PLAGAS Y ENFERMEDADES DEL CASTAÑO - Afadc.es

1- EL HOSPEDANTE: EL CASTAÑO
Hablaremos en primer lugar de algunos aspectos
que definen a esta especie vegetal y que son
determinantes para entender su grado de afección
por plagas y enfermedades.
Hay más de 20.000 ha de castañares puros en
Castilla y León, a lo que hay que sumar los que
vegetan en masas mixtas.
El castañar es un cultivo humanizado, lo que
ha condicionado en gran medida su evolución y su
disposición al padecimiento de ciertas patologías,
sobre todo por los usos y las actividades
culturales que de él se hacen.
Predomina en las zonas rurales, dónde
constituye un elemento de fijación de población y
parte de la renta anual de muchas familias.
Su producción se centra en el aprovechamiento
del fruto y la madera, distribuido por zonas, si
bien hay otra serie de recursos puestos en valor
sobre todo en las últimas décadas que le rebelan
como un agente de desarrollo de amplias zonas,
tal es el caso del paisaje, la micología, la
apicultura u otros usos como el recreativo o social
No obstante, viene siendo una especie diezmada por plagas y enfermedades desde hace más de
un siglo. La mayor parte de estas patologías han sido introducidas en nuestro país una vez se ha hecho
fluido el comercio de material vegetal, que en ocasiones conlleva el transporte de las mismas. La especie
Castanea sativa (castaño europeo) tiene entonces que defenderse de nuevos enemigos, procedentes
fundamentalmente de oriente (introducidos con la importación de variedades de castaños asiáticos:
Castanea mollisima y Castanea crenata fundamentalmente), y con los que no ha evolucionado, por lo
que su actividad le resulta especialmente perjudicial. Tal es el caso de las dos especies de hongos sobre
las que incidiremos en esta exposición.
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GEOGRAFÍA E HISTORIA DEL CASTAÑO, EVOLUCIÓN DE SU CULTIVO.
El género Castanea abarca un conjunto de especies que se expanden por las regiones templadas del
hemisferio norte, donde ocupa grandes extensiones en Asia, América y Europa.
En el continente europeo, es Castanea sativa Mill., la que se extiende por la region mediterránea
septentrional, llegando hasta Centroeuropa y pequeños enclaves del norte de África y el Cáucaso.
También fue introducido en las islas de Madeira y Canarias.
De Asia son propias Castanea crenata (Japón, Corea y China NE) y Castanea mollisima (China E y
S) junto con Castanea Henryi (China: cuenca del Yan-Tse)
En América vegetan varias especies, entre las que destacan Castanea dentata y Castanea pumila en
el área montañosa de los Apalaches, en la costa oriental de EEUU. C.dentata fue importantísimo en las
culturas indias y de los primeros colonizadores hasta que, a comienzos del siglo XX desaparecen casi la
totalidad de los sotos estadounidenses (800.000 ha en 8 años) debido a la enfermedad del chancro.
Todos estos árboles, aunque pertenecen al mismo género, ofrecen características morfológicas y
biológicas bien diferenciadas, lo que hace que presenten distintos portes y calidades de fruto y madera,
así como también diferentes grados de resistencia a las enfermedades que les afectan.
Esto influye enormemente en la expansión o regresión del castaño, a lo largo del tiempo. Así,
C.mollisima y C.crenata apenas se ven afectados por el chancro del castaño, mientras que C.dentata
casi desapareció de su área original en el este de EEUU. De la misma forma C.sativa ha visto mermada
notablemente su población el Europa debido al mal de la tinta, que tampoco afecta en igual medida a los
castaños orientales.
Esto ha hecho que se hayan ido desarrollando medios para combinar las distintas especies
mencionadas y así combinar características interesantes de cada una para obtener un mejor rendimiento
del árbol, por lo que en la actualidad nos podremos encontrar numerosos híbridos de todas ellas.
Aparte de estas diferencias, todas las especies de castaño comparten el factor común de estar
ligadas a la economía de las poblaciones de las áreas que ocupan. De esas poblaciones depende en
gran medida su supervivencia, ya que no hay que olvidar que el soto de castaños forma un ecosistema
totalmente artificial, mantenido por sus cultivadores que le dispensan las atenciones y cuidados que
precisa para sobrevivir (podas, injertos, laboreos, fertilizaciones…). A esto el árbol responde desde
antiguo ofreciendo productos de un enorme valor económico (madera, castañas, leña, hojas como cama
del ganado…) y marcando con su ciclo vegetativo el calendario de la gente a la que alimentaba, creando
toda una cultura a su alrededor.
El área ocupada por el castaño no ha permanecido estable a lo largo de los siglos, en Europa estuvo
en expansión hasta el siglo XIX, a partir del cual empieza su regresión, fundamentalmente por la
colonización del hongo causante de la tinta y posteriormente del chancro, aunque también propiciado por
el despoblamiento de las zonas rurales (a través de la emigración al extranjero o su desplazamiento a las
áreas urbanas), con el consiguiente descuido hacia las labores tradicionales que precisa este árbol, tanto
por la falta de población como su envejecimiento.
