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Conservation<br />

des<br />

semences<br />

"Seeds - Time Capsules of Life" by Rob Kesseler & Wolfgang Stuppy


LES DEUX TYPES BIOLOGIQUES<br />

DE SEMENCES<br />

Semences orthodoxes (tolérantes à la dessiccation)<br />

• Fortement déshydratées<br />

• Survivent facilement à létat déshydraté<br />

Semences récalcitrantes (intolérantes à la<br />

dessiccation)<br />

• Riches en eau<br />

• Meurent si elles se déshydratent


I. Semences récalcitrantes


EXEMPLES DE SEMENCES RECALCITRANTES<br />

CHENE (Quercus sp)<br />

NOYER (Juglans sp)<br />

CHÂTAIGNIER (Castanea sp)<br />

ERABLE (Acer pseudoplatanus)<br />

MARRONNIER (Aesculus hippocastaneum)<br />

MANGUIER (Mangifera indica)<br />

HEVEA (Hevea brasiliensis)<br />

AVOCATIER (Persea americana)<br />

CAFEIER (Coffea sp.)<br />

COCOTIER (Cocos nucifera)<br />

LITCHI (Litchi chinensis)<br />

CACAOYER (Theobroma cacao)<br />

THEIER (Thea sinesis)<br />

CITRUS (Citrus sp.)<br />

SYMPHONIA GLOBULIFERA, HOPEA ODORATA, H. HAINANENSIS, SHOREA<br />

ROXBURGHII, S. ACUMINATA, ARAUCARIA SP.<br />

AVICENNIA MARINA


100<br />

a<br />

Germination (%)<br />

80<br />

60<br />

40<br />

20<br />

b<br />

c<br />

d<br />

e<br />

0<br />

0<br />

5 10 15 20 25 30<br />

Teneur en eau (% mf)<br />

Three typical patterns of desiccation tolerance (normal germination, %, plotted against<br />

moisture content, % w.b.) are shown for species with orthodox (a), intermediate (c) and<br />

recalcitrant (e) seed storage behaviour. Two further patterns (b and d) are also shown<br />

which may be found in species with orthodox and intermediate seed storage behaviour,<br />

respectively, where the seed lot has been harvested prematurely or too late, or has been<br />

wrongly pretreated. Seeds of some species with recalcitrant seed behaviour are more<br />

intolerant of desiccation than those shown by pattern e. From Hong and Ellis 1996


RECALCITRANT SEEDS AND MOISTURE<br />

CONTENT UNDER WHICH THEY DIE <br />

Species <br />

Acer platanoides <br />

Acer saccharinum <br />

Araucaria angustifolia <br />

Citrus grandis <br />

Citrus sinensis <br />

Euphorbia longan <br />

Hevea brasiliensis <br />

Hopea odorata <br />

Litchi chinensis <br />

Mangifera indica <br />

Quercus alba <br />

Quercus sessiliflora <br />

Shorea roxburghii <br />

Symphonia globulifera <br />

Theobroma cacao <br />

Moisture content<br />

(% fresh weight) <br />

30-35 <br />

30-35 <br />

30-35 <br />

52 <br />

25 <br />

25 <br />

20-25 <br />

20-25 <br />

30-35 <br />

30-35 <br />

25 <br />

30-40 <br />

25-30 <br />

40-45 <br />

45-50


SURVIE DES SEMENCES RECALCITRANTES<br />

Très difficile à cause de leur intolérance à la dessiccation<br />

• Maintien à létat hydraté<br />

• Germination sans apport deau supplémentaire<br />

(absence de dormance)<br />

• Sensibilité aux températures basses pour les<br />

espèces tropicales (maladies du froid)<br />

• Développement de microorganismes (désinfection<br />

obligatoire)


