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Aceites esenciales con propiedades antimicrobianas

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<strong>Aceites</strong> Esenciales<br />

<strong>con</strong> <strong>propiedades</strong> <strong>antimicrobianas</strong><br />

Universidad Mayor de San Andrés<br />

Facultad de Ciencias Farmacéuticas<br />

y Bioquímicas<br />

Instituto de Investigaciones Fármaco<br />

Bioquímicas-IIFB<br />

Area Temática de Química Farmacéutica<br />

• A quien debe dirígírse la correspondencia<br />

• íifb@hotmail.com<br />

Vol. VII - Diciembre de 1999<br />

RESUMEN<br />

El presente estudio trata sobre la extracción y<br />

evaluación del perfil biológico antimicrobiano in vitro de<br />

aceites <strong>esenciales</strong> de especies vegetales aromáticas. Los<br />

aceites fueron obtenidos mediante destilación por<br />

arrastre de vapor de agua de diferentes órganos: partes<br />

aéreas (hojas y tallos) y dermis de cítricos (cáscara). El<br />

crecimiento del hongo saprófito Neurospora crassa fue<br />

inhibido por el aceite de Citrus limetta (Lima) a<br />

<strong>con</strong>centraciones de 0, 5 mg/ml. El aceite de Rosmarinus<br />

oficinalis (Romero), a una <strong>con</strong>centración de 1 mg/ml,<br />

inhibió el crecimiento de la bacteria Staphylococcus<br />

aureus. Mientras que los aceites de Petroselium<br />

sativum (Perejil), Satureja boliviana (Khoa), Schínus<br />

molle (Molle), Citrus aurantium (Naranja), Citrus<br />

paradisii (Toronja) y Citrus nobilis (Mandarina),<br />

inhibieron el crecimiento tanto de hongos a 0, 5 mg/ml,<br />

como bacterias a 1 mg/ml Entre estas últimas esencias,<br />

las del Perejil y Molle a 3.7 mg/ml y la Khoa a 7.5 mg/<br />

ml inhibieron el crecimiento de Sigellaflexneri.<br />

1. INTRODUCCION<br />

Bolivia presenta una diversidad de zonas geográficas <strong>con</strong> climas<br />

variados, favoreciendo de esta manera que exista una gran riqueza<br />

de flora <strong>con</strong> <strong>propiedades</strong> medicinales aún no estudiadas en su<br />

totalidad. Con este trabajo pretendemos <strong>con</strong>tribuir a las<br />

investigaciones científicas sobre aceites <strong>esenciales</strong> de plantas<br />

aromáticas comunes en nuestro país. Los aceites <strong>esenciales</strong> son los<br />

<strong>con</strong>stituyentes odoríferos o esencias de una planta, son productos<br />

volátiles, aromáticos, <strong>con</strong>stituidos por una mezcla compleja de varias<br />

sustancias,' 2.2 generadas por lo general mediante la ruta biosintética<br />

del ácido mevalónico.4,5,6<br />

El término aceite probablemente se origina del hecho que, el<br />

aroma de una planta existe en forma líquida inmiscible en agua, en<br />

glándulas o entre células. Los aceites <strong>esenciales</strong> se hallan en las<br />

flores, sumidades floridas, hojas, frutos y semillas de los vegetales a<br />

veces, aunque no muy frecuentemente, en los tallos y raíces. Su<br />

distribución es amplia en el reino vegetal.3,4,5<br />

Los aceites <strong>esenciales</strong> son utilizados en la industria cosmética,<br />

farmacéutica, alimenticia y entre otros usos, son materia prima pivotal<br />

en la aromaterápia atribuyéndoseles acciones antibacterianas;<br />

antifúngicas; antivirales, etc.7 Cabe destacar que es también<br />

importante el procedimiento que se emplea para la obtención de las<br />

esencias de los vegetales, es así que existen varias técnicas, entre


las más utilizadas están el método por arrastre de vapor<br />

de agua, la extracción por fluidos en estado supercrítico,<br />

la expresión en frío y otros métodos específicos que se<br />

utilizaran de acuerdo al uso final que tendrán los aceites<br />

<strong>esenciales</strong>. 8' 9<br />

METODOLOGÍA<br />

OBTENCION DE LOS ACEITES ESENCIALES POR<br />

ARRASTRE DE VAPOR<br />

Los aceites <strong>esenciales</strong> fueron obtenidos por el método<br />

de arrastre de vapor de agua, utilizando un extractor de<br />

aluminio de capacidad de 12 litros, para procesar aprox. 1<br />

kilo de material vegetal. Consta del reservorio de agua<br />

(3Lt) un trípode (18cm) y una rejilla milimétrica metálica<br />

sobre la cual se deposita la muestra vegetal pesada (0.5<br />

a 1.0Kg). El extractor cerrado herméticamente esta<br />

<strong>con</strong>ectado aun <strong>con</strong>densador de serpentín, que desemboca<br />

en una bureta graduada. Cuando el volumen de aceite<br />

destilado se mantiene <strong>con</strong>stante, se <strong>con</strong>sidera punto final<br />

de la extracción. El aceite extraído es secado <strong>con</strong> Na2SO4<br />

anhidro y <strong>con</strong>servado a -20 °C en tubos tapa rosca. 70'17,72<br />

