12.07.2013 Views

RAVAGEURS DES CULTURES AGENTS DE CONTROLE LUTTE ...

RAVAGEURS DES CULTURES AGENTS DE CONTROLE LUTTE ...

RAVAGEURS DES CULTURES AGENTS DE CONTROLE LUTTE ...

SHOW MORE
SHOW LESS

Create successful ePaper yourself

Turn your PDF publications into a flip-book with our unique Google optimized e-Paper software.

UNIVERSITE <strong>DE</strong> PICARDIE JULES VERNE<br />

Licence PVIA- IUP 2<br />

<strong>RAVAGEURS</strong> <strong><strong>DE</strong>S</strong> <strong>CULTURES</strong><br />

<strong>AGENTS</strong> <strong>DE</strong> <strong>CONTROLE</strong><br />

<strong>LUTTE</strong> BIOLOGIQUE ET INTEGREE<br />

P. Giordanengo<br />

Laboratoire de Biologie des Jntomophages<br />

Facultés des Scjen(;<br />

2004


"Nous ne serons jéllllais<br />

capables de nous pr otéger contre<br />

les insectes, si ce n'est au moyen des insectes . n<br />

De Geer (XVlllème siècle)


TABLES <strong><strong>DE</strong>S</strong> MATIERES<br />

INTRODUCTION ....... .......... ................ ............................................................. 5<br />

CHAPITRE 1 SYSTEMATIQUE ET CARACTERES GENERAUX<br />

<strong><strong>DE</strong>S</strong> INVERTEBRES <strong>RAVAGEURS</strong> <strong><strong>DE</strong>S</strong> <strong>CULTURES</strong><br />

A. MOLLUSQUES ... ......... .......... ......... ..... .. ..... .................................. .......... . ......... ....... 6<br />

B. NEMATHELMINTHES<br />

C. ARTHROPO<strong><strong>DE</strong>S</strong><br />

a. Les Arachnides .......... ....... . .......... ..... .. .................. ......... ... .................. ........... ..... 7<br />

b. Les Myriapodes<br />

c. Les Insectes<br />

1. Morphologie<br />

2. Anatomie<br />

3. Reproduction<br />

4. Développement.................................................................................................. 8<br />

CHAPITRE 2 ACTION <strong><strong>DE</strong>S</strong> INSECTES, ACARIENS ET NEMATO<strong><strong>DE</strong>S</strong><br />

SUR LES VEGETAUX SUPERIEURS<br />

A. UTILISATION <strong><strong>DE</strong>S</strong> VEGETAUX PAR LES INVERTEBRES ........... .......................... ............ ..................... 9<br />

B. ACTIONS TROPHIQUES DIRECTES<br />

a. Insectes à pièces buccales broyeuses<br />

1. utilisation des parties vertes<br />

1.1. utilisation des feuilles<br />

1.2. utilisation des tiges<br />

1.3. utilisation des organes reproducteurs (anthophages ) ........................................................ 10<br />

1.4. Utilisation des fruits (carpophages)<br />

1.5. Utilisation des graines (spermatophages )<br />

1. 6. Nuisances dues à ces attaques<br />

2. utilisation des parties ligneuses<br />

3. utilisation des parties souterraines<br />

b. Insectes à pièces buccales dilacératrices .............. . ........................... .... ......................... II<br />

c. Insectes à pièces buccales piqueuses<br />

1. Les piqueurs de phloème<br />

2. Les videurs de cellules<br />

3. Dégâts provoqués ... ............ ............................................. ............................... . .. 12<br />

d. Cas des Nématodes<br />

C. ACTIONS DIRECTES NON TROPH IQUES<br />

D. ACTIONS INDIRECTES TROPHIQUES<br />

ANNEXES .... ... .... .... ...... ................ ..... ........... ................................................. ....... 13<br />

CHAPITRE 3 AUXILIAIRES, <strong>AGENTS</strong> <strong>DE</strong> <strong>CONTROLE</strong><br />

A. PREDATEURS .................................... .......... . ................. ..... . ........ · . . · · · · · · · · · . · · · · · · · · · · · · 26<br />

a. Oiseaux<br />

b. Arachnides<br />

c. Insectes<br />

Table des Matières<br />

2


B. LES PARASITES . . . . . . . . . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 27<br />

a. Nématodes<br />

b. Insectes<br />

C. MALADIES BACTERIENNES , VIRALES ET MyCOSES . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 28<br />

ANNEXES . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 29<br />

CHAPITRE 4 <strong>LUTTE</strong> CHIMIQUE, INSECTICI<strong><strong>DE</strong>S</strong><br />

A. CARACTERISTIQUES RECHERCHEES . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .. .. · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 40<br />

B. MO<strong><strong>DE</strong>S</strong> D'ACTION&<br />

C. FAMILLES D'INSECTICI<strong><strong>DE</strong>S</strong><br />

a. origine Minérale<br />

b. origine végétale<br />

c. Organiques Naturels<br />

d. organiques de Synthèse . . . . . . . . . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . . . . . . . . · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 41<br />

D. INCONVENIENTS D'UNE <strong>LUTTE</strong> CHIMIQUE INCONSI<strong>DE</strong>REE<br />

a. Résidus toxiques<br />

b. Pollution de l'environnement<br />

c. Incidences sur la flore et la faune . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . · . · · · · · · · · · · · · · · · · · · · · 42<br />

ANNEXES ............................................................................................................. 43<br />

CHAPITRE 5 <strong>LUTTE</strong> BIOLOGIQUE<br />

A. <strong>DE</strong>FINITION . . .. . .. . . . . . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . · . . · · · · · · · · · · · 45<br />

B. EMPLOI D'ENTOMOPHAGES<br />

a. utilisation d'agents autochtones<br />

b. Introduction d'agents biotiques étrangers<br />

1. Nécessit<br />

2. Importance d'une étude écologique préalable<br />

3. Mise en oeuvre des recherches écologiques<br />

c. Exemples de succès en lutte biologique<br />

C. <strong>LUTTE</strong> MICROBIOLOGIQUE ............................................................................................ 46<br />

a. Bactéries<br />

b. Rickettsies<br />

c. Protozoaires<br />

d. Virus<br />

e. Champignons<br />

f. Objections a la lutte microbiologique<br />

D. <strong>LUTTE</strong> AUTOCI<strong>DE</strong> ................................................................................................... 47<br />

a. Lâchers de mâles stériles<br />

1. Stérilisation par des agents physiques<br />

2. Stérilisation par des agents chimiques<br />

2.1.Chimiostérilisants<br />

2.2. Différents types de chimiostérilisants<br />

2.3. Emploi des chimiostérilisants .............................................................................. 48<br />

2.4. Inconvénients<br />

3. Stérilisation par translocation chromosomiques ................................................................ 49<br />

4. Autres procédés de stérilisation<br />

b. Lutte génétique<br />

1. Utilisation de caractères génétiques létaux<br />

2. Incompatibilité cytoplasmique<br />

3. Lâchers d'insectes de même espèce mais d'une race non nuisible<br />

4. Lâchers d'insectes porteurs de germes pathogènes<br />

ANNEXES ............................................................................................................. 50<br />

Table des Katières<br />

3


CHAPITRE 6 AUTRES METHO<strong><strong>DE</strong>S</strong> <strong>DE</strong> <strong>LUTTE</strong><br />

A. METHO<strong><strong>DE</strong>S</strong> MECANIQUES.......................................... 58<br />

B. METHO<strong><strong>DE</strong>S</strong> PHYSIQUES<br />

C. METHO<strong><strong>DE</strong>S</strong> PHYSIOLOGIQUES<br />

a. Immunologie ou emploi de variétés résistantes<br />

................................................... .<br />

b. utilisation de porte greffes résistants . . . . . . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . . . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . 59<br />

c. Influence des facteurs écologiques sur la résistance<br />

D. METHO<strong><strong>DE</strong>S</strong> ECOLOGIQUES<br />

a. Utilisation des tropismes<br />

b. Choix et conditionnement du terrain de culture<br />

c. Méthodes culturales<br />

ANNEXES . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 60<br />

CHAPITRE 7 NOUVELLES ORIENTATIONS<br />

<strong>DE</strong> LA <strong>LUTTE</strong> CONTRE LES INSECTES<br />

A. CIBLEES SUR LE COMPORTEMENT <strong><strong>DE</strong>S</strong> <strong>RAVAGEURS</strong> . . . . .. . . . . . . ... . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .. . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 63<br />

a. Répulsifs<br />

b. Antiappétants (Antifeedants)<br />

c. Attractifs<br />

1. Alimentaires<br />

2. Hormonaux<br />

d. Signaux acoustiques . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . ... . . . . .. . . . . . .... . . . . . . . . .. 64<br />

B. CIBLEES SUR LA PHYSIOLOGIE <strong><strong>DE</strong>S</strong> <strong>RAVAGEURS</strong><br />

a. Emploi de biocatalyseurs<br />

1. Hormones juvéniles et régulateurs de croissance<br />

2. Emploi d'hormones et de vitamines . .. . .. . . ... ... . . . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . . .. . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .. . .. 65<br />

b. Elimination de la diapause<br />

c. Induction d'asynchronisme avec l'hôte<br />

ANNEXES . . . . . . . . . . . . . . . . . . .. ... . . . . . . . . . . . . . . . . .. . .. . . . . .... . . . . . . . . . . . . .. . . . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . ..... . . . .. .. . . . . . . . 66<br />

CHAPITRE 8 <strong>LUTTE</strong> INTEGREE, PROTECTION INTEGREE,<br />

PRODUCTION INTEGREE<br />

A. EVOLUTION <strong><strong>DE</strong>S</strong> CONCEPTS ET <strong>DE</strong>FINITIONS . . . . . . . .... . . .... . .. .. . . . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . .. . . . . . . . .. .. . . . . . . . . . . . . . . . . .. . 69<br />

B. PRINCIPES <strong>DE</strong> LA <strong>LUTTE</strong> INTEGREE<br />

a. Prise en compte du contexte éCOlogique<br />

b. Etude de la dynamique des populations de ravageurs .. . . . . .. . . . ... . . . . . . . . . . ... . . . .. .. . . ... . . .. . . . . . . ... . . . . . . . . . 70<br />

c. "Intégration" des procédés de lutte biOlogique à la lutte Chimique<br />

C. REALISATION PRATIQUE<br />

a. Influence de l'environnement sur les populations<br />

b. Dynamique des populations<br />

1. Prognose hivernale<br />

2. Contrôle visuel<br />

3. Piégeage . . . . . . .. . . . .. . . . . . ... . . . . . . .. . . . ... . . . .. . . . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . ... . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 71<br />

c. Seuil économique de tolérance<br />

d. Choix des pesticides<br />

e. Mise en oeuvre de progralllllles<br />

de lutte intégrée<br />

D. EFFICACITE ET RENTABILITE <strong>DE</strong> LA METHO<strong>DE</strong><br />

a. Comment une réduction du nombre et/ou de l'intensité des traitements n'entraîne-t-elle pas de pullulations?<br />

b. Limite de rentabilité des traitements insecticides .............................................................. 72<br />

c. comparaison lutte dirigée / lutte intégrée<br />

ANNEXES . ... . . . . . . .. . . . . . .. .... . . . ... . . ... . . .. . . . . . . ... . . . . . . .. ... . . . . . . . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . .. . . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 73<br />

ANNEXES GENERALES<br />

CLASSIFICATION ET SYSTEMATIQUE SIMPLIFIEES .. . . . . . .. . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . . .. . . . . . . .. ..... .. .. 88<br />

CLE SIMPLIFIEE <strong>DE</strong> <strong>DE</strong>TERMINATION <strong><strong>DE</strong>S</strong> ORDRES D'INSECTES . . . . .. . . . ... . . . . . . . . . . . . . . . . ..... . .. . . . . . . . . . . . . . . . . ... . . .. . . . . 90<br />

BIBLIOGRAPHIE . . . . . . .. . .. ... .. . . . . . . . .. . . . . . . . .. . .. . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .. . . . . . . . . . . . 94<br />

Table des Matières<br />

4


INTRODUCTION<br />

QUELQUES CHIFFRES<br />

Les insectes représentent 55% du nombre d'espèces (animales et végétales) de la plnète.<br />

. .<br />

850.000 espèces ont été décrites; l'estimation du nombre réel d'espèces est d'enViron 5 millions.<br />

En France 35.000 espèces ont été décrites; nombre réel estimé: 80.000<br />

Environ 67.000 espèces limitent la production agricole mondiale.<br />

Dont 9.000 espèces d'insectes et d'acariens.<br />

En Europe 350 espèces d'insectes ravageurs dont 75 recensées en France.<br />

* Tous les ans les pertes de récolte dans le monde sont de :<br />

- 340 millions de tonnes de riz<br />

90 millions de tonnes dues aux insectes<br />

70 millions de tonnes dues aux maladies et aux mauvaises herbes<br />

- 200 millions de tonnes de maïs<br />

26 millions de tonnes dues aux insectes<br />

46 millions de tonnes dues aux maladies et aux mauvaises herbes<br />

- 140 millions de tonnes de blé (soit 3 fois la production française)<br />

7 millions de tonnes dues aux insectes<br />

28 millions de tonnes dues aux maladies et aux mauvaises herbes<br />

* Une menace, le potentiel de reproduction des insectes<br />

Introduction<br />

Un simple couple de mouche domestique peut en 5 ans, dans des conditions optimales de développement et en l'absence de tous ses<br />

antagonistes naturels, engendrer une descendance qui recouvrirait la terre entière d'une couche de 1m50.<br />

Dans les mêmes conditions une femelle de Puceron du chou pourrait donner 156 1022 descendants en 16 générations, chaque femelle donnant<br />

41 jeunes.<br />

t Exemples de dégâts provoqués par les insectes<br />

Les vols du Criquet pélerin couvrent couramment plus de 1000 km2 et sont formés d'environ 40 milliards d'individus qui peuvent<br />

consommer jusqu'à 80.000 tonnes de végétaux par jour.<br />

Aux Pays-Bas les Pucerons causent jusqu'à 20% des pertes de rendement sur céréales.<br />

* Marché phytosanitaire mondial : 22 milliards $ en 1991<br />

herbicides: 44%<br />

insecticides: 29%<br />

fongicides: 21%<br />

5


CHAPITRE 1<br />

SYSTEMATIQUE ET CARACTERES GENERAUX<br />

<strong><strong>DE</strong>S</strong> INVERTEBRES <strong>RAVAGEURS</strong> <strong><strong>DE</strong>S</strong> <strong>CULTURES</strong><br />

--------------......... .<br />

LS . Invertérés se reconnaissent à l'absence de squelette interne, parfois remplacé par un revêtement externe constitué de plaques<br />

ngides artIculées entre elles.<br />

A. MOLLUSQUES<br />

Corps mou recouvert par une coquille<br />

- Limace grise (Deroceras reticulatum), Limace horticole (Arion hortensis)<br />

- l'Escargot des vignes (Helix pomatia), dans le Midi Theba pisana.<br />

B. NEMATHELMINTHES<br />

Vers allongés à section circulaire dont le corps est recouvert d'une cuticule.<br />

Ils vivent tous en milieu aqueux.<br />

Les Nématodes phytophages possèdent tous un stylet leur permettant de percer<br />

Ils sont responsables de dégâts :<br />

- sur les organes aériens : Nématode du fraisier (Aphelenchoides fragariae)<br />

Anguillule du Crhysanthème (Aphelenchoides ritzema-bosi)<br />

Anguillule agent de la Nielle du blé (Anguina tritici)<br />

Systématique Ravaqeurs<br />

- sur le système racinaire : Nématode à kyste de la betterave (Heterodera schachtii)<br />

Nématodes des racines noueuses sur vigne, fruitiers, céréales,,,. (Meloidogyne incognita, M. hapla, M.<br />

naasi)<br />

C. ARTHROPO<strong><strong>DE</strong>S</strong><br />

Cet embranchement (phylum Arthropoda) comprend 4 sous-embranchements (subphyla) actuels et 1 fossile (Trilobites).<br />

- Chélicérates<br />

- Crustacés<br />

- Uniramés<br />

- Pentastomidés<br />

Ces 4 subphy la regroupent 10 classes dont :<br />

- les Arachnides (araignées et acariens) - Chélicérates<br />

- les Myriapodes et les Insectes - Uniramés<br />

Les Arachnides sont caractérisés par la présence de 2 paires d'appendices buccaux : les pédipalpes et les chélicères, et de 4 paires de<br />

pattes.<br />

Ils sont dépourvus d'antennes.<br />

Les Myriapodes portent une paire d'antennes céphaliques et un grand nombre de paires de pattes.<br />

Les Insectes présentent aussi une paire d'antennes, mais seulement 3 paires de pattes articulées sur les segments thoraciques.<br />

6


a. Les Arachnides<br />

Pmi les formes d'Acariens phytophages on reconnaît 3 familles:<br />

tomate)<br />

_ les Eriophyidés de taille microscopique responsables d'Erinoses (Eriophyes vitis sur vigne et Eriophyes piri sur poirier)<br />

- les Tarsonémidés dont Tarsonemus pallidus sur fraisier et autres plantes ormentales.<br />

systéaatique Ravageurs<br />

et d'Acarioses (Phyllocoptes vitis sur vigne et Vasa tes lycopersici sur<br />

_ les Tétranychidés parmis lesquels se trouvent les acariens des arbres fruitiers, Panonychus ulmi, Tetranychus urticae, T.<br />

viennensis.<br />

b. Les Myriapodes<br />

Ce groupe comprend 3 classes d'Arthropodes très différents:<br />

- les Chilopodes essentiellement carnassiers parmi lesquels on trouve les Scolopendres, les Lithobiu5, les Géophiles, • ••<br />

- les Diplopodes caractérisés par la présence de 2 paires de pattes par segment i ce sont les Iules et les Blaniules.<br />

- les Symphyles phytophages dont la Scutigérelle (Scutigerella immaculata) qui consomme les radicelles de diverses cultures.<br />

c. Les Insectes<br />

1. Morphologie<br />

Les différents segments sont rassemblés en 3 parties :<br />

la tête qui portent les pièces buccales et les antennes<br />

le thorax sur lequel s'insèrent les 3 paires de pattes et les 2 paires d'ailes<br />

l'abdomen<br />

L'exosquelette est constitué de plaques rigides articulées entre elles: les sclérites.<br />

pour chaque segment : l tergite dorsal, 2 pleurites latéraux et l sternite ventral.<br />

2. Anatomie<br />

Tube digestif : stomodewn , mesenteron et proctodeum.<br />

Système excréteur : tubes de Malpighi.<br />

Système respiratoire de type trachéen.<br />

Système circulatoire ouvert constitué d'un vaisseau dorsal contractile<br />

Systme nerveux : chaîn 7 nerveuse ventrale présentant l paire de ganglions nerveux au niveau des 3 segments thoraciques et des 8<br />

premIers segments abdomInaux.<br />

Système endocrine interdépendant du système nerveux :<br />

cellules neurosécrétrices de la pars intercerebralis<br />

organes neurohémaux : les corpora cardiaca<br />

glandes endocrines épithéliales : carpara allata et glandes prothoraciques<br />

3. Reproduction<br />

La plupart des espèces d'Insectes sont gonochoriques.<br />

Certaines espèces peuvent se reproduire de façon sporadique ou continue par parthénogenèse.<br />

- parthénogenèse arrhénotoque ne produit que des individus mâles.<br />

- parthénogenèse thélytoque ne produit que des individus femelles.<br />

- parthénogenèse deutérotoque produit des mâles et des femelles.<br />

Quelques rares cas d'hermaphrodisme, fonctionnel ou non, sont relevés.<br />

7


4. Développement<br />

--------------........<br />

- amétaboles : les jeunes sont morphologiquement identiques aux adultes, mises à part taille et maturité sexuelle.<br />

- métaboles : la maturité sexuelle est atteinte au cours d'une mue spéciale: la mue imaginale.<br />

- hérnimétaboles : le passage de la forme juvénile à la forme imaginale ne nécessite qu'une seule mue.<br />

Systématique Ravaqeurs<br />

- holométaboles : les jeunes sont des larves profondément différentes des adultes par leur mode de vie, leur anatomie et leur<br />

physiologie.<br />

A la suite des mues de croissance, une mue préimaginale transforme la larve en nymphe qui se transformera en imago au cours de la<br />

mue imaginale.<br />

Am6t.bolos<br />

Pas do tr"nsrormaUon<br />

Exomplo : ldpl smo<br />

Œul<br />

Siade luvl1i1o<br />

Imngo<br />

116mlm4tobolo.<br />

Tronsrormatlon Incomplbto<br />

EKomplo : Saulerolfo<br />

Œut<br />

Siodo larvolre<br />

Imago<br />

1·lolom6Iobolo.<br />

Trollsformation complbte<br />

Exomple: Papillon<br />

Œu;<br />

,<br />

Slado larvolre<br />

npartilion dos ordros d'insectos selon 10$ cJHt6ronts types de m6tamorphoses :<br />

Colfombolo9<br />

Pro(ouros<br />

Diplourln<br />

Thysanoures<br />

Anoploures<br />

rph6rnbra.<br />

Ubollul ••<br />

Blollos<br />

Manlos<br />

Termitos<br />

Zoroptbras<br />

P'Hlos<br />

Embloptbro.<br />

NOloptllro.<br />

Orthoptbro,<br />

Phasmes<br />

Forliculo.<br />

Psoquos<br />

ThfÎps<br />

lIémlplllro.<br />

Coléoplbros<br />

Slropsiplèras<br />

ly",6I1oPtllro.<br />

N6vroptb,o.<br />

Mécoptèros<br />

Trlchoplères<br />

Papillons<br />

Diptèros<br />

Pue ••<br />

8


CHAPITRE 2<br />

PHYTOPHAGES,<br />

ACTION <strong><strong>DE</strong>S</strong> INSECTES, ACARIENS ET NEMATO<strong><strong>DE</strong>S</strong> SUR LES VEGETAUX<br />

SUPERIEURS<br />

A. UTILISATION <strong><strong>DE</strong>S</strong> VEGETAUX PAR LES INVERTEBRES<br />

Actions directes ou indirectes d'origine trophique sur les plantes.<br />

Actions directes d'origine non trophique.<br />

Régime alimentaire et dégâts occasionnés dépendent des pièces buccales :<br />

- pièces buccales broyeuses : Coléoptères, larves de Lépidoptères, Orthoptères.<br />

- pièces buccales dilacératrices : uniquement les Diptères au stades larvaires.<br />

- pièces buccales piqueuses : Hémiptères Homoptères et Hémiptères Hétéroptères, Thysanoptères, Acariens et Nématodes.<br />

B. ACTIONS TROPHIQUES DIRECTES<br />

Ce sont les plus nombreuses, mais pas nécessairement les plus dangereuses.<br />

a. Insectes à pièces buccales broyeuses<br />

1. utilisation des parties vertes<br />

1.1. Utilisation des feuilles<br />

Destruction totale du limbe foliaire<br />

» Zabre des céréales (Zabrus tenebrioides, Coléoptère Carabidé).<br />

ou partielle (majorité des cas).<br />

En cas de destruction partielle les dégâts observés sont très variables :<br />

- Perforation des feuilles<br />

» Galéruque de l'orme (Galerucella luteola, Coléoptère Chrysomélidé).<br />

- Consommation de l'épiderme de la face inférieure et d'une partie du parenchyme foliaire<br />

» Altise de la Vigne (Haltica lythri, Coléoptère Chrysomélidé).<br />

» Tenthrède du Chataîgner (Caliroa varipes, Hyménoptère Tenthrédinidé).<br />

- Consommation du parenchyme seul due aux Mineuses<br />

» Mineuse marbrée (Phyllonorycter blancardella, Lépidoptère Gracillariidé).<br />

» Mineuse élargie (Stigmella malella, Lépidoptère Nepticulidé).<br />

- Consommation des bourgeons foliaires et des jeunes feuilles<br />

» Noctuelle de la Vigne (sparganothis pilleriana, Lépidoptère Crambidé).<br />

1.2. Utilisation des tiges<br />

» Tordeuse orientale du pêcher (cydia molesta, Lépidoptère Tortricidé).<br />

» Pyrale du maïs (Ostrinia nubilalis, Lépidoptère Crambidé).<br />

Phytophaqes<br />

9


1.3. Utilisation des organes reproducteurs (anthophages)<br />

» Ar;o?ome du pommier (thonol11Us pomorum, Coléoptère CUrculionidé).<br />

» M : ll ethe du coza (Mellgethes aeneus, Coléoptère Nitidulidé).<br />

» Cetolnes (Cetoma sp., Coléoptères Scarabéidés).<br />

1.4. utilisation des fruits (carpophages)<br />

- Insectes Mineurs à l'intérieur des fruits:<br />

» Carpocapse des pommes (Cydia pOl11onella, Lépidoptère Tortricidé).<br />

» Tordeuse orientale du pêcher (Cydia molesta, Lépidoptère Tortricidé).<br />

- Attaques externes des fruits<br />

» Les Tordeuses de la grappe Eudémis et Cachy lis sur Vigne (Lobesia botrana et Eupoecilia ambiguella, Lépidoptères Tortricidés).<br />

» Les chenilles d'Heliothis armigera (Lépidoptère Noctuidé) sur Tomate.<br />

1. 5. utilisation des graines (spermatophages)<br />

» Bruches des Légumineuses (Coléoptères Bruchidés)<br />

Bruchus rutimanus sur fève, B. lentis sur lentille, B. pisorum sur pois, Acanthoscelides obtectus sur haricot.<br />

» Calandres des céréales (sitophilus granarius et S. oryzae, Coléoptères CUrculionidés).<br />

» Teigne indienne de la farine (Plodia interpunctella, Lépidoptère Pyralidé).<br />

1. 6. Nuisances dues à ces attaques<br />

Sur feuilles : diminution de la surface foliaire => diminution photosynthèse et donc affaiblissement plante. La plante affaiblie<br />

peut être attaquée par des ravageurs secondaires.<br />

Sur bourgeons et jeunes pousses: dégâts souvent graves car récolte détruite, formation des nouveaux rameaux difficile.<br />

Sur organes floraux et fruits : récolte détruite, dissémination de la plante compromise.<br />

2. Utilisation des parties ligneuses<br />

- Ecorce<br />

» Grand Charançon des pins (Hy 1 obi us abietis, Coléoptère CUrculionidé) dont les adultes pratiques des morsures alimentaires sur<br />

di verses espèces de résineux.<br />

- Bois vif<br />

» Zeuzère sur pommiers, poiriers, cognaciers, agrumes (Zeuzera pyrina, Lépidoptère cossidé).<br />

