Título: identificação de nematoides fitopatogênicos em fruteiras no ...

MINISTÉRIO DA EDUCAÇÃO
INSTITUTO FEDERAL DE EDUCAÇÃO, CIÊNCIA E TECNOLOGIA
DO CEARÁ – IFCE
PRÓ-REITORIA DE PESQUISA E INOVAÇÃO - PRPI
EDITAL Nº 018/2012-PRPI – PIBITI/CNPq/IFCE
Título do Projeto:
Identificação de nematoides fitopatogênicos em fruteiras, no Perímetro Irrigado
Baixo Acaraú e controle alternativo com plantas antagônicas.
Sobral – CE
Junho de 2012

Resumo
A correta identificação de gêneros e espécies de nematoides que acometem uma determinada
cultura é de grande importância para se formar um acervo de dados que serão úteis aos
laboratórios de diagnose e controle desses fitopatógenos. Conjuntamente, a necessidade de
controlar os fitonematoides existentes em determinada região é condição básica para se
proceder ao seu manejo racional das culturas, para tanto faz-se necessário proceder a estudos
com produtos naturais, pois será de grande valia como medida de controle alternativo, visto
que os nematicidas de síntese são onerosos e extremamente tóxicos ao homem e ao meio
ambiente. Desta forma, neste trabalho busca-se identificar as espécies de nematoides
fitopatogênicos presentes em fruteiras do Perímetro Irrigado do Baixo Acaraú e, em seguida,
verificar a ação de plantas antagonistas sobre estes fitopatógenos. Para tanto, além da
infraestrutura do Laboratório de Fitossanidade e seus equipamentos existentes no Campus de
Sobral, contaremos também com a valiosa contribuição da Universidade Federal do Ceará,
com o Laboratório de Nematologia para nos auxiliar com outros equipamentos e pessoal
qualificado para tal finalidade. Desta forma, no primeiro momento, pretende-se catalogar e
disponibilizar aos produtores interessados a relação de nematoides identificados para que
estes possam utilizar a melhor forma possível os métodos de controle existentes e fazer um
manejo racional. Com o estudo das plantas antagônicas aos nematoides, espera-se encontrar
plantas que sejam eficientes na redução populacional destes fitopatógenos e que possam
facilmente serem utilizadas também pelos produtores. Com os resultados desta segunda parte
do projeto, pretende-se partir para uma tarefa mais ambiciosa, que é a conscientização dos
produtores para a utilização destas plantas, visto que assim, haveria uma redução da utilização
de agrotóxicos e consequentemente uma redução no custo de produção, pois os nematicidas
são, via de regra, muito caros.
Palavras chave: Manejo cultural; Agricultura sustentável; Fitonematoides; Hospedabilidade.
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1. Objetivos
1.1 Objetivo Geral
- O objetivo é identificar as espécies de nematoides fitopatogênicos que causam danos às
fruteiras no Perímetro Irrigado Baixo Acaraú e avaliar o controle alternativo com plantas
antagônicas.
1.2 Objetivos específicos
- Identificar quais as espécies de fitonematoides presentes no Perímetro Irrigado Baixo
Acaraú;
- Formar um acervo de dados sobre estas espécies;
- Avaliar um controle alternativo destes fitonematoides com a utilização de cinco espécies de
plantas antagônicas para cada espécie de nematoides identificada;
- Fazer uma catalogação das espécies vegetais que se comportarem de forma mais satisfatória
no controle dos nematoides.
2. Introdução e Justificativa
Os nematoides são vermes microscópicos que se alimentam, em sua grande maioria
das raízes das plantas passando parte ou toda a vida no solo. Conforme a maneira com que
estes organismos obtêm o alimento das plantas são classificados em: endoparasitas e
ectoparasitas. Os ectoparasitas passam toda a sua vida fora das raízes e alimentam-se
introduzindo o estilete na camada de células a diversas profundidades da superfície das raízes.
Os endoparasitas penetram e passam, no mínimo, parte de sua vida dentro da raiz
(LORDELLO, 1992; TIHOHOD, 1993; AGRIOS, 1997; FREITAS et al., 2004).
