Informe vigilancia de la resistencia a los antibiÃ³ticos-gÃ©rmenes ...

Instituto Costarricense de Investigación y Enseñanza en Nutrición y Salud (INCIENSA) 

Centro Nacional de Referencia en Bacteriología (CNRB) 

Informe de vigilancia 

Bacterias causantes de infecciones comunitarias de importancia en salud pública 

y su resistencia a los antimicrobianos 

Costa Rica 2010 

Tres Ríos, Costa Rica 

2011 

Cita sugerida: Tijerino A (atijerino@inciensa.sa.cr), Jiménez A, Bolaños H, Chanto G, Acuña MT, 

Vargas J, Sánchez LM, Cháves E, Cordero E, Oropeza G, Campos E y Red Nacional de Laboratorios 

de Bacteriología. Informe de vigilancia: Bacterias causantes de infecciones comunitarias de 

importancia en salud pública y su resistencia a los antimicrobianos, Costa Rica 2010: Tres 

Ríos, Costa Rica: INCIENSA, 2011

Reconocimiento 

Se reconoce el valioso aporte a la vigilancia de la resistencia a los antimicrobianos en bacterias 

causantes de infecciones de importancia en salud pública realizado por los funcionarios de los 

laboratorios de la Red Nacional que se listan a continuación, quienes suministraron las muestras 

clínicas y cepas que constituyeron un insumo fundamental para la elaboración de este documento: 

Clínica Abangares, Cl. Aserrí, Cl. Atenas, Cl. Barranca, Cl. Buenos Aires, Cl. La Cruz, Cl. La Unión, 

Cl. Coronado, Cl. Jorge Volio, Cl. Marcial Fallas, Cl. Marcial Rodríguez, Cl. Palmares, Cl. Paquera, 

Cl. Santa Bárbara, Cl. Solón Núñez Frutos, Hospital Dr. Carlos Luis Valverde Vega, H. Ciudad Neilly, 

H. Dr. Blanco Cervantes, H. Dr. Enrique Baltodano, H. Dr. Fernando Escalante Pradilla, H. Golfito, 

H. Los Chiles, H. Max Peralta, H. Dr. Max Terán Valls, H. México, H. Monseñor Sanabria, H. 

Nacional de Niños, H. Dr. Rafael Ángel Calderón Guardia, H. San Carlos, H. San Francisco de Asís, 

H. San Juan de Dios, H. San Rafael, H. San Vicente de Paúl, H. San Vito, H. Tomás Casas, H. Dr. 

Tony Facio, H. Upala, H. Dr. William Allen, Hospital Hotel La Católica, Coopesana R.L., Coopesalud 

R.L., Coopesiba, LABIN, Área de Salud Heredia Virilla (Guararí), Laboratorio Nacional de Servicios 

Veterinarios (SENASA-LANASEVE, MAG), Laboratorio Nacional de Aguas (Instituto Costarricense de 

Acueductos y Alcantarillados, AyA), Centro de Investigación en Nutrición Animal (CINA-UCR), e 

industrias alimentarias. 

Este informe de vigilancia se realizó bajo el convenio Caja Costarricense de Seguro Social (CCSS) – 

Instituto Costarricense de Investigación y Enseñanza en Nutrición y Salud (INCIENSA)

Tijerino, et al. Resistencia a los antimicrobianos en bacterias causantes de infecciones de importancia en salud pública, 


Contenidos 

1. Introducción…………………………………………………………………………………… 4 

2. Materiales y métodos……………………………………………………………………….. 6 

2.1 Fuentes de información………………………………………………………………….. 6 

2.2 Tipificación y prueba de sensibilidad a los antibióticos…………….......................... 7 

2.3 Análisis de la información……………………………………………………………….. 9 

3. Resultados……………………………………………………………………………………... 9 

3.1 Salmonella spp. de origen humano…………………………………………………….. 9 

3.2 Salmonella spp. de origen no humano………………………………………………… 19 

3.3 Shigella spp………………………………………………………………….................... 25 

3.4 Haemophilus influenzae invasivo y no invasivo………………………………………. 29 

3.5 Streptococcus pneumoniae invasivo…………………………………………………... 32 

3.6 Streptococcus pneumoniae no invasivos……………………………………………… 36 

3.7 Neisseria meningitidis……………………………………………………………………. 40 

4. Consideraciones finales…………………………………………………………………… 41 

5. Fuentes consultadas………………………………………………………………………... 42 

Anexo 1 44 

INCIENSA. Tres Ríos, Costa Rica, 2010 3



Bacterias causantes de infecciones comunitarias de importancia en salud pública 

y su resistencia a los antimicrobianos, Costa Rica 2010 

1. Introducción 

El aumento, emergencia y diseminación de la resistencia a los antimicrobianos constituye uno de los 

principales problemas de salud pública a nivel mundial. Este hecho se ve agravado por el incremento 

en el uso indiscriminado e inadecuado de los mismos en los últimos 50 años, lo cual conlleva a un 

impacto significativo, tanto a nivel económico como poblacional. 

La resistencia a los antibióticos se ha observado en nuevas especies bacterianas y en muchos casos 

involucra nuevos mecanismos de resistencia. Las infecciones causadas por microorganismos 

resistentes pueden ser de difícil manejo e incluso no responder al tratamiento antimicrobiano. Lo 

anterior puede implicar un aumento en la estancia hospitalaria, en la morbilidad y mortalidad. Por otro 

lado, las bacterias, según su variabilidad genética, tienen la capacidad de transmitir y/o adquirir 

resistencia a los antibióticos. De esta forma, nuevos mecanismos de resistencia pueden ser 

adquiridos mediante mutación o por transferencia de material genético cromosómico o 

extracromosómico (plásmidos), no sólo entre la misma descendencia de células bacterianas, sino 

también entre especies relacionadas o diferentes (transmisión horizontal). Todos estos elementos 

agravan el panorama y podrían tener implicaciones epidemiológicas y terapéuticas. 

Además, es importante señalar que el uso inadecuado de los antibióticos en clínica humana y 

veterinaria (incluyendo acuicultura), así como en la agricultura y en la producción de alimentos 

contribuye a la selección de bacterias resistentes a antibióticos por presión selectiva, las que se 

diseminan entre los diferentes ambientes hospitalarios y en la comunidad. Esto hace que los 

antibióticos utilizados para el tratamiento de infecciones bacterianas comunes sean cada vez más 

limitados, de mayor costo (por la selección de resistencia en la flora normal del individuo tratado y de 

su entorno), a veces más tóxicos, o, en algunos casos, inexistentes. 

La resistencia a los antibióticos no es un fenómeno nuevo, es una consecuencia de la evolución vía 

selección natural, la acción de los antibióticos sólo es una presión selectiva ambiental, por lo que el 

problema no se puede eliminar. Sin embargo, sí es posible convertir esta amenaza creciente en un 

problema manejable, mediante el diseño de estrategias integrales que incluyan el establecimiento de 

programas de vigilancia de los problemas de resistencia ya existentes y los emergentes. 




Por lo anterior, el Centro Nacional de Referencia en Bacteriología del INCIENSA (CNRB), al igual que 

en años anteriores, consolidó la información sobre la resistencia a los antimicrobianos generada por 

los laboratorios de la red durante el período 2010. En esta ocasión se hace una breve comparación 

entre lo observado para el período 2010 y los períodos 2008 y 2009. Esta iniciativa también forma 

parte de los compromisos de la Red Latinoamericana de Vigilancia a las Resistencias 

Antimicrobianas (RELAVRA), coordinada por OPS / OMS, en la cual Costa Rica participa junto con 19 

países latinoamericanos y donde el INCIENSA es el punto focal de país 1 . 

Desde 1997 el CNRB ha recopilado datos de resistencia a los antimicrobianos para las 

enterobacterias Salmonella, Shigella y Vibrio cholerae y a partir del 2000, la vigilancia se amplió a 

otras bacterias de importancia en salud pública como causantes de infecciones en la comunidad 

(Neisseria meningitidis, Streptococcus pneumoniae, Haemophilus influenzae, Staphylococcus aureus) 

y en los hospitales (Enterococcus spp., Klebsiella pneumoniae, Escherichia coli, Acinetobacter spp., 

Pseudomonas aeruginosa, S. aureus, Enterobacter spp., Proteus mirabilis, Morganella morganni y 

Serratia marscescens). Para este periodo no se incluyó el análisis de resistencia a los 

antimicrobianos de bacterias causantes de infecciones intrahospitalarias de importancia en salud 

pública. Lo anterior debido a que actualmente se trabaja en la reorganización de esta vigilancia en el 

marco del Convenio CSSS-INCIENSA, con el fin de disponer de información representativa de la 

realidad nacional, que pueda ser de utilidad para la toma de decisiones. 

Se pretende que esta información sea de utilidad en la elaboración de normas para el tratamiento 

empírico de las infecciones causadas por estos agentes y para la toma de decisiones, así como para 

la generación de políticas públicas en el campo de la salud humana, veterinaria y la producción 

alimentaria. 

1 Países participantes en la Red Regional de Monitoreo / Vigilancia de la Resistencia a los Antibióticos 

(RELAVRA): Argentina, Bolivia, Brasil, Colombia, Chile, Costa Rica, Cuba, Ecuador, El Salvador, Guatemala, 

Honduras, México, Nicaragua, Panamá, Paraguay, Perú, República Dominicana, Uruguay, Venezuela, 

Centro Epidemiológico del Caribe (CAREC). 




