APLIKASI TEKNOLOGI ENZIM DALAM PRODUKSI BENIH RAJUNGAN

)
\*s
,:,::$:'.1...."
ffiMMffi

APLIKASI TEKNOLOGI ENZIM DALAM PRODUKSI
BENIH RAJUNGAN
Diterbitkan oleh
BADAN PENELITIAN DAN PENGEMBANGAN DAERAH
PROVINSI SULAWESI SELATAN
2016

APLIKASI TEKNOLOGI ENZIM DALAM PRODUKSI
BENIH RAJUNGAN
Tim Peneliti :
Prof.Dr.Ir.Yushinta Fujaya, M.Si., Nur Alam, S.Pi., Paidah, S.Pi.
Konsultan :
Prof.Dr.Ir. Jamaluddin Jompa, M.Sc
Editor :
Ir. Muh. Nurhakim Tangim, M.Si., Muslimin Hamid, S.Pt., M.Si., Dra. Hj.
Rana Mirna, MM., Masayu Yuliana Mappasanda, Christin Soetjiati, STP.,
Ir. Zulhajji, Dra. St. Rosmiati N, Dian Ramadhani Zulkarnain, S.Pt
Diterbitkan Oleh :
Badan Penelitian dan Pengembangan Daerah
Provinsi Sulawesi Selatan
Cetakan Pertama Desember 2016
Hak Cipta@2016
Badan Penelitian dan Pengembangan Daerah
Provinsi Sulawesi Selatan
Hak Cipta Dilindungi Undang-Undang
Dilarang mengutip atau menyebarkan sebagian atau seluruh isi
Buku ini tanpa izin tertulis dari penerbit
ISBN : 978-979-716-119-4
ii

KATA PENGANTAR
Puji syukur kehadirat Allah SWT atas segala limpahan Rahmat,
Karunia dan Hidayah-Nya sehingga kegiatan penelitian “Aplikasi
Teknologi Enzim dalam Produksi Benih Rajungan” ini dapat terlaksana
dengan baik.
Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui metode pemberian
pakan buatan predigest yang tepat untuk menunjang keberhasilan
pembenihan rajungan secara massal dengan pengaplikasian teknologi
enzim. Keberhasilan dalam pembenihan rajungan akan mampu
mendorong budidaya rajungan secara berkelanjutan. Selanjutnya akan
berdampak pada meningkatnya pendapatan, kesejahteraan, dan
kemandirian pelaku bisnis rajungan.
Kegiatan ini dapat terlaksana berkat kerjasama Badan Penelitian
dan Pengembangan Daerah Provinsi Sulawesi Selatan dengan Lembaga
Penelitian dan Pengabdian Masyarakat (LP2M) Universitas Hasanuddin
Makassar.
Semoga kegiatan ini dapat memberikan sumbangsih dalam bidang
perikanan, khususnya pembangunan usaha pembenihan rajungan di
Provinsi Sulawesi Selatan.
Makassar, Desember 2016
Kepala Badan,
Drs. MUHAMMAD FIRDA, M.Si
Pangkat: Pembina Utama Madya
NIP. 19631231 198803 1 132
iii

ABSTRAK
Keterbatasan benih dari hatchery merupakan salah satu penghambat
berkembangnya budidaya rajungan di Indonesia. Tujuan dari penelitian ini
ada dua yaitu: 1) melakukan scaling up produksi benih rajungan di
hatchery dengan mengaplikasikan pakan buatan yang di “Predigest"
dengan enzim eksogen dan 2) mendapatkan metode pemberian pakan
buatan predigest yang tepat untuk menunjang keberhasilan pembenihan
rajungan secara massal. Penelitian ini dilaksanakan dari bulan Juni
sampai Oktober 2016 di Desa Bojo Kecamatan Mallusettasi, Kabupaten
Barru. Ada dua perlakuan yang dicobakan, yaitu pemberian pakan buatan
yang dipredigest dengan enzim eksogen dan tanpa predigest. Dosis
enzim eksogen adalah 2.5 g enzim per 100 gram pakan buatan. Enzim
eksogen tersebut mengandung Protease 468 IU/g, Lipase 7990 IU/g,
Amilase 1421 IU/g, Pepsin 73 IU/g, Tripsin 27 IU/g, Kemotripsin 27 IU/g,
Protein 4.7 IU/g, dan Lemak 0.53 IU/g. Hasil kajian ini menunjukkan
bahwa pemberian pakan buatan yang dipredigest dengan enzim eksogen
dapat meningkatkan laju pergantian stadia larva dan meningkatkan
sintasan larva rajungan. Pemberian pakan buatan predigest baik
dilakukan sejak zoea-1 dan terus ditingkatkan jumlahnya hingga zoea-4,
yaitu sebanyak 2,50 ppm untuk zoea-1; 5 ppm untuk zoea-2; 7,50 ppm
untuk zoea-3; dan 10 ppm untuk zoea-4. Karena itu disarankan untuk
menggunakan pakan buatan predigest untuk melengkapi dan
meminimalisir penggunaan pakan alami pada pembenihan rajungan
secara massal.
Kata kunci: Budidaya rajungan, enzim eksogen, pakan buatan,
pembenihan, predigest
iv

ABSTRACT
Lack of seeds from hatchery is one of inhibiting for development of crab
cultivation in Indonesia. There were two aims in the research, that is: 1) to
scale up of crab seed production in hatchery by applying predigestion of
artificial feed with exogenous enzyme, and 2) to find an apropriate method
of feeding to support the success of crab mass production. This study was
conducted from June – October 2016 in Bojo village, Barru, Indonesia.
There were two treatments, namely provision of predigest artificial feed
with exogenous enzyme dan without predigestion. Exogenous enzyme
dosage used is 2.5 g per 100 g artificial feed. The exogenous enzyme
contains 468 IU/g, Lipase 7990 IU/g, Amilase 1421 IU/g, Pepsin 73 IU/g,
Tripsin 27 IU/g, Kemotripsin 27 IU/g, Protein 4.7 IU/g, and fat 0.53 IU/g.
The result of study showed that predigestion of artificial feed with
exogenous enzim could improve the larva development index and survival
rate of crab larvae. Predigest artificial feeding is best done since zoea-1
and continuously improved until zoea-4 as many as 2.5 ppm, 5 ppm, 7.5
ppm, 10 ppm, respectively for zoea-1, 2, 3, and 4. Therefore it is
advisable to used predigest artificial feed to supplement and minimize the
use of live food on mass crab larvae production.
Keywords: Blue swimming crab cultivation, exogenous enzyme, artificial
feed, hatchery, predigest.
v

DAFTAR ISI
Halaman
HALAMAN JUDUL .............................................................................. i
SUSUNAN TIM PENELITI ................................................................. ii
KATA PENGANTAR ........................................................................... iii
ABSTRAK ........................................................................................... iv
ABSTRACT ......................................................................................... v
DAFTAR ISI ........................................................................................ vi
DAFTAR TABEL ................................................................................. viii
DAFTAR GAMBAR ............................................................................. ix
DAFTAR LAMPIRAN .......................................................................... x
BAB I. PENDAHULUAN
A. Latar Belakang ................................................................. 1
B. Perumusan Masalah ...................................................... 3
C. Tujuan Penelitian ............................................................ 4
D. Manfaat Penelitian .......................................................... 4
BAB II. TINJAUAN PUSTAKA
A. Landasan Teori ................................................................ 5
B. Definisi Operasional ........................................................ 18
BAB III. METODE PENELITIAN
A. Lokasi dan Waktu ............................................................ 20
B. Koleksi dan Penebaran Induk ......................................... 20
C. Pemeliharaan Larva ....................................................... 20
D. Penyiapan dan Pemberian Pakan .................................. 21
E. Perlakuan ......................................................................... 24
F. Parameter yang Diukur ................................................... 24
G. Analisis Data ................................................................... 26
vi

Halaman
BAB IV. HASIL DAN PEMBAHASAN
A. Produksi Benih Rajungan ......................................... 27
B. Analisis Usaha .......................................................... 36
BAB V. PENUTUP
A. Kesimpulan ............................................................ 38
B. Saran ..................................................................... 38
C. Rekomendasi Kebijakan .......................................... 38
D. Implikasi Kebijakan .................................................. 39
DAFTAR PUSTAKA ...................................................................... 40
LAMPIRAN .................................................................................... 46
vii

DAFTAR TABEL
Halaman
1. Tabel 1. Tahapan Adopsi ....................................................... 22
2. Tabel 2. Komposisi Nutrisi Pakan Buatan yang
Digunakan Selama Penelitian ................................. 23
3. Tabel 3. Kriteria Morfologi Larva Rajungan Menurut
Arshad et al .............................................................. 24
4. Tabel 4. Pembobotan Nilai IPL Tiap Stadia
Perkembangan Larva............................................... 25
5. Tabel 5. Ukuran Induk Rajungan dan Larva yang
Dihasilkan ................................................................. 27
6. Tabel 6. Indeks Perkembangan Larva (IPL) Harian
Sebagai Respon Terhadap Pakan yang
Diperkaya Enzim Dengan yang Tidak
Diperkaya Enzim ...................................................... 28
7. Tabel 7. Analisis Kelayakan Usaha Pembenihan
Rajungan .................................................................. 36
viii

DAFTAR GAMBAR
Halaman
1. Gambar 1. Rajungan (Portunus Pelagicus) yang
Tertangkap di Selat Makassar ............................ 16
2. Gambar 2. Morfologi Larva Rajungan Stadia Zoea. ............. 19
3. Gambar 3. Morfologi Larva Rajungan Stadia Megalopa ....... 10
4. Gambar 4. Induk Rajungan dan Larva yang Baru
Menetas ............................................................... 27
5. Gambar 5. Morfologi Larva Setiap Stadia ............................. 30
6. Gambar 6. Sintasan Larva Rajungan yang Mendapatkan
Pakan Buatan dengan Penambahan
Enzim dan Tanpa Enzim ..................................... 32
7. Gambar 7. Foto Kondisi Kepadatan Larva Stadia
Zoea-3 yang Mendapatkan Pakan Buatan
Dengan Penambahan Enzim dan Tanpa
Penambahan Enzim ............................................ 33
8. Gambar 8. Jumlah Megalopa dan Crab Berumur 5 Hari
yang Dapat Dipanen Per Siklus Pemeliharan ..... 33
ix

