Manuel de prélèvement - Biolille

Mise à jour le 12/04/2013 

BIOLILLE 

MANUEL DE 

PRELEVEMENT

Laboratoire BIOLILLE – Manuel de prélèvement Page 2 sur 86 

INTRODUCTION 

Le Laboratoire BIOLILLE est heureux de mettre à disposition son Manuel de 

prélèvement. Ce document a été élaboré pour vous offrir le meilleur service 

dans la prise en charge de nos patients communs. 

L’objectif de ce manuel de prélèvement est d’expliciter le plus simplement et 

exhaustivement possible les différentes informations nécessaires à la phase 

pré-analytique selon les exigences réglementaires (ordonnance 2010-46 du 16 

janvier 2010). 

Parmi ces exigences, et notamment celles de la norme NF EN ISO 15189, les 

conditions de réalisation et de transmission des prélèvements biologiques 

constituent une étape importante impliquant une étroite collaboration entre les 

préleveurs et le laboratoire. Le respect de ces exigences est essentiel pour 

garantir des résultats d’analyses fiables. 

Votre implication et votre participation à cette étape pré-analytique nous 

permettent, ensemble, d’améliorer le service rendu aux patients. 

Nous souhaitons donc que ce Manuel de prélèvement vous apporte une aide 

utile et précieuse dans votre pratique professionnelle. 

Nous restons à votre écoute pour toute remarque ou suggestion qui pourrait 

contribuer à faciliter notre partenariat. 

Sommaire


SOMMAIRE 

1. Sommaire 

2. Laboratoires 

3. Biologistes 

4. Prescription 

Conformité de la prescription 

Les analyses hors nomenclature 

Demandes d’analyses sans ordonnance 

Analyses génétiques 

Prise en charge 

5. Recommandations pré-analytiques 

Généralités 

Conditions de prélèvement 

6. Réalisation du prélèvement 

Le matériel 

Liste des analyses 

Hygiène et sécurité 

Conduite à tenir en cas d’AES 

7. Les prélèvements sanguins 

Veineux 

Capillaire 

Gaz du sang artériel ou veineux 

Hémoculture 

Temps de saignement 

8. Les prélèvements bactériologiques 

Prélèvements urogénitaux chez la femme 

Prélèvements urogénitaux chez l’homme 

Prélèvement pharyngé 

Prélèvement nasal 

Prélèvement auriculaire 

Prélèvement oculaire 

Prélèvement d’une plaie, ulcération, lésion, suppuration 

Prélèvement d’ongle 

Prélèvement de cheveux ou de poils 

Prélèvement de peau ou de muqueuse 

Recherche de Malassezia (diagnostic du Pityriasis versicolor) 

Recherche de Sarcoptes ou agent de la gale 

Scotch test anal (test de Graham) 

Sondage vésical 

Pose d’un urinocol 

Sommaire


SOMMAIRE 

9. Identification des prélèvements 

Prélèvements réalisés au laboratoire 

Prélèvements réalisés en établissements de soins 

Prélèvements réalisés à domicile ou par les laboratoires transmetteurs 

Fiches de transmission 

10. Transmission des prélèvements 

Gestion des urgences 

Transport 

Délais et conditions de transport 

11. Réception des prélèvements 

Critères de conformité 

Traitement de la demande 

12. Post-analytique 

Analyses complémentaires 

Élimination des déchets 

Rendu du résultat 

Sommaire


LABORATOIRES 

COORDONNEES 

17 rue de la digue 

BP 117 

59016 Lille Cedex 

BIOLILLE – DIGUE 

Téléphone : 03 20 40 42 24 Fax : 03 20 40 42 21 Courriel : labo@biolille.fr 

HORAIRES D’OUVERTURE 

Lundi au vendredi Samedi Dimanche 

Matin De 7h00 7h00 – 13h00 Fermé 

Après-midi à 19h00 Fermé Fermé 

BIOLOGISTES MEDICAUX 

Dr BEN SOUSSAN Marianne 03 20 98 75 76 bensoussan@biolille.fr 

Dr COUPLET Gisèle 03 20 44 42 70 couplet@biolille.fr 

Dr DECRUCQ Krystel 03 20 44 42 63 decrucq@biolille.fr 

Dr HERBAUT Jean-Claude 03 20 44 42 80 herbaut@biolille.fr 

Dr HERBAUT-GRAUX Martine 03 20 44 42 12 mherbaut@biolille.fr 

Dr LEPERS Sébastien 03 20 44 42 26 lepers@biolille.fr 

Dr LOZE Delphine 03 20 44 42 60 loze@biolille.fr 

Dr MAINARDI-LEDUC Anne 03 20 44 42 65 mainardi@biolille.fr 

Dr SUKNO Frank 03 20 44 42 40 sukno@biolille.fr 

Sommaire


LABORATOIRES 

COORDONNEES 

1 rue Gibour 

59580 Aniche 

BIOLILLE – ANICHE 

Téléphone : 03 27 92 44 24 


Fax : 03 27 91 11 18 Courriel : aniche@biolille.fr 


Matin 7h30 – 12h00 7h30 – 11h30 Fermé 

Après-midi 14h00 – 18h00 Fermé Fermé 

BIOLOGISTE MEDICAL 

Dr FELLONI Claire 03 27 92 44 24 felloni@biolille.fr 

COORDONNEES 

BIOLILLE – BIOLIBERTE 

15 place Simon Vollant – Porte de Paris 

59000 Lille 

Téléphone : 03 20 52 40 59 


Fax : 03 62 53 40 09 Courriel : bioliberte@biolille.fr 





Dr DIEUSAERT Pascal 03 20 52 40 59 dieusaert@biolille.fr 

Sommaire


LABORATOIRES 

COORDONNEES 

BIOLILLE – BOIS-BLANCS 

118 avenue de Dunkerque 

59000 Lille 

Téléphone : 03 20 17 10 17 


Fax : 03 20 17 10 18 Courriel : labo@biolille.fr 





Dr MARCHETTI Carole 03 20 17 10 16 marchetti@biolille.fr 

COORDONNEES 

BIOLILLE – CROISE 

1033 avenue de la République 

59700 Marcq-en-Barœul 

Téléphone : 03 20 98 75 76 Fax : 03 20 98 78 79 Courriel : croise@biolille.fr 






Dr BARBRY Christèle 03 20 98 75 76 barbry@biolille.fr 

Sommaire


LABORATOIRES 

COORDONNEES 

3, place Wilson 

59220 Denain 

BIOLILLE – DENAIN 

Téléphone : 03 27 43 20 40 Fax : 03 27 43 61 03 Courriel : labohives59@orange.fr 



Matin De 7h30 à 12h30 7h30 – 12h00 Fermé 

Après-midi De 14h à 18h30 Fermé Fermé 


Dr HIVES Philippe 03 27 43 20 40 hives@biolille.fr 

Mme STEPHAN Catherine 03 27 43 20 40 stephan@biolille.fr 

COORDONNEES 

51 rue de la massue 

59500 Douai 

BIOLILLE – DOUAI 

Téléphone : 03 27 87 79 79 


Fax : 03 27 97 92 55 Courriel : douai@biolille.fr 





Dr BOUQUILLON Christophe 03 27 87 79 79 bouquillon@biolille.fr 

Sommaire


LABORATOIRES 

COORDONNEES 

104 rue Roger Salengro 

59260 Hellemmes 

BIOLILLE – HELLEMMES 

Téléphone : 03 20 56 84 44 


Fax : 03 20 56 85 87 Courriel : hellemmes@biolille.fr 





Dr CZARNECKI Emilie 03 20 56 84 44 czarnecki@biolille.fr 

COORDONNEES 

2 rue Gambetta 

59110 La Madeleine 

BIOLILLE – LA MADELEINE 

Téléphone : 03 62 59 70 00 


Fax : 03 62 59 70 01 Courriel : lamadeleine@biolille.fr 





Dr MORET Olivier 03 62 59 70 02 moret@biolille.fr 

Sommaire


LABORATOIRES 

COORDONNEES 

43 rue des meuniers 

59810 Lesquin 

BIOLILLE – LILLE-SUD 

Téléphone : 03 20 90 57 00 


Fax : 03 20 97 07 65 Courriel : lesquin@biolille.fr 





Dr LATOUR Pascale 03 20 90 57 01 latour@biolille.fr 

COORDONNEES 

BIOLILLE – PERENCHIES 

20-22 rue Édouard Agache 

59840 Pérenchies 

Téléphone : 03 20 93 14 53 


Fax : 03 20 93 09 80 Courriel : perenchies@biolille.fr 





Dr ELIA Agnès 03 20 92 82 61 elia@biolille.fr 

Sommaire


LABORATOIRES 

COORDONNEES 

BIOLILLE – SAINT-AMAND 

27 rue du 18 juin 

59230 Saint-Amand-les-eaux 

Téléphone : 03 27 21 63 83 


Fax : 03 27 21 63 89 Courriel : contact@labodamien.net 





Dr DAMIEN Jean-Michel 03 27 21 63 83 damien@biolille.fr 

Dr GOURDE Béatrice 03 27 21 63 83 beatricegourde@labodamien.net 

Dr LAPIERRE Elisabeth 03 27 21 63 83 elisabeth.lapierre@labodamien.net 

COORDONNEES 

BIOLILLE – VILLENEUVE D’ASCQ 

32 boulevard Van Gogh 

59650 Villeneuve d’Ascq 

Téléphone : 03 20 05 45 33 Fax : 03 20 67 11 76 Courriel : vda@biolille.fr 






Dr CREPIN Marie-Luc 03 20 05 45 33 crepin@biolille.fr 

Sommaire


BIOLOGISTES 

Dr BARBRY Christèle Biolille – Croisé 03 20 98 75 76 

Biologie polyvalente barbry@biolille.fr 

Dr BEN SOUSSAN Marianne Biolille / Biolille – Croisé 03 20 98 75 76 

Microbiologie bensoussan@biolille.fr 

Biologie polyvalente 

Dr BOUQUILLON Christophe Biolille – Douai 03 27 87 79 79 

Biologie polyvalente bouquillon@biolille.fr 

Dr COUPLET Gisèle Biolille 03 20 40 42 70 

Biologie endocrinienne et de la reproduction, 

diagnostic prénatal : biochimie fœtale 

et marqueurs de la trisomie 21 


couplet@biolille.fr 

Dr CREPIN Marie-Luc Biolille – Villeneuve d’Ascq 03 20 05 45 33 

Biologie polyvalente crepin@biolille.fr 

Dr CZARNECKI Emilie Biolille – Hellemmes 03 20 40 42 70 

Biologie polyvalente czarnecki@biolille.fr 

Dr DAMIEN Jean-Michel Biolille–Saint-Amand-les Eaux 03 27 21 63 83 

Biologie polyvalente damien@biolile.fr 

Dr DECRUCQ Krystel Biolille 03 20 40 42 63 

Microbiologie, virologie, 

parasitologie 

Hygiène 


decrucq@biolille.fr 

Dr DIEUSAERT Pascal Biolille-Bioliberté 03 20 52 40 59 

Biochimie dieusaert@biolille.fr 


Dr ELIA Agnès Biolille - Pérenchies 03 20 92 82 61 

Biologie polyvalente elia@biolille.fr 

Dr FELLONI Claire Biolille - Aniche 03 27 92 44 24 

Biologie polyvalente felloni@biolille.fr 

Dr GOURDE Béatrice Biolille–Saint-Amand-les Eaux 03 27 21 63 83 

Biologie polyvalente beatricegourde@labodamien.net 

Dr HERBAUT Jean-Claude Biolille 03 20 40 42 80 

Biologie de la reproduction herbaut@biolille.fr 


Dr HERBAUT-GRAUX Martine Biolille 03 20 40 42 63 

Cytogénétique pré et post natale mherbaut@biolille.fr 

Conseil génétique 

Dr LOZE Delphine Biolille 03 20 40 42 60 

Hématologie spécialisée 


loze@biolille.fr 

Sommaire


BIOLOGISTES 

Dr MARCHETTI Carole Biolille – Bois Blancs 03 20 17 10 16 

Biologie de la reproduction 


marchetti@biolille.fr 

Dr MAINARDI-LEDUC Anne Biolille 03 20 40 42 65 

Biologie moléculaire mainardi@biolille.fr 

Hématologie 

Diagnostic prénatal : biochimie fœtale 



Dr MORET Olivier Biolille – La Madeleine 03 62 59 70 02 

Biologie polyvalente moret@biolille.fr 

Mme STEPHAN Catherine Biolille - Denain 03 27 43 20 40 

Biologie polyvalente stephan@biolille.fr 

Dr SUKNO Frank Biolille 03 20 40 42 40 

Biologie de la reproduction sukno@biolille.fr 

Diagnostic prénatal : biochimie fœtale 



Sommaire


PRESCRIPTION 


L’ordonnance doit être rédigée par le prescripteur 

Conformément aux articles 34, 76 et 79 du code de déontologie médicale et au code de certification 

des établissements de soins, l'ordonnance doit comporter, au minimum, les éléments suivants : 

le nom et le prénom du bénéficiaire, 

l’identifiant du prescripteur ou structure d’activité au titre de laquelle est établie l’ordonnance 

(nom, prénom, N° d’inscription au tableau de l’ordre), 

la date de la prescription, 

la mention du caractère non remboursable le cas échéant, 

la nature des examens, 

la signature manuscrite du prescripteur. 

