Filtros para centrífuga Amicon® Ultra-15 - Millipore
Filtros para centrífuga Amicon® Ultra-15 - Millipore
Filtros para centrífuga Amicon® Ultra-15 - Millipore
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Guía del usuario<br />
<strong>Filtros</strong> <strong>para</strong> <strong>centrífuga</strong><br />
<strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong><br />
<strong>para</strong> volúmenes máximos de <strong>15</strong> ml<br />
Unidad Amicron® <strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong> 10K <strong>para</strong> diagnóstico in vitro<br />
Los filtros <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong> 3K, 30K, 50K y 100K son sólo<br />
<strong>para</strong> investigación, no pueden utilizarse <strong>para</strong> procedimientos<br />
diagnósticos.<br />
Español<br />
Introducción<br />
Los filtros <strong>para</strong> <strong>centrífuga</strong> <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong> proporcionan una ultrafiltración rápida con capacidad <strong>para</strong><br />
elevados factores de concentración y fácil recuperación del concentrado a partir de matrices de muestras<br />
diluidas y complejas. El diseño vertical y el área de superficie disponible de la membrana proporcionan un<br />
rápido procesamiento de la muestra, una gran recuperación (normalmente superior al 90% de la disolución<br />
de partida diluida) y una gran capacidad de concentración de 80 veces. El tiempo de procesamiento<br />
habitual es de <strong>15</strong> a 60 minutos, dependiendo del límite de peso molecular nominal (NMWL). El diseño<br />
vertical reduce al mínimo la polarización del soluto y el plegamiento posterior de la membrana; por otro<br />
lado, un bloqueo automático físico del filtro impide la centrifugación hasta la sequedad y la posible pérdida<br />
de muestra. El concentrado se recoge del depósito utilizando una pipeta, mientras que el ultrafiltrado se<br />
recoge en el tubo de <strong>centrífuga</strong> suministrado. El filtro puede centrifugarse en un rotor oscilante o en uno de<br />
ángulo fijo. Los filtros <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong> se suministran estériles y son <strong>para</strong> un sólo uso.<br />
La línea de productos <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong> abarca cinco valores de corte diferentes (límite de peso molecular<br />
nominal, NMWL, o peso molecular de corte, MWCO):<br />
● Filtro <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong> 3K — NMWL de 3.000<br />
● Filtro <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong> 10K — NMWL de 10.000<br />
● Filtro <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong> 30K — NMWL de 30.000<br />
● Filtro <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong> 50K — NMWL de 50.000<br />
● Filtro <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong> 100K — NMWL de 100.000<br />
Los filtros <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong> 10K están pensados <strong>para</strong> diagnóstico in vitro y pueden utilizarse<br />
<strong>para</strong> concentrar suero, orina, líquido cefalorraquídeo y otros líquidos corporales antes del<br />
análisis.<br />
Los filtros <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong> 3K, 30K, 50K y 100K son sólo <strong>para</strong> investigación y no pueden utilizarse <strong>para</strong><br />
procedimientos diagnósticos.<br />
<strong>Filtros</strong> <strong>para</strong> <strong>centrífuga</strong> <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong><br />
1
Aplicaciones<br />
● Concentración de muestras biológicas que contenga antígenos, anticuerpos, enzimas, ácidos nucleicos<br />
