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INSTRUCCIONES DE USO<br />
MEDIOS EN PLACA LISTOS<br />
PARA USAR<br />
PA-254104.08 Rev.: April 2013<br />
BD BBL CHROMagar Salmonella<br />
Patente EE. UU. Nº 5.098.832, 5.194.374<br />
USO PREVISTO<br />
BBL CHROMagar Salmonella es un medio selectivo y de diferenciación para el aislamiento y<br />
la presunta identificación de especies de Salmonella a partir de muestras fecales clínicas.<br />
BBL CHROMagar Salmonella ha sido validado también por el AOAC Research Institute bajo el<br />
programa de Performance Tested Methods solamente para el análisis de carne bovina picada<br />
cruda, pollo crudo, pescado crudo, lechuga y huevos frescos (con cáscara). Se utilizaron<br />
métodos ISO, USDA FSIS y FDA BAM para efectuar pruebas de comparación de métodos 1-3 .<br />
El BBL CHROMagar Salmonella resultó ser equivalente a los medios en placa recomendados<br />
en los métodos ISO, FDA y USDA.<br />
PRINCIPIOS Y EXPLICACIÓN DEL PROCEDIMIENTO<br />
Método microbiológico.<br />
La Salmonella es ubicua en las poblaciones animales y generalmente se aísla del tracto<br />
intestinal de los animales y de los hombres. Es uno de los organismos más frecuentemente<br />
asociados con las enfermedades alimentarias, que suele relacionarse con un origen animal 4 .<br />
Las enfermedades provocadas por la Salmonella se han asociado a las aves, vacuno,<br />
chocolate, productos lácteos y verduras 5 . El BBL CHROMagar Salmonella está diseñado para<br />
el aislamiento y diferenciación de especies de Salmonella. La adición de sustratos cromógenos<br />
al medio facilita la diferenciación de las especies de Salmonella del resto de la flora. El BBL<br />
CHROMagar Salmonella fue desarrollado originalmente por A. Rambach, CHROMagar, París,<br />
Francia. BD, bajo un contrato de licencia, ha optimizado esta formulación utilizando propiedad<br />
intelectual patentada para la fabricación del medio preparado en placa BBL CHROMagar<br />
Salmonella, usando la formulación del medio de cultivo deshidratado Difco CHROMagar<br />
Salmonella.<br />
En el BBL CHROMagar Salmonella, ciertas peptonas seleccionadas especialmente suministran<br />
los nutrientes. Los organismos gramnegativos suelen verse inhibidos a consecuencia de la base<br />
selectiva del medio. La adición de un agente antifúngico impide el crecimiento de especies de<br />
Candida y se utilizan otros agentes antimicrobianos para inhibir el crecimiento de bacterias<br />
gramnegativas no fermentadoras de glucosa y especies de Proteus, que podrían<br />
potencialmente superar en crecimiento a las colonias de Salmonella. Se incluye una mezcla<br />
cromógena en el medio. Debido a diferencias metabólicas en presencia de ciertos cromógenos,<br />
las colonias de especies de Salmonella presentan un color malva (rosado a morado), mientras<br />
que las bacterias no deseada se ven inhibidas o producen colonias verdes azuladas o incoloras.<br />
*EL INSTITUTO DE INVESTIGACIÓN AOAC EVALUÓ DE FORMA INDEPENDIENTE MUESTRAS DE ESTE<br />
MODELO DE KIT DE ANÁLISIS SUMINISTRADAS POR EL FABRICANTE Y HALLÓ QUE CUMPLÍAN LAS<br />
ESPECIFICACIONES DEL FABRICANTE INDICADAS EN EL PROSPECTO DESCRIPTIVO DEL KIT DE ANÁLISIS.<br />
EL FABRICANTE CERTIFICA QUE ESTE KIT SE AJUSTA EN TODOS LOS SENTIDOS A LAS<br />
ESPECIFICACIONES ORIGINALMENTE EVALUADAS POR EL AOAC RESEARCH INSTITUTE INDICADAS EN EL<br />
CERTIFICADO DE Performance Tested Methods SM NÚMERO 020502.<br />
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REACTIVOS<br />
Fórmula** por litro de agua purificada<br />
Cromopeptona<br />
22,0 g<br />
Mezcla cromógena<br />
0,34 g<br />