PRELEVEMENTS REALISES A DOMICILE 

L’ordonnance doit être accompagnée de la fiche de prélèvement à domicile envoyée au patient 

avec ses derniers résultats, ou d’une fiche de renseignement le cas échéant. 

Bien vérifier que pour le patient à prélever, l’identité inscrite sur l’ordonnance et sur les 

étiquettes est bien la même (attention dans une même famille). 

La fiche de prélèvement à domicile ou le fiche de renseignements doivent impérativement 

comporter les informations suivantes : 

l’identification complète du patient (nom, nom de jeune-fille, prénom, date de naissance), 

l’adresse du patient, 

les informations relatives au tiers-payant (sécurité sociale, mutuelle), 

la date et l’heure du prélèvement, 

l’identité du préleveur, 

les renseignements cliniques et thérapeutiques. 

PRELEVEMENTS REALISES EN CLINIQUE 

Les prélèvements réalisés en clinique doivent être accompagnés d’un bon clinique. 

Le bon clinique faisant office de prescription et de fiche de renseignement, il doit comporter 

l’ensemble des éléments indiqués ci-dessus. 

Sommaire


PRESCRIPTION 


PRELEVEMENTS PROVENANT DES LABORATOIRES TRANSMETTEURS 

Les prélèvements provenant des laboratoires transmetteurs doivent être accompagnés d’une 

demande comportant les informations suivantes : 

l’identification complète du patient (nom, nom de jeune-fille, prénom, date de naissance), 

l’adresse du patient, 

les informations relatives au tiers-payant (sécurité sociale, mutuelle), 

la date et l’heure du prélèvement, 

l’identité du préleveur, 

les renseignements cliniques et thérapeutiques. 

Toute ambiguïté ou toute absence d’élément est enregistrée dans notre 

système qualité et peut aboutir à la non réalisation des analyses. 

Sommaire


PRESCRIPTION 

Les analyses hors nomenclature 

Certaines analyses spécialisées sont hors nomenclature, c'est-à-dire qu'elles ne font pas l'objet 

d'un remboursement par la sécurité sociale ou par les mutuelles. Le montant de ces analyses est 

donc à la charge du patient. 

Les analyses hors nomenclature doivent être portées à la connaissance du patient qui est libre 

ou non d’accepter leur réalisation. 

Que ce dernier décide ou non de les réaliser, il est impératif de lui faire remplir le formulaire 

« Enregistrement des demandes formulées oralement et des demandes hors nomenclature ». 

Il précisera sur le formulaire s’il refuse de réaliser l’analyse ou s’il accepte et dans ce cas qu’il 

reconnaît avoir pris connaissance du prix de cette dernière. 

Le formulaire est scanné dans le dossier patient et l’original est donné au patient. 

Sommaire


PRESCRIPTION 

Demande d’analyses sans ordonnance 

Le laboratoire peut-être amené à réaliser des analyses non prescrites sur l’ordonnance. Celles-ci 

peuvent être réalisées à l’initiative du prescripteur ou du patient. Dans tous les cas, il est 

nécessaire d’obtenir une trace écrite de la demande. 

Demande faite par le prescripteur (ajout d’analyses sur une prescription existante) 

Une nouvelle ordonnance sera demandée au prescripteur à qui nous préciserons que cette 

demande pourra entraîner la réalisation d’un nouveau prélèvement si les analyses demandées 

ne peuvent être réalisées sur les échantillons déjà prélevés (délai de conservation non respecté, 

quantité insuffisante, tube manquant, etc…). 

En cas d’analyses hors nomenclature, l’accord du patient sera demandé et tracé sur le 

formulaire « Enregistrement des demandes formulées oralement et des demandes hors 

nomenclature ». 

Demande faite par le patient 

Le patient est informé que sa demande ne sera pas prise en charge par la sécurité sociale, donc 

non remboursée, et celle-ci est tracée sur le formulaire « Enregistrement des demandes 

formulées oralement et des demandes hors nomenclature ». 

Le formulaire est scanné dans le dossier patient et l’original est donné au patient. 

Sommaire


PRESCRIPTION 

Analyses génétiques 

Certaines analyses (notamment les analyses de cytogénétique) ne peuvent être réalisées 

qu'avec le consentement écrit du patient sur un formulaire normalisé, complété par le médecin et 

signé par le patient. 

L’ensemble des formulaires sont à disposition sur notre site internet, dans la rubrique 

« Formulaires à télécharger ». 

Pour la réalisation d’un caryotype, il est nécessaire de prendre rendez-vous au 03.20.17.10.10. 

Sommaire


PRESCRIPTION 

Prise en charge 

Pour que la prise en charge des analyses puisse avoir lieu, il est indispensable de fournir les 

renseignements ou documents suivants : 

1. Prescription 

2. Informations Tiers Payant 

Sécurité Sociale : Code caisse 

Régime 

Centre 

N° de sécurité sociale 

Nature de l’exonération (maladie, maternité, accident du travail, 

invalidité, affection longue durée) 

CMU, AME 

Date fin de droits 

Mutuelle : Nom de la mutuelle ou code préfectoral = numéro AMC 

N° d’adhérent 

3. Informations relatives au patient 

Date fin de droits 

Adresse pour l’envoi des résultats. 

Numéro de téléphone (permet de joindre le patient en cas de résultat anormal si le médecin 

est non joignable, et permet l’obtention de renseignements administratifs). 

Sommaire


RECOMMANDATIONS PRE-ANALYTIQUES 


Le patient n’est pas toujours conscient de tous les facteurs d’influence et ne peut adapter son 

comportement que si on lui fournit des explications. 

Une préparation soigneuse du patient contribue à éviter des erreurs. 

Le questionnement du patient contribue à révéler d’éventuels comportements inadaptés. 

Dans certaines circonstances, il peut être nécessaire de reporter le prélèvement de sang à 

une date ultérieure en raison du non respect de certains critères pré-analytiques. 

Rythme circadien 

Différents paramètres changent au rythme de la journée. 

L’influence des fluctuations qui se produisent au cours de la journée est minimisée si les 

échantillons sont prélevés aux heures recommandées. 

Effort physique 

Sous l’effort physique, de l’eau et de petites molécules sortent des vaisseaux sanguins et 

passent dans l’espace extravasculaire. Par conséquent, la concentration de structures de haut 

poids moléculaire comme des protéines ou des substances liées à la protéine augmente dans les 

vaisseaux. 

La même chose se produit lorsqu’une personne passe de la position allongée à la position assise 

ou durant la stase. 

Il est recommandé que tout patient en consultation externe doit se reposer environ 5 

minutes avant le prélèvement sanguin. 

Un échantillon de sang ne doit jamais être prélevé après un effort physique, par exemple 

après le jogging du matin. 

Les 24 heures qui précèdent le prélèvement sanguin, toute activité physique doit être 

évitée. 

Stress 

La peur de la prise de sang ou une opération imminente peuvent être à l’origine d’un stress 

mental extrême, qui déclenche la libération de différentes hormones, comme par exemple 

d’aldostérone, de catécholamine, de cortisol, de prolactine et de rénine. 

Une atmosphère calme et des encouragements avant le prélèvement sanguin ont le plus 

souvent un effet très positif sur le patient. 

Sommaire




Alimentation 

Différents paramètres peuvent changer après la prise d’un repas selon sa composition et le 

temps écoulé entre le repas et le prélèvement. 

Le jeûne assure une meilleure qualité des sérums et des plasmas. Durant le jeûne, il est possible 

de boire un verre d’eau. Il est recommandé de prendre un repas léger la veille au soir. 

L’état de jeûne est un des éléments assurant la bonne exécution technique des analyses et une 

interprétation pertinente des résultats. Après un repas riche en graisses, la lipémie se manifeste 

par l’aspect trouble du plasma. Des échantillons lipémiques n’ont qu’une utilité limitée au 

laboratoire. 

Pour les analyses ne nécessitant pas un état de jeûne, il est toutefois recommandé d’effectuer le 

prélèvement, si possible, au moins 2 heures après un repas pauvre en matières grasses. 

Avant le prélèvement sanguin, une abstinence alimentaire de 12 heures est recommandée, 

notamment pour des analyses du métabolisme lipidique. 

Il est possible de boire un verre d’eau. 

Stimulants : café, nicotine, alcool. 

La consommation de café peut provoquer une forte augmentation du cortisol : l’élévation peut 

atteindre 40% après 200 mg de caféine (quantité contenue dans 2 tasses de café). 

Une forte consommation de tabac entraîne également des changements concernant les 

leucocytes, les lipoprotéines, les activités enzymatiques, les hormones, les vitamines, les 

marqueurs de tumeurs et les métaux lourds. 

En l’espace d’une heure, une seule cigarette peut provoquer des changements substantiels dans 

la concentration de différents paramètres dans le sérum (ex : prolactine diminuée, plombémie 

augmentée, etc…). 

Concernant la consommation d’alcool, on distingue les effets aigus des effets chroniques. 

L’activité accrue des enzymes du foie est l’effet le plus connu. 

Il est recommandé de s’abstenir de fumer et de boire avant tout prélèvement de sang. 

Toute consommation d’alcool est à proscrire pendant 24 heures. 

Tout excès d’alcool doit être évité les jours précédant le prélèvement de sang. 

Sommaire




Drogues 

La consommation de drogues a des effets biologiques susceptibles d’influencer les examens de 

laboratoire. Ces effets varient d’une drogue à l’autre. 

A titre d’exemple, le cannabis peut provoquer une augmentation du sodium, du potassium, de 

l’urée, de l’insuline et du chlorure ainsi qu’une diminution de la créatinine, du glucose et de l’acide 

urique. 

Médicaments 

Des effets similaires peuvent être observés si 

un patient prend des médicaments. Dans les 

hôpitaux, les médicaments sont une cause 

fréquente d’interférences avec les analyses de 

laboratoire. 

Pour prévenir toute interprétation incorrecte 

des résultats de laboratoire, il est 

indispensable de demander au patient s’il 

prend des médicaments régulièrement et s’il a 

pris des médicaments avant le prélèvement 

sanguin. 

La prise de vitamines et d’hormones doit être expressément mentionnée car ces substances ne 

sont pas automatiquement considérées comme des médicaments. Le nom du médicament et la 

dose prise doivent être communiqués au laboratoire. 

Le moment idéal du prélèvement se situe juste avant la prochaine prise de médicament. 

En revanche, le prélèvement sanguin doit être effectué dans les plus brefs délais en cas de 

soupçon de surdosage ou d’intoxication. 

Pour plus de détails, se référer au Référentiel des analyses du laboratoire en ligne sur notre site 

internet. 

Comportement du patient 

Le patient n’est pas toujours conscient de tous les facteurs d’influence et ne peut adapter son 

comportement que si on lui fournit des explications. 

Sommaire



Conditions de prélèvement 

Pour connaître les conditions particulières de prélèvement (jeûne obligatoire, analyses 

nécessitant des renseignements ou des conditions particulières de prélèvement), se reporter au 

Référentiel des analyses en ligne sur notre site internet. 

Sommaire


REALISATION DU PRELEVEMENT 

Le matériel 

Matériel Description Utilisation 

Tube sec avec gel séparateur 

Tube sec sans gel séparateur 

Tube héparine de lithium avec gel 

séparateur 

Tube fluorure de sodium 

Tube citrate de sodium 

Tube EDTA 

Sommaire 

Biochimie, sérologie, …. 

RAI, dosage médicament, … 

Ionogramme, … 

Glycémie 

Flacon stérile BD ECBU 

Hémostase, … 

NFS, VS, HBA1c, … 

Flacon stérile 500 mL opaque HLM (Compte d’Addis) 

Flacon 3 litres Recueil des urines de 24H 

Flacon stérile 125 mL Recueil de sperme 

Flacon pour hémoculture Hémoculture 

Pot blanc opaque Coprocultures 

Écouvillon stérile avec milieu de 

transport 

Microbiologie 

Écouvillon stérile en dracon Microbiologie



Liste des analyses 

Pour connaître la liste des analyses effectuées au laboratoire ou transmises à un laboratoire 

sous-traitant, ainsi que les modalités de prélèvement (volume, nature, conditions…), se reporter 

au Référentiel des analyses ou à la plaquette de prélèvement (document pratique à l’usage des 

préleveurs, correspondant à la liste simplifiée des analyses) en ligne sur notre site internet. 

