Filtros para centrífuga Amicon® Ultra-4 - Millipore

Guía del usuario
Filtros para centrífuga
Amicon® Ultra-4
para volúmenes máximos de 4 ml
Unidad Amicron® Ultra-4 10K para diagnóstico in vitro
Los filtros Amicon® Ultra-4 3K, 30K, 50K y 100K
son sólo para investigación, no pueden utilizarse
para procedimientos diagnósticos.
Español
Introducción
Los filtros para centrífuga Amicon® Ultra-4 proporcionan ultrafiltración rápida con capacidad para
elevados factores de concentración y fácil recuperación del concentrado a partir de matrices de muestras
diluidas y complejas. El diseño vertical y el área de superficie disponible de la membrana proporcionan un
rápido procesamiento, una gran recuperación de la muestra (normalmente superior al 90% de la disolución
de partida) y capacidad de concentración por 80. El tiempo de procesamiento habitual es de 10 a 40
minutos dependiendo del límite de peso molecular nominal (NMWL). El diseño vertical reduce al mínimo la
polarización del soluto y el plegamiento posterior de la membrana; por otro lado, un bloqueo automático
físico del filtro impide la centrifugación hasta sequedad y la posible pérdida de muestra. El concentrado
se recoge del depósito para la muestra del filtro utilizando una pipeta, mientras que el ultrafiltrado se
recoge en el tubo de centrífuga suministrado. El dispositivo puede centrifugarse en un rotor oscilante (para
rendimiento óptimo) o en un rotor de ángulo fijo. Los filtros Amicon® Ultra-4 se suministran estériles y son
para un solo uso.
La línea de productos Amicon® Ultra-4 abarca cinco valores de corte diferentes (límite de peso molecular
nominal, NMWL, o peso molecular de corte, MWCO):
● Filtro Amicon® Ultra 3K — NMWL de 3.000
● Filtro Amicon® Ultra 10K — NMWL de 10.000
● Filtro Amicon® Ultra 30K — NMWL de 30.000
● Filtro Amicon® Ultra 50K — NMWL de 50.000
● Filtro Amicon® Ultra 100K — NMWL de 100.000
Los filtros Amicon® Ultra-4 10K están pensados para diagnóstico in vitro y pueden utilizarse
para concentrar suero, orina, líquido cefalorraquídeo y otros líquidos corporales antes del
análisis.
Los filtros Amicon® Ultra-4 3K, 30K, 50K y 100K son sólo para investigación y no pueden utilizarse para
procedimientos diagnósticos.
Filtros para centrífuga Amicon® Ultra-4
1

Aplicaciones
● Concentración de muestras biológicas que contengan antígenos, anticuerpos, enzimas, ácidos
nucleicos (muestras de ADN o ARN monocatenarios o bicatenarios), microorganismos, eluidos de la
columna y muestras purificadas
● Purificación de componentes macromoleculares encontrados en extractos de cultivos tisulares y
lisados celulares, eliminación de cebadores, conectores o etiquetas moleculares de una mezcla de
reacción, y retirada de proteínas antes de la HPLC
● Desalinización, cambio de tampones o diafiltración
Materiales suministrados
La unidad Amicon® Ultra-4 se suministra con un tapón, un filtro y un tubo de centrífuga.
30,000
MWCO
ul
500
250
100
50
4
3
2
Tapa
Filtro
Equipo necesario
Tubo de centrífuga
● Centrífuga con rotor oscilante (preferida) o rotor de ángulo fijo con pocillos/portadores donde quepan
tubos de fondo cónico de 15 ml de 17 mm x 124 mm
AVISO: Para evitar que se rompa la unidad durante la centrifugación, debe comprobarse ausencia de
bloqueo antes de empezar a centrifugar.
● Pipeta con puntas de 200 microlitros (μl) para recuperación del concentrado
Idoneidad
Se sugiere realizar estudios preliminares de recuperación y de retención con el fin de asegurar la idoneidad
para el uso previsto. Ver la sección "Cómo cuantificar las recuperaciones".
