Novocastratm Lyophilized Mouse Monoclonal Antibody Dysferlin

More documents

Recommendations

Info

Rättelser av tidigare utgivning Ändringar har gjorts endast i layout. Texten har inte förändrats sedan förra utgåvan. Utgivningsdatum 23rd June 2004 (CEprotokoll/HTAUT). NCL-Hamlet Page 41
Immunhistokemisk metodologi för användning av Novocastra TM antikroppar på fryst muskelvävnad. Reagens som krävs men ej tillhandahålls 1. Standardlösningar som används inom immunhistokemi. 2. 50 mM Trisbuffrad saltlösning (TBS) pH 7,6. 3. Antikroppsutspädningsmedel – normalt serum optimalt spätt i TBS . 4. Normala sera från de arter i vilka den sekundära antikroppen odlas. 5. Sekundär peroxidaskonjugerad antikropp – använd enligt tillverkarens rekommendationer. 6. 3,3’ Diaminobenzidin tetrahydroklorid (DAB) – bered och använd enligt tillverkarens rekommendationer. 7. Monteringsmedel – bered enligt tillverkarens rekommendationer. Utrustning som krävs men ej tillhandahålls 1 .Inkubator inställd på 25 o C. 2. Allmän immunhistokemisk laboratorieutrustning. 3. Elektrisk fläkt för lufttorkning av objektglas. Antigenåtervinningslösningar (se Rekommendationer vid användning) Gäller ej frysta snitt. Metodologi Innan denna metodologi tillämpas måste användare utbildas i immunhistokemiska tekniker. Användare bör fastställa optimal spädning för antikroppar. Alla steg utförs om inget annat anges vid rumstemperatur på 25 o C . 1. Skär och montera 4–10 μm snitt på objektglas täckta med ett lämpligt vävnadsklister och lufttorka i minst en timme. 2. Inkubera snitten med optimalt spädd primär antikropp (se Rekommendationer vid användning). 3. Tvätta snitten i TBS-buffert i 2 x 5 minuter och gunga försiktigt. 4. Inkubera snitten i lämplig peroxidaskonjugerad sekundär antikropp. 5. Tvätta snitten i TBS-buffert i 2 x 5 minuter och gunga försiktigt. 6. Inkubera objektglasen i DAB. 7. Skölj objektglasen i rent vatten. 8. Dehydratisera, klargör och montera snitten. Rättelser av tidigare utgivning Gäller ej. Utgivningsdatum 5 februari 2004 (CEprotocol/Frozen Muscle). NCL-Hamlet Page 42
Page 1 and 2: Novocastra TM Lyophilized Mouse Mon
Page 3 and 4: Novocastra TM Lyophilized Mouse Mon
Page 5 and 6: Bibliography - General 1. National
Page 7 and 8: Immunohistochemistry methodology fo
Page 9 and 10: Dans ce réactif, la molarité de l
Page 11 and 12: Méthodologie immunohistochimique d
Page 13 and 14: Méthodologie immunohistochimique p
Page 15 and 16: Prima e dopo la fissazione, i campi
Page 17 and 18: Metodologia immunoistochimica per l
Page 19 and 20: Metodologia immunoistochimica per l
Page 21 and 22: Warnhinweise und Sicherheitsmaßnah
Page 23 and 24: Immunhistochemisches Vorgehen beim
Page 25 and 26: Immunhistochemisches Vorgehen beim
Page 27 and 28: La molaridad de la azida sódica en
Page 29 and 30: Metodología inmunohistocitoquímic
Page 31 and 32: Metodología inmunohistoquímica pa
Page 33 and 34: Avisos E Precauções Este reagente
Page 35 and 36: Metodologia de imunohistoquímica p
Page 37 and 38: Metodologia de imunocitoquímica pa
Page 39 and 40: Före och efter fixering bör prove
Page 41: Immunhistokemisk metodologi för an
Page 45 and 46: Ο χειρισμός δειγμά
Page 47 and 48: Μεθοδολογία ανοσοϊ
Page 49 and 50: Μεθοδολογία ανοσοϊ
Page 51 and 52: Prøver skal før og efter fikserin
Page 53 and 54: Metodik for immunohistokemi ved anv
Page 55 and 56: Immunhistokemisk fremgangsmåde til

Novocastratm Lyophilized Mouse Monoclonal Antibody Dysferlin

Create successful ePaper yourself

Delete template?

Save as template?