Germination (absence de dormance)<br />

Croissance des plantules<br />

Problèmes<br />

causés<br />

par la<br />

conservation<br />

en milieu<br />

humide<br />

Ralentissement des processus biologiques:<br />

Baisse de température<br />

Diminution du potentiel hydrique du milieu<br />

Sensibilité aux températures basses<br />

Utilisation dune température seuil<br />

Développement des microorganismes<br />

Désinfection<br />

CONSERVATION A COURT TERME


Exemples de températures critiques entraînant<br />

des maladies « physiologiques » du froid <br />

Espèces<br />

Température<br />

critique (°C)<br />

Cedrela odorata 10<br />

Hevea brasiliensis 15-16<br />

HEVEA BRASILIENSIS <br />

Hopea odorata 12<br />

Mangifera indica 12<br />

Shorea roxburghii 12-15<br />

Shorea talura 4<br />

Symphonia globulifera 15


SIMAROUBA <br />

AMARA <br />

SHOREA<br />

ROXBURGHII <br />

SYMPHONIA<br />

GLOBULIFERA <br />

normal<br />

seedlings <br />

abnormal<br />

seedlings <br />

abnormal<br />

seedlings <br />

normal<br />

seedling <br />

abnormal<br />

seedling <br />

3 mois de stockage à 5°C <br />

des graines à une<br />

teneur en eau de 9-10%<br />

1 mois de stockage à 12°C <br />

en milieu humide <br />

1 an de stockage à 15°C <br />

en milieu humide


Manguier<br />

Plants âgés dun mois <br />

Plants âgés de 3 mois <br />

C <br />

2 mois <br />

C 2 months 4 months <br />

4 mois <br />

Plants issus de semences<br />

fraîchement (C) ou<br />

conservées pendant 2 et 4 mois<br />

à 12°C dans un milieu humide


II. Semences orthodoxes


La longévité des semences


Longévité des semences en conditions<br />

naturelles<br />

Semences macrobiotiques : > 15 ans<br />

• de nombreuses légumineuses<br />

• Lupinus arcticus : 10 000 ans (Science 6 October<br />

1967,Vol. 158. no. 3797, pp. 113 - 114 )<br />

Semences mésobiotiques : 3-15 ans<br />

• la majorité des espèces<br />

Semences microbiotiques : < 3 ans<br />

• semences récalcitrantes<br />

• semences lipidiques


1300 ans<br />

2000 ans


Valeur estimée de la période de demi-vie (P 50<br />

) des semences de<br />

quelques espèces cultivées conservées à l’air libre<br />

Espèces P 50<br />

(années)<br />

Espèces P 50<br />

(années)<br />

Avoine 12,9 Lentille 10,6<br />

Betterave 16,5 Luzerne 10,5<br />

Blé 7,6 Maïs 9,6<br />

Carotte 6,6 Oignon 5,4<br />

Céleri 4,1 Orge 7,2<br />

Colza 13,9 Pois 15,8<br />

Concombre 4,9 Radis 13,8<br />

Endive 5,4 Seigle 4,5<br />

Epinard 12,7 Soja 3,4<br />

Fève 15,6 Tabac 10,3<br />

Haricot 15,8 Tomate 24,5<br />

Laitue 6,4 Tournesol 5,4<br />

Nota : Ces valeurs de P 50<br />

peuvent varier assez fortement selon les conditions climatiques de conservation.