Agentes inhibidores<br />
0,02 g<br />
Agar<br />
15,0 g<br />
pH 7,7 ± 0,2<br />
** Ajustada y/o enriquecida en la medida necesaria para satisfacer los criterios de rendimiento.<br />
PRECAUCIONES<br />
. Solamente para uso profesional.<br />
Si se observa humedad excesiva, invertir la parte inferior sobre la tapa desplazada y dejar secar<br />
al aire para evitar la estanqueidad entre las partes superior e inferior de la placa durante la<br />
incubación.<br />
Proteger de la luz durante el secado. Véase ALMACENAMIENTO Y VIDA UTIL.<br />
Para familiarizarse con las reacciones cromógenas previstas (color) producidas por la<br />
Salmonella, se recomienda que el usuario inocule cepas representativas comúnmente<br />
observadas en su institución. Se recomiendan las siguientes cepas: Salmonella ser.<br />
Typhimurium, ATCC 14028; Salmonella ser. Dublin, ATCC 15480; Salmonella ser. Typhi,<br />
ATCC 19430; y Salmonella Enterica subsp. Arizonae, ATCC 12323.<br />
En las muestras clínicas puede haber microorganismos patógenos, como los virus de la<br />
hepatitis y el virus de la inmunodeficiencia humana. Para la manipulación de todos los<br />
elementos contaminados con sangre u otros líquidos corporales deben seguirse las<br />
Precauciones estándar 6-9 y las directrices del centro.<br />
Para obtener más información, consultar los procedimientos de manipulación aséptica, riesgos<br />
biológicos y eliminación del producto usado en el documento INSTRUCCIONES GENERALES<br />
DE USO.<br />
ALMACENAMIENTO Y VIDA UTIL<br />
Al recibir las placas, almacenarlas en un lugar oscuro a una temperatura entre 2 y 8 °C,<br />
envueltas en su envase original, hasta justo antes de usarlas. Evitar la congelación y el<br />
calentamiento excesivo. Las placas pueden inocularse hasta su fecha de caducidad (ver la<br />
etiqueta en el paquete) e incubarse durante los períodos de incubación recomendados.<br />
Las placas de grupos de 10 placas ya abiertos pueden usarse durante una semana siempre<br />
que se almacenen en un lugar limpio a una temperatura entre 2 y 8 °C.<br />
Deterioro del producto<br />
No utilizar las placas si muestran evidencia de contaminación microbiana, decoloración,<br />
deshidratación, grietas o cualquier otro signo de deterioro.<br />
CONTROL DE CALIDAD DEL USUARIO<br />
Examinar las placas en busca de signos de deterioro según se describe en Deterioro del<br />
producto. Evaluar el rendimiento mediante la inoculación de una muestra representativa de<br />
placas con cultivos puros de organismos de control estables que producen reacciones<br />
esperadas y conocidas. Para ello se recomienda utilizar las siguientes cepas de prueba:<br />
Cepas<br />
Salmonella Typhimurium ATCC 14028<br />
Salmonella Enteritidis ATCC 13076<br />
Citrobacter freundii ATCC 8090<br />
Escherichia coli ATCC 25922<br />
Klebsiella pneumoniae ATCC 33495<br />
Proteus mirabilis ATCC 43071<br />
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Resultados del crecimiento<br />
Crecimiento mediano a denso de colonias de color<br />
malva claro a malva (rosado a morado)<br />
Crecimiento; colonias de color malva (= rosado a<br />
morado)<br />
Crecimiento mediano a denso de colonias de color verde<br />
azulado claro a verde azulado.<br />
Inhibición parcial a completa; colonias de color verde<br />
azulado<br />
Inhibición parcial; colonias de color verde azulado<br />
Inhibición parcial a completa
Enterococcus faecalis ATCC 29212<br />
Staphylococcus aureus ATCC 25923<br />
Aspecto del medio sin inocular:<br />
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Inhibición parcial a completa; colonias pequeñas de color<br />
