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effet de tylenchulus semipenetrans sur la balance energetique

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Nematol. medit. (2010), 38: 27-38 27EFFET DE TYLENCHULUS SEMIPENETRANS SUR LA BALANCE ENERGETIQUEDE CITRUS ‘MALTAISE DOUCE’ GREFFES SUR BIGARADIERF. Hadj Nasser 1,2 , S. Kallel 3, * et N. Raouani 22Institut Supérieur Agronomique <strong>de</strong> Chott-Mariem, BP 47, 4042 Chott Mariem (Sousse), Tunisie3Institut National Agronomique <strong>de</strong> Tunisie, 43, Avenue Charles Nicole, 1082 Tunis –Mahrajène, TunisieRésumé. Le “slow <strong>de</strong>cline”, le “Die-back” et <strong>la</strong> diminution du ren<strong>de</strong>ment <strong>de</strong>s Citrus souvent liés aux infestations par Tylenchulus<strong>semipenetrans</strong> peuvent être une conséquence <strong>de</strong>s modifications physiologiques et une altération du bi<strong>la</strong>n énergétique <strong>de</strong>s arbres.La re<strong>la</strong>tion <strong>sur</strong> le bi<strong>la</strong>n énergétique entre T. <strong>semipenetrans</strong> et l’hôte Citrus a été étudiée <strong>sur</strong> <strong>de</strong>s arbres <strong>de</strong> ‘Maltaises douce’ greffées<strong>sur</strong> bigaradiers, âgés <strong>de</strong> sept ans et p<strong>la</strong>ntés en bacs. L’<strong>effet</strong> du némato<strong>de</strong> <strong>sur</strong> les arbres a été évalué, <strong>sur</strong> le p<strong>la</strong>n qualitatif par <strong>la</strong> colorationspécifique <strong>de</strong>s granules d’amidon <strong>de</strong>s pousses printanières, et <strong>sur</strong> le p<strong>la</strong>n quantitatif par l’évaluation <strong>de</strong> <strong>la</strong> matière sèche,l’amidon et les sucres réducteurs totaux contenus dans les feuilles, les tiges et les racines <strong>de</strong>s arbres in<strong>de</strong>mnes et infestés par le némato<strong>de</strong>durant les différents sta<strong>de</strong>s phénologiques. Au début du cycle végétatif du végétal, les arbres in<strong>de</strong>mnes paraissent présenterun bi<strong>la</strong>n énergétique meilleur que les arbres infestés. A ce sta<strong>de</strong>, les tiges <strong>de</strong>s arbres infestés par le némato<strong>de</strong> renferment unequantité plus faible en amidon dans <strong>la</strong> moelle que les tiges <strong>de</strong>s arbres in<strong>de</strong>mnes. En revanche, pendant le printemps, le bi<strong>la</strong>n énergétique<strong>de</strong>s arbres infestés est meilleur que celui <strong>de</strong>s arbres in<strong>de</strong>mnes avec <strong>la</strong> modification <strong>de</strong> <strong>la</strong> morphogenèse.Mots-clés: Amidon, Citrus aurantium, matière sèche, sucres réducteurs.Summary. Effect of citrus nemato<strong>de</strong>, Tylenchulus <strong>semipenetrans</strong>, on energetic equilibrium of ‘Maltaise douce’ orange grafted onsour orange. “Slow <strong>de</strong>cline”, “Die-back” and Citrus yield loss, often re<strong>la</strong>ted to Tylenchulus <strong>semipenetrans</strong> infestations, can be theresult of physiological modifications and a change in the energy ba<strong>la</strong>nce of trees. The energy re<strong>la</strong>tionships between T. <strong>semipenetrans</strong>and citrus was studied on seven-year-old ‘Maltaise douce’ trees grafted on sour orange and p<strong>la</strong>nted in containers. The qualitativeeffect of the nemato<strong>de</strong>s on the trees was mea<strong>sur</strong>ed by specific staining of starch granules in spring shoots, while the quantitativeeffects were assessed during the various vegetative stages by the effects on dry matter, starch and reduced sugars inleaves, stems and roots of trees. At the start of the p<strong>la</strong>nt vegetative cycle, healthy trees showed a better energetic ba<strong>la</strong>nce thanthose infested by nemato<strong>de</strong>s. At this vegetative stage, stems of trees infected by nemato<strong>de</strong>s contained less starch than those ofhealthy p<strong>la</strong>nts. During the spring, the energetic ba<strong>la</strong>nce of infected trees was better than that of healthy ones with reference tomorphogenetic modification.Keywords: Citrus aurantium, dry matter, starch, sugar.* Auteur correspondant, e-mail: kallel@lycos.comChez les agrumes, en général, <strong>la</strong> concentration <strong>la</strong> plusélevée en hydrates <strong>de</strong> carbone <strong>de</strong> réserve est située dansles racines (Goldschmidt et Golomb, 1982). L’amidonest l’hydrate <strong>de</strong> carbone <strong>de</strong> réserve majeur dans tous lesorganes d’arbre <strong>de</strong> Citrus, (Goldschmidt et Golomb,1982). La dépendance en hydrates <strong>de</strong> carbone <strong>de</strong> réservependant le cycle annuel est plus importante pendant<strong>la</strong> vague <strong>de</strong> croissance printanière et pendant le grossissement<strong>de</strong>s fruits.D’après Goldschmid (1997), l’amidon et les sucressolubles diminuent et restent à un niveau très bas pendantl’été et l’automne puisqu’il ya une faible <strong>de</strong>man<strong>de</strong>pour <strong>la</strong> croissance <strong>de</strong>s fruits. Les sucres solubles augmententpar conversion partielle <strong>de</strong> l’amidon pendantl’hiver dans les région froi<strong>de</strong> (Jones et Steinacker, 1951;Toritaka et al., 1974). L’évolution saisonnière <strong>de</strong>s niveauxd’hydrate <strong>de</strong> carbone dans les feuilles conduitepar Dugger et Palmer (1969) montre que <strong>la</strong> fraction soluble<strong>de</strong>s sucres, qui atteint un pic pendant l’hiver, estinversement corrélé à celle <strong>de</strong> l’amidon qui est minimalependant cette pério<strong>de</strong>. Le niveau <strong>de</strong> l’amidon augmentedans les feuilles âgées à <strong>la</strong> fin <strong>de</strong> l’hiver, pério<strong>de</strong> concomitanteà <strong>la</strong> pério<strong>de</strong> <strong>de</strong> <strong>la</strong> croissance printanière (Joneset Steinacker, 1951; Sharples et Burkhart, 1954). L’accumu<strong>la</strong>tion<strong>de</strong> l’amidon prend p<strong>la</strong>ce pendant l’automne etl’hiver et parait fortement liée à <strong>la</strong> <strong>de</strong>man<strong>de</strong> <strong>de</strong>s fruits(Shimizu et al., 1978). Les arbres d’agrumes effectuenttrois vagues <strong>de</strong> pousses végétatives printanière, estivaleet automnale intercalées par <strong>de</strong>ux vagues <strong>de</strong> croissanceracinaire printanière (mars-mai) et automno-hivernale(octobre-décembre), <strong>la</strong> floraison s’effectue <strong>sur</strong> lespousses printanières à partir <strong>de</strong> rameaux d’un an et <strong>la</strong>production d’oranges ‘Maltaise douce’ en hiver (janvierfévrier).Les racines néoformées mettent trois mois environpour évoluer en racines nourricières (El-Othmani etal., 1998). Le retard <strong>de</strong> <strong>la</strong> croissance racinaire par rapportaux pousses est interprété comme une compétitionpour les photosynthates, avec une priorité pour <strong>la</strong> partieaérienne (Bevington et Castle, 1985).Tylenchulus <strong>semipenetrans</strong> Cobb est un némato<strong>de</strong> se-


