Effet de l'aridité sur la biochimie et la physiologie d'argania spinosa

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300 Introduction L’arganier (Argania spinosa L. Skeels) est une espèce endémique du Sud-Ouest marocain [1, 2,3,4,5]. C’est un arbre thermophile et xérophile, avec des exigences en humidité atmosphérique élevées. Il résiste à des périodes de sécheresse prolongée et aux effets desséchants du vent chaud et sec venant du Sahara en perdant ses feuilles [6]. Les forêts d’arganier ne s’étendent actuellement que dans les zones arides et semi-arides du Sud-ouest marocain. L’arganier joue un rôle écologique et socio-économique très important, il permet de lutter contre l’érosion hydrique et éolienne grâce à ses profondes racines [7]. Chaque partie ou production de l’arbre (bois [4], feuilles, fruits [8] et huile [3,9,10,11]) est utilisable et représente une source de revenus et de nourriture pour les populations autochtones [2,12]. Les espèces des zones arides et semi-arides peuvent survivre au déficit hydrique et à l’extrême irrégularité des précipitations grâce à un ensemble de mécanismes morphologiques, anatomiques, physiologiques et métaboliques reflétant différents types d’adaptations [13,14,15]. Lors d’un déficit hydrique, l’activité photosynthétique de la feuille est affectée et particulièrement la concentration en chlorophylle qui diminue avec l’augmentation du stress hydrique [16,17]. La teneur en eau relative correspond à une signification physiologique directe de l’état hydrique du végétal [18]. Les espèces végétales qui maintiennent des teneurs foliaires en eau relatives élevées sont considérées comme étant des espèces résistantes à la sécheresse. D’autres mécanismes biochimiques interviennent pour faire face aux différentes agressions de l’environnement à savoir les polyphénols surtout les flavonoïdes. L’étude de la fraction flavonoïdique des feuilles d’arganier a montré la présence de la quercétine, la myricétine et de leurs hétérosides [19]. Dans cette optique, notre travail s’intéresse à l’étude des mécanismes physiologiques et biochimiques comparative des feuilles d’arganier de sept stations différentes suivant un gradient d’aridité croissant, en vue de déterminer les facteurs intervenants à la résistance à l’aridité. Matériels et méthodes Matériel végétal Le matériel végétal est constitué de feuilles d’arganier prélevées sur quinze arbres différents, récolté au niveau de sept stations : Essaouira, Tamanar, Immouzer, Admine, Ait Baha, Merght et Guelmim. Les principales caractéristiques de chaque site sont représentées dans le tableau1. Actes du Premier Congrès International de l’ Arganier, Agadir 15 - 17 Décembre 2011
Tableau 1 : Les caractéristiques des sites de récolte. Station Essaouira Tamanar Immouzer Admine Ait Baha Merght Guelmim Position N30°59’30’’ W009°42’42.9’’ N31°05’14.5’’ W009°40’32.4’’ N30°40’23’’ W009°28’48’’ N30°20’3’’ W 9°27’50’’ N30°03’49.7’’ W009°07’15.3’’ N29°25’18.5’’ W009°42’29’’ N29°25’18.5’’ W009°42’29’’ Situation géographique Altitude (m) Précipitation annuelle (mm) Actes du Premier Congrès International de l’ Arganier, Agadir 15 - 17 Décembre 2011 Climat Côte atlantique 117 280 Semi-aride Nord Anti-Atlas 183 300 Semi-aride Nord Anti-Atlas 1000 422 Semi-aride Plaine de Souss 90 200 Aride Nord Anti-Atlas 610 120 Aride Sud Anti-Atlas 712 150 Aride Limite nord de Sahara 629 146 Aride Une partie des feuilles récoltées est séchée à l’étuve à 40°C pendant 24h et est utilisée pour l’étude phytochimique. L’autre partie est conservée au congélateur pour l’étude écophysiologique. Méthodes La teneur en pigments chlorophylliens 0.5g des feuilles fraiches sont homogénéisées avec 50ml d’acétone 90% (v/v) puis centrifuger. Le surnagent obtenu est utilisé pour le dosage des pigments chlorophylliens (chlorophylle a et b, caroténoïdes). La lecture de la densité optique (DO) se fait au spectromètre IC 6400 visible à des longueurs d’onde de 663nm pour la chlorophylle a, 645nm pour la chlorophylle b et 470nm pour les caroténoïdes. Le blanc est constitué d’acétone. La concentration des pigments chlorophylliens est calculée selon la formule [20] suivante : Chlorophylle a (mg/g MF) = (11.75×A663-2.35×A645) ×50/500 Chlorophylle b (mg/g MF) = (18.61×A645-3.96×A663) ×50/500 Caroténoïdes (mg/g MF) = ((1000A×470) – (2.27×Chla) – (81.4×Chlb)/227) ×50/500 La teneur en eau relative La Teneur relative en eau (TRE) est déterminée selon la formule suivante [21] : TRE = (PF−PS)/(PT−PS) × 100 PF : Poids de la matière fraiche. PT : Poids à la turgescence, obtenu après 24 heures de trempage des feuilles dans de l’eau distillée et sont maintenues à l’obscurité. PS : Poids sec, obtenu après séchage des feuilles à l’étuve à 70°C pendant 48 heures. 301
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