(muestras de ADN o ARN monocatenarios o bicatenarios), microorganismos, eluídos de columna y<br />
muestras purificadas.<br />
● Purificación de componentes macromoleculares encontrados en extractos de cultivos tisulares y<br />
lisados celulares, eliminación de cebadores, conectores o etiquetas moleculares de una mezcla de<br />
reacción, y retirada de proteínas antes de la HPLC.<br />
● Desalinización, cambio de tampones o diafiltración.<br />
Materiales suministrados<br />
La unidad <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong> se suministra con un tapón, un filtro y un tubo de <strong>centrífuga</strong>.<br />
30,000<br />
MWCO<br />
ul<br />
<strong>15</strong>00<br />
1000<br />
500<br />
250<br />
<strong>15</strong><br />
10<br />
7.5<br />
5.0<br />
Tapa<br />
Filtro<br />
Equipo necesario<br />
Tubo de <strong>centrífuga</strong><br />
● Centrífuga con rotor oscilante o de ángulo fijo con pocillos/portamuestras en los que puedan colocarse<br />
tubos de 50 ml<br />
AVISO: Para evitar que se rompa la unidad durante la centrifugación, debe comprobarse ausencia de<br />
bloqueo antes de empezar a centrifugar.<br />
● Pipeta con puntas de 200 microlitros (μl) <strong>para</strong> recuperación del concentrado<br />
Idoneidad<br />
Se sugiere realizar estudios preliminares de recuperación y de retención con el fin de reunir las condiciones<br />
necesarias <strong>para</strong> desempeñar su función: Ver la sección “Cómo cuantificar las recuperaciones”.<br />
Conservación y periodo de validez de la unidad<br />
Conservar a <strong>15</strong>–30 °C. El periodo de validez es de 3 años a partir de la fecha de fabricación. Para los<br />
números de catálogo UFC901008, UFC901024 y UFC901096, consulte la fecha de caducidad de la etiqueta<br />
del envase.<br />
2 <strong>Filtros</strong> <strong>para</strong> <strong>centrífuga</strong> <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong>
Pre-enjuague<br />
Las membranas de ultrafiltración de los dispositivos <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong> contienen restos de glicerina. Si<br />
este material interfiere en el análisis, enjuague previamente el filtro con tampón o agua Milli-Q®. Si sigue<br />
habiendo interferencia, enjuague con NaOH 0,1N seguido de un segundo centrifugado de tampón o agua<br />
Milli-Q®.<br />
AVISO: No permita que la membrana de los filtros <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong> se seque después de haberse humedecido.<br />
Si no va a utilizar la unidad inmediatamente después del enjuagado previo, deje líquido en la membrana<br />
hasta que se utilice.<br />
Cómo utilizar los filtros <strong>para</strong> <strong>centrífuga</strong> <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong><br />
1. Coloque hasta <strong>15</strong> ml de muestra (12 ml si se está utilizando un rotor de ángulo fijo) en el filtro<br />
<strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>.<br />
2. Coloque la unidad tapada en el rotor de la <strong>centrífuga</strong>; equilibre con una unidad similar.<br />
3. Si utiliza un rotor oscilante, centrifugue la unidad a un máximo de 4.000 × g durante unos<br />
<strong>15</strong>-60 minutos.<br />
Si utiliza un rotor de ángulo fijo, oriente el filtro con el panel donde está la membrana mirando<br />
hacia arriba y centrifugue a un máximo de 5.000 × g durante unos <strong>15</strong>–60 minutos.<br />
NOTA: En las Figuras 1 y 2, y las Tablas 1 y 2 encontrará los tiempos de centrifugación habituales.<br />
4. Para recuperar el soluto concentrado, introduzca una pipeta en el fondo del filtro y retire la muestra<br />