En España hallamos castañares en toda la península sobre todo en la mitad norte. El área natural del
castaño es complicada de determinar, ya que su extensión ha sido en gran parte antrópica. Lo
encontramos en 2 formaciones principales: monte alto para la producción de fruto, y monte bajo para
madera y otros.
La espontaneidad de esta especie en la península ha sido objeto de discusión. Parece que las
glaciaciones hicieron que retrocediera a zonas más meridionales, quedando relegado solamente a
lugares protegidos desde los que recolonizó parte de su área original.
En cuanto a aprovechamientos, España es el 6º país productor mundial de castaña, el 2º de la UE en
producción de castañas (26.000 t/año, después de Italia) y el 3º en superficie (126.000 ha, después de
Francia e Italia).
La producción maderera anual se acerca a los 140.000m3 de madera con corteza (Segundo
Inventario Forestal Nacional, 1990)
La madera de castaño es de calidad buena, empleándose tradicionalmente para tonelería, artesanía,
cercas y vallados, y vigas de construcción, especialmente en lugares húmedos.
La extensión dedicada a la producción de fruto es mayor que la de madera, aunque no toda se
aprovecha realmente, probablemente debido al abandono de esas zonas.
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Hasta hace unos 30 años, C. sativa era también la principal fuente de obtención de taninos; a partir
de entonces fue desplazado por los taninos sintéticos.
Por otro lado, siempre menospreciados, están los valores ornamental, paisajístico, ecológico,
protector, sociocultural e histórico de esta especie.
En este contexto las enfermedades de la Tinta, primero, y el Chancro después, han estado afectando
al castaño de una forma contundente desde el siglo pasado, y han mostrado la falta de herramientas con
las que luchar frente a los patógenos.
Las únicas plagas que llegan a ser limitantes en la producción del castaño son las causadas por
Dryocosmus kuriphilus (avispa de la agalla del castaño orienta), varios gorgojos y polillas que dañan al
fruto, y los escarabajos barrenadores de madera, que repasaremos entre otros muy por encima.
Las principales amenazas del castaño son las enfermedades del Chancro del castaño y la Tinta.
Otros hongos provocan daños contenidos con facilidad por el árbol.
Finalmente, comentaremos la importancia de factores abióticos que en ocasiones comprometen el
buen desarrollo de estos sotos.
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2.1- LOS HÚESPEDES: INSECTOS PLAGA
Euproctis chrysorrhoea (Lepidoptera, Lymantriidae)
Oruga de zurrón
Árbol hospedante
Identificación
Daños
Todas las especies de Quercus, castaños (Castanea), chopos (Populus) y otras muchos
caducifolios.
• En invierno presencia de nidos (refugios) sedosos con orugas pequeñas y marrones
• En primavera presencia de orugas peludas alimentándose en grupos apretados en la superficie
de la hojas y brotes sin refugios sedosos.
• En un principio, las orugas son pardo negruzcas con dos protuberancias naranjas en la parte
posterior, después se cubren de largos pelos y dos líneas de mechones blancos. (En España en
los primeros estadios las orugas son de color pardo amarillento, posteriormente son de color
pardo negruzco con dos líneas laterales blancas y un par de tubérculos de color rojizo provistos
de pelos al final del abdomen).
• En Julio y Agosto, presencia de grupos de huevos en la cara inferior de las hojas, cubiertos de
pelos pardo anaranjados del abdomen de la hembra.
• Daños sobre los brotes y las hojas y durante la salida se produce una defoliación completa que
provoca la reducción del crecimiento del árbol.
• Defoliaciones sucesivas pueden provocar la muerte de árboles jóvenes.
• En ataques severos se reduce la producción de fruto.
• Las orugas poseen pelillos urticantes que causan irritaciones y reacciones alérgicas en las
personas.
Biología
• Hay una generación por año.
• Presencia de mariposas adultas desde Julio a Agosto. Los huevos son depositados en la cara
inferior de las hojas.
• Las orugas se agrupan y pasan el invierno en refugios de seda y hojas. Aparecen desde
Septiembre a Abril del año siguiente. Las orugas jóvenes esqueletizan las hojas. Invernan en
refugios de seda y hojas y reinician su actividad alimentándose de hojas, flores y ramillas en
primavera. Pupan en Junio o Julio en las hojas y ramillas.
• Los ataques son periódicos y suceden cada 8 ó 10 años.
Factores de riesgo
• Suelos pobres y secos y veranos calurosos. Los árboles debilitados son más susceptibles a los
ataques.
Seguimiento
• Durante el invierno, observación del porcentaje de árboles infestados (= árboles con refugios de
seda y hojas).
Medidas preventivas
• Utilizar especies adecuadas al lugar
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Medidas curativas
• En invierno, eliminación de los capullos con orugas.
• En verano, captura masiva de machos mediante trampas de feromona.
• Los tratamientos químicos deben ser restringidos a situaciones de plaga y aplicados cuando
aparecen las larvas jóvenes (septiembre).
o En España: utilización de Bacillus thuringiensis var. kurstaki, Deltametrín o
Fluxenoxurón.
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Lymantria dispar (Lepidoptera, Lymantriidae)
Sinónimos: Porthetria dispar.
Lagarta peluda
Árbol hospedante
Identificación
Daños
Quercus spp. y también sobre más de 40 géneros de especies arbóreas.