Processus physiologiques<br />

accompagnant le<br />

vieillissement des<br />

semences:<br />

Perte de vigueur


Détérioration des semences au cours de la conservation<br />

Perte de vigueur puis de viabilité


WHAT ARE HIGH QUALITY SEEDS ?<br />

They are seeds : <br />

1 - which germinate all <br />

2 - which germinate quickly <br />

3 - which give rise to normal and vigorous seedlings <br />

4 - which are little sensitive to external factors (temperature,<br />

oxygen availability, water potential of the soil, …),<br />

and then which germinate<br />

in a wide range of environmental conditions <br />

5 - which can be easily stored <br />

For seed companies a<br />

major challenge toward<br />

improving crop yield is<br />

a better control of seed<br />

vigor<br />

Bad<br />

Good


LOSS OF SEED VIGOUR DURING STORAGE <br />

Rape <br />

Germination (%)<br />

100<br />

75<br />

50<br />

25<br />

Vigour<br />

Viability<br />

Germination (%)<br />

100<br />

75<br />

50<br />

25<br />

A<br />

T<br />

1<br />

2<br />

100 B<br />

T<br />

2<br />

75<br />

1<br />

3<br />

3<br />

50<br />

4 4<br />

25<br />

0<br />

0 2 4 6 8 10 12 14 16<br />

Duration of ageing (days)<br />

0<br />

0 5 10 15 20 25 30 35 40<br />

Temperature<br />

Température (°C)<br />

(°C) <br />

0<br />

0 5 10 15 20<br />

Oxygen<br />

Oxygène (%)<br />

(%) <br />

Control non aged<br />

seeds<br />

Lettuce <br />

Aged seeds<br />

Sensitivity<br />

of seed<br />

batches to<br />

ageing <br />

Prediction of<br />

storability<br />

Germination (%)<br />

100<br />

75<br />

50<br />

25<br />

0<br />

Batch<br />

3<br />

Wheat <br />

Batch 2<br />

Batch 1<br />

0 2 4 6 8 10 12 14 16<br />

Duration of ageing (days)


Ex: semences de tournesol


Perte de vigueur des semences<br />

au cours du vieillissement<br />

ISTA tests <br />

100<br />

A<br />

100<br />

B<br />

T<br />

Colza <br />

Germination (%) <br />

75<br />

50<br />

25<br />

T<br />

1<br />

2<br />

2<br />

75<br />

1<br />

3<br />

3<br />

50<br />

4 4<br />

25<br />

0<br />

0 5 10 15 20 25 30 35 40<br />

Température (°C)<br />

0<br />

0 5 10 15 20<br />

Oxygène (%)<br />

Effets du vieillissement (45°C et 100% HR) des<br />

semences sur leur réponse à la température et à la teneur<br />

en oxygène de latmosphère


Mécanismes cellulaires de la<br />

détérioration des semences


LIPID<br />

PEROXIDATION<br />

H2O<br />

LOSS OF SEED<br />

VIGOUR<br />

AGEING<br />

CAT<br />

O2 .-<br />

H2O2<br />

SOD<br />

APX<br />

H2O<br />

ASA DHA<br />

DHAR<br />

GSSG GSH<br />

GHR<br />

NADPH NADP<br />

Electron transport<br />

CAT : catalase <br />

GHR : glutathione reductase <br />

SOD : superoxide dismutase <br />

APX : ascorbate peroxidase <br />

DHAR : dehydroascorbate reductase <br />

ASA : ascorbate <br />

DHA : dehydroascorbate <br />

GSH : reduced glutathione <br />

GSSG : oxidized glutathione <br />

APX : ascorbate peroxidase


Germination after 7 days (%) <br />

100<br />

SEED VIABILITY AND SEED MOISTURE CONTENT<br />

75<br />

50<br />

25<br />

0<br />

<br />

Sunflower<br />

0 2 4 6 8 10 12 14 16<br />

Duration of controlled deterioration (days) <br />

P 50 (days)<br />

10<br />

8<br />

6<br />

4<br />

2<br />

0<br />

Embryonic<br />

axis<br />

Whole<br />

seeds<br />

0 0,1 0,2 0,3 0,4 0,5 0,6<br />

Water content (g H 2 O g -1 DM) <br />

Effects of duration of treatment at 35°C of seeds previously equilibrated at water contents of<br />

0.043 (), 0.084 (), 0.146 (), 0.213 (∆), 0.299 (), 0.375 () and 0.488 () on seed viability<br />

and the half-viability period (P 50 ). <br />

- The higher the MC, the faster was seed deterioration.<br />

- There existed a negative linear relationship between the time taken for<br />

germination to drop to 50% (P 50 ) and the embryonic axis MC.


