BVA Travaux pratiques -

BVA 

Travaux pratiques 

- 

1 er bachelier en Sciences pharmaceutiques 

Année académique 2010-2011 

Professeur : C. Ghio 

Assistant : D. Michez

TP de biologie végétale et animale – 1 er bachelier en Sciences pharmaceutiques D. Michez 

1. Introduction 

L’objectif des travaux pratiques du cours d’élément de botanique est d’illustrer le cours 

théorique. 

Il y comprendra deux types d’exercices. Le premier consiste en la réalisation d’un herbier 

de 30 planches construites entièrement par l’étudiant. Ce travail permettra de s’initier à la 

botanique de terrain et à la détermination des plantes au moyen d’une flore. La seconde partie 

de la formation est réalisée au cours de 7 séances de travaux pratiques organisées en 

laboratoire. Elles ont pour objectif d’initier l’étudiant à la diversité du règne végétal (sensu 

lato). Les TP se traduiront par la réalisation d’une farde reprenant l’ensemble des 

observations et évaluations. 

Les cotations pour les travaux pratiques du cours d’élément de botanique s’établiront de la 

manière suivante : 

20% pour la réalisation de l’herbier 

20% pour la farde de TP 

60% pour l’examen écrit 

1.1. Matériel personnel 

Matériel à acquérir : 

Brucelles 

Aiguilles montées 

Scalpel 

Lame de rasoir 

Compas 

Petite règle ou équerre 

Papier millimétré 

Crayon ordinaire ou taille crayon 

Crayon de couleur 

Gomme 

Chiffon doux en coton 

Flore de référence : 

Lambinon, J., De Langhe, J.-E., Delvosalle, L., Duvigneaud, J. Nouvelle flore de la 

Belgique, du G.D. de Luxembourg, du Nord de la France et des régions voisines. Editions du 

Patrimoine du Jardin botanique national de Belgique. 

Loupe de terrain pour les excursions et les identifications 

Farde 

Feuilles 

1.2. Matériel distribué par l’Unité de biologie végétale 

Lames porte-objet 

Lame couvre-objet 

Pipette pasteur 

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Verre de montre 

Colorants 

1.3. Matériel d’observation 

1.3.1. Binoculaire 

Description 

La loupe binoculaire est composée d’un statif portant une crémaillère sur laquelle se trouve 

deux oculaires. La crémaillère est commandée par une vis bilatérale qui permet le 

déplacement vertical des oculaires. Un support en verre muni de valets est destiné à recevoir 

le matériel à observer. 

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Utilisation 

L’acuité visuelle différant souvent entre les yeux d’une même personne, un réglage adapté à 

la vue de chacun est nécessaire. Ce réglage, une fois réalisé, reste valable pour l’ensemble des 

observations de la séance. Il s’effectue en deux étapes par une mise au point sur du papier 

quadrillé. La première mise au point est effectuée avec l’oculaire fixe en agissant sur la 

crémaillère. La seconde mise au point est réalisée, avec l’autre œil, uniquement avec 

l’oculaire réglable par rotation de sa bague filetée. L’écartement des oculaires doit être ajusté. 

La mise au point ultérieure, sur un objet à examiner, est effectuée par simple déplacement de 

la crémaillère. Un bon réglage de l’objet est indispensable. 

Description 

1.3.2. Microscope 

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Utilisation 

1. Allumer la lampe sous le microscope 

2. Déposer la lame porte-objet sur la platine, l’insérer sous les valets 

3. Utiliser l’objectif 3,5x 

4. Centrer la préparation sous l’objectif 

5. Régler l’intensité lumineuse en ajustant l’ouverture du diaphragme avec la manette du 

diaphragme 

6. Effectuer la mise au point en montant la platine jusqu’à la butée avec la vis bilatérale de la 

crémaillère (sans regarder par l’oculaire). Ensuite, l’œil à l’oculaire, descendre la platine 

au moyen de la vis bilatérale jusqu’à voir apparaître l’image et jusqu’à dépasser 

légèrement la mise au point. Ces opérations s’effectuent en vitesse rapide. Tourner alors la 

vis en sens inverse afin d’affiner la mise au point en vitesse lente. 

7. Explorer la préparation puis centrer l’objet à observer 

8. Mettre en place l’objectif 10x 

9. Effectuer la mise au point 

10. Régler l’intensité lumineuse en ajustant l’ouverture du diaphragme et l’éloignement du 

condenseur 

11. Explorer la préparation puis centrer l’objet à observer 

12. Mettre en place l’objectif 40x 

13. Effectuer la mise au point 

14. Régler l’intensité lumineuse en ajustant l’ouverture du diaphragme et l’éloignement du 

condenseur 

1.4. Représentation 

Deux types de représentations sont principalement utilisés : le dessin et le schéma. Le 

diagramme floral est une type particulier de schéma exclusivement réservé à la description 

des composantes florales (voir TP 6 et 7). 

Dans tous les cas, les représentations doivent être claires et suffisamment grandes (ne pas 

hésiter à utiliser une page entière). 

1.4.1. Dessins 

Principe 

Le dessin est une représentation fidèle de l’objet. Il est réalisé à main levée au crayon, les 

traits doivent être fins et nets. L’utilisation de crayons de couleurs est interdite. Les hachures 

et les noircissement sont également proscrits. Le dessin s’accompagne toujours d’une légende 

précise (ligne de rappel) et d’une échelle. Le choix de l’échelle conditionne la représentation 

des détails. L’utilisation d’un effet de zoom permet de cantonner les dessins de détails à une 

partie restreinte de l’objet en utilisant une échelle plus grande. 

En morphologie, lorsque le dessin est partiel, il faut interrompre les organes incomplètement 

représentés par deux segments parallèles pointillés. En anatomie, les tissus et les cellules 

peuvent être interrompus de la même façon. 

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Echelle 

Echelle numérique 

L’échelle est indiquée sous forme d’un rapport simple. 

E = dimension de l’objet représenté / dimension de l’objet réel 

Echelle graphique 

L’échelle consiste en un segment correspondant à x unités dans la réalité. 

En microscopie, le calcul de l’échelle utilise le diamètre du champ optique, fonction de 

l’objectif utilisé. 

Objectif 3,5x présente un diamètre de 4000µm 

Objectif 10x présente un diamètre de 1400µm 

Objectif 40x présente un diamètre de 350µm 

Convention 

En anatomie, des conventions de traits clarifient la représentation des parois des cellules et 

renseignent sur le type et la nature de leurs épaississement. 

Paroi primaire : 

Cellulose : trait simple entre deux cellules voisines 

Paroi secondaire : 

Cellulose : deux traits entre deux cellules 

X unité 

Lignine et subérine : trois traits entre deux cellules voisines 

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Cutine : trait continu 

1.4.2. Schéma 

Le schéma est une représentation symbolique, sans que la notion d’échelle n’intervienne. Le 

choix des symboles est essentiel, il s’agit le plus souvent de formes géométriques simples. Le 

schéma est également réalisé au crayon, mais à l’aide d’instruments. La légende qui 

accompagne le schéma consiste en une liste des symboles utilisés suivis de la signification de 

leur sens. La signification des symboles peut être aussi directement précisée par des lignes de 

rappel. 

1.4.3. Comparaison entre dessin et schéma 

a) Exemple en histologie : coupe transversale dans un organe cylindrique 

Dessin d’une portion de la coupe 

Tissu A formé de cellules dont la paroi secondaire est composée principalement de lignine 

Tissu B et D formés de cellules ne présentant par d’épaississement secondaire 

Tissu C formé de cellules dont la paroi secondaire est composée principalement de cellulose 

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Schéma 

b) Feuille composée pénnée de Rosa sp. 

Dessin 

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ou 

Schéma 

= Pétiole 

= rachis 

= pétiolule 

= foliole 

= stipule 

Stipule 

Pétiole 

1.5. Ouvrages de référence 

Bastin, De Sloover, Evrard et Moens, 1996. Flore de la Belgique, 4 ème édition. Ed. Artel, 

Namur, 359 pp. 

Blamey et Grey-Wilson. La flore d’Europe occidentale. 

Foliole 

Bon, 1988. Champigons d’Europe occidental. Ed. Arthaud. 368 p. 

Rachis 

Pétiolule 

Courtecuisse et Duhem, 2000. Guide des champignons de France et d’Europe. Ed. 

Delachaux et Niestlé, Paris. 476 pp. 

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Dulière, Tanghe et Malaisse, 1995. Répertoire des groupes écologiques du fichier 

écologique des essences. 

Judd, Campbell, Kellogg et Stevens, 2002. Botanique systématique, une perspective 

phylogénétique. Ed. De Boeck, Bruxelles, 467 pp. 

Lambinon, De Langhe, Delvosalle et Duvigneaud. Nouvelle flore de la Belgique, du G.D. 

de Luxembourg, du Nord de la France et des régions voisines. Editions du Patrimoine 

du Jardin botanique national de Belgique. 

Raven, Evert et Eichhorn, 2000. Biologie végétale. Ed. De Boeck Université, Bruxelles, 940 

pp. 

Roland et Vian, 1997. Atlas de biologie végétale, tome 1 : organisation des plantes sans 

fleurs. Ed. Masson, Paris, 136 pp. 

Spichiger, Savolainen, Figeat et Jeanmonod, 2002. Botanique systématique des plantes à 

fleurs, une approche phylogénétique nouvelle des Angiospermes des régions 

tempérées et tropicales. Ed. Presses polytechniques et universitaires romandes, 

collection biologie, Lausanne, 413 pp. 

1.6. Sites Internet illustrant les TP 

Ces sites sont donnés à titre informatif. L’équipe de botanique ne peut en aucun cas être 

tenue responsable de leur contenu qui pourrait ne pas être en adéquation parfaite avec le cours 

d’élément de botanique. 

Taxonomie du règne des Métaphytes 

http://www.ustboniface.mb.ca/cusb/abernier/Plantes/taxonomi.html 

Illustration des coupes 

http://www.ac-creteil.fr/svt/photos/mnu_alb3.htm 

http://www.ac-creteil.fr/svt/microsc/mnu_micro.htm 

http://www.xylo.for.ulaval.ca/sbo17184/sbo17184.htm 

Illustrations des taxons 

http://www.mpiz-koeln.mpg.de/~stueber/koehler/ 

http://www.science.siu.edu/landplants/ 

http://ispb.univ-lyon1.fr/cours/botanique/ 

http://www.mpiz-koeln.mpg.de/~stueber/lindman/ 

http://erick.dronnet.free.fr/belles_fleurs_de_france/index.htm 

Institutions 

Jardin botanique national de Belgique : http://www.br.fgov.be 

Royal Botanic Gardens Kew : http://www.rbg.kew.org.uk 

Muséum national d’Histoire Naturelle (Paris) : http://www.mnhn.fr 

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1.7. Responsabilité et ordre 

Chaque étudiant est responsable du matériel mis à sa disposition. Toute défectuosité, tous 

bris de matériel, toute disparition, doivent être immédiatement signalés. 