• Desde otoño hasta primavera, presencia de masas de huevos ovales en los troncos de los
árboles y en las ramas grandes, formando plastones protegidos por la pilosidad del abdomen de
la hembra.
• Presencia de orugas peludas en la corteza, ramas y hojas de los árboles. Las orugas presentan
unas manchas características azules y rojas en la parte posterior.
• Defoliación.
• Tras la defoliación total en primavera, aparecen nuevas hojas en verano.
• La defoliación reduce el crecimiento del árbol, la cantidad y calidad del corcho (en los
alcornoques), la producción de fruto y la regeneración natural.
Biología
• Hay una generación por año.
• Las mariposas hembras depositan los huevos desde mitad de Junio a comienzos de Agosto (en
España desde mitad de Julio a comienzos de Septiembre).
• Los huevos permanecen todo el invierno y alcanzan la siguiente primavera cuando las hojas
jóvenes aparecen.
• Las orugas alcanzan su máximo desarrollo transcurridas ocho semanas.
• Las orugas pupan en fisuras de la corteza, en la hojarasca y también sobre las ramas.
• Los ataques ocurren periódicamente (cada 5 a 10 años).
Factores de riesgo
• Los árboles débiles, aquellos que crecen en suelos pobres y secos son los más susceptibles al
ataque de la lagarta peluda.
• Los pliegues y fisuras de la corteza proporcionan protección y lugares de pupación a las orugas,
reduciendo la depredación por pequeños mamíferos.
Seguimiento
• Inspección de masas de huevos en diferentes lugares (troncos, ramas grandes, rocas, restos en
el suelo y hojarasca).
• Uso de Disparlure, la feromona sintética sexual para detectar la presencia de mariposas.
Medidas preventivas
• Utilizar especies adecuadas al lugar.
Medidas curativas
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• En invierno, destrucción de las masas de huevos.
• En verano, captura masiva de machos mediante trampas de feromona.
• El uso de insecticidas debe ser restringido en situación de brotes de plaga. En Portugal, una
densidad de 600 masas de huevos por hectárea es suficiente para la aplicación de insecticidas.
Los siguientes productos están registrados:
o En España: Bacillus thuringiensis var. kurstaki, Carbaril, Diflubenzurón, Flufenoxurón y
Hexaflumurón contra los primeros estadios larvarios.
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Operophtera brumata y Erannis defoliaria (Lepidoptera, Geometridae)
Sinonimias: Hybernia defoliaria.
Árbol hospedante
Identificación
Daños
Principalmente Quercus spp., pero también chopos (Populus), castaños (Castanea) y otras
muchas frondosas.
• A principios de primavera, presencia de orugas en posición espiral en el follaje. Las orugas de
Operophtera brumata son verde claras y presentan una longitud máxima de 20-22 mm. Las
orugas de Erannis defoliaria son rojizas o marrón amarillentas con una línea negra en sus
laterales a menudo, amarillos y pueden alcanzar una longitud de 30-32 mm.
• Las hojas están parcialmente comidas y unidas entre sí mediante seda.
• Defoliación significativa cuando el nivel de infestación es fuerte.
• En mayo-junio las orugas adultas bajan por un hilo de seda hasta alcanzar el suelo.
• Los árboles se debilitan y son más susceptibles a plagas secundarias.
• La defoliación produce reducción del crecimiento.
• Reducción o falta total de producción de bellota.
Biología
• Existe una única generación anual.
• Las polillas emergen del suelo desde octubre hasta finales de diciembre.
• Las polillas masculinas son aladas; las femeninas, sin embargo, son casi ápteras e incapaces de
volar. Estas últimas suben por el tronco hasta alcanzar la copa.
• Los huevos de Operophtera brumata (100-200 por hembra) se depositan en las grietas de la
corteza, en las ramas, en ramillas y líquenes. Los de Erannis defoliaria son depositados en las
ramillas terminales. Los huevos eclosionan en marzo-abril.
• Las orugas jóvenes penetran en las yemas y comen las flores y hojas en desarrollo. Las orugas
de mayor edad comen las hojas y continúan su desarrollo hasta mayo-junio.
• Las orugas maduras descienden hasta el suelo y penetran en él para pupar.
• El brote de plaga tiene lugar de forma irregular y dura entre 2-3 años. A veces se presenta
además la lagarta verde (Tortrix viridana).
• El aumento poblacional depende de la sincronización de la eclosión de los huevos y la apertura
de las yemas.
Seguimiento
• En invierno, la densidad de población de Operophtera brumata puede estimarse utilizando
trampas de feromona. Para ambas especies y, para estimar el número de polillas hembras, se
pueden colocar banda pegajosas en el tronco.
Medidas curativas
• En invierno, las polillas hembra pueden morir atrapadas en las bandas pegajosas colocadas
alrededor del tronco.
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• En primavera, el uso de insecticidas para matar orugas está restringido a situaciones
epidémicas. Una buena aplicación es difícil y cara, además, los resultados son a menudo
decepcionantes. Generalmente no son necesarios tratamientos químicos. En plantas obtenidas
por selección, el uso de insecticidas puede estar justificado.
o En España: están registrados Bacillus thuringiensis, Deltametrín, Diflubenzurón y
Flufenoxurón.