PRUEBAS BIOLOGICAS<br />

Todo el material de vidrio, medios de cultivo, y agua<br />

destilada fueron esterilizados en autoclave (Al¡ American,<br />

Mod-No 25X) a 120 °C, por 15 min a 1.5 atm. Los medios<br />

de cultivo utilizados fueron Agar Saboraud, Caldo<br />

Saboraud, Agar Muller Himton, Caldo Soya Tripticasa.<br />

Como <strong>con</strong>trol en las pruebas antifúngicas, se utilizó<br />

Keto<strong>con</strong>azol (2.5 ug/ml) y en las pruebas antibacterianas,<br />

Gentamicina(10ug/ml).<br />

Evaluación antifúngica <strong>con</strong>tra Neurospora crassa<br />

1M70, ATCC 9279: En una microplaca de 24 pozos se<br />

colocaron los aceites (a 1.0, 0.5 y 0.2mg/ml) mezclados<br />

<strong>con</strong> el medio inoculado <strong>con</strong> esporas (106) de N. Crasssa.<br />

La microplaca fue incubada a 289C en estufa por 24hr antes<br />

de realizar la lectura del crecimiento o inhibición. 13<br />

Evaluación antifúngica <strong>con</strong>tra Candida albicans<br />

ATCC 10231 En una microplaca de 24 pozos se colocaron<br />

los aceites (a 1.0, 0.5 y 0.2mg/ml) mezclados <strong>con</strong> el medio,<br />

una vez solidificado, se siembró C. albicans.(106 ufc/ml)<br />

La microplaca fue incubada a 372C en estufa por 24hr antes<br />

de realizar la lectura del crecimiento o inhibición.<br />

Evaluación antibacteriana <strong>con</strong>tra Bacterias: El<br />

grado de inhibición de crecimiento mediante fue<br />

determinado mediante la técnica de Mitcher, utilizando caja<br />

Petri y mezclando el aceite (1 mg/ml) <strong>con</strong> el medio de cultivo<br />

(MHA) sobre el cual se sembraron las bacterias en estudio:<br />

Staphylococcus aureus ATCC 6538 Shigella flexneri<br />

AMBROLITIC<br />

FLORES, VELASCO, FIGUEROA, GIMENEZ.<br />

JARABE 15 MG<br />

CAPSULAS 30 MG<br />

ATCC 12022, Escherichia coli ATCC 8739.a una<br />

población de 106 ufc/ml. La caja fue incubada 372C durante<br />

24 hrs antes de leer el crecimiento o inhibición.14<br />

Concentración Mínima Inhibitoria (CIM): Se realizó<br />

la técnica de microdilución utilizando el medio caldo Mueller<br />

Hinton (MHB-DIFCO), en el que se realizaron las diluciones<br />

de los aceites en estudio a partir de 30mg/ml, adicionando<br />

una población bacteriana a 3 x 106 ufc/ml de cada<br />

microorganismo, colocando en la microplaca <strong>con</strong>troles de<br />

crecimiento bacteriano; <strong>con</strong>trol de esterilidad y <strong>con</strong>trol de<br />

solvente. Una vez montada toda la microplaca, se incubo<br />

a 372C por 16-18 hrs;, despues de este periodo las placas<br />

se examinaron visualmente. 14<br />

El punto final (Concentración Mínima Inhibitoria) se<br />

<strong>con</strong>sidera la menor <strong>con</strong>centración de compuesto frente a<br />

la cual el microorganismo ensayado no presenta desarrollo<br />

visible. El criterio de desarrollo es una turbidez definida<br />

como se presenta en el <strong>con</strong>trol de crecimiento; y la CIM<br />

se observa cuando no hay turbidez, como el <strong>con</strong>trol de<br />

esterilidad.<br />

Concentración Mínima Bactericida (CMB):<br />

La CMI mide la capacidad del agente antimicrobiano<br />

para inhibir la multiplicación del microorganismo. En<br />

<strong>con</strong>secuencia los microorganismos presentes en el inóculo<br />

pueden ser "sólo inhibidos" por el compuesto<br />

antibacteriano, estos reinician su crecimiento si se elimina<br />

la acción del compuesto, en este caso se dice que es<br />

Bacteriostático . En caso de ser Bactericida los<br />

microorganismos no podrán volver a multiplicarse aunque<br />

sean separados del compuesto antibacteriano.<br />

Estas pruebas se basan en la anterior técnica de<br />

microdilución. Se realiza diluciones de la suspensión<br />

bacteriana inicial de 1x106 ufc/ml, para determinar el<br />

número real de unidades formadoras de colonias del<br />

inóculo.<br />

Después de realizar la lectura de la CIM, se sembraron<br />

100 ul de todos los pocillos que no tuvieron desarrollo (no<br />

turbios) en cajas Petri <strong>con</strong> agar Nutritivo,se incubaron las<br />

