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Congélation du sperme de verrat en paillettes fines de 0,25 ml

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152<br />

INTRODUCTION<br />

Au cours <strong>de</strong>s <strong>de</strong>rnières déc<strong>en</strong>nies, la conservation <strong>du</strong> <strong>sperme</strong><br />

<strong>de</strong> <strong>verrat</strong> à basse température a fait l’objet <strong>de</strong> nombreuses<br />

recherches (POLGE et al., 1970; PURSEL et JOHNSON 1971,<br />

1975; CRABO et EINARSSON, 1971; PAQUIGNON et al.,<br />

1974; LARSSON et EINARSSON, 1976; WESTENDORF et<br />

al., 1975; HAMMITT et al., 1989a, b). Celles-ci ont porté sur<br />

la composition <strong>du</strong> dilueur, la nature et la conc<strong>en</strong>tration <strong>du</strong><br />

cryopréservateur ainsi que sur la métho<strong>de</strong> <strong>de</strong> congélation <strong>en</strong><br />

pastilles, <strong>en</strong> pailles (PAQUIGNON et al., 1986) et, plus<br />

récemm<strong>en</strong>t, <strong>en</strong> <strong>paillettes</strong> (FISER et FAIRFULL, 1990) ou <strong>en</strong><br />

pochettes (BWANGA et al., 1991; RODRIGUEZ-MARTINEZ et<br />

al., 1996). Bi<strong>en</strong> que <strong>de</strong>s progrès considérables ai<strong>en</strong>t été <strong>en</strong>registrés<br />

(ALMID et HOFMO, 1996), les résultats <strong>de</strong> fertilité et<br />

<strong>de</strong> prolificité restai<strong>en</strong>t <strong>en</strong>core souv<strong>en</strong>t à la limite <strong>de</strong> la r<strong>en</strong>tabilité<br />

<strong>en</strong> raison <strong>de</strong>s dommages <strong>en</strong>courus par les spermatozoï<strong>de</strong>s<br />

p<strong>en</strong>dant le processus <strong>de</strong> congélation-décongélation<br />

(COURTENS et PAQUIGNON, 1985).<br />

C’est pourquoi, <strong>en</strong> nous inspirant <strong>de</strong>s résultats <strong>de</strong> ces<br />

recherches déjà publiées, nous avons mis au point une technique<br />

<strong>de</strong> congélation <strong>en</strong> <strong>paillettes</strong> françaises (IMV) médium <strong>de</strong><br />

0,5 <strong>ml</strong> qui soit réalisable sur le terrain avec un taux <strong>de</strong> réussite<br />

proche <strong>de</strong> celui <strong>de</strong> la sem<strong>en</strong>ce fraîche (THILMANT, 1997).<br />

Les premières inséminations ont été réalisées <strong>en</strong> exploitations<br />

<strong>du</strong>rant les années 1995 et 1996 (THILMANT, 1999).<br />

Pour rappel, le processus <strong>de</strong> décongélation <strong>de</strong>s <strong>paillettes</strong><br />

médium doit s’effectuer par l’immersion <strong>de</strong> celles-ci (au<br />

nombre <strong>de</strong> 5 pour l’obt<strong>en</strong>tion d’une dose) dans un bain-marie<br />

à 55°C p<strong>en</strong>dant 12 secon<strong>de</strong>s <strong>en</strong> vue d’arriver le plus rapi<strong>de</strong>m<strong>en</strong>t<br />

possible à la température <strong>de</strong> 38°C (1170°C /min). Cette<br />

façon d’agir permet <strong>de</strong> supprimer au maximum la stagnation<br />

<strong>de</strong> la température p<strong>en</strong>dant la pério<strong>de</strong> <strong>de</strong> fusion et d’éviter<br />

ainsi le phénomène <strong>de</strong> recristallisation. Passé ce délai, le<br />

cont<strong>en</strong>u <strong>de</strong>s <strong>paillettes</strong> est versé dans le BTS (95 <strong>ml</strong> pour<br />

