02.03.2014 Views

Contenido en alcaloides en semillas de poblaciones naturales ... - Inia

Contenido en alcaloides en semillas de poblaciones naturales ... - Inia

Contenido en alcaloides en semillas de poblaciones naturales ... - Inia

SHOW MORE
SHOW LESS

Create successful ePaper yourself

Turn your PDF publications into a flip-book with our unique Google optimized e-Paper software.

<strong>Cont<strong>en</strong>ido</strong> <strong>en</strong> <strong>alcaloi<strong>de</strong>s</strong> <strong>en</strong> <strong>semillas</strong> <strong>de</strong> <strong>poblaciones</strong> <strong>naturales</strong><br />

<strong>de</strong> raigrás inglés <strong>de</strong>l norte <strong>de</strong> España infectadas con los hongos<br />

<strong>en</strong>dofitos Neotyphodium<br />

J.A. Oliveira * 1 , G.E. Rottinghaus 2 , C. Prego 3 , E. González 3<br />

1 Dpto. <strong>de</strong> Biología <strong>de</strong> Organismos y Sistemas, Área <strong>de</strong> Producción Vegetal, Universidad <strong>de</strong> Oviedo,<br />

C/Catedrático Rodrigo Uría s/n, 33071 Oviedo, España<br />

2 Veterinary Medical Diagnostic Lab, College of Veterinary Medicine University of Missouri,<br />

Columbia, Estados Unidos<br />

3 C<strong>en</strong>tro <strong>de</strong> Investigaciones Agrarias <strong>de</strong> Mabegondo, Apdo. 10, 15080 A Coruña, España<br />

oliveira@correo.uniovi.es<br />

RESUMEN<br />

Se analizó el cont<strong>en</strong>ido <strong>en</strong> los <strong>alcaloi<strong>de</strong>s</strong> lolitr<strong>en</strong>o B y ergovalina <strong>en</strong> <strong>semillas</strong> <strong>de</strong> 21 <strong>poblaciones</strong> <strong>naturales</strong><br />

<strong>de</strong> raigrás inglés (Lolium per<strong>en</strong>ne L.) <strong>de</strong>l norte <strong>de</strong> España, infectadas con los hongos <strong>en</strong>dofitos Neotyphodium.<br />

El nivel <strong>de</strong> infección medio fue <strong>de</strong> 40,1 %, variando <strong>de</strong>s<strong>de</strong> el 8 al 80 %, estando el 62 % <strong>de</strong> las <strong>poblaciones</strong> por<br />

<strong>de</strong>bajo <strong>de</strong>l nivel <strong>de</strong>l 50 % <strong>de</strong> infección. El cont<strong>en</strong>ido medio <strong>de</strong>l alcaloi<strong>de</strong> lolitr<strong>en</strong>o B fue <strong>de</strong> 1,1 ppm, variando <strong>de</strong><br />

0,0 a 7,1 ppm, mi<strong>en</strong>tras que el cont<strong>en</strong>ido medio <strong>de</strong>l alcaloi<strong>de</strong> ergovalina fue <strong>de</strong> 13,5 ppm, variando <strong>de</strong> 1,0 a 36,2<br />

ppm. Se estudiaron las relaciones <strong>en</strong>tre el nivel <strong>de</strong> infección y el cont<strong>en</strong>ido <strong>en</strong> <strong>alcaloi<strong>de</strong>s</strong> mediante las correlaciones<br />

<strong>de</strong> Spearman. Se <strong>en</strong>contraron correlaciones estadísticam<strong>en</strong>te significativas <strong>en</strong>tre el porc<strong>en</strong>taje <strong>de</strong> infección<br />

y el cont<strong>en</strong>ido <strong>en</strong> ergovalina (r = 0,59) a un nivel <strong>de</strong> significación <strong>de</strong>l 1 %. Las conc<strong>en</strong>traciones más altas<br />

<strong>de</strong> lolitr<strong>en</strong>o By<strong>de</strong>ergovalina se consi<strong>de</strong>ran sufici<strong>en</strong>tes para inducir los síndromes <strong>de</strong>l «ryegrass staggers» y la<br />

«festucosis», pero <strong>de</strong>bido a la diversidad <strong>de</strong> especies prat<strong>en</strong>ses <strong>en</strong> los prados <strong>naturales</strong> <strong>de</strong>l norte <strong>de</strong> España es<br />

poco probable que aparezcan estos <strong>de</strong>sórd<strong>en</strong>es. Sin embargo, <strong>en</strong> pastos con gran abundancia <strong>de</strong> raigrás inglés infectado<br />

con hongos <strong>en</strong>dofitos sería conv<strong>en</strong>i<strong>en</strong>te evitar que el ganado pastase las plantas espigadas, <strong>de</strong>bido a que<br />

es <strong>en</strong> las <strong>semillas</strong> don<strong>de</strong> las conc<strong>en</strong>traciones <strong>de</strong> <strong>alcaloi<strong>de</strong>s</strong> son más altas.<br />

Palabras clave: ergovalina, lolitr<strong>en</strong>o B, prados <strong>naturales</strong>, Lolium per<strong>en</strong>ne.<br />

* Autor para correspond<strong>en</strong>cia<br />

Recibido: 15-6-01<br />

Aceptado para su publicación: 1-2-02<br />

Invest. Agr.: Prod. Prot. Veg. Vol. 17 (2), 2002


248 J.A. OLIVEIRA et al.<br />

INTRODUCCIÓN<br />

El raigrás inglés (Lolium per<strong>en</strong>ne L.) pue<strong>de</strong> albergar hongos <strong>en</strong>dofitos que pert<strong>en</strong>ec<strong>en</strong><br />

a los géneros Epichloë y Neotyphodium (Christ<strong>en</strong>s<strong>en</strong> et al., 1993; Schardl, 1996). Las<br />

plantas <strong>de</strong> raigrás inglés infectadas por Neotyphodium (Gl<strong>en</strong>n et al., 1996) no pres<strong>en</strong>tan<br />

ningún síntoma y el hongo se transmite verticalm<strong>en</strong>te por semilla (Neil, 1941). El hongo<br />

<strong>en</strong>dofítico Epichloë typhina (White, 1987) <strong>en</strong> Lolium <strong>de</strong>sarrolla un collar <strong>de</strong> micelio fúngico<br />

<strong>en</strong> el espigado <strong>de</strong> la planta, lo que impi<strong>de</strong> la emerg<strong>en</strong>cia <strong>de</strong> la espiga, esterilizando la<br />

planta.<br />

La relación <strong>en</strong>tre el hongo y la planta se consi<strong>de</strong>ra mutualística (Clay, 1986). Por otra<br />

parte, la infección con el hongo se ha mostrado que aum<strong>en</strong>ta el valor adaptativo <strong>de</strong> la<br />

planta <strong>de</strong>bido a una mayor tolerancia a la sequía (West et al., 1993), a insectos y nematodos<br />

(Latch, 1993). Los efectos <strong>de</strong>l <strong>en</strong>dofito, tanto <strong>en</strong> el comportami<strong>en</strong>to <strong>de</strong> la planta como<br />

