Technische Universität München Wissenschaftszentrum ...

Technische Universität München 

Wissenschaftszentrum Weihenstephan für Ernährung, Landnutzung und Umwelt 

Department für Tierwissenschaften 

Fachgebiet Tierernährung 

Experimentelle Untersuchungen zum alimentären Einsatz von 

Echinacea purpurea-Cobs bei Schwein und Geflügel – Auswirkungen auf 

Leistungs- und Immunparameter 

Nicole Maaß 

Vollständiger Abdruck der von der Fakultät Wissenschaftszentrum Weihenstephan 

für Ernährung, Landnutzung und Umwelt der Technischen Universität München zur 

Erlangung des akademischen Grades eines 

Doktors der Agrarwissenschaften 

(Dr. agr.) 

genehmigten Dissertation. 

Vorsitzender: 

Prüfer der Dissertation: 

Univ.-Prof. Dr. L. Dempfle 

1. Univ.-Prof. Dr. D. A. Roth-Maier 

2. Univ.-Prof. Dr. J. Bauer 

Die Dissertation wurde am 24.04.2002 bei der Technischen Universität München eingereicht 

und durch die Fakultät Wissenschaftszentrum Weihenstephan für Ernährung, Landnutzung 

und Umwelt am 17.06.2002 angenommen.

Meiner Familie

Mein herzlichster Dank gilt Frau Prof. Dr. D.A. Roth-Maier für die Überlassung des 

Themas, die wissenschaftliche Anleitung sowie die mir stets gewährte Unterstützung 

und die freundliche Betreuung der Arbeit. 

Weiterhin danke ich Frau Dr. B.R. Paulicks für die freundliche und konstruktive 

Betreuung der Arbeit sowie für ihre stete Gesprächsbereitschaft. 

Der Deutschen Bundesstiftung Umwelt (DBU) möchte ich herzlichst für die 

Gewährung des Stipendiums danken, mit der die vorliegende Arbeit gefördert wurde. 

Darüber hinaus gilt mein Dank Herrn Prof. Dr. Dr. J. Bauer, Leiter des Lehrstuhls für 

Tierhygiene in Weihenstephan, für die gewährte Unterstützung und Kooperationsbereitschaft. 

Herrn Prof. Dr. R. Bauer vom Institut für pharmazeutische Biologie in Düsseldorf, 

danke ich für die Analyse des Echinacea-Probenmaterials sowie für die gewährte 

Unterstützung. 

Des weiteren gebührt mein Dank Frau Dr. v. Wangenheim vom Landesuntersuchungsamt 

für das Gesundheitswesen Südbayern in Oberschleißheim für die 

serologischen Untersuchungen sowie die Gesprächsbereitschaft. 

Herrn Dr. S. Hörmannsdorfer danke ich für die Anleitung bei den analytischen 

Arbeiten. 

Weiterhin möchte ich der Firma Berghof-Kräuter für die Überlassung des Echinacea- 

Presssaftes danken. 

Viola und Steffen Löbnitz danke ich für die gewissenhafte Hilfe bei der Durchführung 

des Zuchtsauenversuches 

Ferner gilt mein Dank allen Mitarbeiterinnen und Mitarbeitern des Fachgebietes 

Tierernährung für die mir stets gewährte Unterstützung und das freundliche 

Arbeitsklima.

Inhaltsverzeichnis 

I 


1 EINLEITUNG......................................................................................... 1 

2 VERSUCHSPLANUNG ........................................................................ 4 

3 MATERIAL UND METHODEN............................................................ 8 

3.1 BROILERMASTVERSUCH I UND II ................................................................................8 

3.1.1 Tiermaterial und -haltung................................................................................8 

3.1.2 Minimierung systematischer Einflussgrößen...............................................9 

3.1.3 Fütterung...........................................................................................................9 

3.1.4 Messparameter..............................................................................................12 

3.1.4.1 Futteraufnahme der Broiler ......................................................................12 

3.1.4.2 Lebendmasse der Broiler .........................................................................12 

3.1.4.3 Futterverwertung der Broiler ....................................................................12 

3.1.4.4 Gesundheitszustand und Kotkonsistenz................................................12 

3.2 FERKELVERSUCH I....................................................................................................13 

3.2.1 Tiermaterial und -haltung..............................................................................13 

3.2.2 Minimierung systematischer Einflussgrößen.............................................14 

3.2.3 Fütterung.........................................................................................................14 


3.2.4.1 Futteraufnahme der Ferkel.......................................................................16 

3.2.4.2 Lebendmasse der Ferkel..........................................................................16 

3.2.4.3 Futterverwertung der Ferkel.....................................................................17 

3.2.4.4 Blutparameter.............................................................................................17 


3.3 ZUCHTSAUENVERSUCH ............................................................................................17 

3.3.1 Tiermaterial.....................................................................................................17 

3.3.2 Tierhaltung und -betreuung..........................................................................18 


3.3.3.1 Alter, Lebendmasse und Genetik............................................................19 

3.3.3.2 Wurfgröße ...................................................................................................20 

3.3.3.3 Abiotische und biotische Faktoren..........................................................20 

3.3.4 Fütterung.........................................................................................................21 

3.3.4.1 Trächtigkeitsfütterung................................................................................21

II 


3.3.4.2 Laktationsfütterung ....................................................................................24 

3.3.4.3 Saugferkelbeifütterung ..............................................................................26 


3.3.5.1 Futteraufnahme der Sauen ......................................................................28 

3.3.5.2 Lebendmasse der Sauen.........................................................................28 


3.3.5.4 Ferkelbeifutteraufnahme...........................................................................29 

3.3.5.5 Körpertemperatur der Sauen...................................................................29 


3.3.5.7 Milchparameter...........................................................................................29 


3.4 FERKELVERSUCH II...................................................................................................30 


3.4.2 Fütterung.........................................................................................................31 


3.4.3.1 Futteraufnahme der Ferkel.......................................................................32 


3.4.3.3 Futterverwertung der Ferkel.....................................................................33 


3.5 SCHWEINEMASTVERSUCH........................................................................................33 



3.5.3 Fütterung.........................................................................................................34 

3.5.4 Impfung der Mastschweine ..........................................................................38 


3.5.5.1 Futteraufnahme der Mastschweine.........................................................39 

3.5.5.2 Lebendmasse der Mastschweine............................................................39 

3.5.5.3 Futterverwertung der Mastschweine.......................................................39 



3.6 PROBENGEWINNUNG, AUFBEREITUNG UND ANALYSEVERFAHREN.........................40 

3.6.1 Futter................................................................................................................40 

3.6.1.1 Nährstoffgehalte.........................................................................................40


III 

3.6.1.2 Energiegehalte ...........................................................................................40 

3.6.2 Echinacea-Grünmehl und -Presssaft..........................................................41 

3.6.3 Milch.................................................................................................................43 

3.6.3.1 Rohproteingehalt im Kolostrum ...............................................................44 

3.6.3.2 Immunglobilin G-Gehalt im Kolostrum....................................................44 

3.6.4 Blut...................................................................................................................44 

3.6.4.1 Messung der Lymphozytenproliferation.................................................46 

3.6.4.2 Rotes Blutbild, Leukozytenkonzentration und Differentialblutbild ......47 

3.6.4.3 Aktivität der Transaminasen und der alkalischen Phosphatase im 

Plasma ....................................................................................................... 48 

3.6.4.4 Rotlauf-Antikörpertiter im Plasma ...........................................................49 

3.7 STATISTISCHE AUSWERTUNG DER ERGEBNISSE.....................................................51 

4 ERGEBNISSE.....................................................................................53 

4.1 BROILERVERSUCH I..................................................................................................53 

4.1.1 Futteraufnahme..............................................................................................53 

4.1.2 Lebendmasse und Lebendmasseentwicklung..........................................54 

4.1.3 Futterverwertung............................................................................................55 

4.1.4 Gesundheitszustand und Kotkonsistenz....................................................56 

4.2 BROILERVERSUCH II.................................................................................................57 





4.3 FERKELVERSUCH I....................................................................................................61 




4.3.4 Blutparameter.................................................................................................64 

4.3.4.1 Lymphozytenproliferation.........................................................................64 

4.3.4.2 Rotes Blutbild und Leukozytenkonzentration........................................65 

4.3.4.3 Differentialblutbild ......................................................................................65 

4.3.4.4 Aktivität der Transaminasen und der alkalischen Phosphatase ........66 

4.3.5 Gesundheitszustand und Kotkonsistenz....................................................67

IV 


4.4 ZUCHTSAUENVERSUCH ............................................................................................67 



4.4.3 Körpertemperatur...........................................................................................71 


4.4.4.1 Lymphozytenproliferation.........................................................................72 



4.4.4.4 Aktivität der Transaminasen und der alkalischen Phosphatase ........81 

4.4.5 Milchparameter...............................................................................................84 

4.4.5.1 Rohproteingehalt im Kolostrum ...............................................................84 

4.4.5.2 Immunglobulin G-Gehalt im Kolostrum ..................................................84 

4.4.6 Gesundheitszustand......................................................................................85 

4.5 FERKELVERSUCH II...................................................................................................86 





4.6 SCHWEINEMASTVERSUCH........................................................................................89 







4.6.4.3 Rotlauf-Antikörpertiter im Plasma ........................................................ 102 

4.6.5 Gesundheitszustand und Kotkonsistenz................................................. 105 

5 DISKUSSION....................................................................................106 

5.1 DIE ARZNEIPFLANZE ECHINACEA PURPUREA (L.) MOENCH – EIN PFLANZLICHER 

IMMUNMODULATOR ................................................................................................ 106 

5.1.1 Vorkommen und Botanik........................................................................... 106 

5.1.2 Anwendung.................................................................................................. 107 

5.1.2.1 Historischer Rückblick bis heute .......................................................... 107


V 

5.1.2.2 Echinacea purpurea-Grünmehl.............................................................109 

5.1.3 Inhaltsstoffe ..................................................................................................110 

5.1.4 Pharmakologie – Echinacea als Inducer paraspezifischer Immunfunktionen......................................................................................................114 

5.2 IMMUNMODULATOREN ALS EINFLUSSFAKTOREN PARASPEZIFISCHER IMMUN- 

FUNKTIONEN...........................................................................................................116 

5.2.1 Immunmodulatoren – Definition................................................................116 

5.2.2 Paraspezifisches Immunsystem, Paramunisierung, Paramunität.......117 

5.2.3 Bedeutung der Paramunisierung für die landwirtschaftliche Praxis....119 

5.2.4 Wirkungsweise der Paramunitätsinducer................................................120 

5.2.5 Anforderungen an Paramunitätsinducer..................................................120 

5.3 AUSWIRKUNGEN EINER ECHINACEA PURPUREA-ZULAGE AUF DEN GESUNDHEITS- 

ZUSTAND DER VERSUCHSTIERE..............................................................................121 

5.4 AUSWIRKUNGEN EINER ECHINACEA PURPUREA-ZULAGE AUF DIE LEISTUNGS- 

PARAMETER DER VERSUCHSTIERE.........................................................................125 

5.4.1 Futteraufnahme............................................................................................125 

5.4.2 Wachstum bzw. Lebendmasseentwicklung ............................................130 

5.4.3 Futterverwertung..........................................................................................136 

5.5 AUSWIRKUNGEN EINER ECHINACEA PURPUREA-ZULAGE AUF DIE MILCHINHALTS- 

STOFFE....................................................................................................................140 

5.5.1 Rohprotein- und Immunglobulin G-Gehalt...............................................141 

5.6 AUSWIRKUNGEN EINER ECHINACEA PURPUREA-ZULAGE AUF DIE AUS DE M BLUT 

ERMITTELTEN IMMUN- UND KLINISCH-CHEMISCHEN PARAMETER DER VERSUCHS- 

TIERE.......................................................................................................................144 

5.6.1 Lymphozytenproliferation...........................................................................144 

5.6.2 Rotlauf-Antikörpertiter.................................................................................149 

5.6.3 Rotes Blutbild, Leukozytenkonzentration und Differentialblutbild........158 

5.6.4 Aktivität der Transaminasen und der alkalischen Phosphatase..........163 

6 SCHLUSSBETRACHTUNG ............................................................ 165 

7 ZUSAMMENFASSSUNG................................................................. 167 

8 LITERATURVERZEICHNIS............................................................. 175 

9 TABELLENANHANG

VI 

Verzeichnis der Übersichten 


Übersicht 1: Zusammensetzung des in der Mast eingesetzten Alleinfutters für 

Broiler [%] .......................................................................................................................11 

Übersicht 2: Analysierte Rohnährstoff-, Stärke- und Zuckergehalte [% der T] sowie 

berechneter Energiegehalt [MJ ME/kg T] des in der Mast eingesetzten Alleinfutters 

für Broiler ............................................................................................................11 

Übersicht 3: Zusammensetzung des im ersten Ferkelversuch eingesetzten Prestarter- 

und Ferkelaufzuchtfutters [%] ........................................................................15 

Übersicht 4 : Analysierte Rohnährstoff-, Stärke- und Zuckergehalte [% der T] sowie 

berechneter Energiegehalt [MJ ME/kg T] der in der Aufzucht eingesetzten Alleinfutter 

für Ferkel...............................................................................................................15 

Übersicht 5: Lebendmasse und Altersverteilung der Sauen am 85. Tag der 

Gravidität.........................................................................................................................19 

Übersicht 6: Durchschnittliche Versuchsgröße in den Versuchsgruppen....................20 

Übersicht 7: Zusammensetzung des in der Hochträchtigkeit eingesetzten Alleinfutters 

für tragende Sauen [%].................................................................................................21 


berechneter Energiegehalt [MJ ME/kg T] des Trächtigkeitsfutters........................22 

Übersicht 9: Zusammensetzung des in der Laktation eingesetzten Alleinfutters für 

säugende Sauen [%].....................................................................................................25 


berechneter Energiegehalt [MJ ME/kg T] des Laktationsfutters............................26 

Übersicht 11: Zusammensetzung des Ergänzungsfutters für Saugferkel [%] .............27 


berechneter Energiegehalt [MJ ME/kg T] des Saugferkelbeifutters......................27 

Übersicht 13: Zusammensetzung des im zweiten Ferkelversuch eingesetzten 

Ferkelaufzuchtfutters [%]..............................................................................................31 


berechneter Energiegehalt [MJ ME/kg T] des Ferkelaufzuchtfutters I..................32 

Übersicht 15: Zusammensetzung des eingesetzten Schweinemast-Alleinfutters I und 

II [%].................................................................................................................................35


VII 


berechneter Energiegehalt [MJ ME/kg T] des Schweinemastalleinfutters 

I und II..............................................................................................................................36 

Übersicht 17: Analysierte Cichoriensäuregehalte [g/100g] in Echinacea purpurea- 

Cobs und -Presssaft in Abhängigkeit von der Lagerungsdauer und der 

Charge.............................................................................................................................42 

Übersicht 18: Analysierte Alkamidgehalte in Echinacea purpurea-Cobs [mg/100g] 

und -Presssaft [mg/100ml] in Abhängigkeit von der Lagerungsdauer und der 

Charge.............................................................................................................................42 

Übersicht 19: Einfluss einer Echinacea purpurea-Grünmehlzulage im Broilermast- 

Alleinfutter auf die tägliche Futteraufnahme der Broiler [g FS]..............................53 


Alleinfutter auf die Lebendmasse der Broiler [g]......................................................54 


Alleinfutter auf die täglichen Zunahmen der Broiler [g/d]........................................55 

Übersicht 22: Einfluss einer Echinachea purpurea-Grünmehlzulage im Broilermast- 

Alleinfutter auf die Futterverwertung der Broiler [g Futter/g Zuwachs] .................56 

Übersicht 23: Einfluss einer Echinacea purpurea-Grünmehlzulage bzw. Flavomycinzulage 

im Broilermast-Alleinfutter auf die tägliche Futteraufnahme der Broiler 

[g FS]...............................................................................................................................57 


im Broilermast-Alleinfutter auf die Lebendmasse der Broiler [kg].............58 


im Broilermast-Alleinfutter auf die täglichen Zunahmen der Broiler 

[g/d].................................................................................................................................59 

Übersicht 26: Einfluss einer Echinachea purpurea-Grünmehlzulage bzw. Flavomycinzulage 

im Broilermast-Alleinfutter auf die Futterverwertung der Broiler [g Futter/g 

Zuwachs].........................................................................................................................60 


im Ferkelaufzuchtfutter auf die tägliche Futteraufnahme der Ferkel 

[g FS]...............................................................................................................................61 


im Ferkelaufzuchtfutter auf die Lebendmasse der Ferkel [kg]..................62

VIII 



im Ferkelaufzuchtfutter auf die täglichen Zunahmen der Ferkel [g].........63 


im Ferkelaufzuchtfutter auf die Futterverwertung der Ferkel [kg Futter/ kg 

Zuwachs].........................................................................................................................64 


im Ferkelaufzuchtfutter auf den Stimulationsindex der Lymphozytenproliferation 

beim Versuchsende ......................................................................................65 


im Ferkelaufzuchtfutter auf das rote Blutbild sowie die Leukozytenkonzentration 

der Ferkel beim Versuchsende.................................................................65 


im Ferkelaufzuchtfutter auf die Zusammensetzung Leukozytenfraktion 

der Ferkel beim Versuchsende ...................................................................................66 


im Ferkelaufzuchtfutter auf die Aktivität der Transaminasen (ALT, AST 

und ?-GT) sowie der alkalischen Phosphatase (ALP) der Ferkel beim 

Versuchsende ................................................................................................................67 

Übersicht 35: Einfluss einer Echinacea purpurea-Grünmehlzulage im Trächtigkeitsund 

Laktationsfutter auf die Laktationsfutteraufnahme der Sauen [g FS]............68 

Übersicht 36: Saugferkelbeifutteraufnahme zwischen dem 10. und 28. Laktationstag 

[g FS]...............................................................................................................................69 


Laktationsfutter auf die Lebendmasse der Sauen [kg]....................................70 


Laktationsfutter auf die Lebendmasseveränderung der Sauen [g]................70 


Laktationsfutter der Muttersau auf die Lebendmasse der Ferkel während der 

Laktation [g]....................................................................................................................70 


Laktationsfutter der Muttersau auf die täglichen Zunahmen der Ferkel 

während der Laktation [g].............................................................................................71


IX 


Laktationsfutter auf die Körpertemperatur der Sauen [°C] während der 

Hochträchtigkeit und der Laktation.............................................................................72 


Laktationsfutter auf den Stimulationsindex der Lymphozytenproliferation der 

Sauen bei den verschiedenen Messzeitpunkten sowie auf das Verhältnis der 

Stimulationsindices zwischen zwei Messzeitpunkten..............................................73 



Ferkel beim Absetzen...................................................................................................73 


Laktationsfutter auf die Leukozytenkonzentration der Sauen im Vollblut 

[10 9 /l] während des Versuches....................................................................................74 


Laktationsfutter auf die Erythrozytenkonzentration der Sauen im Vollblut 

[10 12 /l] während des Versuches ..................................................................................75 


Laktationsfutter auf den Hämoglobingehalt der Sauen im Vollblut [g/dl] 

während des Versuches...............................................................................................75 


Laktationsfutter auf den Hämatokritwert der Sauen [%] während des 

Versuches.......................................................................................................................76 


Laktationsfutter auf das rote Blutbild sowie Leukozytenkonzentration der 



Laktationsfutter auf den relativen Anteil der Lymphozyten [%] an der 

Gesamtleukozytenzahl der Sauen während des Versuches..................................78 


Laktationsfutter auf den relativen Anteil der neutrophilen Granulozyten [%] 

an der Gesamtleukozytenzahl der Sauen während des Versuches .....................78

X 



Laktationsfutter auf den relativen Anteil der eosinophilen Granulozyten [%] 

an der Gesamtleukozytenzahl der Sauen während des Versuches .....................79 


Laktationsfutter auf den relativen Anteil der basophilen Granulozyten [%] an 

der Gesamtleukozytenzahl der Sauen während des Versuches...........................79 


Laktationsfutter auf den relativen Anteil der Monozyten [%] an der Gesamtleukozytenzahl 

der Sauen während des Versuches................................................80 


Laktationsfutter auf die Zusammensetzung der Leukozytenfraktion [%] der 



Laktationsfutter auf die Aktivität der alkalischen Phosphatase (ALP) im 

Plasma der Sauen [I.U./l] während des Versuches .................................................81 


Laktationsfutter auf die Aktivität der Alanin-Aminotransferase (ALT) im 



Laktationsfutter auf die Aktivität der Aspartat-Aminotransferase (AST) im 



Laktationsfutter auf die Aktivität der Gamma-Glutamyltransferase (?-GT) im 



Laktationsfutter auf die Aktivität der Transaminasen (ALT, AST und ?-GT) 

sowie der alkalischen Phosphatase (ALP) der Ferkel beim Absetzen.................83 


Laktationsfutter auf den Rohproteingehalt im Kolostrum der Sauen [%]......84 


Laktationsfutter auf den Gesamtgehalt an Immunglobulin G1 im Kolostrum 

der Sauen [Extinktion]...................................................................................................85


XI 


Laktationsfutter der Muttersau auf die tägliche Futteraufnahme der Ferkel 

nach dem Absetzen [g FS]...........................................................................................86 


Laktationsfutter der Muttersau auf die Lebendmasse der Ferkel nach dem 

Absetzen [kg]..................................................................................................................87 


Laktationsfutter der Muttersau auf die täglichen Zunahmen der Ferkel nach 

dem Absetzen [g]...........................................................................................................87 


Laktationsfutter der Muttersau auf die Futterverwertung der Ferkel nach 

dem Absetzen [g Futter/ g Zuwachs]..........................................................................88 

Übersicht 66: Einfluss einer oralen Echinacea purpurea Presssaft- bzw. Grünmehl- 

Zulage auf die tägliche Futteraufnahme der Mastschweine [g FS].......................90 


Zulage auf die Lebendmasse der Mastschweine [kg] .............................................91 


Zulage auf die täglichen Zunahmen der Mastschweine [g]....................................92 


Zulage auf die Futterverwertung der Mastschweine [kg Futter/ kg Zuwachs] .....93 

Übersicht 70: Einfluss einer oralen Echinacea purpurea Presssaft- bzw. Grünmehl - 

Zulage auf die Leukozytenkonzentration der Mastschweine im Vollblut [10 9 /l]...94 


Zulage auf die Erythrozytenkonzentration der Mastschweine im Vollblut [10 12 /l]95 


Zulage auf den Hämoglobingehalt der Mastschweine im Vollblut [g/dl] ...............96 


Zulage auf den Hämatokritwert der Mastschweine im Vollblut [%] .......................97 


Zulage auf den relativen Anteil der Lymphozyten [%] an der Gesamtleukozytenzahl 

der Mastschweine während des Versuches............................................98

XII 

Verzeichnis der Übersichten und Abbildungen 


Zulage auf den relativen Anteil der neutrophilen Granulozyten [%] an der 

Gesamtleukozytenzahl der Mastschweine während des Versuches....................99 


Zulage auf den relativen Anteil der eosinophilen Granulozyten [%] an der 

Gesamtleukozytenzahl der Mastschweine während des Versuches..................100 


Zulage auf den relativen Anteil der basophilen Granulozyten [%] an der 

Gesamtleukozytenzahl der Mastschweine während des Versuches..................101 


Zulage auf den relativen Anteil der Monozyten [%] an der Gesamtleukozytenzahl 

der Mastschweine während des Versuches............................................................102 


Zulage auf die Rotlauf-Antikörper-Titer im Plasma [E.* x10 -3 ] der Mastschweine 

während des Versuches.............................................................................................103 

Übersicht 80: Der Proteingehalt von Kolostrum und Normalmilch des Schweines ..141 

Verzeichnis der Abbildungen 

Abbildung 1: Einfluss einer oralen Echinacea purpurea Presssaft- bzw. Grünmehl- 

Zulage auf die Rotlauf-Antikörper-Titer im Plasma der Mastschweine [Extinktion 

*10 - ³] während der ersten Applikationsphase .........................................................153 

Abbildung 2: Einfluss einer oralen Echinacea purpurea Presssaft- bzw. Grünmehlzulage 

auf die Rotlauf-Antikörpertiter im Plasma der Mastschweine [Extinktion 

* !0 - ³] während der zweiten Applikationsphase.......................................................153

Verzeichnis der Abkürzungen und Symbole 

XIII 


AB 

AK 

ALP 

ALT 

APR 

AST 

BrdU 

bzw. 

cm 

Con A 

d 

D 

d.h. 

dl 

DL 

DNA 

ELISA 

E.p. 

etc. 

Fa. 

FS 

g 

y-GT 

h 

HCl 

HPLC 

HSA 

I.E. 

Ig 

i.m. 

i.v. 

Antibiotikum 

Antikörper 

Alkalische Phosphatase 

Alanin-Aminotransferase 

Acute phase reaction 

Aspartat-Aminotransferase 

Bromdesoxyuridin 

beziehungsweise 

Zentimeter 

Concanavalin A 

Tag 

Dalton 

das heißt 

Deziliter 

Deutsche Landrasse 

Desoxyribonucleinsäure 

Enzyme linked immunosorbent assay 

Echinacea purpurea 

et cetera 

Firma 

Frischsubstanz 

Gramm 

y-Glutamyltransferase 

Stunde 

Salzsäure 

High performance liquid chromatography 

Humanserumalbumin 

internationale Einheit 

Immunglobulin 

intramuskülär 

intravenös

XIV 


kg 

kJ 

KLH 

l 

LM 

LPS 

LTT 

M 

MHC 

mg 

ME 

MG 

MJ 

min 

min. 

ml 

mm 

MTP 

N 

n 

NfE 

NK 

nkat 

nm 

OR 

OS 

p 

PBS 

PHA 

PMN 

POD 

p.p. 

ppm 

Kilogramm 

Kilojoule 

Keyhole limpet hemocyanin 

Liter 

Lebendmasse 

Lipopolysaccharid 

Lymphozytentransformationstest 

Mol 

Major histocompatibility complex 

Milligramm 

Umsetzbare Energie 

Molekulargewicht 

Megajoule 

Minute 

mindestens 

Milliliter 

Millimeter 

Mikrotiterplatte 

Stickstoff 

Anzahl 

Stickstofffreie Extraktstoffe 

Natural Killer 

Nanokat 

Nanometer 

Organischer Rest 

organische Substanz 

Irrtumswahrscheinlichkeit 

Phosphate buffered saline 

Phytohämagglutinin 

Polymorphkernige Neutrophile 

Peroxidase 

post partum 

parts per million


XV 

PS 

Polysaccharid 

PS 

Presssaft 

PWM 

Pokeweed-Mitogen 

RT 

Raumtemperatur 

s.c. 

subkutan 

s.o. 

siehe oben 

SRBC 

Sheep red blood cells 

T/ TM Trockensubstanz 

U 

Unit 

u.a. 

unter anderem 

v.a. 

vor allem 

vgl. 

vergleiche 

WPSA 

World`s Poultry Association 

XA 

Rohasche 

XF 

Rohfaser 

XL 

Rohfett 

XP 

Rohprotein 

XS 

Rohstärke 

XZ 

Rohzucker 

z.B. 

zum Beispiel 

z.T. 

zum Teil 

% Prozent 

∅ 

durchschnittlich 

°C Grad Celsius 

µl Mikroliter

Einleitung 1 

1 Einleitung 

In der landwirtschaftlichen Tierhaltung wird zunehmend nach Alternativen zum pround 

metaphylaktischen Antibiotikaeinsatz sowie dem Einsatz von nutritiven 

antimikrobiellen Substanzen gesucht. Dies resultiert einerseits aus der in Europa 

durch die Resistenz- und Rückstandsproblematik induzierten, zunehmenden 

Reglementierung des Antibiotikaeinsatzes (ENGSTAD und RAA, 1999), andererseits 

aus der durch die Intensivierung der Tierproduktion erfolgten Verschiebung der 

Krankheitsursachen von monokausalen, leicht durch Vakzine bzw. Antibiotika zu 

bekämpfenden Infektionen hin zu multikausalen Infektionskrankheiten, deren 

sinnvollste Methode der Prophylaxe eine Stärkung der allgemeinen, 

antigenunspezifischen (paraspezifischen) Abwehr ist (HANSCHKE, 1997). 

Eine Möglichkeit zur Stimulation bzw. Aktivierung des paraspezifischen (primitiven) 

Immunsystems, also der ersten Abwehrschranke der Mammalia gegen Infektionserreger 

bietet der Einsatz von Paramunitätsinducern (MAYR-BIBRACK, 1991), die zur 

sehr heterogenen Gruppe der immunmodulatorisch wirksamen Substanzen gehören. 

Bei den Paramunitätsinducern oder extrinsischen Immunmodulatoren handelt es sich 

v.a. um modifizierte Mikroorganismen oder Pflanzenextrakte, die eine Stimulation der 

humoralen und zellulären unspezifischen Abwehrmechanismen bewirken (TIZARD, 

1993) und damit den Gesamtorganismus innerhalb von wenigen Stunden in eine 

allgemein erhöhte Abwehrbereitschaft gegen Antigene und Noxen unterschiedlicher 

Herkunft versetzen (MAYR-BIBRACK, 1991). 

Die Arzneipflanze Echinacea purpurea (L.) MOENCH wird mit dem Indikationsanspruch 

der Immunmodulation als pflanzlicher Paramunitätsinducer in der Humanmedizin 

sowohl in der prophylaktischen als auch in der therapeutischen Anwendung 

mit großem Erfolg eingesetzt. Dabei wird den Echinacea-Präparaten v.a. eine 

Stimulation des erregerunspezifischen Abwehrsystems zugeschrieben (BAUER und 

WAGNER, 1991), die sich hauptsächlich in einer Steigerung der Phagozytoserate 

(WAGNER et al., 1986; BAUER et al., 1989; JURCIC et al., 1989; WILDFEUER und 

MAYERHOFER, 1994) aber u.a. auch in einer unspezifischen Aktivierung der 

Lymphozyten (WAGNER et al., 1985), einer erhöhten Natural Killer-Zellaktivität (SEE et 

al., 1997) oder einer erhöhten Zytotoxizität (STIMPEL et al., 1984) manifestiert.

2 Einleitung 

Echinacea wird in der Humanmedizin sowohl im Rahmen von klinischen 

Untersuchungen als auch in der therapeutischen bzw. prophylaktischen Anwendung 

hauptsächlich als Presssaftpräparat oder als ethanolischer Auszug peroral oder 

parenteral verwendet. Über den Einsatz von Echinacea-Präparaten bei landwirtschaftlichen 

Nutztieren gibt es bislang keine wissenschaftlich fundierten 

Untersuchungen, zumal diese Präparate in der veterinärmedizinischen Praxis 

generell noch sehr wenig verbreitet sind. Aufgrund ihres Wirkprinzips könnten aber 

Zubereitungen aus dieser Arzneipflanze auch bei landwirtschaftlichen Nutztieren zur 

Pro- und Metaphylaxe insbesondere von multifaktoriellen Infektionskrankheiten 

geeignet sein. Dies belegen auch Erfahrungsberichte (HAMALCIK, 1987, STAHL et al, 

1989, ANETZHOFER, 1993 und MAY, 1994), in denen zumeist über die erfolgreiche 

Verwendung von Echinacea-Kombinationspräparaten berichtet wird. Erfahrungen 

bzw. Untersuchungen über die alimentäre Verabreichung von Echinacea- 

Ganzpflanzen oder Ganzpflanzenbestandteilen an landwirtschaftliche Nutztiere 

liegen bislang nicht vor, obwohl diese Art der Echinacea-Applikation in der 

landwirtschaftlichen Tierhaltung aus produktionstechnischen und ökonomischen 

Gründen, insbesondere im Rahmen von länger währenden Prophylaxemaßnahmen 

günstig erscheint. 

Im Gegensatz zur Anwendung beim Menschen fehlen also beim Tier hinsichtlich des 

Echinacea-Einsatzes, des Echinacea-Wirkprinzips und einer wirkungsvollen 

Echinacea-Darreichungsform aufgrund fehlender Untersuchungen grundlegende 

Erkenntnisse, so dass in diesem Sektor erheblicher experimenteller Klärungsbedarf 

besteht, dem mit den vorliegenden Untersuchungen begegnet werden sollte. 

Ziel der vorliegenden Arbeit war es daher, die Auswirkungen einer alimentären 

Zulage von getrockneten, zerkleinerten oberirdischen Pflanzenteilen von Echinacea 

purpurea (L.) MOENCH (Echinacea-Grünmehlcobs) an Schweine und Broiler auf die 

Leistungsfähigkeit sowie den Immun- und Gesundheitsstatus dieser Tiere zu 

untersuchen. Hierbei sollte für die verschiedenen Leistungsrichtungen der 

Schweineproduktion sowie für die Mastgeflügelproduktion außer den üblichen 

Leistungsparametern anhand von Immunparametern untersucht werden, ob das 

eingesetzte Echinacea-Grünmehl konventionelle Fütterungsantibiotika substituieren 

kann bzw. ob durch die Echinacea-Vorlage eine Reduktion des therapeutischen und/

Einleitung 3 

oder prophylaktischen Antibiotikaeinsatzes möglich ist. Sollte sich die Wirksamkeit 

des Echinacea-Grünmehls bestätigen, könnte durch den Einsatz einer in der 

heimischen Landwirtschaft erzeugten Pflanze bei zahlreichen Indikationen auf die 

Verwendung von antimikrobiellen Therapeutika verzichtet werden, so dass sich 

nachhaltig die Belastung von tierischen Lebensmitteln und Umwelt mit antibiotisch 

wirksamen Substanzen verringern würde.

4 Versuchsplanung 


Ziel dieser Arbeit war es, die Auswirkungen einer alimentären Echinacea purpurea- 

Grünmehl-Zulage auf ausgewählte Leistungs- und Immunparameter sowie den 

Gesundheitsstatus landwirtschaftlicher Nutztiere wie Schwein und Geflügel zu 

untersuchen. Dazu wurden bei diesen Spezies in verschiedenen Produktionsrichtungen 

sechs Versuche mit unterschiedlichen Echinacea-Grünmehl-Dosierungen, 

z.T. auch im Vergleich mit einer nutritiven Antibiotika-Zulage, durchgeführt. 

Broilerversuch I und II 

Im Broilerversuch I erhielten die 360 Tiere ein bedarfsdeckendes Kükenmast- 

Alleinfutter, das je nach Behandlung 0, 0,6, 1,2, 1,8, 2,4, 3,0, 3,6, 4,2 bzw. 4,8% 

Echinacea-Grünmehl enthielt, während den 180 Broilern im zweiten Broilerversuch 

0% Echinacea-Grünmehl (Negativkontrolle) bzw. 2,4% Echinacea-Grünmehl bzw. 

das Fütterungsantibiotikum Flavomycin (10 mg/ kg Futter, Positivkontrolle) vorgelegt 

wurden. 

Im Verlauf des 5-wöchigen Mastversuches wurden folgende Parameter ermittelt: 

• Futteraufnahme 1 

• Lebendmasseentwicklung 1 

• Futterverwertung 1 

• Gesundheitsstatus sowie Kotkonsistenz ² 

Ferkelversuch I 

Ferkelversuch I wurde mit 36 Absetzferkeln, die in der ersten Versuchshälfte ein 

bedarfsdeckendes Prestarterfutter und in der zweiten Versuchshälfte ein 

bedarfsdeckendes Ferkelaufzuchtfutter I erhielten, durchgeführt. Den Versuchsfuttern 

wurden je nach Behandlung 0 (Negativkontrolle) bzw. 1,8% des Kräutergrünmehls 

bzw. analog zum Broilerversuch II ein konventionelles Fütterungsantibiotikum 

(Flavomycin, 20 mg je kg FS, Positivkontrolle) zugelegt. 

1 wöchentlich; ² täglich

Versuchsplanung 5 

Während des sechswöchigen Ferkelversuches wurden folgende Parameter ermittelt: 





• Lymphozytenproliferation aus dem Blut ³ 

• Rotes Blutbild ³ 

• Differentialblutbild ³ 

• Aktivitäten der Alkalischen Phosphatase, der y-Glutamyl-Transferase sowie 

der Alanin-und Aspartat-Aminotransferase aus dem Blutplasma ³ 

Zuchtsauenversuch 

Der Zuchtsauenversuch, der 36 Versuchssauen umfasste, die in 3 Behandlungsgruppen 

aufgeteilt wurden, wurde vom 85. Trächtigkeitstag bis zum 28. Laktationstag 

durchgeführt. Während der Hochträchtigkeit erhielten die Sauen ein 

bedarfsdeckendes Alleinfutter für tragende Sauen mit 0, 1,2 bzw. 3,6% Echinacea- 

Grünmehl, während der Laktation wurde ihnen ein ebenfalls dem Bedarf 

angepasstes Laktationsfutter mit 0, 0,5 bzw. 1,5% Echinacea purpurea-Grünmehl 

vorgelegt. 

Im Versuchsverlauf wurden dabei folgende Parameter untersucht: 

• Futteraufnahme der Sauen² 

• Lebendmasse der Sauen 4 

• Körpertemperatur der Sauen² 

• Gesundheitsstatus der Sauen und Ferkel² 

• Kotkonsistenz der Ferkel² 

• Rohproteingehalt und Immunglobulin G-Gehalt im Kolostrum 5 

• Lymphozytenproliferation aus dem Blut 6 

• Rotes Blutbild der Sauen und Ferkel 6 

• Differentialblutbild der Sauen und Ferkel 6 

1 wöchentlich; ² täglich; ³ am Versuchsende; 4 am 85. + 110. Trächtigkeitstag sowie am 28. Laktationstag; 5 2 bis 

6 h p. p.; 6 bei den Sauen am 85. TT, am 1. Tag p.p. sowie am 28. Laktationstag, bei den Ferkeln am 28. Lakt.tag


• Aktivitäten der Alkalischen Phosphatase, der y-Glutamyl-Transferase sowie 

der Alanin-und Aspartat-Aminotransferase aus dem Blutplasma der Sauen 

und Ferkel 1 

• Lebendmasse der Ferkel 2 

• Beifutteraufnahme der Ferkel 3 

Ferkelversuch II 

Ferkelversuch II wurde mit den Ferkeln von 24 Sauen aus dem Zuchtsauenversuch 

durchgeführt, um mögliche Auswirkungen der Echinacea-Aufnahme der Sauen auf 

ihre Nachkommen nach dem Absetzen zu untersuchen. Alle Ferkel erhielten das 

gleiche bedarfsdeckende Ferkelaufzuchtfutter I ohne Echinacea-Zulage. 

Während der 4-wöchigen Versuchsphase wurden dazu folgende Messkriterien 

berücksichtigt: 




• Gesundheitsstatus sowie Kotkonsistenz 5 

Schweinemastversuch 

Im Schweinemastversuch kamen die Daten von 48 Läuferschweinen, die auf 3 

Behandlungsgruppen aufgeteilt waren, zur Auswertung. Der Versuch gliederte sich in 

zwei Echinacea-Applikationsphasen (1. bis einschließlich 3. Woche und 7. bis 

einschließlich 9. Woche) sowie in eine Kontrollphase, in der keine Echinacea- 

Applikation erfolgte. Während der ersten Applikationsphase und der Kontrollphase 

wurde den Tieren ein dem Bedarf angepasstes Schweinemast-Alleinfutter I 

vorgelegt, in der zweiten Applikationsphase Schweinemast-Alleinfutter II, das 

ebenfalls bedarfsdeckend konzipiert war. In den beiden Applikationsphasen wurde 

den Mastschweinen im Futter 0 bzw. 0,15% Echinacea-Grünmehl vorgelegt bzw. die 

Tiere der zweiten Vergleichsgruppe erhielten jeweils täglich 4ml (1. Applikations- 

1 bei den Sauen am 85. TT, am 1. Tag p.p. sowie am 28. Laktationstag, bei den Ferkeln am 28. Lakt.tag; 

2 3 bis 

11 h p.p., am 14. und 28. Lakt.tag; ³ am Versuchsende; 4 wöchentlich; 5 täglich

Versuchsplanung 7 

phase) respektive 6 ml (2. Applikationsphase) Echinacea-Presssaft, der bei jeder 

Mahlzeit auf das Futter dosiert wurde. 

Am Ende der ersten Versuchswoche sowie entsprechend vier Wochen später 

wurden alle Tiere aufgrund der Versuchsanstellung mit einer handelsüblichen 

Rotlauf-Vakzine immunisiert. 

Im Verlauf des 9-wöchigen Mastversuches wurden folgende Parameter erfasst: 





• Rotlauf-Antikörper-Titer aus dem Blutplasma ³ 

• Rotes Blutbild 3 

• Differentialblutbild 3 

1 wöchentlich; ² täglich; ³ zu Versuchsbeginn sowie nach jeder Versuchswoche mit Ausnahme von Woche 4 und 5

8 Material und Methoden 


3.1 Broilermastversuch I und II 

3.1.1 Tiermaterial und -haltung 

Für die vorliegenden Broilerversuche wurden männliche Eintagsküken von Masthybriden 

der Herkunft Ross verwendet, die in der Lehr- und Versuchsstation für 

Kleintierzucht in Kitzingen erbrütet worden waren. Beide Versuche wurden im 

Broilermaststall der Versuchsanlage Tierernährung durchgeführt. Im ersten Versuch 

kamen die zootechnischen Parameter von insgesamt 360 Tieren zur Auswertung, 

während beim zweiten Versuch nur 180 Mastküken berücksichtigt wurden. Die 

Versuchsdauer betrug in den beiden beobachteten Mastperioden jeweils 5 Wochen. 

Die Broiler wurden in dem vollklimatisierten Versuchsstall in Gruppenkäfigen 

einer zweiteiligen, dreietagigen Mastbatterie bei einer Besatzdichte von 10 Tieren je 

Käfigeinheit gehalten. Die Käfige aus verzinktem Eisendraht hatten eine Abmessung 

von 100*80*45 cm und waren beidseitig mit einem Futtertrog, der sich in seiner Form 

an die zunehmende Größe der Masttiere anpassen ließ, ausgestattet. Als Boden der 

Käfigeinheit diente ein vollperforierter Bodenrost, so dass ein einwandfreies 

Durchtreten des Kotes auf die darunter befindlichen Kotbänder gewährleistet war. 

Damit eine ad libitum Wasserversorgung der Versuchstiere möglich war, befand sich 

in jedem Käfig eine höhenverstellbare Trinknippelleiste. 

Um den Mastküken ein entsprechend ihres physiologischen Bedarfes in den 

verschiedenen Entwicklungsstadien angepasstes Stallklima zu schaffen, wurde die 

relative Luftfeuchte über den gesamten Versuchszeitraum hinweg bei 55 - 60% 

konstant gehalten, während die Temperatur von 33°C in den ersten zwei 

Lebenstagen kontinuierlich auf 24 °C innerhalb der Mastperiode von 35 Tagen 

gesenkt wurde. Die tägliche Beleuchtungsdauer betrug 20 h. 

Im ersten Versuch wurden die 360 Mastküken auf 9 verschiedene Behandlungsgruppen 

(I-IX) verteilt, wobei alle 36 Käfigeinheiten mit jeweils 10 Individuen belegt 

wurden. Folglich ergaben sich 4 Wiederholungen mit insgesamt 40 Versuchstieren 

pro Behandlung. Beim zweiten Versuch wurden bei gleicher Besatzdichte je Käfigeinheit 

aber lediglich 180 Tieren 3 verschiedene Behandlungsgruppen (I-III) mit

Material und Methoden 9 

jeweils 6 Wiederholungen à 10 Broilern gebildet. 

3.1.2 Minimierung systematischer Einflussgrößen 

Da Eintagsküken einen sehr homogenen Tierpool darstellen, und damit die Variablen 

Genetik, Alter und Geschlecht als Einflussgrößen auf den Behandlungseffekt 

wegfallen, musste lediglich eine gleichmäßige Gewichtsverteilung in den Käfigeinheiten 

beachtet werden. Die Zuteilung der Käfigeinheiten auf die verschiedenen 

Behandlungen erfolgte zufällig. 

3.1.3 Fütterung 

Grundlage für die Rationsberechnungen waren die Versorgungsempfehlungen für 

Broiler des NATIONAL RESEARCH COUNCIL (NRC,1994). Die Konzipierung der Rationen 

erfolgte unter Berücksichtigung der optimalen Nährstoffgehalte mit dem Linearen 

Optimierungsprogramm „Single Mix“ (FORMAT INC., 1990). 

Die Versuchstiere erhielten während der gesamten fünfwöchigen Mastphase ein 

mehliges Kükenmast-Alleinfutter; Einzelkomponenten und Inhaltsstoffe der im ersten 

und zweiten Broilerversuch eingesetzten Versuchs-Mastfutter sind in Übersicht 1 und 

Übersicht 2 dargestellt. 

Im ersten Versuch wurden entsprechend der Anzahl der Behandlungen 9 

verschiedene Versuchsmischungen hergestellt, die sich ausschließlich in ihren 

Gehalten an Echinacea purpurea-Cobs unterschieden. Dabei variierte der Gehalt an 

Echinacea-Cobs im Futter von 0% in der Kontrollration (I) bis 4,8% in der höchsten 

Zulagengruppe (IX), wobei der Gehalt in den Rationen I bis IX in 0,6%-Intervallen 

anstieg. Die niedrigste Dosierung (0,6%) wurde unter Berücksichtigung des mittleren 

Lebendgewichtes und der mittleren Futteraufname der Broiler von der für den 

Humanbereich gültigen empfohlenen Zulagenhöhe von 16,5 mg Echinacea purpurea 

Trockenpresssaft je kg LM 0,75 (vgl. 3.3.4.1) abgeleitet. Bei einem unterstellten 

Durchschnittsgewicht der Broiler von 1kg und einer erwarteten mittleren täglichen


Futteraufnahme von 80 g ergab sich daraus – analog zu der Berechnung unter 

3.3.4.1 – eine Dosierung von 0,1 bis 0,6 % Echinacea-Cobs im Mastfutter. Da in 

Vorversuchen mit abgesetzen Ferkeln Zulagen im oberen Bereich bzw. oberhalb der 

Dosierungsempfehlung einen leicht leistungsstimulierenden Effekt zeigten, und 

außerdem ein Ausbleiben der eventuellen Wirkung durch eine aus den starken 

Schwankungen im Trockensubstanzgehalt der Frischpflanzen resultierende Unterdosierung 

vermieden werden sollte, wurde als minimale Zulage in den Versuchsrationen 

die 0,6%-Schwelle angestrebt. Damit war für ein erstes Screening durch die 

in 0,6% Schritten ansteigende Kräuterzulage ein weiter Dosierungsbereich 

abgedeckt. 

Im zweiten, dem ersten angeschlossenen Broilerversuch wurden drei verschiedene 

Versuchsfutter konzipiert. Dabei erhielten die Broiler entweder eine Kontrollration 

(0% Echinacea, Negativkontrolle, (I)) bzw. als Positivkontrolle (II) eine Ration, die ein 

in der Broilermast zugelassenes Fütterungsantibiotikum enthielt, oder ein Versuchsfutter 

(III), das mit 2,4% Echinacea-Cobanteil im mittleren Dosierungsbereich des 

ersten Versuches angesetzt war. Da Echinaceae eine Alternative zum pround 

metaphylaktischen Antibiotikaeinsatz darstellen könnten, wurde in der zweiten 

Kontrollgruppe das in der Mast übliche Fütterungsantibiotikum Flavophospholipol 

(Wirkstoff: Flavomycin, 10 mg/kg Futter) eingemischt. 

Die Echinacea-Cobs wurden dem Futter gemahlen als Grünmehl zugesetzt. Als 

Substitut für die Kräutercobs wurde analog zum Sauenversuch Luzernegrünmehl in 

unterschiedlichen Anteilen (4,8% (Gruppe I) bis 0% (Gruppe IX) Versuch 1; 2,4% 

(Gruppe I und II) bzw. 0% (Gruppe III) Versuch 2) verwendet. 

Bei der Auswahl der restlichen Futterkomponenten wurde auf praxisübliche Energieund 

Proteinträger zurückgegriffen, wobei eventuelle Höchstmengen für die 

Einzelfuttermittel berücksichtigt wurden. Auf eine Pelletierung des Futters, wie in der 

Regel in der Broilermast üblich, wurde versuchsbedingt verzichtet, da es durch die 

thermischen Prozesse beim Pressvorgang zu einer Zerstörung bzw. Beeinträchtigung 

der thermoinstabilen, immunrelevanten Inhaltsstoffe der Kräutercobs 

kommen kann. 

Das Futter wurde den Tieren einer Käfigeinheit zur ad libitum Aufnahme vorgelegt.


Übersicht 1: Zusammensetzung des in der Mast eingesetzten Alleinfutters für Broiler 

[%] 

Komponenten Anteile im 1. Versuch Anteile im 2. Versuch 

Winterweizen 35,00 35,00 

Sojaextraktionsschrot 25,83 30,73 

Körnermais 15,50 15,45 

Maiskleber 6,00 3,65 

Pflanzenöl (1) 6,00 6,00 

Fischmehl 3,50 3,50 

Mineralstoffvormischung (2) 2,70 2,70 

Vitaminvormischung (3) 0,30 0,30 

Lysin HCl 0,24 0,12 

Methionin 0,13 0,15 

Luzernegrünmehl (4) / 

4,8 - 0 

Echinacea-Cobs 

0 - 4,8 

(1) Zusammensetzung nach Herstellerangaben, siehe Anhangstabelle 5 

(2) 

Zusammensetzung siehe Anhangstabelle 1 

3) 

Zusammensetzung siehe Anhangstabelle 2 

(4) als Substitut bzw. Ergänzung zum Echinacea-Anteil eingesetzt 

2,4 / 0 

0 / 2,4 


berechneter Energiegehalt [MJ ME/kg T] des in der Mast eingesetzten Alleinfutters 

für Broiler 

1. Versuch 2. Versuch 

Trockenmasse 89,66 91,04 

Rohprotein 26,33 26,13 

Rohfett 8,64 8,82 

Rohfaser 5,11 5,04 

Rohasche 6,19 6,18 

Stärke 37,31 35,85 

Zucker 4,36 4,77 

Energie (1) 13,8 13,7 

(1) nach Schätzgleichung der WPSA (KIRCHGESSNER, 1997)


3.1.4 Messparameter 

3.1.4.1 Futteraufnahme der Broiler 

Die Futteraufnahme der Broiler wurde im wöchentlichen Rhythmus erfasst. Aus der 

Differenz zwischen Futtervorlage und Rückwaage konnte der Futterverbrauch pro 

Käfigeinheit, von dem sich durch Dividieren durch die Tierzahl die durchschnittliche 

tägliche Futteraufnahme des Einzeltieres in der entsprechenden Woche ableiten ließ, 

berechnet werden. 

3.1.4.2 Lebendmasse der Broiler 

Die Lebendmasse der einzelnen Broiler wurde zu Versuchsbeginn sowie am Ende 

jeder Versuchswoche jeweils um 8.oo h mit einer elektronischen Präzisionswaage 

(Fa. Pesa. Oetwil, Schweiz), die auf den Messbereich zwischen 0 bis 50 kg mit einer 

Genauigkeit von ± 1g geeicht war, aus dem Mittelwert von 15 aufeinanderfolgenden 

Einzelwiegungen bestimmt. 

3.1.4.3 Futterverwertung der Broiler 

Die Futterverwertung der Broiler – definiert als Futterverbrauch pro kg Lebendmassezuwachs 

– konnte von den unter 3.1.4.1 und 3.1.4.2 ermittelten Daten durch Division 

abgeleitet werden. 

3.1.4.4 Gesundheitszustand und Kotkonsistenz 

Der Gesundheitszustand der Tiere wurde täglich beobachtet und dokumentiert, ab 

dem fünften Lebenstag erfolgte zweimal wöchentlich eine visuelle Beurteilung und 

Dokumentation der Kotkonsistenz.


3.2 Ferkelversuch I 


Im vorliegenden Ferkelversuch wurden 21 Kastraten und 15 weibliche Tiere, also 

insgesamt 36 Hybridferkel aus einer Kreuzung von Deutsche Landrasse Sauen mit 

Pietrain Ebern verwendet. Die Tiere wurden bis zum Absetzen am 21. Lebenstag bei 

einem konventionellen Ferkelerzeugerbetrieb im nördlichen Landkreis Freising 

gehalten, am 21. Lebenstag erfolgte dann die Umstallung in den vollklimatisierten 

Ferkelaufzuchtstall der Versuchsanlage Tierernährung. Die Versuchsdauer lag bei 6 

Wochen, die frisch abgesetzten Ferkel wiesen zu Versuchsbeginn ein 

durchschnittliches Alter von 25,3 ± 1,0 Tagen auf. 

Die Versuchstiere wurden in Einzeltierkäfigen gehalten, die durch Gitterstäbe 

getrennt waren. Dadurch wurde den Schweinen zumindest ein gewisser 

Sozialkontakt ermöglicht. Die Einzeltierkäfige hatten eine Abmessung von 60*100 

cm; auf der einen Seite waren sie mit einer Nippeltränke, die eine ad libitum 

Wasserversorgung sicherstellen sollte, ausgestattet; auf der gegenüberliegenden 

Seite befand sich ein Futterautomat. Als Boden diente ein vollperforierter 

Kunststoffrost, so dass ein einwandfreies Durchtreten des Kotes gewährleistet war. 

Um den Ferkeln ein bedarfsgerechtes Stallklima zu ermöglichen, wurde die relative 

Luftfeuchte kontinuierlich bei 55 - 60 % gehalten, wohingegen die Temperatur im 

Versuchsverlauf von anfänglich 28°C auf 22°C gesenkt wurde. 

Die Ferkel wurden auf 3 verschiedene Behandlungsgruppen mit jeweils 12 

Wiederholungen verteilt. 

Im Ferkelerzeugerbetrieb wurden den Tieren am ersten Tag post partum die 

Schwänze kupiert sowie die Eckzähne abgeschliffen, am dritten Lebenstag erhielten 

die Ferkel dann eine intramuskuläre Eiseninjektion mit 1 ml Ferriphor 20% ad us. vet. 

(Lohmann Animal Health, Cuxhafen, BRD). Zur Immunisierung gegen die 

Enzootische Pneumonie wurden den Ferkeln am dritten sowie am 21. Lebenstag 2 

ml des inaktivierten Impfstoffs Stellamune Mycoplasma (Pfizer, Karlsruhe, BRD) 

appliziert.



Mit der Prämisse eine Überlagerung des Behandlungseffektes durch systematische 

Einflussgrößen zu vermeiden, wurden die variablen Faktoren Lebendmasse, Genetik 

sowie das Geschlechterverhältnis gleichmäßig über alle Versuchsgruppen verteilt. 

Die Zuteilung der Einzeltierkäfige auf die verschiedenen Behandlungen erfolgte 

zufällig. 



Ferkel der GESELLSCHAFT FÜR ERNÄHRUNGSPHYSIOLOGIE (GfE, 1987) und der 

DEUTSCHEN LANDWIRTSCHAFTS-GESELLSCHAFT (DLG, 1996). Die Rationen wurden 

unter Berücksichtigung der optimalen Nährstoffgehalte mit dem Linearen 

Optimierungsprogramm „Single Mix“ (FORMAT INC., 1990) konzipiert. 

Die Versuchstiere erhielten über den gesamten Versuchszeitraum hinweg ein 

mehliges Alleinfutter zur ad libitum Aufnahme. Während den Ferkeln in der ersten 

Versuchshälfte (1. bis einschließlich 3. Woche) ein Prestarterfutter vorgelegt wurde, 

wurde in der zweiten Versuchshälfte Ferkelaufzuchtfutter I eingesetzt. Die Einzelkomponenten 

und Inhaltsstoffe der eingesetzten Versuchsfutter sind in Übersicht 3 

und Übersicht 4 dargestellt.


Übersicht 3: Zusammensetzung des im ersten Ferkelversuch eingesetzten 

Prestarter- und Ferkelaufzuchtfutters [%] 

Komponenten Prestarterfutter Ferkelaufzuchtfutter I 

Wintergerste - 30,00 


Körnermais 25,00 20,00 

Magermilchpulver 15,00 - 


Fischmehl 7,97 6,00 

Weizenkleie 2,00 - 

Mineralfutter 20-Z (1) 1,65 1,86 


Phosphorsaurer 

(3) - 0,20 

Kalk 

Lysin HCl - 0,07 


1,8 / 0 


0 / 1,8 


(2) 

Zusammensetzung nach Herstellerangaben, siehe Anhangstabelle 5 



1,8 / 0 

0 / 1,8 

Übersicht 4 : Analysierte Rohnährstoff-, Stärke- und Zuckergehalte [% der T] sowie 

berechneter Energiegehalt [MJ ME/kg T] der in der Aufzucht eingesetzten Alleinfutter 

für Ferkel 

Prestarterfutter 

Ferkelaufzuchtfutter I 



Rohfett 4,13 3,67 



Stärke 41,65 440,2 

Zucker 6,43 3,55 

Energie (1) 13,6 13,6 

(1) nach der Schätzgleichung von KIRCHGESSNER und ROTH (1983)


Es wurden entsprechend der Anzahl der Behandlungen 3 verschiedene 

Versuchsmischungen jeweils vom Prestarter- bzw. Ferkelaufzuchtfutter hergestellt. 

Dabei erhielten die Ferkel entweder eine Nullration (0% Echinacea, Negativkontrolle, 

(I)) bzw. als Positivkontrolle (II) die Nullration, die ein in der Ferkelaufzucht 

zugelassenes Fütterungsantibiotikum enthielt, oder ein Versuchsfutter (III), das mit 

1,8% Echinacea-Anteil angereichert war. Da Echinaceae eine Alternative zum pround 

metaphylaktischen Antibiotikaeinsatz darstellen könnten, wurde in der zweiten 

Kontrollgruppe analog zum Broilerversuch das in der Ferkelaufzucht übliche 

Fütterungsantibiotikum Flavophospholipol (Wirkstoff: Flavomycin, 20 mg/kg Futter) 

eingemischt. Der Echinacea-Anteil von 1,8% in der Ration III resultierte aus 

Ergebnissen eines Vorversuches mit abgesetzten Ferkeln (ROTH-MAIER et al., 2001), 

wo eine entsprechende Echinacea-Zulage einen leicht leistungsstimulierenden Effekt 

im Vergleich zu einer geringeren Dosierung ausübte. 

Analog zu den vorausgegangenen Versuchen wurde als Substitut für die Kräutercobs 

Luzernegrünmehl eingesetzt, die Ration wurde zudem durch praxisübliche 

Komponenten ergänzt. Auf eine Pelletierung des Futters wurde aus den bereits 

genannten Gründen (vgl. 3.1.3.) verzichtet. 


3.2.4.1 Futteraufnahme der Ferkel 

Der Futterverbrauch der Ferkel wurde im wöchentlichen Rhythmus erfasst. Aus der 

Differenz zwischen Futtervorlage und Rückwaage konnte die Futteraufnahme des 

Einzeltieres in der entsprechenden Woche direkt berechnet werden. 

3.2.4.2 Lebendmasse der Ferkel 

Die Lebendmasse des Einzeltieres wurde zu Versuchsbeginn sowie am Ende jeder 

Versuchswoche jeweils um 8.oo h mit einer elektronischen Viehwaage (Fa. Pesa, 

Oetwil, Schweiz), die auf einen Messbereich zwischen 0 bis 30 kg mit einer 

Genauigkeit von ± 1 g geeicht war, aus dem Mittelwert von 20 aufeinanderfolgenden


Einzelwiegungen bestimmt. 

3.2.4.3 Futterverwertung der Ferkel 

Die Futterverwertung der Ferkel – definiert als Futterverbrauch pro kg Lebendmassezuwachs 

– konnte von den unter 3.2.4.1 und 3.2.4.2 ermittelten Daten durch Division 

abgeleitet werden. 

3.2.4.4 Blutparameter 

Am Versuchsende wurden analog zum Sauenversuch die immunologischen und 

klinisch-chemischen Versuchsparameter, also die Lymphozytenproliferation (vgl. 

3.6.4.1), das Blutbild (vgl. 3.6.4.2) sowie die Aktivität der Transaminasen (ALT, AST, 

?-GT) und der alkalischen Phosphatase (vgl. 3.6.4.3) bei 6 Ferkeln einer Behandlung 

erfasst. Für die Blutentnahme wurden jeweils die 6 Ferkel, die in der Lebendmasse 

am wenigsten vom Behandlungsmittel abwichen, rekrutiert. 


Der Gesundheitszustand der Tiere wurde täglich beobachtet und dokumentiert, 

außerdem erfolgte täglich eine visuelle Beurteilung der Kotkonsistenz der Tiere. 

3.3 Zuchtsauenversuch 

3.3.1 Tiermaterial 

Der vorliegende Sauenversuch wurde mit den Zuchtsauen des DL- Herdbuchbestandes 

der staatlichen Versuchsstation Hirschau durchgeführt. 

Es kamen 36 Laktationen von insgesamt 33 Sauen zur Auswertung, d.h. drei Tiere 

wurden zweimal, allerdings dann in unterschiedlichen Behandlungen in den Versuch 

einbezogen. Bei Versuchsbeginn am 85. Trächtigkeitstag durften die Sauen, die 

vorher standardisierten Haltungsbedingungen unterworfen waren, keine klinischen


Auffälligkeiten aufweisen. Primipare Tiere wurden generell nicht für den Versuch 

herangezogen. Die Belegung der Zuchtsauen erfolgte durch künstliche Besamung 

mit konserviertem Sperma von DL-Ebern der Schweineprüf- und Besamungsstation 

Schwaben und Oberbayern e.V. (Bergheim). 

3.3.2 Tierhaltung und -betreuung 

Die Haltung der Sauen erfolgte sowohl in der Güstzeit und Gravidität als auch 

während der Laktation in Einzelaufstallung. Die leeren und tragenden Sauen waren 

bis zum 110. Trächtigkeitstag in einem Wartestall in planbefestigten Kastenständen 

eingestallt. Am 110. Trächtigkeitstag erfolgte die Umstallung der Tiere in eine 

dreigeteilte, planbefestigte Abferkelbucht mit fixiertem Ferkelschutzkorb. 

Das Stallklima im Warte- und Abferkelstall wurde weitgehend konstant bei 15 - 20°C 

und 60% relativer Luftfeuchte gehalten. Um im Abferkelbereich den unterschiedlichen 

Ansprüchen von Sau und Ferkel gerecht zu werden, d.h. um den Ferkeln ein 

entsprechend ihres physiologischen Bedarfs angemessenes Mikroklima von 

anfänglich 32 °C zu ermöglichen, befand sich im eingestreuten Aufenthaltsbereich 

der Ferkel ein durch Infrarot-Wärmespots sowie Heizmatten beheiztes Ferkelnest. 

Ferner waren dort der Futterautomat sowie die Nippeltränke für die Saugferkel 

installiert. Die Einzeltierfütterung der Versuchssauen wurde durch speziell 

eingebaute Tröge ermöglicht, zur ad libitum Wasserversorgung der Tiere befanden 

sich in allen Stallbereichen über diesen Einzeltiertrögen Tränkenippel. 

Nach dem Umstallen der Sauen aus dem Deckbereich in den Wartestall erfuhren alle 

unter standardisierten Bedingungen gehaltenen Tiere des Betriebes die gleiche 

Behandlung. D.h. zwischen dem 85. - 90. Trächtigkeitstag erfolgte zur Aufrechterhaltung 

einer belastbaren Immunität eine Wiederholungsimpfung gegen die 

progressive Rhinitis atrophicans (Schnüffelkrankheit) mit 2 ml des inaktivierten 

Impfstoffs Porcilic AR-T (Intervet International B.V, Unterschleißheim, BRD), sowie 

eine Wiederholungsimpfung gegen E. coli-Enteritiden mit 2 ml des inaktivierten 

Impfstoffs Gletvax ad us.vet. (Essex Tierarznei, München, BRD). 

Beim Umstallen in die Abferkelbuchten am 110. Trächtigkeitstag wurden die Sauen 

zunächst gewaschen und anschließend mit einer acariziden und insektiziden 

Waschlösung (Sebacil 50% ad us. vet., Bayer, Leverkusen, BRD) gegen


Ektoparasiten behandelt. 

Am ersten Tag post partum wurde den Ferkeln zur eindeutigen Identifizierung eine 

Ohrnummer tätowiert, ferner wurden die Schwänze kupiert sowie die Eckzähne 

abgeschliffen. Am dritten Lebenstag erhielten die Ferkel eine intramuskuläre 

Eiseninjektion mit 2 ml Ferriphor 10% ad us. vet. (Lohmann Animal Health, 

Cuxhafen, BRD), außerdem wurde zu diesem Zeitpunkt zur Prophylaxe gegen 

Rhinitiden jedem Jungtier 0,5 ml Clamoxyl 15% ad us. vet. (Wirkstoff: Amoxicillin, 

Pfizer, Karlsruhe, BRD) appliziert. Männliche Tiere wurden am dritten Tag post 

partum kastriert. Am 21. Lebenstag erhielten die Ferkel erneut eine Injektion von 

jeweils 1 ml Clamoxyl, gleichzeitig erfolgte die Grundimmunisierung gegen die 

Enzootische Pneumonie mit 2 ml des inaktivierten Impfstoffs Stellamune 

Mycoplasma (Pfizer, Karlsruhe, BRD). 


Um eine Überlagerung des Behandlungseffektes durch systematische Einflussgrößen 

auszuschließen wurden die variablen Faktoren gleichmäßig über alle 

Versuchsgruppen verteilt. 

3.3.3.1 Alter, Lebendmasse und Genetik 

Mit der Prämisse den statistischen Einfluss zu minimieren wurden die Sauen am 85. 

Trächtigkeitstag entsprechend ihrer Wurfnummer, ihrer Lebendmasse sowie ihrer 

genetischen Herkunft gleichmäßig über alle Behandlungsgruppen verteilt, (siehe 

Übersicht 5). Ebenso musste eine gleichmäßige Verteilung der Deckeber 

berücksichtigt werden, um einen Einfluss auf die Ferkelleistung auszuschließen. 

Übersicht 5: Lebendmasse und Altersverteilung der Sauen am 85. Tag der Gravidität 

Gruppe I II III Mittel 

Lebendmasse [kg] 

226 

± 24 

227 

± 29 

233 

± 22 

229 

± 25 

Ø Wurfnummer 

3,75 

± 2,49 

4,00 

± 2,56 

3,50 

± 1,45 

3,75 

± 2,17


3.3.3.2 Wurfgröße 

Da die Anzahl der säugenden Ferkel u.a. die Milchleistung der Sau beeinflusst (VAN 

DER STEEN, 1985) und mit sinkender Ferkelzahl die täglich aufgenommene Milchmenge 

pro Ferkel ansteigt (ELSLEY, 1971) wurde die Wurfgröße auf 8 bis 12 Ferkel 

festgesetzt. Dazu mussten fehlende Tiere direkt nach der Geburt durch Gleichaltrige 

ersetzt werden bzw. Überzählige entfernt werden, wobei maximal 2 Tiere 

ausgetauscht wurden. In Übersicht 6 sind die durchschnittlichen Wurfgrößen in den 

verschiedenen Behandlungsgruppen dargestellt. 

Übersicht 6: Durchschnittliche Versuchsgröße in den Versuchsgruppen 

Gruppe I II III Mittel 

Ferkel / Wurf 9,4 

± 1,0 

8,9 

± 1,1 

9,3 

± 1,2 

9,2 

± 1,1 

3.3.3.3 Abiotische und biotische Faktoren 

Da es durch abiotische Faktoren (z.B. Schadgase, Klima etc.), insbesondere aber 

durch biotische Faktoren (z.B. Bakterien, Viren, Parasiten etc.) bzw. durch ihr 

Überangebot, Vorhandensein oder Nichtvorhandensein zu einer temporären, 

eventuell auch persistierenden Beeinflussung der tierischen Gesundheit und damit 

auch des Immunstatus kommen kann (SOMMER et al. 1991), wurden immer drei 

zeitgleich abferkelnde Sauen zu einem Versuchsdurchgang zusammengefasst. D.h. 

drei innerhalb einer Woche abferkelnde Muttertiere eines Durchgangs wurden jeweils 

der Behandlung I , II und III zugeteilt, so dass eventuelle Auswirkungen dieser 

exogenen Faktoren auf die Versuchsparameter gleichmäßig über alle Versuchsgruppen 

verteilt waren und somit eine Überdeckung des Behandlungseffektes 

auszuschließen war.



Grundlage für die Rationsberechnungen waren die Versorgungsempfehlungen der 

GESELLSCHAFT FÜR ERNÄHRUNGSPHYSIOLOGIE 

(GfE,1987) und des NATIONAL 

RESEARCH COUNCIL (NRC,1998) für Zuchtsauen bzw. Ferkel. 

Die Rationsberechnungen erfolgten unter Berücksichtigung der optimalen Nährstoffgehalte 

mit dem Linearen Optimierungsprogramm „Single Mix“ (FORMAT 

INC.,1990). 

3.3.4.1 Trächtigkeitsfütterung 

Bis zum 84.Trächtigkeitstag wurden die Sauen kombiniert gefüttert. Als Grundfutter 

erhielten sie ca. 4 kg Maissilage, die mit 1,5 kg eines auf Getreidebasis hergestellten 

Ergänzungsfutters auf zwei Mahlzeiten pro Tag verteilt wurde. Am 85. 

Trächtigkeitstag erfolgte die Umstellung auf die als Alleinfutter vorgelegten Versuchs- 

Trächtigkeitsfutter, deren Komponenten und Inhaltsstoffe in Übersicht 7 und 

Übersicht 8 aufgeführt sind. 

Übersicht 7: Zusammensetzung des in der Hochträchtigkeit eingesetzten Alleinfutters 

für tragende Sauen [%] 

Komponenten 

Anteil 

Wintergerste 63,1 

Weizenkleie 19,4 

Luzernegrünmehl (1) 6,4 

Sojaextraktionsschrot 4,0 

Mineralfutter (20-Z) (2) 1,5 

Kohlensaurer Kalk 1,0 

Viehsalz 0,5 

Pflanzenöl (3) 0,5 



(1) unabhängig von der Echinacea-Zulage 




3,6 / 2,4 / 0 

0 / 1,2 / 3,6



berechneter Energiegehalt [MJ ME/kg T] des Trächtigkeitsfutters 

Trächtigkeitsfutter 

Trockenmasse 89,59 

Rohprotein 13,38 

Rohfett 2,66 

Rohfaser 8,70 

Rohasche 6,95 

Stärke 37,64 

Zucker 4,52 

Energie (1) 11,3 

(1) nach der Schätzgleichung von KIRCHGESSNER und ROTH (1983) 

Es wurden entsprechend der Anzahl der Behandlungen 3 verschiedene Versuchs- 

Trächtigkeitsfutter hergestellt, die ausschließlich in ihren Gehalten an Echinacea 

purpurea-Cobs variierten. Dabei erhielten die Sauen entweder eine Kontrollration 

(0% E.p. Anteil, Gruppe I) oder eine Ration, die 1,2 % (Gruppe II) bzw. 3,6% 

Echinacea-Cobs (Gruppe III) enthielt. Die Basisdosierung an Echinacea-Cobs 

richtete sich nach den für den Humanbereich gültigen empfohlenen Zulagenhöhen 

an getrockneten Echinacea purpurea-Presssaftpräparaten, die für einen Erwachsenen 

mit durchschnittlich 70 bis 80 kg LM bei 300 bis 400 mg pro Tag liegt. Diese 

Dosierung entspricht ca. 16,5 mg Trockenpresssaft/kg LM 0,75 . Bei einem unterstellten 

Durchschnittsgewicht der Sauen von 220 kg während der Hochträchtigkeit leitet sich 

daraus eine tägliche Dosierung von 940 mg Trockenpresssaft/ Tier und Tag ab. Laut 

Herstellerangaben ergeben 21 bis 63 mg Pflanzenfrischmasse 1 mg 

Trockenpräparat, d.h. diese Dosierung entspräche einer Zulage von 20 bis 59 g 

Frischmasse pro Tier und Tag. Da 1 kg Pflanzenmasse 0,2 bis 0,5 kg Cobs liefern, 

resultiert nun daraus, angelehnt an obengenannte Dosierung, eine Vorlage von 4 bis 

29,5 g Cobs pro Tier und Tag, was bei einer täglichen Futterzuteilung von 2,6 kg 

einem Echinacea-Cobanteil von 0,15 bis 1,2 % im Futter entspräche. Für 

Versuchsgruppe II wurde aufgrund von Vorversuchen (vgl. 3.1.3) an diese 

Obergrenze gegangen, die für Versuchsgruppe III mit 3,6% Echinacea purpurea-


Cobs im Futter noch um das Dreifache erhöht wurde. Damit war zumindest für ein 

erstes Screening der obere Bereich einer möglichen Zulagenempfehlung abgedeckt. 

Die Echinacea-Cobs wurden dem Futter gemahlen als Grünmehl zugesetzt. Als 

Substitut für Echinacea-Cobs wurden in der Kontrolldiät 3,6% bzw. im Versuchsfutter 

II 2,4% Luzernegrünmehl bei äquikalorischen und äquinitrogenen Anforderungen an 

die Gesamtration eingesetzt, wobei das Luzernegrünmehl in der Zusammensetzung 

sowie Struktur weitestgehend dem Kräutergrünmehl gleicht. 

Bei der Auswahl der restlichen Futtermittel wurde neben einer hohen Praxisrelevanz 

der konzipierten Diät ebenfalls auf einen ausreichenden Rohfasergehalt geachtet, 

um eventuell durch den Bewegungsmangel auftretenden Obstipationen entgegenzuwirken 

und gleichzeitig eine physiologische Sättigung zu erreichen. Ab dem 110. 

Trächtigkeitstag erfolgte bei gleichbleibender Futtermenge stufenweise die 

Umstellung auf das Laktationsfutter; außerdem erhielten die Sauen ab dem 112. 

Trächtigkeitstag täglich 10 g Glaubersalz um eine rasche Darmentleerung zu 

gewährleisten. 

Die Futterzuteilung erfolgte auf Grundlage des Energiebedarfs der hochträchtigen 

Sau. Der Gesamtbedarf addiert sich aus dem Erhaltungsbedarf sowie dem Bedarf für 

maternale Massezunahmen und Trächtigkeitsprodukte, wobei auf ersteren in der 

Hochträchtigkeit ein Anteil von etwa 75 % entfällt. In Stoffwechselversuchen konnte 

für gravide Sauen ab 160 kg LM inklusive eines Zuschlages von 7% im Mittel ein 

Erhaltungsbedarf von 0,44 MJ ME/kg LM 

0,75 ermittelt werden (MÜLLER und 

KIRCHGESSNER,1979; CLOSE und FOWLER,1982; CLOSE und COLE, 1984). Der 

Leistungsbedarf der niedertragenden Sau (1. - 84. Tag) wird von SEEHAWER (1984) 

mit 22 MJ ME/ kg Zuwachs angegeben, bei hochtragenden Tieren wird ein Bedarf 

von 14 MJ ME je kg Zuwachs abgeleitet, wobei insgesamt bei Altsauen ein Zuwachs 

von 35 kg während der gesamten Gravidität unterstellt wird. Bezieht man diese 

Angaben auf ein Leergewicht der Sauen von 180 kg, so ergibt sich in der niedertragenden 

Phase ein Gesamtenergiebedarf der Sau von 25 MJ ME pro Tag, während 

in der Hochträchtigkeit 29 MJ ME pro Tag benötigt werden. Werden die Sauen bis 

zum 85. Trächtigkeitstag täglich mit mindestens 26 MJ ME versorgt, reicht in der 

Hochträchtigkeit bei obengenanntem Gewichtsbereich eine Energiezufuhr von 26 MJ 

ME pro Tag aus, wobei je 10 kg Körpermasse mehr ein Zuschlag von 1 MJ ME 

benötigt wird. Da die Versuchssauen bis zum 84. Trächtigkeitstag mit mindestens 26


MJ ME pro Tag versorgt wurden, wurde auch während der Hochträchtigkeit eine 

ähnlich hohe Energiezufuhr bezogen auf 180 kg Leergewicht angestrebt, um eine 

übermäßige Verfettung und damit einhergehende Geburtsschwierigkeiten zu 

vermeiden. Da das durchschnittliche Leergewicht der Versuchssauen mit ca. 210 kg 

30 kg über dem Referenzwert lag ergab sich somit ein Zuschlag von 3 MJ ME je Tier 

und Tag, d.h. ein Gesamtenergiebedarf von 29 MJ ME pro Tier und Tag. Bei einem 

kalkulierten Energiegehalt im Futter von 11,2 MJ ME resultierte daraus folglich eine 

Futterzuteilung von täglich 2,6 kg für alle Tiere, die auf zwei Mahlzeiten verteilt 

wurde. 

3.3.4.2 Laktationsfütterung 

Für die Laktationsfütterung standen ebenfalls entsprechend der Anzahl der 

Behandlungen 3 Futtermischungen zur Verfügung. Tiere der Gruppe I erhielten 

weiterhin die Kontrollration ohne Echinacea-Anteil, während auf die Gruppe II im 

Laktationsfutter ein Echinacea-Gehalt von 0,5% im Vergleich zu 1,5% Echinacea- 

Anteil im Futter der Gruppe III entfiel. Damit entsprach die Dosierungshöhe insofern 

dem Gehalt im Trächtigkeitsfutter, als dass gleichfalls bei der höchsten Zulagenstufe 

(III) die dreifache Zuteilung der Versuchsgruppe II gewählt wurde. Die 

Basisdosierung in der zweiten Versuchsgruppe richtete sich analog zu der unter 

3.3.4.1 aufgeführten Berechnung nach den für den Humanbereich gültigen 

Empfehlungen für Echinacea-Trockenpressaft - Präparate unter Berücksichtigung der 

jeweiligen metabolischen Körpermasse der Sauen. Dabei benötigten die Tiere 

täglich, wie oben berechnet entsprechend 4 bis 29,5 g Echinacea-Cobs, was bei 

einer maximalen Futteraufnahme von 6 kg pro Tier und Tag einem Echinacea- 

Cobgehalt von 0,06 bis 0,5% im Futter entspräche. In Anlehnung an die im 

Trächtigkeitsfutter gewählte Versorgungshöhe wurde für die Basisdosierung im 

Laktationsfutter II ebenfalls die höchste Versorgungsschwelle angestrebt. Somit 

konnte auch im Leistungsstadium der Laktation mit einer Zulage von 0,5% (II) 

respektive 1,5% (III) ein weiter Bereich der oberen Dosierungsempfehlung untersucht 

werden. Als Substitut für die Echinacea-Cobs wurde analog zum Trächtigkeitsfutter 

Luzernegrünmehl eingesetzt. 

Bei der Auswahl der restlichen Futterkomponenten wurde auf praxisübliche Energieund 

Proteinträger zurückgegriffen, was aufgrund der Versuchsanstellung keine


Einschränkungen mit sich brachte. Die Einzelkomponenten und Inhaltsstoffe der 

Laktationsmischungen sind in Übersicht 9 und Übersicht 10 aufgetragen. 

Übersicht 9: Zusammensetzung des in der Laktation eingesetzten Alleinfutters für 

säugende Sauen [%] 

Komponenten 

Anteil 


Winterweizen 25,0 


Körnermais 12,0 

Fischmehl 3,5 



(2) 1,0 

Kalk 


Viehsalz 0,4 

Luzernegrünmehl (4) 






1,5 / 1,0 / 0 

0 / 0,5 / 1,5 

Futterzuteilung 

Der Energie- und Nährstoffbedarf laktierender Zuchtsauen ist v.a. von der Anzahl der 

säugenden Ferkel abhängig. Allerdings beeinflusst auch eine Beifütterung der Ferkel 

diesen Bedarf, da die Beifütterung einen bedeutenden Beitrag für die Nährstoffeinsparung 

bei der Muttersau darstellt. Da die Ferkel entsprechend der 

Beifutteraufnahme weniger Milch benötigen wird ein zu starkes Absäugen 

insbesondere leichterer Tiere vermieden. KIRCHGESSNER (1997) gibt für 

ferkelführende Sauen mit Beifütterung bei 12 Jungtieren einen täglichen Bedarf von 

72 MJ ME und 920 g XP an, während bei 8 Ferkeln von der Sau täglich 54 MJ ME 

und 650 g XP benötigt werden. Um diese optimale Nährstoff- und Energieversorgung 

der Sauen sicherzustellen, wurde das Laktationsfutter mit 13 MJ ME und 16% XP/ kg 

entsprechend konzentriert gestaltet, da im Laktationsmittel aufgrund der langsamen 

Anfütterung lediglich mit einer täglichen Futteraufnahme von 5 kg zu


rechnen ist. Die täglich vorgelegte Futtermenge wurde insgesamt auf 6 kg begrenzt. 

Die Sauen wurden täglich zweimal gefüttert, die erste Mahlzeit nach der Geburt 

wurden sie genüchtert. Bei der anschließenden Futtervorlage erhielten die Tiere 2,6 

kg, im folgenden wurde die Futtermenge je Mahlzeit um 0,5 kg erhöht, so dass nach 

sieben Mahlzeiten die maximale Futtervorlage von 6 kg erreicht wurde. 


berechneter Energiegehalt [MJ ME/kg T] des Laktationsfutters 

Laktationsfutter 



Rohfett 3,27 

Rohfaser 4,69 

Rohasche 5,56 

Stärke 50,51 

Zucker 3,53 



3.3.4.3 Saugferkelbeifütterung 

Bei der Beifütterung von Saugferkeln ist dem Energie- und Proteinbedarf der 

Jungtiere die Nährstofflieferung über die Sauenmilch gegenüberzustellen. Vergleicht 

man diese beiden Größen miteinander, so wird bei einer normalen Milchleistung der 

Sau der Nährstoffbedarf der Ferkel in den ersten 12 bis 14 Lebenstagen weitgehend 

gedeckt. Danach treten zwischen dem Bedarf und der Versorgung mit Energie und 

Eiweiß immer größere Lücken auf, denen durch eine Beifütterung der Ferkel, am 

Besten bereits ab der 2. Lebenswoche zu begegnen ist (KIRCHGESSNER, 1997). 

Aus diesem Grund erhielten die Ferkel ab dem 10. Laktationstag ein 

Ergänzungsfutter für Saugferkel, das ihnen zur ad libitum Aufnahme in pelletierter 

Form in Futterautomaten vorgelegt wurde. Die Zusammensetzung sowie die 

analysierten Rohnährstoff- und Energiegehalte des Prestarterfutters sind Übersicht 

11 und Übersicht 12 zu entnehmen.


Übersicht 11: Zusammensetzung des Ergänzungsfutters für Saugferkel [%] 

Komponenten 

Anteil 




Haferflocken 10,00 

Fischmehl 8,00 

Magermilchpulver 4,85 

Futterzucker 3,40 



Viehsalz 0,25 




berechneter Energiegehalt [MJ ME/kg T] des Saugferkelbeifutters 




Rohfett 4,41 

Rohfaser 4,51 

Rohasche 6,14 

Stärke 38,65 

Zucker 6,53 


(1) nach der Schätzgleichung von KIRCHGESSNER und ROTH (1983)



3.3.5.1 Futteraufnahme der Sauen 

Nicht verzehrtes Futter wurde morgens vor der Fütterung aus dem Trog entfernt, bei 

– 20°C tiefgefroren und über einen Zeitraum von einer Woche gesammelt. 