Glosario de siglas 

BLEE: 

CIM: 

CLSI: 

CNRB: 

INCIENSA: 

ETA: 

LCR: 

MLSb: 

NST: 

PFGE: 

PMQR: 

PSA: 

QRDRs: 

RELAVRA: 

RNLB: 

SDP: 

WHONET: 

β-lactamasa de espectro extendido 

Concentración inhibitoria mínima 

Clinical and Laboratory Standards Institute (antes NCCLS) 

Centro Nacional de Referencia en Bacteriología 

Instituto Costarricense de Investigación y Enseñanza en Nutrición y Salud 

Enfermedad transmitida por alimentos 

Líquido cefalorraquídeo 

Macrolide-Lincosamide-Streptogramin B 

No serotipificables 

Electroforesis de campo pulsante 

Plasmid-mediated quinolone resistance (resistencia a quinolonas mediada por 

plásmidos) 

Prueba de sensibilidad a los antibióticos 

Quinolone resistance-determining regions (región determinante de resistencia a 

quinolona) 

Red Latinoamericana de Vigilancia a las Resistencia a los Antibióticos 

Red Nacional de Laboratorios de Bacteriología 

Sensibilidad disminuída a penicilina 

World Health Organization-Net (database software) 

2. Materiales y métodos 

2.1 Fuentes de información: La información de los aislamientos incluidos en este informe 

corresponde a la contenida en las boletas que acompañan las cepas y muestras referidas al CNRB 

por los laboratorios de la Red Nacional y otros servicios para confirmación / tipificación y/o 

diagnóstico respectivamente. Todos los aislamientos incluidos en este informe fueron confirmados y 

tipificados en el CNRB y la prueba de sensibilidad se realizó por los métodos estándar de referencia 

de referencia (Cuadro 1). 




2.2 Tipificación y prueba de sensibilidad a los antibióticos: En el Cuadro 1 se indican los 

procedimientos que se utilizaron en el CNRB para realizar la serotipificación y PSA de los agentes 

referidos por los laboratorios de la red. 

Cuadro 1 

Procedimientos utilizados en el CNRB para tipificación y prueba de sensibilidad a los 

antibióticos de los agentes referidos por los laboratorios de la Red 

Agente 

Salmonella spp. 

Shigella spp. 

Streptococcus pneumoniae 

Haemophilus influenzae 

Neisseria meningitidis 

Método empleado en el CNRB 

Tipificación PSA 1 Mecanismo de 

resistencia 2 

Aglutinación en lámina y 

microaglutinación Salmatcor 

para detección de antígenos O 

y H respectivamente, utilizando 

el Esquema Kauffmann-White 

Aglutinación en lámina (Ewing 

1986) 

Reacción de Quellung para 

determinación de serotipo 

Aglutinación en lámina para 

determinación de serotipo 

Aglutinación en lámina para 

determinación de serogrupo 

Kirby Bauer en agar Mueller Hinton 

Kirby Bauer en agar Mueller Hinton 

suplementado con 5% sangre de 

carnero 

CIM por E-test en agar Mueller Hinton 


carnero (para imipenem, ceftriaxona y 

penicilina) 

CIM por microdilución en caldo Mueller 

Hinton ajustado con cationes 

suplementado con 3-5% sangre lisada 

de caballo (para ceftriaxona y penicilina) 

Kirby Bauer en agar HTM 

CIM por microdilución en caldo HTM 

(para rifampicina, cloranfenicol y 

ampicilina) 

CIM por E-test en agar Mueller Hinton 


carnero (para penicilina, cefotaxime, 

ciprofloxacina, cloranfenicol y 

rifampicina) 

Microdilución en caldo Mueller Hinton 

ajustado con cationes suplementado con 

3-5% sangre lisada de caballo (para 

penicilina, ceftriaxone, cloranfenicol y 

rifampicina) 

Detección de β-lactamasa de 

espectro extendido BLEE por 

el método de doble difusión 

con disco y comparación de 

halos de inhibición en 

presencia de cefalosporina 

de tercera generación con y 

sin ácido clavulánico 

Detección de carbapenemasa 

en cepas sospechosas 

Detección de MLSb por D- 

test 

Detección de β-lactamasa 

por método cromogénico 

Confirmación de cepas 

sospechosas de BNAR 

No aplica 

1 

Siguiendo la normativa establecida por “Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing” CLSI 2010. 

2 

Métodos acordados en el marco de RELAVRA y “Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing” CLSI 

2010. 




Los antibióticos que se vigilan para cada agente fueron los acordados por RELAVRA, siguiendo las 

recomendaciones de CLSI 2010. Los mismos se seleccionaron con base a diferentes criterios como 

su uso terapéutico clínico y otros que son utilizados como marcadores para la vigilancia 

epidemiológica y para la detección de mecanismos de resistencia de importancia clínica (Cuadro 2). 

Los puntos de corte empleados para las cepas de origen animal o ambiente son los establecidos para 

las cepas de origen humano, ya que la vigilancia se lleva a cabo para poder entender el impacto de la 

resistencia en estos aislamientos sobre la salud humana. Por lo anterior, esta información se debe 

analizar bajo esta perspectiva y no necesariamente como una recomendación terapéutica. 

Cuadro 2 

Antibióticos empleados en la vigilancia 

Antibiótico Sigla Antibiótico Sigla 

Ácido nalidíxico NAL Cloranfenicol CHL 

Amoxicilina AMX Eritromicina ERI 

Amoxicilina ácido clavulánico AMC Estreptomicina STR 

Ampicilina AMP Gentamicina GEN 

Ampicilina-sulbactam SAM Levofloxacina LVX 

Azitromicina AZM Nitrofurantoína NIT 

Cefotaxime CTX Oxacilina OXA 

Cefotaxime-ácido clavulánico CTV Ofloxacina OFX 

Ceftazidime CAZ Penicilina PEN 

Ceftazidime-ácido clavulánico CCV Piperacilina PIP 

Cefoxitina FOX Piperacilina tazobactam TZP 

Ceftriaxone CRO Rifampicina RIF 

Cefuroxime CXM Sulfonamides SSS 

Ciprofloxacina CIP Tetraciclina TCY 

Clindamicina CLI Vancomicina VAN 

Nota: sigla de antibióticos según WHONET 




2.3 Análisis de la información: Se realizó un análisis descriptivo de la información de tipificación y 

sensibilidad a los antibióticos de los diferentes microorganismos incluidos en este informe. Para cada 

agente se calculó el porcentaje de aislamientos pertenecientes a los diferentes serotipos y 

serovariedades, según corresponda, esta información se presenta al pie de cada gráfico. Además, 

para cada uno de los microorganismos se calculó el porcentaje de aislamientos resistentes, con 

sensibilidad intermedia y sensibles a cada uno de los antibióticos evaluados, información que se 

ilustra en gráficos de barras, en los que se destaca en color rojo el porcentaje de aislamientos 

resistentes, en amarillo el porcentaje de cepas con sensibilidad intermedia y en verde el porcentaje de 

aislamientos sensibles. 

3. Resultados 

Se analiza la información relacionada a la tipificación y prueba de sensibilidad a los antimicrobianos 

de agentes bacterianos causantes de diarrea (Salmonella y Shigella), infección respiratoria y 

meningitis (Streptococcus pneumoniae, Neisseria meningitidis y Haemophilus influenzae). No se 

incluye información sobre Vibrio cholerae O1, dado que en el 2010 no se recibieron en el CNRB 

aislamientos del agente para su confirmación. 

En vista de que las infecciones por Salmonella se transmiten al hombre por el consumo de alimentos 

contaminados con heces humanas o animales y se consideran zoonóticas, produciendo 

enfermedades de transmisión alimentaria (ETA), a excepción de las causadas por Salmonella Typhi y 

S. Paratyphi A, en las que el hombre es el reservorio, se incluye un apartado relacionado a la 

tipificación y PSA de aislamientos de origen no humano. El análisis y manejo integral de esta 

información es fundamental para entender el comportamiento epidemiológico y poder priorizar las 

medidas de prevención y control. 

3.1. Salmonella spp. de origen humano: 

En el período comprendido entre el 1 de enero y el 31 de diciembre del 2010 se contabilizaron en el 

Centro Nacional de Referencia de Bacteriología (CNRB) del INCIENSA un total de 186 aislamientos 

de Salmonella spp. de origen humano referidos por establecimientos de salud de las diferentes 

regiones del país, en comparación con 95 y 113 recibidos en el 2008 y 2009, respectivamente (Figura 

1). 




Figura 1 

Distribución mensual de los aislamientos de Salmonella spp. de origen humano, confirmados 

en el CNRB, según año, enero 2008 - diciembre 2010. 

30 

27 

Número de aislamientos 

24 

21 

18 

15 

12 

9 

6 

3 

0 

ENE 

FEB 

MAR 

ABR 

MAY 

JUN 

JUL 

AGO 

SET 

OCT 

NOV 

DIC 

ENE 

FEB 

MAR 

ABR 

MAY 

JUN 

JUL 

AGO 

SET 

OCT 

NOV 

DIC 

ENE 

FEB 

MAR 

ABR 

MAY 

JUN 

JUL 

AGO 

2008 2009 2010 

SET 

OCT 

NOV 

DIC 

Mes, año 

Fuente: CNRB-INCIENSA y Red Nacional de Laboratorios de Bacteriología, Costa Rica. 

Este incremento en la confirmación de infecciones por Salmonella fue documentado por el CNRB en 

un informe preliminar de vigilancia de laboratorio de Salmonella spp. de origen humano 1 enero - 31 

julio 2010 (Oficio CNRB-387-2010, 9 de setiembre del 2010). 

