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lezione 27-28 linkage analisi 04/11/2010

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CORSO INTEGRATO DI<br />

GENETICA<br />

a.a. <strong>2010</strong>-20<strong>11</strong><br />

<strong>04</strong>/<strong>11</strong>/<strong>2010</strong><br />

Lezioni <strong>27</strong>_<strong>28</strong><br />

Analisi di <strong>linkage</strong><br />

Analisi di mutazioni<br />

Dott.ssa Elisabetta Trabetti


LINKAGE<br />

Geni in loci vicini sullo stesso cromosoma - concatenati<br />

Tendenza di loci (geni e/o marcatori)<br />

vicini su un singolo cromosoma ad essere<br />

trasmessi assieme, come una unità,<br />

attraverso la meiosi


[Genetica - B.A. Pierce. Zanichelli 2005]


ANALISI di LINKAGE:<br />

applicazioni<br />

● Mappaggio di geni malattia e di nuovi<br />

marcatori<br />

● Diagnosi indiretta di malattia - Deve<br />

essere nota la localizzazione<br />

cromosomica del gene


LINKAGE - ricombinazione<br />

P<br />

1<br />

2<br />

1 2 1<br />

M<br />

F1 F2 F3<br />

2<br />

2<br />

2<br />

2 2<br />

1<br />

1<br />

2<br />

2


Meiosi informative e non<br />

AD<br />

Meiosi informative = individuare i gameti<br />

ricombinanti e non<br />

Locus marcatore A<br />

Alleli 1 e 2


Determinazione della fase<br />

Associazione degli alleli al locus marcatore con il locus malattia<br />

50% ricombinazione Assortimento indipendente:<br />

gene malattia NON è in <strong>linkage</strong> con il marcatore


θ =<br />

Frazione di ricombinazione, θ<br />

Probabilità che avvenga un evento di ricombinazione<br />

tra due loci<br />

n°meiosi ricombinanti n° soggetti ricombinanti<br />

n° tot meiosi n°tot figli<br />

θ = 0 loci molto vicini<br />

θ = 0,5 loci molto lontani o su cromosomi diversi<br />

θ = misura della distanza genetica<br />

U di misura: centimorgan cM<br />

= lunghezza genetica in cui 1% di ricombinazione (θ =0,01)<br />

NB: distanza genetica non è strettamente proporzionale alla<br />

distanza fisica (lunghezza in nucleotidi)