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Zeuzera pyrina (Lepidoptera, Cossidae)
Polilla leopardo, taladro de la madera
Árbol hospedante
Identificación
Daños
Quercus spp., chopos (Populus), castaños (Castanea) y otras muchas frondosas.
• Presencia de pequeños montones de serrín (procedentes de los orificios de entrada de las
orugas) en la corteza de las ramillas y ramas.
• Las ramillas con galerías internas se marchitan. Las ramillas o ramas atacadas pueden
romperse.
• Presencia de orugas en galerías en el interior de las ramillas, ramas o tallo. Las orugas son
amarillas claras, regularmente moteadas con puntos negros y pueden alcanzar una longitud de
60 mm
• La envergadura de las alas de las polillas adultas puede ser de 40-70 mm. Sus blancas alas
contienen manchas azules metálicas. Al presentar actividad nocturna, son difíciles de ver.
• Los daños acontecen principalmente en árboles jóvenes (semilleros o plantaciones jóvenes). Los
árboles jóvenes mueren si la oruga horada su eje central.
• Los árboles atacados son más sensibles a daños por vendavales.
• Los árboles infestados por la polilla leopardo son a menudo atacados por otros insectos
perforadores.
Biología
• Normalmente, hay una generación por año; en zonas más frías pueden necesitar 2 años para
completar el desarrollo.
• Las polillas adultas vuelan desde finales de mayo hasta agosto.
• Los huevos son depositados en grietas de la corteza o en antiguas galerías larvarias.
• Las orugas jóvenes viven en brotes o ramas jóvenes y luego se trasladan a las ramas más
gruesas y al tronco, donde hacen las galerías bajo la corteza y en el interior de la madera. Las
orugas invernan y continúan perforando la madera en primavera. Pupan al final de la galería,
desde mayo hasta julio.
Factores de riesgo
• Los árboles debilitados son más propensos al ataque.
Seguimiento
• En verano se utilizan trampas de feromona (colocadas encima de la copa del árbol) para evaluar
la densidad de población.
Medidas preventivas
• Plantar especies arbóreas adecuadas al lugar.
• Eliminar y destruir las partes del árbol infestadas. Si se ven ramas pequeñas dañadas, buscar la
oruga en ramas más gruesas.
Medidas curativas
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• En semilleros se pueden utilizar piretroides en julio-agosto, para matar orugas jóvenes antes de
que penetren en ramas más viejas.
• En España, Portugal o Francia, no se han registrado insecticidas contra esta especie en
bosques.
Xyleborus dispar (Coleoptera, Scolytidae)
Sinonimias: Anisandrus dispar
Barrenillo
Árbol hospedante
Identificación
Daños
Quercíneas (Quercus sp.), chopos (Populus), castaños (Castanea) y otras muchas frondosas
como hayas (Fagus), alisos (Alnus), árboles frutales y, a veces en coníferas.
• En el tronco o ramas: savia negruzca procedente de los orificios de entrada, que presentan entre
1,5-2 cm de diámetro.
• La galería materna penetra en la madera y se dispone perpendicularmente al eje longitudinal del
tronco o de las ramas, desembocando en una galería circular de la que parten varias galerías
laterales cortas
• Insectos adultos negros. Hembras y machos muy diferentes en tamaño: hembras de 3,2-3,6 mm
de longitud y machos más redondeados, que miden entre 1,8-2,1 mm de longitud, ápteros y, que
generalmente permanecen en el interior de la galería.
• Esta especie puede confundirse con otros perforadores pero el sistema de galerías de X. dispar
es característico.
• Los árboles jóvenes a menudo mueren tras fuertes infestaciones.
• Los árboles atacados son más susceptibles a los daños por tormentas.
• La presencia de galerías deprecia enormemente la madera.
• Esta especie es vectora de los hongos de ambrosía que azulean y deprecian la madera.
Biología
• Normalmente hay una generación anual pero en las regiones templadas pueden darse dos
generaciones anuales.
• Los adultos emergen en primavera. La hembra penetran en la madera y horada una galería con
varias galerías laterales cortas donde deposita los huevos.
• La larva se alimenta de un hongo xilófago del género Ambrosia transportado por la hembra que
se desarrolla y tapiza el interior de las galerías.
• En verano, la larva pupa y el adulto permanece en la galería hasta la primavera siguiente. En
algunas regiones, el adulto abandona la galería y realiza un segundo vuelo de dispersión durante
agosto-octubre.
Factores de riesgo
• Generalmente sólo los árboles debilitados son atacados. En condiciones epidémicas también los
árboles sanos pueden ser atacados.
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Seguimiento
• Uso de trampas que contengan alcohol al 20 % para seguimiento del nivel de la población.
Medidas preventivas
• Selección de plantas bien adaptadas y mantenimiento de un crecimiento vigoroso.
• Eliminación de los árboles enfermos.
• Eliminación y quemado de los árboles atacados.
• No dejar trozas apiladas en el monte.
Medidas curativas
• No hay insecticidas registrados contra esta especie en Francia ni en Portugal. En España:
Alfacipermetrín, Deltametrín y Fenitrotión están registrados contra los escolítidos en general,
pero estos productos no se usan para combatir especies poco agresivas como ésta.
