marcadores moleculares ultima generacionbn.pdf - biounsam
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Marcadores<br />
<strong>moleculares</strong><br />
basados en la<br />
Amplificación<br />
sitio-específica<br />
del ADN<br />
Marcadores <strong>moleculares</strong> SCAR, STS<br />
y CAPS<br />
Sequence Characterized Amplified Regions (amplificación<br />
de regiones de secuencia caracterizada )<br />
Sequence-Tagged Sites (secuencias indicadoras de un sitio<br />
específico)<br />
Cleaved Amplified Polymorphic Sequence (secuencia amplificada<br />
y clivada polimórfica)
Obtención<br />
de <strong>marcadores</strong><br />
SCAR<br />
Un fragmento polimórfico de interés, puede ser escindido de un<br />
gel, clonado (o no) y secuenciado para diseñar iniciadores<br />
específicos para ese fragmento en particular, permitiendo su<br />
amplificación en condiciones de PCR más rigurosas.
STS<br />
Amplificación específica de alelos (ASA)<br />
Adaptado de Nakayashiki N & Sasaki Y, Int J Legal Med, 1996.
CAPS<br />
• Cleaved Amplified Polymorphic Sequence<br />
también conocido como PCR-RFLP<br />
- El producto de interés amplificado es digerido<br />
con alguna enzima de restricción y visualizado<br />
directamente mediante electroforesis en gel<br />
de agarosa y tinción con bromuro de etidio.<br />
- Esta metodología es más informativa cuando<br />
los sitios de restricción están mapeados dentro<br />
del locus.
Propiedades<br />
de los<br />
<strong>marcadores</strong><br />
basados en la<br />
Amplificación<br />
de fragmentos<br />
de ADN<br />
conocidos<br />
• Son muy utilizados en mapeo físico de genomas.<br />
• Su análisis es sencillo<br />
(muy útiles en selección asistida).<br />
• El ensayo es altamente reproducible.<br />
• Son fácilmente transferibles a otros laboratorios.<br />
• Según las caracterísitcas de su diseño,<br />
pueden ser codominantes.<br />
• Pueden separarse en geles multiplex cuando<br />
se analizan varios loci simultáneamente.
Marcadores <strong>moleculares</strong><br />
de última generación
Marcadores<br />
<strong>moleculares</strong><br />
de última<br />
generación<br />
SNP<br />
Single Nucleotide Polymorphism<br />
(polimorfismos de un solo nucleótido)
Marcadores<br />
<strong>moleculares</strong><br />
de última<br />
generación<br />
• Sustituciones de una sola base, resultando<br />
en un polimorfimo bialélico de secuencia.<br />
En genoma humano: 1/1000 nt<br />
Variación puntual a nivel de secuencia.<br />
• Disponibles por la gran cantidad de secuencias<br />
de genomas.<br />
• Más frecuentes que SSR ⇒ SNPs <strong>marcadores</strong> cercanos<br />
o en el locus de interés (en un gen ⇒ estructura<br />
de proteína, niveles de expresión, etc ⇒ enfermedades).<br />
Muy útiles como <strong>marcadores</strong> para la construcción<br />
de mapas de ligamiento más densos que los actuales.<br />
• Dialélicos: mutacionalmente más estables, comparado<br />
con variantes en el largo de la secuencia.
Secuenciación<br />
comparativa<br />
de segmentos<br />
amplificados<br />
• Base:<br />
• Metodología:<br />
- Diferencias en las secuencias específicas<br />
de segmentos conocidos (locus/loci).<br />
- Extracción y purificación de ADN.<br />
- PCR con iniciadores caracterizados.<br />
- Secuenciación del producto de amplificación.<br />
• Ventajas y desventajas:<br />
• Aplicación:<br />
- Altamente reproducible.<br />
- Muy informativo.<br />
- Caro y engorroso.<br />
- Se requiere conocimiento previo.<br />
de la secuencia a analizar.<br />
- Estudios evolutivos.<br />
- Identificación/ parentezco.