<strong>en</strong> la producción animal, están influidos por una serie <strong>de</strong> metabolitos secundarios, incluy<strong>en</strong>do<br />

difer<strong>en</strong>tes <strong>alcaloi<strong>de</strong>s</strong> tóxicos producidos por la interacción planta-hongo. Christ<strong>en</strong>s<strong>en</strong><br />

et al. (1993) mostraron una gran variabilidad <strong>en</strong> la naturaleza y producción <strong>de</strong> estos<br />

metabolitos secundarios por difer<strong>en</strong>tes cepas <strong>de</strong> <strong>en</strong>dofitos.<br />

La parálisis <strong>de</strong>l raigrás («ryegrass staggers») es una intoxicación <strong>de</strong>l ganado, especialm<strong>en</strong>te<br />

<strong>en</strong> Nueva Zelanda, <strong>de</strong>bida a la pres<strong>en</strong>cia <strong>de</strong> Neotyphodium lolii <strong>en</strong> las plantas<br />

<strong>de</strong> raigrás consumidas. Esta <strong>en</strong>fermedad está causada por el lolitr<strong>en</strong>o B, una neurotoxina<br />

sintetizada por el <strong>en</strong>dofito <strong>en</strong> raigrás inglés (Fletcher et al., 1993). Este síndrome está caracterizado<br />

por una función neuromuscular reducida, temblores <strong>en</strong> el cuello y miembros,<br />

ganancias <strong>de</strong> peso reducidas y problemas reproductivos <strong>de</strong>bidos a niveles <strong>de</strong> la hormona<br />

prolactina bajos (Thompson y Stuedmann, 1993; Val<strong>en</strong>tine et al., 1993). Reci<strong>en</strong>tem<strong>en</strong>te<br />

se han <strong>de</strong>scrito casos <strong>de</strong> esta intoxicación <strong>en</strong> ovejas, ganado vacuno y caballos <strong>en</strong> Alemania,<br />

Holanda y el Reino Unido (Lewis, 1997).<br />

Los <strong>alcaloi<strong>de</strong>s</strong> ergopeptínicos se produc<strong>en</strong> también <strong>en</strong> raigrás inglés infectado por<br />

hongos <strong>en</strong>dofitos (Rowan y Shaw, 1987). De estos compuestos la ergovalina está reconocida<br />

como el más importante <strong>en</strong> el raigrás. Este alcaloi<strong>de</strong> ti<strong>en</strong>e efectos complejos <strong>en</strong> los<br />

animales <strong>en</strong> pastoreo, <strong>en</strong>tre los que la vasoconstricción y el aum<strong>en</strong>to <strong>de</strong> temperatura corporal<br />

son los más claros. Otros efectos incluy<strong>en</strong> una disminución <strong>de</strong> la ganancia <strong>de</strong> peso y<br />

problemas reproductivos. Este conjunto <strong>de</strong> síntomas se d<strong>en</strong>omina «festucosis» por haberse<br />

<strong>de</strong>tectado primero <strong>en</strong> ganado pastando plantas <strong>de</strong> festuca infectadas por hongos <strong>en</strong>dofitos.<br />

En la actualidad se sospecha que hay una interacción <strong>de</strong> los efectos <strong>de</strong> la ergovalina y<br />

el lolitr<strong>en</strong>o B <strong>en</strong> el agravami<strong>en</strong>to <strong>de</strong>l «ryegrass staggers» (Fletcher, 1999). Este síndrome<br />

se ha <strong>de</strong>scrito esporádicam<strong>en</strong>te <strong>en</strong> Francia (Bony et al., 1996) <strong>en</strong> novillas pastando pra<strong>de</strong>ras<br />

viejas <strong>de</strong> festuca alta.<br />

Los <strong>alcaloi<strong>de</strong>s</strong> lolitr<strong>en</strong>o B y ergovalina están conc<strong>en</strong>trados <strong>en</strong> los 20-40 mm <strong>de</strong>l pasto<br />

más cercanos al suelo, notablem<strong>en</strong>te <strong>en</strong> las vainas foliares más viejas y también <strong>en</strong> los tallos<br />

y espigas, aum<strong>en</strong>tando mucho su conc<strong>en</strong>tración con temperaturas ambi<strong>en</strong>tes y humeda<strong>de</strong>s<br />

relativas altas y <strong>en</strong> el mom<strong>en</strong>to <strong>de</strong> producción <strong>de</strong> <strong>semillas</strong> por parte <strong>de</strong> la planta<br />

(Hamilton-Manns y Crothers, 1999).<br />

En España, como <strong>en</strong> otros países europeos, la infección <strong>en</strong> <strong>poblaciones</strong> <strong>naturales</strong> <strong>de</strong><br />

raigrás inglés con el hongo <strong>en</strong>dofito es amplia y común (Lewis et al., 1997; Oliveira y<br />

Castro, 1998; Plaza et al., 2001). A pesar <strong>de</strong> ello, <strong>en</strong> Europa, la información sobre la producción<br />

<strong>de</strong> <strong>alcaloi<strong>de</strong>s</strong> <strong>en</strong> raigrás inglés es escasa. Ol<strong>de</strong>mburg (1997) <strong>en</strong>contró una variación<br />

estacional <strong>en</strong> lolitr<strong>en</strong>o B <strong>en</strong> hierba <strong>de</strong> ecotipos alemanes <strong>de</strong> raigrás inglés infectados,


ALCALOIDES EN SEMILLAS DE RAIGRÁS INGLÉS 249<br />

<strong>de</strong>s<strong>de</strong> 1993 a 1996. Los valores más altos, 0,8 a 1,4 ppm, se obtuvieron durante los meses<br />

<strong>de</strong> julio y agosto. En España, Oliveira et al. (1997, 2000) <strong>en</strong>contraron valores bajos <strong>de</strong> ergovalina<br />

<strong>en</strong> hierba <strong>de</strong> material <strong>de</strong> mejora <strong>de</strong> raigrás inglés <strong>en</strong> el invierno y valores medios<br />

<strong>de</strong> 1,6 ppm <strong>de</strong> lolitr<strong>en</strong>o B y <strong>de</strong> 5,9 ppm <strong>de</strong> ergovalina <strong>en</strong> <strong>semillas</strong> <strong>de</strong> <strong>poblaciones</strong> <strong>de</strong> raigrás<br />

inglés multiplicadas <strong>en</strong> el C<strong>en</strong>tro <strong>de</strong> Investigaciones Agrarias <strong>de</strong> Mabegondo.<br />

En este trabajo se muestran resultados <strong>de</strong> las conc<strong>en</strong>traciones <strong>de</strong> los <strong>alcaloi<strong>de</strong>s</strong> lolitr<strong>en</strong>o<br />

B y ergovalina <strong>en</strong> muestras <strong>de</strong> <strong>semillas</strong> <strong>de</strong> raigrás inglés recogidas <strong>en</strong> 21 zonas <strong>de</strong>l norte<br />

<strong>de</strong> España y la relación <strong>en</strong>tre el porc<strong>en</strong>taje <strong>de</strong> infección y el cont<strong>en</strong>ido <strong>en</strong> <strong>alcaloi<strong>de</strong>s</strong>.<br />