ANTIOXIDANT DEFENCE SYSTEM AND SEED<br />

MOISTURE CONTENT<br />

Enzyme activity (% initial value) <br />

100<br />

75<br />

50<br />

25<br />

0<br />

GR<br />

SOD<br />

CAT<br />

0 0,1 0.1 0,2 0.2 0,3 0.3 0,4 0.4 0,5 0.5 0,6 0.6!<br />

Enzyme activity (% initial value) <br />

100<br />

75<br />

50<br />

25<br />

0<br />

CAT<br />

SOD<br />

GR<br />

0 25 50 75 100<br />

Water content (g H 2 O g -1 DM) <br />

Viability (%) <br />

- Ageing results in a decrease in antioxidant defence system. <br />

- A sublinear relationship existed between water content(or seed viability and enzyme<br />

activities.


H 2 O 2 CONTENT AND LIPID PEROXIDATION AND<br />

SEED MOISTURE CONTENT<br />

150<br />

300<br />

150<br />

300<br />

H 2 O 2 (% initial value) <br />

145<br />

140<br />

135<br />

130<br />

125<br />

275<br />

250<br />

225<br />

200<br />

175<br />

MDA (% initial value) <br />

H 2 O 2 (% initial value) <br />

145<br />

140<br />

H 2 O 2 H 2 O 2<br />

MDA<br />

135<br />

130<br />

125<br />

MDA<br />

275<br />

250<br />

225<br />

200<br />

175<br />

MDA (% initial value) <br />

120<br />

0 0,1 0,2 0,3 0,4 0,5 0,6<br />

150<br />

120<br />

0 25 50 75 100<br />

150<br />

Water content (g H 2 O g -1 DM) <br />

Viability (%) <br />

- Ageing results in an increase in H 2 O 2 and MDA content. A sublinear relationship<br />

existed between water content and H 2 O 2 content, in contrast MDA content did not<br />

significantly enlarge until 0.248 g H 2 O 2 g -1 DW, and then increased strongly. <br />

- There existed a linear relationship between H 2 O 2 content and seed viability, which<br />

was not the case for MDA.


Aging at high MC vs aging at "low" MC: wheat seeds<br />

High MC<br />

(up to 50 % dw)<br />

"Low" MC<br />

(17 % dw)<br />

Viability (%) ( ) and water content (% DW) ( <br />

Viability (%) ( ) and water content (% DW) ( )<br />

Lehner et al (2007) J Cereal Sci, in press<br />

110<br />

8<br />

100<br />

7<br />

90<br />

80<br />

6<br />

70<br />

5<br />

60<br />

4<br />

50<br />

40<br />

3<br />

30<br />

2<br />

20<br />

1<br />

10<br />

0<br />

0<br />

0 1 2 3 4 5 6 7<br />

Duration at 45°C and 100% RH (days)<br />

110<br />

8<br />

100<br />

7<br />

90<br />

80<br />

6<br />

70<br />

5<br />

60<br />

4<br />

50<br />

40<br />

3<br />

30<br />

2<br />

20<br />

1<br />

10<br />

0<br />

0<br />

0 1 2 3 4 5<br />

Duration at 30°C and 75% RH (months)<br />

T 50 (days) ( )<br />

T 50 (days) ( )


