Introduzione - International Pbi

Note Applicative 

- Nota Applicativa n. 220 – Campionamento di Listeria, Salmonella, E.coli, coliformi presenti 

sulle superfici 

- Nota Applicativa n. 600 – La spedizione in sicurezza di materiale biologico ed infetto 

- Nota Applicativa n. 601 – Campionamenti di acqua da barche, ponti e rive di fiumi 

- Nota Applicativa n. 602 – Organizzazione del campionamento sul campo 

- Nota Applicativa n. 603 – Piani di campionamento randomizzato 

- Nota Applicativa n. 605 – Lo scopo del campionamento 

- Nota Applicativa n. 606 – Campionamenti da bidoni, cisterne, fusti, sacchi, pozzetti 

- Nota Applicativa n. 607 – Foraggi e terreni: modalità di raccolta dei campioni ed invio al 

laboratorio 

- Nota Applicativa n. 608 – Campionamento in progressione di prodotti granulari 

- Nota Applicativa n. 609 – Buone Norme di Campionamento: trasferimento di campione 

biologico 

- Nota Applicativa n. 610 – Accettazione e registrazione campioni in arrivo al laboratorio 

- Nota Applicativa n. 611 – Addestramento del personale al campionamento microbiologico 

- Nota Applicativa n. 612 – Legge della distribuzione di Poisson applicata al 

campionamento microbiologico 

- Nota applicativa n. 613 – Piani di campionamento per il controllo microbiologico degli 

alimenti 

- Nota Applicativa n. 616 – Campionamento di prodotti disomogenei e con implicazioni 

biologiche 

- Nota Applicativa n. 619 – Prelievo di polveri, granuli con trascinamento sequenziale del 

campione con vite di Archimede 

- Nota Applicativa n. 620 – Il Campionamento di mangimi 

- Nota Applicativa n. 623 – Campionamento rappresentativo: il passaggio dal campione 

“macro” di campo al campione “micro” di laboratorio 

- Nota Applicativa n. 624 – 1 ppm, 2 ppb, 3 ppt 

- Nota Applicativa n. 625 – Campionamento microbiologico di superfici sterili e non sterili 

con il metodo della spugna 

- Nota Applicativa n. 626 – Addestramento del personale al campionamento microbiologico 

sul campo 

- Nota Applicativa n. 627 – Sistemi di trasporto di materiale biologico ed infetto in accordo 

alla circolare del ministero della Sanità n.16 del 20/07/1994 

- Nota Applicativa n. 628 – Flambatura di rubinetto e sonde per campionamento 

microbiologico sul campo 

- Nota Applicativa n. 629 – Sistemi di campionamento di “grado farmaceutico” 

- Nota Applicativa n. 630 – La sigillatura dei contenitori dei campioni 

- Nota Applicativa n. 631 – Metodi ufficiali internazionali per il campionamento di alimenti 

- Nota Applicativa n. 634 – La preparazione all’analisi chimica di campioni agro-alimentari 

in laboratorio 

- Nota Applicativa n. 635 – Preparazione e suddivisione di campioni solidi sfusi 

- Nota Applicativa n. 636 – Modalità di prelevamento dei campioni per il controllo ufficiale 

degli alimenti per gli animali 

- Nota Applicativa n. 637 – Regolamento Regione Piemonte n.1 recante disposizioni sul 

trasferimento dei campioni biologici tra strutture private di

- Nota Applicativa n. 638 – Guida al campionamento dei prodotti lattiero-caseari – Norma 

FIL IDF 50C:1995 

- Nota Applicativa n. 639 – Guida alla scelta del sistema di campionamento 

- Nota Applicativa n. 640 – Campionamento di nocciole, semi oleosi, granaglie secondo le 

raccomandazioni della FDA 

- Nota Applicativa n. 641 – Determinazione pesticidi: riduzione del campione mediante 

sdoppiamento 

- Nota Applicativa n. 643 – Strumentazione di base da utilizzare in caso di emergenza 

igienica 

- Nota Applicativa n. 644 – Campionamento microbiologico della carne cruda ed 

interpretazione dei risultati 

- Nota Applicativa n. 646 – Limiti microbiologici di accettabilità per alimenti con il piano a 

tre classi 

- Nota Applicativa n. 647 – Errori di campionamento in prodotti non omogenei 

- Nota Applicativa n. 648 – Campionamento microbiologico acqua potabile 

- Nota Applicativa n. 649 – Omogeneizzazione di prodotti alimentari solidi in accordo a 

USDA/AOAC/FDA/CDC 

- Nota Applicativa n. 652 – Il campionamento per l’analisi delle micotossine 

- Nota Applicativa n. 653 – Raffronto tra tre diversi metodi di preparazione di campioni in 

polvere o granulari 

- Nota Applicativa n. 654 – Campionamento di lotti statici di cereali, legumi, prodotti agro- 

alimentari macinati secondo il draft ISO/DIS 13690 

trasferimento dei campioni biologici tra strutture private di 

laboratorio 

- Nota Applicativa n. 656 – Addestramento del tecnico di laboratorio junior alla 

preparazione del campione 

- Nota Applicativa n. 658 – Campionamento di derrate alimentari sfuse al fine della ricerca 

di micotossine 

- Nota Applicativa n. 660 – Campione rappresentativo 

- Nota Applicativa n. 661 – Il campionamento microbiologico delle superfici con il metodo 

della spugna 

- Nota Applicativa n. 662 – Note pratiche per il campionamento ufficiale degli alimenti 

- Nota Applicativa n. 663 – Campionamento batteriologico delle carcasse di bovini, suini, 

ovini, caprini, equini nei macelli in accordo alle Direttive 

64/433/CEE – 71/118/CEE – 2001/471/CE 

- Nota Applicativa n. 664 – Campionamento carcasse bovine, suine, caprine secondo le 

normative USDA 

- Nota Applicativa n. 667 – Il prelievo dei campioni di acque destinate al consumo umano 

secondo le indicazioni dell’Istituto Superiore di Sanità 

- Nota Applicativa n. 668 – La responsabilità del mittente, del corriere, del destinatario nella 

spedizione e trasporto di campioni biologici 

- Nota Applicativa n. 669 – Linee guida per la gestione dei materiali biologici: ricezione dei 

campioni 

- Nota Applicativa n. 671 – Moduli di campionamento ambientale per evidenziare agenti 

chimici, fisici, biologici 

- Nota Applicativa n. 673 – Come scegliere un omogeneizzatore a dispersione 

- Nota Applicativa n. 677 – Il monitoraggio del bio-aerosol in isolatore

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Introduzione 

Le superfici sulle quali vengono a contatto i prodotti alimentari sono una potenziale e diffusa fonte di 

contaminazione crociata. 

Le Direttive CEE e l'applicazione del sistema HACCP richiamano ripetutamente la necessità di una 

continua ed oculata disinfezione, pulizia e monitoraggio delle superfici degli impianti di produzione. 

I sistemi "Sponge-Bag" e “Speci-Sponge” sono stati specificatamente ideati per il campionamento di 

Listeria, Salmonella, Coliformi ed altri patogeni sulle superfici di lavoro. 

Campionamento con “Sponge-Bag” 

La "Sponge-Bag" è una spugna assorbente sterile, allo stato secco, non è trattata con un battericida 

come le comuni spugne, misura cm 3.5 x 7.5 ed è contenuta in un sacchetto sterile “Presto-Chiuso". 

La si usa impregnandola dapprima con un liquido sterile e strofinandola poi sulla superficie in esame. 

L'area in esame può essere delimitata mediante un apposito delimitatore di area. 

Sistema di campionamento 

”Microbiologic-Control-Kit” 

Codice: 31979 

“ Square 

Surface" 

a seconda se si intenda eseguire una determinazione quantitativa o solo qualitativa. 

La spugna viene poi riposta nella sua confezione originale e trasferita al laboratorio per l'analisi. 

Il sacchetto ha una ampia banda di scrittura per una semplice ed indelebile identificazione del 

campione. La spugna può essere utilizzata su superfici di qualsiasi tipo. 

Sacchetto 

”Sponge-Bag” 

Sacchetto 

“Speci-Sponge” 

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Impiego 

La 

spugna deve essere idratata prima dell'impiego in laboratorio o sul campo con 7/8 ml di soluzione diluente sterile (soluzione di Ringer 

al quarto,acqua 

peptonata,etc. ). 

Sono disponibili anche sacchetti con spugne pre-inumidite. 

Non si devono usare più di 9 ml per 

evitare il gocciolamento. 

In caso di campionamento su superfici presumibilmente sanificate, con conseguente 

rischio di 

contaminazione di residui di inibenti, bisogna prevedere l’aggiunta 

di un inattivante per disinfettanti (per esempio “Neutralizing Broth”). 

Per estrarre la spugna dal sacchetto in modo corretto agire nel modo seguente: 

a) 

capovolgere il sacchetto facendo avvicinare la spugna all'apertura 

b) aprire il sacchetto ed estrarre la spugna con pinza sterile o indossando guanti sterili. 

c) durante questa operazione fare attenzione a non introdurre le mani all'interno 

del sacchetto. 

E’ anche possibile utilizzare il sacchetto come guanto: dopo aver avvicinato la spugna all’apertura, 

afferrarla lasciandola nel sacchetto e 

far 

uscire la spugna dall’apertura senza mai toccarla direttamente. 

Eseguire il campionamento su almeno tre differenti superfici per poter fare una media e garantire la rappresentatività della superficie 

campionata. 

Listeria monocytogenes 

1. 

Imbibire la spugna con 7-8 ml di acqua peptonata sterile. Estrarre la spugna e strofinarla con pinze o guanti sterili all'interno 

della superficie in esame delimitata. 

Re-inserirla nel sacchetto e trasferire tutto in laboratorio nel piu' breve tempo possibile. 

2. Aggiungere 90 ml di acqua peptone tamponato sterile. 

3. Omogeneizzare in Stomacher per 1 minuto. 

4. Allestire diluizioni scalari sino a 10-3. 

5. Seminare in triplice 1 ml delle diluizioni ( 10-1, 10-2, 10-3) in 9 ml di Fraser Broth. Se si intende procedere ad un ricerca di solo tipo 

qualitativo (Presenza/Assenza) il test dovrà 

essere condotto sull’intero campione senza procedere a diluizioni prima della preincubazione. 

6. Pre-incubare a 32° C per 24/48 ore. 

7. Dalle brodocolture 

positive ( annerimento del terreno) prelevare una ansata ed eseguire strisci su Listeria Selective Agar Base. 

8. Incubare a 37° C per 24/48 ore. 

9. Selezionare almeno 5 colonie caratteristiche ( colonie brune circondate da alone scuro )e seminare in Tryptone Soya Agar con lo 

0,6 % di estratto di lievito;incubare 

a 37° C per 24/48 ore. 

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10. 

Sottoporre le colonie selezionate alla colorazione di Gram ed al test della catalasi; prelevare con ansa una colonia tipica e 

sospenderla in una goccia di soluzione di acqua ossigenata al 3%. La reazione positiva al test della catalasi e dimostrata dalla 

formazione di bolle di gas. 

11. Seminare per infusione le colonie Gram-positive in piastre di Columbia Agar Base addizionato con il 5% di sangue di montone. 

12. Incubare a 37° C per 24 ore. 

Salmonella 

1. 

Imbibire la spugna con 7-8 ml di acqua peptone tamponato sterile. Estrarre la spugna e strofinarla con pinze sterili o guanti o mani 

pulite all'interno della 

superficie in esame delimitata. Re-inserirla nel sacchetto e trasferire il tutto in laboratorio nel più breve tempo 

possibile. 

Pre-arricchimento 

2. Aggiungere 90 ml di acqua peptone tamponato sterile (terreno di pre-arricchimento ). 

Ripetere la stessa 

operazione con altre due spugne per ottenere almeno 300 ml. 

3. Omogeneizzare in Stomacher per 1 minuto. 

4. Incubare a 37° C per 16/20 ore. 

Arricchimento secondario selettivo 

5. Trasferire 100 ml del brodo di pre-arricchimento in 1 litro di Brodo di Mueller e Kauffmann , altri 100 ml in Brodo di Leison, 10 ml in 1 

litro di Brodo Rappaport e Vassiliadis. 

6. Incubare a 37° C il Brodo di Mueller-Kaufmann; a 43° C il Brodo di Leifson e quello di Rappaport e Vassiliadis. 

Terreno di isolamento 

8. Strisciare una ansata di brodocoltura di arricchimento su Agar Verde Brillante, Agar Citrato Desossicolato secondo Hynes, Agar al 

Bismuto solfito secondo 

Wilson e Blair. 

9. Incubare a 37 ° C per 24 ore. 

Sul terreno al verde brillante le colonie sono 

rosa circondate da terreno rosso vivo;sul terreno di Hynes le colonie sono incolori con o 

senza un punto centrale nero;sul 

terreno di Wilson e Blair le colonie hanno spesso una pronunciata lucentezza metallica. 

Campionamento con “ Speci-Sponge” 

O ltre al campionamento con le “Sponge-Bag” 

descritto precedentemente, è possibile campionare le superfici usando alcune varianti delle 

“Sponge-Bag” chiamate “Speci-Sponge”, che possiedono diversi accessori normalmente non compresi nelle “Sponge-Bag” (guanti sterili, 

spugna pre-idratata, soluzione tampone, delimitatore d’area, ecc). 


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La spedizione sicura di campioni biologici e di sostanze infette è un argomento che preoccupa 

tutte le persone coinvolte, medici, ricercatori, laboratoristi, personale del servizio postale, delle 

ferrovie, delle linee aeree. I ricercatori ed i laboratoristi si preoccupano che i campioni giungano 

a destinazione nel più breve tempo possibile per un corretto esame; il personale postale, 

ferroviario, delle linee aeree si preoccupa della possibilità di essere contaminato da materiale 

infetto a seguito di rotture, perdite od imballaggio inidoneo. 

Alcune organizzazioni internazionali quali United Nations Committee of Expert of the Transport of 

Dangerous Goods,Universal Postal Union,International Civil Aviation Organization,International 

Air Transportation Association hanno indicato delle linee guida per facilitare la spedizione in 

sicurezza di sostanze infette e nello stesso tempo assicurare la salute del personale addetto al 

trasporto. 

Definizioni 

Nel 1991 sono state adottate le seguenti definizioni dalla Organizzazione Mondiale della Sanità 

riprese anche dalla Circolare n° 16 del 20 Luglio 1994 del Ministero della Sanità “Spedizione di 

materiali biologici deperibili e potenzialmente infetti”: 

(riprese, successivamente dalla Circolare n.3 dell’8Maggio 2003 e dall’ADR-Agreement 

Dangerous Route) 

"SOSTANZE INFETTE" sono quelle che contengono microrganismi vitali compresi batteri, virus, 

rickettsia, parassiti, funghi, recombinanti, mutanti che sono conosciuti provocare malattie negli 

animali o nell'uomo. In questa definizione non sono incluse le tossine che non contengono 

sostanze infette. 

"CAMPIONI DIAGNOSTICI" è qualsiasi materiale di origine animale od umana inclusi escreti, 

secreti, sangue e derivati, tessuti che sono spediti a scopo di diagnosi, con esclusione di animali 

vivi infetti. 

"PRODOTTI BIOLOGICI" sono prodotti biologici finiti per uso umano o veterinario, fabbricati in 

conformità a quanto stabilito da Enti ufficiali nazionali o secondo le direttive di Autorità di Sanità 

Pubblica. 

I vaccini vivi per animali od uomo sono considerati "Prodotti biologici" e non "Sostanze infette". 

Conformemente alle prescrizioni delle Nazioni Unite, IATA, ICAO le sostanze infette ed i campioni 

diagnostici che si presume contengano sostanze infette devono essere spediti in imballi tripli. 

Documentazione ed imballaggio 

Specifica documentazione deve essere approntata per la spedizione di materiale infetto, 

campioni biologici e diagnostici. 

Le sostanze infette ed il materiale diagnostico dovrebbero essere confezionati con triplice 

protezione: 

a) un primo contenitore a tenuta ermetica per il prodotto biologico; 

b) un secondo contenitore a tenuta ermetica contenente materiale assorbente sufficiente per tutto 

il liquido eventualmente fuoriuscito accidentalmente dal primo contenitore; 

c) un terzo imballo allo scopo di proteggere il secondo contenitore da influenze esterne durante il 

trasporto. 

Le sostanze infette sono classificate come prodotti pericolosi e pertanto 

devono essere contrassegnate da apposita etichetta. 

Una copia delle informazioni riguardanti il campione, lettere e qualsiasi 

altra documentazione che faccia riferimento al campione deve essere 

fissata alla parte esterna del secondo contenitore. 

Un’ altra copia dovrebbe essere spedita via aerea al laboratorio 

destinatario ed una terza trattenuta dal mittente. 

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Ciò facilita il lavoro che dovrà affrontare il laboratorio ricevente sul come manipolare ed esaminare il campione. 

Se la sostanza è deperibile, apposita etichetta dovrà accompagnare sia i documenti che l'imballo 

(ad esempio:"conservare a +4°C"). 

Spedizione 

Per un efficiente trasferimento di sostanze infette è necessario un buon coordinamento tra il mittente, il vettore, ed il ricevente 

affinchè il trasporto avvenga in condizioni di sicurezza e giunga a destinazione in tempo utile. 

Il mittente deve preoccuparsi delle seguenti azioni: 

a) accordarsi telefonicamente o via fax con il vettore ed il ricevente che il materiale verrà accettato ; 

b) approntare in tempo i documenti di spedizione; 

c) decidere il mezzo e la via di spedizione,con volo diretto,se possibile; 

d) inviare al destinatario notifica di tutti i dati di spedizione in tempo debito. 

Le sostanze infette non dovrebbero essere spedite sino a quando il destinatario abbia dato conferma che non sussistono 

impedimenti legali o sanitari. 

Rientra nelle responsabilità del ricevente di: 

a) ottenere la necessaria autorizzazione da parte delle autorità nazionali all'importazione della sostanza; 

b) fornire al mittente i riferimenti del permesso di importazione o la lettera di autorizzazione; 

c) dare immediata conferma di ricevimento al mittente. 

Incidenti a seguito di trasporto:misure di emergenza 

Se l'imballo contenente le sostanze infette è danneggiato durante il trasporto o si ha il dubbio che ci siano delle perdite, il vettore 

dovrà informare immediatamente il mittente, il destinatario e le autorità Sanitarie. 

Nello stesso tempo l'imballo dovrà essere temporaneamente sottoposto al seguente procedimento: 

1. In caso di recipienti in vetro rotti od oggetti taglienti visibili, afferrarli con un panno, facendo attenzione a non tagliarsi le mani; 

2. Inserire le mani in un sacchetto di plastica in modo da formare una improvvisata manopola; 

3. Con le mani così protette, afferrare l'imballo e trasferirlo in un sacchetto di plastica di grandezza sufficiente a contenerlo; 

4. Eliminare l'improvvisata manopola nello stesso sacchetto; 

5. Chiudere ermeticamente il sacchetto in plastica e conservarlo in un luogo sicuro; 

6. Se si sono avute perdite di liquido,disinfettare l'area contaminata dopo aver assorbito il liquido con polvere assorbente; per fare 

ciò è necessario munirsi del Kit di emergenza “BioHazard Spill”; 

7. Lavare molto bene le mani; 

8. Attenersi a quando indicato in seguito: 

CLASSIFICAZIONE DEL GRUPPO DI RISCHIO PER I MICRORGANISMI INFETTI 

Gruppo di Rischio 1 

E’ un microrganismo che non causa normalmente malattie all’uomo od agli animali. 


E’ un patogeno che può causare malattie all’uomo od agli animali, ma in genere non rappresenta un grosso rischio per i 

laboratoristi, le comunità, gli alimenti o l’ambiente. 

L’esposizione in laboratorio può causare infezioni serie, ma un trattamento efficace e misure preventive limitano il rischio di 

diffusione dell’infezione. 


Un patogeno che normalmente causa gravi malattie all’uomo ed agli animali, ma normalmente non si diffonde da un individuo 

infetto ad un altro. Sono disponibili efficaci trattamenti e misure preventive. 


Un patogeno che normalmente provoca gravi malattie all’uomo ed agli animali e che si può facilmente trasmettere da un individuo 

ad un altro, direttamente od indirettamente. Trattamenti efficienti e misure preventive non sono normalmente disponibili. 


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Il campionamento di acqua da barche, ponti e rive di fiumi è quasi 

sempre molto difficoltoso. E’ pertanto necessario avere a 

disposizione uno strumento semplice, affidabile leggero e compatto 

che può essere utilizzato anche da personale non specializzato. 

Una buona soluzione a queste esigenze è offerta dal campionatore 

“Mare-Lacus” . 

Il kit “Mare-Lacus” è progettato per il prelevamento di campioni di 

acqua od altro liquido a profondità fino a 15 metri, con possibilità di 

aprire e chiudere il recipiente alla altezza desiderata. 

E’ costruito in acciaio inox AISI 304 e teflon. 

Operazioni preliminari 

1. Fissaggio della bottiglia sterile 

Tolto il tappo alla bottiglia precedentemente sterilizzata, la si avvita 

alla parte sottostante. 

2. Controllo prima dell’immersione 

Si tenga l’apparecchio, con la bottiglia attaccata, sospeso per la funicella agganciata all’asta superiore. 

Con un leggero stappo si provocherà la caduta del tappo in acciaio con conseguente chiusura della 

bottiglia. In tale modo l’apparecchio è pronto per l’immersione. 

Operazioni 

3. Immersione del preleva campioni 

L’apparecchio può ora essere immerso lentamente, facendo scorrere la funicella, che porta nodi a 

distanza di 1 metro l’uno dall’altro per poter controllare la profondità. 

Si raccomanda di evitare strappi o scosse che potrebbero far agire il dispositivo di apertura, che 

avverrebbe così anzitempo. 

4. Apertura della bottiglia per il riempimento 

Si abbassi di scatto per circa 40 cm la mano che tiene la funicella in modo da allentarne la tensione, e si 

resti in questa posizione. Si sarà così provocata l’apertura della bottiglia, e di conseguenza si vedranno 

salire le bolle d’aria in essa contenute; al cessare di questo fenomeno, la bottiglia sarà piena. 

Se accidentalmente ciò non si verificasse, alzare il braccio per circa 40 cm e quindi allentare 

repentinamente per ancora 40 cm. 

5. Chiusura in profondità della bottiglia dopo il riempimento 

Con uno strappo verso l’alto per circa 10 cm di corsa, si provocherà la chiusura ermetica della bottiglia. 

L’operazione sarà più sicura se si calerà lentamente la mano prima di dare lo stappo, che dovrà essere 

molto breve ma deciso. 

6. Ritiro dell’apparecchio in superficie 

Dopo lo stappo per la chiusura, si dovranno evitare nuove 

scosse repentine, procedendo al ritiro della funicella in 

modo graduale, continuo e lento. Un allentamento della 

funicella verso il basso può provocare nuovamente 

l’apertura come in 4. Appena fuori dell’acqua si sviti la 

bottiglia e la si chiuda con il tappo originario. 

I movimenti descritti alle posizioni 4 e 5 possono essere 

facilitati inserendo tra le due parti (superiore ed inferiore) 

l’anello in acciaio inossidabile. Questo compie un’azione 

frenante ed obbliga il prelevacampioni a reagire più 

bruscamente ai movimenti impostigli. L’anello che reagisce 

sul magnete è in acciaio cadmiato per evitare la ruggine e 

può eventualmente essere cambiato. 

Dopo l’uso l’apparecchio dovrà essere lavato ed asciugato. 

Per una eventuale sterilizzazione, sarà sufficiente flambare 

il tappo, il cono ed il collo inferiore, che sono in acciaio 

inox. 

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Il campione è parte determinante nell’influenzare il risultato analitico. 

Il campione deve essere rappresentativo. 

Le due tabelle riportate “Check-list del piano di campionamento” e “Fasi in successione per ottenere un 

campione rappresentativo” possono aiutare i responsabili e gli addetti al campionamento ad organizzare 

al meglio la loro attività sul campo e in laboratorio. 

CHECK-LIST DEL PIANO DI CAMPIONAMENTO 

CAMPIONAMENTO 

SUBCAMPIONAMENTO 

TRASPORTO E 

PREPARAZIONE DEL 

CAMPIONE 

Che cosa si campiona? E’ necessario il subcampionamento in Termine limite per il trasporto 

situ? 

del campione? 

Quando si campiona? E’ necessario il confezionamento del E’ disponibile un ambiente di 

sub-campione? 

raccolta ? 

Dove si campiona? Quali contenitori si usano? Occorre l’immediata 

preparazione? 

Come si campiona? I contenitori sono puliti? Occorrono speciali condizioni 

in laboratorio? 

Occorre strumentazione speciale? Si possono evitare contaminazioni e 

perdite? 

Occorre purificare il campione? 

Chi campiona? I contenitori sono codificati? Occorre la divisione del 

campione? 

Quanti campioni? E’ necessaria l’aggiunta in situ di Occorre la riduzione del 

conservanti? 

campione? 

Che quantitativo/campione? E’ necessario conservare lo stato fisico 

originale in situ? 

Occorre la essiccazione? 

Come sono codificati i campioni? Quali dati sono registrati e come? Occorre la frantumazione? 

Occorre un campione composto? Occorre la macinazione? 

Occorrono contenitori per il trasporto? Occorre la setacciatura? 

Quali contenitori occorrono? Occorre la 

“stomachizzazione”? 

Perdite e contaminazioni possono 

essere evitate? 

Occorre il mescolamento? 

E’ necessaria l’analisi in situ? In tutte queste fasi si può 

evitare la contaminazione, 

perdite e modifiche della 

composizione del campione? 

E’ necessaria la pulizia del campione in 

E’ necessaria l’analisi 

situ? 

immediata? 

Occorrono dati geografici e 

Il campione può essere 

meteorologici? 

conservato in laboratorio? 

Cosa si deve registrare e come? Quali dati sono registrati e 

come? 

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FASI IN SUCCESSIONE PER OTTENERE UN CAMPIONE RAPPRESENTATIVO 

DIMENSIONE DEL 

CAMPIONE 

DEFINIZIONE 

PRESUPPOSTI 

“Target population” Lotto completo al quale la Difficile da definire se il lotto non 

interpretazione dei risultati analitici è limitato in dimensioni e 

farà riferimento 

caratteristiche 

“Parent population” Parte della “Target population” La “Parent population” è 

campionata 

rappresentativa della “Target 

population” 

Campioni di partenza Il campione iniziale in relazione Può essere rappresentativo, 

alla “Parent population” 

randomizzato, composto o 

sistematico 

Sub-campioni Aliquote del campione di partenza Non si devono avere 

contaminazioni o perdite 

Campioni di laboratorio Aliquote del sub-campione Non si devono avere 

contaminazioni o perdite 

Porzioni da analizzare Aliquote del campione di 

Il campione di laboratorio 

laboratorio 

omogeneizzato è uniforme 

Referenze 

Zeev B. Alfassi - Determination of trace element 


AZIONI 

Occorre un campionamento molto oculato 

E’ richiesta la riduzione delle dimensioni pur 

mantenendo la integrità chimica 

Campionamento randomizzato 

Campionamento randomizzato 

Si devono fissare l’errore di campionamento 

ed il numero di campioni da analizzare 

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Tra i differenti piani di campionamento randomizzato, uno dei più in uso sia nel campo militare che in 

quello civile è quello messo a punto dalle autorità militari americane nel 1953, con successive revisioni, 

chiamato 105 D MIL.STD (Military Standard). 

Questo piano può essere utilizzato per il campionamento di: 

a) materie prime e componenti 

b) prodotti in fase di trasformazione 

c) prodotti finiti 

d) prodotti immagazzinati, ecc. 

Le aree più importanti dove essi vengono impiegati sono quelle di cui al punto a) e c) e dove il livello di 

qualità è espresso in % di “rejection rate”. 

Utilizzando questo piano, devono essere presi in considerazione tre fattori: 

1. La dimensione della partita o del lotto (N) 

2. Il livello di qualità accettabile (AQL-Value=Acceptable quality level) 

3. La necessità del controllo di qualità (3 gradi) 

Dimensione della partita e del lotto 

Il criterio nell’uso della grandezza del lotto o della partita si basa su considerazioni economiche più che 

su considerazioni statistiche. Il motivo è che questo comporta tanti più severi effetti sul fornitore per una 

BUONA partita che gli viene rifiutata, quanto più la partita è grande. Così pure per l’acquirente è tanto 

più negativo accettare una CATTIVA partita, quanto più la partita è grande. 

Per queste ragioni, il numero dei campioni (n) aumenterà con l’aumentare della dimensione della partita 

o del lotto (N): 

Livello di qualità accettabile 

Il valore di “AQL” è il numero massimo di unità difettose (espresso in %) che consente ancora al lotto od 

alla partita di essere accettato. Quando l’acquirente ha fissato un determinato valore di AQL , egli potrà 

accettare i lotti o le partite del fornitore quando la media delle unità difettose non sarà superiore al valore 

di AQL. Il valore di AQL da solo non fornisce la sicurezza del controllo quando si esaminano le singole 

partite, ma si adatta a partite e lotti multipli. 

Normalmente i valori di AQL impiegati sono del 4-6,5%. 

Grado di severità del controllo di qualità 

A seconda della severità richiesta, il piano di campionamento randomizzato si divide in tre gruppi: 

I, II, III. 

Il gruppo I è destinato ai prodotti di scarsa importanza dove è richiesto un basso livello di qualità. 

Nel gruppo II rientrano i prodotti definiti “normali” ed è quello normalmente impiegato. 

Il gruppo III riguarda i prodotti dove è richiesta una alta qualità (alimenti per l’infanzia, medicinali, etc.). 

Impiego delle tabelle 

Con un esempio sarà facile comprendere come le tabelle devono essere impiegate. 

Supponiamo di dover controllare un lotto di venti quintali di imballi di 25 kg cad. contenenti carne. 

Il numero totale di imballi è di 40 unità (2.000:25=40). 

Nella tabella 1 vediamo che il numero 40 cade nella quarta riga nel gruppo tra 26 e 50 unità. 

Considerando il prodotto “normale” agli effetti della qualità richiesta (gruppo II), nella colonna II 

otteniamo la lettera in codice D. 

Nella tabella 2A la lettera D prescrive che siano 8 le unità da prelevare ed esaminare. Supposto che il 

valore di AQL stabilito sia del 4%, in corrispondenza della colonna 4.0 troveremo i due numeri 1 e 2. 

La prima cifra indica quante delle 8 unità campionate (una unità) potranno essere difettose, permettendo 

ugualmente all’intero lotto di essere accettato. La seconda cifra indica il numero di unità campionate 

(due unità) a partire dal quale l’intero lotto di 40 imballi deve essere respinto. 

= Utilizzare il primo piano di campionamento al di sotto della freccia. 

Se il numero dei campioni uguaglia o supera la grandezza della partita o del lotto, ispezionare il 100%. 

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= Utilizzare il primo piano di campionamento al di sopra della freccia. 

Ac = Numero massimo di unità difettose accettabili. 

Re = Numero di unità difettose che determina la non accettabilità dell’intero lotto. 


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Scopo principale di un programma di campionamento non è quello di scartare ma di prevenire, tenendo 

conto di tutti quei segnali premonitori di tendenza o di preavviso ed effettuando opportuni interventi 

correttivi. 

Un esempio è rappresentato dal controllo periodico della contaminazione micetica dell’aria in uno 

stabilimento di produzione agro-alimentare; una diagnosi anticipata oltre un valore soglia prescelto 

consente l’applicazione di immediate azioni correttive di sanificazione in anticipo rispetto ai tempi 

programmati. Ciò eviterà scarti, resi dal mercato, negativa immagine aziendale. 

Uno strumento utile nel fissare i limiti entro i quali un prodotto, un processo, un sistema deve trovarsi è 

quello della compilazione delle “carte di controllo”. 

Il campionamento e la relativa determinazione analitica deve accertare la permanenza entro i valori 

specificati sia a livello di “centratura” che di “varianza” (probabilità che un certo numero di prodotti o 

processo esca dai valori di tolleranza prefissati). 

Fig.1 Aspetti principali di base per l’uso delle carte di controllo. 

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Il campione prelevato dovrebbe sempre essere rappresentativo della massa in esame. 

Ciò non è sempre facile da realizzare specialmente quando si deve campionare un lotto composto da 

un gran numero di piccoli imballaggi. 

E' inoltre quasi impossibile poter fissare delle regole rigide da osservare in tutti i casi. Nessuna regola 

standardizzata può prendere il posto dell'esperienza e del buon senso, tenendo anche conto che le 

operazioni di prelevamento non sempre possono essere eseguite da persone assolutamente esperte. 

Approntamento del materiale per esami microbiologici 

In caso di prelevamento di campioni da sottoporre ad esami microbiologici, le condizioni di asepsi 

devono essere scrupolosamente seguite. I prelievi devono essere eseguiti da persone che siano 

state addestrate alla conoscenza della tecnica che si deve seguire nei prelievi di campioni da 

sottoporre a questo tipo di analisi. 

Il materiale che viene usato per il prelievo del campione deve essere perfettamente pulito e non deve 

comunicare odori o gusti sgradevoli. 

Se il campione è destinato ad analisi microbiologiche il materiale da prelievo dovrà essere sottoposto 

prima dell'uso ad uno dei seguenti trattamenti: 

A. permanenza per almeno due ore in stufa ad aria calda a 160/ 170°C; 

B. permanenza per almeno 15 minuti in autoclave a 132°C; 

C. esposizione per almeno un'ora a vapore fluente. Il materiale dovrà essere ben protetto ed utilizzato 

entro poche ore; 

D. sosta di almeno 30 secondi in acqua bollente. Il materiale deve essere utilizzato immediatamente; 

E. immersione in alcool a 70° ed eliminazione dell'alcool per flambatura, immediatamente prima 

dell'impiego. 

La scelta del trattamento di sterilizzazione/bonifica più adatto sarà guidata dalla natura, forma, 

composizione, dimensione del materiale e dalle condizioni di prelievo. 

In ogni caso i metodi c), d), e) devono essere considerati secondari ed adottati solo quando sia 

materialmente impossibile utilizzare i primi due. 

Rilevamento della temperatura 

All' atto del prelievo si dovrà prendere nota della temperatura del 

campione. Si utilizza a questo scopo un termometro elettronico portatile 

dotato di sonda metallica di facile pulizia. 

Contenitori per il campione 

Il contenitore per il trasporto del campione dal luogo di prelievo al 

laboratorio costituisce uno dei punti chiavi del campionamento sia dal 

lato tecnico che economico. 

Questo contenitore deve infatti essere in grado di assicurare una tenuta 

ermetica, di non trasferire odori o provocare fenomeni di cessione al 

prodotto stesso, di essere facilmente trasportabile ed infrangibile, di 

essere possibilmente trasparente, di essere leggero e non ingombrante, 

di avere una imboccatura che faciliti l’introduzione del campione, di 

avere una superficie sulla quale poter chiaramente riportare con penna 

o matita i dati di identificazione senza ricorrere ad etichette autoadesive, di essere facilmente 

eliminabile dopo l’uso. 

Nel caso di campioni destinati all’analisi microbiologica, il contenitore deve inoltre essere sterile e la 

sua sterilità deve poter essere dimostrata sino al momento del campionamento. 

Tenendo conto di tutte queste esigenze è stato studiato, prodotto e commercializzato il sistema sterile 

monouso “Presto-Chiuso”. 

Lo schema riportato illustra in modo semplice e chiaro le modalità d’so del contenitore. 

Un’altra tipica applicazione del sistema “Presto-Chiuso” è quello dell’impiego combinato con 

l’omogeneizzatore “Stomacher” per le analisi microbiologiche. 

In questo modo il campione non necessita di essere trasferito in altro contenitore e può essere inserito 

direttamente nello “Stomacher”. 

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Prodotti in polvere 

Per il prelevamento da fusti e sacchi è indispensabile effettuare un prelievo composto in quanto la pratica ha dimostrato che errori 

vistosi sono decisamente influenzati dalla parte di prodotto che si trova sul fondo ed al centro a seguito di trasporto,vibrazioni,etc. 

I tipi di sonda di prelievo che meglio si adattano allo scopo sono: 

A. sonda a più settori per sacchi normali e fusti; 

B. sonda ad ago per sacchi; 

C. sonda con vite senza fine per sacchi di carta e politene. 

La sonda a più settori è disponibile in differenti lunghezze, è formata da due tubi concentrici ed è dotata di almeno tre celle di raccolta 

disposte lungo il suo asse. E' disponibile in alluminio od in acciaio inox. 

La sonda viene introdotta dall'alto verso il basso in modo che la punta possa facilitarne l’ introduzione nella massa e raggiunga l'interno. 

Girando la parte interna della sonda si provoca l'apertura delle tre celle che si riempiono così di polvere; si chiudono le celle eseguendo 

l'operazione inversa e si estrae la sonda. 

Il contenuto delle tre celle viene versato, con le cautele del caso, a seconda che si tratti di analisi chimico-fisiche o microbiologiche, in 

un recipiente e mescolato in modo da ottenere un campione omogeneo e sufficientemente rappresentativo. 

Per il prelievo da sacchi si utilizza la sonda ad ago oppure a vite senza fine. 

La sonda ad ago dispone di una sola cella di prelievo e la polvere viene raccolta attraverso l'interno del manico; il prelievo avviene 

forando l'involucro dall'esterno. Ultimato il prelievo, si deve chiudere il foro praticato sulla parete del contenitore, applicando un nastro 

adesivo od una apposita etichetta adesiva sulla quale si riporta la data di prelievo e la persona incaricata del prelievo. 

Se il prelievo viene eseguito in superficie e sia destinato ad esami microbiologici, si avrà cura di eliminare con un cucchiaio sterile lo 

strato superiore. 

La sonda cilindrica a vite senza fine è comandata da un trapano portatile funzionante a batteria e presenta il notevole vantaggio di 

poter penetrare in profondità nella massa da campionare, garantendo così un campione più realistico. Il prodotto campionato viene 

fatto defluire dal movimento della vite senza fine in un contenitore cilindrico di raccolta oppure in un sacchetto. 

Prodotti in granuli, scaglie, pellet 

Vale quanto detto per i prodotti in polvere;si dovranno adottare sonde di più largo diametro per poter garantire la caduta nella cella di 

raccolta del prodotto campionato. 


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Prodotti liquidi 

Il prelievo deve essere preceduto da una razionale mescolanza del prodotto per una possibile stratificazione dei vari componenti. 

Questa operazione viene eseguita con mezzi meccanici costituiti da una asta con impugnatura e disco forato. Il mescolamento deve 

essere protratto sin tanto che il liquido in superficie abbia le stesse caratteristiche di quello spillato dal rubinetto inferiore di scarico 

(Mixer “ATOS”). Ci si avvale di diversi sistemi di campionamento: 

a) cilindro metallico con scarico dal fondo 

b) mestolo in acciaio inox 

c) siringa con tubo di aspirazione maggiorato 

d) flacone con apertura comandata mediante prolunga metallica o dispositivo magnetico 

e) aspirazione in flacone mediante vuoto 

Il cilindro metallico con scarico dal fondo ha capacità comprese tra 10 e 250 ml. E' in metallo sterilizzabile, ha una lunghezza utile di 

circa 50 cm ed è dotato di una valvola di scarico azionabile a mano o per contatto con il bordo del recipiente che deve raccogliere il 

campione. 

