(Eriobotrya japonica L.) CV. GOLDEN NUGGET. - Altavoz

PONTIFICIA
UNIVERSIDAD CATÓLICA DE
VALPARAÍSO
FACULTAD DE AGRONOMÍA
TALLER DE LICENCIATURA
COMPORTAMIENTO REPRODUCTIVO Y OBTENCIÓN DE
PARTENOCARPIA EN NÍSPERO (Eriobotrya japonica L.) CV.
GOLDEN NUGGET.
Alumno: Ignacio Rojas Dintrans.
Profesor guía: Sr. Ricardo Cautin.
Profesor corrector: Sr. Cristian Canales.
QUILLOTA, 2007

Dedicatoria.
Dedicado a mi familia: Claudita gracias por tu apoyo y la confianza que me diste para
poder terminar lo que emprendí, te amo y te quiero mucho y a mi PULGITA Javiera por
todos los regaloneos y cuellos que me diste mientras trabajaba en este taller.
A toda mi FAMILIA por su apoyo incondicional que me apoyaron en las buenas y en las
malas, aunque eran mas malas que buenas, pero en fin Gracias.
A mis compañeros los TOM CATS, nunca nos olvidaremos de esas largas horas de
estudio, de carrete, etc. Gracias por estar siempre apoyándonos uno a otros, gracias
Cacho, Tico, Toño, Jota, Ger y Drigo, nunca los olvidare, como tampoco a la Weiser que
los primeros años de Universidad presto la casa y de ahí amigos para siempre.
A mi profesor de taller Ricardo Cautin por confiar en mi y apoyarme en esta difícil tarea, a
Gabriel Jeria fuiste un gran apoyo, gracias.
A los profesores por darme los conocimientos que utilizare en mi futuro, a los
administrativos por ayudarme en momentos complicados, a los auxiliares y a las
señoras(itas) de la cafeta por hacer mas agradable la estadía en la universidad.
A todos mis compañeros de Universidad que confiaron y me apoyaron.
Y por ultimo a los que no confiaron y no creyeron, gracias por que eso me llevo a seguir
luchando.

Índice
Resumen
Abstract
1.- Introducción.....................................................................................................................1
2.- Revisión bibliográfica………............................................................................................3
2.1. Origen............................................................................................................................3
2.2. Descripción morfológica y fisiológica.............................................................................3
2.3. Floración........................................................................................................................5
2.4. Fructificación..................................................................................................................6
2.5. Raleo..............................................................................................................................7
2.6. Partenocarpia.................................................................................................................8
2.7. Giberelinas.....................................................................................................................9
2.8. Crecimiento de los frutos.............................................................................................11
2.9. Citoquininas.................................................................................................................11
3.0. Luz y capacidad fotosintética.......................................................................................12
4.- Materiales y métodos.....................................................................................................14
4.1. Ubicación del ensayo...................................................................................................14
4.2. Método y análisis estadístico.......................................................................................14
4.3. Ensayo 1: Efecto de la poda sobre niveles de radiación fotosinteticamente
activa (PAR) incidente.............................. .........................................................14
4.4. Ensayo 2: Manejo floral y uso de giberelina para inducir frutos partenocárpicos…....15
4.5. Ensayo 3: Evaluación del efecto complementario de la aplicación de citoquininas
al crecimiento de frutos partenocárpicos.....................................................................16
4.6. Ensayo 4: Determinación de la curva de crecimiento de frutos normales
y partenocárpicos tratados con dos dosis de citoquininas...........................................18
4.7. Ensayos anexos..........................................................................................................19
5.- Resultados y discusión.................................................................................................21
5.1. Ensayo 1: Efecto de la intercepción de la radiación fotosintéticamente
activa (PAR) por los brotes y su producción de panículas.... .....................................21
5.2. Ensayo 2: Determinación del método y dosis de giberelina para obtener
frutos partenocárpicos.................................................................................................24
5.3. Ensayo 3: Efecto complementario de la aplicación de citoquinina y número de
Frutos partenocárpicos presentes por panícula, a los cuales se les realizo un corte
al botón floral...............................................................................................................26
5.4. Ensayo 4: Curva de crecimiento de frutos partenocárpicos y normales..................... 30
6.- Conclusiones…..............................................................................................................32
7.- Literatura Citada……….................................................................................................33
8.- Anexos….......................................................................................................................37

Resumen
El níspero en Chile corresponde a plantas propagadas por semillas, productoras y con
frutos dulces pero pequeños y con alta proporción de semillas.
Entre los factores ambientales que afectan el crecimiento de las plantas se encuentra la
cantidad de radiación incidente que llega a los brotes la que incide en el número y calidad
de las panículas, por esto es importante la época en que son podados. La ausencia de
semillas en los frutos es considerado un valor cualitativo, así eliminar o disminuirlas
aumentaría la relación pulpa/semilla. Uno de los factores que afectan a la calidad, es la
cantidad de frutos dejados en el raleo por panícula para obtener calibres adecuados.
Este ensayo se realizó en la Estación Experimental “La Palma”, perteneciente a la
Pontificia Universidad Católica de Valparaíso, entre los meses de diciembre del 2004 a
octubre del 2005 en árboles de níspero cultivar Golden Nugget, en los cuales se
determinó el comportamiento productivo de la madera anual en función de la iluminación
incidente para la producción de frutos partenocárpicos, además, se determinó la dosis
óptima de giberelina y el manejo adecuado a las flores para inducir partenocárpia, así
también la relación óptima entre el número de frutos por panícula y la dosis de citoquinina
suplementaria para aumentar el tamaño de estos frutos, como también determinar su
curva de crecimiento.
Para evaluar el efecto de la poda de brotes sobre el nivel de radiación fotosintéticamente
activa (PAR) incidente en el árbol, se podaron en dos fechas (octubre y diciembre) a tocón
manteniendo una copa abierta. Los resultados obtenidos en la intercepción de radiación
fotosintéticamente activa por los brotes y su respectiva producción de panículas muestran
que existe una diferencia significativa entre el número de panículas producidas en la poda
de diciembre y en la de octubre.
Para determinar la dosis óptima de ácido giberélico para inducir partenocarpia se realizó
un manejo al botón floral en estado de puntas blancas (507 a 509 BBCH), y posterior al
manejo se probaron dosis de 200 y 250 ppm. Para obtener frutos partenocárpicos el
método y las dosis de ácido giberélico utilizadas, reducen el número de semillas
promedio.
Para aumentar y/o mejorar el tamaño de los frutos partenocárpicos se utilizó citoquinina
como suplemento en dosis de 3 y 5 ppm en estados 607, 609 y 701 BBCH, se realizaron
tres raleos manuales para dejar cuatro y cinco frutos por panícula, y así evaluar peso (g),
diámetro ecuatorial (mm) y grados brix. En el efecto complementario de la citoquinina en
la variable peso y diámetro ecuatorial la mejor dosis es 5 ppm, no existiendo diferencia en
el número de frutos por panícula.
Este ensayo permitió determinar una diferencia al inicio y al final de las curvas de
crecimiento entre los frutos partenocárpicos y normales.
Se concluye que una poda efectuada en diciembre mejora la incidencia de luz y con esto
la producción de panículas, además el uso de ácido giberélico reduce el número de
semillas por baya y aplicaciones de citoquinina en frutos partenocárpicos mejora el
tamaño del fruto.