MATERIAL Y MÉTODOS<br />

En una muestra <strong>de</strong> <strong>semillas</strong> <strong>de</strong> 21 <strong>poblaciones</strong> <strong>naturales</strong> <strong>de</strong> raigrás inglés recogidas <strong>en</strong><br />

el norte <strong>de</strong> España se <strong>de</strong>terminó la pres<strong>en</strong>cia <strong>de</strong> hifas <strong>de</strong> hongos <strong>en</strong>dofitos Neotyphodium.<br />

Las muestras se recogieron <strong>en</strong> el verano <strong>de</strong> 1997. En cada uno <strong>de</strong> los 21 lugares <strong>de</strong> recogida<br />

(Tabla 1) se tomaron <strong>semillas</strong> <strong>de</strong> al m<strong>en</strong>os 50 plantas <strong>en</strong> una zona ecológicam<strong>en</strong>te<br />

homogénea <strong>de</strong> 100-1.000 m 2 . Según Tyler (1987), estas condiciones se supone que permit<strong>en</strong><br />

obt<strong>en</strong>er una muestra <strong>de</strong> <strong>semillas</strong> repres<strong>en</strong>tativas <strong>de</strong> la población original. Las <strong>semillas</strong><br />

<strong>de</strong> todas las plantas se mezclaron <strong>en</strong> cada lugar <strong>de</strong> recogida y se almac<strong>en</strong>aron <strong>en</strong> botes<br />

Tabla 1<br />

Orig<strong>en</strong>, altitud y tipo <strong>de</strong> hábitat <strong>de</strong> las 21 muestras <strong>de</strong> <strong>semillas</strong> <strong>de</strong> raigrás inglés<br />

recogidas <strong>en</strong> el norte <strong>de</strong> España<br />

Código Orig<strong>en</strong> Altitud (m) Hábitat<br />

1 Argelaguer (Girona) 150 Prado<br />

2 Seo <strong>de</strong> Urgel (Lleida) 700 Terr<strong>en</strong>o inculto<br />

3 Ariniz (Vitoria) 500 Camino<br />

4 Grado (Asturias) 60 Bor<strong>de</strong> carretera<br />

5 Teverga (Asturias) 600 Camino<br />

6 Barrios <strong>de</strong> Luna (León) 1.100 Bor<strong>de</strong> carretera<br />

7 Barrios <strong>de</strong> Luna (León) 1.100 Prado<br />

8 S<strong>en</strong>a <strong>de</strong> Luna (León) 1.100 Camino<br />

9 Pobladura <strong>de</strong> Luna (León) 1.150 Camino<br />

10 Rabanal <strong>de</strong> Luna (León) 1.150 Camino<br />

11 La Magdal<strong>en</strong>a (León) 1.150 Bor<strong>de</strong> carretera<br />

12 Ponferrada (León) 400 Camino<br />

13 Cariño (A Coruña) 20 Terr<strong>en</strong>o inculto<br />

14 El V<strong>en</strong>torrillo (A Coruña) 100 Terr<strong>en</strong>o inculto<br />

15 Ronda <strong>de</strong> Nelle (A Coruña) 30 Terr<strong>en</strong>o inculto<br />

16 Louro (A Coruña) 40 Terr<strong>en</strong>o inculto<br />

17 Canabal (Lugo) 400 Terr<strong>en</strong>o inculto<br />

18 Rodicio (Our<strong>en</strong>se) 950 Terr<strong>en</strong>o inculto<br />

19 Ribadumia (Pontevedra) 30 Camino<br />

20 Ponte-Cal<strong>de</strong>las (Pontevedra) 500 Terr<strong>en</strong>o inculto<br />

21 La Lanzada (Pontevedra) 20 Terr<strong>en</strong>o inculto<br />

Invest. Agr.: Prod. Prot. Veg. Vol. 17 (2), 2002


250 J.A. OLIVEIRA et al.<br />

herméticos <strong>de</strong> cristal <strong>en</strong> una cámara <strong>de</strong> conservación a 4 C y una humedad relativa <strong>de</strong><br />

45-50 % para evitar la pérdida <strong>de</strong> viabilidad <strong>de</strong>l hongo <strong>en</strong>dofito. Ci<strong>en</strong> <strong>semillas</strong> por cada<br />

lugar <strong>de</strong> recogida se sumergieron <strong>en</strong> una solución <strong>de</strong> NaOH (1,25 M) durante 16 horas, se<br />

escurrieron con agua <strong>de</strong>l grifo <strong>en</strong> un colador, se les quitaron las cubiertas <strong>de</strong> las <strong>semillas</strong>,<br />

y se colorearon con el colorante azul <strong>de</strong> anilina (5 g/L). Finalm<strong>en</strong>te se colocaron <strong>en</strong> un<br />

portaobjetos y se aplastaron ligeram<strong>en</strong>te con un cubreobjetos (Latch et al., 1987). En cada<br />

preparación se observó al microscopio (Zeiss con 100 aum<strong>en</strong>tos) la pres<strong>en</strong>cia <strong>de</strong> hifas <strong>en</strong><br />

la capa <strong>de</strong> aleurona <strong>de</strong> la semilla. No se <strong>de</strong>terminó la especie <strong>de</strong> estos hongos. El número<br />

<strong>de</strong> <strong>semillas</strong> cont<strong>en</strong>i<strong>en</strong>do hifas <strong>de</strong> los hongos <strong>en</strong>dofitos Neotyphodium se anotó como porc<strong>en</strong>taje<br />

<strong>de</strong> infección <strong>de</strong> la muestra (Hinton y Bacon, 1985).<br />

Con el fin <strong>de</strong> obt<strong>en</strong>er información <strong>de</strong> la máxima conc<strong>en</strong>tración <strong>de</strong> <strong>alcaloi<strong>de</strong>s</strong> producidos<br />

<strong>en</strong> las condiciones ecológicas <strong>de</strong>l norte <strong>de</strong> España, se tomaron las muestras <strong>de</strong> <strong>semillas</strong>,<br />

se molieron pasándolas por un tamiz <strong>de</strong> 1 mm <strong>de</strong> malla, se liofilizaron y se almac<strong>en</strong>aron<br />

<strong>en</strong> bolsas <strong>de</strong> plástico herméticas. En dichas muestras se analizó el cont<strong>en</strong>ido <strong>en</strong> ergovalina<br />

mediante una modificación <strong>de</strong>l método <strong>de</strong> Rottinghaus et al. (1991). En<br />

muestras <strong>de</strong> 5 g liofilizadas se realizó una extracción con cloroformo cont<strong>en</strong>i<strong>en</strong>do ergotamina<br />

como patrón interno. Las muestras se colocaron <strong>en</strong> un agitador durante una noche.<br />

Se añadió sodio sulfato y se volvieron a agitar durante treinta minutos más. Las muestras<br />

se filtraron y se tomaron 20 ml <strong>de</strong>l filtrado que se añadieron a una columna filtrante Ergosil,<br />

bajo vacío. Los pigm<strong>en</strong>tos se diluyeron con 3 ml <strong>de</strong> acetona:cloroformo (8:2) continuando<br />

con 3 ml <strong>de</strong> éter <strong>de</strong> petróleo anhidro. Los extractos obt<strong>en</strong>idos se diluyeron con 2<br />

ml <strong>de</strong> metanol y se cromatografiaron <strong>en</strong> un HPLC con <strong>de</strong>tección por fluoresc<strong>en</strong>cia (ex<br />