verde azulado<br />
Inhibición (parcial a completa)<br />
Incoloro a ámbar claro, transparente<br />
Nota: El control de calidad debe llevarse a cabo conforme a la normativa local y/o nacional, a los<br />
requisitos de los organismos de acreditación y a los procedimientos estándar de control de calidad del<br />
laboratorio.<br />
PROCEDIMIENTO<br />
Materiales suministrados<br />
BBL CHROMagar Salmonella (placas Stacker de 90 mm). Con control microbiológico.<br />
Materiales necesarios pero no suministrados<br />
Medios de cultivo auxiliares, reactivos, organismos de control de calidad y demás equipo de<br />
laboratorio necesario para el procedimiento específico en uso en el laboratorio, tal como ISO<br />
7218, USDA FSIS MLG, FDA BAM o el procedimiento específico de su laboratorio.<br />
Recogida de las muestras<br />
Consultar los textos correspondientes para obtener detalles acerca de los procedimientos de<br />
recogida y manipulación de las muestras 1-5 .<br />
Tipos de muestras<br />
Este medio se puede utilizar con muestras fecales clínicas y con diversas muestras de<br />
alimentos (carne picada cruda, pollo crudo, pescado crudo, lechuga y huevos frescos).<br />
Procedimiento de análisis<br />
Emplear técnicas asépticas. La superficie del agar debe estar lisa y húmeda, pero sin humedad<br />
en exceso. Permitir que el medio se caliente a temperatura ambiente antes de la inoculación.<br />
Para muestras clínicas: Tan pronto como sea posible después de recibir la muestra en el<br />
laboratorio, inocularla en una placa con BBL CHROMagar Salmonella y extenderla para su<br />
aislamiento. Si la muestra se cultiva de una torunda, hacerla girar sobre una zona pequeña de<br />
la superficie cercana al borde, para luego extenderla a partir de dicha zona con un asa. En<br />
función de los procedimientos locales, la inoculación de medios adicionales para el aislamiento<br />
de Salmonella y para la detección de otros patógenos entéricos puede ser obligatoria. Incubar<br />
las placas de forma aerobia a 35 ± 2 °C en posición invertida (con el agar hacia arriba) durante<br />
24 h. En caso de resultado negativo a las 24 h, incubar nuevamente durante 24 h más para<br />
registrar los resultados finales. Una vez que los colores de las colonias se hayan desarrollado,<br />
el BBL CHROMagar Salmonella se puede exponer a la luz. Hay que someter colonias<br />
características de Salmonella a pruebas bioquímicas o serológicas de confirmación.<br />
El BBL CHROMagar Salmonella también puede utilizarse para subcultivo a partir de medios de<br />
enriquecimiento previo tales como el caldo selenita o el caldo de tetrationato.<br />
Para muestras de alimentos: Seguir la metodología de preparación de muestras indicada en<br />
la Microbiology Laboratory Guidebook del USDA FSIS: Isolation and Identification of<br />
Salmonella from Meat, Poultry, and Egg Products (Aislamiento e identificación de Salmonella a<br />
partir de carne, aves y productos con huevo), el capítulo del FDA BAM sobre Salmonella, las<br />
directrices ISO o las directrices de procedimiento adecuadas para el tipo de muestra y la<br />
ubicación geográfica. Inocular la muestra de caldo de enriquecimiento incubada en una placa<br />
con BBL CHROMagar Salmonella. Extender para su aislamiento, incubar las placas de forma<br />
aerobia a 35 ± 2 °C en posición invertida (con el agar hacia arriba) durante 24 h. En caso de<br />
resultado negativo a las 24 h, incubar nuevamente durante 24 h más para registrar los<br />
resultados finales. Hay que someter colonias características de Salmonella que crecen en el<br />
