05.05.2013 Views

Ludzka katelicydyna LL-37

Ludzka katelicydyna LL-37

Ludzka katelicydyna LL-37

SHOW MORE
SHOW LESS

You also want an ePaper? Increase the reach of your titles

YUMPU automatically turns print PDFs into web optimized ePapers that Google loves.

Perinatologia, Neonatologia i Ginekologia, tom 5, zeszyt 4, 206-211, 2012<br />

<strong>Ludzka</strong> <strong>katelicydyna</strong> <strong>LL</strong>-<strong>37</strong> – białko przeciwmikrobowe i jego rola<br />

w układzie odporności wrodzonej u noworodków<br />

MALWINA KUŹNIAK, MARTA SZYMANKIEWICZ<br />

Streszczenie<br />

Białka i peptydy przeciwmikrobowe są ważną częścią systemu odporności wrodzonej. Stanowią one pierwszą linię<br />

obrony organizmu przed drobnoustrojami chorobotwórczymi: bakteriami, wirusami i grzybami. Ich obecność stwierdza<br />

się już w okresie prenatalnym w płynie owodniowym oraz mazi płodowej pokrywającej skórę płodu i noworodka.<br />

Częściowo są one pochodzenia matczynego (transport przezłożyskowy), a częściowo są produkowane przez płód i noworodka<br />

w odpowiedzi na stan zapalny błon płodowych. Niniejsza praca skupia się na charakterystyce jednego z białek<br />

antymikrobowych – ludzkiej katelicydyny <strong>LL</strong><strong>37</strong>/hCAP18. Katelicydyna jest magazynowana w formie nieaktywnej<br />

w ziarnistościach leukocytarnych, a jej gen ulega ekspresji w komórkach nabłonkowych, szczególnie w narządach<br />

o dużej powierzchni mającej bezpośredni kontakt ze środowiskiem zewnętrznym (układ oddechowy, przewód pokarmowy).<br />

Oprócz niszczącego działania na komórki mikroorganizmów, posiada ona również właściwości chemotaktyczne<br />

wobec leukocytów, komórek T, mastocytów, indukuje różnicowanie komórek dendrytycznych, supresję apoptozy<br />

neutrofilów, angiogenezę, gojenie ran. Poprzez to jest czynnikiem łączącym odporność wrodzoną i nabytą. Na podstawie<br />

badań przeprowadzonych w populacji noworodków ludzkich stwierdzono, że jest ona białkiem indukowalnym,<br />

produkowanym nawet przez noworodki przedwcześnie urodzone, w odpowiedzi na zakażenie. Konieczne są dalsze<br />

badania, aby określić możliwości stymulowania syntezy katelicydyny i innych białek przeciwmikrobowych w ciążach<br />

zagrożonych porodem przedwczesnym lub ewentualnej podaży egogennych peptydów o właściwościach odpornościowych.<br />

Słowa kluczowe: noworodek, ludzka <strong>katelicydyna</strong>, odporność wrodzona<br />

Układ odpornościowy człowieka składa się z dwóch<br />

podstawowych części: odporności wrodzonej i nabytej.<br />

Odporność wrodzona jest to pierwsza linia obrony organizmu<br />

gospodarza, która zależy od barier anatomicznych<br />

(skóra i błony śluzowe) oraz fizjologicznych (np. niskie pH<br />

skóry i soku żołądkowego, temperatura głęboka ciała),<br />

a także od obecności specyficznych enzymów (lizozym)<br />

i białek przeciwmikrobowych. Mechanizmy odporności<br />

wrodzonej obejmują również niezależną od przeciwciał<br />

fagocytozę czy uwalnianie czynników prozapalnych przez<br />

makrofagi [1].<br />

W skład odporności nabytej wchodzą dwie klasy wyspecjalizowanych<br />

komórek, limfocyty T i B, których działanie<br />

zależy od pierwotnej ekspozycji na antygen.<br />

Ważną częścią wrodzonego układu odpornościowego<br />

są białka i peptydy antymikrobowe (AMPs – antimicrobial<br />

proteins and peptides), które pełnią rolę cząsteczek efektorowych<br />

i służą jako pierwsza, niezależna od pamięci immunologicznej,<br />

linia obrony przed mikroorganizmami<br />

w narządach o dużej powierzchni nabłonka stykającego<br />

się ze środowiskiem zewnętrznym (np. skóra, jelita, drogi<br />

oddechowe). Synteza AMPs ma miejsce w krążących leukocytach,<br />

będącymi głównymi komórkami efektorowymi<br />

wrodzonej odpowiedzi immunologicznej, podlegającymi<br />

wpływowi stresu i aktywacji osi podwzgórze-przysadkanadnercza<br />

[2]. W przypadku dużych powierzchni nabłonkowych<br />

synteza AMPs odbywa się ponadto w komórkach<br />

skóry, przewodu pokarmowego, układu oddechowego<br />

Katedra i Klinika Neonatologii, Uniwersytet Medyczny im. Karola Marcinkowskiego, Poznań<br />

i dróg moczowo-płciowych. Peptydy antymikrobowe mają<br />

działanie niszczące wobec drobnoustrojów, w tym prawdopodobnie<br />

również wobec bakterii opornych na antybiotyki<br />

[3].<br />

Organizm ludzki pozostaje pod wpływem działania<br />

AMPs już w okresie płodowym, jako że cząstki te są obecne<br />

w mazi płodowej i płynie owodniowym. Fakt ten jest<br />

niezwykle istotny szczególnie u noworodków urodzonych<br />

przedwcześnie, u których ryzyko wystąpienia zakażenia<br />

wewnątrzmacicznego jest niezwykle wysokie [4].<br />

Poniższa praca omawia jedno białko spośród zróżnicowanego<br />

spektrum białek i peptydów przeciwmikrobowych:<br />

<strong>LL</strong><strong>37</strong>/ hCAP18 (ludzka <strong>katelicydyna</strong> – human cathelicidin).<br />