DAFTAR LAMPIRAN
Halaman
1. Lampiran 1. Rumah Surya Semi Permanen Tempat
Menetaskan Telur dan Memelihara
Larva Rajungan ............................................ 46
2. Lampiran 2. Bak Kerucut Dalam Rumah Surya Tempat
Menetaskan Telur dan Memelihara
Larva Rajungan. ........................................... 46
3. Lampiran 3. Enzim yang Digunakan Untuk
Meningkatkan Daya Cerna
Pakan Oleh Larva ........................................ 47
4. Lampiran 4. Pakan Buatan yang Digunakan Untuk
Larva............................................................. 48
5. Lampiran 5. Artemia yang Digunakan Sebagai
Pakan Alami ................................................. 49
6. Lampiran 6. Kegiatan Pemeliharaan Larva ..................... 50
7. Lampiran 7. Kegiatan Monev ........................................... 50
8. Lampiran 8. Kegiatan Monev Kegiatan: Induk Jantan
Rajungan Domestikasi ................................. 51
9. Lampiran 9. Kegiatan Monev Kegiatan: Induk Jantan
Rajungan Domestikasi ................................. 52
10. Lampiran 10. Kegiatan Monev Kegiatan: Induk Betina
Rajungan Domestikasi ................................. 53
11. Lampiran 11. Larva Rajungan (Zoea) ................................ 54
12. Lampiran 12. Larva Rajungan (Megalopa) ........................ 54
13. Lampiran 13. Bibit Rajungan (Crab-5) yang Siap
Ditebar di Tambak ........................................ 55
x

BAB I
PENDAHULUAN
A. Latar Belakang
Rajungan merupakan salah satu komoditi perikanan yang
menjadi andalan ekspor non migas Indonesia. Komoditi ini
terutama dieskpor ke China, Amerika Serikat, Jepang serta
sejumlah negara anggota Uni Eropa.Ekspor kepiting dan rajungan
terbukti memberikan sumbangan devisa yang besar. Berdasarkan
data statistik ekspor hasil perikanan (KKP, 2012), pada tahun
2011 nilai ekspor kepiting dan rajungan menempati urutan ketiga
setelah udang dan tuna yaitu sejumlah 23.089 ton dengan nilai
mencapai US$ 259 juta, sedangkan pada tahun 2012 volume
ekspor tersebut meningkat menjadi 28.211 ton dengan nilai US$
329 juta (BPS, 2013). Produksi kepiting dan rajungan secara
nasional diharapkan dapat terus meningkat untuk mampu
memenuhi permintaan pasar domestik maupun ekspor untuk
menghasilkan devisa.
Produksi komersil rajungan selama ini masih
mengandalkan hasil penangkapan di alam. Peningkatan produksi
dari hasil tangkapan dinilai tidak lagi memungkinkan karena
produksi rajungan di perairan Indonesia mulai menunjukkan
penurunan sejak tahun 2004 (Juwana et al., 2009).Demikian pula
halnya dengan budidaya rajungan yang hingga saat ini juga masih
mengandalkan benih dari alam. Ketergantungan pada
penggunaan benih dari alam dapat memunculkan masalah serius
terkait keberlanjutan industri budidaya rajungan dalam jangka
panjang.Oleh karena itu produksi massal benih rajungan di panti
benih komersial perlu dioptimalkan agar dapat menjamin
1

ketersediaan benih rajungan bagi industri budidaya rajungan
secara konsisten.
Salah satu permasalahan yang dihadapi dalam usaha
pembenihan rajungan adalah ketergantungan pada penggunaan
pakan alami. Hal ini menjadi kendala teknis utama karena kultur
massal pakan alami sangat bergantung pada kondisi cuaca
(Smith, 1988). Penggunaan pakan alami yang berkepanjangan
selama produksi benih juga sangat mempengaruhi biaya produksi
mengingat biaya pengadaan pakan alami yang relatif mahal,
terutama kista artemia yang dapat mencapai 50% dari biaya
operasional hatchery kepiting (Quinitio et al., 2001). Dari perspektif
nutrisi, penggunaan pakan alami rotifer dan naupli Artemia dinilai
masih jauh dari ideal karena kualitas nutriennya yang tidak selalu
konsisten sehingga masih perlu dilakukan pengayaan untuk
memanipulasi kandungan nutriennya agar mencukupi kebutuhan
nutrisi larva rajungan pada tiap stadia (Conceicao et al., 2010;
Hache dan Plante, 2011).
Penggunaan pakan buatan adalah solusi yang dapat
ditempuh. Namun, kendala utama yang dihadapi dalam upaya
mengintroduksi pakan buatan adalah belum sempurnanya fungsi
sistem pencernaan pada larva stadia awal sehingga produksi
enzim masih belum memadai untuk mencerna nutrien dalam
bentuk molekul kompleks (Kumlu, 1999).Untuk mengatasi
masalah ini maka dipandang perlu untuk memberi pakan yang
mengandung nutrien dalam bentuk lebih sederhana. Nutrien
dalam bentuk molekul sederhana diharapkan dapat lebih mudah
dicerna dan diserap oleh larva walaupun ketersediaan enzim
pencernaan endogen masih terbatas (Aslamyah, 2006). Upaya
menyederhanakan pakan kompleks dapat dilakukan melalui
2

proses predigestion pakan buatan dengan bantuan bakteri
probiotik. Bakteri probiotik mampu menghasilkan enzim
pencernaan eksogen yang dapat membantu memecah nutrien
kompleks yang terkandung pada pakan buatan. Proses
predigestion diharapkan dapat membantu mengoptimalkan
pemanfaatan nutrien yang terkandung dalam pakan buatan,
terutama kandungan protein yang sangat diperlukan selama
perkembangan stadia zoea. Beberapa penelitian yang telah
dilakukan menunjukkan bahwa predigestion pada pakan buatan
dalam upaya produksi benih rajungan memberikan perbaikan
pertumbuhan dan metamorfosis yang signifikan (Rimandy, 2015;
Ahmad, 2015; Agviranti, 2015; Nahdatullah, 2015; Dewi, 2015;
Alik, 2015).
B. Perumusan Masalah
Berdasarkan beberapa hasil penelitian pakan buatan
“predigestion” sebelumnya maka scaling up penggunaan enzim
dalam pakan buatan untuk produksi benih rajungan di hatchery
penting dilakukan. Apabila produksi benih telah dapat dilakukan
secara konsisten maka komersialisasi pembenihan rajungan dapat
dilakukan. Namun, pertanyaan yang timbul adalah:
1) Apakah respon larva terhadap pakan berenzim sama untuk
skala produksi massal ?
2) Bagaimana performa pakan berenzim dalam menunjang
aktivitas fisiologi perkembangan larva?
3

C. Tujuan
1) Melakukan scaling up produksi benih rajungan di hatchery
skala rumah tangga (backyard) dengan mengaplikasikan
pakan yang di “Predigest" dengan enzim.
2) Mendapatkan cara pemberian pakan berenzim yang tepat
untuk menunjang keberhasilan pembenihan rajungan
secara massal.
D. Manfaat Hasil Penelitian
1) Meningkatnya pemanfaatan hasil litbang untuk
meningkatkan produksi rajungan
2) Meningkatnya pendapatan, kesejahteraan, dan
kemandirian pelaku bisnis rajungan.
4

BAB II
TINJAUAN PUSTAKA
A. Landasan Teori
Perikanan kepiting didominasi oleh beberapa anggota famili
Portunidae, mencakup empat spesies kepiting bakau (genus Scylla) serta
beberapa spesies dari genus Portunus. Rajungan merupakan istilah untuk
kelompok kepiting yang dapat berenang (swimming crab). Rajungan
tergolong anggota filum Arhtropoda, superkelas Crustacea, subkelas
Eumalacostraca, ordo Decapoda, subordo Pleocyemata, famili
Portunidae, genus Portunus dengan nama spesies Portunus pelagicus
(Linnaeus, 1758). Berdasarkan penelitian Lai et al (2010), sistematika
spesies Portunus pelagicus yang tersebar di kawasan indo-pasifik barat
direvisi menjadi empat spesies, yaitu P.pelagicus (Linnaeus, 1758),
P.segnis (Forskål, 1775), P.reticulatus (Herbst, 1799) dan P. armatus (A.
Milne-Edwards, 1861). P.pelagicus sensu stricto adalah anggota spesies
kompleks ini yang umum menyebar di kawasan perairan Indonesia.
Setidaknya ada tiga varian rajungan yang tertangkap dari Selat Makassar.
Rajungan tersebut berbeda dalam pola bintik, morfometrik, dan sekuen
DNA (Fujaya et al., 2016). Tampilan morfologi rajungan dari Selat
Makassar dapat dilihat pada Gambar 1.
5

Gambar 1.
Rajungan (Portunus pelagicus) yang tertangkap di Selat
Makassar; M jantan, F betina (Fujaya et al., 2016)
Secara morfologi, rajungan memiliki lima pasang kaki. Pasangan
kaki pertama merupakan capit, tiga pasang kaki berikutnya merupakan
kaki jalan dan kemudian pasangan kaki terakhir dimodifikasi sebagai
pendayung untuk berenang. Rajungan memiliki bentuk tubuh yang
ramping dengan capit yang panjang serta cenderung memiliki pewarnaan
yang lebih baik pada karapasnya. Karapasnya memiliki tekstur yang
6

kasar, tebal dan terdapat duri pada tiap sisinya (Svane dan Hooper,
2004). Terdapat perbedaan yang mencolok antara rajungan jantan dan
betina. Rajungan jantan memiliki ukuran tubuh yang lebih besar dengan
capit yang lebih panjang daripada individu betina. Rajungan jantan
memiliki warna karapas kebiru-biruan dengan bercak-bercak putih terang,
sedangkan betina memiliki warna karapas kehijau-hijauan dengan bercakbercak
keputih-putihan agak suram. Perbedaan warna ini jelas pada
individu yang agak besar walaupun belum dewasa (Nontji, 2005).
Perkembangan Larva Rajungan
Rajungan mencapai kedewasaan setelah berumur kurang lebih
satu tahun. Fekunditas induk rajungan memiliki hubungan linear dengan
panjang karapas.Semakin panjang karapas induk rajungan maka jumlah
telur yang dihasilkan juga semakin besar. Arshad et al (2006)
mengemukakan kisaran fekunditas induk rajungan sebesar 148.897,64
hingga 835.401,32 telur/induk dengan rataan jumlah telur sebesar
766.651,30±57.192,33 dari bobot induk dengan rataan panjang karapas
141.04±1.12 mm dan bobot 251,73±148,6 g. Induk rajungan menyimpan
telur yang telah dibuahi di bawah lipatan abdomennya. Selama proses
perkembangan embrio terjadi perubahan penampakan warna telur dari
kuning gelap/oranye menjadi kehitaman yang menandakan terbentuknya
bintik mata. Telur akan menetas menjadi larva zoea-1 setelah 8 hari
proses perkembangan embrio pada suhu 28-30 o C.
Proses perkembangan larva rajungan mencakup empat stadia
zoea dan satu stadia megalopa (Shinkarenko, 1979). Berdasarkan
penelitian Josileen dan Menon (2004), proses perkembangan larva
rajungan pada pemeliharaan dengan suhu 28±2 o C dan salinitas 35±1
pptberlangsung selama 14-17 hari,sedangkan menurut Arshad et al
(2006) perkembangan larva rajungan pada pemeliharaan dengan media
7