En el 2010, se confirmaron un total de 32 serovariedades diferentes, observándose que Salmonella 

Typhimurium, S. Enteritidis, S. Panama y S. Javiana contabilizaron por el 60% de los aislamientos 

(Figura 2). Durante este período, igual que para los años 2008 y 2009, no se identificaron casos 

positivos por S. Typhi ni S. Paratyphi A, B o C, causantes de fiebre tifoidea y paratifoidea 

respectivamente. 




Figura 2 

Serovariedades de Salmonella spp. de origen humano, 2010 

N: 186 

13% 

Serovariedades 

3% 

2% 

3% 

3% 

2% 

2% 

2% 

2% 

4% 

4% 

6% 

8% 

17% 

29% 

S Typhimurium 

S Enteritidis 

S Panama 

S Javiana 

S Weltevreden 

S Newport 

S Oslo 

S Oranienburg 

Salmonella Infantis 

S enterica I 1,4,(5),12:i:- 

S Manhattan 

S Sandiego 

S Bovismorbificans 

S Braenderup 

Otras 

Otras serovariedades: entre ellas S. Anatum, S. Bonariensis, S. Saintpaul, S. Glostrup, S. Thompson, S. Pomona, S. Agona, S. Miami, S. 

Cholerasuis var Kunzendorf, S. Derby, S. enterica houtenae 45:g,p:-, Salmonella 50: Z4,Z23,Z32-:- IIIa, S. Give, S. Heidelberg, S. 

Muenchen, S. Virchow. 

Fuente: Se incluyen los resultados confirmados por el CNRB para aislamientos enviados por: H. Blanco Cervantes, H. Carlos Luis Valverde 

Vega, H. Ciudad Neilly, H. Enrrique Baltodano, H. Dr. Escalante Pradilla, H. Golfito, H. Los Chiles, H. Max Peralta, H. México, H. Monseñor 

Sanabria, H. Nacional de Niños, H. Dr. Rafael Ángel Calderón Guardia, H. San Carlos, H. San Juan de Dios, H. San Rafael de Alajuela, H. 

San Vicente de Paúl, H. Tomás Casas, H. Tony Facio, H. Upala, H. William Allen, Cl. Abangares, Cl. Aserrí, Cl. Coronado, Cl. Dr. Jorge 

Volio, Cl. La Unión, Cl. Marcial Fallas, Cl. Santa Bárbara, Cl. Solón Núñez, Coopesalud, Coopesiba, Coopesana, LABIN y Área de Salud 

Heredia Virilla (Guararí). 

La mayoría de los aislamientos (74%) fueron recuperados de heces y 26% de muestras de origen 

extra intestinal, como: sangre, orina, abscesos, líquido cefalorraquídeo, líquido articular, peritoneal o 

pleural (Figura 3). 




Figura 3 

Origen de los aislamientos de Salmonella spp. de origen humano confirmados en el CNRB- 

INCIENSA, Costa Rica 2010, N: 186 

Sangre-14% 

Orina- 5% 

Heces- 74% 

Absceso- 2% 

LCR- 1% 

Líq. pleural- 1% 

Líq. peritoneal- 1% 

Líq. articular- 1% 

Cuerpo vertebral- 1% 

Fuente: CNRB- INCIENSA y Red Nacional de Laboratorios de Bacteriología, Costa Rica. 

Las cepas de Salmonella aisladas de heces fueron referidas principalmente por laboratorios de 

clínicas periféricas y locales (42%), hospitales regionales (29%), hospitales periféricos (16%) y en 

menor proporción por hospitales nacionales y especializados (13%). 

En el caso de las cepas de Salmonella de origen invasivo (sangre, líquido cefalorraquídeo, pleural y 

peritoneal), 50% fueron referidas por laboratorios de hospitales regionales, 42% por laboratorios 

clínicos de hospitales nacionales y especializados y un 8% por laboratorios de hospitales periféricos. 

En los meses de abril, julio, agosto y octubre 2010, en que se recibió el mayor número de 

aislamientos de Salmonella en el CNRB, S. Typhimurium fue la serovariedad más común, seguida por 

S. Enteritidis (Figura 4). 




Figura 4 

Distribución mensual de las serovariedades de Salmonella de origen humano más comunes 

confirmadas en el CNRB-INCIENSA, Costa Rica 2010 

N: 186 

30 

27 



24 

21 

18 

15 

12 

9 

6 

3 

Otras serovariedades 

S Sandiego 

S Manhattan 

S Braenderup 

S Infantis 

S Weltevreden 

S enterica I 1,4,(5),12:i:- 

S Oranienburg 

S Oslo 

S Newport 

S Enteritidis 

S Javiana 

S Panama 

S Enteritidis 

S Typhimurium 

0 

ENE FEB MAR ABR MAY JUN JUL AGO SET OCT NOV DIC 

Mes 


Al analizar la información de lugar de procedencia de los casos positivos por S. Typhimurium 

recibidos durante el período, se encontró que la mayoría procedían de San José, Puntarenas y 

Heredia, y en menor porcentaje de Alajuela, Cartago, Guanacaste y Limón (Figura 5); sin embargo, 

esta información no estaba disponible en el 50% de las boletas de solicitud de análisis. En relación a 

S. Enteritidis, 37.5 % de los casos procedían de cantones de las provincias de San José y Heredia y 

en menor porcentaje de Alajuela, Cartago, Puntarenas, Guanacaste y Limón (Figura 5). Sin embargo, 

en 47% de los casos no se cuenta con esta información. 




Figura 5 

Provincia (cantón) de procedencia de los casos positivos por S. Typhimurium y S. Enteritidis 

confirmados en el CNRB, Costa Rica 2010 

S. Typhimurium (N: 56) S. Enteritidis (N: 32) 

San José (Alajuelita, 

Desamparados. Aserrí, 

Vazquez de Coronado, 

Santa Ana, Goigochea) 

14% 

Puntarenas 

(Puntarenas) 

9% 

San José (San José, 

Desamparados, 

Vazquez de Coronado, 

Perez Zeledón) 

25% 

Desconocido 

50% 

Heredia (Heredia,Santa 

Bárbara, Flores) 

9% 

Limón 

5% 

Alajuela (San Carlos, 

Los Chiles) 

5% 

Cartago (Turrialba) 

4% 

Guanacaste (Liberia) 

4% 

Desconocido 

47% 

Alajuela (San Ramón) 

3% 

Cartago (La Unión) 

3% 

Heredia (Santa Bárbara, 

Flores) 

13% 

Puntarenas 

(Puntarenas) 

3% 

Limón (Siquirres) 

3% 

Guanacaste (Tilarán) 

3% 

Fuente: CNRB-INCIENSA y Red Nacional de Laboratorios de Bacteriología, Costa Rica 

Durante el período 2010 el CNRB no recibió alertas de brotes asociados a Salmonella spp., ni se 

documentaron defunciones por esta bacteria. En contraste, en el 2009, la Morgue Judicial-OIJ refirió 

dos muestras post-mortem de adultos fallecidos con antecedentes de diarrea / deshidratación; una de 

ellas resultó positiva por S. Minnesota y la otra por S. Panamá. También en el 2008, el OIJ refirió dos 

muestras post-mortem, una de un adulto mayor en la que se confirmó S. Enteritidis y la otra de un 

menor de edad, positiva por S. Thompson. 

El análisis global de los perfiles de resistencia de las 186 cepas de Salmonella spp. de origen humano 

permitió evidenciar resistencia a 14 de los 16 antibióticos probados, observándose que un 10% de los 

aislamientos fueron resistentes a sulfonamidas y un 8,6 % de cepas presentaron sensibilidad 

intermedia o resistencia a ácido nalidíxico. Todas las cepas resultaron sensibles a ciprofloxacina y 

gentamicina, según punto de corte (Figura 6). 




Figura 6 

Resistencia a los antibióticos en Salmonella spp. de origen humano, 2010 

N: 186 

100 

90 

80 

70 

% de aislamientos 

60 

50 

40 

30 

20 

S 

I 

R 

10 

0 

AMP AMC CAZ CTX FOX PRL TZP CHL GEN SXT TCY STR NAL CIP SSS NIT 

Antibiótico 


Vega, H. Ciudad Neilly, H. Enrique Baltodano, H. Dr. Escalante Pradilla, H. Golfito, H. Los Chiles, H. Max Peralta, H. México, H. Monseñor 





S: sensible, I: intermedio, R: resistente, N: número de aislamientos analizados. 

Al comparar la resistencia a los antibióticos de las cuatro serovariedades de Salmonella de origen 

humano más frecuentes para este período, los perfiles observados son diferentes. Mientras que 

algunos aislamientos de S. Typhimurium, fueron resistentes a once de los antibióticos probados, S. 

Enteritidis presentó resistencia a dos antibióticos, mientras que S. Panama y S. Javiana mostraron 

resistencia sólo a uno o a ninguno de los antibióticos, respectivamente (Figura 7). Estos datos 

concuerdan con los perfiles de resistencia observados en años anteriores para estas serovariedades. 

En el caso de S. Typhimurium, 98% de los aislamientos presentaron resistencia neta o sensibilidad 

intermedia a estreptomicina. Además, se evidenció resistencia a ampicilina, amoxicilina ácido 

clavulánico, ceftaxidime, cefotaxime, piperacilina, piperacilina tazobactán, cloranfenicol, tetraciclina, 

sulfonamida y nitrofurantoína (Figura 7). La resistencia a cefalosporinas mencionada anteriormente, 

corresponde a un aislamiento de S. Typhimurium (origen: sangre) para el cual se determinó la 




presencia de una β-lactamasa de espectro extendido (BLEE). Este aislamiento presentó halos de 

inhibición para CAZ= 9, CCV= 23mm, CTX= 6 y CTV= 24mm. 