MISURA DELLA DISTANZA GENETICA<br />

θ = n. figli ricombinanti/n. tot figli<br />

= 1/8 = 0,125 = 12,5%<br />

Distanza A-B = 12,5 cM


COSTRUZIONE DI MAPPE GENETICHE<br />

Frazione di ricombinazione tra i loci:<br />

A e B = 0,06<br />

B e C = 0,07<br />

A e C = 0,10<br />

Frazione di ricombinazione tra i loci:<br />

A e D = 0,<strong>04</strong><br />

D e B = 0,08<br />

Ordine 3 loci sul chr


MAPPA GENETICA DEL CROMOSOMA 22


REQUISITI<br />

Famiglie (numerose)<br />

Affetti<br />

Marcatori genetici<br />

altamente polimorfi<br />

uniformemente distribuiti<br />

facile individuazione e basso costo<br />

(A) Distinguere i due cromosomi omologhi dei genitori – marcatore linked<br />

(B) Determinare la fase = cromosoma con allele patologico<br />

(C) Quale cromosoma e’ stato trasmesso al probando


ANALISI di LINKAGE:<br />

applicazioni<br />

● Mappaggio di geni malattia e di nuovi<br />

marcatori<br />

● Diagnosi indiretta di malattia - Deve<br />

essere nota la localizzazione<br />

cromosomica del gene


1/2<br />

1/2<br />

1/1<br />

1/2<br />

Informatività diagnostica di un marcatore<br />

nella <strong>analisi</strong> di <strong>linkage</strong> - AR<br />

2/2<br />

1/2<br />

1/1<br />

Famiglia non informativa<br />

1/2 1/2<br />

Famiglia parzialmente informativa<br />

Famiglia pienamente informativa


Diagnosi prenatale CF mediante <strong>analisi</strong><br />

di Linkage<br />

1-2 1-1<br />

1-1 1-2<br />

MWM P M CF V C+<br />

1-2 1-1 1-1 1-2 2-2<br />

MetH: extragenico, ∼1Mb<br />

allele 2 p<br />

allele 1 m: ?<br />

?<br />

• portatore (CF carrier)<br />

o<br />

• sano


1-2 1-2<br />

1-2 1-1<br />

MWM P M CF V C+<br />

1-2 1-2 1-2 1-1 2-2<br />

Diagnosi prenatale CF<br />

Xv-2c: extragenico, ∼200 kb<br />

allele 1 p<br />

?<br />

allele 1 m<br />

Figlio affetto:<br />

Feto:<br />

1*p e 2*m<br />

oppure<br />

1*m e 2*p<br />

1*p e 1 m<br />

oppure<br />

1*m e 1p<br />

in entrambi i casi è<br />

PORTATORE


1*-2 1-1*<br />

1*-1* 1*-2<br />

1-2* 1*-2<br />

1*-2* 1-1*<br />

MetH: sano o carrier<br />

Xv-2c: carrier<br />

Diagnosi prenatale CF<br />

• sano o portatore<br />

• portatore<br />

Feto: carrier m causa CF


Fattori che determinano<br />

l’accuratezza diagnostica nella <strong>analisi</strong><br />

di <strong>linkage</strong><br />

Vicinanza del marcatore al gene – frequenza di<br />

ricombinazione<br />

FC: KM19


Analisi di <strong>linkage</strong> e studio degli aplotipi<br />

Aplotipo = serie di alleli in loci associati su un cromosoma (pat o mat)