» Coléoptères Scol ytidés sur pin : Scolytes des Pins, Ips acuminatus, I. sexdendatus, Tomicus piniperda.<br />

sur Orme: Scolyte moyen, Scolytus l11Ultistriatus.<br />

3. utilisation des parties souterraines<br />

» scutigérelle (Scutigerella immaculata, I!yriapode Symphyle) consommation partielle de racines et radicelles sur très nombreuses<br />

espèces.<br />

» Vers blancs du Hanneton commun et du Hanneton foulon (Melolontha melolontha, Polyphylla tullo, Coléoptères Scarabéidés) sur<br />

racines de cultures maraîchères.<br />

» Taupins (Agriotes sputator, A. lineatus, A. obscurus, Coléoptères Elatéridés) sur racines de cultures maraîchères.<br />

Phytophages<br />

10


. Insectes à pièces buccales dilacératrices<br />

Les larves de Diptères sont munies de crochets dilacérateurs.<br />

Prise alimentaire => lyse des tissus végétaux.<br />

- sur bourgeons<br />

maïs, céréales et Graminées fourragères<br />

» Oscinies (Oscinella pusilla et O. frit, Diptères Bachycères Chloropidés).<br />

- sur feuilles<br />

Diptères Brachycères Agromyzidés à larves mineuses<br />

» Phytomyza ilids sur Houx.<br />

» Agromyza megalopsis, A. intermittens, A. nigrella sur Céréales.<br />

» Liriomyza trifolii (Mineuse américaine) sur + de 120 espèces végétales.<br />

- sur fruits<br />

» Mouche méditerranéenne des fruits (Ceratitis capitata, Dipt. Brachycère Trypetidé).<br />

» Mouche de la Cerise (Rhagoletis cerasi, Dipt. Brachycère Tephritidé).<br />

» Mouche de l'olive (Dacus oleae, Dipt. Brachycère Tephritidé).<br />

» Mouche noire des Figues (Lonchaea aristella, Dipt. Brachycère).<br />

c. Insectes à pièces buccales pigueuses<br />

1. Les piqueurs de phloème<br />

- Cicadelles ; Hémiptères Homoptères ; entre autres les Typhlocibidés :<br />

» Eupteryx aura ta sur pomme de terre.<br />

» Empoasca vitis et Scaphoideus littoralis sur Vigne.<br />

- Psylles ; Hémiptères Homoptères Psyllidés.<br />

» Psy lla piri sur Poirier, P. mali sur Pommier.<br />

- Pucerons et Cochenilles ; Hémiptères Homoptères<br />

- Aphididés.<br />

» Pucerons du maïs : Rhopalosiphum padi et Metopolophium dirhodum.<br />

- Coccidés<br />

» Lepidosaphes beckii, Cochenille des Agrumes.<br />

» Quadraspidiotus perniciosus, Pou de San José sur arbres fruitiers.<br />

» Pericerya purchasi, Cochenille australienne sur Agrumes.<br />

- Aleyrodidés<br />

» Trialeurodes vaporarium sur cultures maraîchères sous serre.<br />

2. Les videurs de cellules<br />

- Acariens ; Arachnides Tetranychidés.<br />

» Eriophyes vitis sur vigne.<br />

» Tetranychus urticae polyphage.<br />

» Eotetranychus carpini polyphage.<br />

- Thrips ; Thysanoptères Thripidés.<br />

» Thrips du lin : Thrips angusticeps et T. linarius.<br />

Phytophages<br />

11


3. Dégâts provoqués<br />

Les dégâts des insectes piqueurs intéressent feuilles, pousses, tiges et racines et se traduisent par :<br />

- soustraction de sève => affaiblissement de la plante.<br />

- 7 xréton de mielat => rûlures . des surfaces végétales et développement de microorganismes :<br />

- InJectIon de salIves tOXIques quI provoquent :<br />

- des stigmonoses avec: des lésions locales autour du point de piqure.<br />

- des galles ou zoodécies.<br />

d. Cas des N éma todes<br />

Sur racines :<br />

» Ty lencborhynchus.<br />

» Pratylenchus.<br />

» Meloidogyne => galles.<br />

» Heterodera => galles.<br />

Sur tiges et bulbes<br />

» Ditylencbus.<br />

Sur feuilles<br />

» Aphelenchoides.<br />

C. ACTIONS DIRECTES NON TROPHIQUES<br />

des lésions étendues pouvant provoquer le dessèchement foliaire.<br />

Les dégâts sont occasionnés par la ponte ou la construction de nids.<br />

- dégâts dûs à la ponte: - Libellules (Odonates) sous l'écorce d'arbres fruitiers => développement de maladies.<br />

- Cigales (Hémiptères Homoptères Cicadidés).<br />

- Cigarier de la vigne (Byctiscus betulae, Coléoptère curculionidé).<br />

- dégâts dûs à la confection de nids :<br />

- Les Mégachiles (Hyménoptères, Apoïdes).<br />

D. ACTIONS INDIRECTES TROPHIQUES<br />

certains Insectes transmettent ou favorisent par leurs lésions le développement d'agents pathogènes :<br />

Virus ---> Mosaïque jaune transmise au Haricot exclusivement par les Pucerons (Apms labae, A. craccivora et Acyrtosiphon<br />

pisum) •<br />

Mycoplasmes<br />

Bactéries<br />

ChaJllpignons<br />

Rickettsies<br />

---> Flavescence dorée transmise à la vigne par une Cicadelle (Scaphoideus littoralis).<br />

---> Maladie du Choux-fleur (Corynebacterium) transmise par Nématodes.<br />

---> Graphiose de l'Orme véhiculée par 3 espèces de scolytes (Scolytus destructor, S. multistriatus, S. pygmaeus).<br />

---> Maladie du Greening transmise au pêcher par des cicadelles.<br />

certains Insectes en s'alimentant aux dépens des fleurs en augmentent la fécondité : pollinisation.<br />

Phytophages<br />

12


QUELQUES INSECTES <strong>RAVAGEURS</strong> <strong><strong>DE</strong>S</strong> <strong>CULTURES</strong> EN FRANCE<br />

ORDRES FAMILLES NOMS <strong>CULTURES</strong><br />

ORl'HOP'l'ERA<br />

S/O ENSlFERA GRYLWfALPIDAE Gryllotalpa gryllotalpa CUlt. Légum.<br />

Courtilière<br />

THYSANOP'l'ERA<br />

S/O TEREBRAB'fIA THRIPIDAE Frankliniella robusta Pois<br />

Thrips du Pois<br />

Thrips angusticeps<br />

Lin et Céréales<br />

Thrips du Lin et des Céréales<br />

Thrips linarius Lin<br />

Thrips du Lin<br />

Thrips tabaci polyphage<br />

Thrips du Tabac<br />

HEHIP'l'ERA<br />

S/O NJCHENORHYNCHA TYPHLOCYBIDAE El1Ipoasca vitis vigne<br />

Cicadelle des grillures<br />

Eupteryx aurata Pomme de T.<br />

Cicadelle<br />

Scaphoideus littoralis vigne<br />

cicadelle<br />

S/O STERNORHYNCHA PSYLLIDAE Psylla l1Iali Pommier<br />

Psylle du Pommier<br />

psylla piri Poirier<br />

Psylle commun du Poirier<br />

ALEYRODIDAE Trialeurodes vaporariul1l Cult. sous serres<br />

Aleurode des serres<br />

APHIDIDAE Acyrtosiphon pisul1l Pois, Haricot, . • •<br />

Puceron vert du Pois<br />

Aphis fabae Fève, Haricot, Betterave, •• •<br />

Puceron noir de la Fève et de la Betterave<br />

Aphis pomi Pommier, Poirier, .. •<br />

Aphis craccivora<br />

Pucerons verts du Pommier<br />

Brevicoryne brassicae Colza, Chou<br />

Puceron cendré du Chou<br />

Dysaphis plantaginea Pommier<br />

Puceron cendré du Pommier<br />

Macrosiphul1l rosae Rosiers en serres<br />

Puceron vert du Rosier<br />

Hetopolophium dirhodul1l Maïs<br />

Rhopalosiphum padi<br />

Pucerons du Maïs<br />

Hyzus persicae Pêcher, Cult. sous serres<br />

Puceron vert du Pêcher<br />

Sitobion avenae Céréales<br />

Puceron des Céréales<br />

PEHPHIGIDAE Eriosoma lanigerum Pommier<br />

Puceron lanigère<br />

Annexes Chapt tre 2<br />

13


PHYLWXERIDAE viteus (Phylloxera) vitifoliae<br />

Phylloxéra<br />

Vigne<br />

DIASPIDIDAE Pseudaulacapsis pentagona Pêcher<br />

Cochenille du Mûrier<br />

Epidiaspis leperii Poirier, Pêcher<br />

Cochenille rouge du poirier<br />

Lepidosaphes beckii Agrumes<br />

Cochenille des Agrumes<br />

Lepidosaphes ulmi Arbres fruitiers<br />

Cochenille virgule du Pommier<br />

Quadraspidiotus perniciosus nR nR ""<br />

Pou de San José<br />

Quadraspidiotus piri n" n" ""<br />

cochenille jaune<br />

Quadraspidiotus ostreaetormis Rn Rn R"<br />

Cochenille ostréiforme<br />

COCCIDAE EulecaniuIIl corni 1111 Rn Rn , Vigne<br />

Cochenille du Cornouillier<br />

EulecaniuIll persicae "" R" 1111 "" ""<br />

Cochenille du Pêcher<br />

Pericerya purchasi Agrumes<br />

Cochenille australienne<br />

Pseudococcus adoniduIll Cult. sous serres<br />

Pseudococcus citri<br />

Cochenilles farineuses<br />

Saissetia oleae Olivier<br />

Cochenille noire de l'Olivier<br />

5/0 HtfEROPlERA PENTATOMIDAE Eurydema spp. Crucifères<br />

Punaises du Chou<br />

COLEOPTERA<br />

5/0 A<strong>DE</strong>PfI}bA CARABIDAE Zabrus tenebrioides Céréales<br />

Zabre des Céréales<br />

S/O POLYPfI}bA SCARABEIDAE Cetonia spp.<br />

Cétoines<br />

Polyphgage<br />

Melolontha melolontha<br />

Hanneton commun<br />

Polyphylla tullo<br />

Hanneton foulon<br />

Popilia japonica<br />

Vers blanc<br />

CUlt. Légum.<br />

"" "" ""<br />

"II "R "II<br />

TENEBRIONIDAE TriboliuIll castaneum Graines stockées<br />

TriboliuIll contusuIIl<br />

Tribolions<br />

NITlDULIDAE Meligethes aeneus<br />

Méligèthe du Colza<br />

Meligethes viridescens<br />

Méligèthe<br />

Colza<br />

CUCUJIDAE Oryzaephilus surinaIllensis Graines stockées<br />

Silvain<br />

BUPRESTIDAE Capnodis tenebrionis Pêcher, Abricotier<br />

Bupreste noir<br />

""<br />

Annexes Chapitre 2<br />

14<br />


ELATERIDAE<br />

CRYPTOPHAGIDAE<br />

BRUCHIDAE<br />

CHRYSOMELIDAE<br />

CURCULIONIDAE<br />

Agriotes lineatus<br />

Agriotes obscurus<br />

Agriotes sputator<br />

Taupins<br />

Atomaria linearis<br />

Atomaire<br />

Acanthoscelides obtectus<br />

Bruche du Haricot<br />

Bruchus lentis<br />

Bruche de la Lentille<br />

Bruchus pisorum<br />

Bruche du Pois<br />

Bruchus rufimanus<br />

Bruche de la Fève<br />

Aphtona euphorbiae<br />

Longitarsus parvulus<br />

Al tises du Lin<br />

Chaectocnema tibialis<br />

Altise de la Betterave<br />

Colaspidema atrum<br />

Négril de la Luzerne<br />

Crioceris asparagi<br />

Crioceris duodecimpunctata<br />

Criocères de l'Asperge<br />

Galerucella luteola<br />

Galéruque de l'Orme<br />

Haltica lythri<br />

Altise de la Vigne<br />

Leptinotarsa decemlineata<br />

Doryphore<br />

Psylliodes chrysocephala<br />

Grosse altise du Colza<br />

Oulema lichenis<br />

Oulema melanopus<br />

Criocères des Céréales<br />

Phyllotreta spp.<br />

Altises des Crucifères<br />

Anthonomus pomorum<br />

Anthonome du Pommier<br />

Calandra granaria<br />

Calandre<br />

curculio elephas<br />

Balanin de la Chataîgne<br />

curculio nucum<br />

Balanin des Noisettes<br />

Ceuthorhynchus assimilis<br />

Charançon des siliques du Colza<br />

Ceuthorhynchus napi<br />

Charançon de la tige du Colza<br />

Byctiscus betulae<br />

Cigarier de la Vigne<br />

Hy lobius abietis<br />

Grand charançon des Pins<br />

Hypera nigrirostris<br />

Hypera punctata<br />

Hypera postica<br />

Hypera variabilis<br />

Phytonomes<br />

Céréales, Betterave, Pomme de T.<br />

Betterave<br />

Haricot<br />

Lentille<br />

Pois<br />

Fève<br />

Lin<br />

Betterave<br />

Luzerne<br />

Asperge<br />

Orme<br />

vigne<br />

Pomme de T.<br />

Colza<br />

Céréales<br />

Crucifères<br />

Pommier<br />

Graines stockées<br />

Chataîgne<br />

Noisetier<br />

Colza<br />

nll<br />

Vigne<br />

Résineux<br />

Trèfle, Légumineuses<br />

nn "" "" nn<br />

Légumineuses<br />

Luzerne, Légumineuses<br />

Annexes Chapitre 2<br />

15


Otiorhynchus suleatus<br />

Fraisier<br />

sitona spp. Légumineuses fourragères<br />

sitones<br />

Sitophilus granarius Graines stockées<br />

sitophilus oryzae<br />

Charançons des grains<br />

APIONIDAE Apion pisi Légumineuses fourragères<br />

Apion des bourgeons<br />

SCOLYTIDAE l ps acuminatus<br />

Ips sexdendatus<br />

Tomicus piniperda<br />

Scolytes des Pins<br />

pin<br />

Scolytus ruguiosus<br />

Xyleborus dispar<br />

Scolytes<br />

Arbres fruitiers<br />

Seoi ytus destructor<br />

Scolyte destructeur<br />

Orme<br />

Solytus muitistriatus<br />

Scolyte moyen<br />

nll<br />

Scolytus pygmaeus<br />

Sco l y te pygmé<br />

1111<br />

HYMENOPTERA<br />

S/O SYIfPHYTA TENTHREDINIDAE Athalia rosae<br />

Tenthrède de la Rave<br />

Crucifères<br />

Caliroa cerasi<br />

Tenthrède limace<br />

Cerisier, poirier<br />

Caliroa varipes<br />

Tenthrède du Chataîgner<br />

chataîgner<br />

Croesus septentrionalis<br />

Tenthrède du Noisettier<br />

Noisettier<br />

Hoplocampa brevis<br />

Hoplocampe du Poirier<br />

Poirier<br />

Hoplocampa flava<br />

Hoplocampe du Prunier<br />

Prunier<br />

Hoplocampa testudinea<br />

Hoplocampe du POIllllier<br />

POIllllier<br />

Janus compressus<br />

Cèphe du Poirier<br />

poirier<br />

Neodiprion hercyniae<br />

Neodiprion serti fer<br />

Lophyres des Pins<br />

pin<br />

LEPIIXJPTERA<br />

S/O GWSSM'A HEPIALIDAE Hepialus humuli Houblon, Chanvre<br />

Korscheitellus Iupulinus Fraisier, Laitue, . •.<br />

Hépiales<br />

YPONOMEUTIDAE Acrolepiopsis assectella<br />

Teigne du Poireau<br />

Poireau<br />

Yponomeuta malinellus<br />

Yponomeute du Pommier<br />

POIllllier<br />

P lutella xy lostella<br />

Teigne des Crucifères<br />

Crucifères<br />

prays oleae<br />

Teigne de l'Olivier<br />

Olivier<br />

Annexes Chapt tre 2<br />

16


LYONETIIDAE Leucoptera malifoliella Rosacées (pommier, Cerisier)<br />

Leucoptère<br />

Leucoptera scitella<br />

Mineuse cerclée<br />

1111 1111 "" lin nn<br />

Lyonetia clerkella<br />

Mineuse sinueuse<br />

1111 11 11 "" 1111 ""<br />

NEPTlCULIDAE Stigmella malella Rosacées (Pommier, cerisier)<br />

Mineuse élargie<br />

GRACILLARIIDAE Lithocolletis cory lifoliella Rosacées (Pommier, Cerisier)<br />

Mineuse plaquée<br />

nn 1111 1111 1111 ""<br />

Phy llonorycter blancardella<br />

Mineuse marbrée<br />

GELECHIIDAE phthorimea operculella Pomme de T.<br />

Teigne de la Pomme de T.<br />

Scrobipalpa ocellatella Betterave<br />

Teigne de la Betterave<br />

COSSIDAE Cossus cossus Arbres fruitiers<br />

Cossus gâte-bois<br />

Parahypopta caestrum Asperge<br />

Chenille à fourreau de l'Asperge<br />

Zeuzera pyrina Pommier, poirier<br />

Zeuzère du poirier<br />

TORTRICIDAE Archips rosana Troène<br />

Tordeuse du Troène<br />

Adoxophyes orana pomacées fruitières<br />

pandemis heparana<br />

Tordeuses de la pelure<br />

Cnephasia pumicana Céréales<br />

Tordeuse des Céréales<br />

Cydia funebrana Prunier<br />

Carpocapse des Prunes<br />

Cydia molesta Pêcher, Poirier<br />

Tordeuse orientale du Pêcher<br />

Cydia nigricana Pois, Lentille<br />

Cydia rusticella<br />

Tordeuses du Pois<br />

Cydia pomonella Pommier, Poirier, Cognassier, ...<br />

Carpocapse des Pommes et des Poires<br />

Eupoecilia ambiguella vigne<br />

Lobesia botrana<br />

Tordeuses de la grappe<br />

Rhyacionia buoliana pin<br />

Tordeuse des pousses du Pin<br />

Tortrix viridana Chêne<br />

Tordeuse verte du Chêne<br />

PYRALIDAE Plodia interpunctella Fruits secs (noix, noisettes, •.. )<br />

Pyrale des fruits secs<br />

CRAMBIDAE ostrinia nubilalis Maïs<br />

Pyrale du Maïs<br />

sparaganothis pilleriana vigne<br />

Noctuelle de la vigne<br />

COLEOPHORIDAE Coleophora laricella Résineux<br />

Coléophore du Mélèze<br />

Annexes Chapitre 2<br />

17


salades<br />

Annexes Chapitre 2<br />

GEOMETRIDAE Operophtera bruma ta Arbres fruitiers et forestiers<br />

Cheimatobie hiémale<br />

LYMANTRIIDAE Lymantria (Porthetria) dispar Arbres fruitiers et forestiers<br />

Bombyx disparate<br />

NOCTUIDAE Agrotis ipsilon Pomme de T., Céréales, Tabac, ...<br />

Noctuelle ipsilon<br />

Agrotis segetum Cul t. Légum., Betterave, Céréales, ...<br />

Noctuelle des moissons<br />

Autographa gamma Betterave, Pomme de T., Céréales, Lin<br />

Noctuelle gamma<br />

cerapteryx graminis Graminées fourragères<br />

Noctuelle des Graminées<br />

Euxoa nigricans Chou, Pomme de T., Haricot, ...<br />

Vers gris<br />

Gortyna xanthenes Artichaut<br />

Noctuelle de l'Artichaut<br />

Heliothis armigera Polyphage<br />

Heliotis virescens<br />

Heliothis zea<br />

Noctuelles<br />

Mamestra brassicae Crucifères, Betterave, Lin, Tabac,<br />

Noctuelle du Chou<br />

Mythimna unipuncta Graminées fourragères<br />

Sesamia nonagrioides Maïs<br />

Sésamies<br />

Tholera decimalis Graminées fourragères<br />

Noctuelle des fourrages<br />

Trichoplusia ni Polyphage<br />

Noctuelle<br />

ARCTIIDAE Arctia caja Cul t. Légum.<br />

Ecaille martre<br />

NOTODONTIDAE Thaumetopoea pityocampa pin<br />

Processionnaire du pin<br />

DIPTERA<br />

S/O NOO'l'OCERA TIPULIDAE Tipula spp. Graminées fourragères<br />

Tipules<br />

CEClDOMYIDAE contarinia lentis<br />

Cécidomyie des fleurs<br />

Lentille<br />

contarinia medicaginis<br />

cécidomyie des fleurs de la Luzerne<br />

Luzerne<br />

contarinia pirivora<br />

Cécidomyie des poirettes<br />

Poirier<br />

Contarinia tritici<br />

Cécidomyie des fleurs de Blé<br />

Blé, Orge, Seigle<br />

Dasineura brassicae<br />

Cécidomyie du Colza<br />

Colza<br />

Dasineura ignora ta<br />

Cécidomyie des bourgeons de la Luzerne<br />

Luzerne<br />

Dasineura piri<br />

Cécidomyie des feuilles du poirier<br />

Poirier<br />

Mayetiola destructor<br />

!louche de Hesse<br />

Céréales<br />

18


5/0 BRACHYCERA TEPHRITIDAE Dacus cucurbitae Concombre<br />

Mouche du Concombre<br />

Dacus oleae olivier<br />

Mouche de l'Olivier<br />

Rhagoletis cerasi Cerisier<br />

Mouche de la Cerise<br />

Lonchaea aristella Figuier<br />

Mouche noire des Figues<br />

TRYPETIDAE Ceratitis capitata<br />

Fruits<br />

Mouche méditerranéenne des fruits<br />

Platyparea poeciloptera Asperge<br />

Mouche de l'Asperge<br />

PSILIDAE Psila rosae Carotte<br />

Mouche de la Carotte<br />

AGROMYZIDAE Agromyza intermittens Céréales<br />

Agromyza megalopsis<br />

Agromyza nigrella<br />

Mineuses des feuilles de Céréales<br />

Liriomyza trifolii polyphage<br />

Mineuse américaine<br />

Napomyza cichorii Endive<br />

Ophiomya pinguis<br />

Mouches de l' Endive<br />

CHWROPIDAE Oscinella frit Céréales<br />

Oscinella pusilla<br />

Oscinies des Céréales<br />

ANTHOMIIDAE Delia coarctata Céréales<br />

Mouche grise des Céréales<br />

Delia platura soja, Asperge, Haricot<br />

Mouche des semis<br />

Delia radicum Chou, Navet<br />

Mouche du Chou<br />

MUSCIDAE Pegomyia betae Betterave, Epinard<br />

Mouche de la Betterave<br />

Delia antiqua Oignon, Echalote, Poireau<br />

Mouche de l'Oignon<br />

Annexes Chapitre 2<br />

19


EllbranchE!llent des KOLLUSQIJES<br />

Classe des GASTEROPO<strong><strong>DE</strong>S</strong><br />

EllbranchE!llent des lŒIfA'mEIJIINTIIES<br />

Classe des NEMATO<strong><strong>DE</strong>S</strong><br />

EllbranchE!llent des AR'ffiROPO<strong><strong>DE</strong>S</strong><br />

Classe des ARACHNI<strong><strong>DE</strong>S</strong><br />

Classe des MYRIAPO<strong><strong>DE</strong>S</strong><br />

QUELQUES INVERTEBRES <strong>RAVAGEURS</strong> <strong><strong>DE</strong>S</strong> <strong>CULTURES</strong><br />