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2. Herbier : mode opératoire 

2.1. Consignes 

Dans le cadre des Travaux Pratiques du cours de biologie végétale et animale, il est 

demandé aux étudiants de réaliser un herbier comprenant 30 planches dont : 

- Un maximum de : 

3 Dicotylédones ligneuses (arbres ou arbustes) indigènes. Les arbres de parcs ou 

de jardins sont exclus. Concrètement, cela signifie que l'étudiant récoltera ses 

espèces ligneuses en forêt. 

- Un minimum de : 

1 Bryophytes 

1 Ptéridophytes 

1 Gymnospermes 

2 Poaceae 

2 Asteraceae 

25 familles végétales 

Les prêles, fougères, gymnospermes et angiospermes devront être présents dans la 

"Nouvelle flore de la Belgique, du G.D. de Luxembourg, du Nord de la France et des régions 

voisines", qui constitue l'ouvrage de référence utilisé aux TP. Si cette flore n’est pas 

disponible, les étudiants pourront utiliser la flore suivante : Bastin, De Sloover, Evrard et 

Moens, 1996. Flore de la Belgique, 4 ème édition. Ed. Artel. 

Les végétaux devront être identifiés jusqu'au niveau spécifique. 

Pour les mousses et les hépatiques l'identification au niveau d'un rang taxonomique 

supérieur (embranchement ou classe) est suffisante. 

Les champignons et les algues ne peuvent pas être inclus dans l’herbier. 

L’accent doit être mis sur la diversité. Un herbier doit comprendre 25 familles différentes. 

2.2. Récolte du matériel végétal 

La plante devra toujours être en floraison ou en fructification. Les fleurs ou les fruits 

devront être présents sur la planche. Pour les espèces herbacées, la plante entière (racines y 

compris) sera prélevée. 

Les plantes seront récoltées dans des milieux variés. Pour chaque plante récoltée, les 

informations suivantes seront de suite consignées dans un carnet de terrain : un numéro de 

récolte, la localité administrative, la date, le biotope (forêt de feuillus, bord de route, prairie, 

haie, etc....), le mode de pollinisation, le mode de dissémination et le type biologique 

(chaméphyte, géophyte, …). Deux ou 3 exemplaires de chaque espèces seront ramenés au 

bureau si l'espèce n'a pu être déterminée avec certitude sur le terrain. 

Une loupe de poche pliante est souvent nécessaire pour l'observation du matériel en 

vue de la détermination sur le terrain. 

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Remarques : 

- ne pas prélever dans les Réserves Naturelles. 

- ne pas prélever d'espèces protégées (voir liste en annexe) 

- les ligneux seront représentés par un rameau feuillé (pas simplement une feuille) 

2.3. Séchage des échantillons 

Le matériel est placé entre 2 feuilles de papier journal (+/- aux dimensions de la planche 

de montage final) et mis sous presse (2 planches de bois surmontées d'un poids lourd 

suffisent). Les exemplaires de grande taille seront pliés "en accordéon". Le papier sera changé 

plusieurs fois si nécessaire, fréquemment si la récolte a eu lieu un jour de pluie ou pour des 

plantes des milieux humides. Une semaine de séchage suffit en général. 

Cas particulier des champignons. 

Certains champignons pérennes (récoltés sur des troncs d'arbre par exemple) conservent leur aspect en herbier, 

ils ne nécessitent aucun traitement préalable. Cependant la majorité des espèces pourrissent très rapidement une 

fois récoltées. Dans ce cas, l'étudiant en réalisera une description sommaire (forme, couleur, odeur 

particulière,…) et le séchera rapidement (sur un radiateur par exemple). Une fois sec il sera placé dans un sachet 

de type cellophane (disponible chez l'assistant) pour conservation. On parle d'exciccatat. 

Facultatif : la couleur des spores étant un critère fondamental pour l'identification des champignons à lames, 

l'étudiant pourra tenter de réaliser une "sporée". Dès la récolte, l'exemplaire est placé sur une feuille de papier 

blanc, le chapeau séparé du pied et posé "lames contre la feuille". L'ensemble est enfermé dans une feuille 

aluminium. Après quelques heures, si l'exemplaire est "mâture", les spores présentes sur les lames se déposent 

sur le papier. On peut alors en noter la couleur. 

2.4. Mise en herbier 

Lorsque le végétal est sec, il peut être monté définitivement. Sur une planche ne peut 

apparaître qu'un individu, ou plusieurs individus de la même espèce récoltés le même jour sur 

la même station. Les exemplaires de grande taille peuvent être pliés. Il sera fixé à l'aide de 

petites bandelettes blanches. Des éléments trop volumineux (racines, bulbes..) pourront être 

coupés longitudinalement. Des éléments détachés (aiguilles de conifères, fruits, fleurs...) 

peuvent être placés dans une petite enveloppe ou un petit sac plastic collé sur la planche. 

L'étiquette est collée dans le coin inférieur droit de la planche. 

Les plantes séchées sont fixées sur une planche de papier épais (de type bristol), de format 

26 x 38 cm (approximativement). Veillez à ne pas vous écarter de ces dimensions de plus de 2 

ou 3 cm. La fixation se fait à l'aide de papier gommé ou de petites bandes d'adhésif blanc (pas 

de papier collant "classique"). Une étiquette sera collée dans le coin inférieur droit de la 

planche. Chaque planche est placée dans une double feuille de papier buvard ou autre, de 

façon à protéger le végétal et à récupérer les éléments qui pourraient s'en détacher (fruits, 

aiguilles....). L'ensemble de l'herbier est maintenu de préférence entre 2 cartons épais, ou 

planchettes de bois reliés par des sangles. 

Le bristol et la chemise de protection sont à acheter par l'étudiant. Des herbiers types 

seront en vente à l’unité de botanique. 

Une loupe de poche pliante ou un binoculaire sont souvent nécessaires pour l'observation 

du matériel en vue de la détermination. 

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Les déterminations des ptéridophytes (prêles et fougères) et spermatophytes 

(gymnospermes et angiospermes) seront réalisées à l'aide de la flore suivante : 

LAMBINON, J., DE LANGHE, J.-E., DELVOSALLE, L., DUVIGNEAUD, J. Nouvelle flore de la 

Belgique, du G.D. de Luxembourg, du Nord de la France et des régions voisines. Editions du 

Patrimoine du Jardin botanique national de Belgique. 

L'utilisation de flores illustrées et le choix de celles-ci lors de la réalisation de l'herbier 

sont laissés à l'appréciation de l'étudiant. Des conseils dans le choix de ces flores peuvent être 

obtenus auprès des enseignants. 

2.5. Etiquette 

Ses dimensions approximatives : 7-10 x 9-12 cm 

Elle reprendra les rubriques suivantes : 

- Collection (ou Leg.) = nom du propriétaire de l'herbier 

- N° = numéro de la planche : plusieurs types de numérotation sont possibles 

* numérotation faisant référence à la date complète de récolte (ex : 96081504 = 

quatrième plante récoltée le 15 août 1996) 

* numérotation faisant référence à une partie de la date de récolte (ex : 960732 

= trente deuxième plante récoltée en juillet 1996) 

La numérotation faisant référence à la date complète de récolte est la plus pratique. 

Rappel : ce numéro est donné dès la récolte sur le terrain, il doit "suivre" la plante depuis sa 

récolte jusqu'au montage. 

- Loc. = localité administrative de récolte. 

- Date = date de récolte (même si on y a fait référence à la rubrique "N°") 

- Pays = peut être abrégé (B. pour Belgique) 

- Biotope (ou milieu) = milieu où a été récoltée la plante (forêt de feuillus, vieux mur, 

terrain vague, terril, marais, .....). 

- Obs. = observations que vous jugez utiles de signaler pour la détermination de la plante, 

et qui n'apparaissent pas sur l'exemplaire. Ex : la couleur originelle des fleurs si elle a 

changé au séchage, la taille d'un arbre ou d'un arbuste, une odeur particulière... 

Avec la plante séchée et les indications notées dans la rubrique observation, on doit être 

capable de redéterminer l’espèce prélevée. 

- Type pol. = type de pollinisation observé ou supposé (anémophile, entomophile, …). 

- Type dis. = type de dissémination observé ou supposé (zoochore, anémochore, …). 

- Type bio. = type biologique de la plante (terrophyte, chaméphyte, …) 

- Famille = famille taxonomique (voir cours). Ex : Ericaceae. 

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- Nom = Nom latin complet de la plante, à savoir : 

Genre + épithète spécifique + Auteur 

Ex : Calluna vulgaris (L.) Hull 

Notez : 

qu’un nom latin ne prend jamais d’accent. 

que le nom de genre commence toujours par une majuscule 

que l’épithète spécifique commence toujours par une minuscule 

qu’il nécessaire de noter le nom du ou des parrains (descripteur) en entier. 

Lorsque le nom est abrégé, l’abréviation est suivie par un point (ex : L.) 

- Nom vern. = nom vernaculaire = nom français Ex. Callune, bruyère commune. 

- Det. = Determinavit = Personne qui a déterminé la plante. 

Remarques : si une détermination n'est pas certaine, on peut faire précéder le rang taxonomique incertain de 

"cf.". Ex. Carex cf. flacca Schreb. signifie que la personne qui a déterminé la plante est certaine qu'il s'agit bien 

du genre Carex, mais n'est pas certaine de l'espèce flacca. Si elle n'a aucune idée de l'espèce, elle notera Carex 

sp. 

La famille et le nom latin complet ne sont demandés que pour les ptéridophytes et 

spermatophytes. 

Les étiquettes seront rédigées à l'encre noire (l'ordinateur ou la machine à écrire ne sont pas 

obligatoires, si l'écriture est correcte). 

Exemples d'étiquettes correctes, parmi d'autres, la présentation générale de l'étiquette est 

laissée au choix de l'étudiant : 

Coll. : 

Date : N° : 

Loc. : 

Biotope : 

Obs. : 

Pays : 

Type pol. : 

Famille : 

Nom. : 

Nom vern. : 

Det. : 

Type dis. : Type bio. : 

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2.6. Compilation des planches d’herbier 

Chacune des planches sur lesquelles on a fixé une plante est protégée par un buvard. Ceci 

permettra aussi à la plante de continuer à sécher dans l’herbier. 

Les planches devront être regroupées par famille et classée par ordre alphabétique. Une 

feuille reprenant la liste des espèces mises en herbier, les familles, leur mode de pollinisation, 

leur mode de dissémination et leur type biologique, sera annexée à l’herbier. 

Familles Espèces Type de 

pollinisation 

3. Travaux pratiques en laboratoire 

3.1. Réalisation de la farde de travaux pratiques 

Type de 

dissémination 

Type biologique 

Une page de garde (titre, nom et prénom, groupe, année académique) doit figurer dans la 

farde des travaux pratiques (TP) du cours de biologie végétale et animale. Indiquez également 

le nom de votre partenaire de TP. 