BBL CHROMagar Salmonella a pruebas de confirmación del modo indicado en los<br />
procedimientos ISO, USDA FSIS y FDA BAM 1-3 .<br />
Resultados<br />
Tras la incubación oportuna, leer las placas contra un fondo blanco. La Salmonella Typhimurium<br />
y otras especies de Salmonella presentarán colonias de color malva claro a malva, con la
excepción de Salmonella enterica subespecie arizonae y otras especies de Salmonella positivas<br />
para la lactosa y la betaglucosidasa. Estos aislados presentarán colonias de color violeta<br />
azulado o moradas. Citrobacter y otros coliformes presentarán colonias de color verde azulado<br />
claro a verde azulado. Algunos organismos que no hidrolizan ninguno de los compuestos<br />
cromógenos puede presentar colonias incoloras.<br />
CARACTERÍSTICAS DE RENDIMIENTO Y LIMITACIONES DEL PROCEDIMIENTO<br />
El BBL CHROMagar Salmonella es un medio selectivo y diferencial para el aislamiento e<br />
identificación presuntiva de especies de Salmonella en muestras fecales clínicas y en diversas<br />
muestras de alimentos.<br />
Resultados previstos<br />
Las especies de Salmonella presentarán colonias de color malva claro a malva (= rosado a<br />
morado) en este medio, con la excepción de las especies de Salmonella positivas para la<br />
lactosa y la betaglucosidasa. Estos aislados presentarán colonias de color violeta azulado o<br />
moradas.<br />
Los siguientes organismos se aislaron en BBL CHROMagar Salmonella durante evaluaciones<br />
internas y externas de muestras clínicas e industriales:<br />
Salmonella 8, (20):-:26<br />
Salmonella ser. Javiana<br />
Salmonella enterica subsp. arizonae<br />
Salmonella ser. Johannesburg<br />
Salmonella enterica subsp. diarizonae<br />
Salmonella ser. Kentucky<br />
Salmonella ser. Abony<br />
Salmonella ser. London<br />
Salmonella ser. Adelaide<br />
Salmonella ser. Mbandaka<br />
Salmonella ser. Agona<br />
Salmonella ser. Michigan<br />
Salmonella ser. Anatum<br />
Salmonella ser. Minnesota<br />
Salmonella ser. Bareilly<br />
Salmonella ser. Montevideo<br />
Salmonella ser. Berta<br />
Salmonella ser. Muenster<br />
Salmonella ser. Brandenburg<br />
Salmonella ser. Newport<br />
Salmonella ser. California<br />
Salmonella ser. Oranienburg<br />
Salmonella ser. Cerro<br />
Salmonella ser. Panama<br />
Salmonella ser. Choleraesuis<br />
Salmonella ser. Paratyphi A<br />
Salmonella ser. Cubana<br />
Salmonella ser. Paratyphi B<br />
Salmonella ser. Derby<br />
Salmonella ser. Pomona<br />
Salmonella ser. DT 104<br />
Salmonella ser. Poona<br />
Salmonella ser. Dublin<br />
Salmonella ser. Potsdam<br />
Salmonella ser. Enteritidis<br />
Salmonella ser. Pullorum<br />
Salmonella ser. Essen<br />
Salmonella ser. Rubislaw<br />
Salmonella ser. Gallinarum<br />
Salmonella ser. Schwarzengrund<br />
Salmonella ser. Gaminara<br />
Salmonella ser. Senftenberg<br />
Salmonella ser. Hadar<br />
Salmonella ser. St. Paul<br />
Salmonella ser. Hartford<br />
Salmonella ser. Thompson<br />
Salmonella ser. Heidelberg<br />
Salmonella ser. Typhi<br />
Salmonella ser. Illinois<br />
Salmonella ser. Typhimurium<br />
Salmonella ser. Infantis<br />
Salmonella ser. Typhimurium (positiva para la<br />
lactosa)<br />
Salmonella ser. Iverness<br />
Salmonella ser. Weltevreden<br />
Características de rendimiento 10<br />
Análisis clínico:<br />
El BBL CHROMagar Salmonella fue analizado en un gran laboratorio diagnóstico. Se<br />
analizaron un total de 150 muestras fecales negativas conocidas y 110 muestras fecales<br />
positivas conocidas en BBL CHROMagar Salmonella y se compararon con el rendimiento de<br />
los medios XDL y Hektoen Entérico. La sensibilidad y especificidad del medio BBL<br />