Conservación y periodo de validez de la unidad
Conservar a 15–30 °C. El periodo de validez es de 3 años a partir de la fecha de fabricación. Para los números
de catálogo UFC801008, UFC801024 y UFC801096, consulte la fecha de caducidad de la etiqueta del
envase.
2 Filtros para centrífuga Amicon® Ultra-4

Preenjuague
Las membranas de ultrafiltración de las unidades Amicon® Ultra-4 contienen restos de glicerina. Si este
material interfiere en el análisis, enjuague previamente el filtro con tampón o agua Milli-Q®. Si sigue
habiendo interferencia, enjuague con NaOH 0,1 N seguido de un segundo centrifugado de tampón o agua
Milli-Q®.
AVISO: No permita que la membrana de los filtros Amicon® Ultra se seque después de haberse humedecido.
Si no va a utilizar la unidad inmediatamente después del enjuagado previo, deje líquido en la
membrana hasta que se utilice.
Cómo utilizar los filtros para centrífuga Amicon® Ultra-4
1. Coloque hasta 4 ml de muestra (3,5 ml si se está utilizando un rotor de ángulo fijo de 23°) en el filtro
Amicon® Ultra.
2. Coloque el filtro tapado en el rotor de la centrífuga (preferiblemente oscilante); equilibre con un
dispositivo similar.
3. Si utiliza un rotor oscilante, centrifugue la unidad a un máximo de 4.000 × g durante unos
10-40 minutos.
Si utiliza un rotor de ángulo fijo, oriente el filtro con el panel donde está la membrana mirando
hacia arriba.
Para los filtros Amicon® Ultra 3K, 10K, 30K y 50K, centrifugue a un máximo de 7.500 × g durante unos
10–40 minutos.
Para los filtros Amicon® Ultra 100K, centrifugue a un máximo de 5.000 × g durante unos
10–20 minutos.
NOTA: En las Figuras 1 y 2, y las Tablas 2 y 3 encontrará los tiempos de centrifugación habituales.
4. Para recuperar el soluto concentrado, introduzca una pipeta en el fondo del filtro y retire la muestra
utilizando un movimiento de barrido de un lado al otro para asegurar la recuperación total. El
ultrafiltrado puede conservarse en el tubo de centrífuga.
NOTA: Para una recuperación óptima, retire la muestra concentrada inmediatamente después de la
centrifugación.
Desalación o diafiltración
La desalación, el cambio de tampón o la diafiltración son métodos importantes para retirar las sales o los
disolventes de las disoluciones que contienen biomoléculas. En el filtro Amicon® Ultra-4 pueden eliminarse
las sales o cambiar los tampones concentrando la muestra y reconstituyendo luego el concentrado hasta
el volumen de muestra original con cualquier disolvente deseado. El proceso de "lavado" puede repetirse
hasta que se haya reducido de manera suficiente la concentración del microsoluto contaminante. Vea el
siguiente ejemplo.
30,000
MWCO
4
3
2
ul
500
250
100
50
4 ml de
1 mg/ml de
proteína en
NaCl 100 mM
Centrifugar
hasta
concentrado
30,000
MWCO
Filtros para centrífuga Amicon® Ultra-4
ul
500
250
100
50
4
3
2
50 μl de
80 mg/ml de
proteína en
NaCl 100 mM
NaCl
100 mM
Añadir 3,95 ml
de NaCl 10 mM o
cambiar el tampón
30,000
MWCO
4
3
2
ul
500
250
100
50
4 ml de 1 mg/ml
de proteína en
NaCl 11,1 mM
Centrifugar
hasta
concentrado
30,000
MWCO
ul
500
250
100
50
4
3
2
50 μl de
80 mg/ml de
proteína en
NaCl 11,1 mM
NaCl
11,1 mM
3

Rendimiento - Concentración del ADN
Merck Millipore Ltd. ha determinado que el dispositivo Amicon® Ultra-4 30K proporciona el mejor
equilibrio entre la recuperación y el tiempo de centrifugado para el ADN bicatenario con un contenido de
pares de bases comprendido entre 137 y 1.159.