Un rapport couvre la matière vue sur une séance de TP (4h). 

Chaque séance de TP fait l’objet d’un rapport manuscrit. Celui-ci reprend la date et le titre 

général de la manipulation, les nom et prénom de l’étudiant ainsi que le groupe dans lequel il 

se trouve. L’ensemble du rapport doit être structuré, chaque exercice (tableau, dessin, …) 

comportant un titre précis et complet. L’ordre de présentation des schémas et des dessins doit 

correspondre à celui exposé dans le mode opératoire. Chaque rapport doit être précédé du 

mode opératoire correspondant. 

Les protocoles et les rapports, insérés chronologiquement dans la farde de TP, doivent être 

paginés. Indiquez sur la première page le numéro de palliasse ainsi que le numéro du matériel 

optique utilisé. 

Pour faciliter les corrections, il est vivement déconseillé d’utiliser des fardes chemises. 

La lecture attentive des protocoles est un préliminaire nécessaire à toute 

séance de TP. De même, il est demandé aux étudiants de revoir les chapitres 

du cours théorique qui seront illustrés aux TP. Avant chaque séance de TP, 

les connaissances sur la matière traitée pourront être évaluées. Les 

questions de réflexions soumises dans les différents modes opératoires 

doivent être complétées avant l’entrée dans le laboratoire. Ceci constitue 

une condition nécessaire à la participation et à la cotation de la 

manipulation. 

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3.2. Synopsis 

TP1 : Bryophytes et Ptéridophytes 

Objectif : 

Etude histologique dans les organes reproducteurs de Bryophytes et de Ptéridophytes. 

Etude de matériel frais ou en herbier. 

Matériel : 

- Hépatiques à thalle : * Marchantia matériel en herbier, photo 

* observation microscopique d'anthéridies et d’archégones 

- Gametophyte et sporophyte de Bryophyte (observation de la coiffe, de l’opercule et du 

péristome) 

- Sphaigne : matériel frais 

- Equisetum sp. en herbier (+ strobiles en alcool) 

- Filicales : frondes fertiles en herbier 

- Filicales : coupes dans prothalle pour anthéridies et archégones 

TP2 : Gymnospermes 

Objectifs : 

Etude histologique des gymnospermes. 

Etude de matériel frais ou en herbier. 

Matériel : 

- Pinus sp. : coupes dans cône et ovule ; montage de grains de pollen par l'étudiant 

- Matériel frais : les principaux genres de conifères présents dans nos région. Identification, 

notion de clef dichotomique. 

TP3 : Angiospermes, histologie 

Objectifs : 

Etude anatomique et morphologique des organes reproducteurs d’Angiospermes. 

Etude histologique tiges de dicotylédones en structure primaire et secondaire. 

Matériel : 

- Coupe dans un anthère de Lilium sp. 

- Coupe dans un sac embryonnaire de Lilium sp. 

- Androcée et gynécée d’une tulipe. 

- Coupe dans une tige de Teucrium sp. 

- Coupe dans une tige de Syringa sp. en structure secondaire. 

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TP4 : Angiospermes, biologie florale 

Objectifs : 

Etude des diagrammes floraux et des formules florales 

Reconnaissance des différents types d’inflorescences 

Matériel : 

Magnolia, Ail des Ours, ficaire, Lamier blanc, … 

TP5 : Angiospermes, fruits et graines 

Objectifs : 

Etude des différents modes de placentation, des fruits et des graines 

Etude des modes de déhiscence et de dispersion 

Matériel : 

Différents fruits d’Angiospermes (pomme, fraise, raisin, ananas, …) 

TP6-7 : Angiospermes, systématique 

Objectifs : 

Identification de matériel frais à l'aide des clefs de la flore, illustration du vocabulaire 

organographique (types de feuilles, inflorescences…), construction de formules florales, de 

diagrammes floraux. 

Matériel : 

Asteraceae, Fabaceae et Rosaceae (distinction entre Prunus sp. et Malus sp.) 

Lamiaceae, Brassicaceae, Ranunculaceae et Poaceae 

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1. Introduction générale 

TP1 : Bryophytes et Ptéridophytes 

Il y a +- 4,5 milliards d’année, la croûte terrestre s’est refroidie et solidifiée. La vapeur 

d’eau, en se condensant, fut à l’origine des océans. La vie se développa dans ces mers 

primitives. Les premiers êtres vivants, microscopiques et unicellulaires, furent des bactéries 

dont les Cyanobactéries. Les premiers eucaryotes sont apparus dans ces mers ; ce sont les 

protistes. Les Cyanobactéries, puis certains Protistes à caractère végétal (Algues) pratiquèrent 

la photosynthèse. Peu à peu, l’atmosphère s’enrichit en oxygène. Cette étape cruciale permit 

le développement de la vie terrestre animale et végétale. Parmi ces premiers végétaux 

terrestres figurent les Bryophytes. Ceux-ci ne prirent jamais une forte ampleur. Ils restèrent 

très tributaires des milieux humides pour leur croissance et leur développement. Les 

Ptéridophytes acquirent un système conducteur particulièrement adapté au milieu terrestre. 

Seule leur reproduction s’opère encore dans l’eau. D’autres, appelées Ptéridospermés, 

« inventèrent » l’ovule ; ces dernières ne sont plus connues qu’à l’état de fossiles. 

Les Gymnospermes sont généralement des arbres dont les organes sexuels aériens 

préfigurent la fleur vraie. Ils apparurent à la fin du Carbonifère. 

C’est à la fin de l’ère Secondaire qu’apparurent les premières Angiospermes (ou plante à 

fleur). Leurs graines sont enfermées dans un organe clos (fruit). Les Angiospermes occupent 

avec succès des milieux écologiques très divers dont les Gymnospermes se trouvent exclus ; 

ces derniers subsistent dans les milieux souvent moins favorables comme les zones très 

froides (la taïga ou les montagnes). 

2. Objectifs 

Les cinq premières manipulations ont pour objectif d’illustrer l’évolution de la vie 

végétale. Nous n’avons malheureusement pas le temps d’aborder l’ensemble des phyla 

végétaux. Nous ne parlerons donc pas des Procaryotes photosynthétiques (Cyanobactérie) ou 

des Protistes photosynthétiques (algues sensu lato). Nous étudierons uniquement les végétaux 

« supérieurs » en commençant par les plus primitifs, les Bryophytes et les Ptéridophytes. La 

seconde séance sera consacrée au Gymnospermes. Les trois dernières séances permettront de 

caractériser les Angiospermes. Nous mettrons en évidence au cours de ces 5 séances les 

« sauts évolutifs » majeurs : 

- colonisation de la terre ferme ; 

- apparition des tissus vasculaires ; 

- indépendance vis à vis de l’eau ; 

- apparition de l’ovule et du grain de pollen ; 

- apparition de la fleur ; 

- apparition du fruit. 

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3. Procaryotes photosynthétiques (Cyanobactéries) 

Parmi les Procaryotes photo-autotrophes, les Cyanobactéries (ou « algues bleues ») 

forment une classe de +-3000 espèces, se distinguant par une photosynthèse oxygénique. 

Les Cyanobactéries ont largement contribué à l’enrichissement de l’atmosphère en 

oxygène durant l’ère Précambrienne où elles étaient les seuls organismes photosynthétiques. 

Beaucoup de Bactéries dont certaines Cyanobactéries sont capables de fixer l’azote 

moléculaire atmosphérique (N2). Cette fixation de N2 est exclusivement rencontrée chez les 

Monères. Chez certaines Cyanobactéries filamenteuses (ex : Nostoc sp.) l’assimilation d’N 

atmosphérique est réalisée par des cellules spécialisées, les hétérocystes. Ces bactéries à thalle 

présentent donc un début de différenciation cellulaire. 

D’un point de vue macroscopique, la majorité des Cyanobactéries vivent en suspension 

dans les eaux douces ou marines (plancton). Certaines « algues bleues » forment des 

« encroûtements » visibles notamment sur les rochers des côtes marines ou dans les flaques 

d’eau asséchées. Un cas particulier est l’accumulation de sédiments calcaires provenant 

d’algues bleues pour former des stromatolithes. L’étude de ces concrétions calcaires a 

contribué largement à la reconstitution de l’évolution des organismes vivants. D’autres 

cyanobactéries forment des associations symbiotiques notamment avec des champignons pour 

constituer des lichens. 

4. Protistes végétaux 

Ce sont les premiers eucaryotes photosynthétiques. Comme chez tout les eucaryotes, on 

observe un succession de phase haploïde (n chromosomes) et diploïde (2n chromosomes), 

suivant respectivement la méiose et la fécondation. 

Les protistes végétaux font partie du vaste groupe paraphylétique des thallophytes 

contenant notamment les algues et les champignons. La différenciation cellulaire est faible. 

Un grand nombre de thallophytes sont des unicellulaires. 

Les algues forment un groupe végétal extrêmement important (plus de 20.000 espèces) 

dans lequel on classe des individus de morphologie fort différente. Parmi celles-ci, les 

diatomées sont des cellules vivant isolées ou en colonies. Elles ont pour particularité de 

disposer d’une paroi (ou frustule) de silice formée de deux valves. Ces thèques sont de forme 

variable avec des ornementations diverses. Leur étude dans les milieux aquatiques présente un 

grand intérêt dans l’évaluation de la pollution d’eau. 

En simplifiant, les algues plus évoluées sont classées en fonction de la couleur des 

pigments : rouge (embranchement des Rhodophytes), brune (embranchement des Phéophytes) 

ou verte (embranchement des Chlorophytes). Ces couleurs sont le résultat de l’adaptation des 

algues à leur milieu. En effet, les pigments interviennent dans la capture de l’énergie 

lumineuse nécessaire pour la photosynthèse. Or, on sait que la lumière est constituée de 

différents rayons de longueur d’onde variable. Quant les rayons solaires atteignent la surface 

des mers, des lacs et des rivières, une partie est réfléchie, le reste pénètre dans l’eau. Alors 

que certains rayons sont rapidement absorbés, le vert et le bleu pénètrent profondément et 

déterminent la couleur des eaux. C’est ainsi que les algues vertes se développent dans les 

zones proches de la surface, tandis que les algues rouges et brunes partagent les eaux les plus 

profondes. 

21


Fucus vesiculosus L. est une algue brune très abondante sur les côtes atlantiques. Elle 

constitue une part importante du goémon, utilisé comme engrais. Le cycle d’un autre Fucus, 

monoïque, est résumé ci-dessous. La phase diploïde est dominante pour cette espèce. 

5. Bryophytes 

5.1. Introduction 

Figure 1. Cycle d’un 

Fucus monoïque 

Caractéristiques 

L’embranchement des Bryophytes marque le début du Règne des Métaphytes, plantes qui 

progressivement se sont adaptées aux milieux terrestres. Les Mousses sont en effet les 

premiers végétaux à présenter un "Cormus" c'est-à-dire une organisation de l'organisme 

typique : racine, tige, feuille. Cet embranchement comprend deux classes principales : Les 

Hepatospida et les Bryopsida. 