1 dose, milieu <strong>de</strong> décongélation) à 38°C. L’insémination est<br />

alors réalisée le plus rapi<strong>de</strong>m<strong>en</strong>t possible après la décongélation<br />

et <strong>du</strong>rant la pério<strong>de</strong> d’immobilité <strong>de</strong> la truie.<br />

Ce processus <strong>de</strong> décongélation est relativem<strong>en</strong>t lourd et fastidieux<br />

car il nécessite un chronométrage précis <strong>du</strong> temps <strong>de</strong><br />

l’immersion et la prés<strong>en</strong>ce <strong>de</strong> 2 niveaux différ<strong>en</strong>ts <strong>de</strong> températures<br />

au même mom<strong>en</strong>t (55°C pour la température <strong>du</strong><br />

bain-marie et 38°C pour celle <strong>du</strong> BTS).<br />

En vue <strong>de</strong> simplifier cette technique, nous proposons l’utilisation<br />

<strong>de</strong>s <strong>paillettes</strong> <strong>fines</strong> <strong>de</strong> capacité <strong>de</strong> 0,<strong>25</strong> <strong>ml</strong> comme nouveau<br />

conditionnem<strong>en</strong>t. La décongélation <strong>de</strong> la sem<strong>en</strong>ce<br />

serait facilitée car ces <strong>paillettes</strong> permett<strong>en</strong>t une décongélation<br />

tout aussi rapi<strong>de</strong> dans un bain-marie à 38°C p<strong>en</strong>dant un<br />

temps indéterminé (au-<strong>de</strong>ssus <strong>de</strong> 10 secon<strong>de</strong>s) sans risquer<br />

<strong>de</strong> donner une température excessive à la sem<strong>en</strong>ce (comme<br />

c’est le cas avec les <strong>paillettes</strong> médium <strong>de</strong> 0,5 <strong>ml</strong> si on procè<strong>de</strong><br />

p<strong>en</strong>dant un temps d’immersion trop long).<br />

Il est donc nécessaire d’étudier l’efficacité <strong>du</strong> conditionnem<strong>en</strong>t<br />

<strong>de</strong> la sem<strong>en</strong>ce <strong>en</strong> <strong>paillettes</strong> <strong>fines</strong> qui simplifie le protocole <strong>de</strong><br />

décongélation assurant, ainsi, une pénétration plus rapi<strong>de</strong> <strong>de</strong><br />

l’usage <strong>de</strong> la sem<strong>en</strong>ce congelée au sein <strong>de</strong>s exploitations.<br />

1. MATÉRIEL ET MÉTHODES<br />

1.1. Protocole <strong>de</strong> congélation-décongélation <strong>de</strong><br />

la sem<strong>en</strong>ce <strong>en</strong> <strong>paillettes</strong> médium et <strong>fines</strong><br />

Celui-ci est effectué suivant la métho<strong>de</strong> <strong>du</strong> C.I.A.P. (THIL-<br />

MANT, 1997). 28 éjaculats issus <strong>de</strong> 5 <strong>verrat</strong>s différ<strong>en</strong>ts <strong>de</strong><br />

race Piétrain Belge sont utilisés pour cette expérim<strong>en</strong>tation.<br />

Chaque éjaculat est conditionné <strong>en</strong> <strong>paillettes</strong> (IMV) médium<br />

(0,5 <strong>ml</strong>) et <strong>fines</strong> (0,<strong>25</strong> <strong>ml</strong>). Les <strong>de</strong>ux mo<strong>de</strong>s <strong>de</strong> conditionnem<strong>en</strong>t<br />

sont donc refroidis et congelés <strong>de</strong> façon i<strong>de</strong>ntique. La<br />

décongélation <strong>de</strong>s <strong>paillettes</strong> moy<strong>en</strong>nes est réalisée par l’immersion<br />