Marcadores<br />
<strong>moleculares</strong><br />
basados en la<br />
detección<br />
de diferencias<br />
conformacionales<br />
debidas a cambios<br />
en secuencias<br />
únicas del ADN<br />
SSCP<br />
Single-Strand Conformation<br />
Polymorphism
Detección<br />
de polimorfismos de<br />
un solo nucleótido<br />
(SNP) o pequeñas<br />
mutaciones<br />
(inserciones y<br />
deleciones) mediante<br />
el análisis<br />
de los cambios<br />
de movilidad del ADN<br />
simple cadena<br />
causado por la<br />
sustitución<br />
de una sola base.<br />
Amplificación por PCR de la secuencia de interés<br />
1. El amplicón se desnaturaliza por calor<br />
y luego snap-cool.<br />
2. Separación por tamaño y conformación<br />
mediante electroforesis en geles<br />
de poliacrilamida nativos (native PAGE).
SSCP
Ventajas<br />
y limitaciones<br />
del método<br />
de SSCP<br />
•Ventajas<br />
• Limitaciones<br />
- Detección y análisis del fragmento<br />
en simultáneo.<br />
- Análisis de un elevado numero de muestras<br />
en un corto tiempo, con equipo adecuado.<br />
- La posición y el tipo de polimorfismo no puede<br />
ser detectado sólo con SSCP ⇒ requiere<br />
secuenciación.<br />
- Detección de polimorfismo entre 35%<br />
y 80% ⇒ pérdida del 20%.<br />
- Condiciones rigurosas de ensayo.
Métodos<br />
para análisis<br />
de un gran número<br />
de muestras<br />
(high throughput<br />
analysis):<br />
PCR en tiempo real: sistema TaqMan
PCR en<br />
tiempo real:<br />
sistema<br />
TaqMan®
Detección<br />
de SNP<br />
Empleando<br />
sondas<br />
TaqMan® para<br />
cada alelo<br />
Química de la discriminación alélica
DHPLC “Denaturing High-Performance<br />
Liquid Chromatography” *<br />
Adaptado de: Steinmetz L. M., Mindrinos M. & Oefner P. J. Trends Plant Sc. 2000<br />
* (Cromatografía líquida desnaturalizante de alta performance)<br />
- Revela la presencia de polimorfismo por la migración diferencial de la forma heterodúplex pero no<br />
provee información con respecto a su naturaleza química y localización.<br />
Se requiere secuenciar las variantes alélicas<br />
- Cuando la frecuencia de polimorfismo es baja puede ahorrar tiempo y dinero, ya que los<br />
fragmentos que no presentan polimorfismo por DHPLC no requieren resecuenciación.
Arreglos de<br />
oligonucleótidos<br />
de alta<br />
densidad
Arreglos de oligonucleótidos de alta densidad<br />
Genotipificación y resecuenciación de <strong>marcadores</strong> SNP en microarreglos<br />
Adaptado de: Steinmetz L. M., Mindrinos M. & Oefner P. J. Trends Plant Sc. 2000
Arreglos de<br />
oligonucleótidos<br />
de alta<br />
densidad<br />
• Más conocidos por su aplicación en estudios de expresión.<br />
• Permiten la detección de variantes alélicas y genotipificación<br />
de un gran número de <strong>marcadores</strong>.<br />
• Oligonucleótidos-sonda cortos (20-25 bases), unidos<br />
covalentemente a vidrio (fotolitografía o síntesis química<br />
fotosensible). 300.000 sondas en 1,28 x 1,28 cm 2.<br />
• Basado en la especificidad de hibridación del ADN.<br />
• Por cada secuencia de referencia se diseñan conjuntos de 4<br />
oligonucleótidos-sonda distintos (una que cotiene una A,<br />
una T, una G o una C) para cada una de las posiciones<br />
posibles en el oligonucleótido, extendiéndose a lo largo<br />
de la secuencia de referencia de a una base por vez.<br />
• Permiten la secuenciación de las variantes alélicas<br />
encontradas.
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