Manuel des Prélèvements - Laboratoire Scheppler Fuino

Manuel des
Prélèvements
C2.MP V1 JANVIER 2012

Sommaire
Gestion de la qualité………………………………………………………………………………………
La prescription………………………………………………………………………………………
Recommandations pour une juste prescription………………………………………….
Informations pratiques pour le patient……………………………………………………
Quels documents dois-je apporter au laboratoire ? ………………………………
Quelles sont les conditions de remboursement ? ………………………………
Demande de réalisation d’une analyse sans ordonnance
Analyse hors nomenclature………………………………………………………………
Recommandations préanalytiques………………………………………………………………
Condition de prélèvement………………………………………………………………
Guide des analyses de biologie médicales……………………………………………………
Recommandations pour le patient……………………………………………………………………
Quand puis-je effectuer ma prise de sang ?................................................
Tests dynamiques effectués au laboratoire………………………………………………
Test de O Sullivan……………………………………………………………………………………………..
HGPO chez la femme enceinte………………………………………………………………………
HGPO (hors femme enceinte)…………………………………………………………………………
Test au Synacthène immédiat……………………………………………………………………….
Test à la LH-RH……………………………………………………………………………………………….
Tests spécifiques réalisés au laboratoire…………………………………………………..
Test de Hühner……………………………………………………………………………………………………
Test à la sueur……………………………………………………………………………………………………
Temps de saignement (Méthode d’Ivy)…………………………………………………………
Spermocytogramme………………………………………………………………………………………….
Préconisations pour le patient………………………………………………………………………..
Recueil d’urine pour ECBU………………………………………………………………………………..
Recueil d’urine chez le nourrisson et le jeune enfant de moins de 2 ans
Recueil d’urine pour un compte d’Addis, H.L.M………………………………………….
Recueil d’urine de 24 heures…………………………………………………………………………..
Recueil pour échantillon de selles………………………………………………………………….
Recueil pour expectorations (crachats)…………………………………………………………
Recueil de sperme………………………………………………………………………………………………
Choix du matériel………………………………………………………………………………………………
Liste du matériel des prélèvements sanguins……………………………………………..
Liste du matériel des prélèvements microbiologiques……………………………….
Matériel pour prélèvements urinaires………………………………………………………….
Matériel pour recueil de sperme……………………………………………………………………

Matériel pour échantillons divers…………………………………………………………………..
Matériel pour prélèvements mycologiques
Matériel pour recueil de selles……………………………………………………………………….
Kits pour biologie moléculaire ………………………………………………………………………….
Effectuer les prélèvements……………………………………………………………………………
Conditions générales pour touts types de prélèvement……………………………
Habilitation du personnel…………………………………………………………………………………
Vérifications avant le prélèvement………………………………………………………………..
Recommandations pour un prélèvement de qualité……………………………………..
Respect de l’ordre de remplissage des tubes………………………………................
La ponction veineuse…………………………………………………………………………………………
Prélèvement d’hémocultures…………………………………………………………………………..
Prélèvement de gaz du sang……………………………………………………………………………..
Elimination des déchets…………………………………………………………………………………..
Conduite tenir en cas d’accident avec exposition au sang (A.E.S)……….
Identification des prélèvements…………………………………………………………………
Les prélèvements bactériologiques, parasitologiques et mycologiques
Diagnostic des bactériémies : hémocultures…………………………………………….
Diagnostic des infections microbiennes liées à un dispositif vasculaire
Cathéter, chambre implantable……………………………………………………………………
Diagnostic microbiologique des infections broncho-pulmonaires ………….
Expectorations, secrétions broncho-pulmonaire……………………………………….
BK (expectorations)………………………………………………………………………………………..
Exploration microbiologique des selles + recherches associées……………
Coproculture/Rotavirus/Adenovirus/Toxines A et B Clostridium difficile……………….
Parasitologie…………………………………………………………………………………………………………
Scotch test………………………………………………………………………………………………………..
Recherche de sang dans les selles………………………………………………………………
Diagnostic microbiologique d’un abcès / ganglions (Ponction en foyer
fermé)…………………………………………………………………………………………………………………
Diagnostic microbiologique d’une biopsie (fragments tissulaires)……………
Diagnostic microbiologique des infections O.R.L et recherches
associées…………………………………………………………………………………………………………….
Gorge (Amygdales, ulcérations, fausses membranes) / Langue…………….
Nez…………………………………………………………………………………………………………………..
Recherche éosinophilie nasale……………………………………………………………………..
Oreille (Auriculaire)………………………………………………………………………………….
VRS (détection des antigènes dans les échantillons rhino-pharyngés et de
gorge)……………………………………………………………………………………………………………

Diagnostic microbiologique d’un prélèvement oculaire ………………………….
Antigènes des virus de la grippe de type A et de type B……………………….
Diagnostic microbiologique des lésions et suppurations cutanées ……….
PEAU saine ou avec lésions non suintantes………………………………………………..
PLAIE superficielle du site opératoire (cicatrice)…………………………………..
Lésions unguéales (ongles)…………………………………………………………………………….
Diagnostic microbiologique des liquides de ponction ………………………………
Liquide de ponction (Pus et liquides articulaires)……………………………………..
Liquide de ponction (Pleural, péritonéale, péricardique.)………………………..
Prélèvements mycologiques : recherche de Dermatophytes, levures
Lésion de la peau glabre………………………………………………………………………………..
Lésions des plis : lésions sèches et squameuses....................................
Lésions des plis : lésions suintantes et macérées……………………………..
Lésion unguéales (ongles)…………………………………………………………………………
Pityriasis versicolor (recherche)……………………………………………………………
Lésions du cuir chevelu…………………………………………………………………………………
Diagnostic microbiologique des prélèvements périnataux……………………
Liquide gastrique/Prélèvements périphériques/Prélèvement de
placenta……………………………………………………………………………………………………………
Diagnostic microbiologique des prélèvements urogénitaux et recherche
associées …………………………………………………………………………………………………………
Spermoculture…………………………………………………………………………………………….
Prélèvement Urétral………………………………………………………………………………….
Prélèvement Vaginal…………………………………………………………………………………….
Recherche Chlamydia et Herpès par biologie moléculaire……………………
Recherche de Mycoplasmes………………………………………………………………………….
Les prélèvements urinaires……………………………………………………………………………
ECBU (Cas habituel) / Culot urinaire……………………………………………………………
ECBU (Nourrisson et jeune enfant de moins de 2 ans)……………………………
ECBU (Patient sondé)…………………………………………………………………………………….
Mycoplasmes urinaires………………………………………………………………………………….
Legionella (recherche de l’antigène urinaire soluble du sérogroupe 1 de
Legionella pneumophila)………………………………………………………………………………
BK (urinaire)…………………………………………………………………………………………………..
Recherche de parasites vésicaux
Recueil pour compte d’Addis (H.L.M)…………………………………………………………
Transport des échantillons biologiques………………………………………………………..
Annexe………………………………………………………………………………………………………………..
Bibliographie ……………………………………………………………………………………………………..

Gestion de la qualité
Le Laboratoire a mis en place un système de gestion de la qualité impliquant un
respect strict des procédures de prélèvement et de transmission des échantillons
biologiques conformément :
- à l’Arrêté du 26 novembre 1999 GBEA 2 (Chapitre 3 point 2, identification des
échantillons)
- à la norme 15189, Août 2007
- au Décret n° 2002-660 du 30 avril 2002 relatif aux conditions de transmission des
prélèvements biologiques aux laboratoires d'analyses de biologie médicale
- à l’Arrêté du 20 juin 2003 fixant la présentation de la fiche de prélèvement de
biologie médicale
- à la Circulaire DGS/PS n° 97/412 du 30 1997 mai relative à l'application du décret
n° 93-345 du 15 mars 1993 relatif aux actes professionnels et à l'exercice de la
profession d'infirmier
De ce fait, nous demandons à tous nos partenaires de tenir compte des remarques
faites dans ce manuel.
La prescription
Toute demande d’analyse transmise au laboratoire de biologie médicale doit être
accompagnée d’une prescription médicale ou ordonnance ou à défaut, en attente de
celle-ci, du formulaire ‘’demande d’analyse sans ordonnance’’ fournie par le
laboratoire.
Recommandations pour une juste prescription
L'ordonnance doit être rédigée par le prescripteur.
Conformément aux articles 34, 76 et 79 du code de déontologie médicale et au code
de certification des établissements de soins, l'ordonnance doit comporter, au
minimum, les éléments suivants :
- Le nom du médecin et ses coordonnées (adresse, numéro de téléphone, fax)
- L’unité ou le service de soin du prescripteur pour les hôpitaux et les cliniques
- Son numéro d'inscription au tableau de l'ordre,
- La date de la prescription et la signature manuscrite,
- En fonction des circonstances cliniques, les renseignements cliniques requis
et les objectifs de la demande.
Critères d’identification du patient
- Identité complète du patient
- Le N° de sécurité sociale du patient, caisse mutuelle utile à la prise en charge
s’il s’agit de patients suivis en secteur libéral ou en consultation externe.

Formulaires indispensables
Le formulaire de consentement éclairé et attestation de consultation, signé par
le patient et le prescripteur dans le cadre d’un examen de diagnostic génétique ou
cytogénétique
La fiche de transmission des résultats
Conformément au décret 2022-660, lorsque le prélèvement est effectué par un
professionnel de santé, l’ordonnance devra être accompagnée d’une fiche de
transmission des prélèvements.Elle devra comporter les renseignements cliniques
indispensables à l’interprétation ou à l’expression des résultats, les informations
concernant la date et l’heure de prélèvement, l’identité et la fonction du préleveur.
Examens prescrits
La prescription doit être formulé clairement afin d’éviter l’exécution d’analyses non
prescrites ou risquer la non-exécution d’examens prescrits.
Tenir compte des recommandations de bonnes pratiques, lorsqu’elles existent et de
la NABM.
Préciser le motif de la prescription pour les examens particuliers
Indiquer le degré d’urgence
Préciser s’il s’agit d’une régularisation d’une prescription antérieure formulée
oralement.
Préciser s’il existe des exigences de compte-rendu : adresse, fax, délai ….
Informations pratiques pour le patient
Quels documents dois-je apporter au laboratoire ?
Votre ordonnance
Ordonnance datant de moins de 6 mois.
Votre carte vitale mise à jour ou à défaut votre attestation de sécurité
sociale (Si besoin une borne est disponible à la Clinique Claude Bernard pour
la mise à jour de votre carte vitale)
Votre carte d’adhésion à une mutuelle en cours de validité.
Votre carte d’identité ou passeport pour une demande d’analyse de
groupe sanguin ou si notifiée sur votre ordonnance. (Livret de famille pour les
enfants ne possédant pas de carte d’identité)

Quelles sont les conditions de remboursement ?
En général les analyses sont prises en charge par les caisses de sécurité sociale
(Part obligatoire) : à 90% pour le régime local et à 60% pour le régime général (sous
réserve de présentation de votre carte vitale à jour). La part complémentaire est
prise en charge par les organismes de mutuelles si vous en possédez une. (Sous
réserve de présentation de votre carte de mutuelle à jour)
Les analyses peuvent être prises en charge à 100% dans certains cas
particuliers :
Sérologie HIV, Hépatite C
Grossesse à partir du 6ème mois
Stérilité (sous réserve de présentation de l’attestation)
Affection de longue durée (ALD)
Accident du travail
Article 115
Bénéficiaires de la CMU ou de l’AME (sous réserve de présentation de l’attestation à
jour)
Médecine du travail ( à la charge de l’employeur)
Invalidité
La totalité des actes de Nomenclature sont disponibles sur www.ameli.fr
Demande de réalisation d’une analyse sans ordonnance
Nous vous rappelons que seul un médecin est habilité à réaliser un geste invasif
sans ordonnance.
Analyse demandée par le patient sans ordonnance ou rajout par rapport à une
prescription existante
Le patient renseigne le formulaire de demande d’analyse sans ordonnance, il est
informé que cette demande ne sera pas prise en charge par la sécurité sociale en
l’absence d’ordonnance.
Analyses demandées par le médecin (ajout d'analyses sur une prescription
existante) :
Il sera demandé au prescripteur une nouvelle ordonnance avec la prescription
supplémentaire et on l'informera que cela peut entraîner un nouveau prélèvement si
les analyses ne peuvent être réalisées sur les échantillons déjà prélevés pour des
raisons de délai de conservation, de quantité ou de qualité des échantillons prélevés.
En cas de nouveau prélèvement un nouveau dossier sera créé. Selon les cas on
s'assurera de l'accord du patient (HIV ou analyses hors nomenclature par exemple).
Analyses hors nomenclature
Pour les actes dits ‘’ Hors Nomenclature’’ = Non remboursés par les caisses de
sécurité sociales et parfois remboursés par les organismes de mutuelles, la
secrétaire qui enregistre votre dossier vous informe que certains actes restent à
votre charge et vous fait remplir un formulaire de consentement de droit
d’information.