A maioria dos fitonematoides são parasitas obrigatórios, vivendo em equilíbrio com a
planta hospedeira. Para que o fitonematoide passe à condição de patógeno, torna-se necessário
que o processo de parasitismo diretamente ou associado a outros fatores impossibilite a
hospedeira a exercer uma ou mais de suas funções fisiológicas, para o melhor do seu potencial
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genético, originando uma doença (LORDELLO, 1992; TIHOHOD, 1993; FREITAS et al.,
2004).
Os nematoides fitopatogênicos são responsáveis por expressivas perdas na agricultura
seja no cultivo de grãos, na olericultura ou na Fruticultura, senda nesta mais preocupante em
função da expressão tardia dos sintomas e da ineficiência dos meios curativos de controle.
Os nematoides são organismos alongados e afilados nas extremidades, representando um dos
grupos de animais mais numerosos da terra. Acredita-se que haja cerca de 500 mil espécies de
nematoides ocorrendo nos ambientes mais diversos, em que haja a possibilidade de vida.
Ecologicamente, estes animais podem ser classificados em três grupos, de acordo com o tipo
de hábito alimentar. Assim, temos os parasitos de animais, os de vida livre (que se alimentam
de bactérias, fungos, algas, protozoários, minhocas microscópicas e de outros nematoides);
saprófitos, tanto do solo como dos oceanos e os parasitos de plantas, conhecidos como
fitonematoides, (LORDELLO, 1992; TIHOHOD, 1993; FERRAZ & MONTEIRO, 1995;
AGRIOS, 1997; FREITAS et al., 2004).
Nematoides parasitos de plantas podem ser encontrados no interior de estruturas
vegetais, tantos dos órgãos subterrâneos (raízes, rizomas, tubérculos e bulbos) e também na
parte aérea (caules, folhas e flores). Contudo, os maiores problemas relacionados com estes
fitoparasitos ocorrem no sistema radicular, onde eles podem ser encontrados no solo ou no
interior da raiz, caracterizando-os como migradores e sedentários, respectivamente
(LORDELLO, 1992; TIHOHOD, 1993; AGRIOS, 1997; FREITAS et al., 2004).
Os sintomas diretos desses fitoparasitos são expressos como galhas ou tumores, as
quais resultam da hiperplasia e hipertrofia dos tecidos radiculares que bloqueiam a absorção
de água e de nutrientes do solo. Essas deformidades das raízes provocadas por Meloidogyne
spp. constituem-se em fortes drenos metabólicos, espoliando fotoassimilados e utilizando-os
para o seu desenvolvimento e reprodução, o que contribui para reduzir, sobremaneira, o
aproveitamento dos produtos sintetizados para o desenvolvimento normal das plantas,
causando a murcha de plantas nos horários mais quentes do dia (LORDELLO, 1992;
TIHOHOD, 1993; AGRIOS, 1997).
As plantas afetadas por nematoides tornam-se mais vulneráveis ao ataque de outros
fitopatógenos, ficam menos resistentes aos estresses hídricos e não respondem
satisfatoriamente ao manejo de adubação (LORDELLO, 1992; FERRAZ & MONTEIRO,
1995).
Vários são os métodos de controle que podem ser empregados no manejo destes
fitopatógenos. Cabe, portanto, ao produtor fazer a escolha daquele que melhor lhe convier,
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sempre analisando fatores tais como: custo/benefício, agressão, persistência e prejuízos ao
ambiente e às pessoas envolvidas na aplicação dos defensivos agrícolas (LORDELLO, 1992;
TIHOHOD, 1993; AGRIOS, 1997; SILVA, 2006). Contudo, em virtude da toxicidade dos
nematicidas de síntese ao homem, dos danos provocados ao meio ambiente, e devido ao apelo
da sociedade por alimentos mais saudáveis, muitos produtos de origem natural têm sido
testados no controle desses fitopatógenos, no intuito de substituí-los (SILVA, 2006).
