Imunologia Clínica - Centro de Ciências da Saúde - UFSC

UNIVERSIDADE FEDERAL DE SANTA CATARINA 

CENTRO DE CIÊNCIAS DA SAÚDE 

DEPARTAMENTO DE ANÁLISES CLÍNICAS 

PLANO DE ENSINO 

SEMESTRE 2011/1 

I. IDENTIFICAÇÃO DA DISCIPLINA: Imunologia Clínica 

CÓDIGO NOME DA DISCIPLINA Fase N O DE HORAS-AULA SEMANAIS 

TEÓRICAS: PRÁTICAS 

TOTAL DE HORAS-AULA 

SEMESTRAIS 

ACL 5108 Imunologia Clínica 9ª 03 04 126 

I.1. HORÁRIO 

TURMAS TEÓRICAS TURMAS PRÁTICAS/ Professor responsável 

1. turmas A, B, C, D, E, F - - Tânia Silvia Fröde,Maria Luiza Bazzo, 

professor a contratar para as turmas B, C, D, E e F.Horário: 

9h10min às 12h 

II. PROFESSOR (ES) MINISTRANTE (S) 

1. Tânia Silvia Fröde – supervisora da disciplina 

2. Maria Luíza Bazzo- 

3. Professor a contratar 

III. PRÉ-REQUISITO (S) 

CÓDIGO NOME DA DISCIPLINA 

1. ACL 5101 Bioquímica Clínica I 

IV CURSO (S) PARA O QUAL(IS) A DISCIPLINA É OFERECIDA 

1. Farmácia 

Turma A - 28:204- Tania S. Fröde 

Turma B- 38:204 - professor a contratar 

Turma C 414:204- professor a contratar 

Turma D 38:204- professor a contratar 

Turma F 6:8:204- professor a contratar 

V. EMENTA: Discutir e interpretar as solicitações de exames imunológicos. Colher e conservar o material biológico. 

Desenvolver as principais reações sorológicas na rotina de Imunologia Clinica. Interpretar os resultados dos exames 

imunológicos realizados. Conhecer os métodos utilizados para o controle de qualidade nos exames realizados (Aglutinação 

em tubos e em lâminas, Hemaglutinação, Microhemaglutinação, Turbedimetria, Imunofluorescência e Ensaios 

Imunoenzimáticos), técnicas e métodos de diagnóstico. 

VI. OBJETIVOS 

Objetivos Gerais: Capacitar o acadêmico a realizar, interpretar e discutir exames de rotina na área de Imunologia Clínica. 

Objetivos Específicos: 

1) Colher e conservar material para exames imunológicos. 

2) Conhecer a fisiopatologia de doenças imunológicas 

3) Realizar os diversos tipos de provas mais utilizadas em Imunologia Clínica. 

4) Expedir os resultados de exames imunológicos.

VII. CONTEÚDO PROGRAMÁTICO 

CONTEÚDO PROGRAMÁTICO HORAS-AULA 

P T 

ESTRATÉGIA 

1 - Requisição de exames 

02 02 Exposição dialogada 

1.1- Interpretação de Resultados 

- Exemplos de resultados imunológicos 

1.2- Diluições sucessivas 

emitidos pelo Lab. De Imunologia 

1.3- Controle de Qualidade 

- Exercícios práticos de diluições sucessivas 

- Observação de resultados falso positivos e 

falso negativos, bem como resultados 

condizentes com o diagnóstico clínico de 

doenças 

- - Controle de qualidade em laboratório de 

Imunologia Clínica 

2 - Material biológico 


- enumerar os materiais biológicos utilizados 

2.1- Colheita 

- técnica de coleta das amostras 

2.2- Transporte 

- manipulação das amostras, para obtenção 

2.3- Manuseio 

de resultados confiáveis 

2.4- Conservação 

- conservação de amostras para a realização 

2.5- Diluições 

de exames confiáveis 

- diluições utilizadas nas técnicas 

imunológicas. 