Il mestolo in acciaio inox è il campionatore più semplice che si ha disposizione. Si utilizza in presenza di liquidi omogenei e di limitato 

spessore. La capacità varia da 50 a 250 ml. 

Il prelevatore a siringa dotato di tubo di aspirazione maggiorato è adottato per liquidi densi o poco fluidi. 

Per prelievi in profondità da cisterne o pozzi ci si avvale di flaconi con apertura comandata da prolunga metallica (sino a circa 2 metri) o 

da dispositivo magnetico collegato ad una fune (l'apertura del flacone avviene per "strappo" della fune). 

Quando il liquido da campionare è difficile da raggiungere, come ad esempio i pozzetti dell'acqua, ci si avvale del vuoto in modo da 

poter utilizzare un tubetto sottile che facilmente si possa insinuare nel poco spazio a disposizione. Il vuoto richiama in superficie il 

liquido campionato che viene raccolto in apposito contenitore. 


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- Fig.1: Cilindro metallico 

- Fig.2: Sonda “Dip-Atos” 

- Fig.3: Campionatore “Swing” 

- Fig.4: Siringa con tubo di aspirazione 

Prodotti solidi o pastosi 

Il prelievo può risultare difficile quando il prodotto è molto vischioso. E' indispensabile in questo caso mescolare bene tutta la massa 

prima di effettuare il prelievo:si usano a questo scopo gli stessi agitatori che servono per i liquidi. Avere cura di staccare il prodotto 

aderente alle pareti ed al fondo del recipiente. 

I sistemi di campionamento sono numerosi: 

a) sonda conica 

b) sonda a pistone 

c) sonda a cucchiaio elicoidale 

d) spatola 

La sonda conica si utilizza per prodotti lattiero-caseari quali burro, formaggi stagionati. La profondità della "carota" ottenuta sarà in 

funzione dello spessore del prodotto da campionare. Quando si tratta di prodotti quali le gelatine,si ricorre alla sonda a pistone formata 

da un tubo nel quale scorre internamente un pistone espulsore. 

Per i prodotti relativamente pastosi è valida la sonda a cucchiaio elicoidale che consente di portare in superficie gli strati inferiori del 

prodotto da campionare. 


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Prodotti gelati 

Nel caso di gelati sfusi si provvede con spatola sterile ad eliminare una 

zona superficiale per la profondità di circa mezzo centimetro. 

Per il campionamento si utilizza una sonda cilindrica conservata 

verticalmente in un provettone di vetro: 

si inserisce la sonda cilindrica nella massa da campionare e con un 

movimento rotatorio ed oscillatorio la si estrae e la si trasferisce nel 

provettone mantenuto in posizione verticale da un supporto. Il campione 

dovrà essere fatto pervenire al laboratorio al più presto possibile ed in 

condizioni di refrigerazione garantita. 

“IceProbe” - Campionatore per gelati 

Prodotti surgelati di massa 

La massa surgelata può essere penetrata solo con l'ausilio di un mezzo seghettato e 

guidato da un trapano elettrico. Si utilizza a questo scopo una sonda cilindrica in 

acciaio inox con testata seghettata ed applicata ad un trapano portatile. Dopo 

essere stata affondata nella massa da campionare, la sonda viene recuperata con 

movimento rotatorio invertito; la "carota" viene trasferita nel contenitore di raccolta 

del campione aiutandosi con un apposito estrattore. 

Documenti di campionamento 

Tutti i dati relativi al campionamento 

devono essere minuziosamente raccolti e registrati. 

Un esempio di tale documentazione è qui di seguito riportata. 

“Surgel” - Campionatore per congelati 

RAPPORTO DI ISTRUZIONE SUL CAMPIONAMENTO DATA…………… NOME OPERATORE ……………………………………………….. 

Descrizione del prodotto 

Quantitativo di sub campione e tipo di contenitore 1 

Temperatura del campione 

al momento del prelievo 

pH del campione al momento del prelievo 

Stato Fisico 2 

N. di sub-campioni richiesti 

Mezzi di campionamento 

Prodotti chimici aggiunti 4 

Condizioni di spedizione 5 

Tipo di analisi richiesto 6 

N. di sub-campioni 7 

Limite di accettabilità generale 8 

Limite di accettabilità dei sub-campioni 9 

N. massimo di sub-campioni critici 10 


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Foraggi 

FIENI 

1) Tenere separati tra loro i fieni dei vari tagli, in particolare il campione di fieno di primo taglio non deve 

mai essere mischiato con campioni di tagli successivi. 

2) Per il fieno imballato scegliere a caso almeno 10 balle provenienti dallo stesso lotto, prenderne una 

piccola quantità per ogni balla e mischiarle insieme; dal cumulo prendere il campione da inviare al 

laboratorio. Se il fieno è molto foglioso vi è il rischio con questa operazione di perdere molte foglioline; 

in questo caso mettere tutte insieme in un contenitore le piccole quantità prelevate da ciascuna balla; 

penserà il laboratorio a fare una accurata miscelazione del campione, evitando le perdite. 

3) Per il fieno sciolto eseguire almeno 10 prelievi in differenti punti della massa, avendo cura di evitare lo 

strato superficiale; per il resto regolarsi come nel precedente caso. 

4) Per il trasporto usare sempre contenitori (sacchetti di cellophan o di plastica o di carta, etc.), 

perfettamente puliti. Non adoperare mai secchi già usati per altri scopi (concimi, concentrati, sali 

minerali, etc.) e ricordarsi sempre di chiudere bene il contenitore. Il laboratorio di Zorlesco può fornire 

quanto necessita. 

5) Per il laboratorio un campione di 500 gr. è più che sufficiente. 

INSILATI 

Per gli insilati in genere (silo-mais, erbasilo, fieno silo, etc.) la campionatura è preferibile eseguirla al 

momento in cui il silo viene aperto per iniziare ad alimentare gli animali. Prelevare il foraggio da 10 punti 

diversi della massa al di sotto dello strato superficiale. Miscelare il tutto con molta cura e riempire i! 

contenitore. 

La quantità di campione occorrente per il laboratorio è in questo caso di almeno 4 volte quella 

necessaria per il fieno (quindi, circa 2 kg.). 

Usare solo contenitori di plastica o di cellophan, perfettamente puliti, e cercare di chiuderli il più 

ermeticamente possibile con una graffiatrice o altro. 

L'invio al laboratorio dovrà avvenire nel modo più sollecito possibile. 

Queste norme valgono anche nel caso di foraggi verdi, per i quali consigliamo di eseguire la 

campionatura all'atto dello scaricamento del foraggio in azienda. 

CONCENTRATI 

Se il concentrato è fornito dal commercio (pellettato o sfarinato) è sufficiente una piccola quantità 

prelevata a caso dalla massa (200/250 gr.). Quando invece è preparato in azienda, accertarsi che la 

miscelazione dei vari componenti sia stata fatta in modo accurato. 

Se si tratta di concentrato del commercio allegare al campione il cartellino; nell'altro caso scrivere i 

componenti e le quantità o percentuali che si sono usate per la miscela. 

Usare sempre contenitori puliti e chiudere con cura. 

Terreni 

1) Usando una pala pulita o altro attrezzo adatto, prelevare piccoli porzioni di terreno in almeno 7/8 punti 

diversi di un dato apprezzamento. Prelevare il campione profondamente (15-20 cm.) nei campi 

coltivati, e minor profondità (6/8 cm.) nei campi tenuti a prato stabile. 

2) Mescolare i singoli campioni accuratamente e tenerne almeno 200 gr. eliminando il resto. 

3) Se il campo varia nel tipo di suolo, campionare le zone separatamente. 

4) Sparpagliare il campione su una carta di giornale e lasciare asciugare all'aria in locale asciutto per 

una notte. Non riscaldare il campione. 

5) Porre il campione in adatto contenitore (purché pulito), e chiudere accuratamente. 

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E' molto sorprendente constatare come molte industrie e laboratori di controllo qualità non hanno 

esitazione ad investire somme considerevoli nella più avanzata strumentazione analitica che consente 

valutazioni di parti per bilione/trilione ed allo stesso tempo danno pochissima se non nulla attenzione al 

corretto campionamento. 

L'ampiezza del problema è enorme; la composizione di grandi tonnellate di materie prime, derrate 

alimentari, prodotti finiti è valutata molto spesso sulla sola base di analisi eseguite su 1 grammo di 

campione. 

E' essenziale che il campione prelevato per l'analisi sia rappresentativo della massa granulare in termini 

di distribuzione della grandezza delle particelle. 

La difficoltà consiste nel fatto che durante il movimento di prodotti granulari si verifica una 

sedimentazione/segregazione. Nei contenitori che vibrano le particelle più grosse tendono alla 

superficie. 

Sui tappeti di trasporto le particelle più fini tendono al centro e quelle grossolane sui lati. 

Nei contenitori le particelle fini tendono al fondo, quelle più grosse sulla superficie. 

Il campione finale che si raccoglie deve essere rappresentativo di tutta la massa. 

Un campionamento efficace dovrebbe avvenire nel momento che il materiale cade liberamente da un 

tappeto di trasporto. Il campionamento manuale dovrebbe essere evitato, in particolare in presenza di 

materiale non omogeneo con particelle fini e grosse. 

Lo scopo si raggiunge con un campionatore multistrato in progressione. 

Il campionatore multistrato "Pelican" di International PBI si appoggia alla parete 

dove si raccoglie il prodotto ed il campionamento avviene proporzionalmente 

man mano che il livello del prodotto sale. 

Il campionatore "Pelican" è in acciaio Inox AISI/316, è portatile e sterilizzabile. 

Impiego 

1. Introdurre il campionatore aderente ad una delle pareti dove il materiale 

sarà trasferito 

2. Il materiale alimenterà il campionatore in progressione al riempimento 

3. Il materiale è prelevato attraverso le tasche del campionatore 

4. Al termine si estrae il campionatore 

5. Il campione si recupera direttamente rovesciando il campionatore 

“Pelican” 

Campionatore Farmaceutico 

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Il campione deve arrivare al punto di accettazione del laboratorio nelle stesse condizioni chimico-fisiche 

e microbiologiche in cui si trovava al momento del prelievo. 

Si devono pertanto mettere in atto tutti quegli accorgimenti e precauzioni che siano in grado di dare 

questa sicurezza. 

La persona responsabile del ricevimento del campione in laboratorio deve rendersi responsabile degli 

accertamenti atti a garantire che questa norma sia sempre seguita. 

Le disposizioni di legge 

Il Decreto Ministeriale del 16 Dicembre 1993 riporta: " (....) I CAMPIONI DEI PRODOTTI ALIMENTARI 

DETERIORABILI VANNO MANTENUTI DAL MOMENTO DEL PRELIEVO AL MOMENTO IN CUI 

VIENE INIZIATA L'ANALISI AD UNA TEMPERATURA, OVE NON DIVERSAMENTE PREVISTO DA 

NORME VIGENTI, NON SUPERIORE A 4°C E NON INFERIORE A 0,5° C (....). 

Le norme internazionali 

Riportiamo le raccomandazioni dell' "ICMSF " 

- NORME GENERALI 

Un campionamento corretto richiede molta attenzione. L'obbiettivo è quello di ottenere un campione 

rappresentativo dell'alimento e di sottoporre l'unità campionaria al laboratorio in una condizione 

batteriologica non modificata rispetto a quella esistente al momento del campionamento. I campioni 

devono essere prelevati solo da personale autorizzato ed opportunamente addestrato. Egli può essere 

assistito da altre persone responsabili del suo operato. 

Tutte le persone coinvolte devono prendere le opportune misure per prevenire, nel limite del possibile, 

qualsiasi contaminazione sia dell'alimento che del campione, impedendo la moltiplicazione o la morte 

della popolazione microbica nel campione durante il trasporto al laboratorio e la successiva 

conservazione e manipolazione. 

Il prodotto prelevato sul campo è definito "field sample"; l'unità campionaria che si utilizza in laboratorio 

per l'analisi è definita "sample unit". Entrambi possono coincidere ma, preferibilmente, il "field sample" 

dovrebbe essere almeno il doppio per costituire una riserva in caso di incidente che richieda la 

ripetizione dell' analisi. 

In molte situazioni i "field sample" sono costituiti da confezioni originali sigillate, di massa o di volume 

superiore a quella necessaria per l'analisi. 

I sub-campioni presi dal "field sample" costituiscono il "sample unit ". 

- COME OPERARE SUL CAMPO 

1. Solo personale autorizzato ed addestrato alle tecniche di campionamento deve eseguire i prelievi. 

2. Quando possibile, prelevare i campioni al momento dello scarico da navi, automezzi, aerei in più parti 

del carico. Fare attenzione alla possibilità di stratificazione dei componenti. Il quantitativo di campione 

deve essere un multiplo del quantitativo sufficiente all'analisi in modo da avere una riserva di campione 

in caso di incidente che rendesse necessaria la ripetizione del test. 

Conservare il quantitativo di campione eccedente in condizioni tali da non modificare le sue condizioni 

microbiologiche. 

3. Quando possibile, far giungere al laboratorio confezioni originali, integre, ancora sigillate. In questo 

modo il campione si troverà nelle condizioni in cui viene offerto al consumatore. 

4. Se tutte le confezioni sono accessibili, utilizzare la tabella dei numeri a caso. 

5. Nel campionare grandi scatole con piccole confezioni, scegliere le scatole randomizzando e da 

ognuna di queste randomizzare nuovamente e scegliere le piccole confezioni. Preferibilmente, prelevare 

una confezione da ogni scatola. 

6. Se il prodotto di un contenitore è troppo grande per essere trasportato nella confezione originale al 

laboratorio, trasferire campioni rappresentativi in un contenitore sterile separato,in condizioni asettiche. 

Eliminare la contaminazione superficiale della confezione mediante lavaggio e disinfezione con alcool al 

70%. Aprire la confezione con forbici o coltello sterili. Usare strumenti separati per evitare una possibile 

contaminazione crociata. 

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Fare attenzione nel prelevare prodotti di polvere leggera ed alle confezioni pressurizzate per evitare lo spargimento del prodotto. Non 

aprire prodotti inscatolati e chiusi ermeticamente sul campo, ma trasferirli tali e quali al laboratorio. 

7. Se l'alimento si presenta in una grossa massa, prelevare in punti diversi e non solo sulla sommità e sul fondo. 

8. Dovendo prelevare da un rubinetto di un silos,lasciar defluire una parte del prodotto per "lavare batteriologicamente" il rubinetto, prima 

di raccogliere il campione. 

9. Fare attenzione a contaminazioni nel trasferire la porzione di campione da una grossa massa. 

10. Utilizzare l'adatto campionatore in funzione dello stato fisico del prodotto; per esempio un tassello per formaggio duro, trapano con 

sonda per surgelati, sonde o sassole per prodotti secchi, pipette per liquidi . 

11. Impegnarsi per ottenere sempre un campione rappresentativo. Agitare il liquido o rimettere in sospensione le particelle sino ad 

ottenere un prodotto omogeneo. Per i prodotti surgelati trapanare una piccola "carota" da una massa più grande, in condizioni asettiche. 

12. Talvolta non è possibile prelevare campioni asetticamente. Il responsabile del campionamento deve farne menzione al microbiologo 

addetto all'analisi. Il microbiologo potrà prelevare asetticamente una parte interna del prodotto ricevuto. 

13. Prendere nota della temperatura dell'aria dell'ambiente di conservazione del prodotto da campionare, del veicolo impiegato per il 

trasporto, del campione, dell'alimento dal quale si è fatto il prelievo. La temperatura del prodotto viene rilevata in una confezione 

adiacente a quella prelevata. 

Il materiale necessario 

Frigorifero portatile elettrico, funzionante a batteria 

Piastre eutectiche per impieghi particolari 

Sacchetti "Presto Chiuso" sterili 

Termometro portatile 

Fazzolettini disinfettanti 

Documenti di trasporto 

Accessori per la marcatura, sigillatura, confezionamento del campione 

Principi di base per il trasferimento del campione al laboratorio 

a) Il frigorifero portatile elettrico non serve a raffreddare i campioni, ma a conservare la temperatura di raffreddamento. Il frigorifero deve 

pertanto essere portato alla temperatura di esercizio richiesta prima di giungere sul luogo del campionamento. 

b) Il campione non deve essere introdotto caldo, ma portato alla temperatura di refrigerazione prima del suo inserimento in frigorifero. 

c) Le borse termiche tipo "Picnic" non possono garantire il mantenimento costante della temperatura perchè legate alla sola azione delle 

piastre eutectiche refrigerate. 

d) L'apertura del coperchio del contenitore di trasporto deve essere sempre limitata alle operazioni essenziali. 

e) I campioni contenuti in sacchetto di plastica leggera subiscono uno scambio termico molto più rapido di flaconi in plastica o vetro in 

quanto lo spessore è inferiore e la flessibilità del sacchetto consente una immediata aderenza alla superficie fredda. 

f) Il contenitore di trasporto non deve trasmettere microrganismi, odori, sapori al campione. 

Esempio di Procedura Operativa Standard per il trasferimento del campione 

- OGGETTO 

Trasferimento del campione deperibile al laboratorio 

- OBIETTIVO 

Trasferimento del campione al laboratorio senza che il campione modifichi le sue caratteristiche microbiologiche 

- RESPONSABILITA’ 

Segreteria ricevimento campioni 

- MEZZI 

Frigorifero portatile elettrico, termometro portatile, fazzolettini disinfettanti, sacchetti “Presto Chiuso", documenti per la identificazione del 

campione, accessori per la marcatura, sigillatura, confezionamento del campione 

- PROTOCOLLO 

1. Il frigorifero portatile elettrico, al momento del prelievo, deve già trovarsi alla corretta temperatura di trasporto indicata dalle disposizioni 

di legge o dalle necessità microbiologiche. L'operatore deve portare il frigorifero alla temperatura di esercizio prima di collegarlo alla 

batteria della sua automobile; ciò richiederà alcune ore. 

Le norme ISO precisano le seguenti direttive alle quali attenersi: 

Prodotti stabili Temperatura ambiente 

Prodotti freschi e refrigerati Tra 0 e +4 ° C 

Prodotti surgelati Al di sotto di - 18 ° C 

Prodotti pastorizzati Tra 0 e + 4 ° C 

Unità deteriorate Tra 0 e + 4 ° C 


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2. Dotarsi di sacchetti in plastica sterili a tenuta ermetica,di capacità differenti, tipo "Presto Chiuso" per la raccolta di campioni senza 

confezione o per il loro raffreddamento sotto acqua corrente. 

3. In previsione di campioni singoli voluminosi, aggiungere piastre eutectiche al frigorifero per accelerare il raffreddamento della massa. 

4. Il frigorifero portatile deve essere lavato e disinfettato dopo ogni prelievo. 

5. Registrare la temperatura interna di un campione "prova" adiacente al campione “originale" all'inizio del trasferimento. 

Sullo stesso campione "prova" non utilizzato per l'analisi si controlla la temperatura al momento dell'arrivo in laboratorio. 

6. Registrare la temperatura del frigorifero portatile al momento dell'inizio del trasferimento del campione. 

7. Grosse masse di campione prelevate calde (ad esempio all' uscita del pastorizzatore) devono essere raffreddate, opportunamente 

protette per evitare che si inquinino od assorbano acqua, sotto acqua corrente fredda o gelata prima della loro introduzione nel frigorifero 

portatile. Isolare eventualmente il campione in un sacchetto di plastica durante questa operazione. 

Verificare la corretta temperatura con il termometro portatile. 

8. Mantenere a portata di mano ed opportunamente protetti tutti i documenti ufficiali e non ufficiali legati al previsto campionamento. 

Trasferimento del campione 

Organizzare il trasferimento in modo che il campione giunga al laboratorio nel tempo più breve, con la garanzia che non si interrompa la 

catena del freddo. 

Posizionare il frigorifero portatile lontano dalla luce solare diretta e con le griglie di ventilazione libere. 

Quando possibile, avvisare telefonicamente o via fax il laboratorio dell'imminente arrivo dei campioni, precisando tutti i dati relativi alla 

spedizione. 

Accertare che non ci siano "ponti vacanzieri" o festività locali che allungherebbero i tempi di trasporto. 

Una volta raggiunto il laboratorio, il campione non deve essere abbandonato a se stesso, ma lasciato a mani di un responsabile dal quale 

si deve pretendere una firma di conferma di ricevimento del campione in condizioni idonee ad essere analizzato. 


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Le Procedure Operative devono rispondere in modo esauriente,completo e comprensibile, a prova 

anche di personale di primo impiego, ad una chiara domanda: 

"COME FARE?" 

Alcune procedure hanno carattere preminentemente tecnico,altre carattere amministrativo. 

Le procedure devono indicare l'oggetto, lo scopo, i mezzi necessari e la loro localizzazione, il 

responsabile dell'applicazione della procedura, la frequenza, gli interventi correttivi, l'archiviazione. 

Le Procedure Operative sono inserite in manuali di consultazione di libero accesso a tutto il personale, 

nell'ambito dei suoi compiti, coinvolto nella attività di laboratorio. 

I manuali devono raccogliere: 

- le informazioni sul sistema informatico di gestione dei campioni da analizzare (quando disponibile); 

- le procedure di taratura e verifica della strumentazione; 

- le procedure analitiche di laboratorio; 

- i metodi comportamentali per la gestione: 

- amministrativa 

- prove interlaboratorio 

- verifiche dell'incertezza di misura 

- pulizia e lavaggio 

- audit interni 

- sicurezza per il personale 

Riportiamo a titolo di esempio una Procedura Operativa per il trattamento dei campioni all'arrivo in un 

laboratorio microbiologico per analisi agro-alimentari/lattiero-casearie/bevande/ecologiche. 

PROCEDURA OPERATIVA STANDARD 

- OGGETTO 

Accettazione e registrazione campioni in arrivo al laboratorio. 

- OBIETTIVO 

Idoneità del campione perchè il successivo test microbiologico richiesto sia affidabile, veritiero e non 

contestabile. 

Rintracciabilità del campione lungo tutto l' iter analitico, sino alla sua archiviazione e distruzione. 


Addetto segreteria 

- MEZZI E PROTOCOLLO 

Termometro elettronico dotato di sonda, termometro a massima e minima da parete, frigorifero, 

congelatore, tavolo di ricevimento campioni, sistema informatico di gestione dei campioni. 

Al momento dell'arrivo del campione in laboratorio, il responsabile del ricevimento DEVE ACCERTARE: 

A) La correttezza dei documenti amministrativi e di trasporto sia da un punto di vista amministrativo che 

tecnico (data, ora, durata del trasporto, firme dei testimoni,enti o società coinvolte, modulistica, campioni 

legali, etc ). 

B) La non manomissione ed il buon stato dei sigilli (se previsti), dell' involucro, etc.. 

C) La congruità del costo di spedizione da parte del vettore (se tale costo è a carico del laboratorio). 

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D) L'indicatore visivo di temperatura applicato al collo esterno non indichi l'interruzione avvenuta della catena del freddo durante il 

trasporto del campione (se applicabile). 

DEVE PROCEDERE A: 

E) Contrassegnare in modo permanente ed indelebile il campione con un numero di protocollo progressivo da attingere dal sistema 

informatico. 

F) Prendere la temperatura del campione mediante termometro elettronico a sonda (possibilmente utilizzando un "campione appoggio" 

che ha viaggiato con il campione; il “campione appoggio" non sarà utilizzato per la determinazione analitica). Questo valore deve essere 

confrontato con quello rilevato sul campione al momento del prelievo sul campo. E' opportuno anche chiarire con quale mezzo il 

campione è stato trasportato (automezzo refrigerato, frigorifero portatile, frigorifero a piastre eutectiche, scatola con ghiaccio secco, 

scatola coibentata, nessuna protezione termica) . 

G) Trasferire i dati di identificazione e/o i commenti alle verifiche ed operazioni di cui ai punti A) , B) , C) , D) . 

La soluzione più opportuna è rappresentata da una unità satellite collegata in rete con gli altri terminali del computer del laboratorio. 

H) Identificare i test microbiologici da eseguire (se applicabile). 

I) Disinfettare la superficie esterna del campione con la salvietta disinfettante monouso e trasferirlo in congelatore o frigorifero destinati a 

ricevere esclusivamente i campioni. 







L) Scadenziare i limiti di tempo entro i quali i campioni devono essere analizzati. 


Prodotti stabili Al più presto possibile e prima della data di scadenza. 

Prodotti freschi e refrigerati 24 ore (se ciò non è possibile, congelare a -18 ° C ed indicare questa condizione nel rapporto 

analitico). 

Prodotti pastorizzati Al più presto possibile (entro 24 ore) e prima della data di scadenza. 

Unità deteriorate Entro 48 ore. 

M) Indicare la priorità di analisi in funzione della data di scadenza del campione. 

DEVE PROVVEDERE A: 

N) Mantenere in ordine di scadenza il contenuto del frigorifero e congelatore del reparto ricevimento. 

O) Controllare giornalmente la temperatura del frigorifero e del congelatore del reparto ricevimento, registrando il valore di massima e 

minima rilevato sul termometro da parete di massima e minima applicato alla parete interna dello sportello, su apposito registro o nel 

sistema informatico. 

P) Eliminare i campioni che hanno ultimato l' iter all' interno del laboratorio (previo accordo con il responsabile del procedimento analitico). 

Q) Disinfettare settimanalmente le superfici interne, i piani di appoggio, le cassettiere del frigorifero e congelatore. 

- INTERVENTI CORRETTIVI ("non conformità") 

Temperatura del campione non conforme a quanto previsto dalle norme ISO 

A) Accettare il campione con riserva 

B) Informare la direzione del laboratorio ed attendere istruzioni sul da farsi; nel frattempo conservare il campione alla idonea temperatura 

Sospetta od accertata manomissione di involucro o sigilli 

C) Non accettare il campione 

D) Informare la direzione del laboratorio ed attendere istruzioni sul da farsi; nel frattempo conservare il campione alla idonea temperatura 

Rottura involucro durante il trasporto 

E) Accettare il campione con riserva 

F) Informare la direzione del laboratorio ed attendere istruzioni sul da farsi; nel frattempo conservare il campione alla idonea temperatura 


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Documenti amministrativi di acccompagnamento del campione errati, incompleti, non conformi 

G) Accettare il campione con riserva 

H) Informare la direzione del laboratorio ed attendere istruzioni sul da farsi 

Temperatura del frigorifero/congelatore errata o con valori di minima e massima superiori a + -1,5 ° C 

I) Trasferire i campioni in altro frigorifero/congelatore a temperatura corretta 

J) Informare la direzione 

K) Far intervenire il Servizio di Assistenza Tecnica 

Riportiamo a titolo di esempio una videata di sistema informatico per l'accettazione e ricevimento di campioni destinati ad analisi 

microbiologica: 

RICEVIMENTO ED ACCETTAZIONE CAMPIONI 

Data prelievo 26 Aprile 1995 N° prog. 

Ora prelievo 10:30 

Data arrivo 

Luogo prelievo 

confezion. 

Ora Arrivo 

Incarico prel. vigile san. Descr. camp. 

Motivo camp. routine N° Lotto 

Ente/Società Molino Verde Data scad. 

1027 

26 Aprile 1995 

Indirizzo Via Bianchi Provenienza Firenze 


Temper. arrivo 

Caratt. camp. 

14:15 

Biscotto farcito 

0708 

26 Agosto 1995 

+ 4° C 

no deterioramen. 

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1. Fornire conoscenze di base di microbiologia con ausilio di audiovisivi e prove pratiche di igiene 

2. Chiarire quali sono i motivi del campionamento in generale e i casi specifici in particolare 

3. Dimostrare praticamente quanto il campionamento sia determinante ai fini di un corretto risultato 

analitico 

4. Dimostrare come eliminare la variabilità dell’operatore 

5. Far comprendere l’importanza dell’adeguata temperatura dal momento del prelievo al raggiungimento 

del laboratorio 

6. Eseguire praticamente le fasi di campionamento con dispositivi di prelievo standardizzato 

7. Far comprendere e compilare i moduli di prelievo 

8. Addestrare sul campo 

9. Accompagnare l’addetto al prelievo in occasione dell’inizio dell’attività 

10. Verificare periodicamente l’attività degli operatori per eventuali correzioni 

Buone Norme di Campionamento Microbiologico 

Cosa occorre per addestrare il personale: 

1. La volontà di farlo 

2. Preparazione, pazienza, perseveranza 

3. Diapositive o videotapes di introduzione alla microbiologia 

4. Materiale dimostrativo per igiene ambientale 

5. Serie di mezzi di prelievo 

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Distribuzione omogenea 

dei microrganismi banali 

La legge di Poisson è valida per la conta totale dei microrganismi. 

La legge di Poisson non è valida per ricerca di germi patogeni. 

Distribuzione casuale 

dei microrganismi patogeni 

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Il piano di campionamento deve tenere in debita considerazione il rischio corrispondente ad una 

determinata contaminazione microbica. La ICMSF prevede piani di campionamento a due o tre classi. 

Il piano a due classi 

Il piano a due classi è basato su un giudizio meramente qualitativo e viene applicato nella ricerca di 

microrganismi patogeni, che devono risultare assenti in una serie definita (n) di unità campionarie (c). 

In pratica ad un alimento si assegna la classe della “accettabilità” o “non accettabilità”. 

Al piano a due classi si è sostituito il piano di campionamento a tre classi con un criterio di tipo 

qualitativo. 

Il piano a tre classi 

Tenendo conto la possibilità che una produzione alimentare possa avere anche “momenti transitori di 

ribasso” il piano a tre classi considera tre fasce di valutazione: 

1) “qualità accettabile” con un contenuto microbico inferiore ad un valore definito con “m” UFC per 

grammo o millilitro di prodotto 

2) “qualità marginale”, allorchè viene superato il valore “m”, ma il grado di contaminazione microbica 

non raggiunge la soglia “M” 

3) “qualità inaccettabile”, che presenta valori numerici superiori ad “M” 

Si definisce con “c” il numero di unità campionarie collocabili nella 2 a classe, di qualità tollerabile. 

Questo piano di campionamento è adottato allorchè, in condizioni di stretta osservanza delle GMP, si 

ottenga con un ragionevole margine di sicurezza una contaminazione microbica inferiore ad “m” per la 

gran parte delle unità prodotte; è tollerabile limitatamente ad una piccola aliquota dei campioni di 

produzione uno scostamento del livello ottimale, purchè la percentuale di campioni difettosi non superi il 

limite prefissato “c”, evitando che un numero eccessivo di campioni possa presentare caratteristiche 

microbiologiche eccepibili. 

n = numero di unità campionarie di cui si compone il campione. 

m = valore limite del numero di microrganismi ammesso per “qualità accettabile”. 

Il risultato è considerato soddisfacente se tutte le unità campionarie hanno un numero di 

microrganismi inferiore o uguale a “m”. 

M = Valore massimo del numero di microrganismi ammesso per la “qualità marginale”. 

Il risultato è considerato insoddisfacente se una o più unità campionarie hanno un numero di 

microrganismi uguale o superiore a “M”. 

c = numero di unità campionarie il cui numero di microrganismi compreso tra “m” ed “M” è ammesso 

per la “qualità marginale”. Il campione è considerato ancora accettabile se le unità campionarie 

hanno un numero di microrganismi inferiore od uguale a “m”. 

Scelta delle “Unità campionarie” 

Le unità campionarie “c” sono scelte utilizzando le tavole dei “numeri casuali” e non in funzione della 

comodità dell’operatore. 

Se si lascia la scelta delle unità campionarie all’arbitrio del ricercatore, il campione risulta generalmente 

“tendenzioso”, siccome le diverse unità non hanno la stessa probabilità di essere estratte dalla 

popolazione (esse non sono quindi “equiprobabili”); ciò è dovuto al fatto che il ricercatore tende a 

selezionare anche inconsciamente determinate unità piuttosto che altre. 

Affinchè un processo di induzione sia lecito è necessario che il campione sia “rappresentativo” della 

popolazione; il metodo del “campionamento casuale semplice” o del “campionamento casuale” il più 

diffuso nella pratica assicura suddetta caratteristica. 

Il metodo consiste in un processo di scelta degli elementi della popolazione impostato in modo tale che 

questi abbiano la medesima probabilità di essere estratti e che, inoltre, ciascuno di essi abbia probabilità 

di estrazione “indipendente da quella degli altri”. 

“Estrazione a caso” non significa, quindi, scelta senza criterio, o “a casaccio”, delle unità campione, al 

contrario, vuol dire scelta effettuata con metodo rigoroso, che garantisce l’assoluta imprevedibilità di un 

risultato tra i tanti possibili. 

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Esercizio sull’uso delle tavole di numeri casuali 

Si vuole vedere ora come, operativamente, queste tavole vengono utilizzate per la formazione di un campione. 

Si desideri estrarre un campione di n = 5 clienti dalla popolazione di cui si è già detto (essa sia composta di N = 150 unita). 

Dopo avere numerato i clienti in ordine progressivo da 1 a 150, si opera secondo la seguente procedura: 

1) si sceglie a caso una delle 4 pagine della tavola di Snedecor 

2) si getta uno spillo (senza imprimergli una direzione precisa) sulla pagina scelta e si rileva la cifra colpita 

3) si legge questa cifra e le tre successive, ad esempio: 0187; allora: le prime due cifre (01) individuano la riga della tavola e le due 

successive (87) la colonna 

4) all'incrocio di questa riga e colonna si legge il numero 8 

5) poichè si tratta di utilizzare numeri dell'ordine delle centinaia (in quanto la popolazione di 150 soggetti), si leggono le due cifre 

successive; il numero individuato 896: essendo esso superiore a 150 viene scartato 

6) si leggono poi altri numeri di tre cifre immediatamente sotto il numero 896, finchè non se ne individuano cinque (tanti quanti sono gli 

elementi “n” del campione da comporre) di valore non superiore a 150 

7) si trova perciò la seguente sequenza di numeri: 

896 scartato, 855 scartato, 708 scartato, 566 scartato, 855 scartato, 892 scartato, 917 scartato, 887 scartato, 840 scartato, 

100: il primo elemento del campione è il 100-simo elemento della popolazione; 

087: il secondo elemento del campione è l '87-simo della popolazione; 

453 scartato,499 scartato, 707 scartato, 361 scartato, 466 scartato, 783 scartato, 496 scartato, 856 scartato, 511 scartato, 414 

scartato, 175 scartato, 434 scartato, 515 scartato, 990 scartato, 

054: il terzo elemento del campione è il 54-esimo elemento della popolazione; 

735 scartato, 

048: il quarto elemento del campione è il 48-esimo elemento della popolazione; 

158 scartato, 609 scartato, 755 scartato, 464 scartato, 632 scartato, 

067: il quinto elemento del campione è il 67-esimo elemento della popolazione. 

Il campione è così formato. 

Se esaurita la colonna non si riesce a formare l’intero campione, si passa alla colonna successiva partendo dalla riga 00. 

Media geometrica 

Media Geometrica = 

n 

x • x • 

1 

2 

...... • xn 

= ( x1 

• x2 

•..... 

• x ) 

Esempi di applicazione del piano di campionamento a tre classi 

Lotto = 125 pezzi n = 5 uc prelevate randomizzando 


⇨ 

n 

1 

n 

6 

62 

 

25 

97 

15 

 

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Staphilococcus aureus (per 1 ml) in latte crudo 

Esempio di 

accettabilità 

Esempio di 

inaccettabilità 

Listeria monocytogenes (in 25 g) per formaggi non a pasta dura 

n = 5 c = 0 

La L. monocytogenes deve essere assente in tutte le 5 uc 

Salmonella spp (in 1 g) per latte alimentare 

n = 5 c = 0 

La Salmonella deve essere assente in tutte le 5 uc 

Escherichia coli (in 1 ml, g) per formaggi a pasta molle 

n = 5 m = 500 M = 2000 c = 2 

 

6 25 61 97 = UFC 70/ml-315/ml-410/ml-208/ml 

 

 

 

13 = UFC 1300/ml 

n = 5 m = 100 UFC/g M = 1000 UFC/g 

c= 2 

Esempio di 

accettabilità 

Esempio di 

inaccettabilità 


85 61 13 

= UFC 450/m-75/ml-380/ml 

97 6 

= UFC 1400/ml-2055/ml 

 

 

 

 

 

61 13 = UFC 410/g-680/g 

97 6 61 = UFC 60/g-42/g-90/g 

6 25 13 

97 = UFC 285/g 90/g-50/g-100/g 

18 = UFC 2800/g 

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Il trasporto del campione per analisi microbiologiche 

Il piano di campionamento corretto rischia di essere vanificato se il 

campione non è trasferito al laboratorio nel più breve tempo possibile ed 

alla corretta temperatura. 

Decreto Ministeriale del 16 Dicembre 1993 - “… I Campioni dei prodotti 

alimentari deteriorabili vanno mantenuti dal momento del prelievo al 

momento in cui viene iniziata l’analisi ad una temperatura, ove non 

diversamente previsto da norme vigenti, non superiore a 4°C e non 

inferiore a 0,5°C …” 


Frigocongelatore portatile “Penguin-50-New” 

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Particolare attenzione deve essere riservata ai campioni nei quali l'analita ricercato è: 

• distribuito in modo disomogeneo nella massa dal punto di vista fisico sia a livello particellare che di 

fase acqua/olio 

• ragioni biologiche ne determinano la diffusione nella massa in modo imprevedibile ed a "sacche" 

• la massa da campionare è molto grande (nave, etc.) 

In tali condizioni il numero di unità campionarie deve essere praticamente elevato se si vuole 

raggiungere una ragionevole rappresentatività dell'analita. 

Un esempio di tale piano di campionamento è dato da una specifica dell'"USDA" (United States 

Department Of Agriculture). 

Piano di campionamento "USDA" per arachidi 

La "USDA" indica come si deve eseguire un campionamento per la ricerca di micotossine (ug Kg -1 ). 

Per ogni lotto di 20 ton si prelevano circa 66 kg da almeno 100 sacchi. I 66 kg sono divisi in 3 campioni 

(A,B,C). 

Campione "A" 

Il lotto è respinto se il contenuto in micotossine risulta superiore a 75 ug/kg. 

Il lotto è accettato se il contenuto è inferiore a 16 ug/kg. 

Si passa ad esaminare il campione "B" se il contenuto è compreso tra 75 e 16 ug/kg. 

Campione "B" 

Si applica la stessa regola di "A" con valori di 38 e 22 ug/kg. 

Campione "C" 

Il limite massimo di accettabilità è 25 ug/kg. 

- Campionatore per polveri e granulati “Multipro” 

- Schema di impiego “Multipro” 

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Un trascinamento del campione secondo il principio della vite di Archimede consente di ottenere un 

campione rappresentativo sequenziale di tutta la lunghezza della massa che una sonda è in grado di 

penetrare. 

E’ questo un problema comune all’industria farmaceutica, cosmetica, chimica, alimentare, in particolare 

per il controllo delle materie prime. 

Il sistema di campionamento “ENDLESS” 

Le sonde “Endless” per il campionamento di polveri (orizzontali e verticali) sono particolarmente idonee 

per effettuare controlli di qualità sulle merci o per prelevare campioni a diverse profondità all’interno di 

sacchi, cisterne o fusti. La punta tagliente è costituita da una spirale fissata ad un supporto a perfetta 

tenuta è può essere facilmente rimossa per agevolare le operazioni di pulizia. La sonda è azionata 

tramite una trivella avvitabile. Al termine del campionamento è sufficiente invertire il senso di rotazione 

per estrudere il prodotto in eccesso. Le sonde sono in acciaio inossidabile ed hanno un peso variabile 

tra i 2 e i 5 kg. 