Abstract
The loquat fruit in Chile corresponds to plants spread by seeds, producing of and with
sweet but small fruits and with high proportion of seeds.
One of the environmental factors affecting the growth of the plants is the quantity of
incident radiation on the bud, which affects the number and quality of the panicles.
Because of this, the period in which they are pruned is important. The absence of seeds in
the fruits is considered a qualitative value, thus eliminating or reducing them would enlarge
the pulp/seed relation. One of the factors that affect the quality is the amount of fruits left in
thinning by panicle to obtain adequate sizes.
This trial was carried out at La Palma Experimental Station of Pontificia Universidad
Católica de Valparaíso between December 2004 and October 2005 in Golden Nugget
loquat trees, in which the productive behavior of the annual wood based on the incident
lighting for the production of parthenocarpy fruits was determined; additionally, the optimal
dose of gibberellin and the adequate management of flowers for inducing parthenocarpy
were determined, as well as the optimal relation between the number of fruits by panicle
and the dose of supplementary cytokinin to enlarge the size of these fruits, also to
determine its growth curve.
To evaluate the effect of the pruning of buds on the level of photosynthetically active
radiation (PAR) incident in the tree. Pruning was made in two different dates (October and
December) at stump maintaining an open canopy. The results obtained in the interception
of photosynthetically active radiation by the bud and their respective production of panicles
show the existence of a significant difference among the number of panicles produced in
the pruning of December and October.
To determine the optimal dose of gibberellic acid for inducing parthenocarpy, a
management to the flower bud in state of white tips (507 to 509 BBCH) was made, and
subsequently to management, doses of 200 and 250 ppm were tested. To obtain
parthenocarpic fruits, the dose of gibberellic acid and the method used reduce the number
of average seeds.
To enlarge and/or improve the size of the parthenocarpic fruits, supplementary cytokinin
was used in doses of 3 and 5 ppm in states of 607, 609 and 701 BBCH; three manual
thinning were carried out to leave 4 and 5 fruits per panicles in order to evaluate weight
(g), equatorial diameter (mm) and brix degrees. In the complementary effect of the
cytokinin on the weight variable and equatorial diameter, the best dose is 5 ppm, with no
differences in the number of fruits per panicle.
This trial permitted determining a difference at beginning and the end of the growth curves
between parthenocarpic and normal fruits.
It is concluded that the pruning performed in December improves the effect of light as well
as the production of panicles. Additionally, the use of gibberellic acid reduced the number
of seeds by berry, whereas the cytokinin applications in parthenocarpic fruits improve the
fruit size.

1. Introducción.
El cultivo del níspero (Eriobotrya japónica Lindl.), en Chile se ha llevado en forma de
huertos caseros o como árboles aislados en los jardines de las casas, la mayoría de estos
árboles corresponden a plantas propagadas a partir de semillas, muy productoras, con
frutos dulces pero pequeños y con alta proporción de semillas (Razeto,1988).
La superficie plantada con huertos comerciales se estima en unas 138 hectáreas
distribuidas desde la V a la VI Región (ODEPA, 2005).
Entre los factores ambientales que afectan el crecimiento de las plantas se encuentra la
cantidad de radiación incidente, esta última es la que llega a los brotes e incide en el
número y calidad de las panículas que se producen, por esta razón, es importante la
época y forma de poda, ya que de esta manera mejorará la intercepción de luz y con esto
la producción.
La ausencia de semillas en los frutos es considerado como un valor cualitativo (Baldini,
1992), por esto disminuir o eliminar las semillas en el níspero, mejoraría y aumentaría
este valor, aumentando la relación pulpa / semilla de estos frutos, aumentando con esto la
cantidad de pulpa comestible, esto se pretende lograr realizando un manejo a las flores y
aplicaciones de reguladores de crecimiento como giberelina.
Uno de los factores que afectan a los parámetros de calidad, es la cantidad de frutos
dejados por panícula en el raleo, ya que en manejo tradicional se dejan cuatro frutos para
obtener calibres adecuados para su comercialización. En un fruto partenocárpico la
ausencia de semillas disminuiría el calibre de los frutos, ya que la influencia de la semilla
en el crecimiento del fruto es fundamental. Por lo tanto, el calibre potencial que alcanzara
el fruto estará sujeto a la presencia de semillas. En frutos partenocárpicos el uso de
reguladores de crecimiento como citoquininas actuarían como complemento a esta
necesidad.

Objetivos.
General.
Determinar el comportamiento productivo de la madera anual en función de la
iluminación; para la producción de frutos partenocárpicos en níspero.
Específicos.
Determinar el efecto de la poda de brotes en primavera sobre el nivel de radiación
fotosintéticamente activa (PAR) incidente en el árbol y la producción de panículas.
Determinar la dosis óptima de ácido giberélico para inducir partenocarpia.
Determinar la relación óptima entre el número de frutos por panícula y la dosis de
citoquinina suplementaria para aumentar y/o mejorar el tamaño de frutos
partenocárpicos.

2. Revisión bibliográfica.
2.1. Origen:
El género Eriobotrya consta de alrededor de diez especies, todas las cuales son
endémicas del este asiático (Hoffmann, 1983).
El níspero japonés es una especie frutal de hoja persistente, incluida dentro de la
subfamilia Pomoideas, la misma a la que pertenecen frutales de hoja caduca como el
manzano, el peral y el membrillo (Razeto, 1988); Es una planta originaria del sudeste de
China, de allí paso a Japón, en Europa se cultiva desde el siglo XVIII (Morton, 1987). En
las regiones templadas que rodean el mediterráneo, al sur de Italia y Grecia (Razeto,
1988).
2.2. Descripción morfológica y fisiológica:
Esta especie es de crecimiento lento y de gran longevidad, en óptimas condiciones de
cultivo puede alcanzar hasta 8 m, aunque normalmente no supera la media de 5 a 6 m
(Agustí et al., 2002). El tronco es erecto, de 0.75 – 1.25 m de altura, ramificándose a partir
de ese punto en varios brazos, normalmente de dos a cinco, presenta una corteza rugosa
de color gris pardo de renovación anual.
La raíz principal es pivotante hasta los cuatro o cinco años de edad, y puede llegar a
alcanzar los 2.5 m de profundidad. Las raíces secundarias se extienden a poca
profundidad (unos 25 cm), formando un amplio sistema radicular superficial (Agustí et al.,
2002).
El follaje del árbol es de tipo persistente, sus hojas se presentan agrupadas al extremo de
las ramillas, dispuestas en forma alterna y opuesta (Hoffmann, 1983), Las hojas son
coriáceas, elíptico, lanceoladas, de 18 a 45 cm, según la variedad, de haz verde oscuro y
brillante y de envés gris ceniza muy velloso. Durante la brotación presenta pubescencia

lanquecina en ambas caras, con bordes aserrados. Solo duran un ciclo de crecimiento,
por lo que las ramas de dos a tres años están desnudas de hojas (Rodríguez, 1983).
Chandler (1962), señala que las ramas del año son pubescentes, gruesas y se desarrollan
en grupos de dos o tres ramificaciones; y sobre éstas es donde se ubican
preferentemente las hojas; las ramas de dos o más años son derechas, escamosas y
poco vestidas de hojas.
El níspero produce dos tipos de brotes: vegetativos y reproductivos. Las yemas
vegetativas desarrollan un eje de longitud variable, con un número medio de siete hojas
en mas de un 70% de los brotes (Agustí et al., 2002).
En España, el árbol presenta tres brotaciones: la brotación de primavera, que se inicia a
finales de febrero y se prolonga hasta el mes de mayo; esta brotación origina el 73% de
los tallos nuevos, la segunda brotación entre abril y mayo, presenta un rápido crecimiento,
esta brotación genera un 17% de tallos nuevos, la tercera brotación tiene lugar a finales
del verano o principios de otoño (Agustí et al., 2002).
Según Razeto (1988), los brotes emitidos a inicios de primavera, se originan a partir de
yemas ubicadas en las axilas de las hojas, los que aparecen a fines de primavera lo
hacen a partir de yemas latentes ubicadas en las ramas o en la base de los racimos con
fruta, cuando ésta es recién cosechada o incluso con fruta presente; los brotes detienen
su crecimiento en verano.
Según Pérez (1991), en la zona de Quillota la máxima vegetación ocurre en primavera y
la tercera semana de enero, después de lo cual la tasa de crecimiento empieza a declinar
hasta la primera quincena de febrero donde se advierte un nuevo repunte hasta fines de
abril.

2.3. Floración.
En Chile esta especie presenta una sola floración escalonada desde marzo a julio (López,
1981).
La inflorescencia es una panícula, de 10 a 19 cm de longitud y forma piramidal, ésta
consta de un eje principal en el que se insertan de 5 a 10 ejes que contienen un número
variable de flores en racimo. El número de flores por panícula es de 110 a 150,
dependiendo de las condiciones. Dentro de la panícula, las primeras flores en entrar en
antésis son las apicales de cada brazo de la inflorescencia, dando los frutos de mayor
tamaño y color. El período de tiempo para que florezca toda la panícula varia entre dos a
cuatro semanas (Rodríguez, 1983).
Para Razeto (1988), las yemas florales se forman en el extremo de los brotes nuevos,
muy poco de haber cesado su crecimiento terminal. Las flores se ubican en panículas que
aparecen en otoño en la punta de los brotes. Los frutos cuajan y comienzan a crecer a
inicios de invierno, madurando en primavera; solo la mitad o la tercera parte de las flores
de un racimo dan origen a frutos.
La flor es pequeña y con una agradable fragancia. Posee un cáliz con cinco sépalos
verdes y soldados, una corola con cinco pétalos blancos o rosados, veinte estambres y
cinco pistilos con un ovario de cinco carpelos adherido al cáliz (Agusti et al., 2002).
Las flores son pequeñas, de 1 cm de diámetro; son bisexuales y autofértiles en la mayoría
de las variedades, con cáliz de cinco dientes bastante pubescente. El androceo posee
numerosos estambres, alrededor de 20, de filamentos cortos, el ovario es infero
(Hoffmann, 1983).
Según Razeto (1988), la mayoría de las variedades son autofértiles, aunque existen
algunas que necesitan polinización cruzada, por lo tanto, deberán ser cultivadas con otras
que sirvan de polinizadores. Durante el estado de botón floral, antes de la antesis, el
polen esta totalmente viable lo que permite la autopolinización en las variedades auto
fértiles.