Sommaire



Hygiène et sécurité 

Des règles d’hygiène et de sécurité sont à respecter vis-à-vis de tous les liquides biologiques, de 

tous les tissus et de tous les matériels souillés. 

Couvrir toute plaie ou lésion cutanée. 

Se laver ou se désinfecter les mains avant et après chaque acte de prélèvement et en cas de 

souillure avec du sang ou des produits biologiques. 

Mettre des gants s'il y a un risque de contact avec du sang ou des liquides biologiques. 

Le port de gants doit être systématique en cas de lésions des mains, mêmes minimes. 

Ne pas recapuchonner les aiguilles. 

Éliminer les déchets selon la réglementation en vigueur. 

Sommaire




PRELEVEURS EXTERNES 

Cliquer ici 

PRELEVEURS INTERNES 

Piqûre, blessure ou contact direct sur peau lésée 

Ne pas faire saigner. 

Nettoyer immédiatement la plaie à l’eau et au savon puis rincer. 

Réaliser l’antisepsie pendant au moins 10 minutes avec une lingette alcoolisée ou du Dakin 

situés dans les armoires à pharmacie ou avec de l’eau de Javel diluée au 1/10 ième . 

Projection dans les yeux ou sur les muqueuses 

Muqueuses : laver doucement et abondamment à l’eau et au savon puis désinfecter avec une 

lingette alcoolisée située dans les armoires à pharmacie. 

Yeux : en cas de poussière, utiliser le collyre en uni dose à disposition dans les armoires à 

pharmacie. En cas de projection, rincer doucement l’œil à l’eau pendant au moins 10 minutes 

et consulter le plus rapidement possible un ophtalmologiste. 

Évaluation du risque 

Elle doit être faite immédiatement après l’accident par un médecin du laboratoire. Elle tient 

compte : 

de la sévérité de l’exposition 

de la nature du liquide biologique responsable 

du statut sérologique (si connu ou si autorisation de vérification) et clinique de la personne 

source (VHC, VIH et VHB). 

Sérologie et prophylaxie (après avis du médecin du laboratoire) : 

Réalisation d’un bilan initial au plus tard avant le 8 ème jour suivant l’accident. 

Si la personne n’a pas été mise sous traitement prophylactique, une sérologie est effectuée au 

1 er et 3 ème mois à compter de la date de l’accident. 

Si la personne a été mise sous traitement prophylactique, la sérologie est réalisée au 2 ème et 

au 4 ième mois à compter de la date de l’accident. 

Les résultats des sérologies sont transmis au médecin-conseil sous pli confidentiel. 

Sommaire




En cas d’accident avec risque majeur de contamination (VHC, VIH et/ou VHB), la victime doit 

être prise en charge le plus rapidement possible par un médecin référent (dans les 4 heures 

et avant 48 heures), de manière à mettre en place le plus rapidement possible une 

prophylaxie : contacter le CISIH, centre hospitalier de Tourcoing (service Trousseau) : 

- 03.20.69.46.05 

- 03.20.69.46.14 (semaine) 

- 03.20.69.41.51 (week-end) 

Déclaration de l’accident 

prévenir immédiatement le service du personnel qui déclarera l’accident auprès de la Caisse 

Primaire d’Assurance Maladie du laboratoire dans les 24 heures 

notification de l’accident, par le service du personnel, au médecin du travail auquel est 

rattachée la victime. 

remise d’une feuille d’accident de travail à la victime 

En cas d’accident avec risque de transmission du VHC, du VIH et/ou du VHB, un document 

indiquant la conduite préconisée par le laboratoire est remis à la victime qui le signe : une copie 

est conservée dans le dossier du personnel. 

Sommaire


PRELEVEMENT 

Veineux (selon IT-MU-PVT 001) 

PRELEVEURS 

Biologistes – IDE – Préleveurs unité prélèvement – Techniciens capacitaires 

MATERIEL 

Vérifier les péremptions avant utilisation 

Alcool, Bétadine ou autre désinfectant selon type de prélèvement, 

Gants, 

Savon désinfectant type Manugel ou autre. 

MATERIEL SOUS-VIDE NON SOUS-VIDE 

Aiguilles 

À usage unique : 

longues vertes (0,8 x 38 mm) 

noires (0,7 x 38 mm) 

courtes jaunes (0,9 x 25 mm) 

vertes (0,8 x 25 mm) 

noires (0,7 x 25 mm) 

Unité de prélèvement à ailettes 

ou épicrânienne (0,8 x 19 mm) 

avec adaptateur luer 

Sommaire 

À usage unique : 

courtes ivoires (1,1 x 25 mm) 

jaunes (0,9 x 25 mm) 

vertes (0,8 x 25 mm) 

Flacons Standard 18 et 30 ml pour recueil 

puis transfert dans les tubes 

Tubes (variable) 4 ml en général Micro-tubes 

(pédiatriques) 

Sec 

Rouge (sans gel) 

Jaune (avec gel) 

Rouge 

Citrate Bleu (coagulation – groupes) Bleu 

Héparine de Li 

Vert foncé 

Vert clair (avec gel) 

Vert 

Fluorure de Na Gris 

EDTA Violet Rose 

Holder ou 

corps de pompe 

À vis 

À clips 

Tubes 

Idem tubes 

sous vide 

Remarque : se procurer au préalable, si nécessaire, les tubes spéciaux requis pour certaines analyses 

selon le référentiel des analyses (oligo-éléments, certaines hormones) ou les protocoles pharmaceutiques.


PRELEVEMENT 


RECOMMANDATIONS ET RENSEIGNEMENTS CLINIQUES 

Dosage de médicaments : 

o noms des spécialités pharmaceutiques, 

o posologie, 

o date et heure de la dernière prise. 

Hormonologie : date des dernières règles, d’insémination, de transfert ou de prise de 

traitement(s). 

Hémostase : nature, heure de dernière prise et dosage anticoagulant. 

Marqueurs : pathologie, traitement en cours. 

MODE OPERATOIRE 

Se désinfecter les mains. 

Préparer les tubes nécessaires au prélèvement. 

Poser le garrot, demander au patient de tendre le bras et de serrer le poing. 

Remarque : prélèvement sans garrot si demandé sur la prescription. 

Choisir le site de ponction selon veines et conditions (ATCD curages, perfusion…), de 

préférence : au pli du coude, 

à l’avant-bras, 

au poignet, 

au dos de la main, 

exceptionnellement autre site (pied). 

Préparer le matériel en fonction du capital veineux. 

Désinfecter le site de ponction à l’aide d’un coton alcoolisé ou Bétadine si hémoculture, gaz 

du sang (si utilisation de Bétadine, demander au patient s’il n’est pas allergique à l’iode). 

Ne pas utiliser d’alcool pour une alcoolémie. 

Ne pas palper, ni toucher le site de ponction après désinfection. 

Réaliser la ponction veineuse (voir ci-dessous). 

Matériel sous-vide 

Aiguilles : 

Visser/clipser l’aiguille sur le corps de pompe juste avant de prélever. 

Décapuchonner. 

Tendre la peau et piquer franchement (aiguille biseau vers le haut). 

Tenir le corps de pompe entre le pouce et l’index. Le maintenir immobilisé durant la ponction 

sur le bras du patient. 

Sommaire


PRELEVEMENT 


Unité de prélèvement à ailettes ou « épicrânienne » : 

Visser le corps de pompe sur l’adaptateur luer de l’épicrânienne. 

Enlever la protection de l’aiguille. 

Maintenir les ailettes vers le haut. 

Piquer et relâcher les ailettes. 

Dans tous les cas : 

Enfoncer le 1 er tube dans le corps de pompe. 

Si possible, ôter le garrot le plus tôt possible. 

Attendre l’arrêt de l’écoulement du sang dans le tube pour bien respecter le niveau de 

remplissage : impératif pour les tubes citrates (coagulation) 

Respecter l’ordre de prélèvement si possible : 

Sommaire


PRELEVEMENT 


Dépiquer et appliquer un coton sec. 

Presser fermement quelques minutes, assez longtemps si patient sous AVK, aspirine, Plavix... 

Vérifier l’arrêt du saignement et poser un pansement. 

Matériel non sous vide 

Pour les veines difficiles et les enfants (les jeunes enfants sont, si nécessaire, maintenus par une 

deuxième personne). 

Préparer et déboucher les tubes à remplir. 

Recueillir le sang par écoulement dans le tube de 18 ml ou 30 ml, ou directement si un seul 

tube à partir d’une aiguille seule ou munie d’une tubulure. 

Dégarotter et dépiquer. 

Appliquer un coton sec et presser fermement quelques minutes. 

Remplir rapidement d’abord le tube : 

o citrate 

o EDTA 

o héparine 

o sec 

Reboucher les tubes et les retourner 5 à 6 fois, 

Vérifier l’arrêt du saignement. 

Poser le pansement. 

Remarque : si écoulement très lent, éventuellement, laisser écouler directement dans chaque 

tube un par un. 

IDENTIFICATION DES PRELEVEMENTS 

Se reporter à « Identification des prélèvements » 

TRANSMISSION 

Se reporter au référentiel des analyses. 

Attention : si prélèvement dans la glace : acheminement dans l’heure qui suit. 

REFERENCES 

Guide de recommandation pour la bonne exécution des analyses Laboratoire Terumo France. 

Sommaire


PRELEVEMENT 

Capillaire (selon IT-MU-PVT 021) 

PRELEVEURS 

Biologistes – IDE – Préleveurs unité prélèvement, techniciens capacitaires. 

MATERIEL 

Vérifier la péremption avant utilisation 

Vaccinostyle 

aiguilles 

Biseptine 

Gants, 

Manugel 

Gaz du sang capillaire Autre prélèvement capillaire 

Tube capillaire hépariné 

Bouchons 

Limaille 

Aimant 

Glaçons et sachet 


Sommaire 

Micro tubes héparine (vert) 

Micro tubes EDTA (violet) 

Micro tubes citrate (bleu) 

Micro tubes sec (rouge) 

Se référer au Référentiel des analyses en ligne sur notre site internet. 


Port de gants conseillé 

LOCALISATION 

GAZ DU SANG CAPILLAIRE AUTRE PRELEVEMENT 

CAPILLAIRE 

Lobe de l’oreille 

Doigt 

Talon


PRELEVEMENT 

Capillaire (selon IT-MU-PVT 021) 

GAZ DU SANG CAPILLAIRE 


(Port de gants conseillé) 

Sommaire 

AUTRE PVT CAPILLAIRE 

(mettre la main dans l’eau chaude avant le prélèvement) 

Désinfecter et piquer au vaccinostyle ou à l’aiguille. 

Prélever les gouttes de sang avec le 

capillaire jusqu’à ½ cm du bord (le capillaire 

doit être maintenu quasi horizontalement, 

légèrement oblique vers le haut, sans 

quitter la goutte de sang pour éviter toute 

bulle d’air dans le tube). 

Boucher une extrémité du tube. 

Introduire la limaille. 

Boucher la 2 ème extrémité. 

Passer l’aimant le long du tube 

pour éviter la coagulation. 

Mettre le tube dans la glace et 

l’acheminer rapidement au 

laboratoire 

TRANSMISSION 

Prélever les gouttes de sang dans les 

micro tubes en massant légèrement la 

zone de ponction. 

Transmettre le dossier et les 

tubes en distribution. 

Pour les gaz du sang, mettre dans la glace et acheminer dans l’heure. 

Pour les autres analyses, se référer au Référentiel des analyses. 

REFERENCES 

Greiner bio-one Système de prélèvement sanguin capillaire 01/09/2009


PRELEVEMENT 

Gaz du sang artériel ou veineux (selon IT-MU-PVT 009) 

PRELEVEURS 

Médecins biologistes – Pharmacien biologiste si agréé – IDE 

Technicien préleveur (exclusivement pour le gaz du sang veineux). 

MATERIEL 

Vérifier la péremption avant utilisation. 

Bétadine ou équivalent, 

Aiguilles non sous vide, 

Seringues héparinées à gaz du sang, 

Compresses – coton – élastoplaste – sachet glaçons si transport dans l’heure. 


Identification patient et coordonnées prescripteur. 

Nature de la ventilation : - spontanée (air ambiant ou enrichi en oxygène) 


- assistée (volume, fréquence, FIO2). 

Le gaz du sang peut être réalisé en établissement de soin, au laboratoire ainsi qu’à domicile. 

Port de gants conseillé. 

ARTERE 

Repérer le pouls artériel de préférence en radial. 