Anschließend wurden die gefrorenen Futterreste im Umlufttrockenschrank bei 60°C 

bis zur Gewichtskonstanz getrocknet. Aus der Differenz zwischen Futtervorlage und 

Rückwaage wurde dann die durchschnittliche tägliche Futteraufnahme des 

Einzeltieres in der entsprechenden Woche ermittelt. 

3.3.5.2 Lebendmasse der Sauen 

Die Lebendmasse der Versuchssauen wurde am 85. und 110. Tag der Gravidität 

sowie beim Absetzen am 28. Laktationstag jeweils am Morgen nach der Fütterung 

erfasst. Dazu stand eine Viehwaage (Modell 2005, Fa. Baumann, Thiersheim, BRD) 

zur Verfügung die auf den Messbereich zwischen 50 und 1000 kg mit einer 

Genauigkeit von ± 1 kg geeicht war. 


Die Gewichte der Ferkel wurden am Tag der Geburt, am 14. Lebenstag sowie beim 

Absetzen am 28. Lebenstag bestimmt. Dabei konnten die Geburtsgewichte der 

Ferkel 3 bis 11 Stunden nach Geburtsende ermittelt werden, da in diesem 

Zeitabschnitt nahezu keine Veränderungen der Lebendmasse auftreten 

(KIRCHGESSNER und MERK, 1984). Ansonsten erfolgte die Wiegung am Nachmittag. 

Für die Wägung der Ferkel stand eine elektronische Integralwaage (Fa. Pesa, Oetwil, 

Schweiz) zur Verfügung, die auf den Messbereich von 0 bis 60 kg mit einer 

Genauigkeit von ± 1 g geeicht war. Die Waage ermittelte das Gewicht aufgrund des 

unruhigen Verhaltens der Jungtiere aus 20 aufeinanderfolgenden Einzelwägungen.


3.3.5.4 Ferkelbeifutteraufnahme 

Ab dem 10. Laktationstag erhielten die Ferkel ein Ergänzungsfutter für Saugferkel zur 

ad libitum Aufnahme. Die verzehrte Futtermenge errechnete sich aus der Differenz 

zwischen gesamter Futtervorlage und Rückwaage beim Absetzen. 

3.3.5.5 Körpertemperatur der Sauen 

Die Körpertemperatur der Sauen wurde vom 85. Trächtigkeitstag bis zum Absetzen 

täglich – außer Sonntags – zwischen 15 und 16 Uhr rektal mit einem digitalen Fieberthermometer 

(Fa. Hartmann, BRD) erfasst, das mit einer Genauigkeit von ± 0,1°C 

arbeitete. 


Am 85. Trächtigkeitstag, am Morgen nach der Geburt sowie beim Absetzen am 28. 

Laktationstag wurden bei den Sauen analog zum Ferkelversuch die immunologischen 

und klinisch-chemischen Versuchsparameter, also die Lymphozytenproliferation 

(vgl. 3.6.4.1), das Blutbild (vgl. 3.6.4.2) sowie die Aktivität der 

Transaminasen (ALT, AST, ?-GT) und der alkalischen Phosphatase (vgl. 3.6.4.3) 

erfasst. Diese Parameter wurden beim Absetzen ebenfalls bei jeweils 2 Ferkeln eines 

Wurfes analysiert. Dafür wurden die 2 Ferkel herangezogen, die in der Lebendmasse 

am wenigsten vom mittleren Absetzgewicht des Wurfes abwichen. 

3.3.5.7 Milchparameter 

Aus dem Kolostrum wurde der Rohproteingehalt (vgl. 3.6.3.1) bestimmt, außerdem 

erfolgte die Quantifizierung der Immunglobulin G Subklasse IgG1 (vgl. 3.6.3.2). 


Der Gesundheitszustand der Sauen und Ferkel wurde täglich beobachtet und festgehalten, 

darüber hinaus erfolgte täglich eine visuelle Beurteilung der Kotkonsistenz 

der Saugferkel.


3.4 Ferkelversuch II 


In diesem vierwöchigen zweiten Ferkelversuch wurden die abgesetzten Ferkel von 

insgesamt 24 im Sauenversuch verwendeten DL- Herdbuch Zuchtsauen der 

staatlichen Versuchsstation Hirschau (vgl. 3.3) eingesetzt. Dabei wurden von jeder 

Behandlung 8 Würfe berücksichtigt, wobei immer ein Dreier-Block eines zeitgleichen 

Durchgangs herangezogen wurde. 

Die reinrassigen DL- Ferkel, die am 28. Lebenstag von der Sau abgesetzt wurden, 

verblieben noch bis zum folgenden Tag in den Abferkelbuchten, so dass der 

Absetzstress reduziert war. Am 29. Lebenstag erfolgte dann die Umstallung in den 

Ferkelaufzuchtstall der staatlichen Versuchsstation Hirschau. 

Die Tiere wurden während des Versuches im klimatisierten Flat Deck Stall in 

vollperforierten Gruppenbuchten gehalten, wobei die Tiere eines Wurfes (8 bis 12 

Ferkel) unter Berücksichtigung der Lebendmasse gleichmäßig auf zwei Buchten 

verteilt wurden und somit 2 Versuchseinheiten bildeten. Diese Zweiteilung der Würfe 

war notwendig, um eine zu hohe Besatzdichte sowie ein zu weites Fressplatz : Tier- 

Verhältnis auszuschließen. Die Flat Deck Buchten hatten eine Abmessung von 

190*140 cm; auf der einen Seite befand sich eine Nippeltränke, so dass eine ad 

libitum Wasserversorgung der Tiere gewährleistet war, auf der gegenüberliegenden 

Seite war ein Futterautomat mit mehreren Fressplätzen installiert. Das Stallklima 

wurde entsprechend der Bedürfnisse der wachsenden Tiere analog zu den im Kapitel 

3.2.1 beschriebenen Klimafaktoren gestaltet. 

Die Versuchsfaktoren waren für alle Ferkel gleich, so dass eine direkte 

Vergleichbarkeit der verschiedenen Würfe hinsichtlich ihrer Leistungsparameter und 

Gesundheit möglich war. Damit konnten eventuelle Auswirkungen der Echinacea- 

Zulage an das Muttertier auf die Vitalität der Nachkommen in dieser 

Beobachtungsphase erfasst werden.



Grundlage für die Rationsberechnung waren die Versorgungsempfehlungen für 

Ferkel der GESELLSCHAFT FÜR ERNÄHRUNGSPHYSIOLOGIE (GfE, 1987) und der 

DEUTSCHEN LANDWIRTSCHAFTS-GESELLSCHAFT (DLG, 1996). Die Ration wurde unter 

Berücksichtigung der optimalen Nährstoffgehalte mit dem Linearen Optimierungsprogramm 

„Single Mix“ (FORMAT INC., 1990) konzipiert. 

Alle Versuchstiere erhielten über den gesamten vierwöchigen Versuchszeitraum 

hinweg das gleiche Futter vom Typ Ferkelaufzuchtfutter I zur ad libitum Aufnahme. 

Die Einzelkomponenten und Inhaltsstoffe des eingesetzten Versuchsfutters sind in 

Übersicht 13 und Übersicht 14 aufgeführt. Da im Verlauf dieser vierwöchigen 

Beobachtungsphase die möglichen Auswirkungen der Echinacea-Versorgung der 

Muttersauen auf ihre Nachkommen untersucht werden sollten, waren weder 

Ergotropika noch Echinacea-Anteile im Futter enthalten. Als Komponenten wurden 

ausschließlich praxisübliche Futtermittel eingesetzt. Das Futter war – wie in der 

Ferkelaufzucht üblich – pelletiert. 

Übersicht 13: Zusammensetzung des im zweiten Ferkelversuch eingesetzten 

Ferkelaufzuchtfutters [%] 

Komponenten 





Körnermais 20,00 

Fischmehl 5,33 

Mineralfutter 20-Z (1) 2,00 



(3) 0,20 

Kalk (1) Zusammensetzung nach Herstellerangaben, siehe Anhangstabelle 3 

(2) 


(3) 

Zusammensetzung nach Herstellerangaben, siehe Anhangstabelle 4



berechneter Energiegehalt [MJ ME/kg T] des Ferkelaufzuchtfutters I 




Rohfett 3,57 

Rohfaser 4,44 

Rohasche 5,44 

Stärke 45,53 

Zucker 4,06 




3.4.3.1 Futteraufnahme der Ferkel 

Die Futteraufnahme der Ferkel wurde im Zwei-Wochen-Rhythmus erfasst. Aus der 

Differenz zwischen Futtervorlage und Rückwaage konnte der Futterverbrauch pro 

Gruppenbucht in diesem Zeitraum berechnet werden. Hiervon konnte durch Division 

der Tierzahl sowie der Anzahl der Messtage die durchschnittliche tägliche 

Futteraufnahme des Einzeltieres in diesem Messintervall abgeleitet werden. Da die 

Tiere eines Wurfes auf zwei Versuchseinheiten verteilt wurden, wurde der 

entsprechende Gruppenmittelwert aus den Einzelwerten der beiden Buchten 

ermittelt. 


Die Lebendmasse der einzelnen Ferkel wurde zu Versuchsbeginn sowie im 14- 

tägigen Rhythmus jeweils um 8.oo h mit einer elektronischen Viehwaage (Fa. Pesa, 

Oetwil, Schweiz), die auf einen Messbereich zwischen 0 bis 30 kg mit einer 

Genauigkeit von ± 1 g geeicht war aus dem Mittelwert von 20 aufeinanderfolgenden 

Einzelwiegungen bestimmt. Da die Tiere eines Wurfes auf zwei Versuchseinheiten


verteilt wurden, wurde der entsprechende Gruppenmittelwert aus den Einzelwerten 

der beiden Buchten ermittelt. 

3.4.3.3 Futterverwertung der Ferkel 

Die Futterverwertung der Ferkel – definiert als Futterverbrauch pro kg Lebendmassezuwachs 

– konnte von den unter 3.4.3.1 und 3.4.3.2 ermittelten Daten durch 

Division abgeleitet werden. 


Der Gesundheitszustand der Tiere wurde täglich beobachtet und dokumentiert, 

außerdem erfolgte täglich eine visuelle Beurteilung der Kotkonsistenz der Tiere. 

3.5 Schweinemastversuch 


Der vorliegende Schweinemastversuch wurde mit 48 Hybridferkeln, davon 25 

Kastraten und 23 weibliche Tiere durchgeführt. Die Ferkel aus einer 

Zweirassenkreuzung von Deutsche Landrasse Sauen mit Pietrain Ebern wurden bis 

zum Absetzen am 21. Lebenstag bei einem konventionellen Ferkelerzeugerbetrieb 

im nördlichen Landkreis Freising analog zu den im Ferkelversuch verwendeten 

Tieren (vgl. 3.2) gehalten und behandelt. Am 21. Lebenstag erfolgte dann die 

Umstallung in die Versuchsanlage Tierernährung, wo sie im Ferkelaufzuchtstall eine 

sechswöchige Aufzuchtphase durchliefen. Anschließend wurden die Tiere 14 Tage in 

der Gruppe auf Stroh gehalten, bis sie zwei Tage vor Versuchsbeginn in den 

vollklimatisierten Schweinemaststall umgestallt wurden. Die Versuchsdauer betrug 9 

Wochen, die Läufer wiesen zu Versuchsbeginn ein durchschnittliches Alter von 86 ± 

6 Tagen auf. 

Die Tiere wurden in planbefestigten Einzeltierbuchten gehalten, die voneinander


durch Gitterstäbe getrennt waren. Die Einzeltierbuchten hatten eine Abmessung von 

260 * 100cm; auf der einen Seite befand sich eine Nippeltränke, so dass eine ad 

libitum Wasserversorgung der Tiere gewährleistet war, auf der gegenüberliegenden 

Seite war der Futterautomat installiert. Um den Mastschweinen ein bedarfsgerechtes 

Stallklima zu ermöglichen, wurde die relative Luftfeuchte kontinuierlich bei 55 bis 

60% gehalten, während eine Temperatur von ca. 20°C angestrebt wurde. 

Die Schweine wurden auf 3 verschiedene Behandlungsgruppen mit jeweils 16 

Wiederholungen verteilt. 


Mit der Prämisse, eine Überlagerung des Behandlungseffektes durch systematische 

Einflussgrößen zu vermeiden, wurden die variablen Faktoren Lebendmasse, Genetik 

sowie das Geschlechterverhältnis gleichmäßig über alle Versuchsgruppen verteilt. 

Die Zuteilung der Einzeltierkäfige auf die verschiedenen Behandlungen erfolgte 

zufällig. 



Mastschweine der DEUTSCHEN LANDWIRTSCHAFTS-GESELLSCHAFT (DLG, 1995) und 

des NATIONAL RESEARCH COUNCIL (NRC, 1998). Die Rationen wurden unter Berücksichtigung 

der optimalen Nährstoffgehalte mit dem Linearen Optimierungsprogramm 

„Single Mix“ (FORMAT INC., 1990) konzipiert. 

Da JURCIC et al. (1989) eine intervallartige Echinacea-Applikation einer dauerhaften 

Therapie vorziehen und die Administrationsdauer in der offiziellen Monographie der 

Kommission E für Echinacea-Präparate (BLUMENTHAL et al., 1998) mit maximal 8 

Wochen angegeben wird, wurde im vorliegenden 9-wöchigen Versuch eine Intervall- 

Applikation durchgeführt. D.h. die Tiere erhielten im ersten und letzten Versuchsdrittel 

(1. bis einschließlich 3. Woche sowie 7. bis einschließlich 9. Woche) die 

entsprechenden Versuchsfutter mit der vorgesehenen Echinacea-Zulage, während


im zweiten Versuchsdrittel, also in der 4., 5. und 6. Woche eine Phase 

zwischengeschaltet war, in der keine Echinacea-Applikation erfolgte und alle Tiere 

die Kontrollration erhielten. Den Mastschweinen wurde über den gesamten 

Versuchszeitraum hinweg ein mehliges Alleinfutter angeboten. Während der 1. 

Applikationsphase und der Kontrollphase, also vom Versuchsbeginn bis zum Ende 

der 6. Mastwoche wurde den Tieren entsprechend des Gewichtsbereiches 

Schweinemast-Alleinfutter I vorgelegt, ab der 7. Woche konnte dann während der 2. 

Applikationsphase bis zum Versuchsende Schweinemast-Alleinfutter II mit 

reduziertem Proteingehalt, aber gleichem Energiegehalt eingesetzt werden. Die 

Einzelkomponenten und Inhaltsstoffe der eingesetzten Versuchsfutter sind in 

Übersicht 15 und 16 dargestellt. In den Versuchsgruppen wurde als Echinacea- 

Präparat entweder Echinacea-Grünmehl (Gruppe III) oder der im Humanbereich mit 

Erfolg angewandte Echinacea-Presssaft (Gruppe II) eingesetzt. Dabei wurde analog 

zu den vorausgegangenen Versuchen das Kräutergrünmehl in die Versuchsration 

eingemischt, während der Presssaft den Tieren bei jeder Mahlzeit auf das Futter 

dosiert wurde. D.h. die Tiere der Fütterungsgruppe II erhielten wie auch die 

Kontrolltiere (I) die Placeboration ohne alimentären Echinacea-Anteil. 

Übersicht 15: Zusammensetzung des eingesetzten Schweinemast-Alleinfutters I und 

II [%] 

Komponenten 

Alleinfutter I 

Alleinfutter II 

Wintergerste 48,00 54,30 



Mineralfutter (20-Z) (1) 2,55 2,05 


Monocalciumphosphat (3) 0,20 - 

Kohlensaurer Kalk (4) - 0,25 

Lysin HCl 0,08 0,18 


0,15 / 0 


0 / 0,15 

(1) 



(3) 


(4) 



0,15 / 0 

0 / 0,15



berechneter Energiegehalt [MJ ME/kg T] des Schweinemastalleinfutters I und II 

Alleinfutter I 

Alleinfutter II 



Rohfett 2,38 2,63 



Stärke 45,43 49,94 

Zucker 4,61 3,98 

Energie (1) 13,5 13,6 


Der vergleichende Einsatz des Echinacea-Presssaftes in diesem Mastversuch wurde 

durchgeführt um abzuklären, ob dieses pharmazeutische Präparat (Echinacin ® ) nach 

peroraler Applikation bei der Spezies Schwein überhaupt seine durch zahlreiche 

Studien im Humanbereich belegte immunologische Wirkung entfaltet/ entfalten kann. 

Allerdings wurde auf den Einsatz von Echinacin ® verzichtet, das laut Herstellerangaben 

durchschnittlich 80% Echinacea-Presssaft bei einem Ethanolgehalt von 

22% enthält, da es sonst in der Kontrollgruppe ebenfalls notwendig gewesen wäre, 

ein ethanolisches Präparat vorzulegen. Eingesetzt wurde stattdessen der reine 

Echinacea purpurea-Presssaft, der durch Hitzesterilisation anstelle der Ethanolbeigabe 

konserviert wurde. Die Höhe der Presssaft-Vorlage je Tier und Tag richtete 

sich nach den Dosierungsempfehlungen für Echinacin ® im Humanbereich unter 

Berücksichtigung der jeweiligen metabolischen Körpermasse der Schweine. Laut 

Herstellerangaben werden für einen Erwachsenen mit einem durchschnittlichen 

Gewicht von 70 kg täglich 7,5 ml Echinacin ® empfohlen, was einer Einnahme von 6,0 

ml reinem Presssaft entspräche. Bezogen auf die metabolische Körpermasse leiten 

sich hieraus 0,25 ml je kg LM 0,75 ab, was bei einem Gewicht der Schweine von 40 

kg, das in etwa dem Mittel der ersten Applikationsphase entsprach, eine Presssaft- 

Zufuhr von 4,0 ml je Tier und Tag ergeben würde. Verteilt auf zwei


Futtervorlagen am Tag führte das bei der Behandlungsgruppe II in der ersten 

Applikationsphase zu einer Echinacea-Presssaft-Vorlage von 2,0 ml je Mahlzeit. Der 

Presssaft wurde den Tieren direkt auf das frisch vorgelegte Futter in die Futterschale 

dosiert, so dass auch bei Tieren, die nur wenig Futter verzehrten, eine einwandfreie 

Presssaftaufnahme sichergestellt war. 

In Versuchsgruppe III wurde das Echinacea-Grünmehl in gleicher Höhe wie der 

Presssaft in Gruppe II – bezogen auf das Ausgangsprodukt – vorgelegt. Dabei wurde 

der benötigte Grünmehlgehalt anhand folgender Berechnung hergeleitet: Zur 

Erzeugung von 1 ml Presssaft sind bei einer durchschnittlichen Ausbeute von 50% 

2 g Pflanzenfrischmasse notwendig; da das Kraut der Echinaceae im Mittel 30% 

Trockensubstanz enthält entspricht das 0,6 g T. Geht man von einem mittleren 

Trockensubstanzgehalt des Grünmehls von 90% aus, so werden aus 2 g Frischmasse 

0,67 g Grünmehlcobs erzeugt. D.h. 1 ml Presssaft ˜ 2 g Frischpflanze ˜ 0,67 

g Echinacea-Cobs. Die Vorlage von 4 ml Presssaft je Tier und Tag in der 1. 

Applikationsphase (Gruppe II) entspricht demnach 2,7 g Grünmehl je Tier und Tag 

(Gruppe III). Bei einer unterstellten Futteraufnahme in diesem Mastabschnitt von 

durchschnittlich 1,75 kg täglich ergibt sich folglich für die Futterration ein Anteil von 

0,15% Echinacea-Cobs. Damit entspricht dieser Grünmehlgehalt im Futter in etwa 

dem unteren empfohlenen Dosierungsbereich der vorausgegangenen Versuche 

(s.d.), in denen allerdings bewußt Zulagen im oberen Bereich bzw. oberhalb der 

Dosierungsschwelle gewählt wurden. Durch den vorliegenden zusätzlichen Versuch 

konnte somit auch der untere Versorgungsbereich hinreichend abgedeckt werden. 

Für die zweite Applikationsphase wurde aufgrund der Lebendmassezunahmen der 

Versuchstiere eine Dosierung von 6 ml Echinacea-Presssaft pro Tag in der 

Behandlungsgruppe II – verteilt auf jeweils 2 Mahlzeiten (s.o.) – gewählt. Daraus 

leitete sich für die Behandlungsgruppe III bei einer unterstellten mittleren 

Futteraufnahme in diesem Abschnitt von 2,6 kg und einem mittleren Gewicht von 70 

kg ein Echinacea-Grünmehlgehalt im Futter von ebenfalls 0,15% ab. 

In Anlehnung an die vorausgegangenen Versuche wurde als Substitut für die 

Kräutercobs in der Nullration ebenfalls Luzernegrünmehl eingesetzt, da dieses in der 

Struktur sowie in der Zusammensetzung der Nährstofffraktionen dem Kräutergrünmehl 

ähnlich ist. Als weitere Komponenten wurden praxisübliche Energie- und 

Proteinträger ausgewählt. Auf eine Pelletierung des Futters wurde gleichermaßen


aus obengenannten Gründen (vgl.3.1.3) verzichtet. 

Die Vorlage des Futters erfolgte restriktiv nach Rationsliste (KIRCHGESSNER,1997). 

Dabei wurde von einer Zuteilungstabelle, die auf einem Energiebedarf für mittlere 

Tageszunahmen von 750 g bei einem mittleren Energiegehalt des Futters von 13,0 

MJ ME /kg basiert, die unten beschriebene Regressionsgleichung für die 

entsprechende Alleinfuttervorlage abgeleitet. Das Aufstellen einer Regressionsgleichung 

war notwendig, weil aus der Rationsliste lediglich die benötigte 

Alleinfuttermenge für Gewichtsabschnitte beschrieben ist, für den vorliegenden 

Versuch aber das exakte Lebendgewicht für die Futterzuteilung ausschlaggebend 

war. 

Futtervorlage je Mahlzeit (g) = [35,12 + (LM * x 25,63) – (LM 2 x 0,11)] x 0,95 

* Lebendmasse in g 

In die Regressionsgleichung ging nun also das Lebendgewicht des Tieres zu Beginn 

der jeweiligen Versuchswoche als wichtigster Faktor ein, außerdem wurde der 

berechnete Wert zur Korrektur mit dem Faktor 0,95 multipliziert, da der Energiegehalt 

des Futters nicht bei 13 sondern bei 13,5 MJ ME je kg lag. Die Futterberechnung 

wurde wöchentlich für jedes Tier durchgeführt. Die Mastschweine erhielten über den 

gesamten Versuch hinweg täglich zwei Mahlzeiten. 

3.5.4 Impfung der Mastschweine 

Da im Rahmen des Versuchsgeschehens der mögliche Einfluss einer Echinacea- 

Zulage auf die spezifische Antikörper-Bildung untersucht werden sollte, wurden die 

Mastschweine am Ende der ersten Versuchswoche sowie am Ende der fünften 

Versuchswoche mit einer handelsüblichen Rotlauf-Vakzine (Porcilis Ery ad us. vet., 

Intervet, Unterschleißheim, BRD) immunisiert. Die Applikation des Impfstoffs erfolgte 

intramuskulär, wobei eine Impfdosis Dosis 2 ml umfasste. Damit entsprach die 

Impfung der konventionellen Praxis einer Grundimmunisierung. Als immunologischer 

Parameter wurden bei den Tieren die Rotlauf-Antikörpertiter im Plasma als Grad der


Reaktion des Immunsystems auf den Impfstoff herangezogen. 


3.5.5.1 Futteraufnahme der Mastschweine 

Der Futterverbrauch der Mastschweine wurde im wöchentlichen Rhythmus erfasst. 

Aus der Differenz zwischen Futtervorlage und Rückwaage konnte die durchschnittliche 

tägliche Futteraufnahme des Einzeltieres in der entsprechenden Woche 

direkt berechnet werden. 

3.5.5.2 Lebendmasse der Mastschweine 

Die Lebendmasse der Versuchstiere wurde zu Versuchsbeginn sowie nach jeder 

einzelnen Versuchswoche am Morgen vor der Fütterung erfasst. Dazu stand eine 

Viehwaage (Modell Minipond 85, Fa. Koowa, BRD) zur Verfügung, die auf den 

Messbereich zwischen 10 und 300 kg mit einer Genauigkeit von ± 0,2 kg geeicht war 

3.5.5.3 Futterverwertung der Mastschweine 

Die Futterverwertung der Mastschweine – definiert als Futterverbrauch pro kg 

Lebendmassezuwachs – konnte von den unter 3.5.5.1 und 3.5.5.2 ermittelten Daten 

durch Division abgeleitet werden. 


Zu Beginn des Versuches sowie am Ende jeder Versuchswoche – mit Ausnahme der 

vierten und fünften Woche – wurde den Mastschweinen Blut entnommen (vgl. 3.6.4). 

Untersucht wurde als immunologischer Parameter die Entwicklung der Rotlauf- 

Antikörpertiter (vgl. 3.6.4.4) nach der erfolgten Immunisierung mit einer 

handelsüblichen Rotlauf-Vakzine, außerdem wurde analog zum Sauen- und 

Ferkelversuch als klinisch-chemischer Parameter das Blutbild (vgl. 3.6.4.2) erfasst.



Der Gesundheitszustand der Mastschweine wurde täglich beobachtet und dokumentiert, 

ferner erfolgte täglich eine visuelle Beurteilung der Kotkonsistenz der Tiere. 

3.6 Probengewinnung, Aufbereitung und Analyseverfahren 

3.6.1 Futter 

3.6.1.1 Nährstoffgehalte 

Für die vorliegenden Versuche wurden jeweils mehrere Mischungen des gleichen 

Versuchsfutters hergestellt. Aus jeder Charge wurde vorschriftsgemäß (NAUMANN 

und BASSLER, 1976) eine Probe gezogen, d.h. die Nährstoffanalyse der 

verschiedenen Versuchsfutter stellt das Ergebnis aliquoter Mischproben dar. 

Die Bestimmung von Trockensubstanz, Rohnährstoffen, Zucker und Stärke erfolgte 

nach NAUMANN und BASSLER (1976). Für die Rohnährstoffanalyse mussten die 

aliquoten Mischproben mit einer Trommelmühle (Modell SR 3, Fa. Retsch, Haan, 

BRD) auf eine Partikelgröße von 1 mm zerkleinert werden, für die Zucker- und 

Stärkeanalytik war eine Teilchengröße von 0,5 mm notwendig. 

3.6.1.2 Energiegehalte 

Die Energiegehalte der Futtermischungen konnten mit den unten aufgeführten 

Gleichungen zur Schätzung der umsetzbaren Energie (ME) in Geflügelmischfuttern 

nach der WORLD`S POULTRY ASSOCIATION (WPSA) bzw. in Schweinemischfuttern 

nach KIRCHGESSNER und ROTH (1983) anhand der analysierten Rohnährstoffe (g/kg) 

errechnet werden. 

Schätzformel für Geflügelmischfutter: 

ME (MJ/kg) = (15,51 XP + 34,31 XL + 16,69 XS + 13,01 XZ) *10 -3


Schätzformel für Schweinemischfutter: 

ME (MJ/kg) = (22,3 XP + 34,1 XL + 17,0 XS + 16,8 XZ + 7,4 OR – 10,9 XF) * 10 -3 

Hierbei ist der organische Rest (OR) als organische Masse abzüglich Rohprotein 

(XP), Rohfett (XL), Rohstärke (XS), Rohzucker (XZ) und Rohfaser (XF) definiert. 

3.6.2 Echinacea-Grünmehl und -Presssaft 

Cichoriensäure- und Alkamidgehalte der Echinacea-Präparate 

Die immunstimulierende Wirkung von Echinacea-Zubereitungen wird von BAUER und 

WAGNER (1991) sowie HOBBS (1994) v.a. den polaren Kaffeesäurederivaten (v.a. 

Cichoriensäure), den lipophilen Alkamiden und den Polysacchariden zugeschrieben. 

Um zumindest in gewissen Grenzen eine Standardisierung bzw. Vergleichbarkeit von 

Echinacea-Präparationen, die stark schwankende Gehalte an diesen Inhaltsstoffen 

aufweisen, vornehmen zu können wurden von BAUER (1997) Methoden zur Messung 

des Cichoriensäure- und Alkamidgehaltes in Echinacea-Zubereitungen entwickelt. 

Da das Versuchsfutter zu unterschiedlichen Zeitpunkten gemischt wurde, und von 

PERRY et al. (2000) ein starker Rückgang der Alkamidkonzentration durch die 

Lagerung beschrieben wurde, wurden regelmäßig Proben des eingesetzten 

Echinacea-Grünmehls bzw. -Presssaftes im Labor des Instituts für Pharmazeutische 

Biologie der Heinrich Heine Universität Düsseldorf auf ihren Cichoriensäure- und 

Alkamidgehalt untersucht. Für die beiden Broilerversuche, den ersten Ferkelversuch 

sowie für den Sauenversuch, die im Jahr 2000 durchgeführt wurden, wurde 

Echinacea der gleichen Charge (Ernte 1999) verwendet. Im Schweinemastversuch, 

der Anfang 2001 begann, wurden Echinaceae der Ernte 2000, also einer anderen 

Charge eingesetzt. Dieser Schritt wurde gewählt, damit kein überlagertes Produkt 

zum Einsatz kam, obwohl entsprechend der Untersuchungen von BAUER (1997) und 

OSOWSKI (2000) erhebliche Unterschiede verschiedener Chargen hinsichtlich ihres 

Inhaltsstoffmusters bestehen. Die Ergebnisse der Cichoriensäure- und 

Alkamidanalysen sind für die verschiedenen Untersuchungszeitpunkte in Übersicht 

17 und Übersicht 18 dargestellt.


Übersicht 17: Analysierte Cichoriensäuregehalte [g/100g] in Echinacea purpurea- 

Cobs und -Presssaft in Abhängigkeit von der Lagerungsdauer und der Charge 


Echinacea-Presssaft 

1. Charge 

Januar 2000 0,42 - 

Mai 2000 0,34 - 

September 2000 0,29 - 

2. Charge 

Februar 2001 0,17 - 

Presssaft 

Februar 2001 - 

Unterhalb der 

Nachweisgrenze 

Übersicht 18: Analysierte Alkamidgehalte in Echinacea purpurea-Cobs [mg/100g] 

und -Presssaft [mg/100ml] in Abhängigkeit von der Lagerungsdauer und der Charge 


Echinacea-Presssaft 

1. Charge 

Januar 2000 67,51 - 

Mai 2000 10,81 - 

September 2000 10,70 - 

2. Charge 

Februar 2001 44,09 - 

Presssaft 

Februar 2001 - 0,53 

Extraktion der hydrophilen Bestandteile (u.a. Cichoriensäure) 

Das pulverisierte Probenmaterial (Grünmehl) wurde mit 70%igem Methanol im 

Ultraschall extrahiert und anschließend filtriert, der Presssaft wurde zur Extraktion 

lediglich mit 0,001 N Phosphorsäure verdünnt (BAUER, 1997). 

Extraktion der lipophilen Bestandteile (u.a. Alkamide) 

Das pulverisierte Probenmaterial (Grünmehl) wurde mit Chloroform in der Soxhlet- 

Apparatur extrahiert, nach Entfernung des Lösungsmittels in Methanol gelöst, mit 5 

%iger Bleiacetatlösung versetzt und anschließend über Kieselgur filtriert. Nach der 

Elution mit Chloroform und der Trocknung des Eluats über Natriumsulfat wurde der 

Trockenrückstand mit Ethanol gelöst. Der Presssaft wurde zur Extraktion der


lipophilen Bestandteile auf eine Extrelut ® 20-Säule (Merck, Darmstadt, BRD) 

gegeben und anschließend mit Chloroform eluiert. Das Eluat wurde am 

Rotationsverdampfer zur Trockne eingeengt und dann in Ethanol aufgenommen 

(BAUER, 1997). 

Messung der Cichoriensäure- und Alkamidgehalte 

Die extrahierten lipophilen und hydrophilen Inhaltsstoffe wurden getrennt mittels 

HPLC analysiert, wobei die von BAUER et al. (1987, 1988a, 1988b und 1989) und 

BAUER (1997) publizierten Methoden Verwendung fanden. Zur Bestimmung dieser 

Komponenten stand ein HP 1050 Flüssigkeitschromatograph mit HP 1040A 

Photodiodenarray-Detektionssystem und HP Chemstation (Hewlett-Packard, 

Waldbronn, BRD) zur Verfügung. Die Trennsysteme für die Alkamide und 

Cichoriensäure sowie die Einspritzmenge der aufgeschlossenen Presssaft- 

Analysenlösung sind der von BAUER (1997) veröffentlichten Methode zu entnehmen. 

Bei der Untersuchung des Echinacea-Grünmehls wurden zur Auftrennung der 

lipophilen Komponenten 5µl Analysenlösung in den HPLC eingespritzt, während bei 

der hydrophilen Fraktion 1µl der Analysenlösung verwendet wurden. Die 

Untersuchung der Alkamide bezog sich auf die isomeren Dodeca-2E,4E,8Z,10E/Ztetraensäureisobutylamide, 

die die Hauptverbindungen der Alkamide darstellen. 

Die Gehaltsbestimmung erfolgte nach der Methode des Externen Standards mittels 

Referenzsubstanz von isoliertem Dodeca-2E,4E,8Z,10E/Z-tetraensäureisobutylamid 

bzw. Cichoriensäure. 

3.6.3 Milch 

Kolostrum wurde im Sauenversuch (vgl. 3.3) 1 bis 6 h nach Geburtsbeginn aus 

mindestens 4 verschiedenen gereinigten Zitzen der rechten Gesäugeleiste 

entnommen. In diesem Zeitraum treten wie die Untersuchungen von JACKSON et al. 

(1995) zeigten nur geringfügige Veränderungen im Protein-, Fett- und Lactosegehalt 

der Milch auf, ferner bleibt die Konzentration an Immunglobulin G in dieser Phase 

relativ konstant. 

Nach der Entnahme wurde die Milch zur Entfernung von Schmutzpartikeln durch


Glaswolle (Fa. Merck, Darmstadt, BRD) filtriert und anschließend für die Rohnährstoffanalytik 

bei –20°C bzw. für die Immunglobulin-Bestimmung bei –80°C in 

Aliquoten tiefgefroren. 

3.6.3.1 Rohproteingehalt im Kolostrum 

Die Analyse von Rohprotein im Kolostrum erfolgte nach den Prinzipien der Weender 

Futtermittelanalyse (NAUMANN und BASSLER, 1976). 

Der Rohproteingehalt wurde standardmäßig nach der Methode von Kjeldahl 

(Aufschluß mit konzentrierter Schwefelsäure, Destillation und Rücktitration der 

verbleibenden, nicht durch den freigesetzten Ammoniak verbrauchten Schwefelsäurevorlage) 

bestimmt. Man erhält dabei den N-Gehalt der untersuchten Substanz, 

der mit dem Faktor 6,37 (Proteinumrechnungsfaktor für Milchprodukte) multipliziert 

werden muss, um den Rohproteingehalt der Ausgangssubstanz zu erhalten. 

3.6.3.2 Immunglobilin G-Gehalt im Kolostrum 

Der Gehalt der Immunglobulin G Subklasse IgG1 im Kolostrum wurde aus dem bei 

–80°C tiefgefrorenen Probenmaterial vom LANDESUNTERSUCHUNGSAMT FÜR DAS 

GESUNDHEITSWESEN SÜDBAYERN in Oberschleißheim in Anlehnung an den unter 

3.6.4.4 beschriebenen ELISA bestimmt. 

3.6.4 Blut 

Blutentnahme bei den Zuchtsauen 

Am 85. Trächtigkeitstag, am Morgen nach der Geburt sowie am 28. Laktationstag 

wurde den Sauen jeweils um 8.3o h 2 x 9 ml Blut aus der Vena jugularis externa 

entnommen. Hierzu mussten die Sauen mittels einer Rüsselschlinge im Kastenstand 

fixiert werden. Am 28. Laktationstag wurde außerdem von zwei Saugferkeln, die vom 

mittleren Gewicht des Wurfes am wenigsten abwichen, die äquivalente Blutmenge 

aus der Halsvene entnommen. Die Ferkel wurden zur Blutentnahme auf einem 

Klappgestell in Rückenlage von zwei Personen gehalten.


Blutentnahme bei den Absetzferkeln aus dem Ferkelversuch I 

Am Versuchsende wurden von jeweils 6 Ferkeln einer Behandlung ebenfalls 2 x 9 ml 

Blut aus der Jugularvene entnommen. Aufgrund der zeitaufwendigen Analytik konnte 

hierbei lediglich die Hälfte der Versuchstiere berücksichtigt werden. Als Kriterium für 

die Auswahl der Ferkel galt das Lebendgewicht der Tiere beim Versuchsende. Für 

die Blutanalytik wurden jeweils die 6 vom Gruppenmittel am wenigsten 

abweichenden Tiere rekrutiert. Die Entnahme erfolgte analog zu der oben beschriebenen 

Methode. 

Blutentnahme bei den Mastschweinen 

Bei den Mastschweinen wurden alle 48 Versuchstiere bei der Blutentnahme 

berücksichtigt, da die zu analysierenden Parameter eine hohe Tierzahl erforderten. 

Die erste Blutentnahme erfolgte hier zu Versuchsbeginn, anschließend wurde den 

Tieren während der 21-tägigen ersten Applikationsphase im einwöchigen Rhythmus, 

also insgesamt dreimal Blut entnommen. Die fünfte Blutentnahme wurde zu Beginn 

der zweiten, ebenfalls 21 Tage dauernden Applikationsphase durchgeführt, wobei 

analog zur ersten Phase ebenfalls drei Entnahmen folgten. D.h. lediglich nach der 4. 

und 5. Versuchswoche stehen keine Ergebnisse zu Blutparametern zur Verfügung. 

Den Versuchstieren wurden jeweils zwischen 7.oo und 8.3o h 7,5 ml Blut aus der 

Vena jugularis externa entnommen, hierzu wurden die Mastschweine wie bereits 

oben beschrieben mittels einer Rüsselschlinge in ihrer Bucht fixiert. 

Zur Blutentnahme diente ein geschlossenes System bestehend aus einer 1,20 mm 

starken LUER-Einmalkanüle, die über einen Multi-Adapter für S-Monovetten ® (Fa. 

Sarstedt, Nümbrecht, BRD) an die Lithium-heparinisierte 9 bzw. 7,5 ml Monovette ® 

(Fa. Sarstedt, Nümbrecht, BRD) aufgesteckt wurde. Bei den Sauen wurde eine 100 

mm lange Einmalkanüle (Fa. Erhardt-Söhne, Geislingen, BRD) verwendet, während 

bei den Ferkeln eine 50 bzw. 75 mm lange Einmalkanüle (Fa. Terumo, Leuven, 

Belgien) eingesetzt wurde. Bei den Mastschweinen wurde je nach Größe eine 75 

bzw. 100 mm lange Kanüle (s.o.) benutzt. Als Antikoagulanz enthielten die 

Monovetten ® 10 bis 30 I.E. Heparin/ ml Blut, das durch ein vorsichtiges Schwenken 

der Röhrchen nach der Probengewinnung gleichmäßig verteilt wurde. 

Das Blut wurde unmittelbar nach der Entnahme in eine Kühlbox verbracht, die mit 5


bis 8°C temperiert war und zur weiteren Analyse bzw. Verarbeitung ins Labor des 

Fachbereiches Tierernährung transportiert. 

3.6.4.1 Messung der Lymphozytenproliferation 

Das Ausmaß der Lymphozytenproliferation wurde in Anlehnung an die von RUPPERT 

und PETERS (1987) veröffentlichte Methode mit einem Test-Kit (Cell Proliferation 

ELISA, Fa. Roche Diagnostics GmbH, Mannheim, BRD) bestimmt. Testprinzip ist die 

Quantifizierung des Einbaus eines Markers (hier Bromdesoxyuridin = BrdU) in die 

neusynthetisierte DNA der proliferierenden Zellen. Hieraus kann dann unter 

Verwendung eines gegen BrdU gerichteten monoklonalen Antikörpers der Grad der 

Blastogenese abgeleitet werden. Hierfür war es zunächst erforderlich, die 

Lymphozytenfraktion aus dem mit Li-Heparin ungerinnbar gemachten Vollblut mittels 

Ficoll-Dichtezentrifugation (Histopaque 1077, Sigma-Aldrich, Steinheim, BRD) in 

Anlehnung an die von STRASSER et al. (1998) beschriebene Methode abzutrennen. 

Lymphozytengewinnung: 

2 ml heparinisiertes Vollblut wurden mit 2 ml einer gepufferten Salzlösung (Phosphat 

Buffered Saline = PBS, Sigma-Aldrich, Steinheim, BRD) gemischt und vorsichtig auf 

3 ml Histopaque 1077 (Sigma-Aldrich, Steinheim, BRD) geschichtet. Nach 35 

Minuten Zentrifugation bei 400 g und 18 bis 20°C wurde die Lymphozytenschicht 

abgenommen, in 6 ml PBS überführt und anschließend bei 80 g, 18 bis 20 °C 10 Min. 

zentrifugiert. Dieser Waschvorgang wurde insgesamt dreimal durchgeführt, 

dazwischen erfolgte jeweils die Resuspension des Zellpellets in 6 ml PBS. Das 

Zellpellet wurde dann in der Neubauer-Zählkammer (Fa. Marienfeld, Lauda- 

Königshofen, BRD) mit RPMI 1640-Kulturmedium (Sigma-Aldrich, Steinheim, BRD) 

auf eine Konzentration von 1*10 6 Zellen /ml eingestellt. 

Die Lebensfähigkeit der Lymphozyten wurde unter Verwendung des Trypanblauausschlusstestes 

untersucht (LINDL und BAUER, 1989). Bei dieser Vitalfärbung geht 

man davon aus, dass bei lebenden Zellen bestimmte Farbstoffe nicht in das 

Zellinnere gelangen können, während sich tote Zellen anfärben lassen. 

Zell Proliferation ELISA: 

Um das Ausmaß der Proliferation zu ermitteln wurden 50 µl der auf 1*10 6 Zellen pro 

ml eingestellten Zellsuspension in Mikrotiterplattennäpfe (= wells) pipettiert. Dazu


wurden bei den unstimulierten Kontrollen (6 wells / Probe) 50 µl RPMI-Medium bzw. 

bei den mitogenstimulierten wells (6 / Probe) entsprechend 25 µl PHA (s.u.) und 25 

µl RPMI 1640-Medium pipettiert. 

Das im Test als Mitogen verwandte Phytohämagglutinin (=PHA, Sigma-Aldrich, 

Steinheim, BRD) stimuliert in vitro unspezifisch eine Vielzahl von Lymphozytenklonen 

zur Proliferation (= mitogeninduzierte Proliferation). 

Nach 48 h Inkubation bei 37°C, 94% RLF und 5% C0 2 erfolgte die Markierung der 

Zellen durch Zugabe von 10 µl 100µM BrdU-Labelinglösung 1 je well, dann wurden 

die Platten für weitere 24 h inkubiert. Zur Entfernung des Labeling-Mediums wurde 

die Platte dann bei 300 g 10 Min. zentrifugiert und anschließend ausgeschlagen. 

Nach dem Trocknen der Platte 1 h bei 60°C wurden die Zellen durch die Zugabe von 

jeweils 200µl FixDenat-Lösung 1 pro well (30 min bei RT) fixiert, gleichzeitig begann 

die Denaturierung der DNA. Die Denaturierung des DNA-Stranges ist zur Detektion 

des inkorporierten BrdU-Moleküls durch den im nächsten Schritt zugesetzten 

Peroxidase-markierten Antikörper 1 (=POD Antibody-Konjugat, 100µl, 40 min bei RT) 

notwendig. Nach der Inkubation wurden die Antibody-Konjugate durch ausschlagen 

der Mikrotiterplatte und dreimaliges Waschen mit 200µl Waschlösung 1 entfernt. 

Danach wurde den wells 100µl Peroxidase-Substratlösung 1 zugesetzt, die entsprechend 

der Bindungsmenge des POD Antibody-Konjugates an die in der DNA 

inkorporierten BrdU-Moleküle, an diesen enzymmarkierten Antikörper bindet. Über 

den Farbumschlag, der aus der Bindungshöhe der Substratlösung resultiert, konnte 

dann im ELISA-Reader (Rosys Anthos 2010, Wals, Österreich) bei einer Wellenlänge 

von 405 nm die Absorption gemessen werden. 

Der Stimulationsindex der jeweiligen Probe errechnete sich aus dem Mittel der sechs 

mitogenversorgten wells dividiert durch das der sechs unstimulierten wells. Die 

Lymphozytenproliferation wurde im Sauenversuch sowie im Ferkelversuch als 

immunologischer Untersuchungsparameter herangezogen. 

3.6.4.2 Rotes Blutbild, Leukozytenkonzentration und Differentialblutbild 

Die Bestimmung der Erythrozyten- und Leukozytenkonzentration sowie die Quantifizierung 

von Hämoglobin und Hämatokrit erfolgten aus dem heparinisierten Vollblut 

1 Zubehör Cell Proliferation ELISA, Fa. Roche Diagnostics GmbH, Mannheim, BRD


nach dem konduktometrischen Prinzip (Coulter-Prinzip) unter Verwendung des 

Coulter Counter T 840 for veterinary use (Coulter Electronics GmbH, Krefeld, BRD). 

Bei diesem Untersuchungsverfahren wird durch eine Kapillare Blut in den Coulter 

Counter gesaugt, mit einer isotonischen Elektrolytlösung verdünnt und anschließend 

durch einen Transducer (Messwandler) geschickt. Die Änderung der Stromstärke – 

proportional zum Partikelvolumen – beim Durchtritt einer Zelle wird als Messsignal 

genutzt. Je Probe wurden mindestens 3 Messungen am Coulter Counter 

durchgeführt. 

Die Differenzierung der Leukozytenfraktion erfolgte durch mikroskopisches 

Auszählen eines aus Frischblut angefertigten Blutausstriches. Dazu wurde 

heparinisiertes Vollblut auf einem Objektträger mit einem Deckglas dünn 

ausgestrichen, luftgetrocknet, für 10 Sekunden in Methanol fixiert, erneut 

luftgetrocknet und anschließend mit Azur-Eosin-Methylenblau Färbefolien 

(Sangodiff ® G, Merck, Darmstadt, BRD) für mindestens 10 min angefärbt 

Pappenheim-Färbung). Zur Archivierung wurde dann die Färbefolie entfernt und der 

Objektträger durch Spülen in einer Pufferlösung (pH 7,2, Merck, Darmstadt, BRD) 

konserviert. Das erzielte Färbeergebnis entspricht der klassischen Färbung nach 

Pappenheim (May-Grünwald-Giemsa-Färbung), (BURCK, 1973). 

Je Probe wurden 2 Ausstriche bei 400 -facher Vergrößerung unter einem binokularen 

Mikroskop (SM Lux, Leitz,, Wetzlar, BRD) ausgezählt, wobei insgesamt pro Probe 

mindestens 300 Leukozyten erfasst wurden. Aus dem relativen Anteil der einzelnen 

Leukozytenfraktionen an der ausgezählten Leukozytenmenge konnte dann die 

prozentuale Zusammensetzung des Differentialblutbildes abgeleitet werden. Das rote 

Blutbild, die Leukozytenkonzentration sowie das Differentialblutbild wurden als 

klinisch-chemische Parameter bei jeder Blutentnahme berücksichtigt. 

3.6.4.3 Aktivität der Transaminasen und der alkalischen Phosphatase im 

Plasma 

Die Aktivitäten der Alanin-Amino-Transferase (ALT), der Aspartat-Amino-Transferase 

(AST), der Gamma-Glutamyl-Transferase (?-GT) und der Alkalischen 

Phosphatase (ALP) wurden aus dem Blutplasma bestimmt. Zur Gewinnung des 

Plasmas musste das heparinisierte Vollblut zunächst zentrifugiert werden (1650 g, 5 

min), so dass der Plasmaüberstand abgenommen werden konnte. Das Plasma


wurden dann in Reaktionsgefäßen (Eppendorf, Hamburg, BRD) bei –80°C 

konserviert und zur Analyse aufgetaut. 

Die Messung der Enzymaktivität erfolgte für ALP, AST und ALT nach der 

„Optimierten Standardmethode“ der DEUTSCHEN GESELLSCHAFT FÜR KLINISCHE 

CHEMIE (1970 UND 1972), für ?-GT wurde auf eine von PERSJIN und VAN DER SLIK 

(1976) beschriebene Methode zurückgegriffen. Da speziell für Schweineblut keine 

Test-Kits vorhanden sind, wurden auf Humanseren geeichte Testsysteme (Fa. Roche 

Diagnostics GmbH, Mannheim, BRD) verwendet, die laut Hersteller auch für 

Probenmaterial vom Schwein eine ausreichend hohe Messgenauigkeit aufweisen. 

Den gebrauchsfertigen Test-Kits wurde in einer Halbmikro-Küvette (Fa. Brand, 

Wertheim, BRD) das entsprechende Probenaliquot zugesetzt, anschließend erfolgte 

die photometrische Messung der Extinktion gegen den Leerwert jeweils genau 1, 2 

und 3 Minuten nach der Probenbeimischung. Als Messgröße diente die Extinktionsveränderung 

pro Zeiteinheit, die der Geschwindigkeit der Substratspaltung und damit 

der Enzymaktivität proportional war. Aus dem Mittelwert der Extinktionsdifferenzen 

pro Minute konnte dann für das entsprechende Enzym mit einer Formel die Aktivität 

in I.U./ l (= International Units/l; 1I.U. = 16,67nkat) berechnet werden. 

Pro Plasmaprobe wurden mindestens zwei Messungen durchgeführt, die verwendete 

Wellenlänge am Spektralphotometer (Modell Uvikon 933, Fa. Kontron, Eching, BRD) 

lag je nach Enzym bei 365 bzw. 405 nm. 

Die Aktivität dieser vier Plasmaenzyme wurde im Rahmen der klinischen 

Untersuchungen sowohl bei den Zuchtsauen und ihren Ferkeln, als auch bei den 

Ferkeln im Ferkelversuch I ermittelt. 

3.6.4.4 Rotlauf-Antikörpertiter im Plasma 

Die Rotlauf-Antikörpertiter (Rotlauf-IgG) wurden nur bei den Mastschweinen aus dem 

Blutplasma bestimmt. Zur Gewinnung des Plasmas musste das heparinisierte 

Vollblut zunächst zentrifugiert werden (1650g, 5 min), so dass der Plasmaüberstand 

abgenommen werden konnte. Das Plasma wurde anschließend in Reaktionsgefäßen 

(Fa. Eppendorf, Hamburg, BRD) bei –80°C bis zur Analyse konserviert Die 

Bestimmung der spezifischen Antikörpertiter erfolgte durch das LANDESUNTER- 

SUCHUNGSAMT FÜR DAS GESUNDHEITSWESEN SÜDBAYERN in Oberschleißheim mittels


des nachfolgend beschriebenen ELISA: 

1. Coaten der Mikrotiterplatte (=MTP) mit dem Antigen: Zunächst wurde das Rotlauf- 

Lysatantigen (Paul-Ehrlich-Institut, Langen, BRD)) mit Antigenbeschichtungspuffer 

(Carbonatpuffer pH 9,6; 0,1M; Fa. Sigma-Aldrich, Steinheim, BRD) entsprechend 

dem Ergebnis einer Antigenauswertung 1:100 verdünnt. Von dieser Lösung wurden 

jeweils 100µl in jede Vertiefung (=well) der ungeraden Reihe der MTP pipettiert. 

Anschließend erfolgte die 16- bis 18-stündige Inkubation der ELISA-Platte bei 4°C in 

einer feuchten Kammer, danach wurde die MTP im Waschautomat (MRW, Fa. 

Dynatech, Ashford, England) viermal mit Waschpuffer (PBS pH 7,2 mit 0,1% Tween 

20, Fa. Sigma-Aldrich, Steinheim, BRD) gewaschen, ausgeklopft und in einer 

Sicherheitswerkbank getrocknet. 

2. Blockierung der MTP mit Blockierungspuffer: Um eine unspezifische Bindung zu 

verhindern wurden die MTP mit 200µl Blockierungspuffer je well (pH 7,0, eine 

Magermilchzubereitung aus „skim milk powder“, Code L31, Fa. Oxoid, Nepean, 

Ontario, USA) 45 min bei Raumtemperatur inkubiert. 

3. Auftragen der Probandenseren und der Kontrollseren: Die Probandenseren 

(Mastschwein-Plasmaproben) und das negative Kontrollserum (Serumpool von 20 

Mastschweinen aus der Routinediagnostik als negatives Kontrollserum, mit 

negativem Ergebnis im Rotlauf-ELISA vorgetestet) wurden 1:50, der Rotlauf- 

Schweineserum-Standard Rs7 (Paul-Ehrlich-Institut, Langen, BRD) 1:250 mit 

Blockierungspuffer verdünnt. Von jeder Serumverdünnung wurden im Doppelansatz 

jeweils 100µl pro Vertiefung der ungeraden und der geraden Reihe eingefüllt und 

anschließend bei Raumtemperatur 1h inkubiert. 

4. Zugabe des Peroxidase-markierten Konjugates: Vom enzymmarkierten Konjugat 

(Anti-Schwein-IgG (H+L)-Konjugat, markiert mit Peroxidase, Charge 1325, Fa. 

Rockland, Gilbertsville, USA) wurden 100 µl verdünnt in Blockierungspuffer in jedes 

well einpipettiert und 30 min bei Raumtemperatur inkubiert. Die geeignete 

Gebrauchsverdünnung der Konjugate wurde im Voraus in der Schachbretttitration 

ermittelt. 

5. Zugabe der Substratlösung: Es wurden jeweils 100µl Chromogen-Substrat (ABTS 

= 2,2’Azinobis (3ethylbenz-thiazoline-sulfonic acid), Peroxidase-Substrat, Fa. 

Kirkegaard & Perry, Gaithersburg, USA) in die Vertiefungen der MTP gegeben und 

für 30 min bei Raumtemperatur im Dunkeln inkubiert.


6. Zugabe der Stopplösung: Nach dieser 30-minütigen Inkubation wurde die 

Enzymreaktion durch Zugabe von 50µl Stopplösung (Fa. Dr. Bommeli AG, Liebefeld, 

Schweiz) je well abgestoppt. 

7. Messung der Extinktion im ELISA-Reader: Die Konzentration der Rotlauf- 

Antikörper in den untersuchten Plasmaproben wurde dann durch messen der 

Farbentwicklung in den einzelnen Vertiefungen der MTP photometrisch (Photometer 

ELISA-Processor II, Fa. Behring, Marburg, BRD bzw. Spectra II, Fa. SLT, jetzt 

Tecan, Crailsheim, BRD) über die Extinktionen bei 405 nm erfasst. 

Zwischen den einzelnen Reaktionsschritten wurden die Testplatten wie unter 1. 

beschrieben gewaschen und ausgeklopft. 

Die Rotlauf-Antikörpertiter wurden bei den Mastschweinen routinemäßig bei jeder 

Blutentnahme bestimmt. 

3.7 Statistische Auswertung der Ergebnisse 

Die Fütterungsversuche waren als unvollständiger Blockplan angelegt, wobei die 

einzelnen Versuchstiere unvollständige und unausgewogene Blöcke bildeten, da 

nicht jedes Tier allen Behandlungsgruppen zugeordnet werden konnte. 

Mathematisch lässt sich die Versuchsanlage durch folgende Gleichung beschreiben: 

Y ijkl = µ + a i + b j + c k + e ijkl 

wobei: 

Y ijkl 

= Beobachtungswert des i-ten Blockes der Behandlung j zum Zeitpunkt k 

µ = Mittelwert aller Tiere 

a i 

b j 

c k 

e ijkl 

= Effekt des i-ten Blockes 

= Effelt der j-ten Behandlung 

= Effekt des k-ten Messzeitpunktes 

= Restabweichung


Die statistische Auswertung der Daten erfolgte mit dem Programmpaket SAS, 

Version 6,08 (SAS Institute Inc., 1989, Cary, North Carolina, USA). Zunächst wurden 

die Daten varianzanalytisch unter der Nullhypothese „es existieren keine 

Unterschiede zwischen den Behandlungen“ ausgewertet, wobei die Faktoren 

Behandlung, Messzeitpunkt und Block als fix galten. Die Berücksichtigung von 

Interaktionen im Modell erschien physiologisch nicht sinnvoll. 

War der angeschlossene F-Test signifikant (p

Ergebnisse 53 

4 Ergebnisse 

4.1 Broilerversuch I 

4.1.1 Futteraufnahme 

Aus Übersicht 19 kann die Futteraufnahme der Broiler während der fünfwöchigen 

Mast entnommen werden. Der Echinacea-Cobgehalt im Futter zeigte keinen Einfluss 

auf die durchschnittliche tägliche Futteraufnahme der Mastküken, insgesamt wurden 

pro Tier im Mittel 2881 g verzehrt. Die entsprechenden Einzeldaten zur 

Futteraufnahme einer Käfigeinheit sind in Anhangstabelle 6 dargestellt. 


Alleinfutter auf die tägliche Futteraufnahme der Broiler [g FS] 

Gruppe 

E.p.-Zulage [%] 

I 

0 

II 

0,6 

III 

1,2 

IV 

1,8 

V 

2,4 

VI 

3,0 

VII 

3,6 

VIII 

4,2 

IX 

4,8 

Mittel 

Zeitpunkt 

1. Wo. 24 

± 1 

24 

± 0 

23 

± 2 

24 

± 1 

24 

± 1 

24 

± 1 

24 

± 1 

25 

± 1 

24 

± 0 

24 

± 1 

2. Wo. 47 

± 5 

46 

± 4 

45 

± 5 

46 

± 2 

46 

± 2 

47 

± 3 

46 

± 2 

47 

± 2 

47 

± 2 

46 

± 3 

3. Wo. 82 

± 4 

81 

± 5 

79 

± 8 

82 

± 5 

80 

± 5 

81 

± 5 

79 

± 4 

82 

± 4 

80 

± 9 

81 

± 5 

4. Wo. 118 

± 4 

115 

± 6 

108 

± 13 

116 

± 6 

113 

± 4 

116 

± 8 

113 

± 10 

116 

± 5 

118 

± 8 

115 

± 7 

5. Wo. 153 

± 3 

145 

± 8 

135 

± 11 

146 

± 4 

145 

± 6 

149 

± 9 

143 

± 11 

148 

± 5 

150 

± 8 

146 

± 8 

Ges.futterverbrauch/Tier 

2962 

± 76 

2875 

± 143 

2734 

± 253 

2896 

± 110 

2862 

± 84 

2925 

± 167 

2833 

± 178 

2913 

± 111 

2935 

± 145 

2881 

± 147

54 Ergebnisse 

4.1.2 Lebendmasse und Lebendmasseentwicklung 

In Übersicht 20 ist das durchschnittliche Gewicht der Broiler zu Versuchsbeginn 

sowie zu den entsprechenden Messzeitpunkten dargestellt, die Lebendmassen der 

einzelnen Tiere sind Anhangstabelle 7 zu entnehmen. Während des gesamten 

Versuchszeitraumes ergaben sich keine Unterschiede zwischen den verschiedenen 

Behandlungen. Gleichermaßen konnte auch bei den täglichen Zunahmen ein 

Einfluss der alimentären Echinacea-Zufuhr ausgeschlossen werden, (vgl. Übersicht 

21). 


Alleinfutter auf die Lebendmasse der Broiler [g] 

Gruppe 


I 

0 

II 

0,6 

III 

1,2 

IV 

1,8 

V 

2,4 

VI 

3,0 

VII 

3,6 

VIII 

4,2 

IX 

4,8 

Mittel 

Einstallung 47 

± 0,3 

47 

± 0,6 

47 

± 0,6 

47 

± 0,5 

47 

± 0,5 

47 

± 0,5 

47 

± 0,6 

47 

± 0,5 

47 

± 0,2 

47 

± 0,4 

1. Wo. 192 

± 23 

200 

± 24 

189 

± 24 

194 

± 23 

202 

± 28 

198 

± 24 

195 

± 20 

197 

± 18 

195 

± 21 

196 

± 23 

2. Wo. 434 

± 51 

440 

± 64 

430 

± 65 

432 

± 57 

441 

± 64 

441 

± 68 

436 

± 49 

445 

± 56 

447 

± 67 

438 

± 60 

3. Wo. 845 

± 87 

858 

± 124 

819 

± 141 

835 

± 119 

848 

± 123 

845 

± 120 

839 

± 110 

853 

± 116 

878 

± 133 

847 

± 119 

4. Wo. 1397 

± 51 

1375 

± 77 

1300 

± 148 

1348 

± 75 

1371 

± 49 

1361 

± 71 

1362 

± 77 

1393 

± 61 

1382 

± 90 

1365 

± 179 

5. Wo. 2005 

± 63 

1960 

± 95 

1822 

± 189 

1940 

± 73 

1961 

± 65 

1972 

± 112 

1925 

± 107 

1990 

± 87 

1983 

± 113 

1951 

± 259

Ergebnisse 55 


Alleinfutter auf die täglichen Zunahmen der Broiler [g/d] 

Gruppe 


I 

0 

II 

0,6 

III 

1,2 

IV 

1,8 

V 

2,4 

VI 

3,0 

VII 

3,6 

VIII 

4,2 

IX 

4,8 

Mittel 

1. Wo. 21 

± 1 

22 

± 1 

20 

± 2 

21 

± 1 

22 

± 1 

22 

± 1 

21 

± 1 

21 

± 1 

21 

± 1 

21 

± 1 

2. Wo. 35 

± 3 

34 

± 4 

34 

± 4 

34 

± 2 

34 

± 2 

35 

± 3 

34 

± 2 

35 

± 2 

36 

± 3 

35 

± 3 

3. Wo. 59 

± 3 

60 

± 4 

56 

± 7 

58 

± 5 

58 

± 3 

58 

± 3 

58 

± 3 

58 

± 2 

61 

± 3 

58 

± 4 

4. Wo. 79 

± 2 

74 

± 4 

69 

± 9 

73 

± 4 

75 

± 4 

74 

± 6 

75 

± 6 

77 

± 5 

72 

± 14 

74 

± 7 

5. Wo. 87 

± 2 

84 

± 6 

75 

± 7 

85 

± 2 

84 

± 6 

87 

± 6 

81 

± 5 

85 

± 6 

86 

± 4 

84 

± 6 

Mittel 56 

± 2 

55 

± 3 

51 

± 5 

54 

± 2 

55 

± 2 

55 

± 3 

54 

± 3 

56 

± 2 

55 

± 3 

54 

± 3 

4.1.3 Futterverwertung 

In Übersicht 22 ist die Futterverwertung der Broiler während der Versuchsphase aufgeführt. 

Durch den Varianzfaktor Echinacea-Anteil ergaben sich für diesen Parameter 

keine Unterschiede zwischen den verschiedenen Gruppen. Durchschnittlich 

benötigten die Broiler für 1 kg Zuwachs 1,43 kg Futter.

56 Ergebnisse 

Übersicht 22: Einfluss einer Echinachea purpurea-Grünmehlzulage im Broilermast- 

Alleinfutter auf die Futterverwertung der Broiler [g Futter/g Zuwachs] 

Gruppe 


I 

0 

II 

0,6 

III 

1,2 

IV 

1,8 

V 

2,4 

VI 

3,0 

VII 

3,6 

VIII 

4,2 

IX 

4,8 

Mittel 

1. Wo. 1,15 

± 0,03 

1,11 

± 0,02 

1,15 

± 0,08 

1,14 

± 0,05 

1,10 

± 0,02 

1,13 

± 0,03 

1,13 

± 0,03 

1,15 

± 0,05 

1,13 

± 0,03 

1,13 

± 0,04 

2. Wo. 1,35 

± 0,03 

1,34 

± 0,04 

1,32 

± 0,05 

1,36 

± 0,05 

1,34 

± 0,02 

1,36 

± 0,03 

1,34 

± 0,05 

1,31 

± 0,06 

1,32 

± 0,09 

1,34 

± 0,05 

3. Wo. 1,40 

± 0,05 

1,36 

± 0,03 

1,43 

± 0,04 

1,42 

± 0,05 

1,38 

± 0,03 

1,41 

± 0,05 

1,38 

± 0,03 

1,40 

± 0,04 

1,30 

± 0,16 

1,39 

± 0,07 

4. Wo. 1,50 

± 0,06 

1,55 

± 0,01 

1,58 

± 0,02 

1,59 

± 0,04 

1,52 

± 0,08 

1,58 

± 0,04 

1,51 

± 0,03 

1,51 

± 0,09 

1,68 

± 0,26 

1,56 

± 0,10 

5. Wo. 1,76 

± 0,03 

1,74 

± 0,06 

1,81 

± 0,04 

1,73 

± 0,07 

1,73 

± 0,05 

1,71 

± 0,04 

1,78 

± 0,04 

1,73 

± 0,03 

1,75 

± 0,07 

1,75 

± 0,06 

Mittel 1,43 

± 0,01 

1,42 

± 0,02 

1,46 

± 0,02 

1,45 

± 0,02 

1,41 

± 0,03 

1,44 

± 0,02 

1,43 

± 0,02 

1,42 

± 0,05 

1,44 

± 0,03 

1,43 

± 0,01 

4.1.4 Gesundheitszustand und Kotkonsistenz 

Eine Beeinträchtigung des Gesundheitszustandes bzw. Unterschiede im Gesundheitszustand 

der Mastküken infolge des variierenden Echinacea-Gehaltes im Futter 

konnten im Versuchsverlauf nicht festgestellt werden. Insgesamt verendeten 

während des Versuches 9 Broiler, vermutlich alle aufgrund einer bei Masthybriden 

häufig auftretenden, leistungsbedingten Herzinsuffizienz. Zu vermerken ist hier, dass 

? der verendeten Broiler der Versuchsgruppe mit der höchsten Echinacea-Zulagenstufe 

(IX) angehörten. Die anderen verendeten Broiler gehörten zur Versuchsgruppe 

V, VI und VIII. Jeweils ein Tier der Fütterungsgruppen I, V und VII musste im 

Versuchsverlauf aufgrund einer Beinschwäche aus dem Versuch herausgenommen 

werden. 

Beim visuellen Vergleich der Kotkonsistenz der Tiere konnten keine Unterschiede 

zwischen den verschiedenen Behandlungen beobachtet werden.

Ergebnisse 57 

4.2 Broilerversuch II 


Übersicht 23 zeigt die durchschnittliche tägliche Futteraufnahme der Masttiere. Die 

mit Echinacea-Grünmehl versorgten Broiler (Gruppe III) verzehrten über den 

gesamten Versuchszeitraum hinweg mit 2713 g signifikant weniger Futter als die 

Tiere aus den Vergleichsgruppen mit 2880 g (Kontrolle, Gruppe I) bzw. 2995 g 

(Antibiotikagruppe, Gruppe II), wobei der Unterschied in der dritten und fünften 

Versuchswoche ebenfalls statistisch abzusichern war. Aus Anhangstabelle 8 kann 

die Futteraufnahme der einzelnen Käfigeinheiten ersehen werden. 


im Broilermast-Alleinfutter auf die tägliche Futteraufnahme der Broiler [g FS] 

Gruppe 

E.p. Zulage [%] 

I 

0 

II 

AB* 

III 

2,4 

Mittel 

1. Wo. 24 

± 1 

24 

± 1 

24 

± 1 

24 

± 1 

2. Wo. 46 

± 5 

49 

± 2 

43 

± 4 

46 

± 4 

3. Wo. 79 a 

± 6 

80 a 

± 2 

72 b 

± 4 

77 

± 5 

4. Wo. 116 

± 9 

115 

± 5 

107 

± 4 

113 

± 7 

5. Wo. 146 ab 

± 12 

154 a 

± 12 

137 b 

± 5 

146 

± 12 

Ges.futterverbrauch/Tier 

2880 a 

± 207 

2995 a 

± 144 

* Antibiotikagruppe; mit 10 mg Flavomycin pro kg Futter 

2713 b 

± 142 

2840 

± 187

58 Ergebnisse 


Bezüglich der durchschnittlichen Lebendmasse waren die Broiler, die das 

Fütterungsantibiotikum erhielten, den Vergleichsgruppen über den gesamten 

Versuchszeitraum hinweg z.T. signifikant überlegen, während sich der Unterschied 

zwischen der Kontrollgruppe und der Echinacea-Gruppe zumeist nicht statistisch 

absichern ließ. Aus Übersicht 24 ist ersichtlich, dass die mit Echinacea-Grünmehl 

versorgten Tiere am Versuchsende mit 1719 g ein um 5% geringeres Gewicht 

aufwiesen als die vergleichbaren Kontrolltiere mit 1816 g, im Vergleich zur 

Antibiotikagruppe (1895 g) betrug der Unterschied sogar 10%. Die Lebendmassedaten 

der einzelnen Broiler sind Anhangstabelle 9 zu entnehmen. 

Bei den täglichen Zunahmen zeigten die Antibiotikatiere ebenfalls einen Vorsprung 

gegenüber den anderen Gruppen. Wie Übersicht 25 darstellt hatten die Kontrolltiere 

über die gesamte Versuchsphase einen um 6 % höheren Massezuwachs als die 

Echinacea-Tiere. 


im Broilermast-Alleinfutter auf die Lebendmasse der Broiler [kg] 

Gruppe 


I 

0 

II 

AB* 

III 

2,4 

Mittel 

Einstallung 41 

± 0,4 

41 

± 0,5 

41 

± 0,3 

41 

± 0,4 

1. Wo. 148 b 

± 25 

159 a 

± 23 

146 b 

± 18 

151 

± 23 

2. Wo. 377 ab 

± 73 

407 a 

± 60 

355 b 

± 58 

380 

± 67 

3. Wo. 763 ab 

± 140 

795 a 

± 120 

701 b 

± 117 

753 

± 131 

4. Wo. 1271 

± 230 

1309 

± 200 

1175 

± 194 

1252 

± 214 

5. Wo. 1816 ab 

± 326 

1895 a 

± 277 


1719 b 

± 313 

1810 

± 312

Ergebnisse 59 


im Broilermast-Alleinfutter auf die täglichen Zunahmen der Broiler [g/d] 

Gruppe 


I 

0 

II 

AB* 

III 

2,4 

Mittel 

1. Wo. 15 b 

± 1 

17 a 

± 1 

15 b 

± 1 

16 

± 1 

2. Wo. 33 

± 5 

35 

± 2 

30 

± 4 

33 

± 4 

3. Wo. 55 

± 5 

55 

± 3 

49 

± 4 

53 

± 5 

4. Wo. 73 

± 8 

73 

± 5 

68 

± 2 

71 

± 6 

5. Wo. 78 

± 7 

85 

± 7 

78 

± 5 

80 

± 7 

Mittel 51 

± 5 

53 

± 2 


48 

± 3 

51 

± 4 


Die Futterverwertung der Broiler ist in Übersicht 26 dargestellt. Im Versuchsmittel 

unterschieden sich die Kontrolltiere hinsichtlich dieses Parameters nicht von den 

Echinacea-Tieren, lediglich die mit dem Fütterungsantibiotikum versorgte Vergleichsgruppe 

benötigte im Mittel mit 1,53 kg Futter je kg Zuwachs knapp 3 % weniger 

Futter für 1 kg Zunahme. In der ersten Versuchswoche waren die Antibiotika-Tiere 

den anderen Versuchsgruppen mit einem um 8 % geringeren Futteraufwand je kg 

Lebendmassezuwachs signifikant überlegen, in der fünften Versuchswoche 

benötigten die Echinacea-Tiere mit 1,77 kg Futter / kg Zuwachs 6 % weniger Futter 

für 1 kg Masseansatz als die Kontrolltiere.

60 Ergebnisse 

Übersicht 26: Einfluss einer Echinachea purpurea-Grünmehlzulage bzw. Flavomycinzulage 

im Broilermast-Alleinfutter auf die Futterverwertung der Broiler [g Futter/g 

Zuwachs] 

Gruppe 


I 

0 

II 

AB* 

III 

2,4 

Mittel 

1. Wo. 1,57 a 

± 0,12 

1,44 b 

± 0,04 

1,57 a 

± 0,06 

1,52 

± 0,10 

2. Wo. 1,42 

± 0,07 

1,38 

± 0,03 

1,46 

± 0,10 

1,42 

± 0,08 

3. Wo. 1,44 

± 0,04 

1,44 

± 0,04 

1,47 

± 0,08 

1,45 

± 0,06 

4. Wo. 1,60 

± 0,06 

1,59 

± 0,05 

1,58 

± 0,04 

1,59 

± 0,05 

5. Wo. 1,88 

± 0,04 

1,83 

± 0,24 

1,77 

± 0,07 

1,83 

± 0,15 

Mittel 1,58 

± 0,04 

1,53 

± 0,07 


1,57 

± 0,04 

1,56 

± 0,05 


Während des Versuches konnte bei den Broilern keine auffällige Klinik beobachtet 

werden, so dass sich hinsichtlich des Gesundheitszustandes keine Unterschiede 

zwischen den verschiedenen Versuchsgruppen ergaben. Während der fünfwöchigen 

Versuchsphase verendeten insgesamt 3 von 180 Mastküken, vermutlich alle 

aufgrund einer bei Masthybriden häufig auftretenden, leistungsbedingten 

Herzinsuffizienz. Von den verendeten Tieren erhielten zwei die Echinacea-Ration 

(III), der dritte verendete Broiler gehörte zur Kontrollgruppe (I). Damit waren die 

Ausfälle nicht auf die Echinacea-Zulage zurückzuführen. 

Die Kotkonsistenz der Versuchstiere unterschied sich ebenfalls nicht.

Ergebnisse 61 

4.3 Ferkelversuch I 


In Übersicht 27 ist die durchschnittliche tägliche Futteraufnahme der Ferkel 

dargestellt. Das Echincacea-Grünmehl zeigte während des sechswöchigen 

Versuches keinen Einfluss. Die Tiere, die das Fütterungsantibiotikum erhielten, 

verzehrten bezogen auf den gesamten Versuchszeitraum allerdings tendenziell mehr 

Futter als die Tiere der anderen Behandlungen. Im Mittel nahmen die Ferkel 654 g 

täglich auf. Die ermittelten Einzeldaten sind in Anhangstabelle 10 aufgelistet. 


im Ferkelaufzuchtfutter auf die tägliche Futteraufnahme der Ferkel [g FS] 

Gruppe 


I 

0 

II 

AB* 

III 

1,8 

Mittel 

1. Wo. 160 

± 67 

169 

± 35 

167 

± 34 

165 

± 47 

2. Wo. 273 

± 124 

294 

± 92 

281 

± 71 

283 

± 96 

3. Wo. 506 

± 158 

506 

± 133 

479 

± 76 

497 

± 124 

4. Wo. 884 

± 125 

933 

± 91 

914 

± 117 

910 

± 111 

5. Wo. 1020 

± 173 

1069 

± 211 

966 

± 123 

1018 

± 173 

6. Wo. 1097 

± 153 

1130 

± 153 

1131 

± 140 

1120 

± 145 

Mittel 646 

± 115 

673 

± 89 


645 

± 61 

654 

± 89

62 Ergebnisse 


Das durchschnittliche Gewicht der Ferkel während des sechswöchigen Versuches 

kann aus Übersicht 28 ersehen werden. Wie aus dieser tabellarischen Darstellung zu 

entnehmen ist, ergaben sich keine Unterschiede zwischen den verschiedenen 

Behandlungen. Wie Übersicht 29 zeigt, lässt sich diese Aussage ebenfalls auf die 

täglichen Zunahmen der Versuchstiere, die im Versuchsmittel bei durchschnittlich 

397 g lagen, übertragen. Einzelergebnisse zur Lebendmasse sind in Anhangstabelle 

11 aufgeführt. 


im Ferkelaufzuchtfutter auf die Lebendmasse der Ferkel [kg] 

Gruppe 


I 

0 

II 

AB* 

III 

1,8 

Mittel 

Einstallung 5,8 

± 0,7 

5,8 

± 0,7 

5,8 

± 0,5 

5,8 

± 0,6 

1. Wo. 7,0 

± 1,1 

7,1 

± 0,9 

7,1 

± 0,7 

7,1 

± 0,9 

2. Wo. 8,4 

± 1,5 

8,8 

± 1,4 

8,9 

± 1,1 

8,7 

± 1,3 

3. Wo. 11,3 

± 2,2 

11,6 

± 2,1 

11,5 

± 1,5 

11,5 

± 1,9 

4. Wo. 14,1 

± 2,6 

14,7 

± 2,3 

14,7 

± 1,6 

14,5 

± 2,2 

5. Wo. 18,6 

± 3,1 

19,3 

± 2,9 

18,9 

± 2,0 

18,9 

± 2,6 

6. Wo. 21,8 

± 3,4 

22,5 

± 3,1 


22,0 

± 2,2 

22,1 

± 2,9

Ergebnisse 63 


im Ferkelaufzuchtfutter auf die täglichen Zunahmen der Ferkel [g] 

Gruppe 


I 

0% 

II 

AB* 

III 

1,8% 

Mittel 

1. Wo. 165 

± 93 

186 

± 54 

183 

± 43 

178 

± 65 

2. Wo. 208 

± 91 

250 

± 77 

250 

± 79 

236 

± 83 

3. Wo. 409 

± 132 

391 

± 120 

380 

± 59 

393 

± 106 

4. Wo. 409 

± 77 

446 

± 82 

450 

± 89 

435 

± 83 

5. Wo. 642 

± 90 

661 

± 122 

598 

± 96 

634 

± 104 

6. Wo. 522 

± 105 

530 

± 68 

530 

± 107 

527 

± 92 

Mittel 389 

± 75 

408 

± 64 


395 

± 45 

397 

± 61,5 


Wie aus Übersicht 30 ersichtlich ist, benötigten die Absetzferkel zum Ansatz von 1 kg 

Körpermasse im Versuchsmittel 1,57 kg Futter, wobei die Echinacea-Tiere bezogen 

auf den gesamten Versuchszeitraum durchschnittlich 4 % weniger Futter je kg 

Zunahmen verbrauchten als die Kontrolltiere. Die Überlegenheit in der 

Futterverwertung äußerte sich v.a. in den ersten beiden Versuchswochen, wo die 

Echinacea-Grünmehlzulage im Mittel eine um 15 % verbesserte Futterverwertung 

gegenüber den Kontrolltieren mit sich brachte. Während des gesamten Versuches 

lag die Futterverwertung der Antibiotika-Ferkel minimal unter der der Echinacea- 

Tiere. Die Unterschiede in der Futterverwertung konnten aber aufgrund der z.T. recht 

hohen Individualeffekte der Tiere innerhalb einer Gruppe statistisch nicht abgesichert 

werden (vgl.Übersicht 30).

64 Ergebnisse 


im Ferkelaufzuchtfutter auf die Futterverwertung der Ferkel [kg Futter/ kg 

Zuwachs] 

Gruppe 


I 

0 

II 

AB* 

III 

1,8 

Mittel 

1. Wo. 1,11 

± 0,33 

0,95 

± 0,23 

0,93 

± 0,11 

1,00 

± 0,27 

2. Wo. 1,34 

± 0,32 

1,20 

± 0,16 

1,15 

± 0,14 

1,23 

± 0,22 

3. Wo. 1,26 

± 0,12 

1,32 

± 0,19 

1,26 

± 0,11 

1,28 

± 0,14 

4. Wo. 2,19 

± 0,24 

2,14 

± 0,33 

2,09 

± 0,36 

2,14 

± 0,29 

5. Wo. 1,59 

± 0,12 

1,61 

± 0,10 

1,63 

± 0,18 

1,61 

± 0,13 

6. Wo. 2,14 

± 0,27 

2,14 

± 0,19 

2,17 

± 0,25 

2,15 

± 0,24 

Mittel 1,60 

± 0,09 

1,56 

± 0,11 


1,54 

± 0,06 

1,57 

± 0,09 

4.3.4 Blutparameter 

4.3.4.1 Lymphozytenproliferation 

Als Messgröße für die Lymphozytenproliferation diente der Stimulationsindex der 

jeweiligen Probe, der sich aus der mittleren Absorption der mitogenversorgten 

Mikrotiterplattennäpfe (= wells) dividiert durch die mittlere Absorption der unstimulierten 

wells errechnete. Die gemessenen Einzeltierdaten zur mitogen- bzw. 

unstimulierten Lymphozytenproliferation sind Anhangstabelle 12 zu entnehmen. 

Aus Übersicht 31 ist ersichtlich, dass sich hinsichtlich dieses Parameters kein Effekt 

einer Echinacea- bzw. Antibiotika-Applikation nachweisen ließ. Im Mittel über alle 

Tiere konnte beim Versuchsende für die Lymphozytenproliferation ein Stimulationsindex 

von 2,6 ermittelt werden.

Ergebnisse 65 


im Ferkelaufzuchtfutter auf den Stimulationsindex der Lymphozytenproliferation 

beim Versuchsende 

Gruppe 


I 

0 

II 

AB* 

III 

1,8 

Mittel 

Stimulationsindex 

2,7 

± 0,2 

2,6 

± 0,2 

2,7 

± 0,3 

2,6 

± 0,2 


4.3.4.2 Rotes Blutbild und Leukozytenkonzentration 

Übersicht 32 zeigt die Leukozyten- und Erythrozytenkonzentration, den Hämoglobingehalt 

sowie den Hämatokritwert im Vollblut der Ferkel beim Versuchsende. 

