Painel Gram Negativo Desidratado - Medcorp

Indicadores TípicosCONTROLPoço de controlo límpido, botão grande no poço de crescimento.ANTIMICROBICGROWTHWELLSBotões típicos de crescimento nas colunas 1 e 2;µg/mlA coluna 2 apresenta poços de crescimento "salteados" que devem ser ignorados.0.12Este botão único na coluna 3 cercado por poços límpidos por cima e por baixo indica0.25contaminação pontual e deve ser ignorado.0.5CIM na coluna 1 = 2 µg/ml (concentração mais baixa do poço límpido).1CIM na coluna 2 = >16 µg/ml (crescimento em todos os poços).24CIM na coluna 3 = ≤0.12 µg/ml (sem crescimento em qualquer poço).8CIM na coluna 4 = 2 µg/ml (efeito de rasto nos poços 2-8; efeito típico de rasto de T/S).16CIM na coluna 5 = ≤0.12 µg/ml (efeito de rasto em todos os poços, portanto a CIM é ≤. Isto étípico de algumas combinações antimicrobiano/microorganismo).COLUMN 1 2 3 4 5 6E 0092BCIM na coluna 6 = ≤0.12 µg/mlb) O crescimento na concentração mais baixa do agente antimicrobiano, mas não na concentraçãomais elevada é registado como "I" (Intermédio).c) O crescimento em ambas as concentrações do agente antimicrobiano ou num único poço de umagente antimicrobiano de diluição única é registado como "R" (Resistente).d) Se existir crescimento na concentração mais elevada do agente antimicrobiano, mas não na concentraçãomais baixa, o poço poderá estar contaminado e o teste deve ser repetido.3) O crescimento em mancha em poços isolados indica contaminação. O teste deve ser repetido.4) Poderá observar-se um "efeito de arrastamento" nalgumas combinações de droga/organismo, taiscomo Proteus com Cefuroxime (Crm) e Imipenem (Imp), Serratia com antibióticos beta-lactâmicos(ex: Imipenem (Imp) e Piperacilina/Tazobactam (P/T)), E. coli com Sulfametoxazol (Sx) e B. cepacia eB. pseudomallei com Ceftazidima (Caz) e Piperacilina (Pi). Pode igualmente ser observado um arrastamentocom trimetoprim/Sulfametoxazol (T/S), trimetroprim (T) e Sulfametoxazol (Sx) com a utilizaçãodo sistema de rehidratação/inoculação RENOK ® , devido à concentração do inóculo. O ponto final deveser lido como a menor concentração que, quando comparada com o poço de crescimento, apresenta:a) redução do crescimento de aproximadamente 80% (T/S, T, Sx)b) um botão branco com um diâmetro inferior a 2 mm ouc) um botão branco que é semitranslúcido. 16. Leitura dos Substratos de Identificaçãoa. Ler todos os substratos de identificação contra um fundo branco, excepto CET e os agentes antimicrobianosutilizados para identificação (Cl4, Cf8, P4, K4, Fd64, To4) , que devem ser lidos contra um fundonegro (indirectamente iluminado).b. Fermentadores de glicose-Após 16-24 horas de incubação, se o GLU for amarelo forte, o organismo é umfermentador de glicose e os 24 testes de fermentadores de glicose devem ser lidos. Se a reacção de glicosefor cor de laranja ou vermelho, o organismo é um não fermentador de glicose. Algumas espécies nãofermentadoras podem produzir uma cor dourada, a qual deve ser considerada negativa. Algumas espéciesde Pasteurella não crescem no poço de glicose se este estiver coberto com óleo mineral, mas irão fermentarem sucrose e/ou sorbitol. Se o poço GLU não apresentar crescimento e SUC ou SOR forem positivos,tratar como um fermentador de glicose.c. Não fermentadores de glicose - Os não fermentadores de glicose podem ser lidos