Les Hépatiques sont couramment scindées en 2 groupes faciles à distinguer mais n’ayant 

pas de valeur taxonomique : les hépatiques à thalle et les hépatiques à feuille. 

Les Hépatiques à thalle possèdent un appareil végétatif formé d’une lame verte étalée sur 

le substrat. En général, le « thalle » possède une ramification dichotomique. La lame est fixée 

sur le substrat par des rhizoïdes et/ou des écailles. Certaines Hépatiques présentent un thalle 

très sophistiqué, c’est le cas de Marchantia polymorpha L. emend. Burgeff. Chez cette 

espèce, les cellules chlorophylliennes sont empilées en petites structures ramifiées au sein de 

chambres aérifères ; les gamétanges sont portés par des gamétophores et la reproduction 

asexuée se réalise par l’intermédiaire de propagules. 

22


Les Hépatiques à feuilles ressemblent extérieurement aux Bryopsida. Elles s’en 

distinguent par quelques caractères macroscopique : sporophyte possédant une soie hyaline et 

une capsule sans péristome ni opercule, absence de coiffe, symétrie dorso-ventrale des tiges 

feuillées, parfois présence de petites feuilles spécialisées appelées amphigastres. 

Les Bryopsida se composent de deux ordres principaux : les Bryales et les Sphagnales. 

Les Bryales comprennent les vraies mousses. Le gamétophyte est formé principalement 

de tiges feuillées ancrées sur le substrat par l’intermédiaire de rhizoïdes. Chez certaines 

espèces évoluées, une ébauche de système conducteur est mise en place au centre de la tige. 

En fonction de la position du sporophytes sur la tige, deux groupes sont distingués : les 

mousses acrocarpes (figure A) et les mousses pleurocarpes (figure B). Les premières portent 

les sporophytes à l’extrémité des tiges, les secondes ont leurs sporophytes attachés 

latéralement sur les tiges. 

Les Sphagnales sont des Bryophytes quasi exclusivement inféodées aux sols acides et très 

humides, notamment dans les tourbières. Une adaptation remarquable est la présence de 

cellules spécialisées dans la rétention d’eau au sein de la feuille : les hydrocytes. Chaque 

hydrocyte possède une paroi présentant des pores, cette même paroi est invaginée au sein de 

la cellule (compartiment). Ces cellules sont vides de tout cytoplasme à l’état mature. Les 

cellules chlorophylliennes sont beaucoup plus petites que les hydrocytes et les entourent. 

A B 

5.2. Matériel 

- Matériel frais et en herbier de Bryophytes appartenant à des classes différentes. 

- Coupes histologiques 

5.3. Manipulation 

Figure 2. A. Mousse Bryale 

acrocarpe. B. Mousse Bryale 

pleurocarpe. 

Observation d'une hépatique à thalle : Marchantia polymorpha L. (Bryophytes, 

Hepaticopsida) 

• Observer le thalle foliacé appliqué sur le substrat, les rhizoïdes à la face inférieure, la 

division de la face supérieure en losanges munis d'un pore central. 

• Observer la présence de corbeilles à propagules. 

23


Observation d'une coupe microscopique dans un anthéridiophore et un archégoniophore de 

Marchantia polymorpha L. (Bryophytes, Hepaticopsida) 

• Schématisez la structure générale de l’archégoniophore et de l’anthéridiophore. Dessinez 

une anthéridie et un archégone. 

Légende : anthéridie, anthérozoïde immature, archégone, oosphère, col, ventre 

Observation d’un sporophyte d’une mousse (Bryophyta, Bryopsida, Bryales, Polytrichaceae) 

• Observer un sporophyte : il est constitué d’un pied soudé au gamétophyte, d’une soie et 

d’une capsule (comprenant l’urne surmontée de l’opercule). Celle-ci est recouverte d’une 

coiffe, vestige de l’archégone. Sous la coiffe, se trouve l’opercule. Le retrait de l’opercule 

permet d’observer le péristome constitué de dents. 

• Schématiser le gamétophyte et le sporophyte. 

Légende : gamétophyte, sporophyte, soie, capsule, opercule, coiffe. 

• Dessiner le détail de la capsule montrant l’opercule, l’urne et les dents du péristome. 

Observation d'une sphaigne : Sphagnum sp. (Bryophyta, Bryopsida, Sphagnales) 

• Observer et dessiner l'organisation générale du gamétophyte formé d'une tige principale 

portant des rameaux feuillés fasciculés. 

Légende : tige feuillée, tige principale, feuille. 

• Monter une feuille dans une goutte d'eau entre lame et lamelle. Observer les chlorocytes 

formant un réseau autour des hydrocytes. Dessiner. 

6. Ptéridophytes 

6.1. Introduction 


L’embranchement des Ptéridophytes se distingue notamment de celui des Bryophytes par 

deux caractères fondamentaux : 

- La dominance en taille et en durée de vie du sporophyte sur le gamétophyte. 

L’appareil végétatif est diploïde et le gamétophyte est limité à un prothalle 

microscopique souvent éphémère. 

- La présence d’un appareil végétatif plus différencié. Les Ptéridophytes 

possèdent les tissus vasculaires différenciés (xylème et phloème) réunis en stèle. 

Avec les tissus de soutien, ces structures permettent un port dressé et une taille 

supérieure à celle atteinte par les mousses. Comme chez les Spermatophytes, les 

Ptéridophytes (excepté les Psilotopsida) possèdent un appareil végétatif différencié 

en trois types d’organes : les tiges, les feuilles et les racines. 

La classe des Filicopsida comprend les fougères proprement dites. La fougère mâle 

(Dryopteris filix-mas (L.)Schott) est un exemple de Filicopsida. Atteignant 20 à 160 cm de 

haut, elle peut occuper de grande surface en sous-bois, sur des terrains à tendance acide. Elle 

24


est vivace par sa tige souterraine, le rhizome. Les pousses qui émergent chaque année 

correspondent aux grandes feuilles ou frondes ou encore mégaphylles. D’abord repliées en 

forme de crosse, elles sont constituées d’un long pétiole et d’un limbe découpé. Les plus 

petites divisions du limbe s’appellent pinnules. Les sores sont localisées sur le bord de 

certaines pinnules. Ils présentent une membrane (indusie) qui recouvre les sporanges. 

La classe des Sphenopsida comprend les prêles, parfois appelées « queue de cheval » en 

raison de leurs denses ramifications en verticilles. Un aspect évolutif important rencontré chez 

les prêles est la spécialisation de certaines feuilles portant des sporanges. Ces feuilles sont 

réunies en un épi sporangifère (strobile). Les spores issues des sporanges sont 

morphologiquement semblables, mais certaines donneront des prothalles unisexués 

(contrairement aux prothalles toujours bisexués des Filicales). 

6.2. Matériel 

Equisetum sp. en herbier (+ strobiles en alcool) 

Filicales : frondes fertiles en herbier 

Filicales : coupes dans prothalle avec anthéridies et archégones 

Démonstration sur matériel d'herbier des principaux ordres de Filicales 

6.3. Manipulation 

Observation microscopique d'une coupe dans un prothalle de fougère (Filicopsida). 

• Dessiner une anthéridie et un archégone. 

Légende : anthérozoïde - anthérozoïde spiralé (mature), oosphère, ventre, col, cellule du 

canal du col. 

Observation de sores et sporanges de Dryopteris filix-mas (L.)Schott (Filicopsida) 

• Observer les sores à la face inférieure des pinnules d'une fronde (matériel en herbier). 

Dessinez. 

• En utilisant les coupes préparées, dessiner un sporange. 

Légende : spore, pédicelle, anneau mécanique. 

Observation d'un sporophyte d'Equisetum sp. (Sphenopsida). 

• Observer les deux types de tiges chez les Equisetum sp., des tiges fertiles portant un 

strobile terminal et des tiges stériles portant uniquement des verticilles de feuilles. 

Dessinez les deux tiges. 

Légende : strobile terminal, écusson à sporange, tige stérile, tige fertile, nœud, entrenœud, 

rameau verticillé, verticille de feuilles écailleuses. 

25


7. Questions de synthèse de et de réflexion 

1. Déterminez les différences entre procaryotes et eucaryotes dans le tableau ci-dessous. 


ADN 

Procaryotes Eucaryotes 

Reproduction 

Taille des cellules 

Organites 

2. Légendez le cycle du Bryophyte exposé ci-dessous avec les termes suivants : sporophyte, 

gamétophyte, anthéridie, archégone, anthérozoïde, oosphère, coiffe, capsule, spore, 

rhizoïde, soie, opercule. Indiquez à quel niveau se passe la méiose et la fécondation. 

26


3. Légendez le cycle du Ptéridophyte exposé ci-dessous avec les termes suivants : 

sporophyte, gamétophyte, anthéridie, archégone, anthérozoïde, oosphère, sore, sporange, 

fronde, zygote, indusie. Indiquez à quel niveau se passe la méiose et la fécondation. 

27



TP2 : Gymnospermes 

Trois embranchements sont considérés dans ce TP : les Cycadophytes, les Ginkgophytes 

et les Coniférophytes. D’emblée, il faut noter que le statut taxonomique de ces trois groupes 

n’est pas encore fixé. En effet, selon les auteurs, ils auront le statut d’embranchement, de 

sous-embranchement ou de classe. Dans le cadre des TP, nous suivrons l’option prise au cour 

théorique. 

Les Cycadophytes rappellent les palmiers et se rencontrent principalement dans les 

régions tropicales et subtropicales. Elles sont apparues il y a au moins 250 millions d’années, 

au permien. La plupart des Cycadales sont des plantes d’assez grande taille (jusque 18m de 

hauteur). Les structures reproductrices des cycadales sont des feuilles plus ou moins réduites 

portant des sporanges, lâchement ou étroitement réunies en sorte de cônes aux environs de 

l’apex de la plante. Avant la fécondation, la portion basale du gamétophyte mâle se dilate et 

s’allonge, amenant les anthérozoïdes au voisinage des oosphères. Cette portion se rompt 

ensuite et les anthérozoïdes multiciliés libérés nagent vers les oosphères. 

Ginkgo biloba est le seul représentant des Ginkgophytes. C’est l’unique survivant d’un 

genre qui a peu varié depuis 150 millions d’années. Les ovules du Ginkgo apparaissent par 

paires à l’extrémité de court pédoncule et produisent, en mûrissant des graines entourées 

d’une enveloppe charnue. La fécondation ne se réalise qu’après la chute des ovules. 