Wie aus dieser Übersicht zu ersehen ist, ergaben sich keine Unterschiede zwischen 

den verschiedenen Behandlungen. Alle hier aufgeführten Blutparameter befanden 

sich in der biologischen Schwankungsbreite (vgl. auch Anhangstabelle 13). 


im Ferkelaufzuchtfutter auf das rote Blutbild sowie die Leukozytenkonzentration 

der Ferkel beim Versuchsende 

Gruppe 


I 

0 

II 

AB* 

III 

1,8 

Mittel 

Leukozyten 

[10 9 /l] 

14,0 

± 2,4 

14,2 

± 3,3 

14,1 

± 1,4 

14,1 

± 2,4 

Erythrozyten 

[10 12 /l] 

7,1 

± 0,5 

7,0 

± 0,3 

6,8 

± 0,4 

7,0 

± 0,4 

Hämoglobin 

[g/dl] 

12,3 

± 0,6 

12,3 

± 0,3 

12,3 

± 0,8 

12,3 

± 0,6 

Hämatokrit [%] 40,5 

± 2,6 

40,6 

± 1,7 


39,8 

± 2,9 

40,3 

± 2,4 

4.3.4.3 Differentialblutbild 

Die Zusammensetzung der Leukozytenfraktion ist in Übersicht 33 wiedergegeben. Es 

konnte kein Einfluss einer Echinacea- bzw. Antibiotika-Applikation auf diesen

66 Ergebnisse 

Messparameter nachgewiesen werden. Alle erfassten Werte liegen im 

Schwankungsbereich für hämatologische Normalwerte. Die für die einzelnen 

Versuchstiere ermittelten Messwerte werden in der Anhangstabelle 14 aufgezeigt. 


im Ferkelaufzuchtfutter auf die Zusammensetzung Leukozytenfraktion der 

Ferkel beim Versuchsende 

Gruppe 


I 

0 

II 

AB** 

III 

1,8 

Mittel 

Lymphozyten 

[%] 

75,9 

± 6,4 

78,2 

± 6,4 

73,9 

± 4,6 

76,0 

± 5,8 

Neutrophile G.* 

[%] 

18,4 

± 6,2 

16,8 

± 6,4 

19,3 

± 3,8 

18,2 

± 5,4 

Eosinophile G.* 

[%] 

3,7 

± 1,2 

3,0 

± 0,7 

3,8 

± 0,6 

3,5 

± 0,9 

Basophile G.* 

[%] 

0,4 

± 0,3 

0,4 

± 0,2 

0,5 

± 0,3 

0,4 

± 0,3 

Monozyten [%] 1,7 

± 0,7 

1,6 

± 0,2 

* G. = Granulozyten 

** Antibiotikagruppe; mit 10 mg Flavomycin pro kg Futter 

2,5 

± 0,7 

1,9 

± 0,7 

4.3.4.4 Aktivität der Transaminasen und der alkalischen Phosphatase 

Die durchschnittlichen Aktivitäten der Alanin-Aminotransferase (ALT), der Aspartat- 

Aminotransferase (AST), der Gamma-Glutamyltransferase (?-GT) und der 

Alkalischen Phosphatase (ALP) der Ferkel beim Versuchsende sind in Übersicht 34 

aufgelistet. Die ermittelten Einzeltierdaten sind Anhangstabelle 15 zu entnehmen. 

Die Versuchsfaktoren zeigten keinen Einfluss auf diesen Messparameter, alle Werte 

lagen in der biologischen Schwankungsbreite.

Ergebnisse 67 


im Ferkelaufzuchtfutter auf die Aktivität der Transaminasen (ALT, AST und ?- 

GT) sowie der alkalischen Phosphatase (ALP) der Ferkel beim Versuchsende 

Gruppe 


I 

0 

II 

AB* 

III 

1,8 

Mittel 

ALP [U/l] 270,1 

± 72,9 

296,5 

± 53,4 

305,3 

± 23,9 

290,6 

± 53,0 

ALT [U/l] 26,7 

± 6,3 

25,7 

± 7,6 

25,3 

± 3,4 

25,9 

± 5,7 

AST [U/l] 20,6 

± 6,1 

15,0 

± 1,6 

17,4 

± 2,3 

17,7 

± 4,4 

?-GT [U/l] 16,1 

± 4,2 

21,1 

± 6,3 


15,2 

± 1,7 

17,4 

± 5,0 


In keiner der drei Behandlungen traten bei den Ferkeln Beeinträchtigungen des 

Gesundheitszustandes auf. Lediglich nach den ersten Versuchstagen wiesen einige 

Tiere einen zu diesem Zeitpunkt üblichen, durch Futter- und Umgebungswechsel 

induzierten leichten Durchfall auf. Unterschiede zwischen den Gruppen ergaben sich 

hierbei nicht. 

4.4 Zuchtsauenversuch 


Während der Phase der Hochträchtigkeit wurde allen Sauen die identische 

Futtermenge von 2,6 kg vorgelegt. Da alle Tiere das vorgelegte Futter in der 

Trächtigkeit komplett verzehrten, konnte ein Effekt einer variierenden Echinacea- 

Zufuhr auf diesen Parameter nicht beobachtet werden. Im Gegensatz dazu wurden

68 Ergebnisse 

die Sauen in der Laktation nach der anfänglichen restriktiven Steigerungsphase ad 

libitum (maximal allerdings 6 kg Futter pro Tier und Tag) versorgt. Wie aus Übersicht 

35 ersichtlich ist, nahmen die Kontrolltiere in den ersten 14 Tagen der Laktation mit 

4608 g /Tag deutlich mehr Futter auf als die Echinacea-Tiere mit 4222 (Gruppe II) 

bzw. 4268 g (Gruppe III) pro Tag. Dieser Unterschied konnte jedoch aufgrund des 

Individualeffektes der Sauen (Effekt des Blockes) und der daraus resultierenden 

hohen Standardabweichung statistisch nicht gesichert werden. Im zweiten Abschnitt 

der Laktation war hingegen kein Unterschied im Futterverbrauch nachzuweisen. Die 

entsprechenden tierspezifischen Futteraufnahmedaten sind in der Anhangstabelle 16 

aufgezeigt. 

Beim Beifutterverbrauch der Ferkel, der im Mittel bei 53 g pro Wurf und Tag lag 

(siehe Übersicht 36), ergab sich ebenfalls kein Unterschied zwischen den 

Behandlungen, wobei allerdings aufgrund der stark variierenden Einzelwerte eines 

Wurfes (vgl. Anhangstabelle 16) die Streuung innerhalb der Gruppe erheblich war. 


Laktationsfutter auf die Laktationsfutteraufnahme der Sauen [g FS] 

Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

Lakt.tag 

1. – 14. 4608 

± 463 

4222 

± 630 

4268 

± 640 

4366 

± 593 

14. – 28. 5428 

± 869 

5318 

± 513 

5429 

± 682 

5392 

± 685 

1. – 28. 5018 

± 799 

4770 

± 794 

4848 

± 877 

4879 

± 819

Ergebnisse 69 

Übersicht 36: Saugferkelbeifutteraufnahme zwischen dem 10. und 28. Laktationstag 

[g FS] 

Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

Gesamtverzehr 944 

± 698 

896 

± 426 

1000 

± 574 

947 

± 562 

Tägl. Verzehr 52 

± 39 

50 

± 24 

56 

± 32 

53 

± 31 


In Übersicht 37 ist die durchschnittliche Lebendmasse der Sauen zu Versuchsbeginn, 

am 110. Trächtigkeitstag sowie zu Versuchsende aufgeführt. Zwischen den 

Gruppen bestanden keine Unterschiede. Die Lebendmassen der einzelnen Sauen 

bei den verschiedenen Messterminen sind Anhangstabelle 17 zu entnehmen. 

Wie Übersicht 38 darstellt, zeigten die Kontrolltiere während der Hochträchtigkeit mit 

617 g Zuwachs pro Tag einen im Mittel um 18% höheren durchschnittlichen täglichen 

Massezuwachs als die Vergleichsgruppen mit 500 (II) bzw. 513 g/d (III). Dieser 

Unterschied ließ sich aber aufgrund der hohen Streuung innerhalb der Gruppen nicht 

statistisch absichern. Der durchschnittliche tägliche Masseverlust der Sauen während 

der Laktation unterschied sich hingegen nicht. 

Bei den Lebendgewichten der Saugferkel ergaben sich keine signifikanten 

Unterschiede zwischen den Gruppen, allerdings wiesen die Ferkel der 

Kontrollgruppe, wie aus Übersicht 39 zu ersehen ist bei der Geburt ein um ca. 4% 

geringeres Gewicht auf als die Vergleichstiere. Die täglichen Zunahmen der Ferkel, 

die im Mittel der Laktationsphase bei 197 g lagen können Übersicht 40 entnommen 

werden, es konnte ebenfalls kein gerichteter Einfluss einer Echinacea-Applikation 

nachgewiesen werden. Die Einzelgewichte der Ferkel sind in Anhangstabelle 18 

aufgelistet.

70 Ergebnisse 


Laktationsfutter auf die Lebendmasse der Sauen [kg] 

Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

85. 

Trächtigkeitstag 

226 

± 24 

227 

± 29 

233 

± 22 

229 

± 25 

110. 


242 

± 25 

239 

± 28 

246 

± 24 

242 

± 25 

Absetzen 212 

± 22 

209 

± 28 

215 

± 24 

212 

± 24 


Laktationsfutter auf die Lebendmasseveränderung der Sauen [g] 

Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

85. - 110. 


110. 

Trächtigkeitstag- 

Absetzen 

+617 

± 226 

-1193 

± 374 

+500 

± 164 

-1217 

± 498 

+513 

± 170 

-1230 

± 397 

+543 

± 191 

-1213 

± 414 


Laktationsfutter der Muttersau auf die Lebendmasse der Ferkel während der 

Laktation [g] 

Gruppe 


Laktationstag 

I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

0. 1407 

± 216 

1463 

± 159 

1489 

± 215 

1451 

± 190 

14. 4111 

± 584 

4117 

± 536 

4108 

± 879 

4112 

± 654 

28. 7026 

± 879 

7076 

± 937 

6821 

± 1254 

6974 

± 995

Ergebnisse 71 


Laktationsfutter der Muttersau auf die täglichen Zunahmen der Ferkel während 

der Laktation [g] 

Gruppe 


Laktationstag 

I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

1. – 14. 193 

± 35 

190 

± 34 

187 

± 55 

190 

± 39 

14. – 28. 208 

± 23 

211 

± 35 

194 

± 35 

204 

± 31 

1. – 28. 201 

± 28 

200 

± 31 

191 

± 42 

197 

± 32 

4.4.3 Körpertemperatur 

In Übersicht 41 ist die durchschnittliche Körpertemperatur der Sauen während der 

Hochträchtigkeit sowie während der 28-tägigen Laktationsphase aufgeführt. 

Während der Laktation lag die durchschnittliche Körpertemperatur bei allen Tieren 

um 0,5 °C über dem Temperaturmittel zwischen dem 85. Trächtigkeitstag und der 

Geburt. Die jeweiligen Gruppenmittelwerte errechneten sich aus den in den 

Anhangstabellen 19 bis 30 aufgeführten Messwerten der einzelnen Sauen an den 

verschiedenen Trächtigkeits- bzw. Laktationstagen. Alle Mittelwerte lagen im 

physiologischen Bereich. Unterschiede zwischen den verschiedenen Behandlungen 

konnten hinsichtlich dieses Parameters nicht festgestellt werden. Die Messwerte 

eines Tieres wiesen z.T. erhebliche Schwankungen zwischen den einzelnen 

Messzeitpunkten auf (siehe Anhangstabelle 19 bis 30). Dabei war eine Erhöhung der 

Körpertemperatur beim Einzeltier zumeist mit klinischen Symptomen einer Infektion 

verbunden.

72 Ergebnisse 


Laktationsfutter auf die Körpertemperatur der Sauen [°C] während der 

Hochträchtigkeit und der Laktation 

Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

85. 

Trächtigkeits - 

Geburt 

38,0 

± 0,2 

37,9 

± 0,2 

37,8 

± 0,3 

37,9 

± 0,2 

Geburt - 

Absetzen 

38,4 

± 0,4 

38,3 

± 0,1 

38,4 

± 0,4 

38,4 

± 0,3 


4.4.4.1 Lymphozytenproliferation 

Die Lymphozytenproliferation wurde zu Versuchsbeginn am 85. Trächtigkeitstag, am 

Tag nach der Geburt sowie beim Versuchsende am 28. Laktationstag quantifiziert. 

Dabei diente der Stimulationsindex der jeweiligen Probe , der sich aus der mittleren 

Absorption der mitogenversorgten wells dividiert durch die mittlere Absorption der 

unstimulierten wells errechnete, als Maßeinheit. Die ermittelten Einzeltierdaten zur 

mitogen- bzw. unstimulierten Lymphozytenproliferation an den unterschiedlichen 

Messzeitpunkten sind in Anhangstabelle 31 dargestellt. 

Aus Übersicht 42 ist ersichtlich, dass bei diesem Parameter an den drei 

Messterminen kein Behandlungseffekt nachzuweisen war, dagegen zeigte sich ein 

hochsignifikanter Einfluss des Messzeitpunktes. Bei allen Versuchsgruppen war der 

Stimulationsindex nach der Geburt signifikant gegenüber dem ersten Messtermin 

erniedrigt, am Lakationsende erreichte er dann erneut das Anfangsniveau. 

In Übersicht 43 ist der Stimulationsindex der untersuchten Ferkel beim Absetzen 

aufgetragen. Ein Einfluss der Versuchsfaktoren war hier ebenfalls auszuschließen. 

Die Einzeltierdaten sind in Anhangstabelle 32 aufgetragen.

Ergebnisse 73 



Sauen bei den verschiedenen Messzeitpunkten sowie auf das Verhältnis der 

Stimulationsindices zwischen zwei Messzeitpunkten 

Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

Zeitpunkt 

85. 


2,62 A 

± 0,22 

2,68 A 

± 0,18 

2,73 A 

± 0,10 

2,68 A 

± 0,17 

Geburt 

2,25 B 

± 0,34 

2,35 B 

± 0,29 

2,39 B 

± 0,33 

2,33 B 

± 0,32 

Absetzen 

85. 


: Geburt 

2,60 A 

± 0,18 

1,19 : 1 

± 0,20 

2,76 A 

± 0,13 

1,16 : 1 

± 0,17 

2,70 A 

± 0,22 

1,16 : 1 

± 0,16 

2,69 A 

± 0,18 

1,17 : 1 

± 0,17 

Geburt : 

Absetzen 

1 : 1,18 

± 0,19 

1 : 1,19 

± 0,15 

1 : 1,14 

± 0,13 

1 : 1,17 

± 0,16 



Ferkel beim Absetzen 

Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

Stimulationsindex 

2,6 

± 0,2 

2,6 

± 0,2 

2,7 

± 0,3 

2,6 

± 0,2 


In Übersicht 44 ist die durchschnittliche Leukozytenkonzentration der Sauen im 

Vollblut an den drei Blutentnahmezeitpunkten dargestellt. Versuchsbedingte 

Unterschiede konnten für diesen Messparameter nicht nachgewiesen werden. Im 

Versuchsmittel wurde eine Leukozytenkonzentration von 15,9 *10 9 /l analysiert. Die 

Erythrozytenkonzentration der Sauen wurde parallel hierzu ermittelt. Wie aus

74 Ergebnisse 

Übersicht 45 zu ersehen ist, konnte hier ebenfalls ein Einfluss der Versuchsfaktoren 

ausgeschlossen werden. Für die Erythrozyten wurde eine mittlere Konzentration von 

5,8 * 10 12 /l bezogen auf alle drei Messzeitpunkte festgestellt. Als weitere Parameter 

des roten Blutbildes wurde zusätzlich der Hämoglobingehalt sowie der 

Hämatokritwert aus dem Vollblut erfasst. Wie Übersicht 46 bzw. Übersicht 47 zeigt, 

blieb bei diesen Messgrößen ein Effekt der alimentären Echinacea-Zulage gleichfalls 

aus. Die entsprechenden Einzelwerte der Sauen zu den Parametern des roten 

Blutbildes sowie die Leukozytenkonzentration an den jeweiligen Blutentnahmezeitpunkten 

können den Anhangstabellen 33 bis 35 entnommen werden. Bei 

einzelnen Tieren lagen die analysierten Gehalte zu manchen Messzeitpunkten 

oberhalb bzw. unterhalb des Referenzbereiches. Betrachtet man allerdings das 

Versuchsmittel, so befanden sich alle Blutwerte in der biologischen Schwankungsbreite. 

Einzige Ausnahme waren die roten Blutkörperchen, die sich mit einer 

Konzentration von 5,7 *10 12 /l im Mittel der Kontrollgruppe und der höchsten Zulagengruppe 

im schwach anämischen Bereich bewegten. Im Mittel über alle Gruppen und 

Messzeitpunkte wurde für die Erythrozyten mit einer Konzentration von 5,8 *10 12 /l die 

untere Grenze des Referenzbereiches belegt (vgl. Übersicht 45). 

Übersicht 48 zeigt das rote Blutbild und die mittlere Leukozytenkonzentration der 

Ferkel am 28. Laktationstag. Es konnten keine Unterschiede zwischen den Gruppen 

festgestellt werden (s. Anhangstabelle 36), alle Messwerte lagen im Referenzbereich. 


Laktationsfutter auf die Leukozytenkonzentration der Sauen im Vollblut [10 9 /l] 

während des Versuches 

Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

85. 


15,5 

± 4,0 

14,2 

± 2,9 

16,3 

± 4,1 

15,4 

± 3,7 

Geburt 15,3 

± 4,7 

16,4 

± 5,4 

14,5 

± 5,6 

15,4 

± 5,2 

Absetzen 16,4 

± 3,9 

17,8 

± 4,5 

16,9 

± 4,4 

17,1 

± 4,2 

Versuchsmittel 15,8 

± 4,1 

16,2 

± 4,5 

15,9 

± 4,7 

15,9 

± 4,4

Ergebnisse 75 


Laktationsfutter auf die Erythrozytenkonzentration der Sauen im Vollblut [10 12 /l] 


Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

85. 


5,7 

± 1,6 

6,5 

± 1,5 

6,0 

± 0,9 

6,1 

± 1,4 

Geburt 5,6 

± 1,2 

5,9 

± 0,9 

5,7 

± 0,5 

5,7 

± 0,9 

Absetzen 5,9 

± 0,5 

5,5 

± 1,1 

5,5 

± 0,8 

5,6 

± 0,9 


± 1,2 

5,9 

± 1,2 

5,7 

± 0,8 

5,8 

± 1,1 


Laktationsfutter auf den Hämoglobingehalt der Sauen im Vollblut [g/dl] während 

des Versuches 

Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

85. 


12,1 

± 3,3 

13,8 

± 2,9 

13,0 

± 2,2 

13,0 

± 2,8 

Geburt 12,0 

± 2,2 

12,9 

± 1,9 

12,3 

± 0,9 

12,4 

± 1,7 

Absetzen 12,4 

± 0,8 

11,8 

± 2,4 

11,7 

± 1,7 

12,0 

± 1,7 


± 2,3 

12,8 

± 2,5 

12,3 

± 1,7 

12,4 

± 2,2

76 Ergebnisse 


Laktationsfutter auf den Hämatokritwert der Sauen [%] während des Versuches 

Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

85. 


36,1 

± 10,1 

41,6 

± 8,7 

39,7 

± 4,2 

39,1 

± 8,2 

Geburt 35,1 

± 6,4 

37,9 

± 5,7 

36,3 

± 2,7 

36,4 

± 5,1 

Absetzen 37,2 

± 2,8 

35,4 

± 7,2 

35,2 

± 4,8 

35,9 

± 5,2 


± 6,9 

38,3 

± 7,6 

37,1 

± 4,3 

37,2 

± 6,4 


Laktationsfutter auf das rote Blutbild sowie Leukozytenkonzentration der Ferkel 

beim Absetzen 

Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

Leukozyten 

[10 9 /l] 

20,4 

± 5,0 

20,8 

± 2,7 

19,8 

± 4,4 

20,3 

± 4,0 

Erythrozyten 

[10 12 /l] 

6,5 

± 0,9 

6,4 

± 0,7 

6,1 

± 0,5 

6,3 

± 0,7 

Hämoglobin 

[g/dl] 

12,5 

± 1,7 

12,6 

± 1,3 

11,9 

± 1,1 

12,3 

± 1,4 

Hämatokrit [%] 38,5 

± 5,6 

38,4 

± 4,2 

36,4 

± 3,5 

37,8 

± 4,5 


Die mittlere Zusammensetzung der Leukozytenfraktion, also der prozentuale Anteil 

der Lymphozyten, der Monozyten und der neutrophilen, eosinophilen sowie 

basophilen Granulozyten, ist in den Übersichten 49 bis 53 für die drei Messzeitpunkte 

wiedergegeben. Die Daten der einzelnen Sauen zu diesen Messparametern sind in 

den Anhangstabellen 37 bis 39 aufgeführt. Wie aus den Übersichten 49 bis 53

Ergebnisse 77 

hervorgeht, war während des Versuches bei diesen Blutparametern kein 

Behandlungseffekt nachzuweisen. Beim Anteil der Lymphozyten (Übersicht 49) 

sowie neutrophilen Granulozyten (Übersicht 50) an der Gesamtleukozytenzahl 

konnte hingegen ein hochsignifikanter Einfluss des Messzeitpunktes festgestellt 

werden. Wie Übersicht 49 zeigt, kam es post partum zu einer signifikanten 

Erniedrigung der Lymphozytenkonzentration auf im Mittel 42,9% im Vergleich zu 

durchschnittlich 63,8% am 85. Trächtigkeitstag. Beim Versuchsende am 28. 

Laktationstag wurde dagegen durch einen signifikanten Anstieg auf durchschnittlich 

55,1 % die anfänglich gemessene Konzentration wieder nahezu erreicht. Damit lagen 

die analysierten Gehalte am 85. Trächtigkeitstag sowie am 28. Laktationstag in der 

biologischen Schwankungsbreite. Die postpartal aufgetretene Reduktion der 

Lymphozytenzahl auf ein für nicht gebärende Tiere pathologisches Niveau (42,9%) 

war für die Sauen in diesem Leistungsstadium physiologisch normal. Gleichzeitig war 

hiermit ein Anstieg der Konzentration der neutrophilen Granulozyten zu verzeichnen, 

wie aus Übersicht 50 zu entnehmen ist. So wurde auch bei diesem Blutzelltyp 

postpartal ein pathologischer Wert erreicht, der aber ebenfalls durch die 

physiologischen Einflüsse zum Zeitpunkt der Geburt zu erklären ist. In reziproker 

Weise zu den Lymphozyten waren die neutrophilen Granulozyten postpartal mit 

durchschnittlich 50,0% signifikant gegenüber dem ersten Messtermin erhöht, am 28. 

Laktationstag waren sie dann mit im Mittel 35,0% wieder signifikant abgefallen und 

erreichten in etwa die anfänglich gemessene Konzentration. Damit lagen die 

analysierten Gehalte am 85. Trächtigkeitstag sowie am 28. Laktationstag gleichfalls 

in der biologischen Schwankungsbreite. Für die eosinophilen und basophilen 

Granulozyten sowie für die Monozyten ergaben sich keine Einflüsse des 

Messzeitpunktes, die Gehalte befanden sich immer im physiologischen Bereich. 

Das Differentialblutbild der Ferkel beim Absetzen ist in Übersicht 54 dargestellt. Es 

ergaben sich durch die Versuchsfaktoren keine Unterschiede zwischen den 

einzelnen Behandlungen bezüglich des Anteils der verschiedenen Blutzellfaktionen. 

Die relativen Anteile der verschiedenen weißen Blutzellen lagen in der biologischen 

Schwankungsbreite. Einzeltierdaten sind Anhangstabelle 40 zu entnehmen.

78 Ergebnisse 


Laktationsfutter auf den relativen Anteil der Lymphozyten [%] an der 

Gesamtleukozytenzahl der Sauen während des Versuches 

Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

85. 


62,0 

± 8,1 

65,3 

± 11,8 

64,1 

± 8,2 

63,8 

± 9,4 

Geburt 43,8 

± 18,9 

40,3 

± 17,9 

44,6 

± 18,5 

42,9 

± 18,0 

Absetzen 58,4 

± 5,8 

59,7 

± 5,5 

57,8 

± 7,1 

58,4 

± 5,8 


± 14,3 

55,1 

± 16,5 

55,5 

± 14,6 

55,1 

± 15,0 


Laktationsfutter auf den relativen Anteil der neutrophilen Granulozyten [%] an 

der Gesamtleukozytenzahl der Sauen während des Versuches 

Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

85. 


32,0 

± 7,5 

28,5 

± 11,1 

29,2 

± 7,1 

29,9 

± 8,6 

Geburt 49,5 

± 19,8 

53,0 

± 17,9 

47,4 

± 19,2 

50,0 

± 18,6 

Absetzen 35,0 

± 5,7 

34,0 

± 5,4 

35,3 

± 7,1 

35,0 

± 5,7 


± 14,4 

38,5 

± 16,2 

37,3 

± 14,4 

38,3 

± 14,9

Ergebnisse 79 


Laktationsfutter auf den relativen Anteil der eosinophilen Granulozyten [%] an 

der Gesamtleukozytenzahl der Sauen während des Versuches 

Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

85. 


2,6 

± 0,8 

3,1 

± 1,1 

3,4 

± 1,2 

3,0 

± 1,1 

Geburt 3,6 

± 1,5 

3,2 

± 1,4 

3,9 

± 0,9 

3,6 

± 1,3 

Absetzen 3,2 

± 0,8 

3,2 

± 1,0 

3,4 

± 0,9 

3,2 

± 0,8 


± 1,1 

3,2 

± 1,1 

3,6 

± 1,0 

3,3 

± 1,1 


Laktationsfutter auf den relativen Anteil der basophilen Granulozyten [%] an der 

Gesamtleukozytenzahl der Sauen während des Versuches 

Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

85. 


0,6 

± 0,5 

0,5 

± 0,4 

0,5 

± 0,5 

0,6 

± 0,5 

Geburt 0,6 

± 0,6 

0,7 

± 0,5 

0,9 

± 0,5 

0,7 

± 0,5 

Absetzen 0,6 

± 0,4 

0,6 

± 0,4 

0,6 

± 0,5 

0,6 

± 0,4 


± 0,5 

0,6 

± 0,4 

0,7 

± 0,5 

0,6 

± 0,5

80 Ergebnisse 


Laktationsfutter auf den relativen Anteil der Monozyten [%] an der Gesamtleukozytenzahl 

der Sauen während des Versuches 

Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

85. 


2,7 

± 1,0 

2,6 

± 1,4 

2,8 

± 1,0 

2,7 

± 1,1 

Geburt 2,5 

± 1,1 

2,9 

± 1,0 

3,1 

± 1,5 

2,8 

± 1,2 

Absetzen 2,8 

± 0,9 

2,4 

± 0,9 

3,0 

± 0,8 

2,8 

± 0,9 


± 1,0 

2,6 

± 1,1 

3,0 

± 1,1 

2,8 

± 1,1 


Laktationsfutter auf die Zusammensetzung der Leukozytenfraktion [%] der Ferkel 

beim Absetzen 

Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

Lymphozyten 

[%] 

61,0 

± 7,5 

64,5 

± 5,1 

61,9 

± 6,8 

62,5 

± 6,5 

Neutrophile G.* 

[%] 

32,0 

± 7,0 

28,9 

± 4,9 

31,5 

± 6,8 

30,8 

± 6,3 

Eosinophile G.* 

[%] 

3,3 

± 0,5 

3,6 

± 0,7 

3,3 

± 0,8 

3,4 

± 0,7 

Basophile G.* 

[%] 

0,7 

± 0,4 

0,4 

± 0,3 

0,6 

± 0,4 

0,6 

± 0,4 

Monozyten [%] 3,1 

± 1,0 

* G.= Granulozyten 

2,5 

± 0,8 

2,6 

± 0,7 

2,7 

± 0,9

Ergebnisse 81 

4.4.4.4 Aktivität der Transaminasen und der alkalischen Phosphatase 

Die durchschnittlichen Aktivitäten der Alanin-Aminotransferase (ALT), der Aspartat- 

Aminotransferase (AST), der Gamma-Glutamyltransferase (?-GT) und der 

Alkalischen Phosphatase (ALP) an den drei Messzeitpunkten sind in Übersicht 55 bis 

Übersicht 58 dargestellt. Die ermittelten Einzeltierdaten können den Anhangstabellen 

41 bis 44 entnommen werden. Die Versuchsfaktoren zeigten keinen Einfluss auf 

diese Messparameter, außerdem lagen alle Werte in der physiologischen 

Schwankungsbreite. Bei den Aktivitäten der ALP, der ALT und der AST ergaben sich 

z.T. signifikante Unterschiede zwischen den einzelnen Messzeitpunkten. Da diese 

Schwankungen keinen gerichteten Einfluss zeigten, und nur auf die stark 

tierindividuellen Unterschiede bzw. auf physiologische Veränderungen bedingt durch 

die Geburt zurückzuführen waren, wird hier nicht näher darauf eingegangen. 

Die Plasmaenzymaktivitäten bei den am 28. Laktationstag untersuchten Ferkeln sind 

in Übersicht 59 aufgeführt. Versuchsbedingte Unterschiede waren nicht 

nachzuweisen, die ermittelten Werte befanden sich alle in der biologischen 

Schwankungsbreite. Die Einzeldaten sind in Anhangstabelle 45 dargestellt. 


Laktationsfutter auf die Aktivität der alkalischen Phosphatase (ALP) im Plasma 

der Sauen [I.U./l] während des Versuches 

Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

85. 


49,4 

± 20,5 

50,4 AB 

± 17,2 

42,5 B 

± 14,5 

47,4 B 

± 17,4 

Geburt 55,9 

± 22,7 

59,5 A 

± 18,9 

58,3 A 

± 13,3 

57,9 A 

± 18,2 

Absetzen 41,7 

± 12,1 

41,4 B 

± 10,2 

41,8 B 

± 12,4 

41,6 B 

± 11,3 


± 19,3 

50,5 

± 17,2 

47,5 

± 15,2 

49,0 

± 17,2

82 Ergebnisse 


Laktationsfutter auf die Aktivität der Alanin-Aminotransferase (ALT) im Plasma 


Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

85. 


25,4 A 

± 7,8 

24,4 

± 8,6 

25,0 

± 7,7 

24,9 A 

± 7,8 

Geburt 

20,9 AB 

± 5,3 

18,1 

± 5,3 

22,8 

± 9,5 

20,6 B 

± 7,0 

Absetzen 

18,9 B 

± 4,7 

21,0 

± 7,0 

20,3 

± 4,7 

20,1 B 

± 5,5 


± 6,5 

21,2 

± 7,4 

22,7 

± 7,6 

21,9 

± 7,1 


Laktationsfutter auf die Aktivität der Aspartat-Aminotransferase (AST) im Plasma 


Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

85. 


13,7 

± 5,3 

13,5 

± 3,5 

13,9 AB 

± 7,9 

13,7 B 

± 5,7 

Geburt 21,9 

± 11,1 

22,1 

± 10,8 

20,3 A 

± 9,5 

21,4 A 

± 10,2 

Absetzen 14,7 

± 10,1 

14,5 

± 7,0 

11,6 B 

± 5,1 

13,6 B 

± 7,6 


± 9,7 

16,7 

± 8,4 

15,3 

± 8,4 

16,2 

± 8,8

Ergebnisse 83 


Laktationsfutter auf die Aktivität der Gamma-Glutamyltransferase (?-GT) im 

Plasma der Sauen [I.U./l] während des Versuches 

Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

85. 


22,2 

± 4,2 

21,3 

± 5,4 

17,8 

± 4,8 

20,9 

± 5,2 

Geburt 21,2 

± 5,4 

23,3 

± 9,4 

17,4 

± 4,0 

20,7 

± 6,9 

Absetzen 19,9 

± 5,6 

21,8 

± 5,2 

17,8 

± 4,8 

19,8 

± 5,3 


± 5,0 

22,2 

± 6,8 

18,1 

± 4,9 

20,5 

± 4,9 


Laktationsfutter auf die Aktivität der Transaminasen (ALT, AST und ?-GT) sowie 

der alkalischen Phosphatase (ALP) der Ferkel beim Absetzen 

Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

ALP [U/l] 314,7 

± 93,8 

339,9 

± 133,9 

316,7 

± 76,9 

323,8 

± 103,5 

ALT [U/l] 22,9 

± 8,5 

22,7 

± 8,6 

27,3 

± 10,1 

24,3 

± 9,2 

AST [U/l] 22,1 

± 5,3 

23,4 

± 11,5 

22,3 

± 8,1 

22,6 

± 8,9 

?-GT [U/l] 13,7 

± 5,6 

13,8 

± 4,3 

13,9 

± 4,4 

13,8 

± 4,7

84 Ergebnisse 

4.4.5 Milchparameter 

4.4.5.1 Rohproteingehalt im Kolostrum 

Aus Übersicht 60 kann der Rohproteingehalt der gewonnenen Kolostrumproben 

entnommen werden. Wie aus dieser Übersicht zu ersehen ist, wies die 

Versuchsgruppe mit der höchsten Echinacea-Dosierung mit 15,6 % einen um 5% 

niedrigeren Rohproteingehalt auf als die Vergleichsgruppen mit 16,2 (Kontrolle) bzw. 

16,4 % (niedrige Zulagengruppe). Diese Unterschiede ließen sich aber aufgrund der 

starken tierindividuellen Schwankungen innerhalb einer Behandlung statistisch nicht 

absichern. Die Einzelwerte zu diesen Milchparametern können Anhangstabelle 46 

entnommen werden. 


Laktationsfutter auf den Rohproteingehalt im Kolostrum der Sauen [%] 

Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

XP - Gehalt 16,2 

± 1,5 

16,4 

± 1,8 

15,6 

± 1,7 

16,1 

± 1,7 

4.4.5.2 Immunglobulin G-Gehalt im Kolostrum 

Der Gesamtgehalt der Immunglobulin G Subklasse IgG1 in den entnommenen 

Kolostrumproben kann aus Übersicht 61 ersehen werden. Es konnte kein Effekt der 

Echinacea-Applikation auf diesen Parameter festgestellt werden. Aufgrund des 

Individualeffektes der Sauen (Effekt des Blockes) – wie aus Anhangstabelle 46 

entnommen werden kann – wies diese Messgröße eine sehr hohe Standardabweichung 

auf.

Ergebnisse 85 


Laktationsfutter auf den Gesamtgehalt an Immunglobulin G1 im Kolostrum der 

Sauen [Extinktion] 

Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

Gesamt-IgG1 

0,34 

± 0,18 

0,31 

± 0,22 

0,35 

± 0,28 

0,33 

± 0,22 

4.4.6 Gesundheitszustand 

Es traten in allen drei Behandlungen bei verschiedenen Sauen leichte bis mittlere 

Beeinträchtigungen des Gesundheitszustandes auf. Diese Beeinträchtigungen 

manifestierten sich vor allem postpartal in Form von leichten bis mittelschweren 

Endometritiden, ferner traten während der Gravidität vereinzelt Harnwegsinfekte und 

leichte Atemwegsinfektionen auf. Bei den Ferkeln traten vereinzelt Gelenksentzündungen 

und Durchfälle auf. Entsprechend der klinischen Symptomatik wurden 

einzelne Tiere mit Antibiotika behandelt, bei den Sauen wurde zur Therapie der 

Gebärmutterentzündung bei leichteren Infekten ein Lokaltherapeutikum angewendet. 

Traten starke Beeinträchtigungen des Gesundheitszustandes mit einhergehender 

Depression der Futteraufnahme über mehrere Tage auf, so wurden die 

entsprechenden Tiere aus dem Versuch genommen und in der Auswertung nicht 

mehr berücksichtigt. Bezüglich der klinischen Symptomatik konnten sowohl bei den 

Sauen als auch bei den Ferkeln keine Unterschiede zwischen den Behandlungen 

verzeichnet werden, so dass ein Einfluss der Echinacea-Applikation auf diesen 

Parameter ausgeschlossen werden kann. Während des Versuches verendeten 

insgesamt 49 Ferkel (vgl. Anhangstabelle 18), davon jeweils 16 aus der Kontrollgruppe 

und Behandlung II, 17 aus Behandlung III. Die Todesfälle waren somit 

gleichmäßig über alle Gruppen verteilt. Die meisten Ferkel wurden innerhalb der 

ersten Lebenstage durch die Muttersau erdrückt. 6 Ferkel verendeten aufgrund einer 

Kreislaufinsuffizienz und 6 aufgrund eines zu geringen Geburtsgewichtes und damit 

einhergehender Lebensschwäche. Hinsichtlich der Kotkonsistenz der Ferkel ergaben 

sich keine Unterschiede zwischen den Gruppen.

86 Ergebnisse 

4.5 Ferkelversuch II 


Aus Übersicht 62 kann die durchschnittliche tägliche Futteraufnahme der Ferkel nach 

dem Absetzen entnommen werden. Dabei ist ersichtlich, dass die Nachkommen der 

Sauen mit der höchsten Echinacea-Zulagenstufe im ersten Versuchsabschnitt ca. 

14% mehr Futter aufnahmen als die Vergleichstiere. Dieser Unterschied verringerte 

sich in der 2. Versuchshälfte, konnte aber statistisch zu keiner Zeit abgesichert 

werden Anhangstabelle 47 zeigt die ermittelten Einzeltierdaten zur Futteraufnahme. 


Laktationsfutter der Muttersau auf die tägliche Futteraufnahme der Ferkel nach 

dem Absetzen [g FS] 

Gruppe 

E.p.-Zulage - Sau [%] 

I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

1. + 2. Wo. 250 

± 56 

246 

± 68 

287 

± 68 

261 

± 66 

3. + 4. Wo. 630 

± 80 

624 

± 106 

644 

± 119 

633 

± 101 

Versuchsmittel 440 

± 58 

435 

± 82 

466 

± 91 

446 

± 78 


Bei den abgesetzten Ferkeln ergaben sich im Versuchsverlauf keine Unterschiede 

bezüglich der Lebendmasse. Zu Versuchsende wiesen die Tiere im Mittel ein 

Gewicht von 15,1 kg auf (Übersicht 63). Ebenso verhielt es sich mit den täglichen 

Zunahmen der Tiere, die durchschnittlich bei 287 g lagen, wie Übersicht 64 zeigt. Die 

Lebendmassen der einzelnen Ferkel sind Anhangstabelle 48 zu entnehmen.

Ergebnisse 87 


Laktationsfutter der Muttersau auf die Lebendmasse der Ferkel nach dem 

Absetzen [kg] 

Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

Einstallung 6,9 

± 0,7 

7,3 

± 1,0 

6,9 

± 1,1 

7,0 

± 1,0 

2. Wo. 9,4 

± 1,0 

9,6 

± 1,6 

9,7 

± 1,6 

9,5 

± 1,4 

4. Wo. 15,0 

± 1,4 

15,1 

± 2,1 

15,1 

± 2,4 

15,1 

± 2,0 


Laktationsfutter der Muttersau auf die täglichen Zunahmen der Ferkel nach dem 

Absetzen [g] 

Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

2. Wo. 179 

± 40 

163 

± 67 

194 

± 50 

179 

± 54 

4. Wo. 400 

± 53 

393 

± 61 

393 

± 78 

395 

± 63 

Versuchsmittel 290 

± 32 

278 

± 51 

294 

± 60 

287 

± 49 


Die Futterverwertung der Ferkel lag im Versuchsmittel bei 1,54 wie aus Übersicht 65 

zu ersehen ist. Über den gesamten Versuchszeitraum hinweg wiesen die Ferkel 

deren Mütter keine Echinacea-Zulage über das Futter erhielten mit 1,49 eine um 5% 

bessere Futterverwertung auf als die Nachkommen der Echinacea-supplementierten

88 Ergebnisse 

Tiere. Dieser Unterschied in der Futterverwertung war insbesondere in der ersten 

Versuchshälfte ausgeprägt, konnte aber zu keinem Zeitpunkt statistisch abgesichert 

werden. 


Laktationsfutter der Muttersau auf die Futterverwertung der Ferkel nach dem 

Absetzen [g Futter/ g Zuwachs] 

Gruppe 


I 

0 

II 

1,2/0,5 

III 

3,6/1,5 

Mittel 

1. + 2. Wo. 1,40 

± 0,17 

1,55 

± 0,37 

1,49 

± 0,13 

1,48 

± 0,25 

3. + 4. Wo. 1,58 

± 0,14 

1,59 

± 0,18 

1,65 

± 0,10 

1,61 

± 0,14 


± 0,11 

1,57 

± 0,08 

1,57 

± 0,09 

1,54 

± 0,10 


Bei den Ferkeln traten keine Beeinträchtigungen des Gesundheitszustandes auf. 

Lediglich nach den ersten Versuchstagen wiesen einige Tiere einen zu diesem 

Zeitpunkt üblichen, durch den Absetzstress induzierten leichten Durchfall auf, wobei 

sich keine. Unterschiede zwischen den Gruppen ergaben. Nach Abklingen dieser 

Symptome setzten alle Tiere Kot von normaler Konsistenz und Farbe ab.

Ergebnisse 89 

4.6 Schweinemastversuch 


Wie Übersicht 66 zeigt, ergab sich während des neunwöchigen Mastversuches kein 

Einfluss einer oralen Echinacea-Applikation auf den Futterverbrauch der Masttiere. 

Im Versuchsmittel verzehrten die wachsenden Schweine 2012 g täglich. Ab der 

siebten Versuchswoche verzehrten die mit Cobs versorgten Tiere mehr Futter als die 

mit Presssaft versorgten, die Kontrolltiere nahmen am wenigsten auf. Diese 

Unterschiede blieben aber mit maximal 4% weit unter der Signifikanzschwelle. 

Die Futteraufnahmedaten der einzelnen Tiere in den verschiedenen Versuchswochen 

sind in den Anhangstabellen 49 bis 51 aufgeführt.

90 Ergebnisse 


Zulage auf die tägliche Futteraufnahme der Mastschweine [g FS] 

Gruppe 

E.p.-Zulage 

I 

0 

II 

E-PS 

III 

E-Cobs 

Mittel 

1. Wo. 

1426 

± 129 

1409 

± 97 

1423 

± 95 

1419 

± 106 

2. Wo. 

1566 

± 146 

1567 

± 120 

1574 

± 117 

1569 

± 126 

3. Wo. 

1736 

± 144 

1713 

± 136 

1737 

± 128 

1729 

± 134 

4. Wo. 

1898 

± 148 

1872 

± 148 

1884 

± 135 

1884 

± 141 

5. Wo. 

2052 

± 149 

2030 

± 157 

2051 

± 129 

2044 

± 143 

6. Wo. 

2175 

± 191 

2176 

± 168 

2207 

± 124 

2185 

± 161 

7. Wo. 

2301 

± 190 

2335 

± 143 

2358 

± 124 

2331 

± 154 

8. Wo. 

2389 

± 206 

2426 

± 155 

2470 

± 112 

2428 

± 163 

9. Wo. 

2476 

± 183 

2521 

± 141 

2570 

± 100 

2521 

± 148 

Versuchsmittel 

2002 

± 144 

2005 

± 128 

2031 

± 108 

2012 

± 125 


Das durchschnittliche Gewicht der Mastschweine während des 9-wöchigen Mastversuches 

kann Übersicht 67 entnommen werden. Demnach erreichten die Tiere 

beim Versuchsende im Mittel ein Gewicht von 83,8 kg. Ab der sechsten 

Versuchswoche lagen die Gewichte der Kontrolltiere um 1 bis 2 Prozentpunkte unter 

denen der Echinacea-Gruppen, die sich im Versuchsverlauf bezüglich der 

Lebendmasseentwicklung nicht unterschieden. Diese Tendenz in der

Ergebnisse 91 

Gewichtsentwicklung, die sich entsprechend ab der 6. Woche auch in der Höhe der 

täglichen Zunahmen wiederspiegelte (vgl. Übersicht 68), konnte aber statistisch nicht 

abgesichert werden. Auch beim Vergleich der mittleren täglichen Zunahmen, die über 

den gesamten Versuch hinweg bei den Echinacea-Gruppen mit 828 g/d knapp 4 % 

über denen der Kontrolltiere lagen ließ sich der Unterschied statistisch nicht sichern. 

Die Lebendmassedaten der Einzeltiere sind in den Anhangstabellen 52 bis 54 

aufgelistet. 


Zulage auf die Lebendmasse der Mastschweine [kg] 

Gruppe 

E.p.-Zulage 

I 

0 

II 

E-PS 

III 

E-Cobs 

Mittel 

Versuchsbeginn 

32,4 

± 3,6 

32,2 

± 3,0 

32,3 

± 3,1 

32,3 

± 3,2 

1. Wo. 

37,0 

± 4,3 

36,9 

± 3,7 

37,0 

± 3,6 

37,0 

± 3,8 

2. Wo. 

42,0 

± 4,6 

42,0 

± 4,1 

42,1 

± 4,2 

42,0 

± 4,2 

3. Wo. 

47,5 

± 5,0 

47,4 

± 4,6 

47,6 

± 4,5 

47,5 

± 4,6 

4. Wo. 

53,6 

± 5,6 

53,3 

± 5,1 

53,6 

± 4,8 

53,5 

± 5,1 

5. Wo. 

59,6 

± 5,9 

59,7 

± 5,4 

59,7 

± 5,1 

59,7 

± 5,4 

6. Wo. 

65,4 

± 6,1 

66,1 

± 5,8 

66,2 

± 5,7 

65,9 

± 5,8 

7. Wo. 

70,8 

± 6,4 

71,7 

± 6,1 

71,8 

± 5,8 

71,4 

± 6,0 

8. Wo. 

76,5 

± 6,9 

77,5 

± 6,2 

77,9 

± 5,9 

77,3 

± 6,2 

9. Wo. 

82,6 

± 7,1 

84,4 

± 5,9 

84,5 

± 5,7 

83,8 

± 6,2

92 Ergebnisse 


Zulage auf die täglichen Zunahmen der Mastschweine [g] 

Gruppe 

E.p.-Zulage 

I 

0 

II 

E-PS 

III 

E-Cobs 

Mittel 

1. Wo. 

661 

± 136 

675 

± 126 

675 

± 103 

670 

± 120 

2. Wo. 

711 

± 75 

720 

± 100 

730 

± 101 

720 

± 91 

3. Wo. 

784 

± 94 

775 

± 104 

783 

± 81 

781 

± 92 

4. Wo. 

870 

± 125 

846 

± 145 

853 

± 100 

857 

± 123 

5. Wo. 

866 

± 63 

916 

± 96 

869 

± 99 

884 

± 89 

6. Wo. 

830 

± 128 

907 

± 141 

931 

± 97 

889 

± 129 

7. Wo. 

771 

± 127 

804 

± 105 

804 

± 93 

793 

± 108 

8. Wo. 

805 

± 142 

832 

± 81 

869 

± 57 

835 

± 102 

9. Wo. 

879 

± 167 

977 

± 167 

943 

± 112 

933 

± 154 


797 

± 64 

828 

± 59 

828 

± 46 

818 

± 58 


Die Futterverwertung der Mastschweine, also der Futterverbrauch pro kg Zuwachs 

lag im Versuchsmittel über alle Behandlungen bei 2,46 wie in Übersicht 69 dargestellt 

ist. Dabei wiesen die Kontrolltiere mit 2,51 kg Futter/ kg Zuwachs eine signifikant 

schlechtere Futterverwertung auf als die mit Presssaft versorgten Tiere (2,43); 

gegenüber den mit Echinacea-Cobs versorgten Mastschweinen (2,45) war der 

Unterschied hingegen nicht mehr signifikant. Betrachtet man die einzelnen 

Versuchswochen, so ergaben sich nur in der 6. Woche statistisch abzusichernde

Ergebnisse 93 

Unterschiede zwischen den Versuchsgruppen einerseits und der Kontrollgruppe 

andererseits. Die Einflüsse der Echinacea-Zulage auf diesen Parameter konnten 

hingegen in den darauffolgenden Wochen nicht mehr statistisch gesichert werden. 

Während des neunwöchigen Mastversuches ergab sich kein Einfluss durch die Form 

der Echinacea-Applikation (Presssaft oder Cobs). 


Zulage auf die Futterverwertung der Mastschweine [kg Futter/ kg Zuwachs] 

Gruppe 

E.p.-Zulage 

I 

0 

II 

E-PS 

III 

E-Cobs 

Mittel 

1. Wo. 

2,23 

± 0,40 

2,14 

± 0,34 

2,14 

± 0,29 

2,17 

± 0,34 

2. Wo. 

2,22 

± 0,24 

2,21 

± 0,26 

2,19 

± 0,30 

2,21 

± 0,26 

3. Wo. 

2,23 

± 0,19 

2,24 

± 0,26 

2,24 

± 0,22 

2,23 

± 0,22 

4. Wo. 

2,21 

± 0,21 

2,26 

± 0,36 

2,23 

± 0,28 

2,23 

± 0,29 

5. Wo. 

2,37 

± 0,15 

2,23 

± 0,22 

2,38 

± 0,22 

2,33 

± 0,21 

6. Wo. 

2,66 a 

± 0,32 

2,44 b 

± 0,32 

2,38 b 

± 0,15 

2,49 

± 0,30 

7. Wo. 

3,04 

± 0,38 

2,94 

± 0,35 

2,97 

± 0,37 

2,98 

± 0,36 

8. Wo. 

3,03 

± 0,43 

2,93 

± 0,24 

2,85 

± 0,20 

2,94 

± 0,31 

9. Wo. 

2,95 

± 0,78 

2,66 

± 0,53 

2,76 

± 0,33 

2,79 

± 0,58 


2,51 a 

± 0,08 

2,43 b 

± 0,12 

2,45 ab 

± 0,06 

2,46 

± 0,10

94 Ergebnisse 



In Übersicht 70 ist die mittlere Leukozytenkonzentration der Mastschweine im Vollblut 

an den verschiedenen Messzeitpunkten dargestellt. Ein Einfluss der Echinacea- 

Zulage bzw. der Art der Echinacea-Applikation auf diesen Blutparameter konnte nicht 

nachgewiesen werden. Auch der Varianzfaktor Messzeitpunkt zeigte keinen Einfluss 

auf die Leukozytenkonzentration, die im Versuchsmittel bezogen auf alle 3 

Behandlungen bei 21,6 *10 9 /l lag. Die analysierte Leukozytenkonzentration lag bei 

der Echinacea-Cob-Gruppe nahezu dauerhaft (auch bei Versuchsbeginn) oberhalb 

der biologischen Schwankungsbreite (10 - 20 * 10 9 /l), bei den Vergleichsgruppen 

wurde dieser Referenzbereich nur temporär von einigen Tieren überschritten. 


Zulage auf die Leukozytenkonzentration der Mastschweine im Vollblut [10 9 /l] 

Gruppe 

E.p.-Zulage 

I 

0 

II 

E-PS 

III 

E-Cobs 

Mittel 

Tag 0 

21,3 

± 4,5 

21,0 

± 3,4 

23,6 

± 6,2 

22,0 

± 5,4 

Tag 7 

20,4 

± 4,6 

21,8 

± 5,3 

22,7 

± 2,4 

21,7 

± 4,2 

Tag 14 

20,2 

± 3,4 

21,0 

± 3,5 

22,8 

± 4,2 

21,3 

± 3,8 

Tag 21 

21,6 

± 3,4 

20,1 

± 6,0 

22,4 

± 3,7 

21,3 

± 4,3 

Tag 42 

21,7 

± 6,0 

20,7 

± 4,6 

22,8 

± 5,6 

21,7 

± 5,3 

Tag 49 

24,2 

± 6,5 

21,9 

± 3,4 

22,5 

± 3,7 

22,9 

± 4,8 

Tag 56 

20,9 

± 4,4 

20,2 

± 3,5 

20,8 

± 2,8 

20,6 

± 3,5 

Tag 63 

20,2 

± 3,5 

22,1 

± 4,9 

22,6 

± 4,7 

21,7 

± 4,8 


21,3 

± 4,7 

21,1 

± 4,4 

22,5 

± 4,5 

21,6 

± 4,6

Ergebnisse 95 

Die Erythrozytenkonzentration der Mastschweine wurde an den 8 Messzeitpunkten 

gleichzeitig zu den weißen Blutkörperchen ermittelt. Wie aus Übersicht 71 zu 

ersehen ist, konnte hier ebenfalls ein Einfluss der Versuchsfaktoren Echinacea- 

Zulage bzw. -Applikationsart ausgeschlossen werden. Bei den Kontrolltieren und der 

Echinacea-Cob-Gruppe konnte kein Einfluss des Messzeitpunktes auf die Konzentration 

an roten Blutkörperchen festgestellt werden, bei der Presssaft-Gruppe waren 

die Schwankungen zwischen den einzelnen Messzeitpunkten höher, ein gerichteter 

Effekt der Echinacea-Zulage war aber ebenfalls auszuschließen. Alle erfassten 

Messwerte befanden sich in der biologischen Schwankungsbreite, im Durchschnitt 

lag die Konzentration an roten Blutkörperchen bei den Tieren bei 7,3 * 10 12 / l. 


Zulage auf die Erythrozytenkonzentration der Mastschweine im Vollblut [10 12 /l] 

Gruppe 

E.p.-Zulage 

I 

0 

II 

E-PS 

III 

E-Cobs 

Mittel 

Tag 0 7,1 

± 1,1 

7,7 

± 1,5 

7,6 

± 1,1 

7,5 

± 1,3 

Tag 7 7,1 

± 0,9 

6,8 B 

± 1,3 

6,9 

± 1,1 

7,0 

± 1,1 

Tag 14 7,4 

± 0,5 

7,3 

± 0,5 

7,2 

± 0,6 

7,3 

± 0,5 

Tag 21 7,2 

± 0,4 

7,3 

± 0,6 

7,1 

± 0,4 

7,2 

± 0,5 

Tag 42 

7,5 a 

± 0,6 

7,3 ab 

± 0,6 

6,9 b 

± 0,8 

7,2 

± 0,7 

Tag 49 7,5 

± 0,5 

7,4 

± 0,4 

7,3 

± 0,6 

7,4 

± 0,5 

Tag 56 7,3 

± 0,5 

7,2 

± 0,7 

7,0 

± 0,8 

7,2 

± 0,7 

Tag 63 7,3 

± 0,5 

7,8 A 

± 0,5 

7,4 

± 0,6 

7,5 

± 0,6 


7,3 

± 0,7 

7,3 

± 0,9 

7,2 

± 0,8 

7,3 

± 0,8

96 Ergebnisse 

Als weiterer Parameter des roten Blutbildes der Mastschweine wurde zusätzlich der 

Hämoglobingehalt sowie der Hämatokritwert an den verschiedenen Messzeitpunkten 

erfasst. Wie Übersicht 72 und Übersicht 73 zeigen blieb bei diesen Messgrößen ein 

Effekt der alimentären Echinacea-Zulage bzw. der Echinacea-Darreichungsform 

gleichfalls aus. Es konnte bei keiner Behandlung ein gerichteter Einfluss des 

Messzeitpunktes auf diese beiden Blutparameter festgestellt werden, im Mittel über 

alle Behandlungen und Versuchswochen lag der Hämoglobingehalt bei 12,6 g/dl, 

während ein Hämatokritwert von 38,8 % vorlag. Alle erfassten Werte lagen bei 

diesen Kenngrößen des roten Blutbildes im Referenzbereich für hämatologische 

Normalwerte. Die entsprechenden Einzelwerte der Mastschweine zu den Parametern 

des roten Blutbildes sowie zur Leukozytenkonzentration an den verschiedenen 

Messzeitpunkten können den Anhangstabellen 55 bis 62 entnommen werden. 


Zulage auf den Hämoglobingehalt der Mastschweine im Vollblut [g/dl] 

Gruppe 

E.p.-Zulage 

I 

0 

II 

E-PS 

III 

E-Cobs 

Mittel 

Tag 0 12,1 

± 1,7 

13,0 

± 2,1 

12,9 

± 2,0 

12,7 

± 2,0 

Tag 7 12,0 

± 1,8 

11,4 

± 2,3 

11,8 

± 2,0 

11,7 

± 2,0 

Tag 14 12,8 

± 1,3 

12,3 

± 1,2 

12,5 

± 1,2 

12,5 

± 1,2 

Tag 21 12,7 

± 0,7 

12,6 

± 1,2 

12,4 

± 0,8 

12,6 

± 0,9 

Tag 42 13,1 

± 1,1 

12,6 

± 1,3 

12,2 

± 1,7 

12,6 

± 1,4 

Tag 49 13,4 

± 1,3 

13,1 

± 0,7 

13,2 

± 1,5 

13,2 

± 1,2 

Tag 56 12,9 

± 0,9 

12,5 

± 1,1 

12,5 

± 1,7 

12,6 

± 1,3 

Tag 63 12,6 

± 1,3 

13,4 

± 1,1 

13,0 

± 1,3 

13,0 

± 1,2 


12,7 

± 1,3 

12,6 

± 1,5 

12,6 

± 1,6 

12,6 

± 1,5

Ergebnisse 97 


Zulage auf den Hämatokritwert der Mastschweine im Vollblut [%] 

Gruppe 

E.p.-Zulage 

I 

0 

II 

E-PS 

III 

E-Cobs 

Mittel 

Tag 0 36,7 

± 5,3 

39,2 

± 7,1 

39,7 

± 6,1 

38,5 

± 6,2 

Tag 7 37,8 

± 5,1 

35,5 

± 7,3 

36,4 

± 6,4 

36,6 

± 6,3 

Tag 14 39,4 

± 3,8 

38,0 

± 3,5 

38,3 

± 3,7 

38,5 

± 3,6 

Tag 21 38,9 

± 2,4 

38,8 

± 3,6 

38,0 

± 2,2 

38,6 

± 2,8 

Tag 42 40,8 

± 3,7 

39,2 

± 4,0 

37,9 

± 4,9 

39,2 

± 4,3 

Tag 49 40,5 

± 2,8 

39,8 

± 2,1 

40,2 

± 4,4 

40,1 

± 3,6 

Tag 56 39,0 

± 2,7 

38,3 

± 3,1 

38,1 

± 4,9 

38,5 

± 4,0 

Tag 63 39,1 

± 3,5 

42,3 

± 3,2 

40,9 

± 3,6 

40,8 

± 3,7 


39,0 

± 4,1 

38,9 

± 4,8 

38,6 

± 4,9 

38,8 

± 4,6 


Die mittlere Zusammensetzung der Leukozytenfraktion, also der prozentuale Anteil 

der Lymphozyten, der Monozyten und der neutrophilen, eosinophilen sowie basophilen 

Granulozyten an der Gesamtleukozytenzahl ist in den Übersichten 74 bis 78 

für die acht verschiedenen Messzeitpunkte wiedergegeben. Die Daten der einzelnen 

Mastschweine zu diesen Messparametern sind in den Anhangstabellen 63 bis 70 

aufgeführt. 

Während des 9-wöchigen Mastversuches war bei diesen Blutwerten kein 

Behandlungseffekt nachzuweisen, auch ein Einfluss des Messzeitpunktes auf die 

Zusammensetzung des Differentialblutbildes war auszuschließen. Im Versuchsmittel 

über alle Gruppen und Blutentnahmezeitpunkte setzte sich die Leukozytenfraktion

98 Ergebnisse 

wie folgt zusammen: 70,9% Lymphozyten (vgl. Übersicht 74), 23,4 % neutrophile 

Granulozyten (vgl. Übersicht 75), 3,0% eosinophile Granulozyten (vgl. Übersicht 76), 

0,3 % basophile Granulozyten (vgl. Übersicht 77) und 2,4 % Monozyten (vgl. 

Übersicht 78). Die mittleren Gehalte der verschiedenen Fraktionen der weißen 

Blutkörperchen lagen während des gesamten Versuches in der biologischen 

Schwankungsbreite für hämatologische Normalwerte, lediglich bei einzelnen Tieren 

wurden die Referenzschwellen temporär unter- bzw. überschritten 


Zulage auf den relativen Anteil der Lymphozyten [%] an der Gesamtleukozytenzahl 

der Mastschweine während des Versuches 

Gruppe 

E.p.-Zulage 

I 

0 

II 

E-PS 

III 

E-Cobs 

Mittel 

Tag 0 69,3 

± 12,3 

66,7 

± 11,5 

68,0 

± 12,1 

68,0 

± 11,5 

Tag 7 66,9 

± 11,3 

65,9 

± 12,5 

66,6 

± 9,5 

66,5 

± 10,8 

Tag 14 72,2 

± 9,2 

70,7 

± 10,9 

72,0 

± 7,8 

71,6 

± 9,5 

Tag 21 74,3 

± 9,9 

70,6 

± 8,9 

72,9 

± 10,3 

72,6 

± 9,3 

Tag 42 74,9 

± 5,4 

73,0 

± 6,8 

75,1 

± 4,7 

74,3 

± 5,3 

Tag 49 68,9 

± 8,4 

67,9 

± 7,6 

68,8 

± 4,8 

68,5 

± 7,2 

Tag 56 71,2 

± 10,8 

73,5 

± 7,1 

73,7 

± 5,5 

72,8 

± 8,0 

Tag 63 72,3 

± 9,3 

71,7 

± 9,4 

74,7 

± 6,2 

72,9 

± 9,1 


± 9,8 

70,0 

± 9,7 

71,4 

± 8,5 

70,9 

± 9,4

Ergebnisse 99 


Zulage auf den relativen Anteil der neutrophilen Granulozyten [%] an der 

Gesamtleukozytenzahl der Mastschweine während des Versuches 

Gruppe 

E.p.-Zulage 

I 

0 

II 

E-PS 

III 

E-Cobs 

Mittel 

Tag 0 

24,8 

± 12,2 

27,6 

± 11,7 

26,0 

± 12,4 

26,1 

± 11,5 

Tag 7 

27,6 

± 11,2 

28,3 

± 12,5 

27,2 

± 9,3 

27,7 

± 10,8 

Tag 14 

21,9 

± 9,3 

23,5 

± 10,6 

21,9 

± 8,0 

22,4 

± 9,5 

Tag 21 

20,0 

± 9,6 

23,5 

± 8,6 

21,2 

± 10,2 

21,6 

± 9,2 

Tag 42 

19,7 

± 5,4 

21,4 

± 6,6 

19,1 

± 4,5 

20,1 

± 5,2 

Tag 49 

25,1 

± 8,3 

26,3 

± 7,4 

25,2 

± 4,9 

25,6 

± 7,2 

Tag 56 

23,2 

± 10,4 

21,0 

± 7,2 

20,7 

± 5,1 

21,6 

± 7,8 

Tag 63 

22,8 

± 9,5 

22,8 

± 9,6 

19,8 

± 6,2 

21,8 

± 9,3 


23,1 

± 9,8 

24,3 

± 9,6 

22,7 

± 8,4 

23,4 

± 9,3

100 Ergebnisse 


Zulage auf den relativen Anteil der eosinophilen Granulozyten [%] an der 

Gesamtleukozytenzahl der Mastschweine während des Versuches 

Gruppe 

E.p.-Zulage 

I 

0 

II 

E-PS 

III] 

E-Cobs 

Mittel 

Tag 0 

3,1 

± 0,6 

3,0 

± 0,6 

3,2 

± 0,6 

3,1 

± 0,5 

Tag 7 

2,9 

± 0,6 

3,0 

± 0,6 

3,3 

± 0,6 

3,1 

± 0,6 

Tag 14 

3,0 

± 0,5 

3,1 

± 0,6 

3,0 

± 0,4 

3,0 

± 0,5 

Tag 21 

2,9 

± 0,5 

2,9 

± 0,6 

3,1 

± 0,6 

3,0 

± 0,6 

Tag 42 

2,8 

± 0,5 

2,9 

± 0,5 

3,0 

± 0,4 

2,9 

± 0,5 

Tag 49 

3,1 

± 0,6 

3,0 

± 0,5 

3,0 

± 0,4 

3,0 

± 0,5 

Tag 56 

3,1 

± 0,5 

2,9 

± 0,6 

2,9 

± 0,5 

3,0 

± 0,5 

Tag 63 

2,9 

± 0,6 

2,9 

± 0,5 

2,9 

± 0,4 

2,9 

± 0,5 


3,0 

± 0,5 

3,0 

± 0,5 

3,0 

± 0,5 

3,0 

± 0,5



Zulage auf den relativen Anteil der Monozyten [%] an der Gesamtleukozytenzahl der 

Mastschweine während des Versuches 

Gruppe 

E.p.-Zulage 

I 

0 

II 

E-PS 

III 

E-Cobs 

Mittel 

Tag 0 

2,3 

± 0,6 

2,3 

± 0,7 

2,4 

± 0,6 

2,4 

± 0,6 

Tag 7 

2,3 

± 0,6 

2,4 

± 0,4 

2,4 

± 0,6 

2,4 

± 0,5 

Tag 14 

2,5 

± 0,5 

2,5 

± 0,4 

2,7 

± 0,3 

2,5 

± 0,4 

Tag 21 

2,5 

± 0,5 

2,5 

± 0,5 

2,6 

± 0,5 

2,5 

± 0,5 

Tag 42 

2,3 

± 0,3 

2,4 

± 0,4 

2,4 

± 0,4 

2,4 

± 0,3 

Tag 49 

2,6 

± 0,5 

2,4 

± 0,4 

2,5 

± 0,5 

2,5 

± 0,4 

Tag 56 

2,4 

± 0,4 

2,4 

± 0,3 

2,4 

± 0,4 

2,4 

± 0,3 

Tag 63 

2,4 

± 0,4 

2,4 

± 0,4 

2,4 

± 0,3 

2,4 

± 0,3 


2,4 

± 0,4 

2,4 

± 0,4 

2,5 

± 0,4 

2,4 

± 0,4 

4.6.4.3 Rotlauf-Antikörpertiter im Plasma 

Die Rotlauf-Antikörpertiter (Rotlauf-IgG) im Plasma der Mastschweine sind in 

Übersicht 79 für die acht verschiedenen Messzeitpunkte dargestellt. Bei der ersten 

und zweiten Blutentnahme waren die Tiere noch nicht aktiv gegen Rotlauf 

immunisiert, denn die erste Immunisierung erfolgte erst nach einwöchiger Echinacea- 

Applikation also nach der zweiten Blutentnahme. Die zweite Immunisierung erfolgte 

entsprechend der konventionellen Impfpraxis im vierwöchigen Abstand, also nach 

der fünften Versuchswoche und somit 7 Tage vor der 5. Blutentnahme. 

Wie aus Übersicht 79 zu ersehen ist, waren vor der aktiven Immunisierung nur 

minimalste Gehalte an Rotlauf-Antikörpern im Blutplasma der Mastschweine nach-

Ergebnisse 103 

zuweisen, so dass ein vorheriger Kontakt der Tiere mit Erysipelothrix suis, dem 

Erreger des Rotlaufs und damit eine Verfälschung der Versuchsergebnisse 

ausgeschlossen werden konnte. 


Zulage auf die Rotlauf-Antikörper-Titer im Plasma [E.* x10 -3 ] der Mastschweine 


Gruppe 

E.p.-Zulage 

I 

0 

II 

E-PS 

III 

E-Cobs 

Mittel 

Tag 0 

5,9 D 

± 4,2 

10,0 C 

± 23,7 

4,9 D 

± 9,6 

6,7 D 

± 14,8 

Tag 7 

11,2 D 

± 7,8 

18,6 C 

± 19,7 

13,7 D 

± 11,7 

14,4 D 

± 14,0 

Tag 14 

25,8 D 

± 23,7 

18,7 C 

± 17,8 

39,4 D 

± 49,1 

28,1 D 

± 33,3 

Tag 21 

37,1 D 

± 26,2 

28,0 C 

± 27,2 

55,3 D 

± 37,2 

38,6 D 

± 31,3 

Tag 42 

160,7 bA 

± 69,3 

236,1 abA 

± 131,7 

264,1 aA 

± 130,8 

220,6 A 

± 120,5 

Tag 49 

126,7 B 

± 76,1 

204,6 AB 

± 135,4 

212,9 AB 

± 120,6 

181,9 B 

± 118,2 

Tag 56 

88,2 bC 

± 53,5 

154,0 aB 

± 115,6 

164,4 aBC 

± 72,3 

135,3 C 

± 90,3 

Tag 63 

74,5 bC 

± 47,7 

142,0 aB 

± 98,7 

134,3 aC 

± 64,0 

117,5 C 

± 78,4 


63,2 

± 33,7 

101,2 

± 61,3 

103,8 

± 52,9 

89,4 

± 53,0 

* E. = Extinktion 

Nach der ersten Impfung kam es zunächst zu einem leichteren Anstieg der 

Antikörpertiter (vgl. Übersicht 79 Tag 14 bzw. 21), wobei der Anstieg in der 

Echinacea-Cob-Gruppe am eindeutigsten war, während in der Presssaft-Gruppe nur 

eine geringfügige Zunahme beobachtet werden konnte. Nachdem die 

Grundimmunisierung abgeschlossen war, wurde am 42. Versuchstag, also bei der 5. 

Blutentnahme das Maximum der Rotlauf-Antikörpertiter mit einer mittleren Extinktion 

über alle Behandlungen von 220,6*10 - ³ gemessen. Ab diesem


Blutentnahmezeitpunkt zeigte sich, wie Übersicht 79 zu entnehmen ist, ein starker 

Einfluss der oralen Echinacea-Zulage auf die spezifische Antikörper-Ausprägung bei 

den Mastschweinen, wobei ein Effekt des Echinacea-Präparates auszuschließen 

war. Aufgrund der für diesen Immunparameter charakteristischen tierindividuellen 

Streuung konnten die deutlichen Unterschiede zwischen Kontroll- und 

Versuchstieren bei diesem Messkriterium allerdings nur nach der 6. Woche 

statistisch abgesichert werden. So lagen die Rotlauf-Antikörpertiter der Zulagengruppen 

nach der 6. Woche mit 264,1*10 -3 signifikante 40% (III) bzw. mit 236,1*10 -3 

signifikante 32% (II) über dem Niveau der Kontrolltiere (160,7 *10 -3 ). In der siebten 

Woche pendelte sich die Überlegenheit der Echinacea-supplementierten Tiere 

gegenüber der Nullgruppe auf 40% (III) bzw. 38% (II) ein, um dann in der achten 

Woche auf signifikante 46% (III) bzw. 43% (II) bzw. in der neunten Woche auf 

signifikante 45% (III) bzw. 47% (II) anzusteigen. 

Betrachtet man nun den gesamten Versuchszeitraum, dann lagen die Rotlauf- 

Antikörpertiter der Echinacea-Gruppen mit 103,8 *10 -3 (III) bzw. 101,2 *10 -3 (II) um 

39% bzw. 37 % höher als die entsprechenden Titer der Kontrolltiere (63,2 *10 -3 ). 

Damit zeigte die Echinacea-Applikation bezogen auf die gesamte Versuchsphase 

v.a. aber im letzten Versuchsdrittel einen deutlich positiven Effekt auf diesen 

Immunparameter, wobei die Art der Echinacea-Zulage keinen Einfluss auf die 

quantitative Ausprägung der Rotlauf-Antikörper ausübte. 

Es konnte trotz der hohen tierindividuellen Streuung innerhalb eines 

Blutentnahmetermins ein hochsignifikanter Einfluss des Messzeitpunktes verzeichnet 

werden, der sich bei allen Behandlungen nahezu gleichermaßen manifestierte (vgl. 

Übersicht 79). Dabei unterschieden sich die Analysenergebnisse innerhalb der ersten 

Applikationsphase kaum, sie waren jedoch bei allen Behandlungen signifikant 

gegenüber den weiteren Messzeitpunkten erniedrigt. Die Maximalwerte am 42. 

Versuchstag waren (mit Ausnahme der Echinacea-Gruppen im Vergleich zum 49. 

Versuchstag) signifikant gegenüber den anderen Messterminen erhöht, d.h. auch der 

kontinuierliche Abfall der Rotlauf-Antikörpertiter zum Versuchsende (56./63. Messtag) 

hin war hochsignifikant im Vergleich zum Kurven-Peak wie Übersicht 79 

verdeutlicht. 

Die Daten der einzelnen Mastschweine zu diesem Immunparameter sind in den 

Anhangstabellen 71 und 72 aufgeführt.

Ergebnisse 105 


Die Mastschweine wiesen generell während der gesamten Versuchsphase einen 

sehr guten Gesundheitszustand auf. In der vierten Woche zeigte ein Tier der Gruppe 

III (Echinacea-Cobs) eine akute, schmerzhafte Verkrampfung der Hinterhandmuskulatur, 

die bis zum Abklingen der Symptome über drei Tage hinweg mit jeweils 

20 ml Novalgin ad us. vet. (Intervet, Unterschleißheim, BRD) therapiert wurde. Bei 

gleicher Symptomatik wurde einem Tier der Kontrollgruppe (I) in der sechsten Woche 

ebenfalls 20 ml Novalgin (s.o.) i.m. appliziert. Ansonsten konnte keine 

Beeinträchtigung des Gesundheitszustandes beobachtet werden, eine Auswirkung 

der Echinacea-Zulage auf diesen Parameter war demnach auszuschließen. Nach der 

2. Blutentnahme kam es bei einem Tier der Behandlung III aufgrund der 

Zwangsmaßnahmen zur Herzinsuffizienz und zum Tod durch kardiogenen Schock. 

Die visuelle Beurteilung der Kotkonsistenz ergab keine Differenzen zwischen 

den verschiedenen Gruppen. Prinzipiell war der abgesetzte Kot bei allen 

Mastschweinen unabhängig von der Behandlung von normaler Konsistenz und 

Farbe. Nur temporär setzten einzelne Tiere aller Versuchsgruppen leicht pastösen 

Kot ab.

106 Diskussion 

5 Diskussion 

5.1 Die Arzneipflanze Echinacea purpurea (L.) MOENCH – ein 

pflanzlicher Immunmodulator 

5.1.1 Vorkommen und Botanik 

Die Gattung Echinacea MOENCH gehört entsprechend der taxonomischen 

Gliederung nach MC GREGOR (1968) zur Familie der Compositae (Asteraceae), wo 

sie in die Tribus Heliantheae eingereiht wird. Innerhalb dieser Gattung stellt 

Echinacea purpurea (L.) MOENCH (Synonyme: Rudbeckia purpurea (L.), Rudbeckia 

serotina SWEET, Echinacea intermedia LINDLEY, Brauneria purpurea (L.) BRITTON 

etc.), die allgemein unter dem Namen „purpurfarbene Kegelblume“, „purpurfarbener 

Igelkopf“ oder „purpurfarbener Sonnenhut“ bekannt ist, nicht nur die häufigste, 

sondern auch die am weitesten verbreitete Art dar. 

Beheimatet ist die Pflanze in den mittleren und östlichen Staaten der USA, v.a. im 

nördlichen Teil der Mississippi-Ohio-Tennessee-Region, von wo aus sie ihre weltweite 

Verbreitung erfuhr. Kultiviert wird Echinacea purpurea heute schwerpunktmäßig 

in den USA, im Gebiet der russischen Föderation sowie in Mitteleuropa, wobei 

sie als klimatisch wenig anspruchsvoll gilt und entsprechend der Herkunft trockene 

Standorte bevorzugt (GLEASON, 1952; HEEGER, 1956; BAUER, 1990). 

Bei Echinacea purpurea handelt es sich um ein krautiges, mehrjähriges, fast kahles, 

ausdauerndes Staudengewächs, das eine Höhe von 60 bis 150 cm erreicht. 

Charakteristisch in ihren morphologischen Merkmalen sind neben den großen 

eiförmigen gesägten Grundblättern, die am Grund der Pflanze einen Kranz bilden, 

die lanzettlichen Stengelblätter, der verzweigte Habitus, der igelförmige Blütenkopf 

sowie die tiefpurpurnen abstehenden Zungenblüten. Durch die Verzweigung des 

Rhizoms bildet sich bei Echinacea purpurea ein Wurzelstock mit faserartigen 

Wurzeln aus (GLEASON, 1952; HEEGER, 1956; BAUER, 1990; BAUER, 1994). 

In der Medizin wird sowohl das blühende oberirdische Kraut, als auch die gesamte 

Wurzel der Pflanze zur Herstellung von verschiedenen Arzneipräparationen 

verwendet. Die folgenden Ausführungen beziehen sich aufgrund der hier gewählten 

Versuchsanstellung schwerpunktmäßig auf die oberirdischen Pflanzenteile.

Diskussion 107 

5.1.2 Anwendung 

5.1.2.1 Historischer Rückblick bis heute 

Die Ursprünge der Anwendung von Echinacea als Heilpflanze sind in der 

traditionellen amerikanischen Volksmedizin zu finden. Dabei wurden von den 

Indianern Nordamerikas erwiesenermaßen verschiedene Echinacea-Arten, v.a. aber 

Echinacea angustifolia DC., Echinacea pallida NUTT. und Echinacea purpurea (L.) 

MOENCH entsprechend ihres natürlichen Verbreitungsgebietes eingesetzt 

(MOERMANN, 1986). Die überlieferten Anwendungsgebiete waren sehr zahlreich und 

reichten von der äußerlichen Anwendung bei Wunden, Verbrennungen, 

Insektenstichen und Lymphdrüsenschwellungen über das Kauen der Wurzeln bei 

Zahn- und Halsschmerzen, bis zur innerlichen Anwendung bei Schmerzen, Husten, 

Erkältungen, Magenkrämpfen, Masern und Gonorrhoe. Außerdem wird über die 

Anwendung von Echinacea als Antidot bei Schlangenbissen und anderen 

Vergiftungserscheinungen berichtet (MOERMANN, 1986). Durch die Eklektiker erfuhr 

Echinacea unter den weißen Siedlern Nordamerikas eine weite Verbreitung, erstmals 

wurde Echinacea purpurea 1852 von KING und NEWTON im „Eclectic Dispensatory of 

the United States“ erwähnt. Gegen Ende des 19. Jahrhunderts wurde die Echinacea- 

Droge dann in die offizielle Therapie Nordamerikas eingeführt (LLOYD, 1893). In 

Europa dagegen wurde Echinacea purpurea bereits im Jahre 1787 von SCHOEPF und 

1831 von DIERBACH als Heilpflanze erwähnt. Offiziell fanden die Echinacea-Arten in 

Europa aber erst Anfang des 20. Jahrhunderts Eingang in die medizinische 

Verwendung (BECKURTS, 1897; DRAGENDORFF, 1898). 

Inzwischen ist der Indikationsbereich für Echinacea-Zubereitungen in der klinischen 

Anwendung auch in Europa sehr weit gespannt. Demnach können als Hauptanwendungsgebiete 

für Echinacea-haltige Präparate grippale und katarrhalische 

Infekte, Atemwegsinfektionen, Harnwegsinfektionen, Polyarthritis, schlecht heilende 

Wunden und die adjuvante Krebstherapie angegeben werden (HAHN und 

MEYER,1984; BAUER et al., 1988a; PERCIVAL, 2000). D.h. grob zusammengefasst 

betrifft die bisherige medizinische Indikationsstellung für den Einsatz von Echinaceahaltigen 

Zubereitungen die Steigerung der körpereigenen Abwehr sowohl 

prophylaktisch als auch bei Infektionen unterschiedlicher Genese (MÖSE, 1983;


BAUER et al. 1988a). In der offiziellen Monographie der Kommission E des 

Bundesgesundheitsamtes von 1989 wird das Purpursonnenhutkraut (Echinacea 

purpurea herba) positiv bewertet. Als Anwendungsgebiete werden die unterstützende 

Behandlung rezidivierender Infekte im Bereich der Atemwege und der ableitenden 

Harnwege sowie die Behandlung schlecht heilender Wunden aufgeführt 

(BLUMENTHAL et al., 1998). 

Der Tiermedizin wurde Echinacea u.a. für die Behandlung von Mastitiden, 

Panaritiden und Geschwüren (SCHÖMMER, 1948) und zur innerlichen und äußerlichen 

Behandlung fieberhafter Infektionskrankheiten und septischer Prozesse empfohlen 

(DUDZUS, 1951). Positive Ergebnisse liegen vom Einsatz in der Rindergynäkologie 

vor, hier konnten verschiedene Fruchtbarkeitsparameter (GAARDEN, 1974; FISCHER, 

1976) sowie die Rekonvaleszenz nach Schwergeburten (CARSTENSEN,1975) deutlich 

verbessert werden. GERKEN (1980), BÖRNS (1981) und SCHRÖDER (1981) beschreiben 

in ihren Arbeiten eine gesteigerte Heilungsrate erkrankter junger Kälber 

sowie eine erniedrigte Folgebehandlungshäufigkeit beim Einsatz von Echinacea. 

ANDERSSON et al. (1997) untersuchten homöopathische Arzneimittel bei der Behandlung 

und Prophylaxe subklinischer Mastitiden von Milchkühen. Sie konnten dem 

eingesetzten Echinacea D2-Präparat allerdings weder einen prophylaktischen noch 

therapeutischen Effekt zuordnen. Die Ergebnisse von ANETZHOFER (1993) bescheinigen 

dem applizierten Echinacea-Kombinationspräparat hingegen bei 

leichteren Puerperalinfektionen von Rindern, Schweinen und Pferden nach 

Schwergeburten, bei leichteren Enteritiden, Bronchitiden und Bronchopneumonien 

von Hunden und Katzen sowie bei der Behandlung von Panaritien bei Rindern eine 

erfolgreiche Therapie. ANETZHOFER (1993) belegt mit seiner Arbeit aber v.a., dass die 

kombinierte Applikation von Antibiotikum und Echinacea-Präparat eine deutlich 

kürzere Heildauer im Vergleich zur ausschließlichen Antibiotikagabe bewirkt. 

Angewendet werden Echinaceae (E. purpurea, E. pallida und E. angustifolia) 

entweder in Form von Monopräparaten oder als Kombinationspräparat mit anderen 

Pflanzenextrakten, wobei prinzipiell verschiedene Darreichungsformen zu 

unterscheiden sind. Neben Presssaftpräparaten und Trockenextrakten werden 

alkoholische Extrakte (Herba- oder Wurzelextrakte bzw. Kombinationen) sowie 

homöopathische Urtinkturen verwendet (BAUER, 1990). Präparationen aus Echinacea 

purpurea (L.) MOENCH sind dabei sowohl in Deutschland als auch in den


Vereinigten Staaten die am häufigsten verwendeten pflanzlichen Immunstimulantien 

(BREVOORT, 1998; HAUSTEIN, 1999). 

5.1.2.2 Echinacea purpurea-Grünmehl 

Echinacea-Grünmehl wird von vielen Pferdehaltern in Form von Cobs als Beifutter 

zur Krankheitsprophylaxe und Immunstärkung eingesetzt, ohne dass für diese 

erwarteten Wirkungen ein wissenschaftlich fundierter und begründeter Nachweis 

bzw. eine Bestätigung erfolgte. Literaturhinweise über die Verwendung von 

Echinacea-Grünmehl sind bis jetzt nicht vorhanden, so dass der vorliegenden 

wissenschaftlichen Arbeit aufgrund ihrer breit angelegten experimentellen Basis eine 

Vorreiterrolle bei der Untersuchung der Auswirkungen einer Echinacea-Grünmehl- 

Zulage auf Leistungs- und immunologische Parameter bei landwirtschaflichen 

Nutztieren zukommt. Selbstverständlich soll mit der vorliegenden Arbeit der 

medikamentelle z.T. erfolgreiche Echinacea-Einsatz im Rahmen der Veterinärhomöopathie 

nicht angetastet werden, allerdings birgt die Verwendung des 

Pflanzengrünmehls – unter der Voraussetzung einer adäquaten Wirkung – für den 

produzierenden Landwirt neben ökonomischen Vorteilen auch den Vorteil einer 

unkomplizierten, gleichmäßigen Echinacea-Vorlage über das Futter. Damit wären 

auch längere alimentäre Applikationsphasen, wie sie im Rahmen einer Prophylaxe 

zur Anwendung kommen, leicht in den Produktionsprozess zu integrieren. 

In den vorliegenden Versuchen kam mit Ausnahme des Schweinemastversuches, 

der erst nach Beendigung aller vorherigen Versuche begann, das Grünmehl der 

gleichen Charge, bei gleicher Vorlagenmenge bezogen auf die metabolische 

Körpermasse und die jeweilige mittlere Futteraufnahme der Versuchstiere zum 

Einsatz. Da von KIM et al. (2000), PERRY et al. (2000) sowie WILLS und STUART 

(2000) bedingt durch die Lagerung eine Abnahme der als immunmodulatorisch 

relevant angesehenen Alkamid- und Cichoriensäurefraktion nachgewiesen wurde, 

wurden diese Fraktionen während der Versuchsphase regelmäßig bestimmt (vgl. 