Recommandations préanalytiques
Conditions de prélèvement
Recommandations pour le patient
Quand puis-je effectuer ma prise de sang ?
Etat de jeûne
L’état de jeûne est un des éléments permettant la bonne exécution technique des
analyses et une interprétation pertinente des résultats.
Certaines analyses nécessitent un état de jeûne strict (absence d’ingestion d’aliments ou de
boisson depuis 12 h, vous pouvez toute fois boire de l’eau)
Il est recommandé de prendre un repas léger la veille au soir
Pour les analyses non réalisées par le laboratoire et envoyées à un laboratoire
spécialisé, merci de vous renseigner auprès de notre secrétariat ou consulter votre
guide spécialisé Biomnis.
Le Laboratoire recommande une période de jeûne strict pour certaines
analyses :
Glycémie : 8 h de jeûne
Hyperglycémie provoquée : 8 h de jeûne
Triglycérides (Exploration d’une anomalie lipidique) : 12 heures de jeûne
Folates sériques
Vitamine B12
Acide folique
Ammonémie
Tests dynamiques : Test au Synacthène, Test LH-RH
Rythme circadien
La concentration de certaines molécules varie en cours de journée.
C’est ce que l’on appelle « le rythme circadien ». Ces variations sont bien connues
pour certaines hormones : cortisol, prolactine, TSH.
Cortisol : Prélèvement à 8 h ou à partir de 16 heures (en fonction de la prescription),
chez un patient reposé, préciser l’heure de prélèvement.
Prolactine : Prélèvement entre 8 h et 12 h, patient au repos depuis 15 minutes, en
début de cycle chez la femme.
T3 libre, T4 libre, TSH : prélèvement de préférence le matin

Dosage des médicaments
Renseignements cliniques indispensables : conformément à la nomenclature des
actes de biologie médicale chaque résultat d'un dosage de médicament doit
mentionner:
L'âge, la taille, le poids du sujet lorsque cela est possible,
L’heure/date du prélèvement
L’heure et la date de la dernière prise
Les renseignements posologiques (nom du médicament, dose journalière), La
date de début du traitement et/ou de l'éventuelle modification de la posologie,
Le motif de la prescription : recherche d'efficacité et/ou de toxicité.
Horaire de prélèvement : dans le cas d’un traitement oral, le prélèvement doit
être effectué avant la prise de médicament (détermination du taux résiduel
Hormis le cas où il s’agit de doser le médicament lui-même, il convient de ne pas
changer le traitement du patient.
Dosage de médicaments : prélèvement à effectuer avant la dernière prise du
médicament (en fonction de la prescription)
Dosage de la digoxine : prélèvement à effectuer 6 à 8 h après la dernière prise.
Il est important de respecter ces préconisations pour que vos analyses
soient interprétables, pour toutes questions ou doutes n’hésitez pas à
contacter notre secrétariat.
Etiquette de renseignements cliniques associées

Tests dynamiques réalisés au laboratoire
Test de O’ Sullivan
But du test Test de charge orale en glucose en vue de dépister un
diabète gestationnel chez la femme enceinte (6 ème au 7 ème
mois de grossesse)
Préparation du patient - Sujet à jeun ou non
- Prévenir le patient de la durée du test
- Possibilité de boire de l’eau
Matériel - 1 flacon de 50 g de glucose
- X1 - Tube héparinate de lithium 6 ml (bouchon vert)
- X2 - Tube héparinate de lithium 6 ml (bouchon vert)
Protocole
si glycémie à jeun demandée
Ingestion de 50g de glucose en moins de 5 min
Prélèvement à T+60 après repos complet.
Variante : Prélèvement supplémentaire : Sujet à jeun
: prélèvement à T0 avant ingestion de 50 g de glucose
Délai de transmission avant analyse < à 2 h à 15-25°C
Délai de rendu des résultats J0
HGPO (Hyperglycémie provoquée par voie orale) chez la femme enceinte
But du test Test de charge orale en glucose en vue de dépister un diabète
gestationnel chez la femme enceinte.
Préparation du patient - Le matin, à jeun
- Prévenir le patient de la durée du test
- Possibilité de boire de l’eau
Matériel Eventuellement, pose d’un cathéter
- 1 flacon de 75 g de glucose
- (bilan de première intention sur 2 heures)
- 1 flacon de 100 g de glucose
- (bilan de 2ème intention après O’Sullivan positif sur 3
heures)
- X3 ou X4 Tube héparinate de lithium 6 ml (bouchon vert)
Protocole - T 0 : prélever un premier tube
- Ingestion du glucose 75g ou 100 g en moins de 5 min,
patient au repos pendant les intervalles de temps
- Test à 75 g : prélèvement à T60 et T120 min
- Test à 100 g : prélèvement à T60, T120 et T180 min
Délai de transmission avant analyse < à 2 h à 15-25°C
Délai de rendu des résultats J0

HGPO (Hyperglycémie provoquée par voie orale) : hors femme enceinte
But du test Test de charge orale en glucose en vue de
dépister un diabète sucré
Préparation du patient - Le matin, à jeun depuis 12 h
- Sujet au repos, ne pas fumer
- Prévenir le patient de la durée du test
- Possibilité de boire de l’eau
Conditions de prélèvement - A distance d’une affection aiguë ou d’une intervention
chirurgicale
- Alimentation normoglucidique et activité physique
normale dans les jours précédents le test
- Les traitements interférant sur la glycémie devront
être si possible arrêtés : corticoïdes, oestrogènes,
diurétiques, béta bloquants non cardio sélectifs,
inhibiteurs calciques.
- Aspirine, IMAO, cotrimoxazole, perhexiline,
dextropropoxyphène.
- Médications altérant le transit intestinal :
atropinique, antidiarrhéique
Matériel Eventuellement, pose d’un cathéter
- 1 flacon de 75 g de glucose
- 1,75 g de glucose/kg de poids chez l'enfant (75 g
maximum).
- X7 - Tube héparinate de lithium 6 ml (bouchon vert)
Protocole - T 0 : prélever un premier tube
- Ingestion du glucose 75g en moins de 5 min
- Patient au repos pendant les intervalles de temps
- Prélèvements à T60, T120 et T180 min ( ou en
fonction de la prescription)
Délai de transmission avant analyse < à 2 h à 15-25°C
Délai de rendu des résultats J0

Test au Synacthène immédiat (test réalisé sur rendez-vous)
But du test Test de stimulation surrénalienne par Synacthène :
l’analogue de synthèse de l’ACTH. Ce test permet
l’exploration de la capacité sécrétoire de la
corticosurrénale : cortisol, androgènes et à moindre
degré l’aldostérone.
Préparation du patient - Informer le patient de la durée de l’épreuve
- S’assurer que le patient s’est bien procuré en
pharmacie le produit servant à exécuter le test.
- L’ordonnance sert à la délivrance de ce produit et à la
réalisation du test.
- Le test est réalisé à 8 heures (cycle nycthéméral)
- Sujet à jeun et au repos depuis 30 minutes
- Prévenir le patient de la durée du test
Conditions de prélèvement Le patient ne doit pas avoir pris de corticostéroïdes le
jour du test
Matériel - SYNACTHENE IMMEDIAT (1 ampoule de 0,25 mg).
- X3 Tube héparinate de lithium 6 ml (bouchon vert)
Protocole - A 8 h le matin, prélever un tube héparinate de lithium
(bouchon vert) = TO
- Injection en I.M ou en I.V d’une ampoule de
SYNACTHENE IMMEDIAT® (0.25 mg)
- (½ dose pour l’enfant de moins de 18 mois)
- Le patient reste au repos
- Prélèvements à T= 30 min et/ou T=60 min en
fonction de la prescription
- Noter les heures de prélèvement sur les tubes
Délai de transmission avant analyse Immédiat, le test est réalisé au laboratoire
Délai de rendu des résultats J0

Test à la LH-RH (test réalisé sur rendez-vous et sous réserve de
l’obtention d’une ampoule de LH-RH)
But du test La LH-RH (Luteinizing Hormone-Releasing Hormone),
injectée par voie parentérale, provoque la sécrétion de
FSH et de LH. Ce test évalue la capacité sécrétoire
des cellules hypophysaires gonadotropes.
Préparation du patient - Informer le patient sur la durée de l’épreuve
- Prélèvement réalisé dans la 1 ère partie du cycle chez
la femme (entre J3 et J5)
- Traitement Oestro-progestatif arrêté depuis 1
mois au minimum et de préférence depuis 2 mois)
- Sujet à jeun et au repos depuis 30 minutes
Matériel - LH-RH (1 ampoule de 100µg).
- x4 Tube héparinate de lithium 6 ml (bouchon vert)
Protocole - Prélever au T0 : 1 tube héparinate de lithium
(bouchon vert) pour le dosage de FSH et LH
- Injection en IV de 100µg de LH-RH
- Le patient reste au repos
- Prélèvements à T30 min, T60 min, T90 min, en
fonction de la prescription
- Noter les heures de prélèvement sur les tubes
Délai de transmission avant analyse Immédiat, le test est réalisé au laboratoire
Délai de rendu des résultats J0

Tests spécifiques réalisés au laboratoire
Test de Hühner
But du test Ce test permet d’évaluer le comportement et la
capacité des spermatozoïdes à pénétrer dans la glaire
cervicale en période pré-ovulatoire, après un rapport.
Préparation du patient Quand faire le test ?
En cas de cycle menstruel ovulatoire régulier et en
prenant comme repère la courbe ménothermique, le test
est fait le dernier jour de la température basse.
En cas de cycle menstruel ovulatoire irrégulier, le test
est fait Le jour = La durée moyenne du cycle – 14 jours
Recommandations
Si possible, après 2 à 3 jours d’abstinence pour le
conjoint
Ne pas utiliser de lubrifiant
L’examen doit être pratiqué entre 9 et 14 heures après
le rapport sexuel (Dans la pratique : autour de 5 à 8
heures)
Aucune toilette vaginale après le rapport.
Remplir la fiche de travail « Test post-coïtal de
Hühner »
Matériel Spéculum / Spirette
Protocole Positionner le spéculum.
La glaire cervicale est aspirée à l’aide de la spirette au
niveau du canal endocervical, du fond vers l’extérieur
Délai de transmission avant
Immédiat
analyse
Délai de rendu des résultats J0

Test à la sueur
Principe du Test Le Nanoduct incorpore la méthode classique de stimulation de la sueur par
une iontophorèse à la pilocarpine. La pilocarpine pénètre dans la peau du
patient grâce au courant électrique généré par le stimulateur/analyseur
Nanoduct. La stimulation est suivie d’une analyse en flux continu utilisant
un capteur unique.
Préparation du patient Inspecter les zones choisies. La peau doit être
exempte de coupure et de tout caractère anormal. Il ne doit y avoir
aucune inflammation ou de signe d’eczéma. Indépendamment de l’irritation
de la plaie, il y a toujours la possibilité d’une contamination de la sueur
par des exsudations séreuses.
Nettoyer la zone de l’avant bras avec de la Biseptine, puis essuyer
avec une compresse imbibée d’eau distillée.
Matériel Appareil pour test à la sueur : Nanoduct
Pastille de Pilogel conservés à +4°C
Biseptine / Compresse stérile / eau désionisée
Instructions spéciales Etant donné la possibilité faible d’incendie, ne jamais tenter une
iontophorèse sur un patient recevant une thérapie respiratoire riche en
oxygène dans un lieu fermé.
Protocole - Vérifier votre équipement (électrodes, branchement…)
- Calibrer votre équipement
- Attacher les bracelets (différentes tailles sont disponibles) : le rouge
vers le coude et le noir vers le poignet, pas de serrage trop
important.
- Placer une goutte ou deux d’eau désionisée sur les surfaces des
électrodes en métal et mettre un gel sur chaque électrode. Presser
légèrement et tourner pour assurer une absence d’air et humidifier
l’interface entre la plaque de l’électrode et le gel.
- Placer 1 goutte d’eau desionisée sur la peau.
- Insérer chaque électrode à chaque montre
- Les fils des électrodes doivent être fixés fermement sur le bras du
patient pour éviter de perturber le contact gel-peau durant la
iontophorèse Utiliser du ruban chirurgical pour fixer les fils
fermement à la peau. Laisser du mou entre la zone de la fixation et
les électrodes pour éviter toute tension avec l’ensemble. Commencer
l’iontophorèse (environ 2 minutes) Une fois le cycle terminé l’appareil
émet un Bip.
- Retirer l’électrode rouge du bracelet et nettoyer la zone à l’aide d’une
coton tige imbibée d’eau désionisée puis sécher avec une coton tige
sèche
- Insérer immédiatement le capteur sur le bracelet rouge
- Réaliser le test à la sueur
- Enregistrer vos résultats
- Retirer les bracelets et le capteur, laver les électrodes à l’eau
désionisée
Délai de transmission avant analyse Immédiat
Délai de rendu des résultats J0

Temps de saignement (méthode d’Ivy)
But du test Le but du temps de saignement est de fournir une mesure des
fonctions plaquettaires au niveau de l’hémostase des petits
vaisseaux
Préparation du patient S’assurer que le patient n’a pas pris d’aspirine depuis 10 jours
au moins.
L’informer sur la possibilité d’une cicatrice transitoire.
Eviter les zones à cicatrice, à contusions et oedémateuses
pour l’incision
Matériel Surgicutt / Surgicutt.Jr pour les enfants de 5 mois à 15 ans
/ Surgicutt Newborn pour les nourrissons de 0 à 5 mois.
Bande de papier filtre
Tensiomètre
Chronomètre
Protocole Placer le bras du patient sur un support ferme
En exposant la face antérieure de l’avant-bras
Placer le brassard du tensiomètre sur le haut du bras et
exercer une pression de 40 mm Hg.
- Poids inférieur à 1 kg = 20 mm Hg
- Poids entre 1 et 2 kg = 25 mm Hg
- Poids supérieur ou égal à 2 kg = 30 mm Hg
Garder cette pression durant tout le test
Désinfecter la zone avec de l’alcool à 70°, laisser sécher à
l’air libre.
Retirer Surgicutt de l’emballage, enlever l’attache de sûreté,
tenez le fermement entre le pouce et le majeur.
Posez doucement Surgicutt sur l’avant -bras, 5 cm au dessus
du pli du coude et perpendiculaire à celui-ci, chaque bord de
l’instrument doit toucher légèrement la peau.
Déclencher le système et mettre simultanément le
chronomètre en marche.
Enlever Surgicutt de l’avant- bras
Après une période de 30 secondes, éponger l’écoulement avec
un papier filtre sans toucher l’incision, puis toute les 30
secondes jusqu’à ce que le sang ne tache plus le papier filtre.
Arrêter le chronomètre.
Le temps de saignement est déterminé par l’intervalle de 30
secondes le plus proche.
Enlever le brassard avec le tensiomètre.
Nettoyer la zone de l’incision avec e l’alcool à 70° et
appliquer un pansement
Délai de transmission avant analyse Immédiat
Délai de rendu des résultats J0

Préconisations pour les prélèvements réalisés par le patient
Recueil d’urine pour ECBU
L’examen cytobactériologique des urines permet de rechercher une infection urinaire
et d’identifier le(s) microorganisme(s) en cause.
Flacon à récupérer au préalable au laboratoire.
1. Se laver soigneusement les mains
2. Faire une toilette intime à l’aide de la lingette
3. N’ouvrir le flacon stérile qu’au dernier moment
4. Eliminer le 1er jet d’urine dans les toilettes
5. Recueillir le milieu du jet dans le flacon en prenant soin de ne pas toucher le
bord supérieur du flacon
6. Fermer hermétiquement le flacon et nettoyer l’extérieur de celui-ci.
7. Tout flacon ouvert n’est plus stérile, si le prélèvement n’a pu être réalisé,
redemander un nouveau flacon au laboratoire
8. Se laver soigneusement les mains
9. Identifier votre flacon avec votre nom, prénom et date de naissance si cela
n’a pas été fait par le laboratoire
APPORTER RAPIDEMENT VOTRE FLACON D'URINE AU LABORATOIRE
DANS UN DELAI INFERIEUR DE 2 H À 15-25 °C
Si analyse différée durée maximale de conservation : 24 heures à 2-8°C

Recueil d’urine pour ECBU chez le nourrisson et le jeune enfant
de moins de 2 ans
L’examen cytobactériologique des urines permet de rechercher une infection urinaire
et d’identifier le(s) microorganisme(s) en cause.
1. Se laver soigneusement les mains
2. La poche est posée de préférence par le laboratoire
3. Pose du collecteur à usage unique après une désinfection soigneuse de la
vulve, du méat urinaire et du périnée ou désinfection soigneuse du gland et du
prépuce.
4. Coller le collecteur en prenant soin de vérifier que l’urine pourra bien s’écouler
dans la poche
5. Surveiller l’arrivée des urines
6. Une fois le prélèvement réalisé, décoller la poche, replier le haut et la placer
dans le flacon remis par le laboratoire
7. Ne surtout pas transvaser
8. Le collecteur doit être remplacé toutes les heures si l’enfant n’a pas uriné
9. Se laver soigneusement les mains
10. Identifier votre flacon avec le nom de l’enfant, prénom et date de naissance si
cela n’a pas été fait par le laboratoire
APPORTER RAPIDEMENT VOTRE FLACON D'URINE AU LABORATOIRE
DANS UN DELAI INFERIEUR DE 2 H À 15-25 °C
Si analyse différée durée maximale de conservation : 24 heures à 2-8°C