28mi-endoparasite sé<strong>de</strong>ntaire inféodé aux racines <strong>de</strong>s Citrus.Le bigaradier, Citrus aurantium L. porte-greffe leplus utilisé en pépinière et en verger en Tunisie et dans<strong>la</strong> région méditerranéenne, est sensible à ce némato<strong>de</strong>.Les symptômes associés à ce némato<strong>de</strong> dans un vergersont peu étudiés étant donné <strong>la</strong> généralisation <strong>de</strong>l’infestation dans les parcelles et <strong>la</strong> présence <strong>de</strong> diversesma<strong>la</strong>dies <strong>sur</strong> un même arbre. Les symptômes sont liés àun dépérissement <strong>de</strong>s arbres avec une défoliation <strong>de</strong>sbranches, <strong>sur</strong>tout au sommet <strong>de</strong> <strong>la</strong> frondaison (Reynoldset O’Bannon, 1958), et un <strong>de</strong>ssèchement (mortalité) <strong>de</strong>spousses appelé “die back” (Ritter, 1961; Thorne, 1961;Kallel et al., 2004). Le dépérissement <strong>de</strong>s agrumes et lessymptômes <strong>de</strong> die-back sont observés dans les vergersinfestés par T. <strong>semipenetrans</strong>, dans différentes parties dumon<strong>de</strong> telles que les USA (O’Bannon et Reynolds,1967), Afrique (Aggrey et al., 1988), In<strong>de</strong> (Sundaram etVadivelu, 1995) et <strong>la</strong> région méditerranéenne (Philis,1993; Kallel et Ab<strong>de</strong>lwahed-Ghariani, 2004).Ces symptômes sont en rapport avec <strong>la</strong> réduction <strong>de</strong>l’absorption hydrique et minérale au niveau <strong>de</strong>s racines(Ambrogioni et D’Errico, 1984; Duncan etCohn, 1990). La présence du némato<strong>de</strong> induit un stresshydrique (Kallel et B’Chir, 2005), et une modification<strong>de</strong> <strong>la</strong> morphogenèse <strong>de</strong>s arbres en phase <strong>de</strong> croissance(B’Chir et Kallel, 1992; Kallel et B’Chir, 2006). Dans lesvergers, <strong>la</strong> <strong>de</strong>nsité <strong>de</strong> némato<strong>de</strong> <strong>sur</strong> racine <strong>de</strong> Citrusaugmente <strong>la</strong> variabilité <strong>de</strong> <strong>la</strong> production <strong>de</strong>s arbres (Kallelet al., 2001). L’établissement <strong>de</strong>s femelles dans <strong>la</strong> racinemodifie profondément sa région corticale, enconstruisant un réseau trophique qui permet <strong>de</strong> véhiculer<strong>de</strong>s substances indispensables au développement dunémato<strong>de</strong> (B’Chir, 1988; Kallel et al., 2005).Plusieurs auteurs ont montré que l’<strong>effet</strong> <strong>de</strong> l’arbre <strong>sur</strong>ce némato<strong>de</strong> est lié au métabolisme <strong>de</strong>s sucres. En <strong>effet</strong>,l’augmentation <strong>de</strong> l’amidon dans les cellules trophiquesmodifiées par le némato<strong>de</strong>, en comparaison avec les cellulescorticales in<strong>de</strong>mnes, montre que ce némato<strong>de</strong>construit un réseau trophique cortical permettant <strong>de</strong>confluer les substances énergétiques jusqu’à <strong>la</strong> régionantérieure <strong>de</strong> <strong>la</strong> femelle. L’amidon provenant <strong>de</strong> <strong>la</strong> partieaérienne <strong>de</strong> l’arbre est transloquée via les trachéi<strong>de</strong>sdu xylème vers les racines et donc vers les némato<strong>de</strong>s(Kallel et al., 2005; Kallel et B’Chir, 2006).La richesse en granules d’amidon dans les cellules trophiquesrenforce l’hypothèse du rôle nourricier important<strong>de</strong>s sucres. De plus, Cohn (1965) a montré l’implication<strong>de</strong> l’homogénat d’enzymes obtenus du némato<strong>de</strong>par <strong>la</strong> digestion <strong>de</strong> l’amidon en sucres réducteurs. Ceciexpliquerait le rôle <strong>de</strong> <strong>la</strong> modification <strong>de</strong> l’équilibre énergétique<strong>de</strong>s arbres d’agrumes <strong>sur</strong> <strong>la</strong> biologie du némato<strong>de</strong>(Duncan et Eissenstat, 1993; Duncan et al., 1993).La phénologie <strong>de</strong> l’arbre et les facteurs abiotiques affectent<strong>la</strong> <strong>de</strong>nsité <strong>de</strong> némato<strong>de</strong> <strong>sur</strong> les racines. La variationannuelle <strong>de</strong> l’infestation dépend <strong>de</strong> l’âge <strong>de</strong>s racines(Cohn, 1964), <strong>de</strong> leur abondance (Duncan et Noling,1987), <strong>de</strong>s réserves en amidon dans les racines(Duncan et al., 1993) et <strong>de</strong>s conditions abiotiques, essentiellement<strong>la</strong> température dans <strong>la</strong> région méditerranéenne(Kallel et B’Chir, 2004; Kallel et Ab<strong>de</strong>lwahed-Ghariani, 2004) et l’humidité du sol (Duncan et El-Morshedy, 1996).L’objectif <strong>de</strong> ce travail est <strong>de</strong> déterminer l’<strong>effet</strong> <strong>de</strong> T.<strong>semipenetrans</strong> <strong>sur</strong> <strong>la</strong> ba<strong>la</strong>nce énergétique <strong>de</strong>s Citrus.MATERIELS ET METHODESConduite <strong>de</strong>s arbres.L’essai est mené <strong>de</strong>puis mai 1999 en bacs cimentés <strong>de</strong>3×1×1 m, <strong>sur</strong> <strong>de</strong>s arbres <strong>de</strong> ‘Maltaise douce’ greffés <strong>sur</strong>bigaradier <strong>de</strong> même vigueur (70-75 cm <strong>de</strong> hauteur et0,95-1,10 cm <strong>de</strong> diamètre du tronc), âgés d’un an etprovenant d’une pépinière in<strong>de</strong>mne <strong>de</strong> némato<strong>de</strong>s(Groupe Interprofessionnel <strong>de</strong> Fruits, Gobba). Six bacsorganisés en <strong>de</strong>ux rangées ont été à moitié remplis parun sol constitué d’un mé<strong>la</strong>nge <strong>de</strong> sable <strong>de</strong> carrière et <strong>de</strong>fumier <strong>de</strong> mouton (2 : 1) puis complétés par un sol provenant<strong>de</strong> bacs où <strong>de</strong>s citronniers greffés <strong>sur</strong> bigaradieront été cultivés. Afin <strong>de</strong> reproduire les conditions <strong>de</strong>terrains <strong>de</strong>s sols infestés par le némato<strong>de</strong> et d’entamerl’essai par une infestation massive, <strong>la</strong> moitié <strong>de</strong> ces bacsa reçu un sol provenant <strong>de</strong> bacs où, pendant 10 ans(entre 1989 et 1999), <strong>de</strong>s citronniers greffés <strong>sur</strong> bigaradiersinfestés <strong>de</strong> T. <strong>semipenetrans</strong> ont poussé; les némato<strong>de</strong>sprovenaient <strong>de</strong> racines d’arbres <strong>de</strong> maltaise <strong>de</strong>misanguinegreffés <strong>sur</strong> bigaradier, naturellement infestéespar <strong>de</strong>s némato<strong>de</strong>s collectés <strong>de</strong> <strong>la</strong> région agrumicole duCap Bon. La secon<strong>de</strong> moitié <strong>de</strong>s bacs a reçu un sol témoinin<strong>de</strong>mne <strong>de</strong> némato<strong>de</strong>. A l’intérieur <strong>de</strong> chaquebac ainsi rempli, <strong>de</strong>ux arbres sont p<strong>la</strong>ntés. Les <strong>de</strong>uxrangées <strong>de</strong> bacs sont équipées d’un système d’irrigationlocalisée et reçoivent <strong>la</strong> même quantité d’eau.Depuis l’instal<strong>la</strong>tion <strong>de</strong> l’essai, les arbres n’ont jamaisété taillés, leur morphogenèse a été suivie pendant plusieursannées (Kallel et B’Chir, 2006) et <strong>la</strong> productionen fruits, par arbre, a été évaluée chaque année en hiver(février), jusqu’à novembre 