LINKAGE disequilibrium<br />

Specifica combinazione di alleli in fase a due o piu’<br />

loci linked che si verifica più spesso di quanto<br />

accadrebbe per puro caso<br />

Associazione a livello di popolazione tra un particolare<br />

allele marcatore e una malattia<br />

In una popolazione molte persone non imparentate<br />

hanno ereditato un cromosoma con una patologia da<br />

un antenato comune


Locus “A”<br />

alleli 1 e 2<br />

M<br />

1<br />

M<br />

2<br />

LINKAGE<br />

M<br />

1<br />

M<br />

2<br />

M<br />

1<br />

M<br />

2<br />

M<br />

1<br />

M<br />

2<br />

LINKAGE<br />

DISEQUILIBRIUM<br />

M<br />

3<br />

M<br />

3<br />

M<br />

3<br />

M<br />

3<br />

M<br />

3<br />

M<br />

3<br />

M<br />

3<br />

M<br />

3


Locus A Locus B<br />

Linkage<br />

equilibrium<br />

25%<br />

25%<br />

25%<br />

25%<br />

40%<br />

10%<br />

10%<br />

Linkage<br />

disequilibrium<br />

parziale<br />

40%<br />

Linkage<br />

disequilibrium<br />

completo<br />

50%<br />

0%<br />

0%<br />

50%


Linkage disequilibrium e FC


GENETICA MOLECOLARE IN<br />

MEDICINA<br />

SVILUPPI SCIENTIFICI APPLICAZIONI MEDICHE<br />

Mappatura gene Diagnosi indiretta<br />

(<strong>linkage</strong>)˫<br />

Identificazione gene Identificazione mutazioni<br />

Classificazione mutazioni Diagnosi diretta<br />

patologiche (mutazione)˫


Mutazione = variazione della sequenza nucleotidica<br />

rispetto ad una sequenza di riferimento -> alterazione<br />

ereditabile a carico della struttura primaria del DNA<br />

senza alcuna implicazione sul significato funzionale di<br />

tale cambiamento<br />

• Effetti evolutivi = neutra, vantaggiosa, svantaggiosa<br />

• Mutazione Patologica = produce una consistente<br />

alterazione della funzione svolta da un gene,<br />

determinando così l’insorgenza di una malattia<br />

Polimorfismo = mutazione con frequenza >1% nella<br />

popolazione


Le tappe dell'<strong>analisi</strong> molecolare<br />

per le malattie genetiche<br />

Identificare e sequenziare il gene<br />

malattia<br />

Cercare le mutazioni nel gene<br />

Stabilire quali mutazioni sono patologiche<br />

Determinare se esiste una distribuzione geografica/etnica delle mutazioni<br />

Disegnare pannelli popolazione specifici<br />

Selezionare i metodi di <strong>analisi</strong> più adatti alla ricerca delle mutazioni di<br />

interesse


Metodi per l’identificazione di<br />

mutazioni<br />

• Ricerca aspecifica di mutazione, ignota o<br />

nota<br />

• METODI: Sequenziamento del DNA, DGGE,<br />

DHPLC, etc.


Fonti DNA<br />

Il DNA può essere<br />

ottenuto da qualsiasi<br />

cellula nucleata<br />

dell'organismo<br />

DNA stampo<br />

dATP, dCTP, dGTP, dTTP<br />

Taq polymerase, Mg++<br />

VILLI<br />

CORIALI<br />

AMNIOCITI<br />

COLTURE<br />

CELLULARI<br />

SALIVA<br />

DNA<br />

MIDOLLO<br />

OSSEO<br />

PCR – Reazione a Catena della Polimerasi<br />

DNA stampo<br />

DNA polimerasi<br />

Primer<br />

SANGUE<br />

CAPELLI<br />

ALTRI<br />

TESSUTI<br />

Nuovo filamento<br />

Nuovo filamento<br />

Primer


Analisi della sequenza del DNA<br />

Sequenza Normale<br />

(esone 12, gene CFTR)˫<br />

1885 G>T; GAA>TAA<br />

Glu > Stop<br />

˫Mutazione: E585X


Analisi con gradiente denaturante<br />

(DGGE: Denaturing Gradient Gel Electrophoresis)<br />

La Temperatura di melting (Tm) di una molecola di<br />

DNA dipendente strettamente dalla sua sequenza.<br />

Frammenti di DNA che differiscono anche per un<br />

singolo nucleotide hanno diversa Tm.<br />

Negli eterozigoti possono formarsi molecole ibride,<br />

costituite dall’unione di un filamento normale e da<br />

un filamento mutato, che hanno Tm più bassa per la<br />

presenza dell’appaiamento errato nel sito della<br />

mutazione.<br />

L’elettroforesi in gradiente denaturante separa le<br />

molecole di DNA in funzione della diversa Tm.<br />

E’così possibile identificare DNA normali e<br />

mutati perchè si arresteranno ad una diversa<br />

altezza nel gel.<br />

ALLELE NORMALE ALLELE MUTATO<br />

Concentrazione crescente di<br />

denaturanti<br />

G<br />

T<br />

G<br />

C<br />

G<br />

C<br />

MOLECOLE<br />

OMODUPLICI<br />

MOLECOLE<br />

ETERODUPLICI<br />

1 2 3<br />

N/N N/M M/M<br />

A<br />

T<br />

Denaturazione, mix,<br />

rinaturazione<br />

A<br />

T<br />

A<br />

C<br />

ETERODUPLICI<br />

OMODUPLICI<br />

GEL A GRADIENTE DENATURANTE


Analisi DGGE dell’esone 19 del gene CFTR<br />

1 2 3 4 5 6 7 8 9<br />

eteroduplici<br />

- omoduplici Mutato<br />

Corsie 1 , 2, 4, 8, 9: DNA che non presentano mutazioni in questo esone<br />

Corsie 3, 5, 7: DNA con mutazioni in questo esone (da caratterizzare con sequenziamento)˫<br />