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Cydia splendana (Lepidoptera, Tortricidae)
Árbol hospedante
Identificación
Daños
Castaños (Castanea), quercíneas (Quercus) y más raramente avellano (Corylus).
• Los erizos adquieren un color marrón y caen.
• Presencia de orugas dentro del fruto, rodeadas de serrín y excrementos.
• Presencia de agujeros de salida (1,5-3 mm) en la piel de la castaña.
• Las orugas alcanzan de 12 a 16 mm de longitud, son de color blanquecino o rosáceo, con el
primer segmento torácico marrón oscuro. Podría confundirse con otras dos especies que pueden
estar presentes en las castañas: Pammene fasciana y Curculio elephas. La oruga de Pammene
fasciana es más pequeña (10-13 mm) y es de color rojizo. La larva de Curculio elephas carece
de patas y es de color blanco cremoso con la cabeza negra, mide unos 7-12 mm, es gruesa y
suele aparecer curvada en forma de C. El serrín que la rodea es de grano más grueso que el de
C. splendana.
• Los frutos caen prematuramente.
• Destrucción de la castaña causando pérdidas del fruto maduro.
• La presencia de frutos atacados disminuye la calidad de la producción y aumenta el coste de
seleccionar el producto para la venta.
Biología
• Presenta una generación anual.
• Las mariposas adultas vuelan desde agosto a octubre y realizan la puesta generalmente en el
haz de las hojas.
• Las larvas de primer estadio penetran en el fruto cerca de la zona de unión, luego lo barrenan
destruyendo su interior. Cada oruga ataca sólo una castaña.
• El desarrollo de las orugas se completa en aproximadamente 3 semanas.
• Las orugas completamente desarrolladas abandonan los frutos de septiembre a noviembre
excavando un orificio en la piel de la castaña y se entierran en el suelo a una profundidad de 5-8
cm. Allí pasan el invierno dentro de un capullo blanco al que incorporan partículas de suelo. Es
posible también encontrar capullos bajo las cortezas del árbol hospedante.
Factores de riesgo
• Acumulación en el suelo de frutos atacados.
• Los ataques son más importantes generalmente en veranos secos.
• Los daños son mayores cuando el árbol se desarrolla en suelos superficiales, pobres y
pedregosos.
Seguimiento
• De agosto a octubre uso de trampas cebadas con feromonas para estimar la población de
adultos.
• Muestro al azar de frutos para estimar el nivel de ataque.
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Medidas preventivas
• Retirar las castañas atacadas del suelo lo antes posible y destruirlo para evitar que las orugas
los abandonen y se entierren en el suelo.
Medidas curativas
• Remover el suelo durante el invierno o primavera para exponer los capullos al sol y al aire
causándoles así la muerte y por tanto bajando los niveles de población. Sin embargo se
recomienda evitar un arado profundo (no más de 10-15 cm) evitando asimismo la proximidad del
tronco del árbol, especialmente en áreas con riesgo de ataques de Phytophtora.
• No existen insecticidas registrados en España, Francia o Portugal contra esta especie en
condiciones de campo. En Francia existen varios productos permitidos en huertos de castaños.
• Técnicas de confusión sexual (en estudio).
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Curculio elephas (Coleoptera, Curculionidae)
Sinonimias: Balaninus elephas.
Árbol hospedante
Identificación
Daños
Castaños (Castanea sativa) y Quercus spp.
• Castañas con marcas en forma de puntos marrones en la base debido a la puesta de los huevos
por los insectos.
• Las castañas se tornan de color marrón y se secan.
• Presencia de larvas blanquecinas (7-12 mm de longitud), en el interior de los frutos; las larvas
son curvadas en forma de C, ápodas y con la cabeza de color marrón.
• Aparecen galerías dentro de los frutos con excrementos marrones y compactos.
• Los frutos presentan agujeros de salida redondos (2-3 mm) realizados por las larvas cuando
abandonan el fruto.
• Posible confusión con las orugas de lepidópteros, estas últimas poseen patas y no son curvados
en forma de C, siendo la más común Cydia splendana.
• Los gorgojos son de color marrón a grisáceo, de aproximadamente 1 cm de longitud con la
cabeza pequeña y un gran pico (trompa).
• Los frutos son inservibles para el consumo en fresco y el coste de preparación de productos
derivados de la castaña aumenta.
• Las castañas dañadas son más susceptibles al ataque de hongos.
Biología
• Tiene una generación anual.
• Los adultos están presentes desde Agosto a Septiembre; las hembras realizan un agujero
perforando la castaña y depositan un huevo en el interior.
• Las larvas se alimentan de las castañas desde Octubre a Noviembre.
• Una vez completado el desarrollo larvario salen del interior de los frutos y se entierran en el
suelo a una profundidad de aproximadamente 10-15 cm.
• Las larvas permanecen enterradas durante el invierno y la primavera. La pupación tiene lugar
desde Mayo a Agosto.
• Algunas larvas pueden permanecer enterradas durante más de un año, permitiendo la
supervivencia de la especie en años de baja producción de frutos.
Factores de riesgo
• Los ataques son más intensos en los años de escasa producción de fruto, que siguen a años de
elevada productividad.
• Las plantas que sufren estrés están más predispuestas a los ataques.
• Los cultivos que presentan erizos con escasas espinas son más susceptibles al ataque que
aquellos que presentan mayor número de espinas.