2006.Prélèvement <strong>de</strong>s organes à étudier.L’expérimentation concernant l’<strong>effet</strong> du némato<strong>de</strong> <strong>sur</strong>les réserves énergétiques a été effectuée pendant une année,entre <strong>de</strong>ux repos végétatifs, <strong>sur</strong> les 24 arbres. Leprélèvement <strong>de</strong>s pousses printanières et <strong>de</strong>s radicelles <strong>sur</strong>chaque arbre a été initié, à partir du 21 novembre 2005,et l’échantillonnage effectué suivant les sta<strong>de</strong>s phénologiques<strong>de</strong>s arbres, après chaque flux <strong>de</strong> sève, ce qui s’exprimaitpar une vague <strong>de</strong> croissance (Kallel et B’Chir,2006). Les pousses entières ont été prélevées au hasard<strong>sur</strong> l’arbre à <strong>la</strong> floraison (22 février), après les vagues <strong>de</strong>croissance printanière (4 mai), estivale (3 aout, 5 septembre),automnale (16 octobre) et à l’entrée du reposvégétatif (21 novembre). L’échantillonnage <strong>de</strong>s poussesprintanières consiste à prélever au niveau <strong>de</strong> <strong>la</strong> cime <strong>de</strong>chaque arbre huit jeunes pousses. Les jeunes radicelles(entre 0-30 cm <strong>de</strong> profon<strong>de</strong>ur) sont prélevées, à <strong>la</strong> même


Hadj Nasser et al. 29date que les pousses, selon <strong>la</strong> technique décrite par Duncan(1986) et divisées en <strong>de</strong>ux portions. Une portion <strong>de</strong>10 grammes environ est <strong>de</strong>stinée au dosage <strong>de</strong> l’amidonet <strong>de</strong>s sucres réducteurs et 10 grammes <strong>de</strong> racines ontservi à l’extraction <strong>de</strong>s némato<strong>de</strong>s, pour déterminer leur<strong>de</strong>nsité <strong>de</strong> popu<strong>la</strong>tion par gramme <strong>de</strong> matière fraiche.Extraction <strong>de</strong>s némato<strong>de</strong>s. La technique <strong>de</strong> <strong>la</strong> doublecentrifugation est utilisée pour extraire <strong>de</strong>s racines lesnémato<strong>de</strong>s à différents sta<strong>de</strong>s <strong>de</strong> développement (œufs,juvéniles et adultes) (Macaron, 1972).Dosage <strong>de</strong>s hydrates <strong>de</strong> carbone. L’évaluation <strong>de</strong>s réservesen hydrates <strong>de</strong> carbone par arbre a été effectuée<strong>sur</strong> les racines, <strong>de</strong>s pousses printanières (feuilles et tiges)<strong>de</strong>s arbres respectivement infestés par T. <strong>semipenetrans</strong>et in<strong>de</strong>mnes.Technique utiliséeSur organes entiers. Ce travail a été mené pour déterminerquels sont les organes et à quel sta<strong>de</strong> phénologiquedu cycle végétatif <strong>de</strong> l’arbre ils sont affectés par leparasite. La teneur d’amidon et celle <strong>de</strong>s sucres réducteursont été évaluées respectivement <strong>sur</strong> <strong>la</strong> matièresèche et <strong>la</strong> matière fraîche. La détermination <strong>de</strong> <strong>la</strong> teneuren matière sèche a été évaluée à chaque dated’échantillonnage et pour chaque type d’organe, <strong>sur</strong> lesarbres in<strong>de</strong>mnes et infestés, en p<strong>la</strong>çant 5 g <strong>de</strong> feuilles,tiges et racines dans une étuve à 70 °C, pendant 3 joursjusqu’à poids constant. Ce poids a été alors enregistré.Sur tissus (cortex et moelle). Cette expérience a été effectuéepour déterminer <strong>la</strong> partie <strong>de</strong> <strong>la</strong> tige altérée par leparasite. Le cortex, lieu <strong>de</strong> transfert et <strong>la</strong> moelle, lieu <strong>de</strong>stockage <strong>de</strong>s hydrates <strong>de</strong> carbones. La détermination <strong>de</strong><strong>la</strong> répartition <strong>de</strong>s sucres réducteurs et <strong>de</strong> l’amidon dansles <strong>de</strong>ux tissus <strong>de</strong>s pousses, permet <strong>de</strong> préciser ces modificationsphysiologiques, dans le cas où une différencesignificative est me<strong>sur</strong>ée entre les arbres infestés et in<strong>de</strong>mnes.Les me<strong>sur</strong>es ont été également effectuées aprèsséparation <strong>de</strong> <strong>la</strong> partie corticale et <strong>la</strong> moelle <strong>de</strong> <strong>la</strong> tige,afin <strong>de</strong> déterminer l’importance re<strong>la</strong>tive <strong>de</strong>s réservesénergétiques. A cet <strong>effet</strong>, les tiges découpées en morceaux<strong>de</strong> 1 cm <strong>de</strong> longueur environ sont <strong>la</strong>issées dans <strong>de</strong>l’eau pendant 15 minutes, puis, à l’ai<strong>de</strong> d’un scalpel, <strong>la</strong>partie corticale est séparée <strong>de</strong> <strong>la</strong> moelle <strong>de</strong>s tiges. Laméthodologie appliquée pour évaluer les hydrates <strong>de</strong>carbone dans les différentes parties <strong>de</strong>s tiges est i<strong>de</strong>ntiqueà celle adoptée <strong>sur</strong> l’organe entier.Me<strong>sur</strong>e <strong>de</strong>s sucresAmidon. La teneur en amidon est déterminée selon <strong>la</strong>métho<strong>de</strong> <strong>de</strong> Hel<strong>la</strong>li (1978) et citée par Hamada (1995).Elle est basée <strong>sur</strong> <strong>la</strong> coloration bleue obtenue suite à l’action<strong>de</strong> l’io<strong>de</strong> <strong>sur</strong> l’amidon. Les tiges, les feuilles et les racinessont découpées et séchées à l’étuve à 70 °C jusqu’àpoids constant puis broyées par un micro broyeur “Cu<strong>la</strong>tti”à tamis dont les mailles font 3 mm <strong>de</strong> diamètre. Lebroyat (300 mg) <strong>de</strong>s différents organes du végétal est misdans 20 ml d’alcool éthylique à 70% pour l’extraction <strong>de</strong>l’amidon. Après 48 heures, le <strong>sur</strong>nageant est éliminé et leculot est récupéré et séché à une température <strong>de</strong> 60 °Cjusqu’à poids constant. L’extrait sec est ensuite pesé puishydrolysé par l’aci<strong>de</strong> perchlorique à 70% à raison <strong>de</strong> 5,7ml pour 300 mg d’extrait sec (le volume <strong>de</strong> l’aci<strong>de</strong> perchloriqueest recalculé en fonction du poids <strong>de</strong> l’extraitsec obtenu). Le volume <strong>de</strong> cette préparation est ajusté à250 ml par <strong>de</strong> l’eau distillée. Après 48 heures, 7 ml <strong>de</strong>chaque solution sont mé<strong>la</strong>ngés dans un tube à essai avec0,5 ml d’une solution aqueuse d’io<strong>de</strong> préparée à raison<strong>de</strong> 0,1% <strong>de</strong> KI et 0,02% <strong>de</strong> KIO3. Après 5 heures, <strong>la</strong>lecture <strong>de</strong> l’absorbance est effectuée au spectrophotomètre(Bauch & Lamber) à <strong>la</strong> longueur d’on<strong>de</strong> <strong>de</strong> 675nm. L’étalonnage du spectrophotomètre est effectuéavant chaque me<strong>sur</strong>e. Pour <strong>la</strong> gamme d’étalonnage, plusieursquantités d’amidon soluble pur comprises entre 1et 25 mg sont hydrolysées par 20 ml d’aci<strong>de</strong> perchloriqueà 70%. La préparation est ensuite ramenée à 250ml par <strong>de</strong> l’eau distillée. Après 48 heures d’hydrolyse, 7ml <strong>de</strong> chaque solution sont ajoutés avec 0,5 ml <strong>de</strong> <strong>la</strong> solutiond’io<strong>de</strong>. La lecture <strong>de</strong> l’absorbance au