Arion hortensis<br />

Deroceras reticulatulll<br />

Helix polllatia<br />

Theba pisana<br />

Anguina tritici<br />

Aphelenchoides tragariae<br />

Aphelenchoides ritzellla-bosi<br />

Dit Y lenchus sp.<br />

Heterodera schachtii<br />

Meloidogyne incognita<br />

Meloidogyne hapla<br />

Meloidogyne nasH<br />

Eriophyes piri<br />

Eriophyes vitis<br />

Panonychus ulllli<br />

Phyllocoptes vitis<br />

TarsonelIlUs pallidus<br />

Tetranychus urticae<br />

Vasates lycopersici<br />

Tetranychus viennensis<br />

Scutigerella il1ll1laculata<br />

Limace horticole<br />

Limace grise<br />

Escargot des Vignes<br />

Anguillule de la Nielle du Blé<br />

Nématode du Fraisier<br />

Anguillule du Chrysanthème<br />

Nématode à kyste de la Betterave<br />

Nématode des racines noueuses<br />

Phytopte du Poirier<br />

Phytopte de la vigne<br />

Acarien rouge<br />

Phyllocopte de la Vigne<br />

Tarsonème du Fraisier<br />

Tétranyque tisserand<br />

Tétranyque<br />

Scutigérelle<br />

Annexes Chapi tre 2<br />

20


Tab. 1<br />

Tab. 2<br />

. . .... .. ....<br />

Quelques ravageurs importants du blé<br />

Principaux Surface Rendement Quelques ravageurs<br />

pays producteurs (millions ha) (qjha) importants<br />

1 URSS 188 14,9<br />

- Homoptères :<br />

- Aphidides :<br />

Metopolophium dirhodum<br />

2 Etats-Unis 32,8 26 Sitobion avenae<br />

Rhopalosiphum sp.<br />

Myzus persieae<br />

3 Chine 29,2 19,5<br />

- Cicadellides : Empoasea sp.<br />

4 Inde 22,1 16,5<br />

5 Canada 12,2 20,05<br />

6 France 4,63 52,3<br />

7 Turquie 9,4 18,1<br />

- Diptères :<br />

- Cecidomyiides<br />

- Muscides<br />

- Lépidoptères :<br />

- Noctuides:<br />

Loxostege stietiealis<br />

Agrotis ipsilon<br />

Mythimna separata<br />

8 Australie 12 13,6<br />

- Hétéroptères :<br />

- Pentatomides:<br />

Aelia sp.<br />

9 Pakistan 6,91<br />

16,4 Eurygaster integrieeps<br />

10 Grande-Bretagne 1,49 57<br />

Quelques ravageurs importants du soja<br />

- Thysanoptères :<br />

- Thripides: Frankliniella tritiei<br />

Principaux pays Surface Rend e ment Quelques ravageurs<br />

producteurs (millions ha) (qJha) importants<br />

1 Etats-Unis 27<br />

20,5<br />

- Lépidoptères :<br />

- Noctuides: Spodoptera sp.<br />

Raehiplusia nu<br />

2 Brésil 8,5 17,6<br />

Plathypena seabra<br />

Pseudoplusia includens<br />

,<br />

Antiearsia gemmatalis<br />

3 Chine 7,6 10,5<br />

Heliothis sp.<br />

4 Argentine 1,9 20<br />

5 Canada 0,3 22<br />

- Hétéroptères :<br />

-<br />

Pentatomides : Nezara sp.<br />

- Mirides : Lygus lineolaris<br />

-<br />

Thysanoptères :<br />

-<br />

Thripides: Caliothrips phaseoli<br />

6 Inde 0,6 8,3 - Hyménoptères :<br />

- Formicides : Solenopsis invieta<br />

7 Mexique 0,4 18,8 - Coléoptères :<br />

- Chrysomelides : Diabrotiea sp eeiosa<br />

8 Paraguay 0,4 14,9 -<br />

Homoptères :<br />

- Cicadellides : Empoasea kraemeri<br />

9 Indonésie 0,7 8,9<br />

-<br />

Aphidides<br />

10 URSS 0,9 5,8<br />

-<br />

Diptères :<br />

- Anthomyiides : Delia platura<br />

-<br />

Agromyzides : Ophiomyia phaseoli<br />

Annexes Chapitre 2<br />

21


Tab. J Quelques ravageurs importants du maïs<br />

Tab. 4<br />

Principaux pays Surface Rendement Quelques ravageurs<br />

producteurs (millions ha) (qjha) importants<br />

-<br />

1 Etats-Unis 30,2<br />

Lépidoptères :<br />

69<br />

- Pyralides : Ostrinia sp.<br />

- N octuides : Spodoptera fr ugiperda<br />

2 Chine 20,5 30 Heliothis sp.<br />

3 Brésil 11,5 18<br />

4 Mexique 8,1 18<br />

5 Roumanie 3,15 36<br />

6 URSS 3,5 23<br />

7 y ougosla vie 2,3 43<br />

8 France 1,6 58<br />

9 Argentine 3,5 39<br />

10 Inde 5,8 13<br />

Sesamia inferens<br />

- Gelechiides : Sitotroga cerealella<br />

- Coléoptères :<br />

- Chrysomelides : Diabrotica sp.<br />

- Elaterides : Agriotes sp.<br />

-<br />

Homoptères :<br />

- Aphidides :<br />

Rhopalosiphum maïdis<br />

Macrosiphum euphorbiae<br />

Sitobion avenae<br />

Myzus persicae<br />

- Thysanoptères :<br />

- Thripides :<br />

Anaplothrips obscuros<br />

- Nématodes : Heterodera avenae<br />

Ditylenchus dipsaci<br />

Quelques ravageurs importants de la pomme de terre<br />

Principaux pays Surface Rendement Quelques ravageurs<br />

producteurs (millions ha) (qfha) importants<br />

1 URSS 6,89 120<br />

- Nématodes : Globodera sp.<br />

2 Chine 4 125<br />

- Coléoptères :<br />

- Chrysomelides :<br />

3 Pologne 2,22 155 Leptinotarsa decemlineata<br />

4 Etats-Unis 0,50 296<br />

-<br />

-<br />

Elaterides : Agriotes sp.<br />

Scarabaeides : Anomala sp.<br />

5 Inde 0,73 138 - Homoptères :<br />

6 RDA 0,42 178<br />

- Aphidides (vecteur virus)<br />

Myzus persicae<br />

7 RFA 0,25 272 Aphis gossypii<br />

Macrosiphum eupnorbiae<br />

8 Roumanie 0,28 221<br />

- Cicadellides :<br />

Empoasca fa bae<br />

9 France 0,21 306<br />

- Lépidoptères :<br />

10 Grande-Bretagne 0, 19 319 - Noctuides : Agrotis segelum<br />

Annexes Chapitre 2<br />

22


Tab. 5 Quelques ravageurs importants du riz<br />

Principaux pays Surface Rendement Quelques ravageurs<br />

producteurs (millions ha) (qjha) importants<br />

1 Chine 34,23 50,3<br />

-<br />

Homoptères :<br />

- Aphidides : Rhopalosiphum sp.<br />

Gesica sp.<br />

2 Inde 41 22<br />

-<br />

-<br />

Jassides : Nephotettix sp.<br />

Delphacides : Nilaparvata lugens<br />

Laodelphax<br />

3 Indonésie 9, 1 38<br />

striatella<br />

-<br />

Lépidoptères :<br />

4 Bangladesh 10,6 20,5<br />

-<br />

-<br />

Pyralides : Chilo sp.<br />

Noctuides : Mocis latipes<br />

Mythimna sp.<br />

5 Thaïlande 9,4 19,7<br />

Sesamia inferens<br />

Spodoptera frugiperda<br />

6 Japon 2,27 57<br />

7 Birmanie 5,5 26<br />

8 Vietnam 5,9 24,5<br />

9 Philippines 3,3 24,7<br />

10 Brésil 5,11 15,1<br />

- Coléoptères :<br />

- Scarabaeides : Heteronychus<br />

- Chrysomelides<br />

- Curculionides<br />

oryzae<br />

- Diptères :<br />

- Ephydrides : Hydrellia sp.<br />

- Muscides : Atherigona oryzae<br />

- Thysanoptères :<br />

- Thripides : Chloethrips oryzae<br />

- Hétéroptères :<br />

- Pentatomides<br />

Tab. 6 Quelques ravageurs importants de la canne à sucre<br />

Principaux pays Surface Rendement Quelques ravageurs<br />

producteurs (millions ha) (q/ha) importants<br />

1 Brésil 2,80 549<br />

- Nématodes : Hirschmaniella oryzae<br />

2 Inde 2,65 568<br />

-<br />

Homoptères :<br />

- Diaspides : Melanaspis glomerata<br />

3 Cuba 1,4 479<br />

- Jassides : Empoasca ly bica<br />

- Fulgorides<br />

4 URSS J- I<br />

-<br />

-<br />

Delphacides<br />

Cercopides : Mahanarva posticata<br />

5 France (Antilles) 1 1<br />

-<br />

Lépidoptères :<br />

6 Chine 0,7 47 1 - Pyralides : Diatraea saccharalis<br />

Eldana saccharina<br />

7 Etats-Unis 0,30 888 Ostrinia furnacalis<br />

Chilo sp.<br />

8 Australie 0,3 1 812<br />

9 RFA 1 1<br />

- Coléoptères :<br />

- Scarabaeides :<br />

H oplochelus marginalis<br />

10 Mexique 0,54 6<br />

Dermolepida albohirtum<br />

Annexes Chapitre 2<br />

23


Tab. 7<br />

Tab. 8<br />

Principaux pays<br />

producteurs<br />

1 Chine<br />

2 Etats-Unis<br />

3 URSS<br />

4 Inde<br />

5 Pakistan<br />

6 Brésil<br />

7 Turquie<br />

8 Egypte<br />

9 Mexique<br />

10 Soudan<br />

Principaux pays<br />

producteurs<br />

1 Italie<br />

2 France<br />

3 URSS<br />

4 Espagne<br />

5 USA<br />

6 Turquie<br />

7 Argentine<br />

8 Roumanie<br />

9 Grèce<br />

10 y ougosla vie<br />

Quelques ravageurs importants du coton<br />

Production fibres Production graines Quelques ravageurs<br />

(millions tonnes) (millions tonnes) importants<br />

- Lépidoptères :<br />

4,45 j - Noctuides :<br />

Heliothis zea sp.<br />

Trichoplusia ni<br />

2,79 4,3 1 Earias sp.<br />

Spodoptera sp.<br />

- Gelechiides :<br />

2,75 5,70 Pectinophora gossypiella<br />

1,36 /<br />

0,81 j<br />

0,64 j<br />

0,58 0,73<br />

-<br />

Homoptères :<br />

- Aphidides : Aphis sp.<br />

- Aleyrodides : Bemisia tabaci<br />

- Coléoptères :<br />

- Curculionides :<br />

Anthonomus grandis<br />

- Nematodes :<br />

Meloidogyne<br />

- Acariens :<br />

Tetranychides :<br />

0,43 0,70 Tetranychus cinnabarinus - ,-.... .:. .. ,<br />

- Hétéroptères :<br />

0,22 0,35 Pyrrhocorides : Dysdercus<br />

Mirides : Lygus sp.<br />

0,21 j<br />

Quelques ravageurs importants de la vigne<br />

- Orthoptères :<br />

Gryllotalpa gryllotalpa<br />

Surface Rendement Quelques ravageurs<br />

(millions ha) (qjha) importants<br />

1,4 90, 1<br />

1,17 75<br />

1,4 47,9<br />

1,7 30,8<br />

0,3 133,9<br />

- Nématodes : Xiphinema index<br />

(vecteur virus du court noué)<br />

- Homoptères :<br />

- Aphidides : Phylloxera l'iteus sp.<br />

- Cicadellides :<br />

Empoasca l'itis<br />

Scaphoideus littoralis<br />

(vecteur flavescence dorée)<br />

Cicadella l'iridis<br />

0,82 43,9 -<br />

Lépidoptères :<br />

0,32 84,3<br />

- Tortricides :<br />

Lobesia botrana<br />

0,30 58,9<br />

Agyrotaenia sp.<br />

Sparganothis reticulana<br />

0, 18 86,6<br />

Zeuzera pyrina<br />

- Noctuides<br />

0,26 51,1 - Thysanoptères : Thripides<br />

Annexes Chapitre 2<br />

- - - -<br />

24


CHAPITRE 3<br />

AUXILIAIRES, <strong>AGENTS</strong> <strong>DE</strong> <strong>CONTROLE</strong><br />

3 catégories selon leur mode alimentaire :<br />

- les prédateurs<br />

- les parasites<br />

- les parasitoïdes<br />

A. PREDATEURS<br />

a. Oiseaux<br />

En milieu forestier, 2 à 5% des Insectes ravageurs sont la proie des oiseaux.<br />

b. Arachnides<br />

Araignées et Acariens prédateurs d'autres Acariens = acariphages<br />

Araignées qui tissent des toiles ou qui chassent à l'affût.<br />

Acariens<br />

» le Stigmaeidé Zetzellia mali.<br />

» le Phytoséiidé Phytoseiulus persimilis (utilisé en serres contre les Tétranyques tisserands (Tetranychus urticae).<br />

c. Insectes<br />

- Coléoptères<br />

- Coccinellidés : 6% phytophages<br />

65% aphidiphages espèces monovoltines le 4ème stade larvaire consomme 50 à 100 pucerons/jour<br />

10% coccidipahges espèces polyvoltines<br />

1% aleurodiphages<br />

quelques mycophages<br />

Larves et adultes sont prédateurs.<br />

» Propylea quatuordecimpunctata prédatrice du Puceron vert du Pêcher, Myzus persicae.<br />

» Coccinella septempunctata prédatrice du Puceron noir de la Fève, Aphis fabae.<br />

de l'Araignée rouge (Acarien) panonychus ulmi sur Pommier.<br />

- Carabidés , Cantharidés et Staphylinidés<br />

Acti vi té prédatrice des larves et des adultes essentiellement au ni veau du sol : oeufs et larves de Coléoptères , chenilles,<br />

Pucerons, Limaces et Escargots.<br />

» Calosoma sycophanta (Carabidé).<br />

» Cantharis sp. (Cantharidé).<br />

» staphy limus stercorarius (Staphy linidé ) •<br />

- Hémiptères Hétéroptères<br />

Anthocoridés, Miridés et Nabidés<br />

Punaises prédatrices durant tout leur cycle.<br />

Consomment chenilles, Pucerons, Psylles, Thrips, Cicadelles ou Acariens.<br />

» arius vicinus prédateur de l,nAraignée rougen Panonychus ulmi, sur arbres fruitiers.<br />

Quelques autres familles d'Hémiptères Hétéroptères présentent des formes prédatrices .<br />

» Zicrona coerulea (Pentatomidé).<br />

Auxiliaires<br />

26


Tab. 9<br />

Quelques ravageurs importants des fo rêts<br />

Superficie Sup. Sup.<br />

p. 100<br />

Les 10 pays totale feuillus conifères<br />

surface<br />

« les plus riches » (millions (millions (millions<br />

des terres<br />

ha) ha) ha)<br />

Quelques ravageurs<br />

importants<br />

- Lépidoptères :<br />

1 Brésil 572 57 2,4 67,7 - Tortricides :<br />

Choristoneura fumiferana<br />

- Lymantriides :<br />

Lymantria dispar<br />

2 Canada 322 64,4 257,4 34,9 Orgyia pseudotsugata<br />

- Notodontides :<br />

Thaumetopoea pityocampa<br />

- Lasiocampides :<br />

3 Etats-Unis 257 124 133 28,2 Ma/acosoma disstria<br />

Dendro/imus sp.<br />

4 Indonésie 119 118 0,92 65,6<br />

-<br />

Coléoptères :<br />

- Scolytides :<br />

Ip s typographus<br />

Dendroctonus sp.<br />

5 Chine 131 44,3 86,7 14<br />

Ambrosia quadriimpressus<br />

- Curculionides :<br />

Hylobius abietis<br />

H. pinastri<br />

6 Zaïre 118 / / 51<br />

Pissodes strobi<br />

- Cerambycides :<br />

Phoracantha semipunctata<br />

7 Australie 44,7 39,4 5,3 5,9<br />

- Hyménoptères :<br />

- Tenthredinides<br />

- Diprionides (Neodiprion sp.)<br />

8 Soudan 47,83 47,82 0,013 20, 1<br />

- Isoptères :<br />

-:- T errni tides :<br />

Odontotermes fo rmosanus<br />

Macrotermes barneyi<br />

9 Pérou 70,9 70,5 0,37 55,4 Anacanthotermes ochraceus<br />

Psammotermes hybostoma<br />

- Homoptères :<br />

10 Inde 59,3 54,9 4,41 19,9 - Margaroides :<br />

Matsucoccus sp.<br />

Annexes Chapitre 2<br />

25


- Névroptères<br />

Prédateurs à tous les stades.<br />

Larves de Chrysope mandibulées prédatrices de Pucerons, Cochenilles, Aleurodes et Acariens .<br />

» Chrysopa carnea consomme les Pucerons des arbres fruitiers et des cultures légumières.<br />

- Diptères<br />

Les adultes se nourrissent de pollen ou de nectar.<br />

Les larves prédatrices sont surtout efficaces sur les populations de Pucerons en été et en automne.<br />

- Cécidomyidés<br />

» Aphiàoletes aphiàimyza<br />

- syrphidés<br />

» Scava pyrastri.<br />

» Episyrphus bal teatus •<br />

Quelques espèces de Muscidés sont prédatrices durant leur phase adulte seulement.<br />

» Coenosia tigrina.<br />

- Hyménoptères<br />

Les Hyménoptères prédateurs présentent un faible intérêt en lutte biologique.<br />

» Scolia flavitrons (Scoliidé) chasse les larves de Coléoptères.<br />

» Sphex I1Iaxillosus (Sphécidé) chasse les Orthoptères.<br />

» AI1II1Iopmla sabulosa (Sphécidé) chasse les chenilles de Lépidoptères.<br />

B. LES PARASITES<br />

a. Nématodes<br />

Les représentants du genre Neoplactana présentent un intérêt particulier du fait des bactéries pathogènes qu'ils véhiculent.<br />

» Neoplactana glaseri contrôle les populations du Ver blanc Popilia japonica (Coléoptère, Melolonthidé).<br />

b. Insectes<br />

- Diptères Tachinaires (Tachinidés)<br />

Parasites protéliens de larves et d'adultes de Coléoptères et de chenilles.<br />

» wintheI1Iia boheIlIani .<br />

» Discochaeta hyponoIlIeutae sur chenille d'Yponomeute.<br />

- Hyménoptères<br />

Ichneumonoïdes<br />

IChneumonidés ] ---><br />

larves de Lépidoptères et de Coléoptères<br />

Braconidés<br />

Aphidiidés<br />

]<br />

---> larves d' Aphides<br />

Chalcidoïdes<br />

Chalcididés ---> larves d'Homoptères<br />

Eulophidés<br />

Encyrtidés<br />

Aphelinidés<br />

Trichogrammatidés ---> oeufs de Lépidoptères<br />

Proctotrypoïdes<br />

Mymaridés ---) oeufs de Lépidoptères<br />

Auxiliaires<br />

27


Ichneumonoïdes<br />

» Apanteles glomeratus ---) chenilles de piéridés pieris sp ..<br />

» Praon sp. et Aphidius sp. ---) Pucerons .<br />

» Rhyssa persuasoria ---) larves xylophages sur sapin du Sirex géant Urocerus gigas (Hyménoptère siricidé).<br />

Chalcididoïdes<br />

» Aphelinus mali ---) larves du Puceron lanigère Eriosoma lanigerum.<br />

» Trichogramma brassicae ---) oeufs deI a Pyrale du Maïs ostrinia nubilalis.<br />

» Encarsia formosa ---) larves de l'Aleurode des serres Trialeurodes vaporarium.<br />

» Prospaltella sp. ---) Cochenilles diaspines.<br />

Proctotrypoïdes<br />

» Leptacis tritici --) oeufs de la Cécidomyie du Blé contarinia tritici.<br />

C. MALADIES BACTERIENNES, VIRALES ET MYCOSES<br />

Bactéries, Virus et Rickettsies sont responsables de maladies spécifiques de certains ravageurs.<br />

La virose de la Noctuelle du Chou Mamestra brassicae est non pathogène pour la Pyrale du Maïs.<br />

De nombreux champignons microscopiques entomopathogènes sont responsables de mycoses souvent spectaculaires.<br />

En Bretagne, les Entomophtorales anéantissent régulièrement les populations de Pucerons noirs sur féverole et artichaut.<br />

Auxiliaires<br />

28


Fig. 2<br />

ADP<br />

ooya, d. (' + ...<br />

Q<br />

la spore \ ..<br />

découplage de la<br />

... . _ . . :;? ")<br />

... "<br />

..<br />

:<br />

cellule sporogène<br />

. . :,\<br />

on,,," p",to"q'.<br />

hydrolyse alcaline<br />

libération de peptides<br />

PERTURBATION <strong>DE</strong> LA PERMEABILITE MEMBRANAIRE AUX IONS K+<br />

ATP<br />

phosphorylation oxydative<br />

....<br />

mésenteron<br />

stimulation de<br />

l'absorption de glucose<br />

- blocage de la respiration cellulaire<br />

- blocage de la prise alimentaire<br />

- dislocation de l'épithélium intestinal<br />

.1 MORT PAR SEPTlàMIE GENERALISEE 1<br />

augmentation de la<br />

système nerveux<br />

. concentration hémocœlienne ..<br />

de potassium<br />

- Représentation simplifiée du mode d'action de Bacillus thuringiensis chez Bombyx mari<br />

d'après les expériences de Fast (198 1).<br />

Annexes Chapitre J<br />

30


Fig. 3<br />

Fig. 4<br />

./<br />

./<br />

,/<br />

<br />

Foyer<br />

infectieux<br />

"/ "" .--- "' --,<br />

-<br />

// germe<br />

PHASE NON<br />

PARASITAIRE<br />

( Sporulation<br />

'-<br />

Momification<br />

aor Nombre d'insectes/m2<br />

1<br />

40 T<br />

1<br />

25<br />

Mai 1973<br />

du cadavre<br />

Contact<br />

insec<br />

Pénétration<br />

tégumentaire<br />

<br />

-=&:;}<br />

-==:=:=.<br />

<br />

PHASE 69 ,<br />

PARASITAIRE '<br />

® . ' 0<br />

#G3/<br />

Invasion de<br />

l'hémocœle<br />

c>,<br />

o _"®<br />

C:3)<br />

Granulome<br />

fete<br />

- Cycle de développement d'un Hyphomycète entomopathogène.<br />

Application de Beauveria<br />

<br />

Mai 1974. .Mai 1975<br />

1 1<br />

1 1<br />

1 1<br />

1 1<br />

1 1<br />

1 1<br />

1<br />

1 1<br />

1 1<br />

161<br />

1>1<br />

1 1<br />

1 1<br />

'--- -- -l 1<br />

1<br />

1 1<br />

1 1 œufs<br />

o<br />

Barrière<br />

hémocœlienne<br />

__ Evolution population témoin<br />

-4-4- Evolution population traitée<br />

.Mai 1977<br />

- Evolution comparée des niveaux de populations du Hanneton commun dans des<br />

parcelles témoins et des parcelles traitées par application de Beauveria brongniartii (d'après Ferron,<br />

1978).<br />

Annexes Chapitre 3<br />

31


Tab. 10<br />

Agent<br />

EntcmophIges et lcarcphlges commereillisés<br />

Nom ccrrvnerdal<br />

TrichogratrItM tM.idis TR16<br />

Pyratyp<br />

. Encaraia formosa<br />

!<br />

En-Strip<br />

Enpaclc<br />

Bunting BiologicaJ<br />

?<br />

?<br />

?<br />

?<br />

?<br />

?<br />

Aphidoletes aphidimyza ?<br />

Aphex<br />

ApheIinus IbdomitaJis ?<br />

Diglyphus iuM<br />

Hippodamia COiIns ?<br />

PhyttneiuJus persitnilis ?<br />

?<br />

Minex<br />

Spidex<br />

?<br />

Phyto Pack<br />

?<br />

Firme Pays<br />

UNCAA France<br />

BASF Allemagne<br />

Duclos France<br />

Koppert Hollande '<br />

HDRA Sales Lld. GB<br />

Coo1roILld. GB<br />

IPM Lab.fnc. USA<br />

Naturai Pest<br />

Coo1roI LId. USA<br />

Setter Yield Insects eaOada<br />

Beneficiaf Insectary USA<br />

Nature's Control USA<br />

Chr. Hansen's<br />

BioSystems DanemarX<br />

Chr .Hansan's<br />

BioSystems Danemarlt<br />

Kçert Hollande<br />

Duclos Francs<br />

Dudos France<br />

Koppert Hollande<br />

IPM Lab.lnc. USA<br />

BIm1g Biological<br />

Coo1roI LId GB<br />

Koppert Hollande<br />

Biofac lne. USA<br />

B Biologicaf<br />

Contre LId. GB<br />

Setter Y"181d Insects Canada<br />

O"tr .Hansen's<br />

BioSystems OK<br />

?<br />

FoothiD Agric.Res. USA<br />

Appf.Bionomics Lld. Canada<br />

BlEIting Biol.Control Ud.GB<br />

Natur. Pest Control Ud. USA<br />

Better Y" I8ld Insects Canada<br />

Nature's Control USA<br />

Richters Canada<br />

Nature's Control USA<br />

Setter Yield Insects Canada<br />

Beneficiaf Insectary USA<br />

Nature's Control<br />

AppLBionomics Ud.<br />

Rid1ters<br />

Duclos<br />

K<br />

USA<br />

Canada<br />

Canada<br />

France<br />

Hrnlande<br />

Rid1ters Canada<br />

Bunting Biol. Conlr. Ud. GB<br />

Chf.Hansen's<br />

Bio Systems<br />

Nature's Control<br />

IPM Lab.lnc.<br />

Natur. Pest Contr. Lld.<br />

Better Yield Insects<br />

DK<br />

USA<br />

USA<br />

USA<br />

Canada<br />

Cible<br />

du mais<br />

. . " . . ::: .:" :.<br />

T rialeurodes vaporariorum<br />

Pucerons<br />

F ratlfOOie8a<br />

Cochenilles<br />

Pseudoccccides<br />

Pucerons<br />

Acariens<br />

Pseudoccccides<br />

Myzus persicae<br />

Frankliniella occidentalis<br />

Tetranycilus urticae<br />

Cutture<br />

Mais<br />

Annexes Chapitre 3<br />

Serres 1égmI. et horti.<br />

Serres<br />

Tomates sous serre<br />

Tomates sous serre<br />

Concombre<br />

Cultures légtmières et<br />

omementaJes sous<br />

serres<br />

Vergers<br />

JaItlins et serres<br />

CuHures protégées<br />

lég\XT1ières et florales<br />

32


Tab. 11 Nématodes entomopatnogènes commercialisés<br />

Agent Nom almmerciaJ FlITT1e Pays Cible Cultuta<br />

itis Bio-Nem Hl SIAPA Italie Otiomynoius sp.<br />

MeIoIcxItt7a melolontha<br />

Steinemem. feltiH Bio-Nem SI Zeuzara pyri'Ia<br />

EpichoristDdes acsrteHa<br />

Opogona saa:hari<br />

Annexes Chapitre 3<br />

Arbres et fleurs<br />

Steinemema carpocapsae Biosafe-N Biosys USA Otiorhynchus suk:atUs<br />

Biovector Biosys USA Curcuüonides Vergers<br />

Guardian Better Yield Insects Canada<br />

Nématodes, prépamions expérimentales<br />

Steinemema bibionis Nemasys Agric:IJIIuraI<br />

Genelics Camp. GB OtiÔthynaJus sulcatus HorticlJllure, serres<br />

Steinemema g/aseri Sc:arabeijes Plantes omem., gazon<br />

SteitternetM laW/mi Scarabeides Gazon<br />

Steinemema Scapœriscus sp. Gazon<br />

HmI'ortIabditis Groene Vlieg Hollande Otiortrync:hus suJcatus Plantes ornementales<br />

sous serre<br />

? ·B-326N Cl8AlBIOSYS SuissalUSA Vers blancs Gazon<br />

? -B-Z7N<br />

? -B-319N Grytlota.q:Ji1ae Gazon<br />

? -B-25N Blattidas, Diabrotica Mais et maison<br />

Steinemema feltiae SOS Biotech Japon Agrotis sp.<br />

Heterom.bditis sp. Nissan Chem<br />

Op Paper Co. Japon Me/olontha Gazon<br />

Tab. 12 Produits commercialisés à base de BaciUus thuringiensis<br />

Agent Nom alnvnercia/ FIIlTle Pays Cible Culture<br />

IcuTSbJId Bactospeine Ouphar NLD Lépidoptères CultlJras fruitières,<br />

1égt.mi8res. forêts,<br />

mais, denrées.<br />

Biobit NovoNordisk Oanemarlc<br />

QJndor Ecogen USA<br />

t<br />

Cutlass Ecogen USA<br />

Oipel Abbot<br />

USA<br />

Javelin, Oelfin Sandoz Suisse<br />

Larvo B.L e USA<br />

/.AVP (toxine<br />

encapsulée) en USA<br />

Bactucide Italie<br />

Thuricide Sandoz Suisse<br />

Nubilacid Radonja Inde<br />

Beman 8adec USA<br />

QJllapse . Novo OK<br />

Foray<br />

Bactifog<br />

Now-Nordisk<br />

o=S-Hersd1tel<br />

OK<br />

Baturad<br />

R ja Inde<br />

Biodart ICI GB<br />

aiawli Certan<br />

FIorbac<br />

Agree (soud1e recomb.<br />

Sandoz<br />

So/vay/Ouphar<br />

Suisse<br />

. BelgJHoli.<br />

Galleria me/Jone/Ia ruches<br />

.<br />

Itrioni' ,(san diego)<br />

kurstald x aizawaJj<br />

Novodor<br />

Trident<br />

Cilla<br />

Novo<br />

Sandoz<br />

Suisse<br />

OK<br />

Suisse<br />

T richop/usia ni,<br />

PMe/la xyloste/Ia<br />

Coléoptères<br />

Chou, Laitue, Tomale ... 1<br />

Pomme de terre 1<br />

ultures légumières ,<br />

Diferra<br />

Foil (souche<br />

recombinee<br />

Abbott USA<br />

kurstaki x<br />

tenebrionis) Ecogen USA LépidopUQJléopl<br />

M-One Mycogen USA Doryphore ... Pomme de terre<br />

8xotoxine<br />

+ spore<br />

+ cristal Bitoxibacilline<br />

Eksotoxine<br />

Toxobactérine G lavmikrobioprum ex·URSS<br />

33


Tab. 13 Champignons entomopathogènes et nématophages commercialisés<br />

Agent Nom commercial Fum e Pays Cible Culture<br />

.ucMrsonia ./eyroidt!s Aseronija AlI Union Inst. Agr. ex-URSS Aleurodes Citrus<br />