Aula prática: 

- separar o material biológico (sangue) 

através de centrifugação 

- executar e aprender técnicas de transporte, 

conservação e manuseio das amostras 

biológicas 

3 - Diagnóstico sorológico sífilis 

03 02 

realizar diluições sucessivas. 

Exposição dialogada 

- Aspectos clínicos da doença 

3.1- V.D.R.L. 

- Agente etiológico 

3.2- ELISA 

- Epidemiologia 

3.3- Microhemaglutinação 

- Exames imunológicos utilizados para auxílio 

3.4- FTA-ABS 

no diagnóstico clínico. 

- Fundamento das reações utilizadas 

- Sensibilidade e especificidade das técnicas 

utilizadas 


- Separar o material biológico (sangue) 


- Realizar os exames laboratoriais 

- Emitir resultados dos exames realizados 

- Interpretar os resultados dos 

Exames realizados

4 - Diagnóstico sorológico da Febre Reumática 

4.1- Determinação do título A.S.L.O. 

4.2- Turbbedimetria 

4.3- Nefelometria 

4.4 Aglutinação em Látex 

5 - Diagnóstico sorológico de doenças auto-imunes 

5.1- P.C.R. (látex e precipitação) 

5.2- Látex AR 

5.3- FAN 

5.4. Waaler Rose 

5.5. Imunofluorescência indireta 

6 - Diagnostico sorológico da Febre 

Tifóide e Paratifóide 

6.1- Preparo do antígeno 

6.2- Reação de Widal em lâmina 

6.3- Preparo do antígeno 

6.4- Reação de Widal em tubos 
















Exames realizados 















- Interpretar os resultados dos exames 

realizados 









utilizadas. 







exames realizados

7 - Diagnóstico da Brucelose 

7.1- Aglutinação em tubos e Lãminas 

7.2- Testes rápidos em lâminas 

8 - Diagnóstico sorológico da mononucleose 

infecciosa 

8.1 - Reação de Paul Bunnel-Davidsohn 

8.2 - Teste de Hoff Bauer 

9 - Diagnóstico sorológico da P.A.P. 

9.1 – Crioaglutinação-Reação de hemaglutinação 

em tubos 








- sensibilidade e especificidade das técnicas 








exames realizados 
















02 02 

















exames realizados

10 - Diagnóstico sorológico da Leptospirose 

10.1-Reação de Aglutinação 

(lâminas e tubos) 

10.2-Reação de Aglutinação-lise 

11 - Diagnóstico sorológico.da Listeriose 

11.1-Aglutinação em tubos 

12 - Diagnóstico sorológico das alergias 

12.1-Técnicas Imunoenzimáticas 
































03 02 

















exames realizados

13 - Avaliação do sistema imune-humoral 

(IgG, IgA, IgM) 

13.1- Turbedimetria 

14 - Diagnóstico sorológico da Doença de Chagas 


14.2- Imunofluorescência indireta 

15 - Diagnóstico sorológico da Toxoplasmose 

15.1- Imunofluorescência indireta 

































03 02 

















exames realizados

16.1- CH50 e AH50 

16.2- Hemólise total 

17 - Proteínas especiais (alfa feto proteína, 

haptoglobina e alfa 1 antitripsina). 

17.1-Elisa 

17.2 Nefelometria 

18- Diagnóstico sorológico da Rubéola 

18.1 – Elisa 

18.2- Látex 

19 - Síndrome da Imunodeficiência 

Adquirida (AIDS) 

19.1- Elisa 

19.2- Western blot 

19.3- PCR 
































03 02 









- sensibilidade e especificidade das 

03 02 

técnicas utilizadas 









técnicas utilizadas

20 - Antígenos leucocitários (HLA) 