Katelicydyna jest białkiem posiadającym region stały<br />

i zmienny. Jest magazynowana w formie nieaktywnej<br />

w ziarnistościach leukocytarnych noszących nazwę wtórnych<br />

lub specyficznych na podstawie nieobecności w nich<br />

mieloperoksydazy (głównie w neutrofilach i makrofagach),<br />

a jej gen ulega ekspresji w różnych komórkach nabłonkowych<br />

[5-7]. Jedyną znaną ludzką katelicydyną jest <strong>LL</strong><strong>37</strong>.<br />

Dojrzały peptyd powstaje z proformy (hCAP18), białka kationowego<br />

o masie cząsteczkowej 18 kDA, przez odcięcie<br />

C-końcowego peptydu przez proteazy serynowe. Wykazuje<br />

aktywność przeciwko szerokiemu spektrum bakterii,<br />

wirusów (m.in. Herpes simplex i HIV ) i grzybów [8, 9].<br />

Oprócz tego wywiera również działanie immunomodulujące<br />

przez wpływ na chemotaksję leukocytów, komórek T,


<strong>Ludzka</strong> <strong>katelicydyna</strong> <strong>LL</strong>-<strong>37</strong> – białko przeciwmikrobowe i jego rola w układzie odporności wrodzonej u noworodków 207<br />

mastocytów, indukcję różnicowania komórek dendrytycznych,<br />

supresję apoptozy neutrofilów, angiogenezę,<br />

gojenie ran. Przez to jest czynnikiem łączącym odporność<br />

wrodzoną i nabytą.Dzięki kationowemu charakterowi tego<br />

peptydu, a także obecności wielu fragmentów hydrofobowych<br />

i zasadowych i α-helikalnej budowie, może on oddziaływać<br />

z ujemnie naładowanymi fragmentami powierzchni<br />

drobnoustrojów i zaburzać ciągłość ich błony komórkowej<br />

poprzez tworzenie w niej porów i zwiększanie<br />

przepuszczalności błony, w efekcie prowadząc do śmierci<br />

komórki patogenu [10]. Ekspresja genu kodującego hCAP18<br />

jest regulowana przez witaminę D, która pobudza ją w<br />

keratynocytach i komórkach nabłonka oskrzeli [11]. Krążąca<br />

we krwi <strong>katelicydyna</strong> prawdopodobnie syntetyzowana<br />

jest w szpiku kostnym, choć dokładne źródło tego peptydu<br />

wciąż nie jest znane [12]. U noworodków pączkowanie<br />

i transport pęcherzyków zawierających hCAP18 z aparatu<br />

Golgiego w neutrofilach mogą być niewystarczające [3].<br />

<strong>LL</strong><strong>37</strong> u noworodków występuje w leukocytach, skórze<br />

[13], drogach oddechowych i jelicie, gdzie jest wskazywane<br />

jako krytyczny czynnik uczestniczący w kolonizacji<br />

przewodu pokarmowego bakteriami komensalnymi.<br />

Zwiększona podatność noworodków na infekcje związana<br />

jest z niedojrzałością układu odpornościowego. W momencie<br />

porodu istnieje niedobór odporności związanej<br />

z limfocytami Th-1, niewystarczająca synteza immunoglobulin<br />

oraz niektórych cytokin [14, 15]. Niedojrzałość układu<br />

odporności wrodzonej, a więc również pewnych czynników<br />

przeciwmikrobowych, przyczynia się do zwiększonej<br />

zachorowalności i śmiertelności w okresie noworodkowym.<br />

Płuca ze względu na ogromną powierzchnię nabłonka<br />

narażoną na kontakt ze środowiskiem zewnętrznym<br />

są drugimi w kolejności wrotami zakażenia dla rozmaitych<br />

patogenów [16].<br />

Katelicydyna <strong>LL</strong><strong>37</strong> ulega ekspresji w nabłonku płucnym<br />

dorosłego człowieka [17]. Nie wiadomo czy jest ona<br />

również produkowana w drogach oddechowych noworodka.<br />

Stwierdzono jednak jej obecność w płynie pokrywającym<br />

nabłonek dróg oddechowych w podobnych ilościach<br />

u noworodków donoszonych i urodzonych przedwcześnie<br />

[18].<br />

Badania nad homologami AMPs u gryzoni z rodziny<br />

myszowatych wskazują, że ich ekspresja wzrasta wraz<br />

z wiekiem ciążowym [19-21]. Z kolei praca Schaller-Bals<br />

i wsp. [18] dowodzi braku związku między stężeniem<br />

AMPs a wiekiem ciążowym u noworodków ludzkich. Pozytywna<br />

korelacja natomiast miała miejsce między stężeniem<br />

badanych białek antymikrobowych w popłuczynach<br />

oskrzelowych a obecnością infekcji systemowych bądź<br />

płucnych. Interesujący jest wzrost AMPs w treści oskrzelowej<br />

w zakażeniach systemowych przy jednoczesnym<br />

braku stanu zapalnego w płucach. Za ten efekt prawdopodobnie<br />

odpowiada systemowa odpowiedź zapalna.<br />

Ponadto stwierdzono, że stężenia białek przeciwmikrobowych<br />

korelują ze sobą, a także z poziomem interleuki-<br />

ny 8 i czynnika martwicy guza (tumor necrosis factor<br />

alpha – TNF-α). Ich wzrost ma miejsce na zasadzie up-regulation<br />

– sprzężenia dodatniego [18]. W badaniach z prowadzeniem<br />

hodowli tkankowej udowodniono wzrost <strong>LL</strong><strong>37</strong><br />

na poziomie peptydu lub transkrypcji po stymulacji IL-1α,<br />

IL-6 i TNF-α [22-24].<br />

Badania Starnera i wsp. [16] skupiły się na ontogenezie,<br />

ekspresji i regulacji m.in. katelicydyny <strong>LL</strong><strong>37</strong> w płucach<br />

noworodka, a ponadto na określeniu spektrum jej przeciwmikrobowej<br />

aktywności w odniesieniu do patogenów najczęściej<br />

stwierdzanych u noworodków. Do tego celu użyto<br />

m.in. eksplantów tkankowych pochodzących od 18-22.<br />

tygodniowych płodów, pierwotnych hodowli tkankowych<br />

nabłonka dróg oddechowych, aspiratów treści tchawiczej<br />

oraz tkanek płucnych uzyskanych na drodze autopsji.<br />

Stwierdzono, że tkanki ze wszystkich badanych okresów<br />

rozwojowych wykazywały ekspresję katelicydyny.<br />

Przekaźnictwo dla <strong>LL</strong><strong>37</strong> stwierdzono jedynie w pierwotnym<br />