Les Coniférophytes sont toujours ligneuses, parfois de très grande taille (plus de 100m 

pour les Séquoias) et certaines d’entre elles sont âgées de plusieurs millénaires : 1500-2000 

ans pour le ifs européens, 2000-3000 ans pour les Séquoias, jusqu’à 5000 ans pour certains 

pins de Floride. Chez les Gymnospermes, la graine, composée du spermoderme, d’un 

embryon et de matière de réserve, a pris la place de la spore comme unité de dispersion. Cette 

« invention » a donné aux spermatophytes un énorme avantage sur les cryptogames 

vasculaires. Comme leur nom l’indique (le mot grec Gymnos signifie « nu » et sperma veut 

dire « graine »), les graines des gymnospermes ne profitent pas de la protection d’une 

enveloppe telle que la paroi du fruit qui entoure les graines des angiospermes (plantes à fleur). 

Un autre avantage majeur que possèdent les gymnospermes et les angiospermes est leur 

indépendance à l’égard de l’eau pour le transport de l’anthérozoïde vers l’oosphère. Chez les 

Gymnospermes, le gamétophyte mâle partiellement développé (le grain de pollen) est 

transporté mécaniquement au voisinage du gamétophyte femelle, à l’intérieur de l’ovule ; il 

produit ensuite un tube pollinique. Sans être à l’origine un organe transporteur 

d’anthérozoïdes, le tube pollinique a finalement évolué pour convoyer des anthérozoïdes non 

mobiles à l’intérieur de l’ovule jusqu’aux oosphères du gamétophyte femelle. 

2. Objectifs 

Présenter la diversité des Gymnospermes et les évolutions par rapport aux Ptéridophytes. 

28


3. Matériel 

Pinus sp. : coupes dans cône et ovule ; montage de grains de pollen par l'étudiant 

Matériel frais : les principaux genres de conifères présents dans nos région. Identification, 

notion de clef dichotomique. 

4. Manipulations 

Observation d'une coupe microscopique dans un ovule de Pinus sp. (Coniferopsida) 

• Réalisez un schéma général. 

Légende : Ecaille ovulifère, tégument, micropylle, nucelle, endosperme, archégone. 

Observation d'une coupe microscopique dans un cône mâle de Pinus sp. 

• Réalisez un schéma général de la coupe dans le cône. 

• Dessinez une écaille microsporangifère. 

Légende : microspores (= grain de pollen), écaille, axe du cône, microsporange. 

Montage et observation de grains de pollen de Pinus sylvestris L. 

• Observer les 2 couches de l'enveloppe du grain (intine et exine) et la présence de 

ballonnets aérifères. Dessiner. 

Légende : intine, exine, ballonnet aérifère, grain de pollen 

Description et reconnaissance des principaux genres de conifères (Coniferopsida) observables 

en Belgique. 

Ordre des Pinales 

• Pinaceae 

Picea ex: Picea abies L. (Karst.) 

Abies ex: Abies alba Mill. 

Pinus ex: Pinus sylvestris L. 

Pinus strobus L. 

Larix ex: Larix decidua Mill. 

Pseudotsuga ex: Pseudotsuga menziesii (Mirb.) Franco 

Tsuga ex: Tsuga canadensis (L.) Carr. 

Cedrus ex: Cedrus libani A. Rich. 

• Cupressaceae 

Juniperus ex: Juniperus x media Van Melle 

Chamaecyparis ex: Chamaecyparis lawsoniana (A. Murray) Parl 

Thuja ex: Thuja plicata Donn ex D. Don 

29


• Taxodiaceae 

Sequoiadendron ex: Sequoiadendron giganteum (Lindl.) Buchholz 

• Araucariaceae 

Araucaria ex : Araucaria araucana (Molina) K. Koch 

Ordre des Taxales 

• Taxaceae 

Taxus ex: Taxus baccata L. 

Déterminez l’ensemble du matériel fourni grâce à votre flore. Reconstituez ensuite une clé 

dichotomique avec vos propres critères d’identification pour déterminer les espèces 

présentées. 

Démonstration : autres classes de Gymnospermes et de pré-spermatophytes 

• Ginkgopsida : Ginkgo biloba L. 

• Cycadopsida : Cycas sp. 

• Gnetopsida : Ephedra sp. 

5. Questions de réflexion 

Pour chacun des différents groupes abordés au cours des deux derniers TP, définissez les 

avancées évolutives majeures. 

Cyanobactéries : 

Protistes végétaux : 

Bryophytes : 

Ptéridophytes : 

30



TP3 : Angiospermes, histologie 

Les Angiospermes comprennent environ 225000 espèces. Ils diffèrent des Gymnospermes 

par les principaux caractères suivants : 

- l’écaille ovulifère est devenue un carpelle qui entoure complètement les ovules. 

Les carpelles forment un ou plusieurs pistils qui, après fécondations, se 

transforment en fruit(s) ; 

- les organes reproducteurs se groupent en fleurs ; 

- il y a double fécondation. 

L’androcée est constitué d’une ou de plusieurs étamines(s). Les quatre sacs polliniques, 

groupés en deux thèques forment l’anthère qui est portée par un axe, le filet. Au sein des 

anthères, les cellules haploïdes (microspores) résultant de la méiose se développent chacune 

en un gamétophyte mâle immature, c’est-à-dire un grain de pollen. 

Le gynécée est constitué d’un ou de plusieurs pistils(s). Le ou les carpelles(s) constituant 

le ou les pistil(s) porte(nt) un ou plusieurs ovule(s). La méiose intervenant dans l’ovule est à 

l’origine d’un petit gamétophyte femelle qui y reste inclus. Le gamétophyte femelle se 

compose d’un groupe de cellules haploïdes constituant le sac embryonnaire, entouré de 

quelques cellules diploïdes maternelles. 

Figure 3. 1. C.T. dans gynécée à 

placentation axile. 2. C.T. dans 

gynécée à placentation pariétale. 

3. Pistil vu de profil. 

31


La placentation désigne la modalité d’association des carpelles formant l’ovaire, 

impliquant un mode d’insertion défini des ovules. L’identification du type de placentation est 

capitale pour la détermination des familles d’Angiospermes. Les placentations les plus 

fréquentes sont : 

La placentation marginale 

La placentation axile (fig. 3.1) 

La placentation centrale 

La placentation basale 

La placentation pariétale (fig. 3.2) 

2. Objectifs 

L’objectif est double. D’une part, on étudie la structure anatomique et histologique des 

organes sexuels d’Angiospermes. Ceci permet de noter les évolutions de ces structures par 

rapport aux taxons précédemment étudiés (Bryophytes, Ptéridophytes et Coniférophytes). 

D’autre part, on décrit brièvement l’organisation histologique des tissus vasculaires dans une 

tige de Dicotylédone. 

Deux types de représentations sont utilisés : le dessin et le schéma. Dans tous les cas, les 

représentations doivent être claires et suffisamment grandes (ne pas hésiter à utiliser une page 

entière). Pour les deux coupes de tiges, avant de commencer vos dessins, relisez attentivement 

les consignes qui ont été données pour les deux types de représentation. 

3. Matériel 

- Coupe transversale dans un sac embryonnaire. 

- Coupe transversale dans un anthère 

- Gynécée et androcée de tulipe 

- Pistil de coquelicot (Papaver sp.), de ficaire (Ranunculus ficaria) et de Lychnis (Lychnis 

sp.) 

- Coupe transversale dans une tige de Dicotylédone en structure primaire 

- Coupe transversale dans une tige de Dicotylédone en structure secondaire 

4. Manipulations 

4.1. Les organes sexuels 

Observation du gynécée d’une tulipe 

• Observez le pistil, il est constitué de trois carpelles soudés, formant trois loges 

(placentation axile). 

• Réalisez le dessin du pistil vu de profil. 

Légende : ovaire, style, stigmate, réceptacle. 

32


• Réalisez une coupe transversale et dessinez là. 

Légende : loge, ovule, funicule, paroi du carpelle 

Observation microscopique d’une coupe transversale dans un sac embryonnaire de Lilium sp. 

• Réalisez un dessin. 

Légende : antipodes, micropyle, noyaux polaires, nucelle, oosphère, paroi de l’ovule, 

paroi du carpelle, synergides, tégument. 

Etude des modes de placentations 

• Réalisez une C.T. dans les différents pistils distribués (4). 

• Déterminez le type de placentation. 

• Faites un schéma des coupes et indiquez les zones de soudures par une flèche. 

Légende : carpelle, zone de soudure, loge, ovule. 

Observation de l’androcée d’une tulipe 

• Observez une étamine. 

• Réalisez le dessin d’une étamine vue de profil. 

Légende : filet, anthère 

Observation microscopique d’une coupe transversale dans un anthère de Lilium sp. 

• Observez une anthère. Elle est constituée de deux loges ; les 4 sacs polliniques sont réunis 

et s’ouvrent par deux fentes de déhiscences longitudinales. 

• Réalisez un dessin. 

Légende : épiderme, assise mécanique, loge pollinique, grain de pollen, fente de 

déhiscence, sac pollinique. 

4.2. La tige 

Coupe transversale dans une tige de Teucrium scorodonia (Dicotylédone herbacée) en 

structure primaire (déjà en évolution vers la structure secondaire) 

Réalisez un schéma général 

Observez : 

- un épiderme + poils 

- des pôles de collenchyme, localisés dans les angles de la tige, sous l'épiderme 

- un parenchyme 

- du phloème 

- une zone cambiale (+ claire), formée de quelques assises de cellules disposées en 

files 

- du xylème, en files de petites cellules à parois épaissies 

33


- une moelle centrale, parfois dégradée 

Remarque : notez que l'organisation en faisceaux libero-ligneux des tissus conducteurs et du 

cambium passe à une organisation en cylindres concentriques en structure secondaire (les 

faisceaux se rejoignent) 

Coupe transversale dans une tige de Syringa sp. (Dicotylédone ligneuse) en structure 

secondaire 

Réalisez un schéma général 

Observez : 

- éventuellement un reste d’épiderme 

- le suber, formé de cellules à contour tortueux, à parois épaissies (subérine) 

- le phellogène et/ou le phelloderme sont difficiles à observer, très minces, 

représentés par quelques cellules, entre le suber et le collenchyme. 

- du collenchyme 

- du parenchyme 

- du sclérenchyme 

- le phloème secondaire 

- le xylème secondaire 

- la moelle centrale, parfois disparue 

5. Questions de réflexions 

1. Quel est l’intérêt d’une coupe longitudinale axiale dans un ovaire ? 

2. Quel est l’intérêt d’une coupe transversale dans un ovaire ? 

34


TP4 : Evolution de la vie végétale : Angiospermes, biologie florale 


Les plantes à fleur (= Angiospermes) constituent le groupe le plus évolué et le plus 

diversifié du règne végétal. En conséquence, nous nous attarderons plus longuement sur ses 

caractéristiques (3 séances). 

Taxons Nombre d’espèces décrites 

Angiospermes 270000 

Gymnospermes 700 

Ptéridophytes 10000 

Bryophytes 30000 

Algues 30000 

Champignons 100000 

Les organes reproducteurs sont des caractères d’organisation Ils sont mieux conservés que 

l’appareil végétatif qui lui, va d’adapter selon les conditions du milieu. La morphologie et 

l’organisation de l’appareil reproducteur seront donc des critères essentiels dans la 

classification des plantes. Il est donc crucial de pouvoir le décrire correctement. 