CHROMagar Salmonella al cabo de 18-24 h de incubación fueron del 76% y 99%,<br />
respectivamente, y del 90% y 94% al cabo de 48 h de incubación, respectivamente. La<br />
sensibilidad y especificidad aumentaron al 99% y 97%, respectivamente, cuando se<br />
subcultivó a partir de caldo de selenita F. Los resultados comparativos de sensibilidad y<br />
especificidad para el medio XDL fueron del 71% y 97% a las 18-24 h de incubación, y del<br />
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78% y 95% a las 48 h de incubación; los resultados de sensibilidad y especificidad para el<br />
medio Hektoen Entérico fueron del 71% y 94% a las 18-24 h, y del 79% y 93% a las 48 h de<br />
incubación.<br />
Análisis agroalimentario:<br />
Métodos del USDA y de la FDA<br />
El BBL CHROMagar Salmonella fue evaluado para la recuperación de Salmonella en pollo<br />
crudo, carne picada cruda, pescado crudo, lechuga y huevos frescos en laboratorios internos<br />
y externos aprobados por el AOAC. El pollo crudo y la carne picada fueron procesados<br />
según los métodos de referencia del USDA FSIS. El pescado crudo, la lechuga y los huevos<br />
frescos fueron procesados según los procedimientos de la FDA BAM. El BBL CHROMagar<br />
Salmonella fue comparado con el método de referencia para la recuperación selectiva de<br />
Salmonella. Se obtuvieron un total de 16 cultivos positivos del pollo crudo, 17 en las<br />
muestras de carne picada cruda, 18 en las de pescado crudo y lechuga y 11 en las de<br />
huevos frescos. El BBL CHROMagar Salmonella produjo resultados comparables con los<br />
métodos de referencia en todas las matrices dando lugar a una concordancia de métodos del<br />
100%.<br />
Se analizaron veinte muestras salpicadas de pollo crudo según el método de referencia de la<br />
USDA FSIS. El pollo fue sembrado con un inóculo de bajo nivel de 8 UFC/25 g de muestra y<br />
uno de alto nivel de 50 UFC/25 g. El BBL CHROMagar Salmonella recuperó el 100% (20/20)<br />
de la Salmonella inoculada a alto y bajo nivel. A niveles de inóculo inferiores a 1 UFC/25 g se<br />
obtuvo una recuperación fraccionaria. Se analizó pollo contaminado de forma natural. La<br />
recuperación de Salmonella fue del 100% y el número más probable (NMP)/g era de 0,23.<br />
Se cultivaron ciento dieciocho (118) aislados de Salmonella de origen alimentario, incluyendo<br />
diversos serotipos, en caldo de lactosa durante 24 h y después se subcultivaron a caldo de<br />
tetrationato durante 24 h. Los caldos de tetrationato se subcultivaron en BBL CHROMagar<br />
Salmonella y se incubaron a 35 ºC. Si no se recuperaban colonias de color malva a las 24 h,<br />
las placas se incubaban durante 24 h más. El BBL CHROMagar Salmonella recuperó 111<br />
aislados. Cuatro cepas fueron inhibidas por el caldo de tetrationato y no fueron recuperadas<br />
en BBL CHROMagar Salmonella ni en una placa de control no selectiva. Otros aislados del<br />
mismo serotipo que los cuatro negativos sí produjeron colonias características, así que la<br />
falta de reacción positiva era específica de la cepa, no del serotipo. La sensibilidad general<br />
para el BBL CHROMagar Salmonella fue del 94% (111 de 118 aislados).<br />
Se cultivaron sesenta y cinco (65) aislados sin Salmonella en caldo de infusión de cerebro y<br />
corazón a 35 ºC durante 24 h y se subcultivaron en BBL CHROMagar Salmonella a 35 ºC<br />
durante 24 h. Las placas negativas fueron incubadas durante un total de 48 h. Sesenta y uno<br />
(61) de los 65 aislados no presentaron coloración malva en el BBL CHROMagar Salmonella<br />