MicrobioJ.<br />

Bauveria basian6 ·Biotrol FBB<br />

-Boverin<br />

·ABG-ô178<br />

NutrilHe Products<br />

GlavrniKro biopMTl<br />

Abbottlabs.<br />

USA<br />

ex-URSS<br />

USA<br />

Leptinotarsa deœmlineata<br />

Cydia{XX1lOfl6/1a<br />

? Chine Dendrotmus sp . . Forêts<br />

Hirsute/l. thompsonii Mycar Abbolt Labs. USA Phy/locoptTUta oIeivora (Ac.) Citrus<br />

Annexes Chapitre 3<br />

Metlrhizium anisopliae -Biotrol FMA<br />

-Metaquino<br />

NtJlrjlite Products<br />

Codecap, lM<br />

USA<br />

Brésil<br />

ahanaIva posticata Canne à sucra<br />

.<br />

-Combio Equilibr. control. biol. Brésil<br />

Vertic/llium /ecanii -Vertalec<br />

-Mycotal<br />

-Verticillin<br />

Koppert<br />

Koppert<br />

?<br />

Pays-Bas<br />

Pays-Bas<br />

ex-URSS, Cuba<br />

Pucerons<br />

Aleurodes<br />

Aleurodes<br />

unures protégées<br />

-Thriptal Bridel Suisse Aleurodes<br />

-MiaoGermin F Chf. Hansen's BioSys. Danemarlc Aleurodes, Thrps<br />

Arthrobotrys irreguJam Nematus .<br />

Tracer' France Meloidogyne Cultures maraichères<br />

et florales<br />

lIyrothecium vemrcana Abbolt Labs. USA<br />

PHeilomyea lu.cinus -Bioact Philippines Némat à kystes Pomme de terre<br />

-Biocon Asialie Technologies<br />

3 types Nem Attack Greensource Inc. USA<br />

Tab. 14 Champignons entomopathogènes et nématophages : préparationI expérimentales<br />

Agent Nom commercial Firme Pays Cible Culture<br />

s.uveria busiana -Dstriny1 Calliope France Ostrinia nooiIaJis Mais<br />

-? Univ .F1orida USA Solenopsis i7vda<br />

Bewveri6 brrJngniMtil Betel Calliope France Hoploche/us is Came à su::I'9<br />

Mmrl!izium misoplilte Bio-l020 Bayer France Otiortrynchus suk:atIJs Plantes ornementales<br />

Roussel/Ecoscience FranceIXX Blattes<br />

DAT F-OO I Dep. primary Ind. Australie Adoryphorus couloni Pâturage<br />

lIetIrlrizium flavoviride<br />

(formul. huileuse) IIBC Grande Bretagne Criquets<br />

Verticillium /ecanii Vertalec Miaobial Resources GB Pucerons Cultures légumières<br />

sous serre<br />

Mycotal Microbial Ressources GB Aleurodes<br />

VertaJec Nove Danemarlc Pucerons<br />

PHCilomyees fumosol'OSll(JS Univ. Aorida/<br />

WR Grace USA Aleurodes Patate douce,<br />

tomate, courge,<br />

Iaitue, coton<br />

ErrtanopMgI nwimaiga Boyce Thompson<br />

Res.lnst. USA Porthetria dispar Chêne<br />

AM:hersoni • • is GB, Pays-Bas Aleurodes, Cochenilles Tomate, concombre<br />

Conidiobo/us obscurus Pucerons<br />

Zoophthora mans Australie Pucerons<br />

Neczygites spp. USA Acariens Mais<br />

Hirsutellll sphIIerospora PseudocccOdes Arbres fruitiers,<br />

plantes ornementales<br />

Erynill rHfOIIphidis GB Aphis (abae Haricots<br />

ErrtanophthOnl grylli Acridiens<br />

Verticillium ch/llTlydosporium Rothamsted GB Nématodes à kystes diverses<br />

34


Tab 15<br />

Virus entomopathogenel qui sont ccmmercialisés OU l'ont été<br />

Agent Nom commercial FlllTle Pays Cible Culture<br />

Annexes Chapitre 3<br />

NPV Heliothil EJcar Sandoz Suisse H.zea<br />

H.virescens Coton,<br />

Tabac, Soja, légumes<br />

Viron H. IMC USA<br />

Biotrol VZH Nubilite USA<br />

NPV Spodopœn Iittoralis Spodoptérine Calliope France S.littoralis Cotonnier<br />

(Homologation demandée)<br />

Viron P. IMC USA<br />

Biotrol VPO Nutrilite Products Inc USA<br />

NPV Lymantria dispar Gypcheck USDA Forest Serv. USA forthetria c1ispar Forêt<br />

Virin ENSh Glavmikro-bioprum ex-URSS<br />

NPV Neodiprion IeI1ifer Neochek-S USDA Forest SerY. USA N.sertifer Forêt<br />

.<br />

Virox-TM OV Lld. GB<br />

Virox Now-Nordisk Danemark<br />

NPV Mamestr2 brassicae Virin-KS Glavmikro-bioprum ex-URSS M. brassicae Légumes. Chou,<br />

Chou-fleurs<br />

Mamestrin Calliope France Spodoptera exigua (Homologation demandée)<br />

GV Cydia pomone/la Madex 3 Biocontrol Ag. Suisse Pommier. Poirier<br />

. pomoneJJa<br />

Granupom Hoedlst Allemagne<br />

Carpovirusine calliope France lAPY)<br />

-Decyde Microgenesis USA<br />

-SAN 406 Sandoz Suisse<br />

GV Agrotis segetum Agrovir ? Danemar1< A.segelTJm Légumes<br />

GV Adozophyes orana Capex 2 BiocaT1rol Suisse A.orana Verger Pommiers Ag.<br />

Tab. 16<br />

Virus entomopathogènes. applications expérimentales<br />

(Uste non exhaustive)<br />

Agent Nom commercial Firme Pays Cible Culture<br />

NPV Autographa<br />

caJifomica ? Boyce Thompson USA Trichoplusia ni Chou<br />

MGS-400-AeNPV Microgenesys USA Lépidoptères Légumes, soja<br />

NPV L ymantria dispar Microgenesys USA Forët<br />

NPV Spodop1er3 exigua Spod-X Crop GeneUnt. USA S.exigua Food crops, floriculture<br />

GV Cydia pomoneJJa Specifie-T-I . Univ.Calif. USA C.pomonella Pommiers, Poiriers,<br />

oisettier, Prunier<br />

Cyd-X Crops GeneUnt. USA<br />

NPV Agrotis $po Japon Agrotis sp. Asperge, Fraisier, Soja<br />

NPV Orgyia<br />

pseudo-tsugata TM Biocontrol 1 USA .pseudorsugata Forêt<br />

Virtuss Can. For. SerY. Canada<br />

NPV Trichoplusia ni Gusano Crop Genet. Int. USA T.ni Chou<br />

35


AI<strong>DE</strong> MEMOIRE<br />

POUR LA <strong>DE</strong>TERMINATION <strong><strong>DE</strong>S</strong> GRANDS GROUPES<br />

p. 37<br />

p. 38<br />

p. 39<br />

D'INSECTES ENTOMOPHAGES<br />

l - HETEROPTERES<br />

II - NEVROPTERES<br />

III - COLEOPTERES<br />

IV - HYMENOPTERES<br />

V - DIPTERES<br />

Annexes Chapitre 3<br />

36


...<br />

il<br />

....<br />

i<br />

e<br />

<br />

IV - HYMÉNOPTÈRES<br />

HYMÉNOPTÈRES ADULTES<br />

1<br />

1<br />

Thorax soudé apparemment Abdomen • pédoncuté •<br />

sur toute sa largeur<br />

il l'abdomen<br />

1<br />

1<br />

Aulres Hyménoplères<br />

Apocriles ou Pétiolés<br />

(Symphites ou Tenlhrédoïdes)<br />

Nervation de l'aile antérieure<br />

complète<br />

(Aculéates)<br />

!<br />

Antennes<br />

de plus de t 5 articles<br />

ou taille<br />

inférieure il 2 mm<br />

t<br />

1<br />

Antennes<br />

de 12 ou 13 articles<br />

Taille<br />

"'" j"'"'<br />

Autres Hyménoptères Autres Hyménoptères<br />

parasites<br />

Une seule cellule discoïdo-cubitale<br />

Tiois cellules<br />

1<br />

Nervation de l'aile antérieure<br />

plus ou moins réduite<br />

(Térébrants)<br />

1<br />

! 1<br />

Nervation Nervation<br />

de l'aile antérieure de l'aile antérieure<br />

présentant ne présentant pas<br />

les caracteristiques les caractéristiques<br />

ci·dessous ci-contre<br />

<br />

Aulres Hyménoptères<br />

parasilas<br />

Deux cellules<br />

Une seule nervure<br />

:o<br />

T T t<br />

Ichneumonida Braconide ___ Chalcidoïde<br />

ou Chalcidien<br />

(Ex . . Trichomm. enecator) (Ex. : Ascogaster quadridentatus)<br />

-1<br />

i!<br />

1<br />

1<br />

l<br />

(Ex . . Trichogramma<br />

evanescens)<br />

1<br />

DIPTÈRES ADULTES<br />

1-- ------<br />

La nervure médiane de l'aile presenle<br />

l'une ou l'autre des caractéristiques ci-dessous<br />

1<br />

Nervure médiane présentanl<br />

"'<br />

1<br />

r - --1<br />

Cuitlerons alaires<br />

bien développés cachanl<br />

les balanciers<br />

Allure • ébouriffée · •<br />

T<br />

Tachinaire<br />

(Ex. : Eumea westermannr)<br />

Diplères ne présenlalll pas<br />

les caraClériSlirues ci-conlre<br />

Autres Diplères<br />

1<br />

v - DIPTÈRES<br />

La nervure médiane ne présente pas<br />

les caractenstiques ci-conlre<br />

1<br />

Aulres Diplères<br />

Sranche de la médiane présentant<br />

un coude, Présence d'une fausse<br />

nervure longitudinale (vena spuria)<br />

'<br />

<br />

T êle aussi large que le Ihorax<br />

Ailes grandes<br />

Abdomen avec motifs noirs<br />

et jaunes<br />

T<br />

Syrphe<br />

(Ex. : Eprstrophe balteata)<br />

.. Contrairement aux Muscides (Mouches domestiques) donl l'aUure est moins .. ébouriffée '",<br />

0'\<br />

("")


CHAPITRE 4<br />

<strong>LUTTE</strong> CHIMIQUE, INSECTICI<strong><strong>DE</strong>S</strong><br />

A. CARACTERISTIQUES RECHERCHEES<br />

- toxicité<br />

- spécificité vis-à-vis des ravageurs<br />

- rémanence<br />

- non phytotoxici té (ou phytotoxici té pour les herbicides)<br />

- qualités physiques telles que miscibilité, mouillabilité et adhérence<br />

- innocuité pour l'homme<br />

B. MO<strong><strong>DE</strong>S</strong> D'ACTION<br />

Insecticides de contact :<br />

- pénétration à travers la cuticule<br />

- ingestion<br />

Insecticides systémiques (passage dans la sève du végétal) :<br />

- ingestion<br />

ovicides :<br />

- pénétration au travers du chorion<br />

Fumigants (insecticides à haut pouvoir volatil) :<br />

- par inhalation<br />

C. FAMILLES D'INSECTICI<strong><strong>DE</strong>S</strong><br />

a. Origine Minérale<br />

Dérivés de l'arsenic, du fluor du phosphore du soufre.<br />

acéto-arsénite de cuivre ---) Doryphore<br />

fluorure, fluorosilicate de sodium ---) Cochenilles<br />

b. Origine végétale<br />

Peu rémanents, peu toxiques pour l'homme sauf nicotine<br />

Alcaloïdes (Nicotine) ---> Pucerons<br />

Pyréthroïdes (extraits de Chrysantemum cinerariaefolium) ---) peu toxiques pour insectes<br />

Roténoides (Roténone extraite de racines de Papilionacées tropicales) ---) Pucerons verts (toxique pour les poissons)<br />

Huile d'arachide en émulsion (Aflatoxine dans les graines d'arachide) ---> Pucerons lanigères<br />

c. organiques naturels<br />

Carbolineums (distillats de goudron de houille) très toxiques ---> traitements d'hiver ovicides<br />

Dérivés du Pétrole utilisés en émulsion :<br />

huiles blanches<br />

huiles jaunes<br />

Insecticides<br />

40


d. organiques de synthèse<br />

organochlorés<br />

- DDT (Dichloro Diphényl Trichloroéthane).<br />

Très stable, grande rémanence, bon marché, action par contact sur les arthropodes, mais liposoluble ;> résidus dans le lait.<br />

Interdit par l'O.M.S.<br />

- DDD (Dichloro Diphényl Dichloroéthane).<br />

utilisé contre les parasites du bétail.<br />

- HCH (HexaChloro cycloHexane).<br />

Plusieurs isomères dont le Lindane (1945).<br />

C'est le mieux toléré des organochlorés, excellent fumigant, rémanence dans le sol : 3 ans.<br />

- Dérivés de l'Hexachloro cyclopentane diène (Aldrine, Dieldrine)<br />

Toxicité aiguë, grande rémanence.<br />

La plupart sont interdits depuis 1973.<br />

Restent autorisés Endosulfan, Toxaphène.<br />

organophosphorés (dérivés de l'acide orthophosphorique).<br />

Insecticides de contact, d'ingestion, ou agissent par fumigation.<br />

Quelques-uns sont systémiques.<br />

- parathion (Thiophosphate de diéthyle).<br />

Très toxique (insectes, acariens et aussi homme).<br />

Oléopréparation ---> Cochenilles.<br />

Haut pouvoir de pénétration ---> mineuses<br />

- parathion méthyle : moins toxique, plus utilisé ---> Carpocapse et Pucerons, insectes du sol et Nématodes.<br />

CarbaJIates<br />

Propriétés insecticides de contact, nématicides, herbicides et fongicides.<br />

Pratiquement inoffensif pour poissons (rare)<br />

organosoufrés : sulfones et sulfonates ---> acaricides<br />

Dérivés nitrés : souvent phytotoxiques ---> acaricides<br />

FuDigants DD : dichloropropane et dichloropropène ---> nématicides<br />

D. INCONVENIENTS D'UNE <strong>LUTTE</strong> CHIMIQUE INCONSI<strong>DE</strong>REE<br />

a. Résidus toxiques<br />

ex. : Organochlorés grande rémanence => retrouvés dans les sols<br />

39% de la dose initiale de DDT utilisée présente dans le sol 17 ans après son épandage<br />

sol ---> luzerne ---> vache ---> lait<br />

Concentration des résidus au fil de la chaîne alimentaire<br />

Effets à long terme : cancérigènes, mutagènes, • • •<br />

b. Pollution de l'environnement<br />

- sols (cf § précédent)<br />

- eaux douces<br />

Insecticides<br />

41


c. Incidences sur la flore et la faune<br />

- modification des couverts végétaux (résidus d'herbicides).<br />

- destruction d'une partie de l'avifaune.<br />

- destruction des entomophages.<br />

- induction de pullulations de phytophages.<br />

- apparition de caractères de résistance.<br />

transmission génétique de ces caractères de résistance.<br />

rnsecticides<br />

42


Tab. 17<br />

Fiq. 5<br />

Tab. 18<br />

- Concentration des résidus d'insecticides organochlorés au sein des chaînes . alimenaire , s·1<br />

Exemple du lac Michigan aux Etats-Unis. La concentration finale est donc 374 000 fOIs plus elevee :<br />

Sédiments (vases)<br />

Corps des Invertébrés<br />

Poissons qui s'en nourrissent<br />

Oiseaux (mouettes)<br />

Nombre d'espèces<br />

d'insectes résistantes<br />

600<br />

qu'au début de la chaîne. :<br />

500<br />

400 I X<br />

X<br />

200f x<br />

300<br />

100<br />

T /<br />

/<br />

X 1<br />

x<br />

1 1 1 1<br />

I 1<br />

Concentration en DDT<br />

(en ppm)<br />

0,0085<br />

0,4 1<br />

3 à 8<br />

1920 1930 1940 1950 1960 1970 1980 1990<br />

- Evolution du nombre d'espèces d'insectes résistants aux insecticides de 1928 à 1984 (5 en<br />

1928, 7 en 1938, 14 en 1948, 137 en 1960, 364 en 1975, 474 en 1980, entre 5 et 600 en (984).<br />

- Coefficient de résistance de souches du puceron Myzus persicae. La souche prélevée en<br />

serre à Avignon est très résistante aux organophosphorés ; la souche R2 provenant d'une grande<br />

culture est moins résistante à ces insecticides. Les coefficients de résistance sont déterminés par les<br />

rapports des concentrations létales 50 de la souche étudiée et d'une souche sensible de référence .<br />

Insecticide<br />

Souche serre<br />

Avignon<br />

3<br />

Souche R2<br />

Organophosphorés<br />

diméthoate<br />

1 200 200<br />

méthamidophos lO 5<br />

Pyréthrinoïdes<br />

deltaméthrine<br />

1 200 800<br />

fenvalérate llO 70<br />

Organochlorés<br />

endosulfan<br />

70 20<br />

Iindane 65 50<br />

Carbamates<br />

pirimicarbe<br />

80 50<br />

aldicarbe 50<br />

20<br />

Divers<br />

roténone<br />

4 5<br />

Annexes Chapt tre 4<br />

1<br />

43


Fig. 6<br />

Fig. 7<br />

__ 10<br />

-+-+- 0,5<br />

__ 50<br />

__ 50<br />

-0-+- 2,5<br />

__ 250<br />

10<br />

____ 0,5<br />

__ 50<br />

AVEC TRAITEMENT INS E CTICI<strong>DE</strong><br />

1 50 __ Nombre de T. macdanielli/feuille<br />

T 2 ,5 -+--+- Nombre de M. occidentalis/feuille<br />

,. 250 __ Nombre de A. schlechtendali/feuille<br />

!<br />

\_--------------- ---- -<br />

Mai . Juin Juillet . Août<br />

S ANS TRAITEMENT INSECTICI<strong>DE</strong><br />

/ .<br />

/<br />

1<br />

1 .<br />

1<br />

1<br />

/<br />

/<br />

/<br />

/<br />

/<br />

/<br />

<br />

---<br />

Mai Juin<br />

-- ....<br />

.. '-<br />

Juillet Août<br />

"- "\.<br />

Septembre<br />

'\ '\ '\ \<br />

\<br />

Septembre<br />

. - Evolution comparée des populations d'Acariens phytophages (Tetranychus macdanielli<br />

et Aculus schlechtendalz) et carnivores (Metaseiulus occidentalis) dans 2 serres dont l'une reçoit des<br />

traitements insecticides polyvalents. La chute des populations d'A. schlechtendali provoquée par les<br />

insecticides chimiques entraîne à son tour celle du prédateur M. occidentalis qui ne peuvent plus limiter<br />

l'expansion du ravageur T. macdanielli.<br />

Annexes Chapitre 4<br />

44


CHAPITRE 5<br />

<strong>LUTTE</strong> BIOLOGIQUE<br />

A. <strong>DE</strong>FINITION<br />

Lutte Biologique<br />

Balachowsky 1951<br />

"Méthodes qui consistent à détruire les insectes nuisibles par l'utilisation rationnelle de leurs ennemis naturels appartenant soit<br />

au règne animal soit au règne végétal."<br />

OILB 1971<br />

"utilisation d'organismes vivants ou de leurs produits pour empêcher ou réduire les pertes ou dommages causés par des organismes<br />

nuisibles aux productions végétales."<br />

B. EMPLOI D'ENTOMOPHAGES<br />

a. utilisation d'agents autochtones<br />

- protection des Vertébrés auxiliaires (Batraciens, Reptiles et surtout Oiseaux et Mamnifères).<br />

- pratiques favorisant le développement et l'action des entomophages .<br />

- maintien des zones de bocage.<br />

- protection des agents naturels.<br />

b. Introduction d'agents biotiques étrangers<br />

1. Nécessité<br />

- agents autochtones insuffisants<br />

- lutte chimique impossible, impuissante, trop onéreuse<br />

- ravageur introduit ne possédant pas de prédateur ou parasite local.<br />

2. Importance d'une étude écologique préalable<br />

- inventaire de tous les parasites et prédateurs du phytophage<br />

- influence des facteurs abiotiques du pays d'origine<br />

du pays d'introduction<br />

- rapports avec le phytophage<br />

- rapports avec les autres éléments de la biocénose<br />

3. Mise en oeuvre des recherches écologiques<br />

- élevage de masse<br />

- introduction de l'entomophage par acclimatation permanente ou par lâchers périodiques<br />

c. Exemples de succès en lutte biologique<br />

» Aphelinus mali Hyménoptère Chalcidien parasite du Puceron lanigère Eriosoma lamgerum<br />

USA ---> Europe<br />

» Opius concolor Hyménoptère Braconidé introduit contre la Mouche de l'olivier Dacus oleae<br />

O. concolor originaire Afrique du nord.<br />

45


Lutte Biologique<br />

» Hyménoptère Encarsia formosa utilisé en serres contre l'Aleurode (Hémiptère Homoptère Aleyrodidé) Trialeurodes vaporarium (serres<br />

tomates à Brest)<br />

» Phytoseiulus persimilis acarien prédateur est utilisé en serres pour réguler les pullulations de l'acarien Tétranyque pol yphage<br />

Tetranychus urticae<br />

» Coccinelle prédatrice Cryptolemus montrouzieri utilisée sur la Côte d'Azur contre Cochenilles farineuses du genre Pseudococcus<br />

» Aleurothrixus floccosus Aleurode introduit en 1969 sur Agrumes (Côte d'Azur). Combattu par Cales noaki Hyménoptère Aphelinidé<br />

Lutte biologique au moyen de nematodes<br />

Actuellement le seul utilisé : le genre Neoplactana<br />

» Neoplactana glaseri contre le Ver blanc Popilia japonica (larve de hanneton, Coléoptère)<br />

» Neoplactana carpocapsae utilisé aux USA<br />

Lutte biologique contre les mauvaises herbes<br />

Uniquement contre des adventices introduites ne présentant pas de déprédateurs associés => envahissent les cultures<br />

C. <strong>LUTTE</strong> MICROBIOLOGIQUE<br />

a. Bactéries<br />

2 grands groupes<br />

- Pseudomonas : pathogènes potentiels du tube digestif => septicémies en cas de lésion<br />

- Bacillus : pathogènes obligatoires<br />

b. Rickettsies<br />

Proches des bactéries<br />

c. Protozoaires<br />

Grégarines, Coccidies, Microsporidies<br />

d. Virus<br />

catégorie la plus importante d'entomopathogènes : 200 espèces.<br />

e. Champignons<br />

Surtout utilisés les Entomophtorales du genre Beauveria<br />

f. Objections a la lutte microbiologique<br />

- Dangers possibles pour l'homme des germes entomopathogènes<br />

- Voisinnage systématique de certains pathogènes de Vertébrés et d'Invertébrés<br />

- Possibilité de mutations (entomopathogènes ---> pathogènes de Vertébrés) Mais risques très réduits<br />

46


D. <strong>LUTTE</strong> AUTOCI<strong>DE</strong><br />

L'insecte lui-même est utilisé comme agent destructeur de sa propre espèce<br />

a. Lâchers de mâles stériles<br />

1. Stérilisation par des agents physiques<br />

- Liste des espèces justiciables de l'application de ce procédé établie par l'Agence Internationale de l'Energie Atomique<br />

48 espèces dont 15 présentes en France<br />

- Modèle mathématique de l'éradication:<br />

conventions : population initiale 10 6 individus avec un sex ratio = 1<br />

population se multiplie par 5 à chaque génération<br />

125 x 10 6 = charge biologique maximale du milieu<br />

Exemples<br />

P<br />

FI<br />

F2<br />

F3<br />

F4<br />

F5<br />

pas de traitement<br />

(x 10 6 )<br />

1<br />

5<br />

25<br />

125<br />

125<br />

125<br />

lâchers de mâles stériles<br />

(5 x 10 6 par génération)<br />

455.000<br />

100.000<br />

5.000<br />

25<br />

o<br />

Lutte Bioloqique<br />

» La Lucilie bouchère Cochliomya hominivorax (Diptère Brachycère Calliphoridé) dans le sud des USA s'attaque au bétail et à l'homme.<br />

» Ceratitis capitata la Mouche des fruits (Diptère Cyclorraphe Trypetidé) originaire du Maroc diffusion considérable dans les pays<br />

chauds.<br />

» Carpocapse du pommier (Cydia pomonella Lépidoptère Tortricidé).<br />

» Hanneton Allthonomus grandis sur coton aux USA.<br />

2. Stérilisation par des agents chimiques<br />

2.1.Chimiostérilisants<br />

Différents groupes de produits ayant différentes actions biologiques<br />

- inhibition ovogenèse ou spermatogenèse<br />

- mort des oeufs ou du sperme<br />

- mutations létales dominantes dans les gamètes<br />

2.2. Différents types de chimiostérilisants<br />

- Agents alkylants (aziridines)<br />

- Antimétabolites<br />

- Dérivés de la s-triazine et de la triamide phosphorique<br />

- Antihormones et phéromones<br />

- Antibiotiques<br />

47


2.3. Emploi des chimiostérilisants<br />

- Stérilisation au laboratoire : élevage<br />

» Moustique Culex pipiens (Diptère Nématocère Culicidé) en Inde vecteur de la filaire<br />