1.1. La fleur 

Chez les Angiospermes, l’appareil reproducteur est entièrement organisé au sein de la 

fleur. Celle-ci est portée sur un axe (sinon fleur sessile), formé du pédicelle et du réceptacle. 

De l’extérieur vers l’intérieur, on distingue : 

- calice (K) = sépales 

- corolle (C) = pétales 

- K + C = périanthe 

- androcée (A) = étamines 

- gynécée (G) = carpelles 

35


Le schéma floral, la formule florale et le diagramme floral sont trois formes synthétiques 

de traduction des différentes particularités morphologiques d’une fleur. Leur construction 

repose sur une série de conventions et utilise un symbolisme approprié. 

1.1.1. Schéma floral 

On y représente une section longitudinale et axiale de la fleur (plan de section passant 

par le centre). Les pièces sont dessinées sur le réceptacle. Trois verticilles indiqueront une 

infinité. 

1.1.2. La formule florale 

Exemple : CL d’une fleur d’Apiaceae 

La formule florale est une représentation chiffrée de la composition d’une fleur. Elle 

précise : 

- la symétrie de la fleur 

- la nature des pièces florales 

- le nombre de pièces florales 

- les soudures éventuelles entre pièces florales 

36


Par convention, la formule florale débute par un symbole traduisant la symétrie de la 

fleur auquel succède une série de sigles représentant les différentes pièces florales rencontrées 

partant de l’extérieur (base de la fleur) vers l’intérieur (sommet ou centre de la fleur). 

1 

Ex : Brassicaceae : X K4 C4 A2+4 G(2) 

n 

1.1.3. Le diagramme floral 

Le diagramme floral est un schéma rendant compte de l’architecture florale. Il 

précise : 

- la disposition relative de l’ensemble des pièces florales (préfloraison, alternance ou 

opposition entre pièces florales de cycles adjacents, …) ; 

- les soudures éventuelles entre pièces florales ; 

- la structure interne de l’ovaire. 

Construire un diagramme floral revient à projeter les différentes pièces florales 

(représentées par des symboles et de couleurs appropriés) sur un plan perpendiculaire à l’axe 

de la fleur. 

Organe Observation Symbole Couleur 

Axe du rameau Section transversale Cercle plein noir 

Bractée Section transversale dans Arc de cercle (croissant plein) avec noir 

la partie la plus large éventuellement la nervure principale 

en carène 

Calice (sépales) Section transversale dans 

la partie la plus large 

idem vert 

Corolle (pétales) Section transversale dans 

la partie la plus large 

idem bleu 

Périgone Section transversale dans idem violet 

(tépales) la partie la plus large 

Androcée Section transversale dans Cercle plein ou forme précise de la jaune 

(étamines) l’anthère 

coupe transversale (osselet, rein, …) 

Gynécée (pistil) Section transversale dans Symboliser la ou les feuilles rouge 

l’ovaire 

carpellaires et le nombre d’ovules 

par niveau d’insertion 

Le diagramme floral doit être orienté vis-à-vis de l’axe du rameau portant la fleur et de 

la bractée sous-tendant le pédicelle floral. Par convention, l’axe du rameau sera placé en haut 

du diagramme floral, la bractée en bas (voir ci-dessous). 

37


Les pièces florales se disposent le plus souvent selon une série de cercles 

concentriques, plus rarement selon des spirales ou selon une combinaison de cercles 

concentriques et de spirales. 

1.1.4. Symbolisme utilisé 

Organes ne faisant pas partiede la fleur 

Formule florale Diagramme floral 

Axe du rameau Non représenté de couleur noire 

Bractée sous-tendant la fleur Non représenté 

Autres bractées B ou non représenté si la ou 

les bractées entourent 

plusieurs fleurs 

Symétrie de la fleur 

de couleur noire 

de couleur noire 

Fleur à symétrie spiralée « » Disposition des pièces florales 

selon des spirales 

Fleur à symétrie radiaire « X » Disposition des pièces florales 

selon des cercles concentriques 

Fleur à symétrie bilatérale « % » Disposition des pièces florales 


avec mentions du plan de 

symétrie par un trait 

interrompu passant par l’axe du 

rameau et la bractée soustendant 

le pédicelle floral 

38


Fleur sans symétrie Pas de symbole Disposition des pièces florales 


Organes faisant partie de la fleur 

Calicule « k » 

de couleur verte 

Calice « K » 

de couleur verte 

Corolle « C » 

de couleur bleue 

Pracorolle « c » 

de couleur bleue 

Périgone « P » 

de couleur violette 

Androcée 

Etamine introrse 

« A » de couleur jaune 

Etamine extrorse 

introrse extrorse 

Gynécée 

« G » 

Symboliser la ou les feuilles 

Soudure vis-à-vis du 

carpellaires et le nombre 

réceptacle 

d’ovules par niveau 

Ovaire supère 

« G » 

d’insertion, en tenant comte de 

Ovaire semi-infère 

« G » la placentation. 

Ovaire infère 

« G » Couleur rouge 

Divers 

Nombre de carpelles 

Nombre de loges 

Nombre d’ovules par 

loge 

Fleur hermaphrodite 

Fleur unisexuée mâle 

Fleur unisexuée femelle 

A la suite de la lettre G 

A la suite du nombre de 

carpelles et en exposant 

A la suite du nombre de 

carpelles et en indice 

♂ 

♂ 

♀ 

Nombre de pièces florales A la suite des lettres K, C, A, 

G, … 

Soudure entre pièces florales « ( ) » 

si imbrication de soudure : 

« [ ( ) ] » 

Représenter le gynécée et 

l’androcée 

Représenter uniquement 

l’androcée 

Représenter uniquement le 

gynécée 

Représenter autant de symboles 

Joindre les éléments soudés 

entre eux par un trait droit ou 

brisé 

39


Existence de plusieurs cycles 

de sépales, pétales ou 

étamines 

Pièces florales en nombre 

variable (d’une fleur à l’autre 

Pièces florales en nombre 

élevés 

autre possibilité : une flèche 

joignant les éléments 

soudés : 

« » 

Séparer les cycles par un 

« + » 

Si < 10 : choisir le nombre 

plus fréquent ou indiquer le 

nombre minimal et maximal 

de pièce 

Si > 10 : n ou ∞ 

Si > 10 mais toujours 

aisément dénombrables : n 

Si > 10 mais difficilement 

dénombrable : ∞ 

Staminode « St » (suit la mention du 

nombre de pièces) 

Nectaire « Nect » (suit la mention du 

nombre de pièces 

Représenter plusieurs cercles 

concentriques 

la couleur est 

fonction de l’organe dont est 

issu le staminode 

la couleur est fonction 

de l’organe dont est issu le 

nectaire. 

Disque nectarifère « D » Deux cercles concentriques 

noirs que l’on remplit de 

Sépales, pétales ou étamines 

d’aspect différent (forme, 

couleur, …) ou soudés 

partiellement entre eux 

Pièces florales ayant disparu 

suite à une réduction du 

nombre lors des processus 

évolutifs 

Exemples 

Séparer les éléments ou 

groupe d’éléments différents 

par une « , » 

hachures rayonnantes 

Si la forme est différentes, 

schématiser plus ou moins 

fidèlement un coupe 

transversale dans l’organe en 

question 

Non représenté « x » à l’emplacement 

théorique 

K5 : Calice à sépales libres 

K(5) : Calice à sépales soudés 

C (3,2) : Corolle à pétales soudés formant deux lèvres (une lèvre à 3 pétales et l’autre à 

2 pétales) 

P3 : Périgone à 3 tépales 

P0 : Périgone nul 

A5 : Androcée formé par un cycle de 5 étamines 

A3+3 : Androcée formé par deux cycles de 3 étamines 

40


A (9), 1 : Androcée formé d’un cycle de 10 étamines dont 9 sont soudées entre elles et un 

libre 

A5st+5 : Androcée formé par deux cycles de 5 étamines, les 5 étamines externes 

transformées en staminodes 

A∞ : Androcée formé par une multitude d’étamines (il est quasiment impossible de 

les compter) 

A1,4nect : Androcée formé d’un cycle de 5 étamines dont 4 transformées en nectaires 

3 

G(3) : Ovaire infère formé de 3 carpelle soudés, 3 loges (1 par carpelle) et 2 ovules 

2 par loge 

1 

X K4 C4 A2+4 G(2) : fleur à symétrie radiaire, 4 sépales libres, 4 pétales libres, 

n androcée formé par un cycle externe de 2 étamines et un cycle 

interne de 4 étamines, ovaire supère formé de 2 carpelles soudés 

délimitant une seule loge contenant un nombre élevé d’ovule mais 

dénombrable. 

n 

K3 C6-12 An G n 

1 

Toutes les pièces florales sont libres et disposées sur 

des spirales. Le nombre de pétales varie entre 6 et 12. 

La placentation est marginale 

X K5 C5 A5+5 G 5 

5 

n 

Fleur actinomorphe pentamère dont toutes les pièces 

sont libres. Il y a 2 cycles d’étamines. Le gynécée est 

formé de 5 carpelles libres. La placentation est 

marginale. 

41


8-15 

X K5 C5 A(2),(2),(3),(4) D G (8-15) 

n 

Androcée formé de groupes de 2 à 4 étamines 

soudées. Présence d'un disque nectarifère entre 

l’androcée et le gynécée. La placentation est axile. 

n 

X [k3 K(5)] C5 A(∞) G (n) 

1 

Présence d’un calicule formé d’éléments soudés au 

calice gamosépale. Etamines très nombreuses et 

soudées entre elles. Le gynécée est formé de 

plusieurs carpelles soudés. La placentation est axile. 

1 

% B2 P5 A3 G (3) 

3 

La fleur est entourée de 2 bractées. Le périgone est 

formé de 5 tépales soudés en un tube présentant une 

échancrure prononcée. L’androcée est composée de 3 

étamines disposées en face (en opposition) des 

tépales ; 2 sites potentiels sont inoccupés. La 

placentation est centrale 

42


1.2. L’inflorescence 

Plusieurs fleurs peuvent s’associer sur un même rameau, on parle alors d’inflorescence. Il 

existe de nombreuses modalités de groupement de fleur. Les principales inflorescences sont : 

La grappe 

L’épis 

La corymbe 

Le chaton 

La cyme 

L’ombelle 

Le spadice 

Le glomerule 

2. Objectifs 

Etablir la formule florale et construire le diagramme floral de trois familles différentes 

A l’aide de la flore, vérifier les familles et identifier l’espèce 

Observer et schématiser les différents types d’inflorescences 

3. Matériel 

Quelques fleurs 

Matériel de dissection florale 

Crayons de couleur 

Binoculaire 

Loupe de terrain 

2 

% P0 A0 G (2) 

1 

Fleurs unisexuées femelles groupées par 2 à l’aisselle 

des bractées. 2 bractéoles accompagnent chaque fleur 

femelle. Celles-ci sont réduites à un gynécée formé 

de 2 carpelles soudés. L’ovaire est infère. La 

placentation est axile. 

