CLASE 4 Tipificación HLA - Hospital Privado
CLASE 4 Tipificación HLA - Hospital Privado
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TIPIFICACION <strong>HLA</strong><br />
Bioq. Eliana Palomino<br />
Lab. De Histocompatibilidad<br />
<strong>Hospital</strong> <strong>Privado</strong>
Tipificación <strong>HLA</strong>:<br />
Estudio mediante el cual se determina cuales<br />
de todas las variantes conocidas del locus<br />
<strong>HLA</strong> están presentes en un individuo<br />
determinado.
Muestra:<br />
Extracción de sangre entera, anticoagulada con<br />
EDTA.
Métodos de tipificación <strong>HLA</strong><br />
Serología<br />
Linfotoxicidad medida por complemento: CDC<br />
Biología molecular<br />
PCR SSP (Primers de secuencia específica)<br />
PCR SSOP Reversa (Sondas de oligonucleotidos de<br />
secuencia especifica)<br />
LUMINEX<br />
SBT (Tipificación basada en la secuencia)
Tipificación Serológica:<br />
Principio: poner en contacto linfocitos<br />
aislados del sujeto a estudiar con un panel de<br />
aloanticuerpos o anticuerpos monoclonales<br />
anti- <strong>HLA</strong> capaces de reconocer<br />
determinadas especificidades antigénicas.
Tipificación serológica<br />
•Se utiliza una suspensión de linfocitos viables<br />
obtenidos a partir de sangre periférica, utilizando<br />
Fycoll-Hypaque (densidad 1.077 g/mL)<br />
•Separación de los L T y B con perlas<br />
inmunomagnéticas<br />
•Complemento de conejo<br />
•Placas Terasaki con sueros caracterizados<br />
•Placas con Terasaki anticuerpos monoclonales
Separación de los Linfocitos T y B con perlas inmunomagnéticas<br />
PERLAS INCUBAR SEPARAR LAVAR
Citotoxicidad dependiente de Complemento<br />
CDC
Ventajas y desventajas<br />
Ventajas:<br />
Técnica fácil ,no se requiere de equipamiento costoso<br />
Se realiza en 3 hs<br />
Utilizando sueros monoclonales se obtienen resultados aceptables de<br />
bajo nivel de resolución<br />
Desventajas<br />
Se requieren mayores volumenes de sangre<br />
Se requieren linfocitos viables<br />
Dificultoso encontrar antisueros para los especificidades raras
Métodos de tipificación<br />
<strong>HLA</strong><br />
Serología<br />
LInfotoxicidad medida por complemento: CDC<br />
Biología molecular<br />
PCR SSP (Primers de secuencia específica)<br />
PCR SSOP Reversa (Sondas de oligonucleotidos de secuencia especifica)<br />
LUMINEX<br />
SBT (Tipificación basada en la secuencia)
Secuencias target<br />
HVR<br />
<strong>HLA</strong> clase I<br />
HVR<br />
<strong>HLA</strong> clase II<br />
HVR*<br />
α 2<br />
α 1<br />
β 1<br />
DQ -DP<br />
α 3<br />
β 2<br />
m<br />
β 2<br />
α 1<br />
α 2<br />
– Para <strong>HLA</strong> de clase I, los exones 2 y 3 de los genes de la cadena pesada<br />
(α1, α2)<br />
– Para <strong>HLA</strong> de clase II, el exón 2 de la cadenas alfa y beta<br />
Samaniego M, et al. Clin Transplant.2006;503
SSP-PCR<br />
•Paneles de pares de primers de secuencias<br />
específicas, cuyas secuencias discriminan las<br />
diferentes variantes que puede presentar el locus.<br />
•Cada reacción de PCR se realiza en un tubo<br />
separado<br />
•Cada tubo contiene un par de primers específicos y<br />
un par de primers como control interno.
Amplificación por PCR<br />
Electroforésis en gel de agarosa 2%<br />
<br />
Visualización de los productos de amplif y confirmación del tamaño<br />
(bp) de las reacciones +<br />
La tipif <strong>HLA</strong> es deducida de acuerdo al pattern de reacciones + y -
<strong>HLA</strong>-DR<br />
SSP-PCR<br />
<strong>HLA</strong>-A*11<br />
<strong>HLA</strong>-A*24<br />
<strong>HLA</strong>-B*39<br />
<strong>HLA</strong>-B*44<br />
<strong>HLA</strong>-DR*13<br />
<strong>HLA</strong>-DR:15
PCR-SSOP<br />
Amplificación del locus <strong>HLA</strong> por medio de la reacción<br />
en cadena de la polimerasa (PCR) con la<br />
subsiguiente hibridación del producto amplificado<br />
por medio de sondas de oligonucléotidos de<br />
secuencia específica.
