III.1. MATERIAL E MÉTODOS73III.1.1. Imunofenotipagem de linfócitos T CD4+ e CD8+ do sangue periférico delinfonodos poplíteos por citometria de fluxoIII.1.1.1. Obtenção do antígeno solúvel de taquizoítas de N. caninumO AgNc foi preparado a partir de taquizoítas derivados de cultivo celular. Ostaquizoítas coletados foram lavados 2 vezes em PBS, por centrifugação a 600 x g,durante 10 minutos. O sedimento de parasitos foi ressuspenso em 1 ml de PBS estéril esubmetido a 10 ciclos de congelamento a -80 ºC e descongelamento em banho-maria a37 ºC. Logo após a suspensão foi centrifugada a 15000 x g durante 1 hora a 4 ºC. Osobrenadante foi coletado e a concentração de proteína determinada pelo kit “BCAProtein Assay”. O AgNc foi então armazenado em freezer -80ºC, em alíquotas de 100 laté o momento do uso.III.1.1.2. Estimulação de células de linfonodos poplíteos in vitroOs linfonodos poplíteos dos cães do G1 e G2, além dos dois animais adultoscontroles, foram retirados por meio de ato cirúrgico aos 30 dpi, sendo os animaismantidos em analgesia e em condições assépticas. Após a excisão, uma parte doslinfonodos foi macerado em PBS estéril e centrifugado por 10 minutos, 600 x g, a 4 o C. Aseguir, o sobrenadante foi descartado e o sedimento ressuspendido em 10 ml de PBSestéril, e submetido à nova lavagem. A separação dos linfócitos foi realizada por meiode gradiente de densidade com Histopaque 1077, na proporção de 1:1 com PBS estéril,sendo centrifugados a 400 x g, por 30 minutos, a 4 o C. A fração contendo os linfócitos foiretirada e aproximadamente 1 x 10 6 células foram adicionados nos poços de uma placade cultivo celular, que continham meio RPMI 1640 contendo 10% de soro fetal bovino esubmetidos a três tratamentos distintos: 1.) sem estímulo exógeno (Meio – controlenegativo); 2.) estimulados com ConA (2,5 g/ml), uma lectina que se apresenta comopotente mitógeno de células T (controle positivo); e 3.) com adição de AgNc (25 g/ml),para se observar as respostas antígeno-específicas. Os linfócitos foram cultivados por72 horas, a 37 o C, com injeção constante de 5% de CO 2 .
74III.1.1.3. Determinação das subpopulações de linfócitos T no sangue periférico elinfonodos poplíteosFoi utilizada a técnica de imunofluorescência direta para a tipificação equantificação de linfócitos T CD4+ e CD8+ em sangue total e nos linfócitos extraídosdos linfonodos, por meio de ensaios de citometria de fluxo. Para a determinaçãosanguínea, duas alíquotas de 100µl de sangue periférico por animal foram colhidas comEDTA nos dias 0, 7, 10, 14, 21, 30, 45, 60, 75, 100, 140 e 200 dpi, sendo colocadas emtubos próprios para citometria de fluxo, logo após a colheita. Quanto aos linfócitoscultivados in vitro, 1x10 6 células/amostras/estímulo em duplicata foram lavadas duasvezes com PBS, para retirada do meio de cultura, e ressuspendidas em 100µl de PBSestéril. Uma das alíquotas foi incubada com 1µl do reagente comercial que consiste emdois anticorpos monoclonais: IgG2a de rato anti-CD4 canino (FITC) e IgG1 de rato anti-CD8 canino (PE). A outra alíquota serviu como controle isotípico negativo da reação,com a finalidade de eliminar fluorescências inespecíficas no momento da leitura. Osanticorpos monoclonais utilizados para esta finalidade foram IgG2a de rato anti-haptenode dinitrofenil (FITC) e IgG1 de rato anti-hapteno de dinitrofenil (PE). A incubação dosanticorpos foi realizada durante 30 minutos a 4ºC. Em seguida, as amostras de sangueforam submetidas à lise de hemácias utilizando-se 2ml do tampão “FACS LysingSolution” na diluição de uso, por 4 minutos à temperatura ambiente, na ausência de luz.Após verificação da lise das hemácias, adicionou-se 2ml de PBS e centrifugou-se ostubos a 300 x g por 10 minutos a 4ºC. As amostras advindas do cultivo celular nãotiveram a necessidade de serem submetidas à hemólise. Após a centrifugação, osobrenadante foi desprezado e o botão de células ressuspendido em 2 ml de PBS, paranovo ciclo de centrifugação. O protocolo de lavagem das células marcadas foi realizadopor quatro vezes para todos os ensaios, com o intuito de eliminar anticorpos nãoligados. Após as lavagens, o botão de células foi ressuspendido em 300µl de PBSadicionado de 1% de formaldeído, para a conservação da reação até o momento de sualeitura, que foi realizada até 72 horas para que se obtenham resultados fidedignos. Aspreparações celulares foram analisadas em citômetro de fluxo (10.000 eventos poramostra). A seleção das subpopulações celulares encontradas nas diferentes amostrasanalisadas foi possível por meio de protocolos de aquisição pré-estabelecidos (BYRNE
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6. APÊNDICE1446.1. Lista de reagen
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146. IgG de camundongo anti-CD3 hum
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