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MICROBIOLOGIA DE BARTONELLA BACILLIFORMIS

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<strong>MICROBIOLOGIA</strong> <strong>DE</strong><br />

Bartonella bacilliformis<br />

Rina Meza<br />

Instituto de Investigación de Enfermedades<br />

Tropicales de la Marina de los Estados Unidos<br />

Lima, Peru<br />

Marzo 21, 2005


CLASIFICACION TAXONOMICA<br />

• Phylum BXII. Proteobacteria<br />

• Clase I: Alphaproteobacteria<br />

• Orden VI: Rhizobiales<br />

• Familia II: Bartonellaceae<br />

• Genero: Bartonella.<br />

Fuente: Garrity, G.; Winters, M.; Searles, D. “Taxonomic Outline of the Procaryotic Genera.”<br />

Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology, Second Edition. Realease 1.0, April 2001


<strong>BARTONELLA</strong><br />

• Microorganismos pequeños, Gram negativos,<br />

aerobicos, de dificil desarrollo en cultivos.<br />

• Se encuentran en diferentes animales pero<br />

aparentemente no desarrollan enfermedad<br />

• Algunas especies son capaces de infectar los<br />

eritrocitos y otros simplemente se adhieren a las<br />

celulas del hospedero<br />

• Murray, et al., Medical Microbiology 3 rd Ed. Table 35-3


ESPECIES QUE PUE<strong>DE</strong>N<br />

INFECTAR ERITROCITOS<br />

ORGANISMO<br />

ENFERMEDAD<br />

B. quintana<br />

Fiebre de las Trincheras<br />

B. henselae<br />

B. bacilliformis<br />

Enfermedad del arañazo del Gato<br />

Fiebre de la Oroya, Bartonellosis,<br />

Enfermedad de Carrion<br />

B. elizabethae<br />

Endocarditis<br />

Fuente: Murray, et al., Medical Microbiology 3rd Ed. Table 35-3


MICROFOTOGRAFIA <strong>DE</strong> INVASION POR<br />

<strong>BARTONELLA</strong> BACILLIFORMES<br />

Fuente: LEE ANN BENSON, SIDDHARTHA KAR, GERALD McLAUGHLIN AND GARRET M. IHLER<br />

Vol. 54, No. 2 INFECTION AND IMMUNITY, Nov. 1986, p. 347-353, American Society for Microbiology


Verruga Peruana<br />

BARTONELLOSIS<br />

• Es una enfermedad infecciosa que presenta tres<br />

fases clínicas causada por Bartonella bacilliformis<br />

– Fase Aguda o Hemática<br />

– Fase Intercalar<br />

– Fase Eruptiva o Verrucosa<br />

• Reservorio: El unico demostrado es el human.<br />

• Vector: Se incrimina algunas especies del género<br />

Lutzomyia como el transmisor causante de la<br />

enfermedad en humanos.


ESQUEMA SOBRE LA PATOGENIA <strong>DE</strong><br />

LA BARTONELLOSIS<br />

Fuente: Javier Arias-Stella “Bartonellosis. De Endemia Regional a Infeccion emergente mundial” Acta Medica Peruana Vol. XVII No. 1<br />

Julio-Setiembre de 1999


<strong>MICROBIOLOGIA</strong><br />

Bartonella bacilliformis<br />

• Es una bacteria pequeña: 0.25 a 0.5µm<br />

por 1 a 3 µm<br />

• Localización: intracelular<br />

• Pleomórfico: bacilo, cocobacilo, cocoide<br />

y formas L<br />

• Gram negativo<br />

• Posee multiples flagelos unipolares<br />

(flagelina 42kDa)<br />

• Coloración: Giemsa o Romanowsky


<strong>MICROBIOLOGIA</strong><br />

Bartonella bacilliformis<br />

• Crecen en medios especiales muy<br />

enriquecidos, algunos contienen por ejemplo:<br />

agar semisólido, hemoglobina de conejo o<br />

carnero, infusión de papa<br />

• Temperatura: entre 25-28°C,<br />

• Tiempo de desarrollo: entre 6 a 60 días<br />

• No hemoliza los hematíes<br />

• No utiliza los carbohidratos,<br />

• Se ha determinado 24 antígenos de<br />

B. bacilliformis por immunoprecipitación y<br />

western blot, solo seis detectan anticuerpos<br />

específicos.