Tabla 1. Recuperación típica de nucleóticos del dispositivo Amicon® Ultra-4 30K
Cantidad de pares de Tiempo de centrifugado Volumen del
base del ADN bicatenario (minutos)
concentrado (µl) Recuperación (%)
137–1.159 10 50–70 > 85
Condiciones de centrifugación: Rotor de ángulo fijo, 5.000 x g, temperatura ambiente, volumen de partida de 2 ml.
Rendimiento - Concentración de proteínas
Caudal
Los factores que afectan al caudal son la concentración de la muestra, el volumen de partida, la naturaleza
química del soluto, la fuerza centrífuga relativa, el ángulo del rotor de la centrífuga, el tipo de membrana
y la temperatura. Pueden utilizarse las figuras 1 y 2, y las tablas 2 y 3 para calcular el tiempo necesario
para conseguir un volumen dado de filtrado o de concentrado para una variedad de marcadores proteicos.
Un tiempo de centrifugación típico para una muestra de 4 ml es de aproximadamente 10 a 40 minutos
(dependiendo del límite de peso molecular nominal del filtro). La mayor parte de la muestra se filtra en
los 10 a 20 primeros minutos de la centrifugación, pero el menor volumen de concentrado (30-75 μl) se
alcanza después de centrifugar durante 20 a 40 minutos.
Figura 1. Volumen de filtrado típico frente a tiempo de centrifugación (rotor oscilante)
Volumen de filtrado (ml)
4.0
3.5
3.0
2.5
2.0
1.5
1.0
0.5
0.0
0 5 10 15 20 25 30 35 40
Tiempo de centrifugación (minutos)
Condiciones de centrifugación: 4.000 × g, temperatura ambiente, volumen de partida de 4 ml.
Marcadores proteicos utilizados: Citocromo c para el 3K y el 10K, BSA para el 30K y el 50K,
e IgG para el 100K, n = 6.
4 Filtros para centrífuga Amicon® Ultra-4
3K
10K
30K
50K
100K

Caudal, continuación
Figura 2. Volumen de filtrado típico frente a tiempo de centrifugación (rotor de ángulo fijo)
Volumen de filtrado (ml)
4.0
3.5
3.0
2.5
2.0
1.5
1.0
0.5
0.0
0 5 10 15 20 25 30 35 40
Tiempo de centrifugación (minutos)
Condiciones de centrifugación: 7.500 × g para el 3K, el 10K y el 50K, 5.000 × g para el 100K, temperatura
ambiente, volumen de partida, 4 ml. Marcadores proteicos utilizados: Citocromo c para el 3K y el 10K,
BSA para el 30K y el 50K, e IgG para el 100K, n = 6.
Tabla 2. Volumen de concentrado típico frente a tiempo de centrifugación (rotor oscilante)
Volumen del concentrado (μl)
Tiempo de centrifugación
(minutos) filtro 3K filtro 10K filtro 30K filtro 50K filtro 100K
10 1.369 176 73 32 264
15 – 76 46 – 36
20 478 58 37 30 33
25 228 – – – –
30 159 – – – –
40 94 – – – –
Condiciones de centrifugación: 4.000 × g, temperatura ambiente, volumen de partida de 4 ml.
Marcadores proteicos utilizados: Citocromo c para el 3K y el 10K, BSA para el 30K y el 50K, e IgG para el 100K,
n = 6 (valor medio de tres lotes de membrana). Los volúmenes sombreados se utilizaron para calcular la
recuperación de proteínas de la tabla 5.
