Ferreira, A.G.; Hajdu, E. & 

Peixinho, S. 2010. Metabólitos secundários 

das esponjas Aplysina fistularis e Dysidea 

sp. e atividade antituberculose da 

11-cetofistularina-3. Química Nova 33: 1853- 

1858. 

Gao, H.; Kelly, M. & Hamann, M.T. 1999. 

Bromotyrosine-derived metabolites from the 

sponge Aiolochroia crassa. Tetrahedron 55: 

9717-9726. 

George, W.C. & Wilson, H.V. 1919. Sponges of 

Beaufort (N.C.) Harbor and Vicinity. Bulletin 

of the Bureau of Fisheries 36: 129-179, pls 

LVI-LXVI. 

Grant, R.E. 1826. Notice of a New Zoophyte 

(Cliona celata Gr.) from the Firth of Forth. 

Edinburgh New Philosophical Journal 1: 

78-81. 

Gray, J.E. 1867. Notes on the Arrangement 

of Sponges, with the Descriptions of some 

New Genera. Proceedings of the Zoological 

Society of London 2: 492-558, pls XXVII- 

XXVIII. 

Hajdu, E. & Desqueyroux-Faúndez, R. 1994. 

A synopsis of South American Mycale 

(Mycale) (Poecilosclerida, Demospongiae), 

with description of three new species and 

a cladistic analysis of Mycalidae. Revue 

Suisse de Zoologie 101: 563-600. 

Hajdu, E.; Muricy G.; Custódio, M., Russo, C. 

& Peixinho, S. 1992. Geodia corticorticostylifera 

(Demospongiae, Porifera) new astrophorid 

from the Brazilian coast (Southwestern 

Atlantic). Bulletin of Marine Science 51: 

204-217. 

Hajdu, E.; Zea, S.; Kielman, M. & Peixinho, 

S. 1995. Mycale escarlatei n.sp. and Mycale 

unguifera n.sp. (Mycalidae, Poecilosclerida, 

Demospongiae) from the Tropical-western 

Atlantic. Beaufortia 45: 1-16. 

Hardoim, C.C.; Costa, R.; Araújo, F.V.; Hajdu, 

E.; Peixoto, R.; Lins, U.; Rosado, A.S. & van 

Elsas, J.D. 2009. Diversity of bacteria in the 

marine sponge Aplysina fulva in Brazilian 

coastal waters. Applied and Environmental 

Microbiology 75 (10): 3331-3343. 

Hechtel, G.J. 1965. A Systematic Study of the 

Demospongiae of Port Royal, Jamaica. 

Bulletin of the Peabody Museum of 

Natural History 20: 1-103. 

Hechtel, G.J. 1976. Zoogeography of Brazilian 

marine Demospongiae. In: Harrison, F.W. 

& Cowden, R.R. (Eds.) Aspects of Sponge 

Biology. Nova Iorque: Academic Press. p. 

237-260. 

Hechtel, G.J. 1983. New species of marine 

Demospongiae from Brazil. Iheringia, Série 

Zoologia 63: 59-89. 

Heim, I.; Nickel, M. & Brümmer, F. 2007. 

Molecular markers for species discrimination 

in poriferans: a case study on species of the 

genus Aplysina. In: Custódio, M.R.; Lôbo- 

Hajdu, G.; Hajdu, E. & Muricy, G. (Eds). 

Porifera Research: Biodiversity, Innovation 

and Sustainability. Museu Nacional, Rio de 

Janeiro. p. 361-371. 

Heim, I.; Hammel, J.U.; Nickel, M. & Brümmer, 

F. 2007. Salting sponges: a reliable nontoxic 

and cost-effective method to preserve 

poriferans in the field for subsequent 

DNA-work. In: Custódio, M.R.; Lôbo-Hajdu, 

G.; Hajdu, E. & Muricy, G. (Eds). Porifera 

Research: Biodiversity, Innovation and 

Sustainability. Museu Nacional, Rio de 

Janeiro. p. 373-377. 