Chandler (1962), afirma que no todas las flores llegaran a formar fruto; generalmente
existen 10 a 12 frutos por panícula; para López (1981), los frutos se producen agrupados
en número de cuatro a cinco y que raramente se les encuentra aislado.
Razeto (1988), menciona que la flor posee cinco carpelos con dos óvulos cada uno, de
modo que si la fertilización fuese total, el fruto tendría diez semillas. Las mejores
variedades tienen dos a tres semillas y una mayor proporción de pulpa comestible. En
estas variedades el peso de la semilla representa alrededor de 15 a 18% del peso de total
del fruto.
2.4. Fructificación:
El fruto es un pomo, normalmente oval o piriforme, alcanzando en los mejores cultivares
unas longitud de 7 cm, y cuyo tejido carnosos procede del eje floral (Agustí et al., 2002).
Los frutos maduros o cercanos a su madurez son muy sensibles al daño por golpe de sol,
esta constituye una causa de pérdida de un alto número de frutos. Este problema se
puede evitar o disminuir con plantaciones densas (Razeto, 1988). Según este mismo
autor, plantaciones en alta densidad presentaran mayor precocidad de producción por
unidad de superficie.
En huertos de alta densidad, los árboles no se podan en sus primeros años para permitir
el máximo de producción. La fruta compite con el crecimiento vegetativo y por lo tanto el
árbol se desarrolla menos. En este tipo de huertos, es preferible la formación en eje y no
en vaso, para lo cual se van renovando ramas y eliminando aquellas muy vigorosas
ubicadas en la parte alta del árbol (Razeto, 1988).
Ya que el níspero fructifica en gran cantidad, el tamaño del fruto es demasiado pequeño y
con una alta proporción de semillas, este exceso de carga compite con el crecimiento
vegetativo y con la inducción floral, esto significara que crecerá poco y producirá una baja
cantidad de fruta al año siguiente, este problema no ocurre en plantaciones densas, ya

que la sombra se encarga de evitar un exceso de floración y posterior cuaja de frutos
(Razeto, 1988).
El cultivar Golden Nugget es una variedad procedente de California, muy vigorosa y poco
productiva, con aproximadamente el 85% de los brotes centrales y el 25% de los laterales
fructíferos. Tiene hojas grandes, de dientes espaciados; el fruto de sabor regular, es
ovalado, de sección transversal redondeada, la piel y la pulpa son de color amarillo –
anaranjado (Agustí, 2002).
2.5. Raleo:
El aclareo de frutos es una práctica para reducir la rotura de las ramas, aumentar el
tamaño del fruto, mejorar el color y la calidad (Westwood, 1982).
El ajuste de carga es traducido en crecimiento del fruto. Por ello, el proceso de raleo es
considerado por algunos como el ajuste de la relación hoja/fruto a un nivel deseable
(Faust, 1989).
El equilibrio local generado por la síntesis de hormonas en el óvulo recién fecundado y el
fruto en sus primeros estados de desarrollo es importante para el cuajado del fruto
(Westwood, 1982).
El raleo se puede efectuar eliminando racimos completos o eliminando frutos en cada
racimo. Generalmente, ambas operaciones hechas en forma simultanea, ofrecen los
mejores resultados (Razeto, 1988).

2.6. Partenocarpia
El desarrollo de un fruto sin semilla recibe el nombre de partenocarpia, los factores que
condicionan esto pueden ser de origen endógeno como exógeno. Así la polinización, la
germinación del grano de polen y el desarrollo del tubo polínico, sin que en ningún caso
se alcance la fecundación, constituyen estímulos suficientes para que se inicie el
desarrollo del ovario en ausencia de semilla (Agustí, 2000).
En diversas especies hortícolas, es posible producir frutos partenocárpicos mediante la
aplicación de auxinas; en variedades de manzano y peral con dificultades de polinización,
la utilización de giberelinas para inducir la producción de frutos partenocárpicos es,
asimismo una práctica habitual (Agustí, 2000).
En algunos frutos (plátano, agrios, caqui, uva, etc.) la ausencia de semillas se considera
como un valor cualitativo (Baldini, 1992).
En la formación de semillas se ha demostrado una elevada capacidad de síntesis
hormonal (giberelinas, citoquininas y auxinas), responsable del crecimiento de sus tejidos
adyacentes. Este fenómeno esta sobradamente demostrado en drupáceas, pomáceas y
cítricos. En experimentos comparativos entre variedades con y sin semilla, se sugiere que
la síntesis hormonal tiene lugar en óvulos fertilizados, sin embargo, la aplicación a frutos
con semillas de sustancias inhibidoras del desarrollo del tubo polínico, reduce el número
de semillas por fruto, sin que ello afecte a la cosecha (Agustí, 2000).
En variedades de manzano y peral con dificultades de polinización, la utilización de
giberelinas para inducir la producción de frutos partenocárpicos, es habitual; las
condiciones ambientales, temperaturas elevadas (> 20ºC) y humedades relativas altas
(>80%), promueven el desarrollo de frutos partenocárpicos (Agustí, 2004).
Debido a la falta de semillas los frutos partenocárpicos tienden a ser más alargados que
los gameticos; este hecho es evidente en peras (Baldini, 1992).

Los frutos partenocárpicos también contienen auxinas y citóquininas pero en cantidades
inferiores con respecto a los gamitos de la misma especie; por el contrario, las giberelinas
son escasísimas o incluso no existen. La menor disponibilidad de promotores unida a la
ausencia de semillas, explica el menor cuajado y una mayor caída a la que se ven
sometidos los frutos partenocárpicos (Baldini, 1992).
2.7. Giberelinas
Las giberelinas derivan del hongo Gibberella fujikuroi, son numerosas substancias, los
ácidos diterpenoides identificados por un número (AG n ), entre los cuales el más conocido
es el ácido giberélico (AG 3 ) (Gil, 2000), la síntesis ocurre en órganos nuevos, como hojas
en expansión, óvulos, ovarios, frutos y semillas en desarrollo, ápices radiculares y de
brotes (Gil, 1999; Barceló et al., 2003); los tejidos reproductores contienen mayores
cantidades de giberelinas (Barceló et al., 2003).
Las giberelinas son metabolizadas por hidroxilación y degradadas a productos inactivos,
estas pueden ser guardadas en forma inactiva como glucosa (Gil, 2000).
El transporte de las giberelinas no es polar, pues se mueve con el agua en el xilema y con
la savia en el floema, en las hojas nuevas el transporte es basipetalo (Gil, 2000). Como
también viajan a lo largo del parénquima cortical o de otro tejidos parenquimatosos
(Salisbury, 1994).
La acción celular se traduce en estimulo a la división; inducción de hidrólisis de almidón y
sucrosa para formar glucosa y fructosa, favoreciendo la liberación de energía; aumento en
la plasticidad de la pared celular.
En la planta actúa en el crecimiento en longitud del brote, en la juventud de órganos, en la
fructificación y crecimiento del fruto, y en la diferenciación vascular (Gil, 2000);
germinación de semillas y crecimiento de frutos (Barceló et al., 2003).