spectrophotomètreest effectuée 5 heures après le début <strong>de</strong> <strong>la</strong> réactionà <strong>la</strong> longueur d’on<strong>de</strong> l = 675 nm.Sucres réducteurs. Le matériel végétal (300 mg <strong>de</strong> matièrefraîche) est solubilisé dans 5 ml du méthanol à80% et chauffé au bain-marie à 70 °C pendant 30 minutes.La teneur <strong>de</strong>s sucres solubles est déterminée par<strong>la</strong> métho<strong>de</strong> phénol aci<strong>de</strong> sulfurique (Robyt et White,1987). Un millilitre <strong>de</strong> l’extrait est prélevé et on y ajoute1 ml <strong>de</strong> d’une solution aqueuse <strong>de</strong> phénol 5% et 5 mld’aci<strong>de</strong> sulfurique concentré. Après agitation et refroidissementl’absorbance est me<strong>sur</strong>ée par un spectrophotomètreà une longueur d’on<strong>de</strong> <strong>de</strong> 640 nm. Les valeursdoses contenues dans les échantillons sont reportées <strong>sur</strong><strong>la</strong> courbe-étalon établie par <strong>de</strong>s solutions <strong>de</strong> glucose al<strong>la</strong>nt<strong>de</strong> 0,05 à 0,3 mg/ml.Localisation <strong>de</strong>s sucresL’aspect qualitatif <strong>de</strong>s réserves énergétiques <strong>de</strong>sarbres infestés et in<strong>de</strong>mnes a été évalué <strong>sur</strong> <strong>de</strong>s coupeshistologiques effectuées <strong>sur</strong> les pousses printanièresaprès coloration spécifique <strong>de</strong> l’amidon au liqui<strong>de</strong> <strong>de</strong>Lugol (I 2KI). Les coupes transversales ont été effectuéesà main levée, à l’ai<strong>de</strong> d’une <strong>la</strong>me <strong>de</strong> rasoir. Les poussessont débarrassées <strong>de</strong> leurs feuilles et sont coupées à <strong>la</strong>base <strong>de</strong> <strong>la</strong> pousse entre le 2 ème et le 3 ème nœud. Lescoupes sont p<strong>la</strong>cées, pendant 2 minutes, dans un verre<strong>de</strong> montre contenant une solution aqueuse d’hypochlorite<strong>de</strong> sodium à 1,9%. Les coupes sont ensuite transféréessuccessivement dans un bain d’eau distillée puis unbain formé par un mé<strong>la</strong>nge d’eau et quelques gouttesd’aci<strong>de</strong> acétique. Enfin, les coupes sont colorées au liqui<strong>de</strong><strong>de</strong> Lugol pendant 15 minutes puis transféréesdans <strong>de</strong> l’eau distillée afin d’éliminer l’excès du colorant;elles sont ensuite montées dans une goutte <strong>de</strong> gly-


30cérine entre <strong>la</strong>mes et <strong>la</strong>melles puis observées au microscopeOlympus CX40.Analyse statistiqueLes données chiffrées, effectuées au cours <strong>de</strong> cet essai,sont analysées par le logiciel SPSS10.0. Le traitementstatistique consiste à comparer les douze arbresinfestés aux douze arbres in<strong>de</strong>mnes <strong>de</strong> némato<strong>de</strong>, par letest t <strong>de</strong> Stu<strong>de</strong>nt (P = 0,05) et à comparer les différentssta<strong>de</strong>s phénologiques <strong>de</strong> l’arbre par une analyse <strong>de</strong> <strong>la</strong>variance (ANOVA) puis une comparaison multiple <strong>de</strong>smoyennes par le test <strong>de</strong> Stu<strong>de</strong>nt Newman et Keuls, àmême probabilité.RÉSULTATSLa production <strong>de</strong>s arbresDepuis le début <strong>de</strong> l’essai, <strong>la</strong> différence <strong>de</strong> productionen fruits n’est pas significative entre les arbres infestéset les arbres in<strong>de</strong>mnes (Fig. 1). L’exportation enmatière fraîche en fruits est simi<strong>la</strong>ire entre les <strong>de</strong>uxtypes d’arbres.La <strong>de</strong>nsité <strong>de</strong> popu<strong>la</strong>tion du némato<strong>de</strong>Pendant <strong>la</strong> pério<strong>de</strong> <strong>de</strong> l’essai, <strong>la</strong> <strong>de</strong>nsité <strong>de</strong> popu<strong>la</strong>tiondu némato<strong>de</strong> dans les racines évolue progressivement(Fig. 2). Le nombre maximal <strong>de</strong> femelles par gramme <strong>de</strong>racine est enregistré en hiver (20 février), soit 38 femellespar gramme, puis diminue progressivement pendant lereste <strong>de</strong> l’année. Le nombre d’œufs et <strong>de</strong> juvéniles parracine suit, d’une manière simi<strong>la</strong>ire, celui <strong>de</strong>s femelles.En hiver, le nombre moyen d’œufs par gramme <strong>de</strong> racinesest <strong>de</strong> 180 et celle <strong>de</strong>s juvéniles est <strong>de</strong> 84.La matière sècheLa matière sèche <strong>de</strong>s pousses (tige et feuille) par unité<strong>de</strong> poids frais initiées au printemps diminue progressivementau cours <strong>de</strong> l’année végétative et atteint un minimumen septembre, puis augmente pour atteindre unmaximum pendant l’hiver. La matière sèche est significativementplus importante pendant le mois d’août après <strong>la</strong>pério<strong>de</strong> <strong>de</strong> croissance <strong>de</strong>s gourmands. La matière sècheévolue au cours du cycle végétatif <strong>de</strong> l’arbre, avec une diminutiontrès importante pendant <strong>la</strong> pério<strong>de</strong> estivale(Fig. 3). Les racines présentent une proportion <strong>de</strong> matièresèche plus faible que celle <strong>de</strong>s pousses printanières.Concernant le bi<strong>la</strong>n photosynthétique, qui est exprimépar <strong>la</strong> matière sèche foliaire <strong>de</strong> l’arbre, aucune différencesignificative n’est obtenue entre les arbres in<strong>de</strong>mnes et infestésquelque soit le sta<strong>de</strong> phénologique (Fig. 3). L’accumu<strong>la</strong>tion<strong>de</strong> <strong>la</strong> matière sèche dans les pousses printanières<strong>de</strong>s arbres témoins est également simi<strong>la</strong>ire à celle<strong>de</strong>s arbres infestés par le némato<strong>de</strong> (Fig. 3). Pendant l’année,le pourcentage <strong>de</strong> <strong>la</strong> matière sèche dans les racinestémoins, comparé à celui dans les racines infestées, amontré une différence significative seulement pendant <strong>la</strong>pério<strong>de</strong> printanière (4 mai) et <strong>la</strong> pério<strong>de</strong> estivale (3 août).Pendant <strong>la</strong> pério<strong>de</strong> printanière, le taux <strong>de</strong> matière sèchedans les racines témoins est significativement plus faibleque celui <strong>de</strong>s racines infestées par le némato<strong>de</strong>. Alors quependant <strong>la</strong> pério<strong>de</strong> estivale, <strong>la</strong> matière sèche dans les racinestémoins est statistiquement plus élevée que dans lesracines infestées (Fig. 3). Il apparaît une accumu<strong>la</strong>tiond’eau en mai et en septembre, dans <strong>la</strong> partie aérienne, eten août dans les racines, ce qui atteste d’une activité métaboliqueintense dans ces organes végétatifs, avec un déca<strong>la</strong>geentre <strong>la</strong> partie aérienne et <strong>la</strong> partie souterraine.Fig. 1. Effet <strong>de</strong> l’infestation par Tylenchulus <strong>semipenetrans</strong> <strong>sur</strong> <strong>la</strong> production <strong>de</strong>s arbres ‘Maltaise douce’ greffés <strong>sur</strong> bigaradierspendant six années successives en bacs. Les barres correspon<strong>de</strong>nt aux intervalles <strong>de</strong> confiance à P = 0,05.


