EVALUACIÓN in vitro DE LA EFICACIA DE BACTERICIDAS SOBRE ...

ISSN 0568-3076
agron. 19(1): 31 - 41, 2011
EVALUACIÓN in vitro DE LA EFICACIA DE BACTERICIDAS
SOBRE Pseudomonas sp. MIGULA, CAUSANTE DE LA MUERTE
DESCENDENTE DEL TOMATE DE ÁRBOL [Solanum betaceum
(CAV.) SENDT.]
Nathali López-Cardona* y Jairo Castaño-Zapata**
*Ing. Agr. Candidata a Magíster en Fitopatología. Universidad de Caldas. Correo electrónico: nathali.lopez.cardona@gmail.com
**Ph.D. Profesor Titular. Facultad de Ciencias Agropecuarias. Universidad de Caldas. Correo electrónico: jairo.castano_z@ucaldas.edu.co
ResUMeN
La Muerte descendente del tomate de árbol no ha sido
considerada como una enfermedad limitante en Colombia.
Sin embargo, en un estudio previo se identifi có la bacteria
Pseudomonas sp. como el agente causante de la Muerte
descendente, una enfermedad devastadora en huertos
comerciales de tomate de árbol en la granja Tesorito,
propiedad de la Universidad de Caldas, ubicada en la vereda
de Maltería, municipio de Manizales, Caldas. Los resultados
de las pruebas in vitro indicaron que la mezcla de Sulfato
de gentamicina + Clorhidrato de oxitetraciclina (Cumbre ®
WP), a una concentración de 800 ppm, inhibió totalmente
el crecimiento radial de Pseudomonas sp. En general, los
tratamientos a base de Sulfato de cobre + Cal agrícola
+ Mancozeb (Cuprofi x ® 30 WG) y Burkholderia cepacia
(Botrycid ® ), tuvieron una efi cacia estadísticamente similar
a la obtenida con Cumbre ® WP a 50 ppm, en un rango que
osciló entre 24 y 27%. El Hidróxido de cobre (Kocide ®
2000 WG) se comportó estadísticamente igual al control.
El Sulfato de gentamicina + Clorhidrato de oxitetraciclina
fueron altamente efectivos en la inhibición del crecimiento
radial de Pseudomonas sp., a una concentración de 800 ppm,
logrando el 100% de efi cacia.
Palabras clave: antibióticos, Burkholderia cepacia,
gentamicina, oxitetraciclina.
Recibido: 12 de mayo; aprobado: 30 de junio de 2011
aBstRaCt
in vitro evaLUatiON OF tHe eFFiCaCY OF
BaCteRiCiDes ON Pseudomonas sp. MiGULa,
CaUsaL aGeNt OF Die BaCK iN tOMatO
tRee [solanum betaceum (Cav.) seNDt.]
The dieback of tomato tree has not been considered as a
limiting disease in Colombia. However, a Pseudomonas sp.
bacterium was identifi ed in a recent study, as the agent
causing dieback, a devastating disease in commercial fi elds
of tomato tree at Universidad de Caldas, Tesorito farm
located in Maltería, municipality of Manizales, (Caldas).
The results of the in vitro testing indicated that the mixture
of Gentamicin sulphate +Chlorhydrate of oxytetracycline
(Cumbre ® WP), at an 800 ppm dose totally inhibited
the Pseudomonas sp. radial development. In general, the
treatments with Copper sulphate + Lime + Mancozeb
(Cuprofi x ® 30 WG), and Burkholderia cepacia (Botrycid ® ),
had an effi cacy statistically similar to the obtained with
Cumbre ® WP at 50 ppm, in a range between 24 and 27%.
The effect of Copper hydroxide (Kocide ® 2000 WG),
was statistically similar to the control. The mixture of
Gentamicin sulphate + Chlorhydrate of oxytetracycline
at a dose of 800 ppm inhibited 100% the development
of the bacterium.
Key words: antibiotics, Burkholderia cepacia, gentamicin,
oxytetracycline.

