Präanalytik Mikrobiologie
Präanalytik Mikrobiologie
Präanalytik Mikrobiologie
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Präanalytik<br />
<strong>Mikrobiologie</strong><br />
Institut für Labormedizin<br />
und <strong>Mikrobiologie</strong><br />
Prof. DDr. Pranav Sinha<br />
I n s t i t u t f ü r L a b o r m e d iz in un d M ikrob io log ie ~ M ikr o b i o l o g ie S e i t e 0<br />
EN ISO 9001: 2008<br />
EN ISO 15189
Allgemeines<br />
Die Präanalytik ist ein wichtiger Bestandteil bei der Befunderstellung im<br />
Mikrobiologischen Labor.<br />
Bestimmte Keime brauchen eine spezielle Umgebung und sterben bei Fehlen dieser<br />
rasch ab. Wiederum kann die Begleitflora gesuchte Keime überwuchern und ein<br />
Nachweis des Pathogens gelingt nicht. Sorgen sie daher für einen möglichst raschen<br />
Transport ins Labor!<br />
Durch eine korrekte Probengewinnung und Lagerung helfen sie uns die pathogenen<br />
Keime nachzuweisen und ein Antibiogramm zur adäquaten antimikrobiellen Therapie zu<br />
erstellen.<br />
Für Rückfragen stehen wir ihnen gerne zur Verfügung.<br />
Erreichbarkeit<br />
Öffnungszeiten<br />
Probenannahmezeiten Klinikum<br />
Klagenfurt intern<br />
Montag bis Freitag 7.30 bis 16.00 7.30 bis 13.30<br />
Samstag 7.30 bis 15.00 8.00 bis 9.30<br />
Sonn- u. Feiertags<br />
geschlossen<br />
Für Probeneinsendungen in dringenden Fällen, außerhalb der Probenannahmezeiten,<br />
telefonische Vorankündigung erforderlich.<br />
Ambulante Blutgewinnung und Harnabgabe<br />
Montag bis Donnerstag 7.30 bis 15.00 im CMZ- Raum 30<br />
Freitag 7.30 bis 13.00 im CMZ- Raum 30<br />
Probenabgabe von extern gewonnenen Materialien<br />
Montag bis Samstag<br />
durchgehend im Labor (VEZ) möglich<br />
Idealerweise innerhalb der Probeannahmezeiten<br />
Telefonverzeichnis<br />
Allgemeine mikrobiologische Auskünfte 0463 538 - 38455<br />
Stuhllabor (Mo - Fr) 0463 538 - 38454<br />
Ärztliche Auskunft<br />
Prim. Prof. DDr. Pranav Sinha 0463 538 - 27400<br />
MinR. EOA Dr. Evelyn Grund 0463 538 - 27418<br />
OA Dr. Sieglinde Sorschag 0463 538 - 27417<br />
OA Dr. Margarete Hobisch- Pirkel 0463 538 - 27419<br />
OA Dr. Verena Schliesser 0463 538 - 27414<br />
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Lagerung des Probenmaterials<br />
Die Lagerung ist vom Keim und vom verwendeten Transportmedium abhängig.<br />
Grob unterscheidet man drei Temperaturbereiche:<br />
Raumtemperatur ~ 21°C<br />
Kühlschrank ~ 04°C<br />
Brutschrank ~ 37°C<br />
Was ist beim Transport zu beachten?<br />
Die Probe sollte auf dem schnellsten Weg ins Labor gebracht werden.<br />
Warum die genaue Auftragsbeschreibung?<br />
Name u. Geburtsdatum etc.<br />
Gewünschte Untersuchung<br />
Material<br />
Lokalisation<br />
Reiseanamnese<br />
Relevante klinische Diagnose<br />
Antibiose<br />
Uhrzeit und Datum der<br />
Abnahme<br />
Eindeutige Zuordnung des Patienten<br />
Probenbearbeitung und Untersuchungsumfang<br />
Probenbearbeitung und Untersuchungsumfang<br />
Zuordnung und Untersuchungsumfang<br />
Keimspektrumerweiterung<br />
z.B. Harnwegsinfekt bei Prostatahyperplasie<br />
Austestung des verabreichten oder geplanten<br />
Antibiotikums<br />