)) Moustique Anopheles albinanus (Diptère Nématocère CUlicidé) au Salvador vecteur de la malaria<br />

)) Mouche tsé-tsé Glossina J/Jorsitans (Diptère Brachycère) au Zimbabwe (ex Rhodésie), trypanosomioses<br />

)) Mouche des étables stoJ/Joxys calcitrans (Diptère Brachycère) larves saprophages et coprophages<br />

- Piégeage dans la nature<br />

utilisé lorsque espèce difficile à élever ou bien lorqu'un attractif sélectif de l'espèce ou même d'un sexe est connu.<br />

2.4. Inconvénients<br />

- toxicité pour les homéothermes, effets cancérigènes mals connus<br />

- apparition de races résistantes<br />

- Comparaison des résultats<br />

conventions : population initiale 10 6 individus avec un sex ratio = 1<br />

population se multiplie par 5 à chaque génération<br />

125 x 10 6 = charge biologique maximale du milieu<br />

pas de traitement insecticide<br />

(x 10 6 ) tuant 90%<br />

P l LOOO.OOO<br />

FI 5 500.000<br />

F2 25 250.000<br />

F3 125 125.000<br />

F4 125 62.500<br />

F5 125 31.250<br />

F20 125 1<br />

- insecticide tuant 90% de la pop. à chaque traitement<br />

lâchers mâles stériles stérilisation chimique<br />

(5 x 10 6 / génération) 90% de population<br />

1.000.000 1.000.000<br />

455.000 50.000<br />

100.000 2.500<br />

5.000 125<br />

25 6<br />

a 0<br />

sur 1.000.000 d'individus restent 100.000 individus dont les probabilités d'accouplement sont de 1/1<br />

=> 100.000 x 5 = 500.000 individus en FI<br />

sur 500. 000 individus restent 50. 000 individus dont les probabilités d'accouplement sont de 1/1<br />

=> 50.000 x 5 = 250.000 individus en F2 ...<br />

Lutte Biologique<br />

- lâchers de 5.10 6 mâles stériles à chaque génération<br />

1.000.000 d'individus dont les probabilités d'accouplement fertile sont de (500.000 femelles pour 500.000 mâles fertiles sur<br />

5.500.000 mâles) 1/11<br />

=> 1.000.000 x 1/11 x 5 = 455.000 individus en FI<br />

455.000 individus dont les probabilités d'accouplement fertile sont de (230.000 femelles pour 230.000 mâles fertiles sur<br />

5.230.000 mâles) 1/23<br />

=> 455.000 x 1/23 x 5 = 100.000 individus en F2 ...<br />

- stérilisation de 90% de la pop. (mâles et femelles)<br />

sur 1.000.000 d'individus restent 100.000 fertiles dont les probabilités d'accouplement avec un partenaire fertile sont de 1/10<br />

=> 100.000 x 1/10 x 5 = 50.000 individus en FI<br />

sur 50.000 individus restent 5.000 fertiles dont les probabilités d'accouplement avec un partenaire fertile sont de 1/10<br />

=> 5.000 x 1/10 x 5 = 2.500 individus en F2 ...<br />

48


3. Stérilisation par translocation chromosomiques<br />

Lutte Blo1oqlque<br />

Dislocation de chromosomes et addition de certaines fractions à d'autres chromosomes sur des mâles => accouplements partiellement<br />

stériles avec femelles normales.<br />

Démoustication du littoral<br />

» Culex n'a pas d'hétérochromosome, déterminisme du sexe par un gène Mm porté par un autosome<br />

translocation réalisée par irradiation RX 3 k rads => substérilisation (rupture très voisine de M, allèle déterminant le sexe mâle<br />

=> transmission de cette translocation à toute la descendance mâle => femelles fécondées par ces mâles partiellement stériles)<br />

» Tetranychus urticae (Acarien tetranyque) en serre<br />

irradiation RX 2250 rads => mutations des spermatozoïdes<br />

croisement de ces mutants avec pop. d'origine => 92% de mortalité en FI<br />

99.8% de mortalité en F2<br />

4. Autres procédés de stérilisation<br />

- Utilisation de composés Chimiques : réserpine<br />

- Maintien de chrysalides à des températures élevées.<br />

b. Lutte génétique<br />

1. Utilisation de caractères génétiques létaux<br />

obtention de mutations dominantes<br />

- non létales en élevage<br />

- létales dans la nature<br />

2. Incompatibilité cytoplasmique<br />

Croisements entre écotypes # : même caryotype<br />

cytoplasme 1<br />

» en Birmanie sur Culex pipiens vecteur de la filariose (Filaire de Bancroft, Nématode).<br />

3. Lâchers d'insectes de même espèce mais d'une race non nuisible<br />

Création d'écotypes avirulents par pression de sélection sur cultivars #<br />

» Mayetiola destructor (Diptère Nématocère cécidomyidé) Mouche de Hesse dégâts sur blé.<br />

4. Lâchers d'insectes porteurs de germes pathogènes<br />

49


Fig. 8<br />

Fig. 9<br />

Fig. 10<br />

100t<br />

80<br />

%<br />

Epizootie<br />

naturelle<br />

1930 1935 1940 1945<br />

1950 1955 1960<br />

- Fluctuation cyclique des niveaux de populations japonaises de Lymantria fumida<br />

régulièrement décimées par des épizooties de polyédroses nucléaires (d'après Katagiri, 1969).<br />

Individus/m2<br />

40<br />

t<br />

30<br />

40%<br />

10<br />

10<br />

1967 1968<br />

Pourcentage d'insectes<br />

-4-malades<br />

__ Nombre de criquets O. enigma<br />

et M. bivittatus<br />

1969 1970 1971<br />

- Evolution de la densité des criquets Oedaleonotes enigma et Melanoplus bivittatus<br />

partiellement décimée par la microsporidie Nosema locustae (d'après Henry, 1972).<br />

60 +-___ --<br />

40<br />

20<br />

3 lâchers<br />

l<br />

1958 59 60 61 62 63 64 65<br />

. __ Population du Pou de San José<br />

-+--+- Taux de parasitisme à P. pemiciosi<br />

_ Evolution des densités de Pou de San José après 3 lâchers annuels du parasite<br />

Prospaltella perniciosi. Les 3 lâchers eurent lieu en 1958, 59 et 1960. La population du ravageur ne<br />

régresse qu'à partir de 1962.<br />

Annexes Chapitre 5<br />

50


Fig. 11<br />

Fig. 12<br />

Nb'. d'individus/ 1 00 feuilles<br />

100<br />

20<br />

. Avril Mai<br />

__ Tetranychus urticae<br />

-+-+- Phytoseiu/us persimi/is<br />

- Evolution des densités de Te tranychus urticae et de son prédateur Phytoseiulus persimilis<br />

lâché dans un rapport de 1 pour 5 ravageurs dans une serre de fraisiers (d'après Pralavorio et al., 1975).<br />

N"" de pucerons (log n + 1 ) par pied<br />

d'aubergine<br />

10000<br />

1000<br />

100<br />

10<br />

6 20<br />

Avril<br />

4 18<br />

Mai<br />

Serre<br />

témoin<br />

A<br />

Serre avec<br />

chrysopes<br />

Juin<br />

15<br />

Juin .<br />

29 Juillet<br />

- Evolution comparée de populations de Macrosiphum euphorbiae placées soit dans une<br />

serre témoin (A), soit dans une serre dans laquelle on introduit hebdomadairement des larves de<br />

Chrysopaformosa (dans le rapport de 1 larve/5 à 10 pucerons) (d'après Lyon, 1979).<br />

Annexes Chapitre 5<br />

51


Tab. 19<br />

Fig. 13<br />

Quelques exemples de traitements biologiques récents en France<br />

Lieu<br />

Culture Ravageur Auxiliaire du Efficacité<br />

traitement<br />

Cultures protégées Tetranychus urticae Phytoseiulus persim- Sud France +++<br />

(rosier, gerbera, fr- i/is<br />

aisier, aubergine,<br />

concombre, melon,<br />

poivron, tomate ... )<br />

Serres Planococcus citri Cryptolaemus mon- Côte d'Azur +++<br />

Plantes tropicales trouzieri<br />

Serres Coccus hesperidum Metaphycus flavus Côte d'Azur +++<br />

Calathea marantha<br />

Metaphycus helvolus Côte d'Azur +++<br />

Microterys flavus<br />

Serres fougères Saissetia cofJeae Encyrtus infelix Côte d'Azur +++<br />

En cyrtus lecaniorum<br />

Olivier Saissetia oleae Diversinervus Côte d'Azur +++<br />

elegans puis ensemble<br />

zone de culture<br />

Metaphycus bartletti Olivier en France +++<br />

Serres légutnières Trialeurodes - Encarsia fo rmosa Côte d'Azur puis +++<br />

vaporariorum Encarsia tricolor toute la France<br />

Cultures sous serre Puceron des serres Chrysopa sp. Provence +++<br />

Côte d'Azur<br />

Serres tomates Liriomyza trifolii Diglyphus isaea Provence +++<br />

Dacnusa sibirica Côte d'Azur ++<br />

Maïs Ostrinia nubilalis Trichogramma Alsace +++<br />

brassicae<br />

+ + succès partiel ; + + + succès total.<br />

5t<br />

0/0<br />

\<br />

6<br />

40<br />

35<br />

30<br />

\<br />

\<br />

\<br />

\<br />

\<br />

\<br />

\<br />

\<br />

\<br />

\<br />

\<br />

1910 20 30 40 50<br />

0 70<br />

6<br />

- Pourcentage de réussites totales d'acclimatation par rapport à l'ensemble des introductions<br />

d'auxiliaires tentées dans le monde (d'après Hokkanen, 1986).<br />

Annexes Chapitre 5<br />

52


'"<br />

b<br />

ï<br />

...<br />

J<br />

<br />

....<br />

<br />

Citrus<br />

Culture<br />

Cultures fruitières<br />

Ravage r r<br />

Selenaspidus articulatus<br />

lcerya purchasi<br />

Planococus citri<br />

Ceroplastes rusd<br />

Coccus hesperidum<br />

Orthezia insignis<br />

Parlatoria pugrandii<br />

Pu/vinaria psidii<br />

Chrysomphalus dictyospermi<br />

Lepidosaphes beckii<br />

Par/atoria pergandii<br />

Coccus hesperidum<br />

Saissetia o/eae<br />

Aonidiella aurantii<br />

Planococcus cit,;<br />

A/eurothrixus ftoccosus<br />

Dialeurodes citri<br />

Quadraspidiotus pernici ? sus<br />

Pseudau/acaspis pentagona<br />

Eriosoma /anigerum<br />

Quelques exemples d'acclimatation d'insectes entomophages<br />

Auxiliaire Pays Pays<br />

d'origine d'introduction<br />

Aphytis roseni Pérou Afrique<br />

Rodolia cardinalis Australie Etats-Unis + 35 autres pays<br />

Cryptolaemus mon trouZÎeri Trinidad, Espagne Arabie, St-Hélène<br />

Aneristus ceroplastoe Pakistan France<br />

Metaphycus luteolus Etals-Unis URSS<br />

Hyperaspis spp. Trinidad Barbades<br />

Aphytis hispanicus India Iles Cook<br />

Microterys kotinskyi Etats-Unis Bermudes<br />

Aphytis melinus Espagne, Maroc<br />

Aphytis lepidosaphes Espagne, France, Italie, Grèce<br />

Prospatella inquirenda Espagne<br />

Metaphycus ftavus Espagne, France<br />

Metaphycus helvolus France<br />

Metaphycus swirskii Italie<br />

M. bartletti<br />

Aphytis melinus Maroc<br />

Leptomastix dactylopii Sicile<br />

Cales noacki Chili France, Espagne, Maroc<br />

Encarsia /ahorensis Etats-Unis Italie<br />

Prospatella perniciosi Etats-Unis France, Inde<br />

Prospatella ber/esei Extrême-Orient France<br />

Aphelinus. mali France, Etats-Unis Etats-Unis, France, Uruguay<br />

(30 pays)<br />

Année<br />

1972-76<br />

1890<br />

1972<br />

1974<br />

1959<br />

1976<br />

1973<br />

,<br />

1954<br />

1970-75<br />

1973-80<br />

1973-80<br />

1973-80<br />

1970-80<br />

1965-75<br />

1970-75<br />

1973-75<br />

1960<br />

1958<br />

1920<br />

Efficacilé<br />

++<br />

+++<br />

+++<br />

++<br />

++<br />

++<br />

+ +<br />

+ +<br />

++<br />

+++<br />

(+ )<br />

+<br />

+ +<br />

+<br />

+<br />

+ +<br />

+++<br />

+<br />

+ +<br />

+++<br />

+++<br />

(")<br />

l!)


'"<br />

.,<br />

lJ<br />

....<br />

'"<br />

fi<br />

"<br />

J<br />

1<br />

Culture Ravageur Auxiliaire<br />

Olivier Dacus oleae Opius conc% r<br />

Palmier Promeco/heca cumingi Pediobius parvulus,<br />

Dimmockia javana<br />

Aspidio/us des/ruc/or Cryp/ogna/ha nodieeps<br />

Parla/oria blanchardi Ch iloch orus<br />

var. iranensis<br />

bipus/ula/us<br />

Palmier Aspidiotus des truc/or Cryptognatha nodiceps<br />

Canne à sucre Diatraea saccharalis Apante/es flavipes<br />

Aulacaspis tegalensis Physcus semino/us, Aphytis<br />

Riz Chilo sp. Trichogramma sp.<br />

Maïs Mythimna separata Apanteles ruficus<br />

Pâturage Dociostaurus maroccanus Mylabris variabilis<br />

An/onina graminis Neodusmetia sangroani<br />

Calyp/anus i/alicus Mylabris variabilis<br />

Cultures légu- Ophiomyia phaseoli Opius phaseoli<br />

mières Nezara viridula Asolcus basa/is<br />

Coton Epilachna varivestis Pediobius fo veolatus<br />

Forêt Pris/iphora erichsonii M esoleius /enlhredinis<br />

Neodiprion sertifer Dahlbominus fuscipennis<br />

+ : faible efficacité ; + + : succès partiel ; + +.+ : succès total<br />

-.... .<br />

<br />

=<br />

'""<br />

<br />

Pleolophus bazizonus<br />

Lophyloplec/us kutcator<br />

Pays . Pays<br />

d'origine d'introduction<br />

Italie<br />

Iles Fidji Sri Lanka<br />

Trinidad Iles Fidji<br />

Iran Mauritanie, Mali, Niger, Sud<br />

Maroc,<br />

. Soudan<br />

Trinidad Iles Fidji<br />

Afrique . Mauritanie<br />

Divers Inde<br />

Iles Caraibes, Etats-Unis,<br />

Brésil<br />

Pakistan Nouvelle-Zélande<br />

Europe Sardaigne, Corse<br />

Asie, Afrique Etats-Unis<br />

Europe Sardaigne, Corse<br />

Afrique Iles Hawaï<br />

Australie Iles Hawaï<br />

Inde Etats-Unis<br />

Europe Canada<br />

Europe Etats-Unis<br />

Année<br />

1964<br />

1970-74<br />

1928<br />

1928-55<br />

1960-80<br />

1965<br />

1963<br />

1971<br />

1959<br />

1959<br />

1969<br />

1962<br />

1973<br />

1910<br />

1930-70<br />

Efficacité<br />

++<br />

+++<br />

+++<br />

+++<br />

+++<br />

+<br />

++<br />

++<br />

++<br />

++<br />

+<br />

++<br />

++<br />

++<br />

++<br />

+++<br />

++<br />

!<br />

o;;J<<br />

l!)


Des échecs . . .<br />

- La lutte biologique contre le Doryphore<br />

- Le Doryphore, Leptinotarsa decemlineata.. est, rappelons-le, un<br />

Coléoptère originaire du Colorado, où il vivait discrètement sur<br />

des Sobnées saU":lgcs.<br />

La Pomme de terre (originaire du Pérou via l'Europe) le rejoint,<br />

apportée par les colons. De cette rencontre naît un problème<br />

phytosanitaire majeur. En 1927, le Doryphore prend pied à<br />

Bordeaux pour une conquête de l'Europe qu'il poursuit encore.<br />

La lutte biologique a pour point de départ la llÙSsion réalisée aux<br />

Etats-Unis de mai à août 1928 par L. Trouvelot afin d'étudier les<br />

parasites et prédateurs de ce ravageur.<br />

S'assurant la collaboration de Huckett à la ferme expérimentale<br />

de Riverhead près de New-York et celle de Cecill à la ferme expérimentale<br />

de Geneva au sud du lac Ontario, il monte. un réseau<br />

de collecte et d'expédition d'entomophages qui en 1928, 1929 et<br />

1930 fera parvenir à la station de Bordeaux des échantillons plus<br />

ou moins abondants des 5 espèces suivantes : les Hémiptères<br />

Peril/us bioculatus et Podisus maculiventris, le Carabique Lebia<br />

grandis et les Tachinaires Doryphorophaga aberrans et D. do ryphorae.<br />

Peu d'individus arrivent vivants et les essais d'élevage<br />

échouent faute d'une maîtrise de la production de l'hôte.<br />

En 1933, cet obstacle étant au moins partiellement surmonté,<br />

J. Brunneteau est envoyé à son tour aux Etats-Unis où il peut re-<br />

. prendre la collecte et l'expédition des différents auxiliaires<br />

Annexes Chapitre 5<br />

précités, opérations qui seront poursuivies par les collègues américains<br />

de Riverhead et de Geneva en 1934 et 1935.<br />

A ce moment, face à l'ampleur prise par le problème Doryphore,<br />

. les effectifs de chercheurs de la station de Bordeaux placés sous<br />

la responsabilité de J. de Feytaud ont été notablement étoffés et il<br />

est dès lors possible d'envisager un travail en profondeur qui,<br />

outre l:étude de bioécologie du ravageur directement prise en<br />

charge par ce dernier, comporte l'analyse des caractéristiques<br />

biologiques tant des parasites locaux et notamment des Tachinaires<br />

susceptibles de s'adapter à ce nouvel hôte (L. Mesnil,<br />

1936) que des auxiliaires introduits, la maîtrise de l'élevage de<br />

ces derniers et la répétition dans le temps et dans l'espace d'essais<br />

d'acclimatation. De Lapparent prend en charge l'étude de P. maculiventris,<br />

J. Brunneteau celle de D. aberrans et F. Chaboussou<br />

celle de L. grandis.<br />

Les élevages et les essais de colonisation, du moins pour certaines<br />

espèces comme P. bioculatus, se poursuivront au moins<br />

jusqu'en 1941-1942 mais ne pourront jamais mettre en oeuvre<br />

plus de quelques milliers d'individus dans le meilleur des cas.<br />

Ces opérations sont reprises à partir de 1956 lorsque, à Dannstadt,<br />

les Prof. Franz et Szmidt reçoivent de Belleville (Canada)<br />

une nouvelle souche de P. bioculatus et mettent au point un élevage<br />

de masse de cet auxiliaire. Les essais de lâchers inondatifs<br />

réalisés en 1961 par P. Portier et J.-R. Le Berre dans le Cotentin<br />

puis par T. Jermy en 1964 et 1965 à Kesthely en Hongrie à partir<br />

d'un matériel (respectivement 40 000 et 57 000 larves) produit<br />

par 8 instituts européens dont les stations INRA d'Antibes et de<br />

Versailles, montrent que si ce prédateur est suffisamment efficace<br />

pour juguler temporairement une pullulation de Doryphores,<br />

il ne peut s'acclimater défmitivement faute d'une coïncidence<br />

chronologique suffisante entre le cycle de l'hôte et celui de<br />

la Punaise.<br />

Le choix par B. Trouvelot des lieux de récolte des auxiliaires<br />

dans les zones atlantiques des Etats-Unis avait sa logique : il<br />

partait du principe que des antagonistes qui avaient pu accompagner<br />

le Doryphore aussi loin de son habitat d'origine devaient<br />

présenter les meilleures facultés d'adaptation. Malheureusement,<br />

ni à l'époque de ses travaux, ni encore dans les annees 60, on<br />

n'avait l'habitude de prendre en compte les notions de variabilité<br />

génétique des populations, de coadaptation et de coévolution.<br />

Combien d'échecs partiels ou totaux d'acclimatation ne sont-ils<br />

pas dûs à l'utilisation au départ d'un inoculum trop réduit<br />

(parfois, il subsiste à l'arrivée une seule femelle en vie ... heureusement<br />

fécondée !) ou trop monomorphe. Une discussion<br />

s'engagea avec J. De Wilde (directeur de l'Institut d'entomologie<br />

de Wageningen) sur la possibilité de financer, conjointement<br />

avec une université américaine, une étude de la variabilité, à<br />

l'échelle de ce sous-continent, des populations de certains ennemis<br />

du Doryphore. Mais le problème de ce ravageur avait<br />

perdu beaucoup de son acuité en Europe occidentale ... et le coeur<br />

n'y était plus.<br />

55


• . • ma is aussi des succès<br />

La lutte contre Cochliomyia hominivorax<br />

Cette mouche s'attaque au bétail et provoque de gros dégâts dans les cuirs des<br />

bovins d'Amérique centrale, car la larve doit effectuer au moins la moitié de sa<br />

croissance dans la blessure d'un animal vivant.<br />

La technique de lutte a été mise au point en Floride et dans l'île de Curaçao où les<br />

populations de cet insecte sont parfaitement localisées. Le succès des premières<br />

expérimentations pennit d'étendre cette lutte à l'ensemble de la Floride, puis à tous les<br />

Etats méridionaux des Etats-Unis en 1957 et 1958. L'ampleur de l'opération nécessita,<br />

en 1961, la construction d'une usine de production de mouches stériles. Employant<br />

100 300 500 700<br />

, 1 ! 1 1 1 1 1<br />

miles<br />

1::>:::·.\:1 répartition des cas de miases<br />

- Répartition des cas de myiases provoqués par Cochliomyia hominivorax et localisation<br />

des zones de lâchers de mâles stériles (d'après Davidson, 1974).<br />

300 personnes, cette unité multipliait hebdomadairement 150 millions d'individus dont<br />

la stérilisation était effectuée par irradiation aux rayonnements gamma émis par une<br />

bombe au cobalt à la dose de 5 000 rads, du stade sensible des mouches correspondant<br />

au moment où les noyaux des oocytes sont en prophase.<br />

La première barrière géographique de protection, illustrée par la figure 26, fu t établie<br />

en 1962 par le lâcher de 6 milliards de mâles stériles. Le résultat fut foudroyant puisque<br />

le nombre de myiases identifiées dans les troupeaux de bovins du Texas chuta en<br />

2 années de 50 000 environ à 239 !<br />

Entre 1962 et 1964 les dégâts, pour l'ensemble des Etats-Unis, ont été estimés à<br />

100 millions de dollars alors que, pendant la même période de temps, le coût total de<br />

l'intervention par lutte autocide ne fut que de 12 millions de dollars.<br />

A la suite de ces opérations les populations de C hominivorax sont restées très faibles<br />

pendant une dizaine d'années, jusqu'en 1972 où la réapparition de dégâts sensibles sur<br />

plus de 90 000 bovins incita les' àutorités à mettre en place de nouvelles barrières de<br />

protection (fig. 26).<br />

Depuis cette époque, les cas de myiases dans les troupeaux ne sont plus en<br />

augmentation, ce qui traduit l'efficacité de ce procédé de lutte.<br />

Annexes Chapitre 5<br />

56


La lutte contre Ceratitis capitata<br />

C'est à ce même procédé de lutte que les entomologistes firent appel lorsqu'il<br />

fallut prendre des dispositions d'envergure internationale pour enrayer le déve­<br />

loppement de la mouche méditerranéenne des fruits en Amérique latine. Ce<br />

Diptère, Ceratitis capitata, endémique en Grèce, Turquie et Italie, fut signalé en'<br />

1955 au Costa Rica, puis en 1960 au Nicaragua, en 1963 au Panama, en 1965 au<br />

Salvador. .. En 1977 il pénètre au Mexique. Dès 1980 les autorités mexicaines<br />

évaluent à environ 300 millions de dollars les pertes occasionnées aux cultures par<br />

une éventuelle colonisation généralisée du pays par ce ravageur, dommages<br />

auxquels il convient d'ajouter la perte de marchés extérieurs, estimée à 500 mil­<br />

lions de dollars, en raison des risques de propagation engendrés par les transports<br />

internationaux de marchandises !<br />

Ceratitis capitata est très dangereux car son potentiel reproducteur est considérable.<br />

Une femelle pond environ 100 à 300 œufs ; seulement 10 p. 100 d'entre eux parviendront<br />

à effectuer une complète évolution larvaire dont la durée n'excède pas une<br />

semaine, de telle sorte que théoriquement 1 000 femelles produiront plus de 1 million<br />

d'individus en 3 générations soit 6 semaines. Si on suppose que chaque génération<br />

progresse sur un front de 30 km, 30 000 km2 sont colonisés en 3 mois.<br />

La lutte autocide contre cet insecte fut engagée dans les pays européens où pourtant<br />

elle ne s'est pas révélée agronomiquement efficace. Profitant de cette expérience, les<br />

Américains ont développé une expérimentation de lutte autocide contre C. capitata dès<br />

1959 sur l'archipel polynésien de Hawaï. En 1963 un vaste programme était mis en place<br />

pour endiguer la progression du ravageur en Amérique centrale (Costa Rica et<br />

Nicaragua) et, de ce fait, protéger les plantations fruitières californÏennes. En 1969, au<br />

Nicaragua, une petite zone de production fruitière de 48 km2 constitua un important<br />

foyer de multiplication pour C. capitata. Isolée du reste du pays par des traitements<br />

insecticides à sa périphérie, cette zone reçut 1,2 milliard de mouches stériles. Les<br />

résultats très satisfaisants ont incité les agronomes à répéter cette nouvelle stratégie de<br />

lutte dans la plupart des foyers d'infestation (Rhode, 1970). Ainsi naquit en 1977 le<br />

programme MOSCAMED régi par les Gouvernements mexicain, américain et l'Agence<br />

Internationale de l'Energie Atomique (AIEA). Ses objectifs correspondent à :<br />

- l'étude de la dynamique des populations de C. capitata,<br />

- l'installation d'usines de production de mâles stériles,<br />

- la formation des agronomes à l'utilisation de ce procédé de lutte.<br />

L'application de ce programme, de sa création à 1982, a effectivement permis de<br />

limiter les populations de ce Diptère au sud du Mexique, en particulier grâce à l'usine<br />

de production de Tapachula qui multiplie 500 millions de mouches stériles par semaine<br />