3.6.2 und 5.1.3). Somit konnten eventuell auftretende Wirkunterschiede zwischen 

den zeitlich versetzten Versuchen bzw. im Verlauf des neunmonatigen 

Sauenversuchs durch diesen alleinigen Varianzfaktor erklärt werden.


5.1.3 Inhaltsstoffe 

Da sich die drei offizinellen Echinacea-Arten (Echinacea purpurea, Echinacea 

angustifolia und Echinacea pallida) bezüglich der Konzentration ihrer Inhaltsstoffe 

z.T. erheblich unterscheiden und darüber hinaus auch Abweichungen in der 

Zusammensetzung verschiedener Pflanzenteile (Wurzel/ Kraut) vorliegen (BAUER 

und WAGNER, 1988; OSOWSKI et al., 2000), sollen im Folgenden aufgrund der 

Versuchsanstellung nur die Inhaltsstoffe der oberirdischen Teile von Echinacea 

purpurea (L.) MOENCH aufgeführt werden. 

Dazu zählen neben den ätherischen Ölen, verschiedenen Alkylamiden, Polyacetylen- 

Verbindungen, Kaffeesäure-Derivaten (Cichoriensäure) und Polysacchariden die in 

höheren Pflanzen ubiquitär vorkommenden Substanzen wie Zucker, Aminosäuren, 

Fettsäuren, Ascorbinsäure, Flavonoide oder Phytosterole (BLASCHEK et al, 1998). Bis 

heute hat sich jedoch die Zuordnung des aktiven immunmodulierenden Prinzips der 

Arzneipflanze zu einer dieser Verbindungen bzw. Verbindungsklassen als äußerst 

schwierig erwiesen. Jedoch geben PROKSCH und WAGNER (1987), BAUER et al. 

(1988b, 1989), BAUER (1990, 1996, 1997, 1999), BAUER und WAGNER (1991) sowie 

MELCHART et al. (1994), Hinweise auf die Beteiligung von Alkylamiden, Kaffeesäure- 

Derivaten (v.a. Cichoriensäure), Polysacchariden und Glykoproteinen an der 

unspezifischen Immunstimulation. Da das Wirkprinzip von Echinacea purpurea 

offensichtlich auf diese vermeintlich immunmodulierenden Fraktionen zurückzuführen 

ist, werden in der nachfolgenden Charakterisierung der Inhaltsstoffe nur diese 

Stoffklassen berücksichtigt. 

Die Gruppe der Alkylamide, eine im Pflanzenreich sehr seltene Naturstoffklasse, 

stellt den Hauptbestandteil der lipophilen Inhaltsstoffe von Echinacea purpurea dar. 

Dabei enthält das Kraut Alkamide des gleichen 2,4-Dien-Typs, die auch in den 

Wurzeln von Echinacea purpurea nachgewiesen wurden (WAGNER, 1999). Der 

Alkamidgehalt in Echinacea purpurea herba variiert sehr stark. Zu Vegetationsbeginn 

ist er sehr niedrig, hohe Alkamidkonzentrationen werden prinzipiell nur Mitte August 

kurz vor der Ernte erreicht (BAUER und VOM HAGEN-PLETTENBERG, 1997), da sich die 

Alkamide vornehmlich in den Blütenköpfen der Pflanze akkumulieren (BAUER et al., 

1988; GIGER, 1990). Bei den Alkylamiden handelt es sich um verschiedene 

Fettsäure-Isobutylamide, deren Hauptvertreter in Echinacea purpurea herba das


Isomerenpaar des Dodeca-2E,4E,8Z,10E/Z-tetraensäureisobutylamids ist (BOHLMANN 

und GRENZ, 1966; BAUER et al., 1989; OSOWSKI et al., 2000). In geringen Anteilen 

sind im Kraut zudem die Isobutylamide der Undeca-2E,4Z-dien-8,10-diinsäure und 

der Dodeca-2E,4E-diensäure vertreten (BAUER et al., 1988b). 

Im verwendeten Echinacea-Grünmehl kam es bei der Alkamidfraktion in Charge 1 

bereits nach kurzer Lagerdauer zu einer deutlichen Reduktion der Konzentration auf 

nur noch 20% der Ausgangsmesswerte (10,7 mg/100g gegenüber 67,5 mg/100g). 

Allerdings traten dann im weiteren Verlauf keine Konzentrationsänderungen mehr 

auf. Die Alkamidgehalte in der zweiten Charge, die aufgrund der kurzen 

Versuchsphase analog zu den Cichoriensäuregehalten nur einmalig erfasst wurden, 

lagen mit 44,1 mg/100g im Mittelfeld der ersten Charge. Von PERRY et al. (1997) 

wurden für die oberirdischen Bestandteile von Echinacea purpurea Alkamidgehalte 

von 20 bis 141 mg/100 g Pflanzen-TM angegeben, was sich in etwa mit den 

Ergebnissen von ROGERS et al. (1998) deckt, die 24 bis 111 mg/100 g TM 

bestimmten, während BAUER und REMIGER (1989) Alkamidgehalte von 1 bis 30 mg je 

100g Pflanzen-TM analysierten. Somit entsprachen die Alkamidgehalte in dem für die 

vorliegenden Versuche verwendeten Echinacea-Grünmehl unabhängig von der 

Charge und Lagerungsdauer den Literaturwerten. 

Die Alkamidgehalte des im Schweinemastversuch zum Vergleich mitgetesteten 

Echinacea-Presssaftes, der bezogen auf die Ausgangspflanzenfrischmasse in 

gleicher Dosierung zugelegt wurde, lagen bei 0,53 mg/100 ml. BAUER et al. (1997) 

analysierten in verschiedenen handelsüblichen Echinacea purpurea-Presssaft- 

Präparaten Alkamidkonzentrationen zwischen 0,09 bis 1,84 mg/100 ml, während 

OSOWSKI et al. (2000) in ihrer Arbeit bei Echinacea-Presssaft-Präparaten 

verschiedener Hersteller und Charge Alkamidgehalte zwischen 0,01 bis 0,12 mg/100 

ml feststellten. Die Alkamidkonzentration des im Schweinemastversuch eingesetzten 

Echinacea-Presssaftes entsprach folglich den Alkamidgehalten handelsüblicher 

Echinacea-Presssäfte. Wie die Studien von BAUER et al.(1997) sowie OSOWSKI et al. 

(2000) zeigen weisen verschiedene Presssaft-Präparate hinsichtlich dieser 

Inhaltsstofffraktion eine enorme Schwankungsbreite auf, ferner wird mit diesen 

Studien verdeutlicht, dass bislang keine standardisierten Echinacea-Präparate auf 

dem Markt zur Verfügung stehen. 

Unter den Kaffeesäure-Derivaten, die zu den hydrophilen Inhaltsstoffen zählen, stellt


die Cichoriensäure (2,3-O-Di-caffeoyl-weinsäure) den bedeutendsten Vertreter in den 

oberirdischen Teilen von Echinacea purpurea dar (BAUER und WAGNER, 1991; 

NÜSSLEIN et al., 2000). Der Cichoriensäuregehalt in den Pflanzen unterliegt starken 

jahreszeitlichen Schwankungen und verändert sich darüber hinaus in Abhängigkeit 

vom Entwicklungsstadium der Pflanze. Dabei wird der maximale Gehalt zu Beginn 

der Vegetationsperiode verzeichnet, in der Wachstumsphase nimmt die 

Cichoriensäurekonzentration stetig ab (ALHORN, 1992; BAUER und VOM HAGEN- 

PLETTENBERG, 1997). Neben der Cichoriensäure sind als Kaffeesäure-Verbindungen 

im Kraut in geringen Anteilen Cichoriensäure-Derivate wie z.B. Caftarsäure (2-0- 

Caffeoyl-weinsäure, < 0,3%), 2-0-Caffeoyl-3-0-feruloyl-weinsäure, 2.3-0-Diferuloylweinsäure 

sowie Cichoriensäuremethylester, etc. enthalten (BECKER und HSIEH, 

1985; BAUER et al., 1988b; REMIGER, 1989). 

Hinsichtlich der Cichoriensäuregehalte im eingesetzten Echinacea-Grünmehl kam es 

im zeitlichen Verlauf in der ersten Charge nur zu einer geringfügigen Reduzierung 

(0,42 g/100g (= 0,42%) im Januar 2000 gegenüber 0,29 g/100g im September 2000), 

allerdings bestätigte sich der von BAUER (1997) und OSOWSKI et al. (2000) 

beschriebene Chargenunterschied für die Cichoriensäure (0,17 g/100g in Charge 2) 

auch in dieser Arbeit. Damit lagen die in der Grünmehl-TM ermittelten 

Cichoriensäurekonzentrationen (0,17 bis 0,42 %) unabhängig von der 

Lagerungsdauer der Echinacea-Cobs deutlich unterhalb der Literaturangaben für 

diese Inhaltsstofffraktion in den oberirdischen Bestandteilen von Echinacea 

purpurea. NÜSSLEIN et al. (2000) gaben für Echinacea purpurea herba 

durchschnittliche Gehalte von 1% Cichoriensäure an, während von BECKER und 

HSIEH (1985) sogar Gehalte bis 1,3% ermittelt wurden. Prinzipiell enthalten, wie 

BAUER et al. (1988b) erwähnen, allerdings Blätter und Stengel deutlich weniger 

Cichoriensäure (< 0,5%) als die Blüten, die Cichoriensäurekonzentrationen von bis 

zu 3% der TM aufweisen. Möglicherweise resultierten die niedrigeren Cichoriensäuregehalte 

in den vorliegenden Grünmehlchargen demnach aus einem relativ 

geringen Blütenanteil an der Gesamtpflanze, andererseits könnte auch der Trocknungsvorgang 

eine Reduktion der Cichoriensäurekonzentration ausgelöst haben. Für 

die zweite Hypothese sprechen die Untersuchungen von KIM et al. (2000), in denen 

in Abhängigkeit von der Trocknungsmethode und -temperatur bei gleichem 

Ausgangsmaterial ein Rückgang der Cichoriensäurekonzentration von 1,3 auf 0,3%


der TM auftrat. 

Die Cichoriensäurekonzentration lag im verwendeten Echinacea-Presssaft unterhalb 

der Nachweisgrenze. Dies befindet sich in Übereinstimmung mit den 

Untersuchungen von BAUER (1997) und OSOWSKI et al. (2000), bei denen in 

verschiedenen handelsüblichen Echinacea-Presssaft-Präparaten die Cichoriensäurekonzentration 

ebenfalls unterhalb der Nachweisgrenze lag bzw. präparateabhängig 

Cichoriensäuregehalte von


5.1.4 Pharmakologie – Echinacea als Inducer paraspezifischer 

Immunfunktionen 

Viele klinische und pharmakologische Untersuchungen geben Aufschluss über die 

Wirkungsweise von Echinacea-Präparaten. Dabei könnten die z.T. widersprüchlichen 

Ergebnisse dieser Studien auf den Einsatz von unterschiedlich zusammengesetzten 

Präparaten (verschiedene Echinacea-Spezies, Pflanzenteile, galenische 

Zubereitungen) zurückgeführt werden, so dass eine direkte Vergleichbarkeit der 

verschiedenen Studien oft nicht gewährleistet zu sein scheint. Da es aber bisher 

keine Standardisierung von Echinacea-Präparaten gibt, werden im Folgenden neben 

Untersuchungen mit Echinacea purpurea herba auch die Ergebnisse aus Arbeiten 

mit anderen Echinacea-Zubereitungen berücksichtigt. 

Echinacea-Zubereitungen sind in der Roten und Grünen Liste neben ca. 150 

Präparaten mit dem Indikationsanspruch der Immunstimulation bzw. unter der 

Bezeichnung Umstimmungs- und Reizkörpermittel aufgeführt (WAGNER et al., 1986). 

Dabei wird den Echinacea-Präparaten v.a. eine Stimulation des erregerunspezifischen 

Abwehrsystems, der ersten Abwehrschranke der Säuger gegen 

Infektionserreger, zugewiesen. Damit wirken die Präparate im Rahmen einer 

Paramunisierung (BAUER und WAGNER, 1991). 

Die herausragendste Eigenschaft der Droge dürfte in diesem Zusammenhang die 

Steigerung der Phagozytose von Granulozyten sein, die erstmalig von TYMPNER 

(1981) und FANSELOW (1981) beschrieben wurde und gleichfalls von MÖSE (1983), 

WAGNER et al. (1986), BAUER et al. (1988a, 1989) und WILDFEUER und MAYERHOFER 

(1994) festgestellt wurde. Auch die Untersuchungen von JURCIC et al. (1989) 

bescheinigen dem eingesetzten Echinacea-haltigen Präparat sowohl nach i.v. als 

auch nach peroraler Applikation eine Steigerung der Phagozytoserate. 

Dass es durch Echinacea zu einer Erhöhung der Leukozytenzahl kommt, wurde 

bereits von VON UNRUH (1915) beobachtet. Dies begründete die erfolgreiche 

Verwendung von Echinacin ® im Leukozytenprovokationstest. CHONE (1965) konnte 

bei Mäusen nach einer Echinacin ® -Applikation ebenfalls eine Stimulation des 

hämatopoetischen Systems mit Granulozytosis bei gleichzeitiger Lymphozytopenie 

beobachten. WAGNER et al. (1985) wiesen Echinacea eine unspezifische Aktivierung 

der T-Lymphozyten mit einem Anstieg der Zellreplikation (Proliferation) bei


gleichzeitiger Zunahme der Interferonproduktion und der Antikörper-Bindungsstellen 

zu. Während CARR et al. (1998) in in-vitro Versuchen mit Mäuse-Milzzellen sogar 

eine um das 10-fache erhöhte Milzzellproliferation dokumentierten, konnten JURCIC et 

al. (1989) keine Beeinflussung der Leukozytenkonzentration feststellen. Dies deckt 

sich insofern mit den Arbeiten von WILDFEUER und MAYERHOFER (1994), die in vitro 

durch Echinacea keine Transformation von Lymphozyten induzieren konnten. 

BÜSING (1958) wertete die nach der i.v. Echinacin ® -Injektion bei Kaninchen 

beobachtete signifikante Erhöhung des Properdintiters (=Komplementfaktor) gleichfalls 

als eine Stimulation des unspezifischen Abwehrsystems, da das Properdin- 

System als Prototyp der unspezifischen Infektabwehr anzusehen ist (FUNKE, 1983). 

In weiteren Studien konnte ebenfalls eine Stimulation der unspezifischen Abwehr 

durch Echinacea beobachtet werden, die sich in einer erhöhten Natural Killer- 

Zellaktivität (SEE et al., 1997), Zytotoxizität (STIMPEL et al., 1984) oder Zytokinproduktion 

(ELSASSER-BEILE et al., 1996; BURGER et al., 1997) manifestierte. In der 

Arbeit von REHMAN et al. (1999) wurde dagegen ein möglicher Einfluss von 

Echinacea auf die antigenspezifischen Abwehrmechanismen untersucht. Diese 

Arbeitsgruppe konnte durch Echinacea eine signifikante Erhöhung der antigenspezifischen 

Immunglobuline feststellen und bestätigte damit die Ergebnisse von 

BODINET und FREUDENSTEIN (1999), die bei Mäusen durch ein Echinacea- 

Kombinationspräparat ebenfalls eine Stimulation der humoralen erregerspezifischen 

Abwehr dokumentierten. 

BÜSING (1952) sowie KOCH und HAASE (1952) zeigten darüber hinaus, dass 

Echinacea-Inhaltsstoffe die Hyaluronidase hemmen. Dieses Enzym findet sich im 

Gewebe, wird aber auch von Pathogenen ins Wirtsgewebe abgeschieden. Es bewirkt 

eine Depolymerisation der Hyaluronsäure, wodurch die Zelloberfläche für Erreger 

durchlässiger wird. Diese lokale Gewebewirkung dürfte auch für die beschleunigte 

Regeneration von Gewebezellen (WACKER et al, 1978; MEIßNER, 1980) nach 

Echinacea-Applikation verantwortlich sein. Desweiteren können Echinacea-Extrakten 

bzw. einzelnen Inhaltsstofffraktionen antivirale (MAY und WILLUHN, 1978; CHEMINAT et 

al., 1988), bakteriostatische (SCHULTE et al., 1967) und fungistatische (SCHULTE et al., 

1967; COEUGNIET und KÜHNAST, 1986) Effekte zugeordnet werden.


Anzumerken gilt allerdings abschließend, dass die beschriebenen Wirkungsweisen 

von Echinacea-Zubereitungen nicht zwangsläufig einen medizinischen Nutzen , d.h. 

eine messbare Verbesserung der klinischen Symptomatik implizieren. 

5.2 Immunmodulatoren als Einflussfaktoren paraspezifischer 

Immunfunktionen 

5.2.1 Immunmodulatoren – Definition 

Immunmodulatoren sind Substanzen verschiedener Herkunft und chemischer 

Struktur, die eine regulierende bzw. modulierende Funktion auf das Immunsystem 

ausüben. Dabei impliziert diese Definition sowohl eine Steigerung als auch eine 

Suppression der Immunantwort (BLECHA, 1988). Im Folgenden soll sich aber dieser 

Begriff dennoch ausschließlich auf die Steigerung der Immunreaktion beschränken. 

Insgesamt lassen sich immunmodulatorische Präparate in zwei unterschiedliche 

Gruppen klassifizieren: Zur ersten Gruppe zählen die sogenannten „Biological 

Response Modifiers“ oder intrinsischen Immunmodulatoren (GIALDRONI-GRASSI und 

GRASSI, 1985; TIZARD, 1995), also biotechnologisch erzeugte Reinsubstanzen wie 

z.B. die im Immunsystem agierenden Zytokine. Zur zweiten, in den weiteren 

Ausführungen aufgrund des Versuchsdesigns vornehmlich charakterisierten Gruppe, 

gehören die sogenannten Paramunitätsinducer oder extrinsischen Immunmodulatoren 

(ROLLE und MAYR, 1984; TIZARD, 1995) bei denen es sich v.a. um 

modifizierte Mikroorganismen oder Pflanzenextrakte, also körperfremde Substanzen 

handelt (KOLB, 1981; WAGNER, 1984). Während die Paramunitätsinducer eine 

Stimulation der humoralen und zellulären unspezifischen Abwehrmechanismen 

bewirken (TIZARD, 1993), also eine physiologische Antwort mit multipler Wirkung an 

ihren Zielzellen induzieren, bleibt eine signifikante Wirkung der intrinsischen 

Modulatoren auf das Immunsystem aus bzw. sie wirken z.T. sogar toxisch (TIZARD, 

1995). D.h. für die klinische Anwendung sowohl im human- als auch 

veterinärmedizinischen Bereich sind momentan nur die Paramunitätsinducer von 

größerem Interesse. Laut Definition sind Paramunitätsinducer Arzneimittel, die dazu


bestimmt sind, bei Mensch und Tier zur Erzeugung von körpereigenen 

Abwehrreaktionen im Sinne einer Paramunisierung (vgl. 5.2.2) angewendet zu 

werden. Sie reagieren mehr im Sinne von „Reizkörpern“ und besitzen bezüglich der 

Einzelkomponenten des Immunsystems eine pleotypische, meist nicht genau 

definierbare Wirkung, (MAYR und BÜTTNER, 1992) die den Gesamtorganismus in eine 

allgemein erhöhte Abwehrbereitschaft gegen Antigene und Noxen unterschiedlicher 

Herkunft versetzt (MAYR-BIBRACK, 1991). Paramunitätsinducer stimulieren das 

antigenunspezifische also paraspezifische Immunsystem kurzfristig (innerhalb von 4 

bis 6 Stunden nach Applikation), ihre Wirkung hält aber nur einige Tage bis Wochen 

an (MAYR-BIBRACK, 1991). 

5.2.2 Paraspezifisches Immunsystem, Paramunisierung, Paramunität 

Das Immunsystem besteht aus einem antigenspezifisch und einem paraspezifisch 

(antigenunspezifisch) reagierenden Teil. Dabei stellen die antigenspezifischen 

Abwehrmechanismen, die erst nach Tagen oder Wochen in Tätigkeit treten, lediglich 

einen kleinen Teil des Abwehrpotentials eines hochentwickelten Organismus 

(specific immune system) dar (MAYR und BÜTTNER, 1992). Der wesentlich größere, 

phylogenetisch ältere Teil der komplexen Immunabwehr wird hingegen durch das 

paraspezifische oder primitive Immunsystem abgedeckt, das sich sofort gegen 

unterschiedliche Noxen wehren kann (MAYR, 1993b). Beide Teile des Immunsystems 

bestehen aus zellulären und humoralen Mechanismen, die eng miteinander verzahnt 

sind (MAYR, 1991). Gesteuert werden die gesamten Abwehrreaktionen durch 

Mediatoren (informative freigesetzte Zellprodukte, z.B. Interleukine), die als 

biologische Effektormoleküle das gesamte Immunsystem und seinen Verbund mit 

dem Hormon-, Stoffwechsel- und Nervensystem regulieren (MAYR und BÜTTNER, 

1992). Das primitive oder paraspezifische Immunsystem wird durch Zellkomponenten 

wie Makrophagen, Granulozyten, NK-Zellen und ?d-T-Zellen sowie lösliche humorale 

Faktoren repräsentiert (BÜTTNER, 1993). Die MHC-unabhängigen „natural killer cells“ 

bilden dabei zusammen mit der Phagozytose die zelluläre Grundlage der 

antigenunspezifischen Abwehr, während die humorale Basis der unspezifischen 

Abwehr von löslichen Faktoren wie Lysozym, Zytokinen, Properdin u.a.m. gebildet 

wird (MAYR und BÜTTNER, 1992). Grundlage der spezifischen Abwehrmechanismen,


die nach Antigenkontakt auch über einen sogenannten „memory effect“ verfügen, ist 

dagegen die Bildung von Immunglobulinen (MAYR und BÜTTNER, 1992). 

Jede Aktivität und Funktion des Immunsystems kann endogen wie exogen, natürlich 

wie auch medikamentös, einzeln und komplex, reguliert, stimuliert wie auch 

supprimiert werden, wobei die Funktion des paraspezifischen Immunsystems am 

stärksten modulierbar ist (MAYR und BÜTTNER, 1992). Die Stimulierung des 

spezifischen Immunsystems durch Impfstoffe oder Immunseren bezeichnet man als 

Immunisierung, die Aktivierung des unspezifischen Immunsystems durch 

Paramunitätsinducer entsprechend als Paramunisierung (MAYR, 1993a). Unter einer 

Paramunisierung versteht man die medikamentöse Aktivierung einzelner oder 

mehrerer Teile des paraspezifischen Immunsystems mit dem Ziel, Dysfunktionen zu 

beheben, den nichterregerspezifischen Schutz eines Individuums schnell zu 

erhöhen, eine durch Stressfolgen oder anderweitig entstandene Immunsuppression 

oder Immunschwäche zu beseitigen und regulatorisch zwischen Immun-, Hormonund 

Nervensystem zu wirken (MAYR und BÜTTNER, 1992). D.h. eine Paramunisierung 

versetzt den Organismus in eine allgemein erhöhte Abwehrbereitschaft gegen 

Antigene und Noxen unterschiedlicher Herkunft (MAYR-BIBRACK, 1991). 

Entsprechend wird Paramunität als Zustand eines gut regulierten und optimal 

funktionierenden, unspezifischen Abwehrsystems verbunden mit einem schnell 

entstandenen, zeitlich limitierten, erhöhten Schutz gegenüber einer Mehrzahl 

unterschiedlicher Erreger, Antigene und anderer Noxen definiert (MAYR und 

BÜTTNER, 1992). Vereinfacht ausgedrückt ist die Paramunität die Brücke zur 

Immunität, und zwar dadurch, dass sie als Sofortreaktion hilft, die Zeit bis zur 

Ausbildung antigenspezifischer Immunzellen und Antikörper zu überbrücken (MAYR 

und BÜTTNER, 1992). Dabei kann gerade die Schnelligkeit bzw. Rechtzeitigkeit der 

Abwehr von Noxen für die Entscheidung zwischen Gesundheit und Krankheit von 

großer Bedeutung sein. Demzufolge hat v.a. die Paramunität eine entscheidende 

Rolle im komplexen Abwehrpotential des Organismus, das in seiner Gesamtheit für 

die Immunkompetenz des jeweiligen Individuums verantwortlich ist (MAYR und 

BÜTTNER, 1992).


5.2.3 Bedeutung der Paramunisierung für die landwirtschaftliche Praxis 

Inzwischen gewinnt die Paramunisierung bzw. Stimulation der unspezifischen 

Abwehrmechanismen in der landwirtschaftlichen Praxis eine immer größere 

Bedeutung. Dies ist einerseits auf die zunehmende Intensivierung der Tierproduktion 

und die damit einhergehende Verschiebung der Krankheitsursachen von 

monokausalen, prophylaktisch durch Vakzine bzw. therapeutisch durch Antibiotika 

leicht zu behandelnden Infekten hin zu multikausalen schwer therapierbaren 

Infektionserkrankungen zurückzuführen (HANSCHKE, 1997). Andererseits lässt sich 

diese Tendenz durch die drastische Reglementierung des Einsatzes von Antibiotika, 

die aus der Resistenz- und Rückstandsproblematik bei der medikamentösen 

Metaphylaxe resultiert, erklären (MAYR-BIBRACK, 1991; ENGSTAD und RAA, 1999). 

Eine Umstellung der Infektionsprophylaxe auf Immunisierungs- bzw. Paramunisierungsprogramme 

mit dem Ziel durch einen verbesserten Immunstatus des 

Einzeltieres einen wirkungsvollen, breitgefächerten Schutz vor endo- und exogenen 

Noxen, die alleine meist gar nicht krankmachend wären, zu gewährleisten, erscheint 

demnach sinnvoll (MAYR-BIBRACK, 1991). Darüber hinaus bietet sich die Verabreichung 

von Paramunitätsinducern auch in Situationen an, wo die Tiere bedingt 

durch Transport- oder Managementstressoren immunsupprimiert sind, also z.B. beim 

Absetzen, Umstallen, peripartal etc. (KEHRLI und ROTH, 1990). 

Generell kann man sagen, dass die Paramunisierung, also die Nutzung einer 

medikamentösen Steigerung der nichtantigenspezifischen Abwehr eine neue 

Prophylaxe- und Therapiemöglichkeit in der Veterinärmedizin zur Bekämpfung von: 

1. plurikausal bedingten multifaktoriell ausgelösten infektiösen Faktorenkrankheiten 

und Mischinfektionen, chronischen Manifestationen von Infektionskrankheiten, 

hartnäckigen rezidivierenden Infektionen und chemo-therapieresistenten bakteriellen 

und viralen Infektionskrankheiten, 2. Abwehrschwächen bzw. Dysregulationen im 

Abwehrsystem eines Organismus (z.B. Immunschwächen unterschiedlicher Genese, 

Altersdystrophien, immunpathogene Folgekrankheiten), 3. neonatalen Krankheiten, 

die durch einen ungenügenden maternalen Schutz gegenüber der keimhaltigen 

Umwelt bedingt sind, und 4. Tumorkrankheiten darstellt (MAYR, 1982; MAYR und 

BÜTTNER, 1992). Ferner eignet sich die Paramunisierung auch als anaboler Ersatz


von chemischen Futtermittelzusätzen und Fütterungsarzneimitteln v.a. in der Mast 

(MAYR, 1988) 

5.2.4 Wirkungsweise der Paramunitätsinducer 

Die Wirkung der Paramunitätsinducer auf das Immunsystem ist entsprechend ihrer 

unterschiedlichen Herkunft und chemischen Eigenschaften sehr vielschichtig. 

Prinzipiell sind aber durch diese immunmodulatorischen Präparate stimulierende 

Effekte auf: 1. die Phagozytose, 2. die Interferonsynthese bzw. Freisetzung, 3. die T- 

Lymphozytenproliferation bzw. -aktivität, 4. die Wirksamkeit löslicher Substanzen wie 

Lymphokine und Komplementsystem sowie 5. die spontane zellvermittelte 

Zytotoxizität und die Lysozymproduktion beobachtet worden (MAYR, 1982; BLECHA, 

1988; KEHRLI und ROTH, 1990; RUSH, 2001). Ein wirksamer Inducer sollte demnach 

wenigstens eine dieser Eigenschaften erfüllen (MAYR und BÜTTNER, 1984). Aufgrund 

des unter 5.1.4 beschriebenen Wirkprinzips dürfte diese Forderung für Echinacea- 

Zubereitungen allerdings hinlänglich abgedeckt sein 

5.2.5 Anforderungen an Paramunitätsinducer 

Für die Praxis geeignete Paramunitätsinducer sollten nach MAYR und BÜTTNER 

(1992) folgende Eigenschaften besitzen: 1. Wirksamkeit in wenigen Stunden, 2. 

Stimulierung definierbarer zellulärer paraspezifischer Aktivitäten, 3. keine negativen 

Auswirkungen auf die Homöostase eines gesund (normal) funktionierenden Immunsystems, 

sondern lediglich Behebung von Dysfunktionen im Sinne einer Regulation 

der Homöostase, 4. keine Ausbildung einer immunologischen Gedächtnisreaktion, 5. 

keine Sensibilisierung (speziell humoraler Allergien), 6. prophylaktisch wie 

therapeutisch, systemisch wie lokal wirksam, 7. kombinierte Anwendung mit anderen 

Medikamenten und Impfstoffen möglich, 8. unabhängig von einer erregerspezifischen 

Diagnosestellung, 9. ungefährlich bezüglich Provokation von klinisch inapparenten, 

speziell persistierenden Infektionen, 10. schnelle und vollständige Metabolisierung 

und 11. regulatorische Interaktion mit dem Hormon- und Nervensystem.


Darüber hinaus müssen die eingesetzten Paramunitätsinducer bei der Anwendung 

am Tier Kriterien erfüllen, die im Humanbereich weniger bedeutend sind, so dass die 

Auswahl der Präparate zusätzlich durch folgende Anforderungen eingeschränkt wird: 

1. Es dürfen keine Rückstände in den Produkten (Eier, Milch, Fleisch) auftreten, v.a. 

wenn die Substanz karzinogenen Charakter hat, 2. die Applikation muss einfach zu 

handhaben sein; um große Herden zu behandeln sind Substanzen mit oraler 

Wirkung sinnvoll, eine parenterale Applikation eignet sich nur bei langer Wirkdauer, 

und 3. die eingesetzten Präparate müssen kostengünstig sein damit die Produktionskosten 

relativ unbeeinflusst bleiben (KEHRLI und ROTH, 1990). Momentan kommen in 

der veterinärmedizinischen Praxis als extrinsische Immunmodulatoren v.a. biologische 

Inducer zum Einsatz. Bei diesen Inducern handelt es sich durchwegs um 

Präparate auf der Basis von Viren, Bakterien, Pilzen, Pflanzenextrakten oder um 

Mischungen dieser Präparate (MAYR und BÜTTNER; 1992, VAN KEMPEN, 1995; RUSH, 

2001). 

Da Echinacea-Zubereitungen diesen an Paramunitätsinducer gestellten Anforderungen 

aufgrund der pharmakologischen Wirkungen ihrer Inhaltsstoffe gerecht 

werden und zudem eine unkomplizierte Applikation gewährleisten, gewinnen diese 

Produkte im Rahmen der Paramunisierung landwirtschaftlicher Tierbestände eine 

immer größere Bedeutung. Echinacea-Grünmehl würde darüber hinaus auch der in 

der Landwirtschaft entscheidenden Forderung nach kostengünstigen Präparaten 

nachkommen. 

5.3 Auswirkungen einer Echinacea purpurea-Zulage auf den 

Gesundheitszustand der Versuchstiere 

Zeichen der Gesundheit eines Tieres ist nach SOMMER et al. (1991) ein guter 

Allgemeinzustand mit physiologischen, artspezifischen Parametern für alle 

Organfunktionen. Äußerlich zeigt sich ein guter Gesundheitszustand, der auch als 

Gleichgewichtszustand zwischen Tier und Umwelt unter der Voraussetzung 

physiologischer Parameter beschrieben werden kann, in reger Anteilnahme an der 

Umgebung, ungestörtem sozialen Verhalten zu Artgenossen, bestimmter Leistung


und bei Zuchttieren z.B. in der gewünschten Fortpflanzungsfähigkeit (SOMMER et al., 

1991). Jede Störung dieses Gleichgewichts ist als Krankheit zu werten, wobei sich 

pathologische Zustände lange bevor sie überhaupt klinische Symptome 

hervorbringen durch Veränderungen im Stoffwechsel bemerkbar machen (SOMMER et 

al., 1991). Erste sichtbare Anzeichen einer Störung dieses Gleichgewichtszustandes 

manifestieren sich in einer gestörten bzw. sistierenden Nahrungsaufnahme 

(Anorexie), die bereits nach kurzer Persistenz stagnierende bzw. verminderte 

Wachstumsraten mit sich bringt (IBEN, 2000), so dass die Leistung bzw. 

Leistungsfähigkeit der Tiere herabgesetzt ist. Folglich ist die Gesunderhaltung der 

Tierbestände in der Landwirtschaft schon allein aus ökonomischen Beweggründen 

von großer Relevanz. 

Da durch Echinacea neben stimulatorischen Effekten auf verschiedene Immunparameter 

(z.B. BAUER et al., 1989; REHMAN et al., 1999), die ihrerseits wieder als 

Einflussgrößen auf den Gesundheitsstatus des Organismus fungieren auch direkte 

Auswirkungen auf die Inzidenz, Schwere und Dauer von Krankheiten beobachtet 

wurden (DUDZUS, 1951; COEUGNIET und KÜHNAST, 1986; BRAUNIG, 1992; SCHÖNE- 

BERGER, 1992; ANETZHOFER, 1993; SCAGLIONE und LUND, 1995; DORN et al., 1997; 

BERG et al., 1998; BARRETT et al., 1999), kam der Dokumentation des Gesundheitsstatus 

der Versuchstiere in der vorliegenden Arbeit eine zentrale Bedeutung zu. 

So wurde bei allen Tieren täglich der Gesundheitszustand kontrolliert. Falls 

klinische Auffälligkeiten auftraten so wurden diese entsprechend notiert. Bei den 

Sauen wurde darüber hinaus während der gesamten Versuchsphase täglich die 

Körpertemperatur gemessen, so dass pathologische Prozesse im Organismus, die in 

der Regel bedingt durch endogene Pyrogene im Prozess der Akute-Phase-Reaktion 

(APR) mit einer Erhöhung der Körpertemperatur verbunden sind, sensibler detektiert 

werden konnten. Ein weiterer Grund für die Erfassung dieses Parameters lag in der 

von einigen Autoren beschriebenen pyrogenen Wirkung des Echinacin ® , die 

durchaus mit der Wirkung des zur künstlichen Fiebererzeugung verwendeten 

Endotoxin-Präparates Pyrifer ® zu vergleichen ist (SOHNIUS, 1951; HEESEN und 

ORZECHOWSKI, 1973). Die Autoren vermuten, dass Echinacin ® möglicherweise seinen 

Heileffekt z.T über diese temporäre, nach Applikationsbeginn auftretende 

Fieberreaktion auslöst, da über die Freisetzung der endogenen Pyrogene die 

Immunantwort verstärkt wird. Durch die Erfassung der Körpertemperatur bei den


Sauen konnten folglich mögliche Unterschiede zwischen den Behandlungen zum 

einen durch pathologische Prozesse, zum anderen eventuell anfänglich durch die 

Echinacea-Applikation induziert, registriert werden. 

Betrachtet man die gesamten im Rahmen der vorliegenden Arbeit durchgeführten 

Versuche, so lässt sich bei den Versuchstieren insgesamt ein sehr guter 

Gesundheitszustand feststellen. Lediglich im Sauenversuch, der unter Praxisbedingungen 

durchgeführt wurde, traten vermehrt leichtere bis mittelschwere Infekte 

auf, die sich insbesondere postpartal in Form von Endometritiden manifestierten. 

Ansonsten konnten bei einigen Sauen leichte Harnwegs- und Atemwegsinfekte 

sowie bei einzelnen Ferkeln Gelenksentzündungen und Durchfälle beobachtet 

werden. Hinsichtlich des Infektionsgeschehens konnte aber im Sauenversuch kein 

Einfluss der Echinacea-Applikation festgestellt werden. Weder die Inzidenz, noch die 

Schwere bzw. Dauer der aufgetretenen klinischen Symptome zeigte Unterschiede 

zwischen den verschiedenen Gruppen, so dass ein Effekt der Echinacea-Gabe auf 

das Krankheitsgeschehen bzw. den Gesundheitsstatus der Versuchstiere 

ausgeschlossen werden konnte. Die mittlere Körpertemperatur der Sauen lag sowohl 

während der Hochträchtigkeit als auch während der Laktation im physiologischen 

Bereich (SCHEUNERT und TRAUTMANN, 1987; PLONAIT, 2001). Eine Erhöhung der 

Körpertemperatur bzw. fieberhafte Zustände, die bei einzelnen Tieren temporär, 

insbesondere post partum auftraten, war zumeist mit klinischen Symptomen einer 

Infektion verbunden. Auffällig waren insbesondere die hohen tierindividuellen 

Schwankungen zwischen den einzelnen Messtagen, die aber der normalen 

Amplitude der täglichen Schwankungen von durchschnittlich 0,5-1,5°C (SCHEUNERT 

und TRAUTMANN, 1987) entsprechen. Unterschiede in der Körpertemperatur zeigten 

sich zwischen den Behandlungen zu keiner Zeit, was sich mit den Ergebnissen von 

JURCIC et al. (1989) deckt. Demnach kann sowohl ein Einfluss der Echinacea-Zulage 

auf einen anfänglich exogen induzierten Anstieg der Körpertemperatur im 

Zusammenhang mit der immunologischen Wirkung des Präparates, als auch ein 

Effekt auf das Auftreten bzw. die Prophylaxe pathologischer Prozesse ausgeschlossen 

werden. In den anderen Versuchen konnten bei den Tieren generell 

keine klinischen Auffälligkeiten beobachtet werden, so dass ein möglicher positiver 

Einfluss der Echinacea-Applikation gar nicht erst zum Tragen kam. Der hohe 

Gesundheitszustand der Versuchstiere lässt sich vermutlich durch die guten


hygienischen Bedingungen während des Versuches erklären. 

Die Diskussion der Ergebnisse und die Einordnung in die Literatur gestaltet sich auch 

bei diesem Parameter etwas schwierig, da vergleichbare Arbeiten fehlen. Generell 

werden aber für die oberirdischen Teile von Echinacea purpurea entsprechend der 

offiziellen Monographie der Kommission E des Bundesgesundheitsamtes von 1989 

zur unterstützenden Therapie insbesondere rezidivierender Infekte im Bereich des 

Respirations- und Urogenitaltraktes positive Therapieempfehlungen gegeben 

(BLUMENTHAL et al., 1998). Diese Indikation für Echinacea purpurea herba steht damit 

allerdings in Widerspruch zum Sauenversuch, in dem das Auftreten von Infektionen 

gleicher Indikation durch die Echinacea-Applikation unbeeinflusst blieb. Eine 

mögliche Erklärung könnte in einer nicht optimalen Dosierung des Echinacea- 

Grünmehls liegen. Eventuell zeigt Echinacea, oral als Grünmehl vorgelegt auch nicht 

den erwarteten kurativen und protektiven Effekt oder die beim Menschen 

nachgewiesene Wirkung ist nicht auf das Hausschwein übertragbar. Aus dem 

humanmedizinischen Bereich wiesen zahlreiche Studien Echinacea einen positiven 

Effekt hinsichtlich der Inzidenz, der Dauer sowie der Schwere der Symptomatik 

insbesondere von Erkrankungen des Respirationsapparates zu (COEUGNIET und 

KÜHNAST, 1986; BRAUNIG, 1992; SCHÖNEBERGER, 1992). MÖSE (1983) und BAUER et 

al. (1988a) fassten die medizinischen Indikationen Echinacea-haltiger Zubereitungen 

als Steigerung der körpereigenen Abwehr sowohl prophylaktisch als auch bei 

Infektionen unterschiedlicher Genese zusammen. Auch aus der Tiermedizin liegen 

zahlreiche positive Ergebnisse vom Echinacea-Einsatz vor. So empfiehlt DUDZUS 

(1951) die Anwendung bei fieberhaften Infektionskrankheiten und septischen 

Prozessen, während ANETZHOFER et al. (1993) Echinacea bei Rindern, Schweinen 

und Pferden Erfolge bei der Behandlung von leichteren Puerperalinfektionen, 

Enteritiden und Bronchitiden zuschreibt. Die von ANETZHOFER et al. (1993) 

beschriebenen positiven Effekte einer Echinacea-Applikation konnten im 

vorliegenden Sauenversuch nicht bestätigt werden, obwohl hier Infektionen gleicher 

Genese vorlagen. Dies dürfte vermutlich auf die bereits oben genannten Gründe 

zurückzuführen sein. Möglicherweise resultierte die erfolgreiche Therapie in den 

Untersuchungen von ANETZHOFER et al. (1993) auch aus dem Einsatz eines 

Echinacea-Kombinationspräparates. 

Basierend auf den Ergebnissen des Sauenversuches kann dem in der vorliegenden


Arbeit eingesetzten Echinacea-Grünmehl zumindest in der gewählten Dosierung kein 

positiver Effekt auf den Gesundheitsstatus der Versuchstiere nachgewiesen werden. 

Die anderen Versuche, die bei gleicher Echinacea-Dosierung bezogen auf die 

mittlere Futteraufnahme und metabolische Lebendmasse durchgeführt wurden, 

ließen diesbezüglich keinen Schluss zu. Eventuelle positive Effekte sowohl des 

Echinacea-Presssaftes, als auch des Echinacea-Grünmehls, das im Schweinemastversuch 

in einer niedrigeren Dosierung zugelegt wurde, blieben aufgrund der guten 

hygienischen Bedingungen in diesem Versuch verdeckt. Um genauere Aussagen 

bezüglich der Echinacea-Wirkung auf den Gesundheitszustand landwirtschaftlicher 

Nutztiere treffen zu können bedarf es daher zukünftig einer Erweiterung der 

experimentellen Basis, sowie möglichst einer Standardisierung der eingesetzten 

Echinacea-Präparate hinsichtlich ihrer für die Wirksamkeitsrelevanz diskutierten 

Inhaltsstoffe. 

5.4 Auswirkungen einer Echinacea purpurea-Zulage auf die 

Leistungsparameter der Versuchstiere 


Die Höhe der Futteraufnahme ist maßgeblich für die Lebendmasseentwicklung und 

damit Produktionsdauer von wachsenden lebensmittelliefernden Tieren verantwortlich. 

Bei laktierenden Tieren beeinflusst sie darüber hinaus die Milchleistung und 

damit indirekt die Zunahmen der säugenden Nachkommen. Eine unzureichende 

Futteraufnahme wird folglich als erstlimitierender Faktor für die Leistung der Nutztiere 

angesehen. Ziel eines jeden Fütterungsregimes sollte es daher sein, bei maximaler 

Futteraufnahme eine optimale Leistung der Tiere ohne negative Effekte auf z.B. die 

Gesundheit, die Fleischqualität etc. zu ermöglichen. 

Die Futteraufnahme hängt prinzipiell von zahlreichen Einflussgrößen ab. Dazu zählen 

neben physiologischen Faktoren wie dem Gesundheitszustand, der Genetik, der 

Lebendmasse etc. (FOWLER, 1985), Umgebungsfaktoren wie z.B. das Stallklima und


die Aufstallungsform sowie Rationsfaktoren wie z.B. der Energie- und 

Rohproteingehalt oder der Geruch bzw. Geschmack des Futters etc. (NRC, 1987, 

VERSTEGEN, 1998). Bei den laktierenden Sauen wird die Futteraufnahme zusätzlich 

durch die Ferkelzahl sowie das Fütterungsniveau während der Gravidität beeinflusst 

(XUE et al., 1997; KIRCHGESSNER, 1997; VERSTEGEN, 1998). In den vorliegenden 

Versuchen wurden diese Varianzfaktoren für alle Tiere konstant gehalten, damit 

Unterschiede in der Höhe der Futteraufnahme eindeutig auf die Versuchsfaktoren 

zurückzuführen sind. 

Da sich in einer reduzierten Nahrungsaufnahme auch Störungen des immunologischen 

Gleichgewichtes mit Leistungsdepression manifestieren, erscheint es 

sinnvoll, den Immunstatus der Tiere zu optimieren, um ein physiologisch maximales 

Leistungsniveau zu garantieren (IBEN, 2000). Hierfür stehen der Praxis als Alternative 

für den mittlerweile umstrittenen und stark reglementierten pround metaphylaktischen 

Antibiotikaeinsatz u.a. verschiedene biologische Paramunitätsinducer 

zur Verfügung (WIELER und BALJER, 1999), zu denen auch die pflanzlichen 

Echinacea-Präparate gehören. Neben dieser immunstimulatorischen Wirkung der 

Echinacea-Zubereitungen wird pflanzlichen Präparaten zudem aufgrund ihrer 

natürlichen Aromastoffe eine Appetit anregende Wirkung zugeschrieben. Außerdem 

bewirken pflanzliche Aromastoffe sowie ätherisch-Ölkomponenten, die auch in 

Echinacea purpurea nachgewiesen wurden, eine Steigerung der Sekretion von 

Verdauungsenzymen mit gleichzeitiger Erhöhung der Verdaulichkeit des Futters 

(DAMME, 2001; GEIER und OSTER, 2001). Eine optimierte Verdauung des Futters wirkt 

sich, wie JONES (2001) beschreibt, positiv auf die Darmflora, Nährstoffresorption, 

Darmpassage und Futteraufnahme und somit die Gesundheit und Leistung des 

Tieres aus. 

In den vorliegenden Broiler- und Ferkelversuchen wurden die Tiere entsprechend der 

üblichen Praxis ad libitum gefüttert, so dass Einflüsse der Varianzfaktoren auf die 

Futteraufnahme unmittelbar zu erkennen sind. Die Zuchtsauen wurden dagegen 

während der Gravidität anhand ihres Bedarfes für Erhaltung, Reproduktion und 

maternalen Zuwachs mit 2,6 kg pro Tier und Tag restriktiv gefüttert, um eine 

Überversorgung auszuschließen. In der Laktation wurde die tägliche Futtervorlage 

unter Berücksichtigung der Ergebnisse einer Übersichtsarbeit des NRC (1991) auf 

maximal 6 kg täglich beschränkt, um eine Streuung der Nährstoffaufnahme zwischen


den einzelnen Tieren zu vermeiden. Damit waren eventuelle Auswirkungen einer 

Echinacea-Zulage auf diesen Leistungsparameter nur in begrenztem Maße 

nachweisbar. Bei den Mastschweinen erfolgte die Vorlage des Futters rationiert, um 

die Mastleistung zwischen den Gruppen vergleichen zu können. Dabei wurde die 

Zuteilungsmenge durch Regressionsgleichungen aus Futterzuteilungstabellen nach 

KIRCHGESSNER (1997) unter Berücksichtigung der jeweiligen wöchentlichen 

Lebendmasse abgeleitet. Da diese Regressionsgleichung einen Korrekturfaktor 

einschließt (vgl. 3.5.3), kann man davon ausgehen, dass der Großteil der 

Mastschweine am Maximum der Futteraufnahme versorgt wurde. Dies bestätigt sich 

insofern, als dass nicht alle Tiere das vorgelegte Futter komplett verzehrten. Folglich 

wurde ein Ziel des Versuches, eventuelle Unterschiede in der Futteraufnahme zu 

belegen, durch dieses Fütterungsregime nicht behindert. 

Betrachtet man alle durchgeführten Versuche, so lässt sich resümieren, dass durch 

die alimentären Echinacea-Zulagen weder bei den Schweinen noch bei den 

Mastküken ein eindeutig positiver Einfluss auf die Futteraufnahme zu verzeichnen 

war. Im ersten Broilerversuch blieb die Futteraufnahme gänzlich unbeeinflusst von 

der Echinacea-Zulage, während im zweiten Broilerversuch sogar eine signifikante 

Verzehrsdepression (6%) durch die Kräuterzulage, die im mittleren Dosierungsbereich 

des ersten Broilerversuches angesiedelt war, nachgewiesen wurde. Das 

Fütterungsantibiotikum bewirkte bei den Broilern eine Steigerung der 

Futteraufnahme, wobei der Unterschied zur Kontrollgruppe (4%) aber nicht signifikant 

war. Im ersten Ferkelversuch konnten hingegen keine Auswirkungen des Echinacea- 

Präparates auf die Futteraufnahme festgestellt werden. Analog zu den Broilern 

verzehrte die mit der nutritiven Flavomycinzulage versorgte Gruppe im 

Versuchsmittel ebenfalls 4% mehr Futter als die Tiere der anderen Behandlungen. 

Bei den Zuchtsauen, die bereits ab dem 85. Trächtigkeitstag ein Echinacea-Futter 

erhielten, waren mögliche Auswirkungen der Kräuterzulage aufgrund der rationierten 

Fütterung während der Gravidität frühestens in der Säugephase zu erwarten. Im 

ersten Laktationsabschnitt verzehrten aber die Kontrolltiere mit im Mittel 4608 g pro 

Tag durchschnittlich rund 7 % mehr Futter als die Echinacea-supplementierten Tiere, 

wobei kein Einfluss der Höhe der Echinacea-Dosierung auftrat. Aufgrund der starken 

tierindividuellen Schwankungen und der damit einhergehenden hohen 

Standardabweichung waren diese Unterschiede allerdings nicht signifikant. Im


zweiten Laktationsabschnitt wies dieser Parameter dann keine Unterschiede mehr 

zwischen den Gruppen auf. Betrachtet man die Beifutteraufnahme der Ferkel, so 

lässt sich kein gerichteter Einfluss der Echinacea-Zulage erkennen. Während die 

Nachkommen, deren Mütter die höchste Echinacea-Dosierung erhielten, mit 

insgesamt 1000 g/ Wurf durchschnittlich 7 % mehr Futter verbrauchten als die 

Nachkommen der Kontrolltiere, verzehrten diese 5 % mehr als die Ferkel, deren 

Mütter die niedrigere Kräuterzulage bekamen. Aufgrund der starken Schwankungen 

zwischen den einzelnen Würfen innerhalb einer Behandlung, die vermutlich auch aus 

der Futterverschwendung durch die Jungtiere resultierten, ließen sich diese 

Unterschiede ebenfalls statistisch nicht absichern. Nach dem Absetzen von der 

Muttersau durchliefen die Ferkel eine 4-wöchige Beobachtungsphase (zweiter 

Ferkelversuch). In diesem zweiten Ferkelversuch erfuhren alle Tiere die gleiche 

Behandlung, da die möglichen Auswirkungen der Echinacea-Versorgung der 

Muttertiere auf ihre Nachkommen untersucht werden sollten. Die Ferkel, deren 

Mütter die höhere Echinacea-Zulage erhielten, nahmen in der ersten Versuchshälfte 

13 % mehr Futter auf als die Vergleichstiere, wobei dieser Unterschied aufgrund der 

Streuung nicht signifikant war. Zwischen den beiden anderen Gruppen ergaben sich 

keine Unterschiede, ebenso waren in der zweiten Versuchshälfte keine Einflüsse der 

Versuchsfaktoren zu verzeichnen. Im Schweinemastversuch zeigte sich bis 

einschließlich der 5.Versuchswoche weder ein Einfluss der alimentären Echinacea- 

Zulage noch des eingesetzten Echinacea-Präparates. Ab der 6. Versuchswoche 

konnte dann bei den Echinacea-Tieren eine tendenziell höhere Futteraufnahme (1,5 

bis 3 %) dokumentiert werden als bei den Kontrolltieren, wobei die Masttiere, die das 

Grünmehl-Präparat erhielten, tendenziell stärker beeinflusst waren. Berücksichtigt 

man den gesamten neunwöchigen Versuchszeitraum, so ergaben sich zwischen den 

Kontrolltieren und den Tieren, die den Echinacea-Presssaft erhielten keine 

Unterschiede, während die Tiere, die das Kräutergrünmehl verzehrten im Mittel 

knapp 4 % mehr Futter verbrauchten. Insgesamt war also die Wirkung der 

Echinacea-Zulage auf die Futteraufnahme nicht gerichtet und eher marginal soweit 

überhaupt Auswirkungen der Kräuterzulage auf die Höhe der Futteraufnahme 

nachzuweisen waren. Da in der Literatur bislang keine Untersuchungen vorliegen, in 

denen die Auswirkungen einer Echinacea-Applikation auf den tierindividuellen 

Futterverbrauch erfasst werden, müssen Arbeiten, in denen andere pflanzliche


Produkte bzw. Immunmodulatoren eingesetzt wurden zur Ergebnisdiskussion 

herangezogen werden, die natürlich aufgrund der spezifischen Zusammensetzung 

und Wirkung der Echinaceae nur in Grenzen vergleichbar sind. 

GEIER und OSTER (2001) konnten in einem unter kontrollierten Bedingungen im 

Rahmen der Mast- und Schlachtleistungsprüfung durchgeführten Schweinemastversuch 

durch den Einsatz von Poly-Mix K950, einer Komposition aus mehreren nicht 

näher spezifizierten Kräuterextrakten und ätherischen Ölen einen signifikant (p< 

0,05) erhöhten Futterverbrauch bei den Versuchstieren feststellen. Sie erklärten dies 

damit, dass diese Stoffe die Fresslust der Schweine positiv beeinflussten und durch 

die erhöhte Ausschüttung von Verdauungsenzymen für eine bessere Verdaulichkeit 

des Futters sorgten. In einem ähnlich angelegten Versuch mit Legehennen, in dem 

auch verschiedene Kräuter und Gewürze angereichert mit ätherischen Ölen 

alimentär verabreicht wurden, konnte dagegen kein Einfluss auf die Futteraufnahme 

der Versuchstiere verzeichnet werden (DAMME, 2001). In einem Hähnchenmastversuch 

wurden von DAMME (1998) zwei kommerzielle phytogene, 

Verdauungsförderer auf der Basis von Kräutern und Gewürzen (MICRO PLUS- 

Produkt digestarom® 1305 Geflügel und digestarom®1317 Geflügel premium) mit 

einem antibiotischen Leistungsförderer (Virginiamycin) als Positivkontrolle und einer 

Negativkontrolle ohne Leistungsförderer verglichen. Unterschiede in der 

Futteraufnahme der Tiere ergaben sich nicht, obwohl die Präparate so ausgelegt 

sind, dass die Sekretion der Verdauungssäfte angeregt und die Resorption der 

aufgeschlossenen Nahrung verbessert wird (DAMME, 1998). Die parenterale 

Applikation eines synthetischen Immunstimulanz (PCSL) zeigte bei Legehennen 

ebenfalls keinen Effekt auf den Futterverbrauch der Tiere (ÖZPINAR und ERHARD, 

2000). Damit liegen auch bei den zum Vergleich herangezogenen Untersuchungen 

recht unterschiedliche Ergebnisse vor, so dass eine eindeutige Interpretation 

schwierig erscheint. Aufgrund der Ergebnisse in den vorliegenden Versuchen kann 

nun generell eine stark appetitanregende Wirkung der Echinaceae in gleichem Maße 

wie ein verzehrsdepressiver Effekt ausgeschlossen werden. Darüber hinaus zeigen 

die Ergebnisse, dass das eingesetzte Echinacea-Grünmehl zumindest in den verwendeten 

Dosierungsstufen – unabhängig von dem im Zeitverlauf abnehmenden 

Cichoriensäure- bzw. Alkamidgehalt – nicht als Substitut für ein konventionelles, 

leistungssteigerndes Fütterungsantibiotikum geeignet ist. Fraglich erscheint, ob die


gewählte Grünmehldosierung in den ersten fünf Versuchen überhaupt einen 

gerichteten Einfluss auf diesen Parameter zeigen konnte, da es diesbezüglich 

keinerlei Anhaltspunkte in der Literatur gibt. Betrachtet man alleinig den 

Schweinemastversuch, in dem resultierend aus den vorausgegangenen Versuchen 

nur 1/10 der Echinacea-Zulage verabreicht wurde, so lässt sich nämlich ab der 6. 

Versuchswoche eine eindeutige und gerichtete, tendenziell erhöhte Futteraufnahme 

durch die niedrigere Kräutergabe nachweisen, die allerdings physiologisch aufgrund 

fehlender Untersuchungen nicht zu erklären ist. Diese geringfügig, aber konstant bis 

zum Versuchsende gesteigerte Futteraufnahme der Echinacea-Tiere im Vergleich zu 

den Kontrolltieren korreliert gut mit den ab der sechsten Woche erhöhten 

Antikörpertitern bei den Echinacea-Tieren. Bedient man sich des Interpretationsansatzes, 

dass die erhöhten Antikörpertiter, die als isolierter Immunparameter 

determiniert wurden, für einen generell verbesserten Immunstatus sprechen so wäre 

die These, dass mit einem verbesserten Immunstatus auch eine Leistungssteigerung 

mit erhöhter Nahrungsaufnahme einhergeht (IBEN, 2000), zumindest in diesem Fall 

bestätigt. Dabei gilt natürlich anzumerken, dass die Veränderungen der 

Nahrungsaufnahme in dem zitierten Schweinemastversuch marginal sind. 

5.4.2 Wachstum bzw. Lebendmasseentwicklung 

In den vorliegenden Versuchen wurden mit Ausnahme der Zuchtsauen wachsende 

Individuen als Versuchstiere verwendet und deren Lebendmasseentwicklung bzw. 

das Wachstum, anhand der täglichen Zunahmen beurteilt und verglichen. Der Begriff 

Wachstum bezeichnet dabei die Zunahmen und die Entwicklung der gesamten 

Körpermasse (Neubildung von Körpersubstanz) in einer definierten Zeiteinheit, die 

Geschwindigkeit, mit der dies erfolgt, ist die Wachstumsintensität (KIRCHGESSNER, 

1997). Der Gewichtszuwachs ausgewachsener, gravider Sauen resultiert hingegen 

aus dem Wachstum der Trächtigkeitsprodukte und der Erneuerung von 

Körperreserven im mütterlichen Organismus (maternaler Zuwachs), unterscheidet 

sich folglich deutlich von den Gewichtszunahmen wachsender Individuen. Bei 

laktierenden Sauen bewirkt der hohe Energie- und Nährstoffbedarf, der selbst bei 

einer ad libitum Fütterung nicht gedeckt werden kann, eine unzureichende


Nährstoffversorgung (DOURMAD, 1991). Dieser begegnen die Tiere durch die 

Mobilisierung von Körperreserven, die wiederum zu einer Gewichtsreduktion führen 

(SCHNEIDER et al., 1992). Die Gewichtsveränderung der Sau kann daher nicht analog 

zu wachsenden Individuen anhand der täglichen Zunahmen beurteilt werden, 

sondern wird im Folgenden mit dem Begriff Lebendmasseentwicklung bezeichnet. 

Das Wachstum bzw. die Lebendmasseentwicklung wurde in den vorliegenden 

Versuchen analog zu den Untersuchungen über immunstimulatorisch wirksame 

Präparate bei landwirtschaftlichen Nutztieren von WOESTMANN (1986) und HANSCHKE 

(1997) als Versuchsparameter herangezogen. Die Berücksichtigung dieser 

Messgröße als Versuchsparameter begründet sich zudem dadurch, dass nach IBEN 

(2000) der immunologische Status eines Tieres seine Wachstumsintensität bestimmt. 

Je mehr das Immunsystem durch infektiöse und nichtinfektiöse Noxen belastet wird, 

umso geringer sind die täglichen Zunahmen (IBEN, 2000). Da durch die erfolgte 

Echinacea-Applikation an die Versuchstiere eine immunstimulatorische Wirkung zu 

erwarten war, erscheint die Berücksichtigung der Lebendmasse in diesem 

Zusammenhang als sinnvoll. Darüber hinaus sollten die Auswirkungen einer 

möglicherweise durch Echinaceae verursachten Steigerung der Futteraufnahme auf 

dieses Leistungsmerkmal dokumentiert werden. 

In den vorliegenden 6 Versuchen war die Echinacea-Wirkung auf die Lebendmasseentwicklung 

sehr unterschiedlich. Während im ersten fünfwöchigen Broilermastversuch 

sogar über einen sehr weit gespannten Echinacea-Dosierungsbereich bei 

der Lebendmasse und den täglichen Zunahmen keine Unterschiede zwischen den 

Kräuter-supplementierten Tieren und den Kontrolltieren dokumentiert wurden, lagen 

die täglichen Zunahmen im zweiten Broilerversuch bei der Echinacea-Gruppe, die mit 

2,4 % Echinacea-Anteil die gleiche Dosierung wie die Fütterungsgruppe V im ersten 

Broilerversuch aufwies mit im Mittel 48 g je Tag 6 % unter dem Niveau der 

Kontrolltiere. Dieser Unterschied im zweiten Broilerversuch konnte allerdings 

statistisch nicht gesichert werden. Die Antibiotikagruppe zeigte bei diesem Parameter 

ebenso wie bei der Futteraufnahme einen positiven Effekt auf die Leistung der Tiere, 

was sich in einer signifikant um 9 % erhöhten Lebendmasse und dementsprechend 

in einem um 10 % erhöhten durchschnittlichen täglichen Zunahmenniveau (53 g/d) 

im Vergleich zur Echinacea-Gruppe äußerte. Die Kontrolltiere erreichten analog zur 

Futteraufnahme ein Leistungsniveau, das zwischen den Antibiotika- und Echinacea-


supplementierten Tieren angesiedelt war. Beim ersten Ferkelversuch konnte analog 

zum ersten Broilerversuch bezüglich der Lebendmasseentwicklung kein Unterschied 

zwischen den Kontrolltieren und den Tieren, die eine Echinacea-Zulage erhielten, 

nachgewiesen werden. Erwartungsgemäß wies die Antibiotikagruppe – wie sich auch 

schon bei der Höhe der Futteraufnahme angedeutet hatte – eine tendenziell (4%) 

höhere Wachstumsleistung auf. Der Gewichtszuwachs der Zuchtsauen zwischen 85. 

und 110. Trächtigkeitstag, wurde durch die Höhe der Echinacea-Zulage nicht 

beeinflusst. Demgegenüber wiesen die Kontrolltiere, die kein Echinacea-Grünmehl 

erhielten, einen um durchschnittlich 18 % (617 g/d) höheren täglichen 

Gewichtszuwachs (bedingt durch die Trächtigkeitsprodukte und die maternalen 

Zunahmen) auf als die Echinacea-Tiere. Aufgrund der hohen tierindividuellen 

Streuung innerhalb einer Gruppe war dieser Unterschied allerdings statistisch nicht 

signifikant. Die Lebendmasseveränderung der Sauen wurde darüber hinaus auch 

zwischen dem 110. Trächtigkeitstag und dem Absetzen erfasst. Sie schließt daher 

den geburtsbedingten Masseverlust sowie den Masseverlust ein, der durch die 

Mobilisierung von Körperreserven während der Laktationsphase bedingt ist. In dieser 

Phase ergaben sich keine Unterschiede zwischen den Gruppen, so dass ein Einfluss 

der Echinacea-Zulage in diesem Zeitintervall auszuschließen ist. Berücksichtigt man 

die Geburtsgewichte der Ferkel, so kann bei der Kontrollgruppe ein im Mittel knapp 

5% niedrigeres post partal ermitteltes durchschnittliches Gewicht als bei den 

Vergleichstieren dokumentiert werden. Nach 14-tägiger Säugephase traten dann 

keine Gewichtsdifferenzen mehr zwischen den Gruppen auf. Demgegenüber war die 

Lebendmasse der Ferkel, deren Mütter die einfache Echinacea-Dosierung erhielten, 

am Versuchsende am höchsten, die der Kontrolltiere intermediär und die der Ferkel 

deren Mütter die dreifache Echinacea-Zulage erhielten, am geringsten. Bezüglich der 

täglichen Zunahmen ergaben sich bezogen auf die gesamte Laktationsphase, keine 

Unterschiede zwischen den Kontrolltieren und den Tieren, deren Mütter die einfache 

Echinacea-Zulage bekamen, dagegen waren die täglichen Zunahmen der höchsten 

Zulagenstufe um rund 4 % reduziert. Im zweiten Ferkelversuch, der mit den Ferkeln 

von ¾ aller abgesetzten Würfe unmittelbar im Anschluss an die Laktationsphase 

durchgeführt wurde, ergaben sich bezüglich der Lebendmasseentwicklung keine 

Unterschiede zwischen den verschiedenen Gruppen. Folglich konnte ein nachhaltig 

positiver Effekt der Echinacea-Zulage, der über die Muttersau an die Ferkel im


Rahmen einer gesteigerten Vitalität weitergeleitet wird, ausgeschlossen werden. 

Die Mastschweine zeigten während des neunwöchigen Mastversuches vom 

Versuchsbeginn bis einschließlich zur fünften Versuchswoche eine sehr homogene 

Gewichtsentwicklung, wobei auch zwischen dem eingesetzten Echinacea-Grünmehl 

(III) und dem Echinacea-Presssaft (II) keine Unterschiede bestanden. Ab der 

sechsten Versuchswoche deutete sich wie auch schon beim Leistungsparameter der 

Futteraufnahme eine minimale, aber tendenzielle, statistisch nicht abzusichernde 

Leistungsüberlegenheit der mit Echinacea-versorgten Masttiere an, die sich bis zum 

Versuchsende fortsetzte. Bezogen auf den gesamten Versuchszeitraum wiesen 

damit beide Echinacea-Gruppen im Durchschnitt knapp 4 % höhere tägliche 

Zunahmen auf als die vergleichbaren Kontrolltiere. Dabei konnte ein Einfluss der 

Echinacea-Darreichungssform auf diesen Parameter wie bereits bei der 

Futteraufnahme ausgeschlossen werden. 

Vergleicht man nun die verschiedenen Versuche miteinander, so erhält man bei 

diesem Parameter analog zur Messgröße der Futteraufnahme sehr unterschiedliche 

Ergebnisse. Prinzipiell kann allerdings festgehalten werden, dass die Wirkung der 

Echinacea-Zulage auf diesen Leistungsparameter nicht gerichtet und eher marginal 

war bzw. z.T. keine Auswirkungen der Kräuterzulage auf die Wachstumsleistung 

nachzuweisen waren. 

Da in der Literatur nur wenige Untersuchungen vorliegen, in denen die Auswirkungen 

einer Echinacea-Applikation auf die tierspezifische Lebendmasseentwicklung erfasst 

werden, müssen Arbeiten, in denen andere pflanzliche Produkte bzw. Immunmodulatoren 

eingesetzt wurden, zur Ergebnisdiskussion herangezogen werden. 

Diese Arbeiten sind natürlich aufgrund der spezifischen Zusammensetzung und 

Wirkung der Echinaceae bzw. aufgrund der spezifischen Wirkmechanismen der 

heterogenen Immunmodulatoren nur in Grenzen mit den vorliegenden Ergebnissen 

vergleichbar. WOESTMANN (1986) berücksichtigte in seinen Untersuchungen zur 

Stimulation der unspezifischen Abwehr von Kaninchen durch verschiedene 

Echinacea-Dilutionen als einen Parameter zur Überprüfung des Gesundheitsstatus 

die Gewichtsentwicklung der Tiere. Dabei konnte er feststellen, dass die 

Lebendmassezunahmen der Echinacea-behandelten Tiere während des 

Untersuchungszeitraumes mit denen unbehandelter Kontrolltiere vergleichbar waren. 

D.h. dieser Parameter wurde durch die Echinacea-Applikation nicht beeinflusst,


obwohl WOESTMANN (1986) in Chemilumineszenz-Messungen eine objektiv 

messbare Wirkung auf die Phagozytosekapazität der PMN und damit eine Wirkung 

auf die unspezifische Abwehr bei den Echinacea-Tieren im Vergleich zur 

Kontrollgruppe nachweisen konnte. In der Arbeit von HANSCHKE (1997), in der ein 

inaktivierter Pockenvirusstamm (Baypamun ® ) als Immunmodulator eingesetzt wurde, 

wurde die Gesundheit der Versuchskälber ebenfalls anhand der Masseentwicklung 

registriert. HANSCHKE (1997) konnte in diesem Feldversuch beim Mittelwertsvergleich 

der Massezunahmen aller Baypamun ® -Tiere mit denen der Kontrolltiere eine 

geringfügig bessere Masseentwicklung der Baypamun ® -Tiere feststellen, wobei sich 

gleichzeitig bei den Baypamun ® -Tieren die Immunwerte gegenüber den 

Placebotieren erhöhten. Eine Blutuntersuchung beim Versuchsende ergab zudem 

insbesondere bei den Gruppen mit größerem Massezuwachs eine signifikante 

Induktion der Lymphozytenzahl und eine signifikante Reduktion der Zahl der 

neutrophilen Granulozyten der Baypamun ® -Tiere gegenüber der Nullgruppe. 

HANSCHKE (1997) konnte damit zeigen, dass zumindest bei diesem 

immunmodulatorisch wirksamen Präparat eine enge Korrelation zwischen dem 

Gesundheitszustand und der Masseentwicklung besteht. Der von GEIER und OSTER 

(2001) im Rahmen der Mast- und Schlachtleistungsprüfung durchgeführte 

Schweinemastversuch, in dem im Mastfutter eine Mischung verschiedener 

Kräuterextrakte und ätherischer Öle vorgelegt wurde, bewirkte bei den Kräutersupplementierten 

Tieren aufgrund der erhöhten Futteraufnahme hochsignifikant 

erhöhte (p< 0,01) Tageszunahmen und eine tendenziell bessere Futterverwertung im 

Vergleich zu den Kontrolltieren. Aus diesem Grund war die durchschnittliche 

Mastdauer um signifikante 4 Tage verkürzt. Auch die alimentäre Verabreichung des 

immunstimulatorisch wirksamen ß-1,3/1,6-Glukans (Macro Gard) an entwöhnte 

Ferkel resultierte in einem geförderten Wachstum der mit dem Präparat versorgten 

Tiere gegenüber den unbehandelten Kontrolltieren (ENGSTAD und RAA, 1999). Die 

Autoren führten dies auf den allgemein verbesserten Immunstatus der Ferkel zurück. 

WETSCHEREK (1998) untersuchte in einem Fütterungsversuch mit Aufzuchtferkeln ein 

Präparat auf Basis von pflanzlichen Rohstoffen, Gewürzen und Kräutern (Fresta F, 

Delacon Biotechnik) auf seine leistungssteigernden Eigenschaften. Dabei wurden 

zwei verschiedene Fresta F-Dosierungen mit einem konventionellen Fütterungsantibiotikum 

und einer Nullgruppe hinsichtlich des Tageszuwachses und der


Futterverwertung verglichen. Die Ergebnisse verdeutlichten, dass die höhere Fresta 

F-Dosierung mit dem eingesetzten Fütterungsantibiotikum bezüglich der Tageszunahmen 

leistungsäquivalent war, und bezüglich der Futterverwertung sogar eine 6 

prozentige Überlegenheit lieferte. Beide Dosierungsstufen ermöglichten im Vergleich 

zur Kontrollgruppe eine höhere Leistung (WETSCHEREK, 1998). Damit werden auch in 

anderen Arbeiten mit Pflanzenpräparaten sehr uneinheitliche Auswirkungen auf die 

Zuwachsleistung beschrieben. 

Die Ergebnisse zur Lebendmasseentwicklung in den vorliegenden Versuchen weisen 

eine enge Korrelation zur Futteraufnahme der Tiere auf, so dass die 

Gewichtsveränderungen direkt auf einen veränderten Verzehr der Tiere zurückzuführen 

sind. In den ersten fünf Versuchen wurde den Versuchstieren bezogen auf 

die metabolische Lebendmasse und die durchschnittliche tägliche Futteraufnahme 

die gleiche Echinacea-Basisdosierung vorgelegt. Da die Ergebnisse zur Masseentwicklung 

in diesen fünf Versuchen sehr heterogen und ungerichtet sind, wäre es 

möglich, dass die gewählten Dosierungsbereiche – unabhängig von dem 

variierenden Cichoriensäure- und Alkamidgehalt im vorgelegten Grünmehl – für die 

Versuchstiere keinen physiologischen Effekt ermöglichten. Dagegen konnte im 

Schweinemastversuch, in dem nur 1/10 der Basis-Echinacea-Zulage der 

vorausgegangenen Versuche bezogen auf die metabolische Lebendmasse und die 

durchschnittliche tägliche Futteraufnahme vorgelegt wurde ab der sechsten Woche 

ein gerichtetes, tendenziell erhöhtes Zunahmenniveau durch beide Echinacea- 

Präparate erzielt werden. Wie bereits oben angedeutet war diese leicht erhöhte 

Masseentwicklung direkt an die gesteigerte Futteraufnahme gekoppelt, die 

möglicherweise aus einem verbesserten Gesundheitszustand der Tiere (vgl. 5.4.1) 

resultierte. Damit würden die Ergebnisse des Schweinemastversuches durch die 

Ergebnisse von HANSCHKE (1997) bestätigt, die ebenfalls eine positive Korrelation 

zwischen dem Massezuwachs und dem Immunstatus der Tiere dokumentieren 

konnte. Aufgrund dieser positiven Beeinflussung der tierischen Leistung bei den 

Echinacea-Gruppen im Vergleich zu den Nulltieren kann angenommen werden, dass 

zumindest bei dieser Produktionsrichtung und Echinacea-Zulagenhöhe eine 

wenngleich auch geringe Wirkung des Arzneipflanzenpräparates nachzuweisen war. 

Zwar wurde das Echinacea-Grünmehl und der Echinacea-Presssaft den Tieren so 

vorgelegt, dass sie bezogen auf die Pflanzenfrischmasse von jedem Präparat die


äquivalente Menge erhielten, allerdings nahmen die Tiere aufgrund der 

abweichenden Cichoriensäure- und Alkamidgehalte im Grünmehl bzw. Presssaft (vgl. 

3.6.2) unterschiedliche Anteile von diesen Fraktionen auf. Da bei diesem Parameter 

ebenso wie bei der ermittelten Futteraufnahme keine Unterschiede zwischen den 

Echinacea-behandelten Tieren bestanden, kann man davon ausgehen, dass 

zumindest beim wachsenden Schwein beide Darreichungsformen gleichermaßen im 

Organismus wirken und aufgeschlossen werden bzw. dass offensichtlich nicht 

alleinig der Cichoriensäure- und Alkamidgehalt für die Echinacea-Wirkung 

entscheidend ist, sondern dass möglicherweise ganz andere – bislang nicht 

berücksichtigte – Stoffklassen das Wirkprinzip dieser Arzneipflanze bedingen, wie 

BAUER (1990, 1999) sowie BAUER und WAGNER (1991) andeuten. Darüber hinaus 

wiesen CARR et al. (1998) oder OSOWSKI et al. (2000) in verschiedenen Echinacea- 

Chargen ein unterschiedliches Wirkprinzip nach, so dass der Chargeneinfluss neben 

der richtigen Dosierungshöhe in den vorliegenden Versuchen maßgeblich für die 

heterogene Echinacea-Wirkung verantwortlich sein könnte. Die wachstumsfördernde 

Fähigkeit, die das eingesetzte Antibiotikum bei den beiden untersuchten 

Leistungsrichtungen zeigte, konnte durch die eingesetzten Echinacea-Dosierungen 

nicht erzielt werden. Folglich stellte zumindest bei diesen Dosierungsstufen und 

Produktionsrichtungen das Echinacea-Grünmehl bei angestrebtem äquivalentem 

Leistungsniveau keinen gleichwertigen Ersatz für das Fütterungsantibiotikum dar, 

wobei natürlich für konkretere Aussagen weitere vergleichende Untersuchungen mit 

ähnlichen Echinacea-Dosierungsstufen wie im durchgeführten Schweinemastversuch 

folgen sollten. 


Die Futterverwertung leistender Tiere ist eine wesentliche Größe für den wirtschaftlichen 

Erfolg in der tierischen Produktion. Dabei ist die Messgröße der Futterverwertung 

ein Maß für die Effizienz, mit der das zur Verfügung gestellte Futter von 

den Tieren je erzeugte Leistungseinheit (Zuwachs, Eier, Milch etc.) verwertet wurde. 

In der vorliegenden Arbeit wurde die Futterverwertung der Versuchstiere in allen 

Versuchen mit Ausnahme des Zuchtsauenversuches im Rahmen der Ermittlung der


tierischen Leistung miterfasst, da durch einen möglicherweise positiv beeinflussten 

Immunstatus eine effizientere Futterausnutzung zu erwarten war. Sowohl bei den 

Zuchtsauen als auch bei den säugenden Ferkeln blieb diese Messgröße 

unberücksichtigt, da nicht allein die Kraftfutteraufnahme die Lebendmasseentwicklung 

der Ferkel bzw. die Milchproduktion der Sauen beeinflusst. 

Bezüglich der Futterverwertung zeigte sich in den vorliegenden Broilerversuchen kein 

Unterschied zwischen den unbehandelten Kontrolltieren und den Tieren, die eine 

Echinacea-Zulage erhielten. Auch die Echinacea-Dosierung, die im ersten 

Broilerversuch über einen sehr weiten Bereich gescreeent wurde, hatte keinen 

Einfluss auf die Futterverwertung. Lediglich durch die Vorlage des Fütterungsantibiotikums 

im zweiten Broilerversuch konnte eine minimal verbesserte Futterverwertung 

im Vergleich zu den Kontroll- und Echinacea-Tieren erzielt werden. Im 

ersten Ferkelversuch war die mittlere Futterverwertung der Echinacea-Tiere am 

Höchsten (1,54) und sogar knapp 4 % besser als die der Kontrolltiere. Ein 

nennenswerter Unterschied zur Antibiotikagruppe (1,56) bestand hingegen nicht, so 

dass für diesen Parameter zumindest in dieser Produktionsrichtung ein leistungsäquivalenter 

Ersatz des eingesetzten Fütterungsantibiotikums durch die Echinacea- 

Grünmehlzulage möglich erscheint. Berücksichtigt man den zweiten Ferkelversuch, 

in dem ¾ der Würfe aus dem Zuchtsauenversuch bei gleicher Behandlung 

beobachtet wurden, so ergibt sich für die Ferkel, deren Müttern die alimentäre 

Echinacea-Zulage vorgelegt wurde, unabhängig von der Dosierungshöhe eine um 5 

% schlechtere Futterverwertung im Vergleich zur Kontrollgruppe (1,49), so dass ein 

Vorteil der Kräuterzulage, der an die Nachkommen weitergegeben wird, 

ausgeschlossen werden kann. Aufgrund der relativ hohen gruppenindividuellen 

Streuung ist dieser Unterschied allerdings statistisch nicht abzusichern. 

Im neunwöchigen Schweinemastversuch, in dem zwei verschiedene Echinacea- 

Präparate miteinander verglichen wurden, konnte durch die alimentäre Echinacea- 

Zulage bezogen auf die gesamte Versuchsphase eine marginale Verbesserung 

(2,5%) der Futterverwertung im Vergleich zur unsupplementierten Kontrolle (2,51) 

dokumentiert werden. Zwischen dem eingesetzten Echinacea-Grünmehl und dem 

Echinacea-Presssaft traten auch bei diesem Leistungsparameter keine Unterschiede 

auf. Wie bereits bei den anderen Leistungsparametern ergaben sich auch bei der 

Futterverwertung bei den verschiedenen Versuchen relativ divergente Ergebnisse


bezüglich der Echinacea-Wirkung. 

Da bislang in der Literatur keine Angaben über die Auswirkungen einer Echinacea- 

Zulage auf diesen Messparameter verfügbar sind, können lediglich die 

verschiedenen Versuche direkt miteinander verglichen werden. Darüber hinaus 

können Arbeiten in denen andere Pflanzenpräparate bzw. biologische Immunmodulatoren 

zum Einsatz kamen vergleichend betrachtet werden. Dabei muss 

allerdings auch hier wieder eingeräumt werden, dass diese Arbeiten aufgrund der 

spezifischen Echinacea-Zusammensetzung und -Wirkung nur einschränkend als 

aussagekräftiger Vergleich herangezogen werden können. 

Durch Verfüttern eines phytogenen Futterzusatzstoffes, bei dem es sich um eine 

Kombination aus verschiedenen Kräutern und Gewürzen handelte (MICRO PLUS- 

Produkt digestarom 1317 Geflügel Premium, 150ppm) konnte DAMME (2001) bei 

Legehybriden eine um rund 6 % verbesserte Futterverwertung bei gleichzeitig 

verbesserter Legeleistung und erhöhtem Eigewicht feststellen. Erstaunlich war in 

diesem Versuch, dass auch in Produktionsabschnitten mit vergleichbarer 

Futteraufnahme beider Gruppen die Kräuter-supplementierten Tiere eine verbesserte 

Futterverwertung bei signifikant erhöhtem Eigewicht aufwiesen. Dies begründete sich 

laut Interpretation von DAMME (2001) durch eine Verbesserung der Nährstoffausnutzung 

durch die verwendeten pflanzlichen Futterzusatzstoffe. Zumindest bei 

Legehennen konnten demnach die eingesetzten phytogenen Zusatzstoffe ohne 

weiteres die Fütterungsantibiotika ersetzen (DAMME, 2001). In einem Hähnchenmastversuch 

wurden zwei kommerzielle phytogene Verdauungsförderer auf der 

Basis von Kräutern und Gewürzen mit einem antibiotischen Leistungsförderer 

(Virginiamycin) als Positivkontrolle und einer Negativkontrolle ohne Leistungsförderer 

verglichen (DAMME, 1998). Vom Design entspricht dieser Versuch folglich dem 

zweiten Broilerversuch und dem ersten Ferkelversuch, allerdings weist das 

eingesetzte Phytopräparat vermutlich aufgrund der unterschiedlichen Inhaltsstofffraktionen 

hinsichtlich des Wirkprinzips erhebliche Divergenzen zu den 

Echinaceae auf. DAMME (1998) konnte bei der Auswertung dieses Versuches keine 

Verbesserung der Futterverwertung durch die Kräuterzulage analog zu den 

vorliegenden Broilermastversuchen nachweisen, während das Fütterungsantibiotikum 

eine signifikante (p< 0,01) Verbesserung dieses Messparameters 

bewirkte. PRZYBILLA und WEIß (1998) beschrieben, dass in einem Schweinemast-


versuch, in dem als phytogener Futterzusatzstoff Rhizome der Pflanze Sanguinaria 

canadensis (Sangrovit, Hoechst Roussel Vet.) eingesetzt wurden, eine signifikant 

erhöhte Futterausnutzung durch die Pflanzenzulage gegenüber den Kontrolltieren 

erzielt wurde. Sangrovit zählt futtermittelrechtlich zur Gruppe der natürlich 

vorkommenden aroma- und appetitanregenden Futterzusatzstoffe. Die Autoren 

führten deshalb den leistungssteigernden Effekt dieses Pflanzenstoffes auf seine 

verdauungsstimulierenden Eigenschaften, insbesondere die Anregung der Sekretion 

der Verdauungssäfte zurück (PRZYBILLA und WEIß, 1998). Von WETSCHEREK (1998) 

wurde bei Aufzuchtferkeln das bereits im Kapitel 5.4.2 beschriebene Fresta F 

(Delacon Biotechnik) in zwei verschiedenen Dosierungen im Vergleich zu Tylosin 

zugelegt. Die Futterverwertung verbesserte sich dabei gegenüber der negativen 

Kontrolle um 6 (500 ppm) bzw. 9 % (1000 ppm) abhängig von der Dosierung des 

Pflanzenpräparates und bei der Antibiotikagruppe um knapp 4 %. Auch die 

Tageszunahmen konnten durch die Fresta F-Zulage in gleichem Maße wie durch das 

Antibiotikum gesteigert werden. 