utilizando un movimiento de barrido de un lado al otro <strong>para</strong> asegurar la recuperación total. El<br />
ultrafiltrado puede conservarse en el tubo de <strong>centrífuga</strong>.<br />
NOTA: Para una recuperación óptima, retire la muestra concentrada inmediatamente después de la<br />
centrifugación.<br />
Desalación o diafiltración<br />
La desalación, el cambio de tampón o la diafiltración son métodos importantes <strong>para</strong> retirar las sales o<br />
los disolventes de las disoluciones que contienen biomoléculas. En el filtro <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong> pueden<br />
eliminarse las sales o cambiar los tampones concentrando la muestra y reconstituyendo luego el<br />
concentrado hasta el volumen de muestra original con cualquier disolvente deseado. El proceso de<br />
"lavado" puede repetirse hasta que se haya reducido de manera suficiente la concentración del microsoluto<br />
contaminante. Vea el siguiente ejemplo.<br />
30,000<br />
MWCO<br />
ul<br />
<strong>15</strong>00<br />
1000<br />
500<br />
250<br />
<strong>15</strong><br />
10<br />
7.5<br />
5.0<br />
<strong>15</strong> ml de<br />
1 mg/ml de<br />
proteína<br />
en NaCl<br />
100 mM<br />
Centrifugar<br />
hasta<br />
concentrado<br />
30,000<br />
MWCO<br />
ul<br />
<strong>15</strong>00<br />
1000<br />
500<br />
250<br />
<strong>15</strong><br />
10<br />
7.5<br />
5.0<br />
200 μl de<br />
75 mg/ml de<br />
proteína en<br />
NaCl 100 mM<br />
NaCl<br />
100 mM<br />
Añadir 14,8 ml<br />
de NaCl 10 mM<br />
o cambiar el<br />
tampón<br />
<strong>Filtros</strong> <strong>para</strong> <strong>centrífuga</strong> <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong><br />
30,000<br />
MWCO<br />
ul<br />
<strong>15</strong>00<br />
1000<br />
500<br />
250<br />
<strong>15</strong><br />
10<br />
7.5<br />
5.0<br />
<strong>15</strong> ml de<br />
1 mg/ml de<br />
proteína en<br />
NaCl 11,2 mM<br />
Centrifugar<br />
hasta<br />
concentrado<br />
30,000<br />
MWCO<br />
ul<br />
<strong>15</strong>00<br />
1000<br />
500<br />
250<br />
<strong>15</strong><br />
10<br />
7.5<br />
5.0<br />
200 μl de<br />
75 mg/ml de<br />
proteína en<br />
NaCl 11,2 mM<br />
NaCl<br />
11,2 mM<br />
3
Rendimiento<br />
Caudal<br />
Los factores que afectan al caudal son la concentración de la muestra, el volumen de partida, la naturaleza<br />
química del soluto, la fuerza <strong>centrífuga</strong> relativa, el ángulo del rotor de la <strong>centrífuga</strong>, el tipo de membrana<br />
y la temperatura. Pueden utilizarse las figuras 1 y 2, y las tablas 1 y 2 <strong>para</strong> calcular el tiempo necesario<br />
<strong>para</strong> conseguir un volumen dado de filtrado o de concentrado <strong>para</strong> una variedad de marcadores proteicos.<br />
Un tiempo de centrifugación típico <strong>para</strong> una muestra de <strong>15</strong> ml es de aproximadamente <strong>15</strong> a 60 minutos<br />
(dependiendo del límite de peso molecular nominal del filtro). La mayor parte de la muestra se filtra en los<br />
<strong>15</strong> a 30 primeros minutos de la centrifugación, pero el menor volumen de concentrado (<strong>15</strong>0-300 μl) se<br />
alcanza después de centrifugar durante <strong>15</strong> a 60 minutos.<br />
Figura 1. Volumen de filtrado típico frente a tiempo de centrifugación (rotor oscilante)<br />
Volumen de filtrado (ml)<br />
16<br />
14<br />
12<br />
10<br />
8<br />
6<br />
4<br />
2<br />
0<br />
0 10 20 30 40 50 60<br />
Tiempo de centrifugación (minutos)<br />
Condiciones de centrifugación: 4.000 × g, temperatura ambiente, volumen de partida, <strong>15</strong> ml.<br />