Zuordnung und essentiell für „Differential time to<br />
positivity“ (siehe Blutkulturen)<br />
Besonders wichtige Materialien (z.B.: Liquor auf Meningokokkenverdacht) bitte vorher<br />
telefonisch ankündigen um eine rasche Diagnose und Befundübermittlung zu<br />
gewährleisten.<br />
Haben Sie eine besondere Fragestellung, Fragen zu einem Befund oder brauchen<br />
sie eine Hilfestellung bei der Befundinterpretation?<br />
Nehmen sie Kontakt mit uns auf. Unsere Kontaktdaten finden sie auf Seite 1.<br />
Wofür steht eigentlich?<br />
ESBL<br />
MRSA<br />
CPE<br />
VRE<br />
AmpC<br />
Extendet Spektrum ß- Laktamase<br />
Methicillin resistenter Staphylococcus aureus<br />
Carbapenemase produzierende Enterobakterien<br />
Vancomycin resistente Enterokokken<br />
ß- Lactamase aus der Ambler C Gruppe<br />
NAT<br />
Nuclein Amplifikations Technik (früher PCR)<br />
Aerobe Keime Unter aeroben Standardbedingungen kultivierbare Keime<br />
Anaerobe Keime Unter anaeroben Standardbedingungen kultivierbare Keime<br />
Pilzwachstum Unter Standardbedingungen kultivierbare Pilze<br />
Semiquantitativ Mengenangabe in definierten Größenschritten (z.B.: +, ++, )<br />
EUCAST<br />
CLSI<br />
European Comittee for Antimicrobial Suseptibility Testing<br />
Clinical and Laboratory Standards Institute<br />
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Blutkultur (BK)<br />
Wann?<br />
Wie?<br />
Probengefäß<br />
BacT/ Alert<br />
Ein BK Set<br />
besteht beim<br />
Erwachsenen<br />
immer aus einer<br />
aeroben und<br />
anaeroben<br />
Flasche<br />
Wie oft?<br />
Lagerung<br />
Berichtete<br />
Erreger<br />
Bitte beachten<br />
Befunddauer<br />
Fieber unklarer Genese; Sepsis, Meningitis, Pneumonie,<br />
Pyelonephritis, Osteomyelitis, Peritonitis, Katheterassoziierte<br />
Infektion etc.<br />
Hygienische Händedesinfektion, Hautdesinfektion; BK-<br />
Durchstichseptumdesinfektion, Punktion einer peripheren Vene<br />
Bei Verdacht auf Katheter assoziierte Infektion parallele<br />
Abnahme aus Katheter und aus peripherer Vene. Genau die<br />
gleiche Blutmenge in alle Blutkulturflaschen (ein Set vom<br />
Katheter, ein Set von peripher) füllen und Lokalisation eindeutig<br />
beschriften.<br />
Blutmenge:<br />
Erwachsende 5 - 10ml<br />
Kinder 0,5- 5ml (BACTEC TM Peds TM Plus/ F; gelber Verschluss)<br />
Ohne Aktivkohle: Aerob: blau, Anaerob: weinrot<br />
Mit Aktivkohle: Aerob: grün, Anaerob: orange<br />
2-3 BK Sets innerhalb von 24h - unter Antibiose ggf. mehr<br />
Die BK Sets können falls erforderlich innerhalb weniger Minuten<br />
abgenommen werden, aber jeweils durch getrennte Abnahmen<br />
Entnahme von BK zur Therapiekontrolle unter laufender<br />
Antibiose ist frühestens 72h nach Einleitung der empirischen<br />
Therapie sinnvoll. Bester Zeitpunkt ist das Ende des<br />
Dosierungsintervalls.<br />
Möglichst rasch ins Labor, sonst max. 16h bei Raumtemperatur<br />
Aerobe und anaerobe Bakterien, Pilze nach Anforderung<br />
Bei besonderen klinischen Fragestellungen <strong>Mikrobiologie</strong><br />
kontaktieren<br />
Bei Fragestellung „Time to positivity“ dies unter Vermerk<br />
angeben<br />
Barcode nicht überkleben<br />
Flaschen nicht belüften<br />