eksplancie płuca płodu, ale już nie po 24-godzinnej inkubacji.<br />

Wynika to prawdopodobnie z tego, że <strong>katelicydyna</strong><br />

jest obecna w nabłonku dróg oddechowych i w neutrofilach,<br />

natomiast neutrofile nie przeżywają w hodowli.<br />

Zatem każdy sygnał wykrywany po 24 godzinach hodowli<br />

powinien pochodzić z tkanki płucnej.<br />

Ilość <strong>LL</strong><strong>37</strong> w aspiratach treści tchawiczej nie różniła<br />

się istotnie w próbkach uzyskanych od noworodków donoszonych,<br />

a jedyne zauważalne odchylenie w porównaniu<br />

do pierwotnego pomiaru miało miejsce w 10 dobie<br />

w próbkach pobranych od pacjentów powyżej 28. t.c. Nie<br />

zaobserwowano istotnych różnic między poszczególnymi<br />

grupami pacjentów w obecności IL-1β.<br />

Jeśli chodzi o spektrum działania antymikrobowego,<br />

ludzka <strong>katelicydyna</strong> posiada aktywność bakteriobójczą<br />

zarówno przeciwko bakteriom Gram-dodatnim, jak i Gramujemnym<br />

[16].<br />

<strong>Ludzka</strong> <strong>katelicydyna</strong> jest proteiną specyficzną dla<br />

ziarnistości wtórnych neutrofilów. Praca Misawy i wsp. [3]<br />

wykazała, że ekspresja genu hCAP18 w neutrofilach noworodków<br />

była znacząco mniejsza niż u dorosłych. Jednakże<br />

w przypadku monocytów krwi obwodowej nie stwierdzono<br />

istotnych różnic w ekspresji genu hCAP18 między<br />

noworodkami a dorosłymi. Ekspresja genu katelicydyny w<br />

neutrofilach wzrastała wprost proporcjonalnie do wieku.<br />

Wykazano niską ekspresję w ciągu pierwszych 31 dni życia<br />

oraz wzrost do poziomu podobnego jak u dorosłych po<br />

ukończeniu 1. miesiąca życia, a przed końcem pierwszego<br />

roku życia. Stężenie badanego peptydu w surowicy było<br />

podobne u noworodków i u dorosłych; brakowało korelacji<br />

między stężeniem <strong>LL</strong><strong>37</strong> w surowicy a ekspresją genu<br />

w neutrofilach. Prawdopodobną przyczyną porównywalnego<br />

poziomu katelicydyny w surowicy w tych dwóch<br />

grupach pomimo różnej ekspresji w neutrofilach może być<br />

fakt, że liczba neutrofilów u noworodka jest około trzykrotnie<br />

wyższa niż u osoby dorosłej. Może to też wynikać<br />

z podobnej ekspresji genu i syntezy peptydu w komórkach


208<br />

nabłonka u noworodków i dorosłych. Sugeruje się, że<br />

u noworodków dochodzi do większej rekrutacji neutrofilów<br />

w miejscach zakażenia, aby osiągnąć wystarczające<br />

stężenie <strong>LL</strong><strong>37</strong>.<br />

Doustna podaż 1α-hydroksy-witaminy D3 (1α(OH)D3)<br />

u noworodków z krzywicą przez 4 tygodnie spowodowała<br />

istotne zwiększenie ekspresji genu hCAP18 w neutrofilach<br />

w porównaniu ze zdrowymi pacjentami z grupy kontrolnej<br />

nie przyjmującej witaminy D3. Wzrost ten był zależny od<br />

czasu, który upłynął od podania witaminy D3. Wskazuje to<br />

na potencjał witaminy D3 jako regulatora wrodzonej odpowiedzi<br />

immunologicznej u noworodków. Indukcja ekspresji<br />

genu <strong>LL</strong><strong>37</strong> w neutrofilach pacjentów z krzywicą po<br />

podaniu 1α(OH)D3 to efekt bezpośredniego działania farmaceutycznego,<br />

ale nie fizjologicznego, stężenia tej witaminy<br />

na myeloidalne komórki progenitorowe. Zawartość<br />

katelicydyny w neutrofilach noworodków z krzywicą, którzy<br />

posiadali więcej niż 50% neutrofilów z <strong>LL</strong><strong>37</strong>, nie ulegała<br />

istotnemu zwiększeniu po podaniu witaminy D3. Te dane<br />

sugerują bardziej efektywne działanie 1α(OH)D3 na noworodki<br />

z niedojrzałymi neutrofilami [3].<br />

Byfield i wsp.[25] w swojej pracy opisali wpływ <strong>LL</strong><strong>37</strong><br />

na właściwości komórek nabłonka płucnego po zainfekowaniu<br />

ich Pseudomonas aeruginosa. Stwierdzili oni zależny<br />

od stężenia katelicydyny wzrost sztywności komórek<br />

nabłonkowych oraz zmniejszenie przepuszczalności<br />

błon komórkowych.<br />

Jak wspomniano we wstępie, białka i peptydy antymikrobowe<br />

obecne są w płynie owodniowym i mazi płodowej.<br />

Maź płodowa jest substancją białkowo-lipidową, unikalną<br />

dla ludzi, która jest produkowana przez płodowe<br />

gruczoły łojowe w trzecim trymestrze ciąży [26, 27]. AMPs<br />

są skoncentrowane w niezależnych, zorganizowanych, celularnych<br />

ziarnistościach zlokalizowanych w lipidowej macierzy.<br />

Wpływ ochronny na płód maź płodowa wywiera<br />

poprzez swoją strategiczną lokalizację pomiędzy skórą<br />

płodu a płynem owodniowym. Ponadto pod wpływem surfaktantu<br />

płucnego ulega ona oddzielaniu od skóry, a następnie<br />

jest połykana przez płód, skąd bierze się jej działanie<br />

ochronne na przewód pokarmowy [28]. Udowodniono,<br />

że <strong>katelicydyna</strong> <strong>LL</strong><strong>37</strong> jest obecna w mazi płodowej<br />