1. Sonda in acciaio inox AISI 304 

2. Chiave di fissaggio sonda alla pistola a batteria. 

3. Pinza fissaggio sacchetto raccolta campione. 

4. Meccanismo a spirale. 

5. Pistola a batteria 

- Campionatore per polveri “Endless” 

- Schema d’impego “Endless” 

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Costruzione 

Il sistema è costituito interamente in acciaio inox AISI 304 con guarnizioni in teflon. E’ completamente smontabile e sterilizzabile in 

autoclave. 

Impiego 

A. Fissare la sonda alla pistola 

B. Applicare il sacchetto di prelievo al tubo di raccolta 

C. Campionamento orizzontale da sacchi 

Perforare il sacco facendo pressione con la punta della sonda. Azionando la pistola, la spirale in rotazione determinerà l’avanzamento 

della polvere/granuli all’interno del dispositivo di prelievo. 

D. Campionamento inclinato da grossi contenitori 

La sonda è introdotta diagonalmente in modo che il tubo di raccolta si trovi in posizione verticale. 

E. Quando il campionamento è ultimato, la sonda si svuota facendo ruotare la spirale in senso inverso 

F. Al termine del campionamento, la spirale è estratta facilmente per una completa pulizia 

G. Il foro provocato nel sacco si chiude con una apposita etichetta autoadesiva 

Tipo di prelevamento 


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La raccolta dei campioni destinati all' analisi, se non ben condotta, può compromettere il successo di un 

programma di Controllo Qualità. 

Campionamento da autocarri o vagoni ferroviari 

Se si sonda il container in più posizioni, è possibile raccogliere un campione rappresentativo dell' intera 

partita di prodotto. A questo scopo si utilizzano sonde in alluminio con puntale in acciaio inox con 

lunghezza variabile in funzione del tipo di container. 

Campionatore per polveri “Endless” Campionatore per polveri e granulati “Multi-Maxi” 

E' da preferirsi uno schema di lavoro ben definito anzichè procedere secondo schemi "a random". 

Esempio di Schema programmato di campionamento: 

Sonda "A" a circa 60 cm di distanza dalla parte anteriore e dal lato sinistro del container 

Sonda "B" equidistante dal davanti e dalla parte centrale del container, a circa 60 cm dal lato destro di 

quest' ultimo ( in opposizione ad "A") 

Sonda "C" a circa 3/4 della distanza che intercorre tra il davanti ed il centro del contenitore (stesso lato 

di "A", distanza dalla sponda sempre 60 cm ) 

Sonda "D" al centro del container 

Sonda "E" sullo stesso lato di "B" (destro), a circa 3/4 della distanza tra il centro e la parte posteriore del 

container (spostata verso il centro, a 60 cm dal lato) 

Sonda "F" a metà strada tra il retro ed il centro del container, in opposizione ad "E" a 60 cm dal lato 

sinistro 

Sonda "G" a circa 60 cm di distanza dalla parte posteriore e dal lato destro del container 

Parte anteriore container (vista dall’alto) 

A 

C 

F 

D 

B 

E 

Parte posteriore container 

G 

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Campionamento da sacchi 

Nel caso dei prodotti confezionati in sacchi l' obiettivo di un campione rappresentativo può essere raggiunto mediante l' impiego di un 

campionatore appuntito in grado di perforare i sacchi. 

In presenza di lotti formati da più di 100 sacchi si può programmare un campionamento del 10 per cento dei sacchi formanti l' intera 

partita. Questo valore può variare in funzione di quanto si presume sia omogenea la partita. 

Per partite di minori dimensioni (100 sacchi o meno ) è preferibile ricorrere al metodo della radice quadrata. 

Per esempio se la partita si compone di 40 sacchi, utilizzando il primo metodo se ne campionano 4, mentre con il secondo metodo 6,3. 

Campionamento di prodotti sfusi in movimento 

Un buon programma di Controllo Qualità del mangime deve considerare attentamente anche tutti i fattori modificanti le caratteristiche 

delle miscele. Come regola generale si può dire che una perfetta miscelazione è quella che fa registrare la medesima composizione, in 

ingredienti o nutrienti, a tutti i campioni raccolti di prodotto lavorato. Purtroppo tale condizione si realizza assai di rado, dal momento che 

la variabilità propria degli ingredienti, soprattutto per quanto riguarda le dimensioni, la forma e la densità delle particelle, può creare 

fenomeni di "separazione particellare" nell' ambito della miscela. 

Spesso tali problemi insorgono durante lo scarico del materiale dai silos, oppure nei trasportatori pneumatici od ancora nei silos di 

conservazione e negli autocarri. 

Un secondo elemento che si contrappone alla omogeneizzazione delle miscele è la cosidetta "distribuzione di Poisson"; essa comporta la 

distribuzione completamente "randomizzata" delle particelle all' interno della massa di mangime. 

In questo contesto è opportuno prevedere piani di campionamento che utilizzino sistemi di campionamento in progressione come ad 

esempio la sonda "multistrato". 

Referenza 

Scott Webster - Prince Agri Products Inc. - Illinois -Usa 


Campionatore farmaceutico “Pelican” 

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La rappresentatività del campione a grossa granulometria (cereali, 

granaglie, sementi, etc.) e da grossi lotti (silos, vagoni ferroviari, 

camion) può costituire un problema per il laboratorio che si accinge a 

determinare analiti chimici. Particolare cura deve essere dedicata nel 

ridurre il campione "macro" da campo in campione "micro" da trasferire 

in laboratorio. 

Prelievo del campione sul campo 

Si devono adottare sistemi di campionamento che tengano conto del 

differente peso specifico e forma dei componenti del campione. Ciò è 

particolarmente importante per prodotti soggetti a lunghi trasporti via 

mare, camion, etc. che possono influire sulla sedimentazione 

stratificata. 

I campionatori più indicati a questo scopo sono il tipo a sonda a settori 

ed il sistema multistrato per prelievo da convogliatori. 

Campionatore per polveri e 

granulati “Multi-Maxi” 

Il prelievo deve avvenire in diversi punti del container/silos per arrivare 

a "costruire" un primo campione di massa "a piramide" dal quale, mediante la tecnica "a quarti", arrivare 

al campione definitivo da campo da recapitare al laboratorio. 

Preparazione del campione in laboratorio 

La preparazione del campione è una ulteriore determinante fase che influisce sul risultato analitico. 

Gli errori analitici sono più facilmente ridotti durante la preparazione 

del campione che non nelle fasi successive. 

Gli errori causati dagli strumenti analitici sono infatti molto piccoli in 

confronto agli errori associati alla preparazione del campione. 

Dal campione che arriva in laboratorio (in genere 1000/2000 

grammi) si devono scegliere pochi grammi (a volte frazioni di 

grammo) che devono rappresentare tutta la massa. 

L'impiego di un miscelatore che provochi contemporaneamente un 

movimento in senso rotatorio e diagonale garantisce una uniforme 

azione di mescolamento su tre direzioni, indipendentemente dal 

peso specifico e dalla massa dei singoli componenti del campione. 

Dal campione così reso omogeneo si preleva il quantitativo 

Miscelatore “Twist” 

necessario al test analitico e si 

procede alla sua frantumazione/macinazione. 

La scelta dello strumento da dedicare a questa operazione deve cadere su 

un molino a ciclone oppure a dischi a seconda della composizione del 

prodotto. Per umidità sino al 20 % e contenuto in lipidi sino al 15% si adotta 

il mulino a ciclone. 

Mulino analitico “Cyclone” 

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Non è facile immaginare quanto sia piccola una parte per milione o bilione o trilione. Alcuni semplici 

elementari esempi ci possono aiutare nel dare una risposta alla nostra curiosità ed a comprendere 

l’importanza del campionamento e della preparazione del campione. 

Prendiamo in esame 1 ppb 

- La popolazione mondiale è calcolata in circa 5 bilioni di esseri umani. 

Quando vi trovate in 5 amici, insieme rappresentate 1 ppb. 

- Se avete 32 anni, avete vissuto circa 1 bilione di secondi. Chiudete gli occhi per 1 secondo: è un ppb. 

- Avete vinto al lotto 10 milioni di dollari. Controllando i contanti che avete ritirato al botteghino, vi 

accorgete che manca 1 dollaro: avete perso 1 ppb. 

- Acquistate 1 biglietto aereo per 1 bilione di metri; potrete così fare il giro del mondo 20 volte. 

Il primo vostro passo salendo sull’aereo rappresenta 1 ppb del vostro itinerario. 

UNITA’ DI CONCENTRAZIONE IN TRACCE 

Unità 1 ppm 1ppb 1ppt 

Lunghezza 1 cm/16 Km 1cm/16.000 Km 1 cm/16 milioni di Km 

Tempo 1 minuto/2 anni 1 secondo/32 anni 1 secondo/320 secoli 

Quantità 1 mela marcia/ 1 mela marcia/ 1 mela marcia/ 

2000 casse 

Volume 1 goccia di vermuth/ 

in 80 bicchieri di gin 

2 milioni di casse 

1 goccia di vermuth/ 

500 barili di gin 

2 bilioni di casse 

1 goccia di vermuth/ 

500.000 barili di gin 

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Il classico metodo di valutazione delle condizioni igieniche microbiologiche di una superficie è 

rappresentato da "contatto" mediante piastra a contatto ( "Surfair", "Rodac") o da "striscio" con un 

tampone. Non è però sempre possibile la loro utilizzazione su superfici ampie, disomogenee, irregolari: 

in questo caso si può adottare il metodo della "spugna". 

Il metodo della spugna "sponge bag" test 

Il "Sponge bag test" è costituito da una spugna atossica contenuta in un sacchetto dotato di chiusura di 

sicurezza a tenuta ermetica che può essere utilizzata mediante strofinamento per la ricerca di listeria, 

salmonella, coliformi, stafilococchi ed altri germi patogeni oppure per 

conte batteriche generiche. 

Materiale necessario 

- "Sponge bag" o “Speci Sponge” 

- Piastre a contatto "Maxi Contact Plate" diametro 94 mm (Cod. 22954) 

- Omogeneizzatore batterico "Stomacher 400" (Cod. 19145) 

- Sacchetti "Stobag" per "Stomacher" (Cod. 5103) 

- Terreni e brodi specifici per i microrganismi che si intende ricercare 

Il campionamento 

Il metodo di campionamento varia a seconda se si opera con una 

superficie ritenuta sterile o non sterile. 

Sacchetto “Sponge-Bag” 

Superficie presunta sterile 

Indossare guanti sterili e rimuovere asetticamente la spugna (precedentemente imbibita con l'apposito 

diluente liquido sterile) dal suo contenitore. Sempre indossando i guanti, strofinare i due lati della 

spugna sulla superficie in esame. Reintrodurre asetticamente la spugna nel suo contenitore. 

Superficie non sterile 

Indossare guanti sterili e rimuovere asetticamente la spugna (precedentemente imbibita con l' apposito 

diluente liquido sterile) dal suo contenitore. Premere uno dei due lati della spugna sulla superficie in 

esame per circa 5 secondi, sempre indossando i guanti. Ripetere la stessa operazione con l' altro lato in 

un'area adiacente a quella già campionata. Reintrodurre la spugna nel suo contenitore. 

Invio al laboratorio 

Il "sponge-bag" deve essere fatto pervenire al laboratorio di microbiologia destinato all'analisi, 

immediatamente dopo il campionamento. Se la distanza prevede l' intercorrenza di un intervallo di 

tempo, adottare idonee misure di trasporto. 

L'esame microbiologico in laboratorio 

Sono suggerite 3 differenti procedure. 

1. IMPRONTA DELLA SPUGNA SU "PIASTRA A CONTATTO" PER CONTA TOTALE 

Rimuovere asetticamente la spugna dal suo contenitore. 

Premere il primo lato della spugna sulla superficie agarizzata della piastra a contatto per circa 5 secondi. 

L' impiego della piastra a contatto "Maxi Contact Plate" (diametro 84 mm) facilita questa operazione. 

Ripetere la stessa operazione con il secondo lato della spugna su un'altra piastra a contatto "Maxi 

Contact Plate". 

Il tipo di terreno nutritivo adottato è in funzione dei microrganismi che si intendono evidenziare. 

Incubare la piastre alla temperatura e per il tempo specifici per il terreno usato e per i microrganismi 

ricercati. Al termine del periodo di incubazione riportare il numero di Unità Formanti Colonia (U.F.C.) per 

cm2. 

2. "STOMACHIZZAZIONE" PER CONTA TOTALE 


Trasferire la spugna in un sacchetto "Stobag" per "Stomacher". 

Trasferire lo "Stobag" in omogeneizzatore "Stomacher" e trattare per 1 minuto a velocità media. 

Prelevare asetticamente dal sacchetto "Stobag" una aliquota del liquido ed eseguire su questo liquido 

l'esame microbiologico. 

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Può essere necessario applicare 

le diluizioni seriali se si prevedono alte conte microbiche. 

Incubare le piastre alla temperatura e per il tempo specifici per il terreno usato e per i microrganismi 

ricercati. 

Al termine del periodo di incubazione riportare il Numero di Unità Formanti Colonia (U.F.C.) per cm2. 

3 . "STOMACHIZZAZIONE" PER RICERCA DI UNO SPECIFICO MICRORGANISMO 


Trasferire la spugna in un sacchetto "Stobag" per "Stomacher". 

Aggiungere un adatto brodo di arricchimento allo "Stobag" (ad esempio: 

100 ml di listeria enrichment broth per listeria; 100 ml 

campylobacter broth per campylobacter; 100 ml buffered peptone water). 

Per l'esame di superfici sterili il brodo di arricchimento può essere sostituito da un brodo nutritivo. 

Trasferire lo "Stobag" in "Stomacher" ed omogeneizzare per 1 minuto a velocità media. 

Incubare il contenuto del sacchetto ed eseguire il test microbiologico come prescritto per il microrganismo oggetto della ricerca. 

Riferimenti 

Compendium of Methods for the Microbiological Examination of foods - APHA Agency Committee on Microbiological Methods for foods. 

Standard Methods for the Examination of Dairy Products - APHA. 

Manual of Methods for General Bacteriology - American Society for 

Microbiology. 

Per 

ulteriori informazioni sul controllo delle superfici con il metodo “Sponge-Bag” fare riferimento alla Nota Applicativa 220. 


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Alcune considerazioni per l’affidabilità dei risultati analitici microbiologici sono fondamentali: 

- il campionamento è parte integrante del procedimento analitico 

- i risultati sono strettamente legati al campionamento ed alla preparazione del campione 

- campioni non rappresentativi e non preparati nel modo dovuto producono grandi errori analitici 

Lo schema riporta chiaramente quale parte preponderante abbiano 

- il piano di campionamento 

- i mezzi di campionamento 

- il trasporto del campione 

- il metodo di preparazione del campione sul risultato analitico finale 

Il piano di addestramento del personale 

Il responsabile delle operazioni di campionamento deve prevedere un piano di addestramento per il 

personale coinvolto. 

I seguenti 10 punti sono una traccia sulla quale poter lavorare. 

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1. Fornire conoscenze di base di microbiologia con ausilio di audiovisivi e prove pratiche di igiene; 

2. Chiarire quali sono i motivi del campionamento in generale e i casi specifici in particolare; 

3. Dimostrare praticamente quanto il campionamento sia determinante ai fini di un corretto risultato analitico; 

4. Dimostrare come eliminare la variabilità dell’operatore; 

5. Far comprendere l’importanza dell’adeguata temperatura dal momento del prelievo al raggiungimento del laboratorio; 

6. Eseguire praticamente le fasi di campionamento con dispositivi di prelievo standardizzato; 

7. Far comprendere e compilare i moduli di prelievo; 

8. Addestrare sul campo; 

9. Accompagnare l’addetto al prelievo in occasione dell’inizio dell’attività; 

10. Verificare periodicamente l’attività degli operatori per eventuali correzioni. 

Cosa occorre per addestrare il personale 

1. La volontà di farlo 

2. Preparazione, pazienza, perseveranza 

3. Diapositive o videotapes di introduzione alla microbiologia 

4. Materiale dimostrativo per igiene ambientale 

5. Serie di mezzi di prelievo 

6. Disponibilità di manuali pratici di campionamento quali quello della ICMSF e le Note Applicative delle "Buone Norme di 

Campionamento". 

Approntamento della procedura operativa standard relativa al campionamento 

Ogni laboratorio dovrebbe approntare la "sua" Procedura Operativa Standard indipendentemente dal fatto se segua o no la Buona Prassi 

di Laboratorio o la norma EN 17025. 

Si riporta un esempio di Procedura Operativa Standard relativa al trasferimento di campione deperibile destinato ad esami microbiologici. 

Procedura Operativa Standard 

- Oggetto 

Trasferimento del campione deperibile al laboratorio 

- Obiettivo 

Trasferimento del campione al laboratorio senza che il campione modifichi le sue caratteristiche microbiologiche 

- Responsabilità 

Segreteria ricevimento campioni 

- Mezzi 

Frigorifero portatile elettrico, termometro portatile, fazzolettini disinfettanti, sacchetti “Presto Chiuso", documenti per la identificazione del 

campione, accessori per la marcatura, sigillatura, confezionamento del campione 

- Protocollo 

1. Il frigorifero portatile elettrico, al momento del prelievo, deve già trovarsi alla corretta temperatura di trasporto indicata dalle disposizioni 

di legge o dalle necessità microbiologiche. L'operatore deve portare il frigorifero alla temperatura di esercizio prima di collegarlo alla 

batteria della sua automobile; ciò richiederà alcune ore. 







2. Dotarsi di sacchetti in plastica sterili a tenuta ermetica, di capacità differenti, tipo “Presto Chiuso" per la raccolta di campioni senza 

confezione o per il loro raffreddamento sotto acqua corrente. 

3. In previsione di campioni singoli voluminosi, aggiungere piastre eutectiche al frigorifero per accelerare il raffreddamento della massa. 

4. Il frigorifero portatile deve essere lavato e disinfettato dopo ogni prelievo. 

5. Registrare la temperatura interna di un campione "prova" adiacente al campione “originale" all'inizio del trasferimento. 

Sullo stesso campione "prova" non utilizzato per l'analisi si controlla la temperatura al momento dell'arrivo in laboratorio. 

6. Registrare la temperatura del frigorifero portatile al momento dell'inizio del trasferimento del campione. 


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7. Grosse masse di campione prelevate calde (ad esempio all' uscita del pastorizzatore) devono essere raffreddate, opportunamente 

protette per evitare che si inquinino od assorbano acqua, sotto acqua corrente fredda o gelata prima della loro introduzione nel frigorifero 

portatile. Isolare eventualmente il campione in un sacchetto di plastica durante questa operazione. 

Verificare la corretta temperatura con il termometro portatile. 

8. Mantenere a portata di mano ed opportunamente protetti tutti i documenti ufficiali e non ufficiali legati al previsto campionamento. 

- Trasferimento del campione 

Organizzare il trasferimento in modo che il campione giunga al laboratorio nel tempo più breve, con la garanzia che non si interrompa la 

catena del freddo. 

Posizionare il frigorifero portatile lontano dalla luce solare diretta e con le griglie di ventilazione libere. 

Quando possibile, avvisare telefonicamente o via fax il laboratorio dell'imminente arrivo dei campioni, precisando tutti i dati relativi alla 

spedizione. 

Accertare che non ci siano "ponti vacanzieri" o festività locali che allungherebbero i tempi di trasporto. 

Una volta raggiunto il laboratorio, il campione non deve essere abbandonato a se stesso, ma lasciato nelle mani di un responsabile, dal 

quale si deve pretendere una firma di conferma di ricevimento del campione in condizioni idonee ad essere analizzato. 

- Interventi correttivi ( "non conformità ") 

• Temperatura del campione non conforme a quanto previsto dalle norme ISO 

A) Accettare il campione con riserva 

B) Informare la direzione del laboratorio ed attendere istruzioni sul da farsi; nel frattempo conservare il campione alla idonea temperatura 

• Sospetta od accertata manomissione di involucro o sigilli 

C) Non accettare il campione 

D) Informare la direzione del laboratorio ed attendere istruzioni sul da farsi; nel frattempo conservare il campione alla idonea temperatura 

• Rottura involucro durante il trasporto 

E) Accettare il campione con riserva 

F) Informare la direzione del laboratorio ed attendere istruzioni sul da farsi; nel frattempo conservare il campione alla idonea temperatura 

• Documenti amministrativi di accompagnamento del campione errati, incompleti, non conformi 

G) Accettare il campione con riserva 

H) Informare la direzione del laboratorio ed attendere istruzioni sul da farsi 

• Temperatura del frigorifero/congelatore errata o con valori di minima e massima superiori a ± 1,5 ° C 

I) Trasferire i campioni in altro frigorifero/congelatore a temperatura corretta 

J) Informare la direzione 

K) Far intervenire il Servizio di Assistenza Tecnica 

Conclusioni 

Le fasi relative al campionamento di alimenti e di prodotti biologici destinati ad analisi microbiologiche sono troppo importanti per essere 

lasciate al caso e alla buona volontà degli operatori. 

Tutte le operazioni devono essere codificate in una Procedura Operativa Standard che ogni laboratorio deve approntare tenendo conto 

della “sua" realtà. Questo documento renderà possibile il coinvolgimento ed il corretto addestramento di tutto il personale impegnato nelle 

procedure di campionamento. 

Riferimenti 

WHO - Geneve CH - Laboratory Biosafety Manual 

Circolare Ministero Sanità sulla spedizione di sostanze biologiche infette 

ICMSF - International Commission on Microbiological Specifications for Foods - Micro-organisms in food 

USDA - Campionamento di arachidi 

Le Buone Norme di campionamento - Segreteria Simposi Milano 

L'analisi microbiologica dei prodotti lattiero-caseari - Manuale di tecniche di laboratorio ed ecologia microbica - Franco Ottaviani 


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Le circolari del Ministero della Sanità richiedono che il materiale biologico 

a rischio sia trasferito in TRIPLI CONTENITORI A TENUTA ERMETICA, 

con MATERIALE ASSORBENTE per la eventuale accidentale fuoriuscita 

di liquidi e con LOSANGA DI RISCHIO BIOLOGICO. 

Questi contenitori devono essere autoclavabili per la loro sterilizzazione 

(se si intende riutilizzarli) oppure a perdere quando si preveda un 

improbabile o difficile rientro. 

Sistema riutilizzabile 

Il sistema riutilizzabile "Bioprotection Full" è un sistema chiuso ideato per 

proteggere materiale potenzialmente a rischio durante il trasporto di 

provette, flaconi, bottiglie, fiale, sacche, tamponi, sacchetti, etc.) al di fuori 

del laboratorio, delle camere operatorie o dei reparti di degenza. 

Ha una completa visibilità del contenuto, è a chiusura ermetica, 

è autoclavabile e sterilizzabile chimicamente, può essere dotato 

di maniglia di trasporto od essere inserito in un ulteriore 

contenitore metallico a tenuta ermetica per il trasferimento a 

lunghe distanze. 

In caso di fuoriuscita accidentale di liquido dalla provetta o 

flacone, il materiale viene assorbito da un supporto in materiale 

assorbente già compreso nel contenitore distesa sul fondo. 

In tal caso l'operatore od il trasportatore non corre rischi 

biologici in quanto il contenitore può essere sterilizzato 

direttamente senza essere aperto. 

Per il trasferimento di provette il "Bioprotection Full" può alloggiare i portaprovette "Unwire" per provette 

diametro 13, 16, 20, 25, 30 mm. 

Per flaconi di urina, feci, etc si utilizzano altri divisori “Bioal”. 

Caratteristiche chimico-fisiche del "Bioprotection Full" 

Il "Bioprotection Full" (dim. 390x175x180 h mm) è in policarbonato (PC), trasparente, infrangibile. 

E' dotato di guarnizione in silicone per la tenuta ermetica, 4 ganci di chiusura. 

Il policarbonato resiste agli idrocarburi alifatici, agli alcool, ad acidi diluiti, sali neutri ed acidi. 

Pulizia Routinaria 

Utilizzare una soluzione detergente non alcalina, moderatamente calda. Nel caso di lavaggio con 

apposita macchina per vetreria, evitare di utilizzare macchine a spazzola. 

In caso di lavaggio con acqua ad alta pressione, inserire il contenitore in un altro contenitore di 

protezione. È possibile asciugare il contenitore “Bio-Protection Full” con aria. 

Sterilizzazione 

Smontare il coperchio e la maniglia e sterilizzare in autoclave a 121 °C per 20 minuti. In alternativa è 

possibile sterilizzare chimicamente con prodotti idonei al trattamento, oppure ossido di etilene in gas. 

Decontaminazione 

In caso di versamento dei campioni biologici trasportati, è necessario seguire questa procedura: 

a) Sterilizzare in autoclave il contenitore chiuso a 121°C per 60 minuti 

b) Eliminare sia il contenitore che il materiale contenuto seguendo le normative vigenti 

Sistema a perdere 

Il Sistema PBI "Emo-Express" è un sistema chiuso, monouso da impiegare 

quando si prevede un improbabile rientro in sede del contenitore per ragioni 

logistiche e/o economiche. 

La realizzazione in polipropilene trasparente, leggero ed infrangibile permette di 

controllare il contenuto ed agevola il trasporto dei campioni. 

La garantita tenuta ermetica impedisce la fuoriuscita di liquidi, sangue, siero, 

urina, feci. 

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Il supporto interno in materiale assorbente può alloggiare contemporaneamente fino a 4 provette diametro 16 mm, 4 provette diametro 12 

mm, 2 provette da centrifuga diametro 30 mm. 

Il sistema di chiusura ed il sigillo di sicurezza a strappo proteggono i campioni da manomissioni ed accidentali aperture durante il 

trasporto. L' etichetta con il simbolo di pericolo biologico è conforme alle direttive del Ministero della Sanità, per la spedizione ed il 

trasporto di materiale biologico potenzialmente infetto. 

Procedura in caso di incidente 

Il Sistema "Emo-Express" è ideato per evitare la fuoriuscita di liquidi, sangue, siero, urina, feci, etc. Se il sistema viene danneggiato a 

seguito di violento urto (ad esempio incidente automobilistico) procedere al suo isolamento ed avvisare sia il mittente che il destinatario 

dell' accaduto. 

Riferimenti 

- Circolare Ministero Salute n.16 del 20 Luglio 1994 e n.3 dell’8 Maggio 2003. 

- Decreto Legislativo N. 626 sulla sicurezza. 


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Per assicurare la rappresentatività di un campione 

microbiologico liquido prelevato da un rubinetto o solido 

prelevato mediante sonda è indispensabile, quando si opera sul 

campo, procedere alla sterilizzazione mediante flambatura 

prima del prelievo. 

Questa operazione è facilitata sul campo con l' impiego di un 

flambatore portatile "Firegas" con cartuccia di gas "Dispogas". 

Prelievo da rubinetto 

ACQUA 

Pulire esteriormente il rubinetto. 

Aprire il rubinetto e lasciare scorrere il liquido per circa 2 minuti. 

Chiudere il rubinetto, flambare con il "Firegas". 

Attendere 2 minuti, far scorrere il liquido per circa 2 minuti e prelevare il campione nel contenitore sterile. 

Se si tratta di acqua clorata, impiegare sodio tiosolfato per neutralizzare il cloro. 

Il sacchetto sterile “Tiosol” ed il flacone sterile “Tio-square” contengono sodio tiosolfato in quantità 

opportuna a neutralizzare qualsiasi concentrazione di cloro. 

BEVANDE 

Pulire esteriormente il rubinetto. 

Flambare il rubinetto con il "Firegas". 

Attendere 2 minuti, far scorrere il liquido per alcuni secondi e prelevare il campione in contenitore sterile. 

Prelievo mediante sonda sul campo 

Pulire con cura la sonda, flambarla con il "Firegas" (portarla oltre 100°C) e, se necessario, proteggerla 

prima dell' impiego con foglio di alluminio o con apposita custodia metallica. 

Preparazione del flambatore 

Precauzioni 

Non effettuare alcuna operazione di messa in servizio, cambio di cartuccia, manutenzione senza aver 

prima controllato che il rubinetto del flambatore sia ben chiuso. Non operare mai in prossimità di fiamme. 

Prima dell' impiego, tenere acceso il flambatore per alcuni minuti in posizione di riposo verticale, in 

modo da riscaldare il rubinetto ed evitare la fuoriuscita di gas in fase liquida, se 

lo strumento e' inclinato. 

Inserimento della cartuccia del gas nel flambatore 

Svitare la calotta superiore completa di rubinetto e maniglia. Assicurarsi che il 

rubinetto sia munito della guarnizione in gomma (vedi freccia nel disegno), 

introdurre la cartuccia, riavvitare la calotta sino a fondo corsa. 

Accensione 

Aprire il rubinetto e premere a fondo il pulsante posto in alto nella impugnatura. 

Regolare il rubinetto a seconda delle necessità. 

Funzionamento 

Per ottenere la massima resa regolare la intensità della fiamma chiudendo od 

aprendo il foro dell'aria con il movimento avanti ed indietro dell' anello di 

regolazione come da figura 4. 

Difficoltà di accensione 

In caso di eccesso d'aria, coprire parzialmente i fori dell' ugello con l'anello. 

Assicurarsi che l'elettrodo non sia a contatto con un pezzo metallico, non sia 

bagnato, e sia correttamente posizionato sul bruciatore. 

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Un campionamento rappresentativo e corretto e' fondamentale per ottenere risultati validi nelle 

successive fasi analitiche in laboratorio. 

L' industria farmaceutica opera con materie prime e prodotti puri molto costosi e richiede pertanto 

campionatori costruiti con materiali inerti per evitare la contaminazione delle materie prime, dei prodotti 

intermedi, dei prodotti finiti durante le operazioni di campionamento. 

I campionatori di "grado farmaceutico" presentati in questa Nota Applicativa rispondono in pieno a 

questa necessità: infatti sono costruiti in materiali inerti quali Teflon PTFE ed acciaio inossidabile. 

I sistemi di campionamento di "grado farmaceutico" non sono solo ideali per le Società Farmaceutiche 

ma anche per le istituzioni pubbliche e private che trattano materiali puri, costosi e per le determinazioni 

dei metalli in tracce. 

Piani di campionamento 

Il Piano di Campionamento e' una parte importante del processo di campionamento. Tutte le persone 

coinvolte nel campionamento, dal Controllo di Qualità, all' Assicurazione di Qualità, dai Responsabili di 

Laboratorio agli operatori sul campo devono seguire uno specifico protocollo. 

Il Piano di Campionamento riportato può essere di aiuto nel raggiungere questo scopo. 

CAMPIONAMENTO 

SUBCAMPIONAMENTO 

Che cosa si campiona? E’ necessario il subcampionamento in situ? 

Quando si campiona ? E’ necessario il confezionamento del sub-campione ? 

Dove si campiona? Quali contenitori si usano? 

Come si campiona? I contenitori sono puliti? 

Occorre strumentazione speciale? Si possono evitare contaminazioni e perdite? 

Chi campiona? I contenitori sono codificati? 

Quanti campioni? E’ necessaria l’aggiunta in situ di conservanti? 

Che quantitativo/campione? E1 necessario conservare lo stato fisico originale in 

situ? 

Come sono codificati i campioni? Quali dati sono registrati e come? 

Occorre un campione composto? 

Occorrono contenitori per il trasporto? 

Quali contenitori occorrono? 

Perdite e contaminazioni possono essere evitate? 

E’ necessaria l’analisi in situ? 

E’ necessaria la pulizia del campione in situ? 

Occorrono dati geografici e meteorologici? 

Cosa si deve registrare e come? 

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Campionamento di liquidi 

Il campionatore deve essere in grado di prelevare il liquido a qualsiasi profondità della massa da campionare. La sua costruzione deve 

garantire che il prodotto non fluisca nel recipiente di raccolta sino a quando il campionatore non ha raggiunto la profondità prevista. 

- liquidi senza particelle 

Campionatore “Tipha” - Codice : 15547 

- Liquidi con particelle 

Campionatore “Plunge” - Codice: 15553 

Campionatore a pompa di bicicletta “Bike-Inox” - Codice: 16872 


- Istruzioni per l' impiego 

1. Inserire il campionatore "TIPHA" al di sotto del livello del liquido sino a raggiungere il 

fondo del recipiente/fusto/vasca/cisterna. Premere il campionatore sul fondo. 

2. Nel momento in cui si esercita la pressione sulla molla di tenuta, viene a mancare la 

tenuta ermetica ed il liquido (20 ml) può entrare nel ricettacolo di raccolta del campione. 

Lasciando la pressione, il campionatore si chiude e può essere ritirato. 

3. Il campione viene depositato in un recipiente di raccolta ripetendo lo stesso 

procedimento. 


1. Inserire il campionatore "PLUNGE" alla profondità richiesta del liquido da campionare. 

La molla in tensione assicura che il coperchio superiore della tazza di raccolta ha 

tenuta ermetica. 

2. Premendo la maniglia verso il basso si crea uno spazio tra il coperchio e la tazza di 

raccolta permettendo al liquido di penetrare (125 ml). 

3. Ultimato il prelievo, lasciando la pressione sulla maniglia, si ristabilisce la tenuta 

ermetica tra coperchio e tazza di raccolta. 

4. Il campionatore e' trasferito in un contenitore per il travaso del campione che avviene 

mediante svitatura della tazza di raccolta. 

Lunghezza totale: 690 mm 

Diametro del foro di aspirazione: 1 mm 

Diametro esterno: 20 mm 

Peso: 1200 gr 

Capacità totale: 30 ml 

- Istruzioni per l’impiego 

1. Posizionare il campionatore “BIKE-INOX” al disotto del livello del liquido da campionare. 

2. Tirare la maniglia verso l’alto sino alla quinta “tacca” 

(circa 30 ml in totale; circa 6 ml per ogni “tacca”) . 

3. Il campione liquido è depositato nel recipiente di raccolta premendo la maniglia verso il basso. 

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Campionamento di polveri 

- polveri fini 

Campionatore "Rocket" - Codice: 15548 

Campionamento di materiale granulare 


- Pellet, capsule, pastiglie, polveri da un flusso di convogliamento 

Campionatore "Pelican" - Codice: 15550 

- Istruzioni per l'impiego 

Campionatore "Multilevel" - Codice: 15552 

Campionatore "Needle" - Codice: 15549 

1. Il campionatore "ROCKET" e' introdotto nel prodotto alla richiesta profondità. 

2. La maniglia viene spinta verso il basso in modo da spingere la punta nel prodotto. 

3. La polvere (circa 5 g) e' "catturata" con movimento inverso della maniglia (ritorno alla 

posizione iniziale). 

4. Per depositare il campione in un contenitore di campionamento, premere la maniglia 

per "sguainare" la punta. 


1. Adagiare il campionatore "PELICAN" in posizione verticale 

contro la parete del recipiente di raccolta vuoto del 

prodotto. 

2. Il prodotto andrà a riempire progressivamente le 

finestrelle, man mano che defluisce dal convogliatore. 

3. Ultimato il campionamento, estrarre il campionatore dal 

recipiente di raccolta. 

4. Il campione (circa 1000 g) e' raccolto mediante 

capovolgimento del campionatore. 

1. Il campionatore "MULTILEVEL" e' inserito nel prodotto con le finestrelle 

chiuse. 

2. Le finestrelle si aprono ruotando la maniglia di 180° per la raccolta del 

campione. 

3. Quando il campione e' stato prelevato (circa 20 g), si ruota la maniglia di 180° 

per farla tornare alla posizione iniziale. 

4. Per depositare il campione nel contenitore di raccolta, ruotare la maniglia di 

180° per provocare l' apertura delle finestrelle. 


1. Il campionatore "NEEDLE" si utilizza per campioni singoli a fine 

granulometria da sacchi in polietilene o carta. La punta e' in grado di 

penetrare il sacco in qualsiasi posizione producendo un piccolo foro 

facilmente richiudibile al termine del campionamento. 

2. Dopo aver penetrato il sacco, il campionatore viene estratto ed il campione (circa 30 g) raccolto. 

3. Il foro provocato può essere richiuso con nastro adesivo o con una apposita etichetta autoadesiva sulla quale si riportano gli estremi 

del campionamento (data, nome di chi ha eseguito il prelievo, scopo del campionamento). 

Campionatore “Pic-Inox” - Codice: 16876 


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- Istruzioni per l’impiego 

Lunghezza totale: 400 mm 

Apertura punta: 140 mm 

Diametro: 30 mm 

Peso: 250 gr 

1. Il campionatore “PIC-INOX” con cuneo di penetrazione aperto si utilizza per campioni a larga granulometria da sacchi di carta o 

polietilene o juta. La sonda può penetrare la parete del sacco fino a 30-35 cm. 

2. La punta larga 30 mm consente il prelievo di granuli grossolani. E’ inserita nel sacco inclinata in modo da lasciare fluire il campione 

direttamente in un flacone o sacchetto di raccolta. 

3. Il foro provocato sulla parete del sacco può essere richiuso con nastro adesivo o con una apposita etichetta autoadesiva sulla quale si 

riportano gli estremi del campionamento (data, nome di chi ha eseguito il prelievo, scopo del campionamento). 

Campionamento di materiale viscoso 


Campionatore "Visco" - Codice: 15551 


1. Inserire il campionatore "VISCO" nel prodotto viscoso. 

2. Raggiunta la profondità voluta, tirare la maniglia verso l'alto per provocare l' aspirazione del 

prodotto. 

3. Il campione (circa 15 ml) e' trasferito nel recipiente di raccolta premendo la maniglia verso il 

basso. 

Etichetta adesiva di controllo qualità “QC-SEAL” (Codice: 15738) per la chiusura dei sacchetti 

dopo le operazioni di campionamento. 

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La problematica del corretto campionamento è molto vasta e diversificata. Per compiere correttamente 

tutte le operazioni è necessario disporre, oltre che di una buona preparazione teorico-pratica, anche 

degli strumenti e del materiale di supporto idonei. 

Condizione fondamentale da non dimenticare mai e da non sottovalutare è che il campione deve 

giungere a mani di chi deve effettuare le analisi in condizioni integre, senza che siano intervenute 

manipolazioni fraudolente. 

In questa Nota Applicativa vengono presentati alcuni mezzi per garantire la integrità del contenitore 

contenente il campione dal luogo di prelievo al laboratorio di analisi. 

Nastro di sicurezza 

Il nastro di sicurezza "Tape-Strip" viene applicato sui 

flaconi tra spalla e tappo, sui sacchetti tra le due 

labbra di apertura a campionamento ultimato; il 

responsabile del campionamento riporta sulla stessa 

striscia il suo nome (firma) e la data con pennarello 

indelebile. Lo speciale nastro in plastica di colore 

rosso ben evidente, non può essere rimosso senza 

strapparsi in più punti rendendo manifesta l'intenzione 

di manomissione. 

Flaconi autosigillanti 

I flaconi autosigillanti sono in materiale plastico e 

dotati di un particolare tappo a vite od a pressione: 

una volta avvitato sino a fine corsa o pressato nella 

sua sede il tappo non può essere aperto se non 

rompendo la corona di sigillo. 

Grazie a questa caratteristica i flaconi impediscono 

qualsiasi tipo di manipolazione del campione e 

garantiscono che esso giunga integro al laboratorio. 

I flaconi di questo tipo che più si addicono per praticità di 

campionamento e facilità di preparazione e trasferimento 

del campione quando giungono al laboratorio sono i flaconi 

autosigillanti "Seal" e "Trans-Seal". 