BK Abnahme möglichst vor erster Antibiotikagabe bzw. am<br />
Ende des Dosierungsintervalls.<br />
Bei laufender Antibiose BK mit Aktivkohle verwenden<br />
Alle BK werden 6 Tage bebrütet, erst danach kann ein negativer<br />
Befund erwartet werden<br />
Bei positiver BK wird das Ergebnis der Gramfärbung telefonisch<br />
mitgeteilt.<br />
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Intravasale Katheter<br />
Wann?<br />
Verdacht auf Katheterassoziierte Infektion<br />
Wie?<br />
Probengefäß<br />
Steriles Gefäß<br />
ohne Nährmedium<br />
Maximal 5cm des distalen Ende des Katheters steril abschneiden<br />
und zusammen mit 1ml steriler 0,9% NaCl in steriles Röhrchen<br />
geben.<br />
Wie oft?<br />
Bei Bedarf<br />
Lagerung 2h bis 24h bei 4°C<br />
Berichtete aerobe Keime, Pilze nach Anforderung<br />
Erreger<br />
Keimzahl<br />
quantitative Keimzahlbestimmung<br />
Bitte beachten Bei Einsendung in Transportmedium ist keine<br />
Keimzahlbestimmung möglich<br />
Befunddauer 2-3 Tage<br />
Liquor<br />
Wann?<br />
Wie?<br />
Probengefäß<br />
Steriles Gefäß<br />
ohne Nährmedium<br />
Bakterielle-, Pilz-, TBC- Meningitis, Shuntinfektion<br />
Vor Antibiotikatherapie, gleichzeitig. sollte eine BK<br />
abgenommen werden<br />
5- 10ml in 2- 3 sterile Probenröhrchen aufgeteilt<br />
Wie oft?<br />
Lagerung<br />
Berichtete<br />
Erreger<br />
Bitte beachten<br />
Befunddauer<br />
Bei Bedarf<br />
Möglichst rasch ins Labor, sonst
Nasenabstrich MRSA Screening<br />
Wann?<br />
MRSA Screening<br />
Wie?<br />
Probengefäß<br />
Gefäß mit<br />
Transportmedium<br />
(zB. Tupfer mit<br />
Transportmedium,<br />
Port- F ® )<br />
Wie oft?<br />
Lagerung<br />
Berichtete<br />
Erreger<br />
Bitte beachten<br />
Befunddauer<br />
Schleimhaut des Vestibuli nasi mit 0,9% NaCl befeuchteten<br />
Tupfer unter Drehbewegung abstreichen. Mit gleichem Tupfer<br />
Vorgang bei zweitem Nasenloch wiederholen<br />
Entsprechend den aktuellen Hygienerichtlinien des Hauses<br />
Möglichst rasch ins Labor ,
Otitis media<br />
Wann?<br />
Wie?<br />
Probengefäß<br />
Tupfer mit<br />
Transportmedium<br />
oder Einsendung<br />
des Aspirats<br />
Wie oft?<br />
Lagerung<br />
Berichtete<br />
Otitis media<br />
a) Trommelfell intakt:<br />
Reinigung des äußeren Gehörgangs mittels 0,9% NaCl und<br />
sterile Aspiration aus dem Mittelohr<br />
b) Trommelfell rupturiert:<br />
Abnahme von Material mittels Tupfer<br />
Eine Probe und bei Bedarf<br />
Nasennebenhöhlen<br />
Wann?<br />
Chronische, rezidivierende oder persistierende Sinunsitis<br />
Wie?<br />
Unter sterilen Bedingungen gewonnenes Material<br />
Probengefäß<br />
Gefäß mit<br />
Transportmedium<br />
(zB. Tupfer mit<br />
.<br />
Transportmedium,<br />
Port- F ® ) oder<br />
Material in Spritze<br />
Wie oft?<br />
Eine Probe und bei Bedarf<br />
Lagerung Möglichst rasch ins Labor;
Unterer Respirationstrakt:<br />
Sputum, Trachealsekret, Bronchialsekret, Lavage, Bürste<br />
Wann?<br />
Pneumonie<br />
Wie?<br />
Probengefäß<br />
Sterile<br />
Transportgefäße<br />
ohne Nährmedium<br />
Entfernung der Prothese und Reinigung der Mundhöhle mittels<br />
Leitungswasser<br />