Folglich erscheint je nach Produktionsrichtung und Pflanzenpräparat durchaus eine 

Substitution der antibiotischen Leistungsförderer durch phytogene Futterzusatzstoffe 

ohne Leistungseinbußen möglich. Dieser Effekt dürfte allerdings sehr 

präparatspezifisch sein und wird zudem durch die verdauungsstimulierende Wirkung 

einiger Inhaltsstoffe begünstigt. Da bislang in Untersuchungen mit Echinacea- 

Präparaten diesbezügliche Wirkungen nicht beschrieben wurden, kann angenommen 

werden, dass das Wirkprinzip dieser Pflanze nicht in Richtung Verdauungsstimulation 

abzielt, sondern dass prinzipiell die Fitness der Individuen beeinflusst werden kann. 

Vorraussetzung hierfür scheint aber die richtige Echinacea-Dosierungshöhe bezogen 

auf die metabolische Lebendmasse und die mittlere tägliche Futteraufnahme zu sein 

und – entsprechend der Versuchsergebnisse der vorliegenden Arbeit – weniger der 

Cichoriensäure- und Alkamidgehalt in den Echinacea-Präparaten. Aufgrund der 

heterogenen Ergebnisse der Broiler- und Ferkelversuche, in denen jeweils die 

äquivalente Echinacea-Zulage bezogen auf die metabolische Lebendmasse und den 

durchschnittlichen Futterverzehr vorgelegt wurde, muss analog zu den 

vorausgegangenen Kapiteln davon ausgegangen werden, dass der gewählte 

Echinacea-Dosierungsbereich für die Tiere bezüglich dieses Parameters keinen 

physiologischen Nutzen hatte. Allerdings besteht entsprechend der von CARR et al.


(1998) beschriebenen Wirkunterschiede von Echinacea-Präparaten unterschiedlicher 

Charge auch die Möglichkeit, dass die in diesen Versuchen verwendete Grünmehl- 

Charge kein für das Tier vorteilhaftes Wirkprinzip entfalten konnte. Im 

Schweinemastversuch wurde durch die Echinacea-Grünmehl bzw. Presssaft-Zulage, 

die im Vergleich zu den anderen Versuchen um das 10fache reduziert war, 

unabhängig von den variierenden Cichoriensäure- und Alkamidanteilen in beiden – 

bezogen auf die Pflanzenfrischmasse in äquivalenter Menge verabreichten 

Zubereitungen eine um rund 3 % verbesserte Futterverwertung im Vergleich zur 

Kontrolle nachgewiesen. Damit entspricht der leistungssteigernde Effekt dieser 

Pflanzenzulage der von GROPP und BIRZER (1991) bei Mastschweinen 

beschriebenen Verbesserung der Futterausnutzung durch Leistungsförderer im 

Gewichtsbereich über 50 kg, wobei im vorliegenden Mastschweineversuch kein 

Effekt der Echinacea-Charge nachzuweisen war. Tiefgreifendere Untersuchungen in 

ähnlich niedrigen Dosierungsbereichen, über einen längeren Zeitraum und 

vergleichend zu antibiotischen Leistungsförderern erscheinen demnach nötig, um 

genauere Auskunft über die Substitutionsfähigkeit durch Echinacea purpurea zu 

erhalten. 

5.5 Auswirkungen einer Echinacea purpurea-Zulage auf die Milchinhaltsstoffe 

Die ersten Untersuchungen zur Zusammensetzung der Sauenmilch wurden vor mehr 

als 130 Jahren von VON GOHREN (1865) durchgeführt. Als Faktoren, die die 

Zusammensetzung der Milch beeinflussen, sind neben der genetisch bedingten 

unterschiedlichen Leistungsfähigkeit der Sau die Anzahl und das Aufnahmevermögen 

der Saugferkel, das Laktationsstadium, die Anzahl abgeschlossener 

Laktationen, die Fütterung (DARRAGH und MOUGHAN, 1998) sowie der Gesundheitsstatus 

zu nennen (GOONERATNE et al., 1982). Am herausragendsten dürfte in 

diesem Zusammenhang allerdings der Einfluss des Laktationsstadiums sein, 

insbesondere wenn man hinsichtlich der Inhaltsstoffe Kolostrum und Normalmilch


gegenüberstellt (KENSINGER et al., 1982). 

WITTKE (1987) zeigte, dass sich die Zusammensetzung der Milch bezüglich des 

Protein-, Fett- und Lactosegehaltes von der Konzentration der absorbierten 

Nährstoffe im Blutplasma unterschied. Dementsprechend müssen also die Nährstoffe 

der Milch in der Milchdrüse synthetisiert werden und sind somit von der 

Nährstoffaufnahme in die Milchdrüse sowie von der Biosynthese-Kapazität der 

Epithelzellen der Milchdrüse abhängig (BOYD et al., 1995). Einzige Ausnahme stellen 

in diesem Zusammenhang das Milchserumalbumin sowie die Immunglobuline als 

Fraktionen der Milcheiweiße dar, da sie unverändert aus dem Blut übernommen 

werden (LOEFFLER, 1991). 

5.5.1 Rohprotein- und Immunglobulin G-Gehalt 

Kolostrum unterscheidet sich hinsichtlich des TM-Gehaltes und der Inhaltsstoffe 

grundsätzlich von Normalmilch, wobei insbesondere der Proteingehalt und die 

Zusammensetzung der Proteinfraktion gravierend verändert sind (vgl. Übersicht 80). 

Übersicht 80: Der Proteingehalt von Kolostrum und Normalmilch des Schweines 

Kolostrum 1 Normalmilch 2 Referenzen 3 

Gesamtprotein (g/100 ml Milch) 15,14 5,47 a,b,c,d,e 

Casein (g/100 ml Milch) 1,48 2,74 c,d 

Molkenproteine (g/100 ml Milch) 14,75 2,22 c,d 

Serumalbumin (mg/ml Milch) 15,79 4,61 d 

IgG (mg/ml Milch) 95,6 0,9 d 

IgA (mg/ml Milch) 21,2 5,3 d 

IgM (mg/ml Milch) 9,1 1,4 d 

Lactoferrin (g/ml Milch) 1200


Dabei begründen sich der hohe Gehalt an kolostralem Protein und die spezifischen 

Anteile der verschiedenen Milcheiweiße, in besonderem Maße der hohe 

Immunglobulin-Gehalt, in der Hauptfunktion des Kolostrums, die in der passiven 

Immunisierung der Jungtiere liegt (DARRAGH und MOUGHAN, 1998). 

Da bei Schweinen aufgrund der Plazenta epitheliochorialis, die die loseste 

Verbindung zwischen mütterlichem und fetalem Epithel darstellt, ante partum keine 

Übertragung von Immunglobulinen stattfindet, ist die Übertragung von mütterlichen 

Antikörpern über das Kolostrum notwendig (LOEFFLER, 1991). Das heißt, bei dieser 

Spezies ist die Aufnahme von Kolostrum durch das Jungtier, am besten innerhalb der 

ersten Stunden post partum, essentiell, um die Tiere, die frühestens nach 14 

Lebenstagen fähig sind ausreichend Antikörper zu produzieren, vor Infektionen 

insbesondere mit stallüblichen Erregern zu schützen (WESTROM et al., 1984; 

LOEFFLER, 1991). 

Wie die Ausführungen von KLOBOSA et al. (1987) zeigen, machen Molkenproteine im 

Kolostrum 90% des Gesamtproteins aus, innerhalb der Molkenproteine können in 

den ersten Stunden post partum über 90% der Proteine den Immunglobulinen, hier 

v.a. der Immunglobulin-G-Fraktion zugeordnet werden. Der Gesamtproteingehalt im 

Kolostrum wird demnach innerhalb der ersten 24 Stunden post partum maßgeblich 

durch die Immunglobulin-Konzentration beeinflusst. Die Immunglobuline werden im 

Gegensatz zu den meisten anderen Milchbestandteilen direkt aus dem Blut in die 

Milchdrüse aufgenommen (LOEFFLER, 1991). Daher ist ihre Konzentration im 

Kolostrum proportional zur Plasmakonzentration, die ihrerseits durch die Ausprägung 

der mütterlichen Immunität beeinflusst wird. Aus diesem Grund werden in praxi 

häufig Muttertierschutzimpfungen durchgeführt, um einen auf diesem Wege passiv 

vermittelten Immunschutz insbesondere gegen stallspezifische Keimspektren bei den 

Neugeborenen zu erwirken. 

Da BODINET und FREUDENSTEIN (1999) sowie REHMAN et al. (1999) bei Echinaceabehandelten 

Tieren einen Anstieg der jeweils berücksichtigten spezifischen AK-Titer 

im Plasma nachweisen konnten, war es naheliegend in der vorliegenden Arbeit 

aufgrund der direkten Immunglobulinbereitstellung aus dem Blutplasma sowohl den 

Rohproteingehalt (stellvertretend für alle Immunoproteine) als auch den Gehalt an 

Immunglobulin G, bzw. den Gehalt der Immunglobulin G Unterklasse IgG1 im 

Kolostrum der Sauen zu bestimmen. Mit diesen Messgrößen konnten somit


eventuelle Auswirkungen der alimentären Echinacea-Gabe auf die Ausstattung der 

Kolostralmilch mit immunrelevanten Inhaltsstoffen – bedingt durch einen möglicherweise 

durch Echinacea induzierten verbesserten Immunstatus der Tiere – erfasst 

werden. 

Die Kolostrumproben wurden bei den Sauen innerhalb der ersten 6 Stunden post 

partum entnommen. Dieser Zeitraum war möglich, da nach JACKSON et al. (1995) 

innerhalb dieser Zeitspanne nur geringfügige Veränderungen hinsichtlich des 

Protein- und auch Immunglobulingehaltes auftreten. 

Im Kolostrum wurde weder der Gehalt an Eiweißen noch der Gehalt der 

Immunglobulin G Subklasse IgG1 durch die Versuchsfaktoren beeinflusst. Im Mittel 

lag der Proteingehalt in den Kolostrumproben bei einer sehr geringen Variation 

zwischen den einzelnen Tieren bzw. Gruppen bei 16,1%. Dieser Gehalt befand sich 

damit in Übereinstimmung mit den Angaben in der Literatur (KLOBOSA et al.,1987; 

CRANWELL und MOUGHAN, 1989; CSAPO et al., 1996). Die Immunglobulin G1- 

Konzentration im Kolostrum wurde vom LANDESUNTERSUCHUNGSAMT FÜR DAS 

GESUNDHEITSWESEN SÜDBAYERN als Extinktion angegeben. Im Durchschnitt über alle 

Behandlungen lag die Absorption für diese Messgröße bei 0,33, wobei die Streuung 

zwischen den einzelnen Tieren relativ hoch war. 

Somit hatte die Echinacea-Zulage an die Sauen auch auf diese Parameter analog zu 

den anderen Analysengrößen keinen Effekt. Auch eine unterschiedliche Versorgung 

der Ferkel mit immunrelevanten Milchinhaltsstoffen ist wohl auszuschließen. Da in 

anderen Arbeiten (BEUSCHER et al., 1995; BODINET und FREUDENSTEIN, 1999; REHMAN 

et al., 1999) sowie im vorliegenden Schweinemastversuch ein Anstieg von 

spezifischen AK-Titern durch Echinacea-Zulagen zu verzeichnen war (vgl. 5.6.2), 

liegt eine mögliche Erklärung für das Ausbleiben dieser Wirkung bei den Sauen in 

der eventuell zu hohen Echinacea-Dosierung bzw. am Chargeneinfluss. Ferner 

erscheint es möglich, dass die AK-Titer im Plasma tendenziell erhöht waren, sich 

dieser Unterschied aber in der Zusammensetzung des Milchproteins nicht 

unmittelbar auswirkte. Da das Milchprotein zumindest am Anfang der Kolostralphase 

zum überwiegenden Teil aus Immunglobulinen, insbesondere Immunglobulin G 

zusammengesetzt ist, und bei dieser Fraktion keine Variation zwischen den Gruppen 

aufgetaucht ist, war auch bezüglich des Proteingehaltes keine Variation zu erwarten.


5.6 Auswirkungen einer Echinacea purpurea-Zulage auf die aus 

dem Blut ermittelten Immun- und klinisch-chemischen Parameter 

der Versuchstiere 

5.6.1 Lymphozytenproliferation 

Zur Bewertung von Arzneipräparaten, die mit dem Indikationsanspruch der 

Immunstimulierung aufgeführt sind, wurden von WAGNER et al. (1987) immunologische 

Modelle etabliert, mit denen in vitro und in vivo Immunparameter bestimmt 

werden können. Dabei beschreiben die Autoren u.a. die Messung der Lymphozytenproliferation 

als eine geeignete Methode nicht nur für den immunologischen 

Wirksamkeitsnachweis dieser Präparate sondern auch für Screening-Untersuchungen 

und Studien an Probanden. Da in den vorliegenden Versuchen durch die 

Verabreichung des Echinacea-Grünmehls ein eventueller immunstimulatorischer 

Effekt dokumentiert werden sollte, wurde die Lymphozytenproliferation in Anlehnung 

an die erarbeiteten Empfehlungen von WAGNER et al. (1987) sowie in Anlehnung an 

andere Studien mit Echinacea-Präparaten (GAISBAUER et al., 1986; GIESE, 1989) als 

ein Hauptkriterium für den Immunstatus der Tiere im Zuchtsauenversuch und im 

ersten Ferkelversuch berücksichtigt. 

Aufgrund mangelnder Beeinflussung dieses Parameters durch die alimentäre 

Echinacea-Zufuhr wurde die Lymphozytenproliferation im Schweinemastversuch, in 

dem ebenfalls der Immunstatus der Tiere im Focus stand, nicht mehr bestimmt. In 

den Broilerversuchen wurde prinzipiell von Blutuntersuchungen abgesehen, da bei 

dieser Produktionsrichtung aufgrund der kurzen Lebensdauer der Tiere sowie aus 

ökonomischen Aspekten lediglich die Wachstumsparameter entscheidend sind. Auch 

im zweiten Ferkelversuch wurden keine Blutuntersuchungen durchgeführt, so dass 

für diese Versuchstiere zu diesem Immunparameter gleichfalls keine Daten 

vorliegen. 

Die Lymphozyten, eine Gruppe der weißen Blutzellen, sind die wichtigsten Zellen des 

Immunsystems. Sie stammen von Knochenmarksstammzellen ab und differenzieren 

sich anschließend zu T- oder B-Lymphozyten oder Natural Killer Zellen (NK-Zellen)


(KARLSON et al., 1994; ROITT et al., 1995). Die B-Zellen produzieren Antikörper 

während die T-Helferzellen durch antigenpräsentierende Zellen und B-Zellen 

angeregt werden Zytokine zu produzieren, die die Immunantworten kontrollieren. Die 

zweite Gruppe der T-Lymphozyten, die zytotoxischen T-Zellen können Zielwirtszellen 

erkennen und töten. Die NK-Zellen wirken ebenfalls zytotoxisch und verfügen 

genauso über die Fähigkeit Zytokine freizusetzen. Die Aktivierung der B- und T- 

Zellen erfolgt durch Bindung an ihr spezifisches Antigen, in dessen Folge eine 

antigeninduzierte Proliferation der Lymphozyten einsetzt (ROITT et al., 1995). Diese 

Anregung der Lymphozyten zur Teilung stellt folglich einen ersten Schritt bei den 

meisten Immunreaktionen dar (SCHRÖDER, 1981). Die antigeninduzierte Proliferation 

von Lymphozyten findet normalerweise im lymphatischen Gewebe statt, sie kann 

aber auch in vitro durch Inkubation von lymphatischen Zellen mit spezifischen 

Antigenen oder sogar in Abwesenheit von Antigenen durch Mitogene stimuliert 

werden. Dabei ahmt die mitogene Stimulation von Lymphozyten in vitro die 

Stimulation durch spezifische Antigene in vivo sehr gut nach (ROITT et al., 1995), so 

dass Aussagen über die Reaktionsfähigkeit der angesprochenen Zellarten auf einen 

Antigenreiz und damit auf die Abwehrlage des Organismus möglich sind (GIESE, 

1989). Mitogene regen ruhende Lymphozyten zur DNA-Synthese mit anschließender 

Teilung oder Reifung an, wobei sie als polyklonale Zellaktivatoren im Gegensatz zu 

den Antigenen mehrere Lymphozytenklone stimulieren (ECKART, 1986). Substanzen 

mit mitogenem Charakter sind beispielsweise Phytohämagglutinin (PHA), Pokeweed- 

Mitogen (PWM) oder Concanavalin A (Con A) (ROITT et al., 1995). 

Die spontane Proliferation lymphoider Zellen und die Stimulierbarkeit durch Mitogene 

– zusammengefasst angegeben als Stimulationsindex – sind in vitro im Lymphozytenproliferationstest 

(Lymphozytentransformationstest, LTT) (vgl. 3.6.4.1), der beim 

Sauenversuch und beim ersten Ferkelversuch durchgeführt wurde, messbar 

(RUPPERT und PETERS, 1987; WAGNER et al., 1987; WILDFEUER und MAYERHOFER, 

1994). Als Mitogen kam bei diesem Lymphozytenproliferationstest in den 

Untersuchungen aus den obengenannten Versuchen PHA zum Einsatz, das in vitro 

unspezifisch eine Vielzahl von T-Lymphozytenklonen zur Proliferation anregt. 

Im vorliegenden Sauenversuch wurde die Lymphozytenproliferation bei jeder 

Blutentnahme, also am 85. Trächtigkeitstag, am ersten Tag post partum sowie beim 

Absetzen erfasst, so dass auch mögliche versuchsbedingte Veränderungen


dokumentiert werden konnten. Bei der ersten Blutentnahme am 85. Trächtigkeitstag 

war der Stimulationsindex der Lymphozytenproliferation mit im Mittel 2,7 relativ 

einheitlich bezogen auf alle Gruppen, wobei die Tiere, die in die Kontrollgruppe 

eingegliedert waren den niedrigsten Index (2,62) aufwiesen. Zum Zeitpunkt der 

Geburt war dann der Stimulationsindex bei allen Behandlungen gleichermaßen 

signifikant gegenüber dem ersten Messzeitpunkt auf 2,3 reduziert. Behandlungsbedingte 

Unterschiede konnten bei dieser zweiten Blutentnahme nicht notiert 

werden, allerdings wiesen die Kontrolltiere analog zur ersten Messung mit 2,25 im 

Vergleich zu 2,35 (Gruppe II) bzw. 2,39 (Gruppe III) wieder den niedrigsten 

Stimulationsindex auf. Beim Absetzen (3. Messtermin) erreichte der Stimulationsindex 

dann wieder den Wert der bereits zu Versuchsbeginn vorlag, so dass zwischen 

dem 2. und 3. Messzeitpunkt ein signifikanter Anstieg in umgekehrtem Verhältnis 

bezogen auf die Veränderung zwischen dem 1. und 2. Messzeitpunkt eintrat. 

Unterschiede – bedingt durch die Echinacea-Zulage – konnten bei den Sauen auch 

beim Absetzen nicht nachgewiesen werden. Parallel zu den Sauen wurde beim 

Absetzen von jeweils 2 Ferkeln eines Wurfes die Lymphozytenproliferation 

untersucht. Hierbei konnte ein mittlerer Stimulationsindex von 2,6 festgestellt werden, 

wobei gleichfalls keine versuchsbedingten Differenzen zwischen den Gruppen 

auftraten. Die Lymphozytenproliferation wurde auch im ersten Ferkelversuch nach 6- 

wöchiger Echinacea- bzw. Antibiotika-Applikation beim Versuchsende analog zum 

Sauenversuch von jeweils 6 Tieren einer Behandlungsgruppe erfasst. Weder bei den 

Antibiotika-supplementierten Ferkeln (Stimulationsindex 2,6) noch bei den Tieren, die 

die alimentäre Echinacea-Zulage erhielten (Stimulationsindex 2,7), ergaben sich 

Unterschiede zur Kontrollgruppe (Stimulationsindex 2,7). Damit kann folglich 

einheitlich resümiert werden, dass in den durchgeführten Versuchen die alimentäre 

Echinacea-Grünmehlzulage keinen Einfluss auf die Höhe der Lymphozytenproliferation 

zeigte. Somit blieb ein wichtiger Indikatorparameter für den Immunstatus 

eines Individuums von dieser potenziell immunstimulatorisch wirksamen 

Kräuterzulage unbeeinflusst. Da sich der immunologische Status eines Organismus 

aber nicht allein durch das Ausmaß der Lymphozytenproliferation repräsentiert, kann 

bei der Bewertung dieser Versuche nicht per se davon ausgegangen werden, dass 

durch die Echinacea-Zulage kein immunstimulatorischer Effekt auftrat. Vielmehr 

können andere Parameter, die den Immunstatus beschreiben bzw. zum


Wirksamkeitsnachweis von immunmodulatorisch wirksamen Präparaten eingesetzt 

werden, wie z.B. die Bestimmung der Phagozytose-Indices (WAGNER et al., 1987) 

etc. durchaus durch die Echinacea-Zulage beeinflusst worden sein. Eine weitere 

Möglichkeit besteht auch darin, dass durch die Kräuterapplikation eine in vivo 

erhöhte Lymphozytenproliferation auftrat, sich diese aber durch das in vitro-Testsystem 

nicht nachweisen ließ, da auch bei der Antibiotika-Applikation kein Effekt 

nachzuweisen war. Ein weiterer Erklärungsansatz wäre, dass prinzipiell von dieser 

Echinacea-Darreichungsform und / oder -Charge unabhängig von den Cichoriensäure- 

und Alkamidgehalten im Grünmehl kein immunstimulatorischer Effekt zu 

erwarten war bzw. die Höhe der wirksamen Dosierung aufgrund fehlender 

Literaturangaben verfehlt wurde. 

Eine Vergleichbarkeit dieser Ergebnisse mit Literaturberichten ist praktisch nicht 

gegeben. Zwar beschreiben mehrere Autoren einen Einfluss von immunmodulatorisch 

wirksamen Präparaten auf die Lymphozytenblastogenese. Fast allen 

Arbeiten ist aber gemeinsam, dass die gewählten Modulatoren als Mitogen in vitro im 

Sinne des in dieser Arbeit verwendeten PHA angewandt wurden. Somit handelt es 

sich um völlig andere Versuchsansätze, da in der vorliegenden Arbeit das potenziell 

immunmodulatorisch wirksame Echinacea-Grünmehl in vivo eingesetzt wurde. 

Eingeschränkt vergleichbar mit dieser Arbeit sind die Untersuchung von GAISBAUER 

et al. (1986), die an Patienten zweimal täglich Echinacea-Extrakt 1 i.m. applizierten 

und zu Therapiebeginn und -ende die Lymphozytenproliferation im LTT bestimmten. 

Die von den Autoren verwendete Methodik war zwar analog zu dieser Arbeit, 

allerdings wurden in der Studie erkrankte Individuen mit akuten Entzündungen 

bakterieller bzw. viraler Genese berücksichtigt, so dass ein weiterer Varianzfaktor 

vorlag. In ihrer Studie dokumentierten die Autoren im LTT bei PHA- und PWM- 

Zugabe einen Rückgang der Lymphozytenstimulation durch die Echinacea- 

Applikation sowohl im Vergleich zur Kontrolle als auch im Vergleich zum Vorbefund 

(GAISBAUER et al.,1986). Auch die Arbeit von GIESE (1989) ist von der Methodik her 

ähnlich, da die getesteten Immunmodulatoren ebenfalls in vivo eingesetzt und 

anschließend in in vitro-Testsystemen untersucht wurden. Eine Vergleichbarkeit der 

Ergebnisse mit vorliegender Studie erscheint aber dennoch schwierig, da GIESE 

1 0,1 g Presssaft aus Herba Echinacea purpurea


(1989) neben mikrobiellen Immunmodulatoren nur ein homöopathisches Echinacea- 

Kombinationspräparat 1 und keine Reinsubstanzen applizierte. Wie die Versuchsergebnisse 

zeigen, konnte GIESE (1989) durch die zweimalige Immunmodulatorenbehandlung 

bei neugeborenen Kälbern keine Beeinflussung im LTT 

nachweisen, während eine verstärkte Phagozytoseaktivität beobachtet wurde. Diese 

Ergebnisse – obwohl natürlich nur eingeschränkt vergleichbar – untermauern die 

oben erwähnte These, dass das in den vorliegenden Versuchen eingesetzte 

Echinacea-Grünmehl im Gesamtorganismus doch immunstimulatorisches Potenzial 

entfalten konnte. Dabei sind zur eindeutigen Klärung dieses Sachverhaltes 

weiterführende Analysen notwendig. 

Obengenannte These bestätigt sich auch insofern, als dass bei den ex vivo 

durchgeführten Untersuchungen von WILDFEUER und MAYERHOFER (1994) durch 

Echinacea-Liquidum 2 in vitro eine gesteigerte Phagozytose von Hefezellen aber 

keine Transformation von Lymphozyten induziert wurde. Diese Ergebnisse decken 

sich mit den in vitro und in vivo Untersuchungen von WAGNER et al. (1987) mit 

pflanzlichen Arzneipräparaten. Während für Echinacea-Extrakte 3 nicht nur nach 

parenteraler Applikation sondern auch nach peroraler Gabe eine in vitro und in vivo 

Stimulation des phagozytären Systems beschrieben wurde, war in vitro keine 

Beeinflussung der T-Lymphozytenproliferation durch Echinacea zu beobachten 

(WAGNER et al., 1987). Da die Pflanzenextrakte in den beiden beschriebenen Studien 

nicht in vivo sondern erst in vitro an isolierten Zellen getestet wurden, ist aber die 

Vergleichbarkeit mit vorliegender Arbeit, wie bereits angedeutet, in Frage zu stellen. 

Gleiches gilt auch für die im Folgenden angeführten Literaturberichte. HOH (1990) 

konnte im Gegensatz zu den bisher vorgestellten Untersuchungen in vitro eine starke 

Wachstumsstimulation, also Proliferation, von isolierten Mäusemilzzellen bei einer 

Inkubation mit Echinacea purpurea-Presssaft beobachten. Dieser Effekt zeigte eine 

deutliche Dosisabhängigkeit. Dabei entsprach der mitogene Effekt des Presssaftes 

qualitativ der milzzellproliferierenden Wirkung des mitgetesteten B-Zell aktivierenden 

Lipopolysaccharids (LPS), während der quantitative Unterschied in der Mitogenität 

beider Substanzen in der Dosis einen Faktor von 100 ausmachte (HOH, 1990). In 

1 Immulon: Echinacea D2, Lachesis D8, Phosphorus D6, Coffea tosta 50% 

2 Presssaft aus den oberirdischen Teilen von E. purpurea mit 22 Vol. % Alkohol 

3 Echinacin® (E. purpurea Presssaft mit 22% Ethanol und ethanolische E. purpurea Wurzelextrakte


gleicher Weise beobachtete KRAUSE (1984) in Knochenmarkkulturen bei mittlerer 

Echinacea-Dosierung im LTT eine in vitro Stimulation von T-Lymphozyten durch 

Echinacin ® , während er bei höherer Echinacea-Konzentration einen suppressiven 

respektive zytotoxischen Effekt feststellte. Die Arbeitsgruppe von CARR et al. (1998) 

untersuchte verschiedene kommerzielle Echinacea-Produkte im Hinblick auf ihre 

immunstimulatorischen Fähigkeiten gegenüber Mäusemilzzellen. Dabei konnten die 

Autoren durch die Echinacea-Applikation zu den Zellkulturen eine bis zum 10fachen 

erhöhte Zellproliferation feststellen. Das Ausmaß der Zellproliferation wies allerdings 

produktabhängig erhebliche Unterschiede auf, bei einzelnen Produkten blieb ein 

stimulatorischer Effekt sogar gänzlich aus. Damit geben CARR et al. (1998) den 

Hinweis, dass es bei den angebotenen Echinacea-Präparaten gravierende 

Diskrepanzen hinsichtlich des Wirkungsspektrums gibt, und dies sogar häufig bei 

Produkten des gleichen Herstellers aber anderer Charge. Diesen Zusammenhang 

konnten auch BAUER (1997) und OSOWSKI et al. (2000) in ihren Untersuchungen zur 

Vergleichbarkeit von Echinacea-Präparaten hinsichtlich ihrer immunologisch 

relevanten Inhaltsstoffe feststellen. Obwohl die Studie von CARR et al. (1998) 

aufgrund der in vitro Methodik nicht unbedingt mit der vorliegenden Arbeit 

vergleichbar ist, liefern CARR et al. (1998) mit dieser Aussage dennoch einen 

weiteren potenziellen Erklärungsansatz für das Ausbleiben der Lymphozyten 

stimulierenden Wirkung in den beschriebenen Analysen. Möglicherweise hätte 

demnach das im Schweinemastversuch eingesetzte Grünmehl einer anderen Charge 

aufgrund seiner abweichenden Zusammensetzung einen immunstimulatorischen 

Effekt im Rahmen der Lymphozyteninduktion zeigen können. 

5.6.2 Rotlauf-Antikörpertiter 

Um spezifischere Aussagen über immunogene Antworten eines Organismus auf z.B. 

immunmodulatorische Substanzen zu erhalten, werden vielfach neben 

unspezifischen Immunparametern auch spezifische Immunfunktionen zur Detektion 

von Veränderungen im Immunsystem untersucht. Als eine Methode zur näheren 

Charakterisierung spezifischer Immunreaktionen sei hier beispielsweise die


Erfassung der Immunglobulinkonzentrationen oder Antikörpertiter genannt (JURCIC et 

al., 1989; BEUSCHER et al., 1995; BODINET und FREUDENSTEIN, 1999). Per se wird 

zwar davon ausgegangen, dass Echinacea-Präparate bevorzugt das unspezifische 

Immunsystem beeinflussen (BAUER, 1990; WAGNER, 1999; PERCIVAL, 2000), so dass 

eine Berücksichtigung spezifischer Immunparameter wenig sinnvoll erscheint. Dem 

widersprechen allerdings die Untersuchungen von SCHRANNER et al. (1989) oder 

BODINET und FREUDENSTEIN (1999), die bei Hühnern bzw. Mäusen einen Anstieg 

spezifischer Antikörpertiter nach Echinacea-Behandlung dokumentierten. Basierend 

auf diesen Ergebnissen und der Hypothese, dass durch Stimulation des 

phagozytären Systems, dessen Aufgabe u.a. in der Antigenpräsentation liegt, 

möglicherweise aufgrund des engen Wechselspiels aller immunologischen Prozesse 

auch mehr Antikörper produziert werden können, wurde die spezifische AK- 

Konzentration als Parameter beim Versuchsdesign aufgegriffen. Eine Bestätigung 

dieser These ist zwar mit der vorliegenden Arbeit nicht möglich, da lediglich die 

Immunglobulinkonzentration im Plasma als isolierter Parameter unabhängig von der 

Phagozytoseleistung des mononukleären Systems betrachtet wird. In zahlreichen 

Studien mit Echinacea-Extrakten konnte allerdings prinzipiell eine phagozytosestimulierende 

Wirkung unabhängig von der Applikationsart und Echinacea-Spezies 

nachgewiesen werden (WAGNER et al., 1986; ENBERGS und WOESTMANN, 1986; 

BAUER et al., 1989; JURCIC et al., 1989; WAGNER, 1999). Die spezifische Immunglobulinkonzentration 

(spezifische Antikörpertiter) in Abhängigkeit von der 

Echinacea-Zulage wurde in der vorliegenden Arbeit lediglich im Schweinemastversuch 

erfasst, nachdem in den vorausgegangenen Versuchen zunächst 

Parameter, die die unspezifische Abwehrlage des Organismus charakterisieren, 

berücksichtigt wurden. 

Die Antikörper – auch Immunglobuline genannt – stellen eine Gruppe von Serummolekülen 

dar, die von B-Lymphozyten produziert werden. Alle Immunglobuline 

haben die gleiche Grundstruktur, unterscheiden sich aber an ihrer Antigenbindungsstelle, 

so dass sie spezifisch nur ein Antigen binden können. Die Antikörper fungieren 

im Immungeschehen als flexible Adaptoren, indem sie Bestandteilen des Immunsystems 

das Erkennen spezifischer Pathogene und ihrer Produkte ermöglichen 

(ROITT et al., 1995). Dies geschieht dadurch, dass sie sich mit den Antigenen 

verbinden und dadurch deren Fremdoberfläche für die Phagozytose markieren, was


als Opsonierung bezeichnet wird (KARLSSON et al., 1994). Während ein Teil des 

Antikörpers, der als Opsonin wirkt, folglich an das Pathogen bindet, binden andere 

Teile nach der Opsonierung an mononukleäre Phagozyten. Dadurch kann das 

Antigen von den Phagozyten aufgenommen und zerstört werden. Sobald die 

Pathogene beseitigt sind schalten sich diese Immunantworten dann wieder ab (ROITT 

et al., 1995). 

Damit im vorliegenden Schweinemastversuch eine Detektion von spezifischen 

Antikörpertitern möglich war, mussten die Tiere zunächst diesem Antigen exponiert 

werden. Dazu wurden die Schweine während des neunwöchigen 

Versuchsgeschehens zweimal mit einer handelsüblichen Rotlauf-Vakzine (Porcilis 

Ery ad us. vet., Intervet, Unterschleißheim, BRD) immunisiert, so dass sich spezifisch 

Rotlauf-Antikörper ausbilden konnten. Die Vakzination der Mastschweine entsprach 

der konventionellen Praxis einer Grundimmunisierung, sie erfolgte am Ende der 1. 

Versuchswoche sowie entsprechend vier Wochen später am Ende der 5. 

Versuchswoche. Die spezifischen Rotlauf-Antikörpertiter wurden bei den Schweinen 

zunächst vor der Versuchseinteilung ermittelt, um Tiere, die eventuell bereits 

Antikörper gegen Rotlauf ausgebildet hatten, nicht in das Versuchsgeschehen 

einzubeziehen. Somit wurden für den Versuch nur solche Tiere verwendet, die im 

Rotlauf-ELISA eindeutig negativ reagierten. Die Rotlauf-Antikörpertiter im Plasma der 

Versuchstiere wurden entsprechend der durchgeführten Blutentnahmen zu Beginn 

des Versuches sowie am Ende jeder Versuchswoche – mit Ausnahme der 4. und 5. 

Woche – für jedes Tier ermittelt. Damit standen für diesen sehr heterogenen, 

tierindividuell unterschiedlichen Parameter acht zeitlich versetzte Einzeldaten pro 

Tier zur Verfügung, so dass aufgrund des relativ großen Gruppenumfanges eine 

repräsentative Aussage über die potentielle Veränderung dieser Messgröße während 

des Versuchsverlaufs möglich war. Im Gegensatz zu den vorausgegangenen 

Versuchen wurde im Schweinemastversuch neben dem bisher verwendeten 

Echinacea-Grünmehl auch der im Humanbereich eingesetzte Echinacea-Presssaft in 

seiner Auswirkung auf die Versuchsparameter untersucht. Folglich wurde in diesem 

Versuch sowohl zwischen Placebogruppe und Echinacea-Zulage, als auch zwischen 

diesen zwei Echinacea-Präparaten, die bezogen auf das Ausgangsmaterial in 

gleicher Konzentration zugelegt wurden, verglichen. Der Echinacea-Presssaft wurde 

in diesem Mastversuch vergleichend eingesetzt, um abzuklären, ob dieses


pharmazeutische Präparat nach peroraler Applikation bei der Spezies Schwein 

überhaupt seine durch zahlreiche Studien im Humanbereich (BAUER et al., 1988a, 

1989), BAUER (1990) sowie WAGNER (1999) belegte immunologische Wirkung 

entfalten kann. Sollten sichtbare, respektive messbare Auswirkungen dieser Zulage 

ausbleiben, könnte der bereits obenerwähnte Erklärungsansatz für die nicht 

nachweisbare Wirkung in den vorausgegangenen Versuchen, nämlich dass 

Echinacea-Präparate prinzipiell nach peroraler Applikation bei der Spezies Schwein 

keine Wirkung zeigen (können), bestätigt werden. Sollte im Gegenzug ein Einfluss 

der Presssaft-Applikation im Gegensatz zur Grünmehlzulage vorhanden sein, wäre 

dies ein Hinweis darauf, dass das Echinacea-Grünmehl zumindest in dieser 

Form/Dosierung und bei diesen Messgrößen beim Schwein keine Wirkung zeigen 

kann. Wie die Versuchsergebnisse verdeutlichen, trat nach der sechsten Woche und 

dann durchgehend bis zum Versuchsende (vgl. Abbildung 1 und 2) eine signifikante 

Überlegenheit der Echinacea-supplementierten Tiere im Vergleich zu den 

Placebotieren hinsichtlich der Ausprägung der Rotlauf-Antikörpertiter auf. Dabei 

konnte zwischen den Echinacea-Tieren in diesem Versuchszeitraum keine Variation 

in Abhängigkeit der Art der Echinacea-Zulage nachgewiesen werden. Die höhere 

AK-Ausstattung bei den Echinacea-Tieren manifestierte sich gleichfalls im 

Versuchsmittel, wo sie sogar Werte von 37 % erreichte. Aufgrund der hohen 

tierindividuellen Streuung konnten diese Unterschiede im Versuchsmittel allerdings 

erst bei einer Irrtumswahrscheinlichkeit von 10% statistisch abgesichert werden.


60 

Rotlauf-Antikörpertiter im Blutplasma 

(Extinktion* 10 -3 ) 

50 

40 

30 

20 

10 

Nullgruppe 

E-Presssaft 

E-Grünmehl 

0 

0 1 2 3 

Zeitpunkt der Blutentnahme [Versuchswoche] 

Abbildung 1: Einfluss einer oralen Echinacea purpurea Presssaft- bzw. Grünmehl- 

Zulage auf die Rotlauf-Antikörper-Titer im Plasma der Mastschweine [Extinktion *10 - ³] 

während der ersten Applikationsphase 

Rotlauf-Antikörpertiter im Blutplasma 

(Extinktion *10 -3 ) 

300 

250 

200 

150 

100 

50 

Nullgruppe 

E-Presssaft 

E-Grünmehl 

0 

6 7 8 9 

Zeitpunkt der Blutentnahme [Versuchswoche] 

Abbildung 2: Einfluss einer oralen Echinacea purpurea Presssaft- bzw. Grünmehlzulage 

auf die Rotlauf-Antikörpertiter im Plasma der Mastschweine [Extinktion * !0 - ³] 

während der zweiten Applikationsphase


Die Rotlauf AK-Titer der Echinacea-versorgten Tiere lagen wochenabhängig z.T. 

knapp 50 % über den bei den Kontrolltieren nachgewiesenen Titern, konnten aber 

aufgrund der sehr hohen Standardabweichung innerhalb einer Gruppe bei einer 

Irrtumswahrscheinlichkeit von 5% nur nach der sechsten, achten und neunten 

Versuchswoche statistisch abgesichert werden. Für diesen Zeitraum wird folglich der 

starke Einfluss der Echinacea-Zulage sichtbar, der sich auch dadurch äußert, dass 

die Rotlauf-AK-Titer der Echinacea-Tiere selbst nach Erreichen der Peaks noch auf 

höherem Niveau bleiben als die Rotlauf-AK-Titer der Kontrolltiere. 

Nach der ersten Rotlauf-Vakzination zeigte sich bei den zwei folgenden 

Blutentnahmezeitpunkten ein langsamer aber kontinuierlicher Anstieg der AK-Titer 

bei den Kontrolltieren sowie den Tieren, die das Echinacea-Grünmehl erhielten. Bei 

den Tieren mit der Presssaft-Applikation konnte hingegen eine deutlich schwächere 

Zunahme dieser Immunglobulinkonzentration nach Woche 2 und 3 dokumentiert 

werden. Generell war in diesem Zeitintervall die Ausstattung mit Rotlauf-AK bei den 

Mastschweinen, denen das Echinacea-Grünmehl angeboten wurde, am höchsten. 

Mit diesem Versuch konnte folglich eine erhebliche Stimulation des 

berücksichtigten Immunparameters durch die Echinacea-Zulage und zwar 

unabhängig vom Echinacea-Präparat nachgewiesen werden. Damit zeigte sich bei 

den Echinacea-Tieren im Gegensatz zu den vorausgegangenen Versuchen erstmals 

ein detektierbarer und gerichteter signifikanter Effekt auf das Immunsystem und zwar 

in diesem Fall auf das spezifische Immunsystem. 

Ein Einfluss einer Echinacea-Zulage konnte auch in dem von REHMAN et al. (1999) 

an Ratten durchgeführten Versuch festgestellt werden. In diesem in vivo-Versuch 

wurde analog zum vorliegenden Schweinemastversuch untersucht, ob durch eine 

Echinacea-Behandlung ein Effekt auf die antigenspezifische Immunität auftritt. Dazu 

wurden die Ratten über einen Zeitraum von 6 Wochen mit Echinacea angustifolia 1 

peroral versorgt. Gleichzeitig erhielten sie eine dreimalige Injektion mit KLH-Antigen 

(keyhole limpet hemocyanin, Calbiochem, San Diego, USA). Zweimal wöchentlich 

wurde die Serumkonzentration an spezifischem KLH-Antigen im ELISA untersucht. 

Durch die Echinacea-Zulage stieg der Anti-KLH Immunglobulin G- und M-Titer 

gegenüber den Kontrolltieren signifikant an. Dieser Anstieg zeigte sich bereits 

1 Echinacea angustifolia Wurzelextrakt


zwischen der ersten und zweiten Versuchswoche und schwächte sich zum 

Versuchsende hin etwas ab (REHMAN et al. 1999). 

Obwohl sich die in dem Versuch von REHMAN et al. (1999) und die in der 

vorliegenden Arbeit eingesetzten Echinacea-Präparate bezüglich ihres 

Ausgangsmaterials und dementsprechend bezüglich der Inhaltsstoffe unterschieden, 

können mit dem zitierten Versuch die eigenen Ergebnisse aus dem 

Schweinemastversuch untermauert werden. 

In gewissem Widerspruch hierzu steht der von SCHRANNER et al. (1989) an Hühnern 

durchgeführte in vivo-Versuch zur Beeinflussung der humoralen Immunreaktion 

durch Echinacea angustifolia-Extrakt 1 . Entsprechend des bereits bekannten 

Versuchsdesigns erfolgte auch hier eine Antigenexposition – in diesem Fall durch 

Injektion des T-Zell-abhängigen Antigens Humanserum-Albumin (HSA). Die Autoren 

konnten durch die perorale Echinacea-Applikation im Versuchsverlauf keine 

Veränderung der Anti-HSA-Titer der Isotypen IgG, IgM und IgA im ELISA-Test 

detektieren. Allerdings führte die Echinacea-Zufuhr zu einer erhöhten Konzentration 

an IgG und IgA im Serum der Verumtiere. Den gleichen Effekt auf die 

Immunglobulinspiegel zeigte bei identischem Versuchsdesign die Gabe eines 

Echinacea-Kombinationspräparates 2 . Im Gegensatz zu dem eingesetzten Echinacea- 

Monopräparat konnten hierdurch sogar hochsignifikant erhöhte Anti-HSA-Titer 

insbesondere der Isotypen IgG und IgM nachgewiesen werden (SCHRANNER et al., 

1989). Das heißt, auch in dieser Versuchsanordnung konnte ein deutlich positiver 

Effekt der Echinacea-Zulage auf das spezifische Immunsystem dokumentiert werden, 

wenngleich es sich um eine andere Echinacea-Spezies bzw. um ein Echinacea- 

Kombinationspräparat 2 handelte. 

BODINET und FREUDENSTEIN (1999) befassten sich mit der Auswirkung eines 

Echinacea-dominierten Kombinationspräparates 3 auf spezifische Immunparameter 

bei Mäusen. Dabei bewirkte eine 7-tägige perorale Applikation des lyophilisierten 

Extraktes bei den Mäusen eine deutlich stärkere Reaktion auf die i.p. verabreichte 

Schaferythrozytensuspension (SRBC-Antigen). Diese äußerte sich in der 

1 Echinacea angustifolia Urtinktur in alkoholischer Lösung 

2 Influex® mit 30% E. angustifolia, 30% Lachesis mutus (D6), 15% Aconitum napellus (D4), 10% Apis 

mellifica (D3) 

3 Extrakt aus Thujae occidentalis Herba, Baptisiae tinctoriae Radix, Echinacea purpureae Radix und 

Echinacea pallidae Radix


Versuchsgruppe sowohl in erhöhten Anti-SRBC-AK-Titern im Vergleich zur 

Placebogruppe, als auch durch eine erhöhte Anzahl an Anti-SRBC-produzierenden 

plaquebildenden Zellen in der Milz (BODINET und FREUDENSTEIN, 1999). Diese 

Untersuchung zeigt das immense immunstimulatorische Wirkpotential von 

Arzneipflanzen, die das Prädikat „Immuntherapeutikum“ tragen. Dass Echinacea- 

Extrakte auch in vitro die AK-produzierenden Zellen stimulieren, belegten BEUSCHER 

et al. (1995) sowie CARR et al. (1998) mit ihren Untersuchungen. So zeigten 

BEUSCHER et al. (1995), dass durch die Inkubation von Mäusemilzzellkulturen mit 

Echinacea purpurea-Extrakt der Gehalt an IgM in den Überständen erhöht wurde. 

Die vergleichbaren Extrakte aus Echinacea pallida und E. angustifolia induzierten 

zwar ebenfalls einen Anstieg der IgM-Titer, jedoch war dieser marginal im Vergleich 

zu Echinacea purpurea. CARR et al. (1998) konnten in ihren ähnlich angelegten in 

vitro-Versuchen durch nicht näher spezifizierte Echinacea-Zulagen gleichfalls eine 

Stimulation der IgM-, IgG- und IgA-Sekretion durch die Mäusemilzzellen nachweisen. 

Obwohl das Ausmaß der Stimulation starke produktspezifische Schwankungen 

aufwies, zeigen diese Ergebnisse dennoch den gravierenden Einfluss der 

Echinaceae auf diese Immunfunktion. 

Im Gegensatz zu den bisher zitierten und vorgestellten Literaturberichten wiesen 

WAGNER et al. (1986) sowie JURCIC et al. (1989) in ihren in vivo Studien mit 

männlichen Probanden nach der Applikation eines Echinacea-Kombinationspräparates 

1 keine Beeinflussung der Immunglobulin-Konzentrationen im Serum der 

Testpersonen nach. Damit konnten sie zwar keine Stimulation dieses Parameters der 

spezifischen Abwehrmechanismen feststellen, aber gleichzeitig einen deutlich 

phagozytose-steigernden Effekt, also eine Stimulation des unspezifischen 

Abwehrpotentials beobachten. Diese Ergebnisse implizieren aber nicht zwangsläufig 

ein gänzliches Ausbleiben der Stimulation des spezifischen Abwehrsystems durch 

das eingesetzte Echinacea-Kombinationspräparat, da andere Messgrößen 

unberücksichtigt blieben. 

Eine Erklärung für die durch Echinacea verursachte in vivo erhöhte AK-Produktion in 

der vorliegenden Arbeit kann auch aus anderen Untersuchungen momentan nicht 

abgeleitet werden, weil bezüglich des Wirkprinzips der Arzneipflanze auf diese 

1 Lophakomp-Echinacea: 1 ml enthält 0,2 ml Echinacea angustifolia D1, 0,1 ml Eupatorium perfol. D3, 

0,1 ml Gelsemium D4, 0,15 ml Aconitum D4, 0,15 ml Lachesis D10, 20 mg Ascorbinsäure


Immunfunktionen zu wenig bekannt ist. BODINET und FREUDENSTEIN (1999) liefern 

lediglich den Hinweis, dass B-Lymphozyten nicht allein eine verstärkte AK-Produktion 

initiieren können, sondern dass diese Vorgänge komplexere Mechanismen 

beinhalten. So sind die Makrophagen als antigenpräsentierende Zellen in diesen 

Prozess ebenso eingebunden wie die T-Helferzellen, die die Zytokine produzieren, 

die zur Proliferation und Differenzierung der B-Lymphozyten benötigt werden 

(BODINET und FREUDENSTEIN, 1999). Aufgrund des komplexen Zusammenspiels der 

verschiedenen Immunfunktionen kann man deshalb annehmen, dass die im 

vorliegenden Versuch erzielte Stimulation dieses spezifischen Parameters auf einer 

Stimulation des gesamten Abwehrsystems beruht. 

Mit vorliegendem Versuch konnte gezeigt werden, dass Echinacea auch bei 

peroraler Applikation immunstimulatorisch wirkt. Dies ist für die landwirtschaftliche 

Praxis von größerer Relevanz, da in vielen vorausgegangenen Untersuchungen 

Echinacea in injizierter Form verabreicht wurde und somit die Handhabung und 

Applikation im landwirtschaftlichen Betrieb eher kompliziert wäre. Überraschend war, 

dass es zwischen den eingesetzten Echinacea-Präparaten keinen nennenswerten 

Wirkunterschied gab. Dies ist umso erstaunlicher, da sich die Produkte sowohl 

bezüglich der Cichoriensäure- und Alkamidgehalte, der Herstellung und 

Verarbeitung, als auch bezüglich des Standortes und der Lagerung unterschieden 

und verschiedenen Chargen entstammten. In Bezugnahme auf BAUER (1997) und 

OSOWSKI (2000) zeigten selbst Produkte der gleichen Charge erhebliche 

Unterschiede bezüglich ihres Wirkungsspektrums. Das Ausbleiben eines erwarteten 

Wirkunterschieds ist aber aus praktischen Gesichtspunkten als sehr günstig zu 

betrachten, da das Grünmehl deutlich kostenextensiver und praxistauglicher ist als 

der Presssaft und damit für die Tierernährung eine günstige Alternative darstellt. 

Bezüglich der optimalen Dosierungshöhe lässt sich nach dieser Versuchsanordnung 

noch keine präzise Aussage treffen, da es keine weiteren Vergleichsgruppen gab. 

Aufgrund der hier erzielten Ergebnisse und den Ergebnissen aus den 

vorausgegangenen Versuchen kann aber geschlossen werden, dass das Optimum 

eher im unteren Dosierungslevel anzusetzen ist. Die Klärung dieses Sachverhalts 

sowie die Ermittlung der maximalen Effizienz der Echinacea-Zulage, die eventuell 

auch von der Applikationsdauer oder sonstigen Zeitfaktoren abhängig ist, bleibt 

weiteren Untersuchungen vorbehalten.


5.6.3 Rotes Blutbild, Leukozytenkonzentration und Differentialblutbild 

Hämatologische Parameter werden durch zahlreiche endo- und exogene Faktoren 

beeinflusst. Als deren wichtigste gelten Rasse, Ernährung, Alter, Nutzung, 

Erkrankungen des Tieres und die Jahreszeit (MÄDE und WUJANZ, 1996). Da in der 

vorliegenden Arbeit diese Varianzfaktoren gleichmäßig über alle Behandlungen 

verteilt bzw. ausgeschaltet waren, diente die Untersuchung der Blutparameter 

erstens dem Zweck, den Gesundheitsstatus und die Abwehrlage des Tieres über den 

Versuchszeitraum zu überprüfen. Zweitens sollte der eventuelle Einfluss der 

Echinacea-Präparate auf diese klinisch-chemischen Blutparameter untersucht 

werden. Üblicherweise werden im Rahmen immunologischer Screenings 

insbesondere Parameter des weißen Blutbildes, aber auch die des roten Blutbildes 

miterfasst, da sie als sensible Messgrößen Auskunft über physiologische bzw. z.T. 

auch immunologische Veränderungen im Organismus geben (ENBERGS und 

WOESTMANN, 1986; JURCIC et al., 1989). 

Als Parameter des roten Blutbildes wurden in der vorliegenden Arbeit die 

Erythrozytenkonzentration, der Hämoglobingehalt sowie der Hämatokritwert erfasst. 

In den Untersuchungen zum weißen Blutbild der Versuchstiere wurde sowohl die 

Gesamtleukozytenkonzentration als auch die Zusammensetzung der Leukozytenfraktion, 

also der Anteil an Lymphozyten, neutrophilen, eosinophilen und basophilen 

Granulozyten und Monozyten bestimmt. Diese hämatologischen Parameter wurden 

bei jeder Blutentnahme im Sauenversuch, Ferkelversuch I und Schweinemastversuch 

untersucht. 

Im Sauenversuch konnte bezüglich der Leukozytenkonzentration weder ein Einfluss 

der Echinacea-Zulage noch des Messzeitpunktes festgehalten werden. Im 

Versuchsmittel über alle Behandlungen und Messtermine wurde eine Leukozytenzahl 

von 15,9 *10 9 /l ermittelt. Damit lagen die mittleren Leukozytenkonzentrationen in den 

in der Literatur angegebenen Referenzbereichen (KRAFT und DÜRR, 1997, WALDMANN 

und WENDT, 2001). Abweichungen vom Referenzbereich, die bei einzelnen Tieren 

auftraten waren nicht mit dem Auftreten klinischer Symptome korreliert. Im 

Differentialblutbild zeigte sich ebenfalls kein Unterschied zwischen den 

Behandlungen, allerdings trat postpartal bei allen Sauen eine relative und absolute 

Neutrophilie sowie eine relative und absolute Lymphopenie auf, die, wie auch


MCCAULEY und HARTMANN (1983) sowie DELGADO et al. (1994) erwähnen, auf die 

physiologischen Einflüsse der Geburt zurückzuführen waren. Ansonsten lagen die 

erfassten Werte in der biologischen Schwankungsbreite, Einzeltierdaten wichen 

teilweise, allerdings unabhängig von der Behandlung vom Normalbereich ab, wie aus 

den Anhangstabellen 33 bis 39 zu entnehmen ist. Bei den Parametern des roten 

Blutbildes konnten gleichfalls keine Differenzen zwischen den Versuchsgruppen 

festgestellt werden. Der Hämoglobingehalt sowie der Hämatokritwert befanden sich 

im physiologischen Bereich, während sich die Erythrozytengehalte z.T. im schwach 

anämischen Bereich bewegten. Dieses Phänomen trat aber unabhängig von der 

Behandlung und vom Messzeitpunkt auf. Bei den säugenden Ferkeln, die beim 

Versuchsende hinsichtlich dieser hämatologischen Parameter untersucht wurden, 

konnte gleichfalls kein Behandlungseffekt nachgewiesen werden. Die mittleren 

Messwerte lagen sowohl bei den Daten zum roten Blutbild, als auch bei den Daten 

zum weißen Blutbild in dem von KRAFT und DÜRR (1997) sowie WALDMANN und 

WENDT (2001) angegebenen Referenzbereich. Allerdings befand sich die 

Leukozytenkonzentration im Blut der Ferkel mit durchschnittlich 20,3 *10 9 /l im oberen 

Bereich für hämatologische Normalwerte. Entsprechend den Untersuchungen von 

REICHEL (1963) an Schweinen unterschiedlicher Altersstufen sind normalerweise bei 

gesunden Ferkeln im Alter von 4 Wochen Leukozytenkonzentrationen im Bereich von 

10 bis 14 *10 9 /l zu erwarten. Die erhöhten Werte dürften aber, wie KRAFT und DÜRR 

(1997) angeben, auf das Einwirken von Stressoren im Zusammenhang mit der 

Blutentnahme zurückzuführen sein. 

Auch im Ferkelversuch I ließ sich kein Einfluss der Behandlung – weder bei den 

Parametern des roten Blutbildes und der Leukozytenkonzentration noch beim 

Differentialblutbild – nachweisen. Weder die Echinacea-Zulage noch die alimentäre 

Antibiotikagabe zeigte in diesem Versuch einen Effekt auf diese hämatologischen 

Parameter. Alle erfassten Gruppenmittelwerte des roten und weißen Blutbildes 

bewegten sich im Referenzbereich, lediglich beim Differentialblutbild zeigten zwei 

Tiere eine leichte Neutropenie bei gleichzeitiger Lymphozytosis, allerdings ohne 

auffällige Klinik. 

Im Schweinemastversuch konnten aufgrund der wöchentlichen Blutentnahme 

Veränderungen im Blutbild unmittelbar aufgezeigt werden. Allerdings verdeutlichen 

die Analysenergebnisse, dass auch hier weder bei den Parametern des roten noch


des weißen Blutbildes Unterschiede zwischen Kontrollgruppe und Versuchsgruppen 

einerseits bzw. zwischen beiden Versuchsgruppen andererseits auftraten. Demnach 

konnte auch in diesem Versuch ein Einfluss der Echinacea-Zulage – unabhängig von 

der Art des Echinacea-Präparates – auf diese Blutparameter ausgeschlossen 

werden. Mit Ausnahme der Leukozytenkonzentration lagen alle Gruppenmittelwerte 

des roten und weißen Blutbildes in dem von KRAFT und DÜRR (1997) bzw. WALDMANN 

und WENDT (2001) angegebenen physiologischen Bereich für hämatologische 

Normalwerte. Die Konzentration an weißen Blutkörperchen war prinzipiell mit im 

Mittel 21,6 *10 9 /l über alle Gruppen und Blutentnahmetermine an der Obergrenze 

des Referenzbereiches. An einigen Blutentnahmeterminen konnte sogar im Gruppenmittel 

ein marginaler Anstieg der Leukozytenzahlen über die obere Grenze des 

Referenzbereiches verzeichnet werden, bei einzelnen Tieren manifestierte sich dies, 

wie aus den Anhangstabellen 56 bis 62 zu entnehmen ist, sogar in einer absoluten 

Leukozytosis. Die Verschiebung der Leukozytenzahlen dürfte nach KRAFT und DÜRR 

(1997) auch in diesem Versuch wieder durch die Zwangsmaßnahmen bei der 

Blutentnahme und den damit verbundenen Stress bedingt sein, zumal bezüglich der 

Klinik keine Auffälligkeiten zu verzeichnen waren. 

Übereinstimmend konnte somit in den vorliegenden Versuchen gezeigt werden, dass 

sich die alimentäre Echinacea-Zulage nicht auf die Zusammensetzung der erfassten 

Parameter des roten und weißen Blutbildes auswirkt. Unterschiede im 

Gesundheitsstatus bzw. der Abwehrlage der Versuchstiere, die auch anhand dieser 

Messgrößen, insbesondere den Parametern des weißen Blutbildes dokumentiert 

werden sollten, konnten gleichfalls nicht nachgewiesen werden. 

WOESTMANN (1986) schloss mit einem an Kaninchen durchgeführten Versuch 

entsprechend der in der vorliegenden Arbeit erzielten Ergebnisse gleichfalls einen 

Einfluss der Echinacea-Zulage auf die Gesamtleukozytenzahl der Versuchstiere aus, 

stellte aber bedingt durch die mehrfache s.c. Echinacea angustifolia-Applikation bei 

den Kaninchen gleichzeitig eine erhöhte Chemilumineszenz-Rate der Leukozyten 

und somit eine gesteigerte Phagozytose-Kapazität fest. Damit trat bei den 

Versuchstieren die Stimulation eines Faktors der unspezifischen Abwehr ein, 

während gleichzeitig die Leukozytenzahlen im physiologischen Bereich und 

unbeeinflusst blieben. Diese Ergebnisse decken sich mit den Ergebnissen aus dem 

vorliegenden Schweinemastversuch, in dem die Erhöhung der spezifischen AK-Titer


eine Verbesserung des Immunstatus implizierte, während gleichzeitig alle 

hämatologischen Parameter unbeeinflusst blieben. STAHL et al. (1989) untersuchten 

an DL x Pietrain-Kreuzungsschweinen in einem einwöchigen in vivo Versuch analog 

zur vorliegenden Arbeit die Wirkung eines i.m. applizierten Echinacea-haltigen 

Kombinationspräparates 1 und stellten dabei fest, dass an allen Versuchstagen die 

Werte des weißen Blutbildes im Normalbereich lagen. Gleichzeitig war analog zu der 

Arbeit von WOESTMANN (1986) die Phagozytoseaktivität nach der Echinacea- 

Applikation erhöht, d.h. es konnte eine Stimulation des Immunsystems ohne 

Veränderung des Differentialblutbildes bzw. der Gesamtleukozytenzahl nachgewiesen 

werden. In Probandenstudien, in denen die Auswirkung eines Echinacea- 

Kombinationspräparates 2 auf die Granulozytenphagozytose festgestellt werden 

sollte, konnten WAGNER et al. (1986) sowie JURCIC et al. (1989) bei gesteigerter 

Phagozytoseleistung wiederum keine Veränderung der mitgetesteten hämatologischen 

Parameter durch die Versuchsfaktoren feststellen. 

Im Gegensatz dazu dokumentierte PEARSON (2000) in einer 12-wöchigen 

Untersuchung an Pferden durch eine Echinacea-Applikation 3 sowohl eine 

Veränderung im roten als auch im weißen Blutbild. Bei diesen Untersuchungen 

durchlief jedes Versuchstier sowohl die Kontroll- als auch die Applikationsphase, so 

dass ein direkter Vergleich innerhalb jedes einzelnen Tieres möglich war. Während 

der Echinacea-Applikationsphase kam es dabei zu einer signifikanten Erhöhung der 

Erthrozytenkonzentration und des Hämoglobingehaltes. Gleichzeitig war die Zahl der 

Lymphozyten signifikant angestiegen, während die neutrophilen Granulozyten im Blut 

signifikant reduziert waren, da sie vermutlich zur Infektionsabwehr aus dem Blut ins 

periphere Gewebe rekrutiert wurden. Für die in diesem Zusammenhang gesteigerte 

Abwehr gegen Pathogene spricht auch die im Vergleich zur Kontrollgruppe erhöhte 

in vitro Phagozytose-Kapazität der Neutrophilen, die aus dem Blut der Echi-Fend ® - 

Tiere isoliert wurden. Die Ergebnisse von PEARSON (2000) stehen damit im 

Widerspruch zu den bisherigen Literaturberichten, in denen auch ohne Verschiebung 

der Neutrophilen eine verbesserte Phagozytoseleistung beobachtet wurde. 

1 2 ml Influex® (Echinacea angustifolia D3: 400 mg, Eupatorium perfoliatum D3: 200 mg, Gelsemium 

sempervirens D3: 200 mg, Lachesis muta D10: 300 mg) 

2 1 ml enthält: Echinacea angustifolia D1 0,2 ml, Lachesis D10 0,15 ml, Eupatorium perfoliatum D3, 

0,1 ml, Gelsemium D4, 0,1 ml, Aconitum D4, 0,15 ml, Ascorbinsäure, 20 mg 

3 Echi-Fend


Aufgrund der Ergebnisse aus vorliegender Arbeit und der Literatur kann man davon 

ausgehen, dass Echinacea-Zulagen unabhängig von der Dosierung sowie den 

Cichoriensäure- und Alkamidgehalten zumeist keine direkte Auswirkung auf die 

hämatologischen Parameter zeigen, dies obwohl sogar die Stimulation von 

immunologischen Parametern nachgewiesen wurde. In den beschriebenen 

Versuchen konnten darüber hinaus auch keine positiven Effekte der Echinacea- 

Zulage auf den Gesundheitsstatus der Tiere berichtet werden. Vermutlich lässt sich 

dies durch die guten hygienischen Bedingungen bei der Versuchsdurchführung 

erklären. Eventuell lassen sich bei diesen Parametern unter praktischen 

Bedingungen andere Ergebnisse erzielen, da auch die Antibiotika-Tiere – entgegen 

der Erwartung – keine Beeinflussung des Gesundheitszustands zeigten. Wichtig ist 

zudem, dass sich die erfassten hämatologischen Parameter im physiologischen 

Bereich bewegten. Lediglich im Ferkelversuch I und im Schweinemastversuch kam 

es z.T zu einer Leukozytose, die aber entsprechend den Erläuterungen von STAHL 

(1988) sowie KRAFT und DÜRR (1997) sicherlich durch die Zwangsmaßnahmen und 

andere Stressoren im Zusammenhang mit der Blutentnahme bedingt waren. 

WALDMANN und WENDT (2001) geben an, dass psychischer Stress allein zu einem 

sofortigen Anstieg aller Blutzellen infolge der Adrenalinausschüttung und 

Milzentleerung führt. In Verbindung mit physischer Belastung kommt es sogar sehr 

kurzfristig zu sehr starken Veränderungen zahlreicher Blutmesswerte. 

Blutentnahmestress, also die Kombination aus psychischer und physischer 

Belastung durch das unvermeidbare Anbinden bei der Blutentnahme ist demnach die 

bedeutsamste Ursache physiologischer Variation der Blutmesswerte beim Schwein. 

Demgegenüber spielen andere Ursachen wie Fütterung, Tageszeit, Geschlecht etc. 

nur eine untergeordnete Rolle (WALDMANN und WENDT 2001). Die Verschiebungen im 

peripartalen Blutbild der Sauen in für diese Spezies normalerweise pathologische 

Bereiche war zu diesem Zeitpunkt bedingt durch die gravierenden physiologischen 

Veränderungen der Geburt normal (DELGADO et al., 1994). Eine Korrelation zwischen 

Verschiebungen im Blutbild und dem Auftreten von pathologischen Zuständen 

konnte generell nicht festgestellt werden.


5.6.4 Aktivität der Transaminasen und der alkalischen Phosphatase 

Die Analyse der Aktivität bestimmter Enzyme im Blutplasma (Plasmaenzyme) liefert 

einen Hinweis über den Gesundheitszustand bzw. die Funktionsfähigkeit bestimmter 

Organe, insbesondere der Leber als zentrales Stoffwechselorgan (GÜRTLER et al., 

1989). Pathologische Veränderungen in der Aktivität der Plasmaenzyme treten 

sowohl bei primären Organerkrankungen bzw. als Folge anderer Organkrankheiten 

und Funktionsstörungen und Mangelsituationen als auch durch medikamentöse 

Induktion auf; letzteres gilt insbesondere für die alkalische Phosphatase (KRAFT und 

DÜRR, 1997). Die Messung der Enzymaktivität stellt damit einen sensiblen 

Messparameter, insbesondere zur Überprüfung der pharmakologischen Wirkung des 

angewandten Arzneipflanzenpräparates dar, da mit diesem Parameter auch 

eventuelle durch Echinacea induzierte Irritationen im Stoffwechsel detektiert werden 

können. Im Rahmen der vorliegenden Arbeit wurden deshalb die Aktivitäten der 

Alanin-Aminotransferase (ALT), der Aspartat-Aminotransferase (AST), der Gamma- 

Glutamyltransferase (y-GT) sowie der alkalischen Phosphatase (ALP) im 

Zuchtsauenversuch sowie im Ferkelversuch I routinemäßig bei jeder Blutentnahme 

untersucht. D.h. bei den Zuchtsauen erfolgte die Aktivitätsbestimmung zu 

Versuchsbeginn am 85. Trächtigkeitstag, post partum sowie nach 28-tägiger 

Laktationsphase. Bei den säugenden Ferkeln wurden diese Enzymaktivitäten 

lediglich zum Zeitpunkt des Absetzens untersucht, im Ferkelversuch I erfolgte die 

Bestimmung der Plasmaenzymaktivitäten nur am Versuchsende, nach 6-wöchiger 

Versuchsphase. 

Sowohl bei den Sauen und ihren säugenden Ferkeln, als auch bei den Ferkeln aus 

Ferkelversuch I konnte bei keinem Blutentnahmezeitpunkt ein Einfluss der 

Versuchsfaktoren dokumentiert werden. Entsprechend der Angaben von MERK 

(1992) lagen die ermittelten Aktivitäten der ALT, AST und y-GT für die Sauen und 

Ferkel bei jeder Blutentnahme im physiologischen Bereich. Auch die Aktivität der 

ALP befand sich für die Sauen und Ferkel in dem von KRAFT und DÜRR (1997) 

aufgezeigten Referenzbereich. Da die ALP in den Osteoblasten enthalten ist, 

besitzen Jungtiere, wie die Ergebnisse zur ALP-Aktivität der Ferkel in vorliegender 

Arbeit gleichfalls zeigen, eine wesentlich höhere Aktivität dieses Enzyms als


Erwachsene (KRAFT und DÜRR, 1997). Bei den Sauen kam es im Versuchsverlauf 

unabhängig von der Behandlung zu geringfügigen Verschiebungen der 

Enzymaktivitäten. Diese Veränderungen sind wohl auf die physiologischen Einflüsse 

im Rahmen der Geburt und Laktation zurückzuführen (SEUTTEER 1995). 

Übereinstimmend kann festgehalten werden, dass es weder durch die Echinacea- 

Applikation noch die alimentäre Antibiotika-Gabe zu einer Beeinflussung der 

berücksichtigten Plasmaenzymaktivitäten kam, so dass definitiv auch stoffwechselirritierende 

Einflüsse dieser Arzneipflanze auf den Organismus ausgeschlossen 

werden können. Aufgrund fehlender Literaturangaben ist eine Diskussion der hier 

erzielten Ergebnisse schwierig. Lediglich WAGNER et al. (1986) bestimmten in ihren 

Untersuchungen zur Beeinflussung der Phagozytose durch ein Echinacea- 

Kombinationspräparat 1 die Aktivitäten der im vorliegenden Versuch berücksichtigten 

Plasmaenzyme. Die Autoren konnten bei den Probanden gleichfalls keine 

Beeinflussung dieser klinisch-chemischen Parameter dokumentieren. Alle Messwerte 

bewegten sich wie WAGNER et al. (1986) angeben in der physiologischen 

Schwankungsbreite, was sich demnach mit den Ergebnissen der vorliegenden Arbeit 

deckt. 

1 1 ml enthält: Echinacea angustifolia D1 0,2 ml, Lachesis D10 0,15 ml, Eupatorium perfoliatum D3, 

0,1 ml, Gelsemium D4, 0,1 ml, Aconitum D4, 0,15 ml, Ascorbinsäure, 20 mg

Schlussbetrachtung 165 

6 Schlussbetrachtung 

Da vergleichende Untersuchungen über die Wirkung von Echinacea-Ganzpflanzenbestandteilen 

nicht vorliegen, können aufgrund der z.T. sehr heterogenen 

Ergebnisse in der vorliegenden Arbeit zum jetzigen Zeitpunkt noch keine 

abschließenden Aussagen über die Bedeutung bzw. Wirksamkeit von nutritiven 

Echinacea-Grünmehl-Zulagen bei landwirtschaftlichen Nutztieren gemacht werden. 

Dennoch lässt sich aus den Versuchsergebnissen ableiten, dass Echinacea 

auch bei peroraler Applikation an Schweine immunstimulatorisch wirkt, wobei 

alimentäre Echinacea-Grünmehl-Zulagen an wachsende Schweine offensichtlich 

hinsichtlich der Wirksamkeit mit einem konventionellen, in der Humanmedizin 

üblichen Echinacea-Präparat (Echinacea-Presssaft) vergleichbar sind. Allerdings 

scheint dieser Effekt v.a. von der Echinacea-Dosierungshöhe und weniger von den 

angeblich immunrelevanten, häufig diskutierten, Cichoriensäure- bzw. Alkamidgehalten 

(BAUER, 1990,1997) abhängig zu sein. Diese These wird dadurch bekräftigt, 

dass sich die in den verschiedenen Versuchen eingesetzten Echinacea-Präparate 

bezüglich der Dosierung (bezogen auf die verwendete Pflanzenfrischmasse) und 

demzufolge bezüglich der qualitativen und quantitativen Wirkung auf den 

Organismus unterschieden, während bei den Präparaten im Schweinemastversuch 

bei gleicher Dosierungshöhe trotz differierender Inhaltsstoffkonzentrationen keine 

Wirkunterschiede auftraten. Da die wirkungsgleichen Echinacea-Zubereitungen im 

Schweinemastversuch unterschiedlichen Echinacea-Chargen entstammten, wird mit 

diesem Versuch der Einfluss der Charge, der von BAUER (1997) sowie OSOWSKI et al. 

(2000) als Varianzursache der Echinacea-Wirkung beschrieben wurde, ebenfalls 

ausgeschlossen. 

Wie aus den Versuchsergebnissen abgeleitet werden kann, war mit einer Stimulation 

des Immunsystems per se eine tendenziell positive Beeinflussung des tierischen 

Leistungsniveaus korreliert, die sich bei den täglichen Zunahmen auf 3 bis 4% und 

beim Futteraufwand auf 3% quantifizieren ließ. Damit wurden durch die alimentäre 

Echinacea-Applikation diese Leistungsparameter in gleichem Maße wie durch 

konventionelle Fütterungsantibiotika gesteigert (GROPP und BIRZER, 1991; ROSEN, 

1995), so dass hinsichtlich dieser Parameter eine Substitution der umstrittenen, 

antimikrobiellen Futterzusatzstoffe durch Echinacea möglich erscheint.

166 Schlussbetrachtung 

Inwieweit sich das Echinacea-Grünmehl zur Krankheitsprophylaxe bzw. Therapie von 

leichteren bis mittelschweren Infektionen eignet, konnte mit der vorliegenden Arbeit 

nicht abgeklärt werden, da der Gesundheitsstatus der Versuchstiere bzw. die 

hygienischen Bedingungen während der Versuchsphase prinzipiell hoch waren. Auch 

im Zuchtsauenversuch, in dem gelegentliche Krankheitsfälle auftraten, zeigte das 

Echinacea-Grünmehl bezüglich der Inzidenz und Schwere von Infektionen keinen 

Einfluss, allerdings blieb in diesem Versuch prinzipiell – möglicherweise aufgrund der 

nicht optimal getroffenen Dosierungshöhe – ein Effekt der Echinacea-Zulage aus. 

Um die prophylaktische und therapeutische Wirkung des Grünmehls zu analysieren, 

bedarf es daher einer Erweiterung der Datenbasis, insbesondere unter praktischen 

Bedingungen. 

Bezüglich der optimalen Dosierungshöhe von Echinacea-Grünmehl lässt sich 

momentan noch keine präzise Aussage treffen. Aus den in der vorliegenden Arbeit 

erzielten Ergebnissen, insbesondere aus den Ergebnissen des Schweinemastversuchs, 

kann aber geschlossen werden, dass das Optimum der Echinacea-Zulage 

im Futter eher im unteren Dosierungslevel, d.h. in einer Größenordnung von 0,1 bis 

0,2% anzusetzen ist. Die Klärung dieses Sachverhalts sowie die Eruierung der 

maximalen Effizienz der Echinacea-Zulage, die eventuell auch von der 

Applikationsdauer abhängig ist, bleibt daher weiteren Untersuchungen vorbehalten.

Zusammenfassung 167 

7 Zusammenfasssung 

In der vorliegenden Arbeit wurde der Einfluss der Arzneipflanze Echinacea purpurea 

(L.) MOENCH, die in der Humanmedizin seit langem mit Erfolg zur 

Paramunitätsinduktion sowie zur Therapie von leichteren bis mittelschweren 

Infektionen insbesondere des Respirationstraktes und des Urogenitaltraktes 

eingesetzt wird, auf ausgewählte Leistungs- und immunologische Parameter sowie 

den Gesundheitsstatus landwirtschaftlicher Nutztiere wie Schwein und Geflügel 

untersucht. 

Als Echinacea-Zubereitung wurden den Versuchstieren die oberirdischen, 

getrockneten und zerkleinerten Bestandteile dieser Pflanze in Form von Grünmehl 

alimentär zugelegt, da diese Art der Echinacea-Applikation in der landwirtschaftlichen 

Tierhaltung aus ökonomischen und produktionstechnischen Aspekten am 

sinnvollsten erscheint, bislang aber nicht berücksichtigt wurde. D.h. mit dieser Arbeit 

sollte die Wirksamkeit dieser Echinacea-Darreichungsform bei landwirtschaftlichen 

Nutztieren geklärt werden. Darüber hinaus sollte der Fragestellung nachgegangen 

werden, ob das eingesetzte Echinacea-Grünmehl konventionelle Fütterungs- 

Antibiotika substituieren kann bzw. ob durch die alimentäre Echinacea-Vorlage eine 

Reduktion des therapeutischen und/ oder prophylaktischen Antibiotika-Einsatzes 

möglich ist. 

Zu diesem Zweck wurden zwei Fütterungsversuche mit Broilern, zwei 

Fütterungsversuche mit Absetzferkeln, ein Fütterungsversuch mit hochtragenden und 

laktierenden Zuchtsauen sowie ein Fütterungsversuch mit Mastschweinen 

durchgeführt. Als Messkriterien dienten bei diesen Versuchen jeweils die 

Gewichtsentwicklung sowie die Futteraufnahme und -verwertung der Versuchstiere. 

Beim Zuchtsauenversuch, Schweinemastversuch sowie beim 1. Ferkelversuch 

wurden außerdem hämatologische und immunologische Parameter wie das Blutbild, 

die Aktivität ausgewählter Plasmaenzyme, die Lymphozytenproliferation sowie die 

Ausbildung spezifischer Antikörper-Titer im Blutplasma untersucht. Bei den 

Zuchtsauen wurde darüber hinaus der Rohprotein-Gehalt sowie der Gehalt an 

Immunglobulin G im Kolostrum ermittelt.

168 Zusammenfassung 

Broilermastversuch I und II 

Broilerversuch I wurde mit insgesamt 360, Broilerversuch II mit 180 Mastküken, die 

jeweils auf 36 (9 Behandlungsgruppen mit jeweils 4 Wiederholungen, Versuch I) bzw. 

18 Käfigeinheiten (3 Behandlungsgruppen mit jeweils 6 Wiederholungen, Versuch II) 

verteilt wurden, über einen Zeitraum von fünf Wochen durchgeführt. 

Im Broilerversuch I wurden den Küken 9 unterschiedliche, in den Nährstoff- und 

Energiegehalten bedarfsgerechte Rationen zur ad libitum Aufnahme vorgelegt. Die 

Futtermischungen unterschieden sich ausschließlich in ihren Gehalten an Echinacea 

purpurea-Grünmehl (0, 0,6, 1,2, 1,8, 2,4, 3,0, 3,6, 4,2, 4,8%). Im Broilerversuch II 

wurden 3 verschiedene, ebenfalls bedarfsgerechte Versuchsfutter konzipiert: Die 

Tiere erhielten entweder die Negativkontrolle (0% Echinacea), die Positivkontrolle (10 

mg Flavomycin je kg Futter, AB-Gruppe) oder eine Ration mit 2,4% Echinacea- 

Grünmehl ebenfalls ad libitum. 

Beim Gesundheitsstatus sowie der Kotkonsistenz, die täglich erfasst wurden, 

ergaben sich in beiden Versuchen keine Unterschiede, generell war der 

Gesundheitsstatus der Broiler sehr hoch. Die Gewichtsentwicklung, die wöchentlich 

am Einzeltier ermittelt wurde, zeigte im 1. Versuch keinen Einfluss der Echinacea- 

Zulage, das mittlere Versuchsendgewicht lag hier bei 1951 g. Im 2. Versuch wogen 

die Broiler zu Versuchsende durchschnittlich 1810 g, was in etwa dem 

Durchschnittsgewicht der unsupplementierten Broiler (1816 g, Gruppe I) entsprach. 

Die AB-supplementierten Tiere waren beiden Vergleichsgruppen hinsichtlich der 

Lebendmasseentwicklung über die gesamte Versuchsphase z.T. signifikant 

überlegen (mittleres Endgewicht 1895 g), während die Echinacea-Gruppe im Mittel 

sogar einen um 5% schlechteren Gewichtszuwachs aufwies als die Negativkontrolle. 

Im Broilerversuch I ergaben sich weder bei der Futteraufnahme (im Mittel 2881 g 

Futter pro Tier), noch bei der Futterverwertung Unterschiede. Im 2. Broilerversuch 

verbrauchten die Tiere im Mittel 2840 g Futter, wobei die Echinacea-Tiere mit 2713 g 

Gesamtfutterverbrauch signifikant weniger verzehrten als die Kontrolltiere (2880 g, 

Negativkontrolle; 2995 g Positivkontrolle). Hinsichtlich der Futterverwertung ergaben 

sich keine Unterschiede zwischen Echinacea- und unsupplementierten Broilern, die 

AB-Tiere zeigten dagegen eine um 3% verbesserte Futterausnutzung (1,53 kg Futter 

je kg Zuwachs).


Ferkelversuch I 

Für den 6-wöchigen Ferkelversuch I standen 36 Absetzferkel (Einstallungsgewicht 

5,8 kg) zur Verfügung, die gleichmäßig auf drei Behandlungen mit jeweils 12 

Wiederholungen verteilt wurden. Den Ferkeln wurde in der 1. Versuchshälfte ein 

Prestarterfutter vorgelegt, anschließend erhielten sie Ferkelaufzuchtfutter I. Beide 

Versuchsfutter waren bezüglich der Nährstoff- und Energiegehalte bedarfsdeckend. 

Es wurden vom Prestarter- und Ferkelaufzuchtfutter I jeweils 3 verschiedene 

Versuchsmischungen hergestellt, d.h. die Ferkel erhielten analog zum Broilerversuch 

II entweder die Negativkontrolle (0% Echinacea), die Positivkontrolle (20 mg 

Flavomycin je kg Futter, AB-Gruppe) oder eine Ration mit 1,8% Echinacea-Grünmehl 

ebenfalls ad libitum. Die Tiere wurden in Einzeltierkäfigen gehalten. 

Der Gesundheitsstatus sowie die Kotkonsistenz der Tiere, die täglich erfasst wurden, 

wurden durch die Versuchsfaktoren nicht beeinflusst. Prinzipiell wiesen die Tiere 

einen sehr guten Gesundheitsstatus auf. Bezüglich der Gewichtsentwicklung, die im 

wöchentlichen Rhythmus ermittelt wurde, ergaben sich keine Unterschiede zwischen 

den Echinacea-Tieren (mittlere TZ 395 g) und den unsupplementierten Tieren 

(mittlere TZ 389 g), die AB-supplementierten Tiere erreichten allerdings mit mittleren 

Tageszunahmen von 408 g ein geringfügig erhöhtes Versuchsendgewicht, das im 

Versuchsmittel über alle Behandlungen bei 22,1 kg lag. Die Höhe der 

Futteraufnahme (Versuchsmittel 654 g je Tier), die ebenfalls wöchentlich erfasst 

wurde, verlief analog zur Lebendmasse-Entwicklung, d.h. es trat kein Einfluss der 

Grünmehlzulage auf. Hinsichtlich der Futterverwertung wiesen die Echinacea-Tiere 

dagegen eine geringfügige (1,54) Überlegenheit zu den AB-Tieren (1,56) bzw. 

unsupplementierten Tieren (1,60) auf. 