(La Brecque, 1982).<br />

Annexes Chapitre 5<br />

57


CHAPITRE 6<br />

AUTRES METHO<strong><strong>DE</strong>S</strong> <strong>DE</strong> <strong>LUTTE</strong><br />

A. METHO<strong><strong>DE</strong>S</strong> MECANIQUES<br />

- capture des adultes<br />

- Destruction des pontes , nids , nymphes<br />

- Bandes et ceintures gluantes<br />

- Ensachages<br />

- Fossés et barrages<br />

- Entoletage<br />

- Abrasion<br />

B. METHO<strong><strong>DE</strong>S</strong> PHYSIQUES<br />

- Chaleur<br />

- Humidité<br />

- Champs électromagnéties à haute fréquence<br />

- Radiations gamma (du D co)<br />

C. METHO<strong><strong>DE</strong>S</strong> PHYSIOLOGIQUES<br />

a. Immunologie ou emploi de variétés résistantes<br />

Alltres Méthodes<br />

- Résistance = somme des qualités héréditaires possédées par la plante et qui interviennent sur le terme ultime des dommages causés<br />

par l'insecte.<br />

- Pseudo-résistance : due à :<br />

- population d'insectes attirés < moyenne<br />

- décalage entre stade sensible et maximum d'infestation (variétés précoces )<br />

- vigueur considérable due aux conditions climatiques<br />

aux conditions édaphiques<br />

- Causes de résistance<br />

1. Préférence ou non préférence<br />

Déterminées par l' attracti vi té de la plante pour une espèce d'insecte et sont dues à :<br />

- Coloration<br />

- Structure et nature des surfaces végétales<br />

- pilosité : trichomes => difficulté d'accéder aux surfaces végétales pour petits insectes .<br />

- cire épicuticulaire<br />

- Composition Chimique des substances allélochimiques.<br />

Issues du métabolisme secondaire des végétaux.<br />

soit volatiles et perçues à distance, soit non volatiles et perçues par contact<br />

allomone : substance produite ou acquise par un organisme, qui , lorsqu'elle est perçue par un individu d'une autre espèce dans<br />

le contexte naturel, provoque chez le receveur une réaction comportementale ou physiologique favorable, d'un point de vue<br />

adaptatif, à l'émetteur mais pas au receveur.<br />

synomone : • • • favorable à l'émetteur et au receveur.<br />

kairomone : . • • favorable au receveur mais pas à l'émetteur.<br />

58


- Repellents OU répulsifs : inhibition du comportement d'approche ou d'oviposition<br />

- Antiappétants : inhibition du comportement de prise de nourriture<br />

- Substances réduisant la digestibilité des tissus : Substances non toxiques : tanins ou résines phénoliques<br />

- Substances toxiques<br />

- Substances attirant les parasi taï des : Elles appartiennent à la catégorie des synomones<br />

Autres Méthodes<br />

N.B. : certaines plantes ne contiennent ni toxines ni antiappétants , mais leur absorption => une diminution de la longévité, de<br />

la fécondité ou un mauvais développement.<br />

Dû à la déficience de certaines substances nutritives suivant le stade végétatif de la plante.<br />

b. utilisation de porte greffes résistants<br />

» Pucerons lanigères (Eriosoma lanigerum Hémiptère Homoptère Aphididé Eriostomatiné) ravageur du pommier.<br />

présente aussi des colonies souterraines<br />

Portes greffe Doucin et Paradis très sensibles, winter Mayetin et Northern Spy (australiennes) sont résistantes.<br />

Croisement Paradis x N. Spy => 15 types résistants, avec facteur de résistance dominant.<br />

Origines de la résistance mal connues.<br />

c. Influence des facteurs écologiques sur la résistance<br />

- Etat physiologique de la plante (fumure, âge, ressources hydriques, • • . )<br />

- Facteurs climatiques : Température, humidité de l'air<br />

D. METHO<strong><strong>DE</strong>S</strong> ECOLOGIQUES<br />

a. utilisation des tropismes<br />

- Pièges à phéromones contenant des chimiostérilisants<br />

- Plantes pièges<br />

b. Choix et conditionnement du terrain de culture<br />

c. lIéthodes culturales<br />

- Rotation des cultures<br />

- Destruction des adventices<br />

- Mode de culture<br />

- Travaux culturaux<br />

- Epoque d'exécution des travaux<br />

- utilisation de variétés précoces ou tardives (Rhagoletis cerasi Diptère Brachycère).<br />

- Submersion<br />

59


Tab. 21 - Temps d'exposition aux ondes de haute fréquence pour obtenir 99 p. 100 de mortalité<br />

chez les insectes traités dans leur milieu hôte (d'après Fleurat-Lessard, 1982).<br />

Fig. 14<br />

tO produite<br />

Durée expo.<br />

Produit Espèce Stade avant refroidissement<br />

H.F. (secondes)<br />

CC)<br />

larve 60 59<br />

Blé tendre S. granarius nymphe 70 61<br />

adulte 50 55<br />

Blé dur S. oryzae<br />

Semoule fine T. confusum<br />

juvénile<br />

(œuf à adulte)<br />

50 56<br />

larve 85 65<br />

adulte 75 60<br />

Semoule moyenne A. kuehniella larve 80 66<br />

Un stock de blé, irradié pendant 1 minute à 27, 1 MHz à une puissance de 800 W, est<br />

ainsi protégé d'une attaque grave par le charançon Sitophilus granarius sans aucune<br />

modification des qualités alimentaires de la céréale.<br />

L'efficacité et la simplicité de ce procédé semblent en permettre une large<br />

utilisation même dans les pays en développement.<br />

Résistance<br />

de la plante<br />

1- . '. :<br />

o<br />

,1 :'. l,<br />

2 3<br />

Résistance ====<br />

de la plante<br />

ï,<br />

o<br />

1. 1 1<br />

4 1,2<br />

Kennebec<br />

1 l ' 1 1<br />

1,4 2.4<br />

1,3 2,3<br />

Capella<br />

1 l, 1 1 1 1<br />

1,2,3 1,3,4 1,2,3,4<br />

3,4 1,2,4 2,3,4<br />

1 1 1 1 l ' , 1 1 1 1 1 1<br />

2 3 4 1,2 1.4 2.4 1,2,3 1,3,4 1 , 2,3,4<br />

1 , 3 2,3 3.4 1,2,4 2,3,4<br />

- Diagrammes de la résistance foliaire de deux variétés de pomme de terre à 16 races de<br />

mildiou. La résistance est figurée en hachures. La résistance de la variété Kennebec est spécifique car<br />

elle dépend de la race du pathogène ; contrairement à la résistance de Capella qui est uniforme (d'après<br />

.<br />

Van der Plank, 1978).<br />

Annexes Chapitre 6<br />

60


Exemple 1 : Sélection de variétés de maïs résistantes à la pyrale Ostrinia nuhilalis<br />

En France, cette sélection variétale s'effectue par infestation artificielle des parcelles.<br />

Un élevage de masse d'Ostrinia nubilalis sur milieu nutritif artificiel (De Coninck, 1984)<br />

permet de mettre à la disposition des sélectionneurs des pontes de pyrale en quantité<br />

voulue au moment souhaité. Elles se présentent sous la forme d'ooplaques de 10 à 15<br />

œufs fixées sur des disques de papier paraffiné de 1 cm de diamètre qu'il convient<br />

d'épingler à la face inférieure des jeunes feuilles du plant de maïs.<br />

Les dégâts occasionnés sur le limbe foliaire par les jeunes chenilles sont notés selon<br />

une échelle internationale allant de 1 à 9. La résistance de tous les cultivars éprouvés est<br />

évidemment évaluée par rapport à celle d'étalons bien identifiés ayant des niveaux de<br />

sensibilité différents.<br />

Les recherches ont suivi les étapes successives suivantes :<br />

• jugement des niveaux de résistance de lignées pures,<br />

• création de nouvelles lignées (Anglade et al., 1984),<br />

• étude des déterminismes physiologiques et génétiques des phénomènes de résistance<br />

par la prise en compte de 4 facteurs principaux :<br />

- la résistance à la prise de nourriture sur les feuilles du cornet : elle est polygénique,<br />

impliquant des gènes à effet additif codant pour plusieurs substances dont le DIMBOA<br />

(2,4-déhydroxy-7 -méthoxy-l ,4-benzoxazione-3-one) ;<br />

-'- la résistance à l'alimentation à l'aisselle des feuilles et sur les graines : elle est<br />

déterminée par plusieurs loci non additifs ;<br />

- la résistance de l'épi aux attaques des chenilles : elle est en corrélation avec la<br />

longueur et la consistance des spathes ;<br />

- l'influence de la variété sur le comportement d'oviposition suite aux observations<br />

récentes de Derridj et Fiala (1983).<br />

Ces programmes de recherche font l'objet d'une coopération internationale par le<br />

biais d'un groupe de travail de l'Organisation Internationale de Lutte Biologique,<br />

dénommé IWGO (International Working Group on Ostrinia nuhilalis) (Anglade et al.,<br />

1984b).<br />

Exemple 2 : La résistance des Eucalyptus aux Cérambycides<br />

La sélection variétale ne passe pas obligatoirement par la création de nouvelles<br />

variétés. Une illustration en est donnée par l'exemple du programme tunisien de<br />

reforestation mis en place après la Seconde Guerre mondiale. Le choix des décideurs<br />

s'était porté sur une politique de plantations d'Eucalyptus. Environ 95 espèces furent<br />

introduites parmi lesquelles : E. saligna, E. globulus, E. citriodora et E. diversicolor.<br />

Quelques années plus tard de catastrophiques dégâts étaient signalés. Le longicorne<br />

Phoracantha semipunctata en était le responsable (Chararas et al., 1969). Ce phénomène<br />

était le révélateur de graves déficiences physiologiques provoquées par une mauvaise<br />

adaptation du matériel végétal aux conditions de sécheresse du centre et du sud tunisien,<br />

déficiences encore aggravées par de mauvaises conditions édaphiques. Dans ces<br />

conditions la circulation de la sève est ralentie par une pression osmotique trop élevée<br />

et ne permet plus une défense suffisante de l'arbre contre les attaques des larves<br />

xylophages (Chararas, 1979).<br />

Le choix de nouvelles variétés, telles que E. torquata, E. oleosa, E. astringens ou<br />

E. sargenti, mieux adaptées à de longues périodes de sécheresse par la stabilité de leur<br />

pression osmotique même à des valeurs élevées encore compatibles avec la survie des<br />

cellules, a permis d'établir de nouvelles plantations xérophytiques qui répondent mieux<br />

à l'attaque du ravageur par rejet des larves hors du liber.<br />

Annexes Chapitre 6<br />

61


Exemple 3 : La sélection de variétés de céréales résistantes aux nématodes<br />

Les nématodes phytophages effectuent une partie de leur cycle de développement<br />

dans les tissus du végétal qui réagit à l'agression par des réactions immunitaires ou<br />

d'hypersensibilité (fig. 22). Cette propriété, associée à la faible variabilité des populations<br />

de nématodes améiotiques (Dalmasso et Berge, 1983) et à la longue durée relative du<br />

cycle de développement, est à l'origine de nombreux succès de sélection de variétés<br />

végétales stabls et résistantes (Hendy et al., 1985).<br />

Figure 22. - Cycle de développement simplifié d'un Meloidogyne (inspiré de de Guiran, 1983). Le 3e<br />

et le 4e stades larvaires évoluent sans se nourrir à l'intérieur de la cuticule du 2e stade. Le stade<br />

infectieux est le 2e stade. Dans le sol les premiers stades larvaires sont inclus dans des kystes très<br />

résis tan ts.<br />

La lutte contre les principaux nématodes nuisibles aux céréales, Ditylenchus dipsaci,<br />

Heterodera avenae et Pratylenchus sp. ne se limite pas au respect des systèmes culturaux<br />

diminuant la fréquence, en un même lieu, des plantes multiplicatrices. En effet, cette<br />

technique met en œuvre des rotations de trop longue durée, souvent incompatibles avec<br />

les contraintes économiques. L'apport supplémentaire de fumure azotée, qui permettait<br />

jusqu'à présent de masquer les hétérogénéités de végétation, est également remis en<br />

cause pour les mêmes raisons. C'est pourquoi on observe le succès croissant des variétés<br />

sélectionnées pour leur résistance, comme c'est le cas par exemple au Danemark et en<br />

Suède pour les cultures d'orge, cette résistance pouvant dans certains cas particuliers se<br />

manifester par un développement incomplet des femelles (Rivoal et al., 1978 ; Person­<br />

Dedryver, 1984).<br />

Les larves infestantes de D. dipsaci, au début du 4e stade, pénètrent au collet des pieds<br />

d'avoine ou de maïs à la faveur d'un film d'eau. Après métamorphose en formes adultes,<br />

le nématode se multiplie dans le parenchyme des variétés sensibles, en provoquant la<br />

séparation des cellules, le gonflement du collet et la formation de cavités.<br />

La sélection des individus résistants se fait après infestation de la parcelle expérimentale<br />

par apport du nématode dans le champ ou par son inoculation dans la plante hôte.<br />

La sélection est définie par la réaction du végétal, la multiplication du nématode et les<br />

relations entre ces deux critères.<br />

Dans le cas de Heterodera avenae, nématode endoracinaire inféodé au blé, à l'avoine<br />

et au maïs, le corps même des femelles se transforme en kyste, contenant plusieurs<br />

centaines de larves. Après une phase de dormance levée par des conditions thermiques<br />

et hydriques favorables, ces larves éclosent et envahissent le système racinaire des<br />

plantes hôtes.<br />

Les variétés résistantes limitent ou freinent la multiplication de ces ravageurs. De<br />

telles variétés d'orge et d'avoine sont commercialisées pour leur résistance stable à<br />

H. avenae (person-Dedryver, 1983). En condition de plein champ elles occasionnent une<br />

baisse annuelle de 60 à 80 p. 100 des populations.<br />

Annexes Chapitre 6<br />

62


CHAPITRE 7<br />

NOUVELLES ORIENTATIONS <strong>DE</strong> LA <strong>LUTTE</strong> CONTRE LES INSECTES<br />

Objectifs :<br />

Ne pas tuer Finsecte par un toxique toujours trop polyvalent mais :<br />

- le repousser ou bien l'attirer dans un piège<br />

- ou perturber sa biologie ou son comportement pour le rendre inoffensif avec des produits très spécifiques<br />

A. CIBLEES SUR LE COMPORTEMENT <strong><strong>DE</strong>S</strong> <strong>RAVAGEURS</strong><br />

a. Répulsifs<br />

- Répulsifs physiques : lames d'aluminium<br />

- Répulsifs chimiques : autrefois naphtaline, paradichlorobenzène<br />

aujourd'hui contre les termites pentachlorophénol<br />

pentachlorophénate de Na<br />

- Répulsifs systémiques : azadirachtine triterpénoïde tirée de Azadirachta indica arbre de la famille des Méliacées<br />

- Phéromones de synthése<br />

- Phéromones de marquage de ponte<br />

b. Antiappétants (Antifeedants )<br />

Substances agissant par contact qui inhibent le comportement de prise alimentaire.<br />

- antiappétants absolus<br />

- antiappétants relatifs<br />

c. Attractifs<br />

1. Alimentaires<br />

- Etudiés pour la mise au point de milieux artificiels d'élevage (alcaloïdes, glucosides, essences, • • • )<br />

» Hypera punctata (Coléoptère CUrculionidé Phytonome) sur trèfle, attiré par la coumarine.<br />

» Altises des Crucifères (Phyllotreta sp. Coléoptères Chrysomélidés) attirés par l'allyl-lsothiocyanate.<br />

» Mouche de l'Oignon (Delia antiqua Diptère Brachycère ) attirée par des sulfites organiques .<br />

- utilisés dans des pièges permet de noter les dates d'apparition des ravageurs.<br />

» Géraniol ---> popilia japonica (Coléoptère).<br />

» Butylsorbate ---> Hanneton de mai.<br />

» Phénol ---> Cyclocephala insulicola (Hanneton antillais).<br />

- Associés aux insecticides = Spécificité<br />

» Hydrolysats de protéines ---> mâles et femelles de Cératite (Diptère Brachycère Trypetidé).<br />

2. Hormonaux<br />

Ce sont des substances de synthèse qui miment les phéromones.<br />

Différents types de phéromones : phéromones de trace (fourmis)<br />

phéromones d'alarme<br />

phéromones d'agrégation(Scolytidés)<br />

phéromones sexuelles ou sexphéromones<br />

» Grand paon de nuit : femelle attire mâle jusqu'à 30 km !<br />

Nouvelles orientations<br />

63


Composés de synthèse mimant les sexphéromones appelés "lures" (leurres).<br />

Nouvelles Orientations<br />

- Giplure ---) Bombyx disparate (Lymantria dispar Lépidoptère Lymantriidé): synthèse facile et bon marché, actif à une dilution de<br />

1/10 millionième de microgramme i pour 10 dollars: 500.000 pièges actif pendant 300 ans!<br />

- CUe-lure ---) Dacus cucurbitae et D. tryoni (Diptères Brachycères).<br />

- Siglure l<br />

- Medlure J ---) Cératite et Rhagoletis completa (Diptères Brachycères).<br />

- Trimedlure<br />

- Grandlure ---) Anthonomus grandis<br />

ex. d'utilisation des nluresll<br />

- pièges et appâts<br />

- Méthode de saturation ou de confusion<br />

- Méthode d'inhibition<br />

- Piégeage aux sexphéromones utilisé pour abaisser le nombre de mâles avant une lutte autocide.<br />

d. Signaux acoustiques<br />

» Effarouchement des Corneilles<br />

» Ultrasons. Les papillons d' ostrinia nubilaIis (la Pyrale du maïs, Lépidoptère Crambidé) s'éloignent lorsqu' ils perçoivent les<br />

ultrasons émis par les Chauves Souris.<br />

B. CIBLEES SUR LA PHYSIOLOGIE <strong><strong>DE</strong>S</strong> <strong>RAVAGEURS</strong><br />

a. Emploi de biocatalyseurs<br />

1. Hormones juvéniles et régulateurs de croissance<br />

Sous le contrôle endocrine de la pars intercerebralis, la glande prothoracique sécrète l'ecdysone, hormone de mue.<br />

Le type de mue, larvaire, nymphale ou imaginale, est déterminée par le taux hélllolymphatique d'hormone juvénile, la néoténine,<br />

sécrétée par les corpora allata.<br />

Ablation des corpora allata =) mue imaginale prématurée.<br />

Greffe des corpora allata =) prolongation de l'état larvaire.<br />

De très nombreux composés mimant la néoténine ont été synthétisés.<br />

Régulateurs ou mieux inhibiteurs de croissance, ils interfèrent dans les mécanismes de mue et de métamorphose.<br />

Propriétés<br />

- action possible par inhalation<br />

- actifs à très faibles doses<br />

- peu toxiques pour les Vertébrés<br />

- action sur les oeufs d'insectes (embryogenèse stoppée, ovocyte stérilisé avant ponte dans ovarioles)<br />

sur les larves =) super larves<br />

sur les nymphes =) imagos mais organes génitaux atrophiés<br />

sur les adultes =) femelles stérilisées<br />

mâles traités stérilisent femelles par accouplement<br />

- Endoparasitoïdes ne sont pas affectés<br />

64


Applications<br />

» sur coleophora laricella (Lépidoptère Cléophoridé) dont les chenilles sont mineuses sur essences forestières.<br />

273 g!ha => 96% de mortalité<br />

» sur stomoxys calcitrans (Diptère Brachycère) dont imago hématophage sur bétail.<br />

additifs alimentaires (150 mg/jour) contre adultes<br />

additifs au fumier frais contre larves<br />

Autres inhibiteurs de croissance<br />

- Difflubenzuron => agit sur la formation de la chitine.<br />

larves incapables de rejeter leur exuvie => mort.<br />

Nouvelles Orientations<br />

- Utilisation envisagée<br />

des azostérols qui stoppent la mue et la croissance.<br />

des phéromones émises en cas de surpopulation (effet de masse) qui sont toxiques pour les larves et retardent leur développement.<br />

2. Emploi d'hormones et de vitamines<br />

- Hormone de mue ou ecdysone<br />

bloquent le développement et provoquent la stérilité.<br />

- Hormones de diurèse ou de salivation<br />

- Phéromones de marquage de ponte<br />

» cas de Rhagoletis cerasi La Mouche de la Cerise.<br />

- Phéromones émises en cas de surpopulation (effet de masse)<br />

- Hypervitaminose D<br />

» détruit les rats devenus résistants à la coumarine (antivitamine K).<br />

b. Elimination de la diapause<br />

- Par hybridation<br />

entre espèces allochtones ne présentant pas les mêmes cycles saisonniers<br />

- Par rupture du cycle circadien<br />

par éclairement bref durant la scotophase<br />

- Par hormones juvéniles<br />

(voir § précédent)<br />

c. Induction d'asynchronisme avec l'hôte<br />

65


Fig. 15<br />

Tab, 2t<br />

Hormones<br />

HORMONE<br />

JUVENILE<br />

ECDYSONE<br />

HORMONE PTTH<br />

(prothoraticotrophique)<br />

HORMONE<br />

D'ECLOSION<br />

SURSICON<br />

<br />

<br />

accouplement<br />

migration'<br />

oviposition<br />

glandes<br />

prothoraciques<br />

liPogenèse : hormone adipocinétique<br />

protéolyse : hormone d'éclosion<br />

glycémie<br />

substance diurétique : CTSH<br />

tonus musculaire :proctaJine<br />

tannage cuticulaire : bursicon<br />

GLAN<strong>DE</strong><br />

'MUE et METAMORPHOSE<br />

METAMORPHOSE et COMPORTEMENT<br />

- Principales fonctions physiologiques endocrines et neuroendocrines des insectes<br />

holométaboles.<br />

Organe de<br />

secrétion<br />

CORPS<br />

ALLATES<br />

PROTHORACIQUE<br />

Cellules neurosécrétrices<br />

centrales<br />

CERVEAU<br />

GANGLIONS<br />

ABDOMINAUX<br />

Fonctions physiologiques et<br />

concentrations dans l'hémolymphe<br />

4° stade 50 stade Chrysalide<br />

larvaire larvaire<br />

METAMORPHOSE METAMORPHOSE,<br />

PUPAlE<br />

cellulaire ' apolyse<br />

IMAGINALE<br />

pmgca<br />

chement de la<br />

./<br />

,<br />

'<br />

glande prothoracique<br />

<br />

lA<br />

cuticulaires<br />

induit par<br />

le 2ème pic<br />

d'ecdysone<br />

provoque l'exuviation.<br />

Tannage<br />

des protéines<br />

Imago<br />

Annexes Chapitre 7<br />

V MATURATION<br />

- glandes phéromonales<br />

- ovaires<br />

- glandes accessoires<br />

,<br />

- Concentrations sanguines et fonctions physiologiques des principales substances endocrines et neuroendocrines au<br />

cours du développement d'un insecte holométabole (d'après Retnakaran el al., 1985).<br />

66


La phéromone sexuelle émise par les femelles vierges du carpocapse, le trans-<br />

8-trans-1O-dodecadièn- l-ol (synonyme de codlelure) est facilement synthétisée. Des<br />

pièges en carton paraffiné, dont le fond est englué, contiennent une capsule de<br />

caoutchouc imprégné avec 1 mg de cet attractif. Les pièges sont disposés à hauteur<br />

d'homme tous les 30 à 50 m selon un axe perpendiculaire à la direction la plus fréquente<br />

du vent. On implante environ un piège pour 1 à 2 hectares. Toutes les 6 semaines de<br />

nouvelles capsules sont introduites dans les pièges qui sont contrôlés tous les jours.<br />

En fin de vie larvaire, les chenilles de première ou deuxième génération sortent du<br />

fruit pour hiverner sous terre. Pour cela une forte proportion d'entre elles descendent le<br />

long du tronc. L'installation de bandes pièges en carton ondulé qui ceinturent le tronc,<br />

pennet de capturer et de dénombrer ces chenilles. Mises en place dans la première<br />

quinzaine de juin, à raison de 30 bandes pour un verger homogène de 1 à 4 hectares, ces<br />

pièges sont contrôlés hebdomadairement et pennettent de bien estimer la population du<br />

ravageur au début de l'hiver.<br />

Durant l'été, alors que l'insecte consomme les pommes, on peut avoir une idée précise<br />

du niveau de population du ravageur en dénombrant les fruits attaqués. Pour cela, une<br />

classification des dégâts a été établie. Elle pennet non seulement d'avoir une estimation<br />

de l'effectif larvaire du ravageur, mais aussi de prévoir son évolution démographique<br />

puisqu'à chaque type de dégâts correspond un stade phénologique précis de l'insecte<br />

(fig. 18).<br />

Différents modèles de «cages de sorties » d'adultes ont été conçus depuis fort<br />

longtemps. Placées entre 2 arbres du milieu du verger, enterrées de 5 cm dans le sol, ces<br />

cages reçoivent à l'automne 20 à 40 chenilles diapausantes. Au printemps suivant, la<br />

sortie des papillons est observée facilement alors que, dans la nature, le repérage des<br />

premières émergences est plus délicat.<br />

Le début et la durée de la ponte du carpocapse, le nombre et la localisation des œufs<br />

déposés par une femelle, l'état sanitaire de la progéniture, peuvent être évalués par la<br />

mise en place de manchons de ponte. Ils sont conçus en toile de tergal et entourent<br />

plusieurs branchettes de pommier porteuses de bouquets fruitiers.<br />

La technique d'infestation artificielle a permis d'estimer la mortalité des jeunes larves<br />

au cours de la recherche du fruit. Afin de réduire les perturbations comportementales,<br />

les larves issues de pontes prélevées sur d'autres arbres, sont introduites 12 heures<br />

seulement après leur naissance dans le verger considéré.<br />

Grâce aux considérables progrès accomplis dans la mise au point de milieux<br />

artificiels, un nombre sans cesse croissant de ravageurs peuvent être élevés au<br />

laboratoire. Dans le cas du carpocapse cette technique a autorisé une étude très précise<br />

de la biologie de cette espèce, mais aussi a été le moyen d'obtenir un nombre élevé<br />

d'individus pour infester des parcelles expérimentales.<br />

Annexes Chapitre 7<br />

67


Conclusion<br />

Il est indéniable que les composés organiques de synthèse ont été, sont et seront,<br />

de la fin de la Deuxième Guerre mondiale à l'an 2000, largement employés à des<br />

fins phytosanitaires. En fait c'est avant tout l'usage abusif de ces substances qui<br />

induisit les différents problèmes déjà évoqués (chap.4) et incita à la recherche de<br />

nouvelles molécules ou de nouvelles stratégies.<br />

Au cours des douze dernières années de notre siècle nous allons assister à une<br />

profonde évolution des méthodologies de criblage des molécules à intérêt phyto­<br />

sanitaire :<br />

- Le tri exhaustif et empirique pratiqué aujourd'hui tous azimuts, sera<br />

remplacé demain par une étude très précise du récepteur moléculaire visé qui<br />

permettra de concevoir une nouvelle molécule qui viendra très exactement s'y fixer<br />

avec une affinité absolue. Les nombreux paramètres à considérer · rendaient<br />

délicates ces études qui sont aujourd'hui grandement facilitées par l'emploi de<br />

logiciels d'informatique permettant une rapide conception spatiale des molécules<br />

et une mesure très précise des liaisons inter-atomiques qui la caractérisent<br />