Positionner l’aiguille sur la seringue. 

Désinfecter la zone à ponctionner et les doigts de la main qui palpent le pouls, avec la 

Bétadine. 

Décapuchonner l’aiguille. 

Ponctionner l’artère et laisser monter le sang spontanément d’environ 2 ml. 

Ôter l’aiguille et de l’autre main appuyer fortement sur la zone de ponction. Demander au 

patient de presser fortement (ou mettre un garrot) comme vous pour pouvoir préparer la 

seringue. 

Enlever l’aiguille et la jeter dans le réceptacle ad hoc. 

Enlever les bulles éventuelles, boucher la seringue. Homogénéiser par retournement ou 

roulement. 

Sommaire


PRELEVEMENT 

Gaz du sang artériel ou veineux (selon IT-MU-PVT 009) 

Identifier et placer le tout avec les glaçons dans le sachet. 

Faire parvenir dans l’heure en technique. 

Bien comprimer le lieu de ponction avec l’élastoplaste et un coton ou compresse et dire au 

VEINE 

patient de garder le tout jusqu’au lendemain. 

Même procédure à l’exception du lieu de ponction (veine périphérique) et de la montée plus ou 

moins lente du sang dans la seringue (tirer éventuellement le piston). 

TRANSMISSION 

La transmission immédiate si prélèvement au laboratoire ou sinon dans l’heure après avoir été 

mis dans la glace. 

Sommaire


PRELEVEMENT 

Hémoculture (selon IT-MU-PVT 017) 

PRELEVEURS 

Biologistes – Infirmières Diplômées d’État – Techniciens capacitaires 

MATERIEL 


Gants (recommandés) 

Epicrânienne 

Corps de pompe 

Flacon hémoculture aérobie (bouchon bleu) 

Flacon hémoculture anaérobie (bouchon violet) 

Flacon hémoculture pédiatrique (bouchon rose) 

Alcool à 70°C 

Bétadine scrub® unidose (rouge) 

Bétadine dermique® unidose (jaune) 

Biseptine (enfants de < 30 mois) 

Compresses stériles 

Sérum physiologique stérile en dosette 


Noter l’heure et la température, si en périphérie ou sur cathéter et antibiothérapie éventuelle. 

Noter les renseignements cliniques sur le bordereau d’étiquettes ou bon de demande. 

Si suspicion d’endocardite, à préciser au préalable ou téléphoner au laboratoire. 


S’assurer que le patient ne présente pas d’allergie ni de contre indication à l’iode. En cas de 

contre-indication, suivre la procédure chez l'enfant (


PRELEVEMENT 


Marquer sur l’étiquette le niveau nécessaire de sang pour remplir le flacon. 

Poser le garrot entre les 2 étapes de friction des mains. 

Nettoyage au savon doux des mains pendant 2 minutes, puis Lavage et désinfection des mains 

du préleveur par Produit Hydro-Alcoolique (PHA), 2 frictions successives pendant 3 minutes (de 

la manière suivante). 

Étape 2 

Réaliser une désinfection rigoureuse en respectant les 4 temps : 

Détersion par de la bétadine scrub®, nettoyer en faisant mousser. 

Rinçage au sérum physiologique stérile. 

Séchage avec une compresse stérile. 

Antisepsie par la bétadine® dermique : appliquer par une compresse stérile sur une large zone, 

laisser sécher à l’air pendant 1 minute. 

Sommaire


PRELEVEMENT 


Étape 3 

Ponctionner la veine à l’aide de l’épicrânienne puis, si possible, ôter le garrot, 

Prélever d’abord l’hémoculture aérobie puis anaérobie, 

Prélever 10 mL de sang par flacon, 

Agiter doucement, 

Étiqueter le(s) flacon(s), noter heure et la température. 

ENFANT (< 30 mois) 

Étape 1 (cf. Adulte) 

Étape 2 

NE PAS MASQUER LES CODES BARRES DES FLACONS 

Réaliser une désinfection rigoureuse en respectant les 4 temps : 

Nettoyer par de la biseptine® 

Sécher par tamponnement 

Appliquer une 2ème fois de la biseptine®, laisser sécher à l’air pendant au moins 1 minute. 

1 flacon suffit pour les enfants 

Volume idéal pour les hémocultures pédiatriques varie de 1 à 3 mL Agiter doucement. 

Étape 3 (cf. Chez l’adulte) 

TRANSMISSION 

Acheminer à température ambiante le plus rapidement possible au laboratoire. 

Sommaire


PRELEVEMENT 

Temps de saignement (selon IT-MU-PVT 010) 

PRELEVEURS 

Biologistes – IDE – Préleveurs unité prélèvement – Techniciens capacitaires 

MATERIEL 


Vaccinostyle 

DUKE 

Lobe de l’oreille 

Antiseptique (biseptine, héxomédine, éther) 

Papier buvard 

Montre avec trotteuse ou minuterie 


Sommaire 

IVY Incision 

Avant-bras 

Tensiomètre 

1 dispositif standardisé (type Surgicutt) adapté à 

l’âge du patient : 

- Surgicutt junior (rose), de 5 mois à 15 ans, 

- Surgicutt adulte (blanc), à partir de 15 ans. 

Stéri-strip 

Demander si le patient est sous antiagrégant plaquettaire (Aspirine, Kardégic…). 

Le patient doit avoir arrêté tout traitement antiagrégant plaquettaire depuis au moins 7 jours. 

Si ce n’est pas le cas, voir s’il est possible de réaliser le test à distance du traitement, dans le cas 

contraire voir avec un biologiste. 


Port de gants conseillé 

DUKE IVY 

Désinfecter la zone de ponction à l’aide 

d’une solution antiseptique (ne pas utiliser 

d’alcool, préférer l’éther, l’héxomédine ou 

la biseptine). 

Faire une petite incision horizontale à l’aide 

d’un vaccinostyle au niveau du lobe de 

l’oreille. 

Placer le brassard du tensiomètre sur le haut 

du bras : insuffler de l’air jusqu’à une 

pression de 40mm Hg. L’intervalle de temps 

entre la période d’insufflation et l’incision doit 

être de 30-60 secondes. Contrôler le 

maintien de la pression pendant toute la 

durée du test.


PRELEVEMENT 

Temps de saignement (selon IT-MU-PVT 010) 


DUKE IVY 

Sommaire 

Choisir une zone sans vaisseaux, sans 

cicatrices ni ecchymoses. 

Nettoyer la région avec un tampon d’ouate 

antiseptique (ne pas utiliser d’alcool, préférer 

l’éther, l’héxomédine ou la biseptine) et 

laisser sécher à l’air. 

Retirer le Surgicutt de son emballage 

transparent (ne pas le contaminer). 

Retirer l’attache de sûreté. 

Placer le dispositif sur l’avant-bras en 

position horizontale à environ 5cm du pli du 

coude et parallèlement à ce dernier. 

Appuyer sur le déclic en maintenant 

fermement le dispositif. 

Absorber le sang avec le papier buvard toutes les 30 secondes sans toucher l’incision, 

jusqu’à ce que le sang ne tâche plus le papier. Arrêter le chronomètre. 

Valeurs normales : TS = 2 à 4 min. Valeurs normales : 

Résultats : 

Enlever le tensiomètre et placer un Stéristrip. 

- Surgicutt adulte TS 8 min 

- Surgicutt junior 1 min 30 < TS < 9 min 

- Pour les personnes habilitées entrer directement le résultat dans l’informatique. 

- Pour les personnes non habilitées ou si le TS est réalisé à l’extérieur, remplir le DE « Fiche 

de résultat du temps de saignement » (coller une étiquette patient, mettre l’heure, ces 

initiales ainsi que le résultat) qui sera mis avec le bilan pour les prélèvements extérieurs ou 

avec l’ordonnance pour être scanné pour les prélèvements au laboratoire. 

Si TS > normale, prévenir un biologiste si prélèvement au laboratoire ou le médecin 

prescripteur si prélèvement en clinique avant de libérer le patient, afin de savoir si des 

dosages complémentaires sont nécessaires et noter les renseignements cliniques et 

thérapeutiques sur le bordereau de prélèvement ou sur l’imprimé RDV à domicile. 

TRANSMISSION 

Non applicable 

REFERENCES 

Guide des examens de laboratoire FLAMMARION MEDECEINE-SCIENCES.


PRELEVEMENT 

Prélèvements urogénitaux chez la femme (selon IT-MU-PVT 0026) 

PRELEVEURS 

Biologiste – IDE (prélèvement directement accessible et non sanglant) 

MATERIEL 


Gants 

Speculum 

Aspiglaire 

Ecouvillons avec milieu de transport. 

Milieu de transport Mycoplasme (conservation 2-8°C avant analyse). 

Flacon stérile 

Lames porte-objet 

Lamelles 

Compresses 

Sérum physiologique stérile 

Kit Cobas®PCR Urine Sample Kit (Kit « Chlamydiae trachomatis + Neisseria gonorrhoeae ») 

Ou Kit Cobas ®PCR Female Swab Sample avec 2 écouvillons. 

Kit Herpès microTrak® (1 lame avec 2 cupules, 2 écouvillons, 1 flacon fixateur d’acétone). 


Pas de toilette locale. Pas de prise d’antibiotique ou antifongique récente (au moins 48 heures). 

Si recherche de N.gonorrhoeae, C.trachomatis ou mycoplasmes sur 1 er jet : ne pas avoir uriné 

depuis 3 heures. 

Noter les renseignements sur la Fiche de renseignements - Microbiologie - prélèvement Urogénital. 

Remarque : Kit pour C.trachomatis : Eviter le contact direct du milieu contenant du chlorohydrate 

de guanidine avec la peau, les yeux ou les muqueuses. En cas de contact, rincer immédiatement et 

abondamment à l’eau. 


Mettre des gants pour réaliser le prélèvement. 

Avant le prélèvement vaginal, faire le recueil des urines selon les recommandations (urines 1 er 

et/ou 2 ème jet). 

Sommaire


PRELEVEMENT 


Patiente en position gynécologique, spéculum sans lubrifiant, et éclairage adapté. 

VAGINAL 

Différencier 2 écouvillons : un vaginal et un endocol. 

Vaginal : écouvillonner le cul de sac vaginal postérieur pour la recherche d’une vaginose, vaginite 

voire mycoses. Remettre l’écouvillon dans un milieu de transport 

Endocol : Le cas échéant, nettoyer l’exocol par une compresse imbibée de sérum physiologique 

stérile pour éliminer l’excès de glaire cervicale ou sécrétions vaginales. Prélever le canal 

endocervical à l’aide de l’écouvillon notamment pour la recherche de N. gonorrhoeae puis remettre 

l’écouvillon dans un milieu de transport. 

Recherche de C. trachomatis 

Pour les femmes symptomatiques 

Situer le col avec le speculum, à l’aide d’un des écouvillons fournis, retirer l’excès de mucus situé 

au niveau de l’orifice de l’utérus et sur la muqueuse située autour de ce dernier, jeter l’écouvillon. 

Mettre l’autre écouvillon fourni dans le canal endocervical. Tourner doucement l’écouvillon 5 fois 

dans la même direction. 

Mettre l’écouvillon dans le milieu pour PCR Cobas, casser l’écouvillon en l’inclinant contre le bord 

du tube. 

Pour les patientes asymptomatiques 

Le 1 er jet urinaire recueillir 10 mL dans un flacon stérile. 

On y recherchera en systématique : Chlamydiae trachomatis + N. gonorrhoeae par biologie 

moléculaire. 

En cas de délai d’acheminement > à 24 heures, les échantillons d’urine doivent être 

impérativement transférés dans le tube de milieu pour PCR Cobas : 

Utiliser la pipette fournie dans le kit pour transférer l’échantillon d’urine. Le niveau d’urine a 

ajouté doit être compris entre les 2 lignes situées sur le milieu « Fill aera ». 

Fermer le tube puis retourner 5 fois pour mélanger. 

ou auto-prélèvement vaginal : 

Tenir l’écouvillon d’une main et, de l’autre main, séparer les plis de peau autour de l’ouverture 

du vagin 

Sommaire


PRELEVEMENT 


Insérer l’écouvillon à une profondeur d’environ 5 cm dans l’ouverture vaginale. Faire tourner 

doucement l’écouvillon pendant 30 s tout en le frottant contre les parois vaginales. 

Mettre l’écouvillon dans le milieu pour PCR Cobas, casser l’écouvillon en l’inclinant contre le bord 

du tube. 

Fermer hermétiquement le tube. 

Recherche de mycoplasmes génitaux (Mycoplasma hominis, Ureaplasma urealyticum) 

Réalisé sur demande explicite. 

Remettre le milieu de transport à température ambiante. 

