Streptococchi patogeni del Gruppo C - Cuteri.eu
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Silvia Preziuso<br />
silvia.preziuso@unicam.it<br />
Facoltà di Medicina Veterinaria<br />
Università di Camerino
Streptococcus
Streptococcus equi<br />
subsp. equi<br />
(S. equi)<br />
Adenite equina<br />
(Strangles)
Adenite equina (Strangles)<br />
• Mal. infettiva contagiosa<br />
degli equini: prime vie<br />
respiratorie e linfonodi<br />
• Trasmissione per via<br />
respiratoria<br />
• Problema: animali<br />
“portatori” asintomatici
• Prima<br />
localizzazione:<br />
– prime vie<br />
respiratorie<br />
– cripte tonsillari<br />
da Timoney JF,<br />
2004<br />
•Segue rapido trasporto<br />
ai linfonodi<br />
•Tasche gutturali
• capsula acido jaluronico<br />
• streptochinasi (plasminogeno->plasmina)<br />
• streptolisina S (emolisi)<br />
• peptidoglicano<br />
• pyrogenic mytogens (SePE-H, SePE-I, ...)<br />
• proteine di superficie (SeM, ...)<br />
• fibronectin binding protein<br />
• ...<br />
Patogenicità:
Complicazioni<br />
• “Bastard strangles”: diffusione in sedi<br />
diverse con formazioni ascessuali<br />
• “Porpora emorragica”: flogosi immunomediata<br />
a livello dei capillari, petecchie<br />
sulle mucose, edemi.
• 75% cavalli guariti: solida immunità<br />
• 25% cavalli guariti: può reinfettarsi
I “portatori”<br />
• In >50% focolai alcuni cavalli rimangono<br />
“portatori” per permanenza prolungata di<br />
S. equi nelle tasche gutturali<br />
• Tamponi nasofaringei batteriologicamente<br />
negativi per 2-3 mesi (lavaggi <strong>del</strong>le tasche<br />
gutturali positivi), poi nuovamente positivi<br />
per escrezione respiratoria = contagio
S. equi nell’uomo<br />
• 2003: Canada, meningite<br />
in un 14enne.<br />
• No altre segnalazioni
Streptococcus equi<br />
subsp.<br />
zooepidemicus<br />
(S. zooepidemicus)
S. zooepidemicus nel cavallo<br />
• Alta omologia genomica con S. equi<br />
• Opportunista? Fattori predisponenti?<br />
• Isolato da casi simil-adenite<br />
– flogosi prime vie respiratorie<br />
– ascessi linfonodali<br />
• Isolato da articolazioni, polmone, tamponi<br />
vaginali, uterini, latte, cute<br />
• Molti fattori di <strong>patogeni</strong>cità comuni a S.<br />
equi, no SeM ed esotossine SePE-I e –H<br />
• Pochi studi nel cavallo
S. zooepidemicus nell’uomo<br />
• Numerose segnalazioni nell’uomo<br />
• Responsabile di polmonite, artrite,<br />
endocardite, glomerulo-nefrite postfaringite,<br />
meningite; talvolta letale.<br />
• Zoonosi? Problema di sanità pubblica?<br />
• 2006: descrizioni di trasmissione con<br />
formaggio!!!
• Gran Canaria: batteriemia,<br />
artrite settica, polmonite e<br />
meningite in 15 pazienti (47-<br />
86a) per ingestione di “queso<br />
fresco”. Isolamento di S.<br />
zooepidemicus dal latte <strong>del</strong>le<br />
bovine in azienda produttrice.<br />
2006<br />
• Finlandia: setticemia, artrite settica in 7<br />
pazienti per ingestione formaggio di capra.<br />
Isolamento di S. zooepidemicus in azienda<br />
da formaggio, latte di massa, tamponi<br />
faringei <strong>del</strong>le capre
Streptococcus dysgalactiae<br />
subsp. equisimilis<br />
(S. equisimilis)
S. equisimilis nel cavallo<br />
• Poco considerato in medicina veterinaria<br />
• Normale habitat: cute e mucose <strong>del</strong><br />
cavallo (?)<br />
• Segnalazioni di isolamenti da: placente,<br />
ascessi linfonodali, casi simil-adenite<br />
• Poco studiato<br />
• Poche informazioni su fattori di<br />
<strong>patogeni</strong>cità e su patogenesi
S. equisimilis nell’uomo<br />
• Responsabile di faringite, artrite reattiva,<br />
osteomielite, endocardite, shock settico<br />
anche letale.<br />
• Zoonosi?<br />
• Isolato da cani con tonsillite, con forme<br />
simil-adenite e da feti abortiti<br />
• Isolato da suini con endocardite
Diagnosi<br />
S. equi<br />
S. zooepidemicus<br />
S. equisimilis
• Indiretta<br />
– Test sierologici<br />
• Diretta<br />
– Esame batteriologico<br />
– Polymerase Chain Reaction (PCR)
• Per S. equi<br />
Test ELISA<br />
• Rileva anticorpi > 7 giorni da infezione<br />
• Antigene test: proteina SeM<br />
• Applicazioni:<br />
– screening d’allevamento<br />
– valutazione titolo post-vaccinale<br />
• Analisi effettuata in Kentucky (U.S.A.)