ersalinitas 28-30 ppt berlangsung selama 14 - 19 hari. Perkembangan
larva selama stadia zoea-1 dan zoea-2 masing-masing berlangsung
selama 3-4 hari. Selanjutnya stadia zoea-3 dan zoea-4 masing-masing
berlangsung selama 2-3 hari dan stadia megalopa selama 3-4 hari.
1. Morfologi Larva Stadia Zoea
Seluruh stadia zoea larva rajungan memiliki rostrum yang panjang,
sebuah duri pada bagian dorsal serta sepasang duri lateral yang pendek
pada bagian karapas. Larva berenang menggunakan pertengahan
eksopodit pertama dan pasangan maxilliped kedua, dengan duri dorsal
terarah kedepan dan duri rostral secara ventral. Terdapat tiga pasang
setae Antara furca telson yang panjang (Arshad et al., 2006).
Larva zoea-1 memiliki mata yang menempel dengan panjang
karapas 0,44-0,54 mm dan panjang abdomen-telson 1,07-1,23 mm.Somit
abdomennya terdiri dari lima segmen dan pada zoea-2 ditambah dengan
keberadaan telson. Larva stadia zoea-1 memiliki antenulla yang pendek
dan mengerucut.Selanjutnya larva bermetamorfosis menjadi zoea-2 yang
memiliki panjang karapas 0,72-0,77 mm dan panjang abdomen-telson
1,46-1,54 mm.Larva mulai memiliki tangkai mata pada stadia zoea-2.
Sepasang plumos setae yang pendek pada bagian tengah yang terbelah
mulai dapat diamati pada stadia ini.Kemudian larva bermetamorfosis
menjadi zoea-3 yang memiliki panjang karapas 0,79-0,87 mm dan
panjang abdomen-telson 2,02-2,21 mm. Abdomen pada zoea-3 terdiri dari
enam segmen. Permukaan dorsal pada somit abdomen pertama memiliki
3 setae yang pendek. Kuncup pleopod pada abdomen berkembang
dengan baik dan menjadi biromous pada somit ke-2 dan 5 serta
uniramous pada somit ke-6 ketika larva bermetamorfosis menuju zoea-4
(Gambar 2).
8

a
b
c
d
Gambar 2. Morfologi larva rajungan stadia zoea. a. zoea-1, b.
zoea-2, c. zoea-3, d. zoea-4 (Arshad et al., 2006)
2. Morfologi Larva Stadia Megalopa
Morfologi larva pada stadia megalopa telah berbentuk menyerupai
crab bila dibandingkan stadia zoea. Megalopa memiliki karapas lebih
lebar, memiliki ukuran panjang karapas 1,69-1.81 mm dan lebar1,16-1,31
mm. Larva pada stadia ini sudah memiliki capit pada ujung kaki bagian
depan. Megalopa mampu berenang bebas menggunakan sepasang
pleopod yang telah mulai berfungsi. Perkembangan larva menuju stadia
ini biasanya memakan waktu 11-14 hari setelah menetas (Gambar 3).
9

Gambar 3. Morfologi larva rajungan stadia megalopa (Arshad et al., 2006)
Perkembangan Organ Pencernaan Larva Rajungan
Pengetahuan mengenai perkembangan organ dan aktivitas enzim
pencernaan selama stadia ontogenesis sangat dibutuhkan dalam
menyusun strategi pemberian pakan (Ong dan Johnston, 2006).
Perkembangan larva berkaitan erat dengan perubahan morfologi dan
fisiologi pencernaan antar tiap stadia. Larva krustasea stadia awal pada
umumnya memiliki saluran pencernaan masih sederhana dan belum
berdiferensiasi. Oleh karena itu secara garis besar larva tersebut belum
mampu menghasilkan enzim yang memadai untuk memecah nutrien
kompleks sehingga menjadi sangat membutuhkan kehadiran enzim
pencernaan dari organisme pakan alami untuk membantu mencerna
makanan (Kumlu, 1999).
Saluran pencernaan kepiting pada stadia zoea dapat dibagi
menjadi 3 bagian yaitu foregut, midgut dan hindgut (Jantrarotai et al.,
2005; Sousa dan Petriella. 2006). Bagian foregut terdiri dari mulut,
esophagus, cardiacstomach dan pyloric stomach. Mulut terletak pada
bagian depan. Esofagus berperan sebagai saluran penghubung antara
mulut dengan cardiacstomach. Cardiacstomach pada zoea berbentuk
seperti kantung dan berperan sebagai ruang untuk menampung makanan
yang masuk dari esophagus. Selanjutnya adalah bagian pyloric stomach
yang dilapisi columnarepithelium sederhana. Gland filter terdapat pada
10

agian ventral pyloric stomach. Tiap bagian Gland filter berbentuk
membujur, pipih dan terdiri dari sebaris setae yang berfungsi menahan
partikel makanan yang kasar dalam proses enzimatis sebelum memasuki
usus.
Jantrarotai et al (2005) menyatakan bahwa bagian midgut pada
zoea terdiri dari usus, midgud caeca bagian depan, midgud caeca bagian
belakang serta kelenjar midgut (hepatopankreas). Usus larva kepiting
berbentuk tabung dan bila diiris secara melintang akan tampak berbentuk
sirkular dan dilapisi columnarepithelium sederhana. Midgud caeca bagian
depan merupakan tempat berlangsungnya pencernaan enzimatis
makanan yang dikirim dari lambung sebelum memasuki usus. Bagian ini
juga mampu berkontribusi mengaktifkan enzim. Selanjutnya adalah
midgud caeca bagian belakang yang berperan dalam transpor ion.
Hepatopankreas dapat ditemukan pada semua stadia zoea dan lokasinya
terdapat pada kedua sisi saluran pencernaan. Bagian hindgut pada larva
berbentuk tabung sederhana yang dimulai dari bagian abdomen hingga
anus dan dilapisi oleh columnarepithelium sederhana.
Berdasarkan kajian histologis, diketahui bahwa organ pencernaan
larva rajungan telah dapat dibedakan secara jelas sejak hari pertama
menetas. Kajian pada larva P.pelagicus dan S.olivacea menunjukkan
hasil yang sejalan dimana perkembangan organ pencernaan mulai
berkembang pesat sejak memasuki stadia zoea-2. Hal ini menjadi indikasi
penting bahwa larva rajungan memerlukan masukan energi yang besar
pada stadia ini untuk mengembangkan organ pencernaannya. Oleh
karena itu suplai pakan alami sangat penting pada stadia ini karena pakan
alami memiliki enzim autolisis yang mampu mensubtitusi kelemahan pada
saluran pencernaan larva (Jantrarotai et al., 2005; Nikhlani, 2013).
Pengamatan pada larva S.serrata menunjukkan sedikit perbedaan
dimana perubahan besar pada saluran pencernaan larva tampak terjadi
11

ketika larva bermetamorfosis dari stadia zoea-3 ke zoea-4. Pada fase ini
terjadi perubahan jumlah segmen abdominal, mulculnya gastric mill serta
fungsi hepatopankreas menjadi lebih optimal (Holme, 2008).
Perkembangan Hepatopankreas penting untuk diamati selama stadia
perkembangan larva mengingat organ ini banyak berperan dalam fungsi
metabolik seperti sintesis dan sekresi enzim pencernaan, absorpsi nutrien
hasil proses pencernaan, metabolisme karbohidrat dan lemak serta
distribusi cadangan nutrien selama siklus intermolt (Cecaldi, 1989).
Perkembangan organ pencernaan terkait erat dengan aktivitas
enzim pencernaan. Aktivitas enzim pencernaan dapat menjadi indikator
kapasitas pencernaan larva (Gawlicka et al., 2000; Pavasovic, 2004).
Aktivitas enzim pencernaan berubah seiring dengan perkembangan
hepatopankreas menuju kesempurnaan (Kamaruddin et al., 1994).Secara
umum peningkatan aktivitas enzim berjalan seiring meningkatnya umur,
namun pada beberapa spesies produksi enzim tertentu dapat menurun
sesuai dengan perubahan kebiasaan makan (Zambonino Infante dan
Cahu, 2001; Serrano dan Traifalgar, 2012). Ketika organ pencernaan
larva telah memasuki fase defenitif, larva telah mampu memproduksi
enzim yang cukup untuk mencerna nutrien dari pakan yang tidak
mengandung enzim (Haryati, 2002).
Manajemen Pakan pada Pembenihan Rajungan
Pertumbuhan larva terkait erat dengan pemenuhan materi dan
energi yang diperoleh dari pakan. Pakan alami menjadi pilihan utama
dalam pemenuhan kebutuhan nutrisi larva stadia awal. Keunggulan pakan
alami dalam pemenuhan kebutuhan nutrisi larva terkait dengan
keberadaan enzim pencernaan eksogen yang dikandungnya. Larva
dengan saluran pencernaannya yang masih kurang berkembang
mendapatkan keuntungan dari keberadaan enzim eksogen, dimana
12

kombinasinya dengan enzim pencernaan endogen secara efisien
meningkatkan kemampuannya mencerna pakan (Soundarapandian et al.,
2007).
Larva rajungan secara umum bersifat karnivora dan perlu diberi
pakan alami zooplankton sejak pertama kali makan (Genodepa et al.,
2004). Larva yang bersifat karnivora memiliki aktivitas enzim pencernaan
yang relatif rendah, tetapi mampu beradaptasi dalam kondisi ini dengan
cara memperpanjang masa retensi pakan berenergi tinggi untuk
memaksimalkan efisiensi asimilasi (Kumlu, 1999; Serrano, 2012). Larva
rajungan stadia awal sangat bergantung pada kontribusi enzim
pencernaan dari pakan alami sehingga pergantian pakan alami secara
total tidak memungkinkan dilakukan pada stadia awal.
Rotifer dan naupli Artemia merupakan jenis pakan alami yang
umum digunakan pada pemeliharaan larva krustasea (Southgate dan
Patridge, 1998; Suprayudi et al., 2002).Pakan alami ini memiliki
keunggulan dibanding pakan buatan terutama dalam hal kemampuannya
menyebar merata ke dalam kolom air. Larva rajungan stadia awal belum
memiliki kemampuan yang baik untuk menangkap mangsa sehingga
persebaran pakan alami yang lebih merata akan memudahkan larva
stadia awal menangkap mangsa secara acak dalam kolom air (Jantrarotai
et al., 2004; Ikhwanuddin et al., 2011).Konsumsi rotifer dan naupli Artemia
berubah seiring pertambahan umur, dimana berdasarkan Penelitian
Ikhwanuddin et al (2011) diketahui bahwa tingkat konsumsi rotifer oleh
larva rajungan (P.pelagicus) semakin berkurang seiring bertambahnya
umur, sedangkan konsumsi naupli Artemia terus meningkat seiring
bertambahnya umur.
Selain pakan alami, larva rajungan juga diberikan pakan buatan
terutama pada stadia zoea lanjutan dan stadia megalopa. Sejauh ini
pergantian pakan alami pada stadia awal pembenihan krustasea hanya
13