Bei den hämatologischen Parametern, die lediglich am Versuchsende erfasst 

wurden, ergaben sich keine Unterschiede zwischen den Behandlungen. Darüber 

hinaus bewegten sich sowohl die Werte des roten Blutbildes (mittlere 

Erythrozytenkonzentration 7,0 10 12 /l, mittlerer Hämoglobingehalt 12,3 g/dl, mittlerer 

Hämatokritwert 40,3%), als auch die Werte des Differentialblutbildes (mittlere 

Leukozytenkonzentration 14,1*10 9 /l, mittlere Zusammensetzung der Leukozytenfraktion: 

76,0% Lymphozyten, 18,2% neutrophile Granulozyten, 3,5% eosinophile 

Granulozyten, 0,4% basophile Granulozyten und 1,9% Monozyten) im 

physiologischen Bereich. Genauso verhielt es sich mit den ermittelten Aktivitäten der


Plasmaenzyme (mittlere Aktivität der ALP 290,6 U/I, der ALT 25,9 U/I, der AST 17,7 

U/I, der y-GT 17,4 U/I). 

Der Stimulationsindex der Lymphozytenproliferation lag im Versuchsmittel bei 2,7, es 

konnte weder ein Effekt der Echinacea-Zulage noch des Fütterungsantibiotikums 

eruiert werden. 

Zuchtsauenversuch 

Im Zuchtsauenversuch, der jeweils vom 85. Trächtigkeitstag bis zum 28. 

Laktationstag durchgeführt wurde, wurden 36 Laktationen von 33 verschiedenen 

Sauen ausgewertet. Die Sauen wurden 3 Behandlungsgruppen zugeteilt. Vom 85. 

bis zum 110. Trächtigkeitstag erhielten die Sauen 2,6 kg eines Alleinfutters für 

tragende Sauen, ab dem 110. Trächtigkeitstag begann die Umstellung auf das 

Laktationsfutter, von dem je Tier nach langsamer, postpartaler Futtersteigerung 

maximal 6 kg täglich vorgelegt wurde. Trächtigkeits- und Laktationsfutter waren 

hinsichtlich des Nährstoff- und Energiegehaltes bedarfsdeckend. Sie variierten 

ausschließlich in ihren Gehalten an Echinacea-Grünmehl (Trächtigkeitsfutter: 0, 1,2, 

3,6%), wobei die Gehalte im Laktationsfutter (0, 0,5, 1,5%) aufgrund der höheren 

Futteraufnahme reduziert waren. Den Saugferkeln wurde ab dem 10. Laktationstag 

ein pelletiertes Ergänzungsfutter für Saugferkel zur ad libitum Aufnahme angeboten. 

Beim Gesundheitsstatus der Sauen, der täglich nicht nur visuell, sondern auch 

anhand der täglich gemessenen Körpertemperatur beurteilt werden konnte, ergaben 

sich keine Unterschiede zwischen den Gruppen. Allerdings traten bei einzelnen 

Tieren unabhängig von der Behandlung leichtere bis mittelschwere Infekte wie 

Endometritiden sowie Atem- und Harnwegsinfektionen auf. Der Gesundheitsstatus 

sowie die Kotkonsistenz der Ferkel wurden ebenfalls täglich ermittelt, Unterschiede 

zwischen den Gruppen konnten nicht beobachtet werden. 

Die Lebendmasse der Sauen wurde am 85. sowie 110. Trächtigkeitstag und beim 

Absetzen am 28. Laktationstag bestimmt. Zu Versuchsbeginn wogen die Tiere 

durchschnittlich 229 kg, beim Versuchsende 212 kg. Lediglich zwischen dem 85. und 

110. Trächtigkeitstag wiesen die Kontrolltiere einen nicht signifikanten, um 18% 

höheren durchschnittlichen täglichen Massezuwachs auf als die Vergleichstiere, 

ansonsten ergaben sich bei der Lebendmasse-Entwicklung der Sauen keine 

Unterschiede. Bei den Saugferkeln wurde das Gewicht innerhalb der ersten Stunden


post partum , am 14. sowie 28. Laktationstag festgestellt, es traten keine Differenzen 

auf. 

Die Sauen der Kontrollgruppe verzehrten in der 1. Laktationshälfte mit 4608 g/d 

durchschnittlich 8% mehr als die Echinacea-Tiere, aufgrund der hohen 

tierindividuellen Streuung konnte dieser Unterschied allerdings statistisch nicht 

abgesichert werden. In der 2. Laktationshälfte unterschieden sich die Behandlungen 

hinsichtlich der Futteraufnahme nicht mehr. Bezüglich der Beifutteraufnahme der 

Ferkel konnten keine Unterschiede verzeichnet werden, im Mittel wurden je Wurf 947 

g verzehrt. 

Die hämatologischen und immunologischen Parameter wurden bei den Sauen am 

85. Trächtigkeitstag, am ersten Tag post partum sowie beim Absetzen am 28. 

Laktationstag bestimmt, bei 2 Ferkeln jeden Wurfes wurden sie beim Absetzen 

erfasst. Hinsichtlich der hämatologischen Parameter, also des roten Blutbildes 

(Erythrozytenkonzentration, Hämoglobingehalt, Hämatokritwert), des Differentialblutbildes 

(Leukozytenkonzentration; Anteil der Lymphozyten, neutrophilen, 

eosinophilen und basophilen Granulozyten und Monozyten an der Leukozytenfraktion) 

sowie der Plasmaenzymaktivitäten (ALP, AST, ALT, y-GT) ergaben sich 

unabhängig vom Messzeitpunkt weder bei den Sauen noch bei den Ferkeln 

Unterschiede zwischen den Behandlungen, die Werte lagen im physiologischen 

Bereich. Auch der Stimulationsindex der Lymphozytenproliferation blieb von der 

Echinacea-Zulage sowohl bei den Sauen, als auch bei den Ferkeln unbeeinflusst. Zu 

Versuchsbeginn und -ende wiesen die Sauen einen mittleren Stimulationsindex von 

2,7 auf, während post partum im Mittel ein Index von 2,3 gemessen wurde. Der 

mittlere Stimulationsindex lag bei den Ferkeln bei 2,6. 

Innerhalb der ersten 2 bis 6 Stunden post partum wurde den Sauen Kolostrum 

entnommen, um den Rohprotein-Gehalt sowie den Gehalt an Immunglobulin G zu 

erfassen. Im Mittel enthielt Kolostrum 16,1% XP, während für die erfasste IgG1- 

Fraktion eine mittlere Extinktion von 0,33 vorlag. Ein Effekt der Echinacea-Applikation 

auf diese Messgrößen konnte ebenfalls ausgeschlossen werden.



Der zweite, vierwöchige Ferkelversuch wurde mit den abgesetzten Ferkeln von 

insgesamt 24 Sauen aus dem Zuchtsauenversuch durchgeführt, um eventuelle 

Auswirkungen der Echinacea-Zulage an das Muttertier auf die Vitalität der 

Nachkommen zu untersuchen. Alle Ferkel erfuhren folglich die gleiche Behandlung, 

wobei die Tiere eines Wurfes jeweils eine Versuchseinheit bildeten. 

Die Absetzferkel erhielten ein in den Nährstoff- und Energiegehalten bedarfsdeckendes 

Ferkelaufzuchtfutter I zur ad libitum Aufnahme. 

Als Parameter wurden täglich der Gesundheitsstatus, der sehr hoch war, und die 

Kotkonsistenz der Ferkel erfasst. Bei beiden Messgrößen zeigten sich keine 

Unterschiede. 

Wöchentlich wurde das Lebendgewicht der Einzeltiere ermittelt, das zu 

Versuchsbeginn bei durchschnittlich 7 kg und zu Versuchsende bei einheitlichen 15,1 

kg lag. 

Hinsichtlich der Futteraufnahme, die im Versuchsmittel bei 287 g je Tier und Tag lag, 

und die gruppenweise erfasst wurde, konnte gleichfalls ein Einfluss der Echinacea- 

Zulage an das Muttertier, der sich auf die Nachkommen auswirkt, ausgeschlossen 

werden. Die Nachkommen der Kontrolltiere nutzten dagegen das Futter bei einer 

mittleren Verwertung von 1,49 um nicht signifikante 5% besser aus als die 

Nachkommen der Echinacea-supplementierten Sauen. 

Schweinemastversuch 

Der Schweinemastversuch wurde mit 48 einzeln aufgestallten Mastschweinen 

(Einstallungsgewicht 32,3 kg; Alter 86 Tage), die gleichmäßig auf drei 

Behandlungsgruppen verteilt wurden, über einen Zeitraum von 9 Wochen 

durchgeführt. Dabei gliederte sich der Versuch in zwei Applikationsphasen (1. 

Applikationsphase: 1. bis einschließlich 3. Woche; 2. Applikationsphase: 7. bis 

einschließlich 9. Woche), in denen die Tiere eine perorale Echinacea-Zulage 

erhielten, sowie in eine Kontrollphase (4. bis einschließlich 6. Woche), in der in allen 

drei Gruppen keine Echinacea-Applikation erfolgte. Die Mastschweine erhielten in 

diesem Versuch neben dem bisher eingesetzten Echinacea-Grünmehl (Gruppe III) 

als Vergleichspräparat Echinacea-Presssaft (Gruppe II) bzw. keine Echinacea- 

Vorlage (Gruppe I).


Den Tieren wurde während der ersten Applikationsphase und der Kontrollphase 

Schweinemast-Alleinfutter I, während der zweiten Applikationsphase Schweinemast- 

Alleinfutter II, entsprechend der Lebendmasse rationiert, vorgelegt. Schweinemast- 

Alleinfutter I und II waren hinsichtlich der Nährstoff- und Energiegehalte 

bedarfsdeckend. 

Die Tiere der Kontrollgruppe und der Echinacea-Presssaft-Gruppe erhielten während 

der Applikationsphasen das gleiche Futter, allerdings wurden den Presssaft-Tieren 

bei jeder Mahlzeit 2 ml (1. Applikationsphase) bzw. 3 ml (2. Applikationsphase) 

Echinacea-Presssaft direkt auf das Futter dosiert. Die Tiere der Echinacea- 

Grünmehl-Gruppe (III) bekamen das gleiche Futter mit jeweils 0,15% Echinacea- 

Grünmehl. Während der Kontrollphase wurde allen Masttieren das gleiche Futter 

vorgelegt. 

Da als Versuchsparameter die Ausbildung der Rotlauf-AK-Titer untersucht wurde, 

war ein Kontakt mit dem entsprechenden Rotlauf-Antigen notwendig. Dazu wurden 

die Schweine am Ende der 1. Versuchswoche und entsprechend vier Wochen später 

mit einer handelsüblichen Rotlauf-Vakzine immunisiert. 

Der Gesundheitsstatus der Tiere, der ebenso wie die Kotkonsistenz täglich bewertet 

wurde war generell sehr hoch, Unterschiede zwischen den Gruppen konnten bei 

beiden Parametern nicht beobachtet werden. 

Hinsichtlich der Lebendmasse-Entwicklung, die wöchentlich am Einzeltier erfasst 

wurde, zeigten die Echinacea-Tiere ab der 6. Woche eine marginale Überlegenheit 

im Vergleich zu den Kontrolltieren. Diese Überlegenheit spiegelte sich auch in der 

Höhe der täglichen Zunahmen wieder, die bei den Echinacea-Gruppen im 

Versuchsmittel bei 828 g im Vergleich zu 797 g bei den Kontrolltieren lagen. 

Im Versuchsmittel nahmen die Mastschweine 2012 g Futter täglich auf, wobei keine 

Behandlungsunterschiede nachgewiesen werden konnten. Die Futteraufnahme 

wurde am Einzeltier für jede Woche erfasst. Aufgrund des unterschiedlichen 

Zunahmenniveaus ergab sich demnach bei den Echinacea-Tieren im Versuchsmittel 

eine verbesserte Futterverwertung gegenüber den unsupplementierten Schweinen, 

was sich bereits ab der sechsten Versuchswoche andeutete. Im Versuchsmittel war 

die Futterverwertung der Echinacea-Presssaft-Tiere mit 2,43 signifikant gegenüber 

den Kontrolltieren (2,51) verbessert, der Unterschied zur Echinacea-Grünmehl- 

Gruppe (2,45) war dagegen nicht mehr signifikant.


Die hämatologischen Parameter (rotes Blutbild, Differentialblutbild) bewegten sich im 

physiologischen Bereich und blieben von den Versuchsfaktoren unbeeinflusst. 

Die Rotlauf-Antikörper-Titer der Schweine wurden zu Versuchsbeginn sowie am 

Ende jeder Versuchswoche mit Ausnahme der 4. und 5. Woche erfasst. Nach der 6. 

Woche und dann durchgehend bis zum Versuchsende trat eine signifikante 

Überlegenheit der Echinacea-supplementierten Tiere im Vergleich zu den 

Kontrolltieren hinsichtlich der Ausprägung der Rotlauf-AK-Titer auf, wobei dieser 

Effekt unabhängig vom Echinacea-Präparat war. Die höhere AK-Ausstattung der 

Echinacea-Tiere manifestierte sich gleichfalls im Versuchsmittel. So wiesen die 

Kräuter-supplementierten Tiere im Mittel über den gesamten Versuch 

durchschnittlich um 37% höhere Rotlauf-AK-Titer auf als die Kontrolltiere. Aufgrund 

der hohen tierindividuellen Effekte und der damit einhergehenden Standardabweichung 

war dieser Unterschied allerdings nicht signifikant. 

Zusammenfassend kann nun aus der vorliegenden Arbeit abgeleitet werden, dass 

aufgrund der z.T. heterogenen Ergebnisse in den beschriebenen Versuchen zum 

jetzigen Zeitpunkt noch keine abschließenden Aussagen über die umfassende 

Bedeutung bzw. Wirksamkeit von nutritiven Echinacea-Grünmehlzulagen bei 

landwirtschaftlichen Nutztieren gemacht werden können. Prinzipiell konnte aber 

gezeigt werden, dass Echinaceae bei Schweinen in Abhängigkeit von der 

Dosierungshöhe immunstimulatorisch wirken. 

Zur eindeutigen Klärung der Wirksamkeit des Echinacea-Grünmehls sowie zur 

Bestimmung der optimalen Dosierung bei landwirtschaftlichen Nutztieren bedarf es 

daher zukünftig einer Erweiterung der experimentellen Basis.

Literaturverzeichnis 175 

8 Literaturverzeichnis 

ANDERSSON, R., MORCILLO, L.L., SOMMER, H. (1997) : Untersuchungen über den 

Einsatz von homöopathischen Arzneimitteln bei der Behandlung und 

Prophylaxe subklinischer Mastitiden von Milchkühen, Tierärztl. Umschau 

52, 407-412 

ANETZHOFER, J. (1993) : Echinacea compositum ad us. vet. in der Therapie von 

Infektionskrankheiten, Biol. Tiermedizin 2, 46-60 

BARRETT, B., KIEFER, D., RABAGO, D. (1999) : Assessing the risks and benefits of 

herbal medicine: An overview of scientific evidence, Altern. Ther. 5, 40-49 

BAUER, R., JURCIC, K., PUHLMANN, J., WAGNER, H. (1988a) : Immunologische In-vivo- 

und In-vitro-Untersuchungen mit Echinacea-Extrakten, Arzneim.-Forsch./ 

Drug Research 38(I), 276-281 

BAUER, R., REMIGER, P., WAGNER, H. (1988b) : Echinacea – Vergleichende DC- und 

HPLC–Analyse der Herba–Drogen von Echinacea purpurea, Echinacea 

pallida und Echinacea angustifolia, Dtsch. Apoth. Ztg. 128, 174-180 

BAUER, R., WAGNER, H. (1988) : Echinacea – Der Sonnenhut – Stand der Forschung, 

Z. f. Phytother. 9, 151-159 

BAUER, R., REMIGER, P. (1989) : TLC and HPLC Analysis of alkamides in Echinacea 

drugs, Planta Med. 55, 367-371 

BAUER, R., REMIGER, P., JURCIC, K., WAGNER, H. (1989) : Beeinflussung der 

Phagozytoseaktivität durch Echinacea-Extrakte, Z. Phytother. 10, 43-48 

BAUER, R. (1990) : Echinacea – Handbuch für Ärzte, Apotheker und andere 

Naturwissenschaftler, Wiss. Verlagsgesellschaft Stuttgart


BAUER, R., WAGNER, H. (1991) : Echinacea species as potential immunostimulatory 

drugs. In: Wagner H., Farnsworth NR, eds. Economic and Medicinal Plant 

Research. Vol. 5, London Academic Press Limited, 253-321 

BAUER, R. (1994) : Echinacea – Eine Arzneidroge auf dem Weg zum rationalen 

Phytotherapeutikum, Dtsch. Apoth. Ztg. 134, 18-25 

BAUER, R. (1996) : Echinacea containing drugs - Effects and active constituents, Z. 

Ärztliche Fortbild. 90, 111-115 

BAUER, R. (1997) : Standardisierung von Echinacea purpurea-Presssaft auf 

Cichoriensäure und Alkamide, Z. Phytother. 18, 270-276 

BAUER, R., VOM HAGEN-PLETTENBERG, P. (1997) : HPLC method on the basis of 

cichoric acid and alkamides for the standardization of Echinacea purpurea 

preparations prepared from expressed juice, Z. Phytother. 19, 321-327 

BAUER, R. (1999) : Immunomodulatory Agents From Plants; Wagner H., Ed., 

Birkhäuser Verlag Basel, 41-88 

BECKER, H., HSIEH, W.Ch. (1985) : Chicoree-Säure und deren Derivate aus 

Echinacea-Arten, Z. Naturforsch. 40c, 585-587 

BERG, A., NORTHOFF, H., KÖNIG, D., WEINSTOCK, C., GRATHWOHL, D., PARNHAM, M.J., 

STUHLFAUTH, I., KEUL, J. (1998) : Influence of Echinacin® treatment on the 

exercise-induced immune response in athletes, J. of Clin. Res. 1, 367-380 

BEUSCHER, N., BODINET, C., WILLIGMANN, I., EGERT, D. (1995) : Immunmodulierende 

Eigenschaften von Wurzelextrakten verschiedener Echinacea-Arten, Z. f. 

Phytother. 16, 157-166 

BLASCHEK, W., DÖLL, M., FRANZ, G. (1998) : Echinacea-Polysaccharide, Z. Phytother. 

19, 255-262


BLECHA, F. (1988) : Immunomodulation: A means of disease prevention in stressed 

livestock, J.Anim.Sci. 66, 2084-2090 

BLUMENTHAL, M., Sen. Ed. (1998) : The Complete German Commission E Monographs, 

The American Botanical Council, Austin Texas 

BODINET, C., FREUDENSTEIN, J. (1999) : Effects of an orally applied aqueous-ethanolic 

extract of a mixture of Thujae occidentalis Herba, Baptisiae tinctoriae 

Radix, Echinaceae purpureae Radix and Echinaceae pallidae Radix on 

antibody response against sheep red blood cells in mice, Planta Medica 

65, 695-699 

BÖRNS, E. (1981) : Untersuchungen über die Wirksamkeit von Echinacin ® als 

einmalige s.c. verabreichte Zusatztherapie bei Erkrankungen junger 

Kälber, Diss. Tierärztl. Hochschule Hannover 

BOHLMANN, F., GRENZ, M. (1966) : Über die Inhaltsstoffe aus Echinacea-Arten, Chem. 

Ber. 99, 3197-3200 

BOYD, R.D., KENSINGER, R.S., HARRELL, R.J., BAUMAN, D.E. (1995) : Nutrient uptake 

and endocrine regulation of milk synthesis by mammary tissue of lactating 

sows, J. Anim. Sci. 73 (Suppl. 2), 36-56 

BRAUNIG, B. (1992) : Echinacea purpurea radix for strengthening the immune 

response in flu-like infections, Z. Phytother. 13, 7-13 

BREVOORT, P. (1998) : The booming U.S. botanical market: A new overview, 

Herbalgram 44, 33-46 

BÜSING, K.H. (1952) : Hyaluronidasehemmung durch Echinacin ® , Arzneim. Forsch. 2, 

467-469


BÜSING, K.H. (1958) : Die Beeinflussung des Properdin-Spiegels durch Extrakte aus 

Echinacea purpurea bei Kaninchen, Z. Immunitätsforsch. Exper. Ther. 

115, 169-176 

BÜTTNER, M. (1993) : Review: Principles of paramunization. Option and limits in 

veterinary medicine, Comp. Immun. Microbiol. Infect. Dis. 1, 1-10 

BURCK, H.-Chr. (1973) : Histologische Technik, Leitfaden für die Herstellung 

mikroskopischer Präparate in Unterricht und Praxis, 3. Aufl. Georg Thieme 

Verlag, Stuttgart 

BURGER, R.A., TORRES, A.R., WARREN, R.P., CALDWELL, V.D., HUGHES, B.G. (1997) : 

Echinacea-induced cytokine production by human macrophages, Int. J. 

Immunopharmacol. 19, 371-379 

CARR, R.J., LAFORCE, W.M., FRY, J, KENNEY, L. (1998) : Echinacea: Stimulation of 

mouse spleen cells by commercial products, FASEB-Journal 12(5), A1082 

CARSTENSEN, J. (1975) : Untersuchungen über den Einsatz einer prophylaktischen 

Applikation von Echinacin ® post partum auf die Fruchtbarkeit des Rindes, 

Diss. Tierärztl. Hochschule Hannover 

CHEMINAT, A., ZAWATZKY, R., BECKER, H., BROUILLARD, R. (1988) : Caffeoylconjugates 

from Echinacea species: structures and biological activity, Phytochemistry 

27, 2787-2794 

CHONE, B. (1965) : Gezielte Steuerung der Leukozytenkinetik durch Echinacin ® , Ärztl. 

Forsch. 19, 611-612 

CLOSE, W.H., FOWLER, V.R. (1982) : Energy requirements of pigs. In: Haresign, W. 

(Ed.). Recent Advances in Animal Nutrition, Butterworths, London, 159- 

174


CLOSE, W.H., COLE, D.J.A. (1984) : Principles and strategies involved in nutrition of 

the sow. 35. Jahrestagung der EVT, Den Haag 

COEUGNIET, E.G., KÜHNAST, R. (1986) : Rezidivierende Candidiasis. Adjuvante 

Immuntherapie mit verschiedenen Echinacin ® -Darreichungsformen, 

Therapiewoche 36, 3352-3358 

CRANWELL, P.D., MOUGHAN, P.J. (1989) : Biological limitations imposed by the 

digestive system to the growth performance of weaned pigs. In: 

Manipulating pig production II. Proceedings of the Australasian Pig 

Science Association, Editors, Barnett, J.L. & Hennessy, D.P., Australasian 

Pig Science Association, Werribee. 140-159 

CSAPO, J., MARTIN, T.G., CSAPO-KISS, Z.S., HAZAS, Z. (1996) : Proteins, fats, vitamin 

and mineral concentrations in porcine colostrums and milk from parturition 

to 60 days, Int. Dairy J. 6, 881-902 

DAMME, K. (1998) : Futterzusatzstoffe: Phytogene Verdauungsförderer – eine 

Alternative zu Fütterungsantibiotika ?, DGS-Magazin 4, 26-30 

DAMME, K. (2001) : Pflanzliches statt antibiotisches - Legehennen bekommen 

phytogene Futterzusatzstoffe, BLW 15, 59-60 

DARRAGH, A.J., MOUGHAN, P.J. (1998) : The composition of colostrums and milk, In: 

The lactating sow (eds. Verstegen, M.W.A., Moughan, P.J., Schrama, 

J.W.) Wageningen Pers. Wageningen, 3-23 

DELGADO, I., NEUBERT, R., DUDENHAUSEN, J.W. (1994) : Changes in white blood cells 

during parturition in mothers and newborn, Gynecol. Obstet. Invest. 38(4), 

227-235


DEUTSCHE GESELLSCHAFT FÜR KLINISCHE CHEMIE (1972) : Standardization of methods 

for the estimation of enzyme activities in biological fluids. Experimental 

basis for the optimised standard conditions, Z. klin. Chem. 10, 281-285 

DIERBACH, J.H. (1831): Abhandlungen über die Arzneikräfte der Pflanzen, Lemgo, 

200 

DLG (DEUTSCHE LANDWIRTSCHAFTS-GESELLSCHAFT) (1995) : Leistungs- und qualitätsgerechte 

Schweinefütterung, Teil A: Mastschweine 

DLG (DEUTSCHE LANDWIRTSCHAFTS-GESELLSCHAFT) (1996) : Leistungs- und qualitätsgerechte 

Schweinefütterung, Teil B: Sauen und Ferkel 

DORN, M., KNICK, E., LEWITH, G. (1997) : Placebo-controlled, double-blind study of 

Echinacea pallidae radix in upper respiratory tract infections, Compl. Ther. 

Med. 5, 40-42 

DOURMAD, J.Y. (1991) : Effect of feeding level in the gilt during pregnancy on 

voluntary feed intake during lactation and changes in body composition 

during gestation and lactation, Livest. Prod. Sci. 27, 309-319 

DRAGENDORFF, G. (1898) : Die Heilpflanzen der verschiedenen Völker und Zeiten, 

Enke Verlag, Stuttgart, 669 

DUDZUS, G. (1951) : Beitrag zur Therapie mit Echinacin ® , Tierärztl. Umschau, 172- 

174 

ECKART, M. DU MOULIN (1986) : Mitogene Stimulation von Hühnerlymphozyten durch 

Echinacea angustifolia und Influex ® in vitro, Diss. LMU München 

ELSASSER-BEILE, U., WILLENBACHER, W., BARTSCH, H.H., GALLATI, H., SCHULTE 

MOLTING, J., KLEIST,V. S. (1996) : Cytokine production in leukocyte cultures 

during therapy with Echinacea extract, J. Clin. Lab. Anal. 10, 441-445


ELSLEY, F.W.H. (1971) : Nutrition and lactation in the sow, In: I.R. Falconer Ed., 

Butterworths, London, 393-411 

ENBERGS, H., WOESTMANN, A. (1986) : Untersuchungen zur Stimulierung der 

Phagozytoseaktivität von peripheren Leukozyten durch verschiedene 

Dilutionen von Echinacea angustifolia, gemessen an der 

Chemilumineszenz aus dem Vollblut, Tierärztl. Umschau 41, 878-885 

ENGSTAD, R., RAA, J. (1999) : Immunstimulation zur Verbesserung der Gesundheit 

und Leistung, Kraftfutter/ Feed-Magazine 7-8, 261-266 

FANSELOW, G. (1981) : Der Einfluss von Pflanzenextrakten und homöopathischen 

Medikamenten auf die Phagozytoseleistung humaner Granulozyten in 

vitro, Diss. München 

FISCHER, K.D. (1976) : Versuche zur Verbesserung der Fruchtbarkeitsergebnisse bei 

Färsen mit Echinacin ® , Diss. Tierärztl. Hochschule Hannover 

FOWLER, V.R. (1985) : The importance of voluntary feed intake in pigs, Proc. Nutr. 

Soc. 44, 347-353 

FUNKE, H. (1983) : Neue Erkenntnisse über Echinacea, Z. f. Phytotherapie 4, 650 

GAISBAUER, M., ZIMMERMANN, W., SCHLEICH, T. (1986) : Die Veränderung 

immunologischer Parameter beim Menschen durch Echinacea purpurea 

Moench, Natura med., 6-10 

GAARDEN, Ö. (1974) : Prophylaktische Applikation von Echinacin ® im Rahmen der 

Sterilitätsbehandlung beim Rind, Diss. Tierärztl. Hochschule Hannover 

GEIER, U., OSTER, A. (2001) : Kräuter – Eine Alternative zu antibiotischen 

Leistungsförderern ?, DGS-Magazin 22, 35-40


GERKEN, H. (1980) : Untersuchungen über die Wirksamkeit von Echinacin ® als 

einmalige i.m. verabreichte Zusatztherapie bei Erkrankungen junger 

Kälber, Diss. Tierärztl. Hochschule Hannover 

GFE (GESELLSCHAFT FÜR ERNÄHRUNGSPHYSIOLOGIE, Ausschuss für Bedarfsnormen) 

(1987) : Energie- und Nährstoffbedarf landwirtschaftlicher Nutztiere , Nr. 4 

Schweine, DLG-Verlag, Frankfurt/Main 

GIALDRONI-GRASSI, G., GRASSI, C. (1985) : Bacterial Products as Immunomodulating 

Agents, Int. Arch. Allergy Appl. Immun. 76: Suppl. 1, 119-127 

GIESE, J., (1989) : Wirksamkeit dreier Immunmodulatoren- BSK ® Immulon und PIND- 

ORF auf in vitro Parameter der Infektionsabwehr des Kalbes in den ersten 

drei Lebenswochen, Diss. GAU Göttingen 

GLEASON, H.A. (1952) : New Britton & Brown, Illustrated Flora of the North-Eastern 

United States and Adjacent Canada, Vol. III, The New York Botanical 

Garden, 348-351 

GOONERATNE, A.D., HARTMANN, P.E., NOTTAGE, H.M. (1982) : The initiation of 

lactation in sows and the mastitis-metritis-agalactia syndrome, Anim. 

Reprod. Sci. 5, 135-140 

GROPP, P.; BIRZER, G. (1991) : in „Leistungsförderer mit antibiotischer Wirkung aus 

der Sicht der Tierernährung“ von Kamphues, J.; in DVG (Hrsg.): Der 

23.Kongress, Bad Nauheim, 1999, 77-96 

GÜRTLER, H., KETZ, H.A., KOLB, E., SCHRÖDER, L., SEIDEL, H. (1989) : Lehrbuch der 

Physiologie der Haustiere, Teil I, 5. überarb. Aufl. Gustav Fischer Verlag, 

Stuttgart 

HAHN, G., MAYER, A. (1984) : Echinacea – Igelkopf oder Sonnenhut, Österr. Apoth. 

Ztg. 38, 1040-1046


HAMALCIK, P. (1987) : Echinacea in der homöopathischen Tiermedizin, Biol. 

Tiermedizin 4, 120-122 

HANSCHKE, H. (1997) : Einfluss von Baypamun ® auf die Entwicklung von Kälbern 

unter der Betrachtung von Immun- und Blutwerten, Diss. FU Berlin 

HAUSTEIN, K.O. (1999) : In Arzneiverordnungsreport 1999, Schwabe U., Paffrath, D., 

Eds.; Springer Verlag Berlin, 348-357 

HEEGER, E.F. (1956) : Handbuch des Arznei- und Gewürzpflanzenbaues, 

Drogengewinnung, Deutscher Bauernverlag Berlin, 388-393 

HEESEN, W., ORZECHOWSKI, G. (1973) : Die Fieberbehnadlung mit Echinacin ® bei 

Infektionskrankheiten, Erfahrungsheilk. 22, 163-171 

HOBBS, C. (1994) : Echinacea: A Literature Review, Botany, History, Chemistry, 

Pharmacology, Toxicology and Clinical Uses, Special Supplement to 

Herbalgram 30 

HOH, K. (1990) : Untersuchungen über immunmodulierende Wirkungen von 

Echinacea purpurea Presssaft und dafür verantwortliche Inhaltstoffe, Diss. 

ALU Freiburg 

IBEN, B. (2000) : Warum kranke Individuen nicht wachsen, Großtierpraxis 1:5, 36-40 

JACKSON, J.R., HURLEY, W.L., EASTER, R.A., JENSEN, A.H., ODLE, J. (1995) : Effects of 

Induced or Delayed Parturition and Supplemental Dietary Fat on 

Colostrum and Milk Composition in Sows, J. Anim. Sci. 73, 1906-1913 

JONES, G. (2001) : Wirkung eines phytogenen Futterzusatzstoffes: Leistungsstarke 

Tiere und Verbraucherschutz stehen nicht im Widerspruch, Kraftfutter/ 

Feed Magazine 12, 468-472


JURCIC, K., MELCHART, D., HOLZMANN, M., MARTIN, P., BAUER, R., DOENECKE, A., 

WAGNER, H. (1989) : Zwei Probandenstudien zur Stimulierung der 

Granulozyten-phagozytose durch Echinacea-Extrakt-haltige Präparate, Z. 

f. Phytother. 10, 67-70 

KAMPEN, VAN K.R. (1995) : Immunomodulators - The Hopes, Expectations and 

Reality, Vet. Allergy & Clin. Immunol. Vol.3 (4), 123-127 

KARLSON, P., DOENECKE, D., KOOLMAN, J. (1994) : Kurzes Lehrbuch der Biochemie für 

Mediziner und Naturwissenschaftler, 14. neubearbeitete Auflage, Georg 

Thieme Verlag, Stuttgart 

KEHRLI, M.E., ROTH, J.A. (1990) : Chemically Induced Immunomodulation In 

Domestic Food Animals, Advances in Vet. Sci. Comp. Med. 35, 103-119 

KENSINGER, R.S., COLLIER, R.J., BAZER, F.W., DUCSAY, C.A., BECKER, H.N. (1982) : 

Nucleic acid, metabolic and histological changes in gilt mammary tissue 

during pregnancy and lactogenesis, J. Anim. Sci. 54, 1297-1308 

KIM, H.-O., DURANCE, T.D., SCAMAN, C.H., KITTS, D.D. (2000) : Retention of caffeic 

acid derivates in dried Echinacea purpurea, J. Agric. Food Chem. 48, 

4182-4186 

KING, J., NEWTON, R.S. (1852) : The Eclectic Dispensatory of the United States, H.W. 

Derby & Co. , Cincinnati, 351-353 

KIRCHGESSNER, M., ROTH, F.X. (1983) : Schätzgleichung zur Ermittlung des 

energetischen Futterwertes von Mischfuttermitteln für Schweine, Z. 

Tierphysiol. Tierernährg. u. Futtermittelkde. 50, 270-271


KIRCHGESSNER, M., MERK, L. (1984) : Vergleichende Untersuchungen zum Einfluss 

konstanter und gestaffelter Energieversorgung in der Gravidität auf einige 

Reproduktionskriterien bei Sauen, J. Anim. Physiol. A. Anim. Nutr. 52, 

124-136 

KIRCHGESSNER, M. (1997) : Tierernährung: Leitfaden für Studium, Beratung und 

Praxis, 10. neubearbeitete Auflage, DLG-Verlag, Frankfurt/Main 

KLOBOSA, F., WERHAHN, E., BUTLER, J.E. (1987) : Composition of sow milk during 

lactation, J. Anim. Sci. 64, 1458-1466 

KOCH, F.E., HAASE, H. (1952) : Eine Modifikation des Spreading-Testes im 

Tierversuch, gleichzeitig eine Beitrag zum Wirkungsmechanismus von 

Echinacin ® , Arzneim. Forsch. 2, 464-467 

KOLB, H. (1981) : Wissenschaftliche Untersuchungsergebnisse über BSK, aus: 

Symposium der chemisch-pharmazeutischen Fabrik Dr. Kolb, gemeinsam 

mit der Tierärztekammer Hamburg 

KRAFT, W., DÜRR, U.M., (1997) : Klinische Labordiagnostik in der Tiermedizin, 4. 

überarb. und erw.Aufl., Schattauer, Stuttgart 

KRAUSE, M. (1984) : Die Wirkung von Echinacin ® auf Knochenmarkkulturen bei 

zytologisch unverändertem Knochenmark sowie Blutkulturen bei 

chronisch-myelischer Leukämie, Osteomyelosklerose und akuter nicht 

lymphatischer Leukämie, Diss. FU Berlin 

LINDL, T., BAUER, J. (1989) : Zell- und Gewebekultur, Einführung in die Grundlagen 

sowie ausgewählte Methoden und Anwendungen, 2. überarb. und erw. 

Aufl., Gustav Fischer Verlag, Stuttgart 

LLOYD, C.G. (1893) : Should Discoveries Made by Physicians be Protected, Ann. 

Eclectic Med., Surg. 4, 332-333


LOEFFLER, K. (1991) : Anatomie und Physiologie der Haustiere, 8. überarb. Aufl., 

Verlag Eugen Ulmer, Stuttgart 

MÄDE, D., WUJANZ, G. (1996) : Untersuchungen zum weißen Blutbild der Muttersau, 

Berl. Münch. Tierärztl. Wschr. 109, 330-335 

MAY, G., WILLUHN, G. (1978) : Antivirale Wirkung wässriger Pflanzenextrakte in 

Gewebekulturen, Arzneim. Forsch. 28, 1-7 

MAY, T. (1994) : Behandlung von zwei Druse-Fällen mit Echinacea compositum ad 

us. vet., Biol. Tiermedizin 4, 128 

MAYR, A. (1982) : Wissenschaftliche Entwicklungen auf dem Gebiete der 

medikamentösen Steigerung der nichtantigenspezifischen, körpereigenen 

Abwehr, Der prakt. Tierarzt 4, 329-342 

MAYR, A. (1988) : Unspezifische Infektionsabwehr, Sonderdruck aus : Der 

Tierzüchter 11, 474-476 

MAYR, A. (1991) : Neue Erkenntnisse über Entwicklung, Aufbau und Funktion des 

Immunsystems, Tierärztl. Praxis 19, 235-240 

MAYR, A. (1993 a) : Vakzination und Paramunisierung, Mh.Vet. Med. 48, Gustav 

Fischer Verlag, Jena, 283-290 

MAYR, A. (1993 b) : The paraspecific immune defense system : potentials and 

limitations, Animal Research and Development 38, 60-80 

MAYR-BIBRACK, B. (1991) : Fragen aus der Praxis: Infektionsprophylaxe in der 

Kälbermast, Tierärztl. Praxis 2, 124-126


MAYR, A., BÜTTNER, M. (1984) : Neue Erkenntnisse über die Grundlagen der 

Paramunität und Paramunisierung, Berl. Münch. Tierärztl. Wschr. 97, 429- 

435 

MAYR, A., BÜTTNER, M. (1992) : Paraspezifisches Immunsystem, Paramunisierung, 

Paramunität, Vet 7(4), 31-37 

MCCAULEY, I., HARTMANN, P.E. (1983) : A longitudinal study of the changes in 

lymphocyte populations and their relationship to plasma cortisol levels in 

the perinatal sow, J. Reprod. Immunol. 5(4), 229-237 

MCGREGOR, R.L. (1968) : Taxonomy of the genus Echinacea (Compositae), The 

University of Kansas Science Bulletin 48, 113-142 

MELCHART, D., LINDE, K., WORKU, F., BAUER, R., WAGNER, H. (1994) : 

Immunomodulation with Echinacea – a systemic review of controlled 

clinical trials, Phytomed. 1, 245-254 

MERK, B. (1992) Einfluss von Alter, Rasse, Haltung, Fütterung und 

Fortpflanzungsstadium auf Serumenzymwerte beim Schwein, Vet. Med. 

Diss. München 

MOERMANN, D.E. (1986) : Medicinal Plants Of Native America, Res. Rep. 

Ethnobotany, Contrib. 2, University of Michigan Museum of Anthropology, 

Technical Reports No. 19 

MÖSE, J.R. (1983) : Zur Wirkung von Echinacin ® 

Natural Killer Zellen, Med. Welt 34, 1463-1467 

auf Phagozytoseaktivität und 

MÜLLER, H.L., KIRCHGESSNER, M. (1979) : Untersuchungen zum energetischen 

Erhaltungsbedarf von Sauen, Z. Tierphysiol. Tierernährg u. 

Futtermittelkde. 42, 271-276


NAUMANN, C., BASSLER, R. unter Mitarbeit von Seibold, R., Barth, C. (1976) mit 1. und 

2. Ergänzungslieferung 1983 und 1988 : Methodenbuch Band 3, Die 

chemische Untersuchung von Futtermitteln, Verlag J. Neudamm-Neumann 

NRC (NATIONAL RESEARCH COUNCIL) (1987) : Predicting feed intake of foodproducting 

animals, National Academy Press, 85-90, Washington D.C 

NRC (NATIONAL RESEARCH COUNCIL) (1994) : Nutrient requirements of poultry, 

National Academy Press, Washington D.C. 

NRC (NATIONAL RESEARCH COUNCIL) (1998) : Nutrient requirements of swine., 

National Academy Press, Washington D.C. 

NÜSSLEIN, B., KURZMANN, M., BAUER, R., KREIS, W. (2000) : Enzymatic Degradation of 

Cichoric Acid in Echinacea purpurea Preparations, J. Nat. Prod. 63, 1615- 

1618 

OSOWSKI, S., ROSTOCK, M., BARTSCH, H.H., MASSING, U. (2000) : Zur 

pharmazeutischen Vergleichbarkeit von therapeutisch verwendeten 

Echinacea-Präparaten, Forsch. Komplementärmed. Klass. Naturheilkd. 7, 

294-300 

ÖZPINAR, H., ERHARD, M.H. (2000) : Einfluss des Haltungssystems auf den 

Immunstatus und auf verschiedene Leistungsparameter bei Legehennen, 

Proc. Soc. Nutr. Physiol. 9, 54 

PEARSON, W. (2000) : Herbal Reinforcements: Optimising the Equine Immune 

System with Echinacea (Echi-Fend), Nutraceutical Symposium, Guelph, 

Canada 

PERCIVAL, S. (2000) : Use of echinacea in medicine, Biochem. Pharmacol. 60 (2), 

155-158


PERRY, N.B., VAN KLINK, J.W., BURGESS, E.J., PARMENTER, G.A. (1997) : Alkamide 

levels in Echinacea purpurea: A rapid analytical method revealing 

differences among roots, rhizomes, stems, leaves and flowers, Planta 

Medica 63, 58-62 

PERRY, N., VAN KLINK, J.W., BURGESS, E.J., PARMENTER, G.A. (2000) : Alkamide 

Levels in Echinacea purpurea: Effects of Processing, Drying and Storage, 

Planta Medica 66, 54-56 

PERSIJN, J.P., VAN DER SLIK, W. (1976) : A new method for the determination of 

glutamyltransferase in serum, J. Clin. Chem. Clin Biochem. Vol. 14, 421- 

427 

PLONAIT, H. (2001) : Fieberhafte Allgemeinerkrankungen. In: Lehrbuch der 

Schweinekrankheiten, Hrsg. Waldmann, K.-H., Wendt, M., Parey 

Buchverlag Berlin 

PROKSCH, A. (1982) : Über ein immunstimulierendes Wirkprinzip aus Echinacea 

purpurea (L.) MOENCH, Diss. München 

PROKSCH, A., WAGNER, H. (1987) : Structural analysis of a 4-O-methyl-glucoronoarabinoxylan 

with immunostimulating activity from Echinacea purpurea, 

Phytochem. 26, 1989-1993 

PRZYBILLA, P., WEIß, J. (1998) : Pflanzliche Futterzusatzstoffe in der Schweinemast: 

Die Mastleistung „natürlich verbessern“, DGS-Magazin 10, 52-57 

REHMAN, J., DILLOW, J.M., CARTER, S.M., CHOU, J., Le, B., MAISEL, A.S. (1999) : 

Increased production of antigen-specific immunoglobulins G and M 

following in vivo treatment with the medicinal plants Echinacea angustifolia 

and Hydrastis Canadensis, Immunol. Letters 68, 391-395


REICHEL, K. (1963) : Die Leukozytenzahlen beim Schwein, Dtsch. Tierärztl. Wschr. 

70, 440-446 

REMIGER, P. (1989) : Zur Chemie und Immunologie neuer Alkylamide und anderer 

Inhaltsstoffe aus Echinacea purpurea, Echinacea angustifolia und 

Echinacea pallida, Diss. LMU - München 

ROGERS, K.L., GRICE, I.D., MITCHELL, C.J., GRIFFITHS, L.R. (1998) : High performance 

liquid chromatography determined alkylamide levels in Australian-grown 

Echinacea ssp., Aust. J. Expt. Agric. 38, 403-408 

ROITT, I.M., BROSTOFF, J., Male, D.K., (1995) : Kurzes Lehrbuch der Immunologie, 3. 

neubearbeitete Auflage, Georg Thieme Verlag, Stuttgart 

ROLLE, M., MAYR, A. (1984) : Medizinische Mikrobiologie, Infektions- und 

Seuchenlehre, Enke Verlag, Stuttgart, 130-139 

ROSEN, F. (1995) : in „Leistungsförderer mit antibiotischer Wirkung aus der Sicht der 

Tierernährung“ von Kamphues, J.; in DVG (Hrsg.): Der 23. Kongress, Bad 

Nauheim, 1999, 77-96 

ROTH-MAIER, D.A., MAAß, N., PAULICKS, B.R. (2001) : First results on the use of 

Echinacea-Cobs (Echinacea purpurea) in animal feeding, Abstr. 8 th 

Symposium Vitamins and Additives in Nutrition of Man and Animal, 26 th 

and 27 th Sept., Jena, Thüringen 

RUPPERT, J., PETERS, J.H. (1987) : Measurement of cell proliferation by a cell-ELISA 

using a monoclonal antibody against incorporated 5’bromo2’deoxyuridine 

(BrdU), Immunobiologie 175 (4), 346 

RUSH, B.R. (2001) : Tutorial Article: Clinical use of immunomodulatory agents, Equine 

vet. Educ. 13(1), 45-53


SCAGLIONE, F., LUND, B. (1995) : Efficiacy in the treatment of the common cold of a 

preparation containing an echinacea extract, Int. J. Immunother. 11, 163- 

166 

SCHNEIDER, R., KIRCHGESSNER, M., SCHWARZ, F.J., PAULICKS, B.R., (1992) : 

Futteraufnahme und Lebendmasseentwicklung von Sauen während der 

Laktation in Abhängigkeit von der Methioninversorgung, 1. Mitteilung zum 

Bedarf laktierender Sauen an schwefelhaltigen Aminosäuren, J. Anim. 

Physiol. Anim Nutr. 68, 235-243 

SCHÖMMER, F. (1948) : Einführung in die Homöopathie für Tierärzte, Verlag Schaper, 

Hannover 

SCHÖNEBERGER, D. (1992) : The influence of immune-stimulating effects of pressed 

juice from Echinacea purpurea on the course and severity of colds. 

Results of a double-blind study, Forum Immunol. 8, 2-12 

SCHÖPF, J.D. (1787) : Materia medica americana potissimum regni vegetabilis, 

Erlangen, 127 

SCHRÖDER, J. (1981) : Experimentelle Untersuchungen über Wirksamkeit und 

Wirkungsweise eines biologischen Immunmodulators, Inaug-Diss. 

Tierärztl. Hochschule Hannover 

SCHULTE, K.E., RÜCKER, G., PERLICK, J. (1967) : Das Vorkommen von Polyacetylen- 

Verbindungen in Echinacea purpurea MOENCH und Echinacea 

angustifolia DC., Arzneim. Forsch. 17, 825-829 

SEE, D.M., BROUMAND, N., SAHL, L., TILLES, J.G. (1997) : In vitro effects of Echinacea 

and ginseng on natural killer and antibody-dependant cell cytotoxicity in 

healthy subjects and chronic fatigue syndrome or acquired 

immunodefiency syndrome patients, Immunopharmacology 35, 229-235


SEEHAWER, J. (1984) : Untersuchungen zum Energie- und Stoffansatz gravider 

Sauen im ersten und dritten Reproduktionszyklus, Diss. Berlin-West 

SEUTTEER, U. (1995) : Einfluss von Rasse, Haltung, Fütterung und 

Reproduktionsstadium auf hämatologische und klinisch-chemische 

Parameter beim Schwein, Vet. Med. Diss. München 

SOHNIUS, R. (1951) : Über die bakterielle Endocarditis unter besonderer 

Berücksichtigung der Fieberbehandlung mit Pyrifer ® und Echinacin ® , Diss. 

Heidelberg 

SOMMER, H., GREUEL, E., MÜLLER, W. (1991) : Hygiene der Rinder- und Schweineproduktion, 

2. neubearbeitete Aufl., Verlag Eugen Ulmer, Stuttgart 

STAHL, M. (1988) : Beeinflussung einiger Funktionen neutrophiler Granulozyten des 

Schweines durch Echinacea-haltige Präparate, Diss. München 

STAHL, M., REIFENBERG, K., LÖSCH, U. (1989) : Der Einfluss von Echinacea-haltigen 

Präparaten auf das Abwehrsystem der Haustiere, Biol. Tiermedizin 2, 38- 

41 

STIMPEL, M., PROKSCH, A., WAGNER, H., LOHMANN-MATTHES, M.L. (1984) : 

Macrophage activation and induction of macrophage cytotoxicity by 

purified polysaccharide fractions from the plant Echinacea purpurea, 

Infect. Immun. 46, 845-849 

STRASSER, A., KALMAR, E., NIEDERMÜLLER, H. (1998) : A simple method for the 

simultaneous separation of peripheral blood mononuclear and 

polymorphonuclear cells in the dog, Vet. Immunol. Immunopath. 62, 29-35 

STUPPNER, H. (1985) : Chemische und immunologische Untersuchungen von 

Polysacchariden aus der Gewebekultur von Echinacea purpurea (L.) 

MOENCH, Diss. München


TIZARD, I. (1993) : Treatment of respiratory disease by means of immunomodulators, 

Proc. of the 12 th veterinary Respiratory Symposium, Comparative 

Veterinary Society, Pennsylvania 

TIZARD, I. (1995) : Uses of Biological Response Modifiers, Vet. Allergy & Clin. 

Immunol. Vol. 3, No. 2, 51-56 

TYMPNER, K.D. (1981) : Der immunbiologische Wirknachweis von Pflanzenextrakten, 

Z. angew. Phytother. 2, 181-184 

UNRUH,V.V. (1915) : Echinacea angustifolia and Inula helenium in the treatment of 

tuberculosis, Nat. Eclect. Med.Assn. Quarterly 7, 63-75 

VAN DER STEEN, H.A.M. (1985) : Maternal influence mediated by litter size during the 

suckling period on reproduction traits in pigs. Livest. Prod. Sci. 13, 147- 

158 

VERSTEGEN, M.W.A., MOUGHAN, P.J., SCHRAMA, J.W. (1998) : The lactating sow, 

Wageningen Pers, Wageningen 

VON GOHREN, T. (1865) : Analyse der Schweinemilch. Landwirtschaftl. 

Versuchsstation Baden 7, 351 

WACKER, A., HILBIG, W. (1978) : Virushemmung mit Echinacea purpurea, Planta Med. 

33, 89-93 

WAGNER, H. (1984) : Phytopräparate zur Immunprophylaxe und Immuntherapie, Biol. 

Medizin 1, 3-11 

WAGNER, H., PROKSCH, A., RIESS-MAURER, I., VOLLMAR, A., ODENTHAL, S., STUPPNER, 

H., JURCIC, K., LE TURDU, M., FANG, J.N. (1985) : Immunstimulierend 

wirkende Polysaccharide (Heteroglykane) aus höheren Pflanzen, Arzneim. 

Forsch. 35, 1069-1075


WAGNER, H., JURCIC, K., DOENICKE, A., ROSENHUBER, E., BEHRENS, N. (1986) : Die 

Beeinflussung der Phagozytosefähigkeit von Granulozyten durch 

homöopathische Arzneipräparate, Arzneim. Forsch./Drug Res. 36(II), 

1421-1425 

WAGNER, H., JURCIC, K., BAUER, R., KREHER, B. (1987) : Immunologische In-vitro und 

In-vivo-Untersuchungen von Arzneipräparaten, Z. f. Phytother. 8, 180-183 

WALDMANN, K.-H., Wendt, M. (2001) : Lehrbuch der Schweinekrankheiten, 3. Aufl., 

Hrsg. Wendt, M., Parey Buchverlag, Berlin 

WESTROM, B.R., EKMAN, R., SVENDSEN, L., SVENDSEN, J., KARLSSON, B.W. (1987) : 

Levels of immunoreactive insulin, neurotensin and bombesin in porcine 

colostrums and milk, J. Pediatr. Gastroenterol. Nutr. 6, 460-465 

WETSCHEREK, W. (1998) : Phytogene Futterzusätze, Kraftfutter/ Feed Magazine 10, 

466-467 

WIELER, L.H., BALJER, G. (1999) : Antibiotika und Resistenzproblematik: hygienische 

und immunologische Alternativen, Tierärztl. Prax. 27 (G), 341-347 

WILDFEUER, A., MAYERHOFER, D. (1994) : Untersuchung des Einflusses von 

Phytopräparaten auf zelluläre Funktionen der körpereigenen Abwehr, 

Arzneim. Forsch./Drug Res. 44 (I), 361-366 

WITTKE, G. (1987) : Lehrbuch der Veterinär-Physiologie, 7.völlig neu bearb. Aufl., 

Verlag Paul Parey, Berlin 

WOESTMANN, A. (1986) : Untersuchungen zur Stimulierung der unspezifischen 

Abwehr von Kaninchen durch verschiedene Dilutionen von Echinacea 

angustifolia, gemessen an der Chemilumineszenz der Leukozyten aus 

dem Vollblut, Inaug.-Diss. Uni Bonn


XUE, J.L., KOKETSU, Y., Dial, G.D., PETTIGREW, J.E., SOWER, A. (1997) : Glucose 

tolerance, luteinizing hormone release and reproductive performance of 

first-litter sows fed two levels of energy during gestation, J.Anim. Sci. 75, 

1845-1852

Tabellenanhang 9-1 

9 Tabellenanhang 

Anhangstabelle 1: Zusammensetzung der Mineralstoffvormischung im Broilerversuch 

I und II 

Min. Komponente g / kg Vormischung Anteil / kg Futter 

CaCO 3 354,99 9,58 g 

CaHPO 4 *2H 2 O 458,37 12,38 g 

NaCl 164,73 4,45 g 

MnSO 4 *H 2 O 5,31 143,37 mg 

ZnSO 4 * 7H 2 O 5,17 139,59 mg 

FeSO 4 *7H 2 O 10,49 283,23 mg 

CuSO 4 *5H 2 O 0,919 24,81 mg 

KJ 0,013 0,351 mg 

Na 2 SeO 3 *5 H 2 O 0,011 0,297 mg 

Anhangstabelle 2: Zusammensetzung der Vitaminvormischung im Broilerversuch I 

und II 

Vitamin 

g / kg Vormischung 

pro kg Futter 

(reines Vitamin) 

Vitamin A 5,33 (bei 500.000 I.E./g) 8.000 I.E 

Vitamin D 0,67 (bei 500.000 I.E./g) 1.000 I.E. 

Vitamin E 10,0 (bei 1 I.E./mg) 30 I.E. 

Vitamin K 3 0,33 (Konz. 51%) 0,5 mg 

Vitamin B 1 0,60 (Konz. 98%) 1,8 mg 



Vitamin B 12 3,33 (Konz. 0,1%) 0,01 mg 

Biotin 2,50 (Konz. 2%) 0,15 mg 

Folsäure 0,23 (Konz. 80%) 0,55 mg 

Nikotinsäure 11,67 (Konz. 99%) 35 mg 

Pantothensäure 3,33 (Konz. 98%) 10 mg 

Vitamin C 10,00 (Konz. 99%) 30 mg 

Cholinchlorid 866,67 (Konz. 50%) 1300 mg 

Maisstärke 82,67 248,0 mg

9-2 Tabellenanhang 

Anhangstabelle 3 : Zusammensetzung, Inhalts- und Zusatzstoffe des Mineralfuttermittels 

für Schweine nach Herstellerangaben* 

Gehalt an Inhaltsstoffen 

Calcium 22,0 

Phosphor 6,0 

Natrium 5,0 

Magnesium 1,0 

Zusatzstoffe je kg Mischfutter 

Vitamin A 

600.000 I.E. 

Vitamin D 

60.000 I.E. 

Vitamin E 

2.000 mg 

Vitamin B 1 

35 mg 

Vitamin B 2 

125 mg 

Vitamin B 6 

75 mg 

Vitamin B 12 1.000 µg 

Pantothensäure 

300 mg 

Nicotinsäure 

600 mg 

Biotin 8.000 µg 

Folsäure 

100 mg 

Cholin 

7500 mg 

Vitamin K 3 

35 mg 

Eisen 

5.000 mg 

Mangan 

2.000 mg 

Zink 

5.000 mg 

Kupfer 

1.000 mg 

Jod 

60 mg 

Selen 

13 mg 

Zusammensetzung 

Calciumcarbonat 46,5 % 

Monocalciumphosphat 10,0 % 

Natriumchlorid 11,5 % 

Calcium-Magnesium-Phosphat 7,5 % 

Monodicalciumphosphat 6,5 % 

Natrium-Calcium-Magnesium-Phosphat 5,0 % 

Spurenelement-Mischung 6,5 % 

Vitamin-Vormischung 6,5 % 

* Mineralfutter 20 Zucht, Raiffeisen Kraftfutterwerke Süd


Anhangstabelle 4: Zusammensetzung der eingesetzten mineralischen Komponenten 

Phosphorsaurer Kalk (40er): 

Dicalciumphosphat (CaHPO 4 * 2H 2 O) mit 23,3 % Calcium und 18,0% Phosphor 

Monocalciumphosphat: 

Ca(H 2 PO 4 ) 2 * H2O mit 15,9 % Calcium und 24,6 % Phosphor 

Kohlensaurer Kalk: 

CaCO 3 mit 40,0% Calcium 

Anhangstabelle 5: Zusammensetzung des Pflanzenöls 

Öl Anteil in % 

Sonnenblumenöl 10 

Sojaöl 45 

Rapsöl 45 

Anhangstabelle 6: Durchschnittliche tägliche Futteraufnahme der Broiler (g) im 

Broilerversuch I 

Versuchswoche 

Käfig Nr. Gruppe 1 2 3 4 5 

11 1 22,4 41,5 80,2 120,8 151,6 

12 1 24,5 45,6 77,4 114,6 149,3 

13 1 24,2 46,7 84,8 122,3 153,4 

14 1 23,7 52,6 85,3 114,2 157,4 

21 2 23,8 51,3 89,2 123,3 151,9 

22 2 24,3 41,8 76,9 111,5 145,5 

23 2 23,8 46,3 79,6 109,7 133,9 

24 2 24,6 44,0 79,9 113,7 147,6 

31 3 25,0 49,0 89,3 123,5 149,4 

32 3 22,9 38,7 70,1 92,9 123,3 

33 3 20,7 48,2 79,5 108,1 129,6 

34 3 24,1 45,4 77,6 107,7 137,2 

41 4 24,5 47,3 86,6 124,6 150,4 

42 4 23,5 43,6 75,2 110,2 143,0 

43 4 24,9 46,6 81,6 113,9 142,9 

44 4 22,5 46,6 83,3 116,5 146,9


Fortsetzung Tab. 6 

51 5 25,1 43,6 75,7 111,4 146,2 

52 5 24,7 47,1 84,5 114,0 137,3 

53 5 23,2 44,1 75,6 109,5 147,4 

54 5 24,5 47,6 85,3 118,8 150,0 

61 6 23,7 43,2 79,8 115,4 147,5 

62 6 24,6 51,6 86,9 123,7 159,8 

63 6 23,5 46,7 76,3 105,9 137,9 

64 6 25,2 46,9 82,7 119,0 150,8 

71 7 23,0 43,3 74,8 99,5 133,5 

72 7 23,6 47,0 84,8 123,6 157,3 

73 7 23,8 48,6 80,5 112,4 137,3 

74 7 24,8 45,6 76,7 114,8 143,7 

81 8 23,6 43,0 76,9 109,5 140,9 

82 8 25,0 48,0 85,7 119,2 148,7 

83 8 24,5 48,3 82,8 119,7 153,4 

84 8 24,9 46,5 81,0 115,4 147,5 

91 9 24,4 50,2 89,0 123,2 157,4 

92 9 23,8 46,1 81,8 120,4 154,7 

93 9 23,4 47,2 81,3 105,8 138,5 

94 9 23,8 45,9 67,2 122,8 150,4 

Anhangstabelle 7: Lebendmasse der Broiler (g) im ersten Broilerversuch 

Versuchswoche 


11 1 181 484 715 1523 2173 

11 1 200 400 915 1517 2060 

11 1 199 462 846 1111 2182 

11 1 215 421 764 1311 1990 

11 1 173 373 869 1338 2115 

11 1 161 297 963 1457 2002 

11 1 161 369 671 1386 1816 

11 1 116 437 739 1421 2111 

11 1 189 409 825 1511 1519 

11 1 207 385 934 1209 1802 

12 1 217 385 838 1362 1863 

12 1 211 480 780 1603 2057 

12 1 194 399 749 1333 2213 

12 1 208 515 959 1358 1836 

12 1 179 438 769 1146 1678 

12 1 153 439 846 1166 1941



12 1 188 382 787 1401 1694 

12 1 230 416 728 1465 1906 

12 1 197 420 766 1245 2088 

12 1 188 415 842 1284 2028 

13 1 174 422 956 1570 2067 

13 1 209 423 844 1354 1640 

13 1 202 380 877 1472 2029 

13 1 183 432 896 1216 2199 

13 1 171 450 742 1600 1791 

13 1 185 429 777 1480 2025 

13 1 221 480 929 1437 2234 

13 1 216 491 830 1232 2116 

13 1 183 449 881 1482 2057 

13 1 214 408 912 1377 2288 

14 1 183 537 828 1403 2064 

14 1 186 564 963 1570 2040 

14 1 204 438 808 1423 1996 

14 1 207 512 986 1387 1934 

14 1 207 512 986 1387 1934 

14 1 173 388 785 1396 2256 

14 1 180 415 746 1572 2032 

14 1 224 440 928 1548 2111 

14 1 184 493 894 1502 2175 

14 1 235 468 1062 1261 1996 

14 1 186 415 860 

21 2 212 407 955 1173 1852 

21 2 212 497 1000 1975 2272 

21 2 192 521 899 1630 2064 

21 2 159 411 973 1300 2717 

21 2 252 435 824 1402 2038 

21 2 203 446 841 1485 2231 

21 2 202 612 1216 1525 1758 

21 2 202 437 823 1593 2171 

21 2 183 506 1011 1549 2129 

21 2 175 483 793 1254 1638 

22 2 238 416 898 1229 2090 

22 2 216 375 575 1068 1931 

22 2 208 387 920 1451 1657 

22 2 202 292 908 1229 1852 

22 2 197 499 785 1443 1927 

22 2 212 350 943 1453 2041 

22 2 201 430 878 1351 2013 

22 2 170 437 818 1363 1816 

22 2 183 480 706 1416 2009



22 2 162 449 740 1262 2132 

23 2 233 547 699 1413 1618 

23 2 223 320 863 1464 2007 

23 2 200 478 878 1337 1509 

23 2 201 352 910 1317 1949 

23 2 189 476 903 1389 1867 

23 2 122 458 990 1176 2066 

23 2 183 472 646 1235 1870 

23 2 189 415 823 1047 2150 

23 2 219 436 890 1446 1671 

23 2 190 433 753 1451 1875 

24 2 230 450 1086 1350 1760 

24 2 182 441 887 1707 1995 

24 2 207 437 934 1426 2147 

24 2 182 475 829 1496 2465 

24 2 167 446 803 895 1797 

24 2 213 533 901 1513 1880 

24 2 224 398 821 1269 1943 

24 2 208 421 586 1478 2279 

24 2 218 303 764 1212 1240 

24 2 207 406 855 1221 1976 

31 3 191 469 991 1484 2217 

31 3 201 564 738 1534 1939 

31 3 236 417 908 1127 2089 

31 3 202 474 958 1622 1520 

31 3 210 454 959 1595 2132 

31 3 213 476 915 1563 2275 

31 3 211 499 876 1489 2276 

31 3 212 471 995 1564 2299 

31 3 190 449 941 1575 1837 

31 3 211 495 1056 1393 2167 

32 3 160 334 781 1447 1374 

32 3 170 428 777 1098 1459 

32 3 124 471 846 1441 2026 

32 3 184 429 918 1301 1717 

32 3 180 444 642 909 1657 

32 3 195 308 577 906 1366 

32 3 182 288 886 965 1353 

32 3 171 379 490 1187 1817 

32 3 199 298 566 1105 1289 

32 3 162 414 763 983 2120 

33 3 190 508 788 1497 2082 

33 3 179 418 936 1422 1778



33 3 182 421 908 1280 1792 

33 3 180 410 770 1304 1831 

33 3 170 463 835 1439 1857 

33 3 161 397 907 897 1235 

33 3 173 410 793 1362 1389 

33 3 186 437 556 1312 2040 

33 3 168 450 804 1233 1795 

33 3 191 439 875 1211 2024 

34 3 224 405 990 1121 2122 

34 3 209 526 874 1158 2156 

34 3 169 378 669 1151 1455 

34 3 207 278 776 1396 1548 

34 3 229 455 758 1454 1520 

34 3 218 452 761 1554 1748 

34 3 194 451 770 1207 1965 

34 3 222 443 990 1601 1715 

34 3 167 360 887 941 1617 

34 3 136 528 531 1179 2279 

41 4 211 417 767 1521 2060 

41 4 142 366 929 1526 2148 

41 4 196 491 962 1040 2142 

41 4 199 473 944 1530 2595 

41 4 183 499 951 1690 1776 

41 4 179 451 984 1240 1887 

41 4 189 335 912 1508 2182 

41 4 202 485 624 1246 1563 

41 4 233 441 1015 1506 1651 

41 4 175 527 784 1643 2393 

42 4 181 413 743 1310 1920 

42 4 182 457 841 1331 2108 

42 4 195 400 779 1074 2189 

42 4 217 373 689 1462 1557 

42 4 201 464 779 1262 1795 

42 4 181 336 618 1367 1844 

42 4 140 404 780 1406 2087 

42 4 177 402 615 1069 1952 

42 4 227 386 867 1071 1649 

42 4 184 450 906 1264 1578 

43 4 204 506 933 1420 1792 

43 4 184 376 853 1141 1689 

43 4 221 486 738 1524 1947 

43 4 191 503 896 1354 2103 

43 4 240 361 859 1667 1568 

43 4 197 354 904 1399 2003



43 4 215 459 1006 1177 2051 

43 4 203 423 961 1230 2084 

43 4 199 484 718 1463 1762 

43 4 172 464 631 1034 2355 

44 4 205 475 1012 1164 1551 

44 4 213 404 846 1531 1940 

44 4 207 401 712 1329 2177 

44 4 171 326 995 1592 1545 

44 4 203 445 853 1285 1453 

44 4 184 525 701 1437 2195 

44 4 189 432 744 1072 2282 

44 4 137 504 851 1349 1905 

44 4 207 341 743 1561 1921 

44 4 202 431 942 1110 2180 

51 5 216 484 864 1491 1723 

51 5 182 461 917 1037 1851 

51 5 216 251 1031 1502 1897 

51 5 245 410 443 1330 2143 

51 5 200 441 755 1263 2210 

51 5 208 442 945 1492 1979 

51 5 248 477 871 1589 2199 

51 5 130 556 814 1368 2131 

51 5 245 379 683 1291 1551 

51 5 215 462 871 

52 5 216 484 886 1424 1731 

52 5 228 439 988 1641 1980 

52 5 229 441 930 994 2022 

52 5 237 538 686 1196 2326 

52 5 224 497 804 1123 1775 

52 5 130 366 878 1272 1355 

52 5 152 448 984 1546 2086 

52 5 171 393 598 1443 2153 

52 5 196 532 1026 1442 2080 

52 5 208 280 791 1505 1422 

53 5 203 487 784 1473 1916 

53 5 176 374 846 1469 1567 

53 5 177 452 856 1322 1924 

53 5 196 384 859 1107 2213 

53 5 176 440 732 1109 2159 

53 5 210 413 812 1345 1761 

53 5 227 439 742 1476 2190 

53 5 218 428 832 1437 2054 

53 5 188 447 848 1118 1643 

53 5 200 418 922



54 5 189 358 1073 1287 1885 

54 5 199 451 954 1577 2114 

54 5 205 359 705 1306 2514 

54 5 205 446 963 1467 1904 

54 5 220 470 832 1402 2081 

54 5 214 515 727 1755 1756 

54 5 228 540 956 1290 2331 

54 5 188 450 882 1623 1697 

54 5 162 487 943 1162 1999 

54 5 217 501 881 1490 2202 

61 6 171 425 775 1250 1912 

61 6 185 447 890 1392 2011 

61 6 200 371 717 1334 2107 

61 6 216 366 868 1221 1919 

61 6 182 472 940 1451 1988 

61 6 184 399 772 1320 1849 

61 6 179 428 794 1504 2009 

61 6 184 256 867 1366 2188 

61 6 198 416 770 1298 1747 

61 6 196 470 

62 6 188 412 855 1316 2042 

62 6 206 491 752 1369 2487 

62 6 201 560 907 1726 1796 

62 6 240 578 1075 1259 2350 

62 6 211 448 875 1430 2164 

62 6 153 462 742 1684 2138 

62 6 186 444 982 1579 1946 

62 6 176 457 748 1488 1842 

62 6 230 484 1046 1248 1915 

62 6 190 387 907 1230 2260 

63 6 198 532 594 1269 2289 

63 6 204 467 975 956 2187 

63 6 180 450 900 1476 1403 

63 6 240 274 689 1171 1357 

63 6 177 333 739 1580 1759 

63 6 203 481 538 1433 1817 

63 6 200 376 978 1197 2172 

63 6 210 529 851 1588 1635 

63 6 142 428 1015 857 1689 

63 6 216 509 847 1156 1935 

64 6 227 384 945 1278 1903 

64 6 201 387 822 1334 2114 

64 6 207 506 698 1435 2350 

64 6 180 408 862 1618 1864



64 6 184 421 757 1264 2051 

64 6 163 449 938 1364 1776 

64 6 202 507 780 1494 1950 

64 6 217 438 1024 1278 1953 

64 6 218 455 875 1421 1977 

64 6 271 525 869 1467 2067 

71 7 149 488 851 1308 1760 

71 7 214 448 539 841 1832 

71 7 191 303 916 1461 1974 

71 7 162 345 537 1192 2179 

71 7 203 421 637 1398 1196 

71 7 160 504 852 1249 1933 

71 7 201 315 981 1312 1604 

71 7 197 485 769 1489 1962 

71 7 171 399 865 1094 1649 

71 7 228 453 941 

72 7 209 485 950 1485 2161 

72 7 200 379 891 1181 1933 

72 7 182 437 853 1467 1748 

72 7 190 462 899 1326 2252 

72 7 185 417 761 1282 2166 

72 7 163 474 876 1595 2531 

72 7 209 417 732 1485 1833 

72 7 165 433 836 1469 2061 

72 7 199 438 952 1493 2241 

72 7 199 445 875 1658 1542 

73 7 174 469 864 1330 2050 

73 7 215 452 896 1286 2112 

73 7 208 463 877 1326 2104 

73 7 216 456 1000 1371 1472 

73 7 183 493 873 1479 1902 

73 7 191 522 885 1446 1910 

73 7 186 445 842 1463 2045 

73 7 199 418 815 1323 1889 

73 7 204 479 913 1418 1899 

73 7 222 403 790 1424 2070 

74 7 203 430 836 1455 2064 

74 7 216 356 962 1550 2125 

74 7 199 417 887 1237 1728 

74 7 193 404 560 1365 1850 

74 7 229 452 778 910 1761 

74 7 225 397 852 1433 2201 

74 7 200 486 849 1439 2193 

74 7 197 429 944 1487 2110



74 7 181 494 840 1352 1892 

74 7 167 409 784 1343 1269 

81 8 191 409 901 1308 1629 

81 8 175 436 749 1238 2138 

81 8 182 445 896 1210 1840 

81 8 188 416 843 1288 1622 

81 8 178 392 734 1298 2131 

81 8 155 418 798 1152 2075 

81 8 196 449 890 1318 1794 

81 8 181 409 700 1467 1770 

81 8 189 401 778 1449 2111 

81 8 194 453 835 1443 1923 

82 8 203 458 782 1308 2075 

82 8 174 396 929 1583 2290 

82 8 173 485 852 1498 1914 

82 8 204 439 953 1300 1811 

82 8 212 392 821 1190 1781 

82 8 185 488 802 1332 1986 

82 8 205 455 851 1312 1588 

82 8 197 426 754 1424 2151 

82 8 189 396 959 1373 1965 

82 8 222 472 874 1405 2029 

83 8 222 477 801 1584 2373 

83 8 207 524 915 1417 1949 

83 8 213 380 959 1247 2062 

83 8 201 486 879 1604 1761 

83 8 196 473 905 1525 2393 

83 8 205 496 768 1433 1981 

83 8 199 424 964 1358 2118 

83 8 193 498 978 1364 2325 

83 8 183 503 851 1382 2071 

83 8 211 433 949 1638 2070 

84 8 149 469 882 1296 1707 

84 8 220 482 936 1314 2032 

84 8 214 423 691 1613 2315 

84 8 202 545 851 1640 1819 

84 8 204 495 1001 1449 1772 

84 8 178 510 872 1595 1996 

84 8 228 464 827 1325 2293 

84 8 227 223 1081 1088 2291 

84 8 210 478 952 1533 1675 

84 8 220 370 370 

91 9 193 538 975 1463 2155



91 9 201 441 833 1656 2121 

91 9 194 489 996 1390 2054 

91 9 199 399 1082 1499 1946 

91 9 212 463 914 1529 2178 

91 9 208 521 871 1623 2309 

91 9 185 459 905 1282 2319 

91 9 198 442 709 1503 2141 

91 9 199 487 954 1483 1967 

91 9 179 344 837 

92 9 153 492 700 1476 2513 

92 9 182 460 799 1283 2201 

92 9 207 464 896 1193 1741 

92 9 199 426 913 1152 2032 

92 9 222 328 745 1468 1752 

92 9 196 430 921 1321 2344 

92 9 199 468 939 1589 1799 

92 9 162 378 778 1722 1564 

92 9 199 543 1079 1090 1810 

92 9 212 421 615 

93 9 227 448 514 1130 2195 

93 9 235 529 871 1443 1754 

93 9 208 300 582 978 1528 

93 9 142 460 924 1307 1902 

93 9 180 442 738 1395 1342 

93 9 160 391 888 1474 2340 

93 9 196 544 1057 1656 2079 

93 9 176 504 941 815 1716 

93 9 210 307 989 

93 9 

94 9 203 374 867 1409 1614 

94 9 214 384 750 1509 2375 

94 9 200 437 868 1301 1943 

94 9 174 467 953 1623 1934 

94 9 203 460 678 1383 2092 

94 9 163 451 827 1418 1990 

94 9 202 470 922 1113 1759 

94 9 198 409 931 1412 2041 

94 9 160 257 

94 9 197 469 1614


Anhangstabelle 8: Durchschnittliche tägliche Futteraufnahme der Broiler (g) im 

Broilerversuch II 

Versuchswoche 


11 1 23,9 45,2 77,9 114,8 143,3 

12 1 22,2 50,5 84,1 119,5 147,5 

13 1 24,9 51,1 83,8 121,8 146,7 

14 1 23,1 47,4 82,8 126,2 165,4 

15 1 24,9 44,3 77,8 113,8 146,4 

16 1 23,8 37,4 69,3 100,5 128,1 

21 2 24,0 48,9 78,7 114,2 148,7 

22 2 23,3 50,3 83,7 124,0 176,3 

23 2 24,5 50,5 80,9 111,4 146,6 

24 2 24,2 47,5 78,3 117,7 157,8 

25 2 25,6 46,6 78,5 110,5 146,3 

26 2 23,9 48,2 78,0 114,7 148,3 

31 3 24,3 49,6 80,3 114,5 148,1 

32 3 23,5 46,6 72,3 107,5 135,9 

33 3 23,8 40,8 68,8 103,1 135,9 

34 3 22,6 38,9 70,6 107,7 135,6 

35 3 23,6 41,4 71,1 103,8 134,8 

36 3 23,1 43,0 70,8 106,6 134,0 

Anhangstabelle 9: Lebendmasse der Broiler (g) im zweiten Broilerversuch 

Versuchswoche 


11 1 172 385 589 1200 1883 

11 1 163 287 794 1528 1393 

11 1 135 319 708 1462 1746 

11 1 156 434 750 1216 1987 

11 1 178 352 856 1411 1652 

11 1 137 421 816 1336 1797 

11 1 171 331 917 1172 1672 

11 1 167 434 879 1223 2202 

11 1 143 425 690 933 1796 

11 1 115 442 668 1205 1790 

12 1 171 484 736 1364 1990 

12 1 131 370 831 1340 1610



12 1 135 428 939 1148 2353 

12 1 154 384 816 1626 1640 

12 1 138 477 976 1312 1643 

12 1 146 391 780 1220 1986 

12 1 147 400 734 1235 1804 

12 1 175 372 845 1365 2010 

12 1 158 389 769 1498 1840 

12 1 68 

13 1 195 446 875 1386 2151 

13 1 170 377 773 1370 1972 

13 1 183 452 636 1420 1724 

13 1 169 407 939 1462 2044 

13 1 166 429 915 1385 1997 

13 1 149 507 857 1395 2042 

13 1 180 292 839 1134 1927 

13 1 159 393 835 1547 1700 

13 1 111 478 866 1483 2155 

13 1 137 438 747 1132 1487 

14 1 142 437 955 1141 2104 

14 1 106 301 868 1452 2152 

14 1 159 320 672 1515 1946 

14 1 171 412 595 1166 1725 

14 1 132 258 808 1580 1902 

14 1 156 401 874 1290 2072 

14 1 163 395 744 1342 1762 

14 1 123 373 791 1292 2156 

14 1 148 356 789 1422 2109 

14 1 122 478 724 1312 1906 

15 1 168 314 849 1335 1809 

15 1 191 415 1042 1408 2122 

15 1 157 271 538 1284 2000 

15 1 152 383 763 993 1823 

15 1 161 250 836 1777 1337 

15 1 185 501 522 1439 1913 

15 1 130 395 822 1166 1560 

15 1 135 435 666 1370 2525 

15 1 136 260 512 905 1956 

15 1 87 391 873 811 991 

16 1 136 356 744 1088 1617 

16 1 159 389 785 1390 1107 

16 1 173 382 728 1189 1148 

16 1 144 301 791 1396 770 

16 1 104 180 782 1354 1604



16 1 122 296 709 773 2057 

16 1 142 328 531 1097 1260 

16 1 136 202 486 761 1972 

16 1 129 384 355 806 2019 

16 1 112 276 395 577 1668 

21 2 182 467 444 1470 2096 

21 2 176 415 811 1331 1066 

21 2 196 290 906 1655 2358 

21 2 110 244 609 1453 1238 

21 2 186 466 866 1026 1618 

21 2 185 450 891 1417 2377 

21 2 166 480 535 1582 2058 

21 2 104 293 1022 1395 2188 

21 2 143 455 877 745 2006 

21 2 124 525 954 809 2024 

22 2 161 368 726 1389 1550 

22 2 180 324 956 1335 1952 

22 2 126 350 898 1543 2063 

22 2 158 491 888 1244 1971 

22 2 142 473 773 1075 1746 

22 2 186 471 661 1498 1782 

22 2 181 382 933 1392 2149 

22 2 147 446 741 1324 1920 

22 2 138 445 891 1533 1909 

22 2 127 409 830 1586 2260 

23 2 167 459 921 1515 2274 

23 2 181 382 828 1072 1987 

23 2 148 413 861 1226 1840 

23 2 166 478 874 1503 2092 

23 2 176 365 706 1393 1752 

23 2 172 407 894 1275 1697 

23 2 157 440 728 1496 1548 

23 2 179 435 808 1416 1577 

23 2 176 462 748 1293 2256 

23 2 141 420 936 1035 2121 

24 2 135 313 925 1500 1500 

24 2 164 373 801 1484 1862 

24 2 162 407 616 1522 2213 

24 2 158 384 834 1268 1984 

24 2 149 424 881 1264 2200 

24 2 167 415 768 971 2159 

24 2 147 456 788 1452 1871 

24 2 150 400 853 1330 1896 

24 2 187 407 730 1242 1940



24 2 164 461 730 1242 2212 

25 2 191 364 695 1378 1952 

25 2 163 446 813 1356 2333 

25 2 169 344 731 1155 2003 

25 2 176 413 707 1111 1990 

25 2 146 415 721 1148 1704 

25 2 152 364 935 1581 1689 

25 2 142 357 874 1338 1805 

25 2 198 455 913 1209 1720 

25 2 154 360 650 1105 1866 

25 2 167 432 704 1074 1530 

26 2 195 434 871 1420 1477 

26 2 176 400 756 1066 1935 

26 2 187 365 958 1018 1612 

26 2 164 487 613 1500 1685 

26 2 153 334 656 1138 2134 

26 2 152 343 724 1342 2057 

26 2 139 366 950 1149 1880 

26 2 114 402 662 1271 1955 

26 2 117 516 718 1033 1625 

26 2 132 281 616 1479 1462 

31 3 148 450 677 1338 1750 

31 3 149 461 822 1375 1980 

31 3 161 432 815 1362 1804 

31 3 190 480 817 1295 1252 

31 3 171 469 769 1538 1894 

31 3 139 403 850 1151 1965 

31 3 167 443 877 1463 2005 

31 3 154 397 937 1042 2146 

31 3 148 323 846 1183 2254 

31 3 128 320 664 1227 1866 

32 3 165 385 475 1063 1900 

32 3 151 454 662 1394 2186 

32 3 165 331 828 1402 1331 

32 3 149 408 898 1210 1852 

32 3 150 362 760 1462 1857 

32 3 167 321 841 1098 2042 

32 3 116 372 595 1260 1976 

32 3 135 433 751 843 1572 

32 3 126 382 696 906 1125 

32 3 161 340 697 1280 1124 

33 3 172 308 680 1390 1254 

33 3 138 378 444 1330 1870



33 3 156 283 675 1034 1471 

33 3 126 367 676 1122 1596 

33 3 142 398 579 1065 1533 

33 3 148 312 798 907 1930 

33 3 152 365 800 840 1400 

33 3 148 339 600 1196 2053 

33 3 122 349 755 1272 1747 

33 3 115 239 653 1059 

34 3 189 248 756 1268 1873 

34 3 142 323 648 840 2168 

34 3 140 338 960 979 1794 

34 3 145 343 619 1056 1658 

34 3 100 318 558 1136 1458 

34 3 115 356 658 1165 1992 

34 3 144 343 699 1199 1703 

34 3 133 294 736 1394 1760 

34 3 147 258 553 1333 1216 

34 3 125 503 781 1514 1992 

35 3 134 416 625 1247 1892 

35 3 188 325 733 1284 1696 

35 3 131 315 642 1141 1830 

35 3 157 332 734 1151 1982 

35 3 147 321 662 1150 2017 

35 3 123 368 606 1260 1851 

35 3 140 317 627 926 1472 

35 3 158 274 712 1154 1234 

35 3 151 327 428 694 853 

35 3 158 342 

36 3 145 330 472 1418 1820 

36 3 171 267 734 1186 1131 

36 3 145 316 576 1260 1694 

36 3 152 334 864 1106 1698 

36 3 144 340 649 1040 2013 

36 3 139 302 820 1015 1570 

36 3 143 352 618 1106 1530 

36 3 132 344 693 1533 1444 

36 3 137 345 631 894 1720 

36 3 138 422 699 850 2071


Anhangstabelle 10: Tägliche Futteraufnahme der Ferkel (g) im Ferkelversuch I 

Versuchswoche 

Tier Nr. Gruppe 1 2 3 4 5 6 

11 1 1410 2620 3800 5990 7120 5930 

12 1 570 1540 3950 4990 7220 7120 

13 1 720 1150 2790 6120 6950 6040 

14 1 1400 2140 3020 5920 6690 5520 

15 1 1450 1640 3600 6230 6870 6440 

16 1 1190 2280 4010 5490 6860 7150 

17 1 310 800 1550 5990 5120 5690 

18 1 1380 3960 5730 7180 9350 7450 

19 1 1830 2590 4580 8340 9420 7860 

110 1 1170 1440 2610 6220 6890 6610 

111 1 530 1090 2560 5370 5920 5260 

112 1 1450 1690 4270 6410 7280 7940 

21 2 1460 2430 3440 5700 7550 5640 

22 2 1590 3620 5010 7060 7190 8790 

23 2 1130 1750 4680 5640 9010 7320 

24 2 1360 2410 4430 6440 10480 7690 

25 2 1150 1910 3630 6530 8120 6910 

26 2 1410 2560 4520 7470 8130 7110 

27 2 1160 2010 2770 6430 7400 6100 

28 2 750 1370 2160 7620 6510 6680 

29 2 1160 1250 2400 6300 4680 5950 

210 2 1170 1930 3380 6570 7790 6640 

211 2 990 1930 3030 6810 7130 7000 

212 2 850 1520 3050 5820 5800 5560 

31 3 1390 1920 3230 7250 7740 7450 

32 3 1280 2530 3880 6820 7110 6540 

33 3 1240 3020 4600 5420 8080 6960 

34 3 1300 2240 3390 5950 7030 7960 

35 3 880 1480 3210 5750 6930 5940 

36 3 770 1530 2880 6060 6090 7270 

37 3 1640 2340 3780 7220 6920 8000 

38 3 1070 1940 2990 7570 7270 6140 

39 3 1010 1320 2720 7010 5300 6020 

310 3 1260 1900 2840 6810 7150 7020 

311 3 1130 1760 3310 5000 5530 6890 

312 3 1060 1590 3380 5940 5950 5270


Anhangstabelle 11: Lebendmasse der Ferkel (g) im Ferkelversuch I 

Tier 

Nr. 