(conception assistée de molécules).<br />

- Par là même, le mode d'action de la molécule synthétisée sera précisé, ce qui<br />

justifiera l'association avec d'autres molécules à effet complémentaire. L'exemple<br />

cité de l'emploi simultané de la caféine et d'une formamidine, deux molécules à<br />

effets synergiques, a conduit à la création d'un nouvel insecticide très performant.<br />

- Enfin l'évolution portera sur la recherche de sites d'action très caractéristi­<br />

ques de l'ennemi cible. Les avermectines agissant seulement au niveau de synapses<br />

caractéristiques des insectes, ou bien les inhibiteurs de la synthèse de la chitine, en<br />

sont des exemples encourageants.<br />

La lutte chimique connaîtra par ailleurs une évolution qui portera sur l'origine<br />

et la nature chimique des molécules :<br />

- On assiste à un remplacement progressif des composés organochlorés, trop<br />

rémanents dans les agrosystèmes, ou des organophosphorés pour lesquels on<br />

connaît trop de cas de résistance, par des substances d'origine biologique plus<br />

spécifiques, moins rémanentes, et présentant une plus grande innocuité pour les<br />

vertébrés à sang chaud dont l'homme. Les pyréthrinoïdes rendus photostables et<br />

plus actifs en sont l'exemple actuel le plus frappant. Ces progrès peuvent aussi être<br />

illustrés par le fait qu'en 1940 la protection d'un hectare de culture contre un<br />

ravageur exigeait environ 1 kg de matière active, alors qu'aujourd'hui 7 g suffisent<br />

pour obtenir le même effet.<br />

- Des équipes sans cesse plus nombreùses isolent chaque jour des plantes<br />

(telle Dalbregia retusa, arbre originaire du Panama et connu pour résister à toute<br />

attaque d'insectes et de champignons ; ou des Nivrées, plantes d'Amérique du Sud<br />

utilisées par les indigènes pour pêcher les poissons qu'elles foudroient !) de venins<br />

d'ar:hroodes ou de micro-organismes, des substances insecticides de petit poids<br />

molculale apparentées aux néoflavanoïdes, quinoïdes, cinnomylphénols, cydo­<br />

depslpeptldes ou même des protéines de gros poids moléculaire.<br />

Annexes Chapitre 7<br />

68


CHAPITRE 8<br />

<strong>LUTTE</strong> INTEGREE, PROTECTION INTEGREE, PRODUCTION INTEGREE<br />

A. EVOLUTION <strong><strong>DE</strong>S</strong> CONCEPTS ET <strong>DE</strong>FINITIONS<br />

Lutte chimique conseillée = lutte dirigée<br />

Lutte Intégrée<br />

Il s'agit de substituter à une lutte chimique systématique dont les traitements sont fixés sur le calendrier, une utilisation réfléchie<br />

des pesticides en tenant compte de leur spectre d'action et sur la base d'un système d'avertissement agricole informant des risques<br />

phytosanitaires réellement encourus dans la région considérée.<br />

Lutte raisonnée<br />

Prise en compte des ni veaux des populations de ravageurs effectivement présents.<br />

utilisation de pesticides ayant de faibles répercussions écologiques afin de sauvegarder les auxiliaires.<br />

=> apparition des notions de seuil de tolérance et de seuil d'intervention : utilisation d'insecticides lorsque les populations de<br />

ravageurs économiquement importants dépassent le seuil d'intervention, afin d'éviter des dégâts non tolérables.<br />

Lutte intégrée<br />

Substitution autant que possible des moyens biologiques, biotechniques et culturaux aux procédés chimiques.<br />

Experts F.A.O. Rome 1968<br />

"Système de régulation des populations des ravageurs, qui compte tenu du milieu particulier et de la dynamique des populations des<br />

espèces considérées , utilise toutes les techniques et méthodes appropriées de façon aussi compatible que possible et maintient les<br />

populations de ravageurs à des niveaux où ils ne causent pas de dommages économiques ."<br />

Nécessité de la lutte intégrée générée par :<br />

- insuffisances et inconvénients de la lutte chimique<br />

- insuffisances des autres méthodes de lutte<br />

- impératifs économiques<br />

(recherche de rentabilité par diminution des doses de pesticides et des fréquences des traitements )<br />

Protection intégrée<br />

Apparition du concept de gestion raisonnée des agrobiocénoses => amélioration de l'état sanitaire des cultures avec une réduction de 30<br />

à 50% du nombre de traitements .<br />

Production intégrée<br />

Gestion intégrée de la production en prenant en compte la physiologie de la plante cultivée, de son écosystème.<br />

B. PRINCIPES <strong>DE</strong> LA <strong>LUTTE</strong> INTEGREE<br />

a. Prise en compte du contexte écologique<br />

- Pour tirer le meilleur parti des facteurs susceptibles de limiter les populations .<br />

variations saisonnières du climat.<br />

exposition, situation, nature du sol des parcelles.<br />

- utilité des stations refuges. La complexité de l'agrocénose augmente sa stabilité (multiplicité des interactions).<br />

Hérésie de la "clean culture".<br />

69


. Etude de la dynamique des POPulations de ravageurs<br />

- Pour déterminer l'opportunité des interventions<br />

suppression des traitements "d'assurance"<br />

des calendriers de traitements<br />

- Etablissement des cycles de populations<br />

sur plusieurs générations pour les espèces polyvoltines.<br />

sur plusieurs années pour les espèces monovoltines.<br />

- Détermination des dates d'intervention<br />

maximum d'efficacité contre le ravageur.<br />

minimum de destruction des auxiliaires.<br />

- Détermination du choix du pesticide<br />

champ d'activité adapté au ravageur à détruire.<br />

c. "Intégration" des procédés de lutte biologique à la lutte chimique<br />

C. REALISATION PRATIQUE<br />

a. Influence de l'environnement sur les populations<br />

Lutte Intéqrée<br />

» Abricotiers cultivés en terrain sec => mortalité élevé du Capnode ou Bupreste noir (Capnodis tenebrionis coléoptère Buprestidé).<br />

» Fossés bordant les vignes => Chenilles bourrues (Arctia ca ja Lépidoptère Arctiidé) immergées durant leur diapause hi vernale sous<br />

touffe d'herbe ou motte de terre.<br />

b. Dynamique des populations<br />

1. Prognose hivernale<br />

» Archips rosana Lépidoptère Tortricidé sur Troène, chenilles mineuses aux premiers stades larvaires , plus âgées enroulent feuilles<br />

avec soie et les consomment.<br />

- détection des stades d'hibernation sur le bois de taille (2m de branches ).<br />

mais prévision aléatoire car conditions climatiques du printemps<br />

action des entomophages<br />

pas d'indication sur stades fixés aux grosses branches<br />

- établissement de barèmes d'infestation pour un lieu donné.<br />

2. Contrôle visuel<br />

- Examen d'organes végétaux (bourgeons , bouquets floraux, feuilles, jeunes pousses et fruits).<br />

- Niveau de population et dégâts exprimés en % => évaluation-déduction de la menace.<br />

- Contrôles périodiques.<br />

Cette méthode permet de suivre la progression des effectifs du ravageur.<br />

de déceler l'existence et l'importance des auxiliaires.<br />

de décider de l'opportunité du traitement.<br />

Elle nécessite une bonne connaissance des différents stades de développement des ravageurs.<br />

de leurs dégâts.<br />

des auxiliaires.<br />

70


3. Piégeage<br />

lumineux, alimentaire ou sexuel<br />

le piégeage renseigne sur la présence d'un ravageur, pas sur l'importance de ses populations.<br />

c. Seuil économique de tolérance<br />

Rentabilité d'un traitement = coût du traitement/augmentation de la récolte<br />

Seuil économique de tolérance : densité de population dont le dépassement demande une intervention dont le coût est inférieur aux<br />

pertes envisagées.<br />

Seuil minimum : effectif minimum d'une population de ravageur nécessaire pour permettre le maintien des entomophages.<br />

L'objectif n'est pas protéger un marché pour lequel le seuil de tolérance = 0, mais de protéger une culture.<br />

d. Choix des pesticides<br />

Traitement à déclencher lorsque la population dépasse le seuil de tolérance.<br />

Insecticide sélectif couvrant l'éventail des ravageurs à détruire<br />

épargnant les divers entomophages<br />

sélectivité physiologique et écologique<br />

Lutte Intêgr6e<br />

Ne pas chercher l'éradication => problème de niche écologique vide favorisant l'apparition de nouveaux ravageurs.<br />

» éradication de Lymantria dispar (le Bombyx disparate, Lépidoptère Lymantriidé) sur Quercus suber en Espagne => relllplacée par Tortrix<br />

viridana (la Tordeuse verte du Chêne, Lépidoptère Tortricidé).<br />

Traiter le minimum de surface : phytophage peu mobile ---) traiter seulement les parties infestées de la culture.<br />

Ces différents principes énoncés sont ceux de la lutte dirigée qui constitue la 1ère étape de la lutte intégrée.<br />

e. Mise en oeuvre de programmes de lutte intégrée<br />

Nécessite de nombreuses observations<br />

. des connaissances poussées<br />

Les Services d'avertissement actuels ne prennent pas assez en compte les conditions locales.<br />

D. EFFICACITE ET RENTABILITE <strong>DE</strong> LA METHO<strong>DE</strong><br />

a. Comment une réduction du nombre et/ou de l'intensité des traitements n'entraîne-t-elle pas de pullulations ?<br />

- la densité moyenne des populations oscille autour d'une moyenne.<br />

(notion dléquilibre biologique)<br />

- les oscillations ont ± dl amplitude suivant la pression des facteurs biotiques et abiotiques.<br />

71


Lutte Intéqrée<br />

- ce phénomène peut être représenté par un pendule oscillant sur une échelle logarithmique.<br />

- la pression des facteurs limitants (naturels ou pesticides) ramène le niveau de population en un point A.<br />

- si ces facteurs disparaissent le niveau de population passe en A' (symétrique de A par rapport à la position d'équilibre). Plus A<br />

est faible 1 plus A' sera élevé.<br />

- en milieu cultivé et fortement traité augmentation de l'amplitude des oscillations et déplacement de la position d'équilibre .<br />

b. Limite de rentabilité des traitements insecticides<br />

... " .... ... ...<br />

10 o<br />

(cf graphique)<br />

Au delà d'un seuil le produit brut de la récolte reste constant.<br />

le bénéfice net décroît fortement.<br />

/00<br />

Rrvenv<br />

c. Comparaison lutte dirigée / lutte intégrée<br />

100<br />

:::B "dïe ë.<br />

-, - - - - - - - - - -<br />

t .<br />

Tt'us !ixeS<br />

1<br />

1<br />

Le prix de revient de la lutte intégrée est à peu près égal actuellement à celui de la lutte chimique :<br />

- dépenses d'achat de pesticides réduites.<br />

- dépenses supplémentaires investies en surveillance, tri des fruits.<br />

Qualité à peu près équivalente.<br />

Pollution de l'environnement fortement réduite (nombre de traitements réduit de l/ J )'<br />

Pas d'apparition de races résistantes.<br />

io<br />

72


Fig. 16<br />

niveau de<br />

population<br />

ravageur<br />

auxiliaires<br />

l<br />

niveau<br />

d'équilibre<br />

<br />

7 \.SLI\SJ<br />

niveau de<br />

population<br />

auxiliaires<br />

CI:<br />

UJ<br />

><br />

l<br />

\<br />

\<br />

\<br />

\<br />

-.L<br />

\<br />

\<br />

ravageur<br />

temps<br />

temps<br />

- Situations d'équilibre ou de déséquilibres entre la population d'un ravageur et ceBe d'un<br />

auxiliaire (parasites, prédateurs ou pathogènes). a : situation d'équilibre ; b : situation de déséquilibre<br />

due à la disparition hivernale de nombreux auxiliaires.<br />

Annexes Chapitre 8<br />

73


Exemple : La dynamique des populations de la processionnaire du pin<br />

• Comme le montra Demolin en 1969, le cycle biologique de Thaumetopoea<br />

pityocampa, phytophage forestier surtout nuisible aux pépinières et source de nuisances<br />

graves par réactions allergiques dans les régions balnéaires, est caractérisé par une<br />

succession de phases dont la durée relative est fonction de la latitude et de l'altitude du<br />

biotope considéré.<br />

L'émergence des adultes s'étend du mois de mai dans les régions les plus élevées ou<br />

les plus septentrionales, au mois de décembre dans les zones très méridionales. Les<br />

papillons, de mœurs nocturnes, sont difficiles à observer et ont d'ailleurs une durée de<br />

vie très courte.<br />

Les processions de chenilles caractérisent un comportement de groupe, tant pour la<br />

recherche d'aliments en été, que pour le choix d'un site d'enfouissement de la colonie<br />

dans le sol où ces larves vont se transformer en chrysalides. Ces déplacements ont lieu<br />

de fin janvier au mois de mai, suivant la rigueur de l'hiver (fig. 13).<br />

CD<br />

----------------<br />

- Migrations effectuées sur un pin par une colonie de Thaumetopoea pityocampa (d'après<br />

Demolin, 1969). 1 : pontes sur les aiguilles. 2 : emplacement du 2e stade larvaire ; 3 : =placement du<br />

3e stade larvaire ; 4: nids d'hiver de 4e et se stades ; S : enfouissement pour nymphose ; 6: sortie des<br />

papillons.<br />

Annexes Chapitre 8<br />

74


Dans les régions où le ravageur a un cycle annuel, cette phase souterraine s'étend de<br />

février à juillet ; par contre, dans les régions plus froides, une proportion importante de<br />

la population reste enfouie toute l'année, voire même plus, donnant naissance aux<br />

imagos ou insectes parfaits, 1, 2 ou 3 ans plus tard .<br />

. Grâce à l'élaboration d'un abaque (fig. 14) il est facile de prévoir avec une<br />

remarquable précision l'évolution de tous les stades de développement du ravageur en<br />

fonction de la date d'émergence des papillons.<br />

00 LIMITE NORD ET EN ALTITU<strong>DE</strong><br />

- -'- --r- - - - - - -; - - - -<br />

3<br />

ë5<br />

CI:<br />

ü<br />

:<br />

.<br />

1600m<br />

] Climat<br />

aquitanien<br />

Climat<br />

E 0 --lffiI1mTfi*"rP'"<br />

"'-1 1t_---<br />

--_I méditerranéen<br />

<br />

<br />

::><br />

o<br />

w _ ..<br />

o<br />

::><br />

l-<br />

5<br />


Tab. 23<br />

- Complexe de parasites, prédateurs et pathogènes associés à la Processionnaire du pin.<br />

Oeufs Chenilles Chrysalides Adulte<br />

Phryxe caudata<br />

(Syrphide) Villa brunnea<br />

Compsilura concinnata (Bombyliide)<br />

(Tachinide)<br />

Parasites Chalcidiens Erigorgus femorator Ichneumon rudis<br />

(Ichneumonide) (Ichneumonide)<br />

Meteorus versicolor Conomorium eremita<br />

(Braconide) (pteromalide)<br />

Prédateurs Ephippiger sp. Xanthandrus comtus Vespa germanica<br />

(Syrphide) (Vespide)<br />

(F ormicide)<br />

Pathogènes Baculovirus Paecilomyces fumosoroseus<br />

Bacillus thuringiensis (Hyphomycète)<br />

Ces études complexes, longues et onéreuses car obligatoirement répétées dans l'espace<br />

et dans le temps, ont cependant donné des résultats d'une étonnante précision. Elles<br />

permettent aujourd'hui d'importantes économies puisque la seule connaissance de la<br />

période d'émergence des adultes permet de déduire dans n'importe quelle région<br />

l'évolution du ravageur et les dates d'interventions phytosanitaires éventuelles.<br />

Annexes Chapitre 8<br />

76


Lutte chimique aveugle<br />

- Schéma d'évolution des méthodes de protection des cultures<br />

(Bull. OILB/SROP 1977/4, 130).<br />

• Utilisation sans discrimination des pesticides les plus<br />

efficaces d'après un schéma fixe, préétabli<br />

1 Agriculteur 1 of 1 Représentant de l'industrie 1<br />

Lutte chimique conseillée<br />

Lutte dirigée<br />

Phase statique<br />

• Utilisation réfléchie de pesticides à large spectre d'action<br />

en relation avec un service d'avertissement<br />

1 Agriculteur 1 of<br />

1 Système d'avertissement 1<br />

Phase statique améliorée<br />

• Introduction de la notion de " seuil de tolérance "<br />

• Pesticides à faible répercussion écologique<br />

• Sauvegarde des organismes auxiliaires existants<br />

1 Agriculteur formé 1 1 Conseiller technique 1<br />

of<br />

Protection intégrée<br />

• • •<br />

•<br />

•<br />

(comme lutte dirigée)<br />

Phase transitoire<br />

Intégration de moyens de lutte biologique ou biotechnique<br />

ainsi que de moyens culturaux<br />

Limitation maximale de la lutte chimique<br />

1 Agriculteur formé 1 ... 1 Conseiller technique 1<br />

t 1 1<br />

Production agricole intégrée<br />

*. * • *<br />

(comme lutte intégrée)<br />

Conseiller phytosanitaire 1 . i t<br />

Phase dynamique limitée<br />

* Souci d'un développement physiologique équilibré<br />

de la plante application de « Techniques intégrées "<br />

•<br />

(ex. fumure raisonnée)<br />

Respect intégration et valorisation de tous les facteurs<br />

positifs de l'agro-écosystème<br />

Agriculteur formé,<br />

1 Tech nicien j +-- responsable<br />

. _/ ,ngénieur /<br />

agricole _ 1-- agronome<br />

des décisions<br />

.., j.<br />

Phytopathologue - Entomologiste<br />

Physiologiste - Ecologiste<br />

Chimiste - Généticien<br />

Toxicologue - Météorologue<br />

1 Marché Industrie Consommateur 1<br />

Phase dynamique globale<br />

Réponse aux exigences<br />

écono- écolo- toxicomiques<br />

giques logiques<br />

. --- . _ --- .. --<br />

.. -- .. -- .. - -<br />

... - .--- .. --<br />

•••• ... - ... -<br />

•••• •••• ••••<br />

Annexes Chapitre 8<br />

-<br />

77


Des succès convaincants<br />

Annexes Chapitre 8<br />

Les agriculteurs du Lauragais, sillon encaissé au sud de la France, ont essayé de<br />

,<br />

diversifier leurs productions végétales au début des années 60. En quelques nnees<br />

le colza d'hiver a été attaqué par divers insectes tels que charançons, altIses et<br />

cécidomyies des siliques. Des insecticides chimiques rémanents et à large spectre<br />

furent utilisés ; très vite alors, des races résistantes apparurent et de nouveaux<br />

ravageurs jusqu'ici efficacement maintenus à de faibles effectifs se multiplièrent.<br />

Les dégâts étaient tels, que même après 4 traitements insecticides annuels les<br />

rendements n'excédaient pas 20 quintaux par hectare. Devenue non rentable, la<br />

culture de colza a été arrêtée en 1966 (fig. 62) (Jourdheuil, 1986).<br />

Rendements en"q/ha<br />

26 __ 'S urfaces<br />

24<br />

22<br />

20<br />

18<br />

16<br />

__ Rendements<br />

1960 61 62 63 64 65 66 67 68 69 70 71 72 73 74 Années<br />

Surfaces cultivées<br />

en ha<br />

6000<br />

5000<br />

4000<br />

3000<br />

2000<br />

1000<br />

. - Disparition puis retour de la culture du colza dans le Lauragais grâce à l'aménagement<br />

d'une lutte chimique raisonnée contre les ravageurs (d'après Jourdheuil, 1986).<br />

En 1969, à l'instigation du CETIOM (Centre d'Etudes Techniques Interprofessionnelles<br />

sur les Oléagineux Métropolitains), quelques cultures de colza furent à nouveau<br />

introduites dans cette région. Une lutte chimique raisonnée fut tentée. L'un des principes<br />

de base:-de cette stratégie consiste à ne pas introduire d'insecticides à large spectre<br />

lorsque les auxiliaires naturels ont leur efficacité maximale dans les champs. L'INRA<br />

étudia l'entomofaune locale et réussit à établir des séquences d'intervention chimique.<br />

De plus, les éventuels traitements insecticides ne sont décidés qu'en extrême nécessité<br />

définie par un contrôle constant et régulier des niveaux de populations de ravageurs.<br />

Ainsi en 1970 seulement 2 traitements insecticides ont été appliqués, et 2 ans plus tard,<br />

en 1972 un seul. Dès 1973, aucun insecticide chimique n'était utilisé, les populations<br />

auxiliaires contrôlant celles des ravageurs dans des conditions telles que les rendements<br />

atteignirent 25 quintaux par hectare. Cette stratégie de lutte est aujourd'hui étendue à<br />

l'ensemble des cultures de colza de notre pays.<br />

78


La notion de seuils<br />

Par définition, un seuil est le niveau d'un facteur variable dont le franchisse­<br />

ment détennine une brusque vari tion dans une série. L'introduction de cette<br />

notion dans l'étude conceptuelle des méthodes de protection phytosanitaire fut<br />

l'étape la plus importante .de ces trente dernières années. Panni les récentes<br />

publications traitant de ce sujet, nous invitons le lecteur à consulter le numéro<br />

spécial de la revue Entomophaga édité par l'OILB en 1982.<br />

En fonction de leur finalité on distinguera 3 types de seuils :<br />

• le seuil de nuisibilité se traduit par un effet dépressif du ravageur sur la plante<br />

cultivée,<br />

• le seuil de tolérance économique correspond au niveau de population<br />

. au-dessus duquel le coût des dégâts causés par le ravageur est supérieur à celui des<br />

traitements phytosanitaires. Son établissement est délicat et est encore aujour­<br />

d'huil'objet de recherches dans de nombreux pays pour de multiples cultures. Sur<br />

un plan théorique, un modèle mathématique général fut proposé par Chiang en<br />

1979. Il permet de formuler le seuil de tolérance économique de la façon suivante :<br />

efficacité<br />

du<br />

traitement<br />

Coût du traitement<br />

rendement<br />

X de la<br />

culture<br />

X<br />

X<br />

facteur de<br />

tolérance de<br />

la plante<br />

prix de<br />

la<br />

récolte<br />

X<br />

X<br />

effet de la température<br />

% réduction<br />

rendement<br />

due à un<br />

insecte<br />

% insectes<br />

X provoquant<br />

des dégâts<br />

Retenons plus simplement que la valeur absolue du seuil varie pour une culture<br />

et un ravageur donné en fonction de paramètres agronomiques (exemple : état<br />

sanitaire, vigueur de la plante cultivée ... ) ou économiques (prix de la denrée, coût<br />

des traitements phytosanitaires ... ) ;<br />

• le seuil d'intervention indicatif, beaucoup plus élevé que le précédent, a pour<br />

objectif, sur le plan de l'application pratique, de définir dans quelles conditions il<br />

est indispensable d'agir. Plurimétrique, il indique au praticien l'attitude à adopter<br />

en fonction :<br />

- d'un seuil de nuisibilité établi souvent au niveau national,<br />

- du stade phénologique de la plante qui est le plus sensible aux attaques de<br />

ce ravageur,<br />

- des limites précoces et tardives de traitement pour la région concernée,<br />

- d'une évaluation des facteurs antagonistes du ravageur (niveaux des<br />

populations locales des prédateurs, parasites et pathogènes de l'espèce).<br />

En fo nction· de la valeur de ce seuil, l'intervention sera impérative ou<br />

conditionnelle, immédiate ou tardive.<br />

Annexes Chapitre 8<br />

79


Exemple : Prévision des dégâts de la pyrale du maïs en Alsace<br />

Annexes Chapitre 8<br />

Grâce à la régularité des saisons très marquées en Alsace, Stengel en 1982 put<br />

proposer une synthèse qui permit de définir 2 paramètres :<br />

• détermination d'une date de traitement : grâce à l'obtention de variétés hybrides<br />

l'Alsace est devenue une importante région de maïsiculture. Dans cette région, la pyrale,<br />

Ostrinia nubilalis est strictement monovoltine, évoluant de façon remarquablement<br />

synchrone avec la plante hôte.<br />

Le maximum de vols du ravageur a lieu lors de la floraison mâle du maïs. Une analyse<br />

prévisionnelle effectuée sur plus de 15 ans permet d'affirmer qu'en Alsace cette période<br />

a toujours lieu :<br />

- 3 semaines après l'émergence des adultes issus de tiges de maïs enfermées dans des<br />

cages maintenues à l'extérieur au cours de l'hiver,<br />

- ou bien 4 à 5 semaines après la capture du premier mâle dans un piège à<br />

phéromone.<br />

A cette époque la moitié des ooplaques sont déjà déposées et 75 p. 100 des fleurs<br />

mâles de la plante sont sorties.<br />

Cette évolution phénologique de la pyrale du maïs en Alsace s'est avérée directement<br />

en corrélation avec le nombre de « degrés jours » calculés sur la base 10 (il correspond<br />

au nombre de jours pendant lesquels la température a au moins atteint 10°). Ainsi à<br />

35 degrés-jours les premiers adultes de pyrale émergent dans les cages ; à 52 degrésjours,<br />

50 p. 100 des adultes sont éclos .<br />

• détermination d'un seuil d'intervention : en Alsace, lorsque au moins 10 p. 100 à<br />

12 p. 100 des pieds sont porteurs d'une ooplaque il devient économiquement rentable de<br />

traiter aux dates définies précédemment. Le niveau de population est estimé 2 à 3 jours<br />

avant cette date sur 5 lots de 100 pieds de maïs répartis aux angles et au centre du<br />

champ.<br />

Cet exemple illustre les difficultés inhérentes à l'établissement des seuils et dates<br />

d'intervention mais il démontre avec quelle précision on peut déterminer ces<br />

paramètres. Dans les limites de leur champ d'application ces informations sont<br />

mises à la disposition des agriculteurs par répondeur téléphonique automatique.<br />

80


E xemple : Prévision des dégâts des pucerons en culture de blé en France<br />

s céré les à paille, telle le blé d'hiver, sont régulièrement visitées par les pucerons<br />

qw, sporadIquement, engendrent de spectaculaires pullulations, capables de faire chuter<br />

 bon conseil de traitement<br />

o bon conseil de non traitement<br />

o mauvais conseil de traitement<br />

• mauvais conseil de non traitement<br />

- Carte de prévisions de traitement pour un seuil de 5 pucerons par thalle<br />

(d'après Pierre et Dedryver, 1985).<br />

le rendement de la culture. En fait, en région parisienne, les Aphides n'ont provoqué au<br />

cours des dix dernières années des baisses sensibles de rendements qu'en 1975, 1976 et<br />

1983. Pour la même période, la Normandie et la Bretagne ont subi d'importants dégâts<br />

en 1977 et 1980. Les traitements aphicides étant simples et peu coûteux, de nombreux<br />

agriculteurs ont tendance à pratiquer des interventions systématiques.<br />

Pour éviter l'induction de nouveaux problèmes (apparition d'individus résistants aux<br />

insecticides, accumulation de résidus toxiques sur les denrées ou dans le soL.) il<br />

convient de mettre au plus vite à la disposition de l'agriculteur un système de prévision<br />

fiable et simple d'emploi (pierre et Dedryver, 1985 ; Dedryver et al., 1987).<br />

Un tel objectif implique l'acquisition d'un grand nombre de données biologiques et<br />

physiques à partir de multiples régions. A cette fin plusieurs organismes (INRA, SPV,<br />

ACTA, !TCF) ont constitué, en 1978, le réseau «AGRAPlllD » qui recouvre les<br />

régions : Ile-de-France, Normandie, Bretagne, Poitou-Charente et Aquitaine. En<br />

Il champs choisis de façon à constituer un réseau bien réparti dans l'espace, des<br />

paramètres biologiques (tel le nombre de pucerons à l'épiaison) et abiotiques (nombre de<br />

degrés-jours sur la base O·, hauteur des précipitations, nombre de jours de pluie ... ) sont<br />

recensés. Le réseau de pièges à succion ainsi constitué est particulièrement efficace pour<br />

les populations d'Aphides dont l'activité de vol peut être corrélée à l'effectif des<br />

populations sur les cultures et à l'intensité des dégâts qu'ils commettent. Des analyses<br />

statistiques multi-dimensionnelles, telle que l'analyse en composantes principales,<br />

permettent d'établir des corrélations précises entre les maxima de pullulation et le<br />

nombre de pucerons à l'épiaison, l'inverse des hauteurs de pluies des mois d'avril et mai<br />

Oorsque le temps est humide le rôle des Entomophthorales s'accroît (chap. V)), la<br />

somme des températures moyennes supérieures à O·C en février (un mois de février<br />

doux induit des populations parthénogénétiques).<br />

Sans cesse amélioré, le modèle établi a été appliqué avec succès dans plusieurs régions<br />

de notre pays (fig. 20). Cependant des correctifs doivent y être apportés pour certaines<br />

régions puisque par exemple des conseils erronés de non traitements en auraient été<br />

déduits dans le Bassin parisien alors qu'il y a surestimation des populations de pucerons<br />

dans le Finistère.<br />

Dans un proche avenir ces résultats seront accessibles à tous les techniciens des<br />

instituts techniques, des chambres d'agriculture, des coopératives et aux agriculteurs<br />

eux-mêmes qui, à la suite d'une prospection dans leurs champs, consulteront sur le<br />

réseau Minitel une version télématique des conclusions du modèle.<br />

Annexes Chapitre 8<br />

Ce séduisant programme scientifique qui a et aura d'importantes retombées pratiques<br />

à court et moyen terme, contribue à une efficace collaboration scientifique européenne 81<br />

regroupée dans le programme EURAPHID (Cavalloro, 1987).