erhasil dilakukan pada kelompok udang penaeid. Percobaan pergantian
pakan alami pada larva kepiting dan rajungan telah banyak dilakukan,
namun sejauh ini penelitian menunjukkan bahwa penggunaan pakan
buatan selalu memberi sintasan yang lebih rendah serta laju
metamorfosis yang lebih lama pada larva stadia awal (Quinitio et al.,
1999; Jantrarotai et al., 2004). Hal ini diperkirakan karena larva kepiting
tidak memiliki anterior midgut diverticulae yang berperan sebagai
penghasil enzim pencernaan disaat hepatopankreas belum berkembang
baik (Serrano, 2012; Serrano dan Trafalgar, 2012). Oleh karena itu larva
kepiting dan rajungan pada stadia awal menjadi sangat bergantung pada
kontribusi enzim eksogen dari pakan alami untuk dapat mencerna
makanan.
Percobaan pergantian pakan alami ke pakan buatan telah
dilakukan pada beberapa spesies kepiting dan rajungan. Quinitio et al
(1999) meneliti kemungkinan pergantian pakan alami pada larva
S.serratasejak stadia zoea-1. Hasil penelitian ini menunjukkan bahwa
larva S.serrata tidak mampu bertahan hidup hingga stadia zoea-3 ketika
hanya diberi pakan buatan, walaupun pakan tersebut memiliki komposisi
asam lemak EPA dan DHA yang mirip dengan zoea kepiting bakau.
Sedangkan perlakuan dengan 100% pakan alami tercatat memberikan
sintasan terbaik diantara semua perlakuan. Penelitian lain dilakukan
menggunakan microbound diet (MBD) menunjukkan sintasan serta laju
perkembangan stadia tercepat menuju zoea-4 pada larva S.serrata yang
diberi pakan kombinasi artemia dengan MBD (Holme et al., 2006).
Walaupun demikian hasil ini berbeda dengan penelitian Jantrarotai et al
(2004) pada larva S.olivacea dimana pemberian kombinasi MBD dengan
Artemia maupun Copepoda sejak stadia zoea-1 memberi sintasan
terendah dibanding kombinasi perlakuan lain. Demikian halnya dengan
penelitian Muskita (2006) menggunakan pakan udang komersial pada
14

pemeliharaan larva rajungan (P.pelagicus) menunjukkan bahwa
pemberian pakan buatan 100% pada stadia di bawah zoea-4
menyebabkan larva gagal berkembang hingga stadia crab. Dari beberapa
penelitian ini secara umum terlihat bahwa performa pakan alami masih
lebih unggul daripada pakan buatan dalam mendukung kinerja
pertumbuhan dan sintasan larva kepiting dan rajungan. Oleh sebab itu
maka pakan buatan lebih tepat diberikan bila larva stadia lanjut yang telah
mampu memproduksi enzim memadai untuk memecah nutrien kompleks.
Berdasarkan fakta di atas, satu hal yang dinilai dapat membantu
mengoptimalkan penggunaan pakan buatan adalah dengan melakukan
proses predigestion. Protein merupakan salah satu nutrien yang sangat
dibutuhkan pada fase awal perkembangan larva rajungan, namun protein
yang terdapat pada bahan baku pakan buatan relatif sulit dicerna karena
memiliki struktur ikatan kimia yang kompleks. Melalui proses hidrolisis
enzimatis kandungan protein dalam palan buatan dapat dipecah menjadi
komponen protein sederhana yang lebih mudah larut dalam air. Molekul
polipeptida sederhana lebih mudah untuk dicerna oleh enzim endogen
dalam saluran pencernaan larva serta lebih mudah diserap secara
pinositosis (Kvale et al., 2007). Aplikasi predigestion terhadap kandungan
protein pada pakan buatan telah banyak diuji dan dilaporkan memberi
pengaruh positif terhadap kinerja pertumbuhan dan sintasan pada
berbagai jenis larva ikan (Kolkovski et al., 2000; Kvale et al., 2009;
Srichanun et al., 2014; Khosravi et al., 2015). Walaupun demikian pada
beberapa penelitian juga dilaporkan bahwa pemberian protein yang telah
dipredigest berpengaruh negatif terhadap pertumbuhan dan sintasan
larva yang dipelihara. Hal ini terkait dengan besarnya laju kehilangan
nutrien melalui pelarutan asam-asam amino ke dalam media
pemeliharaan sehingga pemberian pakan buatan predigest menjadi
kurang efektif pada larva yang memiliki laju konsumsi pakan yang lambat.
15

Enzim untuk Pakan
Enzim merupakan protein yang berfungsi sebagai katalis, agen
kimiawi yang mempercepat laju suatu reaksi tetapi tidak ikut bereaksi.
Enzim terdapat pada sel-sel tumbuhan, fungi, bakteri, dan hewan. Ada
beberapa jenis enzim yang umum dikenal yaitu, enzim protease, lipase,
amilase, dan tripsin.
Enzim protease mengacu pada sekelompok enzim yang berfungsi
untuk menghidrolisis protein. Enzim protease juga disebut dengan enzim
proteolitik atau proteinase. Protease menguraikan protein menjadi
molekul yang lebih kecil, dimana setiap enzim protease memiliki
kemampuan berbeda dalam menghidrolisis ikatan peptida. Protein
merupakan salah satu nutrien yang berfungsi sebagai sumber energi bagi
kultivan. Selain itu protein juga berperan dalam pertumbuhan, karena
protein sebagai komponen terbesar dari daging dan berfungsi sebagai
bahan pembentuk jaringan tubuh. Namun, protein merupakan sumber
energi protein yang berasal dari ikan. Disamping itu, pengguna yang
mahal dalam pakan, terutama protein yang tinggi sebagai sumber energi
menyebabkan kelebihan nitrogen akan dibuang dalam bentuk amoniak
melalui sistem. Optimalisasi kadar protein dan meningkatkan kadar
karbohidrat dalam komposisi pakan buatan dapat menurunkan harga
pakan.
Enzim lipase merupakan kelompok enzim yang secara umum
berfungsi dalam hidrolisis triasilgliserol (trigliserida) untuk menghasilkan
asam lemak rantai panjang dan gliserol (Mingrui Yu et al., 2007). Enzim
ini juga digunakan untuk hidrolisis triasilgliserol menjadi diasilgliserol dan
asam lemak bebas. Proses hidrolisis dengan menggunakan enzim lipase,
pada umumnya reaksi beroperasi pada suhu yang relatif rendah yaitu
antara 30-600 C dan tekanan atmosferik, sehingga aman bagi lingkungan
kerja dan tidak memerlukan energi yang cukup besar. Disamping itu,
16

produk yang dihasilkan mempunyai kualitas yang relatif lebih baik
dibandingkan produk sejenis yang dibuat dengan proses kimia atau fisika,
karena relatif tidak terjadi kerusakan akibat pemanasan pada suhu tinggi.
Sebagai biokatalis, enzim memiliki sifat-sifat antara lain dapat aktif dalam
jumlah yang sangat kecil dan aktivitas katalitiknya spesifik. (Sri, 2011).
Enzim amilase merupakan salah satu enzim pencernaan yang
berasal dari getah pankreas. Enzim amilase juga terdapat di dalam
duodenum, namun sumbernya berasal dari pankreas, duodenum
merupakan muara dari getah pankreas [6]. Enzim ini berfungsi untuk
mendegradasi karbohidrat (pati) menjadi monosakarida dalam proses
metabolisme tubuh dan sebagai penghasil energi dalam bentuk ATP.
Penurunan aktivitas enzim pada diet tinggi serat pangan diduga
disebabkan karena adanya pengikatan (interaksi) oleh serat pangan.
Akan tetapi mekanismenya tidak sama seperti halnya inhibitor, diduga
serat pangan hanya berinteraksi dengan enzim, sedangkan enzim
tersebut tetap aktif, namun aktivitasnya menurun (Mahardikaningrum dan
Yuanita 2012).
Tripsin adalah enzim proteolitik yang mempengaruhi kapasitas
pencernaan larva ikan (Casanova et al., 2006 dalam Anugrah 2015).
Tripsin menghidrolisis protein menjadi proteases, pepton, peptides dan
asam amino dalam usus. Enzim ini disintesis di pankreas dalam bentuk
zymogen dan disimpan dalam granul sekretori sebagai tripsinogen. Dalam
usus, enterokinase akan menghilangkan aktivasi peptida N mengubahnya
dalam bentuk aktif menjadi tripsin dan pada akhirnya tripsin yang
dihasilkan akan mengaktifkan semua zymogen yang ada di pankreas
(Chen et al., 2003 dalam Anugrah 2015). Kemotripsin adalah emzim
yang menghidrolisis ikatan peptida. Pada reaksi ini, gugus karboksil
berasal dari asam amino aromati, fenilalanin, tirosin atau triptofan.
17

Menurut Anderson et al. (2004) digestibility (kecernaan) kepiting
pada serat dan semua bahan baku pakan sumber nabati sangat tinggi,
yaitu berkisar 94,4–96,1%. Hal ini mengindikasikan bahwa kepiting
mempunyai kapasitas untuk mencerna serat atau bahan baku pakan
sumber nabati sebagai sumber energi, sehingga memungkinkan untuk
memproduksi pakan buatan yang lebih murah. Dijelaskan pula bahwa
kisaran kadar protein untuk pakan kepiting adalah 34-54%.
Papain merupakan enzim protease yang terdapat pada getah
papaya. Enzim tersebut digunakan untuk pemecahan atau penguraian
yang sempurna ikatan peptida dalam protein sehingga protein terurai
menjadi ikatan peptida yang lebih sederhana karena papain mampu
mengkatalis reaksi-reaksi hidrolisis suatu substrat (Muchtadi et al.,
1992).Penambahan papain dalam pakan mampu meningkatkan deposisi
protein pakan ke dalam tubuh untuk pertumbuhan ikan. Penelitian
mengenai peningkatan pemanfaatan protein pada pakan buatan
menggunakan papain sudah pernah dilakukan sebelumnya untuk gurame.
Hasan (2000) menyatakan bahwa penambahan papain dalam pakan
buatan mampu meningkatkan retensi protein, efisiensi pakan, dan laju
pertumbuhan harian ikan gurame. Papain diharapkan mampu
meningkatkan pemanfaatan protein pada pakan untuk pertumbuhan
kepiting bakau.
B. Definisi Operasional
Enzim endogen: adalah biomolekul berupa protein yang dihasilkan dari
dalam tubuh sendiri dan berfungsi sebagail katalis (senyawa yang
mempercepat proses reaksi tanpa habis bereaksi) dalam suatu
reaksi kimia organik.
Enzim eksogen: adalah biomolekul berupa protein yang ditambahkan
dari luar tubuh dan berfungsi sebagail katalis (senyawa yang
18

mempercepat proses reaksi tanpa habis bereaksi) dalam suatu
reaksi kimia organik.
Hatchery: adalah suatu bangunan yang berfungsi sebagai tempat
memproduksi benih ikan/udang mulai dari pemijahan sampai
menghasilkan larva.
Larva: adalah bentuk muda (juvenile) hewan yang perkembangannya
melalui metamorfosis, seperti pada crustacea/kepiting.
Artemia: adalah sejenis udang-udangan berukuran kecil yang hidup
planktonik di perairan berkadar garam tinggi dan biasa digunakan
sebagai pakan hidup dalam pembenihan ikan/udang.
Pakan alami: adalah pakan hidup yang berasal dari alam, seperti
plankton, kutu air, cacing sutra, jentik nyamuk, dan jasad renik
lainnya.
Pakan buatan: adalah pakan yang dibuat dengan formulasi tertentu
berdasarkan pertimbangan pembuatnya atau berdasarkan
pertimbangan kebutuhan nutrisi hewan ternak yang bersangkutan.
Rotifera: pakan alami berukuran mikroskopis yang umum diberikan pada
larva ikan/udang. Nama ilmiah Brachionus sp.
Rajungan: Kepiting laut yang memiliki ciri khas yaitu capit yang panjang
dengan duri samping yang panjang, jantan berwarna biru dengan
bintik-bintik putih pada karapasnya, sedangkan betina berwarna
hijau kecoklatan.
19