Figura 7 

Resistencia a los antibióticos en S. Typhimurium, S. Enteritidis, S. Panama y S. Javiana, 2010 

S. Typhimurium N: 56 S. Enteritidis N: 32 

100 

100 

90 

90 

80 

80 


70 

60 

50 

40 

30 

20 

70 

60 

50 

40 

30 

20 

S 

I 

R 

10 

10 

0 


0 


S. Panama N: 14 S. Javiana N: 12 

100 

100 

90 

90 


80 

70 

60 

50 

40 

30 

80 

70 

60 

50 

40 

30 

S 

I 

R 

20 

20 

10 

10 

0 


0 


Antibiótico 

Antibiótico 



Sanabria, H. Nacional de Niños, H. Dr. Rafael Ángel Calderón Guardia, H. San Carlos, H. San Juan de Dios, H. San Vicente de Paúl, H. 

Tony Facio, H. Upala, H. William Allen, Cl. Abangares, Cl. Aserrí, Cl. Coronado, Cl. Dr. Jorge Volio, Cl. Dr. Marcial Fallas, Cl. Santa Bárbara, 

Cl. La Unión, Coopesalud, Coopesana y LABIN. 

S: sensible, I: intermedio, R: resistente, N: número de aislamientos analizados 




Es importante destacar que cuatro de las 56 cepas (7.1%) de S. Typhimurium (una aislada de orina y 

tres de heces), presentaron resistencia a ampicilina, cloranfenicol, sulfonamidas y tetraciclina, 

además de sensibilidad intermedia a estreptomicina. En contraste, los cuatro aislamientos 

presentaron sensibilidad a cefotaxima, gentamicina, trimetoprin-sulfamethoxazol, ácido nalidíxico y 

ciprofloxacina. Este fenotipo concuerda con el patrón de multiresistencia a los antibióticos del fagotipo 

S. Typhimurium DT104-ACSSuT, cuya circulación en el país se documentó desde el año 2003 

(Duarte et al. 2006, Salve et al. 2008) y que de acuerdo a la literatura se asocia con alta morbilidad e 

infecciones graves (Hermans et al., 2005). 

La multiresistencia a los antibióticos (ACSSuT) de los aislamientos DT-104 se asocia a la adquisición 

de elementos genéticos móviles “Salmonella genomic island 1” (SGI1). Sin embargo, también se 

describe SGI1 en otros serotipos como: S. Agona, S. Albany, S. Infantis y S. Newport, aunque con 

diferente fenotipo de resistencia (Douard et al., 2010; Majtaá novaá et al., 2010). En este periodo 

2010, también se identificó un aislamiento de S. Agona fenotipo ASSu, el cual muestra resistencia 

neta a ampicilina, estreptomicina, sulfonamidas, trimetoprin-sulfametoxazol y piperacilina. Este 

fenotipo (ASSu) también ha sido identificado en S. Typhimurium fagotipo U302, DT-120 (Majtaá 

novaá et al., 2010). 

En la Figura 8 se muestra el comportamiento de las cepas de Salmonella spp. de origen humano con 

respecto al ácido nalidíxico y la ciprofloxacina. Se encontró que 2.7% de las cepas fueron resistentes 

y 5.9% presentaron sensibilidad intermedia a ácido nalidíxico, este hecho evidencia que al igual que 

en otros años, circulan en el país cepas de Salmonella con sensibilidad disminuida a ciprofloxacina, 

que podrían presentar falla al tratamiento con este antibiótico, principalmente en el caso de 

infecciones extra-intestinales (CLSI 2010, Chen et al., 2007). Se identificaron tres perfiles fenotípicos 

de resistencia según la prueba de sensibilidad a los antibióticos y el algoritmo para mejorar detección 

de PMQRs (plasmid-mediated quinolone resistance) propuesto por Instituto Malbrán y RELAVRA 

(Anexo 1), según el cual halos de 6 mm para NAL son indicativos de sensibilidad reducida o 

resistencia a fluoroquinolonas mediada por QRDRs; halos de inhibición para NAL entre 7-20 mm y la 

disminución en el halo de inhibición de ciprofloxacina (≤27 mm) para sospechar en un mecanismo 

plasmídico qnr o halos de NAL ≥21 mm y disminución del halo de inhibición de CIP (≤27 mm) para 

sospechar en un mecanismo enzimático mediado por aac-cr (Figura 8). 




Aunque se ha descrito la resistencia a quinolonas mediada por plásmidos (PMQR), el principal 

mecanismo de adquisición de resistencia a fluoroquinolonas en Salmonella spp. se atribuye a 

mutaciones cromosomales, tales como las caracterizadas dentro de las QRDRs (quinolone 

resistance-determining regions) de los genes blancos (gyrA y gyrB que codifican la subunidad A y B 

de la ADN girasa, respectivamente y parC y parE que codifican la subunidad A y B de la 

topoisomerasa IV, respectivamente), afectando de esta forma la acumulación del antibiótico al 

disminuir su absorción como consecuencia de una disminución en la expresión de porinas o por 

incremento del eflujo del antibiótico relacionado con una sobreexpresión de bombas de eflujo (ej. 

AcrAB/TolC) (Fábrega et al. 2009). La emergencia de cepas de Salmonella con mecanismo de 

resistencia a quinolonas, explicado posiblemente por la existencia de bombas de eflujo, o plásmidos, 

se evidencia por una disminución del halo del inhibición a ciprofloxacina con sensibilidad a ácido 

nalidíxico (Hakanen et al., 2005). La circulación de cepas con estas características aún no ha sido 

confirmada en Costa Rica. Aquellas cepas que muestren el perfil de resistencia característico de este 

patrón, deberán ser sometidas a estudios de biología molecular, para descartar o demostrar la 

presencia de este mecanismo de resistencia en cepas de nuestro país. Al respecto, vale la pena 

señalar que esta metodología ya se encuentra disponible en el CNRB. 




Figura 8 

Perfiles de resistencia a ácido nalidíxico (NAL) y ciprofloxacina (CIP) en Salmonella spp. 

Halo CIP (mm) 

40 

38 

36 

34 

32 

30 

28 

26 

24 

22 

20 

18 

16 

14 

12 

10 

CIP- S 

CIP- I 

CIP- R 

NAL - R 

N= 5 

de origen humano, 2010 

N: 186 

NAL - I 

N= 13 

0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 

Halo NAL (mm) 

NAL - S 

N=168 







NA-R: resistente a NA, NA-I: sensibilidad intermedia a NA, NA-S: sensibilidad a NA, CIP-S: sensibilidad a ciprofloxacina. 

3.2 Salmonella spp. de origen no humano: 

En el 2010 se contabilizaron en el CNRB un total de 166 aislamientos de Salmonella spp. aisladas de 

muestras de origen no humano, en su mayoría de animales y alimentos para consumo humano o 

animal, en comparación con 118 y 145 recibidos en el 2008 y 2009, respectivamente (Figura 9). 

Estos aislamientos no representan ningún muestreo estadístico, sino más bien corresponden al envío 

de cepas de Salmonella de origen no humano para confirmación por parte de laboratorios de la Red 

Nacional o la industria alimentaria. 




Figura 9 

Distribución mensual de los aislamientos de Salmonella spp. de origen no humano, 

confirmados en el CNRB, según año, enero 2008 - diciembre 2010. 

40 

35 


30 

25 

20 

15 

10 

5 

0 

ENE 

FEB 

MAR 

ABR 

MAY 

JUN 

JUL 

AGO 

SET 

OCT 

NOV 

DIC 

ENE 

FEB 

MAR 

ABR 

MAY 

JUN 

JUL 

AGO 

SET 

OCT 

NOV 

DIC 

ENE 

FEB 

MAR 

ABR 

MAY 

JUN 

JUL 

AGO 

SET 

OCT 

NOV 

DIC 

Mes, año 

2008 2009 2010 


Durante el período 2010 se identificaron 22 serovariedades diferentes, siendo las más comunes 

Salmonella Paratyphi B (21.1%), S. Kentucky (18.7%), S. Heidelberg (10.8%) y S. Typhimurium 

(4.8%) (Figura 10). Al respecto, vale la pena hacer notar que de estas serovariedades únicamente se 

presentaron casos de infecciones en humanos debidas a S. Typhimurium (56 casos confirmados en 

el CNRB) y por S. Heidelberg (1 caso) (Figura 2). 




Figura 10 

Serovariedades de Salmonella spp. de origen no humano, 2010 

N: 166 

16,9% 

21,1% 


S. Paratyphi B 

S. Kentuchy 

1,8% 

2,4% 

4,2% 

3,6% 

3,6% 

6,0% 

18,7% 

S. Heidelberg 

S. Typhimurium 

S. Infantis 

S. Enteritidis 

S. Give 

S. Havana 

Salmonella enterica I 1,4,[5],12:i:- 

S. Yoruba 

S. Javiana 

6,0% 

4,8% 

10,8% 

Otras 

Otras serovariedades: S. Abaetetuba, S. Agona, S. Alachua, S. Altona, S. Braenderup, S. Dessau, S. Gaminara, S. London, S. Mbandaka, 

S. Molade, S. Muenster, S. Oranienburg, S. Rissen, S. Sandiego, S. Schleissheim, S. Senftenberg, S. Soerenga, S. Tennessee, S. Urbana, 

S. Weltevreden, Salmonella 3,10:z10:-, S. Salamae. 

Fuente: Se incluyen los resultados confirmados por el CNRB para aislamientos enviados por: SENASA-LANASEVE, CINA-UCR, 

Laboratorio Nacional de Aguas, Instituto Costarricense de Acueductos y Alcantarillados (AyA) e industrias alimentarias. 

