Escalado de la producción de Anthurium andreanum por métodos ...

MINISTERIO DE EDUCACION SUPERIOR
INSTITUTO NACIONAL DE CIENCIAS AGRICOLAS
INFORME FINAL
Escalado de la producción de Anthurium
andreanum por métodos Biotecnológicos.
J’ DE PROYECTO:: Carlos Morales
LA HABANA, 2006

Código del Proyecto: 2116
Institución líder: Instituto Nacional de Ciencias Agrícolas
Título del proyecto: Escalado de la producción de Anthurium andreanum por
métodos Biotecnológicos.
Año de inicio: 2004
Año en que se realiza el informe: diciembre/2006
Año en que finaliza el Proyecto: diciembre/2006
Líder del Proyecto: MSc. Carlos M. Morales Alvero
Situación: Concluido
Resumen del Informe Final:
El Anturium andreanum se caracteriza por la belleza y durabilidad de sus flores,
conociéndose que la tasa de reproducción por medio de la separación de hijos o
dividiendo el tallo es baja, por lo que se hace necesario utilizar otras vías mas
productivas para reproducirlos, por lo que este proyecto tuvo como objetivo
fundamental, la generalización de la tecnología de multiplicación in vitro del anturio
en la Biofábrica de Frutiflora, para lo cual se estudiaron:
Las condiciones imperantes en la biofábrica en que se va a introducir, como son
intensidad de luz, posición de los estantes
Los factores que determinan la supervivencia en la Aclimatizacion y en el
crecimiento y desarrollo de la plantas en vivero ( ambiente , el sustrato, el tipo de
variedad).
La influencia del uso de bioestimuladores en el vigor de las vitroplantas
El uso de biofertilizantes a base de HMA en el crecimiento y desarrollo de las
plántulas.
Resultados, Conclusiones y Recomendaciones del Proyecto.
Presentar conclusiones finales del proyecto.
.Se definió la posición que debían tener los estantes dentro del laboratorio.
• Se determinó la cantidad de luces y la posición de las mismas en el cuarto
de crecimiento.
• Se determinó que había que acotar los pases que se le diera al material,
debido a que se disminuye el peso fresco de las vitroplantas.
• Se recomendó la utilización del Pectimorf en la última fase del proceso,
para obtener mayor porcentaje de vitroplantas por lote con un vigor
adecuado para la Aclimatizacion.
• La Aclimatizacion es una fase decisiva dentro de la tecnología, por lo que
es necesario el control de un grupo de factores (ambiente, sustrato, y
variedades entre otros) que son determinantes en esta fase.
• En la fase de vivero, teniendo en cuenta que en el ambiente que se propicie
se debe evitar la incidencia directa de sol, y disminuir la incidencia de luz
entre un 50 y 75%, el sustrato que se utilice puede limitar
considerablemente el crecimiento y desarrollo de las plantas, e incluso la
supervivencia de las mismas.
1

• La aplicación de Ecomic a razón de 5 a 7 gramos por planta en el vivero
influyo positivamente en el crecimiento de las plantas, independientemente
del porcentaje de materia orgánica del sustrato.
• No se detectó la incidencia de plagas y enfermedades que pudiesen limitar
su diseminación a mayor escala.
• Cuando se introduce una nueva tecnología en la biofábrica es decisivo
adiestrar al personal.
Estimar el potencial de uso del conocimiento, de la tecnología, del producto o del
servicio generado por el proyecto.
En este sentido es importante destacar, que la ejecución de este proyecto permitió
conocer, que esta tecnología es posible ponerla a punto en las biofábricas del
país, pero para poder generalizarla a otros niveles, la estabilidad del personal y la
asesoría a los mismos es muy importante, también mostró que es un producto que
tiene salida como planta en maceta y que para que el protocolo sea eficiente es
necesario conocer las características de las plantas a reproducir y las condiciones
del lugar en que se trabaja.
Metas alcanzadas y justificar las que no fueron resueltas.
• Puesta a punto la tecnología de micropropagación de anturio de acuerdo a
las características de la biofábrica de Frutiflora.
• Conocidos los factores que mas inciden en la Aclimatizacion.
• Conocidos las características de los sustratos a utilizar en la fase de vivero.
• Determinada la influencia de las micorrizas en el sustrato con diferentes
contenidos de Materia orgánica.
3.3.5 Recursos financieros ejecutados por el proyecto.
Validación de Resultados.
Los resultados se validaron en la biofábrica de Frutiflora, donde se obtuvieron
vitroplantas de distintos colores, se mejoraron las condiciones ambientales para la
Aclimatizacion y se comparó el crecimiento y desarrollo de las vitroplantas en
diferentes sustratos, comparándolas con el que se usaba en la Biofábrica.
Difusión.
Se impartieron dos conferencias con respecto al cultivo del anturio, la primera en
la escuela superación de la empresa y la segunda en la UNAH.
Título: Anturio Ponente: MSc. Carlos M.Morales/2005.
.
Publicaciones del proyecto y trabajos presentados en evento.
• I TALLER SOBRE APLICACIONES PRÁCTICAS DEL PECTIMORF INCA.
2005.
• Evaluación del PH de los sustratos como característica determinante en el
crecimiento y desarrollo de los cultivos de tomate (Licopersicon esculentum,
2

Mill), fénix (Phoenix ssp.) y anturio (Anturium andreanum) Calaña. J. M. y
col, 2006 XV Cong. Cient. INCA Libro Resumen. p. 36. (digital)
• Determinación de la influencia de las características de los sustratos sobre
el crecimiento y desarrollo del anturio ((Anturium andreanum) var. Tropical.
Paneque V.M. y col, 2006 XV Cong. Cient. INCA Libro Resumen. p. 36.
(digital)
• EFECTO DEL BIOFERTILIZANTE EcoMic® EN UN GRUPO DE PLANTAS
ORNAMENTALES. C, Morales, J. Corbera y R. Rivera. , 2006 XV Cong.
Cient. INCA Libro Resumen. p. 36.
Equipo del Proyecto.
MSc. Carlos M. Morales Alvero
Dr. Víctor M. Paneque Pérez
MSc. Jorge Corbera Gorotiza
Ing. Juan M. Calaña Naranjo
MSc. Alfonso León Valido
Fecha de elaboración
27/11/2006.
Metodología de ejecución.
Tarea 1. Generalizar la tecnología de reproducción acelerada del Anthurium
andrianum
• Hacer levantamiento físico, organizativo y material con respecto a las
condiciones imperantes en la biofábrica de Frutiflora)
• Dar asesoría práctica al personal de la biofábrica.
Tarea 2. Proponer las condiciones adecuadas para la aclimatizaciónción de las
vitroplantas.
• Determinar la influencia de algunas variantes climáticas como son la época de
trasplante y la luz, para lo cual se van a montar experimentos en invierno y
verano, y en cada época con y sin cobertores.
• Estudiar si la utilización del antiestrés Biobras-16 influye en la supervivencia
de las vitroplantas.
• Probar la influencia de diferentes sustratos en la supervivencia para lo cual se
van a probar diferentes combinaciones de portadores.
• Estudiar si hay algún efecto positivo con la utilización del biofertilizante a base
de micorrizas Ecomic, en forma de pasta, en la supervivencia, crecimiento y
desarrollo de las vitroplantas.
Tarea 3. Definición y producción de sustratos adecuados para el crecimiento y
desarrollo del Anturio en todas sus fases y etapas.
3

Para dar cumplimiento a esta tarea, se dieron los pasos que a continuación se
exponen:
1. Localizar, obtener y caracterizar portadores (abonos orgánicos y otros) que
tuvieran la posibilidad de utilizarse en la elaboración de fórmulas de
sustratos para la producción de Anturio.
2. Hacer mezclas con los diferentes portadores y obtener fórmulas de
sustratos con características adecuadas para el cultivo del Anturio.
3. Desarrollar experimentos utilizando los sustratos que presenten las
características más adecuadas y determinar los que más se correspondan
con el crecimiento y desarrollo de cada fase del cultivo del Anturio. Los
estudios se hicieron en las fases de Aclimatación y de Vivero.
Tarea 4. Determinar las plagas y enfermedades que más atacan el cultivo y sus
formas de control.
Para ello se harán chequeos mensuales de forma visual, en los lotes de plantas
de anturio que se encuentran en distintas fases del crecimiento (plantas madres,
aclimatizacion y vivero), así como en caso de ser de consideración las
afectaciones se determinara la forma de control.
Tarea 5. Hacer el instructivo del cultivo a partir de la micropropagación in vitro .
Una vez concluida cada una de las tareas planificadas, se recopilará la
información y se hará un documento donde se detallará la forma de cultivar el
anturio multiplicado a través del cultivo in vitro.
Resultados del proyecto
Tarea. 01
Título: Generalizar la tecnología de reproducción acelerada del Anthurium
andrianum
Responsables del subproyecto y tiempo de dedicación.
MSc. Carlos M. Morales Alvero 15%
Resultados Parciales.
Los resultados obtenidos en el período cubierto por el subproyecto.
Estaba programado que se llevara a cabo en la biofábrica de Frutiflora,
complementándose en el laboratorio de Biotecnología de Instituto Nacional de
Ciencias Agrícolas, lo cual se dificulto por diferentes problemas que confrontaron
en la citada Biofábrica, carencia de recursos, roturas de diferentes equipos e
inestabilidad del personal a cargo del proyecto, habiéndose asumido por nuestro
laboratorio los problemas de recursos y de equipos, por ejemplo haciendo
nosotros los medios de cultivo, pero la carencia de personal determinó la pérdida
de todo el trabajo realizado hasta el momento.
4

Relatar lo que fue ejecutado en relación con el cronograma de actividades
propuesto por el subproyecto.
Se asesoró en todo el período al personal indicándole como debía llevar las
distintas etapas de la tecnología para optimizar el proceso de obtención de
vitroplantas.
Identificación de necesidades futuras de investigación.
Sería importante estabilizar al personal de la biófabrica adiestrado e impartir
asesoría a los nuevos.
Indicar otras investigaciones que se deban realizar dentro de este
subproyecto.
Estudiar la forma de usar métodos sustentables para abaratar el costo de la
tecnología.
Tarea 2. Proponer las condiciones adecuadas para la aclimatización de las
vitroplantas.
Resultados.
Trabajo 1.
Determinación del período Aclimatizacion en el cultivo.
Se tomaron 48 vitroplantas de las variedades Tropical, Merengue y Sonate, con
una altura entre 1.5 y 2.5 cm , entre 2 y 4 hojas y masa fresca entre 0.15 y 0.25g,
El trabajo se hizo en junio/2004, para lo que se utilizaron bandejas plásticas de
40 pocillos con una capacidad 35 cm 3 cada uno, manteniéndose una alta
humedad relativa por medio del riego por aspersión.
Se contaron las vitroplantas muertas con una periodicidad de 15 días, finalizando
a los 90 días de trasplantadas.
5

