MICROBIOLOGIA DE BARTONELLA BACILLIFORMIS
MICROBIOLOGIA DE BARTONELLA BACILLIFORMIS
MICROBIOLOGIA DE BARTONELLA BACILLIFORMIS
Create successful ePaper yourself
Turn your PDF publications into a flip-book with our unique Google optimized e-Paper software.
<strong>MICROBIOLOGIA</strong> <strong>DE</strong><br />
Bartonella bacilliformis<br />
Rina Meza<br />
Instituto de Investigación de Enfermedades<br />
Tropicales de la Marina de los Estados Unidos<br />
Lima, Peru<br />
Marzo 21, 2005
CLASIFICACION TAXONOMICA<br />
• Phylum BXII. Proteobacteria<br />
• Clase I: Alphaproteobacteria<br />
• Orden VI: Rhizobiales<br />
• Familia II: Bartonellaceae<br />
• Genero: Bartonella.<br />
Fuente: Garrity, G.; Winters, M.; Searles, D. “Taxonomic Outline of the Procaryotic Genera.”<br />
Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology, Second Edition. Realease 1.0, April 2001
<strong>BARTONELLA</strong><br />
• Microorganismos pequeños, Gram negativos,<br />
aerobicos, de dificil desarrollo en cultivos.<br />
• Se encuentran en diferentes animales pero<br />
aparentemente no desarrollan enfermedad<br />
• Algunas especies son capaces de infectar los<br />
eritrocitos y otros simplemente se adhieren a las<br />
celulas del hospedero<br />
• Murray, et al., Medical Microbiology 3 rd Ed. Table 35-3
ESPECIES QUE PUE<strong>DE</strong>N<br />
INFECTAR ERITROCITOS<br />
ORGANISMO<br />
ENFERMEDAD<br />
B. quintana<br />
Fiebre de las Trincheras<br />
B. henselae<br />
B. bacilliformis<br />
Enfermedad del arañazo del Gato<br />
Fiebre de la Oroya, Bartonellosis,<br />
Enfermedad de Carrion<br />
B. elizabethae<br />
Endocarditis<br />
Fuente: Murray, et al., Medical Microbiology 3rd Ed. Table 35-3
MICROFOTOGRAFIA <strong>DE</strong> INVASION POR<br />
<strong>BARTONELLA</strong> BACILLIFORMES<br />
Fuente: LEE ANN BENSON, SIDDHARTHA KAR, GERALD McLAUGHLIN AND GARRET M. IHLER<br />
Vol. 54, No. 2 INFECTION AND IMMUNITY, Nov. 1986, p. 347-353, American Society for Microbiology
Verruga Peruana<br />
BARTONELLOSIS<br />
• Es una enfermedad infecciosa que presenta tres<br />
fases clínicas causada por Bartonella bacilliformis<br />
– Fase Aguda o Hemática<br />
– Fase Intercalar<br />
– Fase Eruptiva o Verrucosa<br />
• Reservorio: El unico demostrado es el human.<br />
• Vector: Se incrimina algunas especies del género<br />
Lutzomyia como el transmisor causante de la<br />
enfermedad en humanos.
ESQUEMA SOBRE LA PATOGENIA <strong>DE</strong><br />
LA BARTONELLOSIS<br />
Fuente: Javier Arias-Stella “Bartonellosis. De Endemia Regional a Infeccion emergente mundial” Acta Medica Peruana Vol. XVII No. 1<br />
Julio-Setiembre de 1999
<strong>MICROBIOLOGIA</strong><br />
Bartonella bacilliformis<br />
• Es una bacteria pequeña: 0.25 a 0.5µm<br />
por 1 a 3 µm<br />
• Localización: intracelular<br />
• Pleomórfico: bacilo, cocobacilo, cocoide<br />
y formas L<br />
• Gram negativo<br />
• Posee multiples flagelos unipolares<br />
(flagelina 42kDa)<br />
• Coloración: Giemsa o Romanowsky
<strong>MICROBIOLOGIA</strong><br />
Bartonella bacilliformis<br />
• Crecen en medios especiales muy<br />
enriquecidos, algunos contienen por ejemplo:<br />
agar semisólido, hemoglobina de conejo o<br />
carnero, infusión de papa<br />
• Temperatura: entre 25-28°C,<br />
• Tiempo de desarrollo: entre 6 a 60 días<br />
• No hemoliza los hematíes<br />
• No utiliza los carbohidratos,<br />
• Se ha determinado 24 antígenos de<br />
B. bacilliformis por immunoprecipitación y<br />
western blot, solo seis detectan anticuerpos<br />
específicos.