após 16-24 horas deincubação, se qualquer das seguintes combinações de testes forem positivas: (1) ARG e OF/G ou ARG eCET, (2) LYS ou (3) ORN. Se todas estas reacções forem negativas e existir crescimento no respectivopoço, registar as CIM, CET e os agentes antimicrobianos utilizados para identificação e voltar a incubardurante 24 horas adicionais antes de efectuar uma leitura e identificação final.d. Se, após reincubação, o organismo ainda se apresentar não reactivo, verificar para se certificar de quehouve crescimento nos carbohidratos de fenol vermelho (especialmente se existir um fraco ou nulo crescimentono controlo de crescimento Mueller-Hinton). Se não houver crescimento nos carbohidratos de fenolvermelho, deve suspeitar-se um organismo fastidioso tal como um Vibrio halofílico ou uma espécieYersinia que cresce melhor a 25° C, ou um membro do grupo Pasteurella/Actinobacillus. Deve ser repetidoum teste de reacção à coloração Gram para confirmar que é gram negativo.No caso de se suspeitar de Vibrio halofílico, voltar a testar através da emulsão de várias colónias em3.0 ml de uma solução salina esterilizada a 0.85%. A turvação final deve ser equivalente à de um padrãode turvação McFarland 0.5 de sulfato de bário. Rehidratar o painel com 25 ml de água de inóculo nãoinoculada com PLURONIC utilizando um RENOK ® . Utilizando uma pipeta de distribuição esterilizada, adicionaruma gota (45-50 ml) da suspensão salina a cada poço de identificação incluindo os poços decrescimento, Cl4 e Cf8. Incubar os painéis a 35° C durante 16-24 horas.e. Antes de efectuar a leitura, adicionar os reagentes do seguinte modo:1) Adicionar 1 gota de hidróxido de potássio (KOH) a 40% e, em seguida, 1 gota de alfa-Naftol a 5% aopoço VP. Aguardar PELO MENOS 20 minutos para a reacção se desenvolver no VP.2) Adicionar 1 gota de cloreto férrico a 10% ao poço TDA. A cor é revelada imediatamente.3) Adicionar 3 gotas do reagente de Kovac* da MicroScan ® ao poço IND. A cor é revelada imediatamente.4) Para todos os não fermentadores de CQ e clínicos, adicionar 1 gota de ácido sulfanílico a 0.8% e, emseguida, 1 gota de N, N-Dimetil-alfa-naftilamina a 0.5% ao poço NIT. Esperar pelo menos 5 minutospara que a reacção NIT se desenvolva antes da leitura.f. Consultar a secção RESULTADOS para obter ajuda sobre a interpretação bioquímica.Controlo da QualidadeA aceitabilidade dos meios de identificação e dos agentes antimicrobianos deve ser verificada testando os organismosem reacções e intervalos de CIM conhecidos. Os resultados para os organismos de controlo da American TypeCulture Collection (ATCC**) recomendados são apresentados na tabela seguinte.A tabela de controlo da qualidade (CQ) é uma tabela abrangente, que inclui intervalos para cobrir todas as diluiçõesnos painéis Desidratados MicroScan ® . Poderá ser necessário extrapolar a partir da Tabela de CQ, com base no tipode painel. O quesegue são exemplos para extrapolação.Organismo de controlo de qualidadePonto final da Diluição(ões) no Intervalo de CQAbrev. tabela de CQ Painel extrapoladoE. coli (ATCC 25922) Ak ≤2-8 2, 8-32 ≤2-8E. coli (ATCC 25922) A/S 1/0.5-4/2 8/4-16/8 ≤8/4P. aeruginosa ATCC 27853 Te 8, 128 1-8 8->8P. aeruginosa ATCC 27853 Tim ≤8-32 16, 64 ≤16, 64Tabela de Controlo da Qualidade de Agentes Antimicrobianos para Gram Positivos Desidratados.E. coli 