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Gebhardt, K.: Neuzüchtung und Erprobung bisher nicht ... - FastWOOD

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<strong>Neuzüchtung</strong>, <strong>Erprobung</strong> <strong>und</strong> mögliche<br />

Verwendung <strong>bisher</strong> <strong>nicht</strong> registrierter<br />

Weidenklone <strong>und</strong> –sorten<br />

Karl <strong>Gebhardt</strong><br />

Internetseite:<br />

www.weidenzuechtung.de<br />

FKZ: 22012409, PT-FNR<br />

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Nordwestdeutsche<br />

Forstliche Versuchsanstalt<br />

Abt. Waldgenressourcen


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Naturpopulationen von Weiden an der Weser<br />

S. alba<br />

S. fragilis<br />

Weidenzüchtung – Karl <strong>Gebhardt</strong><br />

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S. alba, Alter: 46, BHD: 60 cm<br />

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Wuchsform von baumartigen Weiden<br />

im Auwald<br />

bei Mini-Rotation<br />

Alter der Wurzel: 47<br />

2-3jh. Rückschnitt<br />

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bei Midi-Rotation<br />

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Alter der Wurzel: 35<br />

Aufwuchs 5jh. BHD: 16 cm


Auswahl der Kreuzungseltern<br />

5/76 [Si69x62] - 147/63 [S. alba] 82/55 - 85/55 [S. viminalis]<br />

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Weidenzüchtung – Karl <strong>Gebhardt</strong>


Erzeugung von Weidenhybriden nach Kreuzungsplan 2010<br />

Austriebsvermögen.<br />

Biomasse<br />

Lange<br />

Vegetationszeit<br />

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Wurzelwachstum<br />

Salix viminalis<br />

„Korbweide“<br />

S. x hippophaefolia<br />

Salix triandra<br />

„Mandelweide“<br />

S. x helix<br />

S. x stipularis<br />

Salix purpurea<br />

„Purpurweide“<br />

S. x smithiana<br />

S. x digenea<br />

S. x dayclados<br />

„S. x aquatica“<br />

künstlicher Hybrid<br />

Salix daphnoides<br />

„Reifweide“<br />

S. x pontederana<br />

S. x wimmeriana<br />

S. x erdingeri<br />

Weidenzüchtung – Karl <strong>Gebhardt</strong><br />

Salix cinerea<br />

„Aschweide“<br />

S. x reichardtii<br />

Standorttoleranz<br />

Salix caprea<br />

„Salweide“<br />

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Poster_24: „Ökologisches Potential ..“ Fehrenz & <strong>Gebhardt</strong> (2011)<br />

Nässeverträglichkeit <br />

Trockentoleranz


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Reproduktionsbiologie<br />

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Probleme: ungleichmäßiges, <strong>nicht</strong>synchrones Erblühen,<br />

wenig Pollen, wenig / gar kein Fruchtansatz<br />

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Weidenzüchtung – Karl <strong>Gebhardt</strong>


Abhilfe / Besserung<br />

• Antherenentwicklung kontrollieren, Pollen frühzeitig gewinnen,<br />

kühllagern<br />

• jedes männliche Kätzchen nutzen (Pollenmenge)<br />

• Triebe mit weiblichen Blüten bewurzeln<br />

• wiederholte, isolierte Kreuzungen im Gewächshaus durchführen<br />

• alternativ freie Abblüten sammeln <strong>und</strong> zwar vor dem Platzen der<br />

Samenkapseln<br />

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Weidenzüchtung – Karl <strong>Gebhardt</strong>


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Erfolg <strong>und</strong> Mißerfolg<br />

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Hermaphrodite erlauben Selbstung<br />

Selbstung 16_63 (S. alba aus Casale)<br />

am 6.5.11<br />

Hermaphrodite 8_74 von S. Fehrenz mit<br />

Kennerblick entdeckt<br />

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Verbesserung der<br />

Keimungsbedingungen<br />

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Embryo rescue<br />

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Poster_29: „Erzeugung neuer Genotypen…“ Frühwacht-Wilms et al. 2011<br />

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Kryokonservierung von Saatgut<br />

in Flüssigstickstoff -196°C<br />

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Anzucht im Gewächshaus<br />

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gelenkte Kreuzungen: 21<br />

pikierte Pflanzen: 1210<br />

getopfte Pflanzen: 979<br />

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Züchtungserfolg 2009<br />

freie Abblüten: 48<br />

pikierte Pflanzen: 3586<br />

getopfte Pflanzen: 3059<br />

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Die potentiellen neuen Sorten aus 2009/2010<br />