20.1- Reação mista de linfócito 

20.2- Imunohemólise 

















21. Marcadores Tumorais Exposição dialogada 








22 - Diagnóstico da cisticercose 

04 01 




22.1- Elisa 







23- Diagnóstico da doença crohn 04 01 










24- Diagnóstico da doença celíaca 04 01 










técnicas utilizadas

25 - Introdução as técnicas de 

Biologia Molecular 

Prova Teórica : 3 h/a 

Prova Prática: 4 h/a 

Atividade extra-classe: 7 h/a 








- Sensibilidade e especificidade das 


VIII. METODOLOGIA DE ENSINO / DESENVOLVIMENTO DO PROGRAMA 

Metodologia de ensino 

Aulas Teóricas: exposição dialogada/ seminários (As aulas consistirão em exposições dialogadas apresentadas pelos 

professores da disciplina e de seminários de casos clínicos desenvolvidos e apresentados pelos alunos). 

Aula prática: execução de metodologias imunológicas (As aulas práticas serão desenvolvidas com exposição dialogada e 

desenvolvimento de técnicas e recursos que permitam ao aluno reconhecer e realizar as principais metodologias diagnósticas 

utilizadas no setor de imunologia de um laboratório clínico). 

Recursos utilizados: áudio-visual 

IX. METODOLOGIA DE AVALIAÇÃO 

AVALIAÇÃO TEÓRICA 

Serão realizadas duas provas teóricas, que poderão conter questões objetivas, mistas e/ou dissertativas (prova teórica 1 – 

peso 2,5, prova teórica 2 – peso 2,5) perfazendo peso total 5,0 (cinco). 

AVALIAÇÃO PRÁTICA 

Será realizada uma avaliação individual pela apresentação e participação do aluno que constará: da execução de uma 

técnica imunológica e um seminário, (prova prática- peso 4, seminário - peso 1) perfazendo o peso total de 5,0 (cinco). 

Nota final: avaliação teórica + avaliação prática 

X. NOVA AVALIAÇÃO 

Não existe uma nova avaliação nesta disciplina que envolve práticas de laboratório, segundo a Resolução 017/CUn/97. 

CRONOGRAMA TEÓRICO 

DATA ASSUNTO PROFESSOR (A) 

16/3 Interpretação de requisições imunológicas, colheita e conservação do material 

biológico. Diluições sucessivas. Dosagem de imunoglobulinas. 

Tânia S. Fröde 

30/3 Alergia. Controle de qualidade em Imunologia. Tânia S. Fröde 

6/4 Proteínas de fase aguda. E Marcadores Tumorais Tânia S. Frode 

13/4 Diagnóstico sorológico da mononucleose infecciosa. Reação de Paul-Bunnel Tânia S. Frode 

20/4 Diagnóstico sorológico da sífilis – VDRL Tânia S. Frode 

27/4 Diagnóstico Sorológico da Febre Tifóide e Paratofóide – Reação de Widal. 

Diagnóstico Sorológico da Febre Reumática. Dosagem da Antiestreptolisina O.. 

Tânia S. Frode 

4/5 Diagnóstico Sorológico da Artrite Reumatóide. Reação de Waaler Rose. Prova do 

Látex Sistema complemento. Dosagem do CH50 

Tânia S. Frode 

11/5 Doença celíaca, doença de Chron, rubéola Tânia S. Frode 

18/5 PRIMEIRA PROVA TEÓRICA Maria L. Bazzo 

25/5 Haptoglobina, Alfa 1 Antitripsina. Reações de Imunofluorescência Maria L. Bazzo 

1/6 Reações de Imunofluorescência Maria L. Bazzo 

8/6 Reações Imunoenzimáticas Maria L. Bazzo 

15/6 Reações Imunoenzimáticas Maria L. Bazzo 

22/6 Noções de biologia molecular (Reações em cadeia da Polimerase –PCR). Maria L. Bazzo 

29/6 Noções de biologia molecular (Reações em cadeia da Polimerase –PCR). Maria L. Bazzo

6/7 Diagnóstico Sorológico da AIDS. Maria L. Bazzo 

6/7 HLA – Antígeno Leucocitário Humano Maria L. Bazzo 

13/7 SEGUNDA PROVA TEÓRICA 

CRONOGRAMA DE AULAS PRÁTICAS 

Turma Turma Turma Turma Turma AULA PRÁTICA 

A B/E C D F . 