250 nm, em 420 nm). Los <strong>alcaloi<strong>de</strong>s</strong> se separaron mediante una columna <strong>de</strong> fase inversa<br />

Ph<strong>en</strong>om<strong>en</strong>ex Luna C18 (250 mm 4,6 mm, 5m) con una fase móvil <strong>de</strong> 36 % acetonitrilo<br />

<strong>en</strong> una solución <strong>de</strong> 200 mg/L <strong>de</strong> carbonato <strong>de</strong> amonio.<br />

El cont<strong>en</strong>ido <strong>en</strong> lolitr<strong>en</strong>o B se analizó mediante una modificación <strong>de</strong>l método <strong>de</strong> Gallagher<br />

et al. (1985). Se realizó una extracción <strong>en</strong> muestras <strong>de</strong> 0,2 g liofilizadas con 2 ml<br />

<strong>de</strong> cloroformo:metanol (2:1) <strong>de</strong>jándolas <strong>en</strong> un agitador durante una hora. La mezcla fue<br />

c<strong>en</strong>trifugada y1ml<strong>de</strong>lsobr<strong>en</strong>adante se conc<strong>en</strong>tró hasta <strong>de</strong>secación. El extracto se transfirió<br />

a un columna pequeña <strong>de</strong> gel <strong>de</strong> sílice (Porasil A) con cloruro <strong>de</strong> metil<strong>en</strong>o. La columna<br />

se lavó inicialm<strong>en</strong>te con 2 ml cloruro <strong>de</strong> metil<strong>en</strong>o:acetonitrilo (95:5) y el lolitr<strong>en</strong>o B se<br />

diluyó con 2 ml <strong>de</strong> cloruro <strong>de</strong> metil<strong>en</strong>o:acetonitrilo (80:20). El pigm<strong>en</strong>to restante se eliminó<br />

pasando el liquido a través <strong>de</strong> una columna M-224. Las muestras se cromatografiaron<br />

mediante HPLC con <strong>de</strong>tección por fluoresc<strong>en</strong>cia (ex 268 nm, em 440 nm). El lolitr<strong>en</strong>o B<br />

se separó <strong>en</strong> una columna <strong>en</strong> fase reversa Perkin Elmer (85 mm 4,6 mm, 3 m) con una<br />

fase móvil <strong>de</strong> cloruro <strong>de</strong> metil<strong>en</strong>o:acetonitrilo (92:8) a una velocidad <strong>de</strong> 1 ml/minuto. No<br />

se utilizaron réplicas <strong>de</strong> las muestras <strong>de</strong>bido a que se utilizó toda la semilla disponible <strong>en</strong><br />

cada análisis. La conc<strong>en</strong>tración <strong>de</strong> los <strong>alcaloi<strong>de</strong>s</strong> se expresó <strong>en</strong> ppm (miligramos <strong>de</strong>l alcaloi<strong>de</strong>/kilogramos<br />

<strong>de</strong> peso seco <strong>de</strong> semilla).<br />

Se calcularon correlaciones <strong>de</strong> Spearman <strong>en</strong>tre el porc<strong>en</strong>taje <strong>de</strong> infección y el cont<strong>en</strong>ido<br />

<strong>de</strong> los <strong>alcaloi<strong>de</strong>s</strong>.


ALCALOIDES EN SEMILLAS DE RAIGRÁS INGLÉS 251<br />

RESULTADOS<br />

La distribución geográfica y el tipo <strong>de</strong> hábitat <strong>de</strong> las muestras recogidas se muestran<br />

<strong>en</strong>laFig.1y<strong>en</strong>laTabla 1. Los lugares <strong>en</strong> los que se recogieron las muestras variaron<br />

<strong>de</strong>s<strong>de</strong> el nivel <strong>de</strong>l mar hasta los 1.150 m <strong>de</strong> altitud <strong>de</strong> tres muestras recogidas <strong>en</strong> la provincia<br />

<strong>de</strong> León. El 62 % <strong>de</strong> las muestras se recogieron <strong>en</strong> localida<strong>de</strong>s por <strong>en</strong>cima <strong>de</strong> los<br />

400 m <strong>de</strong> altitud. El 43 % <strong>de</strong> las muestras se recogieron <strong>en</strong> terr<strong>en</strong>o inculto, un 33 % <strong>en</strong> caminos<br />

<strong>de</strong> acceso a fincas, un 14 % <strong>en</strong> bor<strong>de</strong> <strong>de</strong> carreteras y un 10 % <strong>en</strong> prados <strong>naturales</strong><br />

predominantem<strong>en</strong>te pastados.<br />

prado<br />

camino<br />

terr<strong>en</strong>o inculto<br />

bor<strong>de</strong> <strong>de</strong> carretera<br />

Fig. 1.–Distribucion geográfica y hábitats <strong>de</strong> 21 muestras<br />

<strong>de</strong> <strong>semillas</strong> <strong>de</strong> raigrás inglés recogidas <strong>en</strong> el norte <strong>de</strong> España<br />

Todas las muestras <strong>de</strong> raigrás inglés resultaron infectadas con el hongo <strong>en</strong>dofito a una<br />

frecu<strong>en</strong>cia media <strong>de</strong> 40,1 % (SD = 23,7). El porc<strong>en</strong>taje <strong>de</strong> infección varió <strong>de</strong>l 8 al 80 %<br />

(Tabla 2). El 62 % <strong>de</strong> las <strong>poblaciones</strong> pres<strong>en</strong>taron niveles <strong>de</strong> infección bajos (porc<strong>en</strong>taje<br />

<strong>de</strong> infección por <strong>de</strong>bajo <strong>de</strong>l 50 %).<br />

El alcaloi<strong>de</strong> lolitr<strong>en</strong>o B se <strong>de</strong>tectó <strong>en</strong> 10 <strong>de</strong> las 21 muestras. El cont<strong>en</strong>ido medio <strong>de</strong>l<br />

alcaloi<strong>de</strong> lolitr<strong>en</strong>o B fue <strong>de</strong> 1,1 ppm (SD = 1,8), variando <strong>de</strong> 0,0 a 7,1 ppm.<br />

La ergovalina se <strong>de</strong>tectó <strong>en</strong> todas las muestras. El cont<strong>en</strong>ido medio <strong>de</strong> ergovalina fue<br />

<strong>de</strong> 13,5 ppm (SD = 12,0), variando <strong>de</strong> 1,0 a 36,2 ppm.<br />

Las correlaciones <strong>de</strong> Spearman <strong>en</strong>tre el porc<strong>en</strong>taje <strong>de</strong> infección y el cont<strong>en</strong>ido <strong>de</strong> <strong>alcaloi<strong>de</strong>s</strong><br />

revelaron que el cont<strong>en</strong>ido <strong>en</strong> ergovalina resultó correlacionado significativam<strong>en</strong>te<br />

(r = 0,59) a un nivel <strong>de</strong> probabilidad <strong>de</strong>l 1 %. No se <strong>en</strong>contraron correlaciones significativas<br />

<strong>en</strong>tre el porc<strong>en</strong>taje <strong>de</strong> infección y el cont<strong>en</strong>ido <strong>en</strong> lolitr<strong>en</strong>o B.<br />