Indicators of oxidative stress<br />

Aging treatment H 2 O 2 MDA<br />

Conditions Duration (!mol g -1 DW) (!mol g -1 DW)<br />

45°C 0 d 3.29 ± 0.02 0.42 ± 0.03<br />

100% RH 1 d 2.56 ± 1.20 0.41 ± 0.03<br />

2 d 1.64 ± 0.51 0.39 ± 0.05<br />

3 d 1.04 ± 0.00 0.43 ± 0.01<br />

4 d 1.42 ± 0.20 0.43 ± 0.02<br />

5 d 2.42 ± 0.80 0.42 ± 0.03<br />

6 d 5.54 ± 0.97 0.39 ± 0.04<br />

1<br />

30°C 0 month 3.29 ± 0.02 0.42 ± 0.03<br />

75% RH 1 month - 0.43 ± 0.05<br />

2 months 3.12 ± 0.10 0.45 ± 0.05<br />

2.5 months - 0.43 ± 0.02<br />

3.5 months - 0.41 ± 0.10<br />

4 months 3.42 ± 0.12 0.43 ± 0.03<br />

4.5 months 3.10 ± 0.25 0.39 ± 0.01<br />

High MC: ROS accumulation, not in lower MC


Antioxidant enzymes<br />

Aging treatment<br />

Activity of<br />

1<br />

Conditions Duration CAT SOD GR<br />

SOD GR<br />

45°C 0 d 7.3 ± 1.1 13.2 ± 2.6 235 ± 49<br />

100% RH 1 d 9.6 ± 3.2 6.6 ± 2.1 296 ± 7<br />

2 d 9.2 ± 1.0 5.4 ± 0.7 649 ± 100<br />

3 d 6.7 ± 3.1 3.8 ± 0.8 401 ± 40<br />

4 d 6.1 ± 0.5 1.6 ± 1.2 505 ± 50<br />

5 d 3.0 ± 1.5 0 1150 ± 360<br />

6 d 3.9 ± 1.2 0 1140 ± 200<br />

30°C 0 month 7.3 ± 1.1 13.2 ± 2.6 235 ± 49<br />

75% RH 0.5 5.9 ± 0.6 9.8 ± 1.1 130 ± 30<br />

1 month 6.6 ± 0.7 9.7 ± 2.6 115 ± 60<br />

month 2 6.5 ± 0.7 8.1 ± 1.8 -<br />

2.5 5.9 ± 0.1 7.2 ± 1.9 200 ± 60<br />

months 3.5 6.3 ± 0.3 11.2 ± 3.1 125 ± 40<br />

months 4 5.8 ± 0.5 9.9 ± 2.2 160 ± 32<br />

months 4.5 6.4 ± 1.0 10.1 ± 2.0 180 ± 21<br />

months<br />

High MC: loss of<br />

months<br />

antioxidant enzyme activities, not in lower MC


Influence des conditions de<br />

conservation sur la survie des<br />

semences


Prolongation de la viabilité des semences orthodoxes<br />

Deux principaux facteurs :<br />

• la teneur en eau des semences<br />

• la température<br />

La longévité des semences orthodoxes est doublée :<br />

• chaque fois que, pour la même température de<br />

conservation, leur teneur en eau est abaissée de 2,5% ;<br />

• chaque fois que, pour la même teneur en eau<br />

de celles-ci, la température est abaissée de 5 ou 6°C.


Isothermes de sorption<br />

Courbe indiquant à l'équilibre pour une température donnée la quantité d'eau<br />

retenue par un produit en fonction de l'humidité relative de l'atmosphère<br />

Obtention: en plaçant le produit dans une série de récipients fermés dans<br />

lesquels une gamme d'HR (solutions salines saturées)


ZONE I: eau fortement liée (bound water)<br />

aw comprise entre 0 et 0,2-0,3<br />

Couche mono moléculaire d'eau fixée sur les groupements polaires<br />

de certains composés (NH3+ & COO- des protéines, OH amidon,…)<br />

Difficile à enlever, pas congelable, pas disponible comme réactif, peu<br />

(pas) d'activité physiologique<br />

ZONE II: eau faiblement liée<br />

Vers eau de + en + libre<br />

Couches d'eau fixées sur 1ère couche par liaisons H<br />

Vapeur d'eau condensée dans pores<br />

Disponible comme solvant et réactif (oxydations, transport d'e-)<br />

ZONE III:eau libre<br />

Pas (peu) de différences avec eau faiblement liée<br />

Majeure partie de l'eau des aliments frais<br />

Respiration mitochondriale et autres processus métaboliques


SORPTION ISOTHERMS <br />

Water content (g water/g dw) <br />

0.15<br />

0.10<br />

0.05<br />

0<br />

0<br />

pea<br />

soybean<br />

lettuce<br />

peanut<br />

yew<br />

sunflower<br />

20 40 60 80 100<br />

Relative humidity (%) <br />

Lipid content <br />

(% dry mass) <br />

pea : 2 <br />

soybean : 20 <br />

lettuce : 37 <br />

peanut : 45 <br />

sunflower : 58 <br />

yew : 71 <br />

(Vertucci and Ross, 1990)


