PEMANFAATAN CENDAWAN UNTUK MENINGKATKAN ...

PEMANFAATAN CENDAWAN UNTUK MENINGKATKAN
PRODUKTIVITAS DAN KESEHATAN TERNAK
Riza Zainuddin Ahmad
Balai Besar Penelitian Peteriner, Jalan R.E. Martadinata No. 30, Bogor 16114
ABSTRAK
Cendawan merupakan mikroorganisme eukariotik, memproduksi spora, tidak berklorofil, mcmperolch nutrisi
dengan cara absorbsi, bereproduksi secara seksual dan aseksual, mempunyai struktur somatik dalam bentuk hifa, dan
berdinding sel yang terdiri alas kitin dan selulosa. Cendawan-cendawan tertentu dapat dimanfaatkan untuk ternak,
seperti kapang Beauveria bassiana, Duddingtoniaflagrans, dan Metarhizium anisopliae yang dapat digunakan
untuk meningkatkan keschatan ternak dan pengendali hayati. Khamir Saccharomyces cerevisiae dapat berperan
sebagai probiotik dan imunostimulan untuk meningkatkan produktivitas dan keschatan ternak. Mikroba isolat
lokal Indonesia ini merupakan hasil penelitian dalam kurun waktu 20 tahun, dimulai pada tahun 1980-an sampai
dengan 2000-an. Sebelum terpilih sebagai cendawan yang bermanfaat bagi ternak, cendawan melalui tahapan
scleksi yang panjang. Dari isolat-isolat yang berhasil diisolasi dan diidentifikasi, hanya sedikit yang terpilih sebagai
pengendali hayati, probiotik atau imunostimulan.
Kata kunci: Cendawan, pengendali hayati, probiotik, imunostimulan, ternak
ABSTRACT
The use of fungi for increasing productivity and healthy of livestock
Fungi are eukaryotic microorganisms, produce spores, have no chlorophyll, obtain nutrition by absorbing, reproduce
sexually and asexually, have somatic structure in hifa shape, and have cell wall made of chitin and cellulose. Certain
fungi can be used for livestock. These mould and yeast are Beauveria bassiana, Duddingtonia flagrans, and
Metarhizium anisopliae that can be used for increasing healthy as biological control. Saccharomyces cerevisiae
yeasts are used for increasing productivity and healthy as probiotic and immunostimulant. These original isolates
from Indonesia were the results for the last 20 years beginning in 1980s to 2000s. Before being chosen as fungi used
for the livestock, the fungi went through some stages of a long selection. However, from the isolates successfully
isolated and identified only a few were chosen as biological control, probiotic or immunostimulant.
Keywords: Fungi, biological control, probiotic, immunostimulant, livestock
Cendawan dapat digolongkan menjadi
jamur, kapang, dan khamir (Alexopou-
Ins et al. 1996; Dube 1996). Cendawan
dapat dimanfaatkan dalam budi daya
ternak antara lain sebagai pengendali
hayati, probiotik, dan imunostimulan.
Pemanfaatan beberapa cendawan
golongan kapang dan khamir seperti
Duddingtonia flagrans, Beauveria
bassiana, Metarhizium anisopliae, dan
Saccharomyces cerevisiae sebagai agen
hayati pengendalian penyakit dapat
meningkatkan produktivitas ternak.
Selama pemeliharaan, temak dapat
terserang berbagai penyakit sehingga
tidak mampu mencapai produktivitas yang
optimal, bahkan dapat menyebabkan
kematian. Penyakit yang menyerang
ternak dapat disebabkan oleh virus,
bakteri atau parasit (cacing, cendawan,
protozoa, serangga, dan akarid).
Gejala klinis yang muncul pada temak
yang terserang cacing adalah kurus,
konversi pakan buruk, mencret, anemia,
edema, dan bila infestasi cacing terlalu banyak
dapat menyebabkan kematian. Pada
domba, bila infestasi cacing Haemonchus
contortus mencapai 5.000 larva maka
ternak dapat menderita haemonchosis.
Pada kasus akut, infestasi cacing mencapai
2.000-20.000 larva, dan pada kasus
hiperakut, infestasi cacing sekitar 30.000
larva (Soulsby 1986; Urqurhart et al. 1987).
Pada ternak yang terserang caplak, gejala
klinis yang muncul adalah temak menjadi
kurus, caplak pada kulit dapat terlihat
dengan karat mata, gelisah, kulit dan
bulu rusak, kulit menebal, kegatalan,
serta dapat pula
menimbulkan kematian. Infestasi tungau
dan caplak sering diikuti oleh infestasi
virus, bakteri, dan mikroorganisme lain
sehingga akan meningkatkan morbiditas
dan mortalitas ternak.
Pengamatan di beberapa daerah di
Jawa Barat menunjukkan, umumnya seekor
ternak dapat terinfeksi 3-4 spesies yang
didominasi oleh cacing H. contortus dan
Trichostrongylus spp. dengan rata-rata
prevalensi 67% (Kusumamihardja dan
Zalizar 1992; Ridwan et al. 1996). Kerugian
akibat infeksi nematoda, termasuk H.
contortus pada kambing, diperkirakan
mencapai Rp7 miliar/tabun (Rachmat et al.
1998). Kerugian akan bertambah besar bila
masalah haemonchosis tidak ditanggulangi
dengan sungguh-sungguh. Hal ini
berkaitan dengan kendala yang harus

diatasi, seperti sistem betemak dengan
cara cligembalakan serta pemberian antelmintik
secara terus-menerus dengan dosis
rendah clan cara pemberian yang kurang
tepat.
Kerugian akibat gangguan caplak di
Indonesia, meski belum dilaporkan secara
pasti, diperkirakan cukup besar, karena
pada petemakan sapi di Amerika Serikat
kerugian diperkirakan mencapai USS60
juta/tahun (Steelman 1976). Di Indonesia,
gangguan caplak menjadi masalah di
beberapa daerah di Sumatera, Jawa,
Sulawesi Utara, Sulawesi Selatan, clan
Sumbawa (Sigit et al. 1983). Demikian pula
dengan tungau penyebab skabies merupakan
masalah penting di Amerika Utara,
Asia, Afrika Selatan, dan Eropa. Di Inggris
tercatat lebih dari 3.500 kasus pada abad
ke-19 (Kirkwood 1986). Di Indonesia,
tungau dilaporkan menyerang ternak
kambing dan menimbulkan kematian
dengan prevalensi 4-11 % (Balai Penelitian
Veteriner 1992; Budiantoro 2004).
Penanggulangan penyakit cacingan
serta serangan tungau clan serangga lain
pada ternak umumnya dilakukan dengan
menggunakan antelmintik, pestisida atau
akarisida secara berkala. Namun, pemakaian
obat-obatan dari bahan kimiawi secara
terus-menerus akan menimbulkan resistensi
dan residu pada ternak dan lingkungan
(Waller 1997; Larsen 2000). Selain
dengan bahan kimiawi, penanggulangan
penyakit cacingan serta serangan tungau,
caplak, dan serangga dapat memanfaatkan
cendawan sebagai agens pengendali
hayati, terutama cendawan dari golongan
kapang. Kapang pengendali parasit cacing
nematoda disebut kapang nematofagus,
dan kapang pengendali parasit serangga,
tungau, caplak, dan kutu disebut kapang
entomofagus. Perbaikan dan peningkatan
produktivitas ternak dapat memanfaatkan
khamir sebagai probiotik clan imunostimulan.