Seguimiento
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• Un muestreo al azar de frutos disponiendo redes bajo los árboles permite estimar el porcentaje
de frutos atacados por árbol y por lugar.
Medidas preventivas
• Eliminación de todas las castañas afectadas que se encuentren en el suelo.
• Eliminación de la maleza y malas hierbas que aparecen bajo los árboles antes de la producción
de fruto. Esto permite observar y recolectar de manera más fácil todos los frutos caídos de los
árboles.
• Poda de los árboles, que favorece la producción de frutos más vigorosos.
• Uso de cultivos o clones resistentes si es posible.
Medidas curativas
• La movilización del suelo durante el invierno o en primavera expone y por tanto mata a un gran
número de gorgojos presentes en el suelo. Sin embargo, se recomienda evitar movilizaciones
profundas del suelo (no más de 10-15 cm) sobre todo en las proximidades del árbol y
especialmente en zonas con riesgo de ataque de Phytophthora.
• No existen insecticidas registrados en España y Portugal para esta especie.
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NOMBRE COMÚN: Avispa del castaño.
D r y o c o s m u s k u r i p h i l u s
CLASIFICACIÓN FITOSANITARIA: D. kuriphilus fue añadido en 2003 a la lista A2 de la EPPO. Se
recomienda regularlo como un parásito de cuarentena a países miembros de la Unión Europea.
HUÉSPEDES: Ataca a varias especies de castaños, entre ellos al castaño europeo (Castanea sativa).
No produce daños en otros árboles que no sean castaños.
DAÑOS: Este insecto ataca a los brotes de castaño formando agallas, interrumpiendo el crecimiento de
los ramillos y reduciendo la fructificación. Se pueden esperar reducciones de producción de castañas del
50-70 %. Infestaciones severas pueden llegar incluso a causar la muerte de los castaños. D. kuriphilus
es el insecto parásito más dañino par los castaños , pudiendo eliminar la producción de castañas
y hasta matar árboles.
SÍNTOMAS: El síntomas de identificación más claro es el desarrollo de agallas de 5-20 mm de diámetro,
de color verde o rosa, sobre ramitas jóvenes, brotes y hojas. Después de la emergencia del adulto la
agalla seca se hace parecida a la madera y permanece sujeta al árbol hasta dos años. Mientras las
agallas se aprecian fácilmente sobre el castaño, los huevos o las larvas dentro de los brotes no pueden
ser descubiertos por inspecciones visuales simples.
DISPERSIÓN: La dispersión de D. kuriphilus a nuevos países o zonas ocurre por la introducción de
ramitas o brotes (púas) infestadas. La extensión local ocurre por el movimiento de ramitas y plantas
jóvenes infestadas o por el vuelo de las hembras adultas durante el período en que están presentes: de
finales de mayo a finales de julio.
SÍNTOMAS
Agallas de D.kuriphilus sobre hojas Agallas de D.kuriphilus sobre brotes
Morfología: Ovaladas verdes o rosas. Cuando están secas de color marrón.
Tamaño: 5-20 mm de diámetro.
Época: Formación en primavera. Después de la emergencia del adulto permanece en el árbol hasta dos años.
CICLO BIOLÓGICO
CICLO BIOLÓGICO
1.-Hembra adulta de D. Kuriphilus 2.-Huevos de D. Kurphilus.
Morfología: Cuerpo negro, patas, antenas y mandíbulas Morfología: Ovales, lechosos blancos, con tallo o
amarillas-marrones.
pedúnculo de sujeción.
Tamaño: 2.5-3 mm de largo. Tamaño: 0.1-0.2 mm de largo.
Época desarrollo: Desde finales de mayo a finales de Época desarrollo: Desde mediados de junio a finales de
julio.
agosto.
3.-Larvas de D. kuriphilus 4.-Pupa de D. Kuriphilus
Morfología: Lechosa blanca, sin ojos y sin patas. Morfología: Cuerpo negro o marrón oscuro.
Tamaño: 2.5 mm de largo. Tamaño: 2.5 mm de largo.
Época desarrollo: Crecimiento larval en otoño, invierno Época desarrollo: De mediados de mayo a mediados de
y principios de primavera.
julio.
DETECCIÓN DE LA PLAGA
¿QUÉ HACER?: Si se observan síntomas de la plaga sobre castaños se deberán tomar las coordenadas del punto
donde se hizo la observación o, si no es posible, realizar una descripción de la localización de dicho punto mediante
referencias físicas y vías de acceso. También se deberá indicar el Término Municipal dónde se encuentra y la
localidad más próxima.
¿A DÓNDE DIRIGIRSE?: Contactar con:
C E N T R O D E S A N I D A D F O R E S T A L D E C A L A B A Z A N O S
P o l í g o n o I n d u s t r i a l d e V i l l a m u r i e l , s / n
3 4 1 9 0 - V i l l a m u r i e l d e l C e r r a t o - P A L E N C I A
T f n o : 9 7 9 7 7 0 4 0 3 - F a x : 9 7 9 7 7 0 2 1 2
e - m a i l : s a n i d a d . f o r e s t a l @ j c y l . e s
2.2- LOS HÚESPEDES: HONGOS FITOPATÓGENOS
LOS HONGOS: Son pequeños organismos que producen esporas.