Das Sputum sollte möglichst aus der Tiefe abgehustet werden,<br />
Speichel ist zur Diagnostik ungeeignet<br />
Bürsten in 1ml steriler NaCl-Lösung<br />
Wie oft?<br />
Lagerung<br />
Berichtete<br />
Erreger<br />
Bitte beachten<br />
Befunddauer<br />
Mehrere zu verschiedenen Zeiten gewonnene Sputa<br />
Sekrete einmal und je nach Klinik<br />
Möglichst innerhalb 1- 2 Stunden ins Labor<br />
Pathogene Keime, Pilze nach Anforderung, Legionellen<br />
Bei längerer Lagerung überwuchert die Standardflora<br />
2- 5 Tage, bei positivem Pilz- und/oder Legionellenwachstum<br />
erfolgt ein Nachtragsbefund<br />
TBC: Magensaft, Urin, Sputum, Bronchialsekret, Punktionsflüssigkeiten<br />
Wann?<br />
Mycobacterium tuberculosis Nachweis<br />
Wie? Magensaft: Über Magensonde bei nüchternen Patienten 25-<br />
50ml steriles 0,9% NaCl instillieren und nach Aspiration in<br />
steriles Gefäß mit Pufferlösung (40% Na 2 HPO 4, Anforderung in<br />
der <strong>Mikrobiologie</strong>) füllen.<br />
Urin: Morgenurin, kein Mittelstrahlharn!, mindestens 30ml<br />
Sputum: Morgensputum mindestens 2- 5ml, kein Speichel!<br />
Bronchialsekret: 2- 5ml<br />
Bronchioalveoläre Lavage: 10- 30ml<br />
Punktionsflüssigkeiten: ca. 20ml, nur natives Material<br />
Gewebe: ausreichend natives Material<br />
Probengefäß<br />
Steriles Gefäß<br />
ohne Nährmedium<br />
Wie oft?<br />
Lagerung<br />
Berichtete<br />
Erreger<br />
Bitte beachten<br />
Befunddauer<br />
Eine Probe und bei Bedarf<br />
Sputum mindestens je 1 Probe von 3 unterschiedlichen Tagen<br />
Magenbiopsie<br />
Wann?<br />
Wie?<br />
Probengefäß<br />
PORT- PYL ®<br />
Vd.a. Helicobacter pylori assoziierte Gastritis<br />
Magenbiopsie: Biopsiematerial aus Antrum und/oder Corpus<br />
Wie oft?<br />
Lagerung<br />
Berichtete<br />
Erreger<br />
Bitte beachten<br />
Befunddauer<br />
Wundabstriche<br />
Wann?<br />
Wie?<br />
Probengefäß<br />
Gefäß mit<br />
Transportmedium<br />
(zB. Tupfer mit<br />
Transportmedium,<br />
Port- F ® )<br />
Wie oft?<br />
Lagerung<br />
Berichtete<br />
Erreger<br />
Bitte beachten<br />
Befunddauer<br />
Eine Probe und bei Bedarf<br />
Primär sterile Körperflüssigkeiten<br />
Wann?<br />
Bei Verdacht auf Infektion<br />
Wie?<br />
Probengefäß<br />
Gefäß mit<br />
Transportmedium<br />
PORT- F ® oder<br />
Spritze mit Inhalt<br />
Wie oft?<br />
Lagerung<br />
Berichtete<br />
Erreger<br />
Bitte beachten<br />
Befunddauer<br />
Aspiration von mindestens 2ml Flüssigkeit, diese in spezielles<br />
Transportmedium (PORT- F ® ) einspritzen und nicht belüften,<br />
oder Spritze mit Inhalt nach Entlüften verschlossen (in einem<br />
Übergefäß) einsenden.<br />
.<br />
Eine Probe und bei Bedarf<br />
Möglichst rasch ins Labor,<br />
Dekubitus<br />
Wann?<br />
Wie?<br />
Dekubital Infektion<br />
Oberfläche gründlich mit 0,9% NaCl reinigen und Biopsie oder<br />
Nadelaspirat von der Basis oder vom Rand der Läsion nehmen.<br />
Probengefäß<br />
Gefäß mit<br />
Transportmedium<br />
(zB. Tupfer mit<br />
Transportmedium<br />
, Port- F ® ) .<br />
Wie oft?<br />
Lagerung<br />
Berichtete<br />
Erreger<br />
Bitte beachten<br />
Befunddauer<br />
Abszess<br />
Wann?<br />
Wie?<br />
Eine Probe und bei Bedarf<br />