Hasil eksplorasi plasma nutfah
cendawan Indonesia cukup banyak clan
perlu diteliti untuk mengetahui mikroba,
khususnya cendawan isolat lokal, yang
dapat climanfaatkan untuk meningkatkan
produktivitas ternak. Umumnya cendawan
melalui beberapa tahapan seleksi setelah
diisolasi clan diidentifikasi, seperti uji in
vitro clan in vivo, serta aplikasi pada skala
laboratorium dan skala besar. Dari berbagai
tahap pengujian tersebut, hanya
sedikit cendawan yang terpilih sebagai
pengendali hayati, probiotik atau imunostimulan.
Hasil penelitian menunjukkan,
dari Sembilan isolat yang diuji, hanya satu
yang dapat digunakan sebagai probiotik,
dan dari sejumlah isolat D. flagrans yang
ditemukan hanya sedikit yang dapat digunakan
sebagai nematofagus (Agarwal et
al. 2000; Ahmad 2005a). Tulisan ini
mengulas beberapa cendawan isolat lokal
yang bermanfaat bagi ternak, baik sebagai
pengendali hayati, probiotik maupun
imunostimulan.
CENDAWAN SEBAGAI
PENGENDALI HAYATI
cendawan yang termasuk golongan ini,
berclasarkan target utamanya, dapat dibagi
menjadi dua, yaitu sebagai pengendali
cacing nematoda (nematofagus) clan
sebagai pengendali serangga, tungau,
caplak, clan kutu (entomofagus). Meskipun
beberapa khamir dapat mematikan
nematoda dan serangga, efektivitasnya
rendah sehingga tidak digunakan lagi. Dari
hasil penelitian, kapang nematofagus yang
terpilih yaitu D. flagrans (Mendoza-De
gives et al. 1999; Ahmad 2008), dan
sebagai entomofagus adalah B. bassiana
dan M anisopliae (Holder clan Keyhani
2005; Maranga et al. 2005).
Kapang Nematofagus
D. flagrans
Kapang D. flagrans mempunyai ciri khas,
yang juga merupakan keunggulannya
dibandingkan dengan cendawan nematofagus
lain, yaitu mampu membentuk
klamidospora oleh hifanya sendiri. Kapang
davat tumbuh pada suhu 20-30°C.
Penambahan 20 larva nematoda/cM 2 media
agar akan menginduksi cendawan untuk
membentuk perangkap, optimal pada suhu
30°C yang akan menghasilkan 700-800/
cm 2 media agar/hari. Kapang menghasilkan
dua macam spora, yaitu yang memiliki
dinding tipis, akan menghasilkan konidia
dengan jumlah terbatas pada saat cendawan
berumur muda, dan yang memiliki
dinding tebal, berupa klamidospora yang
dihasilkan dari hifa yang matang. Selama
proses penuaan, jumlah klamidospora
meningkat sampai batas tertentu
(Gronvoldet al. 1996).
Isolat lokal D. flagrans dari tanah asal
Bogor dapat tumbuh pada berbagai media,
yaitu Corn Meal Agar (CMA), Potato
Dextrose Agar (PDA), dan Saboroud
Dextrose Agar (SDA). Tumbuh baik pada
suhu 22-30°C, dapat membuat jerat untuk
larva infektif, mampu menurunkan larva
instar 3 H. contortus, memerlukan cahaya,
dan tahan disimpan selama 4 bulan pada
kulkas (suhu 4-10°C) (Ahmad 2003)
(Gambar 1). Kapang ini dapat digunakan
dalam pengendalian parasit nematoda
Osepohagostomum dentatus dan Hyostrongylus
rabidus pada babi, Cvsthostome,
Strongylus vulgaris dan Strongylus edentatum
pada kuda, serta H. contortus dan
Trichostrongylus colubriformis pada
domba dan sapi (Larsen et al. 1995; 1996;
Nansen et al. 1996; Faedo et al. 1998;
Larsen et al. 1998; Larsen 2000). Hasil
penelitian tersebut menunjukkan bahwa
kapang dapat mengendalikan larva nematoda
infektif secara optimal. Pemanfaatan
D. flagrans dapat dikombinasikan dengan
cendawan nematofagus lain seperti A.
oligospora (Larsen 2000).
Di Indonesia, pemanfaatan cendawan
nematofagus mempunyai prospek
Gambar 1. Duddingtonia flagrans pada media potato dextrose agar (A); pengamatan
mikroskopik perbesaran 400 x dan pewarnaan laktofenol biru (B);
konidia (BI); dan klamidospora (B2).

yang cerah karena didukung ketersediaan
plasma nutfah dan kondisi temak ruminansia
kecil. Penggunaan D. flagrans
dengan closis 500.000 konidia mampu
menurunkan larva H. contortus secara
signifikan. Bila clikombinasikan dengan S.
cerevisiae secara signifikan mampu menurunkan
jumlah larva H. contortus (Ahmad
2003;2008).
Mekanisme D. flagrans dalam, memangsa
nematoda adalah dengan cara
membuat perangkap bagi larva infektif
Pada saat larva instar 3 bergerak mengenai
hifa, kapang akan mengeluarkan zat kemoatraktan
yang menganclung sekresi. Larva
yang mendekat kemudian akan melekat
pada hifa clan dijerat oleh hifa vegetatif.
Selanjutnya, kapang mensekresikan clan
memproduksi enzim hidrolisis (kitinase dan
protease) yang akan menguraikan kutikula
untuk memudahkan hifa melakukan
penetrasi (Gronvold et al. 1993; Ahman
2000; Meyer dan Wiebe 2003). Hifa
vegetatif yang masuk ke dalam tubuh
larva akan tumbuh dan berkembang hingga
akhimya larva mati. Dalam proses membunuh
larva, kapang dibantu oleh nematotoksin
yang diduga sebagai lektin (Rosen
1996).
D. flagrans merupakan kapang
nematofagus pilihan untuk mengendalikan
larva instar 3 cacing nematoda pada temak.
Hal tersebut diclasarkan pada penelitian
yang telah dilakukan sebelumnya (Gronvold
et al. 1993; Larsen 2000; Patra 2007).
Kapang D. flagrans lebih efektif dan
efisien mengendalikan larva nematoda
di-banding Arthrobotrys spp., meski
Arthrobotrys oligospora dapat
memproduksi lebih banyak konidia
dengan perlakuan yang sama. Hal ini
karena D. flagrans mampu membentuk
klamidospora (Mendoza-De Gives et al.
1999).
KapangEntomofagus
Beauveria bassiana
Koloni B. bassiana pada medium PDA
yang diinkubasi pada suhu 25°C clan
berumur 14 hari, membentuk lapisan
seperti tepung (Gambar 2). Koloni pada
bagian tepi mula-mula berwarna putih
kemudian menjadi kuning pucat atau
kemerahan.
B. bassiana mempunyai perangkat
penghasil spora (konidia) berukuran kecil
dan lembut. Konidia yang berupa spora
aseksual menghasilkan rangkaian akripetal
pada sel-sel konidiogenus yang panjang
(sel penghasil konidia). Bentuk konidia
bervariasi, yaitu globos, elips, silindris,
clan koma. Konidia berbentuk elips berukuran
2,90-4,20 µm x 1,80-2,50 µm,
bentuk silindris 3,30-4,80 µm x 2,10-2,50
µm, clan bentuk koma 1,90-2,50 gm, hidup
kosmopolitan, haploid. Konidia dengan
jumlah yang banyak dihasilkan oleh hifa.