Frosthärtetest 2011<br />

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10_72_78 vim x caprea<br />

S. X smithiana<br />

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10_78_49 vim x cinerea<br />

S. X holosericea<br />

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Herzlichen Dank an Fam. Bunk für die Pflanzenspenden S. caprea + S. cinerea<br />

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10_79_35 vim x daph 10_85_10 vim x sachalinensis<br />

S. x digena<br />

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10_114_40 ponte x caprea<br />

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10_107_07 x helix x daph


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Nach mehrfacher Subkultivierung<br />

werden<br />

genetisch stabile Linien<br />

selektiert, z.B.<br />

Colchizin-/Oryzalinierung<br />

vollständig tetraploide S. viminalis<br />

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Chimären mit 20-60 % tetraploiden Zellen<br />

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Poster_29: „Erzeugung neuer Genotypen“ von Frühwacht-Wilms et al. 2011


Flowcytometrie zeigt Ploidiestatus 2x bis 6x von<br />

Weidenarten <strong>und</strong> Arthybriden<br />

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siehe Poster_27:<br />

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„Ploidiestatus von Weiden“<br />

<strong>Gebhardt</strong> & Fehrenz (2011)


Triploide Weiden<br />

10_78_16 triploid 10_78_49 triploid 10_75_15 triploid<br />

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S. viminalis x cinerea S. viminalis x caprea<br />

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Allele Variation an Mikrosatelliten-Genorten erlaubt<br />

Klonidentifikation <strong>und</strong> Artunterscheidung<br />

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Methodenentwicklung an der Univ. Marburg, AG Naturschutzbiologie<br />

Poster_22: „DNA Mikrosatelliten…“ Ziegenhagen et al. 2011<br />

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Verbessertes Züchtungs- <strong>und</strong> Genbankmanagement<br />

mit Hilfe der Mikrosatelliten-Marker<br />

•Identifikation von Duplikaten<br />

•Berichtigung falsch etikettierter Klone<br />

•Abschätzung vorhandener Variation ex situ / in situ<br />

•Abschätzung des Verwandtschaftsgrades innerhalb einer Art<br />

•Bestimmung der Eltern/Abstammung (freie Abblüten)<br />

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Abstammung der Nachkommen einer frei abgeblühten S. viminalis im Salicetum<br />

♂ 301 172 357 23 118 18 18 301 348 348<br />

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Poster_26: „Abstammung ….“ <strong>Gebhardt</strong>, Mengel, Fehrenz, Ziegenhagen (2011)<br />

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Vorkommen von artspezifischen Mikrosatelliten-Allelen<br />

in Accessionen der Art Salix alba L.<br />

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Allele: typisch S. alba typisch S. fragilis typisch S. x rubens<br />

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Zuchtstrategie<br />

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Prinzip 1:<br />

Mindestleistungsselektion<br />

Prinzip 2:<br />

Sortenwertindex:<br />

Wg (Gesamtwert)<br />

=w1 x w2 x w3 ....<br />

x wk.<br />

Wertkoeffizienten als<br />

Prozente eines<br />

Zielwertes


Sortenvergleich mit 34 Klonen im Blockversuch<br />

3 Wiederholungen (N=2448), Standort „Ballertasche“ 150 x 50 cm<br />

(13.333 Pflz./ha)<br />

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16.04.2009<br />

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02.08.2011<br />

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Sortenversuch „Ballertasche“/ Höhenwuchs nach 2 Jh.<br />

Eingang_Nr Art Sorte<br />

97/63 Salix alba Liempde<br />

154/68 Salix alba Rokanje<br />

50/63 Salix alba ssp. Vitellina Vitellina<br />

92/55 Salix daphnoides<br />

83/64 Salix fragilis<br />

53/75 Salix malisi<br />

42/69 Salix viminalis<br />

NW09-X3 Salix triandra x S. viminalis) Inger<br />

84/55 Salix viminalis Ingeborg<br />

722/51 Salix viminalis Zieverich<br />

85/55 Salix viminalis Carmen<br />

6/87 Salix viminalis BFH<br />

NW09-X2<br />

(Salix vim. x S. schwerinii)<br />

x S. viminalis) Tordis<br />

305/64 Salix x alopecuroides Blechede<br />

57/57 Salix x aquatica Gigantea<br />

22/55 Salix x dasyclados x<br />

81/55 Salix x helix x<br />

259/64 Salix x smithiana a<br />

NW08-X1 Salix x smithiana Weide Nr. 6<br />

Alba-Gr<br />

Vim-Gr<br />

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S. viminalis<br />

S.x dasyclados<br />

S.x helix<br />

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Klone aus Hann. Münden getested in Gülzow (Dr. B. Boelcke)<br />