Atualmente, em decorrência da pressão exercida por parte da sociedade, tem-se
direcionado, sobremaneira, as pesquisas envolvendo o controle de pragas e doenças no
sentido de conseguir descobrir produtos naturais com ação antimicrobiana para fungos,
bactérias, insetos e nematoides (SILVA, 2006). Na busca por tais produtos, tem-se dado muita
atenção aos metabólitos produzidos pelas plantas, principalmente aos decorrentes do
metabolismo secundário. Estes produtos, geralmente, resultam de compostos presentes em
extratos brutos e/ou óleos essenciais, constituindo numa potencial forma de utilização no
controle alternativo de doenças de plantas, e que, com os avanços das pesquisas, poderão se
constituir em novas moléculas bioativas e biodegradáveis que sejam mais eficientes contra as
pragas e doenças e com menor ou nenhuma toxicidade ao homem e ao meio ambiente.
Em vista de todas estas limitações ao desenvolvimento normal das plantas e à
produção potencial das fruteiras, impostas pelos fitonematoides é essencial se fazer a
identificação e caracterização das espécies que estão presentes no referido Perímetro Irrigado.
Sendo, depois estas informações catalogadas e repassadas aos interessados. Servido assim
como um instrumento de tomada de decisão em meios científicos.
É interessante também a proposta da utilização de plantas antagonistas, em função da
necessidade de alternativas menos poluentes e danosas ao homem e ao meio ambiente. Além
do mais, estas plantas antagonistas servirão também com fonte de matéria orgânica, que é tão
escassa no Simiárido nordestino e como cobertura morta, contribuindo significativamente
para evitar a erosão.
3. Revisão bibliográfica
Os nematoides são organismos alongados e afilados nas extremidades, representando
um dos grupos de animais mais numerosos da terra. Acredita-se que haja cerca de 500 mil
espécies de nematoides ocorrendo nos ambientes mais diversos, em que haja a possibilidade
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de vida. Ecologicamente, estes animais podem ser classificados em três grupos, de acordo
com o tipo de hábito alimentar (FERRAZ & MONTEIRO, 1995; AGRIOS, 1997).
Assim, temos os parasitos de animais, os de vida livre (que se alimentam de bactérias,
fungos, algas, protozoários, minhocas microscópicas e de outros nematoides); saprófitos,
tanto do solo como dos oceanos e os parasitos de plantas, conhecidos como fitonematoides,
(LORDELLO, 1992; TIHOHOD, 1993; AGRIOS, 1997; FREITAS et al., 2004).
Nematoides parasitos de plantas podem ser encontrados no interior de estruturas
vegetais, tantos dos órgãos subterrâneos (raízes, rizomas, tubérculos e bulbos) e também na
parte aérea (caules, folhas e flores). Contudo, os maiores problemas relacionados com estes
fitoparasitos ocorrem no sistema radicular, onde eles podem ser encontrados no solo ou no
interior da raiz, caracterizando-os como migradores e sedentários, respectivamente
(LORDELLO, 1992; TIHOHOD, 1993; AGRIOS, 1997; FREITAS et al., 2004).
Vários são os problemas fitossanitários associados ao solo que acometem as plantas
frutíferas. Por permanecerem, na época da produção das mudas em viveiros com ambientes
com alta densidade de plantas e por serem produzidas em substratos não submetidos a um
tratamento para eliminação de patógenos de solo, tais como, os fungos Pythium spp.,
Phytophthora spp., os nematoides como Meloidogyne spp., Pratylenchulus spp.,
Helicotylunchulus sp., Radopholus similis e bactérias como Ralstonia spp., Xanthomonas sp.,
Erwinia ssp. entre outras. A ocorrência desses agentes pode resultar em sérios prejuízos, e
dependendo do tipo e intensidade das perdas, podendo constituir-se em fator limitante para as
culturas (LORDELLO, 1992; TIHOHOD, 1993).
Os nematoides, de uma maneira geral, representam o maior número de indivíduos no
solo, ocupando posição principal na cadeia alimentar participando de processos ecológicos
fundamentais, como a decomposição e ciclagem de nutrientes no solo (LORDELLO, 1992).
Embora muitos nematoides desempenhem papel importante no ecossistema solo, e em muitos
casos são utilizados como bioindicadores de sua qualidade, alguns subgrupos formam
relações parasíticas com raízes de plantas, causando distúrbios nutricionais, deficiência na
translocação de água e nutrientes e, conseqüentemente, diminuição no potencial produtivo
(LORDELLO, 1992; TIHOHOD, 1993; FREITAS et al., 2004).