Tabla 3. Volumen de concentrado típico frente a tiempo de centrifugación (rotor de ángulo fijo de 35°)
Volumen del concentrado (μl)
Tiempo de centrifugación
(minutos) filtro 3K filtro 10K filtro 30K filtro 50K filtro 100K
10 613 97 42 23 53
15 – 54 30 – 30
20 170 35 22 15 26
25 118 – – – –
30 92 – – – –
40 62 – – – –
Condiciones de centrifugación: 7.500 × g para el 3K, el 10K y el 50K, 5.000 × g para el 100K, temperatura
ambiente, volumen de partida, 4 ml. Marcadores proteicos utilizados: Citocromo c para el 3K y el 10K, BSA para
el 30K y el 50K, e IgG para el 100K, n = 6 (valor medio de tres lotes de membrana). Los volúmenes sombreados se
utilizaron para calcular la recuperación de proteínas de la tabla 5.
Filtros para centrífuga Amicon® Ultra-4
3K
10K
30K
50K
100K
5

Retención proteica y recuperación del concentrado
Las membranas utilizadas en las unidades Amicon® Ultra se caracterizan por un límite de peso molecular
nominal (NMWL); es decir, por su capacidad de retención de moléculas por encima de un peso molecular
específico. Los solutos con pesos moleculares próximos al NMWL pueden ser retenidos sólo parcialmente.
La retención de la membrana depende del tamaño molecular y la forma del soluto. Para la mayoría de las
aplicaciones, el peso molecular es un parámetro adecuado para evaluar las características de retención.
Merck Millipore Ltd. recomienda utilizar una membrana con un NMWL al menos dos veces inferior al peso
molecular de la proteína que se pretende concentrar. Consulte la Tabla 4.
Tabla 4. Retención típica de los marcadores proteicos
Marcador/Concentración
Peso
molecular
NMWL del
dispositivo
% Retención
rotor oscilante
% Retención
ángulo fijo
Tiempo de
centrifugado
(minutos)
α-Quimotripsinógeno (1 mg/ml) 25.000 3K > 95 > 95 40
Citocromo c (0,25 mg/ml) 12.400 > 95 > 95 40
Vitamina B-12 (0,2 mg/ml) 1.350 < 35 < 35 40
α-Quimotripsinógeno (1 mg/ml) 25.000 10K > 95 > 95 15
Citocromo c (0,25 mg/ml) 12.400 > 95 > 95 15
Vitamina B-12 (0,2 mg/ml) 1.350 < 15 < 15 15
BSA (1 mg/ml) 67.000 30K > 95 > 95 10
Ovalbúmina (1 mg/ml) 45.000 > 90 > 90 10
Citocromo c (0,25 mg/ml) 12.400 < 20 < 20 10
Vitamina B-12 (0,2 mg/ml) 1.350 < 10 < 10 10
BSA (1 mg/ml) 67.000 50K > 95 > 95 10 (SB), 5 (FA)
Ovalbúmina (1 mg/ml) 45.000 ~ 60 ~ 65 10 (SB), 5 (FA)
Citocromo c (0,25 mg/ml) 12.400 < 10 < 10 10 (SB), 5 (FA)
Tiroglobulina (0,5 mg/ml) 677.000 100K > 95 > 95 15
IgG (1 mg/ml) 156.000 > 90 > 90 15
Ovalbúmina (1 mg/ml) 45.000 < 25 < 20 15
Condiciones de centrifugación: Rotor oscilante (SB), 4.000 x g o rotor de ángulo fijo (FA) en 35°, 7.500 x g para el
dispositivo de 3K, 10K, 30K y 50K, 5.000 x g para el de 100K, volumen de partida de 4 ml, temperatura ambiente,
n = 6 (valor medio de 3 lotes de membrana). Los volúmenes sombreados se tomaron de las tablas 2 y 3.
6 Filtros para centrífuga Amicon® Ultra-4

Retención proteica y recuperación del concentrado, continuación
Los factores que determinan la recuperación de la muestra son la naturaleza del soluto proteico en relación
con el NMWL del filtro elegido, la concentración de partida y el factor de concentración. En la Tabla 5 se
indican las recuperaciones típicas para los filtros Amicon® Ultra-4.