Marcadores proteicos utilizados: Citocromo c <strong>para</strong> el 3K y el 10K, BSA <strong>para</strong> el 30K y el 50K,<br />
e IgG <strong>para</strong> el 100K, n = 6.<br />
Figura 2. Volumen de filtrado típico frente a tiempo de centrifugación (rotor de ángulo fijo)<br />
Volumen de filtrado (ml)<br />
12<br />
10<br />
8<br />
6<br />
4<br />
2<br />
0<br />
0 10 20 30 40 50 60<br />
Tiempo de centrifugación (minutos)<br />
Condiciones de centrifugación: 5.000 × g, temperatura ambiente, volumen de partida, 12 ml.<br />
Marcadores proteicos utilizados: Citocromo c <strong>para</strong> el 3K y el 10K, BSA <strong>para</strong> el 30K y el 50K,<br />
e IgG <strong>para</strong> el 100K, n = 6.<br />
4 <strong>Filtros</strong> <strong>para</strong> <strong>centrífuga</strong> <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong><br />
3K<br />
10K<br />
30K<br />
50K<br />
100K<br />
3K<br />
10K<br />
30K<br />
50K<br />
100K
Caudal, continuación<br />
Tabla 1. Volumen de concentrado típico frente a tiempo de centrifugación (rotor oscilante)<br />
Volumen del concentrado (μl)<br />
Tiempo de<br />
centrifugación<br />
(minutos) Filtro 3K Filtro 10K Filtro 30K Filtro 50K Filtro 100K<br />
10 – 668 361 249 7.420<br />
<strong>15</strong> – – – 201 –<br />
20 – 219 206 175 2.216<br />
30 537 145 <strong>15</strong>5 – 244<br />
40 331 146 135 – 141<br />
45 299 – – – –<br />
60 209 – – – –<br />
Condiciones de centrifugación: 4.000 × g, temperatura ambiente, volumen de partida, <strong>15</strong> ml. Marcadores<br />
proteicos utilizados: Citocromo c <strong>para</strong> el 3K y el 10K, BSA <strong>para</strong> el 30K y el 50K, e IgG <strong>para</strong> el 100K,<br />
n = 6 (valor medio <strong>para</strong> tres lotes de membrana). Los volúmenes sombreados se utilizaron <strong>para</strong> calcular la<br />
recuperación de proteínas de la tabla 4.<br />
Tabla 2. Volumen de concentrado típico frente a tiempo de centrifugación (rotor de ángulo fijo)<br />
Volumen del concentrado (μl)<br />
Tiempo de<br />
centrifugación<br />
(minutos) Filtro 3K Filtro 10K Filtro 30K Filtro 50K Filtro 100K<br />
10 – 994 411 136 2.760<br />
<strong>15</strong> – – – 113 –<br />
20 – 273 140 91 400<br />
30 947 <strong>15</strong>9 111 – 166<br />
40 529 101 90 – –<br />
45 462 – – – –<br />
60 268 – – – –<br />
Condiciones de centrifugación: 5.000 × g, temperatura ambiente, volumen de partida, 12 ml. Marcadores<br />
proteicos utilizados: Citocromo c <strong>para</strong> el 3K y el 10K, BSA <strong>para</strong> el 30K y el 50K, e IgG <strong>para</strong> el 100K,<br />
n = 6 (valor medio <strong>para</strong> tres lotes de membrana). Los volúmenes sombreados se utilizaron <strong>para</strong> calcular la<br />
recuperación de proteínas de la tabla 4.<br />
Retención proteica y recuperación del concentrado<br />
Las membranas utilizadas en las unidades <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong> se caracterizan por un límite de peso molecular<br />
nominal (NMWL); es decir, por su capacidad de retención de moléculas por encima de un peso molecular<br />
específico. Los solutos con pesos moleculares próximos al NMWL pueden ser retenidos sólo parcialmente.<br />
La rentención de la membrana depende del tamaño molecular y la forma del soluto. Para la mayoría de las<br />
aplicaciones, el peso molecular es un parámetro adecuado <strong>para</strong> evaluar las características de retención.<br />
Merck <strong>Millipore</strong> Ltd. recomienda utilizar una membrana con un NMWL al menos dos veces inferior al peso<br />
molecular de la proteína que se pretende concentrar. Consulte la Tabla 3.<br />