Campionamento<br />
per diagnosi diretta<br />
• Materiale patologico:<br />
– tamponi<br />
• nasofaringeo<br />
• vaginale-uterino<br />
• cutaneo<br />
– liquido di lavaggio <strong>del</strong>le tasche gutturali<br />
– aspirato linfonodale<br />
– latte<br />
– tessuti (polmone, linfonodi, ecc.)<br />
• Conservazione 4°C e analisi entro 24-48h (per<br />
esame batteriologico se non in terreno di mantenimento)
Esame batteriologico<br />
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Polymerase Chain Reaction (PCR)<br />
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Multiplex-PCR<br />
• PCR in cui vengono utilizzate<br />
CONTEMPORANEAMENTE più<br />
coppie di primer specifiche per<br />
più batteri:<br />
– S. equi +<br />
– S. zooepidemicus +<br />
– S. equisimilis +<br />
– controllo interno (esclude inibenti)<br />
• Nello stesso tempo si ottiene il<br />
risultato per 3 batteri diversi<br />
S. zooepidemicus<br />
S. equisimilis<br />
S. equi
Metodi diretti a confronto<br />
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– Acquisizione ceppo x<br />
antibiogramma,<br />
valutazioni biochimiche,<br />
conservazione<br />
– No limitato a specifici<br />
batteri<br />
– Distinzione batteri vitali da<br />
morti<br />
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– Più sensibile<br />
– Più rapido<br />
Quale scegliere?<br />
– No necessità<br />
campione fresco<br />
– Meno spazio lab.<br />
– Più sicurezza lab.
& '()<br />
Quale scegliere?<br />
– screening allevamento<br />
– esame nuovi arrivi<br />
– ricerca dei “portatori”<br />
– non disponibilità di<br />
campioni idonei per<br />
batteriologia<br />
– sintomi specifici<br />
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– necessità antibiogramma<br />
– sintomi aspecifici<br />
– necessità conservazione<br />
ceppi<br />
– valutazione dei “portatori”<br />
Migliori risultati: metodo ibrido
• Metodo A: Esame<br />
batteriologico ed<br />
identificazione<br />
degli streptococchi<br />
beta-emolitici con<br />
PCR<br />
– “risparmio” 18 ore<br />
Metodo ibrido<br />
• Metodo B: Esame<br />
Multiplex-PCR<br />
seguito da esame<br />
batteriologico solo<br />
sui positivi<br />
– disponibilità di<br />
ceppi vivi
Controllo e prevenzione<br />
• Vaccino per S. equi<br />
– inoculazione sottomucosale<br />
– cavalli età >4 mesi<br />
– Prima vaccinazione: 2<br />
inoculazioni a 4 settimane<br />
l’una dall’altra<br />
– Richiami: 1 inoculazione<br />
ogni 3 mesi
Controllo e prevenzione<br />
• Indicazioni per S. equi<br />
– rapida identificazione degli<br />
infetti e separazione dai<br />
recettivi<br />
– controllo <strong>del</strong>le<br />
movimentazioni<br />
– individuazione dei cavalli<br />
“portatori”<br />
– schema di campionamento
Individuazione dei<br />
cavalli “portatori” asintomatici<br />
• Campionamento: tampone nasofaringeo<br />
settimanale ed esame batteriologico/PCR<br />
• In caso di negatività a 3 campioni<br />
consecutivi: analisi <strong>del</strong> liquido di lavaggio<br />
<strong>del</strong>le tasche gutturali<br />
• In caso di negatività: cavallo non infetto<br />
Sweeney et al, J Vet Intern Med 19:123-34, 2005
Nella nostra esperienza ...<br />
• Campionamento in allevamento con<br />
anamnesi di infiammazione vie respiratorie<br />
e forme simil-adenite (26 cavalli)<br />
• 1 tampone nasofaringeo/settimana x 3<br />
volte + 1 lavaggio tasche gutturali
• Esame batteriologico e PCR (in doppio cieco)<br />
• 104/104 campioni: No rilevato S. equi<br />
• 22/26 cavalli: in almeno 1 prelievo rilevati<br />
S. zooepidemicus e/o S. equisimilis<br />
– 8 cavalli S. zooepidemicus (in almeno 1 prelievo)<br />
– 16 cavalli S. equisimilis (in almeno 1 prelievo)<br />
– 2 cavalli coinfezione S. zooepidemicus + S.<br />
equisimilis<br />
– 2 cavalli S. zooepidemicus tasche gutturali<br />
• PCR: pos. in 10/68 batteriologicamente neg.
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silvia.preziuso@unicam.it