Factores que influyen sobre el contenido de giberelinas es la luz, el fotoperíodo y la
temperatura (Barceló et al, 2003).
Lobato (1992), obtuvieron un efecto positivo en la inducción de partenocarpia en uva de
mesa con aplicaciones de de ácido giberélico, 100 ppm antes de plena flor en variedad
hokri, con aplicaciones antes y después de plena flor con 100 ppm en cultivar Delaware,
en pre y post floración en la variedad Italia, respectivamente.
Herrera (1992), con aplicaciones en prefloración combinada con post floración logran
inducir bayas partenocárpicas en bayas de vid cv. Italia, Ribier y Emperor, Ibacache
(1981), logra inducir un alto porcentaje de partenocarpia en el cv. Moscatel de Alejandría,
con aplicaciones de ácido giberélico después de botón floral.
El efecto de las giberelinas va en relación al estado fenológico en que se las aplique,
llegándose a perder gran parte de su efectividad con un adelanto o retraso en su
aplicación (Turner, 1972).
En peras, cuando se impide la formación de semillas mediante la emasculación, el
contenido de giberelinas en los frutos es menor que en aquellos que han desarrollado
frutos normalmente. Sin embargo, los frutos con cuajado partenocárpico contienen
mayores niveles de giberelinas, lo que explica su tendencia a cuajar en ausencia de
polinización o fertilización, esto a sido demostrado en peras, manzanas, cítricos, uvas,
etc. En estas especies, son por lo tanto las giberelinas las que controlan la partenocarpia
y el desarrollo inicial del fruto (Agustí, 2004).
Pratt y Shaulis (1961), logran inducir partenocarpia en dos variedades semilladas de uva
de mesa con aplicaciones en floración con dosis 100 y 200 ppm, estas bayas son de
menor calibre que las no tratadas con giberelina.
Sadamatsu (2004), indica que giberelinas naturales son más efectivas que artificiales para
producir frutos partenocárpicos en dosis de 500 y 1000ppm.

2.8. Crecimiento de los frutos:
El crecimiento del fruto del níspero esta ajustado a una curva de crecimiento exponencial,
concentrando el proceso de división celular en los primeros estados de desarrollo, con un
rápido incremento en el tamaño del fruto que coincide con el ascenso de las temperaturas
en primavera y el crecimiento celular por efecto de elongación ( Blumenfeld, 1980).
El crecimiento del fruto en el árbol disminuye en invierno, en comparación con el
crecimiento de primavera. En los estados iniciales del crecimiento del fruto empiezan las
divisiones celulares en la pulpa, epidermis y semillas, que compiten con los brotes nuevos
por su nutrición (Lopescu et al., 1980).
Según Aris (1992), la curva de crecimiento en la zona de Quillota se asemeja a una curva
sigmoidea, teniendo un crecimiento desde cuaja a cosecha.
2.9. Citoquininas:
Las citoquininas son reguladores de crecimiento, cuya acción típica es activar la división
celular y retardar la senescencia de los órganos. Proviene de derivados de la adenina,
algunos de los cuales se han encontrado en forma natural en las plantas y otras
moléculas son sintéticas (Rojas y Rovalo, 1979).
Los principales lugares de síntesis de citoquininas son las raíces y los frutos jóvenes. Su
movimiento en las plantas parece que es en ambos sentidos, hacia arriba desde las
raíces en la savia del xilema y hacia abajo desde los puntos de aplicación o síntesis en los
órganos aéreos del floema (Westwood, 1982).
Una de las principales funciones de las citoquininas es estimular la citoquinesis, retardar
el envejecimiento, estimular el crecimiento de hojas, estimula el desarrollo de brotes
laterales, intervienen en la formación de cloroplastos (Jensen y Salisbury, 1988).

Las citoquininas son muy poco móviles aplicadas en forma exógena, si se aplica en una
yema, solo actúa en el lugar de aplicación. Las citoquininas endógenas parecen tener
transporte polar basipetalo, pero se desconoce el mecanismo y velocidad (Rojas y
Rovalo, 1979).
Las citoquininas desempeñan una función importante en la regulación de la división
celular de los frutos de manzano y ciruelo y quizás también en la mayoría de los demás
frutos (Weaver, 1976).
Reynier (1989), afirma que, en el caso de la vid, las citoquininas producidas a nivel de
raíces migran hacia los órganos en crecimiento y especialmente hacia los frutos jóvenes,
donde favorecen al estar asociadas a auxinas. La presencia de citoquininas en los
órganos favorece también la síntesis de aminoácidos y ejerce un poder de atracción de
asimilados.
Las células en división y expansión están bajo el control hormonal y temprano en el
crecimiento del fruto es normalmente influenciado por una triple interacción entre los tres
mayores grupos de promotores del crecimiento (auxinas, giberalinas y citoquininas)
(Greene, 1989).
Las citoquininas actúan en la división celular, los máximos niveles de citoquinina
producidos en las raíces se acumulan en órganos jóvenes (semillas, frutos y hojas)
(Salisbury, 1994); el endospermo durante el desarrollo de las semillas o el eje
embrionario, se convierten en centro de producción (Segura, 2000).
3.0. Luz y Capacidad fotosintética.
La capacidad fotosintética de la hoja depende de varios factores y es característica de las
especies y, en menor medida, de las variedades. La variación en fijación de CO 2 que
ocurre en la naturaleza, en µ moles/ m 2 / s, es de 5 a 18 en árboles frutales.

La fotosíntesis neta total depende de la energía radiante total recibida por las hojas
activas en un ciclo biológico (Gil, 2000).
La radiación fotosintéticamente activa (RFA, ingles PAR), esta comprendida entre las
longitudes de onda 400 y 700 nm y solamente es un 45-50% del total recibido por la
planta, esto es, 400 o 500 W / m 2 en un día claro sin nubes (Rivas, 2001).
En un día claro varia dependiendo del lugar de 1800 a 2500 micromoles de fotones por
segundo por metro cuadrado. En un día nublado baja a 800 a 1000 µmoles/ seg / m 2 .
Para fines de productividad interesa el total del día y de la temporada que llega a las
plantas (Gil, 2000).
La fotosíntesis neta de una hoja según la intensidad de luz puede graficarse como una
hipérbola de magnitud característica de la especie. Si el nivel de luz es muy bajo la hoja
producirá menos materia que la que ella misma necesita y es una hoja parásita. Un mayor
nivel de flujo de fotones, generalmente 20 – 30 µmoles / m 2 / s, o 1% de la luz
fotosintéticamente activa, entre 10-20 en subtropicales como el palto, la hoja se encuentra
en equilibrio productivo, la tasa de fotosíntesis es igual a la de respiración, lo que se
conoce como el punto de compensación. Mientras mayor es la intensidad de luz, mayor
es la fotosíntesis neta hasta un punto de saturación, para fines prácticos se toma como
punto de saturación un 90% de la fotosíntesis máxima. La luz que excede la saturación
hace caer la tasa de fotosíntesis o sea foto inhibición (Gil, 2000).
Entre las especies y variedades hay diferencias en esas características. La saturación
ocurre con un flujo de fotones entre 400 a 700 µmol / m 2 / s, equivalente a entre 20 y 50%
de la luz total (Gil, 2000).
Para Ferre (1980), la radiación fotosinteticamente activa (PAR) captada por un vegetal
determina directamente la producción de fotosintatos, influyendo sobre el crecimiento, la
productividad y calidad de fruta de las plantas
En manzano, en las zonas sombreadas del árbol donde penetra menos de un 30% de la
luz solar, prácticamente no se forman yemas de flor (Agusti, 2004).

4.- Materiales y métodos
4.1. Ubicación del ensayo:
Esta investigación se realizó en la Estación Experimental “La Palma”, perteneciente a la
Facultad de Agronomía de la Pontificia Universidad Católica de Valparaíso, ubicada en la
provincia de Quillota, V región, Chile.
Se realizó en árboles del cultivar Golden nugget de tres años de edad, con un marco de
plantación de 1 x 1,2 m (8333 plantas/ha).
El riego se efectuó mediante goteros de 4 l/hora, distanciados a un metro en el lateral.
4.2. Método y análisis estadístico.
Se uso para los ensayos de intercepción de luz y aplicación de ácido giberélico un diseño
por bloques y para la aplicación de citoquinina un diseño completamente al azar, los
resultados se evaluarán según el análisis de varianza (ANOVA) con significancía de 0,05,
con la prueba de separación de medias según el test de Tukey con un 95% de confianza.
4.3. Ensayo 1: Efecto de la poda sobre niveles de radiación fotosintéticamente activa
(PAR) incidente.
Los árboles fueron podados de igual manera en las fechas octubre y diciembre, la poda
consistió en mantener la copa abierta, despejando el centro de los árboles, rebajando los
brazos a tocón, para que estas nuevas ramas sean las portadoras de fruta.
Las mediciones se realizaron desde los meses de enero a junio del 2005 y se evaluó la
radiación fotosintéticamente activa (PAR), con el uso de un sensor marca Li – Cor ®,
modelo Li – 1400, data logger, expresada en µ mol m -2 s -1 .