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Nathali López-Cardona y Jairo Castaño-Zapata
iNtRODUCCiÓN
Colombia posee una ventaja competitiva importante
para la producción de frutas exóticas, en el año 2007
ocupó el noveno puesto en el ámbito mundial y sus
exportaciones han presentado en los últimos tres años
un crecimiento promedio anual del 9%, pasando de
un valor exportado de $31 millones de dólares en
2005 a $36 millones de dólares en 2007. De estas
exportaciones, el 77% correspondieron a uchuva con
$25,6 millones de dólares, tomate de árbol con $1,4
millones de dólares y granadilla con $705 mil dólares
(Proexport, 2007).
El origen del tomate de árbol (S. betaceum) se localiza
en el margen oriental de la cordillera de los Andes,
exactamente entre Ecuador, Perú y Colombia, que
se destacan como los principales exportadores
hacia la comunidad europea; y desde el año 2006
hace parte de los trece frutales priorizados en la
Apuesta Exportadora Agropecuaria del Ministerio de
Agricultura y Desarrollo Rural (Sembramos, 2008).
Entre enero y agosto del 2008, las exportaciones
colombianas de tomate de árbol sumaron $1,2
millones de dólares, equivalentes a 499.881 kg de
fruta. Durante el 2007, las ventas internacionales de
esta fruta exótica llegaron a $1,4 millones de dólares,
representados en 641.136 kg, lo que representó un
crecimiento promedio anual del 12%, al pasar de $1,1
millones de dólares en el 2005, a $ 1,4 millones de
dólares en el 2007 (Legiscomex, 2008).
El auge del tomate de árbol en Colombia se ve
refl ejado en el aumento del área sembrada en el país.
Según cifras de la Encuesta Nacional Agropecuaria,
los cultivos de tomate de árbol ocupan un área de
11.647 ha, que se encuentran en los departamentos
de Antioquia, Boyacá, Caldas, Cauca, Cundinamarca,
Huila, Nariño, Norte de Santander, Risaralda,
Santander, Tolima y Valle del Cauca (CCI, 2009).
Es común observar que a medida que aumenta la
superfi cie sembrada de un cultivo, tal como el tomate
de árbol, se incrementa la presencia de enfermedades
ocasionadas por hongos, bacterias, virus y nematodos,
lo que se conoce como precio de la popularidad
varietal (Castaño-Zapata, 2002).
Las enfermedades más limitantes del cultivo en
Colombia son la Antracnosis de los frutos causada
por Colletotrichum gloeosporioides (Penz.) Penz. & Sacc
y Colletotrichum acutatum J.H. Simmonds, y la virosis
causada por el complejo Potato Y potyvirus y, Tamarillo
leaf malformation potyvirus como especie propuesta
(Ayala, 2009). Estas enfermedades causan pérdidas
drásticas e inmediatas, mientras que la Cenicilla,
causada por Oidium sp. Link., afecta el cultivo en
períodos secos y cálidos; y las endémicas como la
causada por nematodos del Nudo radical (Meloidogyne
sp. Goeldi) destruyen lentamente las plantaciones en
todas la zonas productoras (Tamayo, 2003).
La Muerte descendente causada por Pseudomonas sp.
no ha sido considerada como limitante en los cultivos
de tomate de árbol en Colombia. Sin embargo, en un
estudio previo realizado por los autores de este estudio
se logró aislar e identifi car la bacteria Pseudomonas
sp., agente causante de la Muerte descendente, una
enfermedad devastadora en huertos comerciales
de tomate de árbol en la granja Tesorito de la
Universidad de Caldas. Los síntomas ocasionados
por el patógeno (Figura 1) incluyen: secamiento de
ramas, tallos y pedúnculos, necrosamiento de botones
fl orales y brotes, y manchas cafés acuosas en hojas,
que pueden llegar a necrosar nervaduras secundarias
y la nervadura central.
El diagnóstico de las nuevas enfermedades que
pueden afectar el cultivo resulta indispensable para
planificar las estrategias del manejo que se va a
seguir. Por esta razón, es indispensable adelantar
investigaciones con productos químicos y biológicos
para el manejo de Pseudomonas sp., agente causante de
la Muerte descendente del tomate de árbol.
El objetivo de este trabajo fue evaluar in vitro la efi cacia
de tres bactericidas y Burkholderia cepacia Burkholder
para el manejo de Pseudomonas sp. Migula, causante de
la Muerte descendente del tomate de árbol.