Water content (g water/g dw) <br />

0.15<br />

0.10<br />

0.05<br />

0<br />

0<br />

SORPTION ISOTHERMS <br />

Pea seeds <br />

15°C<br />

5°C<br />

25°C<br />

35°C<br />

50°C<br />

20 40 60<br />

Relative humidity (%) <br />

Vertucci and Ross, 1993)


HYSTERESIS des courbes de sorption (dans zone II essentiellement)<br />

Teneur en eau (% MS)<br />

désorption<br />

adsorption<br />

HR<br />

Conséquence: augmentation progressive de la teneur en eau si variation cyclique de lHR


Evaluation de laptitude à la<br />

conservation:<br />

Vieillissement accéléré et détérioration<br />

contrôlée


Evaluation de I 'aptitude à la conservation des semences<br />

1. Vieillissement accéléré<br />

Une seule étape: prise d'eau par les semences et traitement thermique simultanés<br />

40 à 45°C / HR de 75 à 100 % , de qq<br />

jours à plusieurs semaines<br />

2. Détérioration contrôlée<br />

1 / Mise en équilibre (18 à 24 h à 15-20°C) des semences à une teneur en eau donnée<br />

(10 à 25%) grâce à un apport d 'eau (sous forme vapeur ou liquide) dans des sacs ou<br />

boîtes étanches<br />

2/ Traitement thermique<br />

40 à 60 °C, de qq jours à plusieurs semaines


SENSIBILITE DES SEMENCES<br />

AU VIEILLISSEMENT ACCELERE <br />

100<br />

VIABILITY (%) <br />

75<br />

50<br />

25<br />

2 <br />

3 <br />

SD<br />

1 <br />

0<br />

0 2 4 6 8 10 12 14<br />

DURATION OF ACCELERATED<br />

AGEING (DAYS) <br />

1 - Tomate <br />

2 - Poireau <br />

3 - Tournesol<br />

Vieillissement accéléré <br />

- 45°C <br />

- 100% HR


La prédiction de la conservation des<br />

semences orthodoxes


Le modèle d'Ellis et Roberts (1973)<br />

Dans une population de semences la mortalité suit une loi normale en<br />

fonction du temps<br />

L'écart type de cette distribution (σ) représente la répartition de cette<br />

mortalité dans le temps (= vitesse de perte de viabilité)<br />

Transformation probit de la courbe de survie:<br />

v = Ki - p/σ<br />

v, viabilité en probit du lot des semences après p jours de stockage;<br />

Ki, qualité initiale du lot (potentiel à la conservation) = intersection axe y<br />

de la droite de transformation probit<br />

si conservation à une TE m et une température t, on a:<br />

v = Ki - p/10 KE-Cw log m-CHt-CQt 2<br />

KE, Cw, CH, CQ constantes de l'espèce


Transformation probit des courbes de survie<br />

(Ellis et Roberts)


Effet du lot de semences


Effet des conditions de conservation


Conservation à long terme des<br />

semences des semences<br />

orthodoxes


Déshydrater le plus possible les semences<br />

Abaisser le plus possible la température de conservation<br />

• Conservation au congélateur<br />

• Conservation dans l’azote liquide<br />

• Conservation au froid en atmosphère très sèche<br />

(en présence de silicagel)<br />

• Conservation sous vide après lyophilisation


Création d'une banque de gènes<br />

- Conservation à long terme<br />

. International Board for Plant Genetic Resources<br />

(IBPGR)- International Plant Genetic .Resources<br />

Institute (IPGRI)<br />

Teneur en eau: 5±1 Température: - 18°C<br />

- Cryoconservation<br />

Conservation dans l'azote liquide (- 196°C)<br />

- Déshydratation et conservation sous vide<br />

- Lyophilisation<br />

Congélation + déshydratation par sublimation de la<br />

glace


USDA National Seed Storage Laboratory (Fort Collins, CO)