w zdrowych, donoszonych ciążach. Prawdopodobnie nie<br />

występuje ona w wysokich stężeniach przy braku infekcji,<br />

natomiast stan zapalny indukuje jej syntezę i uwalnianie.<br />

Tollin i wsp. [29] udowodnili, że lipidy mazi płodowej<br />

wzmacniają antymikrobową aktywność <strong>LL</strong><strong>37</strong> w warunkach<br />

in vitro, co wskazuje na istnienie interakcji między lipidami<br />

i AMPs zawartymi w mazi płodowej.<br />

Na stężenie <strong>LL</strong><strong>37</strong> w surowicy krwi pępowinowej<br />

wpływ ma prawdopodobnie sposób porodu. Badanie przeprowadzone<br />

przez Havelkę i wsp. [30] wykazało, że po<br />

porodzie siłami natury stężenie <strong>LL</strong><strong>37</strong> we krwi pobranej ze<br />

sznura pępowinowego jest trzykrotnie wyższe niż po<br />

cięciu cesarskim. Inna była również lokalizacja wewnątrzkomórkowa<br />

katelicydyny w zależności od sposobu poro-<br />

M. Kuźniak, M. Szymankiewicz<br />

du. Po porodzie siłami natury neutrofile zawierały 10 razy<br />

więcej wolnej <strong>LL</strong><strong>37</strong> w cytoplazmie (możliwy objaw aktywacji<br />

komórkowej), podczas gdy po porodzie cięciem<br />

cesarskim przeważała lokalizacja w ziarnistościach cytoplazmatycznych.<br />

Liczba leukocytów zarówno we krwi pępowinowej,<br />

jak i matczynej, była wyższa po porodzie<br />

naturalnym w porównaniu z cięciem cesarskim. Dodatkowo<br />

zaobserwowano wysoce istotną korelację między stężeniem<br />

katelicydyny we krwi matki i we krwi pępowinowej,<br />

niezależnie od drogi porodu. Najprawdopodobniej odzwierciedla<br />

to transport przezłożyskowy tego peptydu podczas<br />

późnej ciąży i porodu. Po porodzie cięciem cesarskim w<br />

surowicy matczynej stwierdzano wyższy poziom <strong>LL</strong><strong>37</strong> niż<br />

w surowicy krwi pępowinowej, z niskim gradientem stężeń<br />

<strong>LL</strong><strong>37</strong> między matką a noworodkiem. Zależności tej nie obserwowano<br />

po porodzie drogami i siłami natury. Przemawia<br />

to za transportem biernym tego peptydu. Nie można<br />

jednak wykluczyć współistnienia transportu aktywnego.<br />

We krwi pępowinowej stwierdzono trzykrotny wzrost<br />

stężenia hCAP18 po porodzie siłami natury w porównaniu<br />

z cięciem cesarskiem, co wskazuje na uwalnianie peptydu<br />

przez płód w odpowiedzi na stres. Wzrost IL-8 podczas<br />

porodu może być czynnikiem indukującym degranulację<br />

i mobilizację katelicydyny [2, 31].<br />

Synteza AMPs odbywa się w krążących leukocytach,<br />

których liczba podlega wpływowi stresu i aktywacji osi podwzgórze-przysadka-nadnercza<br />

[2]. Jako wykładniki stresu w<br />

badaniu Havelki i wsp. [30] wzięto pod uwagę pH krwi z tętnicy<br />

pępowinowej, stężenie glukozy i mleczanów. Wyniki<br />

były następujące: pH krwi pępowinowej uzyskanej z tętnicy<br />

było niższe po porodzie naturalnym, a stężenia glukozy<br />

i mleczanów we krwi pępowinowej i matczynej – wyższe.<br />

W powyższym badaniu występowały bardzo istotne<br />

różnice stężeń <strong>LL</strong><strong>37</strong> w osoczu pomiędzy poszczególnymi<br />

pacjentami – do 400 razy. Może to świadczyć o osobniczej<br />

różnicy w ekspresji genów. Niskie stężenia katelicydyny<br />

opisywano u pacjentów z chorobami nerek, u których<br />

stwierdzano również wyższą podatność na infekcje. Ponieważ<br />

wykazano związek pomiędzy matczynym i stwierdzanym<br />

u noworodka stężeniem <strong>LL</strong><strong>37</strong>, prowadzi to do wniosku,<br />

że czynniki powodujące obniżenie stężenia tego peptydu<br />

u ciężarnej powinny stanowić przedmiot przyszłych<br />

badań. Ma to szczególne znaczenie w przypadku immunoniekompetentnych<br />

noworodków urodzonych przedwcześnie,<br />

jako że w innych badaniach wykazano między innymi,<br />

że <strong>LL</strong><strong>37</strong> hamuje wzrost Staphylococcus epidermidis, będącego<br />

główną przyczyną sepsy u wcześniaków [13]. Zatem<br />

wyższe stężenie tego peptydu, tak pochodzenia matczynego,<br />

jak i na skutek stymulacji stresowej związanej z porodem<br />

naturalnym, może być efektywne w ochronie przed<br />

zakażeniem.<br />

Jak wspomniano wyżej, witamina D odgrywa rolę regulatora<br />

ekspresji genu hCAP18. W cytowanym badaniu<br />

jednakże nie stwierdzono korelacji między stężeniem <strong>LL</strong><strong>37</strong><br />

i 25(OH)D ani u matek, ani u noworodków [30].