Son eucarióticos, ramificados y de estructura filamentosa.
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No poseen clorofila y sus paredes celulares pueden contener quitina y/o celulosa.
Según algunos micólogos habría más de 100.000 especies de hongos (según otros la cantidad
aumentaría a 1.000.000, la mayoría sin identificar). La inmensa mayoría de ellos son saprófitos, sin
embargo, un pequeño porcentaje puede necesitar la presencia de un huésped para completar su ciclo
vital. Alrededor de 50 especies parasitan animales, y otras 50 al hombre, pero hay unas 8.000 especies
de hongos que parasitan vegetales. De estas especies parásitas sólo un porcentaje son parásitas
obligadas, el resto pueden resistir a la ausencia del hospedante durante amplios periodos de tiempo
(paráritas facultativas).
Armillaria mellea (Basidiomycota, Agaricales).
Sinonimias: Armillariella mellea, Agaricus melleus.
Podredumbre radicular en cordón, Hongo de miel.
Árbol hospedante
Roble (Quercus), castaño (Castanea), chopo (Populus), sauce (Salix), haya (Fagus), abedul
(Betula) y otros. Este hongo también es muy agresivo sobre árboles frutales y en la vid (Vitis).
Identificación
Daños
• Progresiva defoliación de la copa: copa abierta con hojas pequeñas y poco densa; el follaje se
vuelve gradualmente amarillento.
• Abanicos de micelio color crema debajo de la corteza de la raíz o del cuello de la raíz; y en caso
de una infección avanzada también debajo de la corteza del tronco.
• En el tronco, aparición de exudaciones gomosas en la corteza cuando los abanicos se
encuentran debajo.
• En el suelo y bajo la corteza del tronco de los árboles muertos, presencia de cordones de
rizomorfos de color marrón oscuro creciendo hacia fuera desde las raíces.
• En Otoño (Septiembre-Octubre), grupos de cuerpos de fructificación crecen a partir de los
abanicos miceliares en el huésped (de raíz, tronco, tocón), o de los rizomorfos en el suelo. Los
cuerpos de fructificación son de color miel, sin escamas en el sombrero ni en el pie, y con un
gran anillo blanco.
• Los métodos para la identificación de las especies de Armillaria a partir de los rizomorfos de la
madera infectada se pueden llevar a cabo actualmente en laboratorios especializados.
• Necrosis y chancros sobre raíces y troncos, asociados con podredumbres radiculares.
• Normalmente, A. mellea es un patógeno secundario de quercíneas. En muchas ocasiones, la
acción combinada de la podredumbre radicular por Armillaria y otros agentes bióticos (insectos,
u otros hongos) o factores abióticos (sequía, fuego, prácticas forestales, heladas, inundaciones)
se han asociado con el decaimiento que sufre el roble en el centro y norte de Europa, o el
síndrome de la seca de la encina en España.
• Armillaria incrementa el riesgo de daños por tormentas.
Biología
• Este hongo provoca una podredumbre blanca de los tejidos de la madera. La madera infectada
se humedece y cambia del color blanquecino al amarillo, volviéndose esponjosa y finalmente
gelatinosa.
• Armillaria se propaga de árbol a árbol por contactos radiculares o por medio de sus rizomorfos.
El papel de las esporas en el desarrollo de la enfermedad no es bien conocido.
• Después de la penetración en el raíz y en el cuello de la raíz, el hongo puede sobrevivir en los
tejidos necrosados durante largos períodos de tiempo.
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Factores de riesgo
• A. mellea está muy extendida en bosques caducifolios y es capaz de sacar provecho a los
cambios medioambientales (daños de insectos, sequía) para propagarse rápidamente.
Medidas preventivas
• Cuando establecemos nuevas plantaciones debemos tener cuidado en la selección de las
especies y el lugar (las especies de roble adaptadas a la zona crecerán más vigorosamente).
• Si el hongo está todavía presente, evitar su propagación durante la preparación del terreno (arar
las áreas infectadas después de haber arado todo lo demás).
• Reforestar con coníferas cuando sea posible. Sin embargo, A. mellea puede atacar coníferas
jóvenes y debilitadas (como A. ostoyae).
Medidas curativas
• Los desinfectantes de suelo se usan en viveros, viñedos y floricultura, pero no están permitidos
en el monte ya que son caros y peligrosos para el medio ambiente.
Biscogniauxia mediterranea (Ascomycota, Xylariales)
Sinonimias: Hypoxylon mediterraneum
Chancro carbonoso
Árbol hospedante
Identificación
Daños
Robles (Quercus, principalmente Q. suber y Q. ilex), y ocasionalmente chopos (Populus),
castaños (Castanea), eucalipto (Eucalytus) y plátano (Platanus).
• Puntisecado que va avanzando hasta provocar la muerte de las ramas o del árbol.
• Descenso de la densidad en la copa debido al bajo número de brotes jóvenes, a la disminución
del tamaño de los brotes y a la defoliación. Formación de agrupaciones de hojas en la punta de
los brotes y ramas, y caída prematura de las hojas principalmente en la periferia de la copa.
• Decoloración de la copa (las hojas se vuelven marrones con el paso del tiempo).
