Interactions réciproques cellule-cellule et cellule-substrat
Interactions réciproques cellule-cellule et cellule-substrat
Interactions réciproques cellule-cellule et cellule-substrat
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MSC<br />
Matière <strong>et</strong> Systèmes Complexes<br />
UMR 7057 associée au CNRS <strong>et</strong> à l'Université Paris 7<br />
Prof. François GALLET<br />
Matière <strong>et</strong> Systèmes Complexes<br />
Batiment Condorc<strong>et</strong> - Case 7056<br />
Université Paris-Diderot (Paris 7)<br />
10 rue Alice Domon <strong>et</strong> Léonie Duqu<strong>et</strong><br />
F-75205 Paris cedex 13<br />
Tel : (+33) 1 57 27 62 14<br />
Fax : (+33) 1 57 27 62 11<br />
email : francois.gall<strong>et</strong>@univ-paris-diderot.fr<br />
http://www.msc.univ-paris7.fr/site/<br />
http://www.msc.univ-paris7.fr/pages-perso/gall<strong>et</strong>/<br />
Directeur de thèse : François GALLET<br />
Téléphone : 01 57 27 62 14<br />
Email : francois.gall<strong>et</strong>@univ-paris-diderot.fr<br />
Proposition de suj<strong>et</strong> de thèse<br />
Titre de la thèse :<br />
INTERACTIONS ENTRE CONTACTS CELLULE-CELLULE ET CELLULE-SUBSTRAT<br />
Thème scientifique prioritaire : 2d<br />
Résumé :<br />
Dans un tissu biologique, une <strong>cellule</strong> construit plusieurs types de contacts, d'une part avec la<br />
matrice extracellulaire (adhésions focales), <strong>et</strong> d'autre part avec les <strong>cellule</strong>s voisines (jonctions<br />
adhérentes). Ces structures sont des assemblages complexes de protéines, qui relient le milieu<br />
extracellulaire au cytosquel<strong>et</strong>te d'actine, <strong>et</strong> impliquent en particulier des protéines transmembranaires<br />
(cadhérines ou intégrines selon le type de contact). Ces contacts jouent le rôle de capteurs<br />
mécanosensibles, en transm<strong>et</strong>tant notamment les contraintes mécaniques de l'extérieur vers l'intérieur de<br />
la <strong>cellule</strong> <strong>et</strong> réciproquement. Par exemple, on observe que ces contacts sont plus développés lorsque<br />
l'environnement est plus rigide, <strong>et</strong> qu'ils se renforcent sous l'action d'une contrainte mécanique extérieure.<br />
Une question clef est de comprendre comment les contacts adhésifs <strong>cellule</strong>-<strong>cellule</strong> <strong>et</strong> <strong>cellule</strong>-matrice sont<br />
couplés, <strong>et</strong> communiquent entre eux de façon à moduler l'état adhésif <strong>et</strong> les propriétés mécaniques de<br />
<strong>cellule</strong>s normales ou pathologiques.<br />
L'objectif de la thèse est d'étudier les mécanismes responsables de la croissance ou, au contraire,<br />
de la dissociation des contacts intercellulaires supportés par les cadhérines. La présence ou l'absence de<br />
contacts d'une autre nature (<strong>cellule</strong>-matrice) est susceptible de modifier c<strong>et</strong>te dynamique. On s'intéressera<br />
donc aux modifications de la structure <strong>et</strong> aux variations de la rigidité des contacts intercellulaires,<br />
induites par la modulation contrôlée du nombre <strong>et</strong> de la distribution spatiale de contacts adhésifs <strong>cellule</strong>matrice.