Las mediciones se efectuaron a las 12:00 hr en días claros sin nubosidad, una vez al mes
desde el mes de enero hasta el mes de mayo, en los cuatro puntos cardinales a dos
alturas, en la periferia y en el interior del árbol, en las plantas podadas en diciembre solo
se realizó la medición en la periferia debido al menor diámetro que presentaban estas
plantas. La altura de medición en los dos tratamientos (diciembre y octubre), se realizaron
a 50cm, 70cm del suelo para los árboles podados en diciembre y 90cm en los árboles
podados en octubre, esto debido a la diferencia de altura en que se encontraban los
árboles al momento de la medición, luego se tomo un promedio del árbol en general para
poder ser comparados.
Se tomaron seis árboles por tratamiento de un total de 78 árboles podados en octubre y
60 árboles podados en diciembre, para luego contabilizar la cantidad de panículas
producidas en los árboles seleccionados, se tomo como referencia la cantidad de luz
promedio captada en forma directa, obtenida en el exterior del huerto a las 12:00 hrs.
Tratamientos:
T1: Poda en octubre.
T2: Poda en diciembre.
4.4. Ensayo 2: Manejo floral y uso de giberelina para inducir frutos partenocárpicos.
Para iniciar la producción de frutos partenocárpicos, se realizó como manejo el despunte
a los botones florales cuando estos se encontraron en estado de puntas blancas (507 a
509 BBCH), ésto se realizó con el uso de un bisturí cortando el botón floral (Anexos 2, 3),
sobre el cáliz con el fin de eliminar los estambres y el pistilo para evitar que se produzca
fecundación de óvulos, al efectuar este corte se realizó un primer raleo dejando de tres a
cuatro botones por hombro.
El corte se realizó en todos los botones de las panículas de los árboles seleccionados.
Inmediatamente después del corte, se realizó la aplicación (usando un aspersor manual)
de ácido giberélico (Acigib ® con 12.5% de ácido giberélico) en dosis de 200 y 250 ppm,

la primera aplicación de giberelina se efectuó en estado 507 BBCH, ésta se aplicó en
forma directa a las flores hasta el punto de goteo (Anexo 4), las siguientes aplicaciones se
llevaron a cabo a las flores cada 25 días hasta el estado 605 BBCH.
Se evaluó en la cosecha el número de semillas en los frutos y el porcentaje de
partenocarpia obtenido.
El número de frutos utilizado según tratamiento fue el siguiente:
T0: Frutos sin corte al botón floral y sin aplicación de giberelina: 43 frutos.
T1: Frutos con corte al botón floral y sin aplicación de giberelina: 44 frutos.
T2: Frutos sin corte al botón floral y con aplicación de 200 ppm de giberelina: 48 frutos.
T3: Frutos con corte al botón floral y con aplicación de 200 ppm de giberelina: 344 frutos.
T4: Frutos sin corte al botón floral y con aplicación de 250 ppm de giberelina: 80 frutos.
T5: Frutos con corte al botón floral y con aplicación de 250 ppm de giberelina: 397 frutos.
4.5. Ensayo 3: Evaluación del efecto complementario de la aplicación de citoquininas al
crecimiento de frutos partenocárpicos.
Este ensayo pretende evaluar el efecto de la aplicación de dos dosis de citoquinina,
Sitofex® que contiene 1 g/l de forchlofenuron (nombre químico CPPU), formulado como
concentrado emulsionable en el crecimiento de frutos partenocárpicos, como efecto
complementario a las giberelinas.
La citoquinina se aplicó a los frutos a los cuales se les realizó el corte al botón floral, las
aplicaciones de citoquinina se realizaron en tres fechas distintas de acuerdo al
crecimiento del fruto, según su diámetro ecuatorial, la primera aplicación se realizó
cuando el fruto presento 2 a 4 mm de diámetro (estado 607 BBCH), la segunda aplicación
con 8 a 10 mm (estado 609 BBCH) y la tercera con 13 a 15 mm (estado 701 BBCH), las
dosis utilizadas fueron de 3 y 5 ppm, estas aplicaciones fueron mezcladas con el
surfactante, Break®, en dosis de 0,1cc / l este producto reduce la tensión superficial,
estas aplicaciones se realizaron con un aspersor manual.

Para establecer el número de frutos por panícula se realizaron tres raleos manuales. El
primero junto con la corta del botón y la primera aplicación de giberelina, el segundo raleo
se efectuó cuando los frutos se encontraban cuajados y con un diámetro ecuatorial diez
milímetros, el último raleo se llevo a cabo solo en caso necesario cuando los frutos
presentaron de 10 a 15 milímetros de diámetro ecuatorial, para así dejar finalmente
panículas de cuatro (Anexo 5) y cinco frutos (Anexo 6).
La cosecha se efectuó con los parámetros convencionales de color de frutos y se evaluó
los parámetros de calidad: peso de los frutos; diámetro ecuatorial y concentración de
sólidos solubles.
Para este ensayo se utilizó una balanza digital Incor ®, un pie de metro digital marca
Mitutoyo ® y un refractómetro.
Los tratamientos son los siguientes:
T1: Panícula con 4 frutos + 200 ppm de giberelina + corte + 0 ppm de citoquinina.
T2: Panícula con 5 frutos + 200 ppm de giberelina + corte + 0 ppm de citoquinina.
T3: Panícula con 4 frutos + 250 ppm de giberelina + corte + 0 ppm de citoquinina.
T4: Panícula con 5 frutos + 250 ppm de giberelina + corte + 0 ppm de citoquinina.
T5: Panícula con 4 frutos + 200 ppm de giberelina + corte + 3 ppm de citoquinina.
T6: Panícula con 5 frutos + 200 ppm de giberelina + corte + 3 ppm de citoquinina.
T7: Panícula con 4 frutos + 200 ppm de giberelina + corte + 5 ppm de citoquinina.
T8: Panícula con 5 frutos + 200 ppm de giberelina + corte + 5 ppm de citoquinina.
T9: Panícula con 4 frutos + 250 ppm de giberelina + corte + 3 ppm de citoquinina.
T10: Panícula con 5 frutos + 250 ppm de giberelina + corte + 3 ppm de citoquinina.
T11: Panícula con 4 frutos + 250 ppm de giberelina + corte + 5 ppm de citoquinina.
T12: Panícula con 5 frutos + 250 ppm de giberelina + corte + 5 ppm de citoquinina.
T1, T2, T3 y T4: son los testigos.

Número de frutos por tratamiento:
T1: 42 frutos.
T2: 44 frutos.
T3: 48 frutos.
T4: 51 frutos.
T5: 99 frutos.
T6: 124 frutos.
T7: 77 frutos.
T8: 82 frutos.
T9: 78 frutos.
T10: 117 frutos.
T11: 59 frutos.
T12: 65 frutos.
4.6. Ensayo 4: Determinación de la curva de crecimiento de frutos normales y
partenocárpicos tratados con dos dosis de citoquininas:
Se determinó y comparó la curva de crecimiento de los frutos partenocárpicos (con corte),
contra frutos normales, para determinar la curva de crecimiento se utilizó un pie de metro
digital marca Mitutoyo®, con el cual se midió el diámetro ecuatorial de frutos cada tres
semanas hasta su cosecha, los tratamientos fueron los siguientes:
T0: Panículas normales con cuatro frutos.
T1: Panículas con Cuatro frutos con corte + 200 ppm de giberelina + 3 ppm de citoquinina.
T2: Panículas con Cinco frutos con corte + 200 ppm de giberelina + 3 ppm de citoquinina.
T3: Panículas con Cuatro frutos con corte + 200 ppm de giberelina + 5 ppm de citoquinina.
T4: Panículas con Cinco frutos con corte + 200 ppm de giberelina + 5 ppm de citoquinina.
T5: Panículas con Cuatro frutos con corte + 250 ppm de giberelina + 3 ppm de citoquinina.
T6: Panículas con Cinco frutos con corte + 250 ppm de giberelina + 3 ppm de citoquinina.
T7: Panículas con Cuatro frutos con corte + 250 ppm de giberelina + 5 ppm de citoquinina.
T8: Panículas con Cinco frutos con corte + 250 ppm de giberelina + 5 ppm de citoquinina.