No. plts. muertas
14
12
10
8
6
4
2
0
Tropical
Merengue
Sonate
15 30 45 60 75 90 Días de muestreo
Fig.1 Plantas muertas por variedad en muestreos quincenales.
En la figura 1 se observa el resultado del conteo de supervivencia en las tres
variedades estudiadas, donde se puede apreciar en primer instancia diferencias
en los valores de supervivencia de las mismas, encontrando que en la variedad
Tropical la mortalidad detectada fue baja, en cambio la variedad Sonate mostró
valores superiores de mortalidad, lo que nos indica que es importante conocer las
características de las variedades con que se trabaje con el fin de utilizar métodos
que asemejen mas las condiciones imperantes en el cultivo in vitro con vistas a
reducir los índices de mortalidad en las variedades mas sensibles al cambio que
se lleva a efecto en la Aclimatizacion (Agramonte y col, 1998). Otro aspecto
observado es el hecho que independientemente de la variedad, se percibe que
alrededor de los 60 días del trasplante disminuye la mortalidad al mínimo, lo que
coincide con los resultados expuestos por Chacón (1999) y Abreu (2006 ),
quienes señalaron trabajando con otros cultivos que a partir de un momento de
trasplante la mortalidad de las vitroplantas es mínima.
Referencias.
1. Abreu E. et all, 2006. Evaluación de plantas de Henequén (Agave
fourcroides Lem) durante la fase de Aclimatizacion. Programa y
Resúmenes. XV Congreso Científico. INCA. Pag. 150.
2. Agramonte, D, Jiménez, F y Dita, M (1998) Aclimatización. En Propagación
y Mejora Genética de Plantas por Biotecnología. Pérez ponce, J. N. (Ed),
Instituto de Biotecnología de las Plantas, Santa Clara, Cuba p 193-206
3. Chacón, A. G. et all Preacondicionamiento in vitro y Aclimatizacion de
plantas de ñame. (Dioscorea trífida D. Alata). Memoria Jornada de
investigación 1999 p. 132 San José Universidad de Costa Rica
6

Trabajo 2.
Efecto de diferentes factores en la Aclimatizacion del anturio. (Anturium
andreanum.)
INTRODUCCION
A diferencia de las técnicas tradicionales de reproducción, el cultivo in vitro de
tejidos vegetales permite la propagación de grandes volúmenes de plantas en
menor tiempo; así como el manejo de las mismas en espacios reducidos El
enorme potencial que posee la aplicación de esta técnica de micropropagación ha
propiciado que en los últimos años se haya incrementado el número de
laboratorios para la producción comercial de plantas ornamentales y frutales
(Anon, 2005 ).
La micropropagación in vitro consta de diferentes fases,(Krikoriam y Roca, 1991),
entre las que se destaca la aclimatización por ser una de las fundamentales en un
sistema de reproducción acelerada a gran escala, porque depende de ello la
eficiencia del proceso y la calidad final de las plantas producidas (Díaz et al.,
2004)
Ortiz (2000) se refirió a los factores que influyen en la "aclimatación", señalando
que la eficiencia del proceso depende del manejo que se haga de los mismos, por
lo que este trabajo tiene como objetivo, determinar la influencia de diferentes
factores en la aclimatización del anturio.
1.- Estudio del efecto de diferentes sustratos en la Aclimatizacion.
Se sembraron 15 vitroplantas por sustrato de la variedad Merengue con un peso
de masa fresco promedio entre 0.07 y 0.11g, entre 2 y 3 hojas y largo del pecíolo
entre 1.5 y 2.0 cm. Para el trabajo se utilizaron bandejas plásticas de 144 pocillos
con una capacidad 25 cm 3 cada uno, el riego por aspersión mantuvo un alto
porcentaje de humedad relativa.
A partir de varios portadores (Tabla 1),. se elaboraron 5 sustratos mediante
diferentes combinaciones entre los mismos (Tabla 2), plantándose las vitroplantas,
en bandejas plásticas de 144 pocillos con una capacidad 25 cm 3 cada uno. El
trasplante se hizo en junio/2005, manteniéndose la humedad relativa alta a través
del riego por aspersión, utilizándose la variedad Merengue.
Se caracterizaron las plántulas a los 75 días del trasplante para lo cual se midió el
peso fresco, la altura del pecíolo y el número de hojas.
7

Tabla 1.- Caracterización física de los sustratos.
Pesos Densidad Volumen Densidad Relación
Sustratos Componentes 3 3 3
g g/cm cm g/cm Suelo/M
Turba ácida 40 0.72 55.55 2.92
1 Est. vacuno 40 0.38 105.26 0.59 5.53
Suelo 20 1.00 20.00
1.00
2
3
4
5
6
Turba ácida 40 0.72 55.55 3.19
Est. vacuno 40 0.38 105.26 0.52 6.05
Zeolita 20 1.15 17.39
1.00
Turba ácida 40 0.72 55.55 0.54
Est. vacuno 40 0.38 105.26 0.56 1.02
Paja Arroz 20 0.94 103.09
1.00
Turba ácida 40 0.72 55.55 1.56
Est. vacuno 40 0.38 105.26 0.48 2.95
Fibra coco 20 0.56 35.71
1.00
Turba ácida 70 0.72 97.22 3.24
0.81
Suelo 30 1.00 30.00
1.00
Turba ácida
Suelo *
30
70
0.72
1.00
41.67
70.00
0.94
1.68
1.00
* Ferralítico rojo típico lixiviado (Hernández et al ,1999)
Tabla 2.- Caracterización química de los sustratos utilizados.
Base húmeda
Sustratos
Na. K Ca
(cmol.kg
Mg P MO N
-1 ) (ppm) (%) (kg.ha -1 ) pH
1 2.01 13.7 22.7 10.6 895 28.3 0.69 6.8
2 6.98 8.9 27.0 9.8 894 16.8 0.69 6.7
3 1.12 10.8 18.2 8.51 920 36.2 0.77 6.4
4 3.70 8.1 17.1 8.94 223 26.4 1.51 6.7
5 0.28 0.67 14.8 5.92 540 19.2 .93 5.5
6 0.27 0.39 18.2 7.92 126 10.4 1.26 6.4
8
Proporción
3/5.5/1
O3/6./1
0.5/1/1
1.5/3/1
3/1
1.68/1

Base seca
Sustratos
Na. K Ca
(cmol.kg
Mg P MO N
-1 ) (ppm) (%) (kg.ha -1 )
1 2.88 19.7 32.7 15.5 1286 40.7 1.06
2 10.6 13.6 41.0 14.4 1286 25.6 1.06
3 1.76 16.9 28.4 13.3 1438 56.6 1.21
4 6.32 13.8 29.1 15.3 3.81 45.0 2.58
5 0.46 1.09 24.1 9.65 8.8 43.8 1.52
6 0.38 0.54 25.0 10.9 173 18.4 1.73
Resultados
En la tabla 3, se observa el resultado de los valores al aplicarse un análisis de
comparación de proporciones observándose diferencias significativas entre los
mismos, destacándose el sustrato 1 (turba ácida + estiércol + suelo) por ofrecer el
mayor porcentaje de supervivencia, 98% el cual difiere significativamente del
resto, en tanto que los de menor supervivencia fue el mostrado por el 6, lo que
coincidió con el mayor valor de densidad (tabla 1), conociéndose que ese
parámetro define la supervivencia de un grupo de plantas, (Paneque y col, 2006),
por otro lado los sustratos de mejor comportamiento coincidieron con las
combinaciones que contaban con menor cantidad de MO, (tabla 1) lo cual
consideramos pueda deberse a las propiedades que le da la materia orgánica al
sustrato, entre los que se destaca la posibilidad de mantener buena humedad en
el mismo, conociéndose las necesidades de humedad que tienen las vitroplantas
en el momento de la aclimatización, en este sentido Preece y Sutter, (1991) se
refirieron, a que la desecación de las plántulas debido a la pérdida de agua foliar y
restringida toma de la misma por la incapacidad de las raíces en los primeros
momentos, es la principal muerte de las plántulas en las condiciones ex vitro,
también en este sentido se han obtenido resultados inversos, como el reportado
por Abreu (2006) quién planteó que altos tenores de MO en la Aclimatizacion del
Henequén no fueron favorables en el proceso de Aclimatizacion, argumentando
como factor negativo la incidencia de hongos que se produce, al igual que Pérez
et al., (1999) quienes reportaron un aumento de la mortalidad al aumentar el
contenido de humus, lo que nos indica la necesidad de estudiar las características
de cada especie con vistas a optimizar el proceso.
En el caso del pH, otro de los parámetros reportados como importantes, lo valores
se mantuvieron cerca del rango recomendado, Tabla 2 en este sentido Jiménez y
Caballero (1990) señalaron que el pH en el sustrato para plantas en contenedores
(macetas) debe oscilar entre 5.5 y 6.5.
9

Tabla 3.- Efecto del sustrato sobre la supervivencia de las vitroplantas.
No. Sustratos empleados
Supervivencia
(%)
Es ± x
1 t. ácida + est. vacuno + suelo 98.7 a 0.35
2 t. ácida + est. vacuno + zeolita 87.4 e 0.27
3 t. ácida +est. vacuno + paja de arroz 96.2 b 0.35
4 t. ácida + est. vacuno + fibra de coco 87.6 d 0.35
5 t. ácida + suelo 88.1 c 0.28
6 t. ácida + suelo
F = 4.17 ***
80.5 f 0.30
Valores con letras iguales no difieren significativamente entre si con p < o,o5
Es de destacar con respecto a la masa fresca por sustrato, que no se encontraron
diferencias significativas entre los tratamientos estudiados, (tabla 4) , lo que
consideramos se deba a que el anturio es una planta de crecimiento lento, lo que
determina que en la fase de aclimatizacion no hallan diferencias considerables
entre la vitroplantas, y por otro lado que en esta etapa las vitroplantas para poder
sobrevivir, necesitan sobreponerse a la fuente de estrés que le proporcionan las
condiciones ex Vitro, durante las primeras semanas, lo que coincide con lo
señalado por Kozait y col (1991), si embargo en vitroplantas de cultivos con mayor
ritmo de crecimiento como la caña de azúcar, aclimatizadas en distintos sustratos
se han descrito diferencias en las variables fisiológicas (Ortiz; De la FE y Lara,
1998)
Tabla 4.- Resultado del análisis de varianza
Sustrato Masa fresca
(g)
variable
Altura pecíolo (cm)
No.
hojas
1 0.36 3.84 4.89
2 0.41 3.86 5.44
3 0.36 3.69 5.11
4 0.46 3.76 4.56
5 0.48 3.96 5.11
6 0.38 4.07 5.44
ES ± 0.07 ns 0.15 ns 0.33 ns
2.- Estudio del efecto de la época del año en el trasplante.
Para determinar el efecto de las condiciones ambientales imperantes en distintos
momentos en Cuba, las vitroplantas se trasplantaron en dos épocas del año
contrastantes, (invierno y verano) con respecto a la temperatura, intensidad de
radiación solar, humedad relativa y precipitación principalmente (Rivero y Jam,
2001), realizándose dos veces por época, mayo y julio (verano) y octubre y
diciembre (invierno).
10