Recueil d’urine pour un compte d’Addis, H.L.M
Cette analyse consiste à mesurer le débit des hématies et des leucocytes passant
dans les urines
Flacon à récupérer au préalable au laboratoire
1. 3 heures avant le lever habituel :
2. Vider la totalité de la vessie dans les toilettes
3. Boire un grand verre d’eau
4. Noter la date et l’heure sur le flacon fourni par le laboratoire
5. Se recoucher et rester allongé au repos pendant 3 heures
6. 3 heures après (le plus exactement possible):
7. Uriner dans le flacon fourni par le laboratoire pour recueillir la totalité des
urines
8. Noter l’heure sur le flacon
9. Identifier le flacon avec votre nom et prénom et date de naissance si cela n'a
pas été fait par le laboratoire.
10. Dans l'intervalle des trois heures, toutes les urines doivent être récupérées
dans le flacon.
APPORTER RAPIDEMENT VOTRE FLACON D'URINE AU LABORATOIRE DANS
UN DELAI INFERIEUR A 2 H A 15-25 °C
Si analyse différée durée maximale de conservation : 12 heures à 2-8°C

Recueil d’urine de 24 heures
Ce recueil permet l’analyse de certains paramètres de biochimie
Flacon à récupérer au préalable au laboratoire
*Si le flacon remis par le laboratoire n’est pas suffisant pour recueillir la totalité
des urines, en demander un supplémentaire.
A l’heure habituelle du lever (par exemple : 8 h00) :
Uriner la totalité du contenu de la vessie dans les toilettes
Noter sur le flacon : Nom, prénom, date et heure, c’est le point de départ des
24 heures
A partir de ce moment, pendant 24 heures :
Jour et nuit, recueillir la totalité des urines dans le flacon jusqu’au lendemain à
la même heure qu’indiquée la veille (dans notre exemple = 8 h00)
Pendant la durée du recueil, conserver le flacon à une température ambiante
comprise à 15-25 °C
Cas particulier :
* Dans le cadre d’une demande de phosphore urinaire, conserver votre flacon entre
2-8°C tout au long du recueil
LA TOTALITE DES URINES DE 24 H DOIT ETRE ACHEMINEE AU LABORATOIRE
DANS LES PLUS BREFS DELAIS

Recueil pour échantillon de selles
Flacon à récupérer au préalable au laboratoire
La coproculture à visée bactériologique permet de rechercher et d’identifier des
germes responsables de diarrhées et d’infections digestives.
Des recherches spécifiques peuvent être associées à la coproculture telles :
recherche de Rotavirus, Adenovirus, Antigène et toxines A et B de Clostridium
difficile.
La parasitologie permet de diagnostiquer des parasitoses intestinales.Celles -ci
sont aussi responsables de symptômes intestinaux qui varient selon les parasites en
cause.
Préparation du patient :
L’examen parasitologique des selles doit se pratiquer 3 à 4 jours après l’arrêt de certaines
substances médicamenteuses pouvant gêner son interprétation ( huile de paraffine, charbon,
laxatifs, pansements intestinaux, baryte)
COPROCULTURE / PARASITOLOGIE/ Antigène et Toxines A et B de
Clostridium difficile
Recueillir les selles dans le flacon stérile fourni par le laboratoire
Identifier le flacon avec votre Nom, prénom et date de naissance
Noter la date et l’heure du prélèvement
APPORTER RAPIDEMENT VOTRE FLACON DE SELLES AU LABORATOIRE DANS UN
DELAI INFERIEUR A 2 H À 15-25°C
Si analyse différée durée maximale de 12 heures à 2-8°C pour une coproculture, 24
heures à 2-8°C pour une recherche seule d’antigène et de Toxines A et B de
Clostridium difficile, 72 heures à 2-8°C pour une recherche seule de
Rotavirus/Adenovirus
CAS PARTICULIER : RECHERCHE D’AMIBES (explicitée sur l’ordonnance)
Recueillir les selles dans le flacon stérile fourni par le laboratoire
Identifier le flacon avec votre Nom, prénom et date de naissance
Noter la date et l’heure du prélèvement
Pas d’analyse différée possible, ne pas conserver les selles à 2-8°C
APPORTER RAPIDEMENT VOTRE FLACON DE SELLES AU LABORATOIRE DANS UN
DELAI INFERIEUR A 2 H À 15-25°C

SCOTCH TEST ou TEST DE GRAHAM (recherche d’oxyures)
Ce test permet de mettre en évidence les œufs d’Oxyures, très fréquents chez
les enfants et très contagieux, responsables de démangeaisons et de troubles
du sommeil.
Porte-lame avec lame à récupérer au laboratoire
A réaliser le matin au lever et avant la toilette locale et avant toute défécation
Se laver soigneusement les mains
Appliquer le scotch transparent face adhésive sur les plis radiés de la marge
anale.
Retirer le scotch et l’appliquer bien à plat sur la lame
Réaliser 2 lames, à transporter dans le porte-lame fourni par le laboratoire
Se laver soigneusement les mains
Identifier le porte-lame avec votre Nom, prénom et date de naissance
Noter la date et l’heure du prélèvement
APPORTER RAPIDEMENT VOTRE PORTE-LAME AU LABORATOIRE DANS UN
DELAI INFERIEUR A 2 H À 15-25°C

RECHERCHE DE SANG DANS LES SELLES
Flacon(s) à récupérer au préalable au laboratoire
Recueillir 1 x par jour un échantillon de selles dans le flacon stérile fourni par
le laboratoire et/ou ceci 3 jours de suite (en fonction de la prescription
médicale).
Identifier chaque flacon avec votre Nom, prénom et date de naissance
Noter la date et l’heure du prélèvement
Il est recommandé de transmettre les échantillons au fur et à mesure.
Si analyse différée durée maximale de conservation : 24 heures à 2-6°C

Recueil d’une expectoration
Flacon à récupérer au préalable au laboratoire
Le matin, au lever.
Un lavage bucco-dentaire est recommandé.
Réaliser un effort de toux et recueillir les mucosités dans le flacon stérile
fourni par le laboratoire, en évitant si possible une contamination salivaire
Identifier votre flacon avec votre nom, prénom et date de naissance si cela
n’a pas été fait par le laboratoire
APPORTER RAPIDEMENT VOTRE FLACON AU LABORATOIRE DANS UN DELAI
INFERIEUR A 2 H À 15-25°C
Cas particulier : recherche de BK
Il est recommandé de répéter le prélèvement 3 jours de suite (si explicité sur
ordonnance)
Protocole à suivre :
Si possible en dehors de toute antibiothérapie (fenêtre thérapeutique de 5
jours)
Le matin, à jeun si possible, recueillir les mucosités dans le flacon stérile
fourni par le laboratoire (2 à 3 ml minimum)
Identifier votre flacon avec votre nom, prénom et date de naissance si cela
n’a pas été fait par le laboratoire
APPORTER RAPIDEMENT VOTRE FLACON AU LABORATOIRE DANS UN DELAI
INFERIEUR A 2 H À 15-25°C
Si analyse différée, conservation du recueil à 2-8°C

Recueil de sperme
Ce recueil permet l'analyse de la morphologie des spermatozoïdes, il permet de
dénombrer le pourcentage de spermatozoïdes normaux (typiques) dans un
échantillon de sperme (spermocytogramme).Il permet aussi la mise en culture du
sperme pour en identifier le(s) microorganisme(s) responsable d’infection.
Recueil à effectuer de préférence sur site
1. Après 2 à 4 jours d’abstinence (ne pas dépasser 1 semaine)
2. Recueil le plus tôt possible le matin, de préférence au laboratoire entre 7h et 14 h
3. Le patient doit uriner, le prélèvement se fait la vessie vide.
4. Lavage soigneux des mains
5. Désinfection soignée du gland, du méat, du sillon balano-préputial, du prépuce
avec la lingette désinfectante remise par le laboratoire.
6. Rinçage soigneux avec du sérum physiologique à l’aide d’une compresse
stérile
7. Recueil par masturbation de la totalité de l’éjaculât dans le contenant.
8. Lavage soigneux des mains
9. Identifier le flacon avec votre nom et prénom si cela n’a pas été fait par le laboratoire.
Noter la date et l’heure du recueil.
Si le flacon doit être acheminé au laboratoire, il doit être maintenu au
chaud (flacon dans du coton) pendant le trajet et apporté dans un délai inférieur
à 30 minutes pour un spermogramme et < à 2 h pour une spermoculture

Tube
Choix du matériel
Liste du matériel des prélèvements sanguins :
Nature
Tube EDTA Bouchon violet
Sang total
Plasma EDTA
Tube CITRATE Bouchon bleu
Sang total
Plasma citraté
Tube HEPARINE Bouchon vert
Sang total
Plasma hépariné
Tube FLUORE Bouchon gris
Sang total Plasma
fluoré
Caractéristiques générales
Tube BD Vacutainer® EDTA K2 avec bouchon de sécurité
Hemogard / Tube de 4.0 ml
Tube à prélèvement de sang, en PET, sous vide, stériles, avec sel
d’EDTA di-potassique, pour obtenir du sang total ou du plasma
EDTA.
Condition de conservation 4-25 °C, tenir à l’abri de la chaleur.
Le tube doit être conservé en position verticale, bouchon vers le
haut.
Tube BD Vacutainer® Citrate de sodium 9 NC avec bouchon de
sécurité Hemogard / Tube de 4,0 ml
Tubes à prélèvement de sang, en polymères, sous vide, à
remplissage complet, stériles, avec citrate de sodium, pour obtenir
du plasma citraté
Condition de conservation 4-25 °C, tenir à l’abri de la chaleur.
Tube à remplissage complet
Centrifugation : Entre 10 et 15 minutes à 2000-2500g.
Tube BD Vacutainer® Héparine de Lithium
avec bouchon de sécurité Hemogard/ Tube de 6.0 ml
Tubes à prélèvement de sang, en PET, sous vide, stériles,
avec héparine de lithium, pour analyses sur plasma.
Condition de conservation 4-25 °C, tenir à l’abri de la chaleur.
Centrifugation : 10 minutes à une force ≤1300g.
Le tube doit être conservé en position verticale, bouchon vers
le haut.
Tube BD Vacutainer® Fluorure de Sodium / Oxalate de Potassium
avec bouchon de sécurité Hemogard / Tube de 4.0 ml
Tubes à prélèvement de sang, en PET, sous vide, stériles, avec
agent antiglycolytique, permettant l’obtention de plasma.
Condition de conservation 4-25 °C, tenir à l’abri de la chaleur.
Centrifugation : 10 minutes à une force ≤ 1300 g
Le tube doit être conservé en position verticale, bouchon vers le
haut.

Tube
Nature
Tube sec à gel Bouchon jaune
Caractéristiques générales
Tube BD Vacutainer® SST II Advance avec bouchon de sécurité
Hemogard / Tube de 4.0 ml
Tubes à prélèvement de sang, en PET, sous vide, stériles, avec
activateur de coagulation et séparateur acrylique, pour analyses de
Sérum
sérum
Condition de conservation 4-25 °C, tenir à l’abri de la chaleur.
Centrifugation : 10 minutes 1300g-2000g
Le tube doit être conservé en position verticale, bouchon vers le
haut.
Tube sec avec activateur de coagulation
Sérum
Tube EDTA + Aprotinine
Tube BD Vacutainer® Activateur de coagulation
avec bouchon de sécurité Hemogard / Tube de 6.0 ml
Tubes à prélèvement de sang, en PET, sous vide, stériles,
avec activateur de coagulation, pour analyses sur sérum.
Condition de conservation 4-25 °C, tenir à l’abri de la chaleur.
Centrifugation : 10 minutes à une force ≤ 1300 g
Le tube doit être conservé en position verticale, bouchon vers le
haut.
Tube BD Vacutainer®: Aprotinine/K3 EDTA avec bouchon
conventionnel / Tube de 4.0 ml
Tubes à prélèvement de sang, en PET, sous vide, stériles, ce
tube permet l'obtention de plasma.
Plasma Utilisation pour l'étude des enzymes
Tubes fournis par le laboratoire de Biologie Médicale
spécialisée BIOMNIS
Matériel requis pour les paramètres suivants :
ACTH, GHRH, Glucagon, Polypeptide pancréatique, PTH-RP,
Somatostatine
Tube Héparine de sodium = Tubes oligoéléments
Plasma
Tube NH Oligoéléments héparine de sodium - PREMIUM
(Bouchon de sécurité vissant) /Tube 6.0 ml
Tubes fournis par le laboratoire de Biologie Médicale
spécialisée BIOMNIS
Matériel requis pour les oligoéléments :
Aluminium, Cuivre, Lithium érythrocytaire, Zinc…

Tube Nature
Tube avec solution ACD
Sang total citraté
Caractéristiques générales
Tube BD Vacutainer® avec solution ACD-B avec bouchon de
sécurité Hemogard / Tube de 6.0 ml
Tubes fournis par le laboratoire de Biologie Médicale
spécialisée BIOMNIS
Intérêt : La solution ACD assure une préservation plus
longue principalement des globules rouges et
accessoirement des plaquettes.
Liste du matériel (microvettes) pour les prélèvements pédiatriques
Microvette® 300/500 Nature Caractéristiques générales
1. Microvette® 500 µl EDTA
K3
Bouchon mauve
2. Microvette® 300 µl
Fluorure de sodium
/Héparinate de sodium
Bouchon gris
3. Microvette® 500 µl
Héparinate de Lithium
Bouchon vert
4. Microvette® 500 µl
Tube sec avec activateur
de coagulation
Bouchon rouge
5. Microvette® 1.3 ml
Citrate de sodium 9NC
Bouchon bleu
1. Sang total EDTA
ou plasma EDTA
2. Sang total ou
plasma Fluoré
3. Sang total ou
plasma hépariné
4. Sérum
5. Sang total ou
plasma citraté
Cette Microvette® offre tous les
avantages d’un système moderne
de prélèvement sanguin dans des
volumes de 300 ou de 500 µl.
Les tubes sont parfaitement adaptés
aux prises de sang à l’aide du bord
de prélèvement ainsi qu’à la
technique de l’écoulement libre.
Le sang capillaire peut être prélevé
sur l’ensemble du bord de
prélèvement, sans avoir à utiliser de
pelle d’échantillonnage séparée.
La géométrie conique spéciale du
tube intérieur de la Microvette® 300
permet un mélange soigné des
échantillons de sang. Après
centrifugation, on obtient un
surnageant de sérum ou de plasma
parfaitement adapté au pipetage.
Le récipient extérieur cylindrique est
idéal pour le collage des codebarres
et des étiquettes patients.
La conception spéciale de la cape
minimise l’effet d’aérosol lors de
l’ouverture et permet une fermeture
étanche du tube.