cajas, a 372C por 16-18 hrs.14<br />

Después del tiempo de incubación, realizar el recuento<br />

de colonias desarrolladas y se compara <strong>con</strong> el inóculo<br />

inicial (105ufc/ml). Dado que las substancias bactericidas<br />

no siempre esterilizan totalmente una población bacteriana,<br />

la mínima <strong>con</strong>centración del agente antibacteriano que<br />

permita sobrevivir a menos de 0,1% del inóculo original<br />

se denomina CONCENTRACION BACTERICIDA MINIMA<br />

O CONCENTRACION LETAL MINIMA.15<br />

C♦1 Chiesi Wassermann<br />

Ambroxol<br />

Monosustancia de doble dimensión<br />

España<br />

Muco lltlva<br />

-T enso ac't<br />

Iva<br />

* Fabricado bajo licencia por: Laboratorios Alfa Ltda.<br />

Vol. VII- Diciembre de 1999


RESULTADOS<br />

Químicos<br />

ACEITES ESENCIALES CON PROPIEDADES ANTIMICROBIANAS<br />

La Tabla No 1, detalla el nombre científico, nombre<br />

común y porcentaje de rendimiento del aceite esencial<br />

destilado de cada una de las 9 plantas estudiadas. Este<br />

gráfico, representa el rendimiento relativo de los aceite<br />

obtenidos durante nuestros estudios. Puede observarse<br />

que la especie de mayor rendimiento es el Molle, dentro<br />

de las especies de los cítricos, la Naranja produce más<br />

aceite que la Toronja, la Mandarina, y la Lima, mientras<br />

que la esencia de perejil es la menos abundante.<br />

TABLA No 1.- NOMBRE CIENTIFICO , NOMBRE<br />

COMUN Y RENDIMIENTO DE LAS ESPECIES<br />

VEGETALES.<br />

Nombre científico Nombre común Rendimiento<br />

Petroselium sativum Perejil 0.09%<br />

Citrus limetta Lima 0.10%<br />

Citrus paradisii Toronja 0.20%<br />

Citrus nobilis Mandarina 0.27%<br />

Citrus aurantium Naranja 0.33%<br />

Cymbopgon citratus Paja Cedrón 0.40%<br />

Satureja boliviana Khoa 0.45%<br />

Rosmarinus oficinalis Romero 0.55%<br />

Schinus molla Molle 0.72%<br />

CREMA<br />

(V/P)*100<br />

0.80% -<br />

070%<br />

0.60%-1---<br />

0-50 %------<br />

0.40%-1---<br />

0.30%<br />

0.20%<br />

0.00%-I,<br />

GRAFICO No 1<br />

Rendimiento<br />

Especies vegetales<br />

GRAMON BOLIVIA LTDA<br />

Av. Ecuador 2387 esq. Waldo Ballivián (Sopocachi)<br />

Teléfonos: 410215 - 411762 Fax: 411762 Casilla 1998<br />

La Paz - Bolivia<br />

Biológicos<br />

Todos los aceites <strong>esenciales</strong> fueron evaluados<br />

mediante pruebas in vitro <strong>con</strong>tra bacterias Gram (+) y Gram<br />

(-), así como <strong>con</strong>tra mohos y levaduras para definir su<br />

actividad antíbacteriana y antifúngica. Los resultados de<br />

las pruebas antibacterianas se detallan en la Tabla No. 2 y<br />

los resultados de las pruebas antifúngicas se presentan<br />

en la Tabla No. 4.<br />

TABLA No 2.- RESULTADOS DE LA ACTIVIDAD<br />

ANTIBACTERIANA DE LOS ACEITES ESENCIALES A<br />

1 MG/ML<br />

Nombre científico 1 2 3<br />

Petroselium sativum (-) (+) (-)<br />

Citrus limetta (-) (-) (-)<br />

Citrus paradisii (+) (-) (-)<br />

Citrus nobilis (+) (-) (-)<br />

Citrus aurantium (+) (-) (-)<br />

Cymbopgon citratus (+) (-) (-)<br />

Satureja boliviana (-) (+) (-)<br />

Rosmarinus oficinalis (+) (-) (-)<br />

Schinus molle (+) (+) (-)<br />

1 Staphylococcus aureus: 2 Shigella flexneri: 3 Escherichia coli<br />

El Pelroseoum salivum<br />

^'Olms limalla<br />

110 lrus paradisii<br />

El Olmo nobilis<br />

Olma aurantium<br />

^mlwpgan cilratus<br />

-Solurele boliviana<br />

Rosmarinus oficinalis<br />

1 Scbinus molla<br />

Vol. VII - Diciembre de 1999 ,,:.