Hifa berukuran lebar 1-2 µm dan
berkelompok dalam sekelompok sel-sel
konidiogen berukuran 3-6 pm x 3µm.
Selanjutnya, hifa bercabang-cabang clan
menghasilkan sel-sel konidiogen kembali
dengan bentuk seperti botol, leher kecil,
dan panjang ranting dapat mencapai lebih
dari 20 µm dan lebar 1µm. Cendawan ini
tidak membentuk klamidospora, namun
dapat membentuk blastospora.
Konidia dihasilkan dalam bentuk
simpodial dari sel-sel induk yang terhenti
pada ujungnya. Pertumbuhan konidia
diinisiasi oleh sekumpulan konidia. Setelah
itu, spora tumbuh dengan ukuran yang
lebih tinggi karena akan berfungsi sebagai
titik tumbuh. Pertumbuhan selanjutnya
dimulai di bawah konidia berikutnya,
setiap saat konidia dihasilkan pada ujung
hifa dan dipakai terus, selanjutnya ujungnya
akan terus tumbuh. Dengan cara
seperti ini, rangkaian konidia dihasilkan
oleh konidia-konidia muda (rangkaian
akropetal), dengan kepala konidia menjadi
lebih panjang. Ketika seluruh konidia
dihasilkan, ujung konidia penghubung
dari sel-sel konidiogenus mempunyai
pertumbuhan zig-zag dan mengikuti
pertumbuhan asal seperti kepala (Brady
1979; Barron 2005).
B. bassiana merupakan parasit
agresif clan memiliki berbagai spesies
inang serangga, meski ticlak menyerang
semua jenis serangga. Namun karena
menginfeksi serangga pada berbagai umur
dan stadium (telur, larva, dewasa), serangan
dapat menimbulkan epizotik alam.
Konidia dan miselia dalam jumlah banyak,
bermassa padat dapat menyebar pada
seluruh tubuh serangga yang terinfeksi
(Feron 1981; Nankingan et al. 1994; Barron
2005). Caplak dan tungau dapat pula
diserang (Brooks clan Wall 2002; Holder
clan Keyhani 2005). Umumnya kadaver
serangga secara optimum dapat menghasilkan
konidia dan bersporulasi pada
kelembapan lebih dari 95% (basah) dengan
suhu 26-30°C (hangat). Bila kelembapan
rendah maka proses sporulasi akan
menurun (Fernandez 1994).
Umumnya kapang patogen menginfeksi
serangga melalui integumen. Hifa
masuk ke dalam jaringan kemudian terus
masuk ke hemosel (Barson 1977). B.
bassiana dapat menginfeksi serangga
melalui integumen, saluran pencernaan,
trakhea, clan luka. Kapang ini dapat ditularkan
dari satu inang ke inang lain
melalui konidia. Setelah masuk ke hemosel,
cendawan terus tumbuh hingga seluruh
bagian tubuh serangga tertutupi oleh
miselim cendawan clan akhimya serangga
mati. Pada kondisi yang sesuai, cendawan
dapat tumbuh dan menembus kutikula di
antara ru g s tubuh serangga kemudian
membentuk konidia yang barn (Broome et
al. 1976; Maddox 1982).
serangga yang terinfeksi ditandai
dengan gejala lemah, kurang aktif, dan
pada kutikula ditemui bercak hitam yang
menunjukkan tempat penetrasi cendawan,
selanjutnya miselia tumbuh pada seluruh
tubuh serangga dan berwarna putih.
sporulasi pada larva mati terjadi Setelah
10 hari inkubasi (Barson 1977). Mekanisme
infeksi didukung oleh enzim seperti
Gambar 2. Kapang Beauveria bassiana pada media potato dextrose agar (A);
pengamatan mikroskopik perbesaran 400 x dan pewarnaan laktofenol
biru (B); konidia (BI); dan hifa (B2).
86 Jurnal Litbang Pertanian, 27(3), 2008

protease, lipolitik, amilase, clan kitinase.
Enzim-enzim tersebut mampu menghidrolisis
kompleks protein di dalam integumen
(Brady 1979). Hal yang sama dapat terjadi
pada tungau clan caplak.
Kapang Entomofagus
Metarhizium anisopliae
Kapang ini banyak ditemukan di dalam
tanah, bersifat saprofit, dan umumnya
dijumpai pada berbagai stadia serangga
yang terinfeksi, tumbuh pada suhu 65-
85°F dan kelembapan 30-90%. Kapang ini
mempunyai koloni berwarna hijau zaitun,
konidiofor dapat mencapai panjang 75 µm,
bertumpuk-tumpuk diselubungi oleh
konidia yang berbentuk apikal berukuran
6-9,50 jim x 1,50-3,90 rim, bercabangcabang,
berkelompok membentuk massa
yang padat dan longgar (Gambar 3).
Kapang ini dapat membunuh serangga,
tungau, dan caplak seperti halnya B.
bassiana (Barnet 1969; Wikardi 2000;
Cloyd 2003; Geuther et al. 2004; Holder
dan Keyhani 2005; Maranga et al. 2005).
Dalam menginfeksi serangga dan
akarida, konidia berkecambah pada
kutikula inang dan melakukan penetrasi
dengan enzim hidrolisis (peptidase dan
kitinase), lalu dengan bantuan tekanan
mekanis enzim tersebut menghancurkan
kulit dengan cara lisis. Setelah kapang
masuk, koniclianya dengan cepat memperbanyak
diri sehingga blastospora segera
menyelaputi tubuh inang. Ketnatian inang
disebabkan oleh kolonisasi miselia yang
ekstensif sehingga menyebabkan starvasi,
atau melalui racun yang dilepaskan pada
saat penyerangan. Desikasi kadaver digunakan
sebagai nutrisi dan air oleh hifa. Hifa
memecah kutikula setelah serangga coati.
Konidia bebas berkembang secara pasif
atau aktif untak meneruskan siklus infeksi
(Wikardi 2000; Onofre et al. 2001). Mekanisme
serupajuga ditemui pada caplak dan
tungau yang terserang kapang ini.
CENDAWAN SEBAGAI
PROBIOTIK DAN
IMUNOSTIMULAN
Salah satu cendawan yang berpotensi
sebagai probiotik dan imunostimulan
adalah S. cerevisiae. cendawan ini termasuk
dalam kelompok khamir. Pada saat
berkembang biak, khamir akan membelah
diri dan menghasilkan tunas yang berkecambah
multipolar. Spora berdiameter 5-
10 µ. S. cerevisiae merupakan khamir bersel
tunggal, yang berkembang biak dengan
cepat secara seksual dan aseksual. Perkembangbiakan
melalui tunas kecambah
multipolar dan tunas dapat terjadi pada
seluruh permukaan Binding sel (Gambar
4).
Reproduksi seksual membentuk
askospora di dalam askus. Dalam satu
askus umumnya terdapat empat askospora
dalam berbagai bentuk. Khamir ini
mempunyai cin morfologi mikroskopis,
membentuk blastospora (spora) bulat
lonjong, silindris, oval atau bulat telur
pendek dan panjangnya dipengaruhi oleh
strain (Elliot 1994; Dube 1996).