No Brasil, os nematoides formadores de galhas, são considerados os principais
responsáveis por perdas expressivas nas culturas, principalmente em regiões com
predominância de elevadas temperaturas, fator que favorece a manifestação do parasitismo
por esses nematoides, em razão do maior número de ciclos reprodutivos (LORDELLO, 1992;
TIHOHOD, 1993; FREITAS et al., 2004).
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Outro fator que agrava as infestações por nematoides, trata-se de plantios sucessivos
com espécies ou variedades susceptíveis, pois elevam os níveis populacionais dos nematoides
fitoparasitos, especialmente, os nematoides das galhas, nematoides das lesões e nematoides
cavernícolas. O problema aumenta, quando, na tentativa de minimizar o prejuízo e controlar o
nematoide, o agricultor tem gastos adicionais com fertilizantes, defensivos agrícolas e outras
práticas de manejo (LORDELLO, 1992; TIHOHOD, 1993; FREITAS et al., 2004).
O conhecimento das espécies e da variabilidade inter e intra-específica são fatores
basilares para manejar adequadamente as infestações causadas por esses fitopatógenos. No
gênero Meloidogyne, a identificação correta das espécies e raças, mediante diagnóstico,
permite estabelecer a cultura a ser explorada ou as que poderão compor planos de rotação e
até períodos de pousio. A resistência desenvolvida em uma cultivar não é necessariamente
efetiva contra todas as espécies e raças do nematoide.
O reconhecimento de espécies e gêneros de fitonematoides que atacam uma
determinada cultura é de grande importância para se formar um acervo de dados que serão
úteis nos laboratórios de diagnose e controle desses fitopatógenos (LORDELLO, 1992;
TIHOHOD, 1993).
A identificação e caracterização de fontes de resistência é aspecto importante quando
se estuda a reação de determinadas espécies vegetais ou variedades quanto à infecção por
nematoides. Então, por meio do conhecimento dessas possíveis fontes de resistência, a médio
e longo prazo, estas poderão ser utilizadas em cruzamentos interespecíficos e retro-
cruzamentos sucessivos a fim de selecionar materiais para resistência a nematoides e outros
caracteres de interesse agronômicos. Vale salientar ainda, que estes resultados são de extrema
importância, principalmente, para estas espécies estudadas, pois muitas dessas, notadamente
as medicinais, ainda não passaram por um rigoroso programa de melhoramento
(LORDELLO, 1992; TIHOHOD, 1993).
Os nematoides que infestam raízes de plantas ornamentais e medicinais incluem
Meloidogyne spp., Pratylenchulus spp., Radopholus similis, Rotylenchulus reniformis,
Aphelenchoides spp., dentre outros. Havendo, contudo, um predomínio de (34,38%) do
gênero Meloidogyne, sendo que o grau de danos depende da susceptibilidade da espécie ou
variedade, das condições ambientais, da presença de outros patógenos, que podem interagir
com os nematoides, e da densidade populacional desses patógenos (TIHOHOD, 1993;
FERRAZ & MONTEIRO, 1995).
Tem-se demonstrado que certas populações de uma mesma espécie de Meloidogyne
spp. podem variar quanto à hospedabilidade em diferentes plantas hospedeiras (Ponte,1977;
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Manso et al., 1994; Moreira, 2007). Em vista disso, essas populações têm sido referidas como
raças fisiológicas ou biótipos, sendo estes aspectos de extrema importância no manejo
fitossanitário (LORDELLO, 1992; TIHOHOD, 1993).
Belcher & Hussey (1977) comparando os efeitos antagônicos de Tagetes patula e do
amendoim (Arachis hypogaea) na redução da população de M. incognita, observaram que as
larvas pré-parasitas penetraram nas raízes das plantas, porém não incitaram aparecimento de
células gigantes, proporcionando uma redução na população de nematoide de 97% e 70%
respectivamente. Plantas do gênero Tagetes têm mostrado efeito antagônico a fitonematóide
inclusive no P. brachyurus. Dentre essas plantas destacam-se as leguminosas, compostas e
gramíneas, sendo as espécies do gênero Crotolaria as mais empregadas.