Hadj Nasser et al. 31Fig. 2. Evolution <strong>de</strong> <strong>la</strong> <strong>de</strong>nsité <strong>de</strong> popu<strong>la</strong>tion <strong>de</strong> T. <strong>semipenetrans</strong> <strong>sur</strong> les racines <strong>de</strong>s arbres ‘Maltaise douce’ greffés <strong>sur</strong> bigaradierscultivés en bacs pendant <strong>la</strong> pério<strong>de</strong> <strong>de</strong> l’essai. Les barres correspon<strong>de</strong>nt aux intervalles <strong>de</strong> confiance à P = 0,05.Fig. 3. Evolution annuelle <strong>de</strong> <strong>la</strong> matière sèches <strong>de</strong>s feuilles, <strong>de</strong>s tiges <strong>de</strong>s pousses printanières et <strong>de</strong>s racines <strong>de</strong>s arbres ‘Maltaisedouce’ greffés <strong>sur</strong> bigaradiers cultivés en bacs in<strong>de</strong>mnes et infestés par T. <strong>semipenetrans</strong>. Les barres correspon<strong>de</strong>nt aux intervalles<strong>de</strong> confiance à P = 0,05. Les moyennes <strong>de</strong>s <strong>de</strong>ux types d’arbres associées à (*) sont significativement différentes selon le test t <strong>de</strong>Stu<strong>de</strong>nt à P = 0,05.


32Fig. 4. Evolution annuelle <strong>de</strong> l’amidon <strong>de</strong>s feuilles, <strong>de</strong>s tiges <strong>de</strong>s pousses printanières et <strong>de</strong>s racines <strong>de</strong>s arbres ‘Maltaise douce’ greffés<strong>sur</strong> bigaradiers cultivés en bacs in<strong>de</strong>mnes et infestés par T. <strong>semipenetrans</strong>. Les barres correspon<strong>de</strong>nt aux intervalles <strong>de</strong> confiance àP = 0,05. Les moyennes <strong>de</strong>s <strong>de</strong>ux types d’arbres associées à (*) sont significativement différentes selon le test t <strong>de</strong> Stu<strong>de</strong>nt à P = 0,05.Le dosage <strong>de</strong>s réserves en hydrate <strong>de</strong> carboneL’amidon <strong>sur</strong> organes entiers. Durant <strong>la</strong> pério<strong>de</strong> situéeentre <strong>la</strong> fin d’automne (21 novembre) et <strong>la</strong> fin du printemps(4 mai), le taux d’amidon est re<strong>la</strong>tivement élevédans les feuilles par rapport au reste du cycle végétatif.En <strong>effet</strong>, pendant cette pério<strong>de</strong>, <strong>la</strong> quantité d’amidonvarie entre 2 et 3,13 mg, alors qu’elle ne dépasse pas 1,9mg pendant le reste <strong>de</strong> l’année. Cependant, <strong>la</strong> quantitéd’amidon dans les feuilles <strong>de</strong>s arbres témoins n’est passignificativement différente <strong>de</strong> celle <strong>de</strong>s arbres infestéspar T. <strong>semipenetrans</strong> (Fig. 4). Pendant le cycle végétatif,<strong>la</strong> quantité d’amidon dans les tiges témoins est significativementélevée à <strong>la</strong> fin <strong>de</strong> l’automne et pendant l’hiver,pério<strong>de</strong> <strong>de</strong> vie ralentie du végétal (Fig. 4); elle varieentre 5,7 et 8,1 mg. Cette quantité diminue fortementpendant le cycle végétatif <strong>de</strong> l’arbre et varie entre 2,2mg au mois <strong>de</strong> mai et 1,7 mg au mois d’octobre. A <strong>la</strong> fin<strong>de</strong> l’automne (21 novembre) et en hiver (22 février), lestiges témoins présentent une quantité d’amidon significativementplus importante que celles <strong>de</strong>s arbres infestéspar le némato<strong>de</strong> <strong>de</strong>s Citrus. Alors qu’au printemps(4 mai), les tiges infestées renferment une quantité significativementplus importante que celle du témoin.La quantité d’amidon dans les racines <strong>de</strong> bigaradierévolue d’une manière importante au cours d’un cyclevégétatif (Fig. 4). Cette quantité dans les racines diminued’une manière beaucoup moins importante que cellecontenue dans les tiges <strong>de</strong>s pousses printanières. Apartir du 21 novembre au 22 février, qui correspond àune pério<strong>de</strong> <strong>de</strong> vie ralentie <strong>de</strong> l’arbre, <strong>la</strong> quantité d’amidonest maximale puis diminue au printemps (4 mai),avec <strong>la</strong> production <strong>de</strong>s pousses printanières. Pendant


Hadj Nasser et al. 33cette pério<strong>de</strong> (4 mai), <strong>la</strong> quantité d’amidon est significativementplus importante dans les racines <strong>de</strong>s arbres infestésque dans celle contenue dans les arbres témoins.Par contre, lorsque le taux d’amidon commence à augmenterdans les racines témoins, marquant le retourvers <strong>la</strong> phase <strong>de</strong> vie ralentie, il reste significativementplus élevé dans les racines infestées hébergeant <strong>de</strong>s femelles<strong>de</strong> T. <strong>semipenetrans</strong> au début <strong>de</strong> l’automne (16octobre). Ce taux est statistiquement plus élevé dans lesracines témoins que dans les racines infestées par le némato<strong>de</strong>,à <strong>la</strong> fin <strong>de</strong> l’automne (21 novembre).La répartition <strong>de</strong> l’amidon dans les tissus (cortex etmoelle). Pendant les pério<strong>de</strong>s ou <strong>la</strong> quantité d’hydrate<strong>de</strong> carbone dans les pousses printanières montre unedifférence significative entre les arbres témoins et infestés,<strong>la</strong> répartition <strong>de</strong>s réserves en amidon dans les différentesparties <strong>de</strong> <strong>la</strong> tige a été évaluée. La partie corticale<strong>de</strong> <strong>la</strong> tige présente une quantité d’amidon variant trèspeu entre les saisons et entre les <strong>de</strong>ux types d’arbres.Par contre, <strong>la</strong> moelle <strong>de</strong>s tiges <strong>de</strong>s arbres in<strong>de</strong>mnes renfermeune quantité d’amidon significativement plus importanteque celle <strong>de</strong>s arbres infestés pendant le débutet <strong>la</strong> fin <strong>de</strong> <strong>la</strong> pério<strong>de</strong> d’échantillonnage. La moelle paraîtplus riche en amidon par rapport à <strong>la</strong> partie corticale<strong>de</strong> <strong>la</strong> tige <strong>de</strong>s arbres témoins à <strong>la</strong> fin du cycle végétatif.Par contre, pour les arbres infestés, <strong>la</strong> proportion enamidon entre le cortex et <strong>la</strong> moelle <strong>de</strong>s tiges est variableavec une légère augmentation dans <strong>la</strong> région corticale à<strong>la</strong> fin <strong>de</strong> l’automne (Fig. 5).Les sucres totaux <strong>sur</strong> organes entiers. La quantité <strong>de</strong>ssucres totaux augmente au cours du cycle cultural, à l’inverse<strong>de</strong> l’amidon qui est <strong>la</strong> substance <strong>de</strong> réserve dans lesarbres in<strong>de</strong>mnes. La quantité <strong>de</strong>s sucres totaux dans lesfeuilles <strong>de</strong>s