"<br />

tl<br />

""'<br />

<br />

tl<br />

1<br />

.... .<br />

....<br />

t:i-<br />

....<br />

.... .<br />

TRAITEMENTS FONGIQUES<br />

PREVENTIFS<br />

à<br />

. Beauveria bassiana<br />

dans les tas de cannes de maIs<br />

utilisés pour combustible domestique<br />

(Chine)<br />

. Bacil/us thuringiensis<br />

contre la pyrale<br />

. Pseudomonas transformé<br />

contre les ravageurs<br />

racinalres du maïs<br />

(Etats-Unis)<br />

FONGIQUES<br />

, BeauveriB bassiana<br />

contre la pyrale<br />

Respect des seuils de<br />

tolérance<br />

Raspect des auxiliaires<br />

polllnisateurs<br />

Eviter les pullulations<br />

d'autres ravageurs<br />

LunE INTEGREE<br />

CONTRE LES<br />

<strong>RAVAGEURS</strong> DU<br />

MAIS<br />

<br />

GESTION <strong><strong>DE</strong>S</strong> AUXILIAIRES<br />

prédateurs de pucerons : coccinelles,<br />

chrysopes ; syrphides<br />

parasites de pucerons : Hyménoptères<br />

pathogènes de pucerons : Entomophthorales<br />

TRAITEMENTS BIOLOGIQUES<br />

CURATIFS<br />

Trichogramma sp. contre<br />

la pyrale<br />

- Lutte intégrée contre les ravageurs du maïs .<br />

N<br />

CX)


CD<br />

..<br />

11<br />

j<br />

J<br />

..,<br />

.... ..<br />

"'"<br />

..... ..<br />

....<br />

INSECTICI<strong><strong>DE</strong>S</strong><br />

Verlici/lium /ecan;; contre<br />

aleurodes, pucerons<br />

FONGICI<strong><strong>DE</strong>S</strong><br />

Hansfordia pu/vina ta contre .<br />

C/adosporium fu/vum<br />

Ampe/omyces quisqualis contre<br />

Beauverla bass/ana contre Sphaerotheca fulig/nea<br />

doryphore<br />

NPV Mamestra brassicae<br />

NPV Scotia segetum<br />

PROTECTION<br />

INTEGREE<br />

EN<br />

<strong>CULTURES</strong><br />

PROTEGEES<br />

Encarsia formasa contre<br />

Tria/eurodes vaporariorum<br />

1f<br />

_ Protection intégrée en cultures protégées .<br />

TRAITEMENTS BIOLOGIQUES<br />

CURATIFS<br />

ACARICI<strong><strong>DE</strong>S</strong><br />

("")<br />

co


.,<br />

<br />

11<br />

j<br />

j<br />

0"0<br />

.... .<br />

t:T.<br />

.....<br />

...<br />

ETU<strong>DE</strong> DYNAMIQUE <strong><strong>DE</strong>S</strong><br />

POPULATIONS<br />

EVALUATION <strong><strong>DE</strong>S</strong><br />

SEUILS <strong>DE</strong> TOLERANCE<br />

PROTECTION<br />

INTEGREE<br />

EN VERGERS <strong>DE</strong><br />

CITRUS<br />

<strong>LUTTE</strong> BIOLOGIQUE CONTRE LES <strong>RAVAGEURS</strong><br />

Aleurothrixus floccosus<br />

(Bassin méditerranéen)<br />

Novius cardinalis contre<br />

Icerya purchasi (Californie)<br />

Aphytis melinus contre<br />

Chrysomphalus dictyosperm; '<br />

(Bassin méditerranéen)<br />

Aphytis lepidosaphes contre<br />

Lepidosaphes beckii<br />

(Côte d'Azur)<br />

_ Protection intégrée en verger de citrus,<br />

INSECTICI<strong><strong>DE</strong>S</strong><br />

PREVENTIFS<br />

TRAITEMENTS BIOLOGIQUES<br />

ACARICI<strong><strong>DE</strong>S</strong><br />

CURATIFS<br />

Hlrsutella thompsonii contre<br />

Phyllocoptruta oleivora (Floride)<br />

ou Eulophes guerreronis (Mexique)<br />

""<br />

co


..<br />

<br />

1:1<br />

i<br />

1<br />

<br />

....<br />

0..<br />

-.-1<br />

....<br />

HERBICI<strong>DE</strong> INSECTICI<strong>DE</strong><br />

Colletotrichum . Bacil/us thuringiansis contre<br />

gloeosporioides contre Chllo suppressalis<br />

Aeschynomana viglnica<br />

?ft<br />

NPV contre Mallarpha separa/ella<br />

Respect des seuils de tolérance<br />

Compatibilité des traitements<br />

chimiques avec les procédés<br />

de luite biologique<br />

PROTECTION<br />

INTEGREE<br />

EN<br />

RIZICULTURE<br />

- Protection intégrée en riziculture.<br />

LunE CHIMIQUE RAISONNEE CONTRE<br />

mauvaises herbes<br />

agents phytopathogènes : Pyricularia oryzae<br />

ravageurs : Nilaparva/a lugens ; Chilo suppressalis ;<br />

Ma/iarpha separa/ella ; Hispa gas/roi<br />

Implantation de semis<br />

précoces pour piéger<br />

Nilaparvata lugens<br />

Introduction d'un gène<br />

de résistance à un herbicide<br />

dans une variété cultivée<br />

(en cours Etats-Unis, Japon)<br />

l!)<br />

co


..<br />

b<br />

.<br />

i<br />

J<br />

....<br />

....<br />

..<br />

.,;..<br />

'-4<br />

.... .<br />

- Lutte intégrée contre le carpocapse .<br />

LunE CHIMIQUE RAISONNEE<br />

- Réduction des traitements grâce<br />

au suivi des populations<br />

- Sélection d'Insecticides sélectifs<br />

\D<br />

co


En Europe, le développement dans la pratique des méthodes de lutte biologique<br />

et intégrée se heurte à de nombreuses difficultés et, en particulier, au scepticisme<br />

des industriels encore trop peu confiants dans les perspectives phytosanitaires de<br />

procédés biotechnologiques.<br />

Ainsi, pour l'arboriculture fruitière française qui occupe environ 130 000 hectares,<br />

bien que les techniques de protection intégrée des vergers soient très perfonnantes,<br />

seulement 15 p. 100 des vergers de pommiers, 25 p. 100 des vergers de pêchers et à peine<br />

4 p. 100 des vergers de poiriers bénéficient de ce type de protection. Pourtant le<br />

raisonnement proposé aux agriculteurs est très simple ; il se présente sous lafonne d'une<br />

série de questions dont les réponses conduisent progressivement à la décision (Audemard<br />

et Lespinasse, 1987). Quelles sont les maladies et les ravageurs principaux de ce<br />

verger ? A partir des observations faites quelle est l'importance des risques de dégâts ?<br />

Si il y a risque avec quel produit faut-il intervenir ? .. En lutte conventionnelle, 5 à<br />

9 traitements contre le carpocapse Cydia pomonella sont pratiqués dans la Basse Vallée<br />

du Rhône ; en lutte raisonnée seulement 2 à 3 suffisent. Deux traitements au<br />

fénoxycarbe, insecticide chimique très spécifique, pennettent de limiter les populations<br />

de tordeuses de la pelure (Adoxophyes orana et Pandemis heparana). Les pucerons sont<br />

régulés par 1 à 2 traitements aphicides tandis que l'Acarien rouge (Panonychus ulmzJ est<br />

tué en hiver au stade œuf par une application de clofentézine. D'ailleurs, après plusieurs<br />

années de lutte raisonnée, il n'y a plus de problèmes avec l'acarien rouge dont les<br />

populations sont décimées par les ennemis naturels. Par contre, la lutte contre la ;<br />

tavelure provoquée par le champignon Venturia inaequalis, continue d'exiger un grand '<br />

nombre de traitements fongicides, même si l'on tient compte de l'inoculum printanier,<br />

des périodes de risques et de la sensibilité variétale.<br />

Audemard et Lespinasse (1987) rapportent une enquête du CEMAGREF qui indique<br />

que le coût moyen de la protection phytosanitaire d'un hectare de vergers de pommiers<br />

en 1983-1 984 et 1984-1985 s'élèverait à 2684 F pour la gestion en lutte raisonnée<br />

(27 produits phytosanitaires appliqués en 16 traitements) et 3 352 F pour l'exploitation<br />

conventionnelle (29,5 produits en 18,2 application). Encore insuffisamment pratiquée<br />

par les agriculteurs la lutte chimique raisonnée doit progressivement évoluer vers un<br />

système de protection qui fera appel à des variétés résistantes ou tolérantes, ainsi qu'à<br />

la mise au point de procédés de lutte biologique et biotechnique.<br />

Annexes Chapitre 8<br />

87


PRINCIPALES DIVISIONS DU MON<strong>DE</strong> VIVANT<br />

ORGANISMES ACELLULAIRES<br />

virus<br />

virus satellites de virus<br />

ARN satellites de virus<br />

Viroïdes<br />

ORGANISMES CELLULAIRES<br />

Procaryotes<br />

Firmicutes<br />

Gracilicutes<br />

Mendosicutes<br />

Ténéricutes<br />

Eucaryotes<br />

Protistes<br />

Animaux<br />

Végétaux<br />

bactéries gram+ (streptomyces, Corynebacterium)<br />

bactéries gram- (Agrobacterium, Pseudomonas, Erwinia)<br />

bactéries à paroi incomplète, environnements extrêmes<br />

absence de paroi (Mycoplasmes, Spiroplasmes)<br />

Algues<br />

champignons<br />

Protozoaires<br />

CLASSIFICATION SIMPLIFIEE <strong><strong>DE</strong>S</strong> ANIMAUX<br />

INVERTEBRES<br />

spongiaires<br />

Coelentérés<br />

Plathelminthes<br />

(Eponges)<br />

(Hydres, Méduses, Coraux)<br />

(Planaires, Ténias)<br />

Némathelminthes Nématodes (Anguina, Onchocerca, Ascaris)<br />

Rotifères<br />

Annélides<br />

Mollusques<br />

Arthropodes<br />

Echinodermes<br />

Tuniciers<br />

céphalocordés<br />

VERTEBRES<br />

Cyclostomes<br />

Poissons<br />

Amphibiens<br />

Reptiles<br />

Oiseaux<br />

Mammifères<br />

(Asplanchna, Diglena)<br />

(Lombrics, Sangsues, Nereis)<br />

Gastéropodes (Escargots , Limaces)<br />

Lamellibranches (Huitres, Moules)<br />

Céphalopodes (Pieuvres, Calmars, Seiches)<br />

Mérostomes<br />

Arachnides<br />

Crustacés<br />

Myriapodes<br />

Insectes<br />

(Oursins, Etoîles de mer)<br />

(Ascidies)<br />

(Amphioxus)<br />

(Lamproies)<br />

(Acariens, Araignées, Scorpions)<br />

(Crabes, Crevettes, Cloportes)<br />

(Scolopendres, Iules)<br />

Annexes Générales<br />

88


<strong>DE</strong>TERMINATION SIMPLIFIEE <strong><strong>DE</strong>S</strong> ARTHROPO<strong><strong>DE</strong>S</strong> (CLASSES )<br />

ARACHNI<strong><strong>DE</strong>S</strong><br />

CRUSTACES<br />

INSECTES<br />

MYRIAPO<strong><strong>DE</strong>S</strong><br />

dépourvus d'antennes<br />

2 pares d'appendices buccaux : pédipalpes et chélicères<br />

4 paires de pattes<br />

2 paires d'antennes<br />

aquatiques pour la plupart; l'ordre des Isopodes compte des représentants terrestres : les cloportes<br />

1 paire d'antennes<br />

3 paires de pattes<br />

1 paire d'antennes<br />

tres nombreuses pattes<br />

<strong>DE</strong>TERMINATION SIMPLIFIEE <strong><strong>DE</strong>S</strong> MYRIAPO<strong><strong>DE</strong>S</strong> (ORDRES )<br />

* orifices génitaux situés dans les 3 premiers segments<br />

- téguI)lents durs<br />

2 paires de pattes par se9JUent<br />

tallie de l'ordre du centimètre<br />

- téguments mous<br />

1 paire de pattes par segment<br />

taille de l'ordre du millimètre<br />

* orifices génitaux situés sur l'abdomen postérieur<br />

généralement carnassiers<br />

Diplopodes (Iules)<br />

Syaphy les (Scutigérelles)<br />

Chilopodes (Scolopendres)<br />

CLASSIFICATION SIMPLIFIEE <strong><strong>DE</strong>S</strong> INSECTES (ORDRES )<br />

Aptérygotes<br />

primitivement dépourvus d'ailes<br />

Thysanoures<br />

Diploures<br />

Protoures<br />

Collemboles<br />

(Lepisma)<br />

(Japyx, Anajapyx)<br />

(Podura)<br />

Ptérygotes<br />

normalement ailés; certains ont secondairement perdu leurs ailes<br />

Exoptérygotes = HéDimétaboles<br />

Annexes Générales<br />

les alles se développent à l'extérieur du corps => les stades juvéniles sont généralement semblables aux imagos hormis une taille<br />

réduite et l'absence d'ailes complètement développées<br />

Ephéméroptères<br />

Oaonates<br />

Plécoptères<br />

Orthoptères<br />

Phasmldes<br />

Dermaptères<br />

Dictyoptères<br />

Isoptères<br />

Mallophages<br />

Anoploures<br />

Hémiptères<br />

Thysanoptères<br />

(Ephémères)<br />

(Libellules)<br />

(Perles)<br />

(Grillons, Criquets, Sauterelles)<br />

(Phasmes)<br />

(Forficules)<br />

(Blattes)<br />

(Termites)<br />

généralement parasites d'oiseaux<br />

(Poux)<br />

(Punaises, Cigales, Pucerons , Cochenilles)<br />

(Thrips)<br />

Endoptgotes = Holométaboles<br />

les alles se développent à l'intérieur du corps et des métamorphoses interviennent au cours du développement => les stades<br />

juvéniles diffèrent fortement des adultes<br />

Névroptères<br />

Lépidoptères<br />

Tn choptères<br />

Diptères<br />

siphonaptères<br />

HYIIlénoptères<br />

Coléoptères<br />

Strepsiptères<br />

(Fourmilions, Chrysopes , Ascalaphes)<br />

(papillonsl<br />

(Phtyganes<br />

(MOUChes, Moustiques)<br />

(Puces)<br />

(Guêpes, Abeilles, Fourmis)<br />

(Coccinelles, Hannetons , Doryphores)<br />

généralement parasites d'insectes,(Xenops)<br />

89


"<br />

!<br />

i<br />

13.<br />

14.<br />

La clé de détermination<br />

Petits insectes élancés. à ailes<br />

étroites et frangées de poils ;<br />

se trouvent souvent sur les fleurs<br />

Th"'OO"'"<br />

Insectes ne correspondant pas<br />

à cette description<br />

<br />

Tète prolongée vers le bas,<br />

en forme de bec<br />

Mecoptera<br />

- Pas de prolongement en forme<br />

de bec<br />

15. Ailes plus ou moins recouvertes<br />

de petites écailles aplaties ;<br />

trompe enroulée (langue)<br />

généralement présente<br />

- Ailes généralement transparentes<br />

bien que souvent poilues<br />

16. Ailes réticulées, avec nombreuses<br />

nervures transversales<br />

- Ailes avec nervures transversales<br />

relativement peu nombreuses<br />

17. Abdomen se terminant par de<br />

longs filaments<br />

- Appendices terminaux courts<br />

ou absents<br />

18. Ailes verticales au repos, les<br />

antérieures beau-<br />

coup plus grandes<br />

Que les postérieures<br />

; 2 ou 3<br />

appendices<br />

Lepidoptera<br />

':t :i<br />

=-::: : :<br />

terminaux "'4.J Ephemeroptera<br />

- Ailes repliées contre le corps<br />

au repos, de dimensions<br />

sensiblement égales ou bien<br />

ailes postérieures plus grandes ;<br />

"-<br />

2 appendices terminaux Ill] --- Plecoptera<br />

19. Antennes très courtes ; longueur<br />

.<br />

du corps : au moins 25 mm<br />

: --- Odonata<br />

.<br />

-<br />

- Antennes plus longues,<br />

supérieures à la largeur de<br />

la tète<br />

14<br />

15<br />

16<br />

17<br />

21<br />

18<br />

19<br />

20<br />

20. Tarses de 3 articles<br />

- Tarses de 5 articles<br />

21. Ailes nettement velues<br />

\<br />

- Ailes pas nettement velues<br />

22. Les deux paires d'ailes plus ou<br />

moins semblables ; tarses antérieurs<br />

dilatés<br />

- Ailes postérieures généralement<br />

plus larges Que les antérieures ;<br />

tarses antérieurs non dilatés<br />

23. Mi.nuscules insectes recouverts<br />

d'une poudre blanche<br />

- Ailes transparentes<br />

24. Tarses de 4 ou 5 articles<br />

- Tarses de 1 à 3 articles<br />

25. Les deux paires d'ailes semblables $'<br />

Ailes postérieures beaucoup<br />

La clé de détermination<br />

\ PI "op''''<br />

<br />

Nevroptera<br />

TE mbioptera<br />

' --'<br />

<br />

'"p''''<br />

N " " "".<br />

p'" p"l'œ Q", ,,, '""'I,"" "ym,oop""<br />

22<br />

23<br />

24<br />

25<br />

26<br />

M<br />

'"


....<br />

<br />

<br />

<br />

j<br />

La clé de détermination<br />

26. Ailes postérieures semblables<br />

aUl( antérieures ou bien plus<br />

grandes. Abdomen avec cerques<br />

- Ailes postérieures plus petites<br />

que les antérieures ; pas de<br />

cerques<br />

27. Minuscules insectes avec<br />

28,<br />

antennes d'au moins 12 articles<br />

- Jamais plus de 10 articles<br />

antennaires ; rostre piqueur et<br />

suceur<br />

Insectes à corps long et mince,<br />

semblable à une brindille <br />

- Insectes ne correspondant pas<br />

à cette description<br />

29. Insectes à corps de Sauterelle, <br />

r PI,,,,,,,"<br />

Psocoptera<br />

-;V\ CC-<br />

F r-::;"'"<br />

/ \<br />

<br />

avec longues pattes postérieures . '. ,<br />

- Insectes ne correspondant pas<br />

à cette description<br />

30. 1 nsectes à corps mou, vivant<br />

sur les plantes et protégé.s par un<br />

bouclier ou une écaille<br />

- Insectes ne correspondant pas<br />

à cette description<br />

31 , Minuscules insectes endogés<br />

« 2 mm de long), dépourvus<br />

d'antennes<br />

1 nsectes ne correspondant pas<br />

à cette description<br />

32. Insectes avec cerques ou autres<br />

appendices abdominaux<br />

- 1 nsectes dépourvus de<br />

semblables appendices<br />

<br />

Protura<br />

Phasmida<br />

Orthoptera<br />

Hemiptera<br />

27<br />

29<br />

30<br />

31<br />

32<br />

33<br />

40<br />

33. Appendices longs et apparents<br />

- Appendices courts ou cachés<br />

sous le corps<br />

34. Appendices formant des pinces<br />

- Appendices ne formant pas<br />

La clé de détermination<br />

de pinces<br />

35. Tarses de 3 articles Dermaptera<br />

<br />

- Tarses de 1 seul article<br />

36. Abdomen avec 3 longs appendices<br />

Diplura<br />

Thysanura<br />

- Abdomen avec seulement<br />

2 appendices<br />

37. Petits insectes sauteurs, à tête<br />

prolongée en un rostre ;<br />

ailes rudimentaires<br />

- Pas de prolongement en<br />

forme de rostre<br />

38. Petits, voire même minuscules<br />

insectes rrwnis d'organes de saut<br />

bifides sous r extrémité postérieure<br />

de l'abdomen ; vivent dans<br />

l'humus ou dans la végétation<br />

en décomposition<br />

- Insectes ne correspondant pas<br />

à cette descr\ption<br />

39. Tarses généralement de 4 articles<br />

- Tarses de 3 articles, les<br />

antérieurs dilatés<br />

40, Parasites de la fourrure ou des<br />

plumes ; insectes généralement<br />

comprimés latéralement ou dorso­<br />

ventralement<br />

- Insectes non parasites et<br />

généralement non aplatis<br />

41 . Insectes sauteurs, comprimés<br />

latéralement<br />

>CIII.=*<<br />

.<br />

<br />

( gE<br />

)j'!:] 8:<br />

• Siphonaptera<br />

Diplura<br />

Mecoptera<br />

Collembola<br />

Isoptera<br />

Embioptera<br />

34<br />

37<br />

35<br />

36<br />

38<br />

39<br />

41<br />

45<br />

N<br />

(j)


..<br />

"<br />

j<br />

ln<br />

j<br />

. La clé de détermination<br />

- Insectes comprimés dorso­<br />

ventrale ment<br />

42. 1 nsectes de taille moyenne ; tête<br />

partiellement rétractée dans le<br />

thorax<br />

- Petits ou minuscules insectes ;<br />

tête non rétractée dans le thorax<br />

43. Antennes courtes ; insectes à<br />

pattes très fortes, armées de<br />

puissantes griffes et adaptées<br />

pour s'agripper au mammifère­<br />

hôte<br />

- Antennes plus longues ; corps<br />

plus ou moins circulaire ; griffes<br />

moins puissantes<br />

44. Pièces buccales broyeuses ;<br />

prothorax distinct<br />

- Pièces buccales suceuses ;<br />

segments thoraciques fusionnés<br />

en un seul<br />

45, Abdomen avec étranglement<br />

formant une "taille" ;<br />

antennes souvent coudées<br />

- Insecte n'offrant pas ces<br />

caractères<br />

46. Corps recouvert de poils<br />

47.<br />

et d'écailles aplatis ; ailes<br />

vestigiales présentes<br />

- Corps glabre<br />

Tête aussi large, ou presque,<br />

que le corps ; antennes longues<br />

et minces; insectes vivant souvent<br />

parmi les matières desséchées<br />

- Tête plus étroite que le corps ;<br />

antennes plus courtes ; abdomen<br />

portant souvent une paire de<br />

saillies tubulaires près de<br />

r extrémité postérieure ; insectes<br />

se rencontrant sur des plantes<br />

vivantes<br />

<br />

e<br />

prOlhora.<br />

Diptera<br />

Hemiptera<br />

Mallophaga<br />

<br />

: - : -<br />

'1<br />

Anoplura<br />

Hymenoptera<br />

Lepidoptera<br />

/ . Psocoptera<br />

.. , .....<br />

Hemiptera<br />

42<br />

43<br />

44<br />

46<br />

47<br />

("')<br />

0'\

Hooray! Your file is uploaded and ready to be published.

Saved successfully!

Ooh no, something went wrong!