Versuchswoche 

Gruppe Einstallung 1 2 3 4 5 6 

11 1 7,23 8,63 10,95 14,12 17,21 21,29 23,98 

12 1 6,42 6,89 8,31 12,01 14,29 18,90 23,21 

13 1 6,24 6,97 7,84 10,35 13,47 17,79 21,42 

14 1 5,45 7,31 8,88 11,27 13,82 17,74 20,05 

15 1 5,30 7,01 8,29 11,25 14,04 18,39 21,34 

16 1 5,47 6,24 8,02 11,16 14,23 18,39 22,11 

17 1 5,04 5,21 6,09 7,08 9,53 13,30 16,06 

18 1 4,83 6,49 8,98 13,28 17,10 22,50 25,59 

19 1 6,72 8,91 11,21 14,87 18,66 24,60 28,10 

110 1 5,47 6,56 7,30 9,30 11,90 16,33 19,31 

111 1 5,45 5,82 6,75 8,73 10,84 14,97 17,10 

112 1 6,03 7,46 8,34 11,90 14,62 19,44 22,96 

21 2 6,66 8,14 10,03 12,75 15,76 20,60 23,33 

22 2 7,05 9,15 11,99 16,11 19,65 24,32 28,44 

23 2 5,46 6,80 8,41 12,41 14,88 20,25 23,50 

24 2 5,81 7,42 9,69 13,17 17,32 23,62 26,75 

25 2 5,62 7,15 9,00 11,80 15,13 20,42 23,64 

26 2 5,86 6,95 8,79 11,87 15,55 19,90 22,98 

27 2 4,78 5,99 7,78 10,07 12,49 17,27 19,80 

28 2 5,76 6,27 7,42 8,80 12,22 16,23 19,59 

29 2 5,75 6,90 7,77 10,02 13,64 16,72 19,98 

210 2 6,48 7,65 9,74 12,58 15,28 20,29 23,76 

211 2 5,06 6,22 7,90 9,66 12,38 16,57 19,81 

212 2 5,21 6,45 7,54 9,66 12,10 15,77 18,52 

31 3 6,67 8,35 9,89 12,85 16,37 21,20 25,12 

32 3 6,61 8,28 10,64 13,60 16,97 21,87 24,68 

33 3 6,17 7,59 10,52 14,24 17,12 22,00 24,99 

34 3 5,40 6,79 8,55 11,24 14,01 18,27 21,38 

35 3 5,88 6,92 8,41 11,13 13,99 18,54 20,89 

36 3 5,93 6,61 7,86 10,20 14,05 17,30 21,08 

37 3 6,12 7,74 10,10 12,65 16,61 20,00 24,53 

38 3 5,45 6,68 8,43 10,65 14,26 18,84 21,77 

39 3 5,82 6,82 7,72 10,07 13,60 16,93 19,87 

310 3 4,83 6,06 7,79 10,13 13,35 17,95 21,22 

311 3 5,22 6,37 7,78 10,18 12,46 15,76 19,05 

312 3 5,67 6,96 8,48 11,17 13,08 17,48 19,75


Anhangstabelle 12: Lymphozytenproliferation [Extinktion] der untersuchten Ferkel am 

Ende des ersten Ferkelversuches 

Tier 

Nr. 

Lymphozytenproliferation 

Gruppe mitogenstimuliert unstimuliert 

12 1 0,583 0,236 

13 1 0,525 0,192 

14 1 0,541 0,186 

15 1 0,647 0,234 

16 1 0,553 0,201 

112 1 0,698 0,281 

21 2 0,513 0,179 

23 2 0,665 0,257 

25 2 0,569 0,225 

26 2 0,539 0,205 

29 2 0,723 0,309 

210 2 0,658 0,254 

34 3 0,625 0,218 

35 3 0,517 0,182 

36 3 0,532 0,206 

38 3 0,709 0,321 

39 3 0,496 0,172 

310 3 0,661 0,259


Anhangstabelle 13: Rotes Blutbild und Leukozytenkonzentration der Ferkel am Ende 

des ersten Ferkelversuches 

Tier Nr. Gruppe 

Leukozyten 

[10 9 /l] 

Erythrozyten 

[10 12 /l] 

Hämoglobin 

[g/dl] 

Hämatokrit 

[%] 

12 1 15,0 6,45 11,8 37,6 

13 1 14,5 6,85 12,4 40,1 

14 1 10,3 7,24 12,2 39,9 

15 1 16,6 7,13 12,5 42,0 

16 1 11,8 7,81 13,2 44,8 

112 1 15,5 6,92 11,5 38,4 

21 2 16,6 7,13 12,3 40,2 

23 2 10,6 6,75 11,9 38,3 

25 2 9,9 6,90 12,6 40,6 

26 2 17,2 7,28 12,5 42,9 

29 2 17,2 7,43 12,7 42,1 

210 2 13,7 6,56 12,0 39,2 

34 3 12,5 6,65 12,8 41,5 

35 3 12,9 6,56 11,7 37,1 

36 3 15,0 6,08 11,3 35,6 

38 3 15,1 7,18 13,3 42,8 

39 3 13,0 6,86 12,1 39,5 

310 3 15,9 7,25 12,8 42,3


Anhangstabelle 14: Zusammensetzung der Leukozytenfraktion (%) bei den Ferkeln 

am Ende des ersten Ferkelversuches 

Tier 

Nr. 

Gruppe 

Lymphozyten 

Neutrophile 

Granulozyten 

Leukozyten 

Eosinophile 

Granulozyten 

Basophile 

Granulozyten 

Monozyten 

12 1 80,7 15,9 2,2 0,4 0,8 

13 1 75,3 16,4 5,5 0,1 2,7 

14 1 86,3 8,1 3,2 0,8 1,6 

15 1 70,8 22,1 4,7 0,2 2,2 

16 1 70,3 24,8 2,8 0,7 1,4 

112 1 71,8 23,0 3,9 0,0 1,3 

21 2 87,2 8,7 2,4 0,1 1,6 

23 2 70,5 24,3 3,2 0,3 1,7 

25 2 81,7 11,6 4,3 0,5 1,9 

26 2 72,2 23,2 2,6 0,6 1,4 

29 2 81,5 13,6 2,8 0,5 1,6 

210 2 76,3 19,1 2,5 0,5 1,6 

34 3 72,3 19,3 4,8 0,2 3,4 

35 3 68,3 24,4 4,0 0,8 2,5 

36 3 69,2 23,1 3,9 0,6 3,2 

38 3 76,3 17,8 3,3 0,6 2,0 

39 3 77,9 16,8 3,4 0,2 1,7 

310 3 79,2 14,6 3,1 0,8 2,3


Anhangstabelle 15: Aktivität einiger Plasmaenzyme (U/I) bei den Ferkeln am Ende 

des ersten Ferkelversuches 

Tier 

Nr. 

Enzymaktivität 

Gruppe ALP ?-GT AST ALT 

12 1 201,3 9,44 28,83 26,97 

13 1 316,8 15,75 22,24 38,09 

14 1 178,2 14,24 17,91 28,21 

15 1 320,1 20,27 15,44 21,83 

16 1 359,7 15,86 25,94 25,12 

112 1 244,2 20,73 13,18 20,18 

21 2 257,4 16,21 13,38 40,56 

23 2 214,5 15,75 13,18 21,62 

25 2 359,7 23,16 16,06 24,91 

26 2 339,9 15,86 17,30 19,77 

29 2 300,3 31,27 15,44 21,62 

210 2 306,9 24,20 14,62 25,74 

34 3 267,3 14,13 19,35 23,88 

35 3 290,4 13,90 17,30 25,94 

36 3 313,5 17,37 14,62 25,12 

38 3 323,4 12,97 19,35 30,47 

39 3 303,6 16,68 19,15 26,56 

310 3 333,3 15,86 14,62 19,97


Anhangstabelle 16: Tägliche Futteraufnahme der Sauen (g) und gesamte 

Beifutteraufnahme der Saugferkel (g) 


Laktationstag 

Tier Gruppe 1. - 14. 14. - 28. Beifutter 

Andel 1 3332 2847 2395 

Anke 1 4479 6000 2162 

Alfa 1 4979 5833 380 

Antje 1 5050 6000 296 

Anja 1 4473 5038 1266 

Ilka 1 4793 5417 634 

Inka 1 4386 5500 852 

Randa 1 4557 5500 821 

Lumpi 1 4593 5500 1132 

Irene II 1 4807 6000 695 

Sina II 1 5050 6000 319 

Robe II 1 4800 5500 374 

Sina I 2 5050 6000 602 

Rossi 2 3979 5167 863 

Arne 2 3204 4714 1690 

Stilla 2 3364 5265 1034 

Anneli 2 3661 4173 1613 

Irka 2 3567 5000 593 

Luna 2 4529 5500 654 

Rassel 2 4557 5500 403 

Ingrid 2 4757 5500 701 

Iltis 2 4807 6000 1289 

Rebeka 2 4593 5500 508 

Robbi 2 4593 5500 799 

Irene I 3 3840 5830 2249 

Robe 3 4871 6000 858 

Luxus 3 4836 5833 1086 

Andrea 3 2802 3555 1649 

Amsel 3 4463 6000 1148 

Alexa 3 3378 5167 741 

Silvi 3 4028 5500 609 

Susi 3 4586 6000 581 

Ratter 3 4600 5500 1629 

Anita 3 4771 5264 408 

Luzia 3 4593 5500 563 

Irmi 3 4446 5000 483


Anhangstabelle 17: Lebendmasse der Sauen (kg) 


Laktationstag 

Tier Gruppe 85. 110. 28. 

Andel 1 259 276 231 

Anke 1 249 265 233 

Alfa 1 193 206 188 

Antje 1 250 262 238 

Anja 1 228 245 225 

Ilka 1 211 226 202 

Inka 1 222 235 192 

Randa 1 212 220 196 

Lumpi 1 184 211 177 

Irene II 1 214 226 197 

Sina II 1 242 252 229 

Robe II 1 251 276 234 

Sina I 2 252 266 229 

Rossi 2 223 238 206 

Arne 2 212 229 181 

Stilla 2 241 253 223 

Anneli 2 224 233 196 

Irka 2 242 263 234 

Luna 2 264 276 227 

Rassel 2 194 206 194 

Ingrid 2 177 188 169 

Iltis 2 270 275 265 

Rebeka 2 222 231 206 

Robbi 2 197 210 173 

Irene I 3 214 221 186 

Robe 3 219 234 219 

Luxus 3 201 207 186 

Andrea 3 242 253 210 

Amsel 3 259 270 228 

Alexa 3 248 265 226 

Silvi 3 219 233 196 

Susi 3 246 258 234 

Ratter 3 250 259 231 

Anita 3 258 274 258 

Luzia 3 242 262 223 

Irmi 3 194 210 180


Anhangstabelle 18: Lebendmasse der Saugferkel (kg) 

Laktationstag 


Andel 1 1,43 2,70 4,68 

Andel 1 1,33 3,28 6,69 

Andel 1 1,36 3,49 6,65 

Andel 1 1,14 

Andel 1 1,24 2,88 5,21 

Andel 1 1,13 2,67 5,28 

Andel 1 1,13 4,35 7,38 

Andel 1 1,30 3,27 6,01 

Andel 1 1,37 3,28 5,84 

Andel 1 1,52 4,32 8,03 

Andel 1 0,92 2,26 4,72 

Anke 1 1,25 3,92 7,10 

Anke 1 1,73 3,58 6,21 

Anke 1 1,35 2,44 3,65 

Anke 1 1,36 2,99 4,92 

Anke 1 1,69 4,69 7,07 

Anke 1 1,93 5,33 8,72 

Anke 1 1,16 5,54 9,04 

Anke 1 2,01 5,06 8,75 

Anke 1 1,56 5,31 8,28 

Anke 1 1,90 5,32 9,05 

Alfa 1 1,14 4,00 6,94 

Alfa 1 0,57 2,23 3,99 

Alfa 1 0,93 2,47 5,52 

Alfa 1 1,21 3,37 5,62 

Alfa 1 1,76 4,69 7,79 

Alfa 1 1,39 3,92 7,04 

Alfa 1 1,21 4,08 7,17 

Alfa 1 1,35 4,09 7,32 

Alfa 1 1,36 4,18 7,85 

Alfa 1 1,04 3,02 4,78 

Antje 1 1,67 3,66 6,51 

Antje 1 1,52 

Antje 1 1,70 4,91 8,71 

Antje 1 1,40 3,38 6,57 

Antje 1 1,69 5,41 8,74 

Antje 1 1,60 4,16 7,43 

Antje 1 1,53 4,68 7,46 

Antje 1 1,36 3,63 6,99 

Antje 1 1,05 3,74 5,91 

Antje 1 1,11 4,00 6,63 

Antje 1 1,36 4,87 8,76



Anja 1 1,54 2,68 5,66 

Anja 1 1,91 4,24 6,40 

Anja 1 1,66 3,42 6,20 

Anja 1 1,43 4,03 7,38 

Anja 1 1,38 3,94 6,88 

Anja 1 1,31 3,24 

Anja 1 1,47 3,14 4,15 

Anja 1 1,27 3,61 4,95 

Anja 1 1,61 3,85 6,18 

Ilka 1 1,25 

Ilka 1 1,23 4,99 8,65 

Ilka 1 1,31 4,70 8,29 

Ilka 1 1,71 4,54 7,69 

Ilka 1 1,32 4,43 7,95 

Ilka 1 1,57 

Ilka 1 0,47 

Ilka 1 1,43 4,92 8,58 

Ilka 1 1,36 4,40 7,00 

Ilka 1 1,48 5,37 8,96 

Ilka 1 1,31 4,10 7,67 

Inka 1 2,13 5,17 8,14 

Inka 1 1,96 

Inka 1 1,81 4,64 7,24 

Inka 1 1,70 4,90 7,04 

Inka 1 1,58 4,88 8,14 

Inka 1 1,61 4,75 8,22 

Inka 1 1,24 3,56 5,35 

Inka 1 0,85 3,26 5,16 

Inka 1 2,12 6,08 9,14 

Inka 1 1,99 5,15 8,11 

Inka 1 1,95 3,96 7,19 

Inka 1 1,72 5,18 7,57 

Randa 1 1,56 

Randa 1 1,56 5,18 8,89 

Randa 1 1,44 

Randa 1 1,16 3,68 6,44 

Randa 1 1,45 4,69 8,00 

Randa 1 1,46 3,16 5,91 

Randa 1 1,21 3,21 6,04 

Randa 1 1,25 4,18 7,73 

Randa 1 1,11 4,11 6,23 

Randa 1 0,75 2,35 4,93 

Randa 1 1,57 5,59 9,14 

Lumpi 1 1,15 3,87 6,47 

Lumpi 1 1,38 4,10 7,06 

Lumpi 1 1,12 3,89 6,43 

Lumpi 1 1,19 3,22 6,23 

Lumpi 1 1,20 3,71 6,92



Lumpi 1 1,35 3,48 6,29 

Lumpi 1 1,26 3,47 6,03 

Lumpi 1 1,34 4,26 7,06 

Lumpi 1 1,28 

Lumpi 1 1,33 4,07 6,89 

Lumpi 1 1,10 3,43 6,52 

Irene II 1 2,04 4,84 8,26 

Irene II 1 1,99 6,12 9,43 

Irene II 1 1,93 4,88 8,41 

Irene II 1 1,92 6,33 10,53 

Irene II 1 1,72 

Irene II 1 1,83 5,00 9,05 

Irene II 1 1,72 5,71 8,77 

Irene II 1 1,60 4,09 6,48 

Irene II 1 1,83 5,51 8,72 

Sina II 1 0,91 3,66 7,10 

Sina II 1 1,49 

Sina II 1 1,70 4,27 6,48 


Sina II 1 1,16 4,10 7,99 


Sina II 1 0,89 3,55 7,07 

Sina II 1 1,71 3,19 4,46 

Sina II 1 0,99 3,03 5,46 

Sina II 1 1,41 5,02 8,40 

Sina II 1 1,19 3,58 6,67 

Sina II 1 1,13 4,56 8,41 

Robe II 1 1,05 3,76 5,79 

Robe II 1 1,55 4,26 7,05 

Robe II 1 0,81 

Robe II 1 0,84 

Robe II 1 1,51 4,14 7,04 

Robe II 1 1,08 3,59 5,60 

Robe II 1 1,18 4,35 7,41 

Robe II 1 1,36 4,47 7,63 

Robe II 1 1,12 3,76 6,37 

Robe II 1 1,16 3,80 5,90 

Robe II 1 1,24 4,13 7,04 

Robe II 1 1,47 4,26 5,35 

Sina I 2 1,54 4,93 8,69 

Sina I 2 1,76 4,99 

Sina I 2 1,17 

Sina I 2 2,05 6,29 11,21 

Sina I 2 1,89 5,71 9,53 

Sina I 2 1,88 3,99 5,92 

Sina I 2 1,34 3,98 6,16 

Sina I 2 1,70 5,64 9,66



Sina I 2 1,75 4,54 7,91 

Sina I 2 1,67 5,12 8,85 

Rossi 2 1,30 3,50 6,60 

Rossi 2 1,31 3,57 4,50 

Rossi 2 1,04 

Rossi 2 1,55 4,40 8,16 

Rossi 2 1,08 3,28 6,09 

Rossi 2 1,48 

Rossi 2 1,70 4,98 8,97 

Rossi 2 1,29 2,79 5,70 

Rossi 2 1,16 2,82 5,86 

Rossi 2 1,65 3,85 6,30 

Rossi 2 1,06 3,20 5,45 

Rossi 2 1,64 4,12 6,61 

Arne 2 1,84 5,53 9,20 

Arne 2 1,76 4,62 7,92 

Arne 2 1,61 4,06 6,98 

Arne 2 1,61 5,18 9,04 

Arne 2 1,49 3,53 5,56 

Arne 2 0,99 3,62 6,65 

Arne 2 1,38 3,63 6,38 

Arne 2 1,48 4,51 7,89 

Arne 2 1,59 4,39 8,15 

Arne 2 1,14 

Arne 2 1,29 

Stilla 2 1,67 3,60 6,17 

Stilla 2 1,61 

Stilla 2 1,57 3,59 6,05 

Stilla 2 1,53 3,05 5,90 

Stilla 2 1,48 2,92 5,52 

Stilla 2 1,44 3,72 6,36 

Stilla 2 1,29 

Stilla 2 1,58 3,49 5,98 

Stilla 2 1,67 3,07 5,36 

Stilla 2 1,45 3,46 

Stilla 2 1,22 3,43 5,84 

Stilla 2 1,12 3,03 5,68 

Anneli 2 1,56 3,91 6,54 

Anneli 2 1,52 3,72 6,31 

Anneli 2 1,52 3,63 6,69 

Anneli 2 1,46 4,36 6,78 

Anneli 2 1,31 3,23 5,87 

Anneli 2 0,99 3,34 6,40 

Anneli 2 1,55 3,16 5,60 

Anneli 2 1,65 3,39 5,71 

Anneli 2 1,38 3,29 6,37 

Anneli 2 1,15 3,49 5,74 

Anneli 2 1,02 2,99 5,18



Irka 2 1,54 3,75 6,21 

Irka 2 1,66 4,66 7,94 

Irka 2 1,88 4,80 8,70 

Irka 2 1,40 4,20 7,12 

Irka 2 1,68 3,48 5,75 

Irka 2 1,40 2,84 6,15 

Irka 2 1,59 4,99 9,56 

Irka 2 1,48 3,95 7,27 

Luna 2 1,78 4,72 8,19 

Luna 2 1,75 5,16 9,60 

Luna 2 1,74 5,49 8,71 

Luna 2 1,82 4,66 9,22 

Luna 2 1,64 4,79 8,59 

Luna 2 1,56 4,83 8,37 

Luna 2 1,07 3,12 6,69 

Luna 2 2,02 4,98 9,49 

Luna 2 1,81 5,40 9,68 

Luna 2 1,76 4,87 8,04 

Luna 2 1,48 

Rassel 2 1,57 4,11 7,46 

Rassel 2 1,58 5,27 9,11 

Rassel 2 1,17 3,75 5,96 

Rassel 2 0,94 

Rassel 2 1,51 5,23 8,35 

Rassel 2 1,25 3,99 4,71 

Rassel 2 1,30 

Rassel 2 0,88 3,32 5,37 

Rassel 2 0,63 2,46 3,36 

Rassel 2 1,17 3,57 5,96 

Rassel 2 1,57 4,11 7,46 

Ingrid 2 1,45 2,39 3,74 

Ingrid 2 1,44 4,66 7,19 

Ingrid 2 1,01 3,87 6,77 

Ingrid 2 1,71 4,71 8,05 

Ingrid 2 1,40 4,25 6,11 

Ingrid 2 1,34 4,12 7,21 

Ingrid 2 1,23 3,95 5,93 

Ingrid 2 1,33 4,35 6,71 

Ingrid 2 1,22 4,01 7,15 

Ingrid 2 1,03 3,97 6,79 

Iltis 2 1,72 4,96 8,48 

Iltis 2 1,42 4,18 6,96 

Iltis 2 1,64 4,42 7,43 

Iltis 2 1,74 5,64 8,85 

Iltis 2 1,60 5,11 8,63 

Iltis 2 1,59 3,89 6,44 

Iltis 2 1,81 5,79 9,35 

Iltis 2 1,50 4,45 7,52



Rebeka 2 1,65 4,21 5,27 

Rebeka 2 0,91 

Rebeka 2 1,48 2,95 3,73 

Rebeka 2 1,22 

Rebeka 2 1,20 3,14 6,45 

Rebeka 2 1,58 4,46 7,55 

Rebeka 2 1,43 4,20 7,96 

Rebeka 2 1,23 3,14 5,75 

Rebeka 2 0,99 3,08 5,90 

Rebeka 2 1,57 5,02 9,01 

Rebeka 2 1,25 

Rebeka 2 1,18 

Robbi 2 1,65 5,08 8,04 

Robbi 2 1,50 4,23 7,63 

Robbi 2 1,64 4,77 8,01 

Robbi 2 1,79 4,88 8,51 

Robbi 2 1,37 3,53 7,54 

Robbi 2 1,07 2,28 4,04 

Robbi 2 1,54 3,91 7,07 

Robbi 2 1,69 4,18 7,39 

Irene I 3 1,92 4,21 6,98 

Irene I 3 1,30 4,44 7,54 

Irene I 3 1,55 4,26 6,56 

Irene I 3 1,66 5,28 8,54 

Irene I 3 1,80 3,77 5,78 

Irene I 3 1,34 4,80 7,21 

Irene I 3 1,73 5,89 8,93 

Irene I 3 1,68 4,99 7,67 

Irene I 3 1,29 4,89 7,76 

Irene I 3 1,71 5,42 8,66 

Irene I 3 1,34 4,52 7,11 

Robe I 3 1,13 3,93 6,65 

Robe I 3 0,76 2,60 4,79 

Robe I 3 1,22 3,73 6,02 

Robe I 3 1,18 

Robe I 3 1,57 5,22 8,47 

Robe I 3 1,50 5,12 8,80 

Robe I 3 1,49 

Robe I 3 1,54 4,01 6,67 

Robe I 3 1,06 4,05 7,19 

Robe I 3 1,20 

Robe I 3 1,32 4,40 7,16 

Robe I 3 1,03 4,19 6,61 

Luxus 3 1,89 4,10 7,14 

Luxus 3 1,64 4,68 7,84 

Luxus 3 1,31 3,64 5,73 

Luxus 3 1,68 4,46 6,97



Luxus 3 1,55 4,75 7,33 

Luxus 3 1,60 4,15 7,21 

Luxus 3 1,62 4,22 7,03 

Luxus 3 1,77 4,70 8,23 

Luxus 3 1,49 4,39 6,83 

Luxus 3 1,44 4,76 7,08 

Andrea 3 1,46 3,29 5,71 

Andrea 3 1,69 3,45 5,55 

Andrea 3 1,50 3,22 6,13 

Andrea 3 1,45 2,74 4,46 

Andrea 3 1,30 3,12 5,79 

Andrea 3 1,50 3,57 6,43 

Andrea 3 1,51 3,26 6,10 

Andrea 3 1,56 2,33 3,59 

Andrea 3 1,18 3,18 5,53 

Andrea 3 1,32 2,22 3,28 

Andrea 3 0,97 2,00 2,55 

Amsel 3 1,99 3,09 4,32 

Amsel 3 1,85 

Amsel 3 1,80 2,80 5,67 

Amsel 3 1,94 4,81 8,49 

Amsel 3 1,93 3,82 6,90 

Amsel 3 1,47 3,64 5,97 

Amsel 3 1,62 3,74 5,88 

Amsel 3 1,29 2,45 4,94 

Amsel 3 1,91 5,00 7,93 

Amsel 3 1,74 3,48 6,32 

Amsel 3 1,58 2,73 5,30 

Amsel 3 1,51 3,34 6,45 

Alexa 3 1,81 4,47 7,71 

Alexa 3 1,74 4,09 6,73 

Alexa 3 1,23 3,23 5,25 

Alexa 3 1,82 4,47 6,82 

Alexa 3 1,51 3,93 6,43 

Alexa 3 1,44 3,41 6,30 

Alexa 3 1,69 4,95 8,19 

Alexa 3 1,47 3,62 6,37 

Alexa 3 1,62 4,18 6,75 

Alexa 3 0,91 

Silvi 3 1,85 5,41 10,05 

Silvi 3 1,82 4,79 8,80 

Silvi 3 1,83 5,83 9,98 

Silvi 3 1,69 

Silvi 3 1,48 4,93 9,26 

Silvi 3 1,16 

Silvi 3 1,88 4,76 8,02 

Silvi 3 1,56 5,18 9,04 

Silvi 3 1,78 5,08 9,11



Silvi 3 1,31 

Silvi 3 1,45 4,94 8,58 

Susi 3 1,94 5,86 8,62 

Susi 3 1,77 

Susi 3 1,80 6,17 9,21 

Susi 3 1,81 6,49 10,07 

Susi 3 1,93 6,10 8,90 

Susi 3 1,87 5,33 7,84 

Susi 3 1,92 6,65 10,09 

Susi 3 1,72 5,90 8,97 

Susi 3 1,60 5,36 8,45 

Ratter 3 0,95 2,71 5,60 

Ratter 3 1,00 3,45 4,99 

Ratter 3 1,00 3,90 6,35 

Ratter 3 1,33 4,05 7,18 

Ratter 3 1,22 

Ratter 3 1,32 3,88 6,23 

Ratter 3 1,19 3,63 7,07 

Ratter 3 1,13 3,38 6,00 

Ratter 3 1,61 5,59 8,38 

Ratter 3 1,05 3,85 7,07 

Anita 3 1,07 3,16 5,03 

Anita 3 1,32 3,70 7,75 

Anita 3 1,27 3,47 2,74 

Anita 3 1,39 4,03 7,80 

Anita 3 0,83 

Anita 3 1,37 4,27 7,56 

Anita 3 1,13 4,36 8,27 

Anita 3 1,47 2,32 3,81 

Anita 3 1,48 

Anita 3 1,29 

Anita 3 1,25 3,44 5,34 

Anita 3 0,94 

Luzia 3 1,81 3,35 4,52 

Luzia 3 1,41 3,28 4,83 

Luzia 3 1,54 3,55 5,91 

Luzia 3 1,92 4,01 6,72 

Luzia 3 1,77 

Luzia 3 1,03 

Luzia 3 1,92 4,41 6,77 

Luzia 3 1,61 4,56 7,18 

Luzia 3 1,12 3,15 5,10 

Luzia 3 1,78 4,60 7,23 

Luzia 3 1,68 4,05 6,37 

Luzia 3 1,19 3,41 5,54 

Irmi 3 1,64 3,64 6,51 

Irmi 3 1,04 2,02 3,37 

Irmi 3 0,91



Irmi 3 1,09 1,51 2,71 

Irmi 3 1,30 2,29 5,07 

Irmi 3 1,51 3,92 7,20 

Irmi 3 1,35 2,77 4,57 

Irmi 3 1,94 4,22 7,65 

Irmi 3 1,28 3,15 4,81 

Irmi 3 1,47 

Irmi 3 1,05 

Irmi 3 1,78 4,96 8,01


Anhangstabelle 19: Körpertemperatur der Sauen während der Hochträchtigkeit [°C] 

(jeweils Sonntags wurden keine Messungen durchgeführt) 

1. Durchgang 2. Durchgang 

Trächtigkeitstag Andel Sina Irene I Anke Rossi Robe 

1 2 3 1 2 3 

85. 38,69 38,31 38,19 37,94 37,76 37,78 

86 37,89 36,97 37,36 38,15 37,91 37,88 

87 37,89 37,99 37,79 38,39 37,76 37,89 

88 37,81 38,19 36,99 37,93 37,74 38,13 

89 -* 37,88 - 37,73 37,58 37,87 

90 37,78 - 37,29 - - - 

91 38,19 37,79 37,79 38,28 38,17 37,97 

92 37,48 38,29 37,19 37,98 37,28 37,89 

93 37,94 38,16 37,07 37,89 37,76 37,59 

94 38,28 38,39 37,29 37,79 37,76 37,99 

95 38,19 38,19 37,47 38,69 38,37 38,17 

96 - 37,79 - 38,17 37,88 37,49 

97 37,79 - 37,19 - - - 

98 37,89 37,78 37,78 38,22 37,42 37,78 

99 38,19 37,71 37,78 37,88 37,87 38,08 

100 38,09 37,89 38,17 38,49 37,18 37,18 

101 38,47 37,69 37,98 38,01 37,47 37,61 

102 37,79 37,99 38,17 38,49 37,79 37,54 

103 - 37,92 - 38,79 37,89 38,29 

104 38,29 - 36,89 - 37,58 37,26 

105 37,84 37,58 37,09 38,18 37,98 37,79 

106 38,09 38,33 38,19 37,61 37,88 37,89 

107 37,49 37,99 38,08 38,14 37,09 37,79 

108 37,49 37,79 37,79 37,79 37,79 38,19 

109 37,59 37,65 37,46 38,48 37,77 37,79 

110 - 38,08 - 38,27 - - 

111 37,78 - 37,08 - 37,98 38,01 

112 37,99 38,39 37,73 38,18 37,41 37,68 

113 38,19 38,49 37,89 38,17 37,63 37,96 

114 37,79 38,09 38,29 38,36 37,79 37,39 

115 37,77 37,89 Geburt Geburt 37,77 38,33 

116 38,09 Geburt Geburt Geburt 

117 Geburt 

* Sonntag





Trächtigkeitstag Alfa Arne Luxus Antje Stilla Andrea 

1 2 3 1 2 3 

85. 38,29 38,59 38,37 38,25 37,79 38,19 

86 38,29 37,97 37,58 38,15 38,29 38,26 

87 37,98 37,49 37,36 38,09 38,29 37,89 

88 37,84 37,78 37,56 38,28 38,19 - 

89 -* - - - 38,39 37,79 

90 37,54 37,79 37,68 38,28 - 37,79 

91 37,94 37,88 37,79 38,49 38,29 37,49 

92 37,78 37,81 37,79 38,66 37,76 38,29 

93 38,46 38,19 38,53 37,17 38,59 37,88 

94 38,28 38,13 38,59 37,97 37,79 37,73 

95 37,76 37,79 37,11 38,29 36,91 - 

96 - - - - 38,21 37,79 

97 38,39 36,33 37,45 37,69 - 37,79 

98 37,31 37,29 37,19 37,59 37,86 37,39 

99 37,48 37,49 37,48 37,48 37,79 37,79 

100 38,09 37,89 37,89 37,54 38,06 37,49 

101 38,19 37,79 37,56 38,18 37,69 38,18 

102 38,05 37,93 37,54 37,79 38,09 - 

103 - - - - 38,03 37,26 

104 38,49 38,13 37,85 38,23 - 37,68 

105 37,98 37,98 37,84 37,44 38,19 38,07 

106 38,55 37,69 37,79 37,69 37,46 37,69 

107 38,18 37,89 37,57 37,78 37,88 37,56 

108 38,48 37,88 37,79 37,99 37,88 37,79 

109 38,63 38,22 37,54 38,19 38,29 - 

110 - - - - 38,19 37,78 

111 38,08 37,40 38,02 37,48 - 37,49 

112 38,29 37,78 37,77 37,79 37,71 37,27 

113 38,06 37,77 38,19 38,39 Geburt 37,19 

114 37,79 Geburt 37,79 37,87 37,23 

115 38,19 38,18 Geburt 37,88 

116 Geburt Geburt Geburt 

117 

* Sonntag





Trächtigkeitstag Anja Anneli Amsel Ilka Irka Alexa 

1 2 3 1 2 3 

85. 38,19 38,29 37,19 38,26 36,78 37,79 

86 37,58 38,18 37,67 38,24 38,09 36,92 

87 37,89 38,29 37,79 38,04 38,89 37,39 

88 38,49 38,48 37,85 38,19 - 37,51 

89 -* 38,24 37,46 - 36,93 - 

90 37,79 - - 37,65 37,29 37,66 

91 38,16 37,79 36,98 38,09 37,79 38,19 

92 38,48 38,29 36,89 38,29 36,69 38,28 

93 38,39 38,32 37,89 37,78 38,49 37,63 

94 38,49 38,49 38,11 38,28 37,78 38,31 

95 37,97 37,24 37,69 37,78 - 37,99 

96 - 38,05 38,04 - 37,59 - 

97 38,29 - - 37,24 37,79 38,15 

98 37,93 37,71 36,88 37,79 37,19 36,48 

99 38,19 37,88 37,35 37,79 37,28 37,28 

100 37,98 38,26 37,77 37,79 37,28 36,37 

101 38,29 37,96 37,79 37,85 37,86 37,29 

102 38,19 38,39 37,78 38,18 - 37,88 

103 - 38,35 37,59 - 38,07 - 

104 38,04 - - 38,37 37,16 37,79 

105 38,29 38,29 37,79 38,19 36,72 37,68 

106 38,49 37,79 37,49 37,79 36,61 37,84 

107 38,43 37,79 37,99 38,16 37,19 37,59 

108 38,87 37,89 37,47 38,19 36,79 37,38 

109 38,25 37,79 37,29 37,69 - 37,49 

110 - 37,79 37,49 - 38,19 - 

111 37,88 38,39 38,19 38,08 

112 38,29 38,12 37,49 38,49 37,92 37,74 

113 39,49 38,08 38,08 38,19 37,63 37,49 

114 Geburt 38,29 Geburt 38,71 37,79 37,61 

115 37,89 Geburt Geburt 38,19 

116 Geburt Geburt 

117 

* Sonntag





Trächtigkeitstag Inka Luna Silvi Randa Rassel Susi 

1 2 3 1 2 3 

85. 37,62 37,98 37,53 38,09 37,79 37,98 

86 38,18 38,19 38,56 37,85 37,89 37,17 

87 -* - - 38,09 38,19 36,67 

88 37,68 37,93 38,38 38,29 37,89 37,88 

89 37,78 37,89 38,38 - 38,11 - 

90 37,16 38,08 38,26 37,19 - 37,97 

91 37,65 37,72 38,23 38,04 38,19 38,01 

92 37,88 38,11 38,29 38,59 38,38 37,01 

93 37,68 38,09 38,26 38,39 38,41 37,29 

94 - - - 37,48 38,29 39,39 

95 37,49 38,09 38,21 39,29 37,79 37,69 

96 37,78 37,78 38,19 - 38,39 - 

97 37,29 37,83 38,23 37,79 - 36,68 

98 37,89 38,09 37,98 37,76 38,09 36,89 

99 37,28 37,78 38,14 37,83 38,02 37,48 

100 37,88 37,91 38,19 37,39 38,09 37,03 

101 - - - 37,79 37,44 37,08 

102 38,15 38,16 38,27 37,79 38,14 37,66 

103 38,07 39,09 38,21 - 38,18 - 

104 37,48 38,78 38,21 37,72 - 36,74 

105 37,79 37,58 38,24 38,04 37,79 37,24 

106 37,56 37,98 38,28 38,26 38,19 37,77 

107 37,78 37,78 37,89 37,58 38,19 37,29 

108 - - - 38,19 37,18 37,54 

109 37,69 37,78 37,79 38,39 36,89 37,06 

110 37,99 37,36 38,16 - 38,29 - 

111 38,09 38,17 38,09 38,18 37,54 

112 37,41 37,91 38,29 38,05 37,75 37,39 

113 37,91 37,79 37,88 Geburt 38,13 37,29 

114 37,86 37,86 38,29 Geburt 38,02 

115 Geburt Geburt Geburt 37,87 

116 38,25 

117 Geburt 

* Sonntag





Trächtigkeitstag Lumpi Ingrid Ratter Irene II Iltis Anita 

1 2 3 1 2 3 

85. 36,81 38,09 37,49 38,08 37,89 38,68 

86 37,48 37,61 37,73 38,14 37,89 38,02 

87 37,68 38,08 37,19 36,66 - 38,38 

88 37,53 - 37,89 36,96 37,19 38,39 

89 -* 38,25 - 37,36 38,09 - 

90 37,71 38,29 38,01 - 37,82 38,55 

91 37,78 37,08 37,79 37,61 37,59 38,17 

92 38,14 38,02 37,57 38,11 38,16 38,15 

93 36,99 38,45 37,49 38,08 39,06 38,29 

94 37,37 38,08 38,01 38,09 - 38,03 

95 37,34 - 39,38 37,79 37,87 38,19 

96 - 37,69 - 37,88 38,06 - 

97 37,49 38,06 37,39 - 38,17 38,18 

98 37,41 38,19 37,49 37,91 37,79 38,34 

99 37,24 37,89 37,48 37,95 38,09 38,25 

100 37,47 38,05 36,95 38,36 37,87 38,18 

101 37,51 38,19 37,77 37,98 - 37,94 

102 37,79 - 37,46 37,88 37,48 38,25 

103 - 38,13 - 37,87 37,89 - 

104 36,89 38,29 37,39 - 38,19 38,29 

105 37,49 38,29 37,45 38,08 37,81 38,15 

106 37,79 37,29 37,65 38,45 37,97 38,29 

107 37,22 37,78 37,39 37,32 38,12 38,59 

108 37,78 37,99 37,99 37,89 - 38,39 

109 38,31 - 38,25 37,84 37,94 38,70 

110 - 37,98 - 37,65 37,92 - 

111 38,39 37,79 37,95 - 37,88 38,24 

112 37,54 38,14 38,01 38,09 37,91 Geburt 

113 36,68 38,35 37,08 38,29 38,13 

114 37,39 38,26 37,19 37,33 Geburt 

115 38,33 37,25 37,98 Geburt 

116 Geburt Geburt Geburt 

117 

* Sonntag





Trächtigkeitstag Sina II Rebeka Luzia Robe II Robbi Irmi 

1 2 3 1 2 3 

85. 38,17 37,79 38,79 37,89 37,45 37,56 

86 38,17 37,56 37,86 38,05 37,69 37,79 

87 38,18 38,29 38,72 37,77 37,89 38,38 

88 38,22 38,19 38,34 38,35 38,21 - 

89 -* - - 38,09 - 38,13 

90 38,09 37,96 38,45 - 37,74 38,06 

91 38,16 38,19 38,67 37,67 37,78 38,12 

92 37,99 38,23 37,65 38,10 37,09 37,52 

93 37,89 37,79 38,29 37,71 37,49 37,97 

94 38,07 38,11 38,26 37,89 37,76 38,17 

95 37,89 38,28 38,19 38,15 37,59 - 

96 - - - 38,09 - 37,96 

97 37,75 37,94 38,21 - 37,29 37,45 

98 38,21 38,11 38,45 37,95 36,69 37,83 

99 38,43 38,23 38,56 37,92 38,14 37,89 

100 37,88 38,15 37,79 37,97 37,36 37,69 

101 37,33 37,87 37,96 37,84 37,81 37,59 

102 38,02 37,79 38,45 37,85 36,99 - 

103 - - - 38,09 - 37,62 

104 37,92 38,21 37,94 - 37,97 37,59 

105 37,62 38,14 37,23 37,76 37,99 37,76 

106 38,09 37,67 37,29 37,99 37,73 38,25 

107 38,09 38,19 38,09 37,86 37,75 37,92 

108 37,79 38,45 37,79 37,76 37,69 36,86 

109 37,71 38,36 38,36 37,69 38,34 - 

110 - - - 37,79 - 38,37 

111 37,78 38,27 38,17 - 37,51 37,51 

112 37,83 Geburt 38,01 37,76 37,41 37,21 

113 Geburt 38,09 38,18 37,39 37,79 

114 38,72 37,91 38,01 Geburt 

115 Geburt 37,79 38,61 

116 Geburt Geburt 

117 

* Sonntag


Anhangstabelle 25: Körpertemperatur der Sauen während der Laktation [°C] (jeweils 

Sonntags wurden keine Messungen durchgeführt) 


Laktationstag Andel Sina I Irene I Anke Rossi I Robe I 

1 2 3 1 2 3 

1 - 38,89 38,18 39,29 38,86 39,69 

2 37,77 38,49 39,99 39,29 - - 

3 38,04 - - 38,68 38,21 38,49 

4 38,09 38,69 38,79 - 38,29 38,54 

5 38,19 38,27 39,00 38,49 38,48 38,38 

6 38,29 38,89 38,88 38,29 38,58 38,51 

7 38,69 39,35 39,19 38,19 38,29 38,39 

8 -* 38,49 39,28 38,29 38,48 37,79 

9 38,52 38,99 38,86 38,29 - - 

10 38,38 - - 37,45 38,18 38,27 

11 38,18 38,18 38,99 - 38,29 38,29 

12 37,89 38,39 38,81 38,09 38,49 38,49 

13 38,48 38,99 38,79 38,06 38,31 38,26 

14 38,08 38,49 38,89 38,19 38,21 38,49 

15 - 38,19 38,88 37,78 38,01 38,09 

16 38,03 38,21 38,88 38,84 - - 

17 38,23 - - 38,05 38,58 38,28 

18 38,69 38,18 38,69 - 37,87 38,49 

19 38,29 38,29 38,87 39,28 38,62 38,31 

20 37,88 37,79 39,19 38,68 37,98 37,89 

21 38,18 37,79 39,39 38,58 38,29 38,77 

22 - 38,29 38,59 38,39 38,29 38,38 

23 38,19 37,79 38,37 38,66 - - 

24 37,79 - - 38,76 38,98 38,03 

25 38,18 37,84 38,69 - 38,87 38,19 

26 38,19 37,69 38,53 38,29 37,57 38,68 

27 38,29 37,46 38,99 38,49 38,29 38,59 

28 37,88 37,79 38,69 

* Sonntag





Laktationstag Alfa Arne Luxus Antje Stilla Andrea 

1 2 3 1 2 3 

1 38,79 38,29 37,89 39,39 39,09 - 

2 -* 38,39 - 38,28 40,49 38,49 

3 38,69 38,21 38,18 - 39,47 38,29 

4 38,76 - 37,44 38,68 38,49 37,79 

5 39,04 37,19 38,66 39,41 39,89 37,49 

6 38,44 37,89 38,19 38,68 - 37,79 

7 39,22 38,27 39,05 38,18 38,99 38,49 

8 39,79 37,68 38,71 38,78 38,69 - 

9 - 36,79 - 38,51 38,14 37,18 

10 38,99 38,27 38,63 - 36,81 37,29 

11 39,29 - 38,57 38,47 38,09 37,19 

12 38,96 38,27 39,44 38,21 38,29 36,99 

13 39,61 37,79 38,98 38,47 - 37,58 

14 39,19 38,29 38,78 38,39 37,91 37,79 

15 39,38 38,63 38,88 38,41 38,39 - 

16 - 38,21 - 38,52 38,16 37,18 

17 38,74 38,25 38,77 - 37,49 38,07 

18 39,39 - 38,69 38,21 37,89 38,04 

19 39,49 37,46 39,19 38,45 38,09 37,87 

20 39,07 38,39 38,91 38,28 - 38,27 

21 38,79 38,59 38,89 37,89 38,11 38,09 

22 39,48 38,49 39,15 38,61 37,89 - 

23 - 38,14 - 38,49 38,49 38,49 

24 38,84 38,39 39,17 - 38,09 38,29 

25 37,93 - 38,17 38,46 38,19 38,29 

26 38,39 37,89 38,31 38,54 38,19 37,29 

27 38,99 37,79 38,61 38,69 - 38,24 

28 37,39 38,51 38,14 

* Sonntag





Laktationstag Anja Anneli Amsel Ilka Irka Alexa 

1 2 3 1 2 3 

1 39,18 38,53 39,18 38,68 38,28 38,29 

2 38,39 38,59 38,16 38,88 - - 

3 38,29 - 38,28 - 38,19 38,26 

4 -* 38,56 38,13 38,71 37,79 38,37 

5 37,85 37,79 - 38,86 37,49 38,07 

6 37,98 39,99 38,09 39,18 38,29 38,27 

7 38,44 38,99 38,29 38,69 38,29 38,16 

8 37,95 37,28 37,58 38,79 38,69 38,47 

9 37,49 38,19 38,31 38,79 - - 

10 37,89 - 37,88 - 38,66 37,49 

11 - 38,28 38,29 38,39 38,66 37,79 

12 37,91 38,12 - 38,69 38,06 37,36 

13 37,87 38,19 37,79 38,39 38,51 37,79 

14 37,88 38,38 37,78 38,69 38,39 37,69 

15 37,58 38,15 37,78 38,49 38,66 38,28 

16 37,89 - 37,79 38,53 - - 

17 38,48 38,06 37,79 - 37,49 38,44 

18 - 38,47 38,15 38,49 37,98 38,26 

19 38,32 38,49 - 38,19 37,69 38,31 

20 38,21 38,29 38,29 38,66 38,04 38,16 

21 38,35 38,39 37,86 38,49 37,78 38,13 

22 37,94 38,14 37,28 38,87 38,38 37,88 

23 38,19 - 38,03 38,49 - - 

24 38,28 38,59 37,96 - 38,38 37,97 

25 - 38,44 37,79 38,49 38,29 37,92 

26 37,78 38,63 - 38,29 38,68 37,76 

27 38,05 38,59 38,29 38,49 37,87 37,49 

28 

* Sonntag





Laktationstag Inka Luna Silvi Randa Rassel Susi 

1 2 3 1 2 3 

1 40,01 38,44 39,79 38,71 39,69 - 

2 38,68 38,38 39,18 39,28 38,78 39,27 

3 38,47 38,49 39,19 38,69 39,19 38,83 

4 38,68 37,96 38,73 38,75 38,84 38,08 

5 38,78 38,04 38,59 - - 37,15 

6 38,69 - 38,89 38,27 37,88 38,58 

7 -* 38,48 - 38,79 37,34 38,19 

8 38,38 38,18 38,69 38,73 38,46 - 

9 38,53 38,19 38,89 38,42 37,99 38,35 

10 38,18 38,18 38,49 38,98 38,53 38,09 

11 38,46 38,64 38,79 38,86 38,57 38,11 

12 38,18 38,73 37,91 - - 38,16 

13 38,69 - 38,88 38,47 38,07 37,74 

14 - 38,48 - 38,92 38,57 38,86 

15 38,79 37,86 38,99 38,87 38,44 - 

16 38,39 38,58 38,67 38,66 38,42 38,06 

17 38,43 38,39 38,74 38,54 38,32 38,47 

18 38,39 38,39 38,78 38,18 38,28 38,74 

19 38,59 38,09 38,79 - - 38,58 

20 38,79 - 38,53 38,46 37,78 38,23 

21 - 38,19 - 38,32 38,46 38,03 

22 38,29 38,09 38,46 38,65 38,03 - 

23 37,89 37,79 38,16 38,84 38,08 38,19 

24 38,69 38,27 38,49 38,21 38,05 38,07 

25 37,88 38,51 38,57 38,51 37,89 38,19 

26 38,81 38,33 38,72 - - 38,09 

27 38,74 - 38,93 38,74 38,02 38,39 

28 38,27 38,77 38,39 

* Sonntag





Laktationstag Lumpi Ingrid Ratter Irene II Iltis Anita 

1 2 3 1 2 3 

1 38,59 38,29 - 38,34 - 39,65 

2 -* 38,16 38,02 - 38,53 39,40 

3 38,29 38,51 38,06 38,77 38,52 38,96 

4 38,64 38,79 37,38 38,64 38,49 38,84 

5 38,65 38,65 38,33 38,79 37,84 - 

6 38,64 38,65 37,69 38,29 38,42 38,91 

7 38,77 - 38,46 38,17 38,92 39,14 

8 39,31 38,99 - 38,31 - 38,88 

9 - 38,71 37,97 - 38,73 39,00 

10 38,64 38,69 37,54 38,32 38,69 38,91 

11 38,48 38,89 37,64 38,22 38,89 38,09 

12 38,86 38,44 37,77 38,09 38,75 - 

13 38,52 38,76 37,86 37,91 38,46 38,85 

14 38,37 - 36,51 38,06 38,58 38,89 

15 38,54 38,35 - 38,67 - 39,41 

16 - 38,48 37,51 - 38,71 39,51 

17 38,53 38,84 37,63 38,03 38,33 38,55 

18 38,31 38,44 37,62 38,21 38,29 38,49 

19 38,29 38,43 37,55 38,46 38,42 - 

20 38,07 38,41 37,52 37,82 38,78 38,46 

21 38,53 - 37,95 38,63 38,41 38,59 

22 38,38 38,67 - 37,17 - 38,11 

23 - 38,37 37,46 - 38,19 37,51 

24 38,34 38,49 37,62 37,68 37,71 38,57 

25 38,31 38,55 37,51 37,75 38,31 38,29 

26 38,73 38,31 37,62 38,37 37,59 - 

27 38,32 38,56 37,56 38,29 38,31 38,41 

28 37,11 38,61 

* Sonntag





Laktationstag Sina II Rebeka Luzia Robe II Robbi Irmi 

1 2 3 1 2 3 

1 38,49 39,46 38,58 - 38,79 39,03 

2 38,28 38,78 - 38,04 - - 

3 38,49 38,37 38,71 38,39 38,48 38,97 

4 -* 38,41 38,64 38,73 39,32 39,19 

5 38,08 - 38,56 38,05 37,95 39,82 

6 38,77 38,28 38,73 36,91 38,19 39,04 

7 38,11 37,98 38,91 37,29 38,94 38,62 

8 38,35 38,84 38,23 - - 38,69 

9 38,26 37,97 - 37,44 38,19 - 

10 38,17 38,11 39,11 37,89 38,79 38,58 

11 - 38,61 39,19 38,02 39,09 38,35 

12 38,93 - 39,28 36,67 39,04 37,85 

13 39,09 37,91 39,09 37,91 37,23 37,99 

14 39,47 38,21 38,22 37,59 37,59 38,16 

15 38,48 37,55 38,29 - - 38,09 

16 37,26 37,62 - 37,34 38,13 - 

17 37,79 37,93 38,44 37,97 38,19 38,13 

18 - 38,13 38,65 37,91 37,23 38,05 

19 37,83 - 38,37 37,47 37,47 38,14 

20 38,01 38,19 37,74 37,29 37,96 38,44 

21 37,44 38,29 38,63 37,39 37,75 38,26 

22 37,57 38,52 38,29 - - 38,39 

23 38,12 38,13 - 37,28 37,82 - 

24 38,09 37,76 37,75 37,57 38,04 38,35 

25 - 37,79 38,46 37,75 37,75 38,01 

26 37,62 - 38,18 37,29 38,39 38,15 

27 38,12 38,31 38,43 38,29 38,39 

28 

* Sonntag


Anhangstabelle 31: Lymphozytenproliferation der Sauen [Extinktion] 



Laktationstag 


mitogenst. unstimul. mitogenst. unstimul. mitogenst. unstimul. 

Andel 1 0,547 0,198 0,895 0,442 0,663 0,259 

Anke 1 0,682 0,247 0,695 0,279 0,628 0,215 

Alfa 1 0,597 0,232 0,728 0,365 0,647 0,235 

Antje 1 0,783 0,319 0,645 0,229 0,694 0,275 

Anja 1 0,638 0,235 0,821 0,385 0,731 0,299 

Ilka 1 0,742 0,329 0,674 0,261 0,686 0,287 

Inka 1 0,581 0,241 0,756 0,356 0,581 0,241 

Randa 1 0,629 0,269 0,876 0,487 0,534 0,207 

Lumpi 1 0,584 0,195 0,789 0,385 0,679 0,263 

Irene II 1 0,714 0,267 0,811 0,399 0,654 0,251 

Sina II 1 0,659 0,245 0,599 0,213 0,769 0,314 

Robe II 1 0,585 0,209 0,846 0,405 0,593 0,201 

Sina I 2 0,763 0,305 0,685 0,242 0,571 0,219 

Rossi 2 0,581 0,192 0,731 0,287 0,644 0,233 

Arne 2 0,694 0,286 0,718 0,289 0,689 0,254 

Stilla 2 0,611 0,234 0,759 0,341 0,592 0,204 

Anneli 2 0,567 0,205 0,818 0,413 0,631 0,219 

Irka 2 0,658 0,231 0,749 0,335 0,719 0,255 

Luna 2 0,621 0,248 0,653 0,259 0,552 0,208 

Rassel 2 0,644 0,251 0,776 0,347 0,663 0,246 

Ingrid 2 0,536 0,189 0,612 0,221 0,519 0,181 

Iltis 2 0,678 0,265 0,787 0,383 0,773 0,309 

Rebeka 2 0,521 0,185 0,879 0,455 0,611 0,225 

Robbi 2 0,701 0,259 0,667 0,274 0,542 0,184 

Irene I 3 0,555 0,201 0,711 0,325 0,624 0,222 

Robe 3 0,617 0,221 0,689 0,263 0,594 0,199 

Luxus 3 0,733 0,269 0,729 0,321 0,672 0,271 

Andrea 3 0,581 0,214 0,663 0,237 0,652 0,233 

Amsel 3 0,527 0,185 0,597 0,212 0,532 0,188 

Alexa 3 0,704 0,259 0,729 0,289 0,741 0,311 

Silvi 3 0,611 0,227 0,774 0,352 0,649 0,251 

Susi 3 0,572 0,202 0,747 0,386 0,718 0,296 

Ratter 3 0,603 0,219 0,649 0,236 0,609 0,196 

Anita 3 0,635 0,226 0,809 0,378 0,627 0,252 

Luzia 3 0,666 0,263 0,865 0,458 0,577 0,213 

Irmi 3 0,625 0,247 0,708 0,277 0,726 0,263


Anhangstabelle 32: Lymphozytenproliferation der untersuchten Saugferkel 

[Extinktion] nach dem Absetzen am 28. Laktationstag 


Ferkel von Gruppe mitogenstimuliert unstimuliert 

Andel 1 0,687 0,299 

Anke 1 0,537 0,193 

Alfa 1 0,654 0,249 

Antje 1 0,503 0,181 

Anja 1 0,575 0,208 

Ilka 1 0,716 0,321 

Inka 1 0,679 0,257 

Randa 1 

Lumpi 1 0,691 0,283 

Irene II 1 0,649 0,235 

Sina II 1 0,741 0,319 

Robe II 1 0,526 0,199 

Sina I 2 0,571 0,208 

Rossi 2 0,625 0,211 

Arne 2 0,686 0,273 

Stilla 2 0,596 0,215 

Anneli 2 0,707 0,304 

Irka 2 0,743 0,323 

Luna 2 0,664 0,263 

Rassel 2 0,632 0,243 

Ingrid 2 0,611 0,206 

Iltis 2 0,619 0,232 

Rebeka 2 0,652 0,256 

Robbi 2 0,538 0,195 

Irene I 3 0,590 0,211 

Robe 3 0,704 0,318 

Luxus 3 0,664 0,252 

Andrea 3 0,641 0,234 

Amsel 3 

Alexa 3 0,559 0,182 

Silvi 3 0,616 0,205 

Susi 3 0,735 0,313 

Ratter 3 0,518 0,183 

Anita 3 

Luzia 3 0,564 0,204 

Irmi 3 0,602 0,217


Anhangstabelle 33: Rotes Blutbild und Leukozytenkonzentration der Sauen am 85. 


Tier 

Gruppe 

Leukozyten 

[10 9 /l] 

85. Trächtigkeitstag 

Erythrozyten 

[10 12 /l] 

Hämoglobin 

[g/dl] 

Hämatokrit 

[%] 

Andel 1 15,6 5,21 11,8 34,0 

Anke 1 13,5 2,37 5,3 15,6 

Alfa 1 18,3 5,80 11,3 33,8 

Antje 1 12,8 8,23 17,0 52,3 

Anja 1 16,6 6,75 14,0 41,0 

Ilka 1 25,1 6,32 13,6 40,1 

Inka 1 14,0 3,74 7,7 23,9 

Randa 1 13,8 7,44 15,0 45,1 

Lumpi 1 10,3 6,28 12,5 37,7 

Irene II 1 20,0 5,10 11,3 34,1 

Sina II 1 12,8 4,64 10,6 29,3 

Robe II 1 13,4 6,63 15,1 46,7 

Sina I 2 11,5 6,59 15,9 45,8 

Rossi 2 14,3 4,15 8,9 26,6 

Arne 2 12,8 5,41 11,8 35,4 

Stilla 2 11,8 6,25 13,7 41,3 

Anneli 2 19,5 6,49 13,9 41,7 

Irka 2 11,8 4,65 10,7 31,0 

Luna 2 11,1 6,07 12,1 38,3 

Rassel 2 13,9 6,93 14,5 43,2 

Ingrid 2 19,2 9,10 18,3 56,6 

Iltis 2 16,6 5,54 12,1 37,1 

Rebeka 2 15,5 8,19 17,3 52,1 

Robbi 2 12,9 8,15 16,9 50,4 

Irene I 3 21,6 5,59 12,6 36,2 

Robe 3 15,6 3,50 7,2 32,3 

Luxus 3 14,7 6,29 12,8 38,9 

Andrea 3 18,9 5,66 13,4 38,7 

Amsel 3 17,8 6,48 13,8 41,8 

Alexa 3 20,0 6,88 15,4 44,5 

Silvi 3 9,3 6,40 12,7 39,5 

Susi 3 21,0 6,63 15,2 46,4 

Ratter 3 10,0 6,41 14,2 43,4 

Anita 3 17,1 5,55 13,2 40,3 

Luzia 3 12,4 5,92 11,3 33,9 

Irmi 3 17,7 6,91 14,3 40,3



Laktationstag 

Tier 

Gruppe 

Leukozyten 

[10 9 /l] 

1. Laktationstag 

Erythrozyten 

[10 12 /l] 

Hämoglobin 

[g/dl] 

Hämatokrit 

[%] 

Andel 1 19,6 3,92 8,9 26,6 

Anke 1 19,1 3,82 8,8 25,3 

Alfa 1 24,4 5,91 12,2 36,3 

Antje 1 15,3 5,52 11,7 34,6 

Anja 1 10,5 5,75 11,3 35,3 

Ilka 1 12,8 6,02 13,0 38,9 

Inka 1 6,6 4,02 9,1 26,4 

Randa 1 15,8 7,21 14,9 43,9 

Lumpi 1 16,2 7,04 14,3 39,9 

Irene II 1 11,5 5,51 13,0 36,6 

Sina II 1 13,9 5,32 11,7 33,4 

Robe II 1 18,1 7,12 14,5 43,9 

Sina I 2 16,0 4,88 11,6 34,3 

Rossi 2 14,0 5,96 13,9 39,3 

Arne 2 19,7 5,81 12,6 38,2 

Stilla 2 12,5 6,65 15,5 44,9 

Anneli 2 23,2 6,06 13,1 39,3 

Irka 2 18,2 4,45 10,3 30,2 

Luna 2 18,4 4,73 9,8 29,8 

Rassel 2 13,0 7,52 15,8 47,2 

Ingrid 2 19,2 5,86 12,2 34,8 

Iltis 2 25,7 5,81 12,9 37,1 

Rebeka 2 10,4 7,29 14,7 45,3 

Robbi 2 6,5 5,71 12,5 34,8 

Irene I 3 9,5 5,11 11,6 34,0 

Robe 3 11,9 5,37 11,9 34,1 

Luxus 3 18,7 5,74 11,6 35,1 

Andrea 3 20,1 5,94 14,1 41,1 

Amsel 3 12,6 5,81 12,7 38,2 

Alexa 3 13,8 5,91 13,1 38,4 

Silvi 3 7,1 6,52 13,3 40,5 

Susi 3 25,4 5,22 12,4 35,8 

Ratter 3 9,9 5,49 12,4 35,1 

Anita 3 21,6 4,82 11,6 34,2 

Luzia 3 10,9 5,76 10,9 32,3 

Irmi 3 12,5 6,13 12,5 36,6



Laktationstag 

Tier 

Gruppe 

Leukozyten 

[10 9 /l] 


Erythrozyten 

[10 12 /l] 

Hämoglobin 

[g/dl] 

Hämatokrit 

[%] 

Andel 1 16,6 5,84 12,8 38,3 

Anke 1 16,7 5,61 12,1 36,9 

Alfa 1 15,4 5,21 10,6 32,1 

Antje 1 19,1 6,18 12,8 39,9 

Anja 1 24,9 6,75 13,8 42,0 

Ilka 1 22,6 6,21 13,0 39,6 

Inka 1 13,4 5,94 12,7 37,0 

Randa 1 14,8 6,17 12,4 36,4 

Lumpi 1 12,1 6,42 12,2 36,9 

Irene II 1 13,8 4,81 11,2 32,4 

Sina II 1 14,3 5,79 12,8 37,4 

Robe II 1 13,5 5,44 12,7 37,4 

Sina I 2 23,1 3,61 8,5 25,3 

Rossi 2 16,9 5,87 13,3 39,7 

Arne 2 27,1 3,85 8,0 25,2 

Stilla 2 12,4 5,98 13,2 40,6 

Anneli 2 19,2 6,95 14,5 45,3 

Irka 2 11,0 5,40 11,9 36,3 

Luna 2 17,8 3,78 7,7 22,9 

Rassel 2 17,9 6,68 14,1 41,4 

Ingrid 2 20,3 5,73 11,4 34,3 

Iltis 2 15,0 5,63 12,3 36,4 

Rebeka 2 18,5 5,94 12,8 37,8 

Robbi 2 14,5 6,33 13,5 39,0 

Irene I 3 16,8 5,98 13,4 40,5 

Robe 3 15,4 4,74 10,2 31,5 

Luxus 3 15,2 5,10 10,4 32,1 

Andrea 3 21,1 3,45 7,9 24,2 

Amsel 3 14,0 5,27 11,3 34,1 

Alexa 3 17,7 5,78 12,7 38,1 

Silvi 3 9,8 5,40 11,1 33,0 

Susi 3 22,2 5,48 12,4 36,9 

Ratter 3 10,2 6,28 14,0 40,6 

Anita 3 23,4 5,82 12,1 38,8 

Luzia 3 20,1 6,05 11,4 33,9 

Irmi 3 17,2 6,42 13,2 39,1


Anhangstabelle 36: Rotes Blutbild und Leukozytenkonzentration der untersuchten 

Saugferkel nach dem Absetzen am 28. Laktationstag 

Ferkel von Gruppe 

Leukozyten 

[10 9 /l] 


Erythrozyten 

[10 12 /l] 

Hämoglobin 

[g/dl] 

Hämatokrit 

[%] 

Andel 1 25,5 7,38 14,5 44,1 

Anke 1 17,7 6,58 12,7 39,4 

Alfa 1 20,1 6,42 12,4 38,6 

Antje 1 23,7 8,34 15,5 48,2 

Anja 1 18,5 5,94 12,8 37,8 

Ilka 1 27,8 7,55 14,8 46,7 

Inka 1 18,0 5,87 12,1 36,5 

Randa 1 13,8 6,48 11,8 36,3 

Lumpi 1 19,8 6,21 12,4 39,0 

Irene II 1 28,6 6,11 11,1 33,5 

Sina II 1 18,2 5,15 10,1 30,5 

Robe II 1 13,3 5,50 10,1 31,7 

Sina I 2 18,8 5,21 10,5 32,0 

Rossi 2 19,7 6,92 13,6 41,1 

Arne 2 20,0 6,58 11,5 37,5 

Stilla 2 15,0 5,98 12,3 37,3 

Anneli 2 23,7 7,52 14,9 47,2 

Irka 2 20,5 7,19 13,4 42,2 

Luna 2 21,8 6,55 13,1 38,3 

Rassel 2 22,5 6,51 13,7 41,1 

Ingrid 2 21,3 5,32 11,1 34,0 

Iltis 2 25,0 6,19 12,1 36,8 

Rebeka 2 22,6 6,06 13,2 39,7 

Robbi 2 18,2 6,37 11,2 33,9 

Irene I 3 13,5 6,58 13,7 40,9 

Robe 3 23,7 6,70 14,3 44,5 

Luxus 3 22,0 5,18 10,1 31,6 

Andrea 3 19,3 6,54 11,8 36,3 

Amsel 3 27,5 6,22 11,5 35,8 

Alexa 3 17,9 6,73 12,4 38,3 

Silvi 3 13,6 6,26 12,1 36,8 

Susi 3 15,5 5,85 11,1 34,0 

Ratter 3 18,0 6,11 11,2 33,9 

Anita 3 24,9 5,34 11,9 35,1 

Luzia 3 20,1 6,05 11,4 33,9 

Irmi 3 21,6 6,16 11,8 36,1


Anhangstabelle 37: Zusammensetzung der Leukozytenfraktion (%) bei den Sauen 

am 85. Trächtigkeitstag 

Tier Gruppe Lymphozyten 

Neutrophile 

Granulozyten 

Leukozyten 

Eosinophile 

Granulozyten 

Basophile 

Granulozyten 

Monozyten 

Andel 1 64,5 31,3 1,5 0,2 2,5 

Anke 1 66,8 26,9 2,8 1,4 2,1 

Alfa 1 67,5 27,4 2,5 1,2 1,4 

Antje 1 60,2 33,7 2,4 0,3 3,4 

Anja 1 59,1 35,4 4,2 0,2 1,1 

Ilka 1 49,7 43,1 2,2 1,3 3,7 

Inka 1 72,4 21,2 2,6 0,7 3,1 

Randa 1 65,4 27,2 3,1 0,1 4,2 

Lumpi 1 52,6 39,8 4,1 0,6 2,9 

Irene II 1 74,2 21,8 1,6 0,1 2,3 

Sina II 1 50,1 43,2 2,4 0,5 3,8 

Robe II 1 61,9 32,6 2,2 1,1 2,2 

Sina I 2 64,4 30,5 0,8 0,6 3,7 

Rossi 2 73,5 20,5 3,6 0,2 2,2 

Arne 2 64,1 29,7 3,3 0,0 2,9 

Stilla 2 81,6 13,1 2,2 0,3 2,8 

Anneli 2 37,8 52,6 2,2 1,1 6,3 

Irka 2 59,5 35,4 2,9 0,3 1,9 

Luna 2 62,8 32,5 2,3 0,9 1,5 

Rassel 2 71,9 21,5 4,1 0,2 2,3 

Ingrid 2 53,9 39,4 3,6 0,5 2,6 

Iltis 2 64,7 28,4 4,2 1,4 1,3 

Rebeka 2 68,7 24,9 4,8 0,1 1,5 

Robbi 2 80,2 13,9 3,5 0,3 2,1 

Irene I 3 57,3 36,6 2,4 1,2 2,5 

Robe 3 66,9 26,2 3,6 0,8 2,5 

Luxus 3 67,9 29,5 1,2 0,3 1,1 

Andrea 3 62,4 32,3 2,2 0,0 3,1 

Amsel 3 79,2 14,7 2,4 1,1 2,6 

Alexa 3 63,4 29,7 4,3 0,4 2,2 

Silvi 3 74,2 19,8 3,4 0,0 2,6 

Susi 3 65,8 27,5 3,6 0,3 2,8 

Ratter 3 61,4 29,9 4,1 0,4 4,2 

Anita 3 46,3 41,7 5,6 1,3 5,1 

Luzia 3 64,1 29,3 4,2 0,3 2,1 

Irmi 3 60,2 33,6 3,6 0,2 2,4



am 1. Laktationstag 


Neutrophile 

Granulozyten 

Leukozyten 

Eosinophile 

Granulozyten 

Basophile 

Granulozyten 

Monozyten 

Andel 1 41,9 52,3 1,1 1,2 3,5 

Anke 1 21,6 74,8 1,5 0,1 2,0 

Alfa 1 43,1 46,7 5,5 1,8 2,9 

Antje 1 32,2 59,1 4,3 0,9 3,5 

Anja 1 76,5 17,3 4,7 0,2 1,3 

Ilka 1 39,7 55,3 3,5 0,2 1,3 

Inka 1 34,3 58,9 3,8 0,6 2,4 

Randa 1 50,6 43,7 2,3 0,0 3,4 

Lumpi 1 61,1 28,9 4,4 1,1 4,5 

Irene II 1 75,2 17,4 5,8 0,2 1,4 

Sina II 1 30,7 62,5 4,3 0,4 2,1 

Robe II 1 18,8 76,7 2,3 0,7 1,5 

Sina I 2 40,9 52,3 2,3 1,1 3,4 

Rossi 2 31,1 65,1 1,6 0,3 1,9 

Arne 2 21,7 71,7 3,3 0,8 2,5 

Stilla 2 21,9 71,7 4,3 0,7 1,4 

Anneli 2 20,2 73,7 3,0 1,1 2,0 

Irka 2 55,4 38,8 3,3 0,8 1,7 

Luna 2 72,5 23,5 1,3 0,1 2,6 

Rassel 2 37,9 55,1 3,5 0,0 3,5 

Ingrid 2 30,8 59,2 5,1 1,4 3,5 

Iltis 2 29,0 63,6 2,8 0,9 3,7 

Rebeka 2 59,4 29,7 5,8 1,0 4,1 

Robbi 2 62,6 31,4 1,9 0,2 3,9 

Irene I 3 61,8 29,6 3,6 0,8 4,2 

Robe 3 49,1 43,4 5,7 0,1 1,7 

Luxus 3 30,0 63,3 3,3 1,1 2,3 

Andrea 3 29,3 65,2 3,3 0,9 1,3 

Amsel 3 48,5 45,5 3,1 1,4 1,5 

Alexa 3 59,3 31,4 4,2 1,4 3,7 

Silvi 3 27,4 65,3 3,6 0,6 3,1 

Susi 3 53,3 34,6 4,2 1,3 6,6 

Ratter 3 61,9 30,8 2,4 1,1 3,8 

Anita 3 16,7 74,4 5,1 1,3 2,5 

Luzia 3 74,5 16,7 4,8 0,1 3,9 

Irmi 3 23,9 68,7 3,8 0,5 3,1



am 28. Laktationstag 


Neutrophile 

Granulozyten 

Leukozyten 

Eosinophile 

Granulozyten 

Basophile 

Granulozyten 

Monozyten 

Andel 1 60,8 33,7 4,1 0,0 1,4 

Anke 1 54,3 38,7 2,9 1,2 2,9 

Alfa 1 53,2 39,9 2,6 0,8 3,5 

Antje 1 54,6 38,0 3,2 0,5 3,7 

Anja 1 62,8 31,6 2,8 0,1 2,7 

Ilka 1 59,0 34,3 3,5 0,4 2,8 

Inka 1 57,7 35,9 3,8 1,1 1,5 

Randa 1 64,6 27,9 3,3 0,3 3,9 

Lumpi 1 54,4 39,3 2,1 0,3 3,9 

Irene II 1 62,3 31,8 3,2 1,1 1,6 

Sina II 1 62,2 31,9 3,6 0,2 2,1 

Robe II 1 47,9 45,5 2,2 0,0 4,4 

Sina I 2 53,6 39,7 2,7 0,2 3,8 

Rossi 2 60,3 33,4 3,5 0,7 2,1 

Arne 2 67,8 26,2 3,6 0,3 2,1 

Stilla 2 68,9 23,4 3,9 0,5 3,3 

Anneli 2 59,1 32,8 3,7 0,9 3,5 

Irka 2 54,8 37,6 4,1 1,3 2,2 

Luna 2 54,8 38,5 3,6 0,7 2,4 

Rassel 2 55,3 41,5 1,1 0,2 1,9 

Ingrid 2 63,2 30,4 3,6 0,9 1,9 

Iltis 2 65,6 32,3 1,2 0,5 0,4 

Rebeka 2 55,5 37,1 3,9 1,0 2,5 

Robbi 2 57,2 35,5 3,9 0,3 3,1 

Irene I 3 65,5 25,5 4,3 1,1 3,6 

Robe 3 42,8 50,5 1,6 1,2 3,9 

Luxus 3 54,2 37,9 4,0 0,8 3,1 

Andrea 3 57,6 36,9 3,0 0,4 2,1 

Amsel 3 61,7 30,6 3,7 0,9 3,1 

Alexa 3 59,0 34,3 4,1 0,0 2,6 

Silvi 3 67,4 27,8 2,5 0,1 2,2 

Susi 3 61,4 31,5 3,9 0,4 2,8 

Ratter 3 54,8 39,9 3,2 0,4 1,7 

Anita 3 65,2 28,2 3,6 0,2 2,8 

Luzia 3 51,1 42,0 2,5 0,1 4,3 

Irmi 3 53,3 37,9 4,3 1,2 3,3


Anhangstabelle 40: Zusammensetzung der Leukozytenfraktion (%) bei den 

untersuchten Saugferkeln nach dem Absetzen am 28. Laktationstag 

Ferkel 

von 

Gruppe 

Lymphozyten 

Neutrophile 

Granulozyten 

Leukozyten 

Eosinophile 

Granulozyten 

Basophile 

Granulozyten 

Monozyten 

Andel 1 74,7 19,8 2,9 0,3 2,3 

Anke 1 58,4 32,6 4,5 1,4 3,1 

Alfa 1 58,9 34,7 3,1 0,8 2,5 

Antje 1 52,1 40,8 2,9 0,3 3,9 

Anja 1 67,6 25,7 3,4 0,1 3,2 

Ilka 1 61,7 30,9 3,5 1,3 2,6 

Inka 1 62,3 32,4 3,2 0,4 1,7 

Randa 1 54,8 38,3 2,6 0,5 3,8 

Lumpi 1 48,7 43,2 2,6 0,6 4,9 

Irene II 1 58,4 35,2 3,1 0,8 2,5 

Sina II 1 70,2 23,5 3,8 0,4 2,1 

Robe II 1 63,8 27,3 3,5 1,1 4,3 

Sina I 2 63,9 30,4 2,7 0,4 2,6 

Rossi 2 61,2 32,5 3,8 0,3 2,2 

Arne 2 65,5 28,1 3,6 0,1 2,7 

Stilla 2 59,7 31,9 4,1 0,5 3,8 

Anneli 2 54,9 36,4 3,8 0,6 4,3 

Irka 2 65,5 28,1 3,7 0,6 2,1 

Luna 2 64,1 31,7 2,4 0 1,8 

Rassel 2 73,2 20,4 4,2 0,3 1,9 

Ingrid 2 59,7 34,9 2,9 0,3 2,2 

Iltis 2 67,7 25,6 4,1 0,9 1,7 

Rebeka 2 69,5 23,7 4,8 0,3 1,7 

Robbi 2 69,3 23,4 3,6 0,6 3,1 

Irene I 3 72,9 21,5 3,1 0,1 2,4 

Robe 3 66,5 26,9 3,4 0,9 2,3 

Luxus 3 47,9 46,2 1,2 0,6 4,1 

Andrea 3 52,4 40,9 2,8 0,3 3,6 

Amsel 3 61,3 31,2 3,5 1,3 2,7 

Alexa 3 57,5 35,0 4,3 0,8 2,4 

Silvi 3 66,3 27,2 3,7 0,5 2,3 

Susi 3 61,7 31,3 3,8 0,7 2,5 

Ratter 3 62,2 32,1 3,9 0,2 1,6 

Anita 3 67,4 25,2 3,4 1,1 2,9 

Luzia 3 63,8 29,3 3,9 0,7 2,3 

Irmi 3 63,3 31,4 2,9 0,2 2,2


Anhangstabelle 41: Aktivität (U/I) der Alkalischen Phosphatase (=ALP) im Blutplasma 

der Sauen 


Alkalische Phosphatase 

Laktationstag 


Andel 1 9,98 40,26 33,50 

Anke 1 43,23 65,84 51,15 

Alfa 1 71,45 30,20 44,88 

Antje 1 50,82 55,44 30,03 

Anja 1 50,82 111,21 58,25 

Ilka 1 70,46 68,97 21,62 

Inka 1 71,61 77,88 62,37 

Randa 1 53,79 31,68 37,95 

Lumpi 1 37,79 48,84 40,26 

Irene II 1 74,58 48,18 31,35 

Sina II 1 30,03 41,91 38,61 

Robe II 1 28,64 49,83 49,83 

Sina I 2 42,24 58,08 36,96 

Rossi 2 51,32 89,76 48,35 

Arne 2 44,55 43,73 31,02 

Stilla 2 36,59 51,81 39,93 

Anneli 2 82,67 62,87 56,43 

Irka 2 26,90 45,21 55,44 

Luna 2 37,62 37,13 24,09 

Rassel 2 74,91 81,18 43,56 

Ingrid 2 55,44 49,83 32,67 

Iltis 2 31,68 36,63 49,23 

Rebeka 2 63,03 87,45 46,70 

Robbi 2 57,75 70,79 32,54 

Irene I 3 31,02 67,32 55,28 

Robe 3 47,03 45,87 34,49 

Luxus 3 63,77 61,88 67,65 

Andrea 3 45,71 64,35 28,38 

Amsel 3 44,06 57,75 46,20 

Alexa 3 45,38 69,30 37,62 

Silvi 3 21,12 49,50 31,02 

Susi 3 26,73 84,65 35,31 

Ratter 3 27,65 42,74 24,75 

Anita 3 39,93 39,27 52,30 

Luzia 3 47,85 67,82 45,54 

Irmi 3 69,63 49,17 42,57


Anhangstabelle 42: Aktivität (U/I) der Gamma-Glutamyl-Transferase (= ?-GT) im 

Blutplasma der Sauen 

Gamma-Glutamyl-Transferase 


Laktationstag 


Andel 1 22,11 26,52 22,81 

Anke 1 28,72 29,47 26,69 

Alfa 1 27,85 30,11 19,76 

Antje 1 25,48 25,30 28,08 

Anja 1 19,69 18,18 12,68 

Ilka 1 26,63 21,08 14,24 

Inka 1 20,73 17,02 17,25 

Randa 1 18,53 18,99 19,22 

Lumpi 1 16,39 17,14 24,20 

Irene II 1 21,89 13,09 11,58 

Sina II 1 20,96 18,35 25,48 

Robe II 1 16,79 19,57 16,79 

Sina I 2 19,63 32,40 22,69 

Rossi 2 19,28 19,34 18,76 

Arne 2 36,48 33,58 19,57 

Stilla 2 16,48 20,44 33,00 

Anneli 2 19,51 17,25 19,80 

Irka 2 20,50 13,90 25,24 

Luna 2 20,27 20,27 24,90 

Rassel 2 20,27 45,16 18,53 

Ingrid 2 22,70 17,49 20,50 

Iltis 2 21,83 23,16 16,39 

Rebeka 2 24,32 24,49 27,50 

Robbi 2 14,65 12,56 14,59 

Irene I 3 12,56 16,21 18,47 

Robe 3 19,95 15,05 14,19 

Luxus 3 31,27 18,47 26,75 

Andrea 3 15,00 17,37 18,30 

Amsel 3 24,20 19,45 23,33 

Alexa 3 24,20 27,44 19,69 

Silvi 3 15,17 12,51 9,38 

Susi 3 12,97 15,17 22,75 

Ratter 3 16,48 17,02 16,44 

Anita 3 23,74 17,14 14,69 

Luzia 3 20,96 20,50 16,44 

Irmi 3 13,43 12,62 13,43


Anhangstabelle 43: Aktivität (U/I) der Aspartat-Amino-Transferase (= AST) im 


Aspartat-Amino-Transferase 


Laktationstag 


Andel 1 14,67 20,72 43,27 

Anke 1 10,83 11,17 9,83 

Alfa 1 19,05 17,05 13,38 

Antje 1 7,72 9,61 7,61 

Anja 1 18,39 34,18 8,94 

Ilka 1 26,22 22,44 10,61 

Inka 1 12,35 29,86 5,78 

Randa 1 9,74 10,67 7,89 

Lumpi 1 14,83 26,21 15,03 

Irene II 1 8,78 46,66 20,18 

Sina II 1 9,89 12,55 14,82 

Robe II 1 12,00 21,83 18,44 

Sina I 2 9,33 12,50 12,05 

Rossi 2 14,89 17,22 17,11 

Arne 2 14,55 31,61 12,56 

Stilla 2 13,21 25,28 20,83 

Anneli 2 16,22 10,50 10,21 

Irka 2 14,66 15,44 10,00 

Luna 2 17,09 16,61 19,55 

Rassel 2 12,55 17,71 11,94 

Ingrid 2 9,00 17,78 6,50 

Iltis 2 13,55 18,89 32,33 

Rebeka 2 19,44 33,61 10,78 

Robbi 2 7,22 48,05 10,09 

Irene I 3 12,22 17,78 10,05 

Robe 3 10,78 46,83 11,22 

Luxus 3 9,50 18,28 14,21 

Andrea 3 23,89 17,94 24,11 

Amsel 3 26,44 12,15 8,89 

Alexa 3 13,55 19,56 16,67 

Silvi 3 11,74 13,39 9,78 

Susi 3 28,33 26,61 7,44 

Ratter 3 10,28 13,00 10,67 

Anita 3 6,12 12,67 14,36 

Luzia 3 4,91 22,44 6,44 

Irmi 3 8,88 22,85 5,67


Anhangstabelle 44: Aktivität (U/I) der Alanin-Amino-Transferase (= ALT) im 



Alanin-Amino-Transferase 

Laktationstag 


Andel 1 19,01 28,83 29,33 

Anke 1 27,78 22,55 18,16 

Alfa 1 31,94 26,05 24,09 

Antje 1 30,77 14,05 19,28 

Anja 1 18,61 21,62 19,66 

Ilka 1 44,05 22,44 11,94 

Inka 1 25,74 29,24 17,44 

Randa 1 15,55 15,78 15,44 

Lumpi 1 19,78 16,67 22,85 

Irene II 1 25,33 18,73 17,91 

Sina II 1 20,44 14,11 16,27 

Robe II 1 25,53 21,00 14,67 

Sina I 2 27,33 15,05 29,72 

Rossi 2 42,27 20,16 35,22 

Arne 2 39,94 30,44 21,83 

Stilla 2 23,54 17,28 20,11 

Anneli 2 18,89 15,94 10,11 

Irka 2 18,11 12,78 18,55 

Luna 2 23,06 13,05 25,12 

Rassel 2 21,78 20,80 16,50 

Ingrid 2 21,22 14,11 18,94 

Iltis 2 12,78 14,44 15,55 

Rebeka 2 23,11 24,55 14,55 

Robbi 2 21,28 19,01 25,94 

Irene I 3 25,89 34,61 31,72 

Robe 3 27,66 26,35 21,66 

Luxus 3 26,39 38,33 20,59 

Andrea 3 40,00 38,44 21,66 

Amsel 3 35,66 13,59 14,78 

Alexa 3 25,83 17,09 25,11 

Silvi 3 18,33 15,17 15,33 

Susi 3 16,55 15,39 16,78 

Ratter 3 15,50 15,94 18,00 

Anita 3 15,55 14,33 18,26 

Luzia 3 26,77 20,22 22,24 

Irmi 3 25,33 23,88 17,66


Anhangstabelle 45: Aktivität einiger Plasmaenzyme (U/I) bei den untersuchten 

Saugferkeln nach dem Absetzen am 28. Laktationstag 

Enzymaktivität 

Ferkel von Gruppe ALP ?-GT AST ALT 

Andel 1 512,10 12,77 25,97 25,08 

Anke 1 343,70 16,33 26,05 36,55 

Alfa 1 263,51 23,50 27,08 23,78 

Antje 1 299,23 14,62 19,47 17,31 

Anja 1 275,72 10,54 26,86 21,28 

Ilka 1 387,42 16,16 19,00 16,39 

Inka 1 345,68 13,90 24,06 36,00 

Randa 1 410,69 10,97 18,03 17,36 

Lumpi 1 212,69 13,43 17,55 19,44 

Irene II 1 212,44 16,21 20,49 13,48 

Sina II 1 255,59 7,80 23,78 27,49 

Robe II 1 257,57 8,05 16,97 20,70 

Sina I 2 561,25 23,85 25,38 24,03 

Rossi 2 408,38 12,68 24,78 34,58 

Arne 2 365,48 13,72 26,87 30,28 

Stilla 2 328,93 16,04 30,70 27,62 

Anneli 2 307,40 10,83 7,52 16,34 

Irka 2 495,50 10,57 10,99 12,70 

Luna 2 358,38 12,74 46,88 27,50 

Rassel 2 293,04 9,73 24,17 19,55 

Ingrid 2 151,14 15,52 17,83 23,16 

Iltis 2 219,70 15,08 21,53 27,00 

Rebeka 2 320,10 15,52 29,14 15,50 

Robbi 2 239,58 9,27 14,61 13,72 

Irene I 3 392,29 12,57 21,83 29,52 

Robe 3 277,21 18,93 29,35 36,48 

Luxus 3 236,12 15,29 34,59 34,80 

Andrea 3 355,33 15,46 34,69 38,34 

Amsel 3 239,42 10,95 22,09 14,03 

Alexa 3 374,89 15,61 17,56 27,11 

Silvi 3 415,97 14,53 16,11 42,78 

Susi 3 242,39 8,63 16,33 24,90 

Ratter 3 246,60 14,85 17,81 14,64 

Anita 3 335,86 13,15 16,28 19,78 

Luzia 3 332,97 19,01 23,89 26,36 

Irmi 3 351,04 7,85 17,56 18,58


Anhangstabelle 46: Rohproteingehalt sowie Gesamtgehalt an Immunglobulin G 1 im 

Kolostrum der Sauen 

Kolostrum 

Tier Gruppe XP [%] IgG 1[Extinktion] 

Andel 1 18,9 0,16 

Anke 1 16,6 0,21 

Alfa 1 18,0 0,20 

Antje 1 15,2 0,60 

Anja 1 16,2 0,26 

Ilka 1 14,2 0,73 

Inka 1 13,2 0,21 

Randa 1 16,2 0,48 

Lumpi 1 15,9 0,28 

Irene II 1 16,7 0,31 

Sina II 1 17,2 0,27 

Robe II 1 16,0 0,30 

Sina I 2 13,6 0,84 

Rossi 2 16,6 0,42 

Arne 2 18,9 0,16 

Stilla 2 16,1 0,10 

Anneli 2 18,7 0,45 

Irka 2 14,3 0,03 

Luna 2 13,7 0,30 

Rassel 2 18,5 0,45 

Ingrid 2 16,9 0,19 

Iltis 2 16,5 0,13 

Rebeka 2 15,7 0,32 

Robbi 2 16,9 0,37 

Irene I 3 15,9 0,98 

Robe 3 14,6 0,18 

Luxus 3 18,3 0,49 

Andrea 3 14,6 0,14 

Amsel 3 14,5 0,36 

Alexa 3 17,4 0,13 

Silvi 3 16,2 0,44 

Susi 3 13,4 0,35 

Ratter 3 16,1 0,76 

Anita 3 16,9 0,19 

Luzia 3 12,9 0,04 

Irmi 3 16,9 0,22


Anhangstabelle 47: Durchschnittliche tägliche Futteraufnahme (g) der Ferkel im 


Versuchswoche 

Bucht Nr. Gruppe 1. + 2. 3. + 4. 