arbres témoins est significativement plus importantedurant le mois d’octobre que celle <strong>de</strong>s arbresinfestés (Fig. 6). Aux différentes pério<strong>de</strong>s d’échantillonnage,le taux <strong>de</strong> sucres totaux dans les tiges présente unegran<strong>de</strong> variabilité, matérialisant ainsi le rôle <strong>de</strong> transfert<strong>de</strong>s substances dans les <strong>de</strong>ux sens entre les feuilles, lieu<strong>de</strong> production <strong>de</strong> sucres, et les racines consommatriceset lieu <strong>de</strong> stockage. La teneur en sucres totaux <strong>de</strong>spousses initiées au printemps parait stable au cours ducycle végétatif, sauf au mois d’août, puis diminue pendant<strong>la</strong> pério<strong>de</strong> <strong>de</strong> vie ralentie <strong>de</strong> l’arbre. La quantité <strong>de</strong>ssucres totaux dans les tiges infestées est significativementsupérieure à celle <strong>de</strong>s tiges in<strong>de</strong>mnes au mois d’août. Al’inverse au mois d’octobre, le taux <strong>de</strong> sucres <strong>de</strong>s tiges<strong>de</strong>s arbres infestés est statistiquement inférieur à celui<strong>de</strong>s tiges témoins (Fig. 6). L’évolution annuelle <strong>de</strong> <strong>la</strong>quantité <strong>de</strong> sucres totaux dans les racines <strong>de</strong>s arbres estsimi<strong>la</strong>ire à celle <strong>de</strong>s feuilles. Cette quantité est importantedurant les mois <strong>de</strong> septembre et d’octobre; seulement,<strong>la</strong> quantité contenue dans les racines ne dépasse pas 1gramme. Néanmoins, aucune différence significativen’est décelée entre le taux <strong>de</strong> sucres totaux dans les racinestémoins et infestées par T. <strong>semipenetrans</strong> au cours<strong>de</strong> différentes dates d’échantillonnages (Fig. 6).La répartition <strong>de</strong>s sucres totaux dans les tissus (cortexet moelle). La répartition <strong>de</strong>s réserves en sucres totauxdans les pousses printanières pendant <strong>la</strong> pério<strong>de</strong> montrantune différence significative entre les arbres témoinset infestés n’est pas équitable entre le cortex et <strong>la</strong> moelle<strong>de</strong> <strong>la</strong> tige. En <strong>effet</strong>, pendant <strong>la</strong> pério<strong>de</strong> estivale, ces réservessont plus abondantes dans le cortex <strong>de</strong> <strong>la</strong> tige. En<strong>effet</strong>, <strong>la</strong> partie corticale constitue le lieu <strong>de</strong> transfert <strong>de</strong>sFig. 5. Evolution <strong>de</strong> <strong>la</strong> quantité d’amidon dans <strong>la</strong> région corticale et <strong>la</strong> moelle <strong>de</strong>s tiges <strong>de</strong>s pousses printanières <strong>de</strong>s arbres ‘Maltaisedouce’ greffés <strong>sur</strong> bigaradiers cultivées en bacs in<strong>de</strong>mnes et infestés par T. <strong>semipenetrans</strong>.


34Fig. 6. Evolution annuelle <strong>de</strong>s sucres réducteurs totaux <strong>de</strong>s feuilles, <strong>de</strong>s tiges <strong>de</strong>s pousses printanières et <strong>de</strong>s racines <strong>de</strong>s arbres ‘Maltaisedouce’ greffés <strong>sur</strong> bigaradiers cultivés en bacs in<strong>de</strong>mnes et infestés par T. <strong>semipenetrans</strong>. Les barres correspon<strong>de</strong>nt aux intervalles<strong>de</strong> confiance à P = 0,05. Les moyennes <strong>de</strong>s <strong>de</strong>ux types d’arbres associées à (*) sont significativement différentes selon le test t<strong>de</strong> Stu<strong>de</strong>nt à P = 0,05.substances solubles entre les feuilles et les autres organes<strong>de</strong> l’arbre. Dans les tiges <strong>de</strong>s arbres infestés, <strong>la</strong> moellerenferme une proportion <strong>de</strong> sucres totaux anormalementélevée pendant le mois d’octobre (Fig. 7).Fig. 7. Evolution <strong>de</strong> <strong>la</strong> quantité <strong>de</strong>s sucres totaux dans <strong>la</strong> régioncorticale et <strong>la</strong> moelle <strong>de</strong>s tiges <strong>de</strong>s pousses printanières<strong>de</strong>s arbres ‘Maltaise douce’ greffés <strong>sur</strong> bigaradiers cultivés enbacs in<strong>de</strong>mnes et infestés par T. <strong>semipenetrans</strong>.Localisation <strong>de</strong>s sucresLa comparaison <strong>sur</strong> le p<strong>la</strong>n qualitatif <strong>de</strong>s réservesd’amidon entre les arbres témoins et infestés par le némato<strong>de</strong><strong>de</strong>s Citrus a été effectuée après chaque flux <strong>de</strong>sève. Des coupes transversales <strong>de</strong>s tiges provenant <strong>de</strong>sarbres <strong>de</strong> ‘Maltaise douce’ greffés <strong>sur</strong> bigaradier infestéspar T. <strong>semipenetrans</strong> et d’arbres témoins ont été effectuées.Les réserves sous forme <strong>de</strong> grains d’amidon ontété observées dans <strong>la</strong> moelle, les trachéi<strong>de</strong>s du xylème, lephloème et dans <strong>la</strong> partie corticale. A <strong>la</strong> fin du cycle végétatif(novembre 2005), <strong>la</strong> moelle et <strong>la</strong> partie corticale<strong>de</strong>s tiges in<strong>de</strong>mnes parait renfermer plus <strong>de</strong> grainsd’amidon que les tiges infestées. En revanche, le xylème<strong>de</strong>s tiges infestées est plus riche en amidon (Fig. 8 A etA’). Pendant <strong>la</strong> pério<strong>de</strong> d’initiation florale (février 2006),<strong>la</strong> coloration foncée <strong>de</strong>s différentes parties <strong>de</strong> tiges in<strong>de</strong>mnes(cortex, phloème et xylème) reflète leur richesseen granules d’amidon <strong>sur</strong>tout au niveau <strong>de</strong> <strong>la</strong> partie périphérique<strong>de</strong> <strong>la</strong> moelle. Les tiges infestées renferment <strong>de</strong>sgranules moins abondantes que les tiges <strong>de</strong>s arbres in<strong>de</strong>mnes.A cette pério<strong>de</strong>, <strong>la</strong> tige emmagasine peu d’amidondans <strong>la</strong> moelle (Fig. 8 B et B’). Après <strong>la</strong> premièrevague <strong>de</strong> croissance printanière, les tiges <strong>de</strong>s arbres in-


Mai 2006Novembre 2006Fig. 8. Aspea da coupcs transversrtles <strong>de</strong>s tiges <strong>de</strong>s pousses printanihts colorées au liqui<strong>de</strong> <strong>de</strong> Lugol après chaque vague <strong>de</strong>oissance pendant un cycIe végetatir da arbm 'Maltitise douce' gdfk <strong>sur</strong> bigaruidiers cultivks en bacs in<strong>de</strong>mnes et in&& parT. rmpenet~a~ps (10ERc). Grain d'amidon (ga), <strong>la</strong> mo<strong>de</strong> (Mo), le <strong>la</strong> partic comcdt (Pc), phloème (PI), Xylhe (Xy).