Invest. Agr.: Prod. Prot. Veg. Vol. 17 (2), 2002


252 J.A. OLIVEIRA et al.<br />

Tabla 2<br />

Porc<strong>en</strong>tajes <strong>de</strong> infección <strong>de</strong>l hongo <strong>en</strong>dofito Neotyphodium y cont<strong>en</strong>idos<br />

<strong>en</strong> los <strong>alcaloi<strong>de</strong>s</strong> lolitr<strong>en</strong>o B y ergovalina (ppm = miligramos<br />

<strong>de</strong>l alcaloi<strong>de</strong>/kilogramos <strong>de</strong> peso seco <strong>de</strong> semilla) <strong>en</strong> muestras <strong>de</strong> <strong>semillas</strong><br />

<strong>de</strong> raigrás inglés recogidas <strong>en</strong> 21 zonas <strong>de</strong>l norte <strong>de</strong> España<br />

Código Porc<strong>en</strong>taje <strong>de</strong> infección Lolitr<strong>en</strong>o B (ppm) Ergovalina (ppm)<br />

1 51 2,2 2,2<br />

2 10 0,5 1,0<br />

3 72 1,9 7,0<br />

4 20 0,0 4,0<br />

5 12 0,0 2,1<br />

6 40 3,9 6,0<br />

7 42 0,0 36,2<br />

8 18 0,0 6,8<br />

9 39 2,6 19,8<br />

10 41 2,4 13,6<br />

11 72 7,1 8,0<br />

12 78 0,0 11,0<br />

13 30 0,0 32,8<br />

14 21 1,9 5,8<br />

15 80 0,4 35,8<br />

16 52 0,0 26,9<br />

17 15 0,0 4,0<br />

18 8 0,0 2,2<br />

19 21 0,2 14,0<br />

20 59 0,0 13,3<br />

21 62 0,0 31,7<br />

Media 40,1 1,1 13,5<br />

Desviación estándar 23,7 1,8 12,0<br />

DISCUSIÓN<br />

La amplia distribución <strong>de</strong> los hongos <strong>en</strong>dofitos Neotyphodium <strong>en</strong> <strong>poblaciones</strong> <strong>naturales</strong><br />

<strong>de</strong> raigrás inglés está <strong>de</strong> acuerdo con otros estudios <strong>de</strong>scritos <strong>en</strong> España (Zabalgogeazcoa<br />

et al., 1997; Oliveira y Castro, 1998) y <strong>en</strong> otros países europeos (Lewis et al., 1997).<br />

Las razones <strong>de</strong> esta amplia distribución <strong>de</strong> la infección <strong>de</strong> los hongos <strong>en</strong>dofitos <strong>en</strong> <strong>poblaciones</strong><br />

<strong>naturales</strong> <strong>de</strong> raigrás inglés no están <strong>de</strong>l todo claras. Algunos autores <strong>en</strong>contraron<br />

correlaciones significativas <strong>en</strong>tre el nivel <strong>de</strong> infección y ciertas variables climáticas, particularm<strong>en</strong>te<br />

el déficit hídrico (Lewis et al., 1997; Oliveira y Castro, 1998) indicando que<br />

las condiciones <strong>de</strong> sequía estival pued<strong>en</strong> impartir una presión <strong>de</strong> selección a favor <strong>de</strong> la<br />

infección por hongos <strong>en</strong>dofitos.<br />

En las zonas <strong>de</strong>l norte <strong>de</strong> España muestreadas se <strong>en</strong>contraron porc<strong>en</strong>tajes <strong>de</strong> infección<br />

<strong>en</strong> <strong>semillas</strong> <strong>de</strong> raigrás inglés, <strong>en</strong> g<strong>en</strong>eral, <strong>de</strong> bajos a mo<strong>de</strong>rados (0 a 50 %). Las plantas <strong>de</strong>sarrolladas<br />

a partir <strong>de</strong> la semilla proced<strong>en</strong>te <strong>de</strong> una planta infectada se espera que cont<strong>en</strong>gan<br />

el mismo hongo <strong>en</strong>dofito pres<strong>en</strong>te <strong>en</strong> la planta maternal (Welty et al., 1987). Una po-


ALCALOIDES EN SEMILLAS DE RAIGRÁS INGLÉS 253<br />

sible excepción a esto es el <strong>de</strong>sarrollo <strong>de</strong> tallos libres <strong>de</strong>l hongo, <strong>en</strong> los que los meristemos<br />

<strong>de</strong>l tallo puedan escapar a la infección <strong>de</strong>l micelio <strong>de</strong>l hongo y consecu<strong>en</strong>tem<strong>en</strong>te<br />

d<strong>en</strong> lugar a <strong>semillas</strong> libres <strong>de</strong>l hongo. Este f<strong>en</strong>óm<strong>en</strong>o <strong>en</strong> cierta manera podría explicar el<br />

porqué muchas <strong>poblaciones</strong> <strong>naturales</strong> (White y Chambless, 1991) conti<strong>en</strong><strong>en</strong> plantas no infectadas<br />

distribuidas al azar, a pesar <strong>de</strong> los apar<strong>en</strong>tes b<strong>en</strong>eficios para la planta por la infección<br />

con el hongo (Clay, 1987).<br />

Los porc<strong>en</strong>tajes <strong>de</strong> infección bajos a mo<strong>de</strong>rados <strong>en</strong> raigrás inglés se pued<strong>en</strong> explicar<br />

por la imperfecta transmisión vertical (<strong>en</strong> forma <strong>de</strong> semilla) <strong>de</strong>l hongo (Ravel et al.,<br />

1997).<br />

Este estudio muestra que los <strong>alcaloi<strong>de</strong>s</strong> lolitr<strong>en</strong>o B y ergovalina se produc<strong>en</strong> <strong>en</strong> <strong>poblaciones</strong><br />

<strong>naturales</strong> <strong>de</strong> raigrás inglés infectados con hongo <strong>en</strong>dofitos Neotyphodium <strong>en</strong> las<br />

condiciones edafoclimáticas <strong>de</strong>l norte <strong>de</strong> España.<br />

La correlación significativa <strong>en</strong>tre el porc<strong>en</strong>taje <strong>de</strong> infección <strong>de</strong>l hongo <strong>en</strong>dofito y el<br />

cont<strong>en</strong>ido <strong>en</strong> ergovalina parece indicar que <strong>en</strong> las zonas don<strong>de</strong> los porc<strong>en</strong>tajes <strong>de</strong> infección<br />

son más elevados y que suel<strong>en</strong> coincidir con las zonas más secas y cálidas (Oliveira<br />

y Castro, 1998), también los cont<strong>en</strong>idos <strong>en</strong> ergovalina sean altos.<br />

El valor máximo <strong>de</strong> lolitr<strong>en</strong>o B obt<strong>en</strong>ido <strong>en</strong> este estudio fue <strong>de</strong> 7,1 ppm y resultó similar<br />

a los obt<strong>en</strong>idos por otros autores <strong>en</strong> Estados Unidos, Nueva Zelanda, Reino Unido y<br />

España y que varían <strong>de</strong>s<strong>de</strong> 3a10ppm<strong>en</strong>gramíneas (Latch y Tapper, 1988; Prestidge y<br />