Tabla 5. Recuperación de concentrado típica
Marcador/
Concentración
Citocromo c
(0,25 mg/ml)
Citocromo c
(0,25 mg/ml)
NMWL del
dispositivo
Tiempo de
centrifugado
(minutos)
Volumen del
concentrado (µl)
Rotor
oscilante
Maximización de la recuperación de la muestra
Una baja recuperación de muestra en el concentrado puede deberse a pérdidas por adsorción, exceso de
concentración o paso de la muestra a través de la membrana.
● Las pérdidas por adsorción dependen de la concentración del soluto, su naturaleza hidrófoba, la
temperatura y el tiempo de contacto con las superficies del filtro, la composición de la muestra y el
pH. Para reducir las pérdidas al mínimo, retire las muestras concentradas inmediatamente después de
la centrifugación.
● Si la concentración de la muestra de partida es elevada, controle el proceso de centrifugación para evitar
su concentración excesiva. Esta última puede provocar precipitación y posibles pérdidas de muestra.
● Si parece que la muestra va a atravesar la membrana, elija un filtro Amicon® Ultra-4 de menor NMWL.
Filtros para centrífuga Amicon® Ultra-4
Ángulo
fijo
Factor de
concentración (x)
Rotor
oscilante
Ángulo
fijo
Recuperación del
concentrado (%)
Rotor
oscilante
Ángulo
fijo
3K 40 94 62 43,5 65,0 98,2 96,7
10K 15 76 54 52,3 76,6 97,3 98,5
BSA (1 mg/ml) 30K 10 73 42 56,1 98,6 95,8 95,0
BSA (1 mg/ml) 50K 10 32 23 137,0 177,4 98,8 92,8
IgG (1 mg/ml) 100K
15 (SB),
10 (FA)
36 53 115,9 56,8 92,2 91,3
Condiciones de centrifugación: Rotor oscilante (SB), 4.000 x g o rotor de ángulo fijo (FA) en 35°, 7.500 x g para el
dispositivo de 3K, 10K, 30K y 50K, 5.000 x g para el de 100K, volumen de partida de 4 ml, temperatura ambiente,
n = 6 (valor medio de 3 lotes de membrana). Los volúmenes sombreados se tomaron de las tablas 2 y 3.
7

Cómo cuantificar las recuperaciones
Calcule la recuperación total, el porcentaje de recuperación de concentrado y el porcentaje de recuperación
de filtrado utilizando el método que se indica a continuación. El procedimiento proporciona una estrecha
aproximación de las recuperaciones para las disoluciones que contienen concentraciones máximas de
aproximadamente 20 mg/ml.
NOTA: Las técnicas de ensayo apropiadas son la espectrofotometría de absorción, el radioinmunoensayo,
el índice de refracción y la conductividad.
Procedimiento de pesada directo
La densidad de la mayoría de las proteínas diluidas es casi igual a la densidad del agua (es decir, 1 g/ml).
Aprovechando esta propiedad, pueden cuantificarse los volúmenes de concentrado y de filtrado pesándolos
y convirtiendo las unidades de gramos a mililitros. Esta técnica es válida sólo para disoluciones con
concentraciones de aproximadamente 20 mg/ml o inferiores.
1. Antes de usarlos, pese por separado el filtro vacío, el tubo de centrífuga y un tubo para recogida del
concentrado vacío.
2. Llene el filtro con disolución y vuelva a pesarlo.
3. Monte la unidad y centrifugue según las instrucciones.
4. Recoja el concentrado con una pipeta y dispénselo en el tubo para recogida del concentrado
previamente pesado.
5. Retire el filtro del tubo de centrífuga y pese el tubo de centrífuga y el tubo de recogida del
concentrado.