Higgin, T. 1877. Description of some Sponges 

obtained during a Cruise of the Steam-Yacht 

‘Argo’ in the Caribbean and neighbouring 

Seas. Annals and Magazine of Natural 

History (4) 19: 291-299, pl. XIV. 

Hyatt, A. 1875. Revision of the North American 

Poriferae; with Remarks upon Foreign 

Species. Part I. Memoirs of the Boston 

Society of Natural History 2: 399-408, pl. 

XIII. 

Isbister, G.K. & Hooper, J.N.A. 2005. Clinical 

effects of stings by sponges of the genus 

Tedania and a review of sponge stings 


273


worldwide. Toxicon 46: 782-785. 

Keller, C. 1889. Die Spongienfauna des 

rothen Meeres (I. Hälfte). Zeitschrift für 

Wissenschaftliche Zoologie 48: 311-405, pls 

XX-XXV 

Klautau, M.; Russo, C.; Lazoski, C.; Boury- 

Esnault, N.; Thorpe, J. & Solé-Cava, A. 

1999. Does cosmopolitanism result from 

overconservative systematics A case study 

using the marine sponge Chondrilla nucula. 

Evolution 53: 1414-1422. 

Kossuga, M.H.; Lira, S.P. de; Nascimento, 

A.; Gambardella, M.T.P.; Berlinck, R.G.S.; 

Torres, Y.R.; Nascimento, G.G.F.; Pimenta, 

E.; Silva, M.; Thiemann, O. & Hajdu, E. 

2007. Isolamento e Atividades Biológicas 

de Produtos Naturais das Esponjas 

Monanchora arbuscula, Aplysina sp., Petromica 

ciocalyptoides e Topsentia ophiraphidites, da 

Ascídia Didemnum ligulum e do Octocoral 

Carijoa riisei. Química Nova 30: 1194-1202. 

Kossuga, M.H.; Nascimento, A.; Reimão, J.Q.; 

Tempone, A.G.; Taniwakin N.N.; Veloso, 

K.; Ferreira, A.G.; Cavalcanti, B.C.; Pessoa, 

C.; Moraes, M.O.; Mayer, A.M.S.; Hajdu, 

E. & Berlinck, R.G.S. 2008. Antiparasitic, 

antineuroinflammatory, and cytotoxic 

polyketides from the marine sponge Plakortis 

angulospiculatus collected in Brazil. Journal 

of Natural Products 71: 334–339. 

Lamarck, J.B.P. 1814. Sur les polypiers empâtés. 

Suite du mémoire intitulé: Sur les Polypiers 

empâtés. Suite des éponges. Annales du 

Muséum national d’histoire naturelle 20 

(6): 432-458. 

Lamarck, J.B.P. 1815 [1814]. Suite des polypiers 

empâtés. Mémoires du Muséum d’Histoire 

Naturelle 1: 69-80, 162-168, 331-340. 

Lamarck, J.B.P. 1816. Histoire naturelle des 

animaux sans vertèbres, présentant les 

caractères généraux et particuliers de ces 

animaux, leur distribution, leurs classes, 

leurs familles, leurs genres, et la citation 

des principales espèces qui s’y rapportent. 

2. Paris: Verdière. 568p. 

Lazoski, C.; Solé-Cava, A.M.; Boury-Esnault, 

N.; Klautau, M. & Russo, C.A.M. 2001. 

Cryptic speciation in a high gene flow 

scenario in the oviparous marine sponge 

Chondrosia reniformis. Marine Biology 139: 

421-429. 

von Lendenfeld, R. 1883. Über 

Coelenteraten der Südsee. II. Mittheilung. 

Neue Aplysinidae. Zeitschrift für 

wissenschaftliche Zoologie 38 (2): 234-313, 

pls X-XIII. 

Lerner, C. & Hajdu, E. 2002. Two new 

Mycale (Naviculina) Gray (Mycalidae, 

Poecilosclerida, Demospongiae) from 

the Paulista Biogeographic Province 

(Southwestern Atlantic). Revista Brasileira 

de Zoologia 19: 109-122. 