Gallagher, 1989; Porter, 1994).<br />

Las conc<strong>en</strong>traciones <strong>de</strong> lolitr<strong>en</strong>o B <strong>en</strong> las plantas infectadas <strong>de</strong> raigrás inglés son más<br />

altas <strong>en</strong> las vainas foliares, <strong>en</strong> los tallos espigados y <strong>en</strong> las <strong>semillas</strong> y mucho m<strong>en</strong>ores <strong>en</strong><br />

las hojas (DiM<strong>en</strong>na et al., 1992). Así el «ryegrass staggers» aparece más frecu<strong>en</strong>tem<strong>en</strong>te<br />

<strong>en</strong> pra<strong>de</strong>ras pastadas int<strong>en</strong>sivam<strong>en</strong>te, <strong>en</strong> pra<strong>de</strong>ras con abundancia <strong>de</strong> vegetación seca y<br />

muerta o <strong>en</strong> pra<strong>de</strong>ras con abundancia <strong>de</strong> plantas espigadas.<br />

Los síntomas <strong>de</strong>l «ryegrass staggers» <strong>en</strong> ovejas, caballos o ganado vacuno se pued<strong>en</strong><br />

<strong>de</strong>sarrollar cuando las conc<strong>en</strong>traciones <strong>de</strong> lolitr<strong>en</strong>o B excedan <strong>de</strong> 2-2,5 ppm (Prestidge y<br />

Gallagher, 1989; DiM<strong>en</strong>na et al., 1992).<br />

El cont<strong>en</strong>ido medio <strong>de</strong> ergovalina obt<strong>en</strong>ido <strong>en</strong> este estudio fue <strong>de</strong> 13,5 ppm, variando<br />

<strong>de</strong> 1,0 a 36,2 ppm y por <strong>en</strong>cima <strong>de</strong>l nivel crítico <strong>de</strong> toxicidad <strong>en</strong> ganado vacuno <strong>de</strong> 1,0<br />

ppm (Easton et al., 1996).<br />

Para que aparezcan dichos síntomas, esas conc<strong>en</strong>traciones ti<strong>en</strong><strong>en</strong> que pres<strong>en</strong>tarse durante<br />

períodos <strong>de</strong> temperatura ambi<strong>en</strong>te alta (por <strong>en</strong>cima <strong>de</strong> 30 C) y humedad relativa<br />

también alta. Sin embargo, conc<strong>en</strong>traciones <strong>de</strong> <strong>alcaloi<strong>de</strong>s</strong> más bajas pued<strong>en</strong> ser sufici<strong>en</strong>tes<br />

para causar efectos subclínicos, como son una disminución <strong>de</strong> la ganancia <strong>de</strong> peso, <strong>de</strong> la<br />

producción <strong>de</strong> leche y problemas reproductivos (Thompson y Stuedmann 1993; Val<strong>en</strong>tine<br />

et al., 1993).<br />

En las pra<strong>de</strong>ras sembradas <strong>en</strong> Europa con cultivares comerciales <strong>de</strong> raigrás inglés,<br />

tanto para corte <strong>en</strong> ver<strong>de</strong> como para silo y h<strong>en</strong>o los problemas <strong>de</strong> salud <strong>en</strong> los animales<br />

<strong>de</strong>bido a los <strong>alcaloi<strong>de</strong>s</strong> son muy poco probables porque los cultivares comerciales <strong>de</strong> raigrás<br />

inglés ti<strong>en</strong><strong>en</strong> unos porc<strong>en</strong>tajes <strong>de</strong> infección muy bajos (Latch et al., 1987).<br />

Los pastos <strong>naturales</strong> <strong>de</strong>l norte <strong>de</strong> España son ricos <strong>en</strong> difer<strong>en</strong>tes especies <strong>de</strong> gramíneas<br />

y leguminosas, por lo que incluso aunque las conc<strong>en</strong>traciones <strong>en</strong> <strong>alcaloi<strong>de</strong>s</strong> fueran<br />

altas, los síntomas <strong>de</strong>l «ryegrass staggers» o <strong>de</strong> la «festucosis» parec<strong>en</strong> poco probables.<br />

Sin embargo, <strong>en</strong> pastos con alto cont<strong>en</strong>ido <strong>de</strong> raigrás inglés infectado con los hongos<br />

<strong>en</strong>dofitos, no se <strong>de</strong>bería <strong>de</strong>jar pastar al ganado durante períodos <strong>de</strong> altas temperaturas y humeda<strong>de</strong>s<br />

ambi<strong>en</strong>tes, ya que estas condiciones aum<strong>en</strong>tan los efectos tóxicos <strong>de</strong> los hongos<br />

Invest. Agr.: Prod. Prot. Veg. Vol. 17 (2), 2002


254 J.A. OLIVEIRA et al.<br />

<strong>en</strong>dofitos. En particular, sería necesario t<strong>en</strong>er cuidado <strong>en</strong> el pastoreo <strong>de</strong> las plantas espigadas,<br />

ya que las <strong>semillas</strong> son una fu<strong>en</strong>te importante <strong>de</strong> <strong>alcaloi<strong>de</strong>s</strong> <strong>en</strong> los pastos infectados<br />

(Sleper y Buckner, 1995; Ball et al., 1997). En este tipo <strong>de</strong> pastos, la acumulación <strong>de</strong> materia<br />

muerta y un mayor consumo <strong>de</strong> vainas foliares respecto a hojas <strong>en</strong> el caso <strong>de</strong> pastoreos<br />

int<strong>en</strong>sivos pue<strong>de</strong> aum<strong>en</strong>tar el cont<strong>en</strong>ido <strong>en</strong> <strong>alcaloi<strong>de</strong>s</strong>. También <strong>en</strong> las zonas <strong>de</strong> acampada<br />

<strong>de</strong>l ganado <strong>en</strong> el pasto don<strong>de</strong> se acumulan las <strong>de</strong>yecciones y que son zonas don<strong>de</strong> el ganado<br />

prefiere pastar por la abundancia <strong>de</strong> vegetación, las conc<strong>en</strong>traciones <strong>de</strong> <strong>alcaloi<strong>de</strong>s</strong> son más<br />

altas que <strong>en</strong> las zonas que ro<strong>de</strong>an a estas zonas más fertilizadas (Keogh y Clem<strong>en</strong>ts, 1993).<br />

AGRADECIMIENTOS<br />

Este trabajo se ha podido realizar gracias a la financiación concedida <strong>en</strong> el proyecto RF95-017-C2-1 <strong>de</strong>l<br />

programa <strong>de</strong> Conservación y Utilización <strong>de</strong> Recursos Fitog<strong>en</strong>éticos <strong>de</strong>l Ministerio <strong>de</strong> Agricultura, Pesca y Alim<strong>en</strong>tación<br />

y al apoyo <strong>de</strong>l C<strong>en</strong>tro <strong>de</strong> Investigaciones Agrarias <strong>de</strong> Mabegondo (Xunta <strong>de</strong> Galicia).<br />

SUMMARY<br />

Alkaloid cont<strong>en</strong>t in Neotyphodium-infected seeds of per<strong>en</strong>nial ryegrass wild<br />

populations from the North of Spain<br />

The alkaloid cont<strong>en</strong>t (lolitrem B and ergovaline) in Neotyphodium-infected seeds of 21 per<strong>en</strong>nial ryegrass<br />