Liste du matériel : aiguilles et corps de prélèvement
Aiguilles +
Corps de prélèvement adapté
Caractéristiques générales
Aiguilles de sécurité Quick fit (Venoject) 21 G (0.8 x 40 mm) avec
fixation de type baïonnette à utiliser sur porte-tubes spécifique
Quick Fit à clips
La paroi des aiguilles Venoject permet un débit sanguin accru,
grâce à son diamètre interne plus grand. Concept du triple biseau,
pénétration des tissus avec une incision qui minimise le
traumatisme. Le biseau effilé minimise l’altération des tissus et la
libération de thromboplastine.
Plus de sécurité pour le préleveur : il suffit d’appuyer
simultanément sur les 2 clips situés sur les côtés du porte-tube
Quick fit pour libérer l’aiguille sans aucun risque de piqûre.
Aiguille à prélèvement de sang BD Vacutainer® PrecisionGlide,
21 G x 38 mm (0.8 mm x 38 mm) - vert - Stérile, à usage unique
avec fixation à vis à utiliser avec le corps de prélèvement BD
Vacutainer®, blanc translucide, à usage unique - En polypropylène
- Non stérile
Utilisées uniquement pour les boites de prélèvements
Unités à prélèvement de sang sécurité BD Safety-Lok,
stériles, à usage unique pour le prélèvement de sang veineux, à
utiliser avec le corps de prélèvement blanc translucide.
Avec son système de protection intégré, elle permet une
protection efficace contre les risques de piqûres accidentelles.
L'unité à prélèvement de sang sécurité BD Safety-Lok est
conforme aux critères de choix d'un matériel de sécurité définis
par les groupes d'experts (GERES, ...) et la circulaire DGS/DH
n°98/249 du 20 avril 1998.
Ce dispositif crée à l'origine pour sécuriser les prélèvements de
flacons d'hémoculture est aussi utilisé pour la réalisation de
prélèvements sur veines délicates tout en conservant le capital
veineux du patient.
2 tailles différentes sont disponibles :
- Ailette verte 21 G (0.8 x 19 mm x 178 mm)
- Ailette bleue 23 G (0.6 x 19 mm x 178 mm)

Liste du matériel pour gaz du sang
Seringue de prélèvement de
sang artériel
Les Hémocultures
Caractéristiques générales
Seringue pour le prélèvement de sang artériel BD PRESET 3
ml, avec aiguille pré-monté (22G x 25 mm), cône Luer-Lok,
bouchon type BD Hemogard- Héparine de lithium saturée en
calcium, sèche, pulvérisée sur la paroi interne - 80 UI
Pour le prélèvement de sang artériel
Elle contient de l'héparine de lithium saturée en calcium qui
permet de réaliser tous les types d'analyses à savoir : pH, gaz
du sang, électrolytes dont le calcium ionisé, métabolites,
oxymétrie et co-oxymétrie, urée et créatinine.
Elle est équipée d'un bouchon de sécurité (type BD
Hemogard), améliorant ainsi la praticabilité, l'hygiène et la
sécurité lors des manipulations successives de la seringue au
cours du processus : bouchage, transport, débouchage,
rebouchage.
L'embout BD Luer-Lok permet de fixer l'aiguille (ou la ligne
artérielle) sur la seringue avec plus de facilité pour l'utilisateur ("
sans forcer "). En conséquence, après le prélèvement la
désadaptation est plus facile.
De plus, le Luer-Lok assure l'étanchéité entre l'aiguille (ou la
ligne artérielle) et la seringue, et évite ainsi tout risque de prise
d'air qui pourrait perturber le bon remplissage de la seringue.
Liste du matériel pour flacons d’hémocultures
Flacons d’hémocultures : flacon
vert pour aérobies et rouge pour
anaérobies
Adaptateur spécial pour
prélèvement (diamètre plus
grand)

Liste du matériel des prélèvements bactériologiques :
Les écouvillons :
Tous les produits Transwab ® sont conformes à la norme CLSI M40-A (pour le
contrôle qualité des dispositifs de transport d'échantillons de microbiologie).
MWE Transwab® Amies
MW170
Caractéristiques générales
Transwab ® moyennes (Amies) pour la
récupération des aérobies, anaérobies et les
organismes exigeants.
Rayon bourgeons (armure ouverte pour la
libération optimale des micro-organismes).
Faible biocontamination.
Les applications recommandées
Des plaies, la peau, urogénital et la gorge, convient en
général pour tout type de recherche bactériologiques
Dryswab ENT MW142 Caractéristiques générales
Dryswab fil d'aluminium droit. Stérile Dryswab
dans différents tubes étiquetés, chaque étiquette
inviolable est clairement imprimée avec le numéro de
lot et date d'expiration. Rayon bourgeons type.
Les applications recommandées
Urétral, ORL

Ecouvillons sous tubes
stériles Classe IIa
(MDD)
Caractéristiques générales
Ecouvillons stériles dans tubes de polypropylène à fond
rond d’haute résistance, scellés par étiquette. Tige
plastique fabriquée en PS cassable + Dacron
Les applications recommandées
Le matériel pour prélèvements urinaires
Ecouvillons pour les prélèvements de produits
microbiologiques, préparation de frottis pour coloration,
isolement en milieux de culture, nettoyage en
préopératoire ou en échantillonnage biologique
Liste du matériel pour les prélèvements urinaires
1. Flacon de 2 litres pour recueil
d’urine de 24 heures
2. Flacon de 400 ml pour recueil de
compte d’Addis (H.L.M) sur 3 heures
3. Flacon stérile pour recueil d’ECBU
4. Poche à urine pédiatrique
(collecteur)

Recueil de sperme
Liste du matériel pour spermoculture et/ou spermocytogramme
Flacons stériles pour prélèvements divers
Tulipe de recueil stérile, comprenant un entonnoir, un
tube gradué et un opercule de fermeture vert.
Flacons stériles
Matériel pour prélèvements mycologiques
Pot pour recueil de prélèvements divers (squames,
biopsie, liquide de ponction etc.)
Ongles et cheveux
Curette stérile
Pince stérile (matériel disponible
à la demande en salle de
bactériologie)

Matériel pour recueil de selles
Pot pour échantillon de selles
Pot à vis opaque blanc avec spatule 160 ml en
polystyrène stérile.
Applications recommandées :
Coproculture
Parasitologie
Recherche Rotavirus/Adenovirus
Recherche toxine A et B Clostridium difficile
Recherche de sang dans les selles
Kit fournis par le laboratoire de biologie médicale spécialisée Biomnis
Les kits sont disponibles dans le service bactériologie
Kit recherche de virus par PCR ou culture (herpès, CMV, entérovirus)
Kits fournis par le laboratoire de Biologie
Médicale spécialisée BIOMNIS
Le matériel est disponible service bactériologie
Fiche spécifique de prélèvement sur demande
Les applications recommandées
Recherche de virus par PCR ou culture (herpès,
CMV, entérovirus) sur tout type d’écouvillonnage
Recherche Chlamydia Trachomatis sur BIOPSIE
Kit Chlamydia Trachomatis APTIMA
Kits fournis par le laboratoire de Biologie
Médicale spécialisée BIOMNIS
Le matériel est disponible service bactériologie
Fiche spécifique de prélèvement sur demande
Les applications recommandées
Recherche Chlamydia Trachomatis sur
échantillons endocervicaux et échantillons urétraux
masculin par écouvillonnage

Collecte d’échantillons d’urine APTIMA pour Chlamydia trachomatis et/ou
Neisseria gonorrhoeae
Kits fournis par le laboratoire de Biologie
Médicale spécialisée BIOMNIS
Le matériel est disponible service bactériologie
Fiche spécifique de prélèvement sur demande
Les applications recommandées
Echantillons d’urine masculins et féminins pour la
recherche de Chlamydia trachomatis et/ou
Neisseria gonorrhoeae
Kit pour cytologie urinaire
Kits fournis par le laboratoire de Biologie
Médicale spécialisée BIOMNIS
Le matériel est disponible service bactériologie
Fiche spécifique de prélèvement sur demande
Les applications recommandées
Echantillons d’urine masculins et féminins pour
étude cytologique et histologique sur couche mince

Effectuer les prélèvements
Conditions générales pour tous types de prélèvement
Habilitation du personnel
Les prélèvements sont effectués par du personnel habilité, biologistes, infirmiers et
techniciens de laboratoire.
Ils sont effectués en respectant les règes d’hygiène et de sécurité.
- Le technicien disposant du certificat de capacité de prélèvements sanguins est autorisé à
prélever à domicile si attestation de formation aux gestes et soins d’urgence de niveau 2
(AFGSU) en cours de validité
Circulaire n°DG0S/DGS/RH1/MC/2010/173 du 27 mai 2010 relative à l’obligation d’obtenir
l’attestation de formation aux gestes et soins d’urgence pour l’exercice de certaines professions
de santé
- Le pharmacien biologiste disposant d’une attestation de formation dont les conditions de
délivrance sont fixées par l’arrêté du 23 juin 2009, est autorisé à réaliser les
prélèvements artériels (gazométrie) et de moelle osseuse.
- Les prélèvements de moelle osseuse réalisés par un pharmacien biologiste habilité ou
médecin biologiste doivent être réalisés dans un établissement de santé.
Vérifications avant tout type de prélèvement :
Contrôle de l’identité du patient
S’assurer de l’identité du patient en lui demandant son nom, prénom et date
de naissance. Nom de jeune fille pour une demande de carte de groupe
sanguin.
Vérifier la conformité de la prescription médicale
S’assurer de la conformité des conditions de prélèvements
Informer le patient du prélèvement à effectuer
S’informer des dispositions particulières en fonction du prélèvement à
effectuer (guide du préleveur Scheppler Fuino et guide Biomnis)
S’informer de l’existence si nécessaire de renseignements cliniques
complémentaires
Choisir le matériel adapté au type de prélèvement et au malade
Vérification des dates de péremption du matériel
Recommandations générales pour un prélèvement de qualité

Réaliser un lavage simple des mains ou une désinfection par friction avec un produit
hydro alcoolique.
Enfiler des gants à usage unique
Désinfecter le site de ponction, garrot desserré
Bras du patient incliné vers le bas et tube en dessous du point de ponction
Serrer le garrot
Dans la mesure du possible, ne pas excéder 1 min pour la pose du garrot
Réaliser une ponction veineuse franche
Desserrer le garrot des que le sang s’écoule dans les tubes
Laisser le tube se remplir complètement
Homogénéiser le tube dès le retrait du corps de prélèvement par plusieurs
retournements lents
Eliminer immédiatement l’ensemble du matériel de prélèvement dans les collecteurs
adaptés
Identifier vos tubes sur le lieu de prélèvement
Veillez à respecter les conditions recommandées de prélèvement et de transport
Respect de l’ordre de remplissage des tubes
Volume à respecter Tube citrate bouchon bleu = Le volume de sang prélevé est suffisant
s’il se situe au dessus ou au niveau de l’indicateur de remplissage minimum (Bande dépolie autour du
tube)
Recommandations CLSI (NCCLS) Déc.2003, Doc. H1-A5, Vol.23, N°33 et GEHT 2007
> 90% recommandé, 80% acceptable
Un non respect de cette recommandation constitue un critère de non-conformité, est enregistré comme
tel dans le système qualité du laboratoire et peut entraîner la non exécution des actes

La ponction veineuse
Définition :
La ponction veineuse est le prélèvement d'un échantillon de sang veineux afin de
réaliser une analyse de biologie médicale.
Matériel utilisé :
- Gel hydro alcoolique ou savon antiseptique
- Aiguille stérile à usage unique, de calibre différent.
- Compresse stérile
- Biseptine
- Gants à usage unique
- Micropore
- Un conteneur pour déchets d’activité de soins à risque infectieux (DASRI)
Réalisation de l’acte :
1. Réaliser un lavage simple des mains ou une friction avec un produit hydro alcoolique
2. Enfiler une paire de gants à usage unique pour diminuer le risque d'exposition au
sang.
3. Vérifier l’identité du patient (voir vérifications avant prélèvement)
4. Analyser la demande et les informations du patient
5. Rassurer le patient et le positionner
6. Vérification, préparation et installation du matériel sur une surface propre : choix des
tubes et des anticoagulants, aiguilles, cathéters.
7. Le patient ferme la main et le préleveur choisit le site de prélèvement le plus
approprié.
8. Désinfecter le site de ponction veineuse avec une compresse stérile : antisepsie en
3 temps avec de la Biseptine
9. Placer le garrot, de préférence pas plus d’une minute
10. Faire ouvrir la main au patient
11. Si perfusion intraveineuse, prélever du côté opposé à celle-ci
12. Réaliser une ponction franche
13. Maintenir et immobiliser le corps de prélèvement avec le pouce et l'index de la
main dominante.
14. Relâcher le garrot le plus tôt possible
15. Introduire les tubes de prélèvements avec la main non dominante
16. Prélever les tubes en respectant l’ordre approprié, homogénéisation selon les
recommandations
17. Retirer le dernier tube avant de retirer l’aiguille
18. Retirer l'aiguille
19. Jeter immédiatement l’aiguille dans un conteneur approprié (sans
recapuchonner et en utilisant un dispositif pour la désolidariser du support) ainsi
que tous les déchets (gants, compresses,…) dans le conteneur approprié
(DASRI).
20. Appliquer une compresse stérile sèche, en exerçant une pression sur la veine, bras
tendu et appliquer un pansement.
21. Identification immédiate des tubes sur le lieu de prélèvement
22. Effectuer un lavage simple des mains ou effectuer un traitement hygiénique
des mains par frictions avec une solution hydro alcoolique
23. Transmission rapide au laboratoire, en respectant les spécificités de demandes du
laboratoire (guide du préleveur Scheppler Fuino et guide Biomnis)

Prélèvement d’hémocultures
Renseignements cliniques nécessaires au moment du
prélèvement:
Heure de prélèvement
Température du patient
Traitement anti-infectieux éventuel
Objectif :
Mise en évidence de la présence et de l’identification de microorganisme(s) pathogène(s),
expliquant les symptômes cliniques d’une bactériémie ou fongémie
Responsabilités :
Les prélèvements sont sous la responsabilités des biologistes et effectués par le personnel
habilité.
Ce protocole est validé par le CLIN.
Mode prélèvement :
La ponction veineuse est la seule méthode valable pour prélever le sang en vue de sa mise
en culture, les recueils de sang à travers un cathéter augmentent considérablement les
risques de contamination.
Quand ?
Lors d’un épisode de fièvre (ascension thermique) accompagnée de signes cliniques
évocateurs d’infection.
Avant le début d’une antibiothérapie.
En cas d’impossibilité : prélever immédiatement avant l’administration de la dose suivante
d’antibiotiques.
Quelle quantité ?
TABLEAU 1
Volume de sang à mettre en culture en fonction du poids de l’enfant
Poids de
Volume de sang en (ml)
l’enfant (kg) Culture 1
Culture 2 Culture 3
≤ 1
1.1 à 2
2.1 à 12.7
12.8 à 36.3
> 36.3
Aérobie Anaérobie Aérobie Anaérobie Aérobie Anaérobie
0.5 à 2
1.5 à 4.5
3 à 6
5 5 à 7 5 à 7 5
10 10 10 10 10 10