En los experimentos 2, 3 y 4 se utilizó el sustrato 1 (t. ácida + est. vacuno y suelo),
por ser el que dio los mejores resultados.
Resultados
El efecto del ambiente en el momento del trasplante (Tabla 4), no mostró
diferencias significativas entre las vitroplantas por tratamiento según la época del
año, (invierno y verano) bajo condiciones semicontroladas ( incidencia del viento,
del sol y de las precipitaciones), lo cual consideramos positivo, ya que se han
reportado la existencia de pérdidas cuantiosas por la influencia de mismo,
(Agramonte, 1998), conociéndose que la susceptibilidad al ambiente está
íntimamente ligado a las características de la especie con que se trabaje, así
mismo Martínez (2005) señaló que los altos porcentajes de mortalidad que se
alcanzan en la fase de aclimatización depende de las características de las
vitroplantas que van a ser trasladadas a exteriores y en segundo término a que no
se realiza un control adecuado de las condiciones ambientales que permitan
disminuir esas pérdidas. .
Tabla 4. Resultados del ambiente exterior en la supervivencia de las
vitroplantas en la aclimatización
No. Tratamientos Supervivencia (%) Es ± x
1
2
verano
Mayo/2004
Julio/2004
87
88
0.39
0.39
3
4
Octubre/2004
invierno
Diciembre/2005
92
94
0.39
0.39
F = 0.73 ns
3.- Estudio del efecto del factor variedad.
Se utilizaron vitroplantas de tres variedades (Tropical, Merengue y Sonate), las
cuales se plantaron en junio/2004.
Se contó las plantas muertas a los 75 días por variedad con vistas a determinar el
porcentaje de supervivencia de las mismas, haciéndose una caracterización de las
plántulas por variedad en el mismo momento para lo cual se midió:
• Altura de pecíolo.
• Altura de la planta.
• Número de hojas.
• Peso fresco de la planta.
Resultados
La tabla 5 mostró diferencias significativas entre las variedades estudiadas,
donde la variedad Tropical se destaca con respecto a las estudiadas, ofreciendo
11

los mayores porcentajes de supervivencia, lo cual coincidió con lo señalado Silvia
Montes y col, ( 2004 ) en otras fases del cultivo in vitro, en los que las variedades
han tenido diferencias en el resultado mostrado.
Tabla 5.- Efecto del factor variedad en la aclimatización de las vitroplantas.
No. Tratamientos Supervivencia
(%)
Es ± x
1 Tropical 95 a 0.10
2 Merengue 84 b 0.10
3 Sonate 70 c 0.10
F = 4.34 *
Tabla 6.- Promedios de los parámetros estudiados a los 60 días del trasplante.
Variedades
Peso fresco
(g)
Altura de la
planta (cm)
Altura del pecíolo
No. de hojas
(cm)
Tropical 0.78 6.35 4.84 5.10
Merengue 0.31 4.70 3.22 4.56
Sonate 0.28 4.18 3.56 4.44
En la caracterización de las variedades estudiadas (tabla 6) se observó que hubo
coincidencia entre los mayores promedios con los cultivares que mostraron los
porcentajes mas altos de climatización, destacándose la Tropical lo que
corrobora lo señalado con respecto a que las vitroplantas con mayor tamaño
tienen mayores índices de supervivencia, lo que se atribuye a que tienen mas
tejido de reserva para sobreponerse al cambio.
4.- Estudio del efecto del tamaño de las vitroplantas en la supervivencia de
las mismas.
Con el objetivo de establecer grupos de vitroplantas de acuerdo a su tamaño,
conocer el porcentaje de ellas dentro de la población y evaluar el efecto del
tamaño en la supervivencia, se realizo un ensayo, para lo cual se tomaron 10
frascos a los cuales se les determinó el tamaño de las plantas, del largo del
pecíolo y el peso fresco de las vitroplantas. Los resultados fueron sometidos a
análisis de frecuencia, con vistas a formar los grupos por tamaño y de
comparación de proporciones para determinar si existían diferencias entre los
grupos formados de acuerdo a su tamaño.
12

Fig. 2 Resultado del histograma de la distribución de frecuencia de las vitroplantas..
Resultados.
En la figura 2 se muestra el resultado del histograma de la distribución de
frecuencias, encontrando que la mayor cantidad de vitroplantas se encuentra entre
1.5 y 4.5, no siendo representativos la frecuencia de los valores observados por
debajo o por encima (4), por lo que se hicieron tres grupos (tabla 7).
Tabla 7.- Variantes de estudio para el establecimiento de categorías de
vitroplantas por tamaño.
Variante Grupo (cm) Altura de las vitroplantas
1 I 4
El resultado del análisis de comparación de proporciones hecho a los grupos,
arroja diferencias significativas entre los mismos, (tabla 8) resultando que las
vitroplantas categorizadas como grandes (>4) muestran 100% de supervivencia,
en tanto que en las pequeñas (

Tabla 8.- Efecto de la altura de las vitroplantas en la supervivencia
No. Tratamientos
Supervivencia
(%)
Es ± x
I pequeñas 65 a 0.84
II medias 82 b 0.97
III grandes 100 c
F =3.30*
0.11
Es importante tener en cuenta los resultados antes descritos a la hora hacer la
Aclimatizacion de las vitroplantas, debido a que se pueden optimizar las medidas
que disminuyan la mortalidad de las variedades con las tasas mas bajas de
aclimatización .
Referencias
1. Abreu E. et all, 2006. Evaluación de plantas de Henequén (Agave
fourcroides Lem) durante la fase de Aclimatizacion. Programa y
Resúmenes. XV Congreso Científico. INCA. Pag. 150.
2. Aceves, J, y Hernández, J (2005) Propagación comercial de plantas
ornamentales por cultivo in vitro de tejidos vegetales para beneficio social
de la comunidad. Disponibles en
http://www.uv.mx/iiesca/revista2/aceves2.html. Visitada en fecha 06/2005.
3. Agramonte, D, Jiménez, F y Dita, M (1998) Aclimatización. En Propagación
y Mejora Genética de Plantas por Biotecnología. Pérez ponce, J. N. (Ed),
Instituto de Biotecnología de las Plantas, Santa Clara, Cuba p 193-206
4. Anon. (2005) La Violeta africana en Jardinería Disponible en:
http://cocinayhumor.webcindario.com/jardin.html. Visitada en fecha
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Informe final Establecimiento de metodologías eficientes para la
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Doctor en Ciencias. Centro de Bioplantas. Ciego de Avila. 65 p.
19. Rivero, O. Jam, A (2001) Condiciones climáticas generales En: Primera
Nacional a la Convección Marco de las Naciones Unidas sobre Cambio
Climático. p. 25-32.
Fase de aclimatación. (vivero biofábrica de Frutiflora)
Para la ejecución de esta etapa se estudiaron los efectos de los sustratos sobre el
desarrollo y crecimiento del Anturio en la primera fase (aclimatación). El trabajo
experimental se desarrolló durante 6 meses. Se comenzó utilizando plantas
obtenidas por cultivo de tejidos.
Los resultados se muestran en la tabla 1. Se utilizaron tres fórmulas de sustratos.
Como portadores básicos se emplearon la Turba ácida y la Cachaza, las cuales
participan de forma beneficiosa en los valores de pH, contenido de materia
orgánica y concentración de nutrientes. Como portadores complementarios se
utilizaron el suelo, la Zeolita y la Fibra de coco, que influyen en la densidad y en la
porosidad de los sustratos.
En la Tabla 1 se presenta la caracterización química de las tres fórmulas. Todas
las fórmulas presentan buenas características para el crecimiento del Anturio. La
fórmula No. 3 presenta la relación C/N y la densidad más baja.
15

Tabla 1.- Resultados de la caracterización química de los sustratos utilizados en la fase de
aclimatación.
Determinaciones
Fórmulas
1 2 3
Turba Ácida 40 % Turba Ácida 40 % Turba Ácida 40 %
Cachaza 40 % Cachaza 40 % Cachaza 30 %
Suelo 20% Zeolita 20% Fibra Coco 30%
pH 5.8 5.5 5.0
Mat. Orgánica % 27.3 27.0 25.10
Nitrógeno (N) kg/ha 819 810 753
Fósforo (P) ppm 2461 3575 2518
Potasio (K) cmol/kg 1.02 1.30 1.21
Calcio (Ca) cmol/kg 25.0 27.8 24.6
Magnesio (Mg) mol/kg 5.6 4.6 4.8
Sodio (Na) cmol/kg 0.36 0.17 0.80
Cap. C. Bases cmol/kg 31.98 33.87 31.41
Densidad aparente
0.48 0.45 0.40
kg/dm 3
Relación C/N 13.5 11.6 10.90
Nitrógeno total (N) % 1.17 1.35 1.34
Fósforo total (P) % 0.86 0.29 0.72
Potasio total (K) % 0.58 0.56 0.64
Resultados sobre la influencia de las fórmulas de sustratos sobre el
desarrollo y crecimiento del Anturio en la fase de aclimatación.
En esta fase fueron evaluados los efectos de las tres fórmulas de sustratos
presentadas en la (tabla 1) sobre la emisión de hojas, la altura de los tallos y el
largo del peciolo de las hojas de las plantas de Anturio. La información se presenta
en la Tabla 2.
Se observa que no se manifiesta un comportamiento bien definido, pues los
resultados obtenidos en las tres fórmulas son dispersos. No obstante los mayores
valores sobre el largo del pedúnculo se obtuvo con la fórmula No. 3 que se utilizó
la Fibra de coco como portador complementario. Con esta fórmula se obtuvo los
pedúnculos más largos. Este es el carácter que mejor expresa los efectos de los
sustratos sobre el crecimiento y desarrollo de las plantas. Esta fórmula presenta
pH 5 y densidad 0.40 kg/cm 3 , lo cual da mayor porosidad al sustrato.
Tabla 2.- Efectos de diferentes fórmulas de sustratos el cultivo del Anturio en la fase de
aclimatación.
No. Portadores
1
Fórmulas Características
Proporciones
% en Peso
Turba ácida 40
Cachaza 40
Suelo 20
Cant. de
Hojas
Promedio
Altura
Tallos
cm
Largo
peciolo
5.4 2.4 b 5.83 b
16