La mayoría de los aislamientos (27%) fueron recuperados de heces de aves, un 19% de muestras de 

enjuague de pollo, 10% de hisopado cloacal y 9% de hisopado por arrastre, 35% corresponden a 

otros orígenes. 

Similar a lo observado en las cepas de Salmonella spp. aisladas a partir de infecciones en humanos 

(Figura 6), en las de origen no humano también se detectó resistencia a 14 de los antibióticos 

probados (Figuras 11). A diferencia de lo observado para las cepas humanas, las de origen no 

humano fueron sensibles únicamente a gentamicina. 

En el período 2010 se detectó un primer aislamiento de S. Kentucky con un perfil de resistencia 

sugestivo de la presencia de una β-lactamasa tipo AmpC-CMY-2 (fenotipo ACazCtxFoxCpd). La 

producción de AmpC-CMY-2 se sospechó por resistencia al ácido clavulánico y a cefalosporinas, 

adicionales a la resistencia observada para cefoxitina. Investigaciones recientes (Boyle et al., 2010) 

indican que CMY se encuentra en un plásmido (ca. 130-kb) en aquellos aislamientos con fenotipo 

AmpC. Además, estas investigaciones señalan que la comparación de los patrones de electroforesis 




de campo pulsante (PFGE) con los archivos de patrones de S. Kentucky sugiere que el grupo de S. 

Kentucky productoras de CMY-2 está estrechamente relacionado con una serie de aislamientos de S. 

Kentucky pan-susceptibles de aves de corral humanos y muestras ambientales (Boyle et al., 2010). 

Estas cepas son sensibles a NAL y CIP, este dato es importante porque podría ser la opción de 

tratamiento en humanos para cepas semejantes. La presencia de enzimas tipo AmpC, codificadas por 

genes en el cromosoma y en plásmidos se han relacionado con resistencia a cefalosporinas de 

tercera generación (C3G) y en algunos casos de cefalosporinas de cuarta generación (C4G); por lo 

anterior se recomienda reportar que el uso de C3G puede generar selección de resistencia 

intratratamiento. En el caso de AmpC derreprimida se aplica la misma observación a las C4G. 

Por otro lado, en este período se encontraron 35 aislamientos de S. Paratyphi B var. Java, con 

resistencia neta a ácido nalidíxico y nitrofurantoína. Además, todos los aislamientos presentaron 

halos de inhibición para ciprofloxacina de ≤ 24 mm, valor muy por debajo del promedio del halo de 

inhibición para este antibiótico en estas muestras (28 mm). Seis de estas cepas de S. Paratyphi B 

var. Java presentaron resistencia neta y seis sensibilidad intermedia a tetraciclina. 

También se documentaron ocho aislamientos de S. Typhimurium, sensibles a: ampicilina, amoxicilina 

clavulánico, ceftazidime, cefotaxime, cefoxitin, cloranfenicol, ciprofloxacina, gentamicina, tetraciclina, 

piperacilina y piperacilina tazobactán. Un 17% de estos aislamientos presentaron halos de inhibición 

para ciprofloxacina de 22 mm, valor muy por debajo del promedio del halo de inhibición para este 

antibiótico en estas muestras (28 mm). 




Figura 11 

Resistencia a los antibióticos en Salmonella spp. de origen no humano, 2010 

N: 166 

100 

90 

80 

70 


60 

50 

40 

30 

20 

10 

S 

I 

R 

0 


Antibiótico 

Fuente: Se incluyen los resultados confirmados por el CNRB para aislamientos enviados por: SENASA-LANASEVE, CINA-UCR, 

Laboratorio Nacional de Aguas, Instituto Costarricense de Acueductos y Alcantarillados (AyA) e industrias alimentarias. 


Nota: Los puntos de corte empleados para las cepas de origen animal o ambiente son los establecidos para las cepas de origen humano, 

ya que la vigilancia se lleva a cabo para poder entender el impacto sobre la salud humana. 

A diferencia de lo observado en cepas de origen humano (Figura 6), en los aislamientos de origen no 

humano se observó un porcentaje mayor de aislamientos con resistencia a ácido nalidíxico (41%) y 

una mayor cantidad de cepas de Salmonella spp. con sensibilidad disminuida a ciprofloxacina (Figura 

12). 




Figura 12 

Perfiles de resistencia a ácido nalidíxico (NAL) y ciprofloxacina (CIP) en Salmonella spp. 

de origen no humano, 2010 

N: 166 

Halo CIP (mm) 

40 

38 

36 

34 

32 

30 

28 

26 

24 

22 

20 

18 

16 

14 

12 

10 

CIP- S 

CIP- R CIP- I 

NAL - R 

N= 69 

NAL - I 

N= 7 

0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 

Halo NAL (mm) 

NAL - S 

N= 90 

Fuente: Se incluyen los resultados confirmados por el CNRB para aislamientos enviados por: SENASA-LANASEVE, CINA-UCR, Instituto 

Costarricense de Acueductos y Alcantarillados (AyA) e industrias alimentarias. 

NA-R: resistente a ácido nalidíxico, NA-I: sensibilidad intermedia, NA-S: sensibilidad, CIP-S: sensibilidad a ciprofloxacina. 

Nota: Los puntos de corte empleados para las cepas de origen animal o ambiente son los establecidos para las cepas de origen humano, 

ya que la vigilancia se lleva a cabo para poder entender el impacto sobre la salud humana. 

En este sentido, cabe recalcar que los 35 aislamientos de S. Paratyphi B presentaron fenotipo con 

sensibilidad disminuida a ciprofloxacina con halos de inhibición ≤ 24 mm. Para los aislamientos con 

sensibilidad disminuida a ciprofloxacina, también se observaron los cuatro fenotipos presentes en las 

muestras de origen humano, con la diferencia de que se detectó mayor cantidad de cepas resistentes 

a ácido nalidíxico y mayor número de cepas con halos de inhibición menor al promedio esperado para 

estos aislamientos, que en este caso es de 28 mm. La resistencia observada en estos aislamientos 

podría estar reflejando el uso de este tipo de antibióticos como promotores de crecimiento en piensos 

y agua empleada en la alimentación de los animales (Smith 2001, Wegener 2003, WHO 2000). 




3.3 Shigella spp.: 

En el período comprendido entre el 1 de enero y el 31 de diciembre del 2010 se serotipificaron en el 

(CNRB) del INCIENSA un total de 148 cepas de Shigella aisladas de muestras clínicas y referidas por 

los laboratorios de la Red Nacional (RNLB), en comparación con 249 y 207 recibidos en los años 

2008 y 2009, respectivamente (Figura 12). 

Figura 12 

Distribución mensual de los aislamientos de Shigella spp. de origen humano, confirmados en 

el CNRB, según año, enero 2008 - diciembre 2010. 

40 

35 

30 


25 

20 

15 

10 

5 

0 

ENE 

FEB 

MAR 

ABR 

MAY 

JUN 

JUL 

AGO 

SET 

OCT 

NOV 

DIC 

ENE 

FEB 

MAR 

ABR 

MAY 

JUN 

JUL 

AGO 

SET 

OCT 

NOV 

DIC 

ENE 

FEB 

MAR 

ABR 

MAY 

JUN 

JUL 

AGO 

SET 

OCT 

NOV 

DIC 

Mes, año 

2008 2009 2010 


El 50% de los aislamientos tipificados en el 2010 correspondieron a S. flexneri y 49% a S. sonnei. 

Estos datos concuerdan con lo observado en el año 2009 y contrasta con el período 2006 a 2008, en 

que se documentó un predominio de S. sonnei. 

En cuanto a los aislamientos de Shigella flexneri los serotipos 2a y 3a fueron los más comunes, 

aunque también se identificaron cepas pertenecientes a los serotipos 4a, 3b, variante X y variante Y. 

Durante este período se confirmó sólo un aislamiento de S. boydii 4 y ninguno de Shigella dysenteriae 

(Figura 13). 




Figura 13 

Especies y serotipos de Shigella spp. confirmados en el CNRB, 


N: 148 

S. boydii (N:1) 0,7% 

S. flexneri 2a 

(N:33) 45,9% 

S. sonnei (N:73) 

49,3% 

S. flexneri (N:74) 

50% 


(N:26) 35,1% 

S . flexneri* (N:14) 

18,9% 

Otros serotipos: Incluye S. flexneri 3b, S. flexneri 4a, S. flexneri variante X y S. flexneri variante Y. 

Fuente: Se incluyen los resultados confirmados por el CNRB para aislamientos enviados por: H. Carlos Luis Valverde Vega, H. Ciudad 

Neilly, H. Los Chiles, H. Dr. Max Peralta, H. Dr. Max Terán Valls, H. Monseñor Sanabria, H. Nacional de Niños, H. San Carlos, H. San 

Francisco de Asís, H. San Rafael de Alajuela, H. San Vicente de Paúl, H. San Vito, H. Dr. Tony Facio, Hospital Upala, Cl. Abangares, Cl. 

Atenas, Cl. Buenos Aires, Cl. Coronado, Cl. La Cruz, Cl. Barranca, Cl. Marcial Fallas, Cl. Marcial Rodríguez, Cl. Palmares, Cl. Solón Núñez, 

Coopesalud, Coopesana, Coopesiba. 

De acuerdo a la información suministrada en las boletas de solicitud de análisis, todas las cepas de 

Shigella se aislaron de heces, por laboratorios de clínicas periféricas y locales (52%), hospitales 

regionales (24%), hospitales locales (21%) y en menor proporción por hospitales nacionales y 

especializados (3%). 