14/3 15/3 16/3 17/3 18/3 Limpeza do soro, lavagem de hemácias, 

inativação do soro, diluiçoes sucessivas. 

21/3 22/3 30/3 24/3 25/3 Dosagem de imunoglobulinas 

28/3 29/3 6/4 31/3 1/4 Proteína C reativa. 

4/4 5/4 13/4 7/4 4/4 Reação de Paul Bunnell Monotest 

11/4 12/4 20/4 14/4 15/4 V.D.R.L. qualitativo e quantitativo 

18/4 19/4 27/4 28/4 29/4 Reações de Widal 

25/4 26/4 4/5 5/5 6/5 Dosagem de Antiestreptolisina O 

2/5 3/5 11/5 5//5 6/5 Reação de Waaler - Rose. Prova do Látex 

9/5 10/5 18/5 12/5 13/5 Dosagem do CH50 

16/5 17/5 25/5 19/5 20/5 Reações de Imunofluorescência 

23/5 24/5 1/6 26/5 27/5 Reações de Imunofluorescência 

30/5 31/5 8/6 2/6 4/6 ELISA 

6/6 7/6 15/6 9/6 11/6 ELISA 

13/6 14/6 22/6 16/6 18/6 Reações de microhemaglutinação 

20/6 21/6 29/6 30/6 1/7 SEMINÁRIO 

27/6 28/6 5/7 6/7 8/7 Revisão (VDRL) 

27/6 28/6 5/7 6/7 8/7 Revisão 

4/7 5/7 12/7 13/7 14/7 PROVA PRÁTICA 

XII- BIBLIOGRAFIA 

BENJAMIN E., COCICO R., SUNSHINE, G. Imunologia. BENJAMIN E, COCICO R, SUNSHINE, G.(eds). Guanabara 

Koogan, Rio de Janeiro, Brasil, 2000. Recomendado 

Brow, T.A Clonagem gênica e Análise do DNA, 4@ Ed., Artmed, Porto Alegre, Brasil, 2003. Recomendado 

HENRY ; BERNARD, J. Clinical and diagnosis management. Immunology. Henry & John Bernard (eds). 

W.B.Saunders, Philadelphia, USA, 1994. Guanabara koogan, Rio de janeiro, Brasil, 2000. Recomendado 

HYDE, M.R. Imunologia. HYDE MR (ed). Imunologia Guanabara koogan, Rio de janeiro, Brasil, 2000. 

Recomendado 

NAIM, R.; HELBERT, M. Imunologia para estudantes de medicina. NAIM R, HELBERT M (eds). Guanabara 

Koogan, Rio de janeiro, Brasil, 2004. Recomendado 

Parslow, G., Tristran; Stites, P D.; Terr, IA; Imbodem B J. Imunologia Médica, 10Ed. Gunanabar, Rio de janeiro, 

Brasil, 2004. Recomendado 

WYNGAARDEN, J.B.; SMITH, L.H. & BENNETT, J.C. Cecil. Texbook of Medicine, Wyngaarden, J.B.; Smith, L.H. & 

Bennett, J.C. (eds), Guanabara Koogan, Rio de Janeiro, Brazil, 2006. (Biblioteca setorial do HU/UFSC). 

Tânia Silvia Fröde (supervisora da disciplina) 

Maria Luiza Bazzo 

Aprovado na Reunião do Colegiado do ACL em ___/___/___ 

Profª Raquel Maria Teixeira 

Chefe do Depto.

Imunologia Clínica - Centro de Ciências da Saúde - UFSC

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