Cellulitis/ Erysipel<br />
Wann?<br />
Wie?<br />
Weichteilinfektion<br />
Mit dünner Nadel und geringer Menge an 0,9% NaCl von der am<br />
stärksten inflammierten Stelle aspirieren.<br />
Probengefäß<br />
Gefäß mit<br />
Transportmedium<br />
(zB. PORT- F ® )<br />
oder Spritze mit<br />
Probeninhalt .<br />
Wie oft?<br />
Lagerung<br />
Berichtete<br />
Erreger<br />
Bitte beachten<br />
Befunddauer<br />
Eine Probe und bei Bedarf<br />
Harn<br />
Wann?<br />
Wie?<br />
Probengefäß<br />
Grüne<br />
Harnmonovette<br />
Harnwegsinfekt, Pyelonephritis, Urosepsis, Urethritis<br />
Morgenharn oder Harn 3 Stunden nach letzter Miktion ist zu<br />
bevorzugen!<br />
Mittelstrahlharn:<br />
Hände sorgfältig mit Seife und Wasser waschen, abspülen und<br />
trocknen.<br />
Frau:<br />
Mit einer Hand die Schamlippen spreizen und geöffnet halten<br />
(bis die Uringewinnung abgeschlossen ist)<br />
Äußeren Geschlechtsbereich mit der anderen Hand von vorne<br />
nach hinten 3x mit in handwarmem Leitungswasser getauchten<br />
Tupfer reinigen. Dabei jeweils einen neuen Tupfer verwenden.<br />
Nachdem der Harnstrahl für etwa drei Sekunden in Gang<br />
gekommen ist, den Harn ohne den Harnstrahl zu unterbrechen<br />
in sterilem Becher auffangen. Dabei nicht den Becherrand<br />
durch Hände oder Kleidung berühren.<br />
Mann:<br />
Vorhaut vollständig zurückziehen und Glans penis mit einen in<br />
handwarmen Leitungswasser befeuchteten Tupfer 2x reinigen.<br />
Dabei jeweils einen neuen Tupfer verwenden.<br />
Mit drittem Tupfer Eichel und Harnröhrenöffnung trocknen.<br />
Nachdem der Harnstrahl für etwa drei Sekunden in Gang<br />
gekommen ist, den Harn ohne den Harnstrahl zu unterbrechen<br />
in sterilen Becher auffangen. Dabei nicht den Becherrand<br />
durch Hände oder Kleidung berühren.<br />
Einmalkatheter: Nach Einführen des Katheters wird analog des<br />
Mittelstrahlharnes die erste Portion verworfen.<br />
Dauerkatheter: Nach Desinfektion und Einhaltung der<br />
Einwirkzeit Punktion der vorgesehenen Einstichstelle.<br />
Sackerlharn: Gründliche Reinigung des Perineums mittels<br />
feuchten Tupfers.<br />
Erststrahlurin: Reinigung wie bei Mittelstrahlurin. Erste<br />
Harnportion verwenden. Indikation: Urethritis<br />
Wie oft?<br />
Lagerung<br />
Berichtete<br />
Erreger und<br />
Ereignisse<br />
Keimzahl<br />
Bitte beachten<br />
Eine Probe und bei Bedarf<br />
Schnellstmöglich ins Labor, native Harne bei 4°C lagern<br />
Aerobe Keime, Pilze nach Anforderung<br />
Antibiotikaspiegel<br />
quantitative Keimzahlbestimmung<br />
Bei zu geringer Harngewinnung die Monovette mit sterilem<br />
0,9% NaCl auf 10ml auffüllen und dies im Auftragsschein/<br />
Lauris vermerken.<br />
Ein Nachweis von drei und mehr Mikroorganismen<br />
verschiedener Spezies spricht für eine Kontamination.<br />
Eine Kontrolle ist zu empfehlen.<br />
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Befunddauer<br />
Harn aus Sackerlharn bei Säuglingen ist nur zum<br />
Infektionsausschluss aussagekräftig. Erregernachweise sind<br />
durch Kontrolluntersuchungen zu bestätigen.<br />
2- 5 Tage<br />
Fixnährböden Muttemilchdiagnostik (z.B.: Hygicult ® )<br />
Wann?<br />