<strong>Filtros</strong> <strong>para</strong> <strong>centrífuga</strong> <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong><br />
5
Retención proteica y recuperación del concentrado, continuación<br />
Tabla 3. Retención típica de los marcadores proteicos<br />
Marcador/Concentración<br />
Peso<br />
molecular<br />
NMWL del<br />
dispositivo<br />
% Retención<br />
cubeta oscilante<br />
% Retención<br />
ángulo fijo<br />
Tiempo de<br />
centrifugado<br />
(minutos)<br />
α-Quimotripsinógeno (1 mg/ml) 25.000 3K > 95 > 95 60<br />
Citocromo c (0,25 mg/ml) 12.400 > 95 > 95 60<br />
Vitamina B-12 (0,2 mg/ml) 1.350 < 25 < 25 60<br />
α-Quimotripsinógeno (1 mg/ml) 25.000 10K > 95 > 95 30<br />
Citocromo c (0,25 mg/ml) 12.400 > 95 > 95 30<br />
Vitamina B-12 (0,2 mg/ml) 1.350 < 5 < 5 30<br />
BSA (1 mg/ml) 67.000 30K > 95 > 95 20<br />
Ovalbúmina (1 mg/ml) 45.000 > 95 > 95 20<br />
Citocromo c (0,25 mg/ml) 12.400 < 10 < 10 20<br />
Vitamina B-12 (0,2 mg/ml) 1.350 < 5 < 5 20<br />
BSA (1 mg/ml) 67.000 50K > 90 > 90 10<br />
Ovalbúmina (1 mg/ml) 45.000 ~ 65 ~ 55 10<br />
Citocromo c (0,25 mg/ml) 12.400 < 5 < 5 10<br />
Tiroglobulina (0,5 mg/ml) 677.000 100K > 90 > 90 20<br />
IgG (1 mg/ml) <strong>15</strong>6.000 > 90 > 90 20<br />
Ovalbúmina (1 mg/ml) 45.000 < 25 < <strong>15</strong> 20<br />
Condiciones de centrifugación <strong>para</strong> las tablas 3 y 4: Rotor oscilante (4.000 × g, volumen de partida, <strong>15</strong> ml), o rotor<br />
de ángulo fijo (5.000 × g, volumen de partida, 12 ml), temperatura ambiente, n = 6 (valor medio <strong>para</strong> tres lotes de<br />
membrana).<br />
Los factores que determinan la recuperación de la muestra son la naturaleza del soluto proteico en relación<br />
con el NMWL del filtro elegido, la concentración de partida y el factor de concentración. En la Tabla 4 se<br />
indican las recuperaciones típicas <strong>para</strong> los filtros <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong>.<br />
Tabla 4. Recuperación de concentrado típica<br />
Marcador/<br />
Concentración<br />
Citocromo c<br />
(0,25 mg/ml)<br />
Citocromo c<br />
(0,25 mg/ml)<br />
NMWL del<br />
dispositivo<br />
Tiempo de<br />
centrifugado<br />
(minutos)<br />
Volumen del<br />
concentrado (μl)<br />
Cubeta<br />
oscilante<br />
Ángulo<br />
fijo<br />
Factor de<br />
concentración (x)<br />
Cubeta<br />
oscilante<br />
Ángulo<br />
fijo<br />
Recuperación del<br />
concentrado (%)<br />
Cubeta<br />
Ángulo fijo<br />
oscilante<br />
3K 60 209 268 73,8 44,6 93,8 94,4<br />
10K 20 219 273 71,4 44,8 95,9 95,1<br />
BSA (1 mg/ml) 30K 20 206 140 72,8 85,5 96,2 95,5<br />
BSA (1 mg/ml) 50K <strong>15</strong> 201 113 77,7 106,8 90,7 92,0<br />
IgG (1 mg/ml) 100K 30 244 166 67,6 71,9 81,0 82,9<br />
Los volúmenes que aparecen sombreados se tomaron de las tablas 1 y 2.<br />
6 <strong>Filtros</strong> <strong>para</strong> <strong>centrífuga</strong> <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong>
Maximización de la recuperación de la muestra<br />
Una baja recuperación de muestra en el concentrado puede deberse a pérdidas por adsorción, exceso de<br />
concentración o paso de la muestra a través de la membrana.<br />
● Las pérdidas por adsorción dependen de la concentración del soluto, su naturaleza hidrófoba, la<br />
temperatura y el tiempo de contacto con las superficies del filtro, la composición de la muestra y el<br />
pH. Para reducir las pérdidas al mínimo, retire las muestras concentradas inmediatamente después de<br />
la centrifugación.<br />
● Si la concentración de la muestra de partida es elevada, controle el proceso de centrifugación <strong>para</strong> evitar<br />
su concentración excesiva. Esta última puede provocar precipitación y posibles pérdidas de muestra.<br />