Combien ?
Le volume optimal pour un adulte est de 40 à 60 ml soit un total de 4 à 6 flacons
correctement remplis :
2 à 3 flacons aérobies (VERT) et 2 à 3 flacons anaérobies (ORANGE) par épisode
clinique et par 24 h
L’intervalle entre 2 prélèvements n’a pas d’influence sur la qualité du diagnostic
Une alternative consiste à prélever les 4 à 6 flacons en un seul prélèvement (taux de
contamination faible)
Cette dernière alternative est déconseillée dans le cadre des endocardites et pour les
infections liées à un dispositif vasculaire.
Comment ?
Matériel utilisé :
- Flacon BIOMERIEUX pour hémoculture Bact/ALERT FA (conservation entre 15°C et
30°C à l’abri de la lumière)
- ’’Butterfly blood collection set’’
- Corps à usage unique pour flacon hémoculture
- Gant stérile et masque chirurgical
- Compresse stérile et biseptine
- Un conteneur pour déchets d’activité de soins à risque infectieux (DASRI)
Vérifications préalables :
- Vérifier l’absence de signes de détérioration des flacons (décoloration, fuites,
présence de dégagement gazeux.)
- Vérifier la date de péremption de chaque flacon
- Vérifier l’absence de contamination bactérienne, le détecteur au fond de chaque
flacon ne doit pas présenter de couleur jaune.
Les principales étapes du prélèvement sont les suivantes :
- Prélèvement porte de chambre fermée
- Port d’un masque chirurgical
- Lavage des mains du préleveur
- Port de gant stérile
- Ne plus palper la veine après cette étape
- Retirer la capsule plastique du flacon d’hémoculture et désinfecter l’opercule du
flacon avec un désinfectant alcoolique.
- Laisser sécher à l’air.
- Désinfecter le site de ponction veineuse avec une compresse stérile : antisepsie en
3 temps avec de la Biseptine
- Remarque : inoculer d’abord le flacon aérobie et ensuite le flacon anaérobie de sorte
que l’air contenu dans le tuyau de l’aiguille ne soit transféré dans le flacon anaérobie.
- Prélever le sang et surveiller la procédure de prélèvement à tout moment pour
garantir l’écoulement convenable et éviter le reflux du contenu du flacon dans les
tubulures de l’adaptateur.
- Remplir 10 ml / flacon pour un adulte, pour les enfants consulter le Tableau 1
(l’étiquette du flacon comporte des graduations)
- Les flacons doivent être maintenus en dessous du bras du patient et en position
verticale.
- Le contenu du flacon d’hémoculture ne doit pas toucher la fermeture ou la fin de
l’aiguille pendant la procédure de prélèvement.
- Retirer votre flacon d’hémoculture du système de prélèvement
- Eliminer le système de prélèvement sans désadaptation dans un collecteur
de déchet adapté.

- Identification correcte de l’ensemble des flacons sans masquer leur code à
barre
- Transférer rapidement les flacons d’hémoculture inoculés au laboratoire et dès que
possible dans le système de détection BacT/ALERT
- Les flacons d’hémoculture dont l’entrée est différée doivent être maintenus
entre 15°C et 25 °C jusqu’à leur chargement.

Prélèvement de gaz du sang
Renseignements cliniques nécessaires au moment du prélèvement:
Heure de prélèvement
Origine du prélèvement
Prise d’anticoagulant ou tout médicament pouvant fluidifier le sang
Nature de la ventilation : spontanée ou assistée
Patient au repos ou après un effort
Température du patient
Objectifs
L’analyse des gaz du sang par la mesure de PaO2, PaCO2, Hb, SaO2, pH et HCO3 -
permet d’évaluer l’efficacité du système respiratoire et d’apprécier l’état métabolique du
malade dans un but diagnostique, pronostique ou thérapeutique
Responsabilités
Les prélèvements sont réalisés par un médecin biologiste ou un pharmacien biologiste
habilité.
Matériel
Seringue pour prélèvement de sang artériel : BD Preset tm et/ou Dispositif pour prélèvement
capillaire Irma Trupoint
Compresse stérile
Biseptine
Gel hydro alcoolique ou savon antiseptique
Gants à usage unique
Micropore
Sachet plastique zippé pour le transport (glaçon)
Glaçon pour le transport
Un conteneur pour déchets d’activité de soins à risque infectieux (DASRI)
Information du patient :
Conformément à la loi 2002- 303 du 4 mars 2002, le malade doit être informé des raisons,
des modalités et des complications éventuelles de la procédure (douleur, hématome …)
Cette information orale doit être systématique, claire et comprise.
Préparation du patient :
Installer le patient confortablement
Prévenir le patient du caractère douloureux du prélèvement et des complications
éventuelles de la procédure, puis l’informer de la durée de compression après l’acte (30
minutes)
Vérifications préalables :
Vérification de l’identité du patient
Vérification de la prescription médicale : prélèvement sous oxygène ou non
Installation du matériel et vérification des dates de péremption

Effectuer le Test d’Allen
Ce test sert à vérifier la suppléance de l’artère cubitale
- Demander au patient de mettre le bras à ponctionner à la verticale
- Comprimer les artères radiales et cubitales
- Demander au patient de serrer le poing puis de relâcher
- On obtient alors un blanchiment net de la main, signifiant que celle-ci s’est vidée de
son sang par retour veineux.
- Abaisser le bras en ne relâchant que la compression de l’artère cubitale (on maintient
la compression radiale.)
- Si le bras se recolore rapidement, cela signifie que l’artère cubitale est capable de
prendre le relais de la perfusion de la main en cas de complication (thrombus,
spasme ou hématome)
- Dans le cas contraire, on ne réalise pas la ponction et on informe le prescripteur
immédiatement.
Déroulement du prélèvement
Repérage du site de ponction, choix de l’artère radiale : L’artère radiale est superficielle
et facilement accessible elle est relativement éloignée des veines adjacentes
- Lavage antiseptique des mains
- Mettre des gants à usage unique
- Nettoyer la peau en regard de l’artère radiale avec une compresse stérile : antisepsie
en 3 temps avec de la Biseptine
- Piquer l’artère choisie
- Prélever de 1 à 3 ml de sang artériel
- Retirer la seringue et comprimer immédiatement le point de ponction à l’aide d’une
compresse stérile pendant au moins 10 minutes (plus si le patient est sous traitement
anticoagulant)
- Placer le bouchon filtre sur la seringue tenue verticalement, embout vers le haut et
purger la seringue des bulles d’air éventuelles (sans tapoter).
- Rouler doucement la seringue entre les mains pour homogénéiser le sang avec
l’héparine.
- Jeter l’aiguille dans le container à déchets prévu à cet effet
- Identification de la seringue à l’aide d‘une étiquette
- Transmettre la seringue dans un sachet sur un lit de glaçon dans les 5 minutes après
le prélèvement
- Effectuer un lavage simple des mains
Pour les prélèvements à domicile :
Placer la seringue dans un premier sachet zippé, puis mettre dans un second sachet
contenant des glaçons. (Ceci permet de bloquer la consommation de l’oxygène par les
globules rouges)
Les échantillons prélevés avec le dispositif capillaire ne doivent pas être conservés sur de la
glace.

Le prélèvement de moelle osseuse
Objectifs
Ce mode opératoire décrit les différentes étapes pour réaliser un prélèvement de moelle osseuse,
indispensable au diagnostic et au suivi des hémopathies.Il permet aussi d’effectuer d’autres examens
spécialisés comme l’étude immunophénotypique et cytogénétique.
Responsabilités :
Les prélèvements sont réalisés sous la responsabilité du biologiste et sont pratiqués par un médecin
biologiste.
Vérifications préalables :
Vérification de l’identité du patient
Vérification de la péremption de votre matériel
Vérifier préalablement l’existence (contre-indications relatives) :
- De troubles graves de la coagulation pouvant nécessiter une thérapeutique substitutive,
- de traitement anticoagulant par AVK à adapter éventuellement pour obtenir un INR ne
dépassant pas 2.5,
- de thrombopénie majeure ou traitement antiagrégant plaquettaire qui ne contre-indiquent
cependant pas le geste,
- d’antécédents d’allergie aux anesthésiques locaux, d’hématomes, d’hémorragies
- de radiothérapie localisée contre-indiquant le geste sur site irradié
- de lésions ou d’affections cutanées majeures
Contre-indication absolue
- Sternotomie
Matériel
Divers
Un plateau à ponction
Gants stériles
Compresses stériles
Seringue stérile de 10 cc avec aiguille sous-cutanée pour anesthésie
Pansements compressifs
X1 - Tube Héparinate de lithium si cytogénétique demandée
Un conteneur pour déchets d’activité de soins à risque infectieux (DASRI)
Matériel de désinfection cutané
Biseptine
Produit d’anesthésie
Xylocaïne à 1% ou 2% sans adrénaline
Matériel pour la ponction et l’étalement
Trocart à usage unique de type Mallarmé ou autre muni d’un mandrin
Une seringue de 20 cc stérile pour aspiration du prélèvement
Lames à bords rodés propre et dégraissées à plage dépolie pou l’identification du patient + portelame
Préparation du patient
Le prélèvement de moelle osseuse étant anxiogène, il est essentiel d’expliquer la nature du geste au
patient et de le rassurer.
Il est nécessaire d’être assisté, de préférence par une IDE
Pour les patients anxieux, une prémédication, sur prescription médicale peut être utilisée, 30 minutes
avant le geste.
Choix du site de ponction
Le patient se positionne en décubitus dorsal (ponction sternale ou crête iliaque antérieure) ou ventral
(ponction crête iliaque postérieure).
L’opérateur repère les points anatomiques en fonction du site choisi

- Sternal
Au niveau du manubrium, sur la ligne médiane, la fourchette sternale est repérée avec le médius,
l’angle de Louis avec le pouce et le deuxième espace intercostal, site de prélèvement, avec l’index.
- Epine iliaque postéro supérieure (en cas de contre-indication de ponction sternale)
Le site iliaque peut-être choisi d’emblée par le préleveur car cette localisation comporte,
théoriquement, moins de risques, ou lors de contre-indication à la ponction sternale, notamment les
antécédents d’irradiation, une sternotomie ou lorsqu’une aspiration et une biopsie médullaire sont
programmées ensemble.Elle est cependant difficilement praticable chez le sujet obèse.Le repérage
de l’épine iliaque se fait en suivant l’aile iliaque d’avant en arrière et en s’aidant d’un repérage
bilatéral.
- Crête iliaque antéro-supérieure
Ce site est plus rarement choisi pour une ponction car non dénué de risques.Il peut être cependant
indiqué chez les patients immobilisés en décubitus dorsal.L’épine iliaque antéro-supérieure est
repérée d’arrière en avant, puis maintenue entre le pouce et l’index durant la ponction.
Déroulement du prélèvement
Préparer les lames pour étalement sur une surface plane
- Lavage antiseptique des mains de l’opérateur et de l’IDE
- Enfiler des gants stériles
- Repérage de la zone de ponction
- Désinfecter le site de ponction à l’aide de compresses stériles : antisepsie en 3 temps avec
de la Biseptine
- Anesthésie locale éventuelle (cutanée, sous-cutanée et périostée)
- Attendre l’effet de l’analgésie (environ 5 min)
- Ponction au trocart
- Retirer le capuchon en le dévissant et ensuite retirer le guide métallique
- Adapter rapidement la seringue stérile de 20 cc au mandrin
- Aspirer brièvement jusqu’à voir apparaître un peu de suc médullaire (0.5 cc de prélèvement
pour ne pas hémodiluer)
- Retirer la seringue
- Vérifier la qualité du suc médullaire en déposant 1 goutte de prélèvement sur 3 lames
légèrement inclinées
-
Cas particulier des analyses spécialisées associées :
Après la première aspiration destinée à la confection des frottis, prendre une nouvelle
seringue stérile pour aspirer le volume nécessaire à la réalisation des ces analyses (environ 1
ml), vider le contenu dans 1 tube Héparine Lithium à bouchon vert, homogénéiser les tubes
par des mouvements lents de retournements
- Repositionner le mandrin et retirer le trocart en restant dans l’axe de pénétration, l’éliminer
dans le container à déchet prévu à cet effet
- Effectuer rapidement 5 à 10 frottis homogènes, étaler les gouttes déposées sur les lames à
l’aide d’une autre lame inclinée à 40° comme pour des frottis sanguins
- Laisser sécher à l’air et identifier les lames sur le lieu de prélèvement
- Traçabilité de l’opérateur, noter l’heure et la date de prélèvement
- Une fois les lames séchées les placer dans un porte-lame et joindre la prescription
- Compression immédiate de la zone de ponction par des compresses stériles pendant 10 à 15
minutes minimum
- Désinfection de la zone ponctionnée à l’aide de la Biseptine. mise en place d’un pansement
compressif si nécessaire
Conseils au patient
Laisser le patient au repos avec surveillance pendant 15 minutes
Le patient peur reprendre une activité normale dans l’heure qui suit le prélèvement
Le pansement peut être enlevé par le malade après quelques heures.
En cas de saignements, de douleurs persistantes, de signes inflammatoires, se mettre en
correspondance avec un médecin.