Flaconi in vetro sigillabili mediante filo a spiralina e 

piombino 

In un contesto di "analisi ufficiale", i contenitori in materiale plastico (siano essi flaconi o sacchetti) 

possono dare adito a contestazioni in quanto il materiale plastico potrebbe essere "penetrato" con aghi 

molto sottili per modificare il campione. 

Per evitare questa possibile contestazione si adottano i flaconi in vetro (flacone "Filmi") dotati di anello 

sia nella parte in vetro che nel tappo in materiale plastico imperforabile: attraverso questi anelli si fa 

passare una spiralina in piombo (filo metallico "Spiral") che viene fissata con un piombino (piombino 

"Lex"). Il piombino porterà impresso il marchio (o sigla o nome) di chi ha effettuato il campionamento 

(persona, Ente, Laboratorio, etc.), rendendo impossibile una manomissione. 

Si dovrà pertanto disporre anche di una pinza (pinza "Fixo") dove sono incise le sigle per sigillare i 

piombini. 

Responsabilità del laboratorio che riceve il campione 

E' naturalmente responsabilità del laboratorio, al momento dell' accettazione del campione, accertare 

che i sigilli siano integri e riportare la annotazione sia sul Registro di Accettazione che nel successivo 

Referto Analitico. 

La mancata annotazione può portare successivamente a problemi di tipo legale. 

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In questa Nota Applicativa sono riportati metodi ufficiali ISO, IDF, AOAC, CAC per diversi prodotti e 

derrate alimentari. 

Standard suggeriti 

- Campionamento di semi oleosi ISO 542 

- Campionamento di latte e derivati ISO 707 

- Campionamento di latte e derivati IDF50B 

- Campionamento di latte e derivati-ispezione per attributi ISO 5538 

- Campionamento di latte e derivati-ispezione per variabili ISO 8197 

- Campionamento di latte e derivati-ispezione per variabili IDF 136 

- Metodi di campionamento per latte derivati CAC B-1 

- Campionamento di frutta fresca e vegetali ISO 874 

- Campionamento di spezie e condimenti ISO 948 

- Campionamento di legumi in sacchi ISO 951 

- Campionamento di tè ISO 1839 

- Campionamento di cacao ISO 2292 

- Campionamento di caffè verde in sacchi ISO 4072 

- Campionamento di residui di semi oleosi ISO 5500 

- Campionamento di grassi ed oli animali e vegetali ISO 5555 

- Campionamento di caffè’ istantaneo in contenitori con protezione ISO 6670 

- Campionamento di tè istantaneo in forma solida ISO 7516 

- Campionamento di cereali (o grani) ISO 950 

- Schemi di campionamento per latte e derivati IDF 113 

- Campionamento automatico con mezzi meccanici-cereali e prodotti a base di cereali macinati 

ISO 6644 

- Piano standard di campionamento da lotto-Prodotti Agro-Alimentari ISO 7002 

- Campionamento di prodotti macinati-cereali e legumi ISO 2170 

- Campionamento di carne e derivati-Parte 1a-Prelievo di campioni primari ISO 3100 

- Piani di campionamento per alimenti pre-confezionati-FAO/WHO Codex Alimentarius CAC RM 42 

Metodi validati 

- Campionamento di cereali e nocciole per aflatossine AOAC 49.2.01 

- Campionamento di burro AOAC 33.1.05 

- Campionamento di cereali aggiunti AOAC 27.4.01 

- Campionamento di formaggio AOAC 33.1.06 

- Campionamento di latte condensato e/o evaporato AOAC 33.1.03 

- Campionamento di prodotti lattiero-caseari AOAC 33.1.01 

- Campionamento di latte in polvere e derivati AOAC 33.1.04 

- Campionamento di latte in polvere AOAC 33.5.01 

- Campionamento di uova AOAC 34.1.01 

- Campionamento di latte evaporato non zuccherato AOAC 33.4.01 

- Campionamento di mangimi animali AOAC 4.1.01 

- Campionamento di farina AOAC 32.1.01 

- Campionamento di frutta AOAC 37.1.01 

- Campionamento di luppolo AOAC 27.5.01 

- Campionamento di nutrienti in latti istantanei per la prima infanzia AOAC 50.1.01 

- Campionamento di latte da tank di conservazione AOAC 33.1.02 

- Campionamento di malto AOAC 27.3.01 

- Campionamento di molasse AOAC 42.2.01 

- Campionamento di latte condensato, zuccherato AOAC 33.4.02 

- Campionamento di lievito liquido e pressato AOAC 27.801 

Riferimenti 

Dr. Philip Slack, Leatherhead Food RA - Survey of Advisory Standards for Sampling Methods - 

Sampling for food Analysis Training Course - Nov 27, 1996 - Food RA - Leatherhead - UK. 

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La preparazione del campione di alimenti, mangimi, foraggi, derrate in laboratorio è oltre ad un corretto 

campionamento sul campo, una delle fasi più importanti di tutto il processo analitico. 

In questa Nota Applicativa è riassunta la strumentazione necessaria per differenti tipi di prodotti in 

funzione del loro contenuto in umidità, sostanza grassa, fibra e volume. 

Strumentazione 

Miscelatore “Twist” 

Campioni con umidità sino al 35% 

Cereali, granaglie, sementi, pellets, granuli, pastiglie, scaglie, materie prime farmaceutiche e cosmetiche 

Sino a 2000 g 

Miscelazione ad “8” 

Circa 60 secondi 

Da 5 a 35 giri/minuto 

N.A. 

Molino “Cemomill” 

Molino “Cyclone” 

Omogeneizzatore “Turbo Homog” 

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Per ottenere risultati analitici riproducibili ed affidabili è indispensabile affidarsi a piani di preparazione 

del campione metodici e riproducibili. Un campione mal preparato determinerà un risultato analitico non 

veritiero. 

Le regole di base per la preparazione del campione 

La preparazione di un campione può coinvolgere varie operazioni, dal campionamento vero e proprio, 

alla suddivisione, triturazione, trattamento termico, mescolamento, agitazione, omogeneizzazione, etc. 

Ciò che è importante è che il campione deve essere rappresentativo per ottenere un risultato analitico 

che rispecchi la composizione del lotto. 

Una delle fasi più importanti di questo non semplice processo è la miscelazione e suddivisione del 

campione in laboratorio prima dell’ analisi. 

Qualsiasi forma di suddivisione di un campione solido sfuso è soggetta a basilari regole e principi che si 

possono riassumere nelle definizioni riportate nelle Norme DIN 51 701 in relazione a materiali sfusi con 

particelle di dimensioni non superiori ad un determinato valore. 

Calcolo della quantità minima di campione 

La quantità minima di campione si calcola mediante un fattore. 

dmax = dimensione massima delle particelle del campione 

Qmin = quantità minima di campione rappresentativo. Questa quantità e’ legata al 

“dmax “ del materiale sfuso. 

Esempio: 

Per particelle non superiori a 120 mm, il “dmax” deve essere moltiplicato per il fattore 0,06. 

Con un campione con particelle non superiori a 5 mm (“dmax”=5), il quantitativo minimo di campione 

(“Qmin”) dovrà essere di 0,300 kg. 

Omogeneità del campione con trattamento rotazionale/diagonale 

Il trattamento del campione in un cilindro che lo sottoponga ad una azione uniforme tridimensionale, 

produce un campione rappresentativo indipendentemente dal peso specifico dei componenti del 

campione stesso. 

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Ammasso conico e suddivisione in quarti 

Un metodo ben conosciuto ed applicato per la riduzione rappresentativa del campione è 

quello dell’ ammasso conico e della successiva suddivisione in quarti. 

Il campione viene ammassato formando un cono, avendo cura che ogni successivo 

ammontare di campione sia lasciato cadere dall’ alto, sulla punta del cono, in modo che si 

distribuisca liberamente in tutte le direzioni. 

Il cono viene poi suddiviso in quattro parti tramite il dispositivo a croce “Quarter” (Codice: 

17213) che è inserito al centro dell’ammasso. Si eliminano due quarti contrapposti e con 

quelli rimasti si produce un ulteriore cono dal quale si preleverà il campione finale. 

Se il campione è ancora troppo voluminoso, si ripete il procedimento della suddivisione in 

quarti. 

Sdoppiamento del campione 

Lo sdoppiamento del campione tramite lo sdoppiatore “Splitter” (Codice: 17214) facilita 

ed accelera il lavoro del laboratorio. 

Lo sdoppiatore del campione “Splitter” è formato da camere di raccolta del campione 

parallele, con uscite sfalsate su due lati. 

Il campione viene alimentato dall’ alto e lasciato cadere in modo costante ed uniforme 

sulle camere di raccolta: si formano così due subcampioni che possono eventualmente 

essere ri-sdoppiati se il quantitativo è ancora eccessivo. 

La larghezza di ogni camera di raccolta deve essere almeno di 3 volte la dimensione 

massima delle particelle del prodotto sfuso. 

Conclusioni 

La preparazione e la suddivisione del campione di un prodotto solido sfuso prima del 

procedimento analitico sono determinanti se si vogliono ottenere risultati analitici che 

rispecchino la composizione del campione stesso. Se il campione non è 

rappresentativo, i risultati analitici non sono rappresentativi. 

Riferimenti 

- DIN 51 701 

- Helmuth Pitsch - Sampling and Division of Samples - International Labmate Vol.XIX Issue1. 


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1. Scopo e campo d'applicazione 

I campioni destinati ai controlli ufficiali degli alimenti per gli animali, al fine di accertarne la qualità 

e la composizione, vengono prelevati in conformità delle modalità sotto indicate. Essi sono da 

considerarsi rappresentativi delle partite. 

2. Agenti prelevatori autorizzati 

I campioni vengono prelevati dal personale a ciò abilitato a norma della vigente legislazione. 

3. Definizioni 

Partita da campionare: quantità di prodotto costituente una unità e avente caratteristiche presunte 

uniformi. 

Campione elementare: quantità prelevata da un punto della partita. 

Campione globale: insieme di campioni elementari prelevati da una stessa partita. 

Campione ridotto: parte rappresentativa dei campione globale ottenuta mediante riduzione di 

quest'ultimo. 

Campione finale: parte del campione ridotto o del campione globale omogeneizzato. 

4. Strumenti 

4.1. Gli strumenti necessari per il prelevamento devono essere costruiti con materiali che non 

contaminino i prodotti da campionare. 

4.2. Strumenti raccomandati per il campionamento degli alimenti solidi. 

4.2.1. Campionamento manuale. 

4.2.1.1. Pala a fondo piatto e a bordi laterali verticali. 

4.2.1.2. Sonda a lungo setto o a partizioni - Le dimensioni della sonda devono essere adeguate 

alle caratteristiche della partita (profondità del recipiente, misure del sacco, ecc.) e alla 

dimensione delle particelle costituenti l’alimento (vedere descrizione della sonda). 

4.2.2. Campionamento meccanico - Dispositivi meccanici possono essere utilizzati per il 

campionamento di alimenti in flusso. 

4.2.3. Divisore - Per i prelevamenti elementari nonché per la preparazione dei campioni ridotti e 

dei campioni finali possono essere utilizzati strumenti per dividere i campioni in parti 

approssimativamente uguali. 

5. Requisiti quantitativi 

5.A. Per il controllo delle sostanze o dei prodotti in modo uniforme nell'alimento. 

5.A.1. Partita da campionare - La dimensione della partita deve essere tale da consentire il 

prelievo di campioni in ogni sua parte. 

5.A.2. Campioni elementari. 

5.A.2.1. Alimenti alla rinfusa - Numero minimo dei campioni elementari: 7 

5.A.2.1.1. Partite di peso non superiore a 2,5 tonnellate 

5.A.2.1.2. Partite di peso superiore a 2,5 tonnellate - Radice quadrata di 20 volte il numero di 

tonnellate costituenti la partita da campionare (a), con un massimo di 40 campioni elementari 

5.A.2.2. Alimenti in confezioni - Numero minimo di confezioni da campionare (b) 

5.A.2.2.1. Confezioni di contenuto superiore a 1 chilogrammo 

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 


5.A.2.2.1.1. Partite da 1 a 4 confezioni - Tutte le confezioni 

5.A.2.2.1.2 Partite da 5 a 16 - Confezioni 4 

5.A.2.2.1.3. Partite di oltre 16 confezioni - Radice quadrata del numero di confezioni costituenti la partita da campionare (a), 

con un massimo di 20 confezioni 

5.A.2.2.2. Confezioni di contenuto non superiore a 1 chilogrammo – Confezioni 4 

5.A.2.3. Alimenti liquidi o semiliquidi - Numero minimo di recipienti da campionare (b) 

5.A.2.3.1. Recipienti di contenuto superiore a 1 litro 

5.A.2.3.1.1. Partite da 1 a 4 recipienti - Tutti i recipienti 

5.A.2.3.1.2. Partite da 5 a 16 recipienti - Recipienti 4 

5.A.2.3.13. Partite di oltre 16 recipienti - Radice quadrata del numero dei recipienti costituenti la partita da campionare (a), con un 

massimo di 20 recipienti 

5.A.2.3.2. Recipienti di con tenuto non superiore a 1 litro - Recipienti 4 

5.A.2.4. Alimenti minerali formellati o mattonelle di sali minerali - Numero minimo di formellati o mattonelle da campionare (b): un 

formellato o una per partita di 25 unità con mattonella per partita di 25 unità con un massimo di 4 formellati o mattonelle 

5.A.3.Campione globale - E’ richiesto un solo campione globale per partita. La massa totale dei campioni elementari destinati a 

costituire il campione globale non può essere inferiore ai seguenti quantitativi: 

5.A.3.1. Alimenti alla rinfusa - 4 chilogrammi 

5.A.3.2. Alimenti in confezioni - 4 chilogrammi 

5.A.3.2.1. Confezioni di contenuto superiore a 1 chilogrammo 

5.A.3.2.2. Confezioni di contenuto non superiore a 1 chilogrammo - Peso del contenuto di 4 confezioni d’ origine 

5.A.3.3. Alimenti liquidi o semiliquidi - 4 litri 

5.A.3.3.1. Recipienti di contenuto superiore a 1 litro 

5.A.3.3.2. Recipienti di contenuto non superiore ad 1 litro - Volume del contenuto di 4 recipienti d’origine 

5.A.3.4. Alimenti minerali formellati e mattonelle di sali minerali - 4 chilogrammi 

5.A.3.4.1. Di peso unitario superiore a 1 chilogrammo 

5.A.3.4.2. Di peso unitario non superiore a 1 chilogrammo - Peso di 4 formellati o mattonelle d’origine 

5.A.4. Campioni finali - Dopo riduzione, se necessaria, si ottengono dal campione globale campioni finali. E' richiesta l'analisi di 

almeno un campione finale. La massa o il volume del campione finale, destinato all'analisi, non può essere inferiore ai seguenti 

quantitativi: 

• alimenti solidi: 500 grammi 

• alimenti liquidi e semiliquidi: 500 millilitri 

5.B. Per il controllo delle sostanze o dei prodotti indesiderabili che possono essere distribuiti in modo non uniforme negli alimenti 

come le aflatossine, l'ergotina di segale, il ricino, la crotalaria negli alimenti semplici (c). 

5 B.1. Partita da campionare: vedi punto 5.A.1. 

5.B.2. Campioni elementari 

5.B.2.1. Alimenti alla rinfusa: vedi punto 5.A.2.1. 

5.B.2.2. Alimenti in confezioni - Numero minimo di confezioni da campionare - Confezioni 4 

5.B.2.2.1. Partite da 1 a 4 confezioni - Tutte le confezioni 

5.B.2.2.1. Partite da 5 a 16 confezioni 

5.B.2.2.3. Partite di oltre 16 confezioni - Radice quadrata del numero di confezioni costituenti la partita da campionare (a), con un 

massimo di 40 confezioni 

5.B.3. Campioni globali - Il numero di campioni globali varia secondo la dimensione' della partita. Il numero di campioni globali per 

partita è indicato appresso. La massa totale dei campioni elementari destinati a costituire un campione globale non può essere 

inferiore a 4 chilogrammi. 

5.B.3.1. Alimenti alla rinfusa - Dimensioni della partita in tonnellate - Numero minimo di campioni globali per partita: 

fino a 1 - 1 

più di 1 e fino a 10 – 2 

più di 10 e fino a 40 - 3 

più di 40 - 4 

5.B.3.2. Alimenti in confezioni - Numero di confezioni costituenti la partita da campionare - Numero minimo di campioni globali per 

partita: 

da 1 a 16 - 1 

da 17 a 200 - 2 

da 201 a 800 - 3 

più di 800 - 4 

5.B.4. Campioni finali - Dopo riduzione, si ottengono da ciascun campione globale campioni finali. Per ciascun campione globale è 

richiesta l'analisi di almeno un campione finale. La massa del campione finale destinato all'analisi non può essere inferiore a 500 

grammi. 

6. Istruzioni relative ai prelievi, alla formazione e al condizionamento dei campioni 

6.1. Generalità - Prelevare e formare i campioni con tutta la rapidità possibile prendendo le precauzioni necessarie per evitare 

qualsiasi alterazione o contaminazione del prodotto. Le superfici e i recipienti nonché gli strumenti destinati a ricevere i campioni 

devono essere puliti ed asciutti. 

6.2. Campioni elementari 

6.2.A. Destinati al controllo delle sostanze o dei prodotti ripartiti in modo uniforme negli alimenti. 

I campioni elementari sono da prelevarsi a caso dal complesso della partita. Le loro masse o i loro volumi devono essere 

approssimativamente uguali. 

6.2.A.1. Alimenti alla rinfusa. 

Dividere simbolicamente la partita in parti approssimativamente uguali. Scegliere a caso un numero di parti corrispondente al 

numero di campioni elementari di cui sub 5.A.2. e prelevare almeno un campione da ciascuna parte. 

Eventualmente, procedere al campionamento al momento della messa in movimento della partita (carico o scarico). 

6.2.A.2. Alimenti in confezioni. 


. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 


Prelevare da tutte le confezioni da campionare secondo quanto indicato sub 5.A.2., a mezzo sonda o pala, una parte del loro 

contenuto. Eventualmente vuotare separatamente le confezioni. 

6.2.A.3. Alimenti liquidi o semiliquidi omogenei od ornogeneizzabili. 

Prelevare da tutti i recipienti da campionare, secondo quanto indicato sub 5.A.2., eventualmente dopo omogeneizzazione, una 

parte del loro contenuto. 

I campioni elementari possono eventualmente essere prelevati al momento del travaso del prodotto. 

6.2.A.4. Alimenti liquidi o semiliquidi non omogeneizzabili: 

Prelevare i campioni, a diversi livelli, da tutti i recipienti da campionare secondo quanto indicato sub 5.A.2. 

I campioni possono essere prelevati anche al momento del travaso del prodotto, dopo eliminazione delle prime frazioni. In 

entrambi i casi, il volume totale dei prelievi non deve essere inferiore a 10 litri. 

6.2.A.5. Alimenti minerali formellati e mattonelle di sali minerali. 

Prelevare da tutti i formellati o mattonelle da campionare secondo quanto indicato sub 5.A.2, una parte di ciascuno di essi. 

6.2.B Destinati al controllo delle sostanze o dei prodotti indesiderabili che possono essere distribuiti in modo non uniforme negli 

alimenti, come le aflatossine, l'ergotina di segale, il ricino, la crotalaria negli alimenti semplici. 

Dividere simbolicamente la partita in frazioni approssimativamente uguali il cui numero deve corrispondere a quello dei campioni 

globali di cui sub 5.B.3. Se tale numero è superiore a 1, ripartire il numero totale dei prelievi dei campioni elementari di cui sub 

5.B.2. Nelle diverse frazioni - Prelevare quindi quantità approssimativamente uguali (d) in modo che la massa totale dei campioni 

elementari concernenti ciascuna frazione non sia inferiore al quantitativo minimo di 4 chilogrammi necessario per ciascun 

campione globale. Non riunire i campioni elementari provenienti da frazioni diverse. 

6.3. Formazione dei campioni globali. 

6.3.A. Destinati al controllo delle sostanze o dei prodotti ripartiti in modo uniforme negli alimenti. 

Riunire i campioni elementari per costituire un solo campione globale. 

6.3.B. Destinati al controllo delle sostanze o dei prodotti indesiderabili che possono 

essere distribuiti in modo non uniforme negli alimenti come le aflatossine, l’ergotina di 

segale, il ricino, la crotalaria negli alimenti semplici. 

Riunire i campioni elementari prelevati da ciascuna frazione della partita per ottenere il numero di campioni globali previsti sub 

5.B.3. Aver cura di annotare la provenienza di ciascun campione globale. 

6.4. Formazione dei campioni finali - Mescolare con cura il campione globale (6.3.A.) o i campioni globali (6.3.B.) per ottenere un 

campione omogeneo (e). Se necessario ridurre ridurre il campione globale a 2 chilogrammi o a 2 litri (campione ridotto), con l’aiuto 

eventualmente di un divisore meccanico o con il metodo della suddivisione in quarti. 

Formare quindi quattro campioni finali di massa o di volume approssimativamente uguale e rispondenti ai requisiti quantitativi di 

cui sub 5.A.4. o 5.B.4. Introdurre ciascun campione in un recipiente idoneo. Prendere tutte le precauzioni necessarie per evitare 

qualsiasi modifica di composizione del campione o qualsiasi contaminazione o alterazione fortuita durante il trasporto o l’ 

immagazzinaggio. 

6.5. Condizionamento dei campioni finali. 

Sigillare ed etichettare i recipienti o le confezioni (l’etichetta deve essere incorporata nel sigillo) in modo che non possano essere 

aperti senza violare il sigillo. 

7. Verbali di campionamento 

Per ogni operazione di campionamento deve essere redatto un verbale, secondo quanto previsto dall’ articolo 105 del Regio 

Decreto 1° Luglio 1926 n.1361, regolamento per la esecuzione del Regio Decreto Legge 15 Ottobre 1925 n.2033, convertito in 

legge con la legge 18 Marzo 1926 n.562 che permette di identificare, senza equivoci, la partita campionata. 

NOTE 

(a) Le frazioni di cifra sono da arrotondarsi per eccesso. 

(b) Per le confezioni o i recipienti di contenuto non superiore a 1 kg o a 1 litro, nonchè per i formellati o le mattonelle di sali 

minerali di peso unitario non superiore a 1 chilogrammo, il contenuto di una confezione o di un recipiente d'origine, di un 

formeliato o una mattonella, costituisce un campione elementare. 

(c) Per il controllo delle aflatossine, dell’ ergotina di segale, del ricino, della crotalaria negli alimenti completi e complementari si 

applicano le modalità di cui sub 5.A. 

(d) Nel caso degli alimenti in confezioni, prelevare con una sonda o pala una parte del contenuto delle confezioni da campionare, 

eventualmente dopo averle vuotate separatamente. 

(e) Se necessario, schiacciare i grumi separatamente per ciascun campione globale (togliendoli eventualmente dalla massa e 

riunendo quindi il tutto. 


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Il presente Regolamento Regionale 9 Gennaio 1997, n.1,è stato approvato con Deliberazione del 

Consiglio Regionale 11 Dicembre 1996, n.354 - 19087 - Bollettino Ufficiale della Regione 

Piemonte N.2 - 15 Gennaio 1997. 

Art. 1 

(Fonti normative) 

Il presente regolamento contiene le disposizioni dirette a normare il trasferimento dei campioni 

biologici da struttura privata di laboratorio operante sul territorio regionale autorizzata al sensi di 

legge ad altra struttura pubblica o privata parimenti autorizzata ed operante sul territorio regionale 

in attuazione deIl’articolo 4, ultimo comma, della legge regionale 5 novembre 1987, n. 55 

(Requisiti minimi dei laboratori di analisi di cui al D.P.C.M. 10 febbraio 1984) così come sostituito 

dall’articolo della legge regionale 24 luglio 1996, n. 50. 

Art. 2 

(Condizioni per il trasferimento campioni) 

1. - In attuazione di quanto disposto all'articolo 2, comma 2, del decreto ministeriale 7 novembre 

1991 ed all'articolo 1 della L.r. 50/1996, è consentito il trasferimento di campioni biologici relativi a 

prestazioni di diagnostica di laboratorio ad elevata tecnoIogia e/o impegno professionale da una 

struttura privata, operante sul territorio regionale autorizzata al sensi di legge, ad un’altra struttura 

pubblica o privata parimenti autorizzata ed operante sul territorio regionale, alle seguenti 

condizioni: 

a) i laboratori generali di base non possono trasferire nessun campione biologico dell’attività 

autorizzata. Possono invece trasferire campioni relativi ad analisi eseguibili in settori specializzati 

di altri laboratori; 

b) i laboratori con settori specializzati possono trasferire campioni relativi ad analisi eseguibiIi in 

altri settori specializzati per i quali non possiedono autorizzazione prevista dalla normativa 

vigente. Possono altresì trasferire campioni relativi ad analisi eseguibili nei propri settori se tali 

analisi, per la loro saltuarietà e per elevata tecnologia e/o impegno professionale necessario, 

richiedono, per la loro corretta esecuzione, rinvio ad un altro laboratorio di cui al primo capoverso 

particolarmente specializzato nell’attività analitica in oggetto; 

c) sono fatti salvi i casi di forza maggiore che giustifichino il trasferimento presso altro laboratorio 

per una parte consistente di attività. Tali eventi, riconducibili a inagibilità parziale del laboratorio o 

a mancato funzionamento della strumentazione, devono riguardare solo una parte del laboratorio 

stesso, e devono essere comunque limitati, al tempo strettamente necessario per la loro 

soluzione e comunque non superiore ad una settimana lavorativa. Tale situazione eccezionale 

deve essere comunicata all'Azienda Regionale-USL competente per territorio. Se l’intera attività 

analitica deve essere sospesa il laboratorio opererà la necessaria chiusura dandone 

comunicazione alla competente Azienda U.S.L. e all’Amministrazione regionale e non potrà 

avvalersi del trasferimento di campioni. 

Art. 3 

(Modalità trasmissione campioni) 

1. Tutti i campioni biologici devono essere inviati da un laboratorio all’altro a mezzo di un vettore 

privato. 

2. Per campioni biologici si intendono tutti i materiali di origine umana o animale tra i quali sono 

gli escreti, i secreti, il sangue ed i suoi componenti, i tessuti ed i loro fluidi, che vengono 

trasportati a scopo diagnostico. 

3. I contenitori (provette, flaconi, ecc.) per i campioni devono essere a tenuta; nessun materiale 

deve rimanere sulla parete esterna dopo che il tappo è stato chiuso. 

4. Ogni contenitore contenente il campione da esaminare deve essere etichettato con i dati di 

riconoscimento del paziente, fatto salvo la necessità di anonimato previsto da aIcune leggi di 

settore. 

5. Per evitare perdite o versamenti nell’ambiente e per mantenere idonea temperatura i 

contenitori dei campioni devono estere trasportati all'interno di altri contenitori a tenuta, a prova 

d'urto, muniti di idonei supporti a tenuta termostatica e quando necessario refrigerati ad idonea 

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 


temperatura. 

6. L ' esterno del contenitore finale deve riportare l’indicazione del trasporto di sostanze potenzialmente infette. 

Art. 4 

(Responsabilità) 

1. La responsabilità del prelievo della corretta conservazione e del trasporto del campione nonchè della consegna ed archiviazione 

del referto è attribuita al responsabile della struttura cui accede l’utente. 

2. La responsabilità del referto è attribuita al responsabile del centro specializzato e/o di riferimento che esegue l’indagine. Tale 

responsabile deve inoltrare il proprio referto al laboratorio richiedente. 

3. La refertazione al paziente è effettuata dal laboratorio che ha eseguito il prelievo, consegnando il referto di cui al comma 2, in 

copia originale congiuntamente a quello degli esami effettuati in proprio. 

Art. 5 

(Disposizioni finali) 

1. I laboratori sono tenuti a comunicare all'Assessorato alla Sanità e all’Azienda sanitaria regionale USL territorialmente 

competente, il numero e la denominazione degli esami fatti eseguire presso altri laboratori. Tale comunicazione viene allegata alla 

statistica annuale che i laboratori sono già tenuti, a presentare in ottemperanza dell’articolo 8, primo comma, lettera a) della L.r. 

55/1987. In detta statistica i laboratori inseriranno unicamente il numero e la denominazione degli esami effettivamente eseguiti. I 

laboratori che hanno eseguito esami su materiale proveniente da altri laboratori sono tenuti ad elencarli nella statistica annuale di 

cui all'articolo 8, primo comma, lettera a), L.r. 55/1987. 

2. L’Azienda sanitaria regionale USL territorialmente competente ai sensi dell’articolo 16 L.r. 55/1987, è tenuta ad effettuare la 

massima vigilanza affinchè le disposizioni del presente regolamento siano rispettate da parte delle strutture interessate. 

3. I laboratori privati titolari di contratto convenzione con le Aziende sanitarie regionali USL provvederanno al pagamento diretto 

delle Competenze al laboratorio che ha eseguito l’attività analitica ed addebitano all'Azienda sanitaria regionale USL, con la quale 

ha stipulato contratto l'importo, quantificato secondo le tariffe previste dal d.m. 7.11.1991 ed eventuali successive modificazione 

ed integrazioni. L’addebito deve essere corredato dalla comunicazione di cui al comma 1. 

Art. 6 

(Sanzioni) 

1. Chiunque trasferisca campioni biologici non rientranti nella casistica prevista dall'articolo 2 o con modalità di trasporto difformi 

rispetto a quelle previste dall'articolo 3, è soggetto alla sanzione amministrativa del pagamento di una somma da lire 5 milioni a 

lire 10 milioni. 

2. La sanzione di cui sopra deve essere comminata in conformità, ai principi e alle procedure di cui alla legge 24 novembre 1981 n. 

689. 


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La Norma FIL-IDF 50C:1995 indica le referenze normative, le definizioni, le regole generali, la 

strumentazione necessaria al campionamento, il metodo di campionamento, la conservazione ed 

il trasporto dei campioni di latte liquido, latte condensato, latte in polvere, burro, formaggio, 

prodotti lattiero-caseari semi-solidi. 

La strumentazione di campionamento consigliata 

La strumentazione di campionamento consigliata 

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L'esecuzione di un corretto prelevamento di materie prime, prodotti intermedi, prodotti finiti 

comporta la disponibilità di un corretto sistema di prelievo. L'articolo di Andrea e Stefano 

Polesella "Prelievo del campione-Tecniche ed attrezzature" apparso sulla Rivista "Laboratorio 

2000" di Giugno/Luglio 1997 può aiutare il responsabile del campionamento ad una più oculata 

scelta del campionatore adatto. 

La precisione dell'analisi può essere vanificata se il campione sul quale è stata eseguita non è 

rappresentativo del materiale da cui è stato prelevato. Secondo Youden (1) l'incertezza prodotta 

dal campionamento costituisce da sola un terzo dell'incertezza totale del risultato di analisi. 

Questa considerazione porta in primo piano un aspetto del processo analitico troppo spesso 

ingiustamente trascurato. 

Le procedure di prelevamento del campione possono causare gravi distorsioni sulla valutazione 

dei risultati e pregiudicare l'attendibilità di un'analisi. 

1. DEFINIZIONE E TERMINOLOGIA DEL CAMPIONAMENTO 

Campionamento: insieme delle operazioni necessarie per ottenere, da un lotto o spedizione di un 

prodotto, un campione per laboratorio di idonee dimensioni, rappresentativo del lotto o spedizione 

medesima; 

Spedizione o consegna: quantità di prodotto spedita o ricevuta in una sola volta, coperta da un 

particolare contratto e o documento d'imbarco. Una spedizione può essere costituita da uno o più 

lotti; 

Lotto o partita: quantitativo di prodotto, totale o parte di spedizione, che si presume sia di 

caratteristiche uniformi, del quale sia possibile valutare la qualità 

Campione primario, campione elementare, incremento o subcampione: piccola quantità di 

prodotto prelevato in un solo punto del lotto; 

Campione globale, campione aggregato, campione composito o campione medio: quantità di 

campione ottenuto, combinando e miscelando i campioni primari prelevati da un determinato 

lotto; 

Campione ridotto o sottocampione: parte rappresentativa del campione globale ottenuta mediante 

riduzione di quest'ultimo; 

Campione per laboratorio, campione contrattuale o campione di qualità; porzione di prodotto 

prelevata dal campione globale (o ridotto) e destinata al laboratorio e alla conservazione per 

ulteriori controlli e revisioni; 

Campione per l'analisi: porzione di campione per i laboratorio preparata per l'analisi. 

Il campionamento è stato definito come "L'operazione di prelevamento della parte di un materiale 

di dimensione sufficiente alla determinazione da una massa maggiore, tale che la proporzione 

della proprietà misurata nel campione rappresenti, entro un limite accettabile di errore, la 

proporzione della stessa proprietà nella massa di origine 2 ." 

I materiali e le sostanze da sottoporre a procedimenti analitici sono così numerosi e differenti che 

è molto difficile stabilire una tecnica comune. Le disformità principali sono lo stato fisico (solido 

compatto, granulare, pastoso, liquido limpido, torbido, viscoso, gas omogeneo, nebbia, fumo 

aerosol), la zona di prelevamento, come l'ambiente naturale (sopra o sottosuolo, vegetazione, 

acque, atmosfera) o i locali di produzione e di deposito, i mezzi di trasporto, le caratteristiche dei 

materiali stessi (sostanze naturali, terreni, minerali e combustibili grezzi e raffinati, prodotti 

industriali, farmaceutici, cosmetici, agricoli, alimentari, biologici), gli imballaggi e i 

confezionamenti, la quantità del materiale da campionare e gli scopi e tipi di analisi da 

effettuare. 

Grosso modo si possono distinguere tre tipi principali di campionamento in base allo scopo: 

campionamenti per il controllo di qualità, per il controllo medico igienico sanitario e per il controllo 

ambientale. Il controllo di qualità è molteplice, perché comprende l'analisi della materia prima, 

del prodotto in corso di produzione e finale, l'analisi delle proprietà merceologiche dei prodotti 

naturali e di sintesi e dei prodotti alimentari grezzi e trasformati; quello medico igienico sanitario 

comprende, oltre alle analisi farmacologiche e tossicologiche (che non saranno esaminate in 

questo articolo), l'esame delle sostanze d'interesse alla salute presenti nell'ambiente e negli 

alimenti; quello ambientale riguarda i problemi ecologici dell'inquinamento, lo studio e la difesa 

del suolo, delle acque e dell'atmosfera. 

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 


Tutto ciò richiede la messa a punto di metodi di campionamento specifici per ciascun materiale, che in buona parte sono stati 

normalizzati. Le norme UNI, CEN ISO, ASTM, DIN, BS, EPA, NIOSH, ecc., definiscono le modalità delle operazioni di 

campionamento e le caratteristiche dell'attrezzatura da impiegare per molti materiali. La terminologia utilizzata può variare nei testi 

di campionamento e nelle differenti norme. Nella figura 1 si riportano le definizioni dei termini più comuni e dei relativi sinonimi. 

I mezzi di campionamento appartengono a tre gruppi funzionali: strumenti per il prelevamento primario del campione, sistemi per la 

riduzione del campione globale, recipienti di raccolta e di conservazione. I tipi di attrezzature disponibili sono numerosi, perché 

devono essere in grado di adattarsi alla grande varietà delle proprietà fisiche del materiale da campionare. 

Gli strumenti sono in parte di misura e forma approvata dagli enti di unificazione, sono disegnati in funzione delle proprietà fisiche 

del materiale da prelevare e costruiti con materiali inerti chimicamente nelle parti che vengono a contatto con le sostanze da 

campionare. Nel piano di campionatura ciò va tenuto presente, particolarmente nel caso della determinazione di elementi in tracce. 

Il disegno e le dimensioni degli strumenti raccomandati sono riportati con le norme di campionamento nei metodi ufficiali specifici. 

I campionatori possono essere manuali o a funzionamento automatico. 

Campionatori per solidi 

La diversità di forma, pezzatura, durezza, struttura e omogeneità delle sostanze solide da prelevare richiede una vasta gamma di 

tipi di strumenti per il prelevamento. Il problema maggiore è la disomogeneità del materiale: anche quello apparentemente più 

omogeneo può contenere delle impurezze disperse in modo casuale nella sua massa. Si deve quindi provvedere al prelevamento 

di un congruo numero di campioni primari, mescolarli tra loro per ottenere un campione composito rappresentativo, da cui 

prelevare il campione ridotto. I sistemi di prelevamento e la relativa attrezzatura differiscono innanzitutto a seconda se il materiale 

è un solido compatto oppure granulare o polverulento e dal tipo di contenitore. Si usano sonde trivellatrici per solidi compatti rigidi 

e giacimenti naturali; sonde a tubo aperto per materiali non scorrevoli in sacchi, scatole e altri contenitori perforabili; sonde a tubo 

concentrico per materiali scorrevoli in fusti, serbatoi, barattoli, sacchi e altri recipienti; pale a mano o dispositivi automatici per gli 

stessi materiali su nastri o scivoli trasportatori; campionatori automatici a vite senza fine per gravita o sotto vuoto per condotti di 

convogliamento e di scarico e per tramogge. 

Solidi compatti. Sono una vasta gamma di materiali che hanno una propria forma, che non si adatta al contenitore, e non hanno 

libertà di scorrimento come le sostanze granulari o polverulente. 

Solidi compatti duri. Sono il suolo e i giacimenti naturali, i minerali, le rocce, metalli in lingotto, sostanze fibrose, prodotti semifiniti e 

lavorati in fili, strisce, sbarre, ghiaccio ed alimenti congelati ecc. In questo caso gli attrezzi devono essere resistenti agli sforzi cui 

sono sottoposti e non devono creare problemi di contaminazione dovuti a corrosione o usura. Tra i materiali compatti soffici vi sono 

materie plastiche, gomme, argille e plastiline e molte sostanze alimentari solide (carni, grassi, prodotti da forno, prodotti caseari, 

cioccolato, frutta e verdura fresche e conservate), fibre tessili, in fiocco, filate o tessute. 

LA SICUREZZA 

Questo aspetto è essenziale e va tenuto in considerazione sul piano di campionamento, in quanto la possibilità d'incidenti è 

sempre presente: pertanto i prelevatori devono essere adeguamento addestrati e a conoscenza dei rischi dipendenti dalla natura 

del materiale da campionare, dalla sua collocazione e dall'attrezzatura utilizzata. È dovere quindi del responsabile di prendere le 

misure necessarie, per evitare che i dipendenti possano essere soggetti a danni fisici e infortuni durante le operazioni, dotandoli di 

opportuni indumenti e mezzi protettivi. Da parte loro i prelevatori sono tenuti a svolgere il lavoro con la maggiore attenzione e 

prudenza possibile, rispettando le norme di sicurezza stabilite dal responsabile nel piano di campionamento. 

I rischi dipendenti dal materiale da prelevare devono essere elencati nel piano di campionamento. Alcuni solidi possono prendere 

fuoco per fenomeni di autocombustione; le polveri disperse nell'aria possono essere nocive per inalazione nelle vie respiratorie o 

per ingestione; altre possono esplodere per effetto di scariche elettriche. I liquidi e i loro vapori e i gas possono essere infiammabili 

o tossici. Per quest'ultimi il personale prelevatore deve essere abilitato all'impiego di gas tossici. 

II piano di campionamento deve prevedere l'uso di indumenti e mezzi protettivi personali generali o specifici per il tipo di materiale 

da campionare (maschere antigas, occhiali di sicurezza, tute di protezione, guanti, calzature). 