2
3
Turba ácida 40
Cachaza 40
5.6 3.0 a 4.45 c
Zeolita 20
Turba ácida 40
Cachaza 30
5.7 2.5 b 6.47 a
Fibra de coco 30
Media 5.57 2.63 5.58
E. S. de la media 0.08 NS 0.05 * 0.09 *
Observaciones: Tomando como referencia que el carácter que mejor refleja el
crecimiento y el desarrollo del Anturio (largo del peciolo de las hojas) y observando
que en la tabla 2 la fórmula No. 3, este carácter presentó diferencias significativas
con relación a las fórmulas No. 1 y 2. Se estima que en esta etapa la Fibra de
coco como portador complementario es el que tuvo el mejor comportamiento.
Como se observa en los resultados obtenidos en los trabajos de sustratos en la
Aclimatizacion, este factor es determinante en esta fase, pero como se ve en los
dos estudios, no es posible hacer una recomendación estricta en cuanto a los
portadores ya que sus características varían mucho, conociéndose que los
productores trabajan con los mas asequibles, por lo que consideramos de suma
importancia que se haga un estudio de los portadores de que se dispone y que los
parámetros del sustrato que se prepare esté en los rangos recomendados.
(Densidad entre 0.6 y 08 kg/dm 3 , pH entre 5.5 y 6.5 y Contenido de MO entre 20 y
60%)
Conocimientos, productos y servicios en el período.
Asesoría a la biofábrica de Frutiflora en las distintas fases de la micropropagación
in vitro de plantas ornamentales.
Se les suministro vitroplantas de anturio a dos productores.
Metas alcanzadas en el período.
• Conocidos los factores que mas influyen en la mortalidad de las
vitroplantas.
• Mejoradas las condiciones ambientales para la Aclimatizacion.
• Disminuidos los porcentajes de mortalidad.
• Obtenidos los parámetros que mas influyen en el crecimiento y desarrollo
de las plantas en vivero.
Difusión de tecnologías, conocimientos y validación de resultados.
A la biofábrica de Frutiflora se les mostró teórica y prácticamente el protocolo de
micropropagación in vitro del anturio, se les dio asesoría para de acuerdo a sus
condiciones se pudiera validar satisfactoriamente la tecnología, haciendo algunas
precisiones para poder obtener plantas como mayor vigor y disminuir los
porcentajes de mortalidad.
17

Identificación de necesidades futuras de investigación.
Sería importante seguir estudiando en el protocolo de micropropagación in vitro
vías sustentables para disminuir los costos y para aumentar el vigor de las
vitroplantas obtenidas en la biofábrica.
Tarea 3. Definición y producción del sustrato mas adecuados para el crecimiento y
desarrollo del Anturio en todas sus fases y etapas.
Líder: Dr. Víctor M. Paneque Pérez
Situación: Concluido
Unidad participante: INCA
Resumen
El trabajo experimental se desarrolló en el período junio 2004 a oct. del 2006 en
los Departamentos de Genética y Biofertilizantes y Nutrición de las Plantas del
INCA y en el Laboratorio de Biotecnología de la Empresa Tropiflora. El objetivo
fundamental de las investigaciones fue obtener fórmulas de sustratos que sirvieran
de base y posibilitaran la producción de Anturio en todas las fases de desarrollo y
crecimiento. Para la ejecución de las investigaciones se desarrolló la Tarea No. 3
que tenía asignado realizar tres trabajos con los siguientes aspectos
fundamentales:
Los resultados mostraron que en las condiciones que se hicieron los trabajos se
encontraron, estudiaron y caracterizaron 10 portadores. Con ellos se prepararon
17 fórmulas de sustratos y se utilizaron en los experimentos – fórmulas – Las
mejores combinaciones fueron utilizar sustratos que contengan 40 % de Turba
ácida, 40 % de Cachaza y 20 % de Zeolita. También la utilización de la Fibra de
coco al 20 % como portador complementario resultó adecuado. Se determinó que
las características fundamentales que debe tener un sustrato para el cultivo del
Anturio son: la densidad de 0.6 a 0.65 kg.dm -3 y valores de la materia orgánica de
aproximadamente del 20% y el pH de 6 a 6.5 y que para la producción de
sustratos para el cultivo del Anturio lo más adecuado es utilizar dos portadores
básicos y uno complementario. Se recomienda que cuando se tenga necesidad de
obtener fórmulas para el cultivo del Anturio se utilicen la información ofrecida en
este trabajo.
Resultados.
Se localizaron, seleccionaron y caracterizaron física y químicamente los
portadores (abonos orgánicos y otros) que tienen posibilidades de utilizarse para
la producción de sustratos.
Se hizo un trabajo de investigación en los distintos lugares donde existían y
utilizaban los diferentes portadores que podían ser empleados para la producción
18

de sustratos. Se obtuvieron muestras y se trajeron para el Dpto. de Biofertilizantes
y Nutrición de las Plantas. En el Laboratorio de agroquímica y los suelos se
estudiaron, se hicieron los análisis correspondientes y se caracterizaron.
Los portadores más importantes que se localizaron, obtuvieron y caracterizaron
fueron:
1. Turba Ácida
2. Cachaza
3. Compost de Fibra de Coco
4. Turba Rubia
5. Estiércol Vacuno
6. Cáscara de Arroz
7. Cáscara de Maní
8. Humus de Lombriz
9. Suelo
10. Zeolita
En las Tablas 1, 2 y 3 se presentan los resultados de la caracterización química de
todos los portadores seleccionados y analizados.
Tabla 1.- Resultados de la caracterización química de los abonos orgánicos (portadores)
utilizados para preparar los sustratos para la producción de posturas de Anturio.
Determinaciones Turba
ácida
Portadores (datos en base húmeda)
Cachaza
Compost
Fibra de
coco
Cáscara
de arroz
Humedad % 36.7 48.22 73.94 10.60
Densidad aparente kg.dm -3
0.70 0.56 0.56 0.19
pH 3.5 7.1 6.7 6.1
Materia Orgánica 24.70 24.80 15.70 30.40
Nitrógeno Total (N) 0.90 0.75 0.32 1.43
Fósforo Total (P) 0.20 1.44 0.09 0.51
Potasio Total (K) % 0.07 0.14 0.09 0.04
Calcio Total (Ca) 0.45 0.79 0.32 1.48
Magnesio Total (Mg) 0.11 0.25 0.08 0.10
Sodio Total (Na)
0.08 0.08 0.08 0.10
Relación C/N 16:1 19:1 28:1 12:1
Tabla 2.- Resultados de la caracterización química de los abonos orgánicos (portadores)
utilizados para preparar los sustratos para la producción de posturas de Anturio.
Portadores (datos en base húmeda)
Determinaciones Turba Estiércol Cáscara de Humus de
rubia vacuno Maní Lombriz
Humedad % 35.0 29.0 43.54 32.07
Densidad aparente kg.dm -3 0.28 0.38 0.195 0.66
pH 3.2 8.4 6.3 7.9
Materia Orgánica % 61.30 26.05 32.70 30.50
19

Nitrógeno Total (N) 0.60 1.78 1.00 0.97
Fósforo Total (P) 0.07 0.68 0.13 0.41
Potasio Total (K) 0.20 0.08 0.23 0.76
Calcio Total (Ca) 0.90 2.67 0.68 1.94
Magnesio Total (Mg) 0.10 0.97 0.24 0.54
Sodio Total (Na) 0.06 0.17 0.08 0.15
Relación C/N 59:1 9:1 19:1 18:1
Conociendo las características de los portadores y las necesidades de las plantas
de Anturio se prepararon diferentes fórmulas de sustratos, se analizaron y
caracterizaron y con esa información se obtuvieron los criterios para seleccionar
aquellas que podían ser utilizadas para la reproducción del Anturio en sus
diferentes fases de desarrollo.
En las Tablas 4, 5, y 6 se presentan las fórmulas preparadas con los portadores
seleccionados y sus características sobre pH, densidad y contenido de materia
orgánica, que son los aspectos determinantes en un sustrato tomando en cuenta
la experiencia de varios autores (Russell, 1967; Rosabal, 2002; INCA, 2003;
Norieso, 1998; Noriega, 2001 y otros).
Se tomaron como portadores básicos la Turba ácida y la Cachaza. Estos
portadores se mezclaron en proporciones previamente determinadas obteniendo
valores adecuados de pH, densidad y materia orgánica.
Tomando en cuenta los criterios de los autores mencionados fueron seleccionados
y utilizados como portadores complementarios: el suelo, la zeolita, la cáscara de
arroz, el estiércol, humus de lombriz, turba rubia y otros los cuales utilizados en las
proporciones adecuadas pueden regular la densidad de los sustratos y la cantidad
de aire disponible para las plantas. En las Tablas 4, 5, y 6 se muestra que todos
los portadores se han utilizado en diferentes proporciones de modo que se pueda
lograr diferentes características.
Conocidas las propiedades de cada sustrato se puede seleccionar aquellos que
sus características se correspondan con las necesidades del Anturio.
En la Tabla 4 se aprecia que las mejores características las presenta la fórmula
No. 6 que tiene como portador complementario la fibra de coco.
Tabla 4.- Características químicas de las fórmulas de sustratos obtenidas en mezclas
tentativas utilizando portadores clasificados en el trabajo No.1 (1era. Parte).
Fórmulas Características
No. Portadores
Proporciones
%
en Peso
1
Turba ácida
Suelo
70
30
2
Turba ácida
Fibra de coco
80
20
pH
Densidad
kg/dm 3
Materia
Orgánica
%
4.22 0.88 14.0
6.0 0.73 16.80
3 Turba ácida 40 6.6 0.86 15.40
20

4
5
6
7
Estiércol 30
Suelo 30
Turba ácida 40
Estiércol 30
Zeolita 30
Turba ácida 33
Humus de lombriz 34
Suelo 33
Turba ácida 50
Cachaza 30
Fibra de coco 20
Turba ácida 60
Suelo 40
6.7 0.83 16.30
6.25 0.92 17.24
6.1 0.63 22.53
6.4 0.71 18.30
La fórmula No. 1 que está compuesta por dos portadores no tiene propiedades
adecuadas: pH muy bajo, densidad muy alta y materia orgánica muy baja. Las
fórmulas No. 2, 3, 4, y 5 tienen densidad muy alta.
Todas las fórmulas que se presentan en las tablas 5 y 6 tienen características
adecuadas para la producción del Anturio en todas sus etapas.
Al disponer de estas fórmulas y conociendo sus características se facilita escoger
aquellas que mas se adaptan a las necesidades del Anturio y hacer las pruebas
correspondientes para seleccionar y recomendar las que pueden ser utilizadas en
las diferentes etapas de desarrollo del Anturio.
Tabla 5.- Características químicas de las fórmulas de sustratos obtenidas en mezclas
tentativas utilizando portadores clasificados en el trabajo No.1 (2da. Parte).
No. Portadores
8
9
10
11
12
13
Fórmulas Características
Proporciones
% en Peso
Turba ácida 50
Cachaza 30
Zeolita 20
Turba ácida 40
Cachaza 40
Zeolita 20
Turba ácida 45
Cachaza 35
Zeolita 20
Turba ácida 45
Cachaza 45
Cáscara de maní 10
Turba ácida 40
Cachaza 40
Cáscara de arroz 20
Turba ácida 45
Cachaza 45
Cáscara de arroz 10
pH
Densidad
kg/dm 3
Materia
Orgánica
%
6.1 0.69 19.80
6.3 0.68 19.80
6.2 0.69 20.00
5.8 0.54 25.17
6.3 0.53 22.30
5.5 0.52 23.17
21