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Evaluación in vitro de la efi cacia de bactericidas sobre Pseudomonas sp. Migula causante de la muerte descendente...
Figura 1. Síntomas típicos de la enfermedad en campo. A. Muerte descendente en ramas secundarias. B. Necrosamiento
de botones fl orales. C. Mancha acuosa en hoja, con necrosamiento de las nervaduras secundarias y principal
e inicio de muerte descendente en rama. D. Necrosamiento de pedúnculos. E. Necrosamiento de brote.
MateRiaLes Y MÉtODOs
Ubicación del experimento y aislamiento de
Pseudomonas sp.
Se colectaron ramas secundarias con síntomas de
Muerte descendente procedentes de un lote comercial
de tomate de árbol variedad Rojo común de 30
meses de edad. Las muestras se guardaron en bolsas
ziploc debidamente rotuladas con número de fecha,
hospedante, lote y número de planta, y fueron llevadas
al laboratorio de Fitopatología de la Facultad de
Ciencias Agropecuarias de la Universidad de Caldas.
Se cortaron trozos de tejido de aproximadamente
3 mm 2 , se desinfectaron con hipoclorito de sodio
al 5% durante 1 min, se lavaron en agua destilada
estéril y fueron transferidos a agar nutritivo, AN
(peptona 5 g/L, extracto de carne 4 g/L, agar 15
g/L) y se incubaron en oscuridad por 3 días al 25ºC
en una incubadora marca 1DiES modelo D53VU
(Castaño-Zapata & Del Río, 1997). Una vez se
obtuvo crecimiento bacteriano en el medio de cultivo,
la bacteria se re-aisló nuevamente en AN para su
purifi cación.
Pruebas in vitro
Se utilizó un bactericida sistémico: Sulfato de
gentamicina + Clorhidrato de oxitetraciclina
(sistémicos), y tres bactericidas protectantes:
Hidróxido de cobre, Sulfato de cobre + Cal agrícola
+ Mancozeb y Burkholderia cepacia. La descripción de
los productos se presenta en la Tabla 1.
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Nathali López-Cardona y Jairo Castaño-Zapata
tabla 1. Descripción de los productos usados en las pruebas in vitro.
Producto ingrediente activo
Cumbre ® WP
Sulfato de gentamicina (100 g i.a./kg) + Clorhidrato de
oxitetraciclina (300 g i.a./kg)
Kocide ® 2000 WG Hidróxido de cobre (53,8%)
Cuprofi x ® 30 WG
Sulfato de cobre + Cal agrícola (47,1%) + Mancozeb
(34,5%)
Botrycid ® Burkholderia cepacia: 1x108 (UFC/cm3 ).
técnica de inhibición zonal
Se utilizó la técnica de inhibición zonal propuesta
por Kelman et al. (1967), consistente en dispensar
20 mL de agar nutritivo por caja Petri de 9 cm de
diámetro, utilizados para proveer la capa basal. Una
vez solidifi cada esta capa, se agregaron 0,5 mL de
un cultivo bacteriano de 18 h de edad desarrollado
en caldo nutritivo (peptona 5 g/L, extracto de carne
4 g/L) al 1% de dextrosa, por cada 100 mL de agar
nutritivo previamente esterilizado cuando tenía una
temperatura del 35ºC.
Cuando fue necesario, se empleó el baño María
para bajar la temperatura del agar antes de la
homogenización con la bacteria. El agar con la
bacteria se agitó vigorosamente para distribuir las
células bacterianas, y se dispensaron 5 mL en la
capa basal solidifi cada; esta capa se denominó capa
de la semilla. Cada caja Petri preparada con ambas
capas fue refrigerada por una o dos horas hasta su
utilización.
Discos de papel fi ltro de 12 mm de diámetro se
sumergieron en diluciones de los productos en dosis
de 50, 100, 200, 400 y 800 ppm para Cumbre ® WP,
Kocide ® 2000 WG y Cuprofi x ® 30 WG, y 1,0., 1,5.,
2,0., 3,0., y 6,0 mL/100 mL de agua para Botrycid ® .