Problèmes posés par les techniques de conservation à long terme<br />

DESSICCATION . Sensibilité à la déshydratation<br />

. Sensibilité à une réimbibition trop rapide<br />

CONGELATION . Sensibilité à la congélation dans l'azote<br />

liquide<br />

. Sensibilité aux techniques de réchauffage<br />

LYOPHILISATION . Sensibilité à l'azote liquide<br />

. Sensibilité aux techniques de réimbibition


Trois types de semences<br />

Semences tolérant la dessiccation et l'azote liquide<br />

Semences tolérant la dessiccation mais sensibles à l'azote liquide<br />

Prunus luglans' "Corylus"Coffea<br />

Semences sensibles à la déshydratation et à l'azote liquide<br />

Cas des semences récalcitrantes


USDA National Seed Storage<br />

Laboratory (Fort Collins, CO)


Comparison of the threshold embryo (or * embryonic axis) moisture contents<br />

above which ice crystallization occurs at ultra-low temperatures, and below<br />

which loss in viability occurs.<br />

Species<br />

Acer saccharinum 32<br />

21*<br />

Aesculus<br />

hippocastanum<br />

Artocarpus<br />

heterophyllus<br />

!<br />

Threshold embryo moisture content<br />

(%, w.b.) for:<br />

!ice<br />

crystallization<br />

desiccation<br />

damage<br />

40<br />

30*<br />

24* 31*<br />

12-22*<br />

33<br />

18*<br />

43<br />

28*<br />

Reference<br />

Becwar et al. 1983<br />

Pammenter et al. 1993<br />

Pammenter et al. 1993<br />

Pence (1992)<br />

Hor et al. 1990<br />

Pammenter et al. 1993<br />

Avicennia marina 21* 29* Pammenter et al. 1993<br />

Castanospermum<br />

australe<br />

23* 50* Pammenter et al. 1993<br />

Durio zibethinus 32 54 Hor et al. 1990<br />

Landolphia kirkii 22-27* 25 (fast drying), 52<br />

(slow drying) *<br />

Pammenter et al. 1991<br />

Litchi chinensis 23* 42* Pammenter et al. 1991<br />

Nephelium lappaceum 30 39 Hor et al. 1990<br />

Welfia sp. 22* 64* Pammenter et al. 1993


- Gouvernement Norvégien<br />

- Consultative Group on<br />

International Agricultural<br />

Research (CGIAR)<br />

permafrost<br />

526 000 échantillons<br />

en mai 2010


Conclusion<br />

Les semences orthodoxes ont développé des mécanismes biologiques très efficaces les<br />

rendant capables de résister à une déshydratation quasi complète. Cette extraordinaire<br />

capacité de tolérer une intense dessiccation leur permet de survivre très longtemps et<br />

dassurer la pérennité des espèces. Elle facilite aussi grandement leur conservation.<br />

De plus, les systèmes régulateurs de la germination que sont les dormances sont très<br />

bénéfiques aux espèces sauvages car ils sopposent à la germination dans des<br />

conditions écologiques ou climatiques inadéquates.<br />

La sélection très poussée quont subi la plupart des espèces cultivées a fait le plus<br />

souvent régresser ou même disparaître les dormances et a donc fragilisé les semences<br />

en diminuant leur possibilité de survie dans les conditions naturelles.<br />

Quant aux semences récalcitrantes, elles ne peuvent pas être considérées comme des<br />

organes de résistance car leur déshydratation entraîne des dégâts cellulaires<br />

irréversibles. Leur germination doit se produire dès quelles tombent sur le sol, sinon<br />

elles ne survivent pas.

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