(Lolium per<strong>en</strong>ne L.) wild populations from the North of Spain was analysed. The infection level in per<strong>en</strong>nial<br />

ryegrass was low to mo<strong>de</strong>rate (average = 40.1 %), ranging from 8 to 80 %. In most of the populations (62 %) the<br />

infection level was below 50 %. In per<strong>en</strong>nial ryegrass seeds, the average lolitrem B cont<strong>en</strong>t was 1.1 ppm, ranging<br />

from 0.0 to 7.1 ppm and the average ergovaline cont<strong>en</strong>t was 13.5 ppm, ranging from 1.0 to 36.2 ppm. The<br />

relationships betwe<strong>en</strong> <strong>en</strong>dophyte infection and alkaloid cont<strong>en</strong>t were studied using Spearman’s correlations. Significant<br />

correlations were found betwe<strong>en</strong> <strong>en</strong>dophyte infection and ergovaline (r = 0.59 at p < 0.01). The highest<br />

conc<strong>en</strong>trations of lolitrem B and ergovaline were consi<strong>de</strong>red high <strong>en</strong>ough to induce «ryegrass staggers» and<br />

«fescue toxicosis» but the species diversity in natural pastures of northern Spain can probably prev<strong>en</strong>t the disor<strong>de</strong>rs.<br />

In pastures abundant in natural <strong>en</strong>dophyte-infected per<strong>en</strong>nial ryegrass, grazing seed heads should be avoi<strong>de</strong>d,<br />

because the highest levels of alkaloids are actually found in seeds.<br />

Key words: ergovaline, lolitrem B, pastures, Lolium per<strong>en</strong>ne<br />

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS<br />

BALL O.J.P., BARKER G.M., PRESTIDGE R.A., SPROSEN J.M., 1997. Distribution and accumulation of the<br />

mycotoxin lolitrem B in Neotyphodium lolii-infected per<strong>en</strong>nial ryegrass. Journal of Chemical Ecology. 23<br />

(5), 1435-1449.<br />

BONY S., ICEAGA F., RAYNAL G., 1996. Acremonium toxicosis: a call for collaboration. Rev. Ned. Vet. 147,<br />

403-405.<br />

CLAY K., 1986. Grass <strong>en</strong>dophytes. En: Microbiology of the phyllosphere. Fokkema, N.J., van d<strong>en</strong> Heuvel, J..,<br />

ed. Cambridge University Press, London, pp. 188-204.<br />

CLAY K., 1987. Effects of fungal <strong>en</strong>dophytes on the seed and seedling biology of Lolium per<strong>en</strong>ne and Festuca<br />

arundinacea. Oecología. 73, 358-362.<br />

CHRISTENSEN M.J., LEUCHTMANN A., ROWAN D.D., TAPPER B.A., 1993. Taxonomy of Acremonium<br />

<strong>en</strong>dophytes of tall fescue (Festuca arundinacea), meadow fescue (F. prat<strong>en</strong>sis) and per<strong>en</strong>nial ryegrass (Lolium<br />

per<strong>en</strong>ne). Mycol. Res. 97, 1083-1092.


ALCALOIDES EN SEMILLAS DE RAIGRÁS INGLÉS 255<br />

DIMENNA M.E., MORTIMER P.H., PRESTIDGE R.A., HAWKES A.D., SPROSEN J.A., 1992. Lolitrem B<br />

conc<strong>en</strong>trations, counts of Acremonium lolii hyphae, and the incid<strong>en</strong>ce of ryegrass staggers in lambs on<br />

plots of A. lolii-infected per<strong>en</strong>nial ryegrass. N. Z. J. Agric. Res. 35, 211.<br />

EASTON H.S., LANE G.A., TAPPER B.A., KEOGH R.G., COOPER B.M., BLACKWELL M., ANDERSON<br />

M., FLETCHER L.R., 1996. Ryegrass <strong>en</strong>dophyte-related heat stress in cattle. Proceedings of the New Zealand<br />

Grassland Association, Palmerston North, New Zealand. 57, pp. 37-41.<br />

FLETCHER L.R., GARTHWAITE I., TOWERS N.R., 1993. Ryegrass staggers in the abs<strong>en</strong>ce of lolitrem B.<br />

Proceedings of the Second International Symposium on Acremonium/Grass Interactions, Palmerston North,<br />

New Zealand. pp. 119-121.<br />

FLETCHER L.R., 1999. «Non-toxic» <strong>en</strong>dophytes in ryegrass and their effect on livestock health and production.<br />

Proceedings of the New Zealand Grassland Association. Ryegrass <strong>en</strong>dophyte: an ess<strong>en</strong>tial New Zealand<br />

Symbiosis. Grassland Research and Practice series No.7, Napier, New Zealand. pp. 133-139.<br />

GALLAGHER R.T., HAWKES A.D., STEWART J.M., 1985. Rapid <strong>de</strong>termination of neurotoxin lolitrem B in<br />

per<strong>en</strong>nial ryegrass by high-performance liquid chromatography with fluoresc<strong>en</strong>ce <strong>de</strong>tection. Journal of<br />

Chromatography. 321, 217-225.<br />

GLENN A.F., BACON C.W., PRICE R., HANLIN R.T., 1996. Molecular phylog<strong>en</strong>y of Acremonium and its taxonomic<br />

implications. Mycologia. 88, 369-383.<br />

HAMILTON-MANNS M., CROTHERS R., 1999. Farmer experi<strong>en</strong>ce of per<strong>en</strong>nial ryegrass <strong>en</strong>dophyte on a Manawatu<br />

dairy farm. Proceedings of the New Zealand Grassland Association. Ryegrass <strong>en</strong>dophyte: an ess<strong>en</strong>tial<br />

New Zealand Symbiosis. Grassland Research and Practice series No.7, Napier, New Zealand. pp.<br />

51-56.<br />

HINTON D.M., BACON C.W., 1985. The distribution and ultrastructure of the <strong>en</strong>dophyte of toxic tall fescue.<br />

Can. J. Bot. 63, 36-42.<br />

KEOGH R.G., CLEMENTS R.J., 1993. Grazing managem<strong>en</strong>t: a basis for control of ryegrass staggers, Proceedings<br />

of the Second International Symposium on Acremonium/Grass Interactions. Palmerston North, New<br />

Zealand. pp. 129-131.<br />

LATCH G.C.M., POTTER L.R., TYLER B.R., 1987. Incid<strong>en</strong>ce of <strong>en</strong>dophytes in seeds from collections of Lolium<br />

and Festuca species. Annals of Applied Biology. 111, 59-64.<br />

LATCH G.C.M., TAPPER B.A., 1988. Lolium <strong>en</strong>dophytes-problems and progress. Proc. Jpn. Assoc. Mycotoxicol.<br />

Suppl. 1, pp. 220-223.<br />

LATCH G.C.M., 1993. Physiological interactions of <strong>en</strong>dophytic fungi and their hosts. Biotic stress tolerance of<br />

<strong>en</strong>dophyte-infected grasses. Agric. Ecosystems Environ. 44, 143-156.<br />

LEWIS G.C., 1997. Significance of <strong>en</strong>dophyte toxicosis and curr<strong>en</strong>t practices in <strong>de</strong>aling with the problem in Europe.<br />