Cada disco fue contactado dos veces con la pared
del frasco que contenía la solución del producto,
para eliminar el exceso. Cada disco impregnado fue
colocado en el centro cada caja Petri, las cuales se
incubaron a 27ºC por 24 h en una incubadora marca
1DiES modelo D53VU. Después de este tiempo,
se determinó: rango de inhibición (mm), área de
inhibición (cm 2 ) y efi cacia (%) de cada producto,
mediante la siguiente fórmula:
Donde:
E = Porcentaje (%) de efi cacia del producto,
RDI Tto = Rango de inhibición obtenido por
tratamiento, y
RDI Máx = Máximo rango de inhibición obtenido en
el mejor tratamiento.
análisis estadístico
A los datos del rango de inhibición por tratamiento
se les realizó análisis de varianza y se realizó la prueba
de comparación de rangos múltiples de Duncan
mediante el programa Statgraphics plus 5.1. Los
valores de rango de inhibición para los tratamientos
a base de Cumbre ® WP fueron ajustados a un modelo
de regresión lineal.
Se realizaron 20 tratamientos con cinco replicas cada
uno, para un total de 100 observaciones (Tabla 2).

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Evaluación in vitro de la efi cacia de bactericidas sobre Pseudomonas sp. Migula causante de la muerte descendente...
tabla 2. Descripción de los tratamientos.
tratamiento*
Producto y Dosis
[ppm (= mg/L)] o mL/100 mL
1 Cumbre ® WP 50
2 Cumbre ® WP 100
3 Cumbre ® WP 200
4 Cumbre ® WP 400
5 Cumbre ® WP 800
6 Kocide ® 2000 WG 50
7 Kocide ® 2000 WG 100
8 Kocide ® 2000 WG 200
9 Kocide ® 2000 WG 400
10 Kocide ® 2000 WG 800
11 Cuprofi x ® 30 WG 50
12 Cuprofi x ® 30 WG 100
13 Cuprofi x ® 30 WG 200
14 Cuprofi x 30 WG 400
15 Cuprofi x ® 30 WG 800
16 Botrycid ® 1,0
17 Botrycid ® 1,5
18 Botrycid ® 2,0
19 Botrycid ® 3,0
20 Botrycid ® 6,0
Control Agua destilada estéril
*Todos los productos fueron diluidos en agua destilada estéril.
ResULtaDOs Y DisCUsiÓN
técnica de inhibición zonal
El análisis de varianza realizado para el rango
de inhibición por tratamiento indicó diferencias
altamente significativas entre los tratamientos
evaluados (P-valor < Cociente- F) con un nivel de
confi anza del 95% (Tabla 3).
La prueba de rangos múltiples de Duncan permitió
determinar a Cumbre ® WP en dosis de 800 ppm,
como el mejor tratamiento para el control in vitro
ingrediente activo
Sulfato de gentamicina + Clorhidrato de oxitetraciclina
Hidróxido de cobre
Sulfato de cobre + Cal agrícola + Mancozeb
Burkholderia cepacia
de Pseudomonas sp. Este tratamiento inhibió el
crecimiento de la bacteria en un área de 61,57 cm 2
(radio de 14 mm) comparado con el control. En
general, las dosis de 400, 200 y 100 ppm de Cumbre ®
WP tuvieron rangos de inhibición altos con 10,6,
8,8 y 4,6 mm, respectivamente, teniendo diferencias
altamente signifi cativas con el control. Botrycid ® en
dosis de 6,0 mL/100 mL, obtuvo un mayor radio de
inhibición que el tratamiento a base de Cumbre ® WP
a 50 ppm, el cual se comportó estadísticamente igual
a Cuprofi x ® 30 WG en 400 y 800 ppm, y Botrycid ®
a 1,5 mL/100 mL. Kocide ® 2000 WG se comportó
estadísticamente igual al control (Tabla 4, Figura 2).
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Nathali López-Cardona y Jairo Castaño-Zapata
tabla 3. Análisis de varianza para el rango de inhibición del crecimiento de Pseudomonas sp. en in vitro
obtenido por tratamiento.