para una especificidad del 94%. Las cuatro cepas sin Salmonella que presentaron coloración<br />
malva fueron inoculadas en caldo de tetrationato (caldo de enriquecimiento recomendado<br />
para los métodos del USDA y de la FDA). Tras 24 h de incubación, los caldos de tetrationato<br />
fueron subcultivados a BBL CHROMagar Salmonella. Tras 48 h de incubación, una cepa<br />
crió colonias malva y tres cepas fueron inhibidas. Con base en el uso del enriquecimiento en<br />
caldo de tetrationato, la especificidad general del BBL CHROMagar Salmonella en este<br />
estudio fue del 98%.<br />
Método ISO<br />
Se comparó el BBL CHROMagar Salmonella con los medios del método de referencia para<br />
la recuperación selectiva de Salmonella en pollo crudo, carne picada cruda, pescado crudo,<br />
lechuga y huevos frescos. Todas las matrices fueron procesadas según el método de cultivo<br />
ISO. Se obtuvieron un total de 16 cultivos positivos del pollo crudo, 17 en las muestras de<br />
carne picada cruda, 9 en las de pescado crudo y 19 en las de lechuga y huevos frescos. El<br />
BBL CHROMagar Salmonella produjo resultados comparables con los métodos de<br />
referencia en todas las matrices dando lugar a una concordancia de métodos del 100%.<br />
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Se salpicaron veinte (20) muestras de carne picada cruda, pescado crudo, lechuga y huevos<br />
frescos con un inóculo de bajo nivel de Salmonella y se analizaron según el procedimiento de<br />
cultivo ISO.<br />
Se analizaron veinte (20) muestras de pollo crudo contaminado de forma natural según el<br />
procedimiento de cultivo ISO. Se añadió BBL CHROMagar Salmonella a la batería de<br />
medios de referencia para cada matriz alimentaria analizada. La concordancia de métodos<br />
del BBL CHROMagar Salmonella y los demás medios de referencia analizados fue del<br />
100%. Los niveles bajos de inóculo variaban entre 0,0036 y 0,23 NMP/g.<br />
Se cultivaron ciento veintisiete (127) aislados de Salmonella de origen alimentario en agua<br />
de peptona tamponada durante 18 h y después se subcultivaron a medio Rappaport-<br />
Vassiliades con soja (RVS) durante 24 h. Los caldos RVS se subcultivaron en BBL<br />
CHROMagar Salmonella y se incubaron a 35 ºC durante 24 h. Si no se recuperaban colonias<br />
de color malva a las 24 h, las placas se incubaban durante 24 h más. El BBL CHROMagar<br />
Salmonella recuperó 123 aislados. La recuperación de las 4 cepas que no crecieron en BBL<br />
CHROMagar Salmonella fue pobre en los medios de control no selectivos. La sensibilidad<br />
general para el BBL CHROMagar Salmonella fue del 96,8% (123 de 127 aislados).<br />
Limitaciones del procedimiento<br />
Ocasionalmente, ciertas cepas de Aeromonas hydrophila, Hafnia alvei, Pseudomonas<br />
aeruginosa, P. putida, Stenotrophomonas maltophilia, Acinobacter sp. o Candida sp. pueden no<br />
inhibirse por completo y las colonias pueden presentar una pigmentación de color malva claro a<br />
malva.<br />
Las pruebas de confirmación que utilizan el malva o el morado como reacción de color<br />
indicadora pueden ser difíciles de interpretar debido al propio color de las colonias.<br />
Ciertas cepas raras de los siguientes organismos: S. Typhi, S. Paratyphi A, S. Typhimurium, S.<br />
Choleraesuis, S. Minnesota, S. enterica subsp. arizonae y S. Pullorum pueden presentar un<br />
crecimiento reducido o nulo en este medio. Esto es específico de la cepa y la mayoría de las<br />
cepas analizadas de cada uno de estos serotipos fueron recuperadas.<br />
El BBL CHROMagar Salmonella no está diseñado para el aislamiento de patógenos<br />
intestinales diferentes de la Salmonella.<br />
