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CLASE 4 Tipificación HLA - Hospital Privado

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TIPIFICACION <strong>HLA</strong><br />

Bioq. Eliana Palomino<br />

Lab. De Histocompatibilidad<br />

<strong>Hospital</strong> <strong>Privado</strong>


Tipificación <strong>HLA</strong>:<br />

Estudio mediante el cual se determina cuales<br />

de todas las variantes conocidas del locus<br />

<strong>HLA</strong> están presentes en un individuo<br />

determinado.


Muestra:<br />

Extracción de sangre entera, anticoagulada con<br />

EDTA.


Métodos de tipificación <strong>HLA</strong><br />

Serología<br />

Linfotoxicidad medida por complemento: CDC<br />

Biología molecular<br />

PCR SSP (Primers de secuencia específica)<br />

PCR SSOP Reversa (Sondas de oligonucleotidos de<br />

secuencia especifica)<br />

LUMINEX<br />

SBT (Tipificación basada en la secuencia)


Tipificación Serológica:<br />

Principio: poner en contacto linfocitos<br />

aislados del sujeto a estudiar con un panel de<br />

aloanticuerpos o anticuerpos monoclonales<br />

anti- <strong>HLA</strong> capaces de reconocer<br />

determinadas especificidades antigénicas.


Tipificación serológica<br />

•Se utiliza una suspensión de linfocitos viables<br />

obtenidos a partir de sangre periférica, utilizando<br />

Fycoll-Hypaque (densidad 1.077 g/mL)<br />

•Separación de los L T y B con perlas<br />

inmunomagnéticas<br />

•Complemento de conejo<br />

•Placas Terasaki con sueros caracterizados<br />

•Placas con Terasaki anticuerpos monoclonales


Separación de los Linfocitos T y B con perlas inmunomagnéticas<br />

PERLAS INCUBAR SEPARAR LAVAR


Citotoxicidad dependiente de Complemento<br />

CDC


Ventajas y desventajas<br />

Ventajas:<br />

Técnica fácil ,no se requiere de equipamiento costoso<br />

Se realiza en 3 hs<br />

Utilizando sueros monoclonales se obtienen resultados aceptables de<br />

bajo nivel de resolución<br />

Desventajas<br />

Se requieren mayores volumenes de sangre<br />

Se requieren linfocitos viables<br />

Dificultoso encontrar antisueros para los especificidades raras


Métodos de tipificación<br />

<strong>HLA</strong><br />

Serología<br />

LInfotoxicidad medida por complemento: CDC<br />

Biología molecular<br />

PCR SSP (Primers de secuencia específica)<br />

PCR SSOP Reversa (Sondas de oligonucleotidos de secuencia especifica)<br />

LUMINEX<br />

SBT (Tipificación basada en la secuencia)


Secuencias target<br />

HVR<br />

<strong>HLA</strong> clase I<br />

HVR<br />

<strong>HLA</strong> clase II<br />

HVR*<br />

α 2<br />

α 1<br />

β 1<br />

DQ -DP<br />

α 3<br />

β 2<br />

m<br />

β 2<br />

α 1<br />

α 2<br />

– Para <strong>HLA</strong> de clase I, los exones 2 y 3 de los genes de la cadena pesada<br />

(α1, α2)<br />

– Para <strong>HLA</strong> de clase II, el exón 2 de la cadenas alfa y beta<br />

Samaniego M, et al. Clin Transplant.2006;503


SSP-PCR<br />

•Paneles de pares de primers de secuencias<br />

específicas, cuyas secuencias discriminan las<br />

diferentes variantes que puede presentar el locus.<br />

•Cada reacción de PCR se realiza en un tubo<br />

separado<br />

•Cada tubo contiene un par de primers específicos y<br />

un par de primers como control interno.


Amplificación por PCR<br />

Electroforésis en gel de agarosa 2%<br />

<br />

Visualización de los productos de amplif y confirmación del tamaño<br />

(bp) de las reacciones +<br />

La tipif <strong>HLA</strong> es deducida de acuerdo al pattern de reacciones + y -


<strong>HLA</strong>-DR<br />

SSP-PCR<br />

<strong>HLA</strong>-A*11<br />

<strong>HLA</strong>-A*24<br />

<strong>HLA</strong>-B*39<br />

<strong>HLA</strong>-B*44<br />

<strong>HLA</strong>-DR*13<br />

<strong>HLA</strong>-DR:15


PCR-SSOP<br />

Amplificación del locus <strong>HLA</strong> por medio de la reacción<br />

en cadena de la polimerasa (PCR) con la<br />

subsiguiente hibridación del producto amplificado<br />

por medio de sondas de oligonucléotidos de<br />

secuencia específica.


PCR - SSOP<br />

• Amplificación:<br />

Pares de primers que amplifican locus <strong>HLA</strong> específicos marcados c/<br />

biotina<br />

Primers genéricos<br />

Primers group/allele específicos<br />

•Hibridización: DNA amplificado se desnaturaliza y se hibridiza con<br />

las sondas de secuencia complementaria a una temperatura y<br />

condiciones estrictas de astringencia<br />

•Resultados: Se incuba las tiras con conjugado estreptavidina y<br />

peroxidasa que se une a la biotina y con el agregado de un sustrato<br />

se visualizan las bandas<br />

•La tipif <strong>HLA</strong> es deducida a partir del patrón de reacciones positivas<br />