36festés sont plus riches en amidon dans <strong>la</strong> moelle, le xylème,le phloème et <strong>la</strong> partie corticale que les tiges <strong>de</strong>sarbres in<strong>de</strong>mnes (Fig. 8 C et C’). Pendant <strong>la</strong> pério<strong>de</strong> estivale,après <strong>la</strong> vague <strong>de</strong>s pousses vigoureuses (gourmands),les <strong>de</strong>ux tiges infestées et in<strong>de</strong>mnes présententune faible quantité <strong>de</strong> grains d’amidon (Fig. 8 D et D’).A <strong>la</strong> fin <strong>de</strong> <strong>la</strong> troisième et <strong>de</strong>rnière vague <strong>de</strong> croissance(septembre 2006), les arbres in<strong>de</strong>mnes et infestés sontpauvres en granules d’amidon (Fig. 8 E et E’). En revanche,au mois d’octobre, les tiges <strong>de</strong>s arbres infestéssont plus riches en amidon dans <strong>la</strong> moelle, le xylème, lephloème et <strong>la</strong> partie corticale que les tiges in<strong>de</strong>mnes(Fig. 8 F et F’). En novembre 2006, marquant le retourau repos végétatif, les tiges in<strong>de</strong>mnes sont plus riches enamidon dans <strong>la</strong> moelle, le xylème, le phloème et <strong>la</strong> partiecorticale que les tiges infestées (Fig. 8 G et G’).DISCUSSIONL’action du némato<strong>de</strong> <strong>sur</strong> les arbres n’implique pasdirectement une diminution <strong>de</strong> <strong>la</strong> productivité. La perte<strong>de</strong> ren<strong>de</strong>ment en fruits parait liée à <strong>la</strong> modification <strong>de</strong> <strong>la</strong>morphogenèse (B’Chir et Kallel, 1992; Kallel et B’Chir,2006) et <strong>la</strong> déficience énergétique <strong>de</strong>s arbres. En verger,les popu<strong>la</strong>tions <strong>de</strong> T. <strong>semipenetrans</strong> sont en équilibreavec l’arbre et les conditions du milieu. Les pics <strong>de</strong> <strong>de</strong>nsité<strong>de</strong>s femelles et <strong>de</strong>s <strong>la</strong>rves du némato<strong>de</strong> <strong>sur</strong> les racines<strong>de</strong> Citrus suit l’émission <strong>de</strong> jeunes racines nourricières(Hamid et al., 1988). La variation <strong>de</strong> <strong>la</strong> <strong>de</strong>nsité <strong>de</strong>popu<strong>la</strong>tion <strong>sur</strong> racine est saisonnière (B’Chir et Kallel,1992; Abd-Elgawad et al., 1994) en fonction <strong>de</strong> <strong>la</strong> disponibilitéen racines nourricières, ce qui explique <strong>la</strong> fluctuationsaisonnière bimodale, avec un pic au printempset un pic en automne. La variation <strong>de</strong> <strong>la</strong> <strong>de</strong>nsité <strong>de</strong> popu<strong>la</strong>tiondu némato<strong>de</strong> est également pluriannuelle enfonction du bi<strong>la</strong>n énergétique <strong>de</strong>s arbres et les infestationsantécé<strong>de</strong>ntes (Kallel et al., 2001). Il est évi<strong>de</strong>nt quedans les conditions <strong>de</strong> cette expérimentation conduite enbacs, permettant <strong>de</strong> comparer les arbres infestés par lenémato<strong>de</strong> <strong>de</strong>s Citrus à <strong>de</strong>s arbres sains, <strong>la</strong> variation <strong>de</strong> <strong>la</strong><strong>de</strong>nsité <strong>de</strong> némato<strong>de</strong> <strong>sur</strong> les racines ne suit <strong>la</strong> même allurebimodale que celle <strong>de</strong>s arbres en verger. En bac, l’élévationimportante et rapi<strong>de</strong> <strong>de</strong> <strong>la</strong> température du sol, <strong>la</strong>diminution <strong>de</strong> l’humidité et <strong>la</strong> situation <strong>de</strong>s arbres quisont rapi<strong>de</strong>ment sous stress hydrique (Kallel et B’Chir,2005) pourraient expliquer <strong>la</strong> diminution <strong>de</strong> <strong>la</strong> <strong>de</strong>nsité<strong>de</strong> popu<strong>la</strong>tion <strong>sur</strong> les racines pendant <strong>la</strong> pério<strong>de</strong> estivale.Bien que <strong>la</strong> matière sèche dans les pousses (tige etfeuille) initiées au printemps soit simi<strong>la</strong>ire entre lesarbres infestés par le némato<strong>de</strong> et les arbres sains pendanttoute l’année, <strong>la</strong> matière sèche dans les racines estdifférente entre les <strong>de</strong>ux types d’arbres. Cette perte <strong>de</strong>matière sèche liée à un déficit en amidon dans <strong>la</strong> partieaérienne et restant confinée dans les racines infestéespar T. <strong>semipenetrans</strong> pendant <strong>la</strong> pério<strong>de</strong> printanière esten rapport avec l’instal<strong>la</strong>tion d’un grand nombre <strong>de</strong> juvénilesdu némato<strong>de</strong> (Duncan et al., 1993).Les femelles <strong>de</strong> ce némato<strong>de</strong> s’installent et initient<strong>de</strong>s cellules trophiques dans le cortex amylifère <strong>de</strong> <strong>la</strong> racine.Les cellules modifiées par le némato<strong>de</strong> sont plusriches en sucres et en amidon. Cette particu<strong>la</strong>ritémontre tout d’abord le rôle important <strong>de</strong>s sucres dans lemétabolisme du némato<strong>de</strong> comme il a été observé parplusieurs chercheurs (Cohn, 1965; Hamid, 1985; Kallelet al., 2005). La richesse en amidon <strong>de</strong>s cellules initiéesn’est possible que dans le cas où un réseau trophique semet en p<strong>la</strong>ce, drainant les substances é<strong>la</strong>borées entre lescellules modifiées par le némato<strong>de</strong>, les organes <strong>de</strong> stockage<strong>de</strong>s racines et les lieux <strong>de</strong> transfert <strong>de</strong> <strong>la</strong> matière(les vaisseaux conducteurs). Les substances énergétiquessont transloquées <strong>de</strong>s feuilles et tiges vers les racines,via <strong>la</strong> voie <strong>de</strong>scendante (phloème) pour <strong>la</strong> matièreé<strong>la</strong>borée, tels que les sucres réducteurs, alors que l’amidon,l’eau et <strong>de</strong>s sels minéraux sont véhiculés via les trachéi<strong>de</strong>sdu xylème, permettant <strong>la</strong> translocation ascendante<strong>de</strong>s racines vers <strong>la</strong> partie aérienne <strong>de</strong> l’arbre. Enplus <strong>de</strong> ces voies naturelles <strong>de</strong> <strong>la</strong> p<strong>la</strong>nte, un réseau trophiqueest induit dans les racines infestées par le némato<strong>de</strong>.Ce réseau, formé par