BAB III
METODE PENELITIAN
A. Lokasi dan Waktu
Penelitian ini dilaksanakan dari bulan Juni sampai Oktober di
lokasi pembenihan skala rumah tangga backyard, Desa Bojo
Kecamatan Mallusettasi, Kabupaten Barru.
B. Koleksi dan Penebaran Induk
Induk yang digunakan dalam penelitian ini adalah induk hasil
domestikasi. Induk tersebut dipelihara dalam bak beton berbentuk
silinder hingga kawin dan memijah. Iinduk rajungan yang telah
menggendong telur berwarna hijau kehitaman dengan ukuran 100-
200 gram dimasukkan ke dalam bak penetasan pada sore hari.
Induk tersebut di aklimatisasi dengan kondisi air di backyard
sambil diaerasi. Padat penebaran induk 1ekor per bak dengan
volume air 250 Liter. Biasanya penetasan berlangsung pada dini
hari sekitar jam 02.00 – 03.00. Setelah penetasan, induk
dikeluarkan dari bak dan jumlah zoea dihitung.
C. Pemeliharaan Larva
Larva yang dihasilkan berupa zoea-1 dipelihara dalam bak kerucut
volume 250 L hingga menjadi megalopa dengan kepadatan 50
individu per Liter. Air yang digunakan dalam pemeliharaan larva
diambil perairan pantai Malusettasi, Kabupaten Barru di belakang
hatchery menggunakan pompa. Air laut di lewatkan dalam
saringan pasir untuk kemudian masuk ke dalam tandon berukuran
25 ton. Sebelum digunakan air laut disesuaikan salinitasnya
dengan penambahan air tawar apabila salinitas terlalu tinggi.
Salinitas diatur pada kisaran 30 ppt. Setelah itu, air laut
20

didisinfeksi menggunakan chlorin 50 ppm, kemudian didiamkan
dan diberi aerasi kuat selama 24 jam. Untuk menetralkan larutan
chlorin, ditambhkan natrium thiosulfat (Na 2 S 2 O 3 ) 25 ppm dan
diaerasi kembali selama 24 jam.
Kisaran kualitas air diatur sbb: salinitas 30-31 ppt, Suhu 30-33 o C,
Oksigen 4-6 mL/L, pH 7.8-8.2. Untuk menjaga kualitas air tetap
optimal maka selama pemeliharaan larva dilakukan penggantian
air sebanyak 5% pada stadia Zoea-4, sejak fase megalopa mulai
dilakukan pergantian air sebanyak 20% per hari, dan terus
ditingkatkan jumlahnya hingga mencapai 40% pada fase crab.
Aerasi dilakukan sejak fase zoea 1, namun cukup kecil saja dan
ketika zoea 3 ditingkatkan hingga full ketika memasuki fase crab.
Penting untuk memastikan bahwa suhu dan salinitas air baru
sama dengan air lama.
Setelah memasuki fase megalopa, larva dipindahkan ke bak beton
untuk dilakukan penjarangan. Ke dalam bak pemeliharaan di
letakkan shelter atau lamun buatan untuk meminimalkan
kanibalisme. Lamun buatan ini terbuat dari rangkaian pita plastik
yang digantung pada setiap jarak 0.5 meter. Pada bagian bawah
dipasang pemberat agar tetaknya stabil.
D. Penyiapan dan Pemberian Pakan
Selama pemeliharaan, larva diberi pakan alami dan pakan buatan
(Tabel 1). Pada fase zoea 1, larva di beri pakan rotifer dengan
sedikit pakan buatan. Selama fase awal ini, jumlah rotifera tidak
boleh kurang. Dibutuhkan 5-10 rotifer/mL air pemeliharaan pada
fase zoea1-2 dan ditingkatkan menjadi 10-15 rotifer/mL air ketika
memasuki fase zoea3. Selanjtunya, sejak fase zoea 2, selain
21

diberi rotifer, larva juga diberi nauplii artemia dengan kepadatan 1
- 5 artemia/mL air pemeliharaan. Selain pakan hidup, pemberian
pakan buatan mulai dilakukan sejak zoea 1 dengan jumlah yang
terus ditingkatkan.
Dewi (2015) mengemukakan bahwa jumlah
pemberian pakan buatan terbaik adalah 2,50 ppm untuk Z1; 5 ppm
untuk Z2; 7,50 ppm untuk Z3; dan 10 ppm untuk Z4. Pakan buatan
yang dipergunakan adalah pakan komersil yang biasa digunakan
pada pembenihan udang windu.
Tabel 1. Jadwal pemberian pakan
Jenis pakan
Rotifer (ind/mL) 10-15 10-15
Stadia Larva
Zoea-1 Zoea-2 Zoea-3 Zoea-4 Megalopa Crab
Artemia (ind/mL) 1-2 1-2 3-5 3-5
Pakan Buatan
(ppm) 2.5 5 7.5 10 12.5 5
Rebon cincang
(ppm) 12.5
Penyiapan Rotifer. Sebelum dilakukan penebaran induk, maka
terlebih dahulu pakan rotifer telah disiapkan karena sesaat setelah
menetas, zoea segera diberi rotifer. Prosedur kultur massal rotifer
diawali dengan penumbuhan alga. Alga berupa nanochloropsis,
yakni chlorella air laut ditumbuhkan dalam bak beton dengan cara:
Air laut dimasukkan ke dalam bak, selanjutnya ke dalam air
ditambahkan di pupuk ZA 60 mg/L, TSP 40 mg/L, urea 40 mg/L,
NPK 40 mg/L, dxn 10 mg/L, dan EDTA 10 mg/L serta diaerasi
supaya pupuk dan alga tersebar merata. Setelah 4 hari, bibit rotifer
dimasukkan ke dalam wadah. Dalam waktu 5-7 hari rotifer sudah
dapat dipanen.
22

Penetasan Cyste Artemia. NaupliArtemia diperoleh dari
penetasan kista artemia. Kista diinkubasi dalam wadah penetasan
yang berisi air laut bersalinitas 30 ppt dengan kepadatan 5 g/L air
laut. Wadah yang digunakan untuk penetasan kista Artemia
merupakan wadah plastik berbentuk kerucut berkapasitas 10 L
dan dilengkapi peralatan aerasi. Kista yang menetas menjadi
naupli dipisahkan dari cangkangnya dengan cara mendiamkan
media penetasan dalam keadaan gelap selama 30 menit,
kemudian dipanen dengan cara membuka kran pada bagian
bawah wadah dan ditampung dalam saringan dengan mesh size
no. 120.
Penyiapan pakan buatan berenzim. Pakan buatan yang
digunakan adalah pakan komersial Japonicus 0 (J0) untuk larva
stadia zoea-1 dan zoea-2 dan Japonicus 1 (J1) untuk stadia zoea-
3 dan zoea-4. Komposisi nutrisi pakan buatan yang digunakan
selama penelitian disajikan pada Tabel 2, dirujuk dari Haryati et al
(2014).
Tabel 2. Komposisi nutrisi pakan buatan yang digunakan selama
penelitian
Jenis
Pakan
Japonicus
0
Japonicus
1
Parameter (%)
Air Abu Protein Lemak Serat
Kasar
BETN
8,69 * 12,78 * 41,72 * 8,23 * 1,95 * 26,93 *
8,68 * 13,52 * 40,37 8,56 * 1,31 * 27,26 *
Pakan buatan yang digunakan disemprot dengan larutan enzim
mix. Dosis enzim adalah 2.5 g enzim per 100 gram pakan. Enzim
mix tersebut mengandung Protease 468 IU/g, Lipase 7990 IU/g,
23

Amilase 1421 IU/g, Pepsin 73 IU/g, Tripsin 27 IU/g, Kemotripsi 27
IU/g, Protein 4.7 IU/g, dan Lemak 0.53 IU/g. Caranya, 2.5 g enzim
dilarutkan dalam 3 mL air, selanjutnya larutan enzim disemprotkan
secara merata di atas permukaan pakan dan dihomogenkan.
E. Perlakuan
Ada 2 perlakuan dalam kajian ini adalah pemeliharaan larva
menggunakan pakan buatan berenzim dibandingkan dengan
pakan tanpa enzim.
F. Parameter yang Diukur
Parameter yang diukur dalam penelitian ini adalah Laju pergantian
stadia dan sintasan. Laju pergantian stadi diukur menggunakan
formula yang dikembangkan oleh Ikhwanuddin et al (2012a)
sedangkan identifikasi morfologi larva rajungan dilakukan setiap
hari sesuai dengan kriteria morfologi yang disarankan oleh Arshad
et al (2006) seperti yang tertera pada Tabel 3.
Tabel 3. Kriteria morfologi larva rajungan menurut Arshad et al
(2006)
Stadia Larva
Kriteria Morfologi
Zoea-1 (Z1)
Memiliki mata menempel tanpa tangkai, memiliki
5 segmen abdomen ditambah telson yang
berbentuk menyerupai garpu
Zoea-2 (Z2)
Zoea-3 (Z3)
Memiliki mata yang sudah bertangkai, abdomen
dan telson memiliki tampilan yang sama dengan
zoea-1
Memiliki tangkai mata, terdapat 6 segmen
abdomen, pasangan kuncup pleopod diposisi
ventral posterior pada somit 2-5, bentuk telson
mirip dengan zoea-2
24