Proc. IV Int. Symp. on Neotyphodium/Grass interactions. Ath<strong>en</strong>s, Georgia. pp. 28-31.<br />

LEWIS G.C., RAVEL C., NAFFAA W., ASTIER C., CHARMET G., 1997. Occurr<strong>en</strong>ce of Acremonium <strong>en</strong>dophytes<br />

in wild populations of Lolium spp., in European Countries and a relationship betwe<strong>en</strong> level of infection<br />

and climate in France. Annals of Applied Biology. 130, 227-238.<br />

NEIL J.C., 1941. The <strong>en</strong>dophytes of Lolium and Festuca. N.Z.J.Sci. Technol. 23, 185-193.<br />

OLDEMBURG E., 1997. Endophytic fungi and alkaloid production in per<strong>en</strong>nial ryegrass in Germany. Grass<br />

and Forage Sci<strong>en</strong>ce. 52, 425-431.<br />

OLIVEIRA J.A., CASTRO V., 1998. Incid<strong>en</strong>ce of Neotyphodium <strong>en</strong>dophytes in Spanish per<strong>en</strong>nial ryegrass (Lolium<br />

per<strong>en</strong>ne) accessions. Plant G<strong>en</strong>etic Resources Newsletter. 113, 1-3.<br />

OLIVEIRA J.A., ROTTINGHAUS G.E., COLLAR J., CASTRO P., 1997. Per<strong>en</strong>nial ryegrass <strong>en</strong>dophytes in Galicia,<br />

Northwest Spain. Journal of Agricultural Sci<strong>en</strong>ce. 12, 173-177.<br />

OLIVEIRA J.A., ROTTINGHAUS G.E., PREGO C., 2000. Endophytic fungi and alkaloid production in grass<br />

seeds in northern Spain. Book of Abstracts of the Grassland Confer<strong>en</strong>ce 2000 and 4 th International Neotyphodium/Grass<br />

Interactions Symposium, University of Pa<strong>de</strong>rborn, Soest, Alemania. p. 130.<br />

PLAZA R., GARCÍA B., GARCÍA A., VÁZQUEZ B.R., ZABALGOGEAZCOA I., 2001. Hongos <strong>en</strong>dofíticos<br />

<strong>en</strong> plantas <strong>de</strong> Lolium per<strong>en</strong>ne L., <strong>en</strong> <strong>de</strong>hesas <strong>de</strong> Salamanca. Actas <strong>de</strong> la XLI Reunión Ci<strong>en</strong>tífica <strong>de</strong> la Sociedad<br />

Española para el Estudio <strong>de</strong> los Pastos y I Foro Iberoamericano <strong>de</strong> Pastos, Alicante. pp. 421-425.<br />

PORTER J.K., 1994. Analysis of <strong>en</strong>dophyte toxins: fescue and other grasses toxic to livestock. Proceedings of<br />

the «Fescue and Other Toxic Grasses: Effects on Livestock Production» Symposium at the ASAS 85 th<br />

Annual Meeting, Spokane, Washington. pp. 871-880.<br />

PRESTIDGE R.A., GALLAGHER R.T., 1989. Acremonium <strong>en</strong>dophytes in per<strong>en</strong>nial ryegrass, ryegrass staggers<br />

in lambs, and growth rate of Arg<strong>en</strong>tine stem weevil larvae. Proceedings of the 5 th Australasian Conf.<br />

Grassland Invertebrate Ecology, Melbourne, Victoria, Australia pp. 229-235.<br />

RAVEL C., MICHALAKIS Y., CHARMET G., 1997. The effect of imperfect transmission on the frequ<strong>en</strong>cy of<br />

mutualistic seed-borne <strong>en</strong>dophytes in natural populations of grasses. Oikos. 80, 1, 18-24.<br />

Invest. Agr.: Prod. Prot. Veg. Vol. 17 (2), 2002


256 J.A. OLIVEIRA et al.<br />

ROTTINGHAUS G.E., GARNER G.B., CORNELL C.N., ELLIS J.L., 1991. HPLC method for quantitating ergovaline<br />

in <strong>en</strong>dophyte-infected tall fescue: seasonal variation of ergovaline levels in stems with leaf<br />

sheaths, leaf bla<strong>de</strong>s, and seed heads. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 39, 112-115.<br />

ROWAN D.D., SHAW G.J., 1987. Detection of ergopeptine alkaloids in <strong>en</strong>dophyte-infected per<strong>en</strong>nial ryegrass<br />

by tan<strong>de</strong>m mass spectrometry. New Zealand Veterinary Journal. 35, 197-198.<br />

SCHARDL C.L., 1996. Epichloë species: fungal symbionts of grasses. Ann. Rev. Phytopathol. 34, 109-130.<br />

SLEPER D.A., BUCKNER R.C., 1995. The fescues. Forages vol I. An introduction to grassland agriculture.<br />

Iowa State University Press, 515 pp.<br />

THOMPSON F.N., STUEDMANN J.A., 1993. Pathophysiology of fescue toxicosis. Agric. Ecosyst. Environm.<br />

44, 263-281.<br />

TYLER B.F., 1987. Collection, characterization and utilization of g<strong>en</strong>etic resources of temperate grass and clover.<br />

IBPGR Training Courses, Lecture Series 1, IBPGR, Rome, Italy, 66 pp.<br />

VALENTINE S.C., BARTSCH B.D., CAROLL P.D., 1993. Production and composition of milk dairy cattle<br />

grazing high and low <strong>en</strong>dophyte cultivars of per<strong>en</strong>nial ryegrass. Proceedings of the Second International<br />

Symposium on Acremonium/Grass Interactions, Palmerston North, New Zealand. pp. 138-141.<br />

WELTY R.E., AZEVEDO M.D., COOPER T.M., 1987. Influ<strong>en</strong>ce of moisture cont<strong>en</strong>t, temperature and l<strong>en</strong>ght<br />

of storage on seed germination and survival of <strong>en</strong>dophytic fungi in seeds of tall fescue and per<strong>en</strong>nial<br />

ryegrass. Phytopathology. 77, 893-900.<br />

WEST C.P., IZEKOR E., TURNER K.E., ELMI A.A., 1993. Endophyte effects on growth and persist<strong>en</strong>ce of<br />

tall fescue along a water supply gradi<strong>en</strong>t. Agron. J. 85, 264-270.<br />

WHITE J.F., 1987. Wi<strong>de</strong>spread distribution of <strong>en</strong>dophytes in the Poaceae. Plant disease. 71, 340-342.<br />

WHITE JR. J.F., CHAMBLESS D.A., 1991. Endophyte-host associations in forage-grasses. XV. Clustering of<br />

stromata-bearing individuals of Agrostis hiemalis infected by Epichloë typhina. Am. J. Bot. 78, 527-533.<br />

ZABALGOGEAZCOA I., GARCÍA CIUDAD A., GARCÍA CRIADO B., 1997. Endophytic fungi in grasses<br />

from semiarid grasslands in Spain. Proceedings of the Neotyphodium/Grass Interactions, New York, Estados<br />

Unidos. pp. 89-91.

Hooray! Your file is uploaded and ready to be published.

Saved successfully!

Ooh no, something went wrong!