Elimination des déchets (DASRI)
L’élimination des déchets d’activités de soins à risques infectieux
(DASRI) est soumise à la réglementation.
D'après l'article R 1335-5 du code de la Santé Publique, il y a obligation de
trier les déchets d’activités de soins à la source dés leur production.
Les DASRI sont les déchets infectieux issus des activités de diagnostic dans
les domaines de la médecine humaine ou vétérinaire.
Sont également considérés comme DASRI, même en l’absence de risque
infectieux, les matériels coupant, tranchant ou piquant et les déchets
anatomiques humains.
Les DASRI doivent être séparés des autres déchets dès leur production et
placés dans des containers spécifiques répondant aux dispositions de
l’arrêté du 24 Novembre 2003 modifié, relatif aux emballages des déchets
d’activités de soins à risques infectieux.
Toute personne qui produit des déchets définis à l'article R. 44-1 est
tenue de les éliminer.
Les personnes mentionnées ci-dessus peuvent, par une convention qui doit
être écrite, confier l'élimination de leurs déchets d'activités de soins et
assimilés à une autre personne qui est en mesure d'effectuer ces opérations.
Un arrêté conjoint des ministres chargés de la Santé et de l'Environnement
fixe les stipulations que doivent obligatoirement comporter ces conventions.
Les personnes mentionnées ci-dessus doivent, à chaque étape de
l'élimination des déchets, établir les documents qui permettent le suivi des
opérations d'élimination. Ces documents sont définis par un arrêté conjoint
des ministres chargés de la Santé et de l'Environnement après avis du
Conseil supérieur d'hygiène publique de France.
Immédiatement après le prélèvement, éliminer l’aiguille souillée dans un
container conforme Norme NF X30 500
NE PAS RE-CAPUCHONNER LES AIGUILLES
NE PAS LAISSER D’AIGUILLES SOUILLEES DANS LES BOITES DE PRELEVEMENT

Conduite à tenir en cas d’accident avec exposition au sang (A.E.S)
pour les préleveurs externes

Identification des prélèvements
Règles d’identification des échantillons biologiques en général
L'identification des échantillons doit être effectuée par le préleveur au moment du
prélèvement.
"Décret n° 2002-660 du 30 avril 2002, Art. 20-5. - Les prélèvements destinés à être
transmis à un laboratoire de biologie médicale effectués par les professionnels de
santé, y compris ceux exerçant au sein des établissements et des centres de santé
ne disposant pas de laboratoire d'analyses de biologie médicale, doivent être
parfaitement identifiés. Ils le sont par le nom patronymique, le nom marital ou usuel,
le prénom, la date de naissance et le sexe du patient, mentionnés par le
professionnel de santé au moment du prélèvement. Ce dernier spécifie son nom et
précise la date et l'heure du prélèvement.
Ces indications, vérifiées par le préleveur doivent être parfaitement lisibles.
Identification des prélèvements (tubes ou récipients primaires) :
L'identification des échantillons primaires est réalisée par le préleveur au moment
du prélèvement.
Lors de l'accueil du patient, le dossier informatique est enregistré par la personne
présente à l'accueil. Une planche d'étiquettes est éditée automatiquement à la fin de
la saisie du dossier.
Les étiquettes sont utilisées par le préleveur pour identifier les échantillons, elles
comportent :
- les nom et prénom du patient
- la date de naissance
- le nom de jeune fille sur les étiquettes pour les groupes sanguins
- le sexe
Avant d’effectuer le prélèvement, vérifier l’identité du patient en lui faisant
déclarer son identité, chaque fois que cela est possible, sinon demander à un
accompagnateur.
Comparer le nom, le prénom avec la prescription médicale et/ou la fiche de demande
d’analyse et/ou les étiquettes.
Résoudre toute discordance avant de prélever.
Identification des prélèvements en externe :
Fiches de prélèvement de biologie médicale :
Elles sont obligatoires pour tout prélèvement réalisé par un professionnel de santé.
Mises à votre disposition avec les boites de prélèvements : fiche de transmission
des prélèvements
Les compléter, y préciser tous les renseignements cliniques susceptibles d’aider à la
compréhension des résultats d’analyses

Cette fiche de prélèvement doit comporter impérativement :
-Nom Patronymique (Nom de jeune fille),
-Nom marital,
-Prénom,
-Sexe,
-Date de naissance,
-Date et heure de prélèvement,
-Adresse et numéro de téléphone
Ces éléments sont utilisés pour différencier les homonymes, lier le patient à ses
antériorités et attribuer les valeurs de références adaptées (homme femme enfant).
Cadre réservé au laboratoire :
La personne qui prend en charge la saisie des dossiers est responsable du
remplissage de cette partie.
Elle devra :
- noter le nombre de tubes et/ou de prélèvements bactériologiques reçus,
- coller une étiquette nominative du dossier,
- apposer son VISA.
En cas de détection d'un échantillon non conforme, elle sera chargée de la prise en
charge et de la résolution de la non conformité associée.
Identification des prélèvements en Nursery :
Avant d’effectuer le prélèvement, vérification de l’identité du bébé grâce à ses 2
bracelets, vérification à partir du dossier de la bonne identité de la mère.
Identification des échantillons par les étiquettes spécifiques du bébé ou est inscrit à
la main le nom de la mère.
Procédure de prélèvement pour groupes sanguins/ phénotype et RAI
Les examens immuno-hématologiques sont réalisés sur prescription médicale.
La réalisation des prélèvements en vue de la détermination du groupe
sanguin, du phénotype et de la RAI est réglementée par la circulaire
ministérielle du 15 Décembre 2003 qui en précise les conditions.
Cet acte prétransfusionnel engage directement la responsabilité de la personne qui
l'effectue.
Règles générales de sécurité.
Avant toute transfusion de PSL, tout patient doit faire l’objet de deux déterminations
des groupes sanguins ABO Rh D (RH1).
Cela nécessite deux prélèvements effectués à des moments réellement différents de
préférence par deux personnes différentes

L’étiquetage des tubes de prélèvement ne doit jamais être effectué à l'avance. Il doit
être fait immédiatement après chaque prélèvement par la personne qui a réalisé le
prélèvement afin d'éviter toute erreur sur l’identité de la personne.
Prélèvement pour la première détermination (groupe, phénotype et/ou RAI)
Prélèvement pour la deuxième détermination (groupe, phénotype et/ou RAI)
Prélèvement pour la première détermination (groupe, phénotype et/ou RAI)
Au lit du patient l'infirmière diplômée d'État doit:
1. Vérifier l'identité du patient en l'interrogeant
2. Prélever un tube avec anticoagulant pour le groupe sanguin/ RAI
3. Etiqueter les tubes et les demandes d'examens (nom patronymique, nom marital,
prénom, sexe, date et lieu de naissance)
4. Préciser les dates et heure du prélèvement sur les tubes et les demandes
d'examens
5. Remplir intégralement avec, notamment, l'identification du service de soins, du
préleveur et signer les demandes d'examens immuno-hématologiques ;
6. Contrôler la concordance des informations portées sur les tubes et les demandes
d'examens (en faisant si possible relire par le patient)
7. Les prélèvements sont à placer dans un sachet double poche, permettant de
séparer le bon d’examen et les échantillons.Un patient par sachet et une
détermination de groupe sanguin par sachet
8. Acheminer le prélèvement le plus rapidement possible au laboratoire
Prélèvement pour la deuxième détermination (groupe, phénotype et/ou RAI)
Une fois que la première étape est achevée, une autre IDE doit si possible, dans
les mêmes conditions que ci-dessus :
1. Vérifier l'identité ;
2. Prélever ;
3. Etiqueter ;
4. Préciser la date et l'heure ;
5. Remplir la demande ;
6. Contrôler (en faisant si possible relire par le patient) ;
7. Solidariser les tubes et les demandes ;
8. Acheminer.

Les prélèvements bactériologiques, parasitologiques et mycologiques
La qualité des résultats et le service médical rendu au patient dépendent de la qualité et
de la maîtrise de la phase pré-analytique.
Dans cette phase, toutes les étapes doivent être de qualité optimale.
Ce sont : la clarté de la prescription médicale (ce qu’attend le prescripteur de cet
examen), le choix du/des échantillons et les modalités techniques de prélèvement, de
conditionnement, de transport et de conservation.
Le principal objectif de ces prélèvements est la mise en évidence et l’identification du
ou des microorganismes impliqués dans le processus infectieux et de mesurer leur
sensibilité aux antibiotiques, le cas échéant.
Pour les écouvillonnages il vous sera demandé de prélever systématiquement :
X1 écouvillon pour l’examen direct
X1 écouvillon pour la culture
Pour la biologie moléculaire, utiliser les kits spécifiques avec écouvillons et milieux
de transport spécifiques à chaque recherche
Diagnostic des bactériémies : Hémocultures
HEMOCULTURE
Préparation du patient Lors d’un épisode de fièvre (ascension thermique)
accompagné de signes cliniques évocateurs
d’infection. Avant le début d’une antibiothérapie :
en cas d’impossibilité, prélever immédiatement
avant l’administration de la dose suivante
d’antibiotiques
Renseignements particuliers Heure de prélèvement
Température du patient
Contexte global du patient : état immunitaire-
infection en cours – corticothérapie - traitement
antibiotique récent éventuel
Matériel
Flacon Biomérieux Bact/ALERT FA
Mode de prélèvement Fiche spécifique de prélèvement à la demande
Délai de transport au laboratoire < à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
Si analyse différée, maintenir les flacons à 15-25°C
jusqu’à chargement.
Délai de rendu des résultats 48 à 72 heures, selon la positivité
Recherche de BK 3 à 6 semaines
Réalisable en urgence Non

Diagnostic des infections microbiennes liées à un dispositif
vasculaire :
CATHETER (prélèvement avec ablation du matériel)
Préparation du patient Antisepsie adéquate
Renseignements particuliers Contexte global du patient : état immunitaire-
infection en cours – corticothérapie-traitement
antibiotique récent éventuel
Matériel Flacon stérile
Mode de prélèvement Procéder stérilement au retrait du matériel :
Couper stérilement les 5 cm de l’extrémité distale
pour les cathéters longs et la partie insérée pour
les cathéters courts.
Les placer dans le flacon stérile.
L’écouvillonnage au point d’insertion n’est plus
recommandé.
Délai de transport au laboratoire < à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
Délai de rendu des résultats 48 à 72 heures
Réalisable en urgence Non
Chambre implantable (prélèvement avec ablation du matériel)
Préparation du patient Antisepsie adéquate
Renseignements particuliers Contexte global du patient : état immunitaire- infection
en cours – corticothérapie-traitement antibiotique
récent éventuel
Matériel X2 Ecouvillons avec milieu de transport, bouchon bleu
et / ou flacon stérile
Mode de prélèvement Ecouvillonnage externe de la chambre, prélèvement de la
loge par écouvillonnage ou recueil de sérosités.
Récupération du produit de rinçage de la partie fermée
de la chambre
Délai de transport au
< à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
laboratoire
Délai de rendu des résultats 48 à 72 heures
Réalisable en urgence Non

Diagnostic microbiologique des infections broncho-pulmonaires :
EXPECTORATION (crachats, sécrétions bronchiques)
Préparation du patient Si possible en dehors de toute antibiothérapie
(fenêtre thérapeutique de 5 jours)
Renseignements particuliers Contexte global du patient : état immunitaire-
infection en cours – corticothérapie-traitement
antibiotique récent éventuel
Matériel Flacon stérile
Mode de prélèvement Un lavage bucco-dentaire est recommandé.
Le matin, au lever et après un effort de toux.
Fiche spécifique à la demande
Délai de transport au
laboratoire
< à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
Délai de rendu des résultats
Réalisable en urgence Non
48 à 72 heures
Etiquette de renseignements cliniques associée

BK (EXPECTORATION)
Préparation du patient Si possible en dehors de toute antibiothérapie
(fenêtre thérapeutique de 5 jours) Il est recommandé
de répéter le prélèvement sur 3 jours de suite (si
explicité sur l’ordonnance)
Renseignements particuliers Contexte global du patient : état immunitaire-
infection en cours – corticothérapie-traitement
antibiotique récent éventuel
Matériel Flacon stérile
Mode de prélèvement Le matin, à jeun si possible et après un effort de
toux.
Volume : 2 à 3 ml minimum
Fiche spécifique à la demande pour client ville
Prélèvements réalisés sous fibroscopie
Il est important de recueillir les crachats postfibroscopie
Malades intubés
Une sonde d’aspiration permet de recueillir les
sécrétions respiratoires
Délai de transport au
laboratoire
Délai de rendu des résultats 4 à 6 semaines
Réalisable en urgence Non
Acheminement au laboratoire à 15-25°C dès que
possible J1 J2 J3
Si analyse différée, conservation à + 4°C

Exploration microbiologique des selles + recherches associées
COPROCULTURE
Recherche Adénovirus/Rotavirus
Recherche de toxine A et B Clostridium difficile
Préparation du patient Si possible en dehors de toute antibiothérapie
(fenêtre thérapeutique de 5 jours)
Renseignements particuliers Faire remplir au patient l’étiquette correspondant aux
renseignements cliniques
Mode de prélèvement Selles recueillies dès leur émission dans un pot stérile
(au moins une noix de selles)
Fiche spécifique à la demande
Matériel Flacon pour recueil de selles
Délai de transport au laboratoire < à 2 h à température ambiante 15-25°C
Si transport différé, conservation à +4°C maximum 12
heures.
Délai de rendu des résultats 48 à 72 heures
Réalisable en urgence Non
Instructions spéciales
Recherche de Rotavirus et
Adénovirus
Délai de transport au laboratoire
Recherche de Rotavirus et
Adénovirus
Délai de rendu des résultats J0
Instructions spéciales
Recherche des toxines A et B de
Clostridium difficile
Délai de transport au laboratoire
Recherche des toxines A et B de
Clostridium difficile
Délai de rendu des résultats 48 à 72 heures
Réalisable en urgence Oui
Recueil aussi tôt que possible après l’apparition des
premiers symptômes.
Transférer les échantillons au laboratoire dans les 6
heures qui suivent le prélèvement.
Si délai > à 6 heures, conservation à +4°C pendant 72
heures
Recueil aussi tôt que possible après l’apparition des
premiers symptômes.
< à 2 h à 20-25°C
Si délai > à 2 heures, conservation à +4°C maximum 24
heures

PARASITOLOGIE DES SELLES
Préparation du patient Si possible en dehors de toute antibiothérapie
(fenêtre thérapeutique de 5 jours)
Renseignements particuliers Notion de voyage à l’étranger, notion de toxiinfection,
hospitalisation
Mode de prélèvement Selles recueillies dès leur émission dans un pot stérile
(au moins une noix de selles)
Fiche spécifique à la demande
Matériel Flacon pour recueil de selles
Délai de transport au laboratoire < à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
Si analyse différée, conservation 24 heures à 2-8°C
Délai de rendu des résultats J0
Réalisable en urgence Oui
Instructions spéciales
Recherche d’amibes et / ou
Pas de conservation différée possible à 2-8°C
d’anguillule
Réalisable en urgence Oui
Etiquette de renseignements cliniques associée

SCOTCH TEST
Préparation du patient A réaliser le matin avant la toilette et avant toute
défécation
Matériel Scotch transparent / lame porte-objet
Mode de prélèvement Patient en position génu-pectorale
Appliquer le scotch face adhésive sur les plis de la
marge anale.
Retirer le scotch et l’appliquer bien à plat sur la lame
Réaliser 2 lames, à transporter dans un porte-lame
Fiche spécifique à la demande
Délai de transport au laboratoire < à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
Si analyse différée, conservation 24 heures à 2-8°C
Délai de rendu des résultats J0
Réalisable en urgence Oui
SANG dans les selles ( détection spécifique de l’hémoglobine humaine)
Préparation du patient Aucune
Matériel Flacon pour recueil de selles
Mode de prélèvement Recommandations : 3 prélèvements différents dans
des flacons datés et 3 jours de suite. (en fonction de
la prescription médicale)
Il est préférable de transmettre les échantillons au fur
et à mesure
Fiche spécifique à la demande
Délai de transport au laboratoire < à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
Si analyse différée, conservation 24 heures à 2-6°C
Délai de rendu des résultats J0
Réalisable en urgence Oui