<strong>de</strong> celles-ci dans un bain-marie à 55°C p<strong>en</strong>dant<br />

12 secon<strong>de</strong>s (métho<strong>de</strong> 1, témoin). La décongélation <strong>de</strong>s<br />

<strong>paillettes</strong> <strong>fines</strong> est, quant à elle, effectuée dans un bain-marie<br />

à 38°C p<strong>en</strong>dant 1 minute (métho<strong>de</strong> 2). Le cont<strong>en</strong>u <strong>de</strong><br />

1 paillette est <strong>en</strong>suite directem<strong>en</strong>t redilué dans 10 <strong>ml</strong> <strong>de</strong> BTS<br />

à 38° pour les <strong>paillettes</strong> médium et dans 5 <strong>ml</strong> pour les <strong>fines</strong>.<br />

Nous avons étudié <strong>en</strong> outre et uniquem<strong>en</strong>t dans le cadre <strong>de</strong><br />

l’exam<strong>en</strong> in vitro, les effets <strong>de</strong> la décongélation dans un<br />

bain-marie à 38°C <strong>de</strong> la sem<strong>en</strong>ce conditionnée <strong>en</strong> <strong>paillettes</strong><br />

médium (métho<strong>de</strong> 3).<br />

1.2. Contrôle in vitro, par opérateur et après<br />

décongélation, <strong>de</strong> la qualité <strong>de</strong> la sem<strong>en</strong>ce<br />

rediluée<br />

Ont été réalisées :<br />

• Une évaluation <strong>de</strong> la motilité et <strong>du</strong> pourc<strong>en</strong>tage <strong>de</strong> spermatozoï<strong>de</strong>s<br />

mobiles <strong>de</strong> la sem<strong>en</strong>ce diluée à 38°C juste<br />

après décongélation (grossissem<strong>en</strong>t 100 fois sur fond noir)<br />

et après 1 heure.<br />

Les spermatozoï<strong>de</strong>s ont été classés <strong>en</strong> 5 catégories:<br />

5 = spermatozoï<strong>de</strong>s fléchants<br />

4 = déplacem<strong>en</strong>ts rapi<strong>de</strong>s et rectilignes <strong>de</strong>s spermatozoï<strong>de</strong>s<br />

3 = trajectoires curvilignes et/ou déplacem<strong>en</strong>ts l<strong>en</strong>ts<br />

2 = spermatozoï<strong>de</strong>s vibrants faibles déplacem<strong>en</strong>ts<br />

1 = spermatozoï<strong>de</strong>s vibrants <strong>en</strong> rotation sur euxmêmes<br />

• Une coloration à l’éosine-nigrosine et exam<strong>en</strong> microscopique<br />

sur fond noir <strong>de</strong> 200 spermatozoï<strong>de</strong>s au grossissem<strong>en</strong>t<br />

1000x <strong>en</strong> vue d’évaluer l’intégrité acrosomiale et le<br />

pourc<strong>en</strong>tage <strong>de</strong> spermatozoï<strong>de</strong>s vivants.<br />

Nous avons aussi réparti les spermatozoï<strong>de</strong>s <strong>en</strong> 4 classes<br />

(BAMBA, 1988):<br />

classe 1 : non teintés et acrosomes normaux<br />

classe 2 : teintés et acrosomes normaux<br />

classe 3 : non teintés et acrosomes anormaux<br />

classe 4 : teintés et acrosomes anormaux<br />

1.3. Contrôle in vitro, par analyseur d’images<br />

(computer assisted sem<strong>en</strong> analysis - CASA)<br />

Par la suite, d’autres essais comparatifs fur<strong>en</strong>t effectués avec l’ai<strong>de</strong><br />

d’un analyseur d’images ou computer-assisted sem<strong>en</strong> analysis<br />

- CASA (Hamilton Thorne Research) visant à donner plus

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