Ecouvillonner au niveau du cul de sac vaginal en frottant la muqueuse afin de récupérer le 

maximum de cellules. Puis mettre l’écouvillon dans le milieu de transport pour mycoplasmes. 

Recherche de Trichomonas vaginalis (demande explicite) 

En cas d’examen différé (au-delà de la demi-heure), il est recommandé de faire un étalement sur 

une lame porte-objet pour une coloration au M.G.G. 

Recherche de Streptococcus agalactiae (groupe B) 

Écouvillonner l’ensemble de la cavité vaginale incluant absolument le balayage des parois de la 

moitié inférieure du vagin jusqu’au vestibule et la vulve, remettre l’écouvillon dans un milieu de 

transport. 

GLAIRE ENDO-CERVICALE 

A l’aide d’un Aspiglaire, recueillir la glaire. Si trop épaisse ou volume insuffisant, le prélèvement se 

fera par un double écouvillonnage au niveau de l’endocol. Puis replacer les écouvillons dans les 

milieux de transport. 

VULVAIRE 

Imbiber 2 écouvillons avec quelques gouttes de sérum physiologique stérile. Prélever en frottant les 

lésions inflammatoires. Remettre les écouvillons dans leur milieu de transport. 

URETRAL 

En cas d’urétrite, la recherche de C.trachomatis, mycoplasmes ou N. gonorrhoeae peut-être 

réalisée sur le 1 er jet urinaire (après 3 heures de stase urinaire). Pour la bactériologie prélever avec 

un écouvillon fin au niveau du méat urinaire, replacer dans les milieux de transport adaptés. 

Sommaire


PRELEVEMENT 


ULCERATION (bactériologie-mycologie) 

Imbiber 2 écouvillons avec quelques gouttes de sérum physiologique stérile. Prélever en frottant les 

lésions inflammatoires. Replacer les écouvillons dans un milieu de transport. 

ULCERATION avec recherche spécifique 

Voir « Prélèvements uro-génitaux chez l'homme » 

TRANSMISSION 

Écouvillons avec milieu de transport : température ambiante, 12h. 

Lame porte-objet dans un porte lame : température ambiante, dans la journée. 

Urines (1 er jet urinaire) pour recherche de C.trachomatis et N.gonorrhoeae par biologie 

moléculaire: au maximum 24 heures entre 2°C et 30°C. Après transfert dans le milieu pour 

PCR Cobas®, l’échantillon est stable pendant 12 mois entre 2°C et 30°C. 

Kit C.trachomatis et N.gonorrhoeae sur écouvillon : si prélèvement endocervical, stable 

pendant 12 mois à une température comprise entre 2°C et 30°C. Si prélèvement vaginal, stable 

pendant 90 jours à une température comprise entre 2°C et 30°C. 

Kit herpès : température ambiante, dans la journée. 

Milieu de transport mycoplasmes : température ambiante, dans la journée. 

REFERENCES 

REMIC : référentiel en microbiologie médicale, 4 ème édition 2010 

BACTERIOLOGIE MEDICALE, Techniques usuelles 

Sommaire


PRELEVEMENT 

Prélèvements urogénitaux chez l’homme (selon IT-MU-PVT 0022) 

PRELEVEURS 

Biologistes – Infirmières Diplômées d’État (IDE) 

MATERIEL 


Gants 

Écouvillons avec milieu de transport. 

Milieu de transport Mycoplasme (conservation 2-8°C avant analyse). 



Lamelles 



Kit Cobas®PCR Urine Sample Kit (Kit Chlamydiae trachomatis) 

Kit Herpès microTrak® (1 lame avec 2 cupules, 2 écouvillons, 1 flacon fixateur d’acétone). 


Pas de toilette locale. Pas de prise d’antibiotique récente (au moins 48 heures). 

Ne pas uriner avant le prélèvement (au minimum 1 heure voir 3 heures si urétrites subaiguës). 

Noter les renseignements sur la « Fiche de renseignements - Microbiologie - prélèvement 

Urogénital » 






Remettre le milieu mycoplasme à température ambiante avant ensemencement. 

ECOULEMENT 

Le prélèvement urétral doit se faire avant le 1 er jet urinaire. Recueillir à l’aide de 2 écouvillons le pus 

ou l’écoulement urétral. Placer les écouvillons dans un milieu de transport. 

Sommaire


PRELEVEMENT 


ENDO-URETRAL (si absence d’écoulement) 

Introduire à environ 1 cm ,2 écouvillons fins au préalable humidifiés avec du sérum physiologique 

stérile, tourner doucement puis mettre dans le milieu de transport. 

AUTRES LOCALISATIONS : gland, prépuce, sillon balano-préputial … 

Nettoyer au préalable la zone à prélever avec une compresse stérile imbibée de sérum 

physiologique stérile. 

Puis, faire un double écouvillonnage. 

En systématique, 1 er jet urinaire : Idéalement 3 heures après la dernière miction (1 heure si 

écoulement), recueillir 10 mL dans un flacon stérile. 

On y recherchera en systématique : Chlamydiae trachomatis + N. gonorrhoeae par biologie 

moléculaire. 

En cas de délai d’acheminement > à 24 heures, les échantillons d’urine doivent être 

impérativement transférés dans le tube de milieu pour PCR Cobas : 

Utiliser la pipette fournie dans le kit pour transférer l’échantillon d’urine. Le niveau d’urine à ajouter 

doit être compris entre les 2 lignes situées sur le milieu « Fill aera ». 

Fermer le tube puis retourner 5 fois pour mélanger. 

Sur prescription explicite : Mycoplasmes génitaux (Mycoplasma hominis, Ureaplasma 

urealyticum) par culture, pour Mycoplasma genitalium uniquement par PCR (hors nomenclature). 

ULCERATION GENITALE 

Nettoyer au préalable l’ulcération avec une compresse stérile imbibée de sérum physiologique 

stérile. 

Recherche de tréponèmes (chancre dur, indolore) 

A réaliser au laboratoire exécutant. 

Humidifier l’écouvillon légèrement avec du sérum physiologique stérile, au centre de la lésion, 

recueillir les sérosités. Déposer entre lame-lamelle pour réaliser un état frais, visualiser au 

microscope à fond noir dans le quart d’heure. 

Recherche d’Haemophilus ducreyi (agent du chancre mou, douloureux) 

Humidifier l’écouvillon légèrement avec du sérum physiologique stérile, en bordure de la lésion, 

recueillir le pus. Réaliser avec l’écouvillon 2 étalements sur lame porte-objet. 

Sommaire


PRELEVEMENT 


Recherche d’Herpes simplex virus (HSV) (douloureux, +/-vésicules) 

Recherche directe par I.F.I (kit spécifique) 

Gratter le plancher de la lésion afin de recueillir des cellules, puis déposer sur le 1 er puits de la 

lame. Renouveler le prélèvement puis déposer sur le 2 nd puits. Casser l’ampoule d’acétone, 

recouvrir chaque spot avec le fixateur. 

Recherche par culture cellulaire 

Utiliser le kit avec milieu de transport M4RT à l’aide des 2 écouvillons, gratter la lésion au niveau du 

plancher. 

Recherche de la lymphogranulomatose vénérienne (LGV) ou maladie Nicolas-favre 

Due aux sérovars L1, L2, L3 de Chlamydiae trachomatis, technique par biologie moléculaire. 

Cf culture cellulaire/ HSV 

Recherche de Trichomonas vaginalis 

Écoulement, prélèvement endo-urétral (+1 er jet urinaire). 

Laboratoire avec microscope : réaliser rapidement un état frais pour visualiser les parasites 

mobiles. 

Sinon : Réaliser immédiatement 2 étalements sur 2 lames porte-objet pour coloration au M.G.G. 

TRANSMISSION 


Urines 1 er jet urinaire pour recherche de C.trachomatis et N.gonorrhoeae par biologie 

moléculaire: au maximum 24 heures entre 2°C et 30°C. Après transfert dans le milieu pour 

PCR Cobas®, l’échantillon est stable pendant 12 mois entre 2°C et 30°C. 



Milieu de transport mycoplasmes : température ambiante, dans la journée. 

REFERENCES 


BACTERIOLOGIE MEDICALE, Techniques usuelles. 

Sommaire


PRELEVEMENT 

Prélèvement pharyngé (selon IT-MU-PVT 0024) 

PRELEVEURS 

Biologistes – Infirmières Diplômées d’État. 

MATERIEL 


Gants 

Abaisse langue 

Écouvillons avec milieu de transport. 

Lame porte-objet 


Avant tout traitement local ou général (antiseptique ou antibiotique) ou après un arrêt du traitement 

d’au moins 48 heures. 

De préférence à jeun. 

Noter les renseignements sur la « Fiche de renseignements - Microbiologie - prélèvement ORL » 



Utiliser un abaisse langue pour dégager le pharynx et éviter tout contact salivaire. 

Émission du son « A » par le patient 

ANGINE ROUGE OU ERYTHEMATO-PULTACEE 

Repérer les zones inflammatoires ou points blancs 

Écouvillonner la ou les amygdales atteintes (ou la base des piliers du voile du palais en l’absence 

d’amygdale) à l’aide de 2 écouvillons avec milieu de transport. 

ANGINE PSEUDO MEMBRANEUSE 

Soulever le bord de la fausse membrane et écouvillonner en dessous ou en périphérie. 

ANGINE ULCERONECROTIQUE (Angine de Vincent) 

A l’aide d’un écouvillon, prélever au niveau de l’ulcération, faire 1 étalement sur 2 lames porte- 

objet, les placer dans un porte- lame. 

Sommaire


PRELEVEMENT 

Prélèvement pharyngé (selon IT-MU-PVT 0024) 

Recherche de Candida sp 

Prélever avec un écouvillon au niveau de la langue, du palais et de la face interne des joues. 

Recherche deE N.gonorrhoeae 

Écouvillonner les amygdales avec un écouvillon avec milieu de transport. 

Autres ulcérations voir : « Prélèvements uro-génitaux chez l'homme» 

TRANSMISSION 


Lame porte-objet dans porte-lame : température ambiante, dans la journée. 

Kit M4RT : température ambiante, dans la journée. 

REFERENCES 



Sommaire


PRELEVEMENT 

Prélèvement nasal (selon IT-MU-PVT 0019) 

PRELEVEURS 

Biologistes -Infirmières Diplômées d’État. 

MATERIEL 


Gants 

2 Écouvillons stériles avec milieu de transport 

Kit M4RT+ écouvillons (Kit Chlamydiae trachomatis) 


Avant toute antibiothérapie ou après un arrêt de 48 heures. 

Noter les renseignements sur la « Fiche de renseignements - Microbiologie - prélèvement ORL » 



Recherche de Staphylococcus aureus en particulier SARM (bilan préopératoire, personnel 

de cuisine, bilan de staphylococcie) ou recherche de bactéries multirésistantes 

Écouvillonner les deux fosses nasales antérieures avec le même écouvillon. 

Diagnostic d’une sinusite aigüe/chronique 

Prélever la ou les fosse(s) nasale(s) atteintes, tiers inférieur, avec 2 écouvillons 

Préciser si sinusite récidivante. 

Recherche de Bordetella pertussis (agent de la Coqueluche) par biologie moléculaire 

Écouvillonnage endonasal 

Maintenir la tête du patient inclinée en arrière. Insérer 

l’écouvillon dans la narine, et le pousser délicatement 

le plus loin possible, parallèlement au palais. Imprimer 

un léger mouvement rotatif en retirant lentement 

l’écouvillon. Procéder de la même façon pour l’autre 

narine avec le même écouvillon (larmoiements 

possibles). 

Sommaire


PRELEVEMENT 

Prélèvement nasal (selon IT-MU-PVT 0019) 

Éliminer une partie du milieu de transport afin d’avoir environ 1 mL de liquide. L’écouvillon est 

ensuite plongé dans le milieu. 

Remarque : Le patient pourra s’auto prélever après lui avoir indiqué les modalités ci dessus. 

TRANSMISSION 

Acheminer à température ambiante dans un délai maximum de transport de 12 heures. 

Les écouvillons pour recherche de coqueluche peuvent être conservés à 4°C (1 semaine). 

REFERENCES 


Sommaire


PRELEVEMENT 

Prélèvement auriculaire (selon IT-MU-PVT 0018) 

PRELEVEURS 

Biologistes - Infirmières Diplômées d’État. 

MATERIEL 


Gants 

Seringue avec bouchon 

2 écouvillons stériles avec milieu de transport 




Noter les renseignements cliniques sur la Fiche de renseignements - Microbiologie - prélèvement 

ORL. 



OTITE MOYENNE AIGUE (ou récidivante) 

Aspirer le pus auriculaire par une seringue stérile, chasser l’air puis boucher stérilement celle-ci, ou 

pratiquer un double écouvillonnage. 