En los meses de enero y noviembre de 2010, el CNRB recibió el mayor número de aislamientos de 

Shigella. En enero, 59% de los aislamientos confirmados eran de la especie S. sonnei; sin embargo, 

en noviembre el 67% correspondieron a diferentes serotipos de S. flexneri (Figura 14). 




Figura 14 

Distribución mensual de las serovariedades de Shigella de origen humano más comunes 

confirmadas en el CNRB-INCIENSA, Costa Rica 2010 

N: 148 


20 

15 

10 

5 

Serotipos 

S. boydii 4 

S. flexneri 3b 


S. flexneri variante y 

S. flexneri variante x 


S.flexneri 2a 

S. sonnei 

0 

ENE FEB MAR ABR MAY JUN JUL AGO SET OCT NOV DIC 

Mes 


Los casos de shigellosis se diagnosticaron en comunidades de todas las provincias del país 

(principalmente en Alajuela, San José y Puntarenas); sin embargo, este dato no estaba disponible en 

el 22% de las boletas (Figura 15). 

En el 2010 se documentaron cinco brotes por Shigella, cuatro de ellos intra-familiares, con un total 

aproximado de ocho enfermos (tres de ellos debidos a S. sonnei y uno por S. flexneri 2a) y uno 

comunitario por S. flexneri variante X, que afectó a más de 70 personas de una comunidad de 

Buenos Aires, Puntarenas, en noviembre de ese año. Al igual que en el 2008 y 2009, en el 2010 no 

se documentaron en el CNRB defunciones relacionadas a Shigella. 




Figura 15 

Provincia (cantón) de procedencia de los casos positivos por S. sonnei y S. flexneri 

confirmados en el CNRB, Costa Rica 2010 

Shigella sonnei (N: 73) 

Shigella flexneri (N: 74) 

Alajuela (Alajuela, 

Palmares, Los Chiles, 

Upala, Guatuso) 

37% 

Alajuela (Alajuela, 

Palmares, San Carlos, 

San Ramón, Grecia, 

Alfaro Ruiz) 

27% 

Desconocido 

15% 

Heredia (San Pablo, 

Sarapiquí) 

3% 

Guanacaste (Abangares, 

La Cruz) 

5% 

Limón (Limón, 

Talamanca) 

5% 


Montes de Oca, 

Desamparados, Aserrí, 

Pavas, Santa Ana) 

27% 

Puntarenas (Puntarenas, 

Corredores) 

8% 

Desconocido 

29% 

Cartago (La Unión) 

1% 

Heredia (Barva) 

1% 

Limón (Limón, 

Talamanca) 

4% 


Desamparados, 

Vazquez de Coronado) 

20% 

Puntarenas 

(Puntarenas, Buenos 

Aires, Coto Brus, 

Aguirre) 

18% 


Todas las cepas de Shigella resultaron sensibles a ciprofloxacina, antibiótico que es recomendado 

por los organismos internacionales para el manejo de la diarrea disenteriforme (WHO, 2005). Sin 

embargo, al igual que en años anteriores, se observó resistencia para trimetoprim sulfametoxazole 

(93% en S. sonnei y 54% S. flexneri) y ampicilina (92% en S. sonnei y 70% S. flexneri), antibióticos 

que aún se empelan para el tratamiento de las diarrea. Es importante hacer notar la resistencia a 

tetraciclina y cloranfenicol, en los aislamientos de S. flexneri (74 % y 19 %) y S. sonnei (29% y 0%) y 

la sensibilidad intermedia a amoxicilina ácido clavulánico (15% y 74% respectivamente) (Figuras 16 y 

17). 




Figura 16 

Resistencia a los antibióticos en S. sonnei, 

2010. N: 73 

Figura 17 

Resistencia a los antibióticos en S. flexneri, 

2010. N: 74 

100 

100 

90 

90 


80 

70 

60 

50 

40 

30 

80 

70 

60 

50 

40 

30 

S 

I 

R 

20 

20 

10 

10 

0 

0 

AMP SXT AMC CAZ CHL CIP CTX FOX GEN NAL TCY IPM CEP NIT 

AMP SXT AMC CAZ CHL CIP CTX FOX GEN NAL TCY IPM CEP NIT 

Antibiótico 

Antibiótico 

Fuente: Se incluyen los resultados confirmados por el CNRB para aislamientos enviados por: H. Carlos Luis Valverde Vega, H. Ciudad 

Neilly, H. Dr. Max Peralta, H. Dr. Max Terán Valls, H. Dr. Tony Facio, H. Los Chiles, H. Monseñor Sanabria, H. Nacional de Niños, H. San 

Carlos, H. San Francisco de Asís, H. San Vicente de Paúl, H. San Vito, H. Upala, Cl. Abangares, Cl. Aserrí, Cl. Barranca, Cl. Buenos Aires, 

Cl. Coronado, Cl. La Cruz, Cl. Marcial Fallas, Cl. Marcial Rodríguez, Cl. Palmares, Cl. Dr. Solón Núñez, Coopesalud, Coopesana, 

Coopesiba. 


3.4 Haemophilus influenzae invasivo y no invasivo: 

Durante el 2010 se tipificaron en el CNRB 115 aislamientos de H. influenzae, referidos por los 

laboratorios de la Red Nacional. De estos, ocho se catalogaron como invasivos (aislados de sangre, 

LCR y líquido peritoneal) y 107 no invasivos, en comparación con 33 (5 invasivos) y 38 (2 invasivos) 

recibidos en los años 2008 y 2009 respectivamente. 

Los ocho aislamientos invasivos del 2010 fueron referidos al CNRB en los meses de enero, mayo, 

agosto, setiembre y diciembre. De ellos, uno correspondió al serotipo b (aislamiento enviado por el H. 

San Rafael, paciente de 24 años con meningitis), otro al serotipo e y seis fueron no serotipificables (NST, 

no capsulados). 

Estos aislamientos presentaron resistencia a ampicilina (25%), trimetoprim sulfametozaxole (25%) y 

cefaclor (13%) y fueron sensibles al resto de antibióticos probados (ampicilina sulbactam, cefotaxima, 

cefuroxima, cloranfenicol, azitromicina, levofloxacina, ciprofloxacina y rifampicina). Además, dos de 




los aislamientos no serotipificables (NST, no capsulados) fueron β-lactamasa positivos (prueba de 

nitrocefin). 

En relación con los 107 aislamientos no invasivos, estos se aislaron de muestras de diferentes 

orígenes: ótico, ocular, respiratorio (traqueal, nasal, faríngeo, nasofaríngeo, bronquial, esputo) y 

vaginal. Entre ellos se identificó una cepa de H. influenzae serotipo a (de origen ótico), 104 fueron 

NST y dos aislamientos de esputo resultaron autoaglutinantes. La mayoría de aislamientos no 

invasivos fueron referidos al CNRB en el mes de octubre 2010 (Figura 18). 

Figura 18 

Distribución mensual de los aislamientos de H. influenzae no invasivos, confirmados en el 

CNRB, según año, enero 2008- diciembre 2010 

25 


20 

15 

10 

5 

0 

ENE 

FEB 

MAR 

ABR 

MAY 

JUN 

JUL 

AGO 

SET 

OCT 

NOV 

DIC 

ENE 

FEB 

MAR 

ABR 

MAY 

JUN 

JUL 

AGO 

SET 

OCT 

NOV 

DIC 

ENE 

FEB 

MAR 

ABR 

MAY 

JUN 

JUL 

AGO 

SET 

OCT 

NOV 

DIC 

Mes, año 

2008 2009 2010 


Estos aislamientos no invasivos presentaron resistencia a trimetoprim sulfametoxazole (49%), 

ampicilina (13%), cefaclor (15%), ampicilina sulbactán (2%), cefuroxime (2%) y rifampicina (2%). 

Además se observó sensibilidad intermedia a cefaclor (9%), cefuroxime (3%) y trimetoprim 

sulfametoxazole (2%). Todos los aislamientos fueron sensibles a cloranfenicol, cefotaxime, 




ciprofloxacina (Figura 19). Además, las catorce de estas cepas no invasivas que presentaron 

resistencia a ampicilina fueron β-lactamasa positivas (prueba de nitrocefin). 

Figura 19 

Resistencia a los Antibióticos en H. influenzae no invasivos. 

CNRB, 2010. N: 107 

100 

90 

80 

70 


60 

50 

40 

30 

20 

10 

S 

I 

R 

0 

AMP SXT CHL CTX CIP SAM LEV AZT CEC CXM RIF 

Antibiótico 

* Para aislamientos de H. influenzae no invasivos rifampicina (N=84) 

Fuente: Se incluyen los resultados confirmados por el CNRB para aislamientos enviados por: H. Dr. Max Peralta, H. México, H. Monseñor 

Sanabria, H. Nacional de Niños, H. San Carlos, H. San Juan de Dios, H. San Rafael de Alajuela, H. San Vicente de Paúl, H. San Vito. 


Observación: En caso de no contar con PSA para H. influenzae, se debe realizar la prueba de β-lactamasa, ya 

que la resistencia a antibióticos β-lactámicos es una de las más importantes dentro de este grupo de bacterias. 

Cepas productoras de β-lactamasa son resistentes a ampicilina y amoxicilina. Toda prueba de β-lactamasa 

positiva se debe informar al clínico, dado que el tratamiento empírico de las infecciones por este agente se 

realiza con antimicrobianos β-lactámicos. 