Il luogo di prelevamento deve essere ventilato e ben illuminato: sul piano di campionamento devono essere specificate le fonti di 

rischio dipendenti dalla localizzazione, compresi i macchinari presenti, le luci scoperte, gli impianti elettrici e le caratteristiche degli 

imballaggi. 


Fig.2 - Trivella per prelevamento del suolo Fig.3 - Campionatori per suolo 

a. scavatrice 

b. lame 

c. scalpello 

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 


Campionamenti manuali 

II campionamento manuale di uso generale richiede attrezzature abbastanza semplici di uso generale o disegnate in funzione delle 

caratteristiche fisiche del materiale. Le strumentazioni applicabili dipendono dalla durezza e compattezza del materiale. 

Martelli da geologo, martelli pneumatici, picconi e pale sono attrezzi utili per campionamenti mineralogici e geopedologici da terreni 

e giacimenti oltre a campionatori a sonda specificamente disegnati. I mezzi di prelevamento più semplici per materiali incoerenti 

(polveri, granuli, cereali ecc.) sono le spatole, i cucchiai, le sessole e le pale di forma e dimensione standardizzata. 

Trivelle e sonde per materiali duri 

Per materiali duri e per il campionamento del suolo e di depositi naturali si usano sonde a trivella 

manuali o motorizzate di diversa forma: la più semplice è la trivella a vite elicoidale con un impugnatura 

a T: per rotazione è introdotta nel suolo fino alla profondità determinata, raccogliendo il terreno per 

raschiamento dall'elica. La trivella della fig. 2 può montare prolunghe per campionamento a diverse 

profondità o essere sostituita da un cilindro cavo per il campionamento di terreni soffici o sabbiosi. 

Altre forme di campionatori per suolo accettati dall'ASTM possono essere a scavatrice, a lame o a 

scalpello. (Fig. 3) 

Questi tipo di dispositivi in generale provvede campioni incrementali sminuzzati e che devono essere 

aggregati nel campione globale. Altri tipi di trivelle meccaniche per materiali molto duri, come rocce, 

argille, calcestruzzo, lingotti di metallo ecc., hanno teste taglienti di diverso disegno e prelevano 

incrementi da 12 a 300 mm di diametro in forma compatta cilindrica. 

I sistemi di trapanazione con trivella elicoidale su cilindro cavo a zone consentono il prelevamento di 

campioni primari a diverse profondità, come il campionatore per carbone della figura 4. 

Per il campionamento di carni e altri alimenti congelati un modello monta su un trapano elettrico un 

rotore a tubo con un'estremità tagliente dentata. Dopo la perforazione del materiale la massa prelevata 

viene ricuperata dal cilindro espellendola mediante un pistone (fig. 5). 

Il rischio maggiore consiste nello sviluppo di calore per l'attrito che può modificare l'umidità o alterare 

sostanze termolabili nel campione. 

Sonde per materiali molli 

Materiali compatti molli (formaggi, burro e altri grassi solidi animali e vegetali, saponi, argille, prodotti 

chimici, farmaceutici e cosmetici) possono essere campionati inserendo nel corpo del materiale una 

sonda a tassello a tubo aperto del tipo della fig. 6, a sezione concava e con la punta affilata, che 

può attraversare un imballaggio o una crosta esterna. Con questo modello, ruotando la sonda, 

conficcata nel materiale, si estrae un campione tronco conico, che viene staccato con una spatola 

e raccolto nel contenitore. 

Alcune sonde sono appositamente disegnate per specifici prodotti. Nella norma UNI 

22001delle NGD3 per il campionamento del burro, si raccomanda la sonda a 

tassello per burro ISO 1193 (fig. 8), indicando i materiali compatibili (acciaio inox, 

alluminio, vetro, materie plastiche) quelli da escludere (rame e sue leghe) e le 

modalità d'impiego, con tutti i dettagli operativi e precauzionali. 

Per formaggi duri, come il grana si usano apposite sonde trivellatrici. Un altro tipo di 

sonda adatta a materiali compatti pastosi è il campionatore a pistone (fig. 7) 

costituito da un tubo con l'estremità affilata, per penetrare attraverso imballi di 

cartone o plastica, entro il quale può scorrere un pistone d'espulsione. Il tubo, che 

viene riempito dal campione penetrando nel corpo del prodotto, viene svuotato sotto 

la spinta del pistone infilato nel suo interno. Basati sul principio dell'aspirazione a 

siringa sono le sonde di prelevamento di materiali altamente viscosi (creme e 

pomate, melasse, salse, detergenti). 

Solidi granulari, in polvere, cereali, granaglie e altri semi 

Questi tipi di materiali possono trovarsi sfusi raccolti in cumuli di diversa altezza e 

dimensione, o in silos o altri depositi, oppure imballati in sacchi, fusti, latte, barattoli, 

scatole ecc.. Le sonde a tubo aperto (fig. 9) sono simili a quelle a tassello e sono il 

Fig.4 - Sonda a trivella per 

campionamento di carbone 

tipo più semplice, costruito in forme differenti per rispondere alle caratteristiche dei diversi materiali e a scomparti per prelevamenti 

a diverse profondità. Sono adatte al campionamento di prodotti confezionati in sacchi o altri imballaggi facilmente perforabili e 

possono essere motorizzate. Un modello, utilizzabile anche per il campionamento di polveri fini (farine, sabbia, cemento), è stato 

accettato per il campionamento del latte in polvere dalle federazioni internazionali lattiero-casearie FIL e IDF. 

Fig.5 - Sonda a cilindro cavo per 

campionamento di alimenti congelati 

Sono prodotte sonde a punta sottile per ridurre al minimo i danni ai sac-chi di polietilene o di carta. Le sonde a tubi concentrici 

sono costituite da due tubi concentrici: l'esterno fisso terminante a punta, reca delle finestre a feritoia longitudinali in 

corrispondenza ai settori trasversali in cui è diviso il tubo interno ruotabile (fig. 10). La sonda viene introdotta nel campione a 

profondità determinata. Si ruota per mezzo della maniglia il tubo interno fino a far corrispondere i suoi scomparti alle finestre del 

tubo esterno, permettendo il loro riempimento da differenti strati del campione. Si richiudono i settori riempiti e si estrae la sonda 

che viene scaricata per riapertura degli scomparti. Sono idonei al campionamento a zone di granaglie, pellet, granulati friabili con 

particelle di dimensione variabile, che tendono a stratificarsi per gravita, soprattutto durante il deposito in silos e altri magazzini, e 

nei mezzi di trasporto. Possono essere di diversa lunghezza (oltre 150 cm) e numero di scomparti (3-5), i quali possono essere 

separati per le analisi chimiche e fisiche o intercomunicanti per quelle microbiologiche. 

Un tipo di sonda cilindrica chiusa è costituita da un cilindro cavo, entro il quale scorre a tenuta un pistone terminante in una zona di 

campionamento compresa tra la tenuta superiore e una punta conica. Il meccanismo di funzionamento è schematizzato nella fig. 

11. L'apparecchio in acciaio inox è smontabile per la pulizia ed è adatto a prodotti granulari e in polvere farmaceutici, cosmetici, 

detergenti, alimentari sfusi e confezionati, e permette un prelevamento senza inceppamenti. Basata sul principio della vite 


. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 


d'Archimede è una sonda motorizzata per il prelevamento di granuli e polveri (fig. 12). Un albero rotante con vite senza fine è 

inserito in un tubo con un braccio laterale di scarico, cui viene applicato il recipiente di raccolta del campione. 

Il procedimento inverso, rispetto alle sonde a penetrazione, è applicato nel campionatore multilivello della fig. 13, per il 

prelevamento di capsule, pillole, confetti, pasticche, dolciumi, granuli ed altri materiali scorrevoli. Il campionatore costituito da un 

tubo prismatico con una serie di feritoie a tasca sporgente lungo l'intera altezza, viene appoggiato lungo la parete del recipiente 

entro il quale viene scaricato il prodotto da campionare: 

attraverso le tasche di raccolta il corpo prismatico, del campionatore viene rapidamente riempito dal prodotto. 

Campionamenti di superficie per analisi microbiologiche 

Le tecniche di campionamento per la valutazione delle condizioni igieniche microbiologiche di superfici sono basate su 

prelevamenti per "contatto" con piastre a contatto e da "striscio" con tampone. Per superfici ampie si usa il metodo della spugna 

"spenge bag test" che consiste di una spugna atossica contenuta in sacchetto a chiusura ermetica, che viene strofinata sulla 

superficie del prodotto per l'esame di germi patogeni superficiali. Il campione omogeneizzato in "Stomacker" può essere analizzato 

in 5 minuti con un reattivo bioluminescente. Il procedimento con piastra di contatto è stato utilizzato per un campionatore 

elettronico, in cui la durata del contatto è programmata con segnalazione acustica al termine. Per carcasse animali e grandi pezzi 

di carne, è disponibile un campionatore automatico di superficie (fig. 14) costituito da una testa campionatrice montata su una 

pistola spray, che viene premuta sulla superficie del prodotto. La pistola aspira dal serbatoio il diluente sterile, che viene spruzzato 

sulla superficie campionata. Tutti i microorganismi presenti sono catturati e trasportati nel sacchetto sterile di raccolta. 

Prelevamenti meccanici da grandi masse e automatico 

Nei campionamenti di grandi quantità di materiali in cumulo si può ricorrere a benne sospese a gru azionate a intervalli durante il 

carico e lo scarico, oppure a scavatrici meccaniche. Il principio dei campionatori automatici è quello di prelevare incrementi in 

continuità a intervalli regolari. Il loro disegno è basato generalmente sulla simulazione del campionamento manuale e sui sistemi 

ripartitori di riduzione, ma in scala maggiore. Il loro impiego sta diventando popolare, anche se devono periodicamente essere 

tarati, perché sono facilmente soggetti a "bias". 

Molti sistemi automatici in continuo sono d'applicazione industriale e sono tecniche progettate in funzione degli impianti. 

Ripartitori per nastri trasportatori. Nel ripartitore a rotazione il tagliatore è costituito da un tubo rotante verticalmente munito di una 

feritoia laterale con scivolo sporgente che raccoglie periodicamente il flusso del materiale che cade dall'estremità del convogliatore. 

Variando la velocità del motore si può variare il numero degli incrementi, ma non la loro dimensione. 

Invece il ripartitore a discesa diretta consta di uno scivolo rettangolare che rimane fuori del flusso del campione quando è in riposo. 

I bordi del tagliatore sono posti paralleli alla corrente di caduta del materiale, che può essere raccolto a tempi e in quantità 

regolabili. Nel campionatore a nastro fessurato, il materiale fluisce nel sottostante raccoglitore attraverso delle fessure incise nel 

nastro trasportatore. Campionatori trasversali sui convogliatori, è l'automazione del sistema manuale di fermare il nastro 

trasportatore e di prelevare con una pala o sessola il campione da un'area delimitata del nastro. Nel sistema automatico una testa 

meccanica si muove attraverso il flusso del materiale a intervalli prestabiliti e trasferisce il campione nel recipiente di raccolta, per 

mezzo di una vite senza fine. 

Fig.6 - Sonda a tassello a sezione tronco conica Fig.7 - Campionatore a pistone per solidi pastosi 

Campionatori per gravita. Il tipo a coclea consiste di un tubo fessurato rotante inserito nella massa fluente da cui il campione viene 

prelevato in continuo da una vite senza fine. 

Nel campionatore pneumatico a bassa pressione il materiale viene aspirato nel tubo applicando un leggero vuoto. 

Nel campionatore a deflettere un deflettere si muove periodicamente attraverso il flusso del campione deviandolo verso il 

recipiente di raccolta. 

Attrezzature per la riduzione del campione 

Le operazioni di riduzione del campione si eseguono quando il campione globale prelevato è molto grande. Il procedimento più 

comune per i solidi incoerenti e scorrevoli è detto quartatura: il campione composito ben miscelato viene fatto cadere su un piano 

liscio e pulito dall'alto in modo formare un cumulo conico, che poi viene appiattito in strato sottile. Si divide in quattro parti lo strato 

tracciando con una spatola due solchi perpendicolari o servendosi del divisore a croce (fig. 15). Si prelevano i due quarti opposti, 

che vengono mescolati intimamente, e nuovamente quartati, se necessario, fino a raggiungere una quantità di campione 

sufficiente per il laboratorio. La riduzione può essere fatta con divisori meccanici, noti anche come ripartitori o quartatori (anche se 

provvedono a divisioni maggiori), già descritti in un precedente articolo. 


. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 


CAMPIONAMENTO DI LIQUIDI 

Anche nel campionamento dei liquidi, si deve fare una prima fondamentale distinzione: il campionamento da effettuare in ambiente 

naturale o comunque aperto (fiumi, laghi, corsi d'acqua, canali aperti di scarico) e quello da compiere su contenitori chiusi. 

Nel caso di recipienti di piccole dimensioni (bottiglie, barattoli, lattine, cartoni per bevande, oli alimentari e minerali, detergenti e 

altri prodotti per la casa, cosmetici, pitture, ecc. si prelevano le confezioni tal quali con i criteri già citati. In tutti gli altri casi il 

sistema di campionamento deve essere adeguato al tipo di liquido e di ambiente da campionare, in modo che il campione per il 

laboratorio sia sufficientemente rappresentativo. A questo si aggiunge che spesso i liquidi presentano sospensioni o precipitati, 

oppure, come avviene nella maggior parte dei casi, il sistema non è omogeneo, in quanto stratificato oppure composto da più 

liquidi immiscibili. Tutte queste considerazioni hanno portato i vari operatori a disegnare strumenti di campionamento "ad hoc" per 

il problema loro specifico, con la conseguente difficoltà nella standardizzazione dei metodi di raccolta. Questa rassegna si 

dedicherà ai sistemi commerciali, che coprono però solo alcune casistiche di matrici più frequentemente analizzate, molti dei quali 

recepiti nei metodi ufficiali dei diversi enti. 

Campionatori da liquidi in recipienti chiusi 

II sistema più semplice è ovviamente l'uso di una bottiglia legata ad 

una zavorra di piombo o acciaio, o ad un'asta per immersione, dotata 

di un sistema molto semplice, che permette di sollevare e 

riposizionare il tappo della bottiglia una volta che questa abbia 

raggiunto la posizione ideale di campionamento (fig. 16). Queste 

bottiglie, costruibili in casa, sono sor-rette in genere da una struttura 

metallica che può essere calata con un argano. La possibilità di agire 

sul tappo permette di campionare alla quota: se il tappo viene lasciato 

aperto durante la risalita, si può ottenere un campione integrato sulla 

colonna, avendo cura di far salire la bottiglia ad una velocità tale che 

essa risulti piena per tre quarti quando raggiunge la superficie. 

Per campionare il fondo di un recipiente si utilizzano delle bottiglie 

cilindriche dotate di una leva che agisce sulla valvola di apertura 

quando la bottiglia colpisce il fondo del recipiente da campionare. La 

valvola si richiude automaticamente nel momento che si tira in 

superficie la bottiglia (fig. 17). 

Per campionare da piccoli serbatoi, o dagli strati superficiali, si 

utilizzano sonde dette dipper, costituite da un'asta collegata ad un 

piccolo cestello. Muovendo manualmente l'asta, si agisce su una 

valvola di chiusura posizionata al fondo del cestello. Agendo sulla 

valvola si ottiene sia il riempimento del cestello nel contenitore da 

analizzare, sia il trasferimento del campione prelevato nei recipienti di 

raccolta senza che il campione venga toccato con qualche altro 

oggetto fino all'analisi. Questa sonda può essere dotata di un disco 

perforato che, mosso verticalmente, produce un'efficace miscelazione 

del liquido (Fig. 18) ed è particolarmente indicata per i campionamenti 

delle creme, del latte e di liquidi mediamente viscosi. 

Per liquidi viscosi è preferibile utilizzare una siringa con un ago di 

diametro grande, particolarmente utile quando si campioni da piccole aperture. 

Queste siringhe possono essere fatte in modo che il pistone metallico e il cilindro 

di vetro abbiano lo stesso coefficiente di dilatazione termica, in modo che 

possano essere sterilizzate in autoclave (fig. 19) 

Campionamento da ambienti naturali 

Nel campionamento di ambienti naturali (fiumi, laghi, mare), sono stati 

utilizzati i dispositivi più vari, a seconda anche del tipo di analisi da 

effettuare (fisica, chimica o biologica) e del tipo di problema scientifico da 

affrontare. È stata pubblicata recentemente una esauriente rassegna, 

nella quale sono stati evidenziati prestazioni, limiti e difetti delle differenti 

attrezzature. Questa rassegna, che presenta e confronta dispositivi 

commerciali e costruiti in casa, mette bene in luce i requisiti da valutare, 

per operare una scelta adeguata alle proprie esigenze. Un parametro 

importante è la profondità, a cui può operare un campionatore, spesso 

dipendente dal tipo di materiale con cui è costruito. I problemi principali 

che possono dare i campionatori sono l'impossibilità di recuperare 

interamente il campione d'acqua prelevato (ad esempio per la presenza di 

volumi morti) o il rischio di contaminazione. Il requisito essenziale per un 

campionatore è di raccogliere un campione realmente significativo 

dell'acqua alla profondità di campionamento e di portarlo in superficie 

inalterato. Lo strumento di raccolta necessita perciò di un sistema di 

riempimento rapido e di una perfetta chiusura ermetica durante il 

recupero. L'interno del campionatore deve essere inoltre resistente alla 

corrosione. Altro requisito utile è la leggerezza dell'apparato per garantire 

una facile manovrabilità. Per tutti questi motivi quindi si deve prestare 

molta attenzione alla scelta del materiale: il materiale ottimale deve 

essere leggero, resistente ad elevate pressioni, non corrodibile e tale da 

non rilasciare interferenti nel campione. Per anni i materiali più comuni 


Fig. 8 - Schema di sonda a tassello per burro 

ISO 1193 applicabile a grassi concreti 

(Norme Grassi e Derivati – NGD) 

Fig. 9 - Esempi di sonde aperte (a,c) 

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . e di . sessola . . . (b) . (NDG) . . . . . . . . . . 


sono stati il vetro e l'acciaio, mentre ora si sta diffondendo l'uso di materiali plastici di grande resistenza, inerzia, lavorabilità e 

leggerezza, quali teflon, resine acriliche, policarbonato. Ciascun materiale ha però delle limitazioni. Il PVC ed il teflon possono 

rilasciare metalli; il policarbonato, materiale col rilascio chimico minimo, non può essere lavato con acidi minerali concentrati; il 

teflon, per certi versi ideale per la sua inerzia e stabilità, è però molto costoso e di limitata resistenza meccanica per lavorare ad 

elevate profondità. Il contenitore non è l'unica causa di contaminazione, ma bisogna tenere conto anche del cavo, meglio quindi se 

in kevlar, e del peso-guida, possibilmente ricoperto di resina epossidica. Un ulteriore problema da esaminare nella scelta del 

materiale del contenitore, è la possibilità di reazioni od adsorbimenti irreversibili da parte della parete del contenitore: è quindi 

molto utile usare bottiglie con le pareti interne rivestite di nylon o di teflon, molto stabili ed inerti. Il "bailer" è un campionatore, di 

solito monouso, per il prelevamento da pozzi di piccolo diametro: è formato da un lungo cilindro in polipropilene o teflon con una 

valvola a sfera, che viene calato nel pozzo sospeso ad un cavo. L'acqua raccolta viene scaricata nel recipiente di raccolta 

premendo con la mano la valvola (fig. 20). 

Per raccogliere campioni d'acqua anche in profondità, e non solo alla superficie dei corpi idrici, i campionatori devono essere dotati 

di un sistema di chiusura ed apertura alla profondità voluta. Il modello base di questo tipo di campionatori è la classica bottiglia 

Niskin a strappo (Fig. 21). Questa bottiglia cilindrica viene calata aperta fino alla profondità voluta. A questo punto, un semplice 

strappo, dato dall'operatore al cavo, sgancia un messaggero metallico che fa chiudere ermeticamente la bottiglia. Il principale 

requisito di un campionatore è infatti la capacità di raccogliere campioni realmente rappresentativi della profondità e della zona 

prescelta. Una prima notevole limitazione è il fatto che nella maggior parte dei casi il malfunzionamento dei meccanismi di chiusura 

non può essere rilevato dall'operatore. È stato perciò proposto di dotare il meccanismo di chiusura di un fusibile, che rilevi 

anomalie nei sistemi di chiusura, oppure di valvole attivate elettricamente o per mezzo di segnali acustici. Di questo tipo di 

campionatori d'acqua per usi generici è stato progettato un numero svariato di modelli, che in genere vengono costruiti in casa 

dagli operatori stessi sulla base di schemi classici rintracciabili in letteratura. Ad esempio la classica bottiglia Van Doni (fig. 22) è 

costituita da un cilindro che viene chiuso da due semisfere in gomma quando il messaggero rilascia l'elastico che le collega. 

Nelle cosiddette bottiglie a rovesciamento (Nansen, Knudsen, Ekman, Richard) la bottiglia si chiude per un movimento di rotazione 

del corpo metallico, innescato dall'arrivo di un messaggero su di un apposito sistema di sgancio. La bottiglia Nansen si presta a 

campionamenti ad elevate profondità (fino a 6100 m) in quanto è costituita da un cilindro in ottone, con capacità di 1,3 1, con 

valvole di chiusura in bronzo. L'interno può essere rivestito in teflon e l'esterno in stagno. Con opportune modifiche tali bottiglie 

possono essere usate anche per raccogliere campioni in prossimità del fondo. I modelli base di questi campionatori sono 

commercialmente disponibili insieme ad altri campionatori per applicazioni particolari: ad esempio è in vendita una bottiglia 

Kitahara realizzata in materiale plastico per campionamenti di superficie; il suo lento meccanismo di chiusura minimizza il disturbo 

arrecato all'acqua durante l'immersione ed il prelievo. Essa è dotata di un termometro all'interno ed il sistema di chiusura è attivato 

da un messaggero meccanico; il drenaggio del campione viene effettuato mediante un rubinetto posto sul fondo della bottiglia. Il 

campionatore Mercos è partico-larmente indicato per eliminare i problemi di adsorbimento superficiale: esso è costituito da una 

coppia di bottiglie in Teflon sorrette da un supporto, con un tappo modificato per ospitare un tubo di gomma al silicone, tenuto 

piegato (nella posizione di chiuso) durante la discesa e rilasciato da un messaggero al momento del prelievo. La colonna d'acqua 

che rimane nel tubo fa da barriera di protezione da contaminazioni durante la risalita. Il vantaggio di questo tipo di campionatore è 

quello che, dopo il recupero, le bottiglie possono esser chiuse con 


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La Food and Drug Administration USA raccomanda che per la determinazione di pesticidi in 

alimenti quali nocciole, semi oleosi, granaglie, che sono costituiti da piccole unità individuali, si 

applichino i processi di “ammasso conico” (coning) e di “suddivisione in quarti” (quartering) per 

giungere al campione vero e proprio costituito da 2000 g. 

Ammasso conico e suddivisione in quarti 

La procedura da seguire per il “coning” ed il 

“quartering” è illustrata nella Figura 1. 

Metodo 

Esso consiste nel distribuire il campione su una 

superficie pulita, come ad esempio un foglio di 

carta robusta di circa 100x100 cm, facendo poi 

seguire mescolamento(1), ammassamento 

conico(2), suddivione in quarti(3), eliminazione 

dei quarti opposti(4). 

1. Mescolamento 

Sollevare l’angolo A 10/12 cm sopra B. Ciò fa 

rotolare la parte di campione sottostante sulla 

particelle di maggior dimensione e le particelle 

minori che si trovano nella parte più bassa si 

mescolano con la parte rimanente del campione. Ciò e molto importante perchè sono proprio le 

particelle più piccole che contengono i residui di pesticidi od altri analiti. 

Bisogna fare attenzione a non sollevare eccessivamente l’angolo perchè ciò farebbe 

semplicemente scivolare il campione senza provocare il mescolamento. 

Ripetere la stessa operazione con gli altri angoli: C su D, B su A, D su C da cinque ad otto volte o 

sino a quando si ritiene di aver raggiunto lo scopo. 

2. Ammassamento conico 

Manovrare il campione sino ad ottenere un cono al centro del foglio di 

carta. 

3. Suddivisione in quarti 

Utilizzando il dispositivo a croce “Quarter” suddividere dall’alto il cono in 

4 settori uguali distendendo il campione dal centro verso la periferia. 

4. Eliminazione dei quarti opposti 

Due quarti opposti sono eliminati. Gli altri due quarti sono riuniti ed il 

procedimento ripetuto sino a raggiungere il quantitativo di campione 

desiderato. 

Ulteriori raccomandazioni della FDA 

Il campione di 2000 g dovrebbe essere ben mescolato ed ulteriormente ridotto a 500 g. 

Il procedimento indicato e’ valido SOLO per piccole unità individuali quali nocciole, sementi, 

granaglie e richiede che ad ogni fase di riduzione delle dimensioni del campione si proceda ad 

una attento ed accurato mescolamento. 

Riferimenti 

Clifton Meloan:Pesticides Laboratory Training Manual - Kansas State University - USA 

FDA: Pesticide Analytical Manual, Volume 1, 3rd Ed. (1994). Sect. 102. 

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La riduzione di campioni solidi non alimentari, in particolare terreno e 

campioni ambientali per la ricerca di pesticidi può essere fatta con uno 

strumento chiamato “Splitter”. 

Lo sdoppiatore di campioni 

Lo strumento è costituito da diverse camere di raccolta del campione 

parallele, con uscite sfalsate su due lati. 

Il campione viene alimentato dall’alto e lasciato cadere in modo costante 

ed uniforme sulle camere di raccolta: si formano così due sub-campioni 

che possono eventualmente essere risdoppiati se il quantitativo è ancora 

eccessivo. 

Al termine uno dei due sub-campioni viene eliminato e l’altro utilizzato per le successive fasi 

analitiche. 

Raffronto tra tre diversi metodi di preparazione di campioni in polvere o granulari 

I campioni di prodotti in polvere o di granulati sono più rappresentativi, con deviazioni quantitative 

dal valore medio più ridotte, quando sono approntati con lo “Splitter”. 

Il grafico illustra quantitativamente la migliore rappresentatività del campione utilizzando lo 

“Splitter” rispetto ad una preparazione del campione eseguita direttamente dalla massa senza 

alcun criterio o con il metodo della crocera (“quartieraggio”). 

A = Nessuna preparazione del campione: ± 10% 

B = Preparazione del campione con il metodo a crocera: ± 5,5% 

C = Preparazione del campione con lo “Splitter”: ± 3,5% 

9% 

8% 

7% 

6% 

5% 

4% 

3% 

2% 

1% 

C 

B 

Deviazione % quantitativa dal valore medio 

Riferimenti 

Clifton Meloan: Pesticides Laboratory Training Manual - Kansas State University - USA 

A 

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Nel caso si verifichi una emergenza igienica, è importante disporre di adeguati strumenti di 

campionamento che siano immediatamente utilizzabili. Quindi ogni Squadra Operativa di Pronto 

Intervento dovrà avere a disposizione il seguente materiale: 

I mezzi di emergenza igienica 

Valigetta con mezzi di campionamento per alimenti, acqua, superfici, 

surgelati 

- “Nutrimenta Sampling Collection” , Kit Campionamento alimenti 

- “Soil Probe” , Campionatore di terreno 

- “Mare Lacus” , Campionatore per liquidi 

- “Glass Sampler” , Campionatore per liquidi 

Sonda a cucchiaio per prelievi in profondità 

- “Ellipso”, Campionatore per polveri e granulati 

Prelievi sterili 

- “Surgloves” , Guanti monouso in lattice 

- “Presto-Chiuso”, Sacchetti per campionamento 

- “Square” , Flaconi in plastica 

- “Tiosol-Stand-Up” , Sacchetto campionamento acque clorate 

- “Tio-Square New” , Flacone per campionamento acque clorate 

- “Forpin” , Pinzette 

- “Bolla” , Pipetta tarata 

Campionatore microbiologico d’aria 

- “SAS Super ISO” , Campionatore microbiologico d’aria 

Flambatore 

- “Firegas” , Flambatore a pistola 

Termometro 

- “Zanzibar” , Termometro digitale 

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Il metodo più usato per valutare i microrganismi nella carne è conosciuto con varie 

denominazioni: 

1) conta aerobica totale (APC); 

2) conta dei germi vitali (TVC); 

3) conta dei germi aerobici totali (AMC) o Standard Plate Count SPC. 

Tutti i metodi misurano il numero dei germi vivi su una determinata porzione di carne. 

Le dizioni n.1 e n.3 sono quelle corrette perché indicano i germi deterioranti. 

Usando terreni appositi si possono contare poi lieviti e muffe (ifomiceti), i germi lattici, i coliformi e 

gli stafilococchi. Per il conteggio si possono poi usare altre tecniche alternative quali la DMC, la 

DEFT e la fluorescenza. 

Campionamento 

Le prove per assicurare la qualità microbiologica di un alimento devono essere eseguite secondo 

un prescelto piano di campionamento basato sul pericolo potenziale rappresentato dall'alimento 

che si esamina. 

L'International Commission on Microbiological Specifications for Food (ICMSF) ha diviso gli 

elementi in 15 casi a seconda del rischio che aumenta da 1 a 15. 

La carne, sia refrigerata che congelata, che deve essere cotta prima dell'uso, rappresenta il 

rischio minore di tutti (caso 1), mentre se è cotta può essere considerata nel caso 8, ad esempio. 

A seconda del rischio potenziale per il consumatore è stato stabilito un piano di campionamento 

per ogni lotto. Un lotto è una quantità di alimento prodotta e manipolata in condizioni uniformi. 


Vengono indicati: il numero di campioni da esaminare (n), un valore minimo (m) e uno massimo 

(M) di carica microbica (totale o di indicatori) e il numero massimo di campioni (c) che può avere 

cariche microbiche comprese tra m ed M. Un piano di questo tipo viene denominato “a 3 classi” 

perché i campioni esaminati, sulla base delle cariche microbiche riscontrate, possono essere 

ripartiti in 3 diverse classi, di cui una con valori inferiori o uguali a m, una con valori compresi tra 

m ed M e una con valori uguali a M. Si portano qui ad esempio le caratteristiche microbiologiche 

previste per i prodotti di soia dal D.M, del 18 luglio 1979. il piano prevede, per la carica batterica 

totale (batteri aerobi mesofili per g di prodotto): n = 5; c = 3, m = 10 5 , M = 10 7 . 

Questo significa che da ogni lotto in esame devono essere analizzati 5 campioni (prelevati a 

caso). Se tutti e 5 i campioni risultano avere cariche microbiche uguali o inferiori a m (105), il 

lotto viene accettato. Se 2 campioni hanno cariche microbiche uguali o inferiori a m (105) e 3 

campioni (c = 3) hanno cariche comprese tra m (10 5 ) ed M (10 7 ), il lotto può ancora essere 

accettato. Se più di 3 campioni hanno cariche comprese tra m ed M, il lotto deve essere rifiutato, 

come del resto, se anche un solo campione ha una carica superiore a M. Analogamente è da 

interpretare il piano previsto per i coliformi fecali (n 5; c = 2, m =10; M = 10 2 ). 

Con altre parole questi criteri danno luogo a tre possibili classi di contaminazione microbica: 

1) campione con conte inferiori a m 

2) campione con conte comprese tra m e M 

3) campione con conte superiori a M 

Questo schema è denominato piano di campionamento a 3 classi ed è usato per i vari tipi di 

carne perché esso si basa sulla conosciuta variabilità del numero di germi presenti nella carne 

cruda che permettono a un certo numero di campioni di essere compresi tra m e M. 

Nella tabella 17 è indicato come il piano di campionamento può essere utilizzato. 

Per esempio per una carne prima della refrigerazione n = 5; m = 10 5 ufc/g o cm 2 , c = 3, M = 10 6 

ufc/g o cm 2 . 

Per prendere decisioni sulla qualità (accettabilità) di un prodotto carneo ci si può basare sui criteri 

seguenti: 

- standard microbiologico è una parte costitutiva di una legge o di altro provvedimento legislativo 

equivalente che ha carattere ingiuntivo e prescrive il numero massimo di microrganismi che può 

essere tollerato in un campione di alimento o il numero massimo di campioni di alimento nel 

quale può essere tollerata la presenza di un determinato microrganismo 

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 


- una specificazione microbiologica di fine produzione è un criterio consultivo correlato con un codice di GMP. Con questa 

definizione si indica il numero di microrganismi che si dovrebbe trovare normalmente in un manufatto che sia stato prodotto 

secondo il codice o le norme igieniche fissate al momento della produzione e anche, successivamente, durante la sua 

commercializzazione o al momento della sua esportazione/importazione 

- una linea guida microbiologica è un criterio consultivo, il cui obbiettivo principale è di “guidare” i produttori e gli ispettori nella 

valutazione della qualità microbiologica delle materie prime e dei semilavorati, nonché nella scelta delle eventuali misure correttive 

da prendere. 

Esempi di limiti batteriologici 

L'uso comune di fissare dei limiti ben definiti senza controllare la loro rispondenza o meno a valori ottenibili nelle condizioni 

pratiche seguendo buone norme di igiene è un concetto completamente errato. 

I limiti devono essere fissati sulla base della conoscenza della situazione batteriologica del prodotto in funzione delle tecnologie di 

produzione e delle modalità di distribuzione e di consumo. 

ESEMPI DI SPECIFICAZIONI MICROBIOLOGICHE USATE NELL'INDUSTRIA 

Carne refrigerata destinata a ulteriori lavorazioni - Conta totale 

Livello A (0, 001 x 10 6 ) 1x10 3 fino a 999 

Livello B (0,01 X 10 6 ) 1x10 4 fino a 99 999 

Livello C (0, 1 X 10 6 ) 1x10 5 fino a 999 999 

Livello D (1 x 10 6 ) 1x10 6 fino a 9 999 999 

Livello E (10 X 10 6 ) 1x10 7 fino a 99 999 999 

Livello F (100 x 10 6 ) 1x10 8 fino a 999 999 999 

Livello G (1000 x I0 6 ) 1x10 9 o più 

Livello massimo accettabile per carne, mezzena e quarti = D 

Livello massimo accettabile per carne trita = E, 

Carne congelata (limiti batteriologici/cm 2 ) 

m M c/n (x) 

Carica mesofila 1x10 6 5x10 6 2/5 

lfomiceti e lieviti 1x10 4 1x10 4 2/5 

Enterobacteriaceae 1x10 4 

5x10 4 3/5 

Streptococchi fecali 8x10 3 

4x10 4 

Clostridi solfitoriduttori 30 1.5x10 2 1/5 

Staphylococcus aureus 1x10 2 5x10 2 2/5 

Salmonella assente 

Criterio secondo Socopa (1995) per quarti bovini (u.f.c./cm 2 ) 

Conforme Soddisfacente Accettabile Non conforme 

Flora mesofila totale 180.000 300.000 1.000.000 > 1.000.000 

S. aureus 50 150 500 500 

Coliformi termotolleranti (43°C) 100 300 1.000 1.000 

Enterobatteri 500 1.500 5.000 5.000 

Salmonella assenza presenza 

Riferimenti 

Controlli igienico-sanitari sulle carni: situazione attuale e prospettive future - Rassegna a cura di Carlo Cantoni - Ingegneria 

Alimentare 4/97 - pag.29/34 - 1997 


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Le Direttive CEE, O.M.S., ICMSF riprese dalla Legislazione Italiana fanno riferimento al Piano a Tre 

Classi nella definizione dei criteri microbiologici per la valutazione degli alimenti. 

Il Piano a Tre Classi 

Il Piano a Tre Classi considera tre fasce di valutazione: 

1. “Qualità accettabile” 

con un contenuto microbico inferiore ad un valore definito con “m” UFC per g o ml di prodotto. 

2. “Qualità marginale” 

quando viene superato il valore “m”, ma il grado di contaminazione microbica non raggiunge la soglia 

“M” 

3. “Qualità inaccettabile” 

quando i valori sono superiori a “M”. 

n = numero di unità campionarie di cui si compone il campione 

m = valore limite del numero di microrganismi ammesso per “qualità accettabile”. 

Il risultato è considerato soddisfacente se tutte le unità campionarie hanno un numero di 

microrganismi inferiore o uguale a “m”. 

M = Valore massimo del numero di microrganismi ammesso per la “qualità marginale”. 

Il risultato è considerato insoddisfacente se una o più unità campionarie hanno un numero di 

microrganismi uguale o superiore a “M”; 

c = numero di unità campionarie il cui numero di microrganismi compreso tra “m” ed “M” è ammesso per 

la “qualità marginale”. Il campione è considerato ancora accettabile se le unità campionarie hanno 

un numero di microrganismi inferiore od uguale a “m”. 

Suddivisione dei microrganismi 

I microrganismi presenti negli alimenti sono suddivisi in: 

- Germi patogeni (Salmonella spp, Listeria monocytogenes) 

“non devono essere presenti in quantità tali da nuocere alla salute dei consumatori”. 

- Germi testimoni di carenza igienica (Staphylococcus aureus, Escherichia coli) 

“il superamento dei limiti indicati dal legislatore deve comportare una revisione dei procedimenti di 

sorveglianza e di controllo dei punti critici dell’ HACCP”. 

- Germi indicatori di correttezza funzionale dello stabilimento (Coliformi, Carica Batterica Totale) 

“per L’applicazione del sistema e della procedura di autocontrollo della fabbricazione”. 