Fuente suma de Cuadrados
Grados de
Libertad
Cuadrado Medio Cociente-F P-valor
Entre grupos 1566,23 20 78,3114 186,88 0,00000
Intragrupos 35,2 84 0,419048
Total (Corregido) 1601,43 104
Cumbre ® WP es un producto sistémico cuyo
ingrediente activo es Sulfato de gentamicina +
Clorhidrato de oxitetraciclina, dos antibióticos
que son ampliamente usados para el control de
Pseudomonas y otras bacterias fitopatógenas en
varios sistemas de cultivo (Gnanamanick, 2006). El
primero ha sido usado para disminuir poblaciones
de especies de Erwinia Winslow et al., Pectobacterium
Waldee, Pseudomonas, Ralstonia Yabuuchi et al. y
Xanthomonas Dowson; el segundo es usado para
controlar Erwinia amylovora (Burrill) Winslow et al.,
en cultivos de manzano en México (McManus et al.,
2002). Los derivados de la tetraciclina (oxitetraciclina)
son los únicos antibióticos que pueden ser usados
internamente en plantas, como inyecciones al tronco
(Agrios, 2005), pero la inyección de tetraciclina solo es
práctica en términos económicos, cuando la especie
de planta a la que va dirigido el tratamiento es de alto
valor comercial (McManus, 2000).
La oxitetraciclina tiene un efecto bacteriostático y es
menos efectiva que la estreptomicina, que tiene efecto
bactericida (McManus & Jones, 1994), pero esta es
más efectiva cuando se aplica para el manejo de cepas
bacterianas que son resistentes a la estreptomicina. La
resistencia a antibióticos en bacterias fi topatógenas
surgió en 1960, unos pocos años después del uso de
la estreptomicina en la agricultura (Jones, 1982; Burr
et al., 1990).
Vidaver (2002) recomienda el uso de oxitetraciclina
a concentraciones entre 150 y 200 ppm (150 y 200
mg.mL -1 , respectivamente) para realizar aplicaciones
en peral contra E. amylovora. El rango de inhibición
obtenido con Cumbre ® WP a 200 ppm mostró
ser estadísticamente diferente al control en este
experimento, pero no fue el mejor tratamiento para
el control de Pseudomonas sp. (Tabla 4).
El hecho de que no se obtuviera éxito en la inhibición
del crecimiento de Pseudomonas sp., con Hidróxido
de cobre (Kocide ® 2000 WG), da a entender que el
aislamiento bacteriano analizado en este estudio sea
una cepa resistente al cobre. Los compuestos a base
de cobre han sido usados a gran escala para el manejo
de enfermedades bacterianas en vegetales y frutales.
El cobre es un potente bactericida que actúa dañando
las membranas y proteínas de las bacterias y puede
retardar o inhibir su multiplicación. Sin embargo, la
efi cacia de las aplicaciones de cobre para el manejo
de enfermedades bacterianas ha sido variable y
es a menudo asociada con la ocurrencia de cepas
tolerantes al cobre (Cooksey, 1990; Marco & Stall,
1983; Romeiro, 1995). La resistencia al cobre ha sido
detectada y caracterizada en especies de Xanthomonas y
Pseudomonas: por ejemplo, en X. campestris pv. vesicatoria
(Doidge) Dye (Carmo et al., 2001; Aguiar et al., 2003) y
en Pseudomonas syringae pv. tomato Young Dye & Wilkie
(Okabe, 1933).
Los resultados del rango de inhibición del crecimiento
de Pseudomonas sp. para los tratamientos con Cumbre ®
WP, se ajustaron a un modelo de regresión lineal (Y=
2,72x + 0,12) (Figura 2), y el modelo logró explicar
el comportamiento de los datos en un 97,7%. De
esta forma, se pudo determinar que a medida que
aumenta la concentración del ingrediente activo, en
este caso, Sulfato de gentamicina + Clorhidrato de

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oxitetraciclina, aumenta el rango de inhibición del
crecimiento de la bacteria en condiciones in vitro.