Menurut besarnya sel, khamir dikelompokkan
menjadi tiga, yaitu yang
selnya berukuran 3,50-10µx 5-19 [t,yang
selnya benikuran 3-8µx 4-18 Vt, dan yang
berukuran 2,50-7µx 4,50-18 p. Selain itu,
terdapat sel berfilamen pada spora yang
berukuran lebih dari 30 µ dan berpseudomiselium.
Morfologi makroskopik menunjukkan
koloni berbentuk bulat,
berwarna putih, krem, abu-abu hingga
kecoklatan, permukaan koloni berkilau
sampai kusam, licin, dengan tekstur lunak
(Lodder 1970; Barnet et al. 2000).
Peran S. cerevisiae sebagai
Probiotik
Probiotik adalah makanan pelengkap
berupa mikroba hidup yang memberikan
keuntungan pada saluran pencernaan
inang. Probiotik adalah bahan makanan
yang tidak tercerna clan memberikan
keuntungan pada inang melalui stimulasi
selektif terhadap aktivitas satu atau
sejumlah bakteri yang terdapat di dalam
kolon (Roberfoid 2000). Lebih lanjut Fuller
(1992) clan Karpinska et al. (2001)
menjelaskan bahwa probiotik adalah
imbuhan pakan berbentuk mikroba hidup
Gambar 3. Kapang Metarhizium anisopliae pada media potato dextrose agar (A);
pengamatan mikroskopik perbesaran 400 x dan pewarnaan laktofenol
biri (B); konidia (BI); dan hifa (B2).
Gambar 4. Kapang Saccharomyces cerevisiae pada media CAM (A); pengamatan
mikroskopik perbesaran 400 x dan pewarnaan laktofenol biru (B); dan
spora (BI).

yang menguntungkan dan mempengaruhi
induk semang melalui perbaikan keseimbangan
mikroorganisme dalam saluran
pencernaan. Di bidang peternakan,
probiotik bermanfaat bagi kesehatan,
produksi, dan pencegahan penyakit pada
ternak. Salah satu probiotik adalah khamir
S. cerevisiae.
Pemberian S. cerevisiae sebagai
imbuhan mikroba hidup ke dalam tubuh
akan mempengaruhi induk semang
(unggas, ruminansia) melalui perbaikan
keseimbangan mikroorganisme dalam
saluran pencernaan. Pada ternak ruminansia,
pemberian probiotik akan meningkatkan
bakteri selulolitik dan asam laktat
pada saluran pencernaan. Pada unggas,
probiotik akan menambah jumlah mikroba
yang menguntungkan dan menekan
mikroba yang merugikan dengan cara
berkompetisi untuk hidup di dalam saluran
pencernaan.
Peran S. cerevisiae sebagai
Imunostimulan
Secara sederhana imunostimulan adalah
suatu bahan (material) yang bila diberikan
pada hewan dan manusia dapat meningkatkan
sistem pertahanan tubuh untuk
menghadapi serangan penyakit. Imunostimulan
meningkatkan "limfosit T" sebagai
imunitas seluler yang penting untuk
memproteksi tubuh dari bakteri dan virus
intraseluler. "Limfosit B" juga meningkat
untuk menambah imunitas humoral dan
serum antibodi. Serum ini berfungsi untuk
menetralkan endotoksin, sehingga pada
akhirnya imunostimulan digunakan pada
ternak untuk meningkatkan kemampuan
melawan bakteri dan menurunkan waktu
yang diperlukan untuk memperbanyak
antibodi (Beta Glucan Research 2004).
Imunostimulan dapat digolongkan
menjadi dua, yaitu yang bekerja secara
spesifik dan nonspesifik. Beberapa materi
atau substansi yang terlibat dalam proses
yang spesifik adalah imunisasi aktif dan
pasif, baik oleh virus, bakteri maupun
cendawan, sedangkan yang nonspesifik
berupa stimulasi limfosit dan makrofag
(Tizard 1987).
Sistem pertahanan tubuh dapat dibagi
menjadi dua, yaitu kekebalan humoral
dan seluler. Humoral terdapat pada darah,
yang dikenal dengan antibodi, juga ditemukan
sebagai molekul protein serum.
Respons seluler berupa mekanisme
fagositosis (membunuh kuman penyakit
dengan cara memakannya) dengan cara
meningkatkan sensitivitas Reticulo Endothelial
System (RES), yaitu sistem endotelial
berupa organ tubuh seperti ginjal,
hati, limpa, dan timus.
Limfosit dapat digolongkan menjadi
set B dan set T. Set T ditemukan dalam
peredaran darah hewan tingkat tinggi dan
memegang peranan penting dalam imunitas
seluler. Set B pada mamalia dihasilkan
oleh sumsum tulang dan pada unggas oleh
bursa fabricius dan set T oleh timus. Selanjutnya
set B menghasilkan antibodi, yang
merupakan salah satu elemen humoral
untuk beradaptasi secara imunitas,
sedangkan set T membantu set B dengan
mengaktivasi makrofag untuk mempertahankan
tubuh terhadap infeksi mikroba.
Set makrofag merupakan salah satu
set yang termasuk dalam kekebalan alami
dengan cara menghasilkan substansi
kimia. Selanjutnya substansi ini menjadi
pertahanan set imun yang penting.
Set-set tersebut akan membentuk
kekebalan tubuh dengan cara menyerang
Bel-Bel asing. Makrofag mempunyai
reseptor pada set membran untuk tujuh
macam residu gula. Saat reseptor
berikatan dengan residu, makrofag
diaktifkan dan kemudian menghasilkan
sitokin. Sitokin inilah yang berfungsi
sebagai pengatur respons imun tubuh
(Tizard 1987). Sistem tersebut secara
bersama-sama membentuk sistem
pertahanan dalam tubuh melawan infeksi
penyakit. Dengan demikian, imunostimulan
sangat bermanfaat dalam meningkatkan
sistem kesehatan tubuh. Salah satu
imunostimulan adalah beta-D glukan.
Beta-D glukan merupakan salah satu
komponen dinding khamir yang esensial
sebagai imunostimulan. Komponen tersebut
mempunyai campuran yang unik
yang efektivitas dan intensitasnya dalam
sistem pertahanan tubuh melalui aktivasi
set darah putih yang spesifik seperti
makrofag dan set Natural Killer (NK).
Beta-D glukan akan berikatan dengan
permukaan set makrofag dan set NK, dan
berfungsi sebagai pemicu proses aktivasi
makrofag. Proses ini akan meningkatkan
sirkulasi makrofag dalam tubuh untuk
mencari benda-benda asing yang masuk
ke dalam tubuh, selain menambah jumlah
Bel-Bel makrofag (Life Source Basics 2002).
Beta-D glukan meningkatkan fungsi
imun, termasuk fagositosis (kemampuan
menangkap benda asing, partikel yang dilepaskan
sitokin; hormon interseluler IL-1,
IL-6, GM-CSF, interferon) dan pernbuatan
antigen. Beta-D glukan juga menstimulasi
RES dalam proses peningkatan jumlah
makrofag, dan mengaktivasi sel-sel darah
putih selain makrofag. Sel-sel tersebut
ialah granulosit dan monosit. Beta-D
glukan dapat berperan sebagai imunomodulator
(pengatur sistem kekebalan
tubuh) untuk meningkatkan kemampuan
set T, set B, dan makrofag dalam melawan
infeksi penyakit, juga membantu memperbaiki
jaringan yang rusak melalui
proses regenerasi dan penyembuhan (Beta
Glucan Research 2004 ).