Os métodos mais usados para controlar fitonematoides tem sido o uso de nematicidas,
variedades resistentes e rotação de culturas. Os nematicidas, além de caros, podem ser
detrimentais ao ambiente, à saúde humana, à vida selvagem e aos organismos benéficos do
solo. Usar variedades resistentes é uma maneira natural e altamente recomendável de
controlar pragas e doenças. Contudo, no caso específico de nematoides, são poucas as
variedades resistentes disponíveis para o agricultor e, mesmo assim, a resistência geralmente é
direcionada a umas poucas espécies de nematoides considerados mais importantes para
determinadas culturas. Algumas práticas culturais, como a rotação de culturas, podem ser
usadas efetivamente, resultando em maiores produções e renda para o agricultor e sem agredir
o meio ambiente.
Considerando a importância dos fitonematóides, vários métodos têm sido desenvolvidos
visando o controle dos mesmos em diversas culturas, entre esses, o uso de plantas antagônicas
em plantios intercalados, consorciados ou em rotações. Na literatura brasileira pouco ou quase
nada existe sobre o controle de nematoides nas culturas perenes, fruteiras, essências florestais,
etc. Sabe-se que o controle químico com nematicidas pode ser bastante eficiente. Embora o
químico tenha efeito controlador, tem demonstrado também inúmeras limitações, como por
exemplo, a natureza temporária do controle obtido, a possibilidade de acumulação dos
materiais tóxicos no solo e o alto custo adicional (Lacerda, 2012).
O uso de plantas antagonistas em esquemas de rotação ou plantio consorciado tem se
mostrado uma alternativa bastante atrativa. Algumas delas são capazes de fixar nitrogênio da
atmosfera e todas fornecem expressivos volumes de matéria orgânica, aumentando a atividade
de fungos antagonistas e melhorando as características gerais do solo. Substâncias químicas
com efeito nematicida tem sido isoladas de algumas dessas plantas e produtos naturais já
estão aparecendo no mercado.
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Segundo Quarles (1992), extratos botânicos apresentam algumas vantagens sobre
pesticidas sintéticos, tais como: eles podem oferecer novos compostos que as pragas ainda
não podem inativar; eles são menos concentrados e, portanto, potencialmente menos tóxicos
do que compostos puros; eles sofrem biodegradação rápida e podem possuir múltiplos modos
de ação, tornando possível um amplo espectro de uso enquanto retêm uma ação seletiva
dentro de cada classe de praga, e eles são derivados de recursos renováveis, diferentemente
dos materiais sintéticos.
4. Material e Métodos
4.1 Local de realização dos ensaios
O trabalho será desenvolvido no Instituto Federal de Educação, Ciência e Tecnologia
do Ceará – IFCE, Campus de Sobral, no Laboratório de Fitossanidade, o qual conta com
estrutura física e de equipamentos compatível com as necessidades que estes ensaios
demandam. Com relação à parte de identificação das espécies, em nível específico,
contaremos com a Cooperação do Laboratório de Nematologia, do Departamento de
Fitotecnia, do Centro de Ciências Agrárias, da Universidade Federal do Ceará – UFC, em
Fortaleza-CE.
4.2 Extração e identificação dos nematoides
As amostras de solo e raiz serão obtidas de áreas produtores de frutíferas do Perímetro
Irrigado Baixo Acaraú, em Marco – CE.
As propriedades estão situadas no Perímetro Irrigado do Baixo Acaraú, no município de
Marco, CE, latitude sul 03°01’ a 03°22’; longitude oeste 40°01’ a 40°09’, conforme Figura 1.
O clima segundo a classificação de Köppen é do tipo AW’, tropical chuvoso com chuvas
máximas no outono (março a abril), (DIBAU, 2012; FUNCEME, 2012). A temperatura média
anual é de 28 °C, umidade relativa do ar de 70%, precipitação pluviométrica média de 1.024
mm e altitude variando de 36 a 56 m. São solos profundos, bem drenados, de textura leve e
muito permeável (DIBAU, 2012; FUNCEME, 2012).
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Os dados pluviométricos, durante o período experimental, serão obtidos das estações
meteorológicas da Associação dos Condôminos do Distrito de Irrigação do Baixo Acaraú
(DIBAU), localizado dentro das áreas experimentais.