● Si parece que la muestra va a atravesar la membrana, elija un filtro <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong> de menor<br />
NMWL.<br />
Cómo cuantificar las recuperaciones<br />
Calcule la recuperación total, el porcentaje de recuperación de concentrado y el porcentaje de recuperación<br />
de filtrado utilizando el método que se indica a continuación. El procedimiento proporciona una estrecha<br />
aproximación de las recuperaciones <strong>para</strong> las disoluciones que contienen concentraciones máximas de<br />
aproximadamente 20 mg/ml.<br />
NOTA: Las técnicas de ensayo apropiadas son la espectrofotometría de absorción, el radioinmunoensayo,<br />
el índice de refracción y la conductividad.<br />
Procedimiento de pesada directo<br />
La densidad de la mayoría de las proteínas diluidas es casi igual a la densidad del agua (es decir, 1 g/ml).<br />
Aprovechando esta propiedad, pueden cuantificarse los volúmenes de concentrado y de filtrado pesándolos<br />
y convirtiendo las unidades de gramos a mililitros. Esta técnica es válida sólo <strong>para</strong> disoluciones con<br />
concentraciones de aproximadamente 20 mg/ml o inferiores.<br />
1. Antes de usarlos, pese por se<strong>para</strong>do el filtro vacío, el tubo de <strong>centrífuga</strong> y una tubo <strong>para</strong> recogida del<br />
concentrado vacío.<br />
2. Llene el filtro con disolución y vuelva a pesarlo.<br />
3. Monte la unidad y centrifugue según las instrucciones.<br />
4. Recoja el concentrado con una pipeta y dispénselo en el tubo <strong>para</strong> recogida del concentrado<br />
previamente pesado.<br />
5. Retire el filtro del tubo de <strong>centrífuga</strong> y pese el tubo de <strong>centrífuga</strong> y el tubo de recogida del<br />
concentrado.<br />
6. Reste el peso del filtro vacío o de los tubos vacíos <strong>para</strong> calcular los pesos del material de partida, el<br />
filtrado y el concentrado.<br />
7. Ensaye el material de partida, el filtrado y el concentrado <strong>para</strong> determinar la concentración de soluto.<br />
8. Calcule las recuperaciones utilizando los datos de peso/volumen y las concentraciones medidas, de la<br />
siguiente forma:<br />
<strong>Filtros</strong> <strong>para</strong> <strong>centrífuga</strong> <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong><br />
7
Procedimiento de pesada directo, continuación<br />
% de recuperación del concentrado = 100 ×<br />
Wf × Cf % de recuperación del filtrado = 100 ×<br />
Wo × Co % de recuperación total = % de recuperación del concentrado + % de recuperación del filtrado<br />
W c = peso total del concentrado antes del ensayo<br />
W o = peso del material de partida original<br />
W f = peso del filtrado<br />
C c = concentración del concentrado<br />
C o = concentración del material de partida original<br />
C f = concentración del filtrado<br />
Especificaciones<br />
Volumen máximo de muestra inicial<br />
Cubeta oscilante <strong>15</strong>,0 ml<br />
Rotor de ángulo fijo 12,0 ml<br />
W c × C c<br />
W o × C o<br />
Volumen concentrado final habitual <strong>15</strong>0-300 μl<br />
Fuerza <strong>centrífuga</strong> relativa máxima<br />
Rotor oscilante 4.000 × g<br />
Rotor de ángulo fijo 5.000 × g<br />
Área de membrana activa 7,6 cm 2<br />
Dimensiones<br />
Filtro en el tubo (tapado)<br />
Filtro<br />
Materiales de fabricación<br />
Longitud: 122 mm Diámetro: 29,7 mm<br />
Longitud: 72,0 mm Diámetro: 29,6 mm<br />
Filtro Copolímero estireno-butadieno<br />
Membrana Celulosa regenerada de baja capacidad de unión <strong>Ultra</strong>cel®<br />
Tubo de filtrado Polipropileno<br />