PEMANFAATAN
CENDAWAN UNTUK
KESEHATAN TERNAK
Penelitian pengendalian biologic dengan
cendawan nematofagus dan entomofagus,
Berta peningkatan kesehatan dengan
probiotik dan imunostimulan sudah lama
dirintis (Larsen 2000; Brooks dan Wall
2002; Fox 2002; Ahmad 2005a; 2005b).
Penelitian dimulai dari isolasi, identifikasi,
dilanjutkan dengan pengujian secara in
vitro dan in vivo dan diakhiri dengan
aplikasi atau komersialisasi (Tabel 1).
Di Indonesia, penelitian cendawan
nematofagus barn dimulai pada tahun
1990-an dan memasuki tahap aplikasi pada.
tahun 2000-an, sedangkan di dunia sudah
dimulai pada awal abad ke-19 (Larsen
2000). Penelitian dimulai dengan mengisolasi
dan mengidentifikasi isolat (Ahmad
1999). Setelah isolat diperoleh, dilakukan
pengujian ketahanan hidup pada suasana
asam, basa, enzim, dan suhu tertentu secara
in vitro (Beriajaya dan Ahmad 1999).
Selanjutnya dilakukan pengujian kemampuan
isolat dalam mereduksi H. contortus
secara in vitro. Isolat yang lolos lalu diuji
secara in vivo pada ternak (Ahmad 2001;
Beriajaya et al. 2001). Proses pengujian
terakhir dilakukan dengan aplikasi secara
peroral atau langsung di lapangan. Hasil
penelitian menunjukkan bahwa pemberian
peroral memberikan hasil yang lebih baik.
Bila dikombinasikan dengan S. cerevisiae
dapat mereduksi larva H. contortus secara
signifikan (Beriajaya et al. 2001; Ahmad
2008).
Penelitian pengendalian hayati
dengan cendawan entomofagus berjalan
lebih lambat dibandingkan dengan penelitian
cendawan nematofagus pada
bidang peternakan. Umumnya kapang
entomofagus digunakan untuk keperluan
pertaman, untuk mengatasi hama serangga
dan sejenisnya, hanya sedikit yang

Tabel 1. cendawan dan kegunaannya untuk kesehatan ternak.
Spesies cendawan Kegunaan Jenis ternak Pustaka
Saccharomyces Probiotik, Ayam, domba, kelinci Rukyani et al. (1987);
cerevisiae imunostimulan sapi, ikan, dan udang Shins et al. (1989);
Tedesco et al. (1994);
Sitthipun et al. (2000);
Wina 2000; Fox (2002);
Ratnaningsih (2000);
Ahmad (2005b).
Duddingtonia Nematofagus Babi, kambing, domba, Larsen (2000);
flagrans kambing, kuda, dan sapi Ahmad (2005a); (2008)
Metarhizium Entomofagus Kambing dan sapi Frazzon et al. (2000);
anisopliae Smith et al. (2000);
Onofre et al. (2001);
Brooks dan Wall (2002);
Cloyd (2003).
Beauveria Entomofagus Kambing dan sapi Holder dan Keyhani
bassiana (2005);
Campos et al. (2005).
diteliti untuk hewan dan itu pun terbatas
pada caplak dan tungau (Brooks dan Wall
2002; Holder dan Keyhani 2005). Penelitian
lanjutan yang berkembang adalah mengambil
bagian gen yang menghasilkan
toksin untuk caplak, tungau, dan serangga
lain. Gen tersebut lalu dimanipulasi dan
diperbanyak melalui rekayasa genetik
sehingga dihasilkan produk antiserangga
tanpa bentuk utuh dari kapangnya sendiri.
Penelitian S. cerevisiae sebagai
probiotik dan imunostimulan berkembang
lebih cepat dibanding untuk pengendali
hayati. Shins et al. (1989) menyimpulkan
bahwa S. cerevisiae termasuk salah satu
mikroba yang banyak dipakai pada ternak
sebagai probiotik, bersama-sama dengan
bakteri dan cendawan lain seperti Aspergillus
niger, A. oryzae, Bacillus punilus,
B. centuss, Lactobacillus acidophilus,
Saccharomyces crimers, Streptococcus
lactic, dan S. termophilus.
Tedesco et al. (1994) menunjukkan
adanya korelasi antara pemberian S.
cerevisiae dan populasi bakteri pada
kelinci, yaitu jumlah bakteri patogen
menurun dan jumlah bakteri aerob dan
anaerob yang menguntungkan dalam usus
meningkat. Kumprecht et al. (1994)
melaporkan pemberian campuran S.
cerevisiae dan Streptococcus faecum pada
ayam broiler menurunkan jumlah bakteri
Escheria coli dalam sekum hingga 50%.
Selanjutnya Kompiang (2002) meneliti
penggunaan "khamir (ragi) laut" dengan
S. cerevisiae dalam pakan ayam dan
mendapatkan hasil yang positif, yaitu
bobot badan meningkat setelah pemberian
S. cerevisiae. Selanjutnya Kumprechtova
et al. (2000) memberikan S.
cerevisiae 47 dengan dosis 200 g/100 kg
pakan untuk meningkatkan penampilan
daging dan mengurangi bau amonia
nitrogen pada feces ayam. Pemberian S.
cerevisiae juga meningkatkan penampilan
bobot ayam dan secara in vitro mampu
menekan pertumbuhan S. typhimurium
meski secara in vivo tidak memberikan
hasil yang signifikan (Istiana et al. 2002).
Meski tidak semuanya memberikan
respons positif terhadap pemberian pakan
imbuhan, pada sapi dapat meningkatkan
produksi susu rata-rata 4,30% dan pertambahan
bobot badan rata-rata 8,70%.
Pada domba, pemberian campuran S.
cerevisiae dan Bioplas pada ransum,
masing-masing dengan dosis 4 g Bioplas/
kg bobot badan dan 1 g S. cerevisiae yang
mengandung 14 x 10 11 koloni menghasilkan
konversi pakan sebesar 6 kg/kg pertambahan
bobot badan (Ratnaningsih 2000).
Penelitian imunostimulan berkembang
pesat. Penemuan substansi beta-D
glukan berawal dari hasil Pillemer (1940)
dalam Life Source Basics (2002), yang
meneliti substansi yang memiliki kemampuan
menghasilkan aktivator mekanisme
pertahanan tubuh yang disebut zymosan.
Meski substansi tersebut mampu menstimulasi
secara nonspesifik respons imun,
zat aktifnya belum diketahui. Selanjutnya
Diluzio (1970) dalam Life Source Basics
(2002) berhasil menemukan substansi
tersebut dan komponen aktifnya adalah
beta-D glukan. Salah satu bahan ini terdapat
pada barley (Schizophyllum spp.)
dan dinding khamir S. cerevisiae. Hasil
penelitian laboratorium dan komersial
secara umum membuktikan manfaat S.
cerevisiae pada ayam broiler dan petelur,
babi, ikan lele, sapi, dan udang sehingga
dapat mengurangi biaya obat-obatan dan
vaksinasi.