Tabla 6.- Características químicas de las fórmulas de sustratos obtenidas en mezclas
tentativas utilizando portadores clasificados en el trabajo No.1 (3era. Parte).
No. Portadores
14
15
16
17
Resultados.
Fórmulas Características
Proporciones
% en Peso
Turba ácida 40
Cachaza 40
Suelo 20
Turba ácida 50
Cachaza 30
Suelo 20
Turba ácida 40
Cachaza 30
Fibra de coco 30
Turba ácida 50
Cachaza 30
Fibra de coco 20
pH
Densidad
kg/dm 3
Materia
Orgánica
%
5.9 0.67 23.8
5.9 0.71 23.9
6.2 0.61 25.1
6.1 0.63 22.5
Basado en las fórmulas de sustratos elaboradas y preparadas en el trabajo No.2
se pueden seleccionar las que tienen posibilidades de utilizarse en las distintas
fases de desarrollo del Anturio.
Estudio para la producción de fórmulas de sustratos para el desarrollo del Anturio
en la fase de vivero.
Fase de Vivero
Exp. 1. Influencia de los sustratos sobre el desarrollo y crecimiento del
Anturio en la segunda fase del ciclo biológico (Vivero).
En el trabajo experimental se utilizaron cinco fórmulas de sustratos, los cuales se
presentan en la Tabla 9. Se utilizaron como portadores complementarios el suelo,
la Zeolita en dos proporciones y la Fibra de coco. Se utiliza una fórmula Testigo
compuesta por Turba ácida 80 % y Fibra de coco al 20 %. Esta fórmula la utiliza la
Empresa Tropiflora en la producción del Anturio, por lo cual es de interés utilizarla
como testigo.
El trabajo se desarrolló durante 11 meses. Se hicieron evaluaciones de emisión de
hojas, altura de los tallos, superficie foliar y largo del pedúnculo de las hojas.
En la Tabla 10. se presentan los resultados de las evaluaciones hechas a cada
característica en cada una de las fórmulas. Se aprecia que el mejor
comportamiento lo presenta la fórmula No. 3 en la que todas las evaluaciones
22

presentan diferencias significativas con el resto de los tratamientos. Los valores
fueron muye estables.
En esta fórmula se utilizaron como portadores básicos la Turba ácida y la Cachaza
en la proporción 40-40 % en peso y la Zeolita en la proporción 20 % en peso,
como portador complementario. Esta combinación resultó muy adecuada.
Tabla 9.- Composición químicas de los sustratos utilizados para la producción de Anturio en
la fase de vivero y su caracterización química. Exp. No.1.
Fórmulas Características
No. Portadores
Proporciones
% en Peso
pH
Densidad
kg/dm 3
Materia
Orgánica %
Turba ácida 40 23.8
1 Cachaza 40 5.9 0.67
Suelo 20
Turba ácida 40 19.80
2 Cachaza 40 6.3 0.68
Zeolita 20
Turba ácida 50 22.20
3 Cachaza 30 6.2 0.63
Fibra de coco 20
Turba ácida 50 19.80
4 Cachaza 30 6.1 0.69
Zeolita 20
Testigo - 16.80
5 Turba ácida 80 6.0 0.73
Fibra de coco 20
Este comportamiento se atribuye a que la Zeolita como portador complementario
proporciona mayor estabilidad al sustrato y lo conserva en todo el período que
dura el ciclo biológico de la planta.
Los resultados indican que las proporciones de los portadores que se utilicen es
determinante para el efecto sobre las plantaciones. En la Tabla 10 se aprecia que
cuando se utilizan los portadores “Turba – Cachaza – Zeolita” en las proporciones
50 – 30 – 30 el comportamiento no fue adecuado (fórmula 4, Tabla 10).
Las fórmulas No. 1, que se utilizó suelo y la No. 5, que se utilizó dos portadores,
produjeron los peores resultados. Especialmente la fórmula No. 5 donde el
desarrollo y crecimiento del Anturio fueron muy limitados. Este comportamiento se
evidencia también en la fórmula No. 3 de la Tabla 8 en la que se utilizaron los
portadores Turba ácida – Cachaza – Fibra de coco en las proporciones 40 – 30 -
30, que la fórmula No. 2 Tabla 10, que utilizó las proporciones 50 – 30 20.
Ejemplos también son las fórmulas No. 3 y 4 de la Tabla 10.
23

Tabla 10- Influencia de las características de los sustratos sobre el desarrollo y crecimiento
del Anturio en la segunda etapa. Fase de vivero. Período vegetativo 11 meses.
Evaluaciones realizadas al final del ciclo. Exp. 1.
No. Portadores
1
2
3
4
5
Fórmulas Evaluación (valores promedio)
Proporciones
% en Peso
Emisión
de
hojas
Altura del
tallo (cm)
Área
Foliar
(cm 2 )
Largo
Pedúnculo
(cm)
Turba ácida 40
Cachaza 40 6.6 bc 4.2 b 44.23 d 14.16 b
Suelo 20
Turba ácida 50
Cachaza 30 7.1 b 4.6 a 55.61 b 15.56 a
Fibra de coco 20
Turba ácida 40
Cachaza 40 8.5 a 4.7 a 64.68 a 15.60 a
Zeolita 20
Turba ácida 50
Cachaza 30 8.6 a 4.2 b 50.56 c 15.30 a
Zeolita 20
Testigo -
Turba ácida 80 6.2 c 3.3 c 33.20 e 10.43 c
Fibra de coco 20
Media 7.4 4.2 49.56 14.21
E. S. de la media 0.18 * 0.15 * 1.45 * 0.27 *
Fase de Vivero.
Exp. 2. Influencia de los sutratos sobre el desarrollo y crecimiento del
Anturio en la segunda fase del ciclo biológico (Vivero).
En el trabajo experimental se utilizaron cuatro fórmulas de sustratos, los cuales se
presentan en la Tabla 11. En las fórmulas se utilizaron como portadores básicos la
Turba ácida y la Cachaza y como complementarios la Cáscara de arroz, la
Cáscara de maní, Zeolita y Suelo.
El trabajo experimental se desarrolló durante 9 meses en el período enero – sept.
del 2006. Se hicieron las siguientes evaluaciones: emisión de hojas, altura de la
plantas, superficie foliar y longitud del pedúnculo de las hojas.
En la Tabla 11 se presentan los resultados de las evaluaciones de la
caracterización agroquímica de las cuatro fórmulas preparadas para utilizarlas en
la producción del Anturio. Todas las fórmulas presentan características adecuadas
para el cultivo del Anturio, aunque las fórmulas No. 1 y No. 2 presentan la
densidad ligeramente alta. La relación C/N de todas las fórmulas es baja.
En la Tabla 12 se presentan los resultados de las evaluaciones realizadas para
determinar efecto de los sustratos sobre el desarrollo y crecimiento de las plantas
de Anturio. La información que se obtuvo es algo dispersa, pero si se toma como
referencia la longitud del pedúnculo de las hojas se puede observar que los
24

valores de las fórmulas No. 1, 2 y 3 no presentan diferencias significativas entre
tratamientos, pero son mayores que la fórmula No. 4.
Los resultados obtenidos con las fórmulas No. 2 y 3 son muy semejantes, donde
los portadores complementarios son la Zeolita y la Cáscara de arroz.
Tabla 11.- Resultados de los análisis de los sustratos utilizados para la producción de
Anturio y su caracterización química. Fórmulas utilizadas para la fase de vivero.
Exp. 2. Enero – sept. 2006.
Fórmulas
1 2 3 4
Determinaciones Turba Ácida 40 % Turba Ácida 40 % Turba Ácida 45 % T. Ácida 45 %
Cachaza 40 % Cachaza 40 % Cachaza 45 % Cachaza 45 %
Suelo 20 % Zeolita 20 % C. de arroz 10 % C. maní 10 %
pH 5.9 6.3 5.5 5.8
Humedad 40.10 34.70 46.20 49.60
Densidad aparente kg/dm 3 0.74 0.77 0.52 0.54
Mat. Orgánica % 19.01 24.40 23.17 25.17
Nitrógeno (N) kg/ha 380 488 463 503
Fósforo (P) ppm 569 1198 677 653
Potasio (K) cmol/kg 0.25 0.14 0.13 0.10
Calcio (Ca) cmol/kg 19.13 29.40 23.00 24.10
Magnesio (Mg) cmol/kg 21.80 4.19 11.80 13.40
Sodio (Na) cmol/kg 0.19 0.32 0.30 0.23
Cap. C. Bases cmol/kg 41.37 34.05 35.23 37.83
Nitrógeno total (N) % 1.17 1.35 1.42 1.55
Fósforo total (P) % 0.19 0.39 0.16 0.10
Potasio total (K) % 0.06 0.18 0.06 0.08
Relación C/N 9:1 10:1 9:1 10:1
Tabla 12- Influencia de las características de los sustratos sobre el desarrollo y crecimiento
del Anturio en la segunda etapa. Fase de vivero. Período vegetativo 6 meses.
Evaluaciones realizadas al final del ciclo. Enero – sept. 2006 Exp. 2.
No. Portadores
1
2
3
4
Fórmulas Evaluación (valores promedio)
Proporciones
% en Peso
Emisión
de hojas
Altura
del tallo
(cm)
Área
Foliar
(cm 2 )
Largo
Pedúnculo
(cm)
Turba ácida 40
Cachaza 40
5.2 c 3.1 a 45.0 b 16.0 a
Suelo 20
Turba ácida 40
Cachaza 40
5.0 c 2.0 c 56.43 a 15.66 a
Zeolita 20
Turba ácida 45
Cachaza 45
6.1 b 2.4 b 56.00 a 16.0 a
Cáscara arroz 10
Turba ácida 45
Cachaza 45
6.8 a 1.5 d 46.67 b 12.96 b
Cáscara maní 10
Media 5.58 2.25 51.02 15.15
E. S. de la media 0.21 * 0.13 * 1.64 * 0.33 *
25

Con relación a la fórmula No. 2 que los portadores son Turba ácida 40 %,
Cachaza 40 % y Zeolita 20 % coincide con la fórmula No. 3, Tabla 10, del Exp1.
Esta fórmula fue la que tuvo mejor comportamiento en aquel experimento. Esta
información coincide, por lo que se puede expresar que para la fase de vivero la
utilización de la fórmula: Turba ácida – Cachaza – Zeolita en la proporción 40 –
40 – 20 es la más adecuada.
La fórmula No. 4 que utilizó la Cáscara de maní como portador complementario no
tuvo un buen comportamiento.
Las fórmulas No. 2, que tiene Zeolita y loa No. 3 que tiene Cáscara de arroz
tuvieron un comportamiento similar y fueron las mejores de la cuatro fórmulas
utilizadas. Estos resultados coinciden con los obtenidos en el Exp. 1 donde la
Zeolita como portador complementario tuvo el mejor comportamiento.
Estos resultados coinciden con el criterio de varios autores que han expresado
que la Zeolita resulta un buen portador complementario para la producción de
sustratos (Proexantec@net.-, 2006)
Conclusiones:
Los resultados obtenidos en este subproyecto permitieron redactar las siguientes
conclusiones:
1. En el trabajo se seleccionaron y caracterizaron 10 portadores, los cuales
pueden ser utilizados para preparar fórmulas de sustratos para el cultivo del
Anturio u otros cultivos.
2. Con los portadores caracterizados se hicieron mezclas utilizando diferentes
combinaciones lográndose fórmulas de sustratos con distintas
características las cuales pueden ser utilizadas según las necesidades de
cada cultivo.
En las fórmulas obtenidas se determinó que con la mezcla de dos
portadores la calidad del sustrato no es adecuada, pues los valores de pH,
la densidad y los contenidos de materia orgánica no se corresponden con
las necesidades de los cultivos.
3. Cuando se utilicen tres portadores para hacer las mezclas y obtener
fórmulas de sustratos es necesario que las proporciones que se utilizan
sean las adecuadas para que las características de los sustratos se
correspondan con las necesidades de los cultivos.
En el trabajo se confeccionaron 17 fórmulas diferentes utilizando los
portadores en distintas proporciones. Las características de los sustratos
obtenidos dependerán de la relación de los portadores utilizados en esas
mezclas. Cuando se vaya a utilizar se puede seleccionar aquellos que
mejor se relacionan con los cultivos.
26