Tapón y revestimiento Polietileno<br />
8 <strong>Filtros</strong> <strong>para</strong> <strong>centrífuga</strong> <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong>
Compatibilidad química<br />
Los filtros <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong> <strong>para</strong> <strong>centrífuga</strong> están pensados <strong>para</strong> su uso con líquidos biológicos y disoluciones<br />
acuosas. Antes de usarlos, verifique que la muestra es compatible desde el punto de vista químico con el<br />
dispositivo.<br />
Tabla 5. Compatibilidad química de los filtros <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong><br />
Ácidos Concentración Concentración<br />
Ácido acético ≤ 50%* Ácido nítrico ≤ 10%<br />
Ácido clorhídrico ≤ 1,0 M Ácido sulfámico ≤ 3%<br />
Ácido fórmico ≤ 5%* Ácido sulfúrico ≤ 3%<br />
Ácido fosfórico ≤ 30% Ácido tricloroacético (TCA) ≤ 10%*<br />
Ácido láctico ≤ 50% Ácido trifluoroacético (TFA) ≤ 30%*<br />
Álcalis<br />
Hidróxido de amonio ≤ 10% Hidróxido sódico ≤ 0,5 M<br />
Alcoholes<br />
Etanol ≤ 70% Metanol ≤ 60%<br />
Isopropanol ≤ 70% n-Butanol ≤ 70%<br />
Detergentes<br />
Desoxicolato sódico ≤ 5% Dodecilsulfatosódico (SDS) ≤ 0,1%<br />
Detergente 3-(cloroamido<br />
propil)-dimetilamonio-1propanosulfato)<br />
CHAPS<br />
<strong>Filtros</strong> <strong>para</strong> <strong>centrífuga</strong> <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong><br />
≤ 0,1% Surfactante Nonidet P-40 ≤ 2%<br />
Detergente Alconox® ≤ 1% Surfactante Triton® X-100 ≤ 0,1%<br />
Detergente Lubrol® PX ≤ 0,1% Surfactante Tween® 20 ≤ 0,1%<br />
Detergente Tergazyme® ≤ 1%<br />
Disolvente orgánicos<br />
Acetona no recomendado Formaldehído ≤ 5%<br />
Acetonitrilo ≤ 20% Piridina no recomendado<br />
Benceno no recomendado Tetracloruro de carbono no recomendado<br />
Cloroformo no recomendado Tetrahidrofurano no recomendado<br />
Dimetilsulfóxido (DMSO) ≤ 5%* Tolueno no recomendado<br />
Etilacetato no recomendado<br />
Varios<br />
Carbonato sódico ≤ 20% Mercaptoetanol ≤ 0,1 M<br />
Dietilpirocarbonato ≤ 0,2% Polietilenglicol ≤ 10%<br />
Ditiotreitol (DTT) ≤ 0,1 M Sulfato de amonio Saturado<br />
Fenol ≤ 1% Tampón fosfato (pH 8,2) ≤ 1 M<br />
Glicerina ≤ 70% Tampón Tris (pH 8,2) ≤ 1 M<br />
HCl de guanidina ≤ 6 M Urea ≤ 8 M<br />
Imidazol ≤ 100 mM<br />
* El contacto con este producto químico puede provocar la lixiviación de los materiales del dispositivo.<br />
Se recomienda pre<strong>para</strong>r blancos del disolvente <strong>para</strong> determinar si los lixiviables provocarían posibles<br />
interferencias en el ensayo.<br />
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Etiqueta del producto <strong>para</strong> diagnóstico in vitro<br />
En la siguiente tabla se definen los símbolos encontrados en las etiquetas de las unidades <strong>Amicon®</strong><br />
<strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong> 10K.<br />
Símbolo Definición Símbolo Definición<br />
V<br />
Producto sanitario <strong>para</strong> diagnóstico<br />
in vitro N<br />
Fecha de fabricación<br />
h Número de catálogo M Fabricante<br />
D No reutilizar l Limitación de temperatura<br />
H Fecha caducidad d Producto no estéril<br />
g Código de lote C<br />
Información <strong>para</strong> pedido de los productos<br />
Marca de conformidad con la CE<br />
En esta sección se indican los números de catálogo de las unidades de ultrafiltración <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>.<br />
Encontrará la información de contacto en la sección de Asistencia técnica. Puede adquirir estos productos<br />
por internet en www.millipore.com/products.<br />
Volumen<br />
inicial<br />