43


4. Manipulation 

4.1. Description de l’anatomie florale 

Observer le matériel distribué et isoler une fleur 

Effectuer une dissection florale 

Repérer les pièces formant le périanthe de la fleur 

Déterminer le nombre de verticilles 

Compter le nombre d’éléments par verticille, leur soudure éventuelle et leur disposition 

vis-à-vis des éléments de verticille adjacents (en opposition, en alternance, …) 

Observer l’androcée (nombre d’étamines, forme, taille, disposition, emplacement des 

anthères vis-à-vis du filet, …) 

Observer le gynécée, distinguer le ou les pistils et ses trois composantes : ovaire (partie 

basale renflée), style (partie effilée surmontant l’ovaire) et stigmate (partie globuleuse 

coiffant le style) 

Compter le nombre de carpelles en coupant l’ovaire. Dans quel sens faut-il pratiquer cette 

coupe ? 

Compter le nombre de loge et le nombre d’ovules par loge (attention à la présence 

possible de fausses cloisons) 

Noter la présence éventuelle de nectaires ou encore d’expansions ou enveloppes 

supplémentaires tels que éperon, calicule, paracorolle, … 

Etablir la formule florale 

Construire le diagramme floral 

A l’aide des clefs de détermination, procéder à l’identification des végétaux.. 

Plante 1 

Famille : 

Genre : 

Espèce : 

Plante 2 

Famille : 

Genre : 

Espèce : 

Plante 3 

Famille : 

Genre : 

Espèce : 

Lors de la recherche du nom de l’espèce, noter le ou les caractères qui vous semblent 

essentiels (distinguer les caractères de famille, de genre et d’espèce) 

44


4.2. Description d’inflorescence 

Décriver brièvement la position relative des fleurs pour chacune des inflorescences 

distribuées. 

Schématiser. 

5. Questions et réflexions 

1. Annotez les schémas ci-dessous. 

45


2. Décrivez la fleur présentant le diagramme floral et la formule florale suivante. 

2 

% K(5) [C(2,3) A2,2] G (2) 

n 

46


TP5 : Evolution de la vie végétale : Angiospermes, fruits et graines 


Après fécondation, l’ovule évolue en graine et l’ovaire en fruit. En fonction de leur 

origine, on distingue les types de fruits suivants : 

Le fruit simple 

Le fruit multiple 

Le faux-fruit 

Le fruit composé ou infrutescence. 

Les plantes ont développés plusieurs adaptations morphologiques pour pallier à leur 

immobilité et se disséminer. C’est principalement au stade de la graine, via le transport du 

fruit, que la plante peut conquérir de nouveaux espaces. Selon l’agent de dissémination, on 

distingue : 

Zoochorie (epizoochorie, endozoochorie, myrmécochorie, anthropochorie) 

Anémochorie 

Hydrochorie 

Barochorie 

Autochorie 

2. Objectifs 

Décrire le gynécée au moyen des symboles utilisés pour l’établissement de la formule 

florale et la construction du diagramme floral 

Identifier différents fruits mûrs en utilisant une clé de détermination (clé dichotomique) 

Etablir le type de dissémination 

3. Matériel 

Quelques jeunes fruits et fruits mûrs (frais ou conservés dans l’alcool) 

Matériel de dissection et crayons de couleur 

4. Description de la manipulation 

Observer les « restes » du périanthe et de l’androcée. Si ceux-ci ont disparu, observer les 

cicatrices de ces éléments, en déduire la position et la soudure de l’ovaire vis-à-vis du 

réceptacle et retrouver l’architecture de la fleur ou des fleurs qui ont donné naissance à 

cette « fructification ». 

Observer les « restes » du ou des styles et stigmates. 

Effectuer une coupe transversale dans le fruit ; l’examen de la coupe sous binoculaire 

permet de déterminer le type de placentation, le nombre de carpelles et le nombre de 

47


loges. Une coupe longitudinale axiale est réalisée en vue de déterminer le nombre 

d’ovules par loge. 

Décrire le gynécée à l’aide des symboles de la formule florale et construire le 

diagramme correspondant. Lorsque l’ovaire est composé de plusieurs carpelles soudés, 

une série de pointillés parquera l’emplacement du carpelle. 

Identifier et indiquer le type de placentation 

Déterminer le type de déhiscence (si elle existe) et indiquer l’emplacement de la ou des 

fentes de déhiscence sur la représentation par une flèche. 

Identifier le type de fruit à l’aide de la clé de détermination (voir annexe). 

Consignez vos observations dans un tableau similaire à celui présenté ci-après. 

Nom de 

la plante 

Famille 

de la 

plante 

5. Questions et réflexions 

Type de fruit Type de 

dissémination 

Formule 

florale du 

gynécée 

Diagramme 

floral 

1. Quels sont les types de placentation générant un ovaire monoloculaire ? 

2. Déterminez le type de placentation. 

Type de 

placentation 

48


3. Déterminez le type de fruit. 

1 2 3 4 5 

6 7 8 

1. Brassicaceae. 2. Plantaginaceae. 3. Rosaceae. 4. Magnoliaceae. 5. Asteraceae. 6. 

Papaveraceae. 7.Fabaceae. 8. Amygdalaceae 

4. Déterminez l’agent de dissémination des fruits suivants. 

1 2 3 4 5 

1.Oleaceae. 2. Apiaceae. 3. Rosaceae. 4. Ranunculaceae. 5. Betulaceae 

49


Annexe : clé dichotomique des principaux types de fruits 

1. fruits compact formé par l’agglomérat d’un ensemble de fruits issus de la transformation 

d’une inflorescence. 

Exemple : figue (ficus carica L., Moraceae), ananas (Ananas comosus (L.) Merr., 

Bromeliaceae). 

Infrutescence ou fruit composé 

♦ fruit issu de la transformation d’une fleur. 

2 

2. fruit formé de manière prépondérante par le développement du réceptacle ou encore 

d’autres organes. 

Exemple : fraise (Fragaria vesca L., Rosaceae), pomme (Malus sylvestris (L.) Mill., 

Rosaceae) 

Faux-fruit 

♦ Fruit formé de manière prépondérante par le développement de ou des ovaire(s), 

accompagné parfois du développement restreint du ou d’une partie du réceptacle. 

3 (vrai fruit) 

3. fruit issu de la transformation des nombreux ovaires d’une fleur (fleur à gynécée 

dialycarpellaire), chaque ovaire fournissant un fruit élémentaire. 

Exemple : clématite des haies (Clematis vitalba L., Ranunculaceae), hellébore vert 

(Helleborus viridis L., Ranunculaceae), framboisier (Rubus idaeus L., Rosaceae) 

Fruit multiple 

♦ Fruit issu de la transformation de l’unique ovaire d’une fleur (fleur à gynécée 

monocarpellaire ou gamocarpellaire). 

4 (Fruit simple) 

4. péricarpe totalement induré. 

5 (Fruit sec) 

♦ Au moins une partie du péricarpe se tubérise (devient charnue). 

19 (Fruit charnu) 

5. fruit sec s’ouvrant à maturité et libérant les graines. 

6 (Fruit sec déhiscent) 

♦ Fruit sec ne s’ouvrant pas à maturité ou fruit sec se fragmentant en éléments n’ayant pas 

valeur de graines. 

15 (Fruit sec indéhiscent) 

6. fruit issu d’un ovaire constitué d’un seul carpelle. 

7 

♦ Fruit issu d’un ovaire constitué de plusieurs carpelles. 

8 

7. fruit présentant une seule ligne de déhiscence correspondant à la ligne de soudure des 

bords carpellaires (ligne suturale). 

Exemple : populage des marais (Caltha palustris L., Ranunculaceae) 

Follicule 

50


♦ Fruit possédant deux ligne de déhiscence, l’une suturale, l’autre selon la nervure du 

carpelle. 

Exemple : fruit des Fabaceae 

Gousse 

8. fruit à déhiscence longitudinale. 

9 

♦ Fruit présentant un autre type de déhiscence. 

13 

9. fruit issu d’un ovaire comprenant deux carpelles, avec une placentation pariétale et une 

fausse-cloison (replum). 

Exemple : fruit de Brassicaceae 

10 

♦ Fruit issu d’un ovaire ne combinant pas les caractéristiques énoncées ci-dessus. 

11 (Capsule) 

10. fruit au moins trois fois aussi long que large. 

Silique 

♦ Fruit moins de trois aussi long que large. 

Silicule 

11. fruit issu d’un ovaire à placentation pariétale et carpelles s’ouvrant de part et d’autre du 

placenta (déhiscence septifrage ou paraplacentaire). 

Exemple : fruit des Orchidaceae 

Capsule à déhiscence septifrage 

♦ Fruit issu d’un ovaire ne combinant pas les caractéristiques énoncées ci-dessus. 

12 

12. chaque carpelle s’ouvre suivant la ligne de suture. 

Exemple : tabac (Nicotiana tabacum L., Solanaceae), gentianes (Gentiana sp., 

Gentianaceae) 

Capsule à déhiscence septicide 

♦ Chaque carpelle souvre suivant la nervure principale. 

Exemple : violette (viola sp., Violaceae) 

Capsule à déhiscence loculicide 

13. fruit dont la valve unique s’ouvre comme un couvercle. 

Exemple : plantain lancéolé (Plantago lanceolata L., Plantaginaceae) 

Capsule à déhiscence transversale ou pixide 

♦ Fruit à déhiscence non transversale. 

14 

14. fruit dont les valves uniques sont réduites à des dents situées au sommet de la capsule. 

Exemple : compagnon rouge (Silene dioica (L.) Clairv., Caryophyllaceae) 

Capsule à déhiscence denticide 

♦ Fruit d’ouvrant par des pores 

Exemple : coquelicot (Papaver rhoeas L., Papaveraceae) 

Capsule à déhiscence poricide 

51


15. fruit issu d’un ovaire à placentation axile se fragmentant à maturité en éléments 

(méricarpes) n’ayant pas valeur de graine, les méricarpes dont les plus souvent des akènes. 

Exemple : Diakène d’Apiaceae, tétrakène des Liamiaceae 

Schizocarpe 

♦ Fruit ne se fragmentant pas à maturité et ne contenant qu’une seule graine 

16 

16. Fruit dont le péricarpe est intimement soudé à la graine. 

Exemple : fruit de Poaceae 

Caryopse 

♦ Fruit dont le péricarpe n’est pas intimement soudé à la graine. 

17 

17. Fruit possédant une ou plusieurs ailes(s). 

Exemple : orme (Ulmus sp., Ulmaceae), frêne commun (Fraxinus excelsior L., Olaceae) 

Samare 

♦ Fruit non ailé. 

18 

18. Fruit à péricarpe membraneux, plus ou moins indurés. 

Exemple : le pissenlit (Taraxacum sp., Asteraceae) 

Akène 

♦ Fruit à péricarpe fibreux ou ligneux. Ce fruit est souvent accompagné de bractée 

provenant de l’inflorescence. 