Limiti Microbiologici di Accettabilità 

- Carne 

- Pesce 

- Prodotti a base di uova 

- Molluschi 

- Surgelati 

- Vegetali e Frutta 

- Latte 

- Burro 

- Formaggi 

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CARNE 

Carne macinata (inferiore a 100 g) 

Aerobi 

mesofili/g 

E.coli/g St.aureus/g Anaerobi 

solfito/rid/g 

Salmonella 

spp/25 g 

L.monocy 

togenes/g 

n 5 5 5 5 5 3 

c 2 1 1 1 0 2 

m 5x10 5 

50 10 10 0 11 

M 5x10 6 

5x10 2 

5x10 2 

10 2 

0 110 

Carne macinata 

n 5 5 5 - 5 in 10 g 3 

c 2 2 2 - 0 in 10 g 2 

m 5x10 5 

50 10 2 

- 0 in 10 g 11 

M 5x10 6 

5x10 2 

10 3 

- 0 in 10 g 110 

Preparazioni carni 

n - 5 5 - 5 in 5 g 3 

c - 2 1 - 0 in 1 g 2 

m - 5x10 2 

5x10 2 

- 0 in 1 g 11 

M - 5x10 3 

5x10 3 

- 0 in 1 g 110 

PESCE 

Coliformi 

Lieviti e 

Muffe 

Vibrio Para 

haem.25/g 

Pesce fresco 

n 3 3 3 - 3 3 3 

c 1 1 1 - 0 2 0 

m 5x10 5 

30 10 - 0 11 0 

M 5x10 6 

300 10 2 

- 0 110 0 

Pesce congelato 

n 3 3 3 - 3 5 

c 1 1 1 - 0 3 

m 5x10 4 

SURGELATI 

Alimenti precucinati 

n 

c 

m 

M 3x10 5 

Patate fritte surgelate 

n 5 5 5 5 5 

c 2 2 0 3 2 

m 10 4 

10 0 11 10 

M 10 5 

10 2 

0 110 5x10 2 

Vegetali grigliati surgelati pronti per il consumo 

n 5 5 5 5 5 

c 0 3 

m 0 11 

M 3x10 5 

10 0 110 10 3 

Frutta surgelata 

n 5 5 5 5 5 5 

c 2 2 0 3 2 2 

m 10 5 

10 0 11 10 2 

M 10 6 

10 2 

0 110 10 3 

LATTE 

Latte crudo bovino 

n 5 5 5 5 

c 5 2 0 0 

m 100 0 0 

M 5x10 4 

500 0 0 

Latte pastorizzato 

n 5 (21°C) 5 5 5 

c 1 0 0 1 

m 5x10 4 

0 0 0 

M 5x10 5 

0 0 5 

Latte UHT e sterilizzato 

Aerobi 

mesofili/g 

E.coli/g St.aureus/g Anaerobi 

solfito/rid/g 

Salmonella 

spp/25 g 

L.monocy 

togenes/g 

Coliformi 

n 5 

c 1 

m 0 

M 100 

Latte in polvere 

n 5 10 5 5 

c 2 0 0 2 

m 10 0 0 0 

M 100 0 0 10 

Gelati a base di latte 

n 5 5/ 5/ 5/1 g 5 

c 2 2 0 0 2 

m 100x10 3 

10 0 0 10 

M 500x10 3 

100 0 0 100 

BURRO 

n 5 / 5/ 5 

c 0 0 2 

m 0 0 0 

M 0 0 10 

FORMAGGI 

Formaggi a pasta molle con latte trattato termicamente 

n - 5 5 - 5 5 

c - 2 2 - 0 0 

m - 10 2 

10 3 

- 0 0 

M - 10 3 

10 4 

- 0 0 

Formaggi freschi 

n 5 5 5 

c 2 0 0 

m 10 0 0 

M 100 0 0 


10 3 

10 4 

Lieviti e 

Muffe 

Vibrio Para 

haem.25/g 

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 


Formaggi a pasta dura 

n 5 5 

c 0 0 

m 0 0 

M 0 0 

Formaggi tipo grana 

n 5 5 5 5 

c 2 2 0 0 

m 10 4 

10 3 

0 0 

M 10 5 

10 4 

0 0 

Riferimenti 

G.U. 291 del 13.12.1993 

Direttiva 92/46/CEE 


D.L. 531 del 30.12.1992 

D.L.n.65 del 4.2.1993 G.U. n.64 del 18.3.1993 

Circ.M.S. n 32 del 3.8.1985 

Circ.M.S. n.81 del 21.9.1978 

D.P.R. 54/97 per latte e prodotti a base di latte 

D.P.R. n. 227 del 1.3.1992 


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I prodotti da campionare non omogenei possono essere soggetti al cosidetto “errore di 

campionamento” che può portare a valori di media e/o deviazione standard differenti dalla massa 

campionata. 

L’errore di campionamento può essere influenzato da: 

(i) costruzione del mezzo di prelievo, 

(ii) tecnica di prelievo, 

(iii) proprietà fisiche e chimiche intrinseche della massa da campionare. 

Costruzione del mezzo di prelievo 

Il mezzo di prelievo deve, quando esistono, fare riferimento a specifiche indicate da autorità o 

pubblicazioni ufficiali. In caso contrario ci si deve affidare alla propria esperienza od a fabbricanti 

specializzati e riconosciuti di provata affidabilità. 

Tecnica di prelievo 

La tecnica di campionamento (il modo in cui vengono impiegati i mezzi di campionamento) può 

avere un profondo impatto sugli errori di campionamento. E’ indispensabile che la Procedura 

Operativa Standard (POS) descriva molto dettagliatamente la manipolazione del mezzo di 

campionamento impiegato dall’operatore e sia accompagnata da schemi e figure ben 

comprensibili. 

Un esempio tipico è dato dal campionamento di polveri fini nel settore farmaceutico. 

Usando una sonda a settori si possono ottenere campioni tra di loro non omogenei se nella POS 

non si precisa: 

A. Come la sonda deve essere introdotta nella massa da campionare: movimento dolce, violento 

od in rotazione? 

B. L’angolatura con cui la sonda deve penetrare la superficie del prodotto da campionare: 

verticale o 45°? 

C. Con una angolatura acuta, come le camere di prelievo della sonda devono essere orientate: 

verso il basso (ore 6:00), verso l’alto (ore 12:00), o valori intermedi (ore 3:00)? 

D: A quale profondità la sonda deve essere immersa nella massa da campionare? 

Proprietà fisiche e chimiche della massa da campionare 

I fattori finali che possono influenzare l’errore di campionamento sono le proprietà fisiche e 

chimiche del prodotto da campionare. 

Sono da prendere in considerazione, per adottare le opportune contromisure, la compattezza 

della massa, la tendenza del prodotto ad aderire alla superficie del campionatore, la 

stratificazione, la distribuzione delle particelle, la temperatura della massa, etc. 

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 


Riferimenti 

1. K.W. Carley-Macauly and M.B. Donald "The Mixing of Solids in Tumbling Mixers-I," Chemical Engineering Science, V. 17, pp. 

493-506, (1962). 

2. K.R. Poole; R.F. Taylor and G.P. Wall "Mixing Powders to Fine-Scale Homogeneity: Studies of Batch Mixing," Trans. Inst. 

Chem. Eng., V. 42, pp. T305-T315, (1964). 

3. C.F. Hanvood and K.A. Walanski "Monitoring the Mixing of Powders," ACSDivision of Organic Coatings & Plastic Chemistry, V. 

33, Issue 2, pp. 508-515, (1973). 

4. N.A. Orr and E. Shotton "The Mixing of Cohesive Powders," The Chemical Engineer, January, pp. 12-19, (1973). 

5. C. Schofield "The Definition and Assessment of Mixture Quality in Mixtures of Particulate Solids," Powder Technology, V. 15, 

pp 169-180, (1976). 

6. C. F. Harwood and T. Ripley "Errors Associated with the Thief Probe for Bulk Powder Sampling," Journal of Powder & Bulk 

Solids Technology, V. 1, pp. 20-29, ( 1977). 

7. W.J. Thiel and P.L. Stephenson "Assessing the Homogeneity of and Ordered Mixture," Powder Technology, V.31, pp. 45-50, 

(1982). 

8. R.L. Lantz, Jr. and J.B. Schwartz in Pharmaceutical Dosage Forms - Tablets, Volume 2, Second Edition, HA. Lieberman; L. 

Lachman and J.B. Schwartz, eds., Marcel Dekker, New York,, pp. 27-32, (1989). 

9. R.L. Lantz, Jr. in Pharmaceutical Dosage Forms - Tablets, Volume 2, Second Edition, HA. Lieberman; L. Lachman and J.B. 

Schwartz, eds., Marcel Dekker, New York,, pp. 158-162, (1989). 

10. T. Allen Particle Size Measurement, Fourth Edition, Chapman and Hall, London, 

(1990). v 

11. J.T. Carstensen and C.T. Rhodes "Sampling in Blending Validation," Drug Development & Industrial Pharmacy, V. 19, Issue 

20, pp. 2699-2708, (1993). 

12. J. Berman and J.A. Planchard "Blend Uniformity and Unit Dose Sampling," Drug Development & Industrial Pharmacy, V. 21, 

Issue 11. pp. 1257-1283, (1995). 

13. T. Garcia. B. Elsheimer and F. Tarczynski "Examination of Components of Variance for a Production Scale, Low Dose powder 

Blend and Resulting Tablets," Drug Development & Industrial Pharmacy, V. 21. Issue 18, pp. 2035-2045, (1995). 

14. M. Murray, S. Uraizee and A. Sakr "Preliminary Investigations of the Suitability of the USP Uniformity of Dosage Units Tests for 

Evaluating the Uniformity of Powder Blends and Their Corresponding Tablets," Pharm. Ind., V. 57, Issue 3, pp. 262, (1995). 

15. J.T. Carstensen and M.V. Dali "Blending Validation and Coment Uniformity of Low-Content, Noncohesive Powder Blends," 

Drug Development & industrial Pharmacy, Vol. 22, Issue 4. pp. 285-290, (1996). 

16. F.J. Muzzio, P.Robinson, C.Wightman and D. Brone "Sampling Practices in Powder Blending," to appear in Pharmaceutical 

Research 


. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 




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L‘acqua potabile fornita dagli acquedotti contiene cloro per limitare la moltiplicazione della eventuale 

popolazione microbica presente. 

Per eseguire un test microbiologico di acqua potabile è necessario neutralizzare il cloro presente sin dal 

momento del prelievo per evitare che i microrganismi vengano inibiti e che pertanto le analisi forniscano 

risultati non veritieri. 

Questa neutralizzazione avviene con il sodio tiosolfato. 

Sodio tiosolfato come neutralizzante 

Il sodio tiosolfato che si aggiunge al campione d’acqua al momento del campionamento agisce nel 

modo seguente: 

Na2S203 + 8 Cl + 5 H20 ----- 2 NaHS04 + 8 HCl 

Na2S203 + 2HCl ----- 2NaCl + H20 + S + S02 

Per praticità d’uso e per la sicurezza dell’operatore sono disponibili contenitori monouso con il sodio 

tiosolfato già predosato, evitando così la manipolazione del prodotto in polvere. 

Il Sistema “Tiosol” 

Il Sistema “Tiosol” è costituito da un sacchetto monouso sterile a 

chiusura ermetica che contiene una pastiglia di tiosolfato da 10 mg per 

un volume di 120 ml di acqua oppure tre pastiglie da 10 mg per un 

volume di acqua di 300 ml. 

Una banda bianca di scrittura facilita la identificazione del campione. La 

linea superiore della banda bianca è utilizzata come segno di taratura 

durante la introduzione del campione. 

Il sistema di chiusura a filo metallico garantisce la tenuta emetica 

durante il trasporto. 

Il sottile film plastico del sacchetto facilita la trasmissione del 

raffreddamento al campione d’acqua immediatamente dopo la 

introduzione nella valigetta refrigerata durante il trasferimento al 

laboratorio per l’analisi. 

Il Sistema “Tiosol” è approvato ufficialmente dalla US EPA 

(Environmental Protection Agency). 

Il Sistema “Tiosol” può essere utilizzato anche per campionamento di 

acqua di piscina, fiume, torrenti, laghi, scarichi industriali. 

Il Sistema “Tio-Square” 

Il Sistema “Tio-Square” è costituito da un flacone monouso sterile, a 

forma quadrata, con chiusura anti-manomissione (per garantire la 

sterilità sino al momento del prelievo) che contiene 60 mg di sodio 

tiosolfato per un volume di acqua di 500 ml. 

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La preparazione dei campioni solidi in laboratorio, sia per analisi chimiche che microbiologiche, è 

un’ operazione di primaria importanza per ottenere risultati analitici veritieri e ripetibili. 

Per questa ragione sono state condotte diverse sperimentazioni internazionali (“collaborative 

study” nella terminologia anglo-sassone) per mettere a punto protocolli della preparazione dei 

campioni per unificare le procedure e la strumentazione. 

Uno di questi strumenti è il “Turbo Homogenizer HMHF”. 

L’omogeneizzatore “Turbo Homogenizer” 

L’apparecchiatura è costituita da un recipiente cilindrico in acciaio inox 

lucidato nel quale, in combinazione con la conformazione ad “S” delle 

lame che ruotano ad alta velocità in senso anti-orario, si crea un 

vortice che forza il campione con un movimento rotatorio 

multidirezionale dall’alto verso il basso contro le lame. Questa azione 

assicura allo stesso tempo lo sminuzzamento ed il mescolamento del 

prodotto. L’allacciamento elettrico a 220 Volt anzichè 380 Volt 

consente l’impiego in un normale laboratorio di analisi. 

Le Applicazioni in laboratorio 

I prodotti che si possono trattare sono cereali, granaglie, semi, frutti, 

(freschi e secchi), alimenti, carne, pesce, mangimi, surgelati, cosmetici, farmaceutici, terreno. 

Le tipiche applicazioni sono la preparazione di campioni per la ricerca di residui tossici, analisi 

nutrizionali, ricerca di aflatossine e pesticidi, test microbiologici. 

I laboratori accreditati USDA lo utilizzano per la preparazione dei campioni di carne. 

Impiego generale 

La camera di omogeneizzazione deve essere riempita con il campione per 2/3 in modo che le 

lame siano ricoperte, senza però raggiungere il bordo superiore del contenitore, il che 

impedirebbe la creazione del vertice. Il quantitativo minimo di campione è di 150 grammi ed il 

quantitativo massimo 2500 grammi. La massima velocità di rotazione (3000 giri al minuto) è 

ideale per la maggior parte dei prodotti, ma in taluni casi è opportuno operare a velocità inferiori. 

La pezzatura del campione non deve superare i 50 mm ed il tempo di trattamento varia da 3 a 5 

minuti. Può essere utile fermare ad intervalli l’omogeneizzatore per ripulire le pareti della camera 

con una spatola, trasferendo il materiale raccolto al centro. 

Un apposito comando manuale ad impulsi può essere utilizzato per iniziare il trattamento di 

omogeneizzazione gradualmente, con rotazione della lama a scatto, quando la massa del 

campione è molto compatta. 

Impiego con carne (Metodo USDA-AOAC) 

Approntare circa 1000/1500 grammi di cane con dimensioni non superiori a 50 mm e trasferire il 

tutto nella camera di omogeneizzazione. Aggiungere l’eventuale liquido che si è separato nello 

sminuzzamento del campione. Omogeneizzare per un totale di 2 minuti intervallando ogni 30 

secondi la pulizia delle pareti con una spatola ed il trasferimento del prodotto raccolto al centro: in 

totale quindi 2 minuti con 3 spatolamenti. 

Impiego con arachidi (Metodo USDA) 

2000 grammi di campione sono trattati per 5 minuti con un intervallo a 3 minuti per raccogliere il 

prodotto che ha aderito alle pareti e trasferirlo al centro. 

Impiego con surgelati 

Il prodotto surgelato tal quale deve essere introdotto a pezzi nel contenitore cilindrico. 

L’avviamento della rotazione delle lame deve avvenire per gradi utilizzando l’apposito pulsante a 

comando manuale. Il tempo di omogeneizzazione è di 2/3 minuti. 

Riferimenti 

R.A.Beebe, E. Lay, S. Eisberger. Journal Association of Official Analytical Chemists Sept 1989 – 

Homogeneity of meats prepared for analysis with a commercial food processor: Collaborative 

Study. 

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Il presente documento è la parziale traduzione del Documento Joint FAO/UNEP (Food and 

Agriculture Organization of the United Nations-United Nations Environment Programme) Project 

EP/7101-92-02 “SAMPLING FOR MYCOTOXIN ANALYSIS”. 

Principi di campionamento 

Lo scopo di una misurazione ed in particolare di una misurazione chimica è quella di valutare 

alcune proprietà di una sostanza. Il valore di questa proprietà viene poi utilizzata nel prendere 

una decisione sulla idoneità del prodotto per un suo specifico impiego o per azioni correttive. 

I campioni costituiscono uno degli aspetti più critici in una misurazione. 

Essi devono essere il più possibile rappresentativi. 

Considerazioni fondamentali 

Si deve avere una chiara concezione di ciò che deve essere campionato. 

Ci si più trovare in tre differenti situazioni: 

1. Un prodotto singolo che si deve valutare nella sua interezza. 

2. Lotto parziale costituito da un numero definito di articoli derivanti dalla produzione del lotto. 

3. Una massa di materiale costituita da unità più o meno irregolari. 

Assicurazione di qualità del campionamento 

Le operazioni di campionamento devono essere supportate da un valido programma di 

assicurazione di qualità che tenga conto del controllo di qualità. Una volta definiti gli obiettivi 

qualitativi, si devono pianificare le fasi per raggiungere tale obiettivo. Si devono identificare le 

fonti degli errori sistematici e casuali approntando i protocolli per ridurli a livelli accettabili. Gli 

operatori addetti al campionamento devono essere addestrati perchè si attengano 

scrupolosamente ai protocolli. 

Punti critici legati al campionamento 

I punti critici possono essere sia di origine qualitativa che quantitativa. 

Non ci devono essere dubbi sulla identificazione del campione. E deve sempre esistere una 

procedura operativa standard (POS). 


La messa a punto di un piano di campionamento è una delle fasi più importanti della 

pianificazione per ottenere campioni rappresentativi. 

Esistono tre tipi di piani di campionamento; il primo tipo è considerato “intuitivo” e si basa 

sull’esperienza, sulle informazioni conosciute e sulla presunzione. 

Campionamento, manipolazione del campione e preparazione di grani/cereali 

Dai risultati che si ottengono da una porzione del materiale si determinerà se un lotto è 

accettabile o no. Questa porzione di materiale usato come campione darà il giudizio sull’intera 

massa; conseguentemente un campionamento non idoneo porterà a valutazioni errate. In 

generale il campionamento è condotto in modo tale che il campione rappresenti la popolazione, 

ma non di meno un campione può essere prelevato da una sezione buona o cattiva. Senza una 

chiara comprensione del metodo di campionamento è impossibile valutare correttamente la 

qualità del materiale che deve essere ispezionato. 

Campionamento uniforme 

Con questo metodo si preleva un campione che rappresenta la media dell’intera popolazione. 

Si prelevano campioni in piccoli quantitativi da ogni sezione della popolazione. 

In questo caso, i quantitativi di campioni sono notevoli ed è necessario procedere ad una 

riduzione uniforme. 

Il procedimento di riduzione è chiamato divisione ed è eseguito mediante il “quartieraggio” o l’uso 

di uno “Splitter” . 

Campionamento selettivo 

Quando i prodotti sono giudicati in funzione della più bassa qualità, il campionamento è rivolto a 

quella parte della produzione che si presume essere in tali condizioni. 

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 


Per esempio per giudicare le condizioni di cottura di un pane si preleva un campione per la determinazione dell’umidità nella parte 

centrale del pane stesso. 

Campionamento casuale 

Questo metodo si applica quando si devono prelevare da un prodotto diversi campioni in modo casuale. In questo caso i campioni 

individuali, i quantitativi di campione e talvolta il periodo di campionamento non sono fissati in precedenza. I soggetti di 

campionamento si scelgono mediante una tavola dei numeri casuali. Il campionamento casuale previene influenze dovute 

all’attività dell’operatore. 

Mezzi di campionamento 

Un corretto campionamento è una operazione che richiede la massima attenzione; non sarà mai sufficientemente ripetuto a 

sufficienza la necessità di ottenere un campione che sia rappresentativo. Una campionamento inaccurato od eseguito senza cura 

porta a divergenze e problemi finanziari nelle transazioni commerciali. I campioni devono essere totalmente rappresentativi dei 

lotti dai quali derivano e pertanto si dovrà prevedere un numero sufficiente, un corretto mescolamento ed una successiva divisione 

per giungere al campione di laboratorio. 

La strumentazione qui riportata serve a ridurre la variabilità di manualità da parte dell’operatore. 

Prelievo di campioni di cereali da massa 

Se il campione viene da un prodotto in movimento, si deve prevedere un campionamento ad intervalli incrementali in funzione della 

portata del flusso dei cereali. 

Se il campionamento viene eseguito in una tramoggia di raccolta, si dovranno eseguire campionamenti nel maggior numero 

possibile di punti differenti della massa, ad intervalli determinati, tenendo presente la portata del flusso dei cereali. 

Se il campionamento avviene nella tramoggia dei punti di pesata, gli incrementi devono essere eseguiti mediante campionatori 

cilindrici, pale o campionatori meccanici in accordo alle necessità specifiche. 

La procedura di campionamento in silos o magazzini dovrà tenere conto delle realtà locali. 

Se il campionamento ha luogo da vagoni o camion, gli incrementi dovranno prevedere un prelievo che tenga conto della 

stratificazione, mediante un campionatore cilindrico nei punti qui riportati: 

Vagoni o camion sino a 15 tonnellate. 

Cinque punti di campionamento a 50 cm circa di distanza dalle pareti. 

Vagoni o camion da 15 a 30 tonnellate. 

Otto punti di campionamento. 

Vagoni o camion da 30 a 50 tonnellate. 

Undici punti di campionamento. 

Prelievo di campioni di cereali confezionati in sacchi 

Gli incrementi dovranno essere presi da differenti parti del sacco. Per esempio dalla sommità, dalla parte mediana e dal fondo, 

mediante l’apposito campionatore ad infissione secondo la Tabella sotto riportata. 


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Numero di sacchi da campionare 

Numero di sacchi della partita Numero di sacchi da campionare 

Sino a 10 Ogni sacco 

Da 10 a 100 10 sacchi scelti casualmente 

Più di 100 

Radice quadrata del numero totale, 

seguendo un ragionato schema di campionamento 

Campioni 

Campioni di Laboratorio 

Il campione di massa deve essere suddiviso per ottenere il richiesto numero di campioni di laboratorio, utilizzando lo strumento 

“Splitter”. Il numero di campioni di laboratorio per l’analisi dovrà essere specificato nel contratto o concordato tra il compratore ed il 

venditore. 

Quantità di campione 

Le dimensioni dei campioni nella sottoriportata Tabella sono in genere idonei per tutti i tipi di grani/granaglie. In alcuni casi può 

essere necessario disporre di maggiori o minori quantitativi in funzione del tipo di test richiesto. 

Dimensione dei campioni 

Lotto Incremento Campione di massa Campione di laboratorio 

Sino a 500 tonnellate 1 Kg 100 Kg 5 Kg 

Campionamento, Preparazione del campione, Piani di campionamento per ricerca di micotossine 

E’ ben noto come le aflatossine (micotossine) tendano ad essere distribuite in modo molto eterogeneo in una massa di grano. I 

tradizionali mezzi di campionamento e di preparazione del campione utilizzati con i raccolti agricoli e le derrate alimentari non sono 

generalmente idonei quando l’analisi è destinata alla ricerca di micotossine. 

Errori associati ed errori di sub-campionamento 

L’errore totale è in genere da attribuire a quattro differenti componenti: errore di campionamento, sub-campionamento grossolano, 

sub-campionamento fine, errore analitico. 

Varianza totale 

Varianza di campionamento 

Grossolano 

Varianza di sub-campionamento 

Fine 

Varianza di sub-campionamento 

Varianza analitica 

Lotto Campione Sub-campione grossolano Sub-campione fine Analisi 

Esempio di correzione agli errori di campionamento suggerito dall’AOAC per il mais 

Il campione grossolano è fatto passare attraverso un setaccio N.14 e 1-2 kg di un sub-campione è fatto passare attraverso un 

setaccio N.20. Un successivo sub-campione di 500 g, macinato finemente è analizzato. 

Whittaker, Dickens e Monroe hanno messo a punto nel 1979 la seguente equazione che tiene conto degli errori di varianza del 

metodo indicato: 

V = S + C +F + Q 

dove: 

V = Errore Totale 

S = Errore di Campionamento = 3.9539 P/Ws 

C = Errore di sub-campionamento nella preparazione del campione (macinazione grossolana) = 0.1196 P/Wc 

F = Errore di sub-campionamento nella preparazione del campione (macinazione fine) = 0.0125 P/Wf 

Q = Errore dovuto alla quantificazione = 0.0699 F/Nq 

Ws = massa del campione espressa in Kg 

Wc = massa del sub-campione grossolano espresso in Kg 

Wf = massa del sub-campione fino espresso in Kg 

Nq = il numero di volte l’aflatossina nell’estratto del solvente è quantificato su TLC 

P = concentrazione di aflatossina nel lotto (ug/Kg). 

Questi studi hanno avuto lo scopo di attirare l’attenzione sul fatto che l’errore di campionamento è in genere il contributo più 

grande all’errore totale. Il miglioramento delle condizioni operative di campionamento possono portare il più grande contributo 

all’accuratezza dei risultati analitici quando si devono prendere decisioni che comportano l’accettazione od il rifiuto della partita. 

Come ottenere il risultato analitico più reale 

Per aumentare la possibilità che il risultato finale sia più vicino possibile alla realtà si dovrebbe incrementare il quantitativo di 

campione, le dimensioni del sub-campione utilizzato per determinare le aflatossine ed aumentare il numero di test analitici. Tutto 

questo comporta aumento dei costi che dovranno essere bene valutati per arrivare ad un costo/beneficio accettabile. In generale, i 

costi di un programma ben organizzato e definito per la determinazione delle aflatossine aumentano proporzionalmente di quanto 

aumenta la precisione richiesta. 


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Suddivisore “Quarter” Suddivisore “Splitter” Miscelatore “Twist” 

Procedure di campionamento 

I campioni possono essere prelevati direttamente sul campo dal raccolto, durante la manipolazione, durante la conservazione ed in 

altri punti del processo produttivo e di distribuzione. I campioni possono essere prelevati con sistemi automatici, quando ciò è 

possibile. Quando ciò non è possibile, per esempio da camion, vagoni, container, etc. si devono utilizzare sonde che siano in 

grado di raggiungere il fondo del contenitore. Quando la produzione è destinata all’insaccamento, il campione deve essere 

prelevato durante la chiusura dei sacchi o lo svuotamento. Questi campioni possono essere costituiti da porzioni prelevate 

manualmente e raccolte in un contenitore unico. Se i sacchi sono chiusi si può ricorrere alle sonde perforatrici della parete del 

sacco. Se i lotti comprendono un numero relativamente basso di sacchi, la miglior cosa è prelevare un campione da ogni sacco. 

Se il numero di sacchi è rilevante, è buona prassi rimuovere almeno un quarto di materiale dai sacchi. 

Poichè il problema della distribuzione eterogenea delle aflatossine nella massa da campionare è ben conosciuto, è richiesto 

almeno un campione di 1 Kg. La FDA USA richiede un campione minimo di circa 7 Kg. Nel corso degli anni, il volume di campione 

richiesto dalle Autorità USA per il controllo delle aflatossine nelle arachidi è passato da 5 Kg a 11, a 22, agli attuali 66 Kg (3 

campioni da 22 Kg). Questo aumento è stato determinato dalla richiesta dei produttori di ottenere risultati analitici più affidabili. 

L’aumento del numero di campioni ha il vantaggio di ridurre il numero di lotti respinti e contemporaneamente il numero di lotti di 

cattiva qualità accettati. 

In genere il quantitativo di campione prelevato da un lotto è superiore alle necessità richieste per l’analisi e pertanto è necessario 

mescolare bene questo campione prima di prelevare l’aliquota necessaria al test. Dopo mescolamento, il campione può essere 

suddiviso, sino ad arrivare al quantitativo voluto, impiegando divisori tipo “Splitter” od applicando la tecnica del “quartieraggio”. 

Preparazione del campione 

Assumendo che sia stato raccolto un campione rappresentativo del lotto, la fase successiva è quella di approntare il campione per 

l’analisi. In generale si tratta di mescolamento del campione, macinazione, setacciatura (setaccio da 14 mesh), mescolamento 

prima di una ulteriore macinazione più fine, sino ad arrivare all’aliquota finale da analizzare. 

Riferimenti 

Training in Mycotoxin Analysis, FAO, Food and Nutrition Paper 14/10, Rome 1990, ISBN 92-5-102947-4. 

Sampling Plans for Aflatoxin Analysis in Peanuts and Corn, FAO, Food and Nutrition Paper 55, Rome 1993, ISBN 92-5-103395-1. 

Sampling for Mycotoxin Analysis - EP/7101-92-02 - Joint FAO/UNEP Project on Training Network for Mycotoxin Control in Asia. 


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I campioni di prodotti in polvere o di granulati sono più rappresentativi, 

con deviazioni quantitative dal valore medio più ridotte, quando sono 

approntati con lo “Splitter”. 

Il grafico illustra quantitativamente la migliore rappresentatività del 

campione utilizzando lo Splitter rispetto ad una preparazione del 

campione eseguita direttamente dalla massa senza alcun criterio o con il 

metodo della crocera (“quartieraggio”). 

A = Nessuna preparazione del campione: ± 10% 

B = Preparazione del campione con il metodo a crocera: ± 5,5% 

C = Preparazione del campione con lo “Splitter”: ± 3,5% 

Suddivisore “Splitter” 

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Le procedure di campionamento fornite dagli standard internazionali dovrebbero essere 

strettamente osservate per ottenere un campione rappresentativo della massa campionata: 

ciò eviterebbe una errata interpretazione dei risultati con le inevitabili conseguenze. 

E’ indubbiamente difficile stabilire regole rigide da seguire in ogni caso. 

Per raggiungere ad ogni modo lo scopo di ottenere un campione rappresentativo è imperativo: 

a. personale opportunamente addestrato al campionamento 

b. la disponibilità di materiale di campionamento standardizzato 

Strumentazione di campionamento secondo le Norme Provvisorie ISO/DIS 13690.2 

Viene riportato l’elenco suggerito di campionatori come da indicazione del documento ISO/DIS 

13690.2. 

STRUMENTAZIONE PER CAMPIONAMENTO DI CEREALI DA MASSE STATICHE E 

CONTENITORI RIGIDI 

Campionatori Manuali Concentrici 

“Multipro” - Campionatore per polveri e granulati 

“Multi-Maxi” - Campionatore per polveri e granulati 

STRUMENTAZIONE PER CAMPIONAMENTO DI CEREALI DA SACCHI 

Campionatori manuali concentrici 


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Campionatori conici 

Campionatori meccanici a movimento elicoidale 

STRUMENTAZIONE PER CAMPIONAMENTO DI LEGUMINOSE DA MASSE STATICHE 

Sonde Manuali Concentriche 


STRUMENTAZIONE PER CAMPIONAMENTO DI LEGUMINOSE DA SACCHI 

Sonde Concentriche 





“Pic” - Campionatore per polveri e granulati 

“Endless” - Campionatore per polveri 

“Endless-Probe” - Sonda per polveri 




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STRUMENTAZIONE PER CAMPIONAMENTO DI PRODOTTI MACINATI DA MASSE STATICHE 

Sonde Manuali Concentriche 



STRUMENTAZIONE PER CAMPIONAMENTO DI PRODOTTI MACINATI DA SACCHI 

Sonde Concentriche 










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STRUMENTAZIONE PER PREPARAZIONE CAMPIONE MEDIANTE DIVISIONE 

Quartieraggio 

Suddivisione mediante fenditure Mixer 

“Quarter” - Suddivisore “Splitter” - Suddivisore “Twist” - Miscelatore 

GUIDA ALLA SCELTA DEI CAMPIONATORI DI CEREALI 

Cereali, leguminose Farina ed altri prodotti macinati 

Campionamento da masse statiche Campionatore “Multipro” Campionatore “Endless” 

Vagoni ferroviari, camion Campionatore “Multi-maxi” Campionatore “Endless” 

Contenitori rigidi Campionatore “Pic” Campionatore “Endless” 

Sacchi di carta, plastica, tela Campionatore “Pic” Campionatore “Endless” 

Riferimenti 

ISO 6639-2 

ISO 6644 

ISO/DIS 13690.2 Draft 


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Tutto conoscono bene e comprendono quanto sia determinante in un processo analitico la fase di 

preparazione del campione. Malgrado ciò, dal punto di vista didattico a livello scolastico ed 

universitario, alla preparazione del campione viene data in genere poca importanza e di 

conseguenza il tecnico “pivello” che si trova ad affrontare la giornata di lavoro in un laboratorio di 

analisi è in difficoltà (anche se lui non se ne rende conto) o mette in difficoltà gli altri per i risultati 

ottenuti che non sono affidabili e reali. 

La presente nota vuole essere un pro-memoria per i docenti o per il tecnico senior che deve 

educare il tecnico junior al fine di impartire le cognizioni di base nella preparazione del campione. 

Un ulteriore aiuto didattico viene fornito dal programma in Power Point per P.C. dedicato al 

campionamento. 

Programma da seguire 

A. Differenza tra campione rappresentativo e campione selettivo 

B. Importanza di conservare la integrità del campione 

C. Compiti legati alla preparazione del campione: 

- Assicurare la omogeneità 

- Eseguire test preliminari, se necessario 

- Prestare attenzione alle sostanze interferenti 

- Conservare i campioni nel modo corretto 

D. Esecuzione di macinazione, frantumazione 

E. Quali errori possono comportare macinazione, frantumazione 

F. Esecuzione di mescolamento, miscelamento 

G. Esecuzione di test alla fiamma 

H. Esecuzione di essiccazione 

I. Esecuzione di filtrazione per gravità, vuoto, pressione 

J. Esecuzione di distillazione per campioni liquidi 

K. Esecuzione di estrazione per rimuovere componenti solubili da campioni solidi 

Riferimenti 

NUS Training Corporation - Laboratory Technician Training - 1995. 

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Il corretto campionamento e preparazione del campione determinano l’accuratezza del risultato analitico in 

quanto gli errori analitici possono essere notevolmente ridotti durante la fase di campionamento e non nelle fasi 

successive. 

Se ciò è vero in linea generale per qualsiasi tipo di prodotto e campione, è quanto più mai vero quando entrano 

in gioco le micotossine; la loro distribuzione nella massa è infatti molto irregolare ed il campione per essere 

rappresentativo deve essere molto consistente, oculatamente prelevato ed opportunamente preparato. 


- DATI IDENTIFICATIVI DELLA POS 

Numero progressivo 

Data di emissione 

Data di revisione 

Nome del redattore 

Nome del responsabile 

Numero della pagina / pagine totali 

- OGGETTO 

Campionamento di derrate alimentari sfuse solide o liquide al fine della ricerca di micotossine. 

- SCOPO 

Ottenere un campione di massa che sia realmente rappresentativo di quanto campionato. 

- TERMINOLOGIA 

Campionamento, Campione di laboratorio, Campione di massa, Sonda di prelievo 


Direttore laboratorio di analisi incaricato di eseguire il test. 

- MATERIALE 

Prodotti secchi 

Campionatore “Endless” per pallet, camion, navi 

Sonda “Multi-maxi” per camion, navi 

Sonda “Pic” per sacchi, fusti 

Campionatore multilivello “Pelican” per prelievo all’uscita da nastri trasportatori 

Prodotti liquidi 

Sonda a pistone “Milk-Suck” per cisterne o serbatoi 

Sonda “Acid” per cisterne, serbatoi 

Accessori per confezionamento e trasporto campione 

Sacchetti in plastica da 2, 5, 10 kg 

Etichette adesive per chiusura punti di prelievo da sacchi “QC-Seal” 

Pinza sigillatrice “Fixo” 

Piombi per sigillare “Lex” 

Spiralina metallica per sigilli “Spiral” 

Cartellini per riconoscimento / identificazione campione 

Bilancia tecnica portata 5000 g 

Sicurezza per l’operatore 

Camice monouso “Coat-4-Lab” 

Mascherina antipolvere “Poli” 

Guanti monouso “Vinyl-Plus” 

Occhiali protettivi “Gaugin” 

Scarpa di sicurezza antiscivolo “Splash” 

Protocollo 

Il quantitativo totale di campione può raggiungere i kg 30 in funzione della grandezza del lotto da controllare. 

Riferimenti 

Normativa 98/53 CE in fase di recepimento. 

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La variazione è uno dei problemi che si incontra nel campionamento ed è uno dei problemi che i responsabili di 

produzione conoscono bene e cercano di ridurre. 

Le variazioni 

Esistono due tipi di variazione: 

quella dovuta a "cause speciali" (l'operatore commette un errore, le materie prime sono difettose o non conformi, 

strumento fuori condizionamento, etc.) 

e quella dovuta a "cause comuni" (le normali variazioni "random" presenti in qualsiasi processo di 

determinazione). 

Le azioni di risposta alle due forme di variazione sono completamente differenti e confondere l'una con l'altra 

può portare ad un campionamento "sballato". 

II campione 

Uno dei modi per tenere sotto controllo un processo è quello di prelevare campioni ed analizzarli; ma il 

campionamento è corretto solo se il campione è stato prelevato "random". 

Le regole della "randomizzazione" sono- ben conosciute, ma sono così importanti che fa sempre bene 

ricordarle: 

1. I campioni devono essere selezionati secondo un processo "random" 

2. Tutti i membri della popolazione devono avere uguale opportunità di essere presenti 

3. La possibilità di ogni individuo di essere selezionato non deve dipendere dalle precedenti selezioni. 

Prima regola 

I campioni devono essere selezionati secondo un processo "random". 

Questa regola la si osserva con una procedura dove la selezione avviene "a random". 

Ad esempio una persona bendata che sceglie i numeri di una lotteria in una contenitore sferico. 

Ma se i numeri non sono ben mescolati, può avvenire che gli ultimi numeri immessi nel contenitore abbiano 

maggiori probabilità di uscita. Questo tipo di "bias" è chiamato "data collection bias". 

In alcuni calcolatori si trova la funzione "RND" che genera numeri "random" da 0 a 1 ad ogni pressione del tasto. 

Questo numero può essere utilizzato in unità o decimali a piacere (ad esempio da 0,621 si può utilizzare 62 

oppure 621 oppure 6210) oppure in una equazione da due valori limite: 

Numero = [( limite alto - limite basso + 1) x RND + 1] 

Seconda regola 

Tutti i membri della popolazione devono avere uguale opportunità di essere presenti. 

Se in una formazione militare schierata in parata e formata da vari plotoni vogliamo scegliere 10 militari a 

"random" ed il calcolatore ci fornisce il numero RND = 0,30 e di conseguenza contiamo 30 militari in 

successione, otterremo un campione costituito di tutti sergenti perché i plotoni erano tutti schierati nello stesso 

modo. 

Abbiamo commesso errori con la prima regola? 

No! Siamo incorsi in un "bias" della popolazione: non tutti i militari avevano una uguale opportunità di essere 

selezionati come richiesto dalla seconda regola. Con qualsiasi numero il risultato sarebbe stato errato perché i 

plotoni ripetevano in successione lo stesso ordine di militari (1 sergente ogni 29 militari). Questo tipo di 

campionamento definito "sistematico" si applica bene in altre situazioni con l'ordine della popolazione non 

ripetitivo. Nell'esempio riportato, si sarebbe dovuto seguire un altro metodo, ad esempio un numero "random" 

differente per ogni plotone. 

Il piano di campionamento 

Nel mettere a punto un piano di campionamento si deve dare molta importanza al modo come i valori sono 

raccolti per essere certi di ottenere una valida rappresentazione dell'intera 

popolazione. Errori in tal senso portano non solo a risultati senza valore, ma 

possono costringere a prendere decisioni ed azioni correttive non necessarie. 

Conclusioni 

Se si percepisce una "regolarità" nei valori che dovrebbero essere "random", si 

deve fare attenzione, prima di prendere decisioni, a come tali valori sono stati 

raccolti e cosa può aver provocato ciò. 

“Sampling” - Il catalogo-manuale in lingua inglese che 

riporta tutto ciò che occorre per il campionamento: 

sonde, preparazione campioni, trasporto etc.. 

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II campionamento microbiologico delle superfici irregolari o di difficile accesso si esegue 

tradizionalmente con il classico impiego del tampone. 

Il tampone presenta la limitazione della piccola massa e di conseguenza del possibile non completo 

recupero di tutti i microrganismi. 

Il metodo della spugna consente invece una ampia e facilitata "asportazione" di tutti i microrganismi 

presenti su una superficie sia essa piatta od irregolare. 

II Sistema mediante spugna sterile 

In questa Nota Applicativa sono descritti differenti sistemi di campionamento delle superfici 

mediante la spugna sterile pronti all'uso: 

(a) Sistema "Sponge-bag" sterile costituito da sacchetto a chiusura ermetica, spugna pre-inumidita 

(b) Sistema "Speci-Sponge" sterile costituito da sacchetto a chiusura ermetica, spugna disidratata, 

guanti incorporati 

Sacchetto con spugna 

“Sponge-bag” 

Sacchetto con spugna 

“Speci-Sponge” 

Questi sistemi mettono l'operatore nella condizione di avere disponibile sul campo in qualsiasi 

momento e condizione tutto il materiale necessario per portare a termine un corretto 

campionamento microbiologico della superficie evitando i rischi di contaminazione crociata ed 

assicurando il corretto avvio al laboratorio di analisi del campione. 