<strong>Ludzka</strong> <strong>katelicydyna</strong> <strong>LL</strong>-<strong>37</strong> – białko przeciwmikrobowe i jego rola w układzie odporności wrodzonej u noworodków 209<br />

Wewnątrzmacicznie jelito płodu wypełnione jest jałowym<br />

płynem owodniowym. W momencie porodu dochodzi<br />

do masywnej kolonizacji bakteryjnej przewodu pokarmowego<br />

noworodka. Mimo tego i mimo jeszcze nie<br />

rozwiniętej nabytej odpowiedzi immunologicznej, rzadko<br />

dochodzi na tym tle do zakażenia u noworodka, co sugeruje<br />

istnienie silnych wrodzonych mechanizmów obronnych<br />

[32]. Praca dowodząca, że już w jelicie płodu dochodzi<br />

do produkcji AMPs, co przygotowuje przewód pokarmowy<br />

noworodka do kolonizacji bakteryjnej, została<br />

opublikowana przez Larsena i wsp. [33]. W pracy tej porównywano<br />

zawartość białek antymikrobowych, w tym<br />

ludzkiej katelicydyny, w smółce i stolcu noworodków<br />

w próbkach pobranych między 3. a 8. dobą życia, a także<br />

spektrum ich aktywności przeciw drobnoustrojom. Obecność<br />

<strong>LL</strong><strong>37</strong> stwierdzono zarówno w smółce, jak i w stolcu,<br />

ze znacząco wyższą zawartością w stolcu. Aby potwierdzić,<br />

że peptydy przeciwmikrobowe są pochodzenia płodowego,<br />

kiedy to w warunkach prawidłowych nie stwierdza<br />

się obecności drobnoustrojów, próbki smółki pobierano<br />

od noworodków urodzonych drogą elektywnego<br />

cięcia cesarskiego, bez wcześniejszej czynności porodowej.<br />

Ekstrakt smółki wykazywał silną aktywność niszczącą<br />

wobec Bacillus megaterium, Escherichia coli i paciorkowcom<br />

grupy B, ale nie przeciw Candida albicans.<br />

Z kolei AMPs zawarte w stolcu posiadały niską aktywność<br />

przeciw E. coli, GBS i C. albicans, natomiast wyższą przeciw<br />

B.megaterium. Jest to związane z kolejnością kolonizowania<br />

jelit noworodka przez bakterie. Jako pierwsze kolonizują<br />

przewód pokarmowy bakterie tlenowe Escherichia<br />

coli i Streptococci, a następnie bakterie beztlenowe,<br />

np. Bacteroides, Bifidobacteria i Clostridia. Prowadzi to do<br />

wniosku, że AMPs zawarte w smółce pełnią ochronną rolę<br />

w jelicie noworodka i regulują proces kolonizacji bakteryjnej<br />

podczas przejścia z jałowego środowiska wewnątrzmacicznego<br />

do środowiska zewnętrznego. Ponieważ peptydy<br />

zawarte w stolcu wykazują znacznie większą aktywność<br />

przeciwko B. megaterium, dowodzi to, że ich produkcja<br />

jest indukowana przez kontakt z patogenami [33].<br />

Skóra ludzka jest efektywną barierą przeciwko bakteriom,<br />

a właściwość tę częściowo zawdzięcza obecności<br />

peptydów antymikrobowych, w tym katelicydyny <strong>LL</strong><strong>37</strong>.<br />

Bakterie Gram-dodatnie są częstymi patogenami u noworodków,<br />

które atakują organizm właśnie przez skórę. Na<br />

powierzchni tych bakterii stwierdzono obecność włosowatych<br />

struktur zapewniających właściwości adhezyjne<br />

do komórek gospodarza. Staphylococcus epidermidis jest<br />

bakterią, która stanowi temat pracy Nelsona i wsp. [13].<br />

Wykazali oni, że <strong>LL</strong><strong>37</strong>, która jest obecna w barierze naskórkowej<br />

noworodka, istotnie hamuje wzrost S. epidermidis.<br />

Publikacja Marchini i wsp. [34] potwierdziła, że noworodek<br />

wyposażony jest w system ochrony przeciwmikrobowej<br />

skóry, który jest czymś znacznie więcej niż tylko<br />

barierą mechaniczną. Jest on aktywny już przed porodem<br />

(obecność peptydów antymikrobowych w mazi płodowej<br />

w efektywnych stężeniach) i ulega wzmocnieniu podczas<br />

pierwszych dni po urodzeniu w przebiegu ostrej komórkowej<br />

reakcji zapalnej skóry, znanej jako rumień toksyczny.<br />

Badacze w bioptatach skóry noworodków z erytema<br />

toxicum stwierdzili obecność gęstych, guzowatych nacieków<br />

z licznych komórek wykazujących ekspresję <strong>LL</strong><strong>37</strong><br />

w skórze właściwej. Jako te komórki zidentyfikowano neutrofile,<br />

eozynofile i komórki dendrytyczne. Ponadto obecność<br />

katelicydyny stwierdzono w komórkach Langerhansa<br />

oraz w całej warstwie naskórka noworodków zarówno<br />

z rumieniem toksycznym, jak i bez wysypki. Sugeruje to<br />

konstytutywną ekspresję <strong>LL</strong><strong>37</strong> w tych typach komórek<br />

oraz indukowalność ekspresji w miejscach stanu zapalnego.<br />

Podobną indukcję obserwuje się u dorosłych w keratynocytach<br />

podczas zakażenia. Jako że peptydy przeciwmikrobowe<br />

wykazują również aktywność chemotaktyczną,<br />

wraz z lokalnym wzrostem IL-8 i eotaksyny, mogą przyczyniać<br />

się do napływu neutrofilów, eozynofilów i komórek<br />

dendrytycznych do skóry w reakcji na zapalenie.<br />

<strong>Ludzka</strong> <strong>katelicydyna</strong> posiada również właściwości<br />

antymikrobowe skierowane przeciwko grzybom. Jej działania<br />

polegającego na hamowaniu wzrostu drożdżaków Candida<br />

albicans dowodzi praca Wonga i wsp. [10]. Badacze<br />

dodawali do hodowli grzybów C. albicans <strong>LL</strong><strong>37</strong> lub jej<br />

fragmenty <strong>LL</strong>13-<strong>37</strong> i <strong>LL</strong>17-32, a następnie poddawali inkubacji<br />

przez 24 godziny. Komórki niepoddawane leczeniu<br />

służyły jako kontrola. Stwierdzono, że zarówno <strong>LL</strong><strong>37</strong>, jak<br />