Le pus de paracentèse est prélevé par un médecin spécialiste type O.R.L à l’aide d’une seringue 

sans bulle bouchée stérilement et hermétiquement. 

OTITE EXTERNE 

Éliminer débris et croûtes, recueillir les sérosités à l’aide d’un double écouvillonnage. 

Recherche mycologique explicite (Candida, Aspergillus,…) 

Recueillir les squames et débris dans un pot stérile, ou réaliser un prélèvement avec un écouvillon 

au préalable humidifié avec du sérum physiologique stérile. 

TRANSMISSION 

Acheminer à température ambiante dans un délai maximum de transport de 12 heures. 

REFERENCES 


Sommaire


PRELEVEMENT 

Prélèvement oculaire (selon IT-MU-PVT 0025) 

PRELEVEURS 


MATERIEL 


Gants 

Écouvillons avec milieu de transport 

Pince à épiler 




Kit Cobas®PCR female Swab Sample Kit (Kit Chlamydiae trachomatis) 

Kit M4RT pour la recherche de virus en culture cellulaire 


Avant tout traitement local ou général (antiseptique ou antibiotique) ou après un arrêt du traitement 

d’au moins 48 heures ; et avant toute toilette oculaire, en dehors de l’utilisation de produits de 

maquillage. 

Si port de lentilles, ramener le produit de nettoyage + étuis avec les lentilles pour analyse. 

Pour toute suspicion de kératite, ou suspicion de lésion herpétique, orienter le patient vers 

un ophtalmologiste ou les urgences ophtalmologiques. 




Noter les renseignements sur la « Fiche de renseignements - Microbiologie - prélèvement 

oculaire ». 



CONJONCTIVITE 

A l’aide de 2 écouvillons, recueillir les sécrétions par frottis conjonctival et le pus, ou la sérosité au 

niveau du cul de sac lacrymal, les replacer dans le milieu de transport. 

Sommaire


PRELEVEMENT 

Prélèvement oculaire (selon IT-MU-PVT 0025) 

Si recherche de C.trachomatis : grattage doux conjonctival par 4 allers –retours (paupière inférieure 

et paupière supérieure après retournement). Puis mettre les écouvillons dans le milieu du 

Cobas®PCR . 

Si trachome : retourner la paupière supérieure, avec les 2 écouvillons, faire un grattage pour 

recueillir des cellules épithéliales et les décharger dans un milieu du kit Cobas®PCR. 

BLEPHARITE (paupières) 

Prélever croûtes palpébrales et prélever 8 à 10 cils à la pince à épiler par côté. Mettre les cils dans 

un flacon stérile avec 2 à 3 gouttes d’eau physiologique stérile pour éviter toute dessiccation. 

Recherche de Virus par culture : Après un lavage de la conjonctive avec du sérum physiologique, 

gratter le conjonctive avec un écouvillon, et le remettre dans un milieu M4RT. 

TRANSMISSION 



Kit Cobas® PCR : stable entre 2-30°C pendant 90 jours. 

REFERENCES 



Sommaire


PRELEVEMENT 

Plaie, ulcération, lésion ou suppuration (selon IT-MU-PVT 0023) 

PRELEVEURS 


MATERIEL 


Gants 

Écouvillons avec milieu de transport 

Vaccinostyle 


Seringue 






Noter les renseignements sur la «Fiche de renseignements - Microbiologie - prélèvement de 

plaie ». 



Détersion au sérum physiologique de la zone à prélever (et éventuellement désinfection des zones 

proximales). 

Peau saine non suintante 

Prélever 2 échantillons à l’aide d’écouvillons imbibés de sérum physiologique stérile. 

Peau avec lésions cutanées superficielles (impétigo, bulles, folliculite, furoncle...) 

Prélever à l’aide de 2 écouvillons avec milieu de transport en prenant garde de ne pas contaminer 

l’échantillon par des bactéries colonisant les alentours de la lésion. Possibilité de percer les 

vésicules, bulles… avec un vaccinostyle stérile. 

Sommaire


PRELEVEMENT 


Inflammation cutanée : érysipèle, hypodermite. 

A l’aide d’une seringue et d’une fine aiguille, injecter dans la lésion un peu de sérum physiologique 

et ré aspirer le maximum. Aspirer ensuite 1 mL d’eau physiologique dans la seringue pour éviter 

toute dessiccation et boucher stérilement. 

Morsure 

Aspirer le liquide à l’aide d’une seringue et le recueillir comme indiqué supra. A défaut, après 

désinfection des zones proximales, faire 3 écouvillons profonds en milieu de transport. 

Lésions unguéales 

Couper toute la partie de l’ongle atteint avec des ciseaux stériles, jusqu’à la limite des tissus sains. 

Possibilité de prélever des poussières de l’ongle. Placer dans un flacon stérile. S’il existe un 

périonyxis (inflammation du contour de l’ongle), prélever la suppuration grâce à un écouvillon. 

Plaies superficielles (site opératoire) 

Prélever l’écoulement de la cicatrice de préférence par aspiration à la seringue, ou pratiquer un 

écouvillonnage (2 écouvillons). 

Ulcération, escarre, lésions cutanées nécrosées 

Nettoyer la plaie, éliminer les exsudats, débrider les tissus nécrosés, appliquer l’antiseptique 

cutané et laisser sécher. Rincer abondamment à l’eau physiologique stérile. Pratiquer un 

écouvillonnage de la lésion ou cureter le bord actif de la lésion et placer l’échantillon au fond d’un 

tube stérile puis ajouter 3 à 4 gouttes de sérum physiologique ou aspirer à la seringue le liquide 

inflammatoire, avec du sérum physiologique stérile si la quantité de liquide est faible. 

Ulcération avec recherche spécifique 

Voir « Prélèvements uro-génitaux chez l'homme » 

Recherche de tréponèmes, 

Recherche d’Haemophilus ducreyi, 

Recherche d’Herpes simplex virus (HSV), 

Recherche de la lymphogranulomatose vénérienne (LGV) ou maladie Nicolas-favre. 

TRANSMISSION 


Sommaire


PRELEVEMENT 





REFERENCES 



Sommaire


PRELEVEMENT 

Prélèvement d’ongle (selon IT-MU-PVT 0013) 

PRELEVEURS 


MATERIEL 


Gants 


Fraiseuse 

Fraises stériles 

Paire de ciseaux à ongles stérile 

Curette ou grattoir stérile. 

Écouvillon stérile avec milieu de transport (si suintante). 


Aucun antiseptique local dans les 15 jours. 

Aucun antimycosique par voie buccale ou local (vernis ou filmogène) dans les 3 mois. 

Noter les renseignements cliniques ainsi que la localisation précise sur la Fiche renseignement 

mycologique. 



Couper par le bord libre toute la partie d’ongle atteinte le cas échéant (le mettre dans un flacon 

stérile). 

Prélever entre la partie suspecte (jonction zone saine-zone atteinte) à l’aide d’une curette, grattoir 

ou à l’aide d’une fraiseuse, récupérer les fragments dans un flacon stérile. 

En cas de périonyxis, on écouvillonne la région atteinte. 

TRANSMISSION 

Transmettre dans la journée à température ambiante. 

Sommaire


PRELEVEMENT 

Prélèvement d’ongle (selon IT-MU-PVT 0013) 

REFERENCES 

Parasitologie Mycologie, ANOFEL, 7 ème édition 

L’ongle pathologique : apport du laboratoire, RFL 432 Mai 2011. 

Moisissures, dermatophytes, levures, du prélèvement au diagnostic, éditions 

Biomérieux juin 2008 

Sommaire


PRELEVEMENT 

Prélèvement de cheveux ou de poils (selon IT-MU-PVT 0014) 

PRELEVEURS 


MATERIEL 


Gants 


Pince à épiler 

Curette ou grattoir 

Vaccinostyle 

Écouvillon stérile avec milieu de transport (si suintements) 

Lampe de Wood 


Aucun antiseptique local les 15 jours qui précédent. 

Aucun antimycosique par voie buccale dans les 4 semaines. 

Éviter la toilette de la zone à prélever. 

Noter les renseignements cliniques, la localisation précise et éventuellement le résultat de la lampe 

de Wood sur la Fiche de renseignements - Microbiologie - prélèvement Mycologique. 


Mettre des gants pour réaliser le prélèvement 

TEIGNES 

Sur la zone d’alopécie, prélever un dizaine de cheveux à l’aide d’une pince à épiler, privilégier les 

cheveux cassés à proximité du bulbe. 

Gratter la zone d’alopécie du cuir chevelu à l’aide d’une curette ou vaccinostyle. Recueillir cheveux, 

squames et croûtes dans un flacon stérile. En cas de lésions suintantes ou suppurées pratiquer un 

écouvillonnage. 


Se placer dans une salle de prélèvement sans lumière extérieure. 

Allumer et attendre 1 minute pour le chauffage 

Placer à 5-10 cm des lésions. 

Sommaire


PRELEVEMENT 

Prélèvement de cheveux ou de poils (selon IT-MU-PVT 0014) 

Une couleur verte (vive ou foncée) est en faveur d’une fluorescence positive. 

FOLLICULITE 

Prélever poils, duvets à l’aide d’une pince à épiler. Les pustules seront ouvertes à l’aide d’une 

curette ou vaccinostyle, et la zone grattée sera ensuite écouvillonnée à l’aide d’un écouvillon stérile. 

SYCOSIS DE LA BARBE 

Prélever plusieurs poils à l’aide d’une pince à épiler, puis réaliser un écouvillonnage vigoureux des 

zones atteintes. Recueillir des squames en raclant dans un pot stérile. 

TRANSMISSION 


REFERENCES 


Sommaire


PRELEVEMENT 

Prélèvement de peau ou de muqueuse (selon IT-MU-PVT 0015) 

PRELEVEURS 


MATERIEL 


Gants 


Curette ou grattoir 

Vaccinostyle 

Compresses stériles, eau stérile 

Écouvillon stérile avec milieu de transport (si suintements) 

Cellophane adhésive 


Lampe de Wood (le cas échéant) 

 


Aucun antiseptique local dans les 15 jours qui précédent. 


Éviter la toilette de la zone à prélever. 

Noter les renseignements cliniques, la localisation précise et éventuellement le résultat de la lampe 

de Wood sur la Fiche de renseignements - Microbiologie - prélèvement Mycologique. 



LESIONS CUTANEES 

En cas de recherche concomitante de bactéries, les lésions sont nettoyées au préalable avec une 

compresse stérile imbibée d'eau distillée ou de sérum physiologique stérile. 

Gratter à leur périphérie à l’aide d’un grattoir ou d’une curette, en s’attardant sur le bourrelet 

inflammatoire. Si les lésions cutanées sont discrètes et les squames peu abondantes, apposer un 

ruban de cellophane adhésive transparente sur la lésion puis l’appliquer une lame porte objet. 

Pour les intertrigos, gratter pour recueillir des squames dans un flacon stérile. 

Si la lésion est suintante, frotter 2 écouvillons stériles. 

Sommaire


PRELEVEMENT 

Prélèvement de peau ou de muqueuse (selon IT-MU-PVT 0015) 

Pour les lésions vésiculeuses, percer les vésicules au vaccinostyle puis les prélever à l’écouvillon 

stérile. 





Une fluorescence Rouge-corail oriente le diagnostic vers un erythrasma (Corynebacterium 

minutissimum) 

Une fluorescence Jaune paille oriente le diagnostic vers une Malasseziose. 

LESIONS MYCOSIQUES BUCCALES 

Prélever en grattant les lésions à l’aide d’un écouvillon avec milieu de transport. En l’absence de 

lésions typiques, écouvillonner énergiquement la face interne des joues et la face dorsale de la 

langue. 

AUTRES LOCALISATIONS 

Si la lésion est suintante, frotter 2 écouvillons stériles. 

Si squameuse, récupérer les squames en grattant dans un flacon stérile. 

TRANSMISSION 


REFERENCES 


Examen mycologique en dermatologie, Ann Dermatol Venereol, 2005 ; 132 :8S89-104 

Sommaire


PRELEVEMENT 

Recherche de Malassezia (Pityriasis versicolor) (selon IT-MU-PVT 0004) 

PRELEVEURS 

Biologiste médical - Infirmière Diplômée d’État. 

MATERIEL 


Lames porte objet (2) 

1 ruban de cellophane adhésive transparente (scotch). 

Gants. 

Curette ou vaccinostyle 

Pince à épiler si poils ou cheveux 

Flacon ou boite de pétri 

Lampe de Wood (le cas échéant) 



A réaliser avant toute toilette. 

Ne pas appliquer de crème sur la zone à prélever. 