En términos de la efi cacia, Cumbre ® WP fue el
producto más efectivo (Figuras 3, 4) y alcanzó una
efi ciencia del 100, 76, 63, 33 y 24 % en las dosis de
800, 400, 200, 100 y 50 ppm del ingrediente activo,
respectivamente. Kocide ® 2000 WG, Cuprofi x ® 30
WG y Botrycid ® tuvieron un comportamiento similar
al obtenido con Cumbre ® WP a 50 ppm, en un rango
que osciló entre 24 y 27% de efi ciencia.
tabla 4. Rango de inhibición del crecimiento de Pseudomonas sp. en condiciones in vitro por un
bactericida sistémico: Sulfato de gentamicina + Clorhidrato de oxitetraciclina (Cumbre ® WP), y
tres bactericidas protectantes: Hidróxido de cobre (Kocide ® 2000 WG), Sulfato de cobre + Cal
agrícola + Mancozeb (Cuprofi x ® 30 WG) y Burkholderia cepacia (Botrycid ® )
tratamiento
[ppm (= mg/L)] ó mL/100 mL
RDi* (mm) aDi** (cm2 )
Botrycid ® 2,0 0,00 g 0,00
Cuprofi x ® 30 WG 100 0,00 g 0,00
Kocide ® 2000 WG 100 0,00 g 0,00
Kocide ® 2000 WG 800 0,00 g 0,00
Control 0,00 g 0,00
Kocide ® 2000 WG 50 0,00 g 0,00
Kocide ® 2000 WG 400 0,00 g 0,00
Botrycid ® 3,0 0,00 g 0,00
Kocide ® 2000 WG 200 0,00 g 0,00
Botrycid ® 1,0 0,00 g 0,00
Curprofi x ® 30 WG 50 0,00 g 0,00
Cuprofi x ® 30 WG 200 2,60 f 2,12
Curpofi x ® 30 WG 400 3,00 ef 2,83
Botrycid ® 1,5 3,00 ef 2,83
Cuprofi x ® 30 WG 800 3,20 ef 3,22
Cumbre ® WP 50 3,40 ef 3,63
Botrycid ® 6,0 3,80 de 4,54
Cumbre ® WP 100 4,60 de 6,65
Cumbre ® WP 200 8,80 c 24,33
Cumbre ® WP 400 10,60 b 35,30
Cumbre ® WP 800 14,00 a 61,58
Letras diferentes denotan diferencias estadísticas como resultado de la prueba de Duncan.
*/RDI: Rango de inhibición. Valores promedio de cinco repeticiones obtenidos por Duncan.
**/ADI: Área de inhibición.
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Rango de Inhibición (mm)
16
14
12
10
8
6
4
2
0
y = 2,72x + 0,12
R² = 0,977
50 100 200 400 800
Dosis (ppm/L)
Kocide Cumbre Cuprofix
Botrycid Control Lineal (Cumbre)
Figura 2. Rango de inhibición del crecimiento de Pseudomonas sp. en condiciones in vitro por un bactericida sistémico:
Sulfato de gentamicina + Clorhidrato de oxitetraciclina (Cumbre ® WP), y tres bactericidas protectantes:
Hidróxido de cobre (Kocide ® 2000 WG), Sulfato de cobre + Cal agrícola + Mancozeb (Cuprofi x ® 30
WG) y Burkholderia cepacia (Botrycid ® ). Modelo de regresión lineal ajustado para Cumbre ® WP.
Eficacia del producto (%)
120
100
80
60
40
20
0
c
b
a
d de
ef
ef ef ef
f
Kocide® Cumbre® Cuprofix® Botrycid® Control
Productos
50 ppm 100 ppm 200 ppm 400 ppm 800 ppm
Figura 3. Porcentaje de efi ciencia cuatro bactericidas para el control de Pseudomonas sp. en condiciones in vitro.

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Evaluación in vitro de la efi cacia de bactericidas sobre Pseudomonas sp. Migula causante de la muerte descendente...
Figura 4. Rangos de inhibición obtenidos con Cumbre ® WP. A. 50 ppm. B. 100 ppm.
C. 200 ppm. D. 400 ppm. E. 800 ppm. F. Control. Las fl echas denotan la
amplitud de cada rango de inhibición del crecimiento de Pseudomonas sp.
CONCLUsiONes
El Sulfato de gentamicina + Clorhidrato de
oxitetraciclina (Cumbre ® WP) fueron altamente
efectivos en la inhibición del crecimiento radial de
Pseudomonas sp., a una concentración de 800 ppm y
logró el 100% de efi cacia.
Con el propósito de comprobar la efectividad
obtenida con este bactericida sobre Pseudomonas
sp. en condiciones in vitro, se recomienda realizar
evaluaciones en condiciones de campo.
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