3 - Instituto de Investigaciones de Sanidad Vegetal

Fitosanidad 15(3) septiembre (2011)
Araya et al.
La acidez, pH y la materia orgánica se determinaron
de acuerdo con el método descrito por Díaz y Hunter
(1978), por extracción con KCl 1M, y titulado con hidróxido
de sodio se determinó la acidez; con agua se
extrajo para la determinación del pH. La materia orgánica
se determinó por digestión con una mezcla de
K 2
Cr 2
O 7
y H 2
SO 4
y valoración con sulfato amónico
ferroso. Los datos de las muestras de suelo se clasificaron
de acuerdo con los ámbitos de bajo, medio y alto
contenido de cada nutriente según los requerimientos
del cultivo [Soto, 1992; Bertsch, 1995; López y Espinoza,
1995; Arias et al., 2003].
Cada muestra para análisis de nematodos se conformó
por las raíces de cinco plantas. Los cinco puntos de
muestreo se distribuyeron al azar a lo largo de cables
con aproximadamente 10-12 ha. Las muestras se tomaron
en el intermedio de plantas entre uno y ocho
días de florecidas, y su respectivo hijo de sucesión, o al
frente del hijo de sucesión. Se excavó en la base un hoyo
de 15 cm de longitud por 15 cm de ancho por 30 cm de
profundidad (volumen 6750 cm 3 de suelo), se recolectaron
todas las raíces presentes en bolsas plásticas debidamente
identificadas y se enviaron al laboratorio. La
extracción de nematodos se realizó por el método de
licuado-tamizado desarrollado por Taylor y Loegering
(1953), modificado por Araya (2002), y se expresó el
número por 100 g de raíces.
Se calcularon promedios del número de nematodos (por
especie y nematodos totales), contenido de raíces y de
cada uno de los nutrientes considerados en los análisis
químicos de suelo por zonas, mes, año y cantón. Los
nutrientes en el suelo y contenido de nematodos en las
raíces de banano se correlacionaron por zona, mes, año
y cantón mediante el coeficiente de correlación lineal
de Pearson. Como se notó que la zona sur tenía gran
influencia en los coeficientes de correlación obtenidos
por cantón, se repitió el análisis de correlación y se excluyó
a la zona sur. Se utilizó el método stepwise de
selección de variables de regresión para explicar la magnitud
de las poblaciones de R. similis.
2. Relación entre el contenido de nutrientes en el suelo o
raíces y el peso de raíces y número de nematodos en
muestras pareadas de un muestreo puntual
Se analizaron muestras pareadas y puntuales de raíces
y suelo de dos fincas con condiciones agroecológicas diferentes.
De acuerdo con la metodología de muestreo
para nematodos descrita en el primer estudio, se tomaron
32 y 72 muestras de raíces y suelo de una finca
ubicada en el cantón de Siquirres, y otra en el cantón
de Talamanca, respectivamente. Las muestras de raíces
se conformaron de cinco hijos de sucesión, y las de
suelo se obtuvieron de los mismos cinco hoyos que se
excavaron al frente del hijo para colectar las raíces.
De cada muestra se seleccionaron al azar cinco raíces
gruesas para estimar el daño [Moens et al., 2001]. Las
raíces se cortaron a 10 cm de longitud, se dividieron
longitudinalmente y en una mitad se midió en cada
borde la longitud del tejido necrosado (cm) o de coloración
rojiza-púrpura. El porcentaje de daño de cada raíz
se calculó a partir de la suma de las longitudes de ambos
bordes dividido por dos para promediar, y dividido
por la longitud de un tramo de raíz (10 cm) se obtiene
la relación de longitudes; luego se sumó el valor
obtenido para cada una de las cinco raíces de cada muestra
y se dividió entre cinco, que fue el número de raíces
evaluadas por muestra. Esto se multiplicó por 100 para
obtener el porciento de afectación (fórmula). El análisis
químico de los nutrientes en el suelo y la extracción
de nematodos en las raíces se realizó según la metodología
descrita en el primer estudio.
r1 + r2
+ r3
+ r4
+ r5
b1 + b2
% daño = x100 Donde r =
5
2 x10
r: Razón de daño por raíz
b: Longitud de daño en el borde (cm)
Como de cada muestra de raíz la extracción de
nematodos se realizó de 25 g, el resto de la muestra se
trasladó al Laboratorio Químico de Corbana para determinar
el contenido de nutrientes. Las raíces se colocaron
en un horno a 70 °C hasta sequedad y se pasaron
a un molino Thomas Scientific Model 4 con malla de
1 mm-d. Medio gramo de las raíces molidas se digirierón
en 3 mL de ácido nítrico y 3 mL de peróxido de hidrógeno
en un microondas modelo Mars Xpress durante
20 min a 200 °C. La solución obtenida se diluyó con
agua destilada y desionizada hasta 50 mL. La lectura
de Ca, Mg, K, P, S, Fe, Cu, Zn, Mn y B se efectuó por
medio del espectrofotómetro de plasma modelo Optima
3000. El N se leyó en un analizador de N por combustión
seca Model Rapid N de Elementar.
Los datos se sometieron a un análisis de correlación
lineal de Pearson entre las variables raíz total, raíz funcional,
R. similis, Helicotylenchus spp., Meloidogyne spp.,
Pratylenchus spp., nematodos totales (suma de los géneros
parásitos presentes), daño y el contenido de
nutrientes en el suelo y las raíces.
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