2 P. aeruginosa 2ATCC 25922 ATCC 27853Intervalo 1 Intervalo Intervalo IntervaloAgente Antimicrobiano Abrev. CIM BP CIM BPAmicacina Ak ≤2-8 ≤16 ≤2-8 ≤16Amoxicilina/Clavulanato de K 3 Aug 2/1-8/4 ≤8/4 >32/16 >16/8Ampicilina Am 2-8 ≤8 >128 >16Ampicillin/Sulbactam 4 A/S ≤1/0.5-4/2 ≤8/4 >32/16 >16/8Azlocilina Az ≤64 --- ≤64 ---Aztreonam 7 Azt ≤1 ≤8 2-8 ≤8Carbenicilina Cb ≤16 ≤16 ≤16-64 ≤16->32Carbenicilina-Pseudomonas Cb-P --- ≤128 --- ≤128Cefaclor Cfr ≤2-8 --- >16 ---Cefamandol Cfm ≤4 ≤8 >32 >16Cefazolina Cfz ≤2-4 ≤8 >16 >16Cefdinir Cdn ≤1 ≤1 N/A N/ACefepime Cpe ≤2 ≤8 ≤2-4 ≤8Cefixima Cfe ≤0.25-1 --- >2 ---Cefonicide Cfc ≤2 ≤8 >16 >16Cefoperazona Cfp ≤4 ≤16 ≤4-8 ≤16Cefotaxima 7 Cft ≤2 ≤8 8-32 ≤8, 32Cefotetan Ctn ≤4 ≤16 >32 >32Cefoxitina Cfx ≤2-4 ≤8 >16 >16Cefpodoxime 8 Cpd ≤0.5-1 ≤2 >4 >4Ceftazidima 7 Caz ≤1 ≤8 ≤1-4 ≤8Ceftizoxima Cz ≤2 ≤8 16->32 32->32Ceftriaxona 7 Cax ≤2 ≤8 8-64 ≤8, 32->32Cefuroxima Crm ≤2-8 ≤4-8 >16 >16Cefalotina Cf 4-16 ≤8-16 >64 >16Cloranfenicol C ≤2-8 ≤8 >16 >16* O reagente de Kovac da MicroScan ® é uma fórmula especial concebida para utilização com os instrumentos MicroScan ® . É necessáriaapenas uma gota se os painéis forem lidos manualmente.** American Type Culture Collection, Manassas, VA EUACinoxacina Cn ≤16 ≤16 >32 >16Ciprofloxacina Cp ≤0.25 ≤1 ≤0.25-1 ≤1ESBL-a (Cefpodoxime) 8 ESa ≤4 ≤4 >4 >4ESBL-b (Ceftazidima) 7 ESb ≤1 ≤1 ≤1->1 ≤1->1Gatifloxacina Gat ≤0.5 ≤2 ≤0.5-2 9 ≤2 9Gentamicina Gm ≤0.5-2 ≤4 1-4 ≤4Imipenem Imp ≤0.5 ≤4 1-4 ≤4Levofloxacina Lvx ≤0.5 ≤2 ≤0.5-4 ≤2-4Lomefloxacina Lmf ≤1 ≤2 ≤1-4 ≤2-4Loracarbef Lor ≤2 ≤8 >16 >16Meropenem Mer ≤1 ≤4 ≤1 ≤4Mezlocilina Mz ≤8 ≤16 ≤8-32 ≤16, 64Moxifloxacina Mxf ≤0.5 ≤2 1->4 9 ≤2->4 9Ácido Naladíxico NA ≤16 ≤16 >16 >16Netilmicina Nt ≤2 ≤8 ≤2-8 ≤8NitroFurantoína Fd ≤32 ≤32 >64 >64Norfloxacina Nxn ≤2 ≤4 ≤2-4 ≤4Ofloxacina Ofl ≤0.5 ≤2 1-4 ≤2-4Piperacilina Pi ≤8 ≤16 ≤8 ≤16Piperacilina/Tazobactam 5 P/T ≤8 ≤16 ≤8 ≤16Sparfloxacina Sfx ≤0.25 --- 0.5-2 ---Sulfametoxazol Sx ≤256 ≤256 N/A N/ATetraciclina Te ≤0.5-2 ≤4 8, 128 8->8Ticarcilina Ti ≤8 ≤16 ≤8-32 ≤16, 64Ticarcilina/K Clavulanato 6 Tim ≤8 ≤16 ≤8-32 ≤16, 64Trimetoprim T ≤8 ≤8 >8 >8Tobramicina To ≤0.5-2 ≤4 ≤0.5-1 ≤4Trimetoprim/Sulfametoxazol T/S ≤0.5/9.5 ≤0.5/9.5 8/152->8/152 8/152->8/1521. Intervalo = Valor esperado (µg/ml)2. Os intervalos de alguns agentes antimicrobianos não estão de acordo com os intervalos de controlo de qualidadeaceitáveis da NCCLS referidos na Tabela 3 do Documento M7-A6 da NCCLS.3. Poderá obter-se um ponto final adicional de 4/2-16/8 com E. coli ATCC 35218.4. Poderá obter-se um ponto final adicional de 8/4-32/16 com E. coli ATCC 35218.5. Poderá obter-se um ponto final adicional de ≤8 com E. coli ATCC 35218.6. Poderá obter-se um ponto final adicional de ≤8-16 com E. coli ATCC 35218.7. Ao utilizar a função de despiste ESBL, pode obter-se um ponto final adicional de >1 µg/ml com K. pneumoniae ATCC700603.8. Ao utilizar a função de despiste ESBL, pode obter-se um ponto final adicional de >4 µg/ml com K. pneumoniae ATCC700603. Não implementado no Sistema de Gestão de Dados (DMS) versões ≤24.20 e LabPro Versões ≤1.1.9. Organismo destinado apenas a testes de Controlo da Qualidade.Tabela de Controlo da Qualidade de Meios de Identificação para Gram Negativos Desidratados.E. coli P. aeruginosa K. oxytoca P. vulgarisATCC 1 25922 ATCC 27853 ATCC 49131 