Una prueba de β-lactamasa negativa no excluye la posibilidad de resistencia a ampicilina, debida a otros 

mecanismos, como por ejemplo alteraciones en la unión de las proteínas PBP a la penicilina o a alteraciones en 

la permeabilidad de la pared celular (Kaczmarek et al., 2004). 




3.5 Streptococcus pneumoniae invasivo: 

Durante el 2010 se tipificaron en el CNRB un total de 64 aislamientos de origen invasivo (LCR, 

sangre, líquido articular, pleural y peritoneal), en comparación con 70 y 63 aislamientos recibidos 

durante el 2008 y 2009 respectivamente. La mayoría de estos aislamientos fueron referidos al CNRB 

en los meses de julio, setiembre y noviembre de 2010 (Figura 20). 

Figura 20 

Distribución mensual de los aislamientos de S. pneumoniae invasivos, confirmados en el 


16 


14 

12 

10 

8 

6 

4 

2 

0 

ENE 

FEB 

MAR 

ABR 

MAY 

JUN 

JUL 

AGO 

SET 

OCT 

NOV 

DIC 

ENE 

FEB 

MAR 

ABR 

MAY 

JUN 

JUL 

AGO 

SET 

OCT 

NOV 

DIC 

ENE 

FEB 

MAR 

ABR 

MAY 

JUN 

JUL 

AGO 

2008 2009 2010 

SET 

OCT 

NOV 

DIC 

Mes, año 


En la Figura 21 se muestra la distribución de los serotipos identificados a partir de los aislamientos 

invasivos de S. pneumoniae, siendo los serotipos 14 y 3 los más frecuentemente confirmados durante 

este período. Además, un 11% corresponden a otros serotipos como 11A, 15A, 15B, 6A, 9A, los 

cuales no se encuentran incluidos dentro de la vacuna heptavalente (que contiene los serotipos: 4, 

6B, 9V, 14, 18C, 19F y 23F). Durante el 2010 se observó que 28.6% de los serotipos confirmados se 

encuentran incluidos en la vacuna heptavalente, la cual se aplica en Costa Rica desde el 16 de enero 

de 2009. 

La vacuna que contiene los 23 serotipos de S. pneumoniae que se indican a continuación: 1, 2, 3, 4, 

5, 6B, 7F, 8, 9N, 9V, 10A, 11A, 12F, 14, 15B, 17F, 18C, 19A, 19F, 20, 22F, 23F y 33F, está disponible 




en nuestro país y se aplica a grupos de riesgo como los adultos mayores. Un 66.7% de los serotipos 

invasivos confirmados en el 2010 están incluidos en la vacuna 23 valentes, a excepción de los 

tipificados como 6A, 10F, 18A, 9A y 15A. Este dato concuerda con lo observado en el 2009 donde los 

serotipos invasivos 6A, 10F y 18A también se habían confirmado. 

Para los aislamientos invasivos serotipo 6A/C, referidos al Instituto Nacional de Salud de Colombia, 

queda pendiente la determinación del final del serotipo. De acuerdo a la información disponible, 

durante el período 2010 se documentaron cuatro pacientes con infecciones invasivas por S. 

pneumoniae (pertenecientes a los serotipos 3, 11A, 14 y 19A), los cuales fallecieron. 

Figura 21 

Serotipos de Streptococcus pneumoniae de origen invasivo, 2010 

N: 64 

3% 

3% 

3% 

3% 

5% 

6% 

6% 

11% 

17% 

9% 

14% 

Serotipos 

14 

3 

12F 

6B 

10F 

18A 

19F 

7F 

19A 

4 

22F 

23F 

9N 

Otros 

6% 

6% 

8% 

Otros serotipos: 11A, 15A, 15B, 6A, 9A y dos aislamientos mandados a confirmar a centro de referencia internacional (6A/C) 

Fuente: Se incluyen los resultados confirmados por el CNRB para aislamientos enviados por: H. Blanco Cervantes, H. Escalante Pradilla, 

H. Enrique Baltodano, H. Max Peralta, H. México, H. Monseñor Sanabria, H. Nacional Niños, H. San Carlos, H. San Francisco de Asís, H. 

San Juan de Dios, H. San Rafael Alajuela, H. San Vicente de Paúl, H. Tomás Casas, H. Tony Facio. 

En la Figura 22 se compara la distribución de los serotipos de S. pneumoniae invasivos confirmados 

en el CNRB-INCIENSA para los años 2008 - 2010. Se observa que los serotipos 14 (17.3%), 6B 




(6.6%) y 19F (6%) son los más que más predominan. Un 60.4% corresponden a serotipos no 

incluidos en la vacuna heptavalente (NV: no vacunales). 

Figura 22 

Distribución de los serotipos de S. pneumoniae invasivos confirmados en el CNRB, Costa Rica 

2008-2010 

45 

40 

35 


30 

25 

20 

15 

2008 

2009 

2010 

10 

5 

0 

4 6B 9V 14 18C 19F 23F NV Serotipo 

NV: serotipos no incluidos en la vacuna heptavalente 


En el 2010 se observó un 5% de resistencia y 1% de sensibilidad intermedia a penicilina. Además 

20% de los aislamientos presentaron sensibilidad disminuida a penicilina (SDP), lo que se determinó 

utilizando el disco de oxacilina como indicador. Según CLSI 2010, toda cepa de S. pneumoniae 

sensible a oxacilina es sensible a PEN, pero no lo contrario por lo que, la concentración mínima 

inhibitoria para penicilina y cefalosporinas de tercera generación (como cefotaxima o ceftriaxona) se 




debe realizar a los aislamientos que presenten un halo de inhibición ≤ 19 mm para oxacilina. Cepas 

SDP pueden ser resistentes, sensibilidad intermedia o sensibles a penicilina. 

Además, 1% de las cepas presentó sensibilidad intermedia a cefotaxima, antibiótico que al igual que 

la penicilina es utilizado como primera elección para el tratamiento de las infecciones por este agente. 

Todas las cepas fueron sensibles a cloranfenicol, ofloxacina, rifampicina, vancomicina y levofloxacina 

(Figura 23). 

Figura 23 

Resistencia a los antibióticos en Streptococcus pneumoniae invasivos, 2010 

N: 64 

100 

90 


80 

70 

60 

50 

40 

30 

20 

10 

S 

I 

R 

0 

PEN CTX CHL ERI OFX RIF TCY SXT VAN DA LEV IMP 

Antibiótico 

Fuente: Se incluyen los resultados confirmados por el CNRB para aislamientos enviados por: H. Blanco Cervantes, H. Escalante Pradilla, 

H. Enrique Baltodano, H. Max Peralta, H. México, H. Monseñor Sanabria, H. Nacional Niños, H. San Carlos, H. San Francisco de Asís, H. 

San Juan de Dios, H. San Rafael Alajuela, H. San Vicente de Paúl, H. Tomás Casas, H. Tony Facio. 


Se recomienda mantener la vigilancia de cepas de neumococo con SDP, ya que representan un serio problema 

de salud pública al mostrar falla terapéutica (Smith et al., 2005). 

Según CLSI 2010, la interpretación del resultado de penicilina para los aislamientos de S. pneumoniae se debe 

realizar según tres puntos de corte, dependiendo si se trata de penicilina parenteral para casos de meningitis, 

penicilina parenteral para cuadros diferentes a meningitis y/o penicilina vía oral, como se indica en el Cuadro 3. 




Cuadro 3 

Puntos de corte de Streptococcus pneumoniae para penicilina, 

según vía de administración del antibiótico y cuadro clínico 

Interpretación 

Meningitis 

Vía de administración 

Parenteral 

Cuadro no 

meníngeo 

Oral 

Sensible ≤ 0.06 µg/ml ≤ 2 µg/ml ≤ 0.06 µg/ml 

Intermedio - 4 µg/ml 0.12 - 1 µg/ml 

Resistente ≥ 0.12 µg/ml ≥ 8 µg/ml ≥ 2 µg/ml 

Fuente: CLSI 2010 

3.6 Streptococcus pneumoniae no invasivos: En el 2010 se tipificaron 72 aislamientos de S. 

pneumoniae no invasivos, en comparación con 72 y 84 aislamientos recibidos en el 2008 y 2009 

respectivamente. En los meses de marzo, agosto y setiembre de 2010, el CNRB recibió el mayor 

número de aislamientos de S. pneumoniae no invasivos (Figura 24). Un 33% de los aislamientos no 

invasivos de encuentran incluidos dentro de la vacuna heptavalente, siendo este porcentaje mayor al 

observado para los serotipos invasivos incluidos en esta vacuna (28.6%). 




Figura 24 

Distribución mensual de los aislamientos de S. pneumoniae no invasivos, confirmados en el 


16 


14 

12 

10 

8 

6 

4 

2 

0 

ENE 

FEB 

MAR 

ABR 

MAY 

JUN 

JUL 

AGO 

SET 

OCT 

NOV 

DIC 

ENE 

FEB 

MAR 

ABR 

MAY 

JUN 

JUL 

AGO 

SET 

OCT 

NOV 

DIC 

ENE 

FEB 

MAR 

ABR 

MAY 

JUN 

JUL 

AGO 

SET 

OCT 

NOV 

DIC 

Mes, año 

2008 2009 2010 


Los aislamientos de S. pneumoniae no invasivos correspondieron a 20 serotipos diferentes, siendo 

los predominantes: 3, 19F y 6B (Figura 25), en comparación con el año 2009 en que fueron 19F, 3 y 

6A. 