1.1 1 244,6 529,6 

1.2 1 158,6 560,1 

2.1 1 265,4 719,0 

2.2 1 261,1 696,8 

3.1 1 218,5 577,6 

3.2 1 220,9 521,2 

4.1 1 201,4 637,4 

4.2 1 245,3 796,4 

5.1 1 208,0 600,7 

5.2 1 257,7 531,9 

6.1 1 215,7 635,2 

6.2 1 247,9 706,4 

7.1 1 390,7 703,3 

7.2 1 359,6 677,3 

8.1 1 247,9 580,1 

8.2 1 250,3 605,9 

1.1 2 173,2 573,0 

1.2 2 260,5 646,1 

2.1 2 225,9 629,3 

2.2 2 229,0 719,3 

3.1 2 306,5 672,6 

3.2 2 267,4 637,8 

4.1 2 223,0 623,6 

4.2 2 224,9 605,6 

5.1 2 197,3 380,4 

5.2 2 200,4 528,4 

6.1 2 160,5 543,4 

6.2 2 133,9 501,8 

7.1 2 320,4 658,1 

7.2 2 341,3 686,7 

8.1 2 362,1 838,0 

8.2 2 313,9 742,3 

1.1 3 300,0 587,3 

1.2 3 315,1 636,2 

2.1 3 333,7 801,4 

2.2 3 297,9 747,0 

3.1 3 269,3 553,9 

3.2 3 230,1 509,4 

4.1 3 206,6 560,4 

4.2 3 194,1 479,3 

5.1 3 243,0 595,2 

5.2 3 159,2 483,9



6.1 3 325,3 799,4 

6.2 3 356,4 793,9 

7.1 3 423,6 831,4 

7.2 3 357,7 692,0 

8.1 3 293,6 601,3 

8.2 3 285,9 633,6


Anhangstabelle 48: Lebendmasse der Ferkel (kg) im Ferkelversuch II 

Versuchswoche 

Tier Nr. Bucht Nr. Gruppe Einstallung 2 4 

1 1.1 1 6,65 9,15 13,75 

2 1.1 1 5,21 8,40 13,55 

3 1.1 1 7,38 10,90 14,75 

4 1.1 1 6,01 8,60 14,15 

5 1.1 1 4,72 6,85 10,65 

6 1.2 1 4,68 6,75 12,25 

7 1.2 1 6,69 8,3 13,05 

8 1.2 1 5,28 6,4 11,95 

9 1.2 1 5,84 7,55 12,05 

10 1.2 1 8,03 10,75 17,35 

1 2.1 1 6,21 8,05 14,95 

2 2.1 1 4,92 6,40 11,80 

3 2.1 1 7,07 9,85 17,30 

4 2.1 1 8,72 12,75 20,75 

5 2.1 1 9,05 10,85 15,75 

6 2.2 1 7,10 8,65 15,50 

7 2.2 1 3,65 4,95 8,30 

8 2.2 1 9,04 12,15 17,40 

9 2.2 1 8,75 9,95 16,45 

10 2.2 1 8,28 11,75 19,30 

1 3.1 1 6,94 9,00 13,85 

2 3.1 1 5,52 7,25 11,35 

3 3.1 1 7,79 9,75 16,35 

4 3.1 1 7,17 9,95 14,95 

5 3.1 1 4,78 6,60 11,15 

6 3.2 1 3,99 5,50 8,25 

7 3.2 1 5,62 8,85 13,50 

8 3.2 1 7,04 8,95 12,95 

9 3.2 1 7,32 9,60 13,00 

10 3.2 1 7,85 9,30 14,95 

1 4.1 1 6,51 9,30 13,75 

2 4.1 1 8,74 11,80 17,80 

3 4.1 1 7,43 10,25 17,05 

4 4.1 1 7,46 9,20 14,10 

5 4.1 1 6,63 8,60 13,70 

6 4.2 1 8,71 11,35 19,20 

7 4.2 1 6,57 10,20 17,05 

8 4.2 1 6,99 9,35 15,80 

9 4.2 1 5,91 7,85 13,75 

10 4.2 1 8,76 11,15 17,50



1 5.1 1 5,66 7,60 14,45 

2 5.1 1 6,40 8,20 14,75 

3 5.1 1 6,88 8,60 16,05 

4 5.1 1 5,97 7,65 13,75 

5 5.2 1 6,20 9,70 17,95 

6 5.2 1 7,38 11,70 18,85 

7 5.2 1 4,15 4,80 4,85 

8 5.2 1 4,95 9,00 13,25 

1 6.1 1 8,58 11,80 19,00 

2 6.1 1 7,00 8,80 14,45 

3 6.1 1 8,96 11,90 17,85 

4 6.1 1 7,67 7,75 9,80 

5 6.2 1 8,65 10,95 17,85 

6 6.2 1 8,29 10,60 16,95 

7 6.2 1 7,69 10,35 16,00 

8 6.2 1 7,95 10,65 16,10 

1 7.1 1 8,14 12,40 19,05 

2 7.1 1 7,04 10,65 15,50 

3 7.1 1 5,16 7,90 12,05 

4 7.1 1 9,14 13,35 18,45 

5 7.1 1 8,11 11,75 17,85 

6 7.1 1 7,19 11,45 18,05 

7 7.2 1 7,24 10,55 17,00 

8 7.2 1 8,39 11,95 18,45 

9 7.2 1 8,22 11,90 17,15 

10 7.2 1 5,35 7,65 11,05 

11 7.2 1 7,57 11,65 19,15 

1 8.1 1 7,06 10,25 17,25 

2 8.1 1 6,23 7,30 12,90 

3 8.1 1 6,92 9,85 15,65 

4 8.1 1 6,03 8,75 13,65 

5 8.1 1 6,52 9,40 14,75 

6 8.2 1 6,47 8,65 14,05 

7 8.2 1 6,43 9,55 15,15 

8 8.2 1 6,29 8,20 12,95 

9 8.2 1 7,06 9,75 15,85 

10 8.2 1 6,89 9,75 17,45 

1 1.1 2 8,69 11,35 16,50 

2 1.1 2 11,21 14,50 21,80 

3 1.1 2 6,16 8,25 12,65 

4 1.1 2 7,91 6,45 9,15 

5 1.2 2 9,53 13,00 19,85 

6 1.2 2 5,92 7,55 12,10



7 1.2 2 9,66 13,50 20,15 

8 1.2 2 8,85 11,70 17,85 

1 2.1 2 6,60 7,65 12,60 

2 2.1 2 8,16 16,70 18,60 

3 2.1 2 6,09 8,00 13,15 

4 2.1 2 5,86 7,90 13,60 

5 2.1 2 5,45 6,95 11,45 

6 2.2 2 4,50 6,50 12,70 

7 2.2 2 8,97 10,50 18,05 

8 2.2 2 5,70 7,55 13,75 

9 2.2 2 6,30 8,70 15,55 

10 2.2 2 6,61 7,95 15,00 

1 3.1 2 9,20 13,30 19,10 

2 3.1 2 6,98 9,20 14,20 

3 3.1 2 6,65 7,95 12,10 

4 3.1 2 6,38 9,65 14,95 

5 3.1 2 8,15 12,50 18,25 

6 3.2 2 7,92 12,05 18,25 

7 3.2 2 9,04 9,45 16,65 

8 3.2 2 5,56 6,95 11,65 

9 3.2 2 7,89 10,35 15,50 

1 4.1 2 5,90 7,95 12,80 

2 4.1 2 5,52 7,65 13,75 

3 4.1 2 6,36 9,25 15,70 

4 4.1 2 5,68 7,65 11,60 

5 4.2 2 6,17 8,75 15,65 

6 4.2 2 6,05 7,65 11,45 

7 4.2 2 5,98 8,05 13,10 

8 4.2 2 5,36 8,20 13,75 

9 4.2 2 5,84 8,25 14,25 

1 5.1 2 6,54 8,60 12,05 

2 5.1 2 6,69 8,10 13,55 

3 5.1 2 5,87 8,00 13,05 

4 5.1 2 6,37 7,75 11,05 

5 5.1 2 5,74 7,05 9,95 

6 5.1 2 5,18 6,00 8,85 

7 5.2 2 6,31 8,45 12,50 

8 5.2 2 6,78 9,45 14,75 

9 5.2 2 6,40 7,95 14,00 

10 5.2 2 5,60 7,35 10,25 

11 5.2 2 5,71 7,95 12,90 

1 6.1 2 6,21 5,65 11,75 

2 6.1 2 7,12 7,30 13,25



3 6.1 2 6,15 7,00 11,75 

4 6.1 2 9,56 10,15 18,70 

5 6.2 2 7,94 8,35 13,45 

6 6.2 2 8,70 8,35 12,95 

7 6.2 2 5,75 6,25 9,60 

8 6.2 2 7,27 9,55 14,60 

1 7.1 2 8,19 12,55 18,85 

2 7.1 2 9,60 13,35 21,25 

3 7.1 2 9,22 9,95 13,35 

4 7.1 2 8,37 12,25 18,25 

5 7.1 2 8,04 11,50 17,05 

6 7.2 2 8,71 12,30 18,75 

7 7.2 2 8,59 12,45 18,85 

8 7.2 2 6,69 9,65 14,70 

9 7.2 2 9,49 12,60 18,25 

10 7.2 2 9,68 13,45 20,90 

1 8.1 2 7,43 11,05 18,25 

2 8.1 2 8,63 11,55 18,75 

3 8.1 2 6,44 9,45 14,20 

4 8.1 2 9,35 13,95 21,25 

5 8.2 2 8,48 11,25 17,90 

6 8.2 2 6,96 8,75 13,40 

7 8.2 2 8,85 11,45 18,25 

8 8.2 2 7,52 10,35 16,85 

1 1.1 3 8,54 10,90 15,75 

2 1.1 3 5,78 8,20 12,95 

3 1.1 3 7,67 9,55 13,25 

4 1.1 3 8,66 10,90 17,05 

5 1.1 3 7,11 10,25 16,90 

6 1.2 3 6,98 9,10 14,45 

7 1.2 3 7,54 10,70 16,45 

8 1.2 3 6,56 9,00 14,05 

9 1.2 3 7,21 11,00 16,90 

10 1.2 3 8,93 12,30 16,85 

11 1.2 3 7,76 10,85 15,55 

1 2.1 3 6,65 10,10 17,10 

2 2.1 3 6,02 9,45 16,95 

3 2.1 3 8,47 12,05 18,85 

4 2.1 3 7,16 10,85 18,25 

5 2.1 3 6,61 8,95 15,90 

6 2.2 3 4,79 6,65 11,50 

7 2.2 3 8,80 11,95 20,50 

8 2.2 3 6,67 9,30 17,15 

9 2.2 3 7,19 9,80 17,05



1 3.1 3 5,73 7,65 13,15 

2 3.1 3 6,97 8,65 12,85 

3 3.1 3 7,33 9,45 13,15 

4 3.1 3 7,21 9,35 13,35 

5 3.1 3 8,23 10,35 13,85 

6 3.2 3 7,14 9,85 13,90 

7 3.2 3 7,84 10,45 14,45 

8 3.2 3 7,03 8,60 12,20 

9 3.2 3 6,83 9,00 13,00 

10 3.2 3 7,08 10,30 14,95 

1 4.1 3 5,55 7,25 12,25 

2 4.1 3 5,79 7,40 12,45 

3 4.1 3 6,43 9,45 14,95 

4 4.1 3 6,10 8,05 12,85 

5 4.1 3 3,59 5,2 8,80 

6 4.2 3 5,71 7,25 10,95 

7 4.2 3 6,13 8,45 13,95 

8 4.2 3 4,46 6,25 10,30 

9 4.2 3 5,53 7,65 11,85 

10 4.2 3 3,28 5,65 9,15 

1 5.1 3 8,49 9,85 14,65 

2 5.1 3 5,88 8,05 14,05 

3 5.1 3 4,94 7,60 12,80 

4 5.1 3 5,30 7,85 11,85 

5 5.1 3 6,45 7,85 13,05 

6 5.2 3 4,32 5,45 7,95 

7 5.2 3 5,67 7,35 10,60 

8 5.2 3 6,90 8,95 13,95 

9 5.2 3 5,97 7,80 12,85 

10 5.2 3 7,93 10,15 15,45 

11 5.2 3 6,32 7,75 13,55 

1 6.1 3 5,25 7,75 12,95 

2 6.1 3 6,82 10,55 17,55 

3 6.1 3 8,19 12,55 21,00 

4 6.1 3 6,37 9,75 16,25 

5 6.1 3 6,75 10,10 16,30 

6 6.2 3 7,71 10,75 18,10 

7 6.2 3 6,73 9,75 16,60 

8 6.2 3 6,43 10,30 16,15 

9 6.2 3 6,30 10,05 16,65 

1 7.1 3 9,26 13,15 19,60 

2 7.1 3 9,04 13,55 20,00 

3 7.1 3 8,58 12,85 20,40



4 7.2 3 10,05 13,50 20,75 

5 7.2 3 8,80 11,55 16,25 

6 7.2 3 9,98 13,05 17,55 

7 7.2 3 8,02 12,40 19,35 

1 8.1 3 4,99 7,55 10,95 

2 8.1 3 6,23 9,45 14,25 

3 8.1 3 7,07 9,65 15,25 

4 8.1 3 8,38 11,10 16,85 

5 8.2 3 5,60 8,10 14,35 

6 8.2 3 6,35 8,70 14,80 

7 8.2 3 7,18 10,45 16,65 

8 8.2 3 6,00 8,95 13,55 

9 8.2 3 7,07 9,65 14,75


Anhangstabelle 49: Tägliche Futteraufnahme der Mastschweine in der ersten 

Applikationsphase (g) 

Versuchswoche 

Tier Nr. Gruppe 1. 2. 3. 

11 1 1276 1381 1538 

12 1 1316 1443 1604 

13 1 1251 1413 1540 

14 1 1461 1422 1738 

15 1 1682 1824 1970 

16 1 1556 1713 1876 

17 1 1213 1357 1517 

18 1 1343 1497 1656 

19 1 1350 1459 1623 

110 1 1544 1719 1893 

111 1 1436 1573 1732 

112 1 1512 1687 1853 

113 1 1370 1537 1700 

114 1 1487 1685 1847 

115 1 1500 1662 1840 

116 1 1512 1687 1853 

21 2 1343 1497 1656 

22 2 1303 1455 1617 

23 2 1357 1472 1572 

24 2 1310 1449 1538 

25 2 1397 1532 1676 

26 2 1568 1772 1908 

27 2 1449 1629 1799 

28 2 1234 1358 1498 

29 2 1343 1471 1606 

210 2 1442 1567 1726 

211 2 1449 1635 1805 

212 2 1468 1648 1817 

213 2 1383 1531 1706 

214 2 1423 1608 1673 

215 2 1611 1804 1993 

216 2 1468 1648 1817 

31 3 1350 1497 1662 

32 3 1377 1450 1531 

33 3 

34 3 1455 1461 1791 

35 3 1562 1545 1911 

36 3 1390 1759 1769 

37 3 1330 1619 1605 

38 3 1289 1363 1592 

39 3 1423 1477 1707 

310 3 1269 1554 1551 

311 3 1357 1628 1678 

312 3 1531 1653 1877 

313 3 1531 1543 1842 

314 3 1455 1611 1814 

315 3 1500 1795 1850 

316 3 1531 1653 1877


Anhangstabelle 50: Tägliche Futteraufnahme der Mastschweine in der Kontrollphase 

(g) 

Versuchswoche 


11 1 1694 1853 2017 

12 1 1763 1917 2066 

13 1 1677 1841 2006 

14 1 1894 2059 2207 

15 1 2108 2254 2386 

16 1 2043 2249 2390 

17 1 1669 1835 1995 

18 1 1839 1985 2128 

19 1 1781 1935 2096 

110 1 2059 2220 2364 

111 1 1894 2074 2239 

112 1 2022 2182 2334 

113 1 1875 2058 2204 

114 1 2016 1996 1694 

115 1 2011 2190 2335 

116 1 2022 2182 2334 

21 2 1817 1979 2156 

22 2 1787 1982 2161 

23 2 1818 1942 2087 

24 2 1716 1871 2053 

25 2 1835 1990 2147 

26 2 2065 2229 2380 

27 2 1972 2118 2259 

28 2 1662 1845 2016 

29 2 1769 1934 2086 

210 2 1920 2047 2223 

211 2 1957 2136 2273 

212 2 1979 2146 2311 

213 2 1892 2074 2247 

214 2 1612 1703 1710 

215 2 2166 2337 2392 

216 2 1979 2146 2311 

31 3 1823 1999 2157 

32 3 1664 1829 1985 

33 3 

34 3 1973 2155 2283 

35 3 2096 2218 2360 

36 3 1922 2105 2254 

37 3 1768 1934 2082 

38 3 1774 1934 2096 

39 3 1822 2068 2212 

310 3 1694 1848 2016 

311 3 1846 1996 2152 

312 3 2034 2191 2362 

313 3 2012 2172 2325 

314 3 1994 2150 2270 

315 3 1801 1979 2195 

316 3 2034 2191 2362


Anhangstabelle 51: Tägliche Futteraufnahme der Mastschweine in der zweiten 

Applikationsphase (g) 

Versuchswoche 


11 1 2168 2304 2412 

12 1 2001 2266 2280 

13 1 2144 2256 2383 

14 1 2340 2451 2557 

15 1 2486 2589 2676 

16 1 2513 2615 2719 

17 1 2143 2248 2365 

18 1 2268 2382 2411 

19 1 2231 2388 2476 

110 1 2492 2587 2679 

111 1 2377 2496 2619 

112 1 2465 2570 2644 

113 1 2362 2204 2255 

114 1 1891 1818 2079 

115 1 2469 2558 2425 

116 1 2465 2495 2644 

21 2 2304 2438 2539 

22 2 2308 2463 2563 

23 2 2231 2345 2467 

24 2 2193 2310 2424 

25 2 2286 2388 2496 

26 2 2489 2584 2674 

27 2 2390 2510 2611 

28 2 2149 2278 2392 

29 2 2244 2354 2473 

210 2 2372 2478 2577 

211 2 2436 2540 2647 

212 2 2457 2513 2656 

213 2 2438 2550 2579 

214 2 2035 1966 2092 

215 2 2577 2534 2541 

216 2 2457 2560 2599 

31 3 2299 2416 2532 

32 3 2133 2281 2403 

33 3 

34 3 2414 2519 2621 

35 3 2501 2591 2674 

36 3 2401 2521 2621 

37 3 2226 2341 2458 

38 3 2240 2358 2477 

39 3 2371 2464 2576 

310 3 2168 2296 2430 

311 3 2300 2449 2539 

312 3 2508 2617 2710 

313 3 2472 2577 2676 

314 3 2437 2508 2522 

315 3 2394 2500 2602 

316 3 2508 2617 2710


Anhangstabelle 52: Lebendmasse der Mastschweine (kg) in der ersten Applikationsphase 

Versuchswoche 

Tier Nr. Gruppe Einstallung 1. 2. 3. 

11 1 28,2 31,4 36,0 40,8 

12 1 29,4 33,2 38,0 43,0 

13 1 27,6 32,4 36,0 40,2 

14 1 33,8 37,2 42,2 47,4 

15 1 38,8 45,4 50,0 55,2 

16 1 36,8 41,8 46,8 52,8 

17 1 26,4 30,8 35,4 40,0 

18 1 30,2 34,8 39,6 45,6 

19 1 30,4 33,6 38,6 43,6 

110 1 36,4 41,6 47,4 53,4 

111 1 33,0 37,0 42,0 47,4 

112 1 31,2 36,0 41,4 48,0 

113 1 31,0 36,0 41,0 46,8 

114 1 34,6 40,6 45,8 51,8 

115 1 35,0 39,8 45,6 51,6 

116 1 35,4 40,6 46,0 52,0 

21 2 30,2 34,8 39,6 44,8 

22 2 29,0 33,6 38,4 43,8 

23 2 30,6 34,0 39,8 44,8 

24 2 29,2 33,4 37,8 41,4 

25 2 31,8 35,8 40,2 45,4 

26 2 37,2 43,4 47,8 53,6 

27 2 33,4 38,8 44,2 50,2 

28 2 27,0 30,8 34,8 39,8 

29 2 30,2 34,0 38,0 43,2 

210 2 33,2 36,8 41,8 48,4 

211 2 33,4 39,0 44,4 49,6 

212 2 33,4 38,6 44,2 49,4 

213 2 31,4 35,8 41,2 47,4 

214 2 32,6 38,2 43,4 48,4 

215 2 38,6 44,4 51,0 57,6 

216 2 34,0 39,4 44,8 50,4 

31 3 30,4 35,2 39,8 45,0 

32 3 27,1 32,0 35,6 39,8 

33 3 31,6 

34 3 33,6 38,6 44,4 50,2 

35 3 37,0 42,8 48,6 54,8 

36 3 31,6 37,0 42,8 48,4 

37 3 29,8 33,2 37,6 43,2 

38 3 28,6 33,0 37,8 43,4 

39 3 32,6 36,8 41,4 47,0 

310 3 28,0 31,8 36,0 40,8 

311 3 30,6 34,8 40,0 45,8 

312 3 34,6 39,0 44,6 50,6 

313 3 36,0 40,2 46,0 51,6 

314 3 33,6 39,4 44,8 51,0 

315 3 35,0 40,4 45,6 50,2 

316 3 36,0 41,2 47,0 52,4


Anhangstabelle 53: Lebendmasse der Mastschweine (kg) in der Kontrollphase 

Versuchswoche 


11 1 46,0 51,8 57,6 

12 1 48,2 53,6 58,4 

13 1 45,6 51,4 56,6 

14 1 53,4 59,2 65,0 

15 1 61,2 67,2 72,2 

16 1 61,2 67,4 73,8 

17 1 45,4 51,0 56,6 

18 1 50,6 56,0 61,8 

19 1 48,8 54,8 60,2 

110 1 59,8 66,2 72,6 

111 1 54,0 60,6 66,8 

112 1 54,4 61,2 67,8 

113 1 53,4 60,0 67,4 

114 1 58,2 64,0 67,6 

115 1 58,6 64,8 71,4 

116 1 58,2 64,8 71,2 

21 2 50,4 57,2 63,4 

22 2 50,6 57,4 63,6 

23 2 49,0 54,4 60,2 

24 2 46,6 53,2 58,6 

25 2 50,8 56,8 62,6 

26 2 60,2 67,0 72,4 

27 2 55,6 61,4 67,4 

28 2 45,8 51,8 56,8 

29 2 48,8 54,4 60,8 

210 2 52,8 60,0 66,6 

211 2 56,4 62,0 69,8 

212 2 57,0 64,4 70,8 

213 2 54,0 61,0 70,0 

214 2 53,2 58,8 64,6 

215 2 65,0 72,0 78,8 

216 2 56,8 63,8 70,8 

31 3 51,2 57,2 63,2 

32 3 45,2 50,6 56,2 

33 3 

34 3 57,2 62,4 68,6 

35 3 59,6 66,0 73,2 

36 3 55,2 61,2 68,0 

37 3 48,8 54,2 60,0 

38 3 48,8 54,8 60,6 

39 3 53,8 59,4 66,6 

310 3 45,8 51,8 57,6 

311 3 51,0 57,0 63,8 

312 3 57,2 64,0 71,6 

313 3 57,8 64,4 71,6 

314 3 57,4 64,4 70,6 

315 3 56,2 61,4 67,6 

316 3 58,6 66,2 73,6


Anhangstabelle 54: Lebendmasse der Mastschweine (kg) in der zweiten 

Applikationsphase 

Versuchswoche 


11 1 63,4 68,4 75,2 

12 1 62,8 68,0 74,4 

13 1 61,2 67,0 73,2 

14 1 70,4 76,2 82,8 

15 1 78,2 84,0 90,4 

16 1 79,8 87,4 95,4 

17 1 60,8 66,2 71,4 

18 1 67,8 72,6 79,8 

19 1 67,4 71,6 77,6 

110 1 78,0 84,2 90,4 

111 1 72,8 80,2 86,0 

112 1 73,2 79,8 85,8 

113 1 72,2 77,4 80,2 

114 1 71,2 75,6 81,6 

115 1 77,2 83,4 88,6 

116 1 77,0 81,6 89,2 

21 2 69,8 75,2 83,2 

22 2 71,2 76,6 83,4 

23 2 65,2 72,4 79,6 

24 2 63,6 69,0 75,6 

25 2 67,2 72,8 79,4 

26 2 77,8 83,8 89,8 

27 2 73,6 79,6 87,4 

28 2 62,2 67,4 74,8 

29 2 65,6 71,6 78,4 

210 2 71,8 77,4 86,6 

211 2 75,2 82,0 86,6 

212 2 77,0 82,8 89,6 

213 2 75,8 81,4 89,8 

214 2 70,2 75,2 81,4 

215 2 84,6 90,6 96,0 

216 2 76,4 82,6 88,2 

31 3 68,6 74,8 81,2 

32 3 62,4 68,0 74,8 

33 3 

34 3 74,0 80,2 86,8 

35 3 78,2 83,8 91,2 

36 3 74,2 80,2 86,8 

37 3 65,0 70,8 77,8 

38 3 65,8 71,8 77,8 

39 3 71,0 77,4 83,2 

310 3 63,0 69,4 78,2 

311 3 70,4 75,6 81,8 

312 3 77,0 83,2 90,0 

313 3 77,4 84,0 90,4 

314 3 77,2 83,6 89,2 

315 3 73,0 79,0 85,8 

316 3 80,0 86,6 92,4


Anhangstabelle 55: Rotes Blutbild und Leukozytenkonzentration der Mastschweine 

beim Versuchsbeginn 

Tier 

Gruppe 

Leukozyten 

[10 9 /l] 

Versuchsbeginn 

Erythrozyten 

[10 12 /l] 

Hämoglobin 

[g/dl] 

Hämatokrit 

[%] 

11 1 19,9 6,98 11,2 36,6 

12 1 15,9 6,95 11,3 35,5 

13 1 22,5 7,31 11,4 35,2 

14 1 25,5 7,30 11,5 36,1 

15 1 21,4 8,11 13,3 41,2 

16 1 16,8 7,84 14,2 42,8 

17 1 13,0 10,41 17,2 52,1 

18 1 18,8 7,30 12,2 37,4 

19 1 22,4 5,44 9,6 29,0 

110 1 31,0 6,17 11,1 32,1 

111 1 21,0 6,46 11,5 33,5 

112 1 26,5 6,94 11,8 34,9 

113 1 22,5 6,50 10,9 32,5 

114 1 17,1 6,55 11,7 34,8 

115 1 20,4 7,21 12,8 38,5 

116 1 25,6 6,39 11,8 34,5 

21 2 21,4 8,23 13,3 41,5 

22 2 23,0 9,02 15,0 45,7 

23 2 28,9 8,32 13,1 40,7 

24 2 22,5 10,29 16,1 50,4 

25 2 26,8 7,34 11,7 36,2 

26 2 24,0 8,57 14,7 43,4 

27 2 18,2 5,41 9,6 27,7 

28 2 17,5 10,92 17,9 54,9 

29 2 21,8 6,99 11,9 36,3 

210 2 18,4 7,47 12,7 39,3 

211 2 23,8 7,08 12,5 38,6 

212 2 23,8 6,83 12,1 36,6 

213 2 24,7 6,88 11,2 33,3 

214 2 6,6 5,21 10,0 28,1 

215 2 15,5 6,88 13,2 37,4 

216 2 19,0 7,09 12,5 37,8 

31 3 25,2 7,23 12,1 37,5 

32 3 17,9 7,61 12,9 39,6 

33 3 22,6 8,89 14,9 45,6 

34 3 17,1 7,55 12,4 39,2 

35 3 12,1 7,43 12,3 36,7 

36 3 14,3 11,08 19,1 59,5 

37 3 26,1 6,31 10,4 32,0 

38 3 19,1 7,58 12,7 38,7 

39 3 26,6 7,04 11,3 34,5 

310 3 27,7 6,35 11,0 34,7 

311 3 27,8 7,11 11,8 36,8 

312 3 32,0 7,88 13,1 39,9 

313 3 33,6 7,61 13,1 39,3 

314 3 30,7 7,09 13,0 40,1 

315 3 23,5 7,66 13,8 41,6 

316 3 21,1 6,89 13,2 39,6



nach Woche 1 

Tier 

Gruppe 

Leukozyten 

[10 9 /l] 

Erythrozyten 

[10 12 /l] 

1. Woche 

Hämoglobin 

[g/dl] 

Hämatokrit 

[%] 

11 1 17,6 6,78 11,3 35,5 

12 1 15,1 7,10 11,2 36,3 

13 1 25,6 6,78 10,2 33,0 

14 1 20,2 4,39 7,3 22,8 

15 1 23,6 6,32 11,6 36,2 

16 1 19,8 6,94 11,1 38,1 

17 1 22,3 7,73 12,3 39,8 

18 1 17,4 7,05 11,6 36,8 

19 1 21,1 7,15 12,2 38,5 

110 1 23,9 7,81 13,0 40,4 

111 1 15,7 7,23 12,6 38,4 

112 1 26,5 7,45 12,7 38,2 

113 1 26,2 7,67 13,0 40,1 

114 1 9,3 7,46 13,2 40,7 

115 1 21,8 7,98 14,1 43,4 

116 1 20,8 8,28 15,1 46,7 

21 2 21,2 7,62 12,3 39,3 

22 2 19,0 7,60 11,9 37,9 

23 2 24,8 7,17 11,1 35,5 

24 2 21,2 6,10 9,5 29,3 

25 2 26,8 5,74 9,2 28,2 

26 2 36,6 2,62 4,5 13,5 

27 2 22,5 6,41 10,9 32,5 

28 2 16,7 6,57 10,5 32,4 

29 2 19,8 7,48 12,5 39,4 

210 2 17,3 7,20 12,2 38,0 

211 2 22,5 7,03 12,4 38,2 

212 2 20,6 7,25 12,7 38,7 

213 2 24,1 8,06 12,9 40,6 

214 2 17,3 6,91 12,8 40,0 

215 2 19,5 7,54 13,8 42,6 

216 2 19,6 7,73 13,6 42,2 

31 3 21,0 6,94 11,8 36,2 

32 3 26,1 5,97 9,9 30,0 

33 3 23,1 4,85 8,1 25,1 

34 3 17,9 4,48 7,7 22,7 

35 3 19,5 7,52 11,4 37,7 

36 3 20,2 6,01 10,2 31,5 

37 3 23,6 7,17 12,0 37,3 

38 3 23,9 7,51 12,7 39,0 

39 3 21,6 7,29 11,9 36,6 

310 3 22,8 7,28 12,8 40,9 

311 3 21,1 7,56 12,5 38,9 

312 3 25,5 7,34 12,5 38,3 

313 3 28,9 7,21 12,2 36,8 

314 3 22,0 7,15 13,4 41,1 

315 3 25,0 8,46 15,1 46,9 

316 3 21,2 8,23 14,2 44,1



nach Woche 2 

Tier 

Gruppe 

Leukozyten 

[10 9 /l] 

Erythrozyten 

[10 12 /l] 

2. Woche 

Hämoglobin 

[g/dl] 

Hämatokrit 

[%] 

11 1 17,9 7,60 12,6 39,6 

12 1 18,2 7,84 13,2 41,0 

13 1 22,8 6,88 11,0 34,3 

14 1 26,9 6,72 11,1 34,5 

15 1 18,9 7,17 12,7 39,0 

16 1 16,7 7,94 14,5 45,8 

17 1 19,6 7,48 12,4 38,5 

18 1 17,3 7,19 12,4 37,9 

19 1 27,3 7,41 12,9 39,8 

110 1 22,2 6,75 11,4 35,3 

111 1 19,0 7,33 13,0 39,6 

112 1 19,7 6,93 11,7 35,3 

113 1 22,9 7,73 13,4 40,9 

114 1 15,6 7,60 13,8 41,7 

115 1 18,6 6,95 12,9 39,1 

116 1 19,0 8,49 15,9 48,3 

21 2 19,1 7,12 11,7 36,6 

22 2 25,0 7,39 12,1 37,9 

23 2 19,7 6,42 10,4 31,9 

24 2 15,1 6,33 10,3 32,5 

25 2 18,2 7,66 12,3 38,2 

26 2 25,2 7,43 12,4 38,0 

27 2 18,7 7,52 12,2 38,9 

28 2 21,8 7,41 11,9 36,6 

29 2 23,0 7,37 12,5 38,4 

210 2 22,8 6,93 11,5 36,3 

211 2 25,8 7,80 14,3 43,7 

212 2 25,3 7,02 12,5 37,3 

213 2 19,3 6,95 11,5 34,3 

214 2 20,5 7,09 13,1 40,5 

215 2 20,5 7,61 13,9 43,0 

216 2 16,7 7,87 14,4 43,3 

31 3 26,8 7,62 13,2 40,5 

32 3 22,5 6,61 11,9 37,4 

33 3 

34 3 13,8 5,62 9,6 29,4 

35 3 24,2 7,77 13,5 41,7 

36 3 19,2 6,70 11,5 35,6 

37 3 18,9 7,36 12,2 37,6 

38 3 22,1 7,11 12,0 36,4 

39 3 19,0 7,19 11,9 36,2 

310 3 29,2 6,89 12,3 38,4 

311 3 19,7 7,75 13,0 40,4 

312 3 23,0 7,05 12,3 37,4 

313 3 31,4 6,97 11,9 35,9 

314 3 27,3 6,87 13,1 39,8 

315 3 21,8 7,99 14,6 45,0 

316 3 22,9 8,01 14,1 42,7



nach Woche 3 

Tier 

Gruppe 

Leukozyten 

[10 9 /l] 

Erythrozyten 

[10 12 /l] 

3. Woche 

Hämoglobin 

[g/dl] 

Hämatokrit 

[%] 

11 1 20,5 8,13 13,8 43,3 

12 1 18,0 7,23 12,3 36,6 

13 1 24,9 7,38 12,1 37,4 

14 1 26,9 7,33 12,7 38,7 

15 1 19,4 7,23 12,9 39,5 

16 1 17,6 6,78 11,7 35,9 

17 1 21,7 7,13 13,3 40,7 

18 1 22,5 6,99 11,7 35,5 

19 1 26,6 7,45 13,0 40,5 

110 1 24,6 7,64 13,2 41,2 

111 1 23,0 7,29 12,8 39,5 

112 1 25,3 7,40 12,9 39,8 

113 1 20,1 7,21 12,4 37,5 

114 1 17,7 6,41 11,9 35,5 

115 1 17,0 6,85 13,2 39,5 

116 1 19,1 7,40 14,0 41,9 

21 2 18,6 7,79 13,0 40,5 

22 2 21,7 7,47 12,4 38,1 

23 2 29,4 7,27 11,9 37,0 

24 2 9,0 6,09 10,1 31,3 

25 2 25,3 7,48 12,6 38,3 

26 2 30,5 8,00 13,7 41,8 

27 2 17,9 6,25 10,9 33,5 

28 2 17,5 7,29 11,7 35,8 

29 2 20,4 7,72 13,3 41,1 

210 2 14,3 6,38 11,1 34,0 

211 2 23,3 7,64 13,7 42,9 

212 2 20,5 7,90 13,9 42,9 

213 2 18,4 7,77 12,8 39,2 

214 2 18,3 7,31 13,7 41,7 

215 2 17,9 7,09 13,0 39,9 

216 2 18,5 7,56 13,7 42,2 

31 3 20,8 7,88 13,8 41,6 

32 3 23,0 7,32 13,6 42,6 

33 3 

34 3 18,3 7,07 12,3 39,2 

35 3 21,5 7,44 13,1 39,7 

36 3 15,8 6,86 12,0 36,5 

37 3 28,0 7,12 12,1 36,8 

38 3 27,3 7,26 12,5 37,5 

39 3 23,5 7,35 12,3 37,8 

310 3 23,7 6,28 11,1 34,4 

311 3 21,5 6,98 11,5 36,0 

312 3 26,0 6,76 11,8 36,3 

313 3 28,0 7,06 12,0 36,5 

314 3 23,4 6,69 12,7 39,4 

315 3 16,5 7,28 12,8 37,2 

316 3 18,6 7,31 13,0 38,5



nach Woche 6 

Tier 

Gruppe 

Leukozyten 

[10 9 /l] 

Erythrozyten 

[10 12 /l] 

6. Woche 

Hämoglobin 

[g/dl] 

Hämatokrit 

[%] 

11 1 24,5 8,55 14,3 46,2 

12 1 16,5 8,17 13,3 42,3 

13 1 38,9 7,69 12,8 39,7 

14 1 28,0 7,63 13,2 41,1 

15 1 20,5 7,74 13,9 43,1 

16 1 19,2 7,23 13,5 39,7 

17 1 19,1 7,48 12,7 39,1 

18 1 17,3 7,13 12,6 38,1 

19 1 19,5 7,55 13,1 41,3 

110 1 28,8 6,88 11,8 37,2 

111 1 22,7 6,00 10,3 32,6 

112 1 21,1 7,52 13,0 40,1 

113 1 16,2 6,98 11,9 36,9 

114 1 18,9 7,83 14,1 44,7 

115 1 20,3 7,72 14,6 46,2 

116 1 15,3 7,64 14,2 44,5 

21 2 20,1 7,58 12,7 39,8 

22 2 19,3 7,60 12,8 40,5 

23 2 19,7 7,80 12,7 39,0 

24 2 19,1 7,44 12,2 38,1 

25 2 17,6 7,83 13,1 40,2 

26 2 26,5 8,05 14,0 41,9 

27 2 16,9 7,37 13,1 40,7 

28 2 30,8 6,18 10,3 31,7 

29 2 13,2 6,78 11,4 35,8 

210 2 20,8 7,59 13,1 41,6 

211 2 19,2 7,25 13,4 40,1 

212 2 23,6 6,48 11,3 35,4 

213 2 26,4 6,20 10,2 31,9 

214 2 25,5 7,77 14,3 45,1 

215 2 19,0 8,05 14,8 46,0 

216 2 13,6 6,98 12,5 39,4 

31 3 22,0 7,54 13,3 40,2 

32 3 17,4 7,09 13,6 41,0 

33 3 

34 3 18,4 7,33 13,1 40,3 

35 3 19,6 7,80 14,0 43,3 

36 3 19,8 6,15 10,7 33,2 

37 3 19,5 7,09 12,2 37,3 

38 3 24,0 7,22 12,3 37,8 

39 3 31,5 4,78 8,2 25,1 

310 3 33,5 5,55 9,5 30,4 

311 3 18,8 7,40 12,1 38,1 

312 3 27,6 7,70 13,7 42,8 

313 3 30,5 6,42 11,0 34,3 

314 3 19,1 6,59 12,5 38,7 

315 3 20,5 7,04 13,3 40,3 

316 3 19,2 7,28 12,8 40,0



nach Woche 7 

Tier 

Gruppe 

Leukozyten 

[10 9 /l] 

Erythrozyten 

[10 12 /l] 

7. Woche 

Hämoglobin 

[g/dl] 

Hämatokrit 

[%] 

11 1 18,6 8,07 13,6 42,1 

12 1 29,0 7,76 13,1 39,5 

13 1 36,7 6,40 10,8 32,6 

14 1 20,2 7,05 12,4 37,0 

15 1 21,8 7,11 12,3 37,0 

16 1 

17 1 20,7 7,44 13,7 41,0 

18 1 17,4 7,32 13,0 39,1 

19 1 19,1 7,04 12,3 37,8 

110 1 26,6 7,84 13,9 42,6 

111 1 21,5 7,21 13,0 38,9 

112 1 29,5 7,42 13,2 39,9 

113 1 35,2 7,47 13,0 39,8 

114 1 19,1 8,05 14,7 44,7 

115 1 30,0 7,95 15,5 47,1 

116 1 17,5 8,21 15,9 48,0 

21 2 21,1 6,99 11,7 36,3 

22 2 25,6 7,57 13,0 40,2 

23 2 29,3 7,70 12,5 38,3 

24 2 18,8 8,08 13,3 41,5 

25 2 19,3 7,68 12,8 39,1 

26 2 23,2 7,32 12,6 37,7 

27 2 15,8 6,66 11,9 36,2 

28 2 21,4 8,24 13,9 42,6 

29 2 21,1 7,45 13,5 40,8 

210 2 21,4 7,05 12,3 38,1 

211 2 21,7 7,32 13,7 41,4 

212 2 22,6 7,15 13,2 39,6 

213 2 29,5 7,70 13,1 39,8 

214 2 20,6 7,58 14,1 42,8 

215 2 20,6 7,22 13,6 41,4 

216 2 19,1 7,14 13,9 40,4 

31 3 25,2 7,46 12,9 39,6 

32 3 21,3 6,53 12,5 37,6 

33 3 

34 3 26,3 7,90 14,1 44,3 

35 3 18,3 8,21 15,0 45,9 

36 3 19,8 7,34 13,0 40,0 

37 3 22,2 6,48 11,0 33,5 

38 3 26,6 6,71 11,4 35,1 

39 3 16,2 6,05 10,7 31,8 

310 3 27,5 7,10 12,7 39,0 

311 3 22,3 7,36 12,4 37,3 

312 3 25,0 7,75 14,4 43,1 

313 3 27,7 7,74 13,7 42,1 

314 3 17,4 7,29 14,4 43,0 

315 3 20,5 7,79 15,0 45,4 

316 3 21,0 8,12 15,3 45,4



nach Woche 8 

Tier 

Gruppe 

Leukozyten 

[10 9 /l] 

Erythrozyten 

[10 12 /l] 

8. Woche 

Hämoglobin 

[g/dl] 

Hämatokrit 

[%] 

11 1 15,9 7,01 12,4 36,3 

12 1 17,4 6,95 11,3 36,2 

13 1 17,9 7,57 12,6 38,6 

14 1 20,0 6,97 12,1 36,3 

15 1 17,5 7,79 14,1 43,7 

16 1 

17 1 23,2 8,19 14,0 43,1 

18 1 16,6 7,19 12,8 38,3 

19 1 17,0 6,72 11,8 35,9 

110 1 23,8 6,98 12,1 37,2 

111 1 25,7 7,29 13,1 39,8 

112 1 28,2 7,39 13,5 39,6 

113 1 29,9 7,88 13,8 41,6 

114 1 20,8 7,83 14,1 43,6 

115 1 19,2 6,91 13,3 39,8 

116 1 20,2 6,42 11,8 35,2 

21 2 23,8 7,25 12,2 37,5 

22 2 22,1 7,75 13,2 41,4 

23 2 25,2 7,54 12,1 37,5 

24 2 18,9 7,65 12,7 39,1 

25 2 17,0 7,75 13,0 40,1 

26 2 19,0 7,04 12,2 35,9 

27 2 15,5 6,16 11,0 33,2 

28 2 16,8 6,89 11,5 34,8 

29 2 16,6 7,66 13,2 41,1 

210 2 19,5 6,76 11,8 36,0 

211 2 18,1 5,33 10,1 31,2 

212 2 25,4 6,94 12,3 37,4 

213 2 21,8 8,01 13,7 41,7 

214 2 22,1 7,77 14,2 43,7 

215 2 21,4 7,28 13,7 41,2 

216 2 19,6 7,16 13,4 40,6 

31 3 20,7 7,33 12,5 38,6 

32 3 24,8 6,06 11,5 34,6 

33 3 

34 3 21,2 7,91 14,2 44,1 

35 3 15,4 7,07 12,7 38,4 

36 3 18,3 6,13 11,0 32,9 

37 3 22,3 6,31 10,4 31,5 

38 3 19,8 7,72 13,2 40,1 

39 3 21,9 6,58 11,2 34,5 

310 3 17,9 7,45 13,1 40,1 

311 3 15,8 5,62 9,3 28,3 

312 3 20,4 7,77 14,2 42,8 

313 3 25,3 6,28 11,2 33,3 

314 3 22,3 7,81 15,4 47,2 

315 3 19,3 7,63 14,5 44,2 

316 3 25,8 7,28 13,5 40,3



nach Woche 9 

Tier 

Gruppe 

Leukozyten 

[10 9 /l] 

Erythrozyten 

[10 12 /l] 

9. Woche 

Hämoglobin 

[g/dl] 

Hämatokrit 

[%] 

11 1 17,9 7,72 12,6 40,7 

12 1 15,4 7,27 11,4 36,4 

13 1 23,0 6,84 10,7 34,8 

14 1 21,5 6,75 11,3 36,0 

15 1 17,7 7,79 13,7 44,1 

16 1 

17 1 25,0 7,67 12,4 40,5 

18 1 19,1 7,62 13,2 41,5 

19 1 20,5 6,43 11,4 34,2 

110 1 22,9 7,30 12,8 39,0 

111 1 15,8 8,01 14,7 44,3 

112 1 24,2 7,56 13,5 40,7 

113 1 26,6 6,40 11,0 33,1 

114 1 18,6 7,24 12,9 39,5 

115 1 18,3 7,71 14,7 44,9 

116 1 16,3 6,49 12,6 37,1 

21 2 23,6 8,32 13,6 44,9 

22 2 18,1 7,44 12,0 39,1 

23 2 29,4 7,60 11,7 37,8 

24 2 15,3 9,01 14,5 47,4 

25 2 18,1 8,10 13,0 42,2 

26 2 18,2 7,93 12,9 41,3 

27 2 17,7 7,62 13,1 42,9 

28 2 16,8 7,71 12,3 39,9 

29 2 22,7 7,24 13,0 38,7 

210 2 22,8 8,03 14,1 44,6 

211 2 23,8 6,89 14,2 44,7 

212 2 30,2 6,98 12,6 37,9 

213 2 30,3 7,58 12,8 39,1 

214 2 19,2 8,06 14,6 45,9 

215 2 29,1 8,17 15,5 47,2 

216 2 18,9 7,56 14,3 43,2 

31 3 24,5 7,05 11,5 37,2 

32 3 17,2 6,26 11,3 35,9 

33 3 

34 3 22,7 7,35 12,2 39,9 

35 3 14,6 7,68 13,5 43,1 

36 3 15,3 6,28 10,6 33,9 

37 3 28,8 7,87 13,1 41,6 

38 3 22,3 8,43 14,1 45,0 

39 3 24,1 6,89 12,0 36,7 

310 3 25,4 7,56 13,4 41,5 

311 3 24,4 8,02 13,5 41,8 

312 3 27,0 7,84 14,2 43,6 

313 3 34,5 7,84 14,0 42,9 

314 3 20,9 7,57 14,7 46,0 

315 3 17,5 7,66 14,5 44,3 

316 3 19,6 7,10 13,0 39,4


Anhangstabelle 63: Zusammensetzung der Leukozytenfraktion (%) der Mastschweine 

bei Versuchsbeginn 


Neutrophile 

Granulozyten 

Leukozyten 

Eosinophile 

Granulozyten 

Basophile 

Granulozyten 

Monozyten 

11 1 77,3 18,1 3,1 0,2 1,3 

12 1 75,6 19,3 2,9 0,5 1,7 

13 1 74,6 18,1 4,5 0,3 2,5 

14 1 78,2 15,3 3,1 0,3 3,1 

15 1 73,6 19,9 3,5 0,4 2,6 

16 1 81,7 12,2 3,6 0,0 2,5 

17 1 43,1 50,1 3,3 0,1 3,4 

18 1 59,6 35,3 2,7 0,5 1,9 

19 1 51,3 43,4 2,9 0,6 1,8 

110 1 70,8 22,7 3,2 0,8 2,5 

111 1 79,2 16,6 1,9 0,2 2,1 

112 1 45,4 48,2 3,7 0,3 2,4 

113 1 74,6 20,6 2,6 0,4 1,8 

114 1 77,3 17,1 2,8 0,5 2,3 

115 1 73,9 20,0 2,9 0,8 2,4 

116 1 72,6 19,7 3,5 1,1 3,1 

21 2 66,6 26,8 3,8 0,2 2,6 

22 2 51,2 42,6 3,6 0,4 2,2 

23 2 46,9 47,0 2,7 0,7 2,7 

24 2 53,6 39,5 2,6 0,5 3,8 

25 2 77,8 14,5 3,8 0,6 3,3 

26 2 77,9 16,1 3,7 0,2 2,1 

27 2 62,3 33,4 2,5 0,0 1,8 

28 2 71,6 24,0 2,4 0,1 1,9 

29 2 63,6 30,8 2,8 0,6 2,2 

210 2 51,9 42,7 2,9 0,8 1,7 

211 2 75,6 18,7 3,5 0,5 1,7 

212 2 76,8 16,3 3,5 0,3 3,1 

213 2 60,7 34,9 2,7 0,2 1,5 

214 2 76,5 18,4 2,9 0,4 1,8 

215 2 76,4 18,6 2,5 0,6 1,9 

216 2 77,7 17,3 2,6 0,0 2,4 

31 3 51,4 42,7 3,4 0,1 2,4 

32 3 52,5 41,2 3,1 0,9 2,3 

33 3 69,7 22,7 3,5 0,6 3,5 

34 3 46,8 46,5 2,8 0,3 3,6 

35 3 74,8 19,2 2,7 0,6 2,7 

36 3 71,6 20,6 4,6 0,8 2,4 

37 3 63,2 31,2 2,8 0,5 2,3 

38 3 71,2 21,7 3,9 0,7 2,5 

39 3 50,3 45,1 2,8 0,2 1,6 

310 3 79,1 14,2 2,7 1,1 2,9 

311 3 81,5 12,9 2,6 0,7 2,3 

312 3 71,8 22,9 2,8 0,2 2,3 

313 3 69,7 24,6 3,5 0,4 1,8 

314 3 77,5 16,7 3,7 0,2 1,9 

315 3 83,7 11,6 3,2 0,0 1,5 

316 3 72,4 21,9 2,6 0,3 2,8



nach Woche 1 


Neutrophile 

Granulozyten 

Leukozyten 

Eosinophile 

Granulozyten 

Basophile 

Granulozyten 

Monozyten 

11 1 53,1 40,8 3,2 0,3 2,6 

12 1 63,6 30,7 2,9 0,7 2,1 

13 1 81,8 13,5 2,8 0,4 1,5 

14 1 80,9 13,8 3,5 0,1 1,7 

15 1 68,8 26,2 3,7 0,0 1,3 

16 1 71,3 22,7 2,9 0,6 2,5 

17 1 65,8 28,3 3,2 0,5 2,2 

18 1 69,0 26,2 1,9 0,3 2,6 

19 1 67,3 26,6 2,5 0,5 3,1 

110 1 49,6 43,9 3,6 0,8 2,1 

111 1 41,6 54,1 1,8 0,1 2,4 

112 1 63,0 31,4 2,7 1,0 1,9 

113 1 67,6 27,5 2,8 0,3 1,8 

114 1 81,6 13,5 2,6 0,0 2,3 

115 1 76,2 17,9 2,9 0,5 2,5 

116 1 68,4 23,8 3,8 0,6 3,4 

21 2 65,5 27,7 3,8 0,3 2,7 

22 2 47,1 46,4 3,5 0,2 2,8 

23 2 56,3 36,9 3,9 0,5 2,4 

24 2 68,2 25,6 2,8 0,3 3,1 

25 2 79,3 15,1 2,9 0,8 1,9 

26 2 64,4 30,1 2,7 0,5 2,3 

27 2 81,2 13,1 3,4 0,1 2,2 

28 2 54,2 41,2 2,6 0,0 2,0 

29 2 53,1 43,0 1,9 0,2 1,8 

210 2 80,6 14,6 2,0 0,5 2,3 

211 2 46,3 47,9 2,8 0,3 2,7 

212 2 67,9 26,0 2,6 0,6 2,9 

213 2 71,8 22,4 3,4 0,8 1,6 

214 2 82,3 11,4 3,2 0,2 2,9 

215 2 74,3 19,4 3,6 0,6 2,1 

216 2 61,8 32,2 2,8 0,1 3,1 

31 3 64,6 28,4 3,6 0,3 3,1 

32 3 80,2 13,3 3,2 0,8 2,5 

33 3 

34 3 74,2 20,2 2,7 0,2 2,7 

35 3 63,2 29,8 4,1 0,6 2,3 

36 3 79,2 14,1 4,3 0,5 1,9 

37 3 62,5 31,3 2,9 0,2 3,1 

38 3 72,7 20,6 3,5 0,1 3,1 

39 3 47,5 45,0 3,4 0,6 3,5 

310 3 60,3 33,6 2,7 0,9 2,5 

311 3 71,4 23,5 2,6 0,8 1,7 

312 3 64,1 31,2 2,8 0,3 1,6 

313 3 66,7 27,8 3,2 0,0 2,3 

314 3 48,1 46,3 3,4 0,2 2,0 

315 3 69,6 25,3 2,9 0,5 1,7 

316 3 75,2 18,3 3,5 0,7 2,3



nach Woche 2 


Neutrophile 

Granulozyten 

Leukozyten 

Eosinophile 

Granulozyten 

Basophile 

Granulozyten 

Monozyten 

11 1 72,3 21,8 3,2 0,2 2,5 

12 1 82,2 11,9 2,8 0,5 2,6 

13 1 66,2 28,2 2,9 0,6 2,1 

14 1 51,1 43,0 2,8 0,8 2,3 

15 1 71,4 20,9 3,5 1,0 3,2 

16 1 66,9 27,3 3,6 0,2 2,0 

17 1 64,3 31,0 2,4 0,1 2,2 

18 1 83,4 10,7 2,8 0,6 2,5 

19 1 71,9 22,0 3,1 0,3 2,7 

110 1 80,2 12,7 3,2 0,8 3,1 

111 1 70,9 23,3 3,0 0,5 2,3 

112 1 75,9 16,1 3,9 0,5 3,6 

113 1 77,5 17,2 2,5 0,3 2,5 

114 1 82,5 13,5 1,9 0,2 1,9 

115 1 80,3 14,5 2,7 0,4 2,1 

116 1 58,1 35,8 3,5 0,3 2,3 

21 2 58,6 35,1 3,5 0,2 2,6 

22 2 81,6 12,3 3,6 0,1 2,4 

23 2 72,4 20,5 3,4 0,8 2,9 

24 2 60,9 31,7 3,8 0,5 3,1 

25 2 79,4 14,7 3,2 0,4 2,3 

26 2 77,2 17,3 2,9 0,7 1,9 

27 2 72,1 21,8 3,2 0,5 2,4 

28 2 76,5 17,9 3,1 0,0 2,5 

29 2 53,2 41,2 2,6 0,2 2,8 

210 2 56,8 38,0 2,8 0,1 2,3 

211 2 82,7 13,6 1,7 0,3 1,7 

212 2 82,6 12,1 2,4 0,5 2,4 

213 2 51,6 42,9 3,2 0,2 2,1 

214 2 73,3 20,5 2,8 0,2 3,2 

215 2 79,8 13,5 3,5 0,5 2,7 

216 2 71,9 22,3 3,5 0,3 2,0 

31 3 65,6 28,1 3,5 0,3 2,5 

32 3 74,9 18,3 3,1 0,6 3,1 

33 3 

34 3 74,2 20,4 2,8 0,1 2,5 

35 3 64,1 30,8 2,4 0,4 2,3 

36 3 70,6 23,7 2,6 0,5 2,6 

37 3 76,9 16,7 2,9 0,6 2,9 

38 3 73,5 19,6 3,2 0,9 2,8 

39 3 76,9 16,9 3,1 0,0 3,1 

310 3 82,1 11,7 2,8 0,2 3,2 

311 3 66,0 27,3 3,6 0,5 2,6 

312 3 54,2 39,8 2,8 0,3 2,9 

313 3 81,7 12,4 2,5 0,6 2,8 

314 3 82,8 12,0 3,1 0,2 1,9 

315 3 79,6 14,6 3,4 0,1 2,3 

316 3 56,7 36,5 3,8 0,5 2,5



nach Woche 3 


Neutrophile 

Granulozyten 

Leukozyten 

Eosinophile 

Granulozyten 

Basophile 

Granulozyten 

Monozyten 

11 1 72,3 21,4 3,8 0,2 2,3 

12 1 64,1 30,3 3,2 0,3 2,1 

13 1 77,8 16,7 3,1 0,5 1,9 

14 1 71,9 22,2 2,6 0,8 2,5 

15 1 64,3 29,0 2,8 0,3 3,6 

16 1 48,8 44,8 2,9 0,2 3,3 

17 1 68,8 24,8 3,1 0,6 2,7 

18 1 80,6 12,4 3,0 0,9 3,1 

19 1 76,2 19,4 1,9 0,1 2,4 

110 1 84,6 10,8 2,1 0,0 2,5 

111 1 77,4 18,0 2,5 0,2 1,9 

112 1 66,7 27,5 3,1 0,5 2,2 

113 1 83,6 10,4 3,4 0,3 2,3 

114 1 84,5 10,1 3,1 0,1 2,2 

115 1 84,2 10,7 2,8 0,2 2,1 

116 1 82,3 11,5 3,6 0,3 2,3 

21 2 66,3 27,8 3,3 0,3 2,3 

22 2 61,9 32,0 3,5 0,1 2,5 

23 2 76,7 16,5 3,5 0,2 3,1 

24 2 57,1 35,5 3,6 0,5 3,3 

25 2 73,3 20,2 3,2 0,8 2,5 

26 2 72,5 22,5 2,5 0,7 1,8 

27 2 66,7 28,7 2,6 0,3 1,7 

28 2 61,2 33,4 2,7 0,2 2,5 

29 2 74,1 21,1 2,6 0,0 2,2 

210 2 77,6 17,0 2,9 0,6 1,9 

211 2 84,7 10,3 1,8 0,9 2,3 

212 2 56,1 38,2 2,1 1,0 2,6 

213 2 64,5 30,1 2,3 0,2 2,9 

214 2 76,9 16,3 3,5 0,1 3,2 

215 2 82,7 10,7 2,6 0,5 3,5 

216 2 77,8 16,1 3,7 0,3 2,1 

31 3 55,6 38,1 3,5 0,2 2,6 

32 3 81,3 11,5 3,8 0,3 3,1 

33 3 

34 3 82,6 12,0 2,8 0,3 2,3 

35 3 71,0 23,2 2,5 0,5 2,8 

36 3 69,2 24,7 2,4 0,6 3,1 

37 3 75,6 18,8 2,7 0,3 2,6 

38 3 82,1 11,5 3,6 0,3 2,5 

39 3 51,2 42,4 3,8 0,3 2,3 

310 3 72,7 22,1 2,9 0,2 2,1 

311 3 76,2 19,9 2,0 0,1 1,8 

312 3 67,5 26,1 2,6 0,2 3,6 

313 3 72,9 22,3 2,9 0,0 1,9 

314 3 83,1 10,4 3,5 0,2 2,8 

315 3 72,6 20,8 3,6 0,3 2,7 

316 3 79,5 13,6 3,8 0,5 2,6



nach Woche 6 


Neutrophile 

Granulozyten 

Leukozyten 

Eosinophile 

Granulozyten 

Basophile 

Granulozyten 

Monozyten 

11 1 73,3 20,4 3,6 0,3 2,4 

12 1 64,5 29,6 3,5 0,3 2,1 

13 1 81,8 12,5 3,2 0,6 1,9 

14 1 85,6 9,1 2,5 0,2 2,6 

15 1 77,7 16,9 2,8 0,3 2,3 

16 1 71,3 23,9 2,5 0,1 2,2 

17 1 77,1 18,0 2,6 0,5 1,8 

18 1 76,2 17,7 3,2 0,8 2,1 

19 1 71,0 23,7 1,9 0,7 2,7 

110 1 82,6 12,6 2,2 0,2 2,4 

111 1 72,3 22,9 2,4 0,1 2,3 

112 1 68,4 26,6 2,5 0,2 2,3 

113 1 76,3 17,8 3,1 0,3 2,5 

114 1 71,4 22,9 2,6 0,5 2,6 

115 1 72,7 21,7 3,1 0,1 2,4 

116 1 75,4 19,0 3,4 0,2 2,0 

21 2 77,1 17,4 3,2 0,2 2,1 

22 2 74,4 19,6 3,6 0,1 2,3 

23 2 71,8 22,2 3,1 0,4 2,5 

24 2 65,9 28,2 2,9 0,5 2,5 

25 2 81,6 13,1 2,5 0,2 2,6 

26 2 79,2 14,7 2,4 0,6 3,1 

27 2 76,9 16,6 2,9 0,8 2,8 

28 2 71,6 23,0 3,1 0,2 2,1 

29 2 79,5 16,8 1,9 0,1 1,7 

210 2 75,6 19,0 2,8 0,1 2,5 

211 2 71,3 24,3 2,2 0,3 1,9 

212 2 56,7 37,1 3,3 0,3 2,6 

213 2 76,1 17,4 3,2 0,6 2,7 

214 2 70,2 23,4 3,6 0,5 2,3 

215 2 68,6 26,7 2,1 0,1 2,5 

216 2 71,4 23,0 2,8 0,4 2,4 

31 3 79,3 14,5 3,5 0,2 2,5 

32 3 71,9 21,2 3,7 0,4 2,8 

33 3 

34 3 77,5 17,2 2,9 0,2 2,2 

35 3 81,2 13,9 2,7 0,1 2,1 

36 3 78,4 16,1 2,5 0,5 2,5 

37 3 69,7 24,7 2,4 0,6 2,6 

38 3 81,2 12,5 3,2 0,3 2,8 

39 3 69,7 23,2 3,6 0,5 3,0 

310 3 72,1 21,2 3,2 0,7 2,8 

311 3 75,3 19,4 3,2 0,2 1,9 

312 3 69,1 25,7 3,1 0,0 2,1 

313 3 74,3 20,5 2,5 0,3 2,4 

314 3 78,6 16,9 2,6 0,1 1,8 

315 3 72,3 21,8 3,4 0,4 2,1 

316 3 75,7 18,3 3,1 0,6 2,3



nach Woche 7 


Neutrophile 

Granulozyten 

Leukozyten 

Eosinophile 

Granulozyten 

Basophile 

Granulozyten 

Monozyten 

11 1 67,6 26,3 3,5 0,2 2,4 

12 1 62,5 31,2 3,6 0,1 2,6 

13 1 79,6 14,1 3,4 0,8 2,1 

14 1 54,8 38,7 3,8 0,5 2,2 

15 1 61,3 31,9 3,2 0,4 3,2 

16 1 

17 1 80,6 13,3 3,2 0,5 2,4 

18 1 70,6 23,8 3,1 0,0 2,5 

19 1 54,3 40,2 2,6 0,2 2,7 

110 1 62,9 31,0 2,8 0,1 3,2 

111 1 70,5 25,2 1,7 0,3 2,3 

112 1 78,1 15,4 2,4 0,5 3,6 

113 1 68,3 25,6 3,2 0,2 2,7 

114 1 74,5 20,6 2,8 0,2 1,9 

115 1 72,1 21,5 3,5 0,5 2,4 

116 1 75,9 18,0 3,5 0,3 2,3 

21 2 74,3 19,5 3,3 0,3 2,6 

22 2 53,3 40,1 3,6 0,6 2,4 

23 2 70,3 23,4 3,4 0,2 2,7 

24 2 58,1 35,2 3,5 0,1 3,1 

25 2 78,2 16,1 3,2 0,4 2,1 

26 2 76,3 18,5 2,8 0,5 1,9 

27 2 68,6 25,4 3,2 0,6 2,2 

28 2 70,6 22,8 3,2 0,9 2,5 

29 2 60,2 34,4 2,6 0,0 2,8 

210 2 73,1 21,6 2,8 0,2 2,3 

211 2 69,5 26,3 1,9 0,5 1,8 

212 2 66,7 28,6 2,4 0,3 2,0 

213 2 53,6 40,4 3,3 0,6 2,1 

214 2 68,9 24,8 2,8 0,2 3,3 

215 2 74,3 19,7 3,2 0,1 2,7 

216 2 70,2 23,8 3,5 0,5 2,0 

31 3 74,6 19,4 3,2 0,3 2,5 

32 3 74,2 19,9 2,8 0,5 2,6 

33 3 

34 3 69,0 25,2 2,8 0,7 2,3 

35 3 67,7 24,7 3,5 0,9 3,2 

36 3 68,8 25,5 3,6 0,1 2,0 

37 3 76,2 18,6 2,4 0,6 2,2 

38 3 62,2 31,9 2,8 0,6 2,5 

39 3 63,7 30,2 3,1 0,3 2,7 

310 3 71,1 21,8 3,2 0,8 3,1 

311 3 63,4 30,9 3,0 0,4 2,3 

312 3 72,4 19,6 3,9 0,5 3,6 

313 3 53,1 41,6 2,5 0,3 2,5 

314 3 76,1 19,9 1,9 0,2 1,9 

315 3 71,4 23,4 2,7 0,4 2,1 

316 3 68,5 25,4 3,5 0,3 2,3



nach Woche 8 


Neutrophile 

Granulozyten 

Leukozyten 

Eosinophile 

Granulozyten 

Basophile 

Granulozyten 

Monozyten 

11 1 76,2 18,2 3,3 0,0 2,3 

12 1 77,8 16,2 3,6 0,2 2,2 

13 1 79,1 15,3 3,4 0,1 2,1 

14 1 59,4 33,9 3,5 0,3 2,9 

15 1 65,8 27,4 3,2 0,5 3,1 

16 1 

17 1 60,2 33,8 3,2 0,3 2,5 

18 1 63,6 30,9 3,2 0,2 2,1 

19 1 77,5 17,9 2,6 0,0 2,0 

110 1 76,7 17,8 2,8 0,1 2,6 

111 1 79,6 15,6 1,9 0,2 2,7 

112 1 76,4 18,8 2,4 0,3 2,1 

113 1 74,5 19,9 3,3 0,3 2,0 

114 1 79,2 15,8 2,8 0,4 1,8 

115 1 79,3 14,7 3,2 0,2 2,6 

116 1 42,3 51,6 3,5 0,3 2,3 

21 2 78,9 15,3 3,2 0,2 2,4 

22 2 63,3 31,4 3,1 0,1 2,1 

23 2 71,1 22,9 3,5 0,2 2,3 

24 2 71,4 22,7 2,8 0,3 2,8 

25 2 79,5 14,2 2,7 0,5 3,1 

26 2 72,1 21,3 3,4 0,6 2,6 

27 2 79,3 15,3 2,9 0,3 2,2 

28 2 74,6 21,4 1,9 0,0 2,1 

29 2 60,9 34,5 2,3 0,0 2,3 

210 2 82,5 12,8 1,7 0,4 2,6 

211 2 81,0 13,3 2,6 0,3 2,8 

212 2 67,5 26,8 3,4 0,2 2,1 

213 2 72,4 21,5 3,5 0,3 2,3 

214 2 72,8 21,9 2,6 0,2 2,5 

215 2 77,1 17,3 3,2 0,0 2,4 

216 2 71,1 22,6 3,6 0,4 2,3 

31 3 65,7 29,0 2,8 0,2 2,3 

32 3 81,6 13,5 2,3 0,1 2,5 

33 3 

34 3 75,2 18,7 3,6 0,2 2,3 

35 3 79,3 15,0 3,1 0,0 2,6 

36 3 76,9 17,7 3,2 0,3 1,9 

37 3 72,6 20,7 3,0 0,5 3,2 

38 3 67,7 25,3 3,5 0,4 3,1 

39 3 81,6 12,9 2,6 0,2 2,7 

310 3 78,2 16,7 2,5 0,3 2,3 

311 3 78,6 16,5 2,4 0,3 2,2 

312 3 70,3 23,5 3,5 0,2 2,5 

313 3 78,3 16,7 2,8 0,1 2,1 

314 3 61,5 34,1 2,4 0,0 2,0 

315 3 63,8 30,8 2,8 0,3 2,3 

316 3 74,6 19,1 3,4 0,3 2,6



nach Woche 9 


Neutrophile 

Granulozyten 

Leukozyten 

Eosinophile 

Granulozyten 

Basophile 

Granulozyten 

Monozyten 

11 1 60,2 34,3 3,2 0,1 2,2 

12 1 72,7 21,7 3,1 0,2 2,3 

13 1 77,1 16,4 3,5 0,5 2,5 

14 1 76,3 17,7 2,8 0,3 2,9 

15 1 80,9 12,8 2,7 0,6 3,0 

16 1 

17 1 78,3 26,0 2,9 0,2 2,6 

18 1 67,5 28,5 1,9 0,0 2,1 

19 1 47,6 48,1 2,3 0,0 2,0 

110 1 68,8 26,8 1,7 0,1 2,6 

111 1 78,1 16,5 2,5 0,2 2,7 

112 1 65,6 28,3 3,4 0,4 2,3 

113 1 78,6 15,7 3,5 0,2 2,0 

114 1 81,8 13,7 2,6 0,1 1,8 

115 1 72,1 21,7 3,2 0,4 2,6 

116 1 79,5 14,4 3,7 0,3 2,1 

21 2 81,5 13,1 2,8 0,3 2,3 

22 2 64,1 31,3 2,2 0,2 2,2 

23 2 66,7 27,3 3,4 0,5 2,1 

24 2 81,6 11,6 3,6 0,3 2,9 

25 2 82,2 11,6 3,1 0,0 3,1 

26 2 83,3 10,8 3,2 0,1 2,6 

27 2 79,2 15,1 3,0 0,2 2,5 

28 2 69,8 24,2 3,5 0,4 2,1 

29 2 76,9 18,2 2,6 0,3 2,0 

210 2 64,3 30,5 2,1 0,5 2,6 

211 2 73,4 21,4 2,4 0,1 2,7 

212 2 53,8 40,6 3,5 0,0 2,1 

213 2 44,7 50,2 2,8 0,3 2,0 

214 2 81,1 14,4 2,4 0,3 1,8 

215 2 81,0 13,0 2,9 0,5 2,6 

216 2 63,3 30,8 3,4 0,2 2,3 

31 3 81,8 12,8 2,7 0,3 2,4 

32 3 75,3 19,9 2,5 0,2 2,1 

33 3 

34 3 75,1 18,6 3,4 0,1 2,8 

35 3 67,6 26,1 3,2 0,0 3,1 

36 3 80,7 13,4 3,0 0,3 2,6 

37 3 80,4 14,2 3,0 0,2 2,2 

38 3 73,0 21,2 3,2 0,1 2,5 

39 3 76,4 18,4 2,6 0,3 2,3 

310 3 64,7 30,2 2,5 0,0 2,6 

311 3 64,9 29,9 2,2 0,2 2,8 

312 3 70,4 23,7 3,5 0,3 2,1 

313 3 82,1 12,3 2,8 0,5 2,3 

314 3 76,4 19,1 2,1 0,2 2,2 

315 3 79,7 14,8 2,8 0,3 2,4 

316 3 72,1 21,9 3,4 0,3 2,3


Anhangstabelle 71: Objektdichte der Rotlauf-Antikörper der Mastschweine zu 

Versuchsbeginn und während der ersten Applikationsphase [Extinktion] 

Objektdichte 

Versuchswoche 

Tier Gruppe Einstallung 1 2 3 

11 1 0,003 0,004 0,005 0,025 

12 1 0,010 0,015 0,089 0,093 

13 1 0,011 0,004 0,012 0,008 

14 1 0,011 0,019 0,017 0,018 

15 1 0,002 0,001 0,045 0,085 

16 1 0,001 0,000 0,015 0,026 

17 1 0,007 0,017 0,032 0,049 

18 1 0,011 0,019 0,025 0,036 

19 1 0,001 0,009 0,069 0,073 

110 1 0,004 0,010 0,017 0,034 

111 1 0,001 0,007 0,015 0,027 

112 1 0,010 0,019 0,008 0,016 

113 1 0,002 0,013 0,015 0,018 

114 1 0,004 0,005 0,002 0,006 

115 1 0,011 0,026 0,021 0,043 

116 1 0,009 0,020 0,036 0,034 

21 2 0,002 0,001 0,004 0,007 

22 2 0,009 0,010 0,027 0,065 

23 2 0,002 0,008 0,010 0,015 

24 2 0,094 0,064 0,076 0,095 

25 2 0,004 0,008 0,013 0,063 

26 2 0,013 0,024 0,030 0,061 

27 2 0,002 0,060 0,028 0,008 

28 2 -0,007 0,001 0,001 0,007 

29 2 0,002 0,005 0,014 0,013 

210 2 -0,007 0,002 0,018 0,007 

211 2 0,002 0,007 0,019 0,016 

212 2 0,022 0,040 0,008 0,016 

213 2 0,004 0,018 0,013 0,016 

214 2 0,007 0,014 0,005 0,014 

215 2 0,001 0,017 0,014 0,017 

216 2 -0,004 0,016 0,005 0,024 

31 3 -0,002 0,025 0,028 0,108 

32 3 -0,004 0,007 0,010 0,035 

33 3 -0,010 0,004 

34 3 0,000 0,008 0,002 0,044 

35 3 0,004 0,007 0,009 0,013 

36 3 0,002 0,001 0,006 0,056 

37 3 0,011 0,010 0,039 0,114 

38 3 0,007 0,013 0,017 0,018 

39 3 -0,002 0,035 0,026 0,035 

310 3 0,005 0,007 0,014 0,023 

311 3 0,006 0,015 0,027 0,100 

312 3 0,007 0,004 0,156 0,099 

313 3 0,030 0,040 0,046 0,058 

314 3 -0,001 0,005 0,017 0,016 

315 3 0,020 0,024 0,155 

316 3 0,004 0,005 0,059 0,020


Anhangstabelle 72: Objektdichte der Rotlauf-Antikörper der Mastschweine am Ende 

der Kontrollphase und während der zweiten Applikationsphase [Extinktion] 

Objektdichte 

Versuchswoche 

Tier Gruppe 6 7 8 9 

11 1 0,067 0,048 0,042 0,013 

12 1 0,165 0,063 0,051 0,040 

13 1 0,140 0,068 0,071 0,053 

14 1 0,065 0,038 0,025 0,032 

15 1 0,294 0,264 0,239 0,185 

16 1 

17 1 0,157 0,095 0,071 0,055 

18 1 0,169 0,114 0,086 0,111 

19 1 0,218 0,174 0,085 0,059 

110 1 0,270 0,274 0,150 0,123 

111 1 0,209 0,212 0,105 0,094 

112 1 0,134 0,115 0,076 0,081 

113 1 0,090 0,052 0,029 0,006 

114 1 0,106 0,091 0,083 0,080 

115 1 0,114 0,129 0,085 0,059 

116 1 0,212 0,164 0,125 0,126 

21 2 0,137 0,139 0,106 0,116 

22 2 0,435 0,309 0,241 0,245 

23 2 0,196 0,110 0,052 0,048 

24 2 0,338 0,285 0,253 0,246 

25 2 0,080 0,051 0,034 0,041 

26 2 0,286 0,304 0,270 0,189 

27 2 0,201 0,280 0,219 0,180 

28 2 0,569 0,591 0,471 0,415 

29 2 0,129 0,085 0,070 0,067 

210 2 0,189 0,140 0,078 0,070 

211 2 0,197 0,189 0,063 0,115 

212 2 0,077 0,058 0,044 0,048 

213 2 0,240 0,151 0,127 0,093 

214 2 0,246 0,215 0,149 0,130 

215 2 0,131 0,106 0,102 0,091 

216 2 0,327 0,261 0,185 0,178 

31 3 0,427 0,311 0,224 0,208 

32 3 0,136 0,099 0,078 0,050 

33 3 

34 3 0,396 0,481 0,257 0,162 

35 3 0,146 0,123 0,140 0,100 

36 3 0,391 0,222 0,251 0,189 

37 3 0,230 0,185 0,140 

38 3 0,111 0,112 0,083 0,055 

39 3 0,152 0,087 0,096 0,067 

310 3 0,425 0,439 0,299 0,289 

311 3 0,200 0,181 0,118 0,120 

312 3 0,391 0,256 0,210 0,167 

313 3 0,182 0,135 0,110 0,112 

314 3 0,153 0,161 0,159 0,135 

315 3 0,165 0,126 0,105 0,077 

316 3 0,456 0,275 0,172 0,143

Lebenslauf 

Persönliche Daten: 

Name: 

Nicole Maaß, geb. Langhardt 

Geburtsdatum: 26.4.1974 

Geburtsort: 

Familienstand: 

Staatsangehörigkeit: 

Mettmann 

verheiratet 

deutsch 

Schulbildung: 

1980 - 1984: Grundschule in Düsseldorf 

1984 - 1990: Konrad-Heresbach-Gymnasium in Mettmann 

1990 - 1993 Deutsche Schule Istanbul 

7/1993 Abitur 

Hochschulausbildung: 

11/1993 -10/1999: Studium der Agrarwissenschaften an der 

Technischen Universität München-Weihenstephan, 

Fachrichtung Tierproduktion 

10/99 Abschluss zum Diplom-Agraringenieur Univ. 

seit 11/1999: 

Wissenschaftlicher Mitarbeiter am Department für 

Tierwissenschaften, Fachgebiet Tierernährung der 

Technischen Universität München

Technische Universität München Wissenschaftszentrum ...

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