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marcadores moleculares ultima generacionbn.pdf - biounsam

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Marcadores<br />

<strong>moleculares</strong><br />

basados en la<br />

Amplificación<br />

sitio-específica<br />

del ADN<br />

Marcadores <strong>moleculares</strong> SCAR, STS<br />

y CAPS<br />

Sequence Characterized Amplified Regions (amplificación<br />

de regiones de secuencia caracterizada )<br />

Sequence-Tagged Sites (secuencias indicadoras de un sitio<br />

específico)<br />

Cleaved Amplified Polymorphic Sequence (secuencia amplificada<br />

y clivada polimórfica)


Obtención<br />

de <strong>marcadores</strong><br />

SCAR<br />

Un fragmento polimórfico de interés, puede ser escindido de un<br />

gel, clonado (o no) y secuenciado para diseñar iniciadores<br />

específicos para ese fragmento en particular, permitiendo su<br />

amplificación en condiciones de PCR más rigurosas.


STS<br />

Amplificación específica de alelos (ASA)<br />

Adaptado de Nakayashiki N & Sasaki Y, Int J Legal Med, 1996.


CAPS<br />

• Cleaved Amplified Polymorphic Sequence<br />

también conocido como PCR-RFLP<br />

- El producto de interés amplificado es digerido<br />

con alguna enzima de restricción y visualizado<br />

directamente mediante electroforesis en gel<br />

de agarosa y tinción con bromuro de etidio.<br />

- Esta metodología es más informativa cuando<br />

los sitios de restricción están mapeados dentro<br />

del locus.


Propiedades<br />

de los<br />

<strong>marcadores</strong><br />

basados en la<br />

Amplificación<br />

de fragmentos<br />

de ADN<br />

conocidos<br />

• Son muy utilizados en mapeo físico de genomas.<br />

• Su análisis es sencillo<br />

(muy útiles en selección asistida).<br />

• El ensayo es altamente reproducible.<br />

• Son fácilmente transferibles a otros laboratorios.<br />

• Según las caracterísitcas de su diseño,<br />

pueden ser codominantes.<br />

• Pueden separarse en geles multiplex cuando<br />

se analizan varios loci simultáneamente.


Marcadores <strong>moleculares</strong><br />

de última generación


Marcadores<br />

<strong>moleculares</strong><br />

de última<br />

generación<br />

SNP<br />

Single Nucleotide Polymorphism<br />

(polimorfismos de un solo nucleótido)


Marcadores<br />

<strong>moleculares</strong><br />

de última<br />

generación<br />

• Sustituciones de una sola base, resultando<br />

en un polimorfimo bialélico de secuencia.<br />

En genoma humano: 1/1000 nt<br />

Variación puntual a nivel de secuencia.<br />

• Disponibles por la gran cantidad de secuencias<br />

de genomas.<br />

• Más frecuentes que SSR ⇒ SNPs <strong>marcadores</strong> cercanos<br />

o en el locus de interés (en un gen ⇒ estructura<br />

de proteína, niveles de expresión, etc ⇒ enfermedades).<br />

Muy útiles como <strong>marcadores</strong> para la construcción<br />

de mapas de ligamiento más densos que los actuales.<br />

• Dialélicos: mutacionalmente más estables, comparado<br />

con variantes en el largo de la secuencia.


Secuenciación<br />

comparativa<br />

de segmentos<br />

amplificados<br />

• Base:<br />

• Metodología:<br />

- Diferencias en las secuencias específicas<br />

de segmentos conocidos (locus/loci).<br />

- Extracción y purificación de ADN.<br />

- PCR con iniciadores caracterizados.<br />

- Secuenciación del producto de amplificación.<br />

• Ventajas y desventajas:<br />

• Aplicación:<br />

- Altamente reproducible.<br />

- Muy informativo.<br />

- Caro y engorroso.<br />

- Se requiere conocimiento previo.<br />

de la secuencia a analizar.<br />

- Estudios evolutivos.<br />

- Identificación/ parentezco.


Marcadores<br />

<strong>moleculares</strong><br />

basados en la<br />

detección<br />

de diferencias<br />

conformacionales<br />

debidas a cambios<br />

en secuencias<br />

únicas del ADN<br />

SSCP<br />

Single-Strand Conformation<br />

Polymorphism


Detección<br />

de polimorfismos de<br />

un solo nucleótido<br />

(SNP) o pequeñas<br />

mutaciones<br />

(inserciones y<br />

deleciones) mediante<br />

el análisis<br />

de los cambios<br />

de movilidad del ADN<br />

simple cadena<br />

causado por la<br />

sustitución<br />

de una sola base.<br />

Amplificación por PCR de la secuencia de interés<br />

1. El amplicón se desnaturaliza por calor<br />

y luego snap-cool.<br />

2. Separación por tamaño y conformación<br />

mediante electroforesis en geles<br />

de poliacrilamida nativos (native PAGE).


SSCP


Ventajas<br />

y limitaciones<br />

del método<br />

de SSCP<br />

•Ventajas<br />

• Limitaciones<br />

- Detección y análisis del fragmento<br />

en simultáneo.<br />

- Análisis de un elevado numero de muestras<br />

en un corto tiempo, con equipo adecuado.<br />

- La posición y el tipo de polimorfismo no puede<br />

ser detectado sólo con SSCP ⇒ requiere<br />

secuenciación.<br />

- Detección de polimorfismo entre 35%<br />

y 80% ⇒ pérdida del 20%.<br />

- Condiciones rigurosas de ensayo.