les cellules trophiques, lesorganelles intracellu<strong>la</strong>ire d’échanges dans le cytop<strong>la</strong>sme<strong>de</strong>s cellules corticales et les tubules intercellu<strong>la</strong>iresd’échanges entre les cellules du cortex radicu<strong>la</strong>ire a étéobservé en microscopie photonique, confocale et électroniqueà transmission (B’Chir, 1988; Kallel et al.,2005). Le réseau trophique permet d’alimenter ainsi <strong>la</strong>femelle <strong>de</strong> T. <strong>semipenetrans</strong>, étant donné que celle-cipeut se maintenir <strong>sur</strong> <strong>la</strong> racine <strong>de</strong>s agrumes pendant uneannée entière (Kallel et B’Chir, 2004).Duncan et al. (1993) ont montré que l’arbre en vergera un <strong>effet</strong> <strong>sur</strong> le némato<strong>de</strong> <strong>de</strong>s Citrus. A l’inverse,cette étu<strong>de</strong> a montré que ce némato<strong>de</strong> a un <strong>effet</strong> <strong>sur</strong> <strong>la</strong>quantité d’amidon <strong>de</strong>s racines contrairement aux sucressolubles, dont <strong>la</strong> quantité reste simi<strong>la</strong>ire dans les racinessaines et infestées par le némato<strong>de</strong>. Ces résultats rejoignentceux obtenus par Hamid et al. (1985).Tylenchulus <strong>semipenetrans</strong> est donc un parasite insidieux,il modifie <strong>la</strong> morphogenèse <strong>de</strong>s arbres infestés(B’Chir et Kallel, 1992; Kallel et B’Chir, 2006). Lesarbres infestés, comparés aux témoins, produisent unnombre <strong>de</strong> rameaux orthotropes plus importants, ce quiaméliore le bi<strong>la</strong>n énergétique en sucres <strong>de</strong>s arbres etpermet un nombre important <strong>de</strong> juvéniles <strong>de</strong> <strong>de</strong>venir<strong>de</strong>s femelles pondant <strong>de</strong>s œufs. Cette orthotropie explique<strong>la</strong> quantité importante d’amidon dans les tiges etles racines au printemps (mai). La variation <strong>de</strong> <strong>la</strong> quantitéd’hydrates carbone synthétisés et stockés sous formed’amidon par l’arbre affecte fortement <strong>la</strong> <strong>de</strong>nsité <strong>de</strong> popu<strong>la</strong>tiondu némato<strong>de</strong> dans les racines (Duncan et Eissenstat,1993; Duncan et al., 1993). A l’inverse, <strong>la</strong>consommation <strong>de</strong> l’amidon par le némato<strong>de</strong> influence <strong>la</strong>phénologie <strong>de</strong> l’arbre (Kallel et B’Chir, 2006), ce quipermet <strong>de</strong> mettre ce némato<strong>de</strong> au rang <strong>de</strong> parasite.Pendant <strong>la</strong> pério<strong>de</strong> hivernale, l’arbre accumule <strong>de</strong>l’amidon dans <strong>la</strong> moelle <strong>de</strong>s pousses printanières pourpréparer un <strong>de</strong>uxième cycle végétatif pendant <strong>la</strong> pério-


Hadj Nasser et al. 37<strong>de</strong> printanière. Pendant celle-ci, l’arbre a besoin d’énergiepour <strong>la</strong> croissance <strong>de</strong>s nouvelles racines, <strong>la</strong> croissancevégétative aérienne et <strong>la</strong> floraison. La présence <strong>de</strong>sfemelles consommatrices d’amidon pendant <strong>la</strong> pério<strong>de</strong>automne-hiver ampute <strong>la</strong> translocation <strong>de</strong>s réservesénergétiques par <strong>la</strong> voie du xylème et leur stockage dansles pousses printanières. En <strong>effet</strong>, l’entretien <strong>de</strong> <strong>la</strong> <strong>de</strong>nsité<strong>de</strong>s popu<strong>la</strong>tions du némato<strong>de</strong> pendant l’hiver, <strong>la</strong> miseen p<strong>la</strong>ce <strong>de</strong> nouveaux sites trophiques induits par les juvénilesissues <strong>de</strong> <strong>la</strong> vague d’éclosion printanières du némato<strong>de</strong>et l’inefficience <strong>de</strong>s racines nouvellementémises, créent un déséquilibre entre <strong>la</strong> partie aérienne etsouterraine, ce qui permet d’expliquer <strong>la</strong> diminution<strong>de</strong>s nouvelles pousses printanières et leur <strong>de</strong>ssèchement(O’Bannon et Reynolds, 1967; Kallel et Ab<strong>de</strong>lwahed-Ghariani, 2004; Kallel et al., 2004).La diminution <strong>de</strong>s réserves énergétiques dans lestiges pourrait expliquer les symptômes <strong>de</strong> défoliation et<strong>de</strong> <strong>de</strong>ssèchement (mortalité) <strong>de</strong>s pousses appelées “dieback”chaque fois que les racines supportent une <strong>de</strong>nsité<strong>de</strong> popu<strong>la</strong>tion du némato<strong>de</strong> élevée.La diminution <strong>de</strong> <strong>la</strong> <strong>de</strong>nsité <strong>de</strong> popu<strong>la</strong>tion <strong>de</strong> némato<strong>de</strong><strong>sur</strong> les racines au début du mois <strong>de</strong> septembre neparait être liée ni à <strong>la</strong> matière sèche, ni à <strong>la</strong> quantitéd’amidon et les sucres totaux, mais plutôt aux conditions<strong>de</strong> température élevée marquées par les coups <strong>de</strong>sirocco dans <strong>la</strong> région méditerranéenne (Kallel et Ab<strong>de</strong>lwahed-Ghariani,2004; Kallel et B’Chir 2004).En définitif, T. <strong>semipenetrans</strong> induit <strong>de</strong>s modificationsmorphologiques et physiologiques profon<strong>de</strong>s <strong>de</strong>sarbres <strong>de</strong> Citrus qui seraient liées à un déséquilibre généraldu métabolisme. Ces modifications entrainent unemauvaise translocation <strong>de</strong>s réserves en amidon et ensucres réducteurs aboutissant à un déficit énergétique etdép<strong>la</strong>çant l’équilibre vers une meilleure disponibilité<strong>de</strong>s réserves pour le parasite.LITERATURE CITÉEAbd-Elgawad M.N., Youssef M.M. et Shamsel<strong>de</strong>en M.M.,1994. Observations on the popu<strong>la</strong>tion fluctuations of theCitrus nemato<strong>de</strong> on Ca<strong>la</strong>man<strong>de</strong>r orange in Egypt. PakistanJournal of Nematology, 12: 87-94.Aggrey G.S., Kenno A. et Batcha A., 1988. Nemato<strong>de</strong> faunain two <strong>de</strong>clining Citrus orchards in Ethiopia. FAO P<strong>la</strong>ntProtection Bulletin, 36: 35-41.Ambrogioni L. et D’Errico F.P., 1984. I nematodi parassiti<strong>de</strong>gli agrumi e loro controllo. Notiziario sulle Ma<strong>la</strong>ttie <strong>de</strong>llePiante, 105: 64 p.B’Chir M.M., 1988. 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