PCR - SSOP<br />
• Amplificación:<br />
Pares de primers que amplifican locus <strong>HLA</strong> específicos marcados c/<br />
biotina<br />
Primers genéricos<br />
Primers group/allele específicos<br />
•Hibridización: DNA amplificado se desnaturaliza y se hibridiza con<br />
las sondas de secuencia complementaria a una temperatura y<br />
condiciones estrictas de astringencia<br />
•Resultados: Se incuba las tiras con conjugado estreptavidina y<br />
peroxidasa que se une a la biotina y con el agregado de un sustrato<br />
se visualizan las bandas<br />
•La tipif <strong>HLA</strong> es deducida a partir del patrón de reacciones positivas<br />
y negativas de la sondas
SSOP Reversa<br />
Reporter<br />
Strepavidin<br />
Biotin<br />
5’ 3’<br />
Amplified<br />
test DNA<br />
3’ 5’<br />
Probe<br />
• Support Platforms<br />
– Nylon membranes<br />
– Nitrocellulose strips<br />
– Microtiter plates<br />
– Luminex® beads<br />
– Microchips<br />
• Reporter Molecules<br />
– Fluorescent labels<br />
– Enzyme + substrate
LUMINEX<br />
LABType SSO
Fundamento: 100 beads ópticamente distinguibles por el luminex unidas a<br />
sondas específicas que hibridizaran con el alelo específico en caso de estar<br />
presente.<br />
Using This Method and Two Dyes,<br />
100 Individual Beads can be Resolved
LABTipe SSO<br />
1) Amplificación con primers biotinilados.<br />
2) Desnaturalización.<br />
3) Hibridización con las beads.<br />
4) Agrego SAPE (Estreptoavidina + ficoeritrina) para<br />
amplificar la señal.<br />
5) Lectura en Luminex.<br />
6) La asignación de la tipificación de <strong>HLA</strong> se basa en el<br />
patrón de reacción<br />
comparado con patrones asociados a secuencias de<br />
genes <strong>HLA</strong> publicadas
Description of LABType SSO<br />
1. Amplification 2. Denaturation/Neutralization<br />
Class I – 2/3<br />
Class II - 2<br />
primers<br />
10 min<br />
biotina<br />
3. Hybridization 4. Labeling<br />
5 min a 60ºC<br />
washes
Probes are attached to color-coded beads<br />
Probe 1<br />
1<br />
2<br />
Probe 2<br />
Probe 3<br />
3<br />
100
Biotin<br />
Signal Detection<br />
1. Add DNA<br />
Biotin<br />
DR15 Probe<br />
DR16 Probe
2. Hybridize & Wash
3. Label with Stretavidin-PE<br />
SAPE<br />
Positive<br />
Negative
4. Fluorescence Measurement<br />
Fluorescence from<br />
1. Reporter<br />
2. Bead
SBT: Tipificación n basada en secuencia
SBT: Tipificación basada en<br />
secuencia<br />
El DNA se amplifica con<br />
una mezcla de nucleótidos<br />
marcados con 4 fluoróforos<br />
(Didesoxinucleótidos)
•Como "molde" se utiliza una de las cadenas del fragmento de ADN que se va a<br />
secuenciar.<br />
•Como "cebador" para iniciar la síntesis, se necesita un corto oligonucleótido<br />
complementario del extremo de la cadena.<br />
•desoxinucleótidos de las cuatro bases: dAMP, dTMP, dGMP, dCMP.<br />
•didesoxinucleótidos de una base en cada una de las cuatro reacciones de<br />
secuenciación.<br />
Al añadir la ADN-polimerasa, comienza la polimerización en el cebador, pero<br />
cesa el incorporarse un didesoxinucleótido
electroforesis.<br />
Identificados con un detector de fluorescencia<br />
automatizado<br />
Los fragmentos resultantes se separan por tamaño mediante<br />
electroforesis y la sucesión de bandas de cada una de las cuatro<br />
reacciones, comparándolas entre sí,dan la secuencia del ADN
Resumen<br />
SSP<br />
Primers de secuencia específica<br />
PCR/electroforésis en gel de<br />
agarosa<br />
Media<br />
Rápida<br />
SSOP<br />
REVERSA<br />
Sondas de oligonucléotidos<br />
específicas a secuencia<br />
PCR/hibridación de sondas con<br />
producto de la PCR<br />
Media/alta<br />
+ prolongada<br />
LUMINEX<br />
Sondas de oligonucléotidos<br />
específicas de secuencia unidas a<br />
microesferas<br />
PCR/hibridación de sondas con<br />
producto de la PCR<br />
Media o alta<br />
Análisis múltiples con<br />
sensibilidad de<br />
Citometría de flujo<br />
Análisis automatizado<br />
estudian 96 indiv.con 100<br />
diferentes sondas x locus<br />
Rápido,> nº de muestras<br />
SBT<br />
Cebadores de sitio específicos a<br />
grupo y mezclas de<br />
establecimiento de secuencia con<br />
un teminador de secuencia<br />
marcado<br />
PCR/establecimiento de<br />
secuencia del producto de la<br />
PCR<br />
Alta<br />
Alelos a nivel de secuencia exacta
<strong>HLA</strong> Alleles and Antigens<br />
(IMGT)
Numero de antígenos y alelos nombrados por el<br />
comité de nomenclatura <strong>HLA</strong> desde 1968 hasta<br />
junio del 2010.
Assigned April 2010
Assigned April 2010<br />
Las reglas para nombrar los antígenos <strong>HLA</strong> y alelos son establecidos por un Comité de Nomenclatura de la<br />
WHO (World Health Organization)<br />
(Marsh SG, et al. Immunol.2005 Humanos; 66:571 )
Assigned April 2010
Códigos NMDP( National Marrow Donor Program)
Resolución en <strong>HLA</strong> Typing<br />
•Baja resolución molecular.<br />
•Tipificación se resuelve o se reporta en un nivel de 2 digitos<br />
•A*02-B*08-DRB1*03<br />
•Equivalente a la tipif. serológica<br />
•Resolución molecular intermedia<br />
•Tipificación se resuelve o se reporta como un set de posibles alelos<br />
•A*02DEKM, 24DEKN<br />
•51 posibles A*02 allelos y 42 posibles A*24 allelos.<br />
• Alta resolución molecular<br />
•Tipificación se resuelve o se reporta como un único alelo<br />
•A*01:02:01<br />
Ventajas de los ensayos moleculares<br />
• Mayor precisión y reproducibilidad<br />
• No hay necesidad de linfocitos viables<br />
• Opción para la automatización parcial o total