Zoea-4 (Z4)
Megalopa (M)
Memiliki tangkai mata, terdapat 6 segmen
abdomen, kuncup pleopod telah berkembang
dengan baik, telson berbentuk seperti stadia
zoea-3 dengan tambahan setae pendek pada
pinggir sebelah dalam
Memiliki bentuk lebih menyerupai crab, karapas
berbentuk membulat menurut panjangnya,
pereipod pertama muncul diujung lengan atas,
abdomen dibagian posterior masih cukup panjang
Crab (C) Memiliki bentuk menyerupai kepiting yang
sesungguhnya dimana abdomen sudah terlipat ke
bawah cepalothoraks
Untuk menghitung nilai IPL, tiap stadia perkembangan larva
diberikan pembobotan seperti yang tertera di Tabel 4.Nilai IPL
ditentukan dengan persamaan:
IPL = G. [(Z0 x n0) + (Z0+1 x n0+1)]
H. N
Dimana Z 0 adalah nilai stadia awal, n 0 adalah jumlah larva stadia
awal, Z 0+1 adalah nilai satu stadia berikutnya, n 0+1 adalah jumlah
larva pada stadia berikutnya dan N adalah jumlah total larva
disampling.
Tabel 4. Pembobotan nilai IPL tiap stadia perkembangan larva
(Ikhwanuddin et al., 2012)
Stadia larva Bobot IPL Kisaran nilai IPL
Zoea-1 (Z1) 1 1 - 1,5
Zoea-2 (Z2) 2 1,6 - 2,5
Zoea-3 (Z3) 3 2,6 - 3,5
Zoea-4 (Z4) 4 3,6 - 4,5
Megalopa (M) 5 4,6 – 5,5
25

Sintasan larva rajungan ditentukan dengan mengamati jumlah
larva yang mati dan yang hidup setiap hari. Sintasan dihitung pada
masing-masing stadia perkembangan larva berdasarkan jumlah
larva yang berhasil bermetamorfosis menuju satu stadia
berikutnya. Rumus yang digunakan untuk menghitung sintasan
yang disarankan Effendie (2002) adalah:
Nx+1
SRx= x 100
No
Dimana SR adalah sintasan pada stadia x(%),N o adalah jumlah
larva yang ditebar pada hari pertama pemeliharaan dan
N x+1 adalah jumlah larva yang hidup pada hari pertama stadia
berikutnya.
Kualitas air diukur sebagai data pendukung. Kualitas air meliputi
oksigen terlarut, suhu dan salinitas dilakukan setiap pagi dan sore
hari. Parameter suhu dan oksigen terlarut diukur menggunakan
DO meter, sedangkan salinitas diukur menggunakan
handrefraktometer.
G. Analisis Data
Data yang terkumpul ditablasi dan dianalisis secara deskriptif
untuk mengetahui cara pemberian pakan predigest terbaik untuk
menunjang keberhasilan pembenihan rajungan. Tingkat kelayakan
usaha pembenihan rajungan dengan aplikasi enzim dianalisis
dengan analisis biaya sederhana.
26

BAB IV
HASIL DAN PEMBAHASAN
A. Produksi Benih Rajungan
Penetasan rajungan telah berhasil dilakukan setelah kurang lebih
8 -9 hari masa inkubasi. Telur-telur yang melekat di bawah abdomen
dan berwarna orange berubah menjadi kehitaman dan menetas
menjadi zoea-1 (Gambar 4). Dihasilkan rata-rata 466.833 ± 118.397
larva zoea 1 per induk berukuran rata-rata lebar karapas 104.1 ± 6.4
mm dan berat 86.1 ± 15.8 gram (Tabel 5).
Induk rajungan yang siap
ditetaskan telurnya
Larva yang baru menetas (zoea 1)
Gambar 4. Induk rajungan dan larva yang baru menetas
Tabel 5. Ukuran induk rajungan dan larva yang dihasilkan
Ukuran Induk
Jumlah Larva
No
PK luar (mm)
Berat (g)
Menetas (ekor)
1 104.3 93.5 583,450
2 97.8 70 408,334
3 104.4 89.4 513,333
4 98.5 75.8 653,450
5 104.1 82.6 548,333
6 102.7 88.3 163,331
7 95.4 62.6 338,333
8 97.1 72.9 420,000
27

9 108 95.9 431,666
10 110.6 97.1 498,273
11 112.9 108.3 420,000
12 107.2 86.6 465,988
13 94.6 60.2 433,333
14 115.4 116.4 540,000
15 108.2 91.2 584,666
Rerata ±
SD
104.1±6.4 86.1±15.8 466,833±118,397
Tidak semua larva yang dihasilkan ditebar untuk dipelihara.
Hanya larva yang memiliki performa baik, seperti berenang dengan
lincah mendekati cahaya yang dipilih untuk dipelihara. Larva terpilih
dipelihara dalam bak kerucut kapasitas 200 L dengan kepadatan 50
zoea per Liter. Hasilnya menunjukkan bahwa terdapat perbedaan
perkembangan antara larva yang mendapatkan pakan yang diperkaya
dengan enzim mix dengan yang tidak menggunakan enzim mix (Tabel
6). Perkembangan larva diikuti dengan metamorfosis dan diawali
dengan molting. Ciri morfologi setiap stadia dapat dilihat pada Gambar
5.
Tabel 6. Indeks perkembangan larva (IPL) harian sebagai respon
terhadap pakan yang diperkaya enzim dengan yang tidak
diperkaya enzim
Dengan enzim
Tanpa Enzim
Hari ke- IPL Stadia ISL Stadia
1 1.0 Z1 1.0 Z1
2 1.0 Z1 1.0 Z1
3 1.9 Z2 1.8 Z2
4 2.0 Z2 2.0 Z2
5 2.3 Z3 2.1 Z2
6 3.0 Z3 2.7 Z3
7 3.6 Z4 3.0 Z4
8 4.0 Z4 3.9 Z4
9 4.0 Z4 4.0 Z4
28

10 4.8 M 4.0 Z4
11 5.0 M 4.3 M
12 5.0 M 5.0 M
13 5.0 M 5.0 M
14 5.3 C 5.0 M
15 6.0 C 5.7 C
16 6.0 C 6.0 C
17 6.0 C 6.0 C
18 6.0 C 6.0 C
29

Gambar 5. Morfologi larva setiap stadia. A. Zoea 1, memiliki mata
menempel tanpa tangkai dengan 5 segmen abdomen
ditambah telson yang berbentuk menyerupai garpu; B Zoea 2,
mata mulai bertangkai; C Zoea 3, tumbuh tonjolan pleopod
pada setiap segmen abdomen; D Zoea 4, pleopod tumbuh
sempurna; E Megalopa; F Crab
30

Tabel 2 menunjukkan bahwa terdapat perbedaan laju pergantian
stadia antara larva yang diberikan pakan buatan berenzim dengan
tanpa enzim. Perbedaan ini mulai terjadi pada Zoea 4. Larva yang
diberi pakan buatan berenzim tampak lebih cepat bermetamorfosis
menuju stadia zoea-4 dimana pada hari ke-7 telah mencapai stadia
zoea-4 dengan nilai IPL 3,6 sedangkan larva yang mendapatkan
pakan buatan tanpa enzim mencapai fase zoea-4 pada hari ke 8.
Larva stadia megalopa mulai ditemukan pada hari ke 10 dan crab
dicapai pada hari ke 14 pada larva yang mendapatkan pakan buatan
berenzim dibanding larva yang mendapatkan pakan tanpa enzim,
masing-masing dicapai sehari setelahnya yaitu pada hari ke 11 dan 15.
Selain memiliki laju perkembangan stadia yang lebih cepat, larva
yang mendapatkan pakan buatan yang mengandung enzim juga
memiliki sintasan yang lebih tinggi (Gambar 6). Hasil pengamatan
menunjukkan bahwa laju kematian tertinggi didapatkan pada
metamorfosis dari Zoea-1 ke Zoea-2 (± 35%) dan Zoea-2 ke Zoea-3.
Namun, pada larva yang mendapatkan pakan berenzim kematian dari
Zoea-2 ke Zoea-3 lebih rendah (± 22.2 %) di banding larva yang tidak
mendapat pakan buatan berenzim (± 35.1 %). Kondisi kepadatan larva
dalam bak kerucut dapat dilihat pada Gambar 7.
31

Gambar 6. Sintasan larva rajungan yang mendapatkan pakan buatan
dengan penambahan enzim dan tanpa enzim
Dibandingkan dengan hasil penelitian sebelumnya yang
dilakukan untuk skala laboratorium, didapatkan bahwa sintasan larva
pada penelitian ini lebih baik. Hal ini diduga, selain karena perlakuan
enzim, peningkatan sinkronisasi berbagai perlakuan terbaik yang telah
didapatkan pada penelitian sebelumnya, seperti frekuensi pemberian
pakan ditingkatkan menjadi 6-8 kali yang sebelumnya hanya 4 kali
demikian pula jumlah pakan buatan ditingkatkan sesuai kebutuhan
larva. Penggantian air juga dilakukan secara hati hati. Salinitas dan
suhu air bau disesuaikan dengan air lama yang akan diganti.
32

pakan buatan dengan enzim
pakan buatan tanpa ezim
Gambar 7.
Foto kondisi kepadatan larva stadia zoea-3 yang
mendapatkan pakan buatan dengan penambahan enzim
dan tanpa penambahan enzim.
Secara keseluruhan. Jumlah crab yang dapat dipanen jauh lebih
tinggi pada perlakuan pemberian pakan dengan penambahan enzim
dibanding tanpa enzim (Gambar 8).
Gambar 8.
Jumlah Megalopa dan Crab berumur 5 hari yang dapat
dipanen per siklus pemeliharan
Hasil kajian ini menunjukkan bahwa penggunaan enzim dalam
pakan buatan memiliki peranan yang sangat baik bagi pembenihan
rajungan secara massal. Hasil penelitian Nurwahidah (2015) menjelaskan
33

ahwa larva kepiting belum memiliki enzim yang sempurna pada awal
perkembangannya sampai memasuki fase Zoea-3. Karenanya,
pemberian pakan buatan dianjurkan dilakukan pada larva berumur Zoea-3
(Kristine, 2016). Penambahan enzim ke dalam pakan buatan diharapkan
akan membantu hidrolisis nutrien sehingga larva dapat menggunakan
energi secara lebih efisien untuk proses pencernaan. Oniam et al., (2012)
mengemukakan bahwa kinerja pertumbuhan larva sangat bergantung
pada kualitas nutrien yang terkandung dalam pakan.
Arshad et al (2006) serta Redzuari et al (2012) yang melaporkan
lama perkembangan larva zoea-1 menuju zoea-2 selama 3-4 hari. Larva
stadia zoea-1 mulai membutuhkan suplai pakan alami ketika memasuki
peralihan endogenous feeding menuju exogenous feeding. Rotifer sangat
baik diberikan pada stadia ini karena ukurannya yang relatif kecil serta
kecepatan renangnya yang lebih lambat sehingga lebih mudah tertangkap
oleh larva (Godfred et al., 1997). Dalam penelitian ini, laju perkembangan
larva lebih cepat yakni hanya rata-rata 2 hari dari Zoea-1 ke Zoea-2,
demikian pula dari Zoea-2 ke Zoea-3. Pemberian pakan buatan sejak
awal pemeliharaan memberikan pengaruh positif dalam perkembangan
larva. Pemberian pakan buatan ini diharapkan membuat larva teradaptasi
dengan pakan buatan sejak pertamakali mengambil pakan secara
eksogen.
Menurut Jantrarotai et al (2005), stadia zoea-2 pada larva
S.olivacea merupakan fase kritis dimana larva sangat memerlukan suplai
energi yang besar untuk kepentingan perkembangan organ pencernaan.
Analisis histologi oleh Nikhlani (2013) menunjukkan bahwa organ-organ
pencernaan larva P.pelagicus khususnya hepatopankreas berkembang
pesat selama stadia zoea-2. Ini menjadi indikasi jelas bahwa larva
rajungan stadia zoea-2 membutuhkan banyak energi untuk
perkembangan organ pencernaan. Karena itu, ketersediaan pakan alami
34

