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TP LIPIDOS

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Química Biológica I <strong>TP</strong> 3 LÍPIDOS<br />

OBJETIVOS:<br />

-Poner de manifiesto ciertas propiedades de lípidos.<br />

-Comprobar la presencia de los lípidos complejos en cerebro de vaca luego de extracción con<br />

diferentes solventes y posterior fraccionamiento de los extractos.<br />

FUNDAMENTOS:<br />

Los lípidos, son un grupo heterogéneo de compuestos, de naturaleza antipática, es decir que<br />

contienen regiones hidrofóbicas y regiones hidrofílicas. La mayor parte de los lípidos<br />

abundantes en la naturaleza (triacilgliceroles), están formados por ácidos grasos de cadenas<br />

hidrocarbonadas pares, saturados o insaturados. Los lípidos llevan a cabo múltiples funciones<br />

en el organismo, como: almacenamiento de energía, de transporte, cumplir funciones<br />

hormonales, actuar como vitaminas, formar parte de las membranas celulares confiriéndoles<br />

la propiedad de permeabilidad selectiva, al permitir el paso o no de algunas sustancias y en<br />

determinada dirección, así como la conducción nerviosa y el transporte activo como la bomba<br />

de Na + /K + . A diferencia de los carbohidratos, proteínas y ácidos nucleicos, no forman<br />

polímeros, son mas bien moléculas pequeñas que presentan una fuerte tendencia a asociarse<br />

mediante fuerzas no covalentes. Algunas de las propiedades de los lípidos pueden ser usadas<br />

para su reconocimiento, ya que pueden reaccionar con una variedad de agentes originándose<br />

productos coloreados, desprendimiento de vapores, formación de jabones, entre otros.<br />

El tejido adiposo está constituído principalmente por las grasas neutras, pero el cerebro<br />

contiene relativamente pocas, los constituyentes lipídicos de estos tejidos son los lípidos<br />

complejos como: fosfolípidos y colesterol.<br />

Basados en la solubilidad de los lípidos en solventes orgánicos, es posible extraer y purificar<br />

lípidos del cerebro por sucesivas extracciones con diferentes solventes y posterior<br />

fraccionamiento de los extractos para obtener fracciones ricas en: esteroles,<br />

glicerofosfolípidos y esfingolípidos. El esquema se basa en los siguientes hechos:<br />

• Los esteroles son solubles en acetona, al contrario de lo que sucede con otros lípidos<br />

complejos.<br />

• Algunos glicerofosfolípidos, como las lecitinas, la fosfatidiletanolamina y la<br />

fosfatidilserina, son solubles el éter e insolubles en acetona.<br />

1


• Los glucósidos de esfingosina se disuelven en alcohol caliente y son insolubles en<br />

acetona y éter.<br />

Los productos finales de este experimento son sustancias de una pureza relativa y serán<br />

identificados una vez efectuadas las extracciones.<br />

PARTE EXPERIMENTAL<br />

I - Extracción de lípidos<br />

Pesar 20 g de cerebro triturarlo en mortero y secarlo parcialmente en un vaso de precipitado.<br />

Agregar 50 ml de alcohol etílico, llevar a ebullición y mantenerlo por 3 minutos, luego filtrar<br />

por gasa. El filtrado se concentra en manta calefactora hasta unos 30 ml y se agregan luego 25<br />

ml de éter, agitar y separar en ampolla de decantación.<br />

Se obtienen dos fracciones:<br />

Fracción superior A : etérea, que tendrá disueltos lecitina, cefalina, grasas, colesterol y restos<br />

de esfingomielina y cerebrósidos.<br />

Fracción inferior B : alcohólica que tendrá disueltos esfingomielina y cerebrósidos.<br />

Fracción A: concentrar en baño María a mitad de volumen inicial y agregar 25 ml de acetona:<br />

se observará un precipitado que corresponde principalmente a fosfolípidos, quedando en<br />

solución el colesterol y las grasas. Separar por centrifugación obteniendo un sobrenadante C y<br />

un precipitado D.<br />

Sobrenadante C: separar en dos fracciones, en una reconocer grasas y en la otra extraer el<br />

colesterol con 10 ml de éter, separar en ampolla de decantación y reconocer el colesterol.<br />

Precipitado D: reconocer lecitina y cefalina como fosfolípidos.<br />

Fracción B: reconocer cerebrósidos.<br />

II - Reacciones de reconocimiento<br />

1 - Reconocimiento de grasas:<br />

Es una prueba para identificar ácidos grasos, por lo tanto, general para los lípidos que los<br />

contengan. Los jabones se define químicamente como, las sales metálicas de los ácidos grasos<br />

superiores.<br />

Prueba de saponificación<br />

2


Se separan las grasas por saponificación, para esto se coloca 1 ml de la muestra, 1 ml de<br />

etanol y 0,5 ml de hidróxido de sodio al 40%. Calentar suavemente. Agregar unas gotas de<br />

ácido sulfúrico. La presencia de enturbiamiento indica liberación de ácidos grasos.<br />

2 - Reconocimiento de colesterol: reacción de Liebermann –Burchard.<br />

El colesterol reacciona con anhídrido acético y ácido sulfúrico concentrado. Se produce una<br />

pérdida de agua y una protonización del colesterol. Se constituyen en medio anhidro<br />

polímeros de hidrocarburos no saturados de intenso color verde azulado.<br />

Secar la muestra a baño María. Resuspender en 2 ml de cloroformo.<br />

En un tubo de ensayo mezclar 1 ml de anhídrido acético y 1 ml de cloroformo. Enfriar a 0°C<br />

en baño de hielo. Agregar al tubo los 2 ml de la muestra y colocar en hielo. Agregar por las<br />

paredes 1 gota de ácido sulfúrico cc. Enfriar y observar . Una coloración verde azulada indica<br />

la presencia de grupo esteroide, colesterol en nuestro caso.<br />

3 - Reconocimiento de cerebrósidos:<br />

Mediante la reacción de Molish para hidratos de carbono. ( Ver <strong>TP</strong> H de Carbono).<br />

4 - Reconocimiento de fosfolípidos: lecitina y cefalina mediante la determinación de la<br />

presencia de fósforo.<br />

La reacción se basa en que el fosfato inorgánico, en medio ácido, con el molibdato (reactivo<br />

1) da fosfomolibdato, color amarillo, que es reducido luego por el ácido ascórbico (reactivo 2)<br />

a azul de molibdeno, color azul verdoso. El reactivo 3 (arsenito/citrato) se combina con el<br />

exceso de molibdato impidiendo su reacción posterior con fosfatos liberados de ésteres<br />

lábiles, lo que se aprovecha cuando se quiere determinar fosfato inorgánico libre en presencia<br />

de, por ejemplo, fosfolípidos (que no es nuestro caso).<br />

Muestra soluble de ppdo D 1 ml<br />

Reactivo 1<br />

Mezclar y esperar 30 segundos.<br />

Reactivo 2<br />

Mezclar y esperar 30 segundos.<br />

Reactivo 3<br />

0,5 ml<br />

0,5 ml<br />

0,75 ml<br />

Mezclar. Luego de 10 minutos la presencia de color azul demuestra la presencia de fosfato<br />

unido a lecitina y cefalina en el tejido.<br />

3

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