i jej fragmenty, wykazują podobny potencjał hamujący<br />

wzrost strzępków C. albicans. W kontroli strzępki posiadały<br />

jednorodną grubość. Natomiast po leczeniu <strong>LL</strong>13-<strong>37</strong>,<br />

strzępki oceniono jako cieńsze, a pączkowanie jako słabsze,<br />

w następstwie czego obserwowano śmierć komórek.<br />

Po zastosowaniu wyższego stężenia <strong>LL</strong>13-<strong>37</strong> (50 μM) nieobecna<br />

była forma strzępków, a jedynie forma okrągłokomórkowa.<br />

Już w niskim stężeniu (5 μM) <strong>LL</strong>13-<strong>37</strong> była<br />

zdolna do zwiększania przepuszczalności błony komórkowej<br />

C. albicans niezależnie od postaci komórki. Dzięki<br />

temu stwierdzono obecność tego fragmentu katelicydyny<br />

w części (choć nie we wszystkich) strzępków C. albicans.<br />

Ponadto w komórkach drożdży poddanych leczeniu <strong>LL</strong>13-<br />

<strong>37</strong> stwierdzono reaktywne formy tlenowe o właściwościach<br />

grzybobójczych. Wolne rodniki tlenowe uszkadzają<br />

różnorodne cząsteczki wewnątrz komórki, w tym kwasy<br />

nukleinowe, białka i lipidy. Dodatkowo <strong>LL</strong>13-<strong>37</strong> uszkadzają<br />

błony mitochondrialne.<br />

Podsumowując, mechanizm przeciwgrzybiczego działania<br />

katelicydyny obejmuje zwiększenie przepuszczalności<br />

błony komórkowej C. albicans oraz indukcję wolnych<br />

rodników tlenowych. Zmiana przepuszczalności błony<br />

drożdży skutkuje zwiększonym wychwytem <strong>LL</strong>13-<strong>37</strong>,<br />

która może posiadać cele wewnątrz komórki, prawdopodobnie<br />

wykazując zdolność do wiązania się z kwasem<br />

nukleinowym. Rośnie liczba dowodów, iż te interakcje mogą<br />

wpływać na transport, właściwości immunomodulujące


210<br />

i antymikrobowe [35]. Lande i wsp. [36] udowodnili, że<br />

dzięki wiązaniu z <strong>LL</strong><strong>37</strong>, DNA może tworzyć agregaty, które<br />

mogą przemieszczać się do komórek dendrytycznych,<br />

gdzie wzmagają produkcję interferonu.<br />

Obecność klinicznych lub bakteriologicznych wykładników<br />

przewlekłego zapalenia błon płodowych stwierdza<br />

się w ponad 50% ciąż zakończonych przed 30. tygodniem<br />

ich trwania [<strong>37</strong>]. Chorioamnionitis jest wymieniane jako<br />

jeden z czynników w patogenezie przewlekłej choroby<br />

płuc, leukomalacji okołokomorowej i mózgowego porażenia<br />

dziecięcego [38, 39]. Lepsze poznanie i zrozumienie<br />

endogennych mechanizmów obrony w środowisku płynu<br />

owodniowego może wpłynąć na rozwinięcie metod zapobiegania<br />

i leczenia zapalenia błon płodowych, a przez to<br />

zmniejszenie liczby porodów przedwczesnych czy polepszenie<br />

stanu i rokowania u noworodków przedwcześnie<br />

urodzonych. Potencjalnie możliwe staje się wykorzystanie<br />

bioaktywnych peptydów w leczeniu chorioamnionitis oraz<br />

zakażeń okresu noworodkowego. Celem takiej terapii byłaby<br />

poprawa immunokompetencji płodu we wczesnej ciąży<br />

oraz przedwcześnie urodzonego noworodka, co prowadziłoby<br />

do lepszych wyników długoterminowych.<br />

Mniejsza zawartość hCAP18 w neutrofilach noworodków<br />

w porównaniu z dorosłymi powoduje jej słabsze działanie<br />

w miejscu stanu zapalnego, obniżoną aktywność przeciw<br />

patogenom oraz podatność na infekcje bakteryjne [3].<br />

Ponieważ <strong>LL</strong><strong>37</strong> u noworodka jest zarówno pochodzenia<br />