Untersuchung der Muttermilch auf pathogene Keime<br />
Wie?<br />
Hygienische Händedesinfektion, danach Brustwarze und<br />
Warzenhof mit in Wasser befeuchtetem Tupfer reinigen<br />
Milch abpumpen<br />
Fixnährböden drei bis vier Sekunden in Muttermilch eintauchen<br />
und gut abtropfen lassen.<br />
Probengefäß Probengefäß je nach verwendeten Hersteller, z.B.: Hygicult ®<br />
Wie oft?<br />
Eine Probe und bei Bedarf<br />
Lagerung Bebrütung laut Herstellerangaben oder rasche Einsendung ins<br />
Labor<br />
Berichtete<br />
Aerobe Keime, Pilze<br />
Erreger<br />
Keimzahl<br />
quantitative Keimzahlbestimmung<br />
Bitte beachten Herstellerangaben beachten<br />
Befunddauer 1- 3 Tage<br />
Urethral Abstrich<br />
Wann?<br />
Wie?<br />
Probengefäß<br />
Dünner Stieltupfer<br />
mit<br />
Transportmedium<br />
Urethritis<br />
Mittels dünnem Stieltupfer Materialgewinnung aus der vorderen<br />
Harnröhre. Für Chlaymdiendiagnostik eigenes Abnahmebesteck<br />
verwenden.<br />
remel MicroTest TM<br />
M4RT ® Transport<br />
Wie oft?<br />
Lagerung<br />
Berichtete<br />
Erreger<br />
Bitte beachten<br />
Befunddauer<br />
Eine Probe und bei Bedarf<br />
Ejakulat, Prostataexprimat<br />
Wann?<br />
Verdacht auf Prostatitis<br />
Wie?<br />
Probengefäß<br />
Steriles<br />
Probengefäß<br />
ohne Nährmedium<br />
Glans Penis mittels Wasser reinigen, Gewinnung mittels<br />
Prostatamassage/ Ejakulat<br />
Wie oft?<br />
Lagerung<br />
Berichtete<br />
Erreger<br />
Bitte beachten<br />
Befunddauer<br />
Eine Probe und bei Bedarf<br />
Stuhl<br />
Wann?<br />
Wie?<br />
Probengefäß<br />
Stuhlgefäß mit<br />
Schraubverschluss<br />
Objektträger mit<br />
Klebesteifen<br />
Wie oft?<br />
Lagerung<br />
Berichtete<br />
Erreger<br />
Bitte beachten<br />
Befunddauer<br />
Diarrhoe, Hämolytisch Urämisches Syndrom, Eosinophilie<br />
Bevorzugt blutig schleimige Stuhlanteile einsenden<br />
walnussgroßer Stuhlanteil oder 5ml flüssiger Stuhl<br />
Clostridium difficile: nur flüssiger oder schleimiger Stuhl wird<br />
bearbeitet<br />
Oxyurennachweis über Analabklatsch mittels Klebestreifen<br />
Für Amöbennachweis körperwarmen Stuhl überbringen<br />
Noroviren über NAT gesondert anfordern<br />
Je eine Probe an drei aufeinanderfolgenden Tagen<br />
Für Untersuchung auf Clostridium difficile ein bis zwei Proben<br />
pro Tag. Ebenfalls bei neg. Ergebnissen und anhaltender<br />
Klinik.<br />
Bei pos. Befund ist keine Wiederholung indiziert.<br />
Schnellst möglich ins Labor, 2h bis<br />
24h bei 4°C, bei Amöbenverdacht körperwarmer Stuhl<br />
Routinemäßig nur Untersuchung auf Salmonella, Shigella,<br />
Campylobacter und Yersinia<br />
Nur auf Anforderung: Rota-/ Adenovirus, EHEC (bei Patienten<br />
> 4 Jahre), Pilze, Clostridium difficile, Parasiten, Screening auf<br />
MRSA, VRE, ESBL und CPE<br />
Geformter Stuhl wird zur Clostridiendiagnostik abgewiesen<br />
EHEC Testung bei Kindern bis 4 Jahren routinemäßig<br />
Klebestreifen glatt auf Objektträger (ohne Luftblasen) kleben<br />
2- 5 Tage<br />
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Antibiotika<br />
(Chemotherapeutika)<br />
Betalaktame<br />
Penicillin G & V<br />
Handelsname<br />