Figura 1. Localização da Bacia Hidrográfica do Rio Acaraú (esquerda) e do Perímetro
Irrigado Baixo Acaraú (direita).
Serão realizadas 12 amostras em cada área nas culturas de banana, maracujá, melão,
graviola, melancia, abacaxi, goiaba, mamão, acerola, caju, caqui e pomelo. Em cada área a
amostragem se repetirá por seis meses (de agosto de 2012 a janeiro de 2013).
Esta metodologia de amostragem tem por finalidade verificarmos com certeza
qualquer possibilidade de nematoides na área, visto que este período, de seis meses, é tempo
suficiente para que qualquer forma de resistência destes fitopatógenos sejam estimuladas a
eclodirem.
As coletas das amostras de solo e raízes serão realizadas na projeção da copa da planta
em quatro pontos equidistantes (quadrantes) cerca de 1,0 m dos ramos centrais, retirando-se
cerca de 0,50 Kg de cada local da planta. A retirada do material será feita com enxadão ou
trado, na profundidade de 0 a 20 cm. Em áreas de fruteiras herbáceas (abacaxi, maracujá,
melão, melancia, etc.); se a fruteira ainda estiver plantada, faremos à coleta na linha de
plantio, sendo quatro subamostras, entre quatro plantas sequenciais; caso a fruteira não esteja
mais plantada, as subamotras serão colhidas aleatoriamente na área, observando-se o
andamento em zigue zaque, para se evitar tendenciosidade dos dados. As quatro subamostras
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coletadas serão misturadas em um balde, daí retira-se um alíquota de aproximadamente 1,0
Kg, contemplando uma amostra por planta, em no mínimo 12 plantas de cada área de um
hectare.
A extração dos nematoides das raízes será conduzida utilizando-se a técnica do Funil
de Baermann (Tihohod, 1992) e, para a extração dos mesmos em solo será utilizada a técnica
do peneiramento mais modificação do funil de Baermann. Observados os espécimes, estes
serão colocados em lâminas e fixadas em Formalina a 4%. Será feito 10 lâminas de cada
espécie.
Depois de fixados, estes materiais serão enviados ao Laboratório de Nematologia da
UFC, em Fortaleza, para a correta identificação.
Para ensaios futuros e não se perder o material coletado, metade de cada amostra será
colocada em vaso de polietileno, no qual será plantada uma muda de tomate ‘Santa Clara’,
visto que esta variedade é susceptível a todos os nematoides fitoparasitas.
4.3 Avaliação de tratamentos com plantas antagônicas
Estes ensaios serão realizados em casa de vegetação do IFCE, Campus de Sobral, em
Sobral – CE.
Depois de identificadas as espécies de nematoides presentes nas áreas amostradas,
fazermos, em casa de vegetação, ensaios com cinco espécies antagônicas quais sejam: cravo
de defunto (Tagetes minuta) crotalária (Crotalaria juncea), mucuna (Mucuna pruriens), nim
(Azadirachta indica) e sorgo (Sorgum bicolor).
Para cada espécie de nematoide identificada será feito a avaliação nematicida ou
nematostática das plantas antagônicas supra citadas. Com o emprego destas plantas pretende-
se estudar a reprodução dos nematóides.
A partir de uma população monoespecífica, ou seja, obtida de uma única massa de ovos,
identificada de cada espécie de nematoide, esta será multiplicada em tomate (Solanum
esculetum) cv. Santa Clara, que é susceptível a todas as espécies de fitonematoides.