Al analizar algunas muestras, se puede observar una decoloración morada del medio, sin<br />
crecimiento detectable de colonias. Esto debe considerarse un resultado negativo.<br />
Reducir al mínimo la exposición del BBL CHROMagar Salmonella a la luz antes y durante la<br />
incubación, ya que la luz puede destruir los cromógenos. Conservar las placas en su envase y<br />
caja de cartón originales durante todo el período de almacenamiento. No se recomienda la<br />
incubación en CO 2 .<br />
REFERENCIAS<br />
1. Rose, Bonnie E. 2001. Isolation and identification of Salmonella from meat, poultry and egg products.<br />
In: Microbiology laboratory guidebook, 3 rd ed., Food Safety and Inspection Service, U.S. Department<br />
of Agriculture, Washington, D.C.<br />
2. U.S. Food and Drug Administration. 2003. Bacteriological analytical manual (online), AOAC<br />
International, Gaithersburg, MD.<br />
3. International Organization for Standards (ISO). Microbiology of food and animal feeding stuffs -<br />
Horizontal method for the detection of Salmonella spp., 4 th Edition, ISO 6579:2002.<br />
4. Bopp, Brenner, Fields, Wells and Strockbine. 2003. Escherichia, Shigella, and Salmonella. In Murray,<br />
Baron, Jorgensen, Pfaller, and Yolken (ed.), Manual of clinical microbiology, 8 th ed. American Society<br />
for Microbiology, Washington, D.C.<br />
5. D‘Aoust, Mauer and Bailey. 2001. Salmonella species. In: Doyle, Beuchat and Montville (ed.), Food<br />
microbiology: fundamentals and frontiers, 2 nd ed. American Society for Microbiology, Washington,<br />
D.C.<br />
6. National Committee for Clinical Laboratory Standards. 2001. Approved Guideline M29-A2. Protection<br />
of laboratory workers from occupationally acquired infections, 2 nd ed. NCCLS, Wayne, Pa.<br />
PA-254104.08 Página 6 de 7
7. Garner, J.S. 1996. Hospital Infection Control Practices Advisory Committee, U.S. Department of<br />
Health and Human Services, Centers for Disease Control and Prevention. Guideline for isolation<br />
precautions in hospitals. Infect. Control Hospital Epidemiol. 17:53-80.<br />
8. U.S. Department of Health and Human Services. 1999. Biosafety in microbiological and biomedical<br />
laboratories, HHS Publication (CDC), 4 th ed. U.S. Government Printing Office, Washington, D.C.<br />
9. Directive 2000/54/EC of the European Parliament and of the Council of 18 September 2000 on the<br />
protection of workers from risks related to exposure to biological agents at work (seventh individual<br />
directive within the meaning of Article 16(1) of Directive 89/391/EEC). Official Journal L262,<br />
17/10/2000, p. 0021-0045.<br />
10. Datos disponibles en los archivos de BD Diagnostic Systems.<br />
ENVASE/DISPONIBILIDAD<br />
BBL CHROMagar Salmonella<br />
REF 254104 Medios en placa listos para usar, 20 placas<br />
INFORMACION ADICIONAL<br />
Para obtener más información, diríjase a su representante local de BD.<br />
Becton Dickinson GmbH<br />
Tullastrasse 8 – 12<br />
D-69126 Heidelberg/Germany<br />
Phone: +49-62 21-30 50 Fax: +49-62 21-30 52 16<br />
Reception_Germany@europe.bd.com<br />
http://www.bd.com<br />
http://www.bd.com/europe/regulatory/<br />
AOAC is a trademark and Performance Tested is a service mark of AOAC International.<br />
CHROMagar is a trademark of Dr. A. Rambach.<br />
Difco is a trademark of Difco Laboratories, subsidiary of Becton, Dickinson and Company.<br />
ATCC is a trademark of the American Type Culture Collection<br />
BD, BD Logo and all other trademarks are property of Becton, Dickinson and Company. © 2013 BD<br />
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