matczynego (transfer przezłożyskowy), jak i płodowego<br />

(stres porodowy), wraz z przezłożyskowym transportem<br />

immunoglobulin może się ona przyczyniać do zwiększenia<br />

ochrony noworodka przeciw drobnoustrojom w okresie<br />

adaptacji pourodzeniowej [30].<br />

Rozwój nowoczesnych metod terapeutycznych lekoopornych<br />

infekcji bakteryjnych jest naglącym problemem.<br />

Wrodzony układ odpornościowy człowieka jest naturalnym<br />

mechanizmem ochronnym przeciwko inwazji patogenów.<br />

Białka antymikrobowe odgrywają ważną rolę w tym<br />

systemie. Niektóre z tych peptydów są stosowane komercyjnie<br />

jako naturalnie antybiotyki [40, 41]. Podawanie<br />

egzogennych peptydów antymikrobowych lub zwiększanie<br />

ich stężenia na zasadzie dodatniego sprzężenia (np. upregulation<br />

katelicydyny przez podawanie witaminy D<br />

u noworodków) może być skuteczne w profilaktyce lub leczeniu<br />

ciężkich infekcji bakteryjnych w wieku noworodkowym.<br />

Przydatny może się także okazać skryning dzieci<br />

w kierunku niskiej ekspresji genu hCAP18 w celu określenia<br />

pacjentów z wysokim ryzykiem zakażenia, będących<br />

kandydatami do terapii naturalnymi antybiotykami [3].<br />

Piśmiennictwo<br />

[1] Medzhitov R., Janeway C. Jr. (2000) Innate immunity. N. Engl.<br />

J. Med. 343: 338-44.<br />

[2] Yektaei-Karin E., Moshfegh A., Lundahl J. et al. (2007) The<br />

stress of birth enhances in vitro spontaneous and IL-8 induced<br />

neutrophil chemotaxis in the human newborn. Pediatr.<br />

Allergy Immunol. 18: 643-51.<br />

M. Kuźniak, M. Szymankiewicz<br />

[3] Misawa Y., Baba A., Ito S. et al. (2009) Vitamin D3 induces<br />

antimicrobial peptide 18 expression of human cathelicidin<br />

in newborns. Int. J. Hematol. 90: 561-570.<br />

[4] Raba G., Kotarski J. (2010) Evaluation of selected morphological<br />

markers of inflammation in afterbirth from idiopathic<br />

premature labors. Ginekol. Pol. 81(6): 435-40.<br />

[5] Cowland J.B., Johnsen A.H, Borregaard N. (1995) hCAP-18,<br />

a cathelin/pro-bactenecin-likeprotein of human neutrophil<br />

specific granules. FEBS Lett. 368: 173-6.<br />

[6] Borregaard N., Sorensen O.E., Theilgaard-Monch K. (2007)<br />

Neutrophil granules: a library of innate immunity proteins.<br />

Trends Immunol. 28: 340-5.<br />

[7] Sorensen O., Arnljots K., Cowland J.B. et al. (1997) The human<br />

antibacterial cathelicidin, hCAP-18, is synthesized in<br />

myelocytes and metamyelocytes and localized to specific<br />

granules in neutrophiles. Blood 90: 2796-803.<br />

[8] Gordon Y.J., Huang L.C., Romanowski E.G. et al. (2005) Human<br />

cathelicidin (<strong>LL</strong>-<strong>37</strong>), a multifunctional peptide, is expressed<br />

by ocular surface epithelia and has potent antibacterial<br />

and antiviral activity. Curr. Eye Res. 30: 385-94.<br />

[9] Bergman P., Walter-Jallow L., Broliden K. et al. (2007) The<br />

antimicrobial peptide <strong>LL</strong>-<strong>37</strong> inhibits HIV-1 replication. Curr.<br />

HIV Res. 5: 410-5.<br />

[10] Wong J.H., Ng T.B., Legowska A. et al. (2011) Antifungal action<br />

of human cathelicidin fragment (<strong>LL</strong>13-<strong>37</strong>) on Candida albicans.<br />

Peptides 32: 1996-2002.<br />

[11] Yim S., Dhawan P., Ragunath C. et al. (2007) Induction of cathelicidin<br />

in normal and CF bronchial epithelial cells by 1,25dihydroxyvitaminD(3).<br />

J. Cyst. Fibros. 6: 403-10.<br />

[12] Sorensen O., Cowland J.B., Askaa J. et al. (1997) An ELISA<br />

for hCAP-18, the cathelicidin present in human neutrophils<br />

and plasma. J. Immunol. Methods 206: 53-9.<br />

[13] Nelson A., Hultenby K., Hell E. et al. (2009) Staphylococcus<br />

epidermidis isolated from newborn infants express pilus-like<br />

structures and are inhibited by the cathelicidin-derived antimicrobial<br />

peptide <strong>LL</strong><strong>37</strong>. Pediatr. Res. 66: 174-8.<br />

[14] Langrish C.L., Buddle J.C., Thrasher A.J. et al. (2002) Neonatal<br />

dendritic cells are intrinsically biased against Th-1 immune<br />

responses. Clin. Exp. Immunol. 128: 118-23.<br />

[15] Suen Y., Lee S.M., Qian J. et al. (1998) Dysregulation of lymphokine<br />

production in the neonate and its impact on neonatal<br />

cell mediated immunity. Vaccine 16: 1369-77.<br />

[16] Starner T.D., Agerberth B., Gudmundsson G.H. et al. (2005)<br />

Expression and activity of b-defensins and <strong>LL</strong>-<strong>37</strong> in the developing<br />

human lung. J. Immunol. 174: 1608-15.<br />

[17] Bals R., Wang X., Zasloff M. et al. (1998) The peptide antibiotic<br />

<strong>LL</strong>-<strong>37</strong>/hCAP-18 is expressed in epithelia of the human<br />

lung where it has broad antimicrobial activity at the airway<br />

surface. Proc. Natl. Acad. Sci. 95: 9541-6.<br />

[18] Schaller-Bals S., Schulze A., Bals R. (2002) Increased levels<br />

of antimicrobial peptides in tracheal aspirates of newborn<br />

infants during infection. Am. J. Respir. Crit. Care Med. 165:<br />

992-5.<br />

[19] Bals R., Goldman M.J., Wilson J.M. (1998) Mouse b-defensin<br />

1 is a salt sensitive antimicrobial peptide present in epithelia<br />

of the lung and urogenital tract. Infect. Immunol. 66:<br />

1225-32.<br />

[20] Morrison G.M., Davidson D.J., Kilanowski F.M. et al. (1998)<br />

Mouse b-defensin 1 is a functional homolog of human b-defensin<br />

1. Mamm Genome 9: 453-7.<br />

[21] Huttner K.M., Kozak C.A., Bevins C.L. (1997) The mouse genome<br />

encodes a single homolog of the antimicrobial peptide<br />

human b-defensin 1. FEBS Lett. 413: 45-9.<br />

[22] Harder J., Meyer-Hoffert U., Teran L.M. et al. (2000) Mucoid<br />

Pseudomonas aeruginosa, TNF-alpha, and IL-1$, but not IL-6,<br />

induce human b-defensin-2 in respiratory epithelia. Am. J.<br />

Respir. Cell Mol. Biol. 22: 714-21.