Corsia 6: controllo positivo (eterozigote I1237V)<br />

Normale


Ricerca di mutazioni con DHPLC<br />

eteroduplici omoduplici<br />

WT M<br />

Denaturing<br />

High<br />

Performance<br />

Liquide<br />

Chromatography<br />

eteroduplici<br />

omoduplici


Le tappe dell'<strong>analisi</strong> molecolare<br />

per le malattie genetiche<br />

Identificare e sequenziare il gene malattia<br />

Cercare le mutazioni nel gene<br />

Stabilire quali mutazioni sono<br />

patologiche<br />

Determinare se esiste una distribuzione geografica/etnica delle mutazioni<br />

Disegnare pannelli popolazione specifici<br />

Selezionare i metodi di <strong>analisi</strong> più adatti alla ricerca delle mutazioni di<br />

interesse


Principali criteri per classificare una<br />

mutazione come causa di malattia:<br />

Correlazione con il fenotipo: la mutazione è presente<br />

negli affetti, molto rara o assente nella popolazione<br />

generale<br />

Studi funzionali, in-vitro o in-vivo, dimostrano che la<br />

mutazione causa alterazione o assenza della funzione<br />

codificata dal gene<br />

La mutazione causa una grave alterazione della<br />

struttura proteica (delezioni, inserzioni, stop, frameshift,<br />

alterazioni di splicing…)˫


Le tappe dell'<strong>analisi</strong> molecolare<br />

per le malattie genetiche<br />

Identificare e sequenziare il gene malattia<br />

Cercare le mutazioni nel gene<br />

Identificare quali mutazioni sono patologiche<br />

Determinare se esiste una<br />

distribuzione geografica/etnica delle<br />

mutazioni<br />

Disegnare pannelli di mutazioni<br />

popolazione-specifici<br />

Selezionare i metodi di <strong>analisi</strong> più adatti alla ricerca delle mutazioni di<br />

interesse


Analisi della frequenza e della<br />

distribuzione geografica delle mutazioni<br />

Ricerca aspecifica delle mutazioni nei geni di almeno 100-<br />

200 pazienti<br />

Analisi di pazienti appartenenti a popolazioni/gruppi etnici<br />

diversi<br />

Selezionare le mutazioni causa di malattia tra tutte quelle<br />

identificate<br />

Stabilire il pannello di mutazioni da analizzare in modo da<br />

coprire la maggior percentuale possibile di alleli patologici<br />

in ogni popolazione/gruppo etnico


Pannello Mutazioni CF per Veneto e Sardegna:<br />

Mutazione<br />

F508del<br />

R<strong>11</strong>62X<br />

T338I<br />

G542X<br />

2183AA/G<br />

N1303K<br />

G1244E<br />

7<strong>11</strong>+5G/A<br />

1717-1G/A<br />

altre<br />

TOT<br />

81<br />

-<br />

20<br />

9<br />

9<br />

5<br />

3<br />

-<br />

1<br />

18<br />

146/156<br />

Sardegna<br />

n. %<br />

52<br />

-<br />

13<br />

6<br />

6<br />

3<br />

2<br />

-<br />

1<br />

<strong>11</strong><br />

94<br />

107<br />

22<br />

-<br />

21<br />

6<br />

9<br />

-<br />

6<br />

5<br />

<strong>27</strong><br />

203/225<br />

Veneto<br />

n %<br />

48<br />

10<br />

-<br />

9<br />

3<br />

4<br />

-<br />

3<br />

3<br />

10<br />

90


Le tappe dell'<strong>analisi</strong> molecolare<br />

per le malattie genetiche<br />

Identificare e sequenziare il gene malattia<br />

Cercare le mutazioni nel gene<br />

Identificare quali mutazioni sono patologiche<br />

Determinare se esiste una distribuzione geografica/etnica delle mutazioni<br />

Disegnare pannelli popolazione specifici<br />

Selezionare i metodi di <strong>analisi</strong> più<br />

adatti alla ricerca delle mutazioni di<br />

interesse


Metodi per l’identificazione di<br />

mutazioni:<br />

• Analisi specifica di una<br />

mutazione nota<br />

• METODI: RE; RDB/ASO; OLA.