untuk mensuplai enzim eksogen sangat diperlukan. Selain sebagai
sumber enzim, rotifer dan naupli Artemia merupakan sumber berbagai
jenis asam lemak (EPA dan DHA) yang sangat dibutuhkan larva rajungan
dalam metabolism energi serta menjaga struktur membran sel (Suprayudi
et al., 2002).
Hasil penelitian ini menunjukkan bahwa pemberian pakan
buatan yang diperkaya enzim dapat dijadikan salah satu cara untuk
meminimalisir penggunaan pakan alami, meskipun belum sepenuhnya
dapat tergantikan. Selain harga Artemia yang mahal, pengadaan rotifier
juga seringkali mengalami kendala terutama di musim hujan akibat tidak
tersedianya chlorella. Chlorella membutuhkan sinar matahari untuk dapat
hidup dan berkembang secara optimal.
Ketergantungan larva rajungan pada pakan alami dapat
diminimalisir dengan aplikasi pakan predigest. Penelitian sebelumnya
oleh Muskita (2006) mengemukakan bahwa larva rajungan hanya dapat
bertahan hingga stadia megalopa jika diberikan pakan buatan sejak stadia
zoea-4. Sedangkan penelitian ini membuktikan bahwa pergantian pakan
alami dengan pakan predigest pada stadia zoea-2 dan zoea-3 sukses
mengantarkan larva rajungan untuk bermetamorfosis menuju megalopa
walaupun terdapat perbedaan sintasan yang signifikan pada perlakuan B.
Lebih lanjut penelitian ini menunjukkan bahwa eliminasi pakan alami pada
zoea-3 menggunakan pakan predigest tidak menunjukkan perbedaan laju
pergantian stadia serta sintasan yang signifikan terhadap pemeliharaan
menggunakan pakan alami secara penuh (kontrol).
Namun demikian, kematian larva dari stadia zoea-1 hingga zoea-3
masih cukup tinggi. Ada beberapa faktor yang diduga menjadi
penyebabnya. Salah satu yang terpenting adalah suhu air selama
penelitian berkisar antara 25-32°C, Kondisi ini memperlihatkan bahwa
suhu air pada hari pertama sangat rendah hal ini disebabkan oleh hujan.
35

Rendahnya suhu pada hari pertama yang disebabkan hujan
menyebabkan larva menjadi stress hingga mencapai kematian yang
tinggi. Dalam penelitian ini, fluktuasi suhu harian mencapai hingga 3-5°C.
Menurut Boyd (1990), jika suhu tiba-tiba berubah 3-4°C maka dapat
menyebabkan shock bahkan kematian.
B. Analisis Usaha
Berdasarkan perhitungan biaya persiklus produksi selama 18 hari
maka diperoleh nilai B/C ratio sebesar 3.12 (Tabel 7). Perhitungan ini
belum termasuk biaya tenaga kerja, listrik, dan penyusutan peralatan.
Berdasarkan Nilai B/C ratio yang dihasilkan menunjukkan bahwa kegiatan
ini layak untuk dilanjutkan sebagai suatu usaha komersil.
N
o
Tabel 7. Analisis kelayakan usaha pembenihan rajungan
Uraian
Harga satuan
(Rp)
Jumlah
(Rp)
1 Biaya produksi
Indukan bertelur: 3 ekor 20,000 60,000
Rotifera : 2 kantong x 7 hari 15,000 60,000
Cyst Artemia (200 g) 1,400 280,000
Pakan buatan
japonicus 0 (40 gram) 1,000 40,000
japonicus 1 (50 gram) 750 37,500
japonicus 2 (60 gram) 500 30,000
flag (120 gram) 500 50,000
Rebon (500 g) 1,000 3,000
Kaporit: 2 kg 12,000 24,000
obat-obatan (paket) 25,000
enzim (gram) 5,000 5,000
Total Biaya Produksi 614,500
2 Hasil Produksi
SR 3.2% x 120.000 larva = 3840 crab 500 1,920,000
36

3 Keuntungan 1,305,500
4 B/C Ratio = Hasil Produksi/Biaya
Operasional
3.12
37

BAB V
PENUTUP
A. Kesimpulan
Berdasarkan hasil kajian ini, maka dapat disimpulkan sebagai
berikut:
1. Penggunakan enzim pada pakan buatan untuk larva yang
dipelihara secara massal dapat meningkatkan laju pergantian
stadia larva dan meningkatkan sintasan larva rajungan
sebagaimana hasil percobaan skala laboratorium.
2. Pemberian pakan buatan berenzim baik dilakukan sejak fase awal
zoea dan terus ditingkatkan yaitu sebanyak 2,50 ppm untuk Zoea-
1; 5 ppm untuk Zoea-2; 7,50 ppm untuk Zoea-3; dan 10 ppm
untuk Zoea-4.
B. Saran
Disarankan menggunakan pakan buatan yang diperkaya dengan
enzim mix untuk melengkapi dan meminimalisir penggunaan pakan
alami pada pembenihan rajungan secara komersil.
C. Rekomendasi Kebijakan
Direkomendasikan untuk melakukan sosialisasi dan diseminasi
teknologi pembenihan rajungan di hatchery kepada masyarakat
pembudidaya dan stakeholders lainnya. Keberhasilan dalam
pembenihan rajungan akan mampu mendorong budidaya rajungan
secara berkelanjutan.
38

D. Implikasi Kebijakan
Implikasi dari kebijakan yang diuraikan di atas adalah:
1. Meningkatnya pemanfaatan hasil litbang untuk meningkatkan
produksi rajungan.
2. Meningkatnya pendapatan, kesejahteraan, dan kemandirian
pelaku bisnis rajungan.
39

DAFTAR PUSTAKA
Agviranti. 2015. Perbandingan Sintasan Dan Laju Pergantian Stadia
Larva Rajungan (Portunus Pelagicus)Asal Indukdomestikasi Dan
Alam. Skripsi. Fakultas Ilmu Kelautan dan Perikanan Universitas
Hasanuddin. Makassar
Alik W. 2015. Pengaruh Substitusi Pakan Alami Ke Pakan Buatan
Predigest Terhadap Sintasan Dan Laju Pergantian Stadia Larva
Rajungan (Portunus Pelagicus). Skripsi. Fakultas Ilmu Kelautan
dan Perikanan Universitas Hasanuddin. Makassar
Ahmad F. 2015. Sintasan Dan Laju Pergantian Stadia Larva Rajungan
(Portunus Pelagicus) Pada Berbagai Dosis Vitomolt. Skripsi.
Fakultas Ilmu Kelautan dan Perikanan Universitas Hasanuddin.
Makassar
Anderson A, P. Mather & Richardson,2OO4. Nutrition of the mud crab
Scyl/a serata (forskal). ln Ailan & D. Fietder (Ed.). proceeding of
Mud Crab Aquaculture in Australia and Southeast Asia. pp 57-59.
Anugrah. 2015. Buatan Pada Larva Kepiting Bakau (Scylla Olivacea)
Berdasarkan Aktivitas Enzim Pencernaan (Tripsin, Α-Amilase, Dan
Lipase). Universitas Hasanuddin. Makassar
Arshad A., Efrizal., Kamarudin M.S dan Saad C.R. 2006. Study on
fecundity, embryology and larval development of blue swimming
crab Portunus Pelagicus (Linnaeus, 1758) under laboratory
conditions. Research Journal of Fisheries and Hydrobiology
1(1):35-44
Aslamyah, S. 2006. Penggunaan mikroflora saluran pencernaan sebagai
probiotik untuk meningkatkan pertumbuhan dan kelangsungan
hidup ikan bandeng (Chanos chanos Forsskal). Disertasi Sekolah
Pascasarjana. Institut Pertanian Bogor. Bogor
Boyd, C.E. 1990. Water Quality in Pond for Aquaculture. Department of
Fisheries and Allied Aquacultures. Auburn University, Alabama,
USA
Champbell., Neil, A., Jane, B., dan Lawrence, G M., 2002, Biologi edisi
kelima Jilid 1, Erlangga, Jakarta. Herdiastuti dan Nuniek, 2009,
Chitinase and Chitinolitic Microorganism: Isolation,
Characterization and Potential, Indo. J. of Chem, 9(1), 37-47.
40

Ceccaldi H.J. 1989. Anatomy and physiology of digestive tract of
Crustaceans Decapods reared in aquaculture. Actes de Colloque
9:243-259
Conceicao L.E.C., Yufera M., Makridis P., Morais S dan Dinis M.T. 2010.
Live feeds for early stages of fish rearing. Aquaculture Research
41:613-640
Dewi U. 2015. Pengaruh Dosis Pemberian Pakan Buatanpredigest
Terhadap Sintasan Dan Laju Pergantian Stadia Larva Rajungan
(Portunus Pelagicus). Skripsi. Fakultas Ilmu Kelautan dan
Perikanan Universitas Hasanuddin. Makassar
Effendie M.I. 2002. Biologi Perikanan. Yayasan Pustaka Nusantara.
Yogyakarta
Kristine F. 2016. Pengaruh Penggantian Pakan Alami Ke Pakan Buatan
Terhadap Kelangsungan Hidup Dan Pertumbuhan Larva Kepiting
Bakau (Scylla Olivacea) Stadia Zoea. Skripsi. Fakultas Ilmu
Kelautan dan Perikanan Universitas Hasanuddin. Makassar
Fujaya Y., Asphama A l., Hidayani A A., Parenrengi A:, Tenriulo A. 2016.
High Genetic Variation Of Portunus pelagicus From Makassar
Straits Revealed By RAPD Markers And Mitochondrial 16srrna
Sequences. African Journal of Biotechnology, 5(7): 180-190
Gawlicka A., Parent B., Horn M.H., Ross N., Opstad I dan Torrissen O.J.
2000. Activity of digestive enzymes in yolk-sac larvae of atlantic
halibut (Hippoglossus hippoglossus): indication of readiness for
first feeding. Aquaculture 184:303-314
Genodepa J., Southgate P.C dan Zeng C. 2004. Diet particle size
preference and optimal ration for mud crab, Scylla serrata, larvae
fed microbound diets. Aquaculture 230:493-505
Godfred J., Ravi V dan Kannupandi T. 1997. Larval feed preference of the
estuarine edible portunid crab Thalamita arenata (Laterille). Indian
J. Fisheries 44:69-74
Haryati. 2002. Respon larva ikan bandeng (Chanos chanos Forskal)
terhadap pakan buatan dalam sistem pembenihan. Desertasi
Program Pascasarjana. Institut Pertanian Bogor. Bogor
Hasan, O.D.S. 2000. Pengaruh Pemberian Enzim Papain dalam Pakan
Buatan terhadap Pemanfaatan Protein dan Pertumbuhan Benih
Ikan Gurame (Osphronemus gouramy Lac.). Tesis. Institut
Pertanian Bogor, Bogor. 57 hlm.
41