Marcus, E. du. B.-R. & Marcus, E. 1963. 

Opisthobranchs from the Lesser Antilles. 

Studies on the Fauna of Curaçao and other 

Caribbean Islands 19 (79) 1-76. 

McMurray, S.E.; Blum, J.E. & Pawlik, J.R. 2008. 

Redwood of the reef: Growth and age of the 

giant barrel sponge Xestospongia muta in the 

Florida Keys. Marine Biology 155: 159–171. 

Montagu, G. 1818. An Essay on Sponges, with 

Descriptions of all the Species that have been 

discovered on the Coast of Great Britain. 

Memoirs of the Wernerian Natural History 

Society 2 (1): 67-122, pls III-XVI. 

Muricy, G.; Hajdu, E.; Minervino, J.V.; Madeira, 

A.V. & Peixinho, S. 2001. Systematic 

revision of the genus Petromica Topsent 

(Demospongiae: Halichondrida), with a 

new species from the southwestern Atlantic. 

Hydrobiologia 443: 103-128. 

Muricy, G & Ribeiro, S. 1999: Shallow-water 

Haplosclerida (Porifera, Demospongiae) 

from Rio de Janeiro state, Brazil 

(Southwestern Atlantic). Beaufortia 49 (9): 

83-108. 

Nuñez, C.V.; de Almeida, E.V.R.; Granato, 

A.C.; Marques, S.O.; Santos, K.O.; Pereira, 

F.R.; Macedo, M.L.; Ferreira, A.G.; Hajdu, 

E.; Pinheiro, U.S.; Muricy, G.; Peixinho, S.; 

Freeman, C.J.; Gleason, D.F. & Berlinck, 

R.G.S. 2008. Chemical variability within the 

marine sponge Aplysina fulva. Biochemical 

Systematics Ecology 36: 283–296. 

Pallas, P.S. 1766. Elenchus Zoophytorum 

sistens generum adumbrationes 

generaliores et specierum cognitarum 

succinctas descriptiones cum selectis 

auctorum synonymis. Haia: Peter van Cleef. 

451p. 

Pang, R.K. 1973. The systematics of some 



Jamaican excavating sponges (Porifera). 

Postilla 161: 1-75. 

Patil, A.D.; Kokke, W.C.; Cochran, S.; Francis, 

T.A.; Tomszek, T. & Westley, J.W. 1992. 

Brominated Polyacetylenic Acids from the 

Marine Sponge Xestospongia muta: Inhibitors 

of HIV Protease. Journal of Natural. 

Products 55: 1170–1177. 

Peixinho, S.; Cosme, B. & Hajdu, E. 2005. 

Craniella quirimure sp. nov. from the 

mangroves of Bahia (Brazil) (Tetillidae, 

Spirophorida, Demospongiae). Zootaxa 

1036: 31-42. 

Peso-Aguiar, M.C.; Smith, D.H.; Assis, R.C.F.; 

Isabel, L.M.S.; Peixinho, S.; Gouvea, E.P.; 

Almeida, T.C.A.; Andrade, W.S.; Carqueija, 

C.R.G.; Kelmo, F.; Carrozzo, G.; Rodrigues, 

C.V.; Carvalho, G.C. & Jesus, A.C.S. 2000. 

Effects of Petroleum and its derivatives 

in benthic communities at Baía de Todos 

os Santos/ Todos os Santos Bay, Bahia, 

Brazil. Aquatic Ecosystem Health and 

Management 3: 459-470. 

Pinheiro, U.S.; Hajdu, E. & Custodio, M.R. 

2007. Aplysina Nardo (Porifera, Verongida, 

Aplysinidae) from the Brazilian coast with 

descriptions of eight new species. Zootaxa 

1609: 1-51. 

Reis, M.A.C. & Leão, Z.M.A.N. 2000. 