Se eligieron al azar cuatro panículas por tratamiento, y se midieron los frutos de cada una
de estas panículas quedando de la siguiente manera:
T0: Testigo, con 16 frutos.
T1, T3, T5, T7: Con 16 frutos cada uno.
T2, T4, T6, T8 : Con 20 frutos cada uno.
4.7. Ensayos anexos:
Se realizaron ensayos anexos, los cuales no pueden ser evaluados estadísticamente por
no tener un número de repeticiones adecuado, a lo cual solo se mostraran los resultados
de estos ensayos en anexos.
Ensayo anexo: Efecto de la aplicación de citoquininas en frutos normales y
partenocárpicos, sobre parámetros de peso, diámetro y sólidos solubles:
Ensayo 1.
Los tratamientos serán los siguientes, en frutos normales:
T0: Panícula con 4 frutos sin citoquinina.
T1: Panícula con 5 frutos sin citoquinina.
T2: Panícula con 4 frutos y 3 ppm de citoquinina.
T3: Panícula con 5 frutos y 3 ppm de citoquinina.
T4: Panícula con 4 frutos y 5 ppm de citoquinina.
T5: Panícula con 5 frutos y 5 ppm de citoquinina.
T0 y T1: son los testigos.

Ensayo 2.
Los tratamientos en los frutos partenocárpicos a los cuales no se les realizó el corte al
botón floral:
T0: Panícula con 200 ppm de giberelina + 3 ppm de citoquinina.
T1: Panícula con 200 ppm de giberelina + 5 ppm de citoquinina.
T2: Panícula con 250 ppm de giberelina + 3 ppm de citoquinina.
T3: Panícula con 250 ppm de giberelina + 5 ppm de citoquinina.
T4: Panícula con 200 ppm de giberelina + 0 ppm de citoquinina.
T5: Panícula con 250 ppm de giberelina + 0 ppm de citoquinina.
T4 y T5: Testigos.

5.- Resultados y discusión
5.1. Ensayo 1. Efecto de la Intercepción de la radiación fotosintéticamente activa (PAR)
por los brotes y su producción de panículas.
En la siguiente figura se puede apreciar la diferencia que existe en la intercepción de luz
entre las plantas que fueron podadas en dos fechas distintas (octubre y diciembre 2005),
respecto del total de luz incidente en el huerto.
2500
2000
Luz umol / m 2 / s
1500
1000
500
0
Enero Febrero Marzo Marzo Abril Abril Mayo
Meses
Total luz Pod. Octubre Pod. Diciembre
Figura1. Intercepción de luz entre las distintas épocas de poda.
Micromol / m 2 / s
2500
2000
1500
1000
500
0
01-05
02-05
02-05
02-05
02-05
03-05
03-05
03-05
03-05
Fechas
03-05
04-05
04-05
04-05
04-05
05-05
05-05
05-05
Luz total
Poda diciembre
Poda octubre
Figura 2. Gráfico del promedio de intercepción de luz a seis árboles por tratamiento, en
dos épocas de poda, con el promedio de intercepción de luz total.

Según Agustí (2002), el primer crecimiento produce alrededor del 73% de brotes nuevos,
así al podar temprano en octubre se verán afectados los primeros brotes de la temporada
y como resultado la segunda brotación será mas vigorosa y producirá un sombreamiento
mayor, esto impediría la fotosíntesis y un menor número de panículas, así también un
excesivo crecimiento que compite con la inducción floral Razeto (1988).
Una poda más tardía que afectaría el segundo “flash” de crecimiento traería consigo
brotes más cortos y con mayor producción de panículas según Razeto (1988).
Según Pérez (1991), a fines de octubre la tasa de crecimiento de la primera brotación
decae y se presenta una segunda brotación a comienzos de diciembre hasta la primera
quincena de enero donde comienza a decaer, como también comienza el crecimiento del
sistema radicular al final de noviembre, de esta manera, se podría explicar la baja en la
tasa de crecimiento de los brotes que fueron podados en el mes de diciembre, que se ven
afectados por la competencia que tienen estos brotes con el comienzo en el crecimiento
del sistema radicular, y donde la mayor parte de los carbohidratos y reservas ya fueron
utilizadas por la primera brotación que es la de mayor intensidad.
Cuadro 1. Radiación incidente Luz que llega a los árboles (%), y número de panículas que
se producen en cada condición.
Tratamientos
de Poda
Total de radiación
incidente 100%
ųmol/m 2 /s
Radiación
incidente
ųmol/m 2 /s
% Luz que llega
a los árboles
Promedio Nº
Panículas
por árbol
Diciembre 1385,92 771,61 a 55,67 % 3,88 a
Octubre 1385,92 460,04 b 33,43 % 0,29 b
Los promedios con igual letra son estadísticamente iguales de acuerdo al test de Tukey al
5%.
De este cuadro podemos determinar que se produce una mejor y mayor luminosidad al
interior de la copa cuando son podados en diciembre, esto trae consigo una mayor
producción de panículas, las cuales se producen cuando la intensidad de luz que llega a
los árboles es mayor del 50% de la que llega en forma directa a los árboles, lo que
concuerda con Gil (2000).

La diferencia que existe en el número de panículas por árbol, se debe a la cantidad de
radiación incidente que llegó a los árboles, así para Lemus (1993) la luminosidad afecta
la fructificación en durazneros, que es generada en la zona que está más expuesta a la
radiación; al igual que Jeria (2003), que trabajo en chirimoyos, determina que los niveles
de luminosidad inciden en el número final de frutos.
Yuri (1997), indica que el aumento en la intercepción de luz por el árbol es una forma
indirecta de aumentar la tasa de fotosíntesis, además menciona que para la producción
de fruta no se requiere un gran número de hojas, si no que se encuentren funcionales y
bien expuestas a la luz, según el mismo autor, indica la importancia de mantener una
buena iluminación de los árboles cuando se trabaja en alta densidad.
Razeto (1988), menciona que la sombra se encarga de limitar un exceso de floración y
posterior cuaja de los frutos; Raffo (2004), explica que una gran masa foliar produce
sombreado entre las hojas y en consecuencia disminuye la eficiencia fotosintética, al
disminuir la eficiencia fotosintética, se reduce la disponibilidad de carbohidratos y así la
fructificación; del mismo modo Pérez (1991), señala que los brotes que se encontraban
sombreados la mayor parte del tiempo no emitieron panículas en níspero, de esta forma,
se explicaría la baja producción de panículas en el níspero en los árboles podados en el
mes de octubre.
Al igual que Faust (1989), al obtener un porcentaje de luz incidente de 31,13% con
respecto a la luz total incidente, no obtiene fruta adecuada, lo que concuerda con los
resultados de este trabajo, con un porcentaje de 33,43% la fruta obtenida es escasa y de
pobre calidad.
Al podar los árboles en el mes de octubre se presentó un mayor crecimiento de los brotes
lo cual provocó emboscamiento que afecto la intercepción de luz y posterior producción
de panículas.

5.2. Ensayo 2. Determinación del método y dosis de giberelina para obtener frutos
partenocárpicos.
El Cuadro 2 presenta los distintos tratamientos efectuados en los árboles de níspero y su
efecto en la producción de semillas.
Cuadro 2. Presencia y número de semillas, en frutos tratados al momento de la cosecha,
con a lo menos 40 frutos por tratamiento.
Tratamiento
Promedio número
de semillas
% frutos
partenocárpicos
T0: 0 ppm sin corte al botón floral. 2,73 b 0 b
T1: 0 ppm + corte al botón floral. 0,08 a c 96,22 a c
T2: 200 ppm sin corte al botón floral. 0,12 a d 88,24 a d
T3: 200 ppm + corte al botón (anexo 8). 0,16 a d 92,73 a d
T4: 250 ppm sin corte al botón floral. 0,05 a c 95,15 a c
T5: 250 ppm + corte al botón floral (anexo 9). 0,06 a c 91,66 a c
Los promedios con igual letra son estadísticamente iguales de acuerdo al test de Tukey al
5%.
Todos los tratamientos difieren del testigo; los resultados muestran que al utilizar
cualquier tratamiento el resultado seria la ausencia y/o reducción en el número de
semillas, con 200 ppm o 250 ppm (Anexo 10), realizando el corte o no al botón floral
(Anexo 11).
Esto lleva a deducir que para producir nísperos partenocárpicos no es necesario realizar
el corte al botón floral, ya que el níspero se muestra como una especie con alta
receptividad para producir frutos apirenos, al aplicar ácido giberélico en estado de pre
floración o estado 509 según escala BBCH.
No se detecta diferencia significativa en la interacción entre las dosis y el manejo de la flor
(corte al botón floral) realizado, pero al analizar por separado estas variables se observa
una diferencia significativa solo en las dosis aplicadas.