Holme M.H., Zeng C dan Southgate P.C. 2006. Use of microbound diets
for larval culture of the mud crab, Scylla serrata. Aquaculture
257:482-490
Holme M.H. 2008. Towards development of a formulated diet for mud
crab (Scylla serrata) with emphasis on lipid nutrition. PhD Thesis.
James Cook University. Townsville
Ikhwanuddin M., Adila T.N., Azra M.N., Hii Y.S., Talpur A.D dan Abol-
Munafi A.B. 2011. Determination of live prey ingestion capability of
blue swimming crab, Portunus pelagicus (Linnaeus, 1758) larvae.
World Journal of Fish and Marine Sciences 3(6):570-575
Jantrarotai P., Temphakdee P dan Pripanapong S. 2004. Evaluation of
different larval feeds for survival and development of early stage
mud crab (Scylla olivacea). Kasetsart J. (Nat. Sci.) 38:484-492
Jantrarotai P., Srakaew N dan Sawanyatiputi A. 2005. Histological study
on the development of digestive system in zoeal stages of mud
crab (Scylla olivacea). Kasetsart J. (Nat. Sci.) 39: 666 - 671
osileen J dan Menon N.G. 2004. Larval stages of the blue swimmer crab,
Portunus pelagicus (Linnaeus, 1758) (Decapoda, Brachyura).
Crustaceana 77:785–803
Juwana S., Aziz A dan Ruyitno. 2009. Evaluasi potensi ekonomis
pemacuan stok rajungan di perairan Teluk Klabat, Pulau Bangka.
Oseanologi dan Limnologi di Indonesia 35(2):107-128
Kamaruddin M.S., Jones D.A., Le Vay L dan Abidin A.Z. 1994.
Ontogenetic change in digestive enzyme activity during larval
development of Macrobrachium rosenbergii. Aquaculture 123:323-
333
Khosravi S., Bui H.T.D., Rahimnejada S., Herault M., Fournier V., Kim
S.S., Jeong J.B dan Lee K.J. 2015. Dietary supplementation of
marine protein hydrolysates in fish-meal based diets for red sea
bream (Pagrus major) and olive flounder (Paralichthys olivaceus).
Aquaculture 435:371-376
Kolkovski S., Arieli A dan Tandler A. 1997. Visual and chemical cues
stimulate microdiet ingestion in sea bream larvae. Aquaculture
International 5:527-536
Kolkovski S., Czesny S dan Dabrowski K. 2000. Use of krill hydrolysate as
feed attractant forfish larvae and juveniles. J. World Aquacult. Soc.
31:81-88
42

Kumlu M. 1999. Feeding and digestion in larval decapod crustaceans.
Trop. J. Biol. 23:215-229
Kvåle A., Nordgreen S., Tonheim S.K dan Hamre K. 2007. The problem of
meeting dietary protein requirements in intensive aquaculture of
marine fish larvae, with emphasis on Atlantic halibut (Hippoglossus
hippoglossus L.). Aquaculture Nutrition 13:170-185
Kvåle A., Harboe T., Mangor-Jensen A dan Hamre, K. 2009. Effects of
protein hydrolysate in weaning diets for Atlantic cod (Gadus
morhua L.) and Atlantic halibut (Hippoglossus hippoglossus L.).
Aquaculture Nutrition 15:218-227
Lai J.C.Y., Ng P.K.L dan Davie P.J.F. 2010. Revision of the Portunus
pelagicus (Linnaeus, 1758) species complex (Crustacea:
Brachyura: Portunidae), with the recognition of four species. The
Raffles Bulletin of Zoology 58(2):199-237
Mahardikaningrum, S dan Yuanita L., 2012. Aktivitas Enzim Amilase
Rattus Norvegicus Pada Diet Tinggi Serat Pangan : Variasi Ph
Dan Lama Perebusan. Amylase Enzyme Activity Rattus
Norvegicus On A Diet High In Fiber Food: Variation Of Ph And
Boiling Time. UNESA Journal of Chemistry Vol. 1.
Mingrui Yu, Shaowei Qin, & Tanwei Tan. 2007. Purification and
Characterization of the Extracellular Lipase Lip2 from Yarrowia
lipolytica. Process Biochemistry. 42 (384-391).
Muskita W.H. 2006. Pengaruh waktu pemberian pakan buatan terhadap
kelangsungan hidup larva rajungan (Portunus pelagicus):
Hubungannya dengan perkembangan aktivitas enzim pencernaan.
Tesis Sekolah Pascasarjana. Institut Pertanian Bogor. Bogor
Nahdatullah U. 2015. Sintasan Dan Laju Pergantian Stadia Larva –
Kepiting Rajungan (Portunus Pelagicus)Yang Diberikan Berbagai
Formulasi Pakan Buatan. Skripsi. Fakultas Ilmu Kelautan dan
Perikanan Universitas Hasanuddin. Makassar.
Nikhlani A. 2013. Penemuan time schedule pemberian pakan buatan
berfitoecdysteroid untuk menanggulangi sindrom molting pada
metamorphosis larva rajungan (Portunus pelagicus). Disertasi
Program Pascasarjana. Universitas Hasanuddin. Makassar
Nontji A. 2005. Laut Nusantara. Cetakan Kedua. Djambatan. Jakarta
Ong B.L dan Johnston D. 2006. Influence of feeding on hepatopancreas
structure and digestive enzyme activity in Penaeus Monodon.
Journal of Shellfish Research 25(1):113-121
43

Oniam V., Chuchit L dan Arkronrat W. 2012. Reproductive performance
and larval quality of blue swimming crab (Portunus pelagicus)
broodstock, fed with different feeds. Songklanakarin J. Sci.
Technol. 34(4):381-386
Pavasovic M. 2004. Digestive profile and capacity of the mud crab (Scylla
serrata). Magister Thesis. Queensland University of Technology.
Brisbane
Quinitio E.T., Estepa F.P dan Alava V.P. 1999. Development of hatchery
techniques for the mud crab Scylla serrata (Forskål): comparison
of feeding schemes. Dalam: Keenan, C.P dan A. Blackshaw
(Eds.), Mud Crab Aquaculture and Biology. ACIAR Proceedings
No.78. Canberra. Australia. hal:125-130
Quinitio E.T., Parado-Estepa F.D., Millamena O.M., Rodriguez E dan
Borlongan E. 2001. Seed production of mud crab Scylla serrata
juveniles. Asian Fisheries Science 14:161-174
Rimandy O. 2015. Respon Perkembangan Larva Rajungan (Portunus
Pelagicus) Pada Percepatan Pergantian Pakan Alami Ke Pakan
Buatan Predigest Dengan Probiotik Bacillus Sp. Tesis. Program
Pasca Sarjana Universitas Hasanuddin. Makassar.
Serrano A.E. 2012. Ontogeny of endogenous and exogenous amylase
and total protease activities in mud crab, Scylla serrata larvae fed
live food. European Journal of Experimental Biology 2(5):1578-
1584
Serrano A.E dan Traifalgar R.F. 2012. Ontogeny and induction of
digestive enzymes in Scylla serrata larvae fed live or artificial
feeds or their combination. AACL Bioflux 5(3):101-111
Shinkarenko L. 1979. Development of the larval stages of the blue
swimming crab Portunus pelagicus L. (Portunidae : Decapoda :
Crustacea). Aust. J. Mar. Freshwater Res 30:485-503
Smith D.W. 1988. Phytoplankton and catfish culture: a review.
Aquaculture 74:167-189
Soundarapandian P., Tamizhazhagan E dan Samuel N.J. 2007. Seed
production of commercially important blue swimming crab
Portunus pelagicus (Linnaeus). Journal of Fisheries and Aquatic
Science 2(4):302-309
Sousa L dan Petriella A.M. 2006. Morphology and histology of P.
argentinus (Crustacea, Decapoda, Caridea) digestive tract. Biocell
30(2): 287-294
44

Southgate, PC dan GJ. Partridge. 1998. Development of artificial diets for
marine finfish larvae: problems and prospects. Dalam: De Silva, S
(Ed.), Tropical Mariculture. Academic Press. London. UK. hal 151-
170
Sri, W. M., Kholisoh, S. D., Tanti, D. L., Petrissia, E. M. 2011. Produksi,
Karakterisasi, dan Isolasi Lipase dari Aspergillus niger.
Srichanun M., Tantikitti C., Kortner T.M., Krogdahl A dan Chotikachinda
R. 2014. Effects of different protein hydrolysate products and
levels on growth, survival rate and digestive capacity in Asian
seabass (Lates calcarifer Bloch) larvae. Aquaculture 428-429:195-
202
Suprayudi M.A., Takeuchi T dan Hamasaki K. 2002. The effect of N-
3HUFA content in rotifers on the development and survival of mud
crab, Scylla serrata, larvae. Suisanzoshoku 50(2): 205-212
Svane, I dan Hooper, G. 2004. Blue Swimmer Crab (Portunus pelagicus)
Fishery. SARDI Aquatic Sciences Publication No: RD03/0274-2
Zambonino Infante J.L dan Cahu C.L. 2001. Ontogeny of the
gastrointestinal tract of marine fish larvae. Comparative
Biochemistry and Physiology Part C 130:477-487
45

LAMPIRAN
Lampiran 1. Rumah Surya Semi Permanen Tempat Menetaskan Telur
dan Memelihara Larva Rajungan
Lampiran 2. Bak Kerucut Dalam Rumah Surya Tempat Menetaskan
Telur Dan Memelihara Larva Rajungan
46

Lampiran 3. Enzim yang Digunakan Untuk Meningkatkan Daya Cerna
Pakan Oleh Larva
47

Lampiran 4. Pakan Buatan yang Digunakan Untuk Larva
48

Lampiran 5. Artemia yang Digunakan Sebagai Pakan Alami
49

Lampiran 6. Kegiatan Pemeliharaan Larva
Lampiran 7. Kegiatan Monev
50

Lampiran 8.
Kegiatan Monev Kegiatan: Induk Jantan Rajungan
Domestikasi
51

Lampiran 9. Kegiatan Monev: Induk Jantan Rajungan Domestikasi
52

Lampiran 10. Kegiatan Monev: Induk Betina Rajungan Domestikasi
53

Lampiran 11. Larva Rajungan (Zoea)
Lampiran 12. Larva Rajungan (Megalopa)
54

Lampiran 13. Bibit Rajungan (Crab-5) yang Siap Ditebar di Tambak
55