Bioerosion rate of the sponge Cliona celata 

(Grant 1826) from reefs in turbid waters, 

north Bahia, Brazil. Proceedings 9th 

International Coral Reef Symposium 1: 

273-278. 

Reiswig, H.M. 2002. Family Aulocalycidae 

Family Aulocalycidae Ijima, 1927. Pp. 

1362-1371. In Hooper, J. N. A. & Van Soest, 

R. W. M. (ed.) Systema Porifera. A guide 

to the classification of sponges. 2. Nova 

Iorque, Boston, Dordrecht, Londres, Moscou: 

Kluwer Academic/ Plenum Publishers. 

Ribeiro, S.M. & Muricy, G. 2004. Four new 

sympatric species of Tethya (Demospongiae: 

Hadromerida) from Abrolhos Achipelago 

(Bahia State, Brazil). Zootaxa 557: 1-16. 

Ribeiro, S.; Omena, E. & Muricy, G. 2003. 

Macrofauna associated to Mycale 

microsigmatosa (Porifera, Demospongiae) in 

Rio de Janeiro State, SE Brazil. Estuarine, 

Coastal and Shelf Sciense 57: 951-959 

Ridley, S.O. 1881. XI. Spongida. Horny and 

Siliceous Sponges of Magellan Straits, 

S.W. Chili, and Atlantic off S.W. Brazil. In: 

Gunther, A., ed. Account on the Zoological 

Collections made during the Survey of 

H.M.S. ‘Alert’ in the Straits of Magellan 

and on the Coast of Patagonia. p. 107- 

137,140-141, pls X-XI. 

Ridley, S.O. 1884. Spongiida. In: Report on the 

Zoological Collections made in the Indo- 

Pacific Ocean during the Voyage of H.M.S. 

‘Alert’, 1881-2. British Museum (Natural 

History). London. p. 366-482, pls 39-43; 582- 

630, pls 53-54. 

Ridley, S.O. & Dendy, D. 1887. Preliminary 

report on the Monaxonida collected by 

H.M.S. ‘Challenger’ during the years 1873- 

1876. Report on the Scientific Results of the 

Voyage of H.M.S. “Challenger”. 1873-1876. 

Zoology 20 (59): I – 1xvii, 1-275, pls I-LI. 

Rützler, K. 1975. The role of burrowing sponges 

in bioerosion. Oecologia 19: 203-216. 

Row, R.W.H. 1911. Reports on the Marine 

Biology of the Sudanese Red Sea, from 

Collections made by Cyril Crossland, M.A., 

B.Sc., F.Z.S. XIX. Report on the Sponges 

collected by Mr. Cyril Crossland in 1904- 

5. Part II. Non-Calcarea. Journal of the 

Linnean Society. Zoology 31 (208): 287-400, 

pls 35-41. 

Santos, C.P.; Coutinho, A.B. & Hajdu, E. 2002. 

Spongivory by Eucidaris tribuloides from 

Salvador, Bahia. Journal of the Marine 

Biological Association of the United 

Kingdom 82: 295-297. 

Schmidt, O. 1862. Die Spongien des 

adriatischen Meeres. Leipzig: Wilhelm 

Engelmann. p. i-viii, 1-88, pls 1-7. 

Schmidt, O. 1870. Grundzüge einer Spongien- 

Fauna des atlantischen Gebietes. Leipzig: 

Wilhelm Engelmann. p. iii-iv, 1-88, pls I-VI. 

Schmitt, S.; Hentschel, U.; Zea, S.; Dandekar, 

T. & Wolf, M. 2005. ITS-2 and 18S rRNA 

gene phylogeny of Aplysinidae (Verongida, 

Demospongiae). Journal of Molecular 

Evolution 60: 327-336 

Selenka, E. 1879 [1880]. Ueber einen 

Kieselschwamm von achtstrahligen Bau, und 

über Entwicklung der Schwammknospen. 

Zeitschrift für wissenschaftliche Zoologie 

33: 467-476, pls XXVII-XXVIII. 


275


Sollas, W.J. 1886. Preliminary account of the 

tetraxinellid sponges Dredged by H.M.S. 