Beberapa contoh penggunaan S.
cerevisiae sebagai imunostimulan pada
hewan adalah sebagai berikut. Transfer
gen beta-glukan pada udang dan mikroorganisme
laut seperti mikroalga dan
bakteri nonpatogenik lain dapat
meningkatkan kekebalan tubuh. Pada lele
dumbo, beta-glukan dengan dosis 750
mg/kg pakan dapat berperan sebagai
imunostimulan yang positif terhadap
respons kebal nonspesifik melalui uji
tantang terhadap infeksi bakteri
Aeromonas hydrophila (Rukyani et al.
1987). Pada udang hitam (Penaeus
monodon), pemberian beta-glukan 1
g/kg pakan memperlihatkan peran imun
yang positif terhadap kenaikan hematosit
(Sitthipun et al. 2000). Pada udang dan
ikan, penggunaan S. cerevisiae sebagai
imunostimulan dengan dosis 50 mg/kg
bobot badan dapat mengatasi serangan
bakteri dan kuman lain seperti
Aeromonas salmonicida dan vibriosis
(Fox 2002).
PERMASALAHAN DALAM
APLIKASI DI LAPANGAN
Penggunaan kapang entomofagus (B.
bassiana dan M. anisopliae) untuk mengendalikan
serangga hama pada tanaman
perkebunan sudah banyak dilakukan,
namun untuk pengendalian caplak dan
tungau pada ternak barn pada tahap awal
penelitian (Ahmad 2004). Identifikasi
cendawan sangat penting dalam mendapatkan
cendawan entomofagus, karena
bila salah memilih akan merusak tatanan
fauna dalam lingkungan seperti kematian
serangga yang menguntungkan atau
berguna (Wikardi 2000). Karena itu, perlu
dilakukan penelitian lanjutan. Untuk
aplikasi kapang nematofagus (D.
flagrans) hanya perlu
memasyarakatkannya sehingga
penggunaan cendawan nematofagus
dalam pengendalian penyakit pada ternak
lebih lu g s dibandingkan dengan antelmintik.

Memperhatikan hasil-hasil penelitian
terdahulu maka S. cerevisiae dapat
digunakan sebagai probiotik, namun beberapa
faktor harus dipertimbangkan
seperti biaya produksi dalam skala besar,
pengaruh buruk terhadap ternak, dan zat
khasiat yang terkandung di dalamnya.
Penggunaan S. cerevisiae sebagai imunostimulan
hendaknya tidak melalui
suntikan, tetapi secara oral bersama-sama
pakan.
Peningkatan atau penurunan mekanisme
pertahanan tubuh bergantung pada
jumlah glukan yang dikonsumsi ternak.
Oleh karena itu, responsnya pada ternak
DAFTAR PUSTAKA
Agarwal, N., D.N. Kamra, L.C. Chaudhary, A.
Sahoo, and Pathak. 2000. Selection of
Saccharomyces cerevisiae strains for use as a
microbial feed additive. (http://www. B I
ackwell. synergy. com/links/doi/ 10.1046/
J.1472-765X.2000.00826.X/Full/). [15 October
2003].
Ahmad, R.Z. 1999. Pemakaian dua metode isolasi
cendawan nematofagus dari tanah di daerah
Bogor. him. 1.027-1.029. Prosiding Seminar
Nasional Peternakan dan Veteriner, Jilid II.
Pusat Penclitian dan Pengembangan Peternakan,
Bogor.
Ahmad, R.Z. 2001. Isolasi dan Seleksi Cendawan
Nematofagus untuk Pengendalian Haemonchosis
pada Domba. Tesis. Program Pascasarjana
Institut Pertanian Bogor.
Ahmad, R.Z. 2003. Potensi Duddingtonia
flagrans sebagai cendawan nematofagus.
Jurnal Mikologi Kedokteran Indonesia 2003;
(4): 14-20, 2004; 5(1-2): 14-20.
Ahmad, R.Z. 2004. Cendawan Metarhizium
anisopliae sebagai pengendali hayati ektoparasit
caplak dan tungau pada ternak.
Wartazoa 14(2): 73-78.
Ahmad, R.Z. 2005a. Pemanfaatan cendawan
Arthrobotrys oligospora dan Duddingtonia
flagrans untuk pengendalian Haemonchosis
pada ruminansia kecil di Indonesia. Jurnal
Penelitian dan Pengembangan Pertanian
24(4): 143-148.
Ahmad, R.Z. 2005b. Pemanfaatan khamir
Saccharomyces cerevisiae untuk ternak.
Wartazoa 15(1): 49-55.
Ahmad, R.Z. 2008. Efektivitas cendawan
Duddingtonia flagrans dan Saccharomyces
cerevisiae dalam pengendalian racing
Haemonchus contortus pada domba. Disertasi.
Sekolah Pascasarjana, Institut Pertanian
Bogor.
Ahman, J. 2000. Extracellular serine proteases
as virulence factors in nematophagous fungi:
Molecular characterization and functional
analysis of the PII protease in Arthrobotrys
sangat bervariasi, bergantung pada ada
atau'tidaknya receptor yang dikenal oleh
komponen gula dari beta-D glukan. Hal
ini berhubungan erat dengan struktur
darah, di mana darah terdiri atas hemosiania
(molekul yang membawa oksigen)
dan lektin (molekul yang beraksi terhadap,
imun) (Life Source Basics 2002). Selain itu
penggunaan imunostimulan beta-D glukan
relatif lebih aman daripada antibiotik yang
mempunyai efek resistensi. Perlakuan
pada ruminansia berbeda dengan pada
unggas atau ikan, sehingga dalam mengaplikasikannya
perlu mengetahui fisiologi
oligospora. Dissertation, Lund University.
Swedia. (http/www.lub.1u.se/cgi-bin/showdiss.pl?db-
global & fname =sci -476 html. I -
3). [30 April 2006].
Alcxopoulus. C.J., C.W. Mims, and M. Blackwell.
1996. Introductory to Mycology. 4' ed. John
Wiley and Sons. Inc., Newyork-Chichester-
Brisbane-Toronto Singapore. p. 869.
Balai Penclitian Veteriner. 1992. Kudis. Infor-
masi Teknis Penyakit Hewan: 22-24.
Barnet, H.L. 1969. Illustrated Genera of Imperfect
Fungi. 2" 1 Ed. Burgess Publishing
Company, Mincapolis.
Barnet, J.A., R.W. Payne, and D. Yarrow. 2000.
Yeasts. Characteristics and Identification. 3'"
Ed. Cambridge Univ Press.
Barron. 2005. Beauveria bassiana. (http://www.
Uoguelph.ca/-g barron/Miscelincous) [20
April 2005].
Batson, G. 1977. Laboratory evaluation of
Beauveria bassiana as pathogen of the
larvae stage of the large elm beetle, Socolytus.
J. Vertebrata Pathol. 29(3): 361-366.
Beriajaya dan R.Z. Ahmad, 1999. Cendawan
Arthrobotrys oligospora untuk pengendalian
ncmatoda Haemonchus contortus pada
domba. him. 980-985. Prosiding Seminar
Nasional Peternakan dan Veteriner Jilid II.
Pusat Penclitian dan Pengembangan Peternakan,
Bogor.
Beriajaya, R.Z. Ahmad, dan E. Kusumaningtyas.
2001. Efikasi nematofagus pada ternak
domba dan kambing. him. 364-370. Prosiding
Hasil Penclitian bagian Proyek. Rekayasa
Teknologi Petemakan. Pusat Penelitian
dan.Pengembangan Peternakan, Bogor.
Beta Glucan Research. 2004. Saccharomyces
cerevisiae. (http://www.betaglucan.orgi). [20
December 2004].