In questo modo viene coerentemente applicata la corrente Buona Prassi di Laboratorio. 

II Sistema “Sponge-bag” 

Sacchetto in plastica speciale ad alta resistenza, sterile, trasparente, con area di scrittura, sigillo 

superiore a strappo per garantire la sterilità, sistema di chiusura a nastro animato, saldatura su tre 

lati, dotato di spugna (dim.: 35x75 mm) per la raccolta del campione, ideale per il campionamento 

microbiologico (Listeria, Salmonella ed altri microrganismi patogeni) delle superfici e per il 

campionamento su carcasse animali per la ricerca di E. coli (metodo USA Federal Register). 

Impiego 

1. Identificare il sacchetto con le necessarie informazioni sull'apposita banda di scrittura. 

2. Aprire il sacchetto strappando il bordo superiore preforato. Tirare verso l'esterno le due linguette 

in corrispondenza del bordo per ampliare l'apertura di accesso; la provetta vuota può essere 

rimossa in questa fase 

3. Spingere la spugna impregnata verso l'alto. Raggiunta la metà altezza del sacchetto, spremere la 

spugna per togliere l'eccesso di liquido. 

4. Utilizzando guanti sterili, estrarre la spugna e strofinare la superficie da campionare. 

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5. Ultimato il campionamento, reinserire la spugna nel sacchetto, togliersi i guanti, chiudere il 

sacchetto n'avvolgendo il bordo tre volte e ripiegando verso l'interno le due linguette metalliche 

per assicurare la tenuta. 

6. Trasferire il sacchetto al laboratorio per l'analisi microbiologica, assicurando l’ idonea 

temperatura di conservazione (+4 °C). 

II Sistema “Speci-sponge” 

Sacchetto in plastica speciale ad alta resistenza, sterile, trasparente, dimensioni sacchetto 115x230 mm, capacità 540 mL, spessore 

0.064 mm, sigillo superiore a strappo per garantire la sterilità, sistema di chiusura a nastro animato, saldatura su tre lati, dotato di 

spugna (dim. 35x75 mm) per la raccolta del campione, disponibile in due versioni: 

1)con guanti sterili 

2) con tampone e guanti 

Ideale per il campionamento microbiologico (Listeria, Salmonella ed altri microrganismi patogeni) delle superfici e per il 

campionamento su carcasse animali per la ricerca di E. Coli (metodo USA Federal Register). 

Impiego – Sacchetto “Speci-sponge” con guanti sterili 


2. Strappando la linea preforata inferiore, staccare il sacchetto contenente i guanti ripiegati. 

3. Aprire il sacchetto contenente la spugna strappando il bordo superiore preforato. 

4. Tirare verso l'esterno le due linguette in corrispondenza del bordo per ampliare l'apertura di accesso. 

5. Aggiungere la soluzione tampone sterile scelta (non fornita in questo kit) per inumidire la spugna. 

6. Spingere la spugna verso l'alto e togliere l'eccesso di liquido prima di estrada dal sacchetto. 

7. Afferrando i guanti dalla parte del polso, provocare la loro apertura con alcuni movimenti 

(si può usare un solo guanto od entrambi). 

8. Con la mano guantata, estrarre la spugna e strofinare la superficie da campionare. 

9. Ultimato il campionamento, reinserire la spugna nel sacchetto,. 

10. Togliersi i guanti, chiudere il sacchetto riavvolgendo il bordo tre volte e ripiegando verso l'interno le due linguette metalliche per 

assicurare la tenuta. 

11. Trasferire il sacchetto al laboratorio per l'analisi microbiologica, assicurando la idonea temperatura di conservazione (+4°C). 

Impiego – Sacchetto “Speci-sponge” con sacchetto e guanti e spugna pre-inumidita 


2. Premere la spugna alcune volte per saturarla con la soluzione tampone fosfato. 

3. Aprire il sacchetto strappando il bordo superiore preforato. Tirare verso l'esterno le due linguette in corrispondenza del bordo per 

ampliare l'apertura di accesso; la provetta vuota può essere rimossa in questa fase. 

4. Spingere la spugna impregnata verso l'alto. Raggiunta la metà altezza del sacchetto, spremere la spugna per togliere l'eccesso di 

liquido. 

5. Afferrando i guanti dalla parte del polso, provocare la loro apertura con alcuni movimenti (si può usare un solo guanto od 

entrambi). 

6. Indossando i guanti sterili, estrarre la spugna e strofinare la superficie da campionare. 

7. Ultimato il campionamento, reinserire la spugna nel sacchetto, togliersi i guanti, chiudere il sacchetto riavvolgendo il bordo tre volte 

e ripiegando verso l'interno le due linguette metalliche esterne per assicurare la tenuta. 

8. Trasferire il sacchetto al laboratorio per l'analisi microbiologica, assicurando la idonea temperatura di conservazione (+4 °C). 


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Al fine di facilitare l’attività di tutti coloro che sono coinvolti nel campionamento di alimenti, sia 

autorità di controllo che produttori e consulenti, stante la complessità della materia, in questa Nota 

Applicativa sono stati raccolti i riferimenti di campionamento che figurano nella nostra legislazione. 

Da questa nota il lettore avrà più facile e rapido accesso alla lettura dei dettagli di campionamento 

attingendo al volume “Tutela Igienico Sanitaria degli Alimenti e Bevande dei Consumatori” di 

Lionello Rizzatti (Il sole 24 ore, 101,74 Euro). 

Il modo di campionamento in accordo alla legislazione vigente 

Aceto Litri 2,5: varie porzioni da più bottiglie prese a caso 

e miscelate poi in cinque bottiglie da 500 ml 

cadauna 

Acque gasate, bevande analcoliche Litri 2,5: più porzioni da più bottiglie miscelate poi in 

cinque bottiglie da 500 ml cadauna 

Acquaviti Litri 1,5: varie porzioni da più bottiglie miscelate poi 

Acque minerali per analisi batteriologica 

Cir.Min. n.17 5.11.93 e art 3 D.M. 13.1.93 

Acque minerali per analisi chimica 

Cir.Min. n.19 12.5.93 

in cinque boccette da 300 ml cadauna 

Depositi in fabbrica e deposito in distribuzione: 

Litri 12 da più bottiglie prelevate da più parti per 4 

aliquote. Vendita al minuto: Litri 15 prelevati a caso 

da più parti per 5 aliquote 

Depositi in fabbrica e di distribuzione: Litri 12 

prelevati da più parti e divisi in 4 aliquote. 

Vendita al minuto: Litri 15 prelevati a caso da più 

parti per 5 aliquote 

Alcool etilico Litri 1: da varie porzioni prelevate da più bottiglie 

miscelate poi in 5 boccette da 200 ml cadauna 

Aperitivi a base di vino Litri 2: varie porzioni di più bottiglie miscelate poi in 

5 bottiglie da 400 ml cadauna 

Birra Litri 2: varie porzioni prelevate da più confezioni e 

miscelate poi in 5 parti da 200 ml cadauna 

Burro Grammi 1000: varie porzioni prelevate da più 

confezioni miscelate poi in 5 parti da grammi 200 

cadauna 

Cacao Grammi 500: varie porzioni prelevate da più 

confezioni miscelate poi in 5 parti da grammi 100 

cadauna 

Caffè ed estratti di caffè Grammi 500: varie porzioni prelevate dall’alto e dal 

basso, miscelate poi in 5 aliquote da grammi 100 

cadauna 

Caramelle, confetti, chewingum Grammi 500: varie porzioni prelevate da più 

confezioni e miscelate poi in 5 aliquote da grammi 

100 cadauna 

Carne fresca Grammi 1000: varie porzioni prelevate da più parti 

macinate e miscelate poi in 5 aliquote da grammi 

200 cadauna 

Carne conservata Grammi 1000: varie porzioni prelevate da più parti 

macinate e miscelate poi in 5 aliquote da grammi 

200 cadauna 

Caseine e caseinati 

Grammi 1000: varie porzioni prelevate da più parti, 

D.M. n. 149 24.2.98 

miscelate poi in 5 aliquote da grammi 200 cadauna 

Cereali 

Grammi 1000: varie porzioni prelevate da più parti 

V.D.M. 28.2.95 e Cir. Min. n. 10 9.6.99 miscelate poi in 5 aliquote da grammi 200 cadauna 

Cioccolatini farciti e/o ripieni Grammi 1500: varie porzioni prelevate da più parti, 

miscelate poi in 5 aliquote da grammi 300 cadauna 

Cioccolato Grammi 500: varie porzioni prelevate da più 

confezioni, miscelate poi in 5 aliquote da grammi 

500 cadauna 

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Conserve di origine vegetale Grammi 1000: varie porzioni prelevate da più confezioni, poi in 5 aliquote da grammi 

200 cadauna 

Conserve e semiconserve animali Grammi 1000: varie porzioni / confezioni prelevate da più confezioni, poi in 5 aliquote 

da grammi 200 cadauna 

Crema di latte o panna Grammi 500: varie porzioni / confezioni prelevate da più parti, poi in 5 aliquote da 

grammi 100 cadauna 

Crema per pasticceria e budini Grammi 500: varie porzioni / confezioni prelevate da più parti, poi in 5 aliquote da 


Estratti alimentari Grammi 500: varie porzioni / confezioni prelevate da più parti, poi in 5 aliquote da 

Farine 

D.M. 26.3.45 


Grammi 1000: varie porzioni / confezioni prelevate da più confezioni, dal basso, 

centro e dall’alto, miscelate poi in 5 aliquote da grammi 200 lordo cadauna, effettuato 

con bilancia sensibile al decimo di grammo (nota 4 Norme Generali) 

Formaggio Grammi 1000: varie porzioni prelevate da 3 forme (vedi anche art. 98 R.D.1361 del 

1926 e D.M. 21.4.86) poi miscelate in 5 aliquote da grammi 200 cadauna 

Frutta, ortaggi freschi, surgelati 

Grammi 500: Varie porzioni da più parti miscelate in 5 aliquote da grammi 100 

D.M.20.5.80 

cadauna 

Frutta, vegetali secchi D.M. 28.2.95 Grammi 1000: Varie porzioni da più parti miscelate in 5 aliquote da grammi 200 

Dir.CEE 98/53 16.7.98, Cir.Min. n.10 cadauna 

96/99, D.M. 23.12.2000, Ricerca 

aflatossine micotossine 

Gelati Grammi 1000: Varie porzioni da più parti o confezioni miscelate in 5 aliquote da 


Granoturco, Mais D.M. 28.2.95 Dir.CEE Grammi 1000: Varie porzioni da più parti o confezioni miscelate in 5 aliquote da 

98/53 16.7.98, Cir.Min. n.10 96/99, D.M. grammi 200 cadauna 

23.12.2000, Ricerca aflatossine 

micotossine 

Grassi emulsionati per panificazione Grammi 1000: Varie porzioni da più parti o confezioni miscelate in 5 aliquote da 


Grassi idrogenati Grammi 1000: Varie porzioni da più parti o confezioni miscelate in 5 aliquote da 


Ittici Vedi pesce ricerca mercurio 

Latte D.M. 26.3.92 e 8.11.99 n.535 ml 1000: Varie porzioni prelevate dopo previa miscelazione dall’alto, dal basso e dal 

centro in 5 aliquote da 200 ml cadauna 

Latte condensato Grammi 750: Varie porzioni prelevate dopo previa miscelazione in 5 aliquote da 150 

grammi cadauna 

Latte in polvere Grammi 500: Varie porzioni prelevate dopo previa miscelazione in 5 aliquote da 100 

grammi cadauna 

Liquori ml 1500: Varie porzioni prelevate da più bottiglie miscelate poi in 5 parti da ml 300 

cadauna 

Manna o mannite art 98 R.D. 1361 1926 Grammi 1600: più porzioni da varie confezioni poi miscelate e divise in 4 aliquote da 


Margarina Grammi 1000: Varie porzioni prelevate da più parti o confezioni miscelate in 5 aliquote 


Marmellata Grammi 1000: Varie porzioni prelevate da più parti o confezioni miscelate in 5 aliquote 


Miele Grammi 500: Varie porzioni prelevate da più contenitori miscelate in 5 aliquote da 


Molluschi bivalvi art 9 D.M. 5.10.78 100-120 esemplari in 5 aliquote cadauna 

Mosto di vino mL 500: varie porzioni previa adeguata miscelatura della massa, poi in 5 aliquote da 

ml 1000 cadauna 

Olio di oliva-semi mL 1000: varie porzioni prelevate da più recipienti, miscelate poi in 5 boccette da 200 

ml 

Pane (ricerca umidità) D.M. 26.3.45 nei Grammi 1000: varie porzioni prelevate a caso, poi in 5 aliquote da grammi 200 del 

locali di vendita (non del forno) 

peso lordo cadauno, con bilancia sensibile al decimo di grammo (vedi nota 4 istruzioni 

generali, da segnare sul verbale) 

Pane speciale Grammi 2000: varie porzioni prelevate a caso, poi in 5 aliquote da grammi 400 del 



Pasta alimentare Grammi 1000: varie porzioni prelevate a caso, poi in 5 aliquote da grammi 200 del 



Pasta alimentare speciale Grammi 1500: varie porzioni prelevate a caso, poi in 5 aliquote da grammi 300 del 




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Pesci (ricerca mercurio) D.M. 14.12.71, 

D.M. 13.5.76 vedi lettera d 

I campioni devono essere prelevati da pesci di diversa pezzatura in modo da essere 

rappresentativi; il numero dei campioni da prelevare è il seguente: iniziare dal tonno o 

da altri pesci di peso unitario superiore a kg 10: A. fino a 50 tonnellate 10 pesci; da 50 

a 100 tonnellate 15 pesci; da 100 a 200 tonnellate 20 pesci; oltre le 200 tonnellate 25 

pesci. B. partite di pesci il cui peso unitario è compreso tra 1 e 10 kg: sino a 10 

tonnellate 10 pesci; da 10 a 30 tonnellate 15 pesci; da 30 a 100 tonnellate 20 pesci; 

da 100 a 200 tonnellate 30 pesci; oltre 200 tonnellate 40 pesci. C. partite di pesci il cui 

peso unitario è inferiore ad 1 kg ed anche molluschi e crostacei: sino a 5 tonnellate 10 

campioni; da 5 a 10 tonnellate 15 campioni; da 10 a 30 tonnellate 20 campioni; da 30 

a 100 tonnellate 30 campioni; da 100 a 200 tonnellate 40 campioni, oltre le 200 

tonnellate 50 campioni. Per partite inferiori ad 1 tonnellata il numero dei campioni 

(comunque non superiore a 10) viene lasciato secondo le possibilità alla discrezione 

dell’agente prelevatore. D. Partite di prodotti ittici confezionati (surgelati, conserve 

ittiche): il numero di campioni da prelevare presso lo stabilimento di produzione o 

all’atto dell’importazione deve essere in relazione all’entità della partita indicata al 

punto C. Il numero delle confezioni da prelevare nella fase di distribuzione deve 

essere, ove possibile, non inferiore a 10. Modalità di prelevamento: per i prodotti di cui 

a punti A e B, da ogni pesce prescelto prelevare il campione che deve essere 

costituito da 50/200 grammi di parte muscolare; il prelevamento deve essere 

effettuato con mezzi appropriati (sega, fresa, punta di trapano). 

Per i prodotti di cui al punto C, costituiscono il campione 1 o più pesci interi in modo 

da raggiungere un peso non inferiore a 100 grammi. Per i prodotti confezionati il 

campione è costituito da 1 confezione. Ciascun campione di prodotto sfuso deve 

essere confezionato separatamente in contenitori di vetro o plastica per alimenti, 

accuratamente chiuso. I campioni deperibili devono essere imballati in scatola 

isotermica con ghiaccio secco. Per i prodotti di importazione il campionamento va 

effettuato in triplice esemplare. Per i prodotti nazionali o in lavorazione industriale, il 

campionamento deve essere eseguito in quattro aliquote. 

Polveri acqua da tavola 20 bustine: prelevare a caso, poi in 5 unità da 4 unità cadauna 

Prodotti dolciari Grammi 1000: Varie porzioni prelevate da più parti o contenitori poi in 5 aliquote da 


Prodotti da forno Grammi 1000: Varie porzioni prelevate da più parti o contenitori poi in 5 aliquote da 


Prodotti della pesca 9 campioni da 4 aliquote, poi in 5 parti (art 9 All. V° punti 1,2 e 3 D.L.vo 531 92) 

Riso Non meno di 600 grammi (art 9 legge 325 1958 e 586 1962) da più confezioni, 

miscelato poi in 5 aliquote cadauna 

Sciroppi Grammi 1000: più porzioni da più recipienti miscelate, poi in 5 aliquote in boccette da 


Strutto Grammi 1000: varie porzioni prelevate da più parti, miscelate in 5 aliquote da grammi 

200 cadauna 

Succhi o nettari Grammi 1000: varie porzioni prelevate da più parti, miscelate in 5 aliquote da grammi 

200 cadauna 

Vino mL 5000: varie porzioni prelevate da più bottiglie , miscelate in 5 aliquote in bottiglie 

da ml 1000 cadauna 

Zucchero Grammi 500: varie porzioni prelevate da più parti, miscelate in 5 aliquote da grammi 

100 cadauna 


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Fax: 0240090010 




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La Commissione della CE ha deciso, in data 8 Giugno 2001, il regolamento che fissa le norme per i 

controlli regolari delle condizioni igieniche generali svolti dagli operatori negli stabilimenti per la 

produzione e l’immissione sul mercato di carni fresche e volatili da cortile. 

In questa Nota Applicativa viene riportato il protocollo per il campionamento microbiologico delle 

carcasse. 


- OGGETTO 

Campionamento batteriologico delle carcasse bovine, suine, ovine, caprine, equine nei macelli e 

laboratori di sezionamento 

- OBIETTIVO 

Controllare le condizioni igieniche delle carcasse per valutare la corretta esecuzione delle operazioni di 

pulizia, sanificazione, disinfezione 

- RIFERIMENTI LEGISLATIVI 

Gazzetta Ufficiale delle Comunità Europee L 165/48 21.6.2001 



Direttiva 95/23/CE 

Direttiva 97/79/CE 


Asettico, azioni correttive, carcassa, controllo ufficiale, delimitatore, HACCP, limiti critici, livello 

accettabile, metodo distruttivo, metodo non distruttivo, metodo della spugna, metodo del tampone, punti 

di controllo critico, tampone, veterinario ufficiale 


Direttore di produzione 

- MATERIALE 

Metodo distruttivo 

Sistema di campionamento per carotaggio “Surgel” - Codice n. 4760 

Flaconi sterili “Screw” - Codice n. 7105 

Sacchetti sterili “Presto Chiuso” - Codice n. 6331) 

Guanti monouso “Ipo-Glove” - Codice n. 17456/17457/17458 

Metodo non distruttivo 

Kit “Carcass-Sampling-Kit” - Codice n. 17475 contenente: 

1. Spugna sterile in sacchetto richiudibile 

2. Delimitatore di area sterile di 100 cm2 

3. Soluzione diluente 

4. Guanti sterili 

Trasporto al laboratorio 

Frigorifero portatile “Cryo-Penguin” - Codice n. 17570 

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Sonda “SURGEL” Sistema di campionamento Sacchetti “SPONGE-BAG” 

Codice: 4760 “CARCASS SAMPLING KIT” - Codice: 17475 Codice: 13273 

- PROTOCOLLO 

Metodo di campionamento distruttivo 

1. Ultimate le operazioni di macellazione, ma prima del raffreddamento, indossando guanti monouso, prelevare 4 campioni di tessuto per 

un totale di 20 cm2 mediante sonda di carotaggio sterile. 

2. Trasferire asetticamente i 4 campioni in un contenitore o sacchetto sterile ed inviarli immediatamente al laboratorio 

(conservazione a +4 °C) per successiva omogeneizzazione in Stomacher. 

Metodo di campionamento non distruttivo 

1. Inumidire il tampone sterile (o la spugna sterile) con soluzione sterile (0,1% peptone + 0,85% NaCl) prima della raccolta del campione. 

2. Strofinare il tampone in senso verticale, orizzontale e diagonale, per non meno di 20 secondi sulla superficie della carne delimitata dal 

delimitatore 100x100 mm, esercitando la maggior pressione possibile. 

3. Per ottenere risultati di significato comparabile, occorre mantenere una tecnica coerente tra i campioni, le carcasse ed i piani di 

campionamento. 

Punti di campionamento 

Bovini: collo, punta di petto, pancia, scamone 

Ovini e caprini: pancia, costato, punta di petto, petto 

Suini: lombo, guanciale, faccia mediale della coscia (prosciutto), pancetta 

Equini: pancia, punta di petto, lombo, scamone 

Procedura di campionamento e numero di campioni da prelevare 

- Frequenza di campionamento 

Ogni settimana, nel corso di una sola giornata, si dovranno campionare tra 5 e 10 carcasse. La frequenza si può ridurre a test quindicinali 

qualora si ottengano risultati soddisfacenti per sei settimane consecutive. Ogni settimana si dovrà cambiare il giorno di campionamento 

per assicurare che venga coperta l’intera settimana. La frequenza del test sulle carcasse in impianti a bassa capacità, come previsto 

dall’articolo 4 della Direttiva 64/433/CEE e per macelli che non operano a tempo pieno, sarà determinata dal veterinario ufficiale in base 

al suo giudizio relativo agli standard di igiene che riguardano l’abbattimento in ciascun impianto. 

Si deve procedere al prelievo di un campione da 4 parti di ogni singola carcassa a metà del giorno di abbattimento e prima che inizi la 

procedura di raffreddamento. Per ogni campione si procede all’identificazione della carcassa, alla registrazione della data e dell’ora del 

prelievo del campione. Prima dell’esame verranno raccolti i campioni dei vari posti di campionamento (scamone, pancia, punta di petto e 

collo) della carcassa esaminata. Se si ottengono risultati inaccettabili e qualora l’adozione di azioni correttive non basti ad ottenere 

condizioni igieniche migliori, non si procederà alla raccolta di ulteriori campioni sino a quando non saranno risolti i problemi di 

preparazione. 

- Trasporto al laboratorio 

Il trasporto al laboratorio deve avvenire in condizioni di refrigerazione (+4 °C). 

Per ulteriori informazioni sul controllo delle superfici con il metodo “Sponge-Bag” fare riferimento alla Nota Applicativa 220. 


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Il campionamento microbiologico della superficie delle carcasse animali, al fine di valutarne il grado di 

igienicità, è una operazione che deve essere eseguita attenendosi ad un preciso protocollo per garantire 

una affidabilità dei risultati. Le norme riportate nel regolamento “Meat and Poultry Inspection 

Regulations” emanate nel 1996 dal Food Safety Inspection Service della U.S. Dpt of Agriculture USA 

(USDA) possono essere prese da esempio nel formulare la Procedura Operativa Standard in 

applicazione alla Buona Prassi di Fabbricazione ed alla Buona Prassi Igienica. In particolare, il “metodo 

della spugna” descritto nelle norme USDA si adatta particolarmente bene alla ricerca di microrganismi 

patogeni, in quanto il loro numero è in genere limitato e la spugna riesce meglio del classico tampone a 

recuperare dalla superficie della carcassa le cellule vive. 


- OGGETTO 

Campionamento microbiologico della superficie di carcasse bovine, suine, ovine, caprine. 

- OBIETTIVO 

Ottenere un campionamento microbiologico rappresentativo al fine di una corretta valutazione delle 

condizioni igieniche di produzione, in particolare per il recupero di germi patogeni. 


Asepsi, carcassa, HACCP, patogeno, popolazione microbica, UFC/cm 2 , USDA. 


Direttore laboratorio microbiologico. 

- MATERIALI 

Kit “Carcass-Sampling-Kit” - Codice n. 17475 contenente: 

- Spugna sterile in sacchetto richiudibile 

- Diluente sterile 

- Delimitatore di area di 100 cm 2 (10x10 cm) 

- Guanti sterili 

- PROTOCOLLO 

(a) Le fasi di campionamento devono essere eseguite attenendosi alle classiche tecniche di asepsi e 

riguardano la pancia, lo scamone, le zampe, la zona pettorale. 

(b) Aprire il sacchetto contenente la spugna e, indossando i guanti sterili, inumidire la spugna con il 

diluente sterile, versando direttamente il diluente (10 ml circa) nel sacchetto. 

(c) Far aderire il delimitatore di area direttamente alla parte superficiale della carcassa e passare la 

spugna sul tessuto muscolare-adiposo dieci volte in direzione verticale e dieci volte in direzione 

orizzontale. 

(d) Trasferire lo stesso delimitatore di area sul tessuto della zona pettorale della carcassa e strofinare 

con la spugna, dallo stesso lato usato precedentemente, dieci volte in direzione verticale e dieci volte 

in direzione orizzontale. 

(e) Trasferire lo stesso delimitatore di area nella regione delle zampe e compiere la stessa operazione di 

strofinamento impiegando però il lato opposto della spugna. 

(f) Reintrodurre la spugna (che ha così campionato 300 cm 2 di superficie) nel suo sacchetto. 

Aggiungere 15 ml di diluente sterile. Chiudere il sacchetto ermeticamente ed inviarlo al laboratorio 

(ogni spugna deve fare riferimento ad una singola carcassa). Se l’analisi microbiologica non viene 

eseguita immediatamente, il trasporto deve avvenire in condizioni refrigerate. 

Per ulteriori informazioni sul controllo delle superfici con il metodo “Sponge-Bag” fare riferimento alla 

Nota Applicativa 220. 

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Nei Rapporti ISTISAN del 2004 del Reparto di igiene delle Acque Interne -Dipartimento di Ambiente e 

Connessa Prevenzione Primaria dell' Istituto Superiore di Sanità sono riportati i "Metodi Analitici di 

riferimento per le acque destinate al consumo umano ai sensi del D.Lvo n. 31/2001". Si riporta il testo 

relativo al prelievo dei campioni di acqua destinati alle analisi microbiologiche. 

II prelievo dei campioni di acqua 

Il campionamento si svolge secondo una serie di procedure che permettono di raccogliere un' aliquota 

ridotta dell'acqua da sottoporre ad analisi. 

L'esecuzione dell'esame microbiologico delle acque destinate al consumo umano prevede che il prelievo 

dell'acqua da esaminare venga effettuato mediante un "campionamento istantaneo” che consiste nella 

raccolta di un unico campione in un'unica soluzione, in punti rappresentativi ed in un tempo breve. 

Questo tipo di campionamento è distintivo soltanto delle condizioni contingenti presenti all' atto del 

prelievo. Al momento del campionamento è necessario considerare con attenzione i volumi di acqua da 

prelevare. Essi vanno definiti in funzione dei parametri da determinare e comunque devono essere 

superiori al minimo necessario per procedere alto svolgimento degli esami richiesti. 

Il prelievo dei campioni microbiologici deve essere effettuato con recipienti sterili, a perfetta tenuta, di 

materiale idoneo e utilizzati solo a questo scopo. 

In genere, contenitori di capacità di 500 ml sono sufficienti per l'analisi dei parametri indicatori. 

Di utilità sono le bottiglie di vetro Pyrex e di materiale plastico. 

Le bottiglie di vetro Pyrex (borosillcato) devono comunque essere sterilizzate in laboratorio a calore 

secco (a circa 160° per 60 minuti) o a calore umido (a circa 121° per 20 minuti) in condizioni controllate 

e utilizzate entro tre mesi dalla sterilizzazione se conservate in modo idoneo. 

Prima della sterilizzazione, i tappi delle bottiglie devono essere ricoperti da fogli protettivi (in genere di 

alluminio). 

Le bottiglie monouso in materiale plastico, generalmente polietilene, disponibili in commercio, sono già 

sterili e hanno il vantaggio di essere leggere, resistenti alle variazioni termiche ed economiche; anche in 

questo caso è necessario attenersi alla data di scadenza indicata dai produttore. 

Per la raccolta di campioni da analizzare dal punto di vista microbiologico non possono essere usati 

contenitori metallici. 

Per la ricerca di patogeni (virus, parassiti), e quindi eventualmente per la necessità di prelevare grandi 

volumi di acqua (100-1000 ml), spesso è opportuno effettuare il prelievo/concentrazione del campione in 

sito. 

Pertanto, in funzione dell'esame da svolgere, è opportuno, preventivamente al prelievo, verificare il 

volume occorrente allo svolgimento dell'analisi indicato in ciascuno dei metodi riportati di seguito. 

È di fondamentale importanza che durante le procedure di campionamento sia evitata qualsiasi 

contaminazione e modificazione della qualità del campione da esaminare. 

Le acque destinate al consumo umano sono spesso disinfettate e contengono quindi tracce di cloro. 

Bottiglie/contenitori per i prelievi devono quindi contenere sodio tiosolfato in concentrazione idonea ad 

inibire l'azione del disinfettante. Ai valori di pH normalmente rilevabili delle acque potabili è 

generalmente sufficiente aggiungere sodio tiosolfato pentaidrato a una concentrazione di 18 mg/L che è 

in grado di neutralizzare concentrazioni di doro residuo libero e combinato superiori a 3 mg/L. 

Poiché l'introduzione, in bottiglie già sterilizzate, di una soluzione, se pure sterile, di neutralizzante può 

comportare il rischio di una contaminazione, è opportuno quindi che, prima della sterilizzazione delle 

bottiglie, venga aggiunta una soluzione di sodio tiosolfato pentaidrato all'1,8% m/v (corrispondente a 

circa 0,1 mL) per ogni 100 ml di capacità della bottiglia. La presenza di sodio tiosolfato, nelle quantità 

indicate, non interferisce con i risultati delle analisi microbiologiche non avendo effetto sui 

microrganismi, in commercio sono comunque disponibili bottiglie sterili già contenenti il sodio tiosolfato 

in concentrazione idonea. 

Le bottiglie/contenitori utilizzati per prelevare campioni per analisi microbiologiche non devono mai 

essere sciacquati all'atto del prelievo. Il risciacquo oltre ad esporre i recipienti a possibili contaminazioni, 

asporterebbe il sodio tiosolfato eventualmente presente. 

Prelievi effettuati dai rubinetti per l'analisi di acque destinate al consumo umano devono essere effettuati 

secondo procedure che consentano di ottenere campioni rappresentativi. 

I rubinetti devono essere disinfettati prima del campionamento. 

Eccezioni a questa pratica includono i casi in cui è necessario ottenere invece campioni per indagini 

epidemiologiche e che comunque devono fornire altri tipi di informazioni. 

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I rubinetti devono essere detersi e devono essere eliminati depositi, mucillagini, sostanze grasse, detergenti o agenti disinfettanti che 

possono avere influenza sui risultati dell'analisi microbiologica. Il collo all'interno del rubinetto può essere sede di biofilm che, per quanto 

possibile, vanno eliminati. Per la pulizia deve essere eseguita una disinfezione con una soluzione di sodio ipoclorito o analoghi 

disinfettanti: possono essere utilizzate soluzioni al 10% di sodio ipoclorito commerciale o di Sodio dicloroisocianurato. 

Per l'effetto corrosivo le soluzioni vanno utilizzate dagli operatori con particolari cautele. Se vengono in contatto con la pelle, lavare al 

momento con acqua. 

Disinfettare il rubinetto esternamente ed internamente rimovendo, se presenti, tubi e guarnizioni di plastica e gomma. I depositi di grasso 

devono essere rimossi strofinando con 2-propanolo. 

Una volta lavato il rubinetto con la soluzione disinfettante, lasciare agire il disinfettante per 2-3 minuti. Sciacquare poi l'esterno con acqua 

per assicurarsi che non ci siano più residui di disinfettante. 

Aprire quindi il rubinetto e fare scorrere l'acqua per un tempo sufficiente a far sì che i disinfettanti vengano eliminati prima della raccolta 

del campione. L'operazione di flambaggio del rubinetto, solo supplementare alla pulizia e disinfezione comunque obbligatorie, può essere 

effettuata solo su rubinetti metallici. Tuttavia, se effettuata in modo superficiale fugace, non esplica alcun effetto sulla eventuale 

contaminazione microbica presente. 

Volendo procedere al flambaggio, per la produzione della fiamma utilizzare gas propano o butano che permettono sia di raggiungere 

temperature più elevate sia di controllare la fiamma per evitare danni a persone e cose. 

Eseguire il prelievo dopo avere fatto scorrere dal rubinetto l'acqua per 1-3 minuti evitando di modificare la portata del flusso durante la 

raccolta del campione. 

All'atto del prelievo, aprire la bottiglia sterile avendo cura di non toccare la parte interna del tappo che andrà a contatto con il campione 

prelevato, né l’interno del collo della bottiglia e provvedere all'immediata chiusura della stessa subito dopo il prelievo, avendo cura di non 

riempirla completamente al fine di consentire una efficace omogeneizzazione del campione, in laboratorio, al momento dell'analisi. 

Anche le apparecchiature eventualmente necessarie per il campionamento devono risultare sterili, anche allo scopo di evitare fenomeni di 

contaminazione crociata. Se il prelievo viene effettuato per immersione, la bottiglia o il contenitore devono essere sterilizzati avvolti in fogli 

protettivi. All'atto del prelievo, dopo avere liberato dall'involucro la bottiglia, la superficie esterna che entrerà in contatto con il campione 

non deve mai essere toccata con le mani, bensì la bottiglia deve essere afferrata con una pinza sterile o con altro sistema idoneo. 

L'apparecchiatura più semplice per lo svolgimento del campionamento istantaneo a profondità predeterminata è rappresentata da flaconi 

zavorrati che, immersi chiusi nella massa di acqua, si aprono a comando alla profondità prestabilita. 

Il campione prelevato deve essere accompagnato da tutte le indicazioni necessarie alla sua identificazione, quali la data e l'ora del 

campionamento, il tipo di acqua, la precisa annotazione del punto in cui è stato effettuato il prelievo e devono altresì essere trasmesse, 

con il campione, tutte le indicazioni concernenti le eventuali determinazioni effettuate in loco e qualunque altra osservazione possa 

risultare utile nella interpretazione dei risultati di laboratorio. A parte ogni esigenza di natura giuridica, che può prevedere precise modalità 

dì identificazione del campione, è comunque necessario che il campione venga contrassegnato sia con il codice numerico, sia con 

l'indicazione in chiaro del punto di campionamento. 


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Fax: 0240090010 




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Mittente 

Il mittente ha la responsabilità di: 

a) concordare in anticipo la spedizione con il destinatario e con lo spedizioniere per assicurare che il 

materiale venga accettato dal destinatario ed il trasporto avvenga seguendo la via più diretta 

evitando la consegna nei giorni festivi, prefestivi; 

b) compilare correttamente tutta la documentazione relativa la trasporto; 

c) rendere noto al destinatario la presunta data di arrivo del materiale in tempo debito. 

Spedizioniere 

Lo spedizioniere deve: 

a) mettere a disposizione del mittente i documenti di viaggio necessari e le istruzioni per la corretta 

compilazione; 

b) fornire informazioni sul corretto confezionamento; 

c) concordare con il mittente il sistema di trasporto più appropriato; 

d) conservare i documenti di spedizione; 

e) garantire durante il trasporto le corrette condizioni di conservazione del materiale; 

f) rendere noto in tempo utile al mittente eventuali ritardi di consegna. 

Destinatario 

Il destinatario deve: 

a) nel caso di materiale proveniente da nazione estera, richiedere le necessarie autorizzazioni alle 

autorità; 

b) prevedere un efficiente recupero del materiale biologico al momento dell’arrivo ed al suo 

trasferimento in ambiente adeguato; 

c) rendere noto al mittente l’avvenuto arrivo del materiale. 

“Bio-carrier” 

Valigetta porta campioni 

“Penguin 50 New” 

Frigocongelatore portatile 

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Le attività connesse alla spedizione e alla ricezione di materiale biologico, se non gestite correttamente, 

rappresentano un potenziale fattore di rischio per la salute sia dei ricercatori sia della popolazione in 

generale. Allo scopo di definire le responsabilità e le modalità operative da applicare per una corretta 

gestione dei materiali biologici, pericolosi e non, recapitati all'Istituto Superiore di Sanità, sono state 

create delle linee guida che hanno anche lo scopo di informare tutti i soggetti esterni che spediscono 

materiale biologico per fini di studio, ricerca o istituzionali, circa i criteri adottati dall'ISS per 

l'accettazione o il rifiuto. 

Parole Chiave 

materiale pericoloso, campioni, gestione. 

L’ Istituto Superiore di Sanità (ISS), nell'espletamento dei suoi compiti istituzionali di ricerca, controllo e 

consulenza alle autorità competenti, è costantemente coinvolto nell'attività di gestione di materiali 

biologici, pericolosi e non. 

Allo scopo di assicurare una corretta e uniforme gestione della spedizione e del ricevimento di tali 

materiali, nell'anno 2003 è stato istituito un gruppo di lavoro multidisciplinare con specifiche competenze 

nei settori: batteriologia, 

immunologia, virologia, sistemi di qualità, tecnico-logistico e amministrativo. Il primo lavoro prodotto dal 

gruppo è stata la procedura "ISPGMBGE01.000 - Spedizione di materiale biologico o altro materiale 

rilevante per la ricerca scientifica". L'applicazione dei criteri contenuti nel suddetto documento ha 

evidenziato la necessità di elaborare linee guida destinate al personale dell'Istituto direttamente 

coinvolto nella ricezione del materiale biologico. Allo scopo, nel 2004 è stato emesso e distribuito 

internamente il documento "Ricezione di materiale biologico o altro materiale rilevante per la ricerca 

scientifica". 

La pubblicazione delle presenti linee guida nasce dalla necessità di informare tutti i committenti esterni, 

intenzionati a inviare materiale biologico all'Istituto per le attività sopra citate, circa la metodologia 

adottata dall'Istituto per accettare o rifiutare materiale biologico pericoloso o non pericoloso in ingresso. 

Scopo delle Linee Guida 

Obiettivo delle linee guida è di definire tutte le responsabilità, le informazioni e le modalità operative da 

conoscere e applicare al fine di gestire correttamente la ricezione di materiale biologico o altro materiale 

rilevante per la ricerca scientifica, inviato da un soggetto esterno all'ISS, di seguito identificato come 

mittente. 

La presente procedura tratta nel dettaglio: 

• la definizione dei materiali oggetto della procedura; 

• le modalità di accettazione in ingresso dei materiali; 

• le responsabilità in materia di gestione (controllo alla ricezione, corretta conservazione, 

consegna al destinatario responsabile dell'attività da svolgere mediante il materiale) ; 

• le modalità per l'eventuale rifiuto dei materiali risultati non conformi ai dettami della 

presente procedura. 

Modalità Operative 

La Figura illustra le attività da eseguire per la gestione dei materiali ricevuti. 

Ricezione materiali biologici 

II materiale biologico, pericoloso o non pericoloso, così come definito precedentemente, recapitato 

all'ISS a mano, tramite corriere o servizio postale deve transitare obbligatoriamente attraverso l'Ufficio 

Campioni, sito presso l'edificio 28, piano A, responsabile della ricezione e della registrazione del 

materiale. 