ATCC 49132GLU + - + +SUC - - + +SOR V - + -RAF - - + -RHA + - + -ARA + - + -INO - - + -ADO - - + -MEL V - + -URE 3 - V V VH2S - - - +IND + - + +LYS + - + -ARG - + - -ORN + - - -TDA - - - +ESC - - + VVP - - 4 + VCIT - + + VMAL - + + -ONPG + - + -TAR 3, 5 - V V VACE - + 2 - VCET - + - -OF/G 3 + V + +OF/B Verde azul-Verde Verde azul Verde azul-Verde Verde azul-VerdeP4 3 + + + VNIT 3 + V + +DCB Amarelo Cinzento-Amarelo Amarelo N/ACinzentoCl4 - - - +Fd64 - + - N/ACf8 3 V + V VK4 3 V + V N/ATo4 3 - - - N/A1. American Type Culture Collection, Manassas, VA EUA2. Pode necessitar de 48 horas de incubação.3. Consultar a tabela de testes adicionais de gram negativos desidratados para reacções positivas ou negativas adicionais,consoante necessário para cada composto bioquímico.4. P. aeruginosa ATCC 27853 pode produzir uma cor rosa pálido em VP após 18 horas de incubação, o que deve serinterpretado como negativo.5. Pode ser obtida uma fraca reacção positiva com E. coli ATCC 25922 se os painéis forem incubados durante mais de18 horas.N/A = Não AplicávelNOTA: Os organismos de controlo da qualidade são seleccionados para fornecer reacções positivas/negativas para todosos substratos de identificação. Consequentemente, as identificações de organismos poderão ser diferentes do que éafirmado na tabela de CQ. A aceitabilidade do desempenho do produto deve ser determinada por comparação dosresultados dos testes, não pela identificação.Tabela de Testes Adicionais para Gram Negativos DesidratadosOrganismo Substrato Resultado EsperadoP. stuartii ATCC 49809 URE +P. putida ATCC 49128 TAR +NIT -K4 -S. (P.) putrefaciens ATCC 49138 OF/G -E. faecalis ATCC 29212 P4 -S. aureus ATCC 29213 Cf8 -B. (P.) pickettii ATCC 49129 To4 +ResultadosA. Resultados bioquímicos1. Interpretações bioquímicasPoço Reagent Positivo NegativoGLU Apenas amarelo forte Laranja a vermelhoAlgumas espécies não fermentadoras podem produziruma cor dourada, a qual deve ser considerada negativa.SUCSORRAFRHA Amarelo a Laranja a vermelhoARAAmarelo/LaranjaINOADOMELURE Magenta a rosa Amarelo, Laranja ouRosa PálidoH2S Precipitado negro ou Sem coloração negraBotão negroIND Adicionar 3 gotas (ou uma gota Rosa a Vermelho Amarelo pálido a laranjase o painel for lido manualmente)do reagente de Kovac da MicroScan ® .A cor é revelada imediatamente.Providencia sp. Pode produzir um anel pálido quedeve ser considerado positivo.Comparar LYS, ARG e ORN com DCB. O poço DCB deve ser coberto com óleo para que os resultadosseguintes sejam válidos. Para os não fermentadores, um teste positivo deve ser significativamente mais púrpuraque o controlo de base. Se o controlo de base for púrpura, o agente basal foi alcalinizado e os LYS, ARGe ORN devem ser registadas como negativos. As espécies Achromobacter e Ochrobactrum anthropi tendempara este resultado.Fermentadores:LYS Púrpura a cinzento AmareloARGNão fermentadores:ORN Púrpura Incolor a cinzentoTDA Adicionar 1 gota de cloreto férrico Qualquer tom de castanho Amarelo a laranjaa 10%. A cor é revelada imediatamente.ESC Castanho claro a preto Beige a incolorVP Adicionar 1 gota de KOH a 40% Vermelho Incolore, em seguida, 1 gota de alfa-Naftola 5%. Aguardar pelo menos 20minutos para a reacção se desenvolver. Alguns não fermentadores podem produzir uma corrosa pálido após 18 horas de incubação que deve serconsiderado