Noter les renseignements cliniques, la localisation précise, l’aspect et la taille des lésions 

(squameuses, érythémateuses, prurigineuses…) éventuellement le résultat de la lampe de Wood 

sur la Fiche de renseignements - Microbiologie - prélèvement Mycologique. 



PEAU GLABRE 

Récupérer le maximum de matériel soit en prélevant les squames au-dessus d’une boite de pétri ou 

flacon (quand lésion très squameuse) 

ou, 

Apposer la cellophane adhésive transparente au niveau de la zone à prélever (habituellement 

squameuses). 

Bien appuyer sur le scotch. 

Décoller et déposer le scotch sur une lame en évitant la formation de bulles ou plis du ruban. 

Faire 2 lames. 

Sommaire


PRELEVEMENT 

Recherche de Malassezia (Pityriasis versicolor) (selon IT-MU-PVT 0004) 

Noter les nom et prénom sur la partie dépolie à l’aide d’un crayon de bois et placer les lames dans 

un porte-lame pour le transport éventuel si non réalisé sur le plateau technique. 

POILS, DUVETS 

Prélever une quinzaine de poils ou duvets dans une boite de pétri ou flacon. 





Une fluorescence Rouge-corail oriente le diagnostic vers un erythrasma (Corynebacterium 

minutissimum) 

Une fluorescence Jaune paille oriente le diagnostic vers une Malasseziose. 

TRANSMISSION 


REFERENCES 

Parasitologie Mycologie, ANOFEL, 7 ème édition. 

Malassezioses, J-M Bastide, EMC Maladies Infectieuses, 8-603-A-10. 

Sommaire


PRELEVEMENT 

Recherche de Sarcoptes ou agent de la gale (selon IT-MU-PVT 0005) 

PRELEVEURS 

Biologiste médical - Infirmière Diplômée d’État. 

MATERIEL 


Gants 

2 lames porte objet 

Lamelle 

Huile à immersion 

Vaccinostyle ou curette 


La gale est une dermatose cosmopolite prurigineuse et contagieuse 



Noter la localisation précise des lésions (souvent localisé au début aux espaces interdigitaux, puis 

s’étend aux poignets, aux coudes, aux aisselles, plis abdominaux…). 

Choisir de préférence un sillon scabieux non surinfecté (lésion sinueuse de 3 à 10mm) , légèrement 

surélevé et se terminant par une vésicule perlée (présence de la femelle). 

Racler la sérosité jusqu’au sang à l’aide d’un vaccinostyle. Le produit de grattage est récupéré dans 

une goutte d’huile à immersion sur une lame porte objet puis recouverte d’une lamelle. 

Mettre les lames dans un porte lame maintenu à l’horizontal pendant le transport. 

TRANSMISSION 


REFERENCES 


Épidémie de gale communautaire, INVS, novembre 2008 

Sommaire


PRELEVEMENT 

Scotch test anal (test de Graham) (selon IT-MU-PVT 0006) 

PRELEVEURS 

Biologistes - Infirmières Diplômées d’État. 

MATERIEL 


2 lames porte objet. 

1 porte-lame. 

1 ruban de cellophane adhésive transparente (scotch). 

Gants 


A réaliser le matin avant toute toilette de la région anale et toute défécation. 



Couvrir le lit d’un drap en papier. 

Demander au patient de se mettre en position de décubitus dorsal ou latéral. 

Apposer la cellophane adhésive transparente au niveau des plis de la marge anale en dépliant si 

possible les plis anaux. 

Bien appuyer sur le scotch. 

Décoller et déposer le scotch sur une lame en évitant la formation de bulles ou plis du ruban. 

Faire 2 lames. 

Noter les nom et prénom sur la partie dépolie à l’aide d’un crayon de bois et placer les lames dans 

un porte-lame pour le transport éventuel si non réalisé sur le plateau technique. 

TRANSMISSION 


REFERENCES 


Atlas de parasitologie, tome III, Helminthes 

Sommaire


PRELEVEMENT 

Sondage vésical (selon IT-MU-PVT 0012) 

PRELEVEURS 

Biologistes – IDE (pour les femmes) 

MATERIEL 


Sonde vésicale à usage unique enfant ou adulte. 

Lingettes désinfectantes. 

Flacon stérile de 125 ml. 

Gants 


Traitement en cours. 



Protéger le lit d’un lystil. 

Installer la patiente en position gynécologique ou le patient en décubitus dorsal. 

Se laver soigneusement les mains. 

Désinfecter soigneusement à l’aide de lingettes : 

o chez la femme : - les grandes lèvres 

- les petites lèvres 

o chez l’homme : - le gland 

- le prépuce 

Introduire la sonde vésicale en ayant au préalable débouché le flacon stérile que l’on maintient 

à l’extrémité de la sonde. 

Laisser couler l’urine directement dans le flacon de 125 ml stérile. 

Retirer la sonde. 

Identifier le flacon. 

TRANSMISSION 

Transmettre le flacon le plus rapidement possible en technique ou le garder au frais 

REFERENCES 

Bonnes pratiques de soins, sondage urétral, European Association of Urology Nurses 

Sommaire


PRELEVEMENT 

Pose d’un urinocol (selon IT-MU-PVT 0016) 

PRELEVEURS 

Biologistes – IDE- Technicien capacitaire 

MATERIEL 


Lingettes désinfectantes 

Urinocol (fille ou garçon) 

Flacon de 125 ml 

Compresses 

Gants 


Noter les renseignements sur la « Fiche de renseignements – Prélèvement urinaire pour ECBU ». 


Mettre des gants 

Protéger le lit ou fauteuil de prélèvement d’un Lystil® ou équivalent. 

Se laver soigneusement les mains. 

Désinfecter soigneusement à l’aide de lingettes : 

o chez le petit garçon : - le gland 

o chez la petite fille : - les grandes lèvres, 

- les petites lèvres, 

- le méat urinaire. 

Sécher avec une compresse. 

Poser l’urinocol en vérifiant l’étanchéité (surtout au niveau du périnée chez la petite fille). 

Attendre la miction (éventuellement faire boire un biberon ou verre d’eau avant la pose). 

Après une miction, décoller l’urinocol. 

Replier le haut de l’urinocol pour le sceller. 

Le déposer dans un flacon de 125 ml stérile. 

Identifier le flacon. 

En l’absence d’une miction après 1 heure, changer l’urinocol. 

TRANSMISSION 

Transmettre le plus rapidement possible en technique ou le garder au frais. 

REFERENCES 


Sommaire


IDENTIFICATION DU PRELEVEMENT 

Prélèvements réalisés au laboratoire 

L’identification primaire est faite à l’aide d’étiquettes codes-barres, par le préleveur au moment du 

prélèvement et comporte : 

le nom et le prénom du patient, 

le nom de jeune-fille, le cas échéant, 

la date de naissance, 

le sexe, 

l’heure de prélèvement, ajoutée par le préleveur si nécessaire (hormonologie, cycle 

glycémique…) 

Pour les groupes sanguins et les RAI, l’identification comporte, en plus des informations ci-dessus, 

systématiquement : 

la date, 

l’heure de prélèvement si les prélèvements sont réalisés le même jour. 

Les étiquettes code-barres suivent la codification suivante : 

C = Citrate (bouchon bleu) 

E = EDTA (bouchon violet) 

H = Héparine (bouchon vert) 

F = Fluorure (bouchon gris) 

L = Liquide 

Sommaire 

S = Sec (bouchon rouge/jaune) 

U = Urine 

V = VS (étiquette en bas) 

Z = tube spécial 

Les autres prélèvements (ECBU, écouvillons, coproculture…) sont identifiés par l’étiquette code 

barre correspondante et comportent les mêmes informations que décrites ci-dessus. 

Les étiquettes sont apposées de manière à 

assurer le contrôle optique de 

l’échantillon : bien droites verticalement, à 

mi-hauteur. 

Exemples 

Seul le tube situé à la droite de l’image est 

correctement étiqueté. 

Les autres tubes présentent les cas ou 

l’étiquette code-barres est incorrectement 

positionnée.




L’identification primaire est faite par le préleveur au moment du prélèvement et doit comporter, 

sauf pour le pré étiquetage : 



le sexe en cas d’ambigüité du prénom, 

l’heure de prélèvement si nécessaire (hormonologie, cycle glycémique…) 

Pour les groupes sanguins et les RAI, l’identification doit comporter, en plus des informations ci- 

dessus, systématiquement : 

la date, 


Les échantillons peuvent être identifiés : 

de façon manuscrite 

à l’aide d’étiquettes de pré étiquetage. 

à l’aide d’étiquettes au nom du patient. 

Lors de l’utilisation d’étiquettes, celles-ci doivent être apposées de manière à assurer le contrôle 

optique de l’échantillon : bien droites verticalement, à mi-hauteur. 

Exemples 

Seul le tube situé à la droite de l’image 

est correctement étiqueté. 

Les autres tubes présentent les cas ou 

l’étiquette code-barres est 

incorrectement positionnée. 

Toute identification non conforme est tracée dans notre système qualité est 

peut aboutir à une demande de confirmation d’identification ou à la non 

réalisation de l’analyse 

Sommaire



Prélèvements réalisés à domicile ou par les laboratoires transmetteurs 

L’identification primaire est faite par le préleveur au moment du prélèvement et doit comporter : 


le nom de jeune-fille, le cas échéant, 


le sexe en cas d’ambigüité du prénom, 

l’heure de prélèvement si nécessaire (hormonologie, cycle glycémique…) 

Pour les groupes sanguins et les RAI, l’identification doit comporter, en plus des informations ci- 

dessus, systématiquement : 

la date, 


Les échantillons peuvent être identifiés : 

de façon manuscrite, 

à l’aide d’étiquettes au nom du patient prélevé sur la Fiche de prélèvement à domicile reçue 

par le patient lors de son dernier bilan, pour les prélèvements à domicile, 

à l’aide d’étiquettes au nom du patient, éditées par le Système Informatique du Laboratoire 

transmetteur. 

Toute identification non conforme est tracée dans notre système qualité est 

peut aboutir à une demande de confirmation d’identification ou à la non 

réalisation de l’analyse 

Sommaire



Fiches de prélèvement à domicile ou de renseignements 

Conformément au décret 2002-660 du 30 avril 2002 relatif aux conditions de transmission de 

prélèvements biologiques aux laboratoires d'analyses de biologie médicale, lorsque le prélèvement 

est effectué par un professionnel de santé, l'ordonnance devra être accompagnée d'une fiche de 

transmission de prélèvement. 

Cette fiche permet la création du dossier patient par le secrétariat et comporte les renseignements 

indispensables à une bonne prise en charge de la demande : il est donc impératif de la compléter 

correctement. 

Trois cas peuvent se présenter : 

Le patient a déjà été prélevé à domicile et a reçu avec son précédent compte-rendu de résultat 

une « Fiche de prélèvement à domicile » comportant son identification. Dans ce cas, le préleveur 

se doit de compléter cette fiche avec les informations suivantes : 

Nom du préleveur 

Date et heure de prélèvement 

Nature du prélèvement 

Modalités de transmission des résultats 

Renseignements cliniques et/ou thérapeutiques 

Le patient n’a jamais été prélevé à domicile ou n’a pas la Fiche de prélèvement à domicile. 

Dans ce cas le préleveur se doit de remplir la Fiche de renseignements présente dans chaque 

boîte de prélèvement sanguin. 

Le prélèvement provient d’un laboratoire transmetteur : celui-ci doit être accompagné d’une 

demande conforme comportant les éléments indispensables à la prise en charge. 

Pour les prélèvements bactériologiques, des documents spécifiques sont remis au patient avec le 

flacon de recueil (ECBU, Compte-d’Addis, ECBC…). 

Sommaire


TRANSMISSION DES PRELEVEMENTS 

Gestion des urgences 

Signalétique des échantillons 

Les prélèvements sont marqués d’une pastille rouge sur le coté du tube, puis placés dans un 

sachet rouge si non réalisés sur site. 

Renseignement de la fiche de prélèvement à domicile ou de renseignements 

La case « Urgent » ou « A téléphoner en urgence » est cochée. 

Transport 

Prélèvements réalisés à domicile 

Les échantillons sont acheminés immédiatement au laboratoire par le préleveur de manière à traiter 

les échantillons et communiquer les résultats le plus rapidement possible. 

La notion d’urgence doit être signalée à l’accueil 


Si le passage du coursier a déjà eu lieu ou excède un délai raisonnable, prévenir le responsable 

logistique au 03.20.40.42.07 pour disposer soit d’un coursier interne, soit d’un prestataire extérieur 

au laboratoire. 

Sommaire



Transport 

Le transport des échantillons est sous la responsabilité du préleveur 

jusqu'à l'arrivée au laboratoire. 