I committenti abituali dell'ISS hanno ricevuto adeguate istruzioni e indirizzi per la spedizione del 

materiale. Tutto il personale dell'Istituto che dovesse ricevere direttamente, per errore, del materiale 

biologico o altro materiale rilevante per la ricerca scientifica dovrà informare il proprio committente della 

nuova procedura in atto e provvedere autonomamente al transito del materiale presso l'Ufficio Campioni 

per le operazioni di registrazione. 

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 


Definizioni 

Materiale biologico pericoloso 

Qualsiasi materiale di origine umana, animale e vegetale o microrganismi, incluse loro parti e loro prodotti, in grado di produrre, 

direttamente o indirettamente, anche potenzialmente, danno all'uomo, agli animali e/o all'ambiente. 

Materiale biologico non pericoloso 

Qualsiasi materiale di origine umana, animale e vegetale o microrganismi, incluse loro parti e loro prodotti, non previsto dal precedente 

paragrafo. 

Unità operativa ISS 

Dipartimenti, Centri Nazionali e Servizi tecnico-scientifici dell'ISS. 

Mittente 

Persone fìsiche, enti, istituzioni, autorità competenti, pubbliche amministrazioni centrali e periferiche aventi diritto, a qualunque titolo, 

all'invio di materiale biologico o altro materiale, rilevante per la ricerca scientifica, all'ISS. 

Destinatario 

Persona fisica, dipendente dell'ISS, appartenente a una delle unità operative specificate sopra definite, responsabile dell'attività da 

svolgere sul materiale o per mezzo del materiale ricevuto. 

Registrazione 

Sistema di gestione delle informazioni relative ai materiali ricevuti costituito dal Registro Corrieri modulo ISPGMBGE02.120 e dalle 

Schede Rifiuto Corrieri modulo ISPGMBGE02.130. 

Le modalità di registrazione sono descritte in queste linee guida. 

La conservazione dei Registri Corrieri e delle Schede Rifiuto Corrieri è a cura del responsabile dell'archivio centrale dell'ISS, che ne 

garantirà l'archiviazione per almeno 5 anni. 


. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 


II personale addetto all'Ufficio Campioni provvederà a: 

• esaminare la documentazione allegata (ad esempio, bolla di trasporto) per verificare la presenza del destinatario e del mittente; 

• esaminare il confezionamento esterno per verificare: l'integrità del confezionamento stesso, presenza di sigilli ecc.; la corrispondenza 

del mittente/destinatario (se presente) con quanto riportato nella documentazione allegata; la presenza di eventuali etichette 

per la corretta conservazione del contenuto; 

• registrare l'avvenuta ricezione del materiale indicando il mittente, il luogo di provenienza, la data di arrivo, gli estremi del documento di 

trasporto (nel caso di consegna mediante corriere o servizio postale) o la dicitura "a mano" (in mancanza di un documento di trasporto) 

e le condizioni di conservazione (refrigerato, congelato, a temperatura ambiente) nel Registro Corrieri. 

Il materiale viene dichiarato non accettabile se risulta: 

• privo di mittente o con mittente indecifrabile; 

• con l'indicazione del mittente difforme tra la confezione e la bolla di trasporto; 

• privo di destinatario o con destinatario indecifrabile; 

• con destinatario diverso dall'ISS e/o difforme dalla bolla di trasporto; 

• con destinatario generico (ad esempio, ISS) ed evidentemente danneggiato, aperto o, se previsto, privo dei necessari sigilli. 

In tal caso si procede secondo le modalità illustrate nel paragrafo riguardante la gestione dei materiali biologici non accettabili. 

Se il materiale è accettabile, il personale dell'Ufficio Campioni verifica che il mittente indicato nella bolla e/o sulla confezione sia incluso 

nell'elenco committenti abilitati, elenco redatto dinamicamente dal personale stesso utilizzando il modulo ISPGMBGE02.I10; nel caso in 

cui il mittente non sia incluso in detto elenco si provvederà a rintracciare il destinatario o l'unità operativa per l'autorizzazione 

all'aggiornamento del documento e al proseguimento della procedura. 

Consegna al destinatario del materiale biologico 

II materiale biologico, dichiarato accettabile dall'Ufficio Campioni, deve essere consegnato immediatamente al legittimo destinatario o, in 

mancanza di questi, all'unità operativa competente. 

A tale scopo, il personale addetto all'Ufficio Campioni provvederà a individuare l'unità operativa del destinatario e a comunicare l'arrivo del 

materiale chiamando il relativo numero telefonico, che deve essere attivo negli stessi orati dell'Ufficio Campioni, riportato nell'elenco 

telefonico unità operative modulo ISPGMBGE02.I00. 

Il materiale viene dichiarato non accettabile se non si riesce in alcun modo a individuare un destinatario né un'unità operativa 

competente, anche dopo aver contattato direttamente il mittente; in tal caso si procede secondo le modalità illustrate nel paragrafo 

riguardante la gestione dei materiali biologici non accettabili. 

Se il materiale è accettabile, il personale dell'Ufficio Campioni lo consegna al legittimo destinatario o, in alternativa, al personale dell'unità 

operativa competente preposto al ritiro del materiale biologico. Contestualmente viene completata la registrazione dei dati 

all'accettazione, inserendo i nominativi del destinatario e dell'incaricato del ritiro e la data del ritiro nel Registro Corrieri. 

Gestione dei materiali biologici non accettabili 

I campioni biologici dichiarati non accettabili vengono registrati dal personale addetto all'Ufficio Campioni, procedendo come segue: 

• riportando nel Registro Corrieri la dicitura "non accettabile" nella colonna incaricato 

del ritiro; 

• compilando in tutti i suoi campi la Scheda Rifiuto Corrieri modulo ISPGMBGE02.I30, 

indicando nel dettaglio il motivo del rifiuto e le modalità di scarico: restituito al vettore, 

qualora possibile; in quarantena, secondo le modalità illustrate nel relativo paragrafo, 

in tutti gli altri casi. 

Messa in quarantena di materiali biologici 

I campioni biologici dichiarati non accettabili, secondo quanto prescritto nei paragrafi relativi alla ricezione e consegna al destinatario del 

materiale biologico, e non direttamente restituibili al vettore, devono essere posti in quarantena e conservati, unitamente a una copia della 

relativa Scheda Rifiuto Corrieri, all'interno di un locale dedicato presso l'Ufficio Campioni. 

II materiale biologico viene mantenuto in quarantena per un minimo di cinque giorni lavorativi dalla data riportata sulla relativa Scheda 

Rifiuto Corrieri; al termine di tale periodo l'addetto dell'Ufficio Campioni contatterà l'autorità competente per lo smaltimento, registrando la 

data di uscita nel campo annotazioni della suddetta scheda. 

Contestualmente alla messa in quarantena di ciascun materiale non accettabile, l'Ufficio Campioni provvederà a inviare a tutto il 

personale dell'ISS un messaggio di posta elettronica per segnalare la presenza di materiale biologico in quarantena; il messaggio dovrà 

contenere tutte le informazioni disponibili e utili per l'identificazione del materiale. 

Qualora durante il periodo di quarantena venisse individuato il legittimo destinatario del materiale, il personale addetto all'Ufficio Campioni 

dovrà: 

• riportare nel campo annotazioni della Scheda Rifiuto Corrieri la dicitura "consegnato al destinatario" e la data del ritiro; 

• compilare nuovamente il Registro Corrieri riportando nella colonna mittente la dicitura "dalla quarantena" e nella colonna data arrivo la 

data di uscita dalla quarantena. 

Bibliografia consigliata 

IATA. Dangerous goods regulations, 45th edition 2004. Disponibile all'indirizzo: http://www.iata.org/ 

DL.vo 19 settembre 1994, n. 626 e successive modifiche ed integrazioni. 

Circolare del Ministero della Salute, 8 maggio 2003, n. 3. 

Raccomandazioni per la sicurezza del trasporto di materiali infettivi e campioni diagnostici. 

Disponibile all'indirizzo http://www.ministerosalute.it 

Circolare 7 gennaio 2004 del Ministero della Salute Indicazioni esplicative per l'applicazione del Divo 14 marzo 2003, n. 65. 

DL.vo 14 marzo 2003, n. 65. Attuazione delle Direttive 1999/45/CE e 2001/60/CE relative alla classificazione, all'imballaggio e 

all'etichettatura dei preparati pericolosi. 

Procedura ISPGMBGE01.000 Spedizione di materiale biologico o altro materiale rilevante per la ricerca scientifica, emessa dal Gruppo 

materiali biologici e messa in vigore il 9 luglio 2003 con Protocollo ISS n. 35851/SP 3.3 

Ministero delle Infrastrutture e dei Trasporti. Autorità Competente in materia. Disponibile all'indirizzo: http://www.infrastrutturetrasporti.it 


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Per il monitoraggio ambientale ai fini di evidenziare possibili attacchi da agenti chimici, fisici e biologici 

sono disponibili 4 differenti sistemi campali: 

Modulo A - Campionamento di aerosol 

Modulo B - Campionamento di liquidi e solidi 

Modulo C - Trasferimento del materiale campionato 

Modulo D - Analisi sul campo 

A. CAMPIONAMENTO DI AEROSOL 

International PBI ha messo a punto e prodotto uno specifico campionatore di aria: il “SAS -PCR”. Il 

sistema di campionamento è brevettato: il liquido di raccolta dell’agente chimico o biologico aspirato è 

fatto circolare continuamente in una serpentina per facilitare il contatto con l’aerosol. Il liquido viene poi 

analizzato con le tradizionali tecniche analitiche (ad esempio microbiologia o PCR). 

Cassetta Campale per prelievo Campioni in Aerosol 

Modulo A – Aeriformi 

Posizione 2.1.2.1 – Destinazione di utilizzo: Prelievo Aerosol 

29498 - Campionatore “SAS-PCR” 

Il campionatore “SAS-PCR” è uno strumento destinato a monitorare la presenza di microrganismi 

patogeni nell’aria. L’aria ed il fluido sterile vengono convogliati assieme in un contenitore comune ed il 

liquido viene sempre rimesso in circolo per la cattura di un maggior quantitativo di aria. 

Il campionatore “SAS-PCR” è corredato di batterie ricaricabili . 

86459 - Carica-batteria “Recharge Quick” per campionatore “SAS-PCR” 

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 


Posizione 2.1.2.1. – Destinazione di utilizzo: Etichettare, Contrassegnare Campioni 

63090020 - Etichetta “Poli-Labels” 24x48 mm per identificazione campioni 

Etichette impermeabili, resistenti ai prodotti chimici, rivestite in plastica e resistenti agli agenti atmosferici, a differenza delle tradizionali 

etichette in carta. 

13482 - Etichetta “Color” rotonda per identificazione campioni 

Etichette che aderiscono perfettamente ad ogni tipo di superficie: metallo, legno, vetro, plastica o carta. 

Posizione 2.1.2.1. – Destinazione di utilizzo: Valigetta trasporto campionatore “SAS-PCR” 

4262/ 84675 - Valigetta per campionatore “SAS-PCR” 

Valigetta in alluminio dotata di n°2 di maniglie abbattibili poste sulle fiancate , interno opportunamente sagomato per consentire 

l’alloggiamento e la tenuta del campionatore “SAS-PCR” , verde per mascheramento I.R., secondo specifiche richieste. 

B. CAMPIONAMENTO DI LIQUIDI E SOLIDI 

Il modulo B è completo di tutti i sistemi di prelievo dei campioni dal terreno, dall’acqua, da liquidi e sostanze biologiche, da alimenti, da 

superfici. 

Cassetta Campale per Prelievo Campioni di Liquidi e Solidi 

Modulo B – Liquidi e Solidi 

Posizione 2.1.2.2. – Destinazione di utilizzo: Prelievo Campioni Liquidi 

61320020 - Pompa vuoto manuale “Hand-Vacuum” per prelievo campioni liquidi 

Pompa per vuoto corpo in cloruro di polivinile infrangibile - funzionamento manuale - resistenza alla corrosione - capacità di vuoto: 635 

mm Hg - con e senza manometro di controllo. 


2117-0250 - Flacone “Straight” Tpx trasparente con tappo vite cap.250 ml 

Flacone in polipropilene, semitrasparente - sterilizzabile in autoclave - coperchio a vite in polipropilene - capacità 250 ml 


2153-0700 - Sistema chiusura a 2 vie per flacone “Straight” cap. 250 ml 

Sistema per trasferimento liquidi - 2 ingressi - per collegamento tubazioni al silicone - da abbinare al flacone “ Straight ” 


. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 



2289 - Tubo in silicone Ø 5x9 mm per colleg. pompa / sistema di prelievo 

Tubo in silicone, trasparente - sterilizzabile fino a 180 °C - esente da componenti con effetti tossici e fisiologici. 

Posizione 2.1.2.2. – Destinazione di utilizzo: Prelievo Campioni Terreno 

16493 - Sessola in plastica sterile monouso per prelievo campioni di terreno 

Utensile in polistirene - sterile - ideale per campioni destinati ad analisi microbiologiche, chimiche, ambientali, ecc. 

Posizione 2.1.2.2. – Destinazione di utilizzo: Prelievo-Rimozione Terreno 

15822 - Spatola “Poli-Spa” sterile monouso per prelievo-rimozione terreno 

Spatola in polistirene sterile - estremità appuntita - capacità 15 mL - lunghezza 229 mm 

Posizione 2.1.2.2. – Destinazione di utilizzo: Prelievo vari 

5678 - Pinzetta “Forpin” sterile monouso 

Pinze in polipropilene bianco - sterili - superficie zigrinata e punte ricurve per facilitare la presa dell'oggetto - lunghezza 127 mm. 

Posizione 2.1.2.2. – Destinazione di utilizzo: Prelievo substrati diversi 

5594 - Sonda-carotatore “Cebu” per prelievo sostanze dure 

Campionatore a forma conica - per il prelevamento di campioni di sostanze dure e pastose - in acciaio inox, sterilizzabile - dim.: lungh. 

177 mm, lungh. senza manico 125 mm; diam. 15/11 mm - peso 100 g. 

4747 - Sonda-carotatore “Stuve” per prelievo sostanze pastose 

Campionatore a pistone - per il prelevamento di sostanze pastose - asta con impugnatura in metallo cromato, sterilizzabile - lungh. 260 

mm - diam.est. 2 mm - diam.int. 9 mm - cap. 13 mL - peso 400 g. 

86531 - Sonda-carotatore “Multipro” per prelievo granaglie 

Campionatore a settori comunicanti - in alluminio - a 3 settori - per il rilevamento di polveri, granaglie e pellets in sacchi ed in fusti - 

sterilizzabile. 

Posizione 2.1.2.2. – Destinazione di utilizzo: Conservazione Campioni Solidi 

20445 - Sacchetto “Presto-Chiuso” sterile c/chiusura rapida 210 ml per cons. campioni 

Sacchetto in plastica speciale ad alta resistenza - sterile - trasparente - per il prelievo, il trasporto e la conservazione di campioni solidi o 

liquidi - saldatura su tre lati - sigillo superiore a strappo per garantire la sterilità - sistema di chiusura a nastro animato - disponibile con o 

senza area di scrittura - spessore da 0,057 a 0,102 mm - resistente fino a 82 °C - approvato FDA per il contenimento di alimenti. 

5287 - Sacchetto “Presto-Chiuso” sterile c/chiusura rapida 500 ml per cons. campioni 

Sacchetto in plastica speciale ad alta resistenza - sterile - trasparente - per il prelievo, il trasporto e la conservazione di campioni solidi o 

liquidi - saldatura su tre lati - sigillo superiore a strappo per garantire 

la sterilità - sistema di chiusura a nastro animato - disponibile con o senza area di scrittura - spessore da 0,057 a 0,102 mm - resistente 

fino a 82 °C - approvato FDA per il contenimento di alimenti. 

Posizione 2.1.2.2. – Destinazione di utilizzo: Confezionamento, Chiusura Campioni 

23568 - Forbice con manico plastica + lame acciaio inox 

Forbici con lame in acciaio inox autoaffilanti a punta arrotondata - impugnatura ergonomica rivestita in ABS. 

Posizione 2.1.2.2. – Destinazione di utilizzo: Prelievo da Superfici 

29023 - Sacchetto c/spugnetta “Speci-Sponge” completo di soluzione sterile spugnetta 

Sacchetto in plastica speciale ad alta resistenza - sterile - trasparente - dimensioni sacchetto 115x230 mm - capacità 540 mL - spessore 

0.064 mm - sigillo superiore a strappo per garantire la sterilità - sistema di chiusura a nastro animato - saldatura su tre lati - dotato di 

spugna (dim. 35x75 mm) per la raccolta del campione - disponibile in tre versioni: 1) con provetta da 10 mL di tampone fosfato sterile pH 

6.8, 2) con guanti sterili, 3) con tampone e guanti - ideale per il campionamento microbiologico (Listeria, Salmonella ed altri microrganismi 

patogeni) delle superfici e per il campionamento su carcasse animali per la ricerca di E. Coli (metodo USA Federal Register). 


. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 


Posizione 2.1.2.2. – Destinazione di utilizzo: Prelievo Campioni 

5713 - Bisturi “Scalpel” monouso sterile per prelievo campioni 

Bisturi sterile - manico in plastica, lama panciuta in acciaio inox. 

Posizione 2.1.2.2. – Destinazione di utilizzo: Prelievo Campioni 

7215 - Provetta “Vacuette” per prelievo liquidi fisiologici s/attivatore coagulazione 

6130 - Supporto “Holder” (da abbinare a provetta “Vacuette”) 

20861 - Ago cannula 18G (da abbinare a supporto + provetta “Vacuette” ) 

Provette di sicurezza in plastica per prelievo liquidi fisiologici - sterili - infrangibili - a vuoto costante - con tappo di sicurezza con 

diaframma in gomma perforabile - complete di supporto e ago sterile 18G 

Posizione 2.1.2.2. – Destinazione di utilizzo: Disinfettante per vari impieghi sul campo 

19073 - Disinfettante “Pharmasteril” flacone 1000 ml 

Dispositivo medico di classe IIA (n° certificazione Min. San. 0373) - flacone da 1 litro - soluzione pronta all'uso per strumenti e dispositivi 

medici - principio attivo benzalconio cloruro e sodio nitrito. 

Posizione 2.1.2.2. – Destinazione di utilizzo: Contenitori secondari per Campioni 

16503 - Sacchetto “Zip” con chiusura regolabile a cursore 

Sacchetto in plastica trasparente - dimensioni 18X32 mm - speciale chiusura a cursore regolabile - per contenimento di campioni / 

documenti. 

Posizione 2.1.2.2. – Destinazione di utilizzo: Etichettare, Contrassegnare Campioni 

63090020 - Etichetta “Poli-Labels” 24x48 mm per identificazione campioni 

Etichette impermeabili, resistenti ai prodotti chimici, rivestite in plastica e resistenti agli agenti atmosferici, a differenza delle tradizionali 

etichette in carta. 

15738 - Etichetta “QC-SEAL” per iden.contenitori aperti a seguito campionamento 

Etichetta controllo qualità per richiudere i sacchi dopo il campionamento - dim. 100x100 mm 

Posizione 2.1.2.2. – Destinazione di utilizzo: Valigetta mezzi per Campionamento solidi/liquidi 

4263 / 86476 - Valigetta per mezzi di campionamento prodotti solidi/liquidi 

Valigetta in alluminio dotata n°1 di maniglia posta sul coperchio , interno opportunamente sagomato per consentire l’alloggiamento e la 

tenuta dei materiali destinati al prelievo di campioni solidi / liquidi , verde per mascheramento I.R., verniciata secondo specifiche richieste. 

C. Trasferimento del materiale campionato 

Il modulo C è completo dei mezzi per garantire un idoneo trasferimento al laboratorio destinato alle analisi. 


Cassetta Campale per trasferimento Campioni Liquidi e Solidi 

Modulo C – Trasferimento Campioni Liquidi e Solidi 

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Posizione 2.1.2.3. – Destinazione di utilizzo: Prelievo Fluido 

29499 - Set prelievo / raccolta microrganismi in fase liquida “Spirantra” 

Contenitore raccolta campioni da abbinare al campionatore “Sas-PCR” 

Posizione 2.1.2.3. – Destinazione di utilizzo: Mantenimento Campioni a temperatura controllata 

9372 - Piastra eutectica “Fresh” per mantenimento campioni a bassa temperatura 

Posizione 2.1.2.3. – Destinazione di utilizzo: Telo protettivo vari impieghi 

LY1.558.936 - Telo protettivo impermeabile 4x5 metri 

Telo protettivo trasparente resistente ai solventi e allo strappo utile per rivestire e coprire oggetti anche di grandi dimensioni. 

Telo universale H 4 x 5 m. 

Posizione 2.1.2.3. – Destinazione di utilizzo: Valigetta Trasporto Campioni 

4264 / 86477 - Valigetta per conservazione e trasporto campioni 

Valigetta in alluminio dotata n°1 di maniglia posta sul coperchio , interno opportunamente coibentato per garantire l’isolamento termico dei 

campioni prelevati, verde per mascheramento I.R., verniciata secondo specifiche richieste. 

D – Rivelazione e Identificazione Campale 

Il Modulo D contiene i kit per una rapida rilevazione di possibili attacchi biologici. 


I recenti eventi terroristici rendono indispensabile mezzi diagnostici che consentano una rapida rilevazione di possibili attacchi biologici. I 

risultati dovrebbero essere disponibili in pochi minuti per consentire un rapido intervento riparatore. Per questo scopo sono stati messi a 

punto dei kit di facile ed immediato impiego in grado di fornire una risposta positiva o negativa nel giro di circa 15 minuti: si tratta della 

tecnologia LFSA (Lateral Flow Screen Assay). 

Kit disponibili 

Ogni kit comprende: 1 Piastrina analitica, 1 Contagocce, 1 Fiala di soluzione tampone. 

Per Bacillus anthracis spore - SMART Anthrax - Codice: 109202 

Per Botulino tossina - SMART Botulism Toxin - Codice: 108202 

Per Cholera - SMART Colera 01 - Codice: 113002 

Per Ricino - SMART Ricin - Codice: 124202 

Per Stafilococco enterotossina B - SMART - Codice: 110202 

Per Tularemia - SMART - Codice: 120202 

Per Yersinia Pestis F1 - SMART - Codice: 120202 

I kit di prelevamento campioni 

Sistema di campionamento per superfici ampie, polveri, liquidi, aria - BCK 130020 

Liquido di umidificazione Aseptisol - A 130250 

La procedura operativa dei kit SMART II 

Questi kit di nuova concezione si utilizzano sul campo analizzando campioni ambientali. 

1. Prelevare il campione e seguire le linee guida per portarlo in forma liquida. 

2. Togliere dalla sua confezione originale singola la piastrina di analisi. 

3. Versare 3 gocce (corrispondenti a circa 100 microlitri) del campione liquido nel pozzetto laterale della piastrina utilizzando l’apposito 

contagocce fornito nel kit. 

4. Attendere 3 minuti per permettere al campione di essere assorbito. Aggiungere poi 2 gocce di soluzione tampone dal contagocce 

fornito nel kit. Leggere i risultati dopo 15 minuti (non oltre 30 minuti). Interpretare il risultato osservando lo sviluppo di colorazione del 

Controllo (C) e del campione (T). Utilizzare la tabella per la interpretazione. 

Kit per biolumiscenza 

La determinazione della biolumiscenza (ATP) è molto utile per evidemziare con immediatezza la presenza anomala di alte cariche 

batteriche nell'ambiente che presumono condizioni a rischio biologico. 

Il kit è costituito dallo strumento di lettura e dai reattivi pronti all'uso in provette contenenti il tampone ed un mix di reagenti per la lisi 

delle cellule batteriche ed il rilascio di ATP. La determinazione analitica richiede pochi minuti. 

Kit di Sicurezza "R" 

Il kit è costituito da guanti e da materiale protettivo per il personale. 


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GUIDA ALLA SCELTA DEL SISTEMA DI OMOGENEIZZAZIONE A DISPERSIONE 


L’omogeneizzazione a dispersione è una tecnologia preparativa analitica che viene usata per: 

1. Ridurre in particelle estremamente fini (Ø≤2 mm) un solido immerso in un liquido; 

2. Effettuare dispersioni (solido + liquido, immiscibili) 

3. Effettuare emulsioni (liquido + liquido, immiscibili) 

L’omogeneizzazione a dispersione avviene sempre in ambiente liquido. 

Principio di funzionamento 

Il principio dell’omogeneizzazione a dispersione (Figura 1) è incentrato sull’attivazione di un’asta “a 

rotore-statore”, la cui estremità è costituita da un rotore con lame taglienti che ruota ad alta velocità 

all’interno di uno statore fermo. L’intercapedine tra rotore e statore è molto stretta. Rotore e statore sono 

caratterizzati da fori per l’entrata del campione nell’intercapedine dove verrà disgregato. 

L’omogeneizzazione avviene in 4 fasi: 

FASE 1 

Il rotore viene azionato ad alto numero di giri: si crea un effetto cavitazionale che attira il campione verso 

l’intercapedine rotore-statore; 

FASE 2 

Il campione passa all’interno delle finestre del rotore in movimento e subisce un primo effetto di taglio; 

FASE 3 

Il campione passa nell’intercapedine rotore-statore ed è sottoposto a una forza meccanica di attrito 

contro le pareti di rotore e statore e una forza cavitazionale che lo trascina. 

FASE 4 

Il campione viene sospinto all’esterno passando attraverso le finestre dello statore e subendo un 

secondo effetto di taglio. 

Ogni omogeneizzatore a rotore-statore è l’abbinamento di: 

- un gruppo motore; 

- un’asta di omogeneizzazione, da acquistare separatamente e intercambiabile, a seconda della 

tipologia di utilizzo. 

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Campi di applicazioni 

In linea generale, l’omogeneizzazione a dispersione trova applicazioni in diversi campi: 

- Ricerca medica - Carta e Tessile - Biotecnologie 

- Industria della Ceramica - Microbiologia - Industria del Tabacco 

- Industria Farmaceutica - Industria Petrolchimica - Industria Chimica 

- Controllo Scarichi-Inquinamento - Industria Alimentare - Industria delle Vernici 

- Industria Cosmetica 

Parametro fondamentale della scelta è sempre il volume di lavoro, ma modelli di valore prestazionale diverso possono lavorare sullo 

stesso volume. 

La MAPPA 1 rappresenta la serie HP-alte prestazioni, costituita da modelli da banco, che quindi richiedono uno stativo di fissaggio. 

Nella MAPPA 2 sono rappresentate le serie “Standard” e “Covenience”. Qui l’investimento è calcolato considerando la combinazione 

(gruppo motore+asta di omogeneizzazione). 


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Dopo questa prima scelta passiamo a vedere quali funzioni accessorie sono fornite 

TABELLA 2: FUNZIONI ACCESSORIE OMOGENEIZZATORI A DISPERSIONE 

Sono disponibili: 

A. Potenza nominale del gruppo motore, espressa in Watt. 

B. Aste di omogeneizzazione per campioni particolarmente difficili e refrattari alla disgregazione; 

C. Aste in plastica autoclavabile: permettono il ri-utilizzo oppure la scelta mono-uso e sono usate per evitare la contaminazione crociata 

tra un campione e il successivo. 

D. Aste per criogenia: per la disgregazione di campioni congelati (terra, fertilizzanti, frutta, verdura). 

E. Asta di agitazione: oltre agli assemblaggi per omogeneizzazione a dispersione è disponibile una soluzione per agitare fino a 40L di 

soluzione. 

F. Aste di omogeneizzazione a lame: oltre agli assemblaggi per omogeneizzazione a dispersione dispone anche asta a lame (e camere 

sigillanti) per un’omogeneizzazione a lame preparativa; 

G. Camere sigillanti: In resina industriale, vetro e in acciaio, usate per non disperdere composti nocivi volatili nell’ambiente di lavoro; 

H. Display digitale: per il controllo preciso della velocità, anziché un controllo manuale; 

I. Possibilità di programmazione: per l’assoluta riproducibilità della procedura. 

Descrizione A B C D E F G H I 

Micron-AX 35 

(Ex-Tritur) 

35 - S - - - - - - 

Micron-AX 125 125 - - - - - - - - 

Ultraturrax T8 100 X - - - - - - - 

Pro200 125 - - - - - X - - 

Dispergerate multi-AX 

(Ex Dispergerate500) 

500 - - - - - - - - 

Dispergerate uni-AX 500 - - - X - - - - 

Ultraturrax T18 500 X X - - - - - - 

Ultraturrax T25 500 X X - - - - S - 

Pro250 575 - - X - X X - - 

Pro300D 576 - - - - X X S - 

Ultraturrax T50 1100 X - - - - - X - 

Digit-AX 1800 X - - - X X S S 

Power-AX 2250 - - - - - - - - 

X = opzione disponibile 

S = di serie 

- = non disponibile 

POTENZA DEL MOTORE DELL’OMOGENEIZZATORE 

= Potenza < 150Watt 

= 500Watt ≤ Potenza ≤ 600 Watt = Potenza > 1000 Watt 

La scelta della soluzione adeguata 

Ci sono molte variabili che rendono apparentemente complessa la scelta della appropriata combinazione rotore-statore: 

- Disegno e grandezza del rotore-statore 

- Potenza del motore 

- Dimensione iniziale del campione 

- Dimensione finale del campione 

- Volume del medium 

- Viscosità del medium 

- Forma del contenitore 

- Profondità dell’immersione dell’asta a dispersione 

Per scegliere il corretto strumento è necessario interrogarsi sugli aspetti di tale scelta. 

Il punto è: “Quali sono le mie esigenze?” 

e di conseguenza: “Quale modello di omogeneizzatore a rotore- statore le soddisferà?” 

Le esigenze fondamentali 

1. Decidere il range di volume (mL, L) di lavoro. 

2. Selezionare quali strumenti lavorano sul volume richiesto e dunque l’asta di omogeneizzazione 

(detta anche: generatore a rotore-statore). 

3. Valutare la potenza del motore richiesta per svolgere il lavoro (tanto più viscoso il campione, tanto maggiore la potenza richiesta). 

Le esigenze specifiche 

Una volta che si sono stabilite le esigenze di base, bisogna approfondire l’analisi rispondendo ai seguenti quesiti: 

1. Qual è la natura del campione? 

- Campioni LIQUIDI A BASSA VISCOSITA’, SEMILIQUIDI 

Scegliere un’asta di omogeneizzazione a estremità piatta per qualsiasi volume trattato. 

- Campioni VISCOSI 

Richiedono un motore con potenza maggiore, rispetto ai campioni a bassa viscosità 

- Campioni FIBROSI 

Scegliere un generatore a estremità dentellata, oppure a lame per un’omogeneizzazione preparativa. 


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- Campioni SOLIDI 

Il diametro interno del generatore deve essere il doppio della particella di campione più grande. Anche per i campioni solidi immersi in 

liquido scegliere i generatori adeguati a granulometrie medio-grosse, per una omogeneizzazione preparativa. 

NOTA: se i campioni sono molto duri è meglio scegliere un’asta con i cuscinetti di acciaio (Es. Ultra-Turrax). 

2. I campioni producono aerosol nocivi e/o non si vogliono disperdere frazioni volatili? 

Usare camere porta-campione sigillanti (PRO200; PRO 250; PRO300D) oppure sistemi a chiusura ermetica (DispoMix). 

3. Qual è la dimensione delle particelle che si vuole ottenere dal trattamento? 

- Particelle di diametro ≤2 mm : omogeneizzatori a rotore-statore 

- Particelle di diametro 10-15 mm : omogeneizzatori a lame 

Nota: per campioni difficili si opera una prima omogeneizzazione a lame e una successiva a rotore-statore. Per soddisfare questa 

esigenza, i modelli PRO250 e Digit-AX possono funzionare sia con un’asta a lame che un’asta a rotore-statore. 

4. Si vuole uno strumento in grado di funzionare anche a lame? 

I modelli della linea PRO funzionano con lame e generatore rotore-statore. 

5. La cross-contaminazione è un problema? 

Di solito questo problema si presenta quando si lavora con RNA. Abbiamo dei generatori riutilizzabili in plastica autoclavabile: dato il loro 

costo molto contenuto è possibile lavorare sostituendo di volta in volta il generatore e poi decidere se gettarlo o riutilizzarlo sterilizzandolo 

in autoclave. 

Per i piccoli volumi (fino a 20 mL) si sceglierà il micro-omogeneizzatore Micron-AX35, per volumi tra 20-500mL Ultra-Turrax T18 e Ultra- 

Turrax T25. 

6. Si vogliono generatori particolarmente facili da pulire e/o sterilizzabili? 

L’optimum è rappresentato dai generatori riutilizzabili in plastica autoclavabile, con statore trasparente (Micron-AX 35, UltraTurraxT18, 

T25). 

Più in generale, tutti i generatori sono smontabili in pochi secondi, ma non tutti sono sterilizzabili in autoclave (informarsi sulle specifiche 

tecniche). 

7. In quale contenitore si lavora? 

Regola fondamentale: 

Ø generatore < Ø interno contenitore campione 

8. Asta di omogeneizzazione lunga o corta? 

Regola generale: l’asta di omogeneizzazione deve essere immersa tra 1/3 e 1/2 della sua lunghezza. Per questa ragione per diversi 

modelli (ma non tutti!) sono disponibili aste corte ed aste lunghe. 

Eccezione 1: I generatori dei modelli PRO (con lunghezza>10.5cm) devono essere immersi per metà, in quanto si avvalgono di una 

tecnologia particolare che preserva l’asta da danneggiamento; queste aste devono essere immerse maggiormente nel liquido. 

Eccezione 2: I generatori di plastica di Micron-AX35 possono essere immersi anche solo per 0.5cm. 

Quindi: chiedere sempre quanto è profondo il liquido, soprattutto per campioni di volumi ridotti. 

9. C’è l’esigenza di processare un ampio range di volumi? 

I motori più versatili sono quelli da almeno 500-700 Watt. La scelta dei generatori per questi modelli è la più fornita (Dispergerate uni-AX, 

Dispergerate multi-AX, PRO250, Ultra-Turrax T25). 

Inoltre disponiamo di un modello molto versatile a 1800W (Digit-AX) e di un altro a 2250W (Power-AX). 

10. E’ importante la riproducibilità dell’omogeneizzazione? 

Usare regolatori digitali della velocità. Meglio se programmabili. 

L’offerta-top è Digit-AX: possiede un regolatore digitale programmabile (fino a 12 programmi complessi, variando velocità e tempo di 

trattamento e tempi di passaggio tra un comando e l’altro; i parametri sono anche memorizzabili su computer). 

Controllo digitale (ma non programmabile) è di serie in PRO300D e in Ultra-Turrax T25 ed è un optional in Ultra-Turrax T50. 

11. Si preferisce un sistema maneggiabile o uno da banco? 

I modelli facilmente maneggiabili pesano meno di 0.5kg (Micron-AX35, Micron-AX 125, UltraTurrax T8 e PRO200). I modelli intermedi 

pesano circa 1.5 kg (Dispergerate uni-AX, Ultra-Turrax T18, PRO250, Ultra-Turrax T25). All’occorrenza si può ordinare lo stativo come 

accessorio, per fissare l’omogeneizzatore. 

I modelli più potenti sono strumenti da banco e dunque lo stativo è già fornito in dotazione (PRO300D, Digit-AX, Power-AX), oppure va 

necessariamente ordinato (Ultra-Turrax T50). 

12. Ci sono limitazioni di budget? 

Dispergerate uni-AX propone un sistema innovativo: è dotato di un'unica asta alla quale vanno abbinate diverse combinazioni rotorestatore 

rendendo particolarmente conveniente l’eventuale cambiamento del pacchetto rotore-statore, senza dover acquistare un 

generatore intero. Una particolare soluzione permette a Dispergerate uni-AX di lavorare come agitatore, su volumi fino a 40L. 


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13. Quali altri metodi meccanici di omogeneizzazione esistono? 

METODO di OMOGENEIZZAZIONE CAMPI DI APPLICAZIONE DESCRIZIONE (CODICE) 

Manuale a pestello Ricerca medica; 

Agro-Alimentare. 

Meccanica a ciclone Agro-Alimentare 

(Cerealicolo), 

Industriale. 

A lame Agro-Alimentare, 

Microbiologia. 

A ultrasuoni Ricerca Medica; 

Microbiologia; 

Agro-Alimentare 

Farmaceutico 

Battente a pale Microbiologia; 

Alimentare. 

A vibrazione Ricerca Medica; 

Forense; 

Ricerca di droghe; 

Ricerca di Asbesto; 

Farmaceutico; 

Polimeri-Tessile; 

Mineralogia. 

Criodisgregazione a impatto Ricerca medica; 

Agro-Alimentare 

Fig.1 


Fig.2 

Fig.3 

Fig. 1 - DISPERGERATE UNI-AX 

Fig. 2 - DIGIT-AX 

Fig. 3 - MICRON-AX 125 

Omogeneizzatori manuali 

Wheaton, CatalogoOmnialab2 PBI 

pagg 307-308 

Cyclomill (cod. 17909) 

Sterilmixer (cod. 29261) 

Turbo Homogenizer 

(cod. 80072) 

SterilBlender (cod. 6159; 

cod.35407) 

New-Sonic 

(cod.20412-cod.15233) 

Stomacher (cod19147- 15145; 

5382) 

Freezer Mill 6770 

(cod 87552) 

Geno Grinder 2000 

(cod 87260) 

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . 




Tel. 02487791 

Fax: 0240090010 




. 


Il campionamento microbiologico attivo per monitorare le prestazioni dell’isolatore in preparazione di una 

attività asettica e del test di sterilità è una fase fondamentale. 

Il campionatore d’aria usato per questo scopo deve essere in grado di resistere al trattamento 

sterilizzante con VHP (vaporous hydrogen peroxide). In questo modo si evita di dover estrarre lo 

strumento dall’isolatore. 

I comandi della camera di aspirazione del campionatore devono trovarsi al di fuori dell’isolatore. 

Il personale deve attenersi ad un specifico protocollo per evitare una possibile contaminazione crociata. 

Il materiale 

(a) Campionatore microbiologico d’aria “SAS Isolator” (la camera di aspirazione in acciaio inossidabile 

posizionata all’interno dell’isolatore è collegata con cavo elettrico al corpo principale dello strumento 

che si trova al di fuori dell’isolatore), 

(b) testata di aspirazione monouso, certificata sterile “Dispo-Head”, 

(c) certificate sterili, in confezionamento triplo, piastre a contatto (RODAC). Il terreno più comunemente 

utilizzato è il TSA. 

(d) sacchetti sterili. 

Il protocollo 

(1) Una o più camere di aspirazione in acciaio inossidabile del “SAS Isolator” devono essere installate 

nelle aree più critiche dell’isolatore. 

(2) Una confezione sterile di piastre a contatto e le testate sterili “Dispo-Head” sono introdotte nel 

“transfer isolator”. 

(3) Dopo aver fissato il “transfer isolator” alla stazione di lavoro dell’isolatore, la “Dispo-Head” ed una 

delle piastre a contatto sono applicate al campionatore “SAS Isolator”. 

(4) Ultimato il campionamento di 1000 litri di aria, la testata di aspirazione e la piastra a contatto sono 

inserite in un sacchetto di plastica sterile e trasferite nel “transfer isolator”. 

(5) Il “transfer isolator” è separato dalla stazione di lavoro e (a) la piastra a contatto è incubata, (b) la 

testa di aspirazione monouso è eliminata. 

(6) Un nuovo test microbiologico può ripartire seguendo i punti da (2) a (5). 

Sas Isolator - Codice: 43216/43217 Dispo-Head - Codice: 86996 

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .

Introduzione - International Pbi

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