<strong>Ludzka</strong> <strong>katelicydyna</strong> <strong>LL</strong>-<strong>37</strong> – białko przeciwmikrobowe i jego rola w układzie odporności wrodzonej u noworodków 211<br />

[23] O’Neil D.A., Porter E.M., Elewaut D. et al. (1999) Expression<br />

and regulation of the human b-defensins hBD-1 and hBD-2 in<br />

intestinal epithelium. J. Immunol. 163: 6718-24.<br />

[24] Agerberth B., Wigzell H., Gudmundsson G.H. (2000) The human<br />

antimicrobial and chemotactic peptides <strong>LL</strong>-<strong>37</strong> and a-defensins<br />

are expressed by specific lymphocyte and monocyte<br />

populations. Blood 96: 3086-93.<br />

[25] Byfield F.J., Kowalski M., Cruz K. et al. (2011) Cathelicidin <strong>LL</strong>-<br />

<strong>37</strong> increases lung epithelial cell stiffness, decreases transepithelial<br />

permeability, and prevents epithelial invasion by Pseudomonas<br />

aeruginosa. J. Immunol. 187(12): 6402-9.<br />

[26] Pickens W.L., Warner R.R., Boissy Y.L. et al. (2000) Characterization<br />

of human vernix: water content, morphology and<br />

elemental analysis. J. Investig. Dermatol. 115: 875-81.<br />

[27] Hoath S., Pickens W. (2003) The biology of vernix. [W:] Neonatal<br />

skin: structure and function.(Hoath S.B., Maibach H.)<br />

New York: Marcel Dekker.<br />

[28] Medzhitov R., Janeway C. Jr. (2000) Innate immunity. N.<br />

Engl. J. Med. 343: 338-44.<br />

[29] Tollin M., Bergsson G., Kai-Larsen Y. et al. (2005) Vernix caseosa<br />

as a multi-component defence system based on polypeptides,<br />

lipids and their interactions. Cell Mol. Sci. 62(19-20):<br />

2390-9.<br />

[30] Mandic Havelka A., Yektaei-Karin E., Hultenby K. et al. (2010)<br />

Maternal plasma level of antimicrobial peptide <strong>LL</strong><strong>37</strong> is a major<br />

determinant factor of neonatal plasma <strong>LL</strong><strong>37</strong> level. Acta<br />

Paediatr. 99(6): 836-41.<br />

[31] Baggiolini M., Loetscher P., Moser B. (1995) Interleukin-8 and<br />

the chemokine family. Int. J. Immunopharmacol. 17: 103-8.<br />

[32] Newburg D.S., Walker W.A. (2007) Protection of the neonate<br />

by the innate immune system of developing gut and of human<br />

milk. Pediatr. Res. 61: 2-8.<br />

[33] Kai-Larsen Y., Bergsson G., Gudmundsson G.H. et al. (2007)<br />

Antimicrobial components of the neonatal gut affected upon<br />

colonization. Pediatr. Res. 61: 530-6.<br />

[34] Marchini G., Ulfgren A.K., Lore K. (2001) Erythema toxicum<br />

neonatorum: an immunohistochemical analysys. Pediatr.<br />

Dermatol. 18: 177-87.<br />

[35] Sandgren S., Wittrup A., Cheng F. et al. (2004) The human<br />

antimicrobial peptide <strong>LL</strong>-<strong>37</strong> transfers extracellular DNA plasmid<br />

to the nuclear compartment of mammalian cells via lipid<br />

rafts and proteoglycan-dependent endocytosis. J. Biol.<br />

Chem. 279: 17951-6.<br />

[36] Lande R., Gregorio J., Facchinetti V. et al. (2007) Plasmacytoid<br />

dendritic cells sense self-DNA coupled with antimicrobial<br />

peptide. Nature 449: 564-9.<br />

[<strong>37</strong>] Karwan-Płońska A., Oknińska A. (2004) Analysis of pregnancy<br />

and labor course in patients after preterm premature rupture<br />

of membranes. Ginekol. Pol. 75(9): 699-704.<br />

[38] Wu Y.W. (2002) Systematic review of chorioamnionitis and<br />

cerebral palsy. Ment. Retard. Dev. Disabil. Res. Rev. 8: 25-9.<br />

[39] Jobe A.H., Ikegami M. (2001) Antenatal infection/inflammation<br />

and postnatal lung maturation and injury. Respir. Res.<br />

2: 27-32.<br />

[40] Hancock R.E., Patrzykat A. (2002) Clinical development of<br />

cationic antimicrobial peptides: from natural to novel antibiotics.<br />

Curr. Drug Targets Infect. Disord. 2: 79-83.<br />

[41] Zasloff M. (2002) Antimicrobial peptides in health and disease.<br />

N. Engl. J. Med. 347:1199-2000.<br />

J Malwina Kuźniak<br />

Katedra i Klinika Neonatologii<br />

Uniwersytet Medyczny im. Karola Marcinkowskiego<br />

60-535 Poznań, ul. Polna 33<br />

e-mail: malkuzniak@gmail.com<br />

Human cathelicidin <strong>LL</strong>-<strong>37</strong> – an antimicrobial peptide<br />

and its role in innate immunity of neonates<br />

Antimicrobial proteins and peptides are important part of innate immune system. They act as the first-line defense of<br />

the organism against different pathogens: bacteria, viruses and fungi. They are present as early as in the prenatal<br />

period in amniotic fluid and vernixcaseosa. They come partly from the transplacental transport and in part, they are<br />

synthesized by the fetus and newborn in the answer to chorioamnionitis. This article focuses on the characteristics<br />

of one of the antimicrobial proteins – human cathelicidin <strong>LL</strong><strong>37</strong>/hCAP18. Cathelicidin is stored as inactive proforms in<br />

granules of specific leukocytes and is expressed in epithelial cells, especially in organs with large surface having direct<br />

contact with outside environment (respiratory and alimentary tract). It destroys cells of pathogenic microorganisms,<br />

but it also exerts immunomodulatory effects on chemotaxis of leukocytes, T-cells, mastocytes, induces differentiation<br />

of dendritic cells, suppression of apoptosis of neutrophils, angiogenesis and wound repairing. Through all these effects<br />

it links innate and adaptive immunity. Previous studies made in population of human newborns have shown, that<br />

human cathelicidin is an inducible protein that is produced in the answer to infection even by premature neonates.<br />

Further studies are necessary to determine the possibility of stimulation of synthesis of cathelicidin and other antimicrobial<br />

peptides in pregnancies with high risk of premature labour or treatment with exogenic peptides acting as<br />

part of the immunity.<br />

Key words: newborn, human cathelicidin, innate immunity

Hooray! Your file is uploaded and ready to be published.

Saved successfully!

Ooh no, something went wrong!