Diagnostic microbiologique d’un abcès / ganglions (Ponction en
foyer fermé)
ABCES / GANGLIONS (ponction en foyer fermé)
Préparation du patient Si possible en dehors de toute antibiothérapie locale
ou générale (fenêtre thérapeutique : 5 jours
minimum). Respect des mesures d’asepsie rigoureuses
Désinfection préalable de type chirurgicale
Renseignements particuliers Contexte global du patient : état immunitaireinfection
en cours – corticothérapie-traitement
antibiotique récent éventuel
Matériel Seringue Type gaz du sang
Flacon stérile
Mode de prélèvement Les liquides de ponction en seringue doivent être
transférés dans des systèmes hermétiquement clos
Délai de transport au
< à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
laboratoire
Délai de rendu des résultats 48 à 72 heures
Réalisable en urgence Non

Diagnostic microbiologique d’une biopsie
BIOPSIE (fragments tissulaires)
Préparation du patient Si possible en dehors de toute antibiothérapie (fenêtre
thérapeutique de 5 jours).
Renseignements
particuliers
Matériel Flacon ou tube stérile
Respect des mesures d’asepsie rigoureuses et de
conditions chirurgicales
Contexte global du patient : état immunitaire- infection en
cours – corticothérapie-traitement antibiotique récent
éventuel
Mode de prélèvement Si recherche d’anaérobie, un milieu de transport est
nécessaire
Fragments tissulaires de gros diamètre :
Flacon stérile sans liquide, sans conservateur.
Fragments tissulaires de petit diamètre :
Placer la biopsie au fond d’un tube stérile avec 3 à 4 gouttes
de sérum physiologique stérile.
Délai de transport au
laboratoire
Délai de rendu des
résultats
Réalisable en urgence Non
< à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
48 à 72 heures

Diagnostic microbiologique des infections O.R.L et recherches
associées
GORGE (Amygdales, ulcérations, fausses membranes) / LANGUE
Préparation du patient Si possible en dehors de toute antibiothérapie (fenêtre
thérapeutique de 5 jours).
Renseignements particuliers Contexte global du patient : état immunitaire- infection
en cours – corticothérapie-traitement antibiotique
récent éventuel
Matériel X2 Ecouvillons avec milieu de transport, bouchon bleu
Mode de prélèvement Utilisation d’une abaisse langue.
Ecouvillonnage de la lésion en fonction du contexte
clinique. Eviter le contact avec la langue
Recherche de Candida Ecouvillonnage au niveau de la langue, du palais et de la
face interne des joues.
Délai de transport au
< à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
laboratoire
Délai de rendu des résultats 48 à 72 heures
Réalisable en urgence Non
Etiquette de renseignements cliniques associée

NEZ
Préparation du patient Si possible en dehors de toute antibiothérapie (fenêtre
thérapeutique de 5 jours).
Renseignements
particuliers
Contexte global du patient : état immunitaire- infection en
cours – corticothérapie-traitement antibiotique récent
éventuel
Matériel X2 Ecouvillons avec milieu de transport, bouchon bleu
Mode de prélèvement Ecouvillonnage des deux narines (tiers inférieur) avec le
même écouvillon sauf précision sur prescription.
Possibilité d’humidifier l’écouvillon avec de l’eau
physiologique stérile.
Délai de transport au
laboratoire
Délai de rendu des
résultats
Réalisable en urgence Non
< à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
48 à 72 heures

NEZ (recherche éosinophilie nasale)
But Ce mode opératoire décrit les différentes étapes pour
réaliser une recherche d’éosinophilie nasale par lavage
lorsque celui-ci est demandé sur l’ordonnance. Cette
recherche permet d’écarter des rhinites récidivantes non
allergiques ou vasomotrices en cas de rhinite allergique.
Préparation du patient Aucune
Matériel 1 dosette de 10 ml de sérum physiologique (chlorure de
sodium 0.9 %)
2 pipettes pasteur de 1.5 ml (1 pour chaque narine)
2 pots à urine (1 pour chaque narine)
Mode de prélèvement Ouvrir une dosette de sérum physiologique en tournant la
partie supérieure. Identifier les pots à urine « Narine
droite » et « Narine gauche ».
Prélever du sérum physiologique (la moitié de la dosette = 5
ml avec une pipette pasteur.
Chez le patient assis tête fléchie en arrière, voile du palais
fermé, injecter le sérum dans une narine, en une ou
plusieurs fois. Au bout de 10 secondes, le patient doit
basculer la tête en avant et se moucher dans le pot
correspondant
Recommencer les mêmes opérations pour l’autre narine en
changeant de pipette pasteur.
Délai de transport au
Test réalisé au laboratoire
laboratoire
Délai de rendu des J0
résultats
Réalisable en urgence Non

OREILLE (Auriculaire)
Préparation du patient Si possible en dehors de toute antibiothérapie (fenêtre
thérapeutique de 5 jours).
Renseignements
Contexte global du patient : état immunitaire- infection en
particuliers
cours – corticothérapie-traitement antibiotique récent
éventuel
Matériel
X 2 écouvillons à tige fine, bouchon orange
Mode de prélèvement Nettoyage du conduit auditif externe puis écouvillonnage
Délai de transport au
< à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
laboratoire
Délai de rendu des 24 à 48 heures
résultats
Réalisable en urgence Non

VRS (détection des antigènes dans les échantillons rhino-pharyngés et de gorge)
Objectif Détection de l’antigène VRS dans les échantillons rhinopharyngés
et de gorge
Préparation du patient
Aucune
Renseignements particuliers Contexte global du patient : état immunitaire- infection
en cours – corticothérapie-traitement antibiotique récent
éventuel
Matériel Cathéter ou poire en caoutchouc
Flacon stérile
X 1 Ecouvillon sans milieu de transport (bouchon rouge)
ou X1 Ecouvillon à tige fine (bouchon orange) pour les
nourrissons
Mode de prélèvement Les secrétions sont recueillies par aspiration à l’aide
d’un cathéter, soit par succion à l’aide d’une poire en
caoutchouc.
L’écouvillonnage du rhinopharynx ou de la gorge est
moins fiable mais peut être utilisé.
Délai de transport au
laboratoire
Délai de rendu des résultats J0
Réalisable en urgence Oui
< à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
Si analyse différée, conservation à 2-8°C pendant 24
heures

Diagnostic microbiologique d’un prélèvement oculaire :
OCULAIRE (œil)
Préparation du patient Si possible en dehors de toute antibiothérapie
(fenêtre thérapeutique de 5 jours).
Renseignements
particuliers
Contexte global du patient : état immunitaire-
infection en cours – corticothérapie-traitement
antibiotique récent éventuel
Matériel X2 Ecouvillon avec milieu de transport, bouchon bleu
Mode de prélèvement Recueillir les sécrétions par frottis conjonctival et le
pus dans l’angle inférieur de l’œil à l’aide d’un
écouvillon.
Délai de transport au
laboratoire < à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
Délai de rendu des
résultats
Réalisable en urgence Non
48 à 72 heures

Antigènes des virus de la grippe de type A et de type B
Préparation du patient Aucune
Renseignements particuliers Contexte global du patient : état immunitaire- infection
en cours – corticothérapie-traitement antibiotique
récent éventuel
Matériel Cathéter ou poire en caoutchouc
Flacon stérile
X2 Ecouvillons avec milieu de transport, bouchon bleu
Mode de prélèvement
Délai de transport au
laboratoire
Délai de rendu des résultats J0
Réalisable en urgence Non
Echantillon nasal uniquement !!!
Insérer l’écouvillon dans la narine présentant le plus de
sécrétions. Poussez en tournant doucement l’écouvillon
jusqu’à sentir une résistance au niveau du cornet (moins
de 3 cm dans la narine).
Faites pivoter l’écouvillon 3 fois contre la paroi nasale.
< à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
Si analyse différée, 48 heures maximum à 15-25°C

Diagnostic microbiologique des lésions et suppurations cutanées :
L’identification précise du type d’infection et sa localisation sont requises, préciser s’il
s’agit d’un prélèvement profond ou superficiel
PEAU saine ou avec lésions non suintantes
Préparation du patient Si possible en dehors de toute antibiothérapie (fenêtre
thérapeutique de 5 jours).Détersion de la zone à prélever
avec du sérum physiologique et désinfection des zones
proximales si nécessaire.
Renseignements
particuliers
Contexte global du patient : état immunitaire- infection en
cours – corticothérapie-traitement antibiotique récent
éventuel
Matériel X2 Ecouvillons avec milieu de transport, bouchon bleu
Mode de prélèvement Ecouvillonnage de la lésion
Délai de transport au
laboratoire
< à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
Délai de rendu des
résultats
48 à 72 heures
Réalisable en urgence Non
PLAIE superficielle du site opératoire (cicatrice)
Préparation du patient Si possible en dehors de toute antibiothérapie (fenêtre
thérapeutique de 5 jours).
Renseignements
Contexte global du patient : état immunitaire- infection en
particuliers
cours – corticothérapie-traitement antibiotique récent
éventuel
Matériel Seringue stérile
Mode de prélèvement Prélever l’écoulement de la cicatrice par aspiration à la
seringue ou pratiquer une biopsie ou une aspiration à
l’aiguille fine au cours de la reprise chirurgicale
Eviter l’écouvillonnage
Délai de transport au < à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
laboratoire
Délai de rendu des 48 à 72 heures
résultats
Réalisable en urgence Non

LESIONS UNGUEALES (ongles)
Préparation du patient Si possible en dehors de toute antibiothérapie (fenêtre
thérapeutique de 5 jours).
Renseignements
Contexte global du patient : état immunitaire- infection en
particuliers
cours – corticothérapie-traitement antibiotique récent
éventuel
Matériel Flacon stérile
Mode de prélèvement Couper toute la partie de l’ongle atteint avec des ciseaux
stériles jusqu’à la limite des tissus sains. Où prélever des
poussières d’ongles en raclant la tablette de l’ongle avec la
curette.
Délai de transport au
laboratoire
Délai de rendu des
résultats
48 à 72 heures
Réalisable en urgence Non
Etiquette de renseignements cliniques associée
< à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)

Diagnostic microbiologique des liquides de ponction :
LIQUIDE DE PONCTION (Pus et liquides articulaires)
Préparation du patient Si possible en dehors de toute antibiothérapie (fenêtre
thérapeutique de 15 jours)
Respect des mesures d’asepsie rigoureuses et de
conditions chirurgicales
Renseignements
Contexte global du patient : état immunitaire- infection en
particuliers
cours – corticothérapie-traitement antibiotique récent
éventuel
La recherche spécifique éventuelle de Mycobactéries doit
être précisée sur la demande
Matériel Pour prévenir la coagulation du prélèvement et obtenir un
examen cytologique de qualité : 1 partie doit être recueillie de
préférence dans un tube hépariné.
Conserver un aliquote du prélèvement pour les examens
microscopiques et la culture
Flacon stérile
Mode de prélèvement Geste médical
Délai de transport au < à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
laboratoire
Délai de rendu des 48 à 72 heures
résultats
Réalisable en urgence Non
BK ( Liquide de ponction )
Renseignements particuliers Contexte global du patient : état immunitaireinfection
en cours – corticothérapie-traitement
antibiotique récent éventuel
Matériel Pour prévenir la coagulation du prélèvement et obtenir
un examen cytologique de qualité : 1 partie doit être
recueillie de préférence dans un tube hépariné
Flacon stérile
Mode de prélèvement Geste médical
Délai de transport au
< à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
laboratoire
Si analyse différée, conservation à +4°C
Délai de rendu des résultats 4 à 6 semaines
Réalisable en urgence Non

LIQUIDE DE PONCTION (Pleural, péritonéale, péricardique.)
Préparation du patient Si possible en dehors de toute antibiothérapie (fenêtre
thérapeutique de 5 jours).
Renseignements
particuliers
Respect des mesures d’asepsie rigoureuses et de
conditions chirurgicales
Contexte global du patient : état immunitaire- infection en
cours – corticothérapie-traitement antibiotique récent
éventuel
Matériel Seringue type Gaz du sang
Mode de prélèvement Geste médical : Ponction avec une aiguille de gros diamètre
montée sur une seringue. Chasser l’air et obturer.
Les liquides de ponction en seringue doivent être transférés
dans des systèmes hermétiquement clos.
Délai de transport au
laboratoire
Délai de rendu des
résultats
Réalisable en urgence Non
< à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
48 à 72 heures

Prélèvements mycologiques : recherche de Dermatophytes,
levures
Arrêt d’un traitement antifongique local ou général : 1 semaine pour un prélèvement
cutané / 3 à 4 semaines pour un prélèvement d’ongle
LESION DE LA PEAU GLABRE
Matériel Flacon stérile
Curette
Mode de prélèvement Racler fortement les squames à la périphérie des lésions
Délai de transport au
laboratoire
Délai de rendu des
résultats
Réalisable en urgence Non
< à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
Si analyse différée : délai maximal de transport 24 heures à
15-25°C
30 jours
LESIONS DES PLIS : lésions sèches et squameuses
Matériel Flacon stérile
Curette
Mode de prélèvement Désinfection à l’alcool à 70°C, gratter à la curette les
squames en bordure de la lésion
Délai de transport au
laboratoire
Délai de rendu des
résultats
Réalisable en urgence Non
< à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
Si analyse différée : délai maximal de transport 24 heures à
15-25°C
30 jours

LESIONS DES PLIS : lésions suintantes et macérées
Matériel X2 Ecouvillons avec milieu de transport, bouchon bleu
Mode de prélèvement Frotter les sérosités successivement à l’aide de deux
écouvillons
Délai de transport au < à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
laboratoire
Si analyse différée : délai maximal de transport 24
heures à 15-25°C
Délai de rendu des
résultats
30 jours
Réalisable en urgence Non
LESIONS UNGUEALES
Préparation du patient Réalise un lavage des mains ou des pieds, rinçage à l’eau et
séchage
Matériel Flacon stérile
Ciseaux / curette
X 2 Ecouvillons avec milieu de transport, bouchon bleu
Mode de prélèvement Couper toute la partie de l’ongle atteint avec des ciseaux,
ou racler la tablette interne de l’ongle avec une curette.
Si présence de pus sur le pourtour de l’ongle, presser la
lésion et prélever à l’aide de 2 écouvillons
Délai de transport au
laboratoire
Délai de rendu des
résultats
Réalisable en urgence Non
< à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
Si analyse différée : délai maximal de transport 24
heures à 15-25°C
30 jours

Pityriasis versicolor (recherche)
Matériel Scotch transparent + lame examen direct / curette
Mode de prélèvement Appliquer un scotch transparent au niveau de la lésion et
l’appliquer sur une lame à examen direct. Si région pileuse
ou suintante, utiliser la curette pour gratter les squames
Délai de transport au
laboratoire
Délai de rendu des
résultats
Réalisable en urgence Oui
LESIONS CUIR CHEVELU
Etiquette de renseignements cliniques associée
< à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
Si analyse différée : délai maximal de transport 24
heures à 15-25°C
30 jours
Matériel Flacon stérile
Pince à épiler / curette
X2 Ecouvillons avec milieu de transport, bouchon bleu
Mode de prélèvement Arracher les cheveux avec une pince à épiler à la
proximité du bulbe. Si présence, racler les squames et les
croûtes à l’aide d’une curette. Si présence de pus, frotter
la lésion avec 2 écouvillons.
Délai de transport au
laboratoire
Délai de rendu des
résultats
Réalisable en urgence Non
< à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
Si analyse différée : délai maximal de transport 24
heures à 15-25°C
30 jours