‘Challenger’ during the years 1872-1876. Part 

I. The Choristida. Scientific Proceedings of 

the Royal Dublin Society (new series) 5: 

177-199. 

Tavares, R.; Daloze, D.; Braekman, J.C.; 

Hajdu, E.; Muricy, G. & van Soest, R.W.M. 

1994. Isolation of crambescidin 800 from 

Monanchora arbuscula (Porifera). Biochemical 

Systematics Ecology 22 (6): 645-646. 

Thacker, A.G. 1908. On collections of the 

Cape Verde Islands fauna made by Cyril 

Crossland, M.A. The Calcareous sponges. 

Proceedings of the Zoological Society of 

London 49: 757-782. 

Tsurnamal, M. 1967. Chelonaplysilla erecta 

n.sp. (Demospongiae, Keratosa) from 

mediterranean Coast of Israel. Israel Journal 

of Zoology 16: 96-100. 

Uliczka, E. 1929. Die tetraxonen Schwämme 

Westindiens (auf Grund der Ergebnisse der 

Reise Kükenthal-Hartmeyer). In: Kükenthal, 

W. & Hartmeyer, R., eds. Ergebnisse 

einer zoologischen Forschungsreise nach 

Westindien. Zoologische Jahrbücher. 

Abteilung für Systematik, Geographie und 

Biologie der Thiere 16: p. 35-62 

van Soest, R.W.M. 1980. Marine sponges from 

Curaçao and other Caribbean localities. Part 

II. Haplosclerida. In: Hummelinck, P.W. & 

Van der Steen, L.J., eds. Uitgaven van de 

Natuurwetenschappelijke Studiekring voor 

Suriname en de Nederlandse Antillen. No. 

104. Studies on the Fauna of Curaçao and 

other Caribbean Islands 62 (191): 1–173. 

van Soest, R.W.M; Boury-Esnault, N.; Hooper, 

J.N.A.; Rützler, K; de Voogd, N.J.; Alvarez de 

Glasby, B.; Hajdu, E.; Pisera, A.B.; Manconi, 

R.; Schoenberg, C.; Janussen, D.; Tabachnick, 

K.R.; Klautau, M.; Picton, B. & Kelly, M. 2011. 

World Porifera database. Disponível em: 

http://www.marinespecies.org/porifera. 

van Soest, R.W.M. & Zea, S. 1986. A new 

sublithistid sponge Monanthus ciocalyptoides 

n. sp. (Porifera, Halichondrida) from the 

West Indian region. Bulletin Zoologisch 

Museum, Universiteit van Amsterdam 10 

(24): 201-205. 

Vilanova, E. & Muricy, G. 2001. Taxonomy 

and distribution of the sponge genus 

Dysidea Johnston, 1842 (Demospongiae, 

Dendroceratida) in the extractive reserve of 

Arraial do Cabo, SE Brazil (SW Atlantic). 

Boletim do Museu Nacional, Nova Série, 

Zoologia 453: 1-16. 

Weltner, W. 1882. Beiträge zur Kenntniss der 

Spongien. Inaugural Dissertation. Freiburg. 

1-62, pls I-III. 

Wiedenmayer, F. 1977. A monograph of the 

shallow-water sponges of the western 

Bahamas. Birkhäuser Verlag, Basel und 

Stuttgart. Experientia Supplementum 28: 

1-287, pls. 1-43. 

Xavier, J.R.; Rachello-Dolmen, P.G.; Parra- 

Velandia, F.; Schönberg, C.H.L.; Breeuwer, 

J.A.J. & van Soest, R.W.M. 2010. Molecular 

evidence of cryptic speciation in the 

“cosmopolitan” excavating sponge Cliona 

celata (Porifera, Clionaidae). Molecular 

Phylogenetics and Evolution 56 (1): 13-20

Esponjas Marinhas da Bahia - Guia de Campo e ... - Porifera Brasil

You also want an ePaper? Increase the reach of your titles

Delete template?

Save as template?