4. Se determinó que los portadores básicos más adecuados para la
producción de fórmulas de sustratos para el cultivo del Anturio son la Turba
ácida y la Cachaza. con la combinación y la relación 40 % - 40 % en peso
de cada una se puede lograr pH de 6 a 6.5 lo cual es ideal para el Anturio.
La Materia Orgánica debe presentar valores de aproximadamente 20 %. La
densidad aparente debe tener valores de 0.5 a 0.6 kg/dm 3 . Esto lo
determina el portador complementario y las proporciones que se utilicen.
Los resultados del trabajo mostraron que los portadores complementarios
más adecuados son la Zeolita, la Cáscara de arroz y la Fibra de coco.
5. Las proporciones de portadores básicos y complementarios que se
determine como más adecuada para la producción de sustratos para el
cultivo del Anturio debe ser respetado y utilizarlos siempre así, pues si se
varían, las características del sustrato serán diferentes y los resultados
esperados no se lograrán.
6. El desarrollo de las plantas de Anturio es muy irregular y es difícil evaluar
su crecimiento y desarrollo. El órgano que mejor refleja esas características
es la longitud del pecíolo de las hojas.
7. Todas las proporciones de los diferentes portadores que se utilicen para
preparar fórmulas de sustratos deben ser de porcentaje en peso, pero
nunca volumen, porque la densidad de esos materiales son variables y si se
miden en volumen nunca van a coincidir cuando la misma fórmula se repita
varias veces.
Recomendaciones
Estos resultados permiten hacer las siguientes recomendaciones:
1. Que cuando se necesite preparar fórmulas de sustratos para el cultivo del
Anturio u otro cultivo se utilice la caracterización de los portadores
estudiados y presentados en este trabajo.
2. Que para definir los portadores y las proporciones a mezclar para preparar
fórmulas de sustratos con características específicas para el Anturio o
cualquier cultivo se tome como base los resultados de la caracterización
química de una de las 17 fórmulas estudiadas que aparecen en este
trabajo.
3. Cuando se vaya a preparar un sustrato para el cultivo del Anturio debe
lograrse que tengan:
� pH con valores de 5.5 a 6.5
� Contenido de materia orgánica aproximadamente 20%
� Relación Carbono / Nitrógeno menor de 17
� Densidad aparente de 0.5 a 0.6 kg/dm 3 .
4. Cuando se preparen fórmulas de sustratos y se determine las proporciones
que deben ocupar cada uno de los portadores y se necesite preparar esas
fórmulas las proporciones deben mantenerse invariables, pues sino sus
características variaran.
27

5. Para evaluar el crecimiento y desarrollo del cultivo del Anturio, se debe
tomar como base la dinámica de crecimiento del largo del pecilolo de las
hojas.
6. Cuando se vayan a preparar fórmulas de sustratos para el cultivo del
Anturio no deben utilizarse dos portadores. Para obtener sustratos con
características balanceadas deben utilizarse tres portadores: dos básicos y
uno complementario.
Relatar las metas alcanzadas.
� Lograda la caracterización de los portadores.
� Caracterizados los portadores como básicos y complementarios.
� Conocidos los parámetros que debe cumplir un sustrato para anturio.
Fecha de elaboración
Elaborado 11/10/2006
Código del subproyecto: 04
Institución líder: Instituto Nacional de Ciencias Agrícolas. (INCA).
Titulo del subproyecto: Proponer los biofertilizantes y bioreguladores para
disminuir el uso de fertilizantes químicos y orgánicos.
Año de inicio del subproyecto: 2004
Año en que se realiza el informe: 2006
Año de terminación del subproyecto: 2006
Responsables del subproyecto: MSc. Jorge Corbera Gorotiza
Participación: 20 %
Situación: Concluido.
Instituciones participantes: Instituto Nacional de Ciencias Agrícolas.
Resumen del Informe Final
Existe poca información acerca del uso de biofertilizantes y/o biorreguladores del
crecimiento vegetal en estas condiciones de trabajo, pero se conoce que el empleo de
biofertilizantes en la agricultura constituye una alternativa promisoria frente a los
fertilizantes minerales, para satisfacer las necesidades nutrimentales de los cultivos,
obtener adecuados niveles de rendimiento, calidad de las cosechas y a su vez, disminuir
los costos por ahorro de productos químicos, logrando además un incremento de los
procesos biológicos en el suelo como índice de sostenibilidad del proceso agrícola. Por
otro lado diversos han sido los resultados a nivel internacional sobre el efecto de análogos
de brasinoesteroides y otros productos biorreguladores o bioestimuladores en el
crecimiento y rendimiento de cultivos de importancia económica, los que han demostrado
su efectividad como estimuladores del crecimiento y el rendimiento en la agricultura. Por
ello tomando en cuenta lo anterior, se establece como importante la realización de esta
tarea en la concepción para la ejecución del proyecto, con los objetivos de definir
28

iofertilizantes y biorreguladores con posibilidades para ser utilizados en la producción de
Anthurium andreanum en todas sus fases o etapas de desarrollo, determinar métodos,
formas y dosis más efectivas de aplicación de estos bioproductos al sustrato. Para ello se
realizaron diferentes estudios en cada fase los cuales dieron como resultado que para las
fase de aclimatización no se observó respuesta del cultivo a la aplicación del
biofertilizante EcoMic ® (micorriza arbuscular). Para la fase de vivero, de manera general
se obtuvo un efecto positivo del empleo del biofertilizante EcoMic sobre el crecimiento del
Anturium, mostrando los tratamientos micorrizados crecimiento superior a aquellos donde
no se aplicó.
Resultados, Conclusiones y Recomendaciones del Subproyecto:
Estudio 1.
Titulo: Selección de biofertilizantes y biorreguladores con posibilidades para
ser utilizados en la producción de Anthurium andreanum en todas sus fases
o etapas de desarrollo.
En marzo de 2005, se procedió a desarrollar un estudio con diferentes variedades
de Anthurium (SONATE, TROPICAL y MERENGUE) sobre un sustrato predefinido
Turba – Cachaza – Zeolita en relación 40g – 40g – 20g y la aplicación de
diferentes cepas de micorriza arbuscular de la especie glomus fasciculatum – M1,
clarum – M2, clariodeo – M3 y amarillo – M4), con el objetivo de seleccionar la o
las más efectivas en la producción de este cultivo.
El estudio en la fase de aclimatación se desarrollaba de manera adecuada en las
áreas de INCA, pero por afectaciones producidas por el ciclón fue necesario
interrumpir las evaluaciones y por tanto no se pudo dar continuidad al
experimento. No obstante hasta el momento de cancelar el estudio se pudieron
obtener los siguientes resultados en evaluaciones mensuales del experimento:
Tabla 1. Efecto de los tratamientos sobre el crecimiento de las plántulas.
Trat.
Altura del pecíolo (cm)
1 mes 2 mes 3 mes
No. de hojas
1 mes 2 mes 3 mes
Altura del tallo (cm)
1 mes 2 mes 3 mes
MA1 3.0 4.85 6.8 3.75 3.95 4.25 0.70 0.85 0.97
MA2 2.6 3.15 4.3 3.40 3.85 3.95 0.50 0.60 0.70
MA3 2.5 3.6 5.5 3.80 4.40 5.15 0.62 0.75 0.85
MA4 2.5 3.2 4.6 3.70 3.80 4.85 0.55 0.80 0.92
TF 3.0 3.3 4.5 4.00 4.80 5.40 0.60 0.85 0.90
T.abs. 1.9 2.1 2.6 3.20 3.60 3.90 0.20 0.50 0.70
De manera general se observa respuesta a las cepas evaluadas, a pesar de no
haberse podido completar el estudio, lo que indica la posibilidad de utilizar las
micorrizas arbusculares en el cultivo del Anthurium, pues las evaluaciones
realizadas presentan resultados por encima del testigo absoluto y similares a la
fertilización.
29

Estudio. 2
Se desarrolló el estudio con la variedad de Anthurium Tropical, sobre 6 sustratos
predefinidos (Turba ácida – Estiércol vacuno – Suelo en relación 40g – 40g – 20g ,
Turba ácida – Estiércol vacuno – Zeolita en relación 40g – 40g – 20g , Turba ácida
– Estiércol vacuno – Paja de arroz, Turba ácida – Estiércol Vacuno - Fibra de coco
en relación 40g – 40g – 20g , Turba ácida – suelo en relación 70g – 30g y Turba
ácida – suelo en relación 30g – 70g) y la aplicación de la cepa de micorriza
arbuscular Glomus fasciculatum (MA) (2 g.planta -1 ), con el objetivo de evaluar el
efecto de este biofertilizante sobre el crecimiento del cultivo.
El estudio, en la fase de aclimatización, fue montado en cepellones de poliespuma
de 100 alveolos de 35 cm 3 de capacidad, en junio de 2005, en la nave tapada del
Departamento de Genética y Mejoramiento Vegetal del INCA
Se le realizó análisis a los sustratos empleados los cuales se muestran en la tabla
2 y se evaluó el crecimiento del cultivo a los 6 meses después de plantado.
Tabla 2. Algunas características físicas y químicas de los sustratos empleados. (base
húmeda).
No. Sustratos
K Na Ca
(cmol.kg
Mg P MO N Densidad
-1 ) (ppm) (%) (kg.ha -1 )
pH
(g. cm 3 )
1
T. ácida. –
E. vacuno - Suelo
13.7 2.01 22.7 10.6 895 28.3 0.69
0.69
0.59
2 T. ácida. –
8.9 6.98 27.0 9.48 894 16.8 0.69
0.62
E. vacuno - Zeol
3 Ta. - Ev. – Pa. 10.8 1.12 18.2 8.51 920 36.2 0.77 0.77 0.36
4 Ta. - Ev. – Fc. 8.1 3.70 17.1 8.98 223 26.4 1.51 1.51 0.48
5 Ta. - S 70-30 0.67 0.28 14.8 5.92 540 19.2 0.93 0.93 0.75
6 Ta. - S 30-70 0.39 0.27 18.2 7.92 126 10.4 1.26 1.26 0.92
Nota: No existió interacción entre los factores por lo que se analizan los mismos por separado
El estudio mostró diferencias entre los sustratos utilizados, aspecto que se informa
en el subproyecto No. 2 (Estudio 1). Para el empleo del biofertilizante
micorrizógeno no se encontraron diferencias significativas, lo que consideramos se
deba a que la etapa de Aclimatizacion en el anturio dura alrededor de 60 días,
unido a que el crecimiento de esta planta es lento, imposibilita detectar diferencias
entre los tratamientos.
Estudio 3.
En este estudio se aplicó la cepa de micorriza arbuscular var Glomus fasciculatum
(MA) (5 g./planta), con el objetivo de evaluar el efecto de este biofertilizante sobre
el crecimiento del cultivo, el cual se fue montado en macetas de 1 Litro de
capacidad, con el objetivo de ver si es posible disminuir las cantidades de Materia
orgánica a aplicar por maceta, para lo cual se probaron 5 sustratos (tabla 3). La
fecha de trasplante fue en enero de 2005, realizándose en la nave tapada del
Departamento de Genética y Mejoramiento Vegetal del INCA, evaluándose la
altura por planta a los 6 meses después de plantado (tabla 3).
0.69
30