As espécies de plantas antagonistas serão plantadas em vasos de polietileno com
capacidade de 5,0 kg de solo. Para a espécie nim, que é uma árvore, será retirada de plantas
adultas, presentes no Campus quantidade proporcional às outras espécies, sendo estas
trituradas e incorporadas ao solo infestado com os nematoides. Aos 40 dais após o plantio,
estas plantas serão arrancadas e trituradas. Este lapso de tempo é suficiente para que cada
planta tenha uma fitomassa de cerce de 1,0 Kg. O material triturado será incorporado ao solo
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infestado com cada espécie do nematóide anteriormente identificado, com seis repetições
cada. Passadas 24 horas, serão plantados tomate ‘Santa Clara’, que é uma variedade
susceptível a todas as espécies de nematoides. As mudas de tomate serão transplantas para
estes vasos aos 12 dias após a semeadura. As mudas de tomate serão feitas na própria casa de
vegetação em bandejas de isopor de 128 células. Passados 45 dias do transplantio, tempo
suficiente para que as espécies de nematoides tenham completado, em média, dois ciclos de
vidas, far-se-á a avaliação final do experimento LORDELLO, 1992; TIHOHOD, 1993;
FREITAS et al., 2004; MOREIRA, 2007; MOREIRA et al., 2009). As variáveis mensuradas
nesta oportunidade serão: número de galhas (NG), número de ovos (NO), índice de massa de
ovos (IMO), fator de reprodução (FR) e redução do fator de reprodução (RFR). Para o cálculo
do número de ovos (NO), será realizada a extração dos ovos em uma porção de 20 g de raízes
de cada espécie, realizando-se seis repetições para cada espécie.
A extração se dará pela técnica de Hussey e Barker (1973) apud Tihohod (1993). Para
melhorar o procedimento e a visualização dos ovos e juvenis extraídos, a suspensão obtida
será submetida ao método de Flotação e Centrifugação, proposto por Jenkins (1964) apud
Tihohod (1993), acrescida de caolim (COOLEN; D’HERDE, 1972 apud TIHOHOD, 1993).
A contagem do número de ovos e juvenis será realizada com o auxílio de câmara de Peters,
em microscópio estereoscópio.
4.4 Análise estatística
O ensaio será montado em delineamento inteiramente casualizado (DIC). O número de
tratamentos vai depender da quantidade de espécies de nematoides que forem identificadas. O
número de repetições serão 6 de cada espécie vegetal antagonista em cada espécie de
nematoide. Seis repetições serão mantidas de cada espécie antagonista em solo estéril
(testemunhas negativas) e seis serão mantidas em solo infestado e sem tratamento
(testemunhas positivas). Os dados obtidos nesse ensaio serão submetidos à verificação da
homogeneidade das variâncias pelo teste de Hartlet, conforme BANZATO & KRONKA
(2005). Observada a normalidade dos dados, proceder-se-á à análise de variância, a qual será
realizada no programa estatístico Assistat versão 7,4 beta (Silva e Azevedo, 2009), sendo as
variâncias comparadas pelo teste F ao nível de 1% de probabilidade. A comparação das
médias entre os tratamentos com os óleos essenciais fez-se pelo teste de Tukey ao nível de 1%
de probabilidade. Os dados dos resultados serão expressos em Tabelas.
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4.5 Necessidade de Bolsistas
Para este projeto será necessário dois bolsistas, conforme se verifica nos Quadro 1 e 2,
onde estão expostas as atividades que os mesmos deverão desempenhar.
A necessidade dos dois bolsistas se dá em função da quantidade de amostras de
material que serão coletadas e posteriormente analisadas em cada coleta, conforme está
discriminado na metodologia. Depois dessa primeira fase, na avaliação das espécies
antagonistas também há necessidade destes bolsistas pois serão muitos tratamentos a serem
analisados concomitantemente.
Todas as atividades realizadas neste projeto terão a participação efetiva do(a)s
bolsistas com o acompanhamento do orientador. Desta forma, o mesmo será inteirado de toda
a metodologia científica pertinente à área, como montagem de experimentos, avaliação de
tratamentos, coleta de dados, tabulação dos dados, o acompanhamento das análises estatísticas
e a interpretação dos resultados.
Além do mais, o mesmo será estimulado a redigir textos em linguagem científica,
sejam estes resumos, relatórios parcial e final, além de artigos.
Será feito o acompanhamento das apresentações dos resultados obtidos, sejam estes
por meio de apresentações orais (apresentação tipo Power Point) ou apresentações em pôster.
Neste ínterim, pretende-se mostrá-lo as melhores formas de apresentação de dados e de como
os resultados de pesquisas científicas devem ser repassadas aos produtores rurais.