Oral-Penicilline: Ospen, Penbene, Star-Pen<br />
Depot-Penicilline: Retarpen<br />
Parenteral-Penicilline: Penicillin G, Penicillin G Natrium<br />
Isoxazolylpenicilline<br />
Flucloxacillin<br />
Floxapen, Stapenor<br />
Aminopenicilline<br />
Ampicillin<br />
Amoxicillin<br />
Amoxicillin+Clavulansäure<br />
Ampicillin + Sulbactam<br />
Penglobe, Standacillin<br />
Amoxilan, Clamoxyl, Gonoform, Ospamox,<br />
Augmentin,Clavamox<br />
Unasyn<br />
Mecillinam<br />
Selexid<br />
Acylaminopenicilline<br />
Mezlocillin<br />
Baypen<br />
Azlocillin<br />
Securopen<br />
Piperacillin<br />
Pipril<br />
Piperacillin + Tazobactam Tazonam<br />
Orale Cephalosporine<br />
Cefalexin 1. Gen. Cephalobene, Keflex, Ospexin, Sanaxin<br />
Cefaclor 1. Gen. Ceclor, Cefastad<br />
Cefadroxil 1. Gen. Duracef<br />
Cerufoxim-Axetil 2. Gen. Zinnat, Cefuroxim HEXAL<br />
Cefixim 3. Gen. Tricef, Aerocef<br />
Cefpodoxim 3. Gen. Biocef, Otreon<br />
Parent. Cephalosporine<br />
Cefazolin 1. Gen. Kefzol, Zolicef<br />
Cefamandol 2. Gen. Mandokef<br />
Cefotiam 2. Gen. Spizef<br />
Cefoxitin.<br />
Mefoxitin<br />
Cefuroxim 2. Gen. Curocef<br />
Cefmenoxim 3. Gen. Tacef<br />
Cefodizim 3. Gen. Timecef<br />
Cefoperazon 3. Gen. Cefobid<br />
Cefotaxim 3.Gen. Claforan<br />
Ceftriaxon 3. Gen. Rocephin-Roche<br />
Ceftazidim 3. Gen. Fortum, Kefazim<br />
Cefepim 4. Gen. Maxipime<br />
Cefpirom 4. Gen. Cefrom<br />
Carbapeneme<br />
Imipenem<br />
Zienam<br />
Meropenem<br />
Doripenem<br />
Optinem<br />
Doribax<br />
Ertapenem<br />
Invanz<br />
Aminoglykoside<br />
Gentamicin<br />
Refobacin<br />
Tobramycin<br />
Tobrasic<br />
Amikacin<br />
Netilmicin<br />
Biklin<br />
Certomycin<br />
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Makrolide<br />
Acithromycin<br />
Clarithromycin<br />
Dirithromycin<br />
Erythromycin<br />
Josamycin<br />
Roxithromycin<br />
Spiramycin<br />
Ketolide<br />
Telithromycin<br />
Glykopeptide<br />
Vancomycin<br />
Teicoplanin<br />
Gyrasehemmer<br />
(Chinolone)<br />
Ciprofloxacin<br />
Fleroxacin<br />
Lomefloxacin<br />
Norfloxacin<br />
Ofloxacin<br />
Levofloxacin<br />
Moxifloxacin<br />
Andere Antibiotika<br />
Quinupristin/ Dalfopristin<br />
Linezolid<br />
Rifampicin<br />
Clindamycin<br />
Tetrazykline<br />
Chloramphenicol<br />
Trimethoprim<br />
Sulfanomid+ Trimethoprim<br />
Nitrofurantoin<br />
Fusidinsäure<br />
Fosfomycin<br />
Metronidazol<br />
Colistin<br />
Zithromax<br />
Klacid<br />
Dimac<br />
Erythrocin<br />
Josalid<br />
Rulide<br />
Rovamycin<br />
Ketek<br />
Vancomycin<br />
Targocid<br />
Ciproxin<br />
Quinodis<br />
Uniquin<br />
Zoroxin<br />
Tarivid<br />
Tavanic<br />
Avelox<br />
Synercid<br />
Zyvoxid<br />
Rifoldin, Rimactan<br />
Dalacin C<br />
Doxybene, Doxycyclin, Minocin, Vibramycin, Vibravenös<br />
Biophenicol, Kemicetin<br />
Motrim, Solotrim, Triprim,<br />
Bactrim forte, Cotribene, Cotrimoxazol, Eusaprim, Lidaprim,<br />
Oecotrim<br />
Furadantin retard<br />
Fucidin<br />
Monuril<br />
Anaerobex, Metronidazol, Trichex<br />
Colistin<br />
Angaben ohne Anspruch auf Vollständigkeit und ohne Gewähr<br />
Version 1.0<br />
Stand Jänner 2013<br />
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