<strong>MICROBIOLOGIA</strong><br />

Bartonella bacilliformis<br />

• Es sensible a los antibióticos<br />

• Es sensible a los anticuerpos antibartonella<br />

• Serología: Aglutinación, fijación de<br />

complemento, ELISA…<br />

• Cultivo del verrucoma


OBTENCION, TRANSPORTE Y CULTIVO <strong>DE</strong> LA MUESTRA<br />

Tomar 6 ml de sangre<br />

Codificar<br />

Colocar la<br />

muestra en<br />

tubos con o sin<br />

anticoagulante<br />

Frotis y Gota gruesa<br />

Tarjeta con<br />

filtro<br />

Codificados<br />

Cclocar de 2 a 3 gotas de sangre dentro del<br />

area circular. Dejar secar<br />

Colocar 3 ml en cada tubo<br />

Mamtener en refrigeracion<br />

Cerrar la tarjeta y colocar dentro de la<br />

bolsa de trasporte junto con el<br />

desecante. Mantener a temperatura<br />

ambiente.<br />

Medio de Cultivo F1<br />

modificado NMRCD<br />

Colocar 1 ml de<br />

sangre. Incubar<br />

28ºC.


FROTIS – GOTA GRUESA<br />

Codificar las laminas.<br />

Colocar una gota de sangre<br />

en el extremo de una lamina<br />

limpia y desengrasada<br />

45º<br />

Con otra lamina (bordes lisos) hacer un<br />

ángulo aproximado de 45º sobre la gota de<br />

sangre de manera que se extienda a lo<br />

ancho del borde de la lamina<br />

Inmediatamente hacer un extendido<br />

de la muestra a lo largo de la lamina<br />

Dejar secar . Fijar con metanol el<br />

extendido<br />

NOTA.- se sugiere que la lamina se<br />

sostenga tal como se observa en el<br />

grafico


POLIMORFISMO<br />

Bartonella bacilliformis<br />

Morfología Cocoide<br />

Morfología Coco bacilar<br />

Morfologia bacilar


CULTIVO<br />

• MEDIO F1 MODIFICADO – NMRCD<br />

– Medio Solido: Sangre de carnero 10%<br />

– Medio Liquido: RPMI y Suero bovino<br />

Controlar de 24 a 48 horas a 28 ºC.<br />

Mantener en refrigeración hasta su uso<br />

• SIEMBRA:<br />

– Inocular 1 ml de sangre<br />

– Homogenizar en vaiven<br />

– Incubar a 28°C<br />

– Controlar desde 1 – 60 días para ver la presencia del<br />

desarrollo de Bartonella


CULTIVO<br />

B. bacilliformis<br />

•Las colonias se<br />

presentan muy<br />

finas y pequeñas<br />

como gotas de<br />

rocio. Luego<br />

hacer la<br />

coloracion Gram<br />

y la confirmación<br />

por PCR


REACCION EN CA<strong>DE</strong>NA <strong>DE</strong> LA<br />

POLIMERASA (PCR)<br />

– Extracción del ADN: Metodo quimico (FTA)<br />

– Amplificación: Usando iniciadores con<br />

dirección 16S rRNA<br />

– Detección: Usando Gel Agarosa<br />

– Producto: 379 pb


PCR<br />

ELECTROFORESIS<br />

PCR <strong>DE</strong> CEPA<br />

PCR <strong>DE</strong> SANGRE


Bartonella bacilliformis<br />

CASOS POSITIVOS <strong>DE</strong> BROTES<br />

2000 AL 2004<br />

CIUDAD<br />

FROTIS<br />

CULTIVO<br />

PCR<br />

Piura - Huancabamba<br />

n=104<br />

14/83<br />

2/39<br />

10/88<br />

Cajamarca - Chota<br />

n=60<br />

30/57<br />

1/48<br />

8/60<br />

Ancash - Caraz<br />

n=76<br />

N/A<br />

22/76<br />

57/76<br />

Cusco<br />

n=32<br />

N/A<br />

3/32<br />

3/32


PCR vs FROTIS<br />

PCR<br />

TOTAL<br />

F N P<br />

R N 91 3 94<br />

O 73.39 23.08 68.61<br />

T P 33 10 43<br />

I 26.61 76.96 31.39<br />

S TOTAL 124 13 137<br />

100.00 100.00 100<br />

Sensibilidad=76.9% (95% IC: 46.2, 95.0)<br />

Especificidad 73.4% (95% IC: 64.7, 80.9)<br />

VPP = 23.3%<br />

VPN = 96.8%


CONCLUSIONES Y<br />

RECOMENDACIONES<br />

• El Frotis se debe considerar como prueba tamiz<br />

• El PCR es una prueba de alto valor diagnóstico<br />

• El personal que va a realizar al prueba del frotis<br />

debe ser validado<br />

• Realizar la toma y transporte de muestra en<br />

condiciones óptimas para obtener resultados<br />

reales.<br />

• Se recomienda realizar el secuenciamiento de las<br />

cepas nativas


GRACIAS<br />

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