Brady, B.L.K. 1979. Pathogenic Fungi and
Bacteria. Commonwealth Agricultural
Bureaux, England.
dan tingkah laku hewan dengan baik agar
diperoleh hasil yang optimal.
KESIMPULAN
Hasil uji produktivitas dan aplikasi isolat
lokal Indonesia kapang B. bassiana, D.
flagrans, M anisopliae, dan khamir S.
cerevisiae sebagai pengendali hayati,
probiotik dan imunostimulan memberikan
hasil yang baik sehingga dapat dimanfaatkan
untuk meningkatkan produktivitas
dan kesehatan ternak.
Brooks, A.J. and R. Wall. 2002. Infection of
Psoroptes mites the fungus Metarhizium
anisopliae. Exp. Appl. Acarol. 25: 869-880.
Broome, J.R., P.P. Sikorowski, and B.R. Noremarit.
1976. A mechanism of pathogenecity
of Beauveria bassiana on larva of the
imported fire and Solenopsis richteri. J.
Vertebrata Pathol. 28: 87-91.
Budiantoro. 2004. Kerugian ckonomi akibat
skabies dan kesulitan dalam pemberantasannya.
him. 51-63. Prosiding Seminar Parasitologi
dan Toksikologi Veteriner, 20-21
April 2004. Pusat Penclitian dan Pengembangan
Peternakan, Bogor dan DFID-UK.
Campos, R.A., W. Arruda, J.T. Boldo, and Siva.
2005. Boophilus microplus infection by
Beauveria amorpha and Beauveria
bassiana: SEM analysis and regulation of
subtilisin-like protcases and chitinases.
Current Microbiol. 5: 257-261.
Cloyd, R.A. 2003. The Entomophatogenic
Fungus Metarhizium anisopliae. University of
Illinois. (http://www. Entomology.Wisc.
Edu/mben/kyf607.html: 1-2). [10 December
2003].
Dube, H.C. 1996. An Introduction to Fungi. 2"'
Ed. Vikas House PVT, Delhi.
Elliot, G.C. 1994. Reproduction in Fungi Genetical
and Physiological Aspects. Botany Department
Univ of Glasgow Chapman & Hall.
London.
Faedo, M., E.H. Barnes, R.J. Dobson, and P.J.
Waller. 1998. The potential of nematophagous
fungi to control the free-living
stages of nematode parasites of sheep:
Pasture plot study with Duddingtonia
flagrans. Vet. Parasitol. 76: 129-135.
Fernandez, S. 1994. Study of Conidia Production
and Transmission of B. bassiana (balsamo)
Vuill, in Colorado Potato Bettie (Leptintarsa
decemlineata) PhD thesis, University of
Maine.
A - I T ;fA . . . P - f -;- 77/ q i 11MR

Feron. 1981. Biological control of insect pest
by entomogenous fungi. Annu. Rev. Entomol.:
409-442.
Fox, J.M. 2002. Immunology of fish and shrimp.
(http://www.Sci.tamucc.edu/pals/maric/index
/webpage/dlcc2.html). [15 October 2003].
Frazzon, A.P.M., I.D.S. Vas Junior, A. Masuda,
A. Scrank, and M.H. Vainstcin. 2000. In vitro
assessment of Metarhizium anisopliae
isolates to control the cattle tick Boophilus
microplus. Abstract. Vet. Parasitol. 94(1-
2): 117-125.
Fuller, R. 1992. Probiotics the Scientific Basis.
Chapman & Hall. The University Press
Cambridge.
Geuther, F.J., S.F. Steven, and S.G. Patricia. 2004.
Virulence of Metarhizium anisopliae to
embryos of the grass shrimp Palaemonetespugio.
(http://www. Isb.vt.edu/brarg/
brasym95/gcnthner95.htm:1-8) [15 March
2004].
Gronvold, J., J. Wolstrup, P. Nansen, S.A.
Henriksen, M. Larsen, and J. Bresciani. 1993.
Biological control of nematode parasites in
cattle with nematode-trapping fungi: a
survey of Danish studies. Vet. Parasitol. 48:
311-325.
Gronvold, J., P. Nansen, S.A. Henriksen, M.
Larsen, J. Wolstrup, J. Bresciani, H. Rawat,
and L. Fribert. 1996. Induction of traps by
Ostertagia ostertagi larvae, chlamydosporc
production and growth rate in the
nematode-trapping fungus Duddingtonia
flagrans. J. Helminthol. 70: 291-297.
Holder, D.J. and N.O. Keyhani. 2005. Adhesion
of the Entomopathogenic fungus Beauveria
(cordyceps) bassiana to substrata. Appl.
Environ. Microbiol. 71(9): 5.260-5.266,
Istiana, E. Kusumaningtyas, D. Gholib, dan S.
Hastiono. 2002. Isolasi dan identifikasi
Saccharomyces cerevisiae beserta in vitro
terhadap (Salmonella typhimurium). hlm.
459-462. Prosiding Seminar Nasional Tcknologi
Petemakan dan Veteriner, Ciawi Bogor,
30 September-1 Oktober 2002. Pusat Penelitian
dan Pcngembangan Petemakan, Bogor.
Karpinska, E., B. Blaszcak, G. Kosowska, A.
Degrski, M. Binek, and W.B. Borzemska.
2001. Growth of the intestinal anaerobes in
the newly hatched chicks according to the
feeding and providing with normal gut flora.
Bull. Vet. Pulawary. 45: 105-109.
Kirkwood, A.C. 1986. History, biology and
control of sheep scab. Parasitol. Today 11:
302-307.
Kompiang, I.P. 2002. Pengaruh ragi Saccharomyces
cerevisiae dan ragi laut sebagai pakan
imbuhan probiotik terhadap kinerja unggas.
Jurnal Ilmu Ternak dan Veteriner 7(1): 18-
21.
Kumprecht, I., P. Zobac, Z. Gasnarek, and E.
Robosova. 1994. The effect of continuous
applications of probiotics preparations based on
S. cerevisiae var. elipsoideus and Streptococcus
faecium C-68 (SF-68) on chicken
broiler yield. Zivocisma-yroba 39(6): 491-
503.
Kumprechtova, D., P. Zobac, and I. Kumprecht.
2000. The effect of Saccharomyces cerevisiae
Sc 47 on chiken broiler performance an
nitrogen output. Czech. J. Anim. Sci. 45: 169-
177. (http://www. Buypro-biotics.Com/index
3.cfm? Book chapter id= 33). [20 December
2000].
Kusumamihardja, S. dan L. Zalizar. 1992. Pengaruh
musim pada hipobiose Haemonchus
contortus dan fluktuasi populasi nematoda
saluran pencernaan domba di Indramayu,
Jawa Barat. hlm. 171-192. Prosiding Seminar
Nasional Hasil Penelitian Perguruan Tinggi.
Larsen, M., P. Nansen, J. Wolstrup, J. Gronvold,
S.A. Henrikesn, and A. Zorn. 1995. Biological
control of trichostrongyles in calves
by fungus Duddingtonia flagrans fed to
animals under natural grazing conditions.
Vet. Parasitol. 60: 321-330.
Larsen, M., P. Nansen, C. Grondhal, S.M.
Thamsborg, 1. Gronvold, 1. Wolstrup, S.A.
Henriksen, and J. Monrad. 1996. The
capacity of fungus Duddingtonia flagrans
to prevent strongyle infections in foals on
pasture. Parasitology 113: 1-6.