Para determinar las diferencias entre tratamientos se midió la altura de las plantas
mensual, tomando para el análisis el efectuado a los 6 meses del trasplante.
Tabla 3. Composición de los sustratos utilizados
Sustrato
Portadores
Suelo Cachaza Turba acida Paja de arroz
A 45 45 - 10
B 62 28 - 10
C 75 15 - 10
D 81 9 - 10
E 25 25 50 -
En el análisis de varianza realizado (tabla 4) se detectaron diferencias
significativas entre los sustratos y la aplicación de Ecomic, observándose en el
caso de los sustratos, se observan respuestas significativas, destacándose con las
mayores respuestas en el caso de los sustratos el A y E los cuales coincidieron
con los mayores contenidos de Materia orgánica, corroborando la importancia del
sustrato para el crecimiento y desarrollo de las plantas y en el otro caso el
tratamiento con Ecomic fue superior al que no tuvo, observándose un efecto
positivo de la aplicación de la micorriza arbuscular, var Glomus fasciculatum sobre
el crecimiento del Anthurium,.
Los resultados que aquí se observan, consideramos que son importantes en
primer instancia por que parece indicar que hubo infección micorrízica, incluso en
los tratamientos con altos tenores de Materia orgánica, en este sentido algunos
investigadores han manifestado en la no existencia de infección micórrizica en
tratamientos con alto contenido de materia orgánica debido a que como la planta
tiene cubierta sus necesidades alimentarías no necesita para vivir que se
desarrolle la simbiosis y por otro lado demostró la necesidad de tener en cuenta el
sustrato a utilizar en el cultivo.
Tabla 4. Efecto de los tratamientos sobre la altura de la planta. (cm).
Factor A
Sustrato
Altura del pecíolo
180 ddp
A 17.81 a
B 14.75 b
C 14.00 bc
D 13.00 c
E 18.50 a
ES 0.56 ***
Factor B Altura del pecíolo
Micorriza
180 ddp
Con MA 16.50 a
Sin MA 14.73 b
ES 0.35 ***
31

Conclusiones:
� Para las fase de aclimatización no se observó respuesta del cultivo a la
aplicación del biofertilizante EcoMic ® ´, lo que pensamos esta dado
fundamentalmente por el lento crecimiento de las plántulas en esta fase, así
como poco desarrollo radical.
� Para la fase de vivero, de manera general se obtuvo un efecto positivo del
empleo del biofertilizante EcoMic sobre el crecimiento del Anturium,
mostrando los tratamientos micorrizados crecimiento superior a aquellos
donde no se aplicó.
� De manera evidente se observó respuesta del cultivo a los diferentes
sustratos empleados en los estudios, destacándose aquellos donde se
mezcló Turba ácida + abono orgánico + zeolita o turba ácida + abono
orgánico + suelo en las proporciones 40 + 40 + 20.
Recomendaciones:
� Continuar realizando estudios relacionados con el empleo de sustratos, en
la cual se disminuyan aún más los contenidos de materia orgánica, que
permitan obtener un efecto positivo más evidente del uso de las micorrizas
arbusculares en el cultivo del Anthurium.
� Continuar desarrollando otros sustratos a partir de materiales sustentables
que posibiliten abaratar los costos de la tecnología de producción de
anthurium, mediante el empleo además de bioproductos elaborados en el
país.
Metas del proyecto:
� Definido la no interacción entre el biofertilizante y la Aclimatizacion de las
vitroplantas.
� Determinada el efecto positivo de la micorrza arbuscular sobre el
crecimiento del anturio en la fase de vivero
Fecha de elaboración. 29 de noviembre de 2006.
Identificación del Subproyecto: 05
Código del Subproyecto:
Institución líder o Ejecutora: INCA
Título del Subproyecto:
Determinar las plagas y enfermedades que más atacan el cultivo y sus formas de
control.
Año de inicio: 08/2004
Año en que se realiza el informe: 10/2006
Año en que finaliza el Proyecto o Subproyecto: 04/2006.
Responsable del Subproyecto: M. Sc. Alfonso León Valido
Situación: Concluido
Unidad participante: INCA
32

Resumen.
Dada la manera en que se percibe la crisis de los principales programas de control
de plagas y la actual preocupación sobre la calidad del ambiente, el manejo
adecuado de dichas plagas se debe iniciar lo más pronto posible. Se conoce que
en el anturio, en países que se dedican a su cultivo, se han detectado la presencia
de un grupo de plagas y enfermedades, por lo que un muestreo de plagas y
enfermedades en nuestro país, puede además de constituir una interesante
primicia, ser un factor que definiría su diseminación a mayor escala. debido a que
se estima que las plagas causan un total de daños entre el 40 – 48 % en la
producción mundial de alimentos y en el campo los daños alcanzan un promedio
de 33 – 35 % de la producción potencial y las pérdidas en post cosecha son del
orden de 10 – 20 %.
Resultados.
Se realizaron observaciones mensuales a las plantas en Fase de Vivero y en
Fase de Plantas Madres
Se detectaron los siguientes problemas:
� Presencia de cóccidos, pero en poblaciones muy bajas como para no
provocar afectaciones graves al cultivo en plantas madres.
� Presencia de sintomatología de enfermedad o de deficiencia de algún
nutriente, caracterizada por necrosis en los bordes de plantas viejas (lote
de plantas madres) en el margen del área necrosada se observa una zona
amarillenta que cambia con el progreso de la lesión de ese color a marrón
claro y oscuro
� Se recomienda mantener una higiene más estricta, no permitiendo la
acumulación de tierra en la superficie de las plantas y mantener un estricto
cuidado al realizar cortes de material vegetal
Conclusiones:
� Dada la pequeña cantidad de focos de plagas y enfermedades detectados
en los distintos muestreos realizados al efecto, se recomienda que las
variedades en estudio reúnen las características necesarias para ser
utilizadas en el proyecto
Recomendaciones
� Se recomienda, dado el tamaño del lote de cocidos, la eliminación manual
de los mismos con una gasa o algodón empapadas en alcohol metílico ó
etílico al 90% disuelto en proporción de 15 ml de alcohol en un litro de agua
[c(X) = 1, 35%]. A esta solución se le puede añadir 30 gramos de jabón
neutro ó un detergente ó Agral 90 (Zeneca Agrochemicals Ltd, R. Unido).
Es importante que después de efectuado el tratamiento a los 15 - 30
minutos se laven las plantas con agua a temperatura ambiente
33

especialmente en las hojas jóvenes ya que podrían quemarse con la
solución.
� Se proyecta la recolección en exteriores de coccinélidos y su liberación
dentro del umbráculo.
� Eliminar las plantas afectadas (2%) para evitar posibles contaminaciones.
� Se recomienda analizar sustrato desde el punto de vista nutricional.
Conclusiones finales del subproyecto.
� No se observaron afectaciones de plagas o enfermedades en las plantas en
la fase de vivero, encontrando en el lote de plantas madres la presencia de
cocidos en bajas cantidades y de una posible enfermedad o deficiencia que
desapareció al eliminar la planta afectada.
Potencial del uso del conocimiento del subproyecto.
Se da conocer por primera vez en condiciones semicontroladas la incidencia de
plagas y enfermedades que puede encontrarse en el cultivo del Anthurium
andreanum.
Relatar las metas alcanzadas.
� Determinadas las plagas y enfermedades que atacan el cultivo en
condiciones semicontroladas.
� determinada la forma de control de las plagas detectadas.
Justificar las metas que no fueron resueltas.
No fue posible determinar las causas de las manchas detectadas en un
laboratorio especializado
Fecha de elaboración
Elaborado 11/10/2006
34

Anexos
Fig. 1.- Vitroplantas de anturio por calibre.
Fig. 2.- Estudio de aclimatización por variedades.
35

Fig. 3.- Efecto del sustrato sobre la supervivencia en la Aclimatizacion.
Fig. 4.- Efecto de diferentes sustratos en la fase de vivero
Fig. 1.- Ataque de cocidos en plantas madres de anturio.
36

Fig. 2.- Manchas necrosadas en plantas madres.
37

Instructivo Técnico del Cultivo del Anthurium andreanum
(anturio) para el Sistema de Propagación in Vitro. .
Introducción
El Anturio (Anthurium andreanum) pertenece a la familia de las Araceaes,
subfamilia Pothoideae, orden Anthurieae y género Anthurium.
La inflorescencia del Anthurium andreanum presenta una espata con un espádice
que se yergue entre las flores, mientras que el espádice del Anthurium
scherzerianum tiene forma de espiral. Cada axila foliar puede desarrollar una
inflorescencia. El follaje del Anthurium scherzerianum es algo más áspero que el
del Anthurium andreanum. En estado silvestre, los ejemplares de Anthurium
crecen en lugares umbríos de la cordillera de los Andes en América Central y
América del Sur
El Anturium andreanum se caracteriza por la belleza y durabilidad de sus flores. Es
una planta herbácea perenne originaria de los bosques lluviosos de Colombia,
Ecuador y América Central. Lo que comercialmente se conoce como flor es en
realidad una hoja modificada llamada espata, al género Anthurium pertenecen
más de 700 especies, siendo las más conocidas Anthurium andreanum que es
utilizada como flor de corte; A. scherzerianum como planta para maceta; A.
scadens como planta trepadora; A. Acaudale como planta de interior y A.
crystallinum como planta para follaje. http://www.proexant.org.ec/HT_Anturio.html
24 de mayo/2004.
Condiciones edafoclimáticas
La frontera norte del área de distribución está situada cerca del pueblo mexicano
de Orizaba. Las variedades de Anthurium se encuentran en áreas de climatología
muy diversa, desde las regiones secas del oeste de México hasta la selva tropical
de América del Sur. La latitud donde se localizan depende de la especie y varía
desde el nivel del mar hasta alturas de 3000 m. Hasta el momento, el máximo
desarrollo del género ha tenido lugar principalmente en los Andes de América
Central y del Sur, en latitudes entre 10º de latitud norte y 5º de latitud sur y
temperaturas mínimas de 15 ºC (Anthura B. V., 1998).
Para obtener mejores resultados de su producción, el anturio debe cultivarse en
un ambiente semejante al boscoso, con una temperatura promedio de 20 ºC y una
humedad entre 80 y 85% y sombra (sarán) entre 50 y 90%. También se cultiva
bajo sombra natural de otros cultivos como cacao, cítricos o algunas enredaderas.
El exceso de sol puede "quemar" o sobrecalentar las hojas ya que éstas se enfrían
a través de la transpiración y en un día soleado lo hacen muy lentamente.
La temperatura mínima en la noche debe ser de 18 ºC (64 ºF) con una humedad
no mayor del 90%. En día nublado, la temperatura deberá estar entre 18-20 ºC
38