Goubran (1986), redujo a la mitad el número de semillas en níspero japonés con ácido
giberélico en concentración de 250 ppm, aplicado después de la salida de brotes florales
(600 a 605 BBCH). Al igual que en este ensayo, se redujo el número de semillas en los
tratamientos donde se les aplicó una dosis de ácido giberélico de 250 ppm, más que en
los tratamientos donde se utilizó 200 ppm en frutos donde no se les realizó un corte al
botón floral.
Según estos autores Lobato (1992) y Herrera (1992), para obtener frutos partenocárpicos
en vid, es necesario realizar aplicaciones de ácido giberélico antes de floración y post
floración, lo que concuerda con este ensayo, donde las primeras aplicaciones de
giberelina se realizaron en un estado de puntas blancas (507 a 509 escala BBCH),
obteniendo así frutos partenocárpicos.
La formación de frutos apirenos según Baldini (1992), se puede producir cuando
determinadas condiciones climáticas o nutricionales provocan un inicio en el desarrollo de
los tubos polínicos, los cuales sin llegar a los óvulos, estimulan el desarrollo de los
ovarios, esto es partenocarpia estimulativa o inducida.
En el estado de botón floral, antes de antesis, el polen del níspero se encuentra viable,
Razeto (1998), así una aplicación de ácido giberélico reduce el crecimiento del tubo
polínico, se reduciría la germiniabilidad del polen y esto sin que se alcance la fecundación
es un estimulo suficiente para que se inicie el desarrollo del ovario en ausencia de semilla
Talón (2000); lo que estimularía la partenocarpia.
El ácido giberélico actúa en el crecimiento de los brotes, explicado por elongación celular
y parcialmente por división, las giberelinas producen una desorganización de las
microfibrillas de la pared celular, permitiendo una mayor expansión celular, según esto es
perfectamente viable un crecimiento del tálamo del níspero ya que aplicado en las
primeras etapas del desarrollo se encuentra mas receptivo y sensible.
El níspero al ser un pomo, en que la pulpa proviene del desarrollo del receptáculo de la
flor, Razeto (1999), la aplicación de ácido giberélico reduciría el crecimiento del tubo
polínico, esto estimularía el desarrollo del ovario y estimularía el crecimiento del tálamo o

eceptáculo, así se formarían los frutos partenocárpicos; al igual que en vid, la aplicación
de ácido giberélico estimula el crecimiento del raquis y estructuras del racimo, Ibacache
(1981).
Según esto, la partenocarpia en níspero podría ser viable, con estas dosis y aplicaciones
más seguidas, sin tener que cortar el botón floral.
5.3. Ensayo 3: Efecto complementario de la aplicación de citoquinina y número de frutos
partenocárpicos presentes por panícula, a los cuales se les realizó un
corte al botón floral.
Para facilitar la lectura se abreviaran los tratamientos de la siguiente manera:
Tx: Número de frutos / Dosis giberelina / Manejo ( cc: con corte) / Dosis citoquinina.
Tx: (4 o 5) / (0, 200 o 250 ppm) / (cc o sc) / (3, 5 o 0 ppm)
T1: 4 / 200 ppm / cc.
T2: 5 / 200 ppm / cc.
T3: 4 / 250 ppm / cc.
T4: 5 / 250 ppm / cc.
T5: 4 / 200 ppm / cc / 3 ppm.
T6: 5 / 200 ppm / cc / 3 ppm.
T7: 4 / 200 ppm / cc / 5 ppm.
T8: 5 / 200 ppm / cc / 5 ppm.
T9: 4 / 250 ppm / cc / 3 ppm
T10: 5 / 250 ppm / cc / 3 ppm.
T11: 4 / 250 ppm / cc / 5 ppm.
T12: 5 / 250 ppm / cc / 5 ppm.
T1, T2, T3 y T4: son los testigos.

Cuadro 10. Comparación de los promedios de los frutos en peso (g), diámetro ecuatorial
(mm) y grados brix, de los tratamientos según las dosis de citoquininas.
Tratamientos Peso (g) Diámetro ecuatorial (mm) Grados Brix
T1: 4 / 200 ppm / cc 13,15 a 25,92 a 16,75 a
T2: 5 / 200 ppm / cc 13,58 a 26,47 a 17,53 a
T3: 4 / 250 ppm / cc 15,74 a 27,12 a 17,40 a
T4: 5 / 250 ppm / cc 12,50 a 25,07 a 17,01 a
T5: 4 / 200 ppm / cc / 3 ppm 18,35 b 28,26 a 14,94 b
T6: 5 / 200 ppm / cc / 3 ppm 17,35 b 27,79 a 14,63 b
T7: 4 / 200 ppm / cc / 5 ppm 22,07 c 30,55 b 15,11 b
T8: 5 / 200 ppm / cc / 5 ppm 21,34 c 30,08 b 14,83 b
T9: 4 / 250 ppm / cc / 3 ppm 18,26 b 27,83 a 15,16 b
T10: 5 / 250 ppm / cc / 3 ppm 17,17 b 27,37 a 14,74 b
T11: 4 / 250 ppm / cc / 5 ppm 19,86 c 29,12 b 15,82 a
T12: 5 / 250 ppm / cc / 5 ppm 17,68 b 27,83 a 15,52 a
Las letras iguales dentro de la columna no presentan diferencias tuckey 95%.
T1, T2, T3 y T4: son los testigos.
En la variable peso del fruto, todos los tratamientos difieren a los testigos; siendo la mejor
dosis de citoquinina 5 ppm; no existe diferencia significativa con el número de frutos
dejados por panícula, las dosis de giberelina también muestran diferencias significativas
entre ellas.
En la variable diámetro ecuatorial (mm), no existen diferencias entre las dosis de
citoquinina 0 y 3 ppm, pero si entre estas y 5 ppm la cual es la mejor dosis (Anexo 12), no
existen diferencias significativas entre el número de frutos dejados por panículas, siendo
mejor dejar cinco frutos; existen diferencias entre las dosis de giberelinas siendo mejor
utilizar 200 ppm,
En la variable sólidos solubles, existe diferencia al aplicar citoquinina en relación a los
testigos, pero no existe diferencia con los parámetros normales al aplicar.

Caroca (1993), obtiene los mejores resultados en crecimiento del diámetro ecuatorial con
las dosis más altas de CPPU en níspero Golden Nugget, usando 5 ppm de CPPU y 4cc / l
de agua de TIGGRR; logrando con carga frutal de seis frutos por racimo, diámetros
ecuatoriales sin diferencia significativa con respecto a aquellos con carga de cuatro frutos
por panícula.
Se concuerda con Paredes (1997), en que la aplicación de citoquininas afectan los
parámetros peso y diámetro ecuatorial en níspero.
En la variable diámetro ecuatorial dosis de 3 ppm no muestran diferencias con los
testigos, como si dosis de 5 ppm, como tampoco existe diferencia en dejar cuatro o cinco
frutos por panícula, si existe diferencia entre las dosis de giberelina.
En níspero la aplicación de citoquinina exógena, aumentan el diámetro y peso de los
frutos partenocárpicos, ya que al ser aplicados actúan solamente en el lugar aplicado, ya
que son compuestos bastantes inmóviles Segura (2000).
Según Aris (1992) y Ponce (1991), quienes obtienen mejores diámetros ecuatoriales con
cuatro frutos por panícula en níspero, en este ensayo no se encontró diferencia
significativa en dejar cuatro o cinco frutos por panículas en cada uno de los tratamientos.
En este ensayo, al aplicar citoquinina aumenta el peso pero no el diámetro ecuatorial, esto
es similar a los resultados de Navarro et al. (2001) trabajando en uva de mesa.
Según Agustí (2002), los parámetros para frutos de níspero cv. Golden nugget, presentan
en promedio de peso 54,55gr, diámetro ecuatorial 45,33mm y sólidos solubles 10,96 ºbrix;
en frutos partenocárpicos el mayor peso promedio que se logra corresponde a 22,07,
21,34 y 19,86 gr esto en los tratamientos 7, 8 y 11 respectivamente, esto representa un
40% del peso promedio en un fruto normal; para la variable diámetro el mayor promedio
es de 30,55, 30,08 y 29,12 mm en los tratamientos 7, 8 y 11 respectivamente, que
representa un 67% del promedio en un fruto normal; los sólidos solubles se encuentran
dentro del promedio normal.