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Quadro 1. Cronograma de Atividades do(a) Bolsista 1
Atividades
Amostragens de solo e raiz
Extração e montagem das laminas com os nematoides
Identificação das espécies de nematoides com a participação do
bolsista e do orientador ( 1 )
Multiplicação dos nematoides
Escrever trabalhos para enviar ao 44º Congresso Brasileiro de
Fitopatologia
Escrever trabalhos para serem apresentados nos Encontros de IC do
IFCE e da UFC e também na JIPE e no CONNEPI.
Redação do relatório parcial pelo bolsista e correções e sugestões do
Orientador.
Entrega do relatório parcial
Ensaios em casa de vegetação
Escrever trabalhos para serem apresentados nos Encontros de IC e
para Revista Especializada
Redação do relatório final pelo bolsista e correções e sugestões do
Orientador.
Entrega do relatório final
2012 2013
Ago Set Out Nov Dez Jan Fev Mar Abr Mai Jun Jul
1 Será realizada no Laboratório de Fitossanidade do IFCE, Campus de Sobral; em caso de necessidade estrutural ou de pessoal este será realizado em parceria com o Laboratório de
Nematologia da UFC, em Fortaleza-CE.

Quadro 2. Cronograma de Atividades do(a) Bolsista 2
Atividades
Amostragens de solo e raiz
Extração e montagem das laminas com os nematoides
Identificação das espécies de nematoides com a participação do
bolsista e do orientador ( 1 )
Multiplicação dos nematoides
Escrever trabalhos para enviar ao 44º Congresso Brasileiro de
Fitopatologia
Escrever trabalhos para serem apresentados nos Encontros de IC do
IFCE e da UFC e também na JIPE e no CONNEPI.
Redação do relatório parcial pelo bolsista e correções e sugestões do
Orientador.
Entrega do relatório parcial
Ensaios em casa de vegetação
Escrever trabalhos para serem apresentados nos Encontros de IC e
para Revista Especializada
Redação do relatório final pelo bolsista e correções e sugestões do
Orientador.
Entrega do relatório final
2012 2013
Out Nov Dez Jan Fev Mar Abr Mai Jun Jul Ago Set
1 Será realizada no Laboratório de Fitossanidade do IFCE, Campus de Sobral; em caso de necessidade estrutural ou de pessoal este será realizado em parceria com o Laboratório de
Nematologia da UFC, em Fortaleza-CE.

5. Diferenciais e Benefícios da Solução Proposta
O diferencial desta técnica é a utilização de uma alternativa para o controle destes
patógenos tão prejudiciais á fruticultura. Pois com a utilização de plantas antagônicas, evita-se
a utilização de defensivos químicos de síntese que são muito tóxicos ao homem e ao ambiente
e são geralmente muito caros.
Outro fator importante é o fato de muitas áreas de fruteiras no referido Perímetro
Irrigado estarem em processo de conversão para a Agricultura Orgânica, fator esse que majora
a importância desta pesquisa.
6. Potencial de Transferência de Tecnologia
Pelo fato de se utilizar plantas antagônicas, sem risco contaminação ao homem e ao
ambiente, o processo de transferência de tecnologia é relativamente simples, sendo necessário
apenas palestras, dias de campo e um panfleto explicativo da metodologia empregada, com os
interessados para a observação dos resultados alcançados e as formas de utilização da mesma.
Salienta-se ainda que será necessário apenas uma pequena área para multiplicação das
sementes das espécies estudas e a posterior formação das mudas que serão utilizadas no
controle do referido fitopatógeno.
Portanto, trata-se de uma técnica viável e de fácil acesso pelos produtores, mesmo
aqueles de menor nível de instrução.
7. Resultados Esperados
Com esta pesquisa pretende-se identificar as espécies de nematoides fitopatogênicos
que acometem as fruteiras produzidas no Perímetro Irrigado e catalogá-los, como forma de
manter um acervo de dados para diagnóstico de futuros problemas que possam vir a ocorrer
em virtude da presença destes patógenos.
Com relação aos tratamentos com as plantas antagonistas, espera-se que se tenha
sucesso com algumas das espécies testadas e que isto sirva também de incentivo para os
produtores utilizarem no manejo preventivo e/ou curativo destes fitopatógenos.

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