• Aparición de manchas negras sobre la corteza, con exudados de un líquido viscoso.
• Desarrollo de un visible estroma negro carbonoso sobre el tronco y las ramas que se forma a
partir de la corteza (Foto 3). Sobre esta superficie estromática se originan pequeñas
protuberancias que corresponden a las fructificaciones del hongo.
• Las ramas o amplias partes del árbol pueden ser fuertemente afectadas y pueden llegar a
desprenderse.
• El estroma negro del patógeno es evidente en árboles en las últimas fases de la enfermedad o
sobre el material muerto que permanece en el suelo.
• La muerte del árbol se produce en un periodo de tiempo variable. Normalmente, suele producir
bajas tasas de mortalidad. El hongo puede afectar a árboles jóvenes y adultos pero es más
frecuente en estos últimos.
Biología
• El estroma carbonoso está presente sobre ramas y tronco durante todo el año, liberando gran
cantidad de esporas, especialmente tras periodos lluviosos.
• Las esporas son transportadas por los insectos y el viento, y también por los instrumentos
utilizados para realizar el descorche (en el caso del alcornoque).
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• Las esporas penetran a través de las heridas y se desarrollan en los tejidos del tronco y ramas
(incluyendo la madera).
• En España se encuentra asociado a la enfermedad de la seca de la encina.
Factores de riesgo
• Largos periodos de sequía.
• Malas practicas en la extracción del corcho, poda y clareo.
Medidas preventivas
• Aplicación de las reglas establecidas para la extracción de corcho y las podas.
• Desinfección de las herramientas usadas en la extracción del corcho.
• Eliminación del material muerto procedente del árbol que permanece en el suelo.
• La incidencia del hongo esta asociada con la debilidad del árbol hospedante. La mejor forma de
control consiste en la realización de unas practicas culturales correctas que consigan mejorar el
vigor del árbol.
• La corrección de excesos o carencias de macro y microelementos del suelo debe de ser
considerado, principalmente en suelos con un fuerte desequilibrio mineral y un pH muy bajo.
• Evitar la pérdida de nutrientes en las capas profundas del suelo.
• En general, debería evitarse la sobreexplotación (la realización simultánea de intenso pastoreo,
extracción excesiva de corcho y cultivo de cereal), especialmente en rodales degradados.
Medidas curativas
• No se recomiendan tratamientos químicos.
Microsphaera alphitoides (Ascomycotina, Erysiphales).
Sinonimias: Microsphaera quercina
Forma asexual: Oidium quercinum
Oídio del roble
Árbol hospedante
Identificación
Daños
Robles (Quercus) principalmente Q. robur, Q. petraea y Q. toza (Q. ilex y Q. suber son mucho
menos susceptibles). De forma ocasional puede aparecer sobre haya (Fagus sylvatica) y castaño
(Castanea sativa).
• Las hojas y ramillas jóvenes aparecen cubiertas por un micelio blanquecino grisáceo, que posee
conidios (esporas asexuales) que le confieren un aspecto polvoriento
• En especies menos susceptibles (como Q. ilex y Q. suber), presencia de pequeñas manchas
amarillentas en el haz de las hojas jóvenes.
• Cuando los ataques son severos, las hojas presentan manchas necróticas marrones
• Hojas y brotes pueden aparecer distorsionados.
• Caída prematura de las hojas.
• Al final del verano pueden formarse pequeños cuerpos de fructificación oscuros y esféricos
(cleistotecios) sobre el micelio viejo.
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• El oídio del roble puede ocasionar un descenso del crecimiento del árbol.
• Los árboles jóvenes y el regenerado pueden morir tras repetidas infecciones.
Biología
• El hongo inverna en forma de micelio vegetativo en las yemas infectadas y ramillas, y en los
cleistotecios que aparecen como pequeños puntos oscuros sobre las hojas caídas.
• En la primavera, las hojas son infectadas por las esporas sexuales (ascosporas) liberadas por
los cleistotecios y/o por las esporas asexuales (conidios) producidos en el micelio invernante
(infecciones primarias).
• El hongo se desarrolla sobre la superficie de la hoja.
• Durante la primavera y el verano, el micelio aéreo produce numerosos conidios, con forma de
barril, que originan nuevas infecciones sobre las hojas (infecciones secundarias).
• Al final de la estación vegetativa, la producción de conidios cesa y pueden formarse cleistotecios.
Factores de riesgo
• Las plantas jóvenes en vivero son muy susceptibles.
• El tiempo cálido favorece el desarrollo del patógeno.
• La fertilización con altos niveles de nitrógeno favorece el desarrollo de la enfermedad.
• Las hojas secundarias formadas después de una defoliación por orugas o después de una
helada son atacadas con frecuencia de forma severa.
Medidas preventivas
• El método de control más efectivo es la plantación de especies poco susceptibles (Q. rubra, Q
cerris).
• Fertilización con bajas concentraciones de nitrógeno.
Medidas curativas
• Algunos fungicidas están autorizados en Francia y Portugal para controlar esta enfermedad en
viveros (para su uso cuando aparecen los primeros síntomas). En el monte, el uso del
Myclobutanil está permitido en Francia, y el Kresoxim-methyl en Portugal. En España no existe
ningún producto autorizado para su uso en vivero o en el monte.
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