6. Reste el peso del filtro vacío o de los tubos vacíos para calcular los pesos del material de partida, el
filtrado y el concentrado.
7. Ensaye el material de partida, el filtrado y el concentrado para determinar la concentración de soluto.
8. Calcule las recuperaciones utilizando los datos de peso/volumen y las concentraciones medidas, de la
siguiente forma:
Wc × Cc % de recuperación del concentrado = 100 ×
Wo × Co Wf × Cf % de recuperación del filtrado = 100 ×
Wo × Co % de recuperación total = % de recuperación del concentrado + % de recuperación del filtrado
W c = peso total del concentrado antes del ensayo
W o = peso del material de partida original
W f = peso del filtrado
C c = concentración del concentrado
C o = concentración del material de partida original
C f = concentración del filtrado
8 Filtros para centrífuga Amicon® Ultra-4

Especificaciones
Volumen máximo de muestra inicial
Rotores oscilantes y de ángulo fijo (45° y 35°) 4,0 ml
Rotor de ángulo fijo (23°) 3,5 ml
Volumen concentrado final habitual 50-100 μl
Fuerza centrífuga relativa máxima
Rotor oscilante 4.000 × g
Rotor de ángulo fijo 7.500 × g para el NMWL de 3K, 10K, 30K y 50K
Área de membrana activa 3 cm 2
Dimensiones
Filtro en el tubo (tapado)
Filtro
Materiales de fabricación
Longitud: 124 mm Diámetro: 17,3 mm
Longitud: 73,4 mm Diámetro: 17,2 mm
Filtro Copolímero estireno-butadieno
Filtros para centrífuga Amicon® Ultra-4
5.000 × g para el NMWL de 100K
Membrana Celulosa regenerada de baja capacidad de unión Ultracel®
Tubo de filtrado Polipropileno
Tapón y revestimiento Polietileno
9

Compatibilidad química
Los filtros Amicon® Ultra para centrífuga están pensados para su uso con líquidos biológicos y disoluciones
acuosas. Antes de usarlos, verifique que la muestra es compatible desde el punto de vista químico con el
dispositivo.
Tabla 6. Compatibilidad química de los filtros Amicon® Ultra
Ácidos Concentración Concentración
Ácido acético ≤ 50%* Ácido nítrico ≤ 10%
Ácido clorhídrico ≤ 1,0 M Ácido sulfámico ≤ 3%
Ácido fórmico ≤ 5%* Ácido sulfúrico ≤ 3%
Ácido fosfórico ≤ 30% Ácido tricloroacético (TCA) ≤ 10%*
Ácido láctico ≤ 50% Ácido trifluoroacético (TFA) ≤ 30%*
Álcalis
Hidróxido de amonio ≤ 10% Hidróxido sódico ≤ 0,5 M
Alcoholes
Etanol ≤ 70% Metanol ≤ 60%
Isopropanol ≤ 70% n-Butanol ≤ 70%
Detergentes
Desoxicolato sódico ≤ 5% Dodecilsulfatosódico (SDS) ≤ 0,1%
Detergente 3-CHAPS ≤ 0,1% Surfactante Nonidet P-40 ≤ 2%
Detergente Alconox® ≤ 1% Surfactante Triton® X-100 ≤ 0,1%
Detergente Lubrol® PX ≤ 0,1% Surfactante Tween® 20 ≤ 0,1%
Detergente Tergazyme® ≤ 1%
Disolvente orgánicos
Acetona no recomendado Formaldehído ≤ 5%
Acetonitrilo ≤ 20% Piridina no recomendado
Benceno no recomendado Tetracloruro de carbono no recomendado
Cloroformo no recomendado Tetrahidrofurano no recomendado
Dimetilsulfóxido (DMSO) ≤ 5%* Tolueno no recomendado
Etilacetato no recomendado
Varios
Carbonato sódico ≤ 20% Mercaptoetanol ≤ 0,1 M
Dietilpirocarbonato ≤ 0,2% Polietilenglicol ≤ 10%
Ditiotreitol (DTT) ≤ 0,1 M Sulfato de amonio Saturado
Fenol ≤ 1% Tampón fosfato (pH 8,2) ≤ 1 M
Glicerina ≤ 70% Tampón Tris (pH 8,2) ≤ 1 M
HCl de guanidina ≤ 6 M Urea ≤ 8 M
Imidazol ≤ 100 mM
* El contacto con este producto químico puede provocar la lixiviación de los materiales del dispositivo. Se
recomienda preparar blancos del disolvente para determinar si los lixiviables provocarían posibles interferencias
en el ensayo.