Pour cela on utilisera conjointement des techniques de micromécanique <strong>et</strong> de visualisation, pour<br />
sonder la rigidité des contacts intercellulaires <strong>et</strong> pour observer directement leur structure <strong>et</strong> leur<br />
réorganisation sous contrainte. Notre laboratoire a développé plusieurs techniques de micromécanique<br />
quantitative, notamment des pinces optiques, qui perm<strong>et</strong>tent d'appliquer de façon contrôlée une<br />
contrainte locale sur un contact de type cadhérine, en utilisant une bille recouverte de ligands spécifiques<br />
(fragments cadhérines correspondant). On mesurera les coefficients viscoélastiques associés aux contacts<br />
formés, tout en observant par microscopie de fluorescence leur structure <strong>et</strong> leur développement. On<br />
modulera l'adhérence cellulaire sur la matrice extracellulaire en utilisant des motifs micro-imprimés, qui<br />
contraignent la <strong>cellule</strong> à adhérer sur une surface d'aire <strong>et</strong> de géométrie contrôlées. On étudiera d'autre part<br />
l'influence de la durée <strong>et</strong> de l'amplitude de la contrainte appliquée sur la dynamique <strong>et</strong> la structure de ces<br />
contacts.<br />
cadhérine<br />
pince optique<br />
motif adhésif<br />
simulant la matrice<br />
extracellulaire<br />
intégrine<br />
F<br />
A gauche : Schéma de l'expérience perm<strong>et</strong>tant de quantifier les interactions <strong>réciproques</strong> entre contacts<br />
de type <strong>cellule</strong>-<strong>cellule</strong> (en jaune) <strong>et</strong> de type <strong>cellule</strong>-matrice (en bleu). A droite : exemple de motifs<br />
d'adhérence micro-imprimés à la fibronectine fluorescente : carrés de 50µm de côté)<br />
Le modèle biologique choisi est la lignée de <strong>cellule</strong>s S180, modifiée pour exprimer différents<br />
récepteurs adhésifs (cadhérines, intégrines) de manière contrôlée. Elles peuvent exprimer des cadhérines<br />
mutantes, des protéines des complexes adhésifs marquées pour la visualisation, ou des formes actives <strong>et</strong><br />
inactives d'agents régulateurs de la dynamique du cytosquel<strong>et</strong>te <strong>et</strong> des contacts (Rho, Rac, cdc42,<br />
ARP2/3, formine, cortactine ...<strong>et</strong>c).<br />
On étudiera systématiquement la structure <strong>et</strong> les propriétés des contacts bille-<strong>cellule</strong> en fonction<br />
de l'aire de contact <strong>cellule</strong>-matrice <strong>et</strong> de la densité de ligand, en cherchant à m<strong>et</strong>tre en évidence les<br />
interactions <strong>réciproques</strong> entre les deux types de contacts. On pourra jouer également sur la répartition<br />
spatiale des contacts, afin de mimer les paramètres géométriques qui peuvent réguler la morphogénèse ou<br />
la réparation des tissus.<br />
Ce suj<strong>et</strong> s'adresse préférentiellement à un(e) étudiant(e) physicien(ne) ou biophysicien(ne), <strong>et</strong><br />
motivé(e) pour un travail se situant à l'interface physique-biologie. Il fait partie d'un proj<strong>et</strong> soutenu par<br />
l'ANR Physique <strong>et</strong> Chimie du Vivant, qui se déroule en collaboration avec une équipe du laboratoire<br />
Compartimentation <strong>et</strong> Dynamique Cellulaires de l'Institut Curie.<br />
Références<br />
- Balland M., Desprat N., Icard D., Fereol S., Asnacios A, Browaeys J., Hénon S., and Gall<strong>et</strong> F. "Power<br />
laws in microrheology experiments on living cells : comparative analysis and modelling". Phys. Rev. E,<br />
74, 021911-1, 021911-17 (2006)<br />
- D. Icard–Arciz<strong>et</strong>, <strong>et</strong> al.. Cell stiffening in response to external stress is correlated to actin recruitment.<br />
Biophys. J., 94, 2906–2913 (2008)<br />
- Allioux-Guérin M, <strong>et</strong> al. "Spatio-temporal analysis of cell response to a rigidity gradient: a quantitative<br />
study by multiple optical tweezers" Biophys J. 96, 238 - 247 (2009)