Muranishi, (1983), logra tamaños comercializables en frutos partenocárpicos de níspero
triploide cv. Tanaka, con aplicaciones de giberelina en dosis de 100 ppm aplicadas
cuando un tercio del racimo esta en flor, y una segunda aplicación cuando los frutos
comienzan a crecer, lo que no coincide con este ensayo.
Los diámetros y los pesos en los frutos partenocárpicos se ven disminuidos por una parte
debido a la ausencia de las semillas, ya que estas representan de un 20 a un 30% del
total del peso, Agustí (2002), con peso medio de la semilla de 8,10 g, Martínez - Calvo et
al.,(2000).
Una explicación para esta diferencia que existe en peso y diámetro con relación a frutos
normales, se podría explicar por la acción que ejercen las hormonas que se producen en
las semillas, es así como las giberelinas, que tienen acción estimulante del crecimiento en
un amplio rango de concentraciones son sintetizadas principalmente en hojas jóvenes y
en las semillas, así como el nivel de giberelinas aumentan conforme se desarrolla el
embrión y decrece cuando la semilla madura (Rojas, Ramírez, 1987); las semillas
inmaduras contienen cantidades elevadas de giberelinas y promueven el crecimiento
celular (Salisbury y Roos, 1994), son compuestos que actúan como reguladores del
crecimiento (Talon, 2000), y en los frutos al no poseer semillas se pierde la influencia de
esta hormona la cual no se compensa con los niveles de giberelinas aplicados.
La falta de semillas reduce el nivel de citoquininas en la planta, por lo tanto, disminuye la
división celular, los cuales no logran ser compensados con las aplicaciones efectuadas en
relación a frutos normales.

5.4. Ensayo 4: Curva de crecimiento de frutos partenocárpicos y normales:
40
35
30
Milimetros (mm)
25
20
15
10
5
0
Jul-05 Ago-05 Ago-05 Sep-05 Cosecha
Fechas
Testigo T1 T2 T3 T4 T5 T6 T7 T8
Figura 7. Curva de crecimiento, tomando los diámetros ecuatoriales, de frutos de nísperos
partenocárpicos y frutos normales.
Como muestra la Figura 7, existe un crecimiento rápido de los frutos partenocárpicos en
las primeras etapas, para luego igualar a la curva de frutos normales, esto se podría
explicar debido al efecto que generaron las aplicaciones de citoquinina realizadas en esta
etapa.
El tipo de curva de crecimiento y la tasa de crecimiento responde positivamente a los
cambios térmicos de salida de invierno y comienzo de primavera.
La curva de crecimiento del níspero es exponencial, con una rápida tasa de crecimiento
hacia el final del desarrollo del fruto (Blumenfeld, 1980).
La curva de crecimiento del níspero partenocárpico no se asemeja a la de los frutos
normales, ya que difieren al comienzo y al final de la curva.

Agustí (2002), señala que la tasa de crecimiento del níspero en sus primeras seis
semanas es muy lenta y aumenta considerablemente en la etapa final del desarrollo del
fruto. Esto difiere en los frutos partenocárpicos donde su tasa de crecimiento es rápida al
inicio y luego mantiene un crecimiento lento.
Una explicación a la diferencia que existe entre las curvas en las primeras etapas del
desarrollo, se podrían deber al corte efectuado al botón floral el cual afectaría el normal
crecimiento como también la regulación hormonal que ejerce el ovario a los frutos
normales.
Según Agustí (2002), El peso seco de la pulpa en frutos normales es superior al de la
semilla durante las etapas iniciales; según esto, la pulpa en estas etapas estaría
determinando el tamaño del fruto y a diferencia de los frutos partenocárpicos, a los cuales
se les realizó un corte al botón floral, la falta de esta parte afectaría negativamente el
diámetro, para luego igualar esta diferencia, ya que la pulpa sigue durante el periodo de
crecimiento teniendo mayor importancia respecto a la semilla (Agustí, 2002).
Para Agustí (2002), desde principios de marzo a finales de abril (septiembre a finales de
octubre en Chile), el fruto aumenta en doce veces su peso, y la curva de crecimiento es
exponencial con rápida tasa de crecimiento hacia el final del desarrollo del fruto (Anexo
13), esto explicaría la diferencia en las curvas de crecimiento en las últimas etapas debido
a que en esta etapa (septiembre en adelante en Chile), el peso seco de la semilla duplica
su porcentaje de materia seca, mientras que la pulpa desciende a la mitad (Agustí, 2002),
y como los frutos partenocárpicos no poseen semillas, no se manifestaría una curva
exponencial por consecuente el fruto no aumentaría de tamaño.
Se podría deducir que las etapas más importantes para realizar aplicaciones de
citoquinina deberían ser en las primeras etapas como en las últimas etapas.

6. Conclusiones
La poda de brotes de primavera efectuadas en el mes de diciembre mejora y
mantiene la incidencia de luz a las yemas florales.
La poda de diciembre, en brotes de primavera, afecto el segundo “flash” de
crecimiento, así, el tercer “flash” trajo consigo una mejor producción de panículas florales,
según esto, la inducción floral, necesita más del 50% de la incidencia de luz.
El uso de giberelinas redujeron el número de semillas por baya con efecto para
inducir la partenocarpia.
Las aplicaciones de ácido giberélico para la producción de frutos partenocárpicos
se deberían realizar entre los estados 504 a 507 BBCH, sin la necesidad de realizar el
corte al botón floral.
En frutos partenocárpicos a los cuales se les realizó un manejo al botón floral las
aplicaciones de citoquinina afectan positivamente el crecimiento de los frutos, siendo la
mejor dosis de 5 ppm, no existiendo diferencias en el número de frutos dejados por
paniculas.
La curva de crecimiento de los frutos partenocárpicos difiere a la de frutos
normales, en la primera etapa como en la última.

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técnico 2 (1).

ANEXOS.

Anexo 1. Ensayos complementarios.
Ensayo 1: Efecto complementario en frutos normales y partenocárpicos, a los cuales no
se les realizó el corte al botón floral, con dos dosis de citoquinina, indiferente el
número de frutos dejados por panícula en los frutos partenocárpicos, sobre
parámetros de peso, diámetro y sólidos solubles:
Ensayo A: Frutos normales.
Tratamientos
Peso
promedio
(g.)
Diámetro
promedio
(mm)
Promedio
Sólidos
solubles
(ºBrix).
T0: Panículas con 4 frutos sin citoquinina. 46,18 39,95 14,5
T1: Panículas con 5 frutos sin citoquinia. 33,92 37,86 14,53
T2: Panículas con 4 frutos y 3 ppm de citoquinina. 57,07 45,46 14,94
T3: Panículas con 5 frutos y 3 ppm de citoquinina. 55,31 44,52 15,03
T4: Panículas con 4 frutos y 5 ppm de citoquinia. 54,31 43,94 15,83
T5: Panículas con 5 frutos y 5 ppm de citoquinina. 53,86 43,59 15,49
Ensayo B: Frutos partenocárpicos sin corte al botón floral:
Cuadro 9. Promedios de peso, diámetro ecuatorial y concentración de sólidos solubles a
la cosecha, obtenidos en los diferentes tratamientos.
Tratamiento Peso (g) Diámetro ecuatorial (mm) Grados Brix
T0: 200 ppm / 3 ppm 14,26 25,6 15,35
T1: 200 ppm / 5 ppm 17,26 27,35 15,8
T2: 250 ppm / 3 ppm 15,4 25,46 14,25
T3: 250 ppm / 5 ppm 18,51 26,95 15,64
T4: 200 ppm / 0 ppm 14,19 26,02 15,63
T5: 250 ppm / 0 ppm 14,04 25,51 14, 9

Anexo 2: Lugar donde se efectuó el corte del botón floral.
Corte ------------------------------------------------------------------------

Anexo 3: Botón después del corte.

Anexo 4: Forma de aplicación de giberelina y citoquinina.

Anexo 5: Panícula con cuatro frutos.

Anexo 6: Panícula con cinco frutos.

Anexo 7: Fruto sin corte solo con aplicación de giberelina.

Anexo 8: Fruto con corte, tratado con 200 ppm de giberelina.

Anexo 9: Fruto con corte y 250 ppm de giberelina.

Anexo 10: Corte transversal de un fruto tratado con 200 ppm de giberelina.

Anexo 11: Diferencia entre fruto con corte y sin corte tratados con giberelinas.

Anexo 12: Corte ecuatorial de un fruto tratado con 200 ppm y 5cc.

Anexo 13: Curva y evolución del peso como también del porcentaje de materia seca en
frutos de níspero japonés.