Métodos<br />

para análisis<br />

de un gran número<br />

de muestras<br />

(high throughput<br />

analysis):<br />

PCR en tiempo real: sistema TaqMan


PCR en<br />

tiempo real:<br />

sistema<br />

TaqMan®


Detección<br />

de SNP<br />

Empleando<br />

sondas<br />

TaqMan® para<br />

cada alelo<br />

Química de la discriminación alélica


DHPLC “Denaturing High-Performance<br />

Liquid Chromatography” *<br />

Adaptado de: Steinmetz L. M., Mindrinos M. & Oefner P. J. Trends Plant Sc. 2000<br />

* (Cromatografía líquida desnaturalizante de alta performance)<br />

- Revela la presencia de polimorfismo por la migración diferencial de la forma heterodúplex pero no<br />

provee información con respecto a su naturaleza química y localización.<br />

Se requiere secuenciar las variantes alélicas<br />

- Cuando la frecuencia de polimorfismo es baja puede ahorrar tiempo y dinero, ya que los<br />

fragmentos que no presentan polimorfismo por DHPLC no requieren resecuenciación.


Arreglos de<br />

oligonucleótidos<br />

de alta<br />

densidad


Arreglos de oligonucleótidos de alta densidad<br />

Genotipificación y resecuenciación de <strong>marcadores</strong> SNP en microarreglos<br />

Adaptado de: Steinmetz L. M., Mindrinos M. & Oefner P. J. Trends Plant Sc. 2000


Arreglos de<br />

oligonucleótidos<br />

de alta<br />

densidad<br />

• Más conocidos por su aplicación en estudios de expresión.<br />

• Permiten la detección de variantes alélicas y genotipificación<br />

de un gran número de <strong>marcadores</strong>.<br />

• Oligonucleótidos-sonda cortos (20-25 bases), unidos<br />

covalentemente a vidrio (fotolitografía o síntesis química<br />

fotosensible). 300.000 sondas en 1,28 x 1,28 cm 2.<br />

• Basado en la especificidad de hibridación del ADN.<br />

• Por cada secuencia de referencia se diseñan conjuntos de 4<br />

oligonucleótidos-sonda distintos (una que cotiene una A,<br />

una T, una G o una C) para cada una de las posiciones<br />

posibles en el oligonucleótido, extendiéndose a lo largo<br />

de la secuencia de referencia de a una base por vez.<br />

• Permiten la secuenciación de las variantes alélicas<br />

encontradas.


Referencias<br />

-Litt M. & Luty J.A. A hypervariable microsatellite revealed by in vitro amplification of a<br />

dinucleotide repeat within the cardiac muscle actin gene. Am. J. Hum. Genet. 44:398-401.<br />

1989.<br />

-Beckmann J.S. & Soller M. Toward a unified approach to genetic mapping of eucaryotes<br />

based on sequence tagged microsatellite sites. Biotechnology 8:930-932. 1990.<br />

-Morgante M. & Olivieri A.M. PCR-amplified microsatellites as markers in plant genetics. The<br />

Plant J. 3:175-182. 1993.<br />

-Livneh O., Vardi E., Stram Y., Edelbaum O. & Sela I. The convertion of a RFLP assay into<br />

PCR for the determination of purity in a hybrid pepper cultivar. Euphytica 62:97-102. 1992.<br />

-Paran I. & Michelmore R.W. Development of reliable PCR based markers linked to downy<br />

mildew resistance genes in lettuce. Theor. Appl. Genet. 85:985-993. 1993.<br />

-Tragoonrung S., Kanazin V., Hayes P.M. & Blake T.K. Sequence-tagged-site facilitated PCR<br />

for barley genome mapping. Theor. Appl. Genet. 84:1002-1008. 1992.<br />

-Akopyanz N., Bukanov N., Westblom T.U. & Berg D.E. PCR based RFLP analysis of DNA<br />

sequence diversity in the gastric pathogen Helicobacter pilori. Nucleic Acids Res. 20:6221-<br />

6225. 1992.<br />

-Ghareyazie B., Huang N., Second G., Bennet J. & Kush G.S. Classification of rice<br />

germplasm, I Analysis usin ALP and PCR-based RFLP. Theor. Appl. Genet. 91:218-227. 1995<br />

-Zietkiewicz E., Rfalski A. & Labuda D. Genome fingerprinting by simple sequence repeat<br />

(SSR)- anchored polymerase chain reaction amplification. Genomics 4: 176-183. 1994.<br />

-Kanety R.V., Zeng X., Bennetzen J.L. & Brent E.Z. Assessment of genetic diversity in dent<br />

and popcorn (Zea mays L.) inbred lines using inter-simple sequence repeat (ISSR)<br />

amplification. Mol. Breed. 1:365-373. 1995<br />

-Morgante M. & Vogel J. Compound microsatellite primers for the detection of genetic<br />

polymorphism. U.S. Patent Application No. 08/326456. 1994.

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