y negativas de la sondas


SSOP Reversa<br />

Reporter<br />

Strepavidin<br />

Biotin<br />

5’ 3’<br />

Amplified<br />

test DNA<br />

3’ 5’<br />

Probe<br />

• Support Platforms<br />

– Nylon membranes<br />

– Nitrocellulose strips<br />

– Microtiter plates<br />

– Luminex® beads<br />

– Microchips<br />

• Reporter Molecules<br />

– Fluorescent labels<br />

– Enzyme + substrate


LUMINEX<br />

LABType SSO


Fundamento: 100 beads ópticamente distinguibles por el luminex unidas a<br />

sondas específicas que hibridizaran con el alelo específico en caso de estar<br />

presente.<br />

Using This Method and Two Dyes,<br />

100 Individual Beads can be Resolved


LABTipe SSO<br />

1) Amplificación con primers biotinilados.<br />

2) Desnaturalización.<br />

3) Hibridización con las beads.<br />

4) Agrego SAPE (Estreptoavidina + ficoeritrina) para<br />

amplificar la señal.<br />

5) Lectura en Luminex.<br />

6) La asignación de la tipificación de <strong>HLA</strong> se basa en el<br />

patrón de reacción<br />

comparado con patrones asociados a secuencias de<br />

genes <strong>HLA</strong> publicadas


Description of LABType SSO<br />

1. Amplification 2. Denaturation/Neutralization<br />

Class I – 2/3<br />

Class II - 2<br />

primers<br />

10 min<br />

biotina<br />

3. Hybridization 4. Labeling<br />

5 min a 60ºC<br />

washes


Probes are attached to color-coded beads<br />

Probe 1<br />

1<br />

2<br />

Probe 2<br />

Probe 3<br />

3<br />

100


Biotin<br />

Signal Detection<br />

1. Add DNA<br />

Biotin<br />

DR15 Probe<br />

DR16 Probe


2. Hybridize & Wash


3. Label with Stretavidin-PE<br />

SAPE<br />

Positive<br />

Negative


4. Fluorescence Measurement<br />

Fluorescence from<br />

1. Reporter<br />

2. Bead


SBT: Tipificación n basada en secuencia


SBT: Tipificación basada en<br />

secuencia<br />

El DNA se amplifica con<br />

una mezcla de nucleótidos<br />

marcados con 4 fluoróforos<br />

(Didesoxinucleótidos)


•Como "molde" se utiliza una de las cadenas del fragmento de ADN que se va a<br />

secuenciar.<br />

•Como "cebador" para iniciar la síntesis, se necesita un corto oligonucleótido<br />

complementario del extremo de la cadena.<br />

•desoxinucleótidos de las cuatro bases: dAMP, dTMP, dGMP, dCMP.<br />

•didesoxinucleótidos de una base en cada una de las cuatro reacciones de<br />

secuenciación.<br />

Al añadir la ADN-polimerasa, comienza la polimerización en el cebador, pero<br />

cesa el incorporarse un didesoxinucleótido


electroforesis.<br />

Identificados con un detector de fluorescencia<br />

automatizado<br />

Los fragmentos resultantes se separan por tamaño mediante<br />

electroforesis y la sucesión de bandas de cada una de las cuatro<br />

reacciones, comparándolas entre sí,dan la secuencia del ADN


Resumen<br />

SSP<br />

Primers de secuencia específica<br />

PCR/electroforésis en gel de<br />

agarosa<br />

Media<br />

Rápida<br />

SSOP<br />

REVERSA<br />

Sondas de oligonucléotidos<br />

específicas a secuencia<br />

PCR/hibridación de sondas con<br />

producto de la PCR<br />

Media/alta<br />

+ prolongada<br />

LUMINEX<br />

Sondas de oligonucléotidos<br />

específicas de secuencia unidas a<br />

microesferas<br />

PCR/hibridación de sondas con<br />

producto de la PCR<br />

Media o alta<br />

Análisis múltiples con<br />

sensibilidad de<br />

Citometría de flujo<br />

Análisis automatizado<br />

estudian 96 indiv.con 100<br />

diferentes sondas x locus<br />

Rápido,> nº de muestras<br />

SBT<br />

Cebadores de sitio específicos a<br />

grupo y mezclas de<br />

establecimiento de secuencia con<br />

un teminador de secuencia<br />

marcado<br />

PCR/establecimiento de<br />

secuencia del producto de la<br />

PCR<br />

Alta<br />

Alelos a nivel de secuencia exacta


<strong>HLA</strong> Alleles and Antigens<br />

(IMGT)


Numero de antígenos y alelos nombrados por el<br />

comité de nomenclatura <strong>HLA</strong> desde 1968 hasta<br />

junio del 2010.


Assigned April 2010


Assigned April 2010<br />

Las reglas para nombrar los antígenos <strong>HLA</strong> y alelos son establecidos por un Comité de Nomenclatura de la<br />

WHO (World Health Organization)<br />

(Marsh SG, et al. Immunol.2005 Humanos; 66:571 )


Assigned April 2010


Códigos NMDP( National Marrow Donor Program)


Resolución en <strong>HLA</strong> Typing<br />

•Baja resolución molecular.<br />

•Tipificación se resuelve o se reporta en un nivel de 2 digitos<br />

•A*02-B*08-DRB1*03<br />

•Equivalente a la tipif. serológica<br />

•Resolución molecular intermedia<br />

•Tipificación se resuelve o se reporta como un set de posibles alelos<br />

•A*02DEKM, 24DEKN<br />

•51 posibles A*02 allelos y 42 posibles A*24 allelos.<br />

• Alta resolución molecular<br />

•Tipificación se resuelve o se reporta como un único alelo<br />

•A*01:02:01<br />

Ventajas de los ensayos moleculares<br />

• Mayor precisión y reproducibilidad<br />

• No hay necesidad de linfocitos viables<br />

• Opción para la automatización parcial o total

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