Exemple : le chêne (Quercus sp., Fagaceae), le coudrier (Corylus avellana L., Betulaceae) 

Nucule 

19. Fruit à endocarpe scléreux ou cartilagineux, renfermant un ou plusieurs noyaux, chaque 

noyau se compose de l’endocarpe et enferme une graine (amande). 

Exemple : cerisier (Prunus cerasus L., Rosaceae), noix de coco (Cocos nucifera, 

Arecaceae) 

Drupe 

♦ Fruit à endocarpe tubérisé. 

20 (Baie) 

20. Fruit à mésocarpe et endocarpe similaires. Les graines sont appelées pépins 

Exemple : vigne (Vitis vinifera L., Vitaceae), tomate (Solanum lycopersicum L., 

Solanaceae), le groseillier épineux (Ribes uva-crispa L., Grossulariaceae) 

Baie typique 

♦ Fruit dont le péricarpe est formé de trois zones bien distinctes : un exocarpe épais et riche 

en poches à essence, un mésocarpe blanc et spongieux et un endocarpe membraneux 

formant des loges. Ces loges sont remplies de poils charnus comestibles provenant de 

l’endocarpe. Les graines dont appelées pépins. 

Exemple : fruit de la famille des Rutaceae (citron, orange, mandarine, …) 

Hespéride 

52



TP6 : Systématique des Angiospermes, les Liliopsida 

1.1. Notion de taxonomie et de systématique 

La taxonomie est la science qui nomme et décrit les différents taxons qui sont de rang, de 

niveau quelconque dans une classification. Dans le cadre de la botanique, la taxonomie 

tâchera donc de classer les différents organismes végétaux. Si on prend comme exemples 

l’ortie (Urtica dioica L.) et le Lys (Lilium martagon L.), ces espèces appartiennent à plusieurs 

taxons allant de l’espèce à l’embranchement. Chacun de ces taxons est caractérisé par 

plusieurs traits morphologiques, écologique ou physiologique diagnostiques. 

RANGS TAXONOMIQUES DESINENCE Exemples 

Embranchement -phyta Spermatophyta Spermatophyta 

Sous-embranchement -phytina 

Spermatophytina 

(= Angiospermes) 

Spermatophytina 

(= Angiospermes) 

Classe -opsida 

Magnoliopsida 

(= Dicotylédones) 

Liliopsida 

(= Monocotylédones) 

Sous-classe -idae Hamamelidae Liliidae 

Super-ordre -anae 

Ordre -ales Urticales Liliales 

Sous-ordre -inae 

Super-famille -ariae 

Famille -aceae Urticaceae Liliaceae 

Sous-famille -oideae 

Tribu -eae 

Sous-tribu -inae 

Genre Urtica L. Lilium L. 

Espèce Urtica dioica L. Lilium martagon L. 

1.2. Systématique des Angiospermes 

La systématique va plus loin en se concentrant sur la généalogie (la phylogénie) des 

taxons. Elle a donc pour objectif de hiérarchiser les différents taxons et de regrouper dans un 

même taxon les groupes qui possèdent un lien de parenté étroit (cf. cours de complément de 

botanique, 2 de candidature biologie). Ainsi, si on reprend l’exemple des deux espèces 

précédentes, le Lys et l’Ortie appartiennent tout deux au groupe des Angiospermes. Ils sont 

donc plus proches l’un de l’autre que d’un résineux quelconque appartenant au sousembranchement 

des Gymnospermes. 

Dans la systématique traditionnelle, les Angiospermes sont divisés en deux classes : 

les Magnoliopsida et les Liliopsida. 

53


La classe des Liliopsida (Monocotylédones) regroupe environ 55.000 espèces 

réparties en 61 familles et 5 sous-classes : Alismatidae, Commelinidae, Zingiberidae, 

Arecidae et Liliidae (Cronquist, 1988). Il est généralement admis que les Liliopsida dérivent 

de Magnoliospida aquatiques primitives (carpelles libres entre eux, pollen monoaperturé, 

inactivité ou absence de cambium vasculaire, trimèrie, origine de l’assise pilifère, …). 

La sous-classe des Alismatidae (16 familles, 500 espèces) comprend des plantes 

herbacées, souvent aquatiques, présentant un ensemble de caractères qui en font un phylum 

primitif, à savoir des carpelles libres entre eux et un nombre important d’étamines. 

La sous-classe des Commelinidae (16 familles, 15000 espèces) comprend des plantes 

herbacées souvent graminoïdes présentant une adaptation progressive à la pollinisation par le 

vent (absence de nectaire, réduction du périanthe devenant scarieux, tendance vers le 

regroupement des fleurs en inflorescences compactes). Tendance à l’ovaire supère. 

Figure 4. Dessin d’une 

Poaceae 

54


La sous-classe des Zingiberidae (9 familles, 3800 espèces) comprend des plantes 

herbacées parfois arborescentes adaptées à la pollinisation par les insectes (inflorescence 

spectaculaire et vivement colorée, présence de nectaire). Tendance à l’ovaire infère. Familles 

importantes : Bromeliaceae, Musaceae, Zingiberaceae. 

La sous-classe des Arecidae (5 familles et 5600 espèces) comprend des plantes 

herbacées ou arborescentes. Les fleurs sont agrégées en une inflorescence très condensée (= 

spadice) sous tendue par une spathe. Par ailleurs, chaque fleur est unisexuée. Tendance à 

l’ovaire supère. Familles importantes : Arecaceae, Araceae. 

La sous-classe des Liliidae (15 familles et 30000 espèces) comprend des plantes 

herbacées adaptées à la pollinisation par les insectes (périanthe spectaculaire, vivement 

coloré, nectaire). Les feuilles sont souvent étroites et à nervation strictement parallèle. 

Familles importantes : Liliaceae, Iridaceae, Orchidaceae, Agavaceae. 

2. Objectifs 

Rechercher, identifier et schématiser les différentes pièces constitutives de l’épillet 

Etablir la formule florale et construire le diagramme floral d’une Poaceae 

Etablir la formule florale et construire le diagramme floral d’une Juncaceae 

Etablir la formule florale et construire le diagramme floral d’une Liliaceae 

Comparaison morphologique des Dicotylédones et des Monocotylédones 

3. Description de la manipulation 

3.1. Etude d’une Poaceae 

Isoler un épillet 

Dégager les différentes pièces constitutives 

Construire un schéma général de l’épillet 



Déterminer la Poaceae au moyen de la flore de référence 

3.2. Etude des autres familles de Liliopsida 

Observer le matériel distribué et isoler une fleur 

Effectuer une dissection florale 



Déterminez les différentes espèces au moyen de la flore de référence 

55


3.3. Comparaison Magnoliopsida - Liliopsida 

Compléter le tableau ci-dessous en comparant, au choix, une Monocotylédone déterminée 

aux points 3.1. ou 3.2., avec la dicotylédone distribuée. Les caractères ne sont pas 

nécessairement visibles directement à partir du matériel distribué. Tenez des caractères mis en 

évidence notamment au cours du TP3. 

Monocotylédone 

Espèce : 

4. Questions de réflexion 

Caractères 

Nervation des feuilles 

Pétiole des feuilles 

Nombre des pièces formant 

les verticilles des fleurs 

Cotylédons 

Croissance secondaire 

Anneau de cambium 

Dicotylédone 

Espèce : 

a) Citez et donnez les grandes caractéristiques des 3 embranchements des Métaphytes. 

Bryophytes : 

Ptéridophytes : 

Spermatophytes : 

b) Citez 4 espèces de Poaceae cultivées 

56



TP7 : Systématique des Angiospermes, les Magnoliopsida 

La classe des Magnoliopsida regroupe environ 170.000 espèces répartie en 6 sous-classe : 

les Magnoliidae, les Hamamelidae, les Caryophyllidae, les Dilleniidae, les Rosidae et les 

Asteridae. 

La sous-classe des Magnoliidae regroupe des familles caractérisées par des états de 

caractères primitifs. Cette sous-classe est probablement à l’origine des 5 autres sous-classes. 

Les Hamamelidae forment un phyllum montrant une tendance progressive à la 

pollinisation par le vent combinée à la simplification, voire à la disparition du périanthe. Les 

représentant de cette sous-classe sont essentiellement des plantes ligneuses. Familles 

importantes : Hamamelidaceae, Urticaceae, Juglandaceae, Fagaceae, Betulaceae. 

Les Caryophyllidae se distinguent par la présence de bétalaïnes (pigment colorant les 

fleurs et les fruits). La placentation est généralement centrale ou basale. Familles 

importantes : Polygonaceae, Caryophyllaceae, Chenopodiaceae, Cactaceae, Plumbaginaceae. 

Les Dilleniidae et les Rosidae forment deux phylums difficiles à distinguer. Le premier 

taxon à d’ailleurs été complètement revus par la nouvelle systématique biomoléculaire. Ils se 

caractérisent par des évolutions semblables mais à des fréquences différentes. Familles 

importantes des Dilleniiidae : Salicaceae, Papaveraceae, Hypericaceae, Brassicaceae, 

Violaceae, Malvaceae, Ericaceae, Primulaceae, Cucurbitaceae. Familles importantes des 

Rosidae : Rosaceae, Amygdalaceae, Crassulaceae, Malaceae, Apiaceae, Geraniaceae, 

Euphorbiaceae, Myrtaceae, Fabaceae. 

Dilleniidae Caractères distinctifs Rosidae 

Rares Feuilles composées de 

folioles articulées 

Fréquentes 

Peu fréquents Disques nectarifères fréquents 

Parfois nulle, dialypétales 

chez la majorité des espèces, 

gamopétales chez quelques 

familles 

Corolle Presque toujours dialypétales 

Rare Réceptacle concave Fréquent 

Ordinairement à maturation 

Etamines Ordinairement à maturation 

centrifuge 

centripète 

Répandue Placentation pariétale Peu répandue 

Rare Nombre d’ovules par loge 

réduit 

Fréquent 

La sixième sous-classe, les Asteridae, est sans conteste la plus évoluée. Ce phylum dérive 

des Rosidae et se distingue aisément des autres sous-classe par des fleurs gamopétales, un 

androcée à un seul cycle d’étamines (jamais en opposition vis-à-vis des pétales), une 

réduction importante du nombre des pièces du gynécée et des substances répulsives 

sophistiquées (alcaloïdes mixtes, résines, polyacétyléniques, …). Familles importantes : 

Oleaceae, Solanaceae, Lamiaceae, Scrophulariaceae, Plantaginaceae, Caprifoliaceae, 

Rubiaceae, Asteraceae, Campanulaceae. 

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2. Objectifs 

Etablir la formule florale et le diagramme floral de plusieurs familles de Magnoliopsida 

3. Matériel 

Le matériel distribué sera fonction de l’état d’avancement de la végétation 

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BVA Travaux pratiques -

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