543 mm, lehmiger Sand, Mitteltemp. 8,2 °C –<br />

13.300 Stecklinge/ha, keine Düngung<br />

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Prüfung <strong>und</strong> Markteinführung neuer Sorten<br />

• Anforderung: 10 bis 16.000 Stecklinge pro Hektar<br />

• Schnelle Vermehrung zum Aufbau von Mutterquartieren erforderlich<br />

• bereits bewährte Sorten werden durch ein Warenzeichen<br />

geschützt (Beispiel: nwplus® „Zieverich original“ )<br />

• Kont. Vermehrung durch die Forstbaumschule Wolfgang (Hessen-Forst)<br />

• Sortenechtheit <strong>und</strong> –reinheit wird mit gen. Methoden kontrolliert<br />

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Massenvermehrung in vitro<br />

Werkvertrag mit Baumschulen Oberdorla GmbH<br />

Ziel: Bereitstellung von Steckhölzern für<br />

b<strong>und</strong>esweite Feldversuche<br />

Etablierung<br />

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<strong>Erprobung</strong> der Massenvermehrung<br />

in Hann. Münden<br />

50/63 S. alba vitellina<br />

150/63 S. x dasyclados 154/68 S. alba<br />

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6/87 S. viminalis 214/58 S. x rubens<br />

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81/55 S. x helix<br />

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Abhärtung/Überführung in Erde<br />

Schaumstoffsubstrat mit<br />

Flüssigdüngung<br />

Poster_25: „Mikrovermehrung<br />

von Weiden-Zuchtsorten“<br />

Frühwacht-Wilms et al. (2011)<br />

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verbesserte Eigenschaften:<br />

C-Sequestrierung, Photosynthese<br />

Dickenwachstum, Kambialaktivität<br />

Wurzelwachstum<br />

Blütenbildung <strong>und</strong>.Sterilität<br />

Austrieb/Blattfall/Photoperiode<br />

Holzqualität<br />

Insekten-, Rostresistenz<br />

Trockenheitstoleranz<br />

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Zuchtziele bei der Weidenzüchtung<br />

Genfunktionen/Key-Enzyme<br />

Ribulose-Bis-Phosphatase<br />

Cytokinin-Synthese<br />

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Invertase, Myo-Inositol-Pathway<br />

MADS-Box-Gene, FT-Gen<br />

Phytochrom/Abscissinsäure<br />

Cellulose-Synthase, Methyl-<br />

Hyxdroxl-Transferasen<br />

Resistenzgene, Phenylpropanoid-<br />

Stoffwechsel<br />

water use efficiency


•Wer hat die besten Gene ?<br />

•Welche Genstruktur ist für welche Phänotypen verantwortlich ?<br />

Ab 1.06.10 startete das Projekt:<br />

„SNP-Diagnose“ für die Entwicklung <strong>und</strong><br />

Nutzung leistungsbezogener alleler Marker<br />

In Zusammenarbeit mit dem vTI-Großhansdorf<br />

<strong>und</strong> der Univ. Marburg (Naturschutzbiologie)<br />

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Holzwerkstoffe<br />

MDF-/Spanplatte<br />

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Stoffliche <strong>und</strong> energetische Verwertung von<br />

verholzter Biomasse<br />

Zellstoff/Papier<br />

Holzbiomasse Chem. Rohstoff<br />

Energie<br />

Ethanol /Sunfuel/Holzfeuerung<br />

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Die chemische Industrie benötigt dringend Alternativen<br />

zu Öl <strong>und</strong> Gas als Rohstoff für die stoffliche Verwertung<br />

Versorgungssicherheit, Diversifizierung im Rohstoffsektor<br />

Umweltfre<strong>und</strong>lichkeit / CO2 -Reduktion<br />

Neue Rohstoffe (in def. Mengen) für neue Produkte<br />

Bioraffinerie<br />

Infra-Leuna<br />

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Ro<strong>und</strong>table: Rohholzversorgung von Bioraffinerien<br />

„Wünschbares <strong>und</strong> Machbares“<br />

Chem. Industrie<br />

Bioraffinerien<br />

Holztechnologie<br />

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Experten für<br />

Züchtung<br />

Projektplanungen mit Unterstützung der FNR<br />

Weidenzüchtung – Karl <strong>Gebhardt</strong><br />

Kurzumtrieb


Dankeschön dem Team für Weidenzüchtung<br />

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Vielen Dank der<br />

AG Naturschutzbiologie, Univ Marburg<br />

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