Le transport des échantillons biologiques est régi par : 

Le Guide de Bonne Exécution des Analyses de biologie médicale (GBEA) 

L’arrêté sur le transport des marchandises dangereuses par route (ADR) 

Les échantillons biologiques en vue d'une analyse sont classés dans la catégorie UN 3373 "Matière 

biologique, catégorie B". Ils doivent respecter la règle du triple emballage : 

un récipient primaire étanche, résistant(s) aux chocs et aux charges. 

un emballage secondaire solide, étanche avec matériau absorbant (sauf pour les matières 

solides). 

un emballage extérieur portant la mention "Matière biologique, catégorie B" à côté du losange 

UN3373. 

Le transport doit être réalisé dans des conditions permettant de garantir le respect des conditions 

pré-analytiques définies dans le Référentiel des analyses, l’intégrité des prélèvements, la 

confidentialité des informations et la sécurité du personnel. 

En raison de leur stabilité parfois très limitée, les échantillons doivent être transmis au laboratoire 

aussi rapidement que possible. 

Si des paramètres sensibles à la lumière doivent être déterminés, les échantillons doivent être 

protégés de la lumière pendant le transport et le stockage. 

Des fluctuations extrêmes de la température pendant le transport peuvent avoir un effet négatif. Si 

les températures sont particulièrement élevées, le maintien d’une température stable à l’aide des 

containers isolants est essentiel. 

Il est recommandé de transporter les tubes en position verticale. 

Sommaire



Transport 


Ils sont acheminés : 

par une société de transport en contrat avec le laboratoire Biolille, 

par un coursier du laboratoire, 

par le préleveur si heure du prochain ramassage non compatible avec le degré d’urgence 

ou le respect des conditions pré-analytiques. 

Le ramassage se fait soit : 

selon la planification des tournées prévue par le service logistique, 

ponctuellement en cas d’urgence et/ou à la demande du correspondant faite au service 

logistique. 

Les échantillons et les bons cliniques ainsi que tout document administratif sont placés dans des 

sachets plastiques individuels (un sachet par patient). 

L’ensemble des sachets est placé dans des containers de transport identifiés au nom du laboratoire 

et portant le sigle « Matière biologique UN3373 catégorie B », à la température de consigne 

(température ambiante ou dans la glace). 

Prélèvements réalisés à domicile 

Les échantillons et les demandes d’analyse ainsi que tout document administratif sont placés dans 

des sachets plastiques individuels identifiés au nom du laboratoire (un patient par sachet) ou dans 

des boîtes de prélèvement. 

Les prélèvements sont transportés jusqu’au laboratoire par le préleveur de manière à respecter les 

conditions pré-analytiques requises (durée, température, lumière…). 

En cas d’urgence, les prélèvements sont acheminés le plus rapidement possible au laboratoire. 

Prélèvements réalisés dans les laboratoires transmetteurs 

Ils sont acheminés : 

par une société de transport, 

par un coursier du laboratoire. 

Sommaire



Transport 

Le ramassage se fait soit : 

selon la planification des tournées prévue par le service logistique 

ponctuellement en cas d’urgence et/ou à la demande du correspondant faite au service 

logistique 

Les échantillons et les bons de demande et tout document administratif sont placés dans des 

sachets plastiques individuels. 

Les sachets de transport sont identifiés au nom du laboratoire, en utilisant un code couleur pour le 

respect de la température au cours du transport : 

température ambiante 

(15-30°C) 

SACHETS DE TRANSPORT 

Pour la conservation des prélèvements à 

température réfrigérée 

(2-8°C) 

Sommaire 

température de 

congélation 

Urgences 

Vert Blanc / Transparent Bleu Rouge 

Le coursier du laboratoire ou de la société sous-traitante, effectue la traçabilité du nombre de 

sachets individuels collectés, des particularités de transport et des éventuelles remarques ou 

réclamations sur une feuille de route journalière. 

Les prélèvements sont placés dans des mallettes de transport identifiées au nom du laboratoire ou 

de la société sous traitante, portant le sigle « Matière biologique UN3373 catégorie B », et sont 

transportés à la température de consigne.




Les laboratoires nous transmettant des échantillons doivent, avant acheminement et si nécessaire, 

centrifuger les prélèvements. 

Centrifugation / Décantation 

Le sérum ou le plasma doit être séparé des cellules à l’aide d’un gel séparateur ou par décantation 

immédiatement après la centrifugation. 

Si le sérum ou le plasma n’est pas séparé des cellules, ce processus peut entraîner des 

modifications significatives après 2 à 3 heures seulement. 

Avant centrifugation ou décantation, maintenir les tubes en 

position verticale. La coagulation dans des tubes en position 

verticale permet une meilleure séparation lors de la 

centrifugation, notamment dans le cas de tubes avec gel 

séparateur. 

Échantillons ayant été coagulés en position horizontale et verticale (à droite) 

Sérum 

Si la durée d’attente avant la centrifugation est trop courte et si le 

sang n’a pas pu coaguler entièrement, une post-coagulation peut se 

produire dans le sérum avec formation de fibres de fibrine risquant 

d’obstruer les conduites de l’analyseur. 

Échantillon de sérum centrifugé immédiatement après le prélèvement sanguin. Le 

thrombus de fibrine dans le sérum est visible. 

Plasma 

Les tubes de sérum ne doivent pas être centrifugés dans les 30 minutes 

suivant le prélèvement sanguin. 

Aucune durée d’attente n’est nécessaire pour les échantillons de plasma. 

Sommaire




Paramètres de centrifugation 

Se reporter au Référentiel des analyses en ligne sur notre site internet, pour les particularités. 

Les échantillons doivent ensuite nous être transmis en respectant les conditions pré-analytiques 

préconisées. 

Pour connaître les conditions pré-analytiques (température, durée, obscurité…), se reporter au 

Référentiel des analyses en ligne sur notre site internet. 

Sommaire


RECEPTION DES PRELEVEMENTS 

Critères de conformité 

Norme NF EN ISO 15189 

5.4.5 Les échantillons primaires doivent être traçables jusqu’à un individu identifié, normalement 

au moyen d’une feuille de prescription. Les échantillons primaires qui ne sont pas identifiés 

correctement ne doivent ni être acceptés, ni être traités par le laboratoire. 

Lorsqu’il y a incertitude quant à l’identification de l’échantillon primaire, ou en cas d’instabilité des 

analytes de l’échantillon primaire (par exemple LCR, biopsie, etc.), ou encore dans le cas d’un 

échantillon primaire irremplaçable ou critique, le laboratoire peut choisir de procéder à l’analyse 

dans les meilleurs délais, mais de ne délivrer le résultat qu’après avoir obtenu du médecin 

prescripteur ou de la personne responsable du prélèvement la confirmation qu’il/elle assume la 

responsabilité de l’identification et qu’il/elle fournisse les informations nécessaires, ou l’ensemble. 

Dans ce cas-là, il convient que la signature de la personne attestant l’identification soit enregistrée 

avec la demande ou qu’elle puisse y être rattachée. Si, pour une raison quelconque, cette 

exigence n’est pas respectée, il convient que le nom de la personne responsable soit reporté dans 

le compte rendu des résultats si l’analyse est effectuée. Il convient que les échantillons qui doivent 

être stockés pour analyse ultérieure (par exemple anticorps d’origine virale, métabolites liés à un 

syndrome clinique) soient également identifiables. 

Dans un souci de sécurité et de fiabilité et pour répondre aux exigences de la norme NF EN ISO 

15189, nous pouvons être amenés à : 

Demander une confirmation orale au préleveur 

Tracer la non-conformité sur le compte-rendu de résultats 

Demander une confirmation écrite au préleveur 

Refuser le prélèvement. 

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RECEPTION DES PRELEVEMENTS 

Traitement de la demande 

Afin de traiter au mieux toute demande d’analyse, celle-ci doit comporter : 

Une prescription conforme, 

Les renseignements administratifs nécessaires à la prise en charge tiers-payant, 

La présence d’une Fiche de prélèvement à domicilie, ou Fiche de renseignements, si le 

prélèvement est réalisé par un professionnel de santé, 

Le formulaire « Enregistrement des demandes formulées oralement et des demandes hors 

nomenclature », les cas échéants, 

Les consentements du patient le cas échéant (selon indications présentes dans le Référentiel 

des analyses en ligne sur notre site internet), 

Des prélèvements conformes. 

Sommaire


POST-ANALYTIQUE 

Analyses complémentaires 

Les modalités de conservation des échantillons après analyse sont définies au laboratoire et 

permettent de répondre à la fois aux exigences réglementaires et aux besoins cliniques. 

Suite à la réalisation des analyses et en fonction des résultats obtenus, le prescripteur peut être 

amené à demander l’ajout d’analyses complémentaires pour étayer son diagnostic. 

Dans ce cas, ce dernier doit obligatoirement transmettre une prescription au laboratoire. 

Un nouveau prélèvement du patient peut être évité si les conditions suivantes sont réunies : 

Le tube nécessaire pour la réalisation de l’analyse à ajouter a déjà été prélevé lors du 

précédent prélèvement, 

Le délai entre le premier prélèvement et la demande d’ajout de l’analyse est compatible avec la 

réalisation de l’analyse : les délais figurent dans le Référentiel des analyses en ligne sur notre 

site internet. 

Dans tous les cas, si une analyse complémentaire est demandée ou s’il faut contrôler un 

paramètre, contacter le laboratoire afin de savoir s’il est possible de réaliser l’analyse sur un 

échantillon conservé ou si un nouveau prélèvement doit être réalisé. 

Sommaire



Élimination des déchets 

Les déchets issus des activités de prélèvement entrent dans la catégorie des DASRI (Déchets 

d’Activité de Soins à Risques Infectieux). 

Conformément à la législation en vigueur, l’élimination des déchets à risque infectieux est à la 

charge du préleveur (décret n° 97-1048 du 6 novembre 1997). 

La filière d’élimination des déchets doit être conduite de manière à ne pas compromettre la santé et 

la sécurité des préleveurs, du personnel de collecte, du personnel de laboratoire et à ne pas polluer 

l’environnement. 

Pour leur élimination, les matériels utilisés pour les prélèvements sont classés en deux catégories : 

les matériels piquants, coupants ou tranchants : ils doivent être obligatoirement recueillis dans 

des récipients conformes à la norme NF X 30-500 

les autres matériels qui constituent des déchets d’activités de soins à risque infectieux au sens 

du décret n° 97-1048 doivent être éliminés conformément à la réglementation en vigueur. 

Sommaire




Modalités de transmission des résultats au patient 

Remise en main propre sur présentation de la carte de retrait des résultats. 

Transmission sous enveloppe cachetée portant la mention « Urgent-Confidentiel ». 

Consultation via notre site internet à partir des codes d’accès remis au patient lors de 

l’enregistrement du dossier. 

Transmission par fax après signature d’une décharge par le patient. 

Dans certains cas, les comptes rendus d’analyses seront directement expédiés au médecin 

prescripteur pour certaines analyses (FRT21, tests génétiques, etc…). 

Dans tous les cas, le patient doit être averti que le médecin prescripteur recevra un exemplaire du 

compte rendu des analyses. Si ce dernier ne souhaite pas que le prescripteur les reçoive, le 

mentionner. 

Modalités de transmission des résultats au prescripteur 

Les résultats sont transmis au médecin prescripteur sauf en cas d'opposition du patient. 

Transmission cryptés des résultats via internet (Hprim, apicrypt), 

Transmission sous enveloppe cachetée portant la mention « Urgent-Confidentiel ». 

Consultation du serveur de résultats via notre site internet à partir des codes confidentiels 

communiqués au professionnel 

Transmission par fax après établissement d’une convention de preuves définissant les 

responsabilités du professionnel en terme de respect de la confidentialité des informations 

reçues. 

Communication des résultats par téléphone selon les exigences du contrat. 

Cas particuliers 

Transmission des analyses demandées en urgence : les analyses demandées en urgence par 

le médecin sont traitées selon une procédure spécifique. Les résultats sont communiqués au plus 

vite au prescripteur par téléphone, fax, internet ou HPRIM. 

Transmission des résultats perturbés : lors de l'obtention d'un résultat perturbé, le résultat est 

communiqué au médecin par téléphone, fax, internet ou HPRIM soit directement par le service 

client, soit par le laboratoire concerné. 

Dans tous les cas, des résultats mettant en jeu le pronostic vital doivent être communiqués par 

téléphone et même si ces derniers ont été faxés. 

Sommaire




La transmission des résultats relevant de cas particuliers (médecine du travail, mineurs…) est 

définie au laboratoire et respecte la réglementation en vigueur. 

Délai 

Le délai pour obtenir le compte-rendu d’analyses dépend de la nature des paramètres demandés. 

Pour connaître le délai, se reporter au Référentiel des analyses en ligne sur notre site internet. 

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Manuel de prélèvement - Biolille

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