<strong>MICROBIOLOGIA</strong><br />
Bartonella bacilliformis<br />
• Es sensible a los antibióticos<br />
• Es sensible a los anticuerpos antibartonella<br />
• Serología: Aglutinación, fijación de<br />
complemento, ELISA…<br />
• Cultivo del verrucoma
OBTENCION, TRANSPORTE Y CULTIVO <strong>DE</strong> LA MUESTRA<br />
Tomar 6 ml de sangre<br />
Codificar<br />
Colocar la<br />
muestra en<br />
tubos con o sin<br />
anticoagulante<br />
Frotis y Gota gruesa<br />
Tarjeta con<br />
filtro<br />
Codificados<br />
Cclocar de 2 a 3 gotas de sangre dentro del<br />
area circular. Dejar secar<br />
Colocar 3 ml en cada tubo<br />
Mamtener en refrigeracion<br />
Cerrar la tarjeta y colocar dentro de la<br />
bolsa de trasporte junto con el<br />
desecante. Mantener a temperatura<br />
ambiente.<br />
Medio de Cultivo F1<br />
modificado NMRCD<br />
Colocar 1 ml de<br />
sangre. Incubar<br />
28ºC.
FROTIS – GOTA GRUESA<br />
Codificar las laminas.<br />
Colocar una gota de sangre<br />
en el extremo de una lamina<br />
limpia y desengrasada<br />
45º<br />
Con otra lamina (bordes lisos) hacer un<br />
ángulo aproximado de 45º sobre la gota de<br />
sangre de manera que se extienda a lo<br />
ancho del borde de la lamina<br />
Inmediatamente hacer un extendido<br />
de la muestra a lo largo de la lamina<br />
Dejar secar . Fijar con metanol el<br />
extendido<br />
NOTA.- se sugiere que la lamina se<br />
sostenga tal como se observa en el<br />
grafico
POLIMORFISMO<br />
Bartonella bacilliformis<br />
Morfología Cocoide<br />
Morfología Coco bacilar<br />
Morfologia bacilar
CULTIVO<br />
• MEDIO F1 MODIFICADO – NMRCD<br />
– Medio Solido: Sangre de carnero 10%<br />
– Medio Liquido: RPMI y Suero bovino<br />
Controlar de 24 a 48 horas a 28 ºC.<br />
Mantener en refrigeración hasta su uso<br />
• SIEMBRA:<br />
– Inocular 1 ml de sangre<br />
– Homogenizar en vaiven<br />
– Incubar a 28°C<br />
– Controlar desde 1 – 60 días para ver la presencia del<br />
desarrollo de Bartonella
CULTIVO<br />
B. bacilliformis<br />
•Las colonias se<br />
presentan muy<br />
finas y pequeñas<br />
como gotas de<br />
rocio. Luego<br />
hacer la<br />
coloracion Gram<br />
y la confirmación<br />
por PCR
REACCION EN CA<strong>DE</strong>NA <strong>DE</strong> LA<br />
POLIMERASA (PCR)<br />
– Extracción del ADN: Metodo quimico (FTA)<br />
– Amplificación: Usando iniciadores con<br />
dirección 16S rRNA<br />
– Detección: Usando Gel Agarosa<br />
– Producto: 379 pb
PCR<br />
ELECTROFORESIS<br />
PCR <strong>DE</strong> CEPA<br />
PCR <strong>DE</strong> SANGRE
Bartonella bacilliformis<br />
CASOS POSITIVOS <strong>DE</strong> BROTES<br />
2000 AL 2004<br />
CIUDAD<br />
FROTIS<br />
CULTIVO<br />
PCR<br />
Piura - Huancabamba<br />
n=104<br />
14/83<br />
2/39<br />
10/88<br />
Cajamarca - Chota<br />
n=60<br />
30/57<br />
1/48<br />
8/60<br />
Ancash - Caraz<br />
n=76<br />
N/A<br />
22/76<br />
57/76<br />
Cusco<br />
n=32<br />
N/A<br />
3/32<br />
3/32
PCR vs FROTIS<br />
PCR<br />
TOTAL<br />
F N P<br />
R N 91 3 94<br />
O 73.39 23.08 68.61<br />
T P 33 10 43<br />
I 26.61 76.96 31.39<br />
S TOTAL 124 13 137<br />
100.00 100.00 100<br />
Sensibilidad=76.9% (95% IC: 46.2, 95.0)<br />
Especificidad 73.4% (95% IC: 64.7, 80.9)<br />
VPP = 23.3%<br />
VPN = 96.8%
CONCLUSIONES Y<br />
RECOMENDACIONES<br />
• El Frotis se debe considerar como prueba tamiz<br />
• El PCR es una prueba de alto valor diagnóstico<br />
• El personal que va a realizar al prueba del frotis<br />
debe ser validado<br />
• Realizar la toma y transporte de muestra en<br />
condiciones óptimas para obtener resultados<br />
reales.<br />
• Se recomienda realizar el secuenciamiento de las<br />
cepas nativas
GRACIAS<br />
PREGUNTAS