FLORES, VELASCO, FIGUEROA, GIMENEZ.<br />

TABLA No 3.- RESULTADOS DE CIM Y CBM DE LOS ACEITES ESENCIALES<br />

Nombre científico 1 2<br />

Petroselium sativum CIM 3,7 mg/ml<br />

CMB 3,7 mg/ml<br />

Satureja boliviana CIM 7,5 mg/ml<br />

CMB 30 mg/ml<br />

Schinus molle CIM 15 mg/mI CIB 3,7 mg/ml<br />

1 Staphylococcus aureus 2 Shigella flexneri<br />

BIBLIOGRAFÍA<br />

CMB 15 mg/ml CMB 15 mg/ml<br />

TABLA NO 4.- RESULTADOS DE LA ACTIVIDAD ANTIFÚNGICA DE LOS ACEITES.<br />

Neurospora crassa C. albicans<br />

Nombre científico 1,0 mg/mI 0,5 mg/mI 0,25 mg/ml 1,0 mg/mI<br />

Petroselium sativum () (+) () ( )<br />

Citrus limetta +<br />

Citrus paradisii (+) O O ( )<br />

Citrus nobilis (+} {) O { )<br />

Citrus aurantium (+) {) () ( )<br />

Cymbopgon citratus (+) () () ( )<br />

Satureja boliviana (+) (+) () ( )<br />

Rosmarinus oficinalis (} () () ( )<br />

Schinus molle {+) (+) { } ( }<br />

1.- FERNAROLI, Giovanni."Sostance Aromatiche<br />

Natturali", Ed. Ulrico Hoepli; Milan 1963<br />

2.- HARRISON, Jack."Curso de Farmacognosia",<br />

Universidad San Marcos; Lima, 1984<br />

3.- BANDONI,Arnoldo, MIZRAHI Isaac, "Taller<br />

Normalización de Esencias", Programa Agroquímico<br />

CORDECO-UMSS; Cochabamba, 1993.<br />

4.- VARRO E, Tyler et al "Farmacognosy", 9Th Edition,<br />

Lea Febiger; Philadelphia, (1989).<br />

5.- LOCK DE UGAZ, Olga."Investigación Fitoquímica",<br />

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6.- TREASE ANDEVANS "Pharma<strong>con</strong>gosy" 2'' Edition<br />

WB Saunders, Londosn 1998.<br />

7.- www.Frontiercoop.com/aromatherapy.<br />

8: LANCAS F., VILLEGAS J., QUEIROZ M, MARCHIE.,<br />

"Proyecto Construcción Supercriticas de Productos<br />

Naturales, UNICAMP-CAMPINAS, Brasil, 1994.<br />

FOSCAL GRANULADOS<br />

TABLETAS<br />

El recalcificante de 1 ra. elección<br />

9.- DE OLIVEIRA J.V. "Recientes Pesquisas en Extracción<br />

Supercrítica No DEQUFSC", Memorias del Primer Encuntro<br />

sobre Extracción Supercríticas de Productos Naturales,<br />

UNICAMP-CAMPINAS, Brasil, 1994.<br />

10.- FIGUEROA, Nelson. "Evaluación Antibacteriana,<br />

Antifúngica, Insecticida y Caracterización Química de los<br />

<strong>Aceites</strong> Esenciales Extraídos de Especies Vegetales<br />

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Farmacéutico, UMSA. 1996.<br />

11.- RETAMAR, Juan. "Curso Sobre <strong>Aceites</strong> Esenciales"<br />

Primera Parte, FCPN-UMSA, 1993.<br />

12.- MOLLI, José. "Curso Sobre <strong>Aceites</strong> Esenciales"<br />

Segunda Parte, FCPN-UMSA, 1993.<br />

13.- FLORES, Esther. "Manual de Pruebas Antifúngicas<br />

para Productos Naturales" IIFB-UMSA, 1998.<br />

14.- VELASCO, Patricia. "Manual de Pruebas<br />

Antifúngicas para Productos Naturales" IIFB-UMSA, 1998.<br />

15.- KONEMAN W. Elmer. "Diagnóstico Microbiológico"<br />

3ra. Ed. Panamericana, 1992.<br />

LABORATORIOS ALFA Ltda.<br />

ELTRIANGULO DE LA CALIDAD<br />

Vol. VII- Diciembre de 1999

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