10 Filtros para centrífuga Amicon® Ultra-4

Etiqueta del producto para diagnóstico in vitro
En la siguiente tabla se definen los símbolos encontrados en las etiquetas de las unidades
Amicon® Ultra-4 10K.
Símbolo Definición Símbolo Definición
V
Información para pedido de los productos
En esta sección se indican los números de catálogo de las unidades de ultrafiltración Amicon® Ultra.
Encontrará la información de contacto en la sección de Asistencia técnica. Puede adquirir estos productos
por internet en www.millipore.com/products.
Volumen
inicial
(ml)
Producto sanitario para diagnóstico
in vitro N
Volumen de
concentrado
final (μl) Producto
0,5 15–20 Amicon®
Ultra-0,5
device
Tubos de recogida
Amicon® Ultra-0,5
2 15–70 Filtro prelanzamiento
Amicon®
Ultra-2
4 50–100 Filtro
Amicon®
Ultra-4
15 150–300 Filtro
Amicon®
Ultra-15
Filtros para centrífuga Amicon® Ultra-4
Cant./
Env. 3K 10K 30K 50K 100K
8
24
96
500
UFC500308
UFC500324
UFC500396
UFC5003BK
96 UFC50VL96
UFC501008
UFC501024
UFC501096
UFC5010BK
UFC503008
UFC503024
UFC503096
UFC5030BK
UFC505008
UFC505024
UFC505096
UFC5050BK
UFC510008
UFC510024
UFC510096
UFC5100BK
24 UFC200324PL UFC201024PL UFC203024PL UFC205024PL UFC210024PL
8
24
96
8
24
96
UFC800308
UFC800324
UFC800396
UFC900308
UFC900324
UFC900396
UFC801008*
UFC801024*
UFC801096*
UFC901008*
UFC901024*
UFC901096*
Fecha de fabricación
h Número de catálogo M Fabricante
D No reutilizar l Limitación de temperatura
H Fecha caducidad d Producto no estéril
g Código de lote C
Marca de conformidad con la CE
UFC803008
UFC803024
UFC803096
UFC903008
UFC903024
UFC903096
UFC805008
UFC805024
UFC805096
UFC905008
UFC905024
UFC905096
UFC810008
UFC810024
UFC810096
UFC910008
UFC910024
UFC910096
* Los filtros Amicon® Ultra-4 y Ultra-15 10K son para
diagnóstico in vitro. Todos los demás dispositivos son sólo
para investigación.
11

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Garantía
La garantía aplicable a los productos indicados en esta publicación puede encontrarse en
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Fabricado en Irlanda
Merck Millipore Ltd.
Tullagreen,
Carrigtwohill,
Co. Cork, IRL
El logotipo M es una marca comercial de Merck KGaA, Darmstadt, Alemania.
Millipore, Amicon, Milli-Q y Ultracel son marcas registradas de Merck KGaA.
Alconox y Tergazyme son marcas registradas de Alconox, Inc.
Lubrol es una marca registrada de Imperial Chemical Industries PLC.
Nonidet es una marca comercial de Royal Dutch/Shell Group.
Triton es una marca registrada de Union Carbide Corp.
Tween es una marca registrada de ICI Americas Inc.
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PR03521TR, Rev. A, Español, 03/12
12 Filtros para centrífuga Amicon® Ultra-4