Diagnostic microbiologique des prélèvements périnataux :
PRELEVEMENTS PERINATAUX
Liquide gastrique
Matériel Sonde gastrique
Flacon stérile
Mode de prélèvement Aspiration de quelques millilitres de liquide gastrique à
l’aide d’une sonde gastrique
Prélèvements périphériques
Matériel
Ecouvillon à tige fine bouchon orange
Ecouvillon avec milieu de transport, bouchon bleu
Mode de prélèvement Ecouvillonnage des cavités naturelles ou de la peau du
nouveau-né :
Conduit auditif externe, narines, bouche, yeux, ombilic,
anus.
2 sites de prélèvement suffisent
Prélèvement de placenta
Matériel Flacon stérile
Mode de prélèvement Biopsie d’une zone de 1 cm 2 d’aspect macroscopiquement
anormal ou à défaut près du site d’insertion du cordon
Réaliser 2 frottis par grattage :
L’un sur la face amniotique et l’autre sur la face maternelle
du placenta
Délai de transport au < à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
laboratoire
Délai de rendu des 24 à 48 heures
résultats
Réalisable en urgence Non

Diagnostic microbiologique des prélèvements urogénitaux et
recherche associées :
SPERMOCULTURE
Préparation du patient Si possible en dehors de toute antibiothérapie
(fenêtre thérapeutique de 5 jours).Abstinence de 2 à
5 jours.
Renseignements particuliers Contexte global du patient : état immunitaireinfection
en cours – corticothérapie-traitement
antibiotique récent éventuel
Matériel Tulipe / compresse stérile
Mode de prélèvement Prélèvement réalisé au laboratoire par masturbation.
Hygiène soigneuse des mains. Désinfection soignée du
gland, du méat, du sillon balano-préputial, du prépuce.
Rinçage soigneux à l’eau physiologique.
Fiche spécifique à la demande
Délai de transport au
< à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
laboratoire
Délai de rendu des résultats 48 à 72 heures
Réalisable en urgence Non
URETRAL
Préparation du patient Si possible en dehors de toute antibiothérapie
(fenêtre thérapeutique de 5 jours).Abstinence de 2 à
5 jours
Renseignements particuliers Contexte global du patient : état immunitaireinfection
en cours – corticothérapie-traitement
antibiotique récent éventuel
Matériel
X 2 écouvillons à tige fine bouchon orange
Mode de prélèvement Au moins 1 heure après la dernière miction et toujours
avant le premier jet d’urine en recueillant le pus ou
l’écoulement au méat urétral
Si absence d’écoulement, introduire l’écouvillon sur 2 à
3 cm dans le conduit urétral
Délai de transport au
< à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
laboratoire
Délai de rendu des résultats 48 à 72 heures
Réalisable en urgence Non

Etiquette de renseignements cliniques associée
VAGINAL
Préparation du patient Si possible en dehors de toute antibiothérapie (fenêtre
thérapeutique de 5 jours).Abstinence de 2 à 5 jours
Renseignements particuliers Renseignements cliniques : symptômes
Noter l’aspect des lésions et/ou des secrétions vaginales
Contrôle après traitement ?
Matériel X 2 Ecouvillons avec milieu de transport, bouchon bleu
Mode de prélèvement germes
banals / Neisseria gonorrhoeae /
mycose
Dépistage du portage de
Streptococcus agalactiae (34 ème -
35 ème semaine)
Etiquette de renseignements cliniques associée
Après la pause d’un spéculum : prélever au niveau du culde-sac
vaginal postérieur+ endocol + paroi vaginale
Recherche au niveau du tiers vaginal inférieur
L’emploi d’un spéculum n’est pas recommandé
x1 écouvillon sec bouchon rouge en plus
Délai de transport au laboratoire < à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
Réalisable en urgence Non
Sauf dépistage Streptococcus agalactiae

URETRAL / VAGINAL
Instructions spéciales
+ Recherche de Chlamydia
fiche spécifique Biomnis sur
demande
Instructions spéciales
+ Recherche d’Herpès
fiche spécifique Biomnis sur
demande
MYCOPLASMES (cultures)
Utilisation du Kit Chlamydia Trachomatis APTIMA
(Biomnis)
Utilisation du kit recherche de virus par PCR (Biomnis)
Préparation du patient Si possible en dehors de toute antibiothérapie (fenêtre
thérapeutique de 5 jours).
Renseignements particuliers Renseignements cliniques : symptômes
Contrôle après traitement ?
Mode de prélèvement :
Endocervical/vaginal
Matériel
Après la pause d’un spéculum : élimination soigneuse des
sécrétions de l’exocol à l’aide d’un premier écouvillon.
Il est essentiel de bien gratter la muqueuse afin
d’obtenir un bon résultat.
Mode de prélèvement :
X1 écouvillon sec bouchon rouge en plus
Nettoyer le méat et prélever par écouvillonnage ou
Urétral
grattage des cellules
Matériel X1 écouvillon à tige fine bouchon orange en plus
Mode de prélèvement :
Recueillir le sperme ou le 1
Urines / Sperme
er jet d’urine dans un flacon
stérile
Matériel X1 - Flacon stérile pour recueil d’urine ou de sperme
Mode de prélèvement :
Prélever le liquide gastrique des nouveau-nés par
Liquide gastrique
aspiration à l’aide d’un cathéter et récolter dans un
flacon stérile.
Délai de transport au laboratoire
(sur écouvillon ou en flacon
stérile)
< à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
Délai de transport au laboratoire Le milieu UMMT avant ensemencement se conserve à 2-
en milieu de transport UMMT 8°C jusqu’à la date de péremption.
(écouvillon)
Décharger l’écouvillon dans le flacon
Stabilité du milieu UMMT ensemencé : 20 heures à 15-
25°C ou 56 heures à 2-8°C
Délai de rendu des résultats 48 à 72 heures
Réalisable en urgence Non

Les prélèvements urinaires et recherches associées :
ECBU (Cas habituel) / Culot urinaire
Préparation du patient Si possible en dehors de toute antibiothérapie
(fenêtre thérapeutique de 5 jours).Si possible 4
heures après la dernière miction. Hygiène soigneuse
des mains et toilette soigneuse au savon ou avec une
lingette du méat (chez l’homme) et de la région
vulvaire (chez la femme) d’un seul geste de l’avant vers
l’arrière.
Renseignements particuliers Contexte global du patient : état immunitaire-
infection en cours – corticothérapie-traitement
antibiotique récent éventuel
Matériel Flacon stérile pour urine
Mode de prélèvement Eliminer le 1 er jet dans les toilettes et recueillir le
milieu du jet en évitant de toucher le bord supérieur
du flacon.
Fiche spécifique à la demande
Délai de transport au
laboratoire
Délai de rendu des résultats 24 à 48 heures
Réalisable en urgence Non
< à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
Si analyse différée durée maximale de 24 heures à 2-
8°C

ECBU (Nourrisson et jeune enfant de moins de 2 ans)
Préparation du patient Si possible en dehors de toute antibiothérapie
(fenêtre thérapeutique de 5 jours).Hygiène
rigoureuse des mains pour la personne posant le
collecteur.
Désinfection soigneuse de la vulve et du périnée
chez la fille ou désinfection soigneuse du gland et du
prépuce chez le garçon.
Renseignements particuliers Contexte global du patient : état immunitaireinfection
en cours – corticothérapie-traitement
antibiotique récent éventuel
Matériel Collecteur d’urine
Mode de prélèvement Pose du collecteur
Le collecteur doit être remplacé toutes les heures
Fiche spécifique à la demande
Délai de transport au
laboratoire
Délai de rendu des résultats
Réalisable en urgence Non
ECBU (Patient sondé)
2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
Si analyse différée durée maximale de 24 heures à
2-8°C
24 à 48 heures
Préparation du patient Si possible en dehors de toute antibiothérapie locale
ou générale (fenêtre thérapeutique de 5
jours).Désinfection sur le site spécifique du dispositif
de sonde.
Renseignements particuliers Contexte global du patient : état immunitaireinfection
en cours – corticothérapie-traitement
antibiotique récent éventuel
Matériel Seringue pour ponction
Mode de prélèvement Ponction de l’urine
Si ECBU demandé dans le cadre d’un changement de
sonde : effectuer la ponction d’urine sur la nouvelle
sonde
Délai de transport au
laboratoire
Délai de rendu des résultats
Réalisable en urgence Non
< à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
Si analyse différée durée maximale de 24 heures à 2-
8°C
24 à 48 heures

Etiquette de renseignements cliniques associée
Mycoplasmes urinaires
Préparation du patient Si possible en dehors de toute antibiothérapie locale
ou générale (fenêtre thérapeutique de 5 jours).
Toilette soigneuse, voir ECBU.
Renseignements particuliers Contexte global du patient : état immunitaireinfection
en cours – corticothérapie-traitement
antibiotique récent éventuel
Matériel Flacon stérile pour urine
Mode de prélèvement Recueillir le 1er jet d’urine
Délai de transport au
laboratoire
Délai de rendu des résultats 24 à 48 heures
Réalisable en urgence Non
< à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
Si analyse différée, utiliser un milieu de transport
UMMT : 20 heures à 15-25°C / 56 heures à 2-8°C
Legionella (recherche de l’antigène urinaire soluble du sérogroupe 1 de
Legionella pneumophila)
Préparation du patient Si possible en dehors de toute antibiothérapie locale
ou générale (fenêtre thérapeutique de 5 jours).
Renseignements particuliers Contexte global du patient : état immunitaireinfection
en cours – corticothérapie-traitement
antibiotique récent éventuel
Matériel Flacon stérile pour urine
Mode de prélèvement 10 millilitres d’urines fraîchement émises
Délai de transport au
24 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
laboratoire
Si analyse différée, conservation à 2-8 °C
Délai de rendu des résultats
Réalisable en urgence
J0
Oui

Recherche de parasites vésicaux
Préparation du patient Aucune
Renseignements particuliers Contexte global du patient : état immunitaireinfection
en cours – corticothérapie-traitement
antibiotique récent éventuel
Matériel Flacon stérile pour recueil d’urine
Mode de prélèvement Recueillir les urines après un effort physique modéré
(marche à pied, montée d’escalier…).
Totalité de la miction du matin
Délai de transport au
laboratoire
Délai de rendu des résultats 4 à 6 semaines
Réalisable en urgence Non
BK URINAIRE
< à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
Si analyse différée durée maximale de 24 heures à 2-
8°C
Préparation du patient Aucune
Renseignements particuliers Contexte global du patient : état immunitaireinfection
en cours – corticothérapie-traitement
antibiotique récent éventuel
Matériel Flacon stérile pour recueil d’urine
Mode de prélèvement Totalité des urines de la nuit après restriction
hydrique sur la nuit, cette recherche est réalisée 3 j
de suite.
Urines à conserver entre 2 et 8°C pendant toute la
durée du recueil.
Délai de transport au
laboratoire
Délai de rendu des résultats 4 à 6 semaines
Réalisable en urgence Non
Acheminement au laboratoire à 15-25°C dès que
possible
Si analyse différée, conservation des urines à +4°C

COMPTE D’ADDIS = Débit-minute = HLM
Préparation du patient 3 heures avant le lever, vider la vessie, rejeter les
urines dans les toilettes, boire ¼ de litres d’eau, noter
l’heure sur le flacon.
Se recoucher et rester allongé, au repos pendant 3
heures
Matériel Flacon pour recueil d’Addis
Mode de prélèvement Après 3 heures, uriner à fond en recueillant la totalité
des urines dans le flacon, notre l’heure sur le flacon.
Si vous devez uriner avant la fin des 3 heures,
recueillir les urines dans le flacon.
Délai de transport au
laboratoire
Délai de rendu des résultats J0
Réalisable en urgence Non
< à 2 heures à température ambiante (15 à 25 °C)
Si analyse différée durée maximale de 24 heures à 2-
8°C

Transport des échantillons biologiques
Le transport de échantillons biologiques est réglementé par la convention ADR P650
(Accord européen relatif au transport des marchandises dangereuses par route
2007)
Les échantillons biologiques en vue d’une analyse sont classés dans la catégorie
N° UN3373, ‘’Matière biologique, catégorie B’’
UN3373 ‘’Matière biologique, catégorie B : matières infectieuses contenant des
agents biologiques ne provoquant pas une invalidité permanente ou une maladie
mortelle/potentiellement mortelle pour l’homme et l’animal.
Il s’agit des transports de spécimens du cabinet d'un médecin, d'un laboratoire, d’un
centre de prélèvement, au laboratoire, ainsi que les prélèvements à domicile.
Obligations d’emballage :
Quelles sont ces obligations d’emballage ?
Récipient(s) primaire(s) étanche(s), résistant(s) aux chocs et aux charges
Les tubes ou les flacons fournis par le laboratoire sont conformes aux
exigences des récipients primaires.
Emballage secondaire solide, étanche avec matériau absorbant :
Nos boites de transport pour prélèvement sanguins sont conformes aux
exigences d’emballage secondaire.
Un emballage extérieur de taille minimale de 10 cm portant la mention
‘’Matière biologique, catégorie B’’ à côté du losange UN3373
Nos boites de transport pour prélèvement sanguins sont conformes aux
exigences d’emballage extérieur.
L’étiquetage de l'emballage externe comporte les éléments suivants :
Le nom, l’adresse et le numéro de téléphone du laboratoire.
Les prélèvements doivent être transmis impérativement dans les boites fournies par le
laboratoire.
Avant de prélever, vérifier la validité de votre matériel (date de péremption)
Ne pas faire de stock de boites de prélèvement.

Equipement du véhicule de transport
Dans chaque véhicule de transport doit se trouver un équipement pour intervenir en
cas de déversement accidentel et comprenant :
Annexes
· Un désinfectant
· Des sacs poubelle et un conteneur solide
· Des gants à usage unique
Fiche de transmission de prélèvement
Fiche de consentement droit d’information
Fiche de renseignements pour l’étude des marqueurs sériques maternels 1 er
et 2 ème trimestre (évaluation des risques HT21)

Fiche de transmission de prélèvement

Fiche de consentement droit d’information

Fiche de renseignements pour l’étude des marqueurs sériques maternels 1 er
et 2 ème trimestre (évaluation des risques HT21)

Bibliographie
Rémic, référentiel en microbiologie médicale 4 ème édition 2010
Hors série Annales de biologie clinique : recommandations SFBC pour
l’accréditation des laboratoires de biologie médicale
Association française des enseignants de Parasitologie et Mycologie :
ANOPHELE
Peynegre. R, Brossard. B : Exploration physique et fonctionnelle des fosses
nasales. Encyclopédie médicale : Oto-rhino-laryngologie
Guide de bonnes pratiques des ponctions médullaires (SFH, CFHC, CHH,
SNBH), Juin 2003
Guide des examens de laboratoire 4 ème édition, 2002