negativo.ONPG Amarelo IncolorComparar qualquer poço ONPG que apareça límpidocom o poço com cetrimida. Se o ONPG apresentarqualquer coloração amarela comparado com o poçocom cetrimida, registar como positivo.CITMAL Azul a azul-verde Verde a amareloTARACEQualquer tom de azul é considerado positivoCET Crescimento Ausência de crescimentoOF/G NOTA: Comparar com o poço de controlo basal OF.Se o OF basal for verde: Amarelo Verde a azulSe o OF basal for azul ou azul-verde: Amarelo a verde AzulNIT Adicionar 1 gota de ácido sulfanílico Vermelho Incolor a Rosa pálidoa 0.8% em seguida 1 gota de N,N-Dimetil-α-naftilaminaa 0.5%. Aguardar pelo menos 5 minutos para a reacção se desenvolver.P4K4Cl4 Crescimento Ausência CrescimentoFd64 (Resistente) (Sensível)To4Cf8LOC Apenas para autoSCAN ® -4 e para reconhecimento de painéis do sistema WalkAway ® .2. Princípios das reacções de identificaçãoFermentação de carbohidratos; (GLU, SUC, SOR, RAF, RHA, ARA, INO, ADO, MEL): A fermentaçãode um carbohidrato específico dá origem à formação de ácido e uma redução do pH édetectada por um indicador de fenol vermelho.Ureia (URE): A enzima urease quebra a ureia formando amoníaco. O aumento de pH resultanteé detectado pelo indicador vermelho de fenol.Sulfito de hidrogénio (H2S): O gás sulfito de hidrogénio é produzido a partir do tiosulfato desódio e reage com os iões de ferro no meio para produzir um precipitado preto.Indol (IND) O metabolismo do triptofano resulta na formação de indol que é detectado atravésda adição do reagente de Kovac. Na presença de indol, forma-se uma cor vermelha.Lisina, Arginina, Ornitina (LYS, ARG, ORN): A descarboxilação destes amino ácidos resulta naformação de aminas básicas que são detectadas pelo indicador púrpura bromocresol.Triptofan Desaminase (TDA): As bactérias capazes de desaminar o triptofan produzem ácidoindolepirúvico, o qual reage com o citrato férrico de amónia no meio após a adição de cloretoférrico para produzir uma cor castanha.Hidrólise de esculina (ESC): A hidrólise de esculina é detectada pelo citrato de amónia no meioe reage com os produtos hidrolíticos para produzir um precipitado preto.Voges-Proskauer (VP): A acetoína é produzida a partir do piruvato de sódio e é indicado pelaformação de uma cor vermelha após a adição de hidróxido de potássio a 40% e, em seguida,alfa naftol a 5%.Galactosidase (ONPG): A β-galactosidase hidrolisa o orto-nitrofenil-β-D-galactopiranósido, queliberta o orto-nitrofenol de coloração amarela.Citrato, malonato, acetamida, tartarato (CIT, MAL, ACE, TAR): A utilização destes substratoscomo única fonte de carbono para o metabolismo resulta num aumento do pH que é detectadopelo indicador azul bromotimol.Oxidação-Fermentação (OF/G): A oxidação de glicose dá origem à formação de ácido e umaredução do pH é detectada pelo indicador azul bromotimol. O OF/G é comparado com o OF/B(basal) para determinar se foi produzido qualquer ácido.Nitrato (NIT): A capacidade de um microorganismo em reduzir o nitrato a nitrito é detectadapela adição de ácido sulfanílico e, em seguida, N,N-Dimetil-alfa-naftilamina, que produzem umacor vermelha na presença de nitrito.Cetrimida (CET): A tolerância à cetrimida é demonstrada por crescimento em caldo de Mueller-Hinton suplementado com cetrimida.Penicilina, Kanamicina, Colistina, Cefalotina, Nitrofurantoína, Tobramicina (P4, K4, CI4,Cf8, Fd64, To4): A resistência a concentrações específicas destes agentes antimicrobianos édemonstrada por crescimento.3. Identificação do organismoO Livro de Códigos dos Biótipos de Bacilos Gram Negativos Aeróbios MicroScan ® é utilizadopara a identificação de microrganismos de teste desconhecidos. Este livro de códigos é compostopor duas secções: Bacilos aeróbicos Gram negativos-Fermentadores de Glicose e bacilosaeróbicos Gram negativos-Não Fermentadores de Glicose/Fermentador lento de Glicose. Esteslivros de códigos foram gerados a partir da base de dados própria da MicroScan para osensaios incluídos nos painéis Gram negativos desidratados. O livro de códigos Gram negativospermite a análise por computador de 23-24 testes. Estes testes são traduzidos num número debiótipo com 8 dígitos. Consultar o livro de códigos ou o Manual de Microbiologia quanto aométodo de registar os resultados. Este livro de códigos regista a identificação do organismo eas probabilidades relativas. Todas as possibilidades estão impressas na ordem de maior probabilidade,até um total cumulativo de 99.9%.Se ocorrer um número de biótipo que não se possa encontrar no livro de código, dever-se-ásuspeitar em primeiro lugar de um erro de procedimento. Se a repetição dos testes apresentaros mesmos resultados, telefonar para os Serviços Técnicos locais. Para a Assistência TécnicaDade Behring no Brasil, ligar para o 0800-170417.B. Interpretação dos resultados de CIMA sensibilidade é determinada por comparação da CIM de um organismo com o nível do agenteantimicrobiano que pode ser atingido no sangue ou na urina. A tabela seguinte enumera oscritérios interpretativos, conforme recomendados pelo documento M100-S13 da NCCLS. Algunsdestes diferem dos breakpoints interpretativos do fabricante especificados na edição de 1997 doPhysicians' Desk Reference.C. Interpretações dos resultados de ESBLOs isolamentos clínicos de Klebsiella oxytoca, K. pneumoniae, e Escherichia coli com CIMs aumentadas(≥2 µg/ml) de ceftazidime, aztreonam, cefotaxima, Ceftriaxona, ou CIMs de ≥2 ou ≥8 µg/ml(dependendo do tipo de painel) de cefpodoxime devem ser suspeitos de produzir uma beta-lactamasede espectro alargado (ESBL). (A Cefotaxima e o Ceftriaxona são indicadores menos sensíveisa esta concentração). Para obter recomendações para testes e relatórios de confirmação, consulteas actuais normas NCCLS. 22Breakpoints interpretativos*Agentes Antimicrobianos Abrev. Sensível Intermédio ResistenteAmicacina Ak ≤16 32 ≥64Amoxicilina/Clavulanato de K-Enterobacteriaceae Aug ≤8/4 16/8 ≥32/16Ampicilina 3 - Enterobacteriaceae e V. cholerae Am ≤8 16 ≥32Ampicilina/Sulbactam - Enterobacteriaceae e Acinetobacter spp. A/S ≤8/4 16/8 ≥32/16Azlocilina - P. aeruginosa Az ≤64 -- ≥128Aztreonam 4 Azt ≤8 16 ≥32Carbenicilina 1CbP. aeruginosa ≤128 256 ≥512Outros gram negativos ≤16 32 ≥64Cefaclor- Enterobacteriaceae Cfr ≤8 16 ≥32Cefazolina 1 - Enterobacteriaceae Cfz ≤8 16 ≥32Cefdinir-Enterobacteriaceae Cdn ≤1 2 ≥4Cefepime Cpe ≤8 16 ≥32Cefixime - Enterobacteriaceae Cfe ≤1 2 ≥4Cefonicide - Enterobacteriaceae Cfc ≤8 16 ≥32Cefoperazona Cfp ≤16 32 ≥64Cefotaxime 1, 4 Cft ≤8 16-32 ≥64Cefotetan - Enterobacteriaceae Ctn ≤16 32 ≥64Cefoxitina 1 - Enterobacteriaceae Cfx ≤8 16 ≥32Cefamandol 1 -Enterobacteriaceae Cfm ≤8 16 ≥32Cefpodoxima 4 - Enterobacteriaceae Cpd