(64-68 ºF) con una humedad entre 70-80%. En un día soleado, la temperatura
deberá estar entre 20-28 ºC (68-82 ºF) con una humedad de alrededor del 70%.
En general, la temperatura deberá permanecer sobre los 30 ºC (86 ºF) y la
humedad deberá permanecer sobre el 50 y 60%. Las plantas sufrirán daños
cuando la temperatura se eleve sobre los 35 ºC (95 ºF). Un día de temperatura
elevada no es dañino, sin embargo varias si lo son.
Intensidad luminosa
La intensidad luminosa más apropiada para el Anthurium andreanum a nivel de las
plantas se sitúa entre 18.000-25.000 lux (250-300 Watt) y para el Anthurium
scherzerianum entre 12.000- 18.000 lux (200-275 Watt). Cuando la intensidad de
la luz es excesiva suele provocar palidez en el follaje y las flores e incluso puede
llegar a quemar la planta. Por otro lado, una intensidad luminosa insuficiente
conlleva un estiramiento y un empobrecimiento de la calidad de las plantas, junto
con una deficiente producción de flores.
El cultivo en los países tropicales precisa una malla sombreadora que garantice un
75% de protección. Se recomienda preferentemente el uso de dos mallas
sombreadoras, por ejemplo, una fija que proporcione el 60% y una segunda que
proporcione el 50% de protección.
Variedades
La mayoría de la variedades cultivadas de Anthurium, en la actualidad, proceden
del cruzamiento de las especies andreanum y scherzerium según reporta (Anthura
B. V., 1998). Estas han sido formadas por hibridación, se clasifican de acuerdo
con el color, las dimensiones y la forma de la espata, la longitud y color del
espádice, características de producción y agronomía de la planta. Las principales
variedades holandesas de anturios se muestran a continuación:
Variedades rojas .- Tropical, Avoclaudia, Avonette, Avanti.
Variedades naranjas .- Casino.
Variedades rosadas .- Lunette, Avoanneke, Limbo, Scorpion
Variedades blancas .- Acrópolis, Fantasía, Cuba, Merengue.
Variedades bicolores .- Uranus, Paradiso, Champion
Composición floral
La principal característica de la familia Araceae es la inflorescencia constituida por
una espata y el espádice donde aparecen sus verdaderas flores hermafroditas
(Fig. 1) lo que le confiere una distinción especial a esta familia y en especial al
anturio.
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Fig. 1.- Inflorescencia del Anthurium
Según (Anthura B. V., 1998)) la gran variación de la inflorescencia está
determinada por la forma, el color y la medida de la espata y el espádice. La
verdadera y pequeña flor hermafrodita se encuentra en el espádice.
El Anthurium es una planta epifita no parasitaria que vive sobre los árboles, sus
raíces crecen alrededor del tronco y ramas, toman los nutrientes y la humedad del
aire.
Propagación
Planta de Anthurium
La propagación del Anturio se puede realizar por distintas vías:
Semillas.-
Esta forma de reproducción es la más utilizada en la obtención de nuevas
variedades por cruzamiento, abandonándose comercialmente por la introducción
al cultivo de las variedades obtenidas por cruzamiento, dado a que estas son
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híbridos estrictos y la autofecundación crea problemas de endogamia, lo cual
provoca problemas en la descendencia, al obtenerse individuos con características
no deseadas.
Por acodo.-
Cuando las raíces aéreas están expuestas es cuando la planta está lista para el
acodo. Éste se realiza envolviendo la base de la planta en materia orgánica u otro
medio de propagación; en este medio se desarrollan nuevas raíces y entonces se
puede separar la parte aérea como una nueva planta.
Por cortes de tronco.-
Después de realizar el acodo quedan en la planta troncos con raíces, de los
cuales saldrán hijos, estos hijos se separan y sirven como material de
propagación.
Por división.-
Cuando han brotado raíces aéreas se pueden separar los hijos o brotes de las
plantas madres.
Por corte de ápices.-
Cerca del ápice se desarrollan raíces, lo cual puede ser aprovechado para cortar
estas secciones de la planta, las que se convierten en plantas nuevas. De la base
de la planta brotan nuevos hijos que se pueden separar para obtener más plantas
nuevas
La propagación por esquejes, una de las vías más utilizada para obtener nuevos
clones con características semejantes a la planta original, se ha ido desechando
dado a la lentitud de propagación, por esta vía, y al peligro potencial de trasmisión
de enfermedades.
En la actualidad con el surgimiento de la reproducción in vitro se logró una nueva
vía de propagación, más segura, al poder obtener clones libres de patógenos y
que mantienen las características de la variedad donante. Además de que permite
obtener un mayor número de clones a partir de una sola planta madre.
Esquema de reproducción a través de la micropropagación in vitro.
1) Producción de vitroplantas en el laboratorio de Biotecnología.
2) Aclimatizacion. (Adaptación climática de un organismo, especialmente una
planta, que ha sido trasladada a un nuevo ambiente.) Tiempo de duración
de 60 a 75 días.
3) Vivero I. Tiempo de duración de 6 a 8 meses.
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2.Fase de Aclimatización
Corresponde a la etapa cuando las plántulas que salen del proceso del cultivo in
vitro, por lo que son muy delicadas y se le debe prestar atención especial. Se
seleccionaran las que cumplan los siguientes requisitos mínimos:
Características de las vitroplantas: Estén bien diferenciadas y presenten al
menos tres hojas bien desarrolladas.
Altura de la planta: > 2.5 cm
Características del ambiente: Mantener las vitroplantas aisladas del aire directo
(usar cobertor antiáfidos con cubierta de sarán negro)
Intensidad luminosa 50 – 75 %
Humedad relativa alta (70 - 85 %)
Para realizar el Trasplante:
Sumergir las vitroplantas en solución al 0.1 % de BB – 16 o en agua (10 y 24
horas)
Utilizar bandejas de poliespuma de pocillos de 3.5 cm 3 de capacidad
Características de sustrato a utilizar:
Teniendo en cuenta ante todo el crecimiento epifito del anturio se recomienda el
uso de un sustrato poroso. En el momento de proceder a su selección, es
importante comprobar la presencia de partículas gruesas que faciliten el drenaje y
de partículas finas que faciliten la retención y distribución del agua y los nutrientes.
Densidad en rango de: ≥0.60 a ≤0.80 kg.cm -3
pH en rango de: ≥5.5 a ≤ 6.5
contenido de materia orgánica en rango de: ≥40 a ≤60 %.
Portadores recomendados:
Básicos: Turba ácida y Cachaza.
Suplementarios: Zeolita, Suelo, Paja de arroz y Compost de Fibra de coco.
Nota: el sustrato debe mantener la mota para el trasplante a macetas.
Mezcla de los portadores para conformar el sustrato:
Pesar los portadores en la proporción establecida
Realizar la mezcla de los mismos ajustando pH a el rango establecido
Llenado de los posillos: El sustrato debe cernir ese con una malla de 3 a 4
cm de diámetro.
Riegos: Después del llenado de los pocillos, se realizarán riegos con el fin de
mantener húmedo el sustrato. El agua de riego para el Anthurium puede
suministrarse desde arriba o desde abajo. La capa superior del sustrato puede
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esecarse en exceso si sólo se riega la planta desde abajo durante largos
periodos de tiempo. En estos casos, debido a la sequedad de la capa superior
del sustrato y del polvo acumulado en las hojas, las plantas adoptarán un color
algo apagado. Para evitar este problema, las plantas deben regarse, a
intervalos de 4 a 6 semanas, con el agua procedente de la red de tuberías de
riego por aspersión o de los pulverizadores a presión.
El agua no debe contener productos químicos ni signos de contaminación
evidente. El nivel de sodio y cloro debe mantenerse por debajo de los 100 mg/L
y el nivel de bicarbonato tampoco puede ser muy elevado.
3.Fase de Vivero.
Características del ambiente:
El aire no debe incidir directamente sobre las plántulas
Intensidad luminosa 50 – 75 % (cubierta de sarán negro o Tejas)
Humedad: realizar riego periódico con el fin de mantener húmedo el sustrato
(tener en cuenta la época del año)
Utilizar para el trasplante macetas (contenedores) de un Litro de capacidad
Aditivo: Aplicar 5 - 10 g por maceta de EcoMic ®
Tiempo de estancia en esta fase: 6 a 8 meses
Composición de los sustratos para la Fase de Vivero
Los sustratos que se utilicen para el desarrollo y crecimiento del Anturio necesitan
que tengan propiedades físicas y químicas con valores dentro de cierto rango que
se correspondan con sus necesidades. Las más importantes son: pH, densidad,
contenido de materia orgánica, humedad y relación carbono/nitrógeno. La
siguiente tabla muestra los rangos más adecuados de cada característica.
Características Rangos
pH ≥ 5.5 a ≤ 6.5
Densidad kg.cm -3 ≥ 0.40 a ≤0.60
Materia orgánica
Humedad
%
≥ 25 a ≤ 35
≥ 25 a ≤ 40
Relación C/N ≤ 25
Para obtener los valores más adecuados de estas características es necesario
utilizar en las mezclas dos portadores básicos y un portador complementario, los
portadores básicos se utilizan para regular el pH y el contenido de materia
orgánica y el complementario se utiliza para regular la densidad.
Los portadores básicos que con más frecuencia se pueden utilizar son:
Cachaza, Estiércol vacuno, Turba ácida, Turba rubia y Humus de Lombriz.
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Como portadores complementarios: Zeolita, Cáscara de arroz, Compost de
Fibra de coco, Cáscara de maní y Suelo.
Las fórmulas de sustratos recomendables para que cumplan con los criterios
anteriores son:
Fórmula Portadores
Relación
% en peso
Turba ácida 40
1 Cachaza 40
Zeolita 20
2
3
Turba ácida 40
Cachaza 40
Cáscara de arroz 20
Turba ácida 40
Cachaza 30
Compost de Fibra de Coco 30
Nota: Todas las proporciones son expresadas en peso, nunca deben expresarse
en volumen. Las relaciones de las proporciones deben mantenerse fijas, pues al
cambiarlas varían las características de los sustratos.
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