(ml)<br />
Volumen de<br />
concentrado<br />
final (μl) Producto<br />
0,5 <strong>15</strong>–20 Filtro<br />
<strong>Amicon®</strong><br />
<strong>Ultra</strong>-0.5<br />
Tubos de recogida<br />
<strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>-0.5<br />
2 <strong>15</strong>–70 Filtro prelanzamiento<br />
<strong>Amicon®</strong><br />
<strong>Ultra</strong>-2<br />
4 50–100 Filtro<br />
<strong>Amicon®</strong><br />
<strong>Ultra</strong>-4<br />
<strong>15</strong> <strong>15</strong>0–300 <strong>Amicon®</strong><br />
<strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong><br />
device<br />
Cant./<br />
Env. 3K 10K 30K 50K 100K<br />
8<br />
24<br />
96<br />
500<br />
UFC500308<br />
UFC500324<br />
UFC500396<br />
UFC5003BK<br />
96 UFC50VL96<br />
UFC501008<br />
UFC501024<br />
UFC501096<br />
UFC5010BK<br />
UFC503008<br />
UFC503024<br />
UFC503096<br />
UFC5030BK<br />
UFC505008<br />
UFC505024<br />
UFC505096<br />
UFC5050BK<br />
UFC510008<br />
UFC510024<br />
UFC510096<br />
UFC5100BK<br />
24 UFC200324PL UFC201024PL UFC203024PL UFC205024PL UFC210024PL<br />
8<br />
24<br />
96<br />
8<br />
24<br />
96<br />
UFC800308<br />
UFC800324<br />
UFC800396<br />
UFC900308<br />
UFC900324<br />
UFC900396<br />
UFC801008*<br />
UFC801024*<br />
UFC801096*<br />
UFC901008*<br />
UFC901024*<br />
UFC901096*<br />
UFC803008<br />
UFC803024<br />
UFC803096<br />
UFC903008<br />
UFC903024<br />
UFC903096<br />
UFC805008<br />
UFC805024<br />
UFC805096<br />
UFC905008<br />
UFC905024<br />
UFC905096<br />
UFC810008<br />
UFC810024<br />
UFC810096<br />
UFC910008<br />
UFC910024<br />
UFC910096<br />
* Los filtros <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>-4 y <strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong> 10K son <strong>para</strong><br />
diagnóstico in vitro. Todos los demás dispositivos son<br />
sólo <strong>para</strong> investigación.<br />
10 <strong>Filtros</strong> <strong>para</strong> <strong>centrífuga</strong> <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong>
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Asistencia técnica<br />
Para más información, póngase en contacto con su oficina más próxima. Encontrará información de<br />
contacto actualizada <strong>para</strong> todo el mundo en nuestra página Web www.millipore.com/offices. También<br />
puede visitar el apartado correspondiente al servicio técnico en nuestra página Web<br />
www.millipore.com/techservice.<br />
Garantía<br />
La garantía aplicable a los productos indicados en esta publicación puede encontrarse en<br />
www.millipore.com/terms (en los “Términos y condiciones de venta” aplicables a su transacción de<br />
compra).<br />
Fabricado en Irlanda<br />
Merck <strong>Millipore</strong> Ltd.<br />
Tullagreen,<br />
Carrigtwohill,<br />
Co. Cork, IRL<br />
El logotipo M es una marca comercial de Merck KGaA, Darmstadt, Alemania.<br />
<strong>Millipore</strong>, Amicon, Milli-Q y <strong>Ultra</strong>cel son marcas registradas de Merck KGaA.<br />
Alconox y Tergazyme son marcas registradas de Alconox, Inc.<br />
Lubrol es una marca registrada de Imperial Chemical Industries PLC.<br />
Nonidet es una marca comercial de Royal Dutch/Shell Group.<br />
Triton es una marca registrada de Union Carbide Corp.<br />
Tween es una marca registrada de ICI Americas Inc.<br />
© 2012 EMD <strong>Millipore</strong> Corporation. Todos los derechos reservados.<br />
PR03520TR, Rev. A, Español, 03/12<br />
<strong>Filtros</strong> <strong>para</strong> <strong>centrífuga</strong> <strong>Amicon®</strong> <strong>Ultra</strong>-<strong>15</strong><br />
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