REVERSE DOT BLOT:<br />

ibridazione inversa degli acidi nucleici<br />

DNA N (normale)˫<br />

DNA M (mutato)˫<br />

N<br />

a<br />

C<br />

g<br />

t<br />

G<br />

c<br />

a<br />

T<br />

g<br />

t<br />

A<br />

c<br />

M<br />

1<br />

2<br />

3<br />

sonda sonda<br />

N M<br />

sonda sonda<br />

N M<br />

sonda sonda<br />

N M<br />

omozigote<br />

MM<br />

eterozigote<br />

NM<br />

omozigote<br />

NN


sonde<br />

mutate<br />

sonde<br />

normali<br />

RDB MULTIPLO<br />

<strong>analisi</strong> mutazioni Fibrosi Cistica (gene CFTR)˫<br />

Normale<br />

F508del G542X 394delTT<br />

STRIP A 1<br />

eteroz.<br />

2<br />

R<strong>11</strong>7H<br />

3<br />

S1251N<br />

4 STRIP B<br />

sonde<br />

mutate<br />

sonde<br />

normali


Metodi per l’identificazione di mutazioni:<br />

• 1) Ricerca diretta di mutazioni:<br />

Applicazioni possibili<br />

• 1a) Ricerca aspecifica di mutazione, ignota o nota:<br />

• significato funzionale non necessariamente noto -><br />

identificazione nuove mutazioni, screening genetici di popolazioni<br />

numerose, (diagnosi di malattia).<br />

•<br />

• 1b) Analisi specifica di una mutazione nota:<br />

• mutazioni patologiche -> diagnosi di malattia;<br />

• polimorfismi, marcatori DNA -> identificazione individuale<br />

(medicina forense, trapianti midollo, …)˫<br />

• 2) Analisi di Linkage:<br />

• identificazione nuovi geni, diagnosi indiretta di malattia


Metodi per la diagnosi di malattie genetiche mediante<br />

<strong>analisi</strong> del DNA<br />

a) Analisi di mutazioni note nel soggetto (RE; RDB/ASO; OLA):<br />

− Analisi diretta/specifica delle mutazioni<br />

− Deve essere nota la sequenza del gene<br />

− Devono essere nota l’alterazione molecolare delle mutazioni da analizzare<br />

− Deve essere noto quali mutazioni geniche sono causa di malattia<br />

− Caratteristiche di un buon sistema di <strong>analisi</strong>: rapido, economico, multiplo<br />

b) Ricerca di mutazioni in un gene (Sequenziamento del DNA,<br />

DGGE, DHPLC):<br />

− Deve essere nota la sequenza del gene<br />

− Identifica sia mutazioni nuove che note; patologiche che non patologiche<br />

− Solo il sequenziamento consente di caratterizzare il difetto molecolare<br />

− Consentono <strong>analisi</strong> più rapida di un gene quando si hanno molti individui in esame<br />

− Screening di popolazione: identifica quali e quante mutazioni sono presenti<br />

c) Analisi di Linkage<br />

− Deve essere nota la localizzazione cromosomica del gene<br />

− Deve essere disponibile la famiglia del probando e il DNA di almeno un familiare prossimo<br />

che sia affetto<br />

− Devono essere disponibili marcatori informativi molto vicini al gene interessato


Perchè la diagnosi molecolare?<br />

• Diagnosi di una malattia è un atto clinico<br />

• Analisi mutazioni serve a:<br />

• Confermare diagnosi clinica<br />

• Determinare le mutazioni specifiche per<br />

successive <strong>analisi</strong> nei familiari<br />

– Diagnosi Pre-Natale<br />

– Identificazione dei portatori<br />

• Migliorare conoscenze rapporto genotipo/fenotipo<br />

e pato-fisiologia della malattia

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