Larsen. M., M. Faedo, P.J. Waller, and D.R.
Hannessy. 1998. The potential of nematophagous
fungi to control the free-living
stages of nematodes parasites of sheep:
Studies with Duddingtonia flagrans. Vet,
Parasitol. 76: 121-128.
Larsen, M. 2000. Prospects for controlling
animal parasitic nematodes by predacious
microfungi. Parasitology 120: S121-SI31.
Life Source Basics. 2002. WGP. Beta glucan.
(http: www. Life Source basics. Com/
beta_glucan.htm) [10 December 2002].
Lodder, J. 1970. The Yeast, A taxonomic study.
2" Ed. The Netherland, North Holland Co.
Amsterdam.
Maddox, J.V. 1982. Use of Insects Pathogens in
Pest Management. John Willey and Sons,
New York, Chester, Brisbane, Toronto,
Singapore.
Maranga, R.O., G.R. Kaaya, J.M. Mucke, and A.
Haimnall. 2005. Effects of combining the
fungi Beauveria bassiana and Metarhizium
anisopliae on the mortality of the tick
Amblyomma variegatum (ixodidae) in
relation to seasonal changes. Mycopathologia
154(4): 527-532.
Mendoza-De Gives, P., K.G. Davies, S.J. Clark,
and J.M. Behnke. 1999. Predatory behaviour
of trapping fungi againts srf mutants
of Caenorhabditis elegans and different
plant and animal parasite nematodes. Parasitology
119: 95-164.
Meyer, W.J. and M.G. Wiebe. 2003. Enzyme
production by nematode-trapping fungus,
Duddingtonia flagrans. Abstract. J. Biotechnol.
Letters 25: 791-795.
Nankingan, C.M., W.M. Ongenga-Latigo, G.B.
Allard, and J. Ogwang. 1994. Studies on the
potential of Beauveria bassiana for the
control the banana weevil cosmopolites
sordidus Geermarin Uganda. J. African Crop
Sci. (1): 300-302.
Nansen, P., M. Larsen, A. Roepstorff, J.
Gronvold, J. Wostrup, and S.A.A. Henriksen.
1996. Control of Oesophagostomum
dentatum and Hystongylus rubidus in
outdoor-reard pigs by daily feeding with the
microfungus Duddingtonia flagrons.
Parasitol. Res. 82: 580-584.
Onofre, S.B., M.M. Cindia, M. Neiveia, and L.A.
Joao. 2001. Pathogenicity of four strains
entomopathogenic fungi against the bovine
tick Boophilus microplus. Am. J. Vet. Res.
62: 1.478-1.480.
Patra, A.K. 2007. Nutritional management in
organic livestock farming for improved
ruminant health and production, an overview.
Livestock Res. Rural Dev. 19: 1-21.
Rachmat, R., A. Rauf, dan M.Z. Kanto. 1998.
Kontribusi getah pepaya dalam pengendalian
penyakit casing pada kambing. hlm. 432-
434. Prosiding Seminar Hortikultura. Kcrja
Sama Fakultas Pertanian dan Kehutanan
Universitas Hasanudin dengan Instalasi Penelitian
dan Pengkajian Pertanian Jencponto.
Balai Pengkajian Tcknologi Pertanian
Kendari.
Ratnaningsih, A. 2000. Pengaruh Pemberian
Probiotik S. cerevisiae dan Bioplus pada
Ransum Ternak Domba terhadap Konsumsi
Bahan Kcring, Keccrnaan dan Konversi
Ransum (in vivo). Skripsi Fakultas Peternakan
Universitas Padjajaran, Bandung.
Ridwan, Y., S. Kusumamihardja, P. Dorny, and J.
Vercruysse. 1996. The epidemiology of
gastro-intestinal nematodes of sheep in West
Java, Indonesia. Hemerazoa 78: 8-18.
Roberfoid, M.B. 2000. Probiotics and probiotics:
are they functional foods 1-3 Am. J. Clinical
New. 71(Suppl): 16.828-16.878.
Rosen, S. 1996. Fungal Lcctins. Molecular
structure and function of a member of a
novel lectin family. PhD Dissertation Lund
University. (http://www. Lub.1u.se/cgibin.show-diss.pl?db=
global& fname =sci-
467.html). [4 Juni 2006].
Rukyani, A., E. Silvia, A. Sunarto, dan Taukhid.
1987. Pcningkatan respons kebal nonspesifik
pada ikan lele Jumbo (Clarias spp.)
dengan pemberian imunostimulan (betaglucan).
Jumal Penelitian Perikanan Indonesia
111(1): (Abstrak).
Shins, T., S. Hyung, K. Kyun, and A. Choong.
1989. Effects of CYC on the performance
of dairy, beef cattle and swine. Seoul. Korea.
Sigit, H.S., S. Parosoedjono, dan M.S. Akib. 1983.
Inventarisasi dan pemetaan parasit Indonesia
tahap pertama. Ektoparasit. Laporan Penelitian
Proyek Pcningkatan dan Pengembangan
Perguruan Tinggi Institut Pertanian
Bogor.
Sitthipun, M., A.H. Kittikun, and K. Supamattayta.
2000. Immunostimulant and

vaccination in black tiger shrimp, Penaeus
monodon Fabricius: Extraction of betaglucan
from yeast and its application in black
tiger shrimp (Penaeus monodon Fabricius).
(http://www.clib.psu.ac.th/acad-43/smol
I.htm). [27 December 2000].
Smith, K.E., R. Wall, and N.P. French. 2000.
The control of sheep scabmite Psoroptes
ovis with entom op atho genic fungi. Vet.
Piras 4tol. 92: 97-105.
Soulsby, E.J.L. 1986. Helmiths, Protozoa and
Arthropods of Domesticated Animal. 7 11 ed.
Bailliere Tindall, London.
Steelman, C.P. 1976. Effects of external and
internal arthropod parasites on domestic
livestock production. Ann. Rev. Entomol.
21: 55-178,
Tedesco, D., C. Castrovilli, G. Coni, D. Bartoli,
V. Volltro, and F. Polidori. 1994. Use of
probiotics in the feeding of neat rabbits:
Effects on performance and intestinal
microorganism. Rivista dj. Coniglicoltura
31(10): 41-46.
Tizard, I. 1987. Veterinary Immunology, an
Introduction. W.B. Saunders Company,
Philadelphia, USA.
Urqurhart, G.M., J. Armour, J.L. Duncan, A.M.
Dunn, and F.W. Jennings. 1987. Veterinary
Parasitology, Department of Veterinary
Parasitology. Faculty of Veterinary Medicine,
The Univ of Glasgow, Scotland, Longman
Scientific & Technical. Churchill Livingstone
Inc, New York.
Waller, P.J. 1997. Sustainable helminth control
of ruminants in developing countries. Vet.
Parasitol. 71: 195-207.
Wikardi, E.A. 2000. Cendawan patogen serangga
sebagai bahan baku insektisida. Pemanfaatan
mikroba dan parasitoid dalam agroindustri
tanaman rempah dan obat. Perkembangan
Teknologi Tanaman Rempah dan Obat (XII):
21-28.
Wina, E. 2000. Pemanfaatan ragi (yeast) sebagai
pakan imbuhan untuk meningkatkan produktivitas
ternak ruminansia. Wartazoa 9(2):
50-56.