Figura 25 

Serotipos de Streptococcus pneumoniae de origen no invasivo, 2010 

N: 72 

22% 

16% 

4% 

4% 

4% 

4% 

13% 

14% 

3 

19F 

6B 

6A/C 

NST 

H+ (13 ó 28*) 

23A 

18A 

12F 

14 

Otros 

4% 

6% 

9% 

Otros serotipos: 9V, 7C, 22F, 18C, 15A, 4, 9N, 19A, 15B, 11A. 

Fuente: Se incluyen los resultados confirmados por el CNRB para aislamientos enviados por: H. Blanco Cervantes, H. Max Peralta, H. 

México, H. Monseñor Sanabria, H. Nacional de Niños, H. San Carlos, H. San Juan de Dios, H. San Rafael Alajuela, H. San Vicente de Paúl, 

Cl. Abangares, Cl. Católica. 

En la Figura 26 se observa una comparación de distribución de los serotipos de S. pneumoniae no 

invasivos confirmados durante los años 2008-2010 en el CNRB-INCIENSA. Se observa que los 

serotipos 19F (15.4%), 6B (10.5%) y 14 (5.3%) son los que más predominan. Un 60.5% corresponden 

a serotipos no vacunales (NV). 




Figura 26 

Distribución de los serotipos de S. pneumoniae no invasivos confirmados en el CNRB- 

INCIENSA, Costa Rica 2008- 2010 

50 

45 

40 


35 

30 

25 

20 

15 

2008 

2009 

2010 

10 

5 

0 

4 6B 9V 14 18C 19F 23F NV Serotipos 

NV: serotipos no incluidos en la vacuna heptavalente 


Para este período se observó que 4% de las cepas mostraron resistencia neta a penicilina. Similar a 

lo observado en el periodo 2009, para el 2010 de todos los aislamientos, 30% se catalogan como 

SDP, 3% presentan resistencia y 4% sensibilidad intermedia a cefotaxima. Ambos antibióticos se 

utilizan comúnmente para el tratamiento de las infecciones no invasivas causadas por S. 

pneumoniae. De los otros antibióticos probados 25% de los aislamientos presentaron resistencia a 

trimetoprim sulfametoxazole, 24% a tetraciclina, 24% a eritromicina, 11% a clindamicina y 2% a 

cloranfenicol. Todas las cepas fueron sensibles a levofloxacina, rifampicina y vancomicina (Figura 

27). 




Figura 27 

Resistencia a los antibióticos en Streptococcus pneumoniae no invasivos, 2010 

N: 71 

100 

90 

80 


70 

60 

50 

40 

30 

S 

I 

R 

20 

10 

0 

PEN CTX CHL ERI OFX RIF TCY SXT VAN DA LEV IMP 

Antibiótico 

Fuente: Se incluyen los resultados confirmados por el CNRB para aislamientos enviados por: H. Blanco Cervantes, H. Max Peralta, H. 

México, H. Monseñor Sanabria, H. Nacional de Niños, H. San Carlos, H. San Juan de Dios, H. San Rafael Alajuela, H. San Vicente de Paúl, 

Cl. Abangares, Cl. Católica. 


Se recomienda mantener la vigilancia de cepas de neumococos con SDP, ya que representan un serio 

problema de salud pública al mostrar falla terapéutica (Smith et al., 2005). 

Al igual que para S. pneumoniae invasivo, de acuerdo a CLSI 2010, la interpretación del resultado de penicilina 

para los aislamientos no invasivos se debe realizar según tres puntos de corte dependiendo de la vía de 

administración del antibiótico y del cuadro clínico (Cuadro 3). 

3.7 Neisseria meningitidis: Durante el 2010 en el CNRB se tipificó solo un aislamiento de N. 

meningitidis, perteneciente al serogrupo Y, referido por el Hospital Max Peralta, en abril, en 

comparación con 7 y 4 aislamientos recibidos en el 2008 y 2009 respectivamente. La cepa se aisló a 

partir del líquido cefalorraquídeo de una paciente de 18 años con meningitis, y resultó sensible a 

todos los antibióticos probados: cefotaxima, penicilina, rifampicina, ciprofloxacina, cloranfenicol, 

trimetoprim sulfametozaxole y azitromicina. 

Se recomienda mantener la vigilancia de la PSA en estas bacterias, ya que a nivel mundial se han 

documentado cepas con SDP (Stefanelli et al., 2004). 




4. Consideraciones finales 

La resistencia a los antimicrobianos es un problema de salud pública a nivel nacional y mundial, el 

cual constituye una amenaza creciente para todos, independientemente de la edad, sexo y nivel 

socioeconómico. Este problema, se ha visto favorecido por el uso de antimicrobianos no sólo en 

clínica humana, sino en áreas como clínica veterinaria y agricultura, entre otras. Este hecho hace que 

los costos del tratamiento de las infecciones causadas por microorganismos resistentes a los 

antimicrobianos sean cada vez más limitados, y de costos muy elevados, o en algunos casos, 

inexistentes, dado que estos pacientes suelen necesitar hospitalización, generalmente más 

prolongada, y su pronóstico es más desfavorable. Esto además conduce a una disminución de la 

calidad de vida y produce un aumento de los costos en materia de salud y asistencia sanitaria. 

Aunque no es posible acabar con la resistencia a los antimicrobianos, ya que este es un evento de la 

naturaleza, si es posible prevenir y contener este problema. Para ello es muy importante realizar y 

fortalecer la vigilancia de la resistencia a los antimicrobianos basada en el laboratorio, la cual es 

fundamental para detectar tempranamente problemas emergentes y monitorear los perfiles 

cambiantes de la resistencia. Esto se realiza a fin de contar con información valiosa y necesaria para 

dirigir y evaluar las medidas de prevención y control, y la toma de decisiones en relación al uso 

adecuado de los antimicrobianos en las diferentes áreas. Además es importante prolongar la vida útil 

de los antimicrobianos y mejorar los métodos de diagnóstico y de control de las infecciones a nivel 

hospitalario y en la comunidad. 

A pesar de la urgencia del problema, la contención de la resistencia a los antibióticos no es un trabajo 

fácil y los logros conseguidos hasta ahora a nivel nacional y mundial no han sido aún suficientes. La 

vigilancia, prevención y el control de la resistencia a los antibióticos requieren un esfuerzo, 

compromiso y colaboración constante entre diferentes grupos del sector público y privado y de la 

sociedad civil, con el apoyo y el liderazgo del gobierno, llegando a lo que llamamos una estrategia de 

contención integral. 

La información contenida en este documento debe llamar la atención sobre la necesidad de que en 

los laboratorios se dé una revisión crítica de los datos de resistencia a los antibióticos generados 

antes de que estos sean reportados y utilizados para el tratamiento del paciente y en la elaboración 

de normas de tratamiento. El personal de laboratorio debe de estar capacitado para ser capaz de 

reconocer al menos los perfiles inusuales básicos de resistencia a los antimicrobianos, los cuales 

deben ser verificados y confirmados antes de su reporte definitivo. Lo anterior se debe a que un perfil 




de resistencia inusual podría estar indicando problemas en la identificación bacteriana, en la prueba 

de sensibilidad a los antibióticos o que efectivamente se trate de un perfil poco común, lo cual amerita 

mayor investigación y es de suma importancia para que el médico elija el tratamiento adecuado. 

Por otro lado, se debe tomar en cuenta que el problema de la resistencia es complejo y dinámico, y 

que a pesar de los avances en este campo se encuentra la contraparte de los complejos mecanismos 

de defensa que las bacterias pueden desarrollar o adquirir. Por lo que es indispensable realizar el 

análisis periódico de la evolución de la resistencia a los antibióticos en gérmenes de importancia en 

salud pública y divulgarla entre el personal del laboratorio, así como a los diferentes servicios del 

hospital y a la comisión de infecciones intrahospitalarias. En este nivel la información deberá ser 

utilizada para brindar el tratamiento adecuado a los casos, actualizar las normas de manejo clínico, 

realizar educación continua a los encargados del manejo de los pacientes y guiar las políticas de 

control de infecciones. 

De igual manera, es de gran importancia realizar esfuerzos por consolidar las bases de datos de 

resistencia de los diferentes centros de salud, lo que podría ser de utilidad en la toma de decisiones 

para la implementación de políticas nacionales, la actualización de las guías de manejo de los 

antimicrobianos y para evaluar el costo-efectividad de las medidas de intervención. Sin embargo, hay 

que tomar en cuenta que el consolidado de bases de datos nacional representa el promedio para 

diferentes establecimientos de salud, por lo que puede ocultar diferencias importantes a nivel de 

centros de salud e incluso servicios de atención. A pesar que la prevención para el desarrollo de 

resistencia a los antibióticos o para la contención de su aparición, dependerá de acciones de los 

ministerios de salud, los profesionales de salud y la comunidad; la vigilancia sistemática de la 

resistencia a los antibióticos realizada por el personal sanitario en cada centro de salud o en un área 

geográfica dada, es la que permite conocer la situación, y así dar la voz de alerta sobre la aparición e 

incremento de la resistencia a los antimicrobianos. 

5. Fuentes consultadas 

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Switzerland, 2000. 

World Health Organization. Guidelines for the control of shigelosis, including epidemics due to Shigella dysenteriae 1. Geneva, 

Switzerland, 2005. 




Anexo 1 

Tomado de: “Detección fenotípica de mecanismos de resistencia en patógenos 

multirresistentes” Dr. Marcelo Galas. Servicio Antimicrobianos. Instituto de Salud “Dr. Carlos 

G. Malbrán”- ANLIS. Curso-Taller Resistencia a los antimicrobianos en bacterias causantes 

de infecciones intra-hospitalarias. INCIENSA 